ES2597837T3 - Células posparto derivadas de tejido de la placenta, y métodos de fabricación y utilización de los mismos - Google Patents

Abstract

Un aislado de células derivadas de placenta obtenible a partir de tejido de la placenta después del parto humano sustancialmente libre de sangre, en el que dicha célula se auto-renueva y se expande en cultivo, es multipotente, requiere L-valina para el crecimiento, crece en oxígeno de aproximadamente 5% a aproximadamente 20%, y tiene las siguientes características adicionales: a) producción de vimentina y actina de músculo liso alfa; b) expresión de la proteína quimiotáctica de granulocitos-2 (GCP-2) como se detecta por citometría de flujo; c) falta de producción de GRO-alfa y receptor de lipoproteína de baja densidad oxidada, tal como se detecta por citometría de flujo; d) producción de CD10, CD13, CD44, CD73, CD90, PDGFr-alfa, PD-L2 y HLA-A, B, C, tal como se detecta por citometría de flujo; e) falta de producción de CD31, CD45, CD80, CD86, CD117, CD141, CD 178, B7-H2, HLA-G, y HLA-DP, DQ, DR, tal como se detecta por citometría de flujo; f) expresión, la cual es relativa a una célula humana que es un fibroblasto, una célula madre mesenquimal, o una célula de médula ósea de cresta ilíaca, se reduce para homeobox de baja estatura 2; proteína 27kDa de choque térmico 2; quimiocina (C-X-C con motivos) ligando 12 (estromal el factor 1 derivado de células); elastina; ADNc DKFZp586M2022 (a partir del clon DKFZp586M2022); homeobox de mesenquimio 2; homólogo de homeobox sine oculis 1; cristalina, alfa B; activador asociado desgreñado de la morfogénesis 2; proteína DKFZP586B2420; similar a neuralina 1; tetranectina; src homólogía tres (SH3) y el dominio rico en cisteína; gen de translocación de células B 1, anti-proliferativa; colesterol 25-hidroxilasa; factor de transcripción relacionado con runt-3; proteína hipotética FLJ23191; receptor de interleucina 11, alfa; procolágeno promotor de C-endopepti- dase; homólogo rizado 7; gen hipotético BC008967; colágeno, tipo VIII, alfa 1; tenascina C; homeobox de proteínas Iroquois 5; hefaestina; integrina, beta 8; glicoproteína vesícula sináptica 2; ADNc FLJ12280 fis, Clon de MAMMA1001744; citoquina del receptor del factor-1 como; potasio intermedio/pequeña conductancia de calcio canal activado, subfamilia N, miembro 4; integrina, alfa 7; proteína de DKFZP586L151; co-activador transcripcional con motivo de unión PDZ (TAZ); homólogo de homeobox sine oculis 2; proteína KIAA1034; respuesta de crecimiento temprano 3; homeobox no distal 5; proteína hipotética FLJ20373; familia de reductasa aldo-ceto 1, miembro de C3 (deshidrogenasa de hidroxiesteroide 3-alfa, tipo II); biglicano; fibronectina 1; proencefalina; integrina beta tipo 1 (con EGF igual que los dominios de repetición); clon de ADNc EUROIMAGE 1968422; EphA3; proteína KIAA0367; receptor del péptido natriurético C/guanilato ciclasa C (receptor de péptido atrionatriurético C); proteína hipotética FLJ14054; ADNc DKFZp564B222 (a partir de DKFZp564B222 clon); proteína de membrana asociada a vesículas 5; fibulina que contiene EGF como la proteína de la matriz extracelular 1; BCL2/adenovirus E1B 19kDa proteína de interacción tipo 3; proteína de unión AE 1; citocromo c oxidasa subunidad polipeptídica VIIa 1 (músculo); neuroblastoma, supresión de tumorigenicidad 1; y proteína de unión de factor de crecimiento similar a la insulina 2, 36 kDa como se ensayó por microensayo; g) secreción de la proteína quimiotáctica de monocitos 1 (MCP-1), interleucina-6 (IL-6), quimiotáctica de granulocitos en proteínas 2 (GCP-2), factor de crecimiento de hepatocitos (HGF), factor de crecimiento de queratinocitos (KGF), heparina de unión al factor de crecimiento epidérmico (HB-EGF), inhibidor tisular de la metaloproteinasa de matriz 1 (TIMP1), trombopoyetina (TPO), Rantes (reguladas en la activación, células T normales expresadas y secretadas) y el timo y quimiocina regulada por activación (TARC), como detectada por ELISA; h) falta de secreción de factor de crecimiento de fibroblastos (FGF), angiopoyetina 2 (ANG2), factor de crecimiento derivado de plaquetas (PDGF-BB), factor de crecimiento transformante beta 2 (TGFbeta2), proteína inflamatoria de macrófagos 1beta (MIP1b), 1309, y quimioquina derivada de macrófagos (MDC), como se detecta por ELISA; i) tiene la capacidad de someterse a al menos 40 duplicaciones de la población en cultivo; y j) la expresión, que en relación con una célula humana que es un fibroblasto, una célula madre mesenquimal, o una célula de médula ósea de cresta ilíaca, se incrementa para miembro de superfamilia de lectina de tipo C A2, tumor de Wilms 1, deshidrogenasa de aldehído miembro 1 de la familia A2, renina, receptor de lipoproteínas oxidado de baja densidad 1, quinasa de proteína C zeta, clon IM-EDAD: 4179671, proteína hipotética DKFZp564F013, subregulado en el cáncer de ovario 1, y el clon DKFZp547K1113 como se ensayó mediante microensayos.

Description

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reparación del tejido. En algunas realizaciones de la invención, la condición a ser tratada es una condición de los tejidos blandos (por ejemplo, piel, músculo, vasos, tendones, ligamentos, vejiga, fascia, suelo pélvico), hueso, páncreas, riñón, hígado, sistema nervioso, ojo, corazón, o cartílago.

[0038] Los métodos de la invención incluyen además métodos para producir una población de células de la placenta-derivados por expansión de una célula de la invención en cultivo.

[0039] Otras características y ventajas de la invención serán evidentes a partir de la descripción detallada y los ejemplos que siguen.

DESCRIPCIÓN DETALLADA DE LAS REALIZACIONES ILUSTRATIVAS

Definiciones

[0040] Varios términos utilizados en la especificación y reivindicaciones se definen como se indica a continuación.

[0041] Las células madre son células no diferenciadas definidas por su capacidad a nivel de células individuales tanto para auto-renovar como diferenciarse para producir células de progenie, incluyendo progenitores de autorenovación, progenitores no-renovables de células y células terminales diferenciadas. Las células madre también se caracterizan por su capacidad para diferenciarse in vitro en células funcionales de diversos linajes celulares de múltiples capas germinales (endodermo, mesodermo y ectodermo), así como para dar lugar a los tejidos de múltiples capas germinales después del trasplante y para contribuir sustancialmente a la mayoría, si no a todos, los tejidos después de la inyección en blastocistos.

[0042] Las células madre se clasifican por su potencial de desarrollo como: (1) totipotente -capaces de dar lugar a todos los tipos de células embrionarias y extraembriónico; (2) pluripotentes -capaz de dar lugar a todos los tipos de células embrionarias; (3) multipotentes -capaz de dar lugar a un subconjunto de los linajes de células, pero todos dentro de un tejido, órgano o sistema fisiológico particular (por ejemplo, las células madre hematopoyéticas (HSC) pueden producir una progenie que incluyen HSC (auto-renovación), de glóbulos restringidos progenitores oligopotentes, y todos los tipos de células y elementos (por ejemplo, plaquetas) que son componentes normales de la sangre); (4) oligopotente -capaz de dar lugar a un subconjunto más restringido de linajes de células que las células madre multipotentes; y (5) unipotente -capaz de dar lugar a un único linaje de células (por ejemplo, células madre de espermatogénesis).

[0043] Las células madre también se clasifican sobre la base de la fuente de la que se pueden obtener. Una célula madre adulta es generalmente una célula indiferenciada multipotente que se encuentra en el tejido que comprende múltiples tipos de células diferenciadas. La célula madre adulta puede renovarse y, en circunstancias normales, diferenciarse para producir los tipos especializados de células del tejido del que se originó, y posiblemente otros tipos de tejidos. Una célula madre embrionaria es una célula pluripotente de la masa celular inteARN de un embrión en fase de blastocisto. Una célula madre fetal es una que se origina a partir de tejidos o membranas fetales. Una célula madre es una célula de posparto multipotente o pluripotente que se origina sustancialmente a partir de tejido extraembrionario disponible después del nacimiento, a saber, la placenta y del cordón umbilical. Se ha encontrado que estas células poseen rasgos característicos de las células madre pluripotentes, incluyendo la rápida proliferación y el potencial de diferenciación en muchos linajes celulares. Células madre posparto pueden ser derivadas de la sangre (por ejemplo, como son los obtenidos a partir de sangre de cordón umbilical) o no derivadas del sangre (por ejemplo, tal como se obtiene de los tejidos no sanguíneos del cordón umbilical y la placenta).

[0044] Tejido embrionario se define típicamente como tejido de origen del embrión (que en los seres humanos se refiere al período de la fertilización a aproximadamente seis semanas de desarrollo. Tejido fetal se refiere al tejido procedente del feto, que en los seres humanos se refiere al período de alrededor de seis semanas de desarrollo a parto. Tejido extraembriónico es el tejido asociado con, pero que no se origina a partir del embrión o el feto. Tejidos extraembriónicos incluyen membranas extraembriónicas (corion, amnios, saco vitelino y alantoides), cordón umbilical y la placenta (que a su vez se forma a partir del corion y la decidua basal materna).

[0045] La diferenciación es el proceso por el cual una célula ("no comprometida") no especializada o menos especializada adquiere las características de una célula especializada, como una célula nerviosa o una célula muscular, por ejemplo. Una célula diferenciada o la diferenciación inducida es una que ha adquirido una posición más especializada ("comprometida") dentro del linaje de una célula. El término cometido, cuando se aplica al proceso de diferenciación, se refiere a una célula que ha procedido en la vía de diferenciación a un punto en el que, en circunstancias normales, continuará para diferenciarse en un tipo celular específico o un subconjunto de tipos de células, y no puede, en circunstancias normales, diferenciarse en un tipo de célula diferente o volver a un tipo de células menos diferenciadas. De-diferenciación se refiere al proceso por el cual una célula vuelve a una posición menos especializada (o comprometida) dentro del linaje de una célula. En la presente memoria, el linaje de una célula define la herencia de la célula, es decir, de dónde las células venían y qué células se pueden. El linaje de una célula coloca la célula dentro de un esquema hereditario de desarrollo y diferenciación. Un marcador de linaje específico se refiere a una característica asociada específicamente con el fenotipo de las células de un linaje de

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[0107] Las células de la invención pueden modificarse por ingeniería genética para expresar una proteína terapéutica utilizando cualquiera de una variedad de vectores, incluyendo, pero no limitado a, la integración de vectores virales, por ejemplo, vector de retrovirus o vectores virales adeno-asociados; no integración de replicar vectores que, por ejemplo, vectores de virus papiloma, vectores de SV40, vectores adenovirales; o vectores víricos de replicación defectuosa. Otros métodos de introducción de ADN en las células incluyen el uso de liposomas, la electroporación, un disparador de partículas, o por inyección directa del ADN.

[0108] Células huésped se transforman o se transfectan con ADN controlado por, o en asociación operativa con, uno

o más elementos de control de expresión apropiado tales como secuencias de promotor o de potenciador, terminadores de transcripción, sitios de poliadenilación, entre otros, y un marcador seleccionable de preferencia.

[0109] Después de la introducción del ADN extraño, las células manipuladas pueden dejarse crecer en medio enriquecido y luego cambiarse a medio selectivo. El marcador seleccionable en ADN extraño confiere resistencia a la selección y permite que las células integren de forma estable el ADN extraño como, por ejemplo, en un plásmido, en sus cromosomas y se crecen para formar focos que, a su vez, se pueden clonar y expandir en líneas de célula.

[0110] Este método se puede utilizar ventajosamente para diseñar líneas celulares que expresan el producto del gen.

[0111] Cualquier promotor puede utilizarse para conducir la expresión del gen insertado. Por ejemplo, los promotores virales incluyen, pero no se limitan al promotor/potenciador de CMV, SV40, virus del papiloma, virus de Epstein-Barr o elastina promotor del gen. Preferiblemente, los elementos de control utilizados para controlar la expresión del gen de interés deben permitir la expresión regulada del gen de modo que el producto se sintetiza sólo cuando sea necesario in vivo. Si se desea la expresión transitoria, los promotores constitutivos se utilizan preferiblemente en un vector no integrante y/o de replicación defectuosa. AlteARNtivamente, los promotores inducibles se podrían utilizar para conducir la expresión del gen insertado cuando sea necesario.

[0112] Los promotores inducibles incluyen, pero no se limitan a, aquellos asociados con proteínas de metalotioneína y de choque térmico.

[0113] Ejemplos de regiones de control de la transcripción que exhiben especificidad de tejido que se han descrito y se pueden utilizar incluyen pero no se limitan a: región de control del gen de elastasa I, que es activa en células acinares pancreáticas (Swift et al, 1984, Cell 38: 639; Ornitz et al, 1985, Cold Spring Harbor Symp Quant Biol 50: 399; MacDonald, 1987, Hepatology 7: 425-515); región de control del gen de la insulina, que es activa en células beta pancreáticas (Hanahan, 1985, Nature 315: 115); región de control del gen de proteína básica de mielina, activa en células de oligodendrocitos en el cerebro (Readhead et al, 1987, Cell 48: 703); cadena ligera de miosina-2 región de control de genes, que es activa en el músculo esquelético (Shani, 1985, Nature 314: 283); y región de control del gen de la hormona de liberación gonadotrópica, que es activa en el hipotálamo (Mason et al, 1986, Science 234: 1372).

[0114] Las células de la invención pueden ser modificadas genéticamente para "knock out" o "knock down" de factores de expresión que promueven la inflamación o rechazo en la zona del implante. Técnicas moduladoras negativas para la reducción de los niveles de expresión del gen diana o niveles de actividad del producto del gen diana se discuten a continuación. "Modulación negativa", como se usa aquí, se refiere a una reducción en el nivel y/o actividad de gen diana producto en relación con el nivel y/o actividad del producto del gen diana en ausencia del tratamiento modulador. La expresión de un gen nativo para una célula puede reducir o eliminar mediante la utilización de un número de técnicas que incluyen, por ejemplo, la inhibición de la expresión mediante la inactivación del gen completo (comúnmente denominado "knockout") utilizando la técnica de recombinación homóloga. Por lo general, un exón que codifica una región importante de la proteína (o un exon 5’ para dicha región) es interrumpida por un marcador seleccionable positivo, por ejemplo, neo, la prevención de la producción de ARNm normal a partir del gen diana y que resulta en la inactivación del gen. Un gen también puede ser inactivado mediante la creación de una deleción en parte de un gen o mediante la supresión del gen entero. Mediante el uso de una construcción con dos regiones de homólogoía al gen diana que son muy separadas en el genoma, las secuencias que intervienen las dos regiones se pueden eliminar (Mombaerts et al, 1991, Proc. Nat. Acad. Sci. EE.UU. 88: 3084).

[0115] Antisentido, ADNzimas, ARN de interferencia pequeña, y moléculas de ribozima que inhiben la expresión del gen diana también pueden ser utilizados de acuerdo con la invención para reducir el nivel de actividad del gen diana. Por ejemplo, las moléculas de ARN antisentido que inhiben la expresión de los principales complejos de genes de histocompatibilidad (HLA) han mostrado ser más versátiles con respecto a las respuestas inmunes. Aún más, las moléculas de triple hélice pueden ser utilizadas en la reducción del nivel de actividad del gen diana.

[0116] Estas técnicas se describen en detalle por L.G. Davis et al. (eds), 1994, BASIC METHODS IN MOLECULAR BIOLOGY, 2ª ed., Appleton & Lange, Norwalk, Conn.

[0117] El uso de cualquiera de las técnicas anteriores, por ejemplo, la expresión de IL-1 puede ser eliminada o derribada en las células de la invención para reducir la producción de mediadores inflamatorios por las células de la

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células criopreservadas se almacenaron. Tabla 1-1. El aislamiento y la expansión del cultivo de células de la placenta en condiciones diferentes:

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Condición

Medio FBS BME Gelatina O2 Factores de crecimiento

1

DMEM-Lg 15% Y Y 20% N

2

DMEM-Lg 15% Y Y 5% N

3

DMEM-Lg 15% Y N 20% N

4

DMEM-Lg 15% Y N 5% N

5

DMEM-Lg 2% Y N (Laminina) 20% EGF/FGF (20 ng/ml)

6

DMEM-Lg 2% Y N (Laminina) 5% EGF/FGF (20 ng/ml)

7

DMEM-Lg 2% Y N (Fibronectina) 20% PDGF/VEGF

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DMEM-Lg 2% Y N (Fibronectina) 5% PDGF/VEGF

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DMEM-Lg 15% N Y 20% N

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DMEM-Lg 15% N Y 5% N

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DMEM-Lg 15% N N 20% N

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DMEM-Lg 15% N N 5% N

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DMEM-Lg 2% N N (Laminina) 20% EGF/FGF (20 ng/ml)

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DMEM-Lg 2% N N (Laminina) 5% EGF/FGF (20 ng/ml)

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DMEM-Lg 2% N N (Fibronectina) 20% PDGF/VEGF

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DMEM-Lg 2% N N (Fibronectina) 5% PDGF/VEGF

Clave: Lg: Glucosa baja; N: Ninguno; Y: Sí; BME: beta-mercaptoetlianol; FGF: Factor de crecimiento de fibroblasto; EGF: Crecimiento epidérmico factor; PDGF: Factor de crecimiento derivado de plaqueta; VEGF: Factor de crecimiento vascular endotelial.

30 Resultados

[0200] El aislamiento de PDC usando diferentes condiciones de crecimiento. En todas las condiciones establecidas en la Tabla 1-1, las células se unieron y ampliaron bien entre el paso entre 0 y 1. Las casillas de la condición 5 a 8 y 13 a 16 se demostraron a proliferar así hasta al menos cuatro pasajes después de la siembra.

35 [0201] El aislamiento de las células de placenta utilizando diferentes combinaciones de enzimas. La digestión del tejido con colagenasa: dispasa y colagenasa: dispasa: hialuronidasa como resultado del aislamiento de poblaciones de células de tejidos de la placenta que se expandieron fácilmente.

40 [0202] Resumen. PDC se pueden aislar utilizando una combinación de una metaloproteasa de matriz y proteasa neutra, tal como, pero no limitado a una combinación de colagenasa y dispasa. PDC se aíslan preferiblemente usando una combinación de enzimas de una metaloproteasa de matriz, una proteasa neutra, y una enzima mucolítica que degrada el ácido hialurónico, tales como, pero no limitado a una combinación de colagenasa, dispasa, y hialuronidasa o una combinación de LIBERASETM (Boehringer Mannheim Corp., Indianapolis, IN) y

45 hialuronidasa. Blendcima 3, que es la colagenasa (4 unidades Wunsch/g) y termolisina (1714 unidades de caseína/g) se puede usar junto con hialuronidasa para aislar células.

EJEMPLO 2

50 Evaluación de Medios de Crecimiento de las Células Derivadas del Placenta

[0203] Se evaluaron varios medios de cultivo celular por su capacidad para apoyar el crecimiento de células derivadas de la placenta. El crecimiento de las células derivadas de la placenta en oxígeno normal (20%) y bajo (5%) se evaluó después de 3 días utilizando el ensayo colorimétrico MTS.

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Métodos y materiales

[0204] Las Células derivadas de la placenta en el paso 8 (P8) se sembraron a 1 x 103 células/pocillo en placas de 96 pocillos en medio de crecimiento (DMEM de baja glucosa (Gibco, Carlsbad CA), 15% (v/v) de bovino fetal suero 60 (Cat. #SH30070.03; Hyclone, Logan, UT), 0,001% (v/v) betamercaptoetanol (Sigma, St. Louis, MO), penicilina 50 unidades/mililitro, 50 microgramos/mililitro estreptococos micina (Gibco). Después de 8 horas el medio se cambió al descrito en la Tabla 2-1 y las células se incubaron en condiciones normales (20%, v/v) o bajo (5%, v/v) de oxígeno a 37°C, 5% de CO2 durante 48 horas. MTS se añadió al medio de cultivo (una solución acuosa CELLTITER96® AQueous One Solution Cell Proliferation Assay, Promega, Madison, WI) durante 3 horas y la absorbancia medida a

65 490 nanómetros (Molecular Devices, Sunnyvale CA).

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Table 8-4. Los genes que se muestran han aumentado específicamente la expresión en las células del cordón umbilical derivadas en comparación con las otras líneas celulares ensayadas.

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Genes aumentados en células derivadas de cordon umbilical

Identificación de conjunto de sondas

Nombre de gen Nombre de gen

202859_x_at

interleucina 8 NM_000584

211506_s_at

interleucina 8 AF043337

210222_s_at

reticulon 1 BC000314

204470_at

quemoquina (C-X-C motivo) ligando 1 (melanoma actividad de estimulación de crecimiento) NM_001511

206336_at

quemoquina (C-X-C motivo) ligando 6 (granulocito proteína quemotáctica 2) NM_002993

207850_at

quemoquina (C-X-C motivo) ligando 3 NM_002090

203485_at

reticulon 1 NM_021136

202644_s_at

tumor factor necrosis, proteína inducida alfa 3 NM_006290

Table 8-5. Los genes que se muestran tener una disminución en la expresión de las células del cordón umbilical y la placenta en comparación con las otras líneas celulares ensayadas.

Genes aumentados en células derivadas de cordon umbilical

Identificación de conjunto de sondas

Nombre de gen Nombre de gen

210135_s_at

homeobox de baja estatura 2 AF022654.1

205824_at

choque térmico 27kDa proteína 2 NM_001541.1

209687_at

quemoquina (C-X-C motivo) ligando 12 (factor derivado de células estromales 1) U19495.1

203666_at

quemoquina (C-X-C motivo) ligando 12 (factor derivado de células estromales 1) NM_000609.1

212670_at

elastina (estenosis aortica supravalvular, síndrome Williams-Beuren) AA479278

213381_at

Homo sapiens ARNm; ADNc DKFZp586M2022 (de clon DKFZp586M2022) N91149

206201_s_at

homeobox de mesénquima 2 (homeobox específico de crecimiento detenido) NM_005924.1

205817_at

sine oculis homeobox homólogo 1 (Drosophila) NM_005982.1

209283_at

cristalina, alfa B AF007162.1

212793_at

activador de morfogenesis asociado desgreñado 2 BF513244

213488_at

DKFZP586B2420 proteína AL050143.1

209763_at

similar a neuralina 1 AL049176

205200_at

tetranectina (proteína de unión de plasminogen) NM_003278.1

205743_at

src homología tres (SH3) y dominio rico en cisteína NM_003149.1

200921_s_at

gen de traslocación de célula B 1, anti-proliferativo NM_001731.1

206932_at

colesterol 25-hidroxilasa NM_003956.1

204198_s_at

factor de transcripción relacionado a runt 3 AA541630

219747_at

proteína hipotética FLJ23191 NM_024574.1

204773_at

interleucina 11 receptor, alfa NM_004512.1

202465_at

procolagen C-potenciador de endopeptidasa NM_002593.2

203706_s_at

homólogo frizzled 7 (Drosophila) NM_003507.1

212736_at

gen hipotético BC008967 BE299456

214587_at

colagen, tipo VIII, alfa 1 BE877796

201645_at

tenascina C (hexabrachion) NM_002160.1

210239_at

iroquois homeobox proteína 5 U90304.1

203903_s_at

hefaestina NM_014799.1

205816_at

integrina, beta 8 NM_002214.1

203069_at

glicoproteína de vesículo sináptico 2 NM_014849.1

213909_at

Homo sapiens ADNc FLJ12280 fis, clone MAMMA1001744 AU147799

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206315_at

citoquina similar al receptor del factor 1 NM_004750.1

204401_at

potasio intermedia / pequeña conductancia de calcio canal activado, subfamilia N, miembro 4 NM_002250.1

216331_at

integrina, alfa 7 AK022548.1

209663_s_at

integrina, alfa 7 AF072132.1

213125_at

proteína DKFZP586L151 AW007573

202133_at

co-activador transcripcional con motivo de unión PDZ (TAZ) AA081084

206511_s_at

homeobox de homólogo sine oculis 2 (Drosophila) NM_016932.1

213435_at

proteína KIAA1034 AB028957.1

206115_at

respuesta de crecimiento temprano 3 NM_004430.1

213707_s_at

homeobox no distal 5 NM_005221.3

218181_s_at

proteína hipotética FLJ20373 NM_017792.1

209160_at

aldo-ceto reductasa familia 1, miembro de C3 (3-alfa hidroxiesteroide deshidrogenasa, tipo II) AB018580.1

213905_x_at

biglicano AA845258

201261_x_at

biglicano BC002416.1

202132_at

co-activador transcripcional con motivo de unión PDZ (TAZ) AA081084

214701_s_at

fibronectina 1 AJ276395.1

213791_at

proencefalina NM_006211.1

205422_s_at

integrina beta tipo 1 (con dominios de recepción similares a EGF) NM_004791.1

214927_at

Homo sapiens ARNm de longitud completa inserción ADNc clon Euroimage 1968422 AL359052.1

206070_s_at

EphA3 AF213459.1

212805_at

proteína KIAA0367 AB002365.1

219789_at

natriurético receptor del péptido C/guanilato ciclasa C (péptido atrionatriuretic receptor C) AI628360

219054_at

hipotética proteína FLJ14054 NM_024563.1

213429_at

Homo sapiens ARNm; ADNc DKFZp564B222 (a partir del clon DKFZp564B222) AW025579

204929_s_at

proteína de membrana asociada a vesículas 5 (myobrevin) NM_006634.1

201843_s_at

EGF que contiene proteína de la matriz extracelular fibulin tipo 1 NM_004105.2

221478_at

interacción de proteínas BCL2 / adenovirus E1B de 19 kDa 3-como AL132665.1

201792_at

proteína de unión a AE 1 N_001129.2

204570_at

citocromo c oxidasa subunidad polipeptídica VIIa 1 (músculo) NM_001864.1

201621_at

neuroblastoma, supresión de tumorigenicidad 1 NM_005380.1

202718_at

proteína de unión a factor de crecimiento similar a la insulina 2, 36 kDa NM_000597.1

5

10

15

20

42

[0268] Tablas 8-6, 8-7, y 8-8 muestran la expresión de genes aumentada en los fibroblastos humanos (Tabla 8-6), las células de ICBM (Tabla 8-7), y MSC (Tabla 8-8).

Tabla 8-6. Los genes se han demostrado aumentar la expresión en fibroblastos en comparación con las otras líneas celulares ensayadas.

10

15

20

25

30

35

Genes aumentados en fibroblastos

fosfatasa de doble especificidad 2

proteína KIAA0527

Homo sapiens ADNc: FLJ23224 fis, clon ADSU02206

dineína, citoplasmática, polipéptido intermedio 1

anquirina 3, nódulo de Ranvier (anquirina G)

inhibina, beta A (activina A, activina AB polipéptido alfa)

pirofosfatasa ectonucleótido/fosfodiesterasa 4 (función putativa)

proteína KIAA1053

proteína asociada a microtúbulos 1A

proteína dedos de zinc 41

proteína HSPC019

Homo sapiens ADNc: FLJ23564 fis, clon LNG10773

ARNm de Homo sapiens; ADNc DKFZp564A072 (del clon DKFZp564A072)

proteína LIM (similar al enigma de quinasa de proteína C de rata vinculante)

inhibidor de potenciador del gen de polipéptido ligero kappa en las células B, proteína quinasa de complejo asociado

proteína hipotética FLJ22004

(Clon CTG-A4) secuencia de ARNm humano

EST, moderadamente similares a citoquina factor de 2 similar al receptor; CRL2 precursor del receptor de citoquinas [Homo sapiens]

factor de crecimiento transformante, beta 2

proteína hipotética MGC29643

antígeno identificado por el anticuerpo monoclonal MRC OX-2

Tabla 8-7. Los genes que se han mostrado tener una mayor expresión en las células derivadas de ICBM en 40 comparación con las otras líneas celulares ensayadas.

45

50

55

60

Genes aumentados en las células ICBM

proteína con repeticiones de anquirina cardiaca

MHC de clase I región ORF

integrina, alfa 10

proteína hipotética FLJ22362

UDP-N-acetil-alfa-D-galactosamina: polipéptido N-acetilgalactosaminiltransferasa 3 (GalNAc-T3)

proteína inducida por interferón 44

SRY (región determinante del sexo Y)-box 9 (displasia campomélica, autosómica reversión sexual)

proteína de queratina asociada 1-1

hipocalcina tipo 1

dentado 1 (síndrome de Alagille)

proteoglicano 1, gránulo secretor

43

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[0306] Reacción mixta de linfocitos. Viales criopreservadas de PDC derivadas de placenta de pasaje 11 placenta etiquetadas como línea de células B se enviaron en hielo seco a CTBR (Senneville, Quebec) para llevar a cabo una reacción de linfocitos mixta utilizando CTBR SOP no. CAC-031. Se recogieron las células mononucleares de sangre periférica (PBMC) de donantes voluntarios femeninos y masculinos múltiples. Estimulador (donante) alogénico

5 PBMC, PBMC autólogas, y las líneas celulares derivadas de la placenta se trataron con mitomicina C. Células estimuladoras tratadas C de autólogo y mitomicina se añadieron para responder (receptores) PBMC y se cultivaron durante 4 días. Después de la incubación, [3H]-timidina se añadió a cada muestra y se cultivó durante 18 horas. Después de la cosecha de las células, se extrajo el ADN radiomarcado, y [3H]-timidina se midió utilizando un contador de centelleo.

10 [0307] El índice de estimulación para el donante alogénico (SIAD) se calculó como la proliferación media del receptor más donante alogénico de mitomicina C-tratada dividida por la proliferación de línea de base del receptor. El índice de estimulación de la célula derivada de placenta se calculó como la media de proliferación del receptor de la línea celular derivada de placenta C-tratada más mitomicina dividida por la proliferación de línea de base del

15 receptor.

Resultados

[0308] Reacción de linfocitos mixtos-Placenta. Siete donantes de sangre voluntarios humanos fueron

20 examinados para identificar un único donante alogénico que exhibiría una robusta respuesta de proliferación en una reacción de linfocitos mezclados con los otros seis donantes de sangre. Este donante fue seleccionado como el donante de control alogénico positivo. Los seis donantes de sangre restantes fueron seleccionados como receptores. El donante de control positivo alogénico y las líneas células de placenta fueron tratados con mitomicina C y se cultivaron en una reacción de linfocitos mezclados con los seis receptores alogénicos individuales. Las

25 reacciones se realizaron por triplicado utilizando dos placas de cultivo celular con tres receptores por placa (Tabla 11-2). El índice medio de estimulación varió de 1.3 (placa de 2) a 3 (placa 1) y los controles positivos de donante alogénico oscilaron entre 46,25 (placa de 2) a 279 (Placa 1) (Tabla 11-3).

Tabla 11-2. Reacción de datos de linfocito mixtos -línea de células B (placenta) 30

DPM para ensayo de proliferación

Placa de identificación: Placa1

Analítico

Cultivo Replicados

número

Sistema 1 2 3 Medio SD CV

IM03-7769

Línea base de proliferación del receptor 79 119 138 112,0 30,12 26,9

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C)

241 272 175 229,3 49,54 21,6

Donante alogénico MLR IM037768 (tratadas con mitomicina C)

23971 22352 20921 22414,7 1525,97 6,8

MLR con línea celular (tipo celular B tratada por mitomicina C)

664 559 1090 771,0 281,21 36,5

SI (donante)

200

SI (línea celular)

7

IM03-7770

Proliferación de línea de base de receptor 206 134 262 200,7 64,17 32,0

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C)

1091 602 524 739,0 307,33 41,6

MLR alogénica IM03-7768 donante (tratadas con mitomicina C)

45005 43729 44071 44268,3 660,49 1,5

MLR con la línea celular (mitomicina C tipo celular tratado

533 2582 2376 1830,3 1128,24 61,6

50

B)

DPM para ensayo de proliferación

Placa ID: Placa1

Analítico

Cultivo Replicados

número

Sistema 1 2 3 Medio SD CV

SI (donante)

221

SI (línea celular)

9

IM03-7771

Proliferación de línea de base de receptor 157 87 128 124.0 35.17 28.4

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C)

293 138 508 313.0 185.81 59.4

MLR alogénica IM037768 donante (tratadas con mitomicina C)

24497 34348 31388 30077.7 5054.53 16.8

MLR con la línea celular (mitomicina C tipo celular tratado B)

601 643 a 622.0 29.70 4.8

SI (donante)

243

SI (línea celular)

5

IM03-7772

Proliferación de línea de base de receptor 56 98 51 68.3 25.81 37.8

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C)

133 120 213 155.3 50.36 32.4

MLR alogénica IM037768 donante (tratadas con mitomicina C)

14222 20076 22168 18822.0 4118.75 21.9

MLR con la línea celular (mitomicina C tipo celular tratado B)

a a a a a a

SI (donante)

275

SI (línea celular)

a

IM03-7768 (donante alogénico)

Proliferación de línea de base de receptor 84 242 208 178.0 83.16 46.7

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina)

361 617 304 427.3 166.71 39.0

DPM para ensayo de proliferación

Placa ID: Placa1

Analítico

Cultivo Replicados

51

número

Sistema 1 2 3 Medio SD CV

Línea de células tipo B

Proliferación de línea de base de receptor 126 124 143 131.0 10.44 8.0

El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina)

822 1075 487 794.7 294.95 37.1

Placa ID: Placa2

Número analítico

Sistema de cultivo Replicados 123 Medio SD CV

IM03-7773

Proliferación de línea de base de receptor El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C) Donante alogénico MLR IM037768 (tratada con Mitomicina C) MLR con línea celular (Tipo celular B tratado con Mitomicina C) 908 181 330 269 405 572 29151 28691 567 732 905 28315 473,0 415,3 28719,0 734,7 384,02 151,76 418,70 169,02 81.2 36.5 1.5 23.0

SI (donante) SI (línea celular)

61 2

IM03-7774

Proliferación de línea de base de receptor El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C) Donante alogénico MLR IM037768 (tratada con Mitomicina C) MLR con línea celular (Tipo celular B tratado con Mitomicina C) 893 1376 185 261 381 568 53101 42839 515 789 294 48283 818,0 403,3 48074,3 532,7 599,03 154,71 5134,18 247,97 73.2 38.4 10.7 46.6

SI (donante) SI (línea celular)

59 1

Placa ID: Placa 2

Número analítico

Sistema de cultivo Replicados 123 Medio SD CV

IM03-7775

Proliferación de línea de base de receptor El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C) Donante alogénico MLR IM03-7768 (tratada con Mitomicina C) MLR con línea celular (Tipo celular B tratado con Mitomicina C) 1272 300 544 232 199 484 23554 10523 768 924 563 28965 705,3 305,0 21014,0 751,7 505,69 155,89 9479,74 181,05 71.7 51.1 45.1 24.1

SI (donante) SI (línea celular)

30 1

IM03-7776

Proliferación de línea de base de receptor El control de autoestimulación (células autólogas tratadas por mitomicina C) Donante alogénico MLR IM03-7768 (tratada con Mitomicina C) MLR con línea celular (Tipo celular B tratado con Mitomicina C) 1530 137 1046 420 218 394 28893 32493 aaa 34746 904,3 344,0 32044,0 a 707,22 109,89 2952,22 a 78.2 31.9 9.2 a

SI (donante) SI (línea celular)

35 a

Tabla 11-3. Índice de estimulación medio de células de la placenta y un donante alogénico en una reacción mixta de linfocitos con seis receptores alogénicos individuales.

5

Índice medio de estimulación

Receptor

Placenta

Placa 1 (Receptores 1-3)

279 3

Placa 2 (Receptores 4-6)

46,25 1,3

10

52

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Tabla 22-2. Resumen de las condiciones para protocolo de diferenciación de dos etapas

A

B

COND. #

PRE-DIFERENCIACIÓN DIFF DE 2A ETAPA

1

NPE + F + E NPE + SHH (200 nanogramo/mililitro) + F8 (100 nanogramo/mililitro)

2

NPE + F + E NPE + SHH (200 nanogramo/mililitro) + F8 (100 nanogramo/mililitro) + RA (1 micromolar)

3

NPE + F + E NPE + RA (1 micromolar)

4

NPE + F + E NPE + F (20 nanogramo/mililitro) + E (20 nanogramo/mililitro)

5

NPE + F + E Medio de Crecimiento

6

NPE + F + E Condición 1B + rhGDF-5 (20 nanogramo/mililitro)

7

NPE + F + E Condición 1B + BMP7 (20 nanogramo/mililitro)

8

NPE + F + E Condición 1B + GDNF (20 nanogramo/mililitro)

9

NPE + F + E Condición 2B + rhGDF-5 (20 nanogramo/mililitro)

10

NPE + F + E Condición 2B + BMP7 (20 nanogramo/mililitro)

11

NPE + F + E Condición 2B + GDNF (20 nanogramo/mililitro)

12

NPE + F + E Condición 3B + rhGDF-5 (20 nanogramo/mililitro)

13

NPE + F + E Condición 3B + BMP7 (20 nanogramo/mililitro)

14

NPE + F + E Condición 3B + GDNF (20 nanogramo/mililitro)

15

NPE + F + E NPE + rhGDF-5 (20 nanogramo/mililitro)

16

NPE + F + E NPE + BMP7 (20 nanogramo/mililitro)

17

NPE + F + E NPE + GDNF (20 nanogramo/mililitro)

[0412] Protocolo de Co-cultivo de Progenitor Neural. Progenitores adulto de hipocampo de rata (062603) se cultivaron como esferas neurológicas o células individuales (10.000 células/pocillo) en placas de 24 pocillos recubiertas con laminina (BD Biosciences) en NPE + F (20 nano gramos/mililitro) + E (20 nanogramos /mililitro).

[0413] Por otra parte, células derivadas de la placenta de (022803) P11 se descongelaron y expandidas en cultivo en NPE + F (20 nanogramos/mililitro) + E (20 nanogramos/mililitro) a 5.000 células/cm2 durante un periodo de 48 horas. Las células fueron tripsinizadas y se sembraron a 2.500 células/pocillo en cultivos existentes de progenitores neurales. En ese momento, el medio existente se cambió por medio fresco. Cuatro días más tarde, los cultivos se fijaron con helado de 4% de paraformaldehído (Sigma) durante 10 minutos a temperatura ambiente, y se tiñeron para la proteína nuclear humana (hNuc; Chemicon) (v/w) (Tabla 221-1 anteriormente) para identificar PPDCs.

[0414] Inmunocitoquímica. La inmunocitoquímica se llevó a cabo utilizando los anticuerpos enumerados en la Tabla 22-1. Los cultivos se lavaron con solución salina tamponada con fosfato (PBS) y se expusieron a una solución de bloqueo de proteína que contiene PBS, 4% (v/v) de suero de cabra (Chemicon, Temecula, CA), y 0,3% (v/v) de Triton (Triton X-100; Sigma) durante 30 minutos para acceder a antígenos intracelulares. Los anticuerpos primarios, se diluyó en solución de bloqueo, se aplicaron a los cultivos durante un período de 1 hora a temperatura ambiente. A continuación, las soluciones de anticuerpos primarios fueron removidos y cultivos lavaron con PBS antes de la aplicación de las soluciones de anticuerpo secundario (1 hora a temperatura ambiente) que contiene la solución de bloqueo, junto con anticuerpo de cabra anti-IgG de ratón -Texas Red (1: 250; Molecular Probes, Eugene, OR) y de cabra anti-IgG de conejo -Alexa 488 (1: 250; Molecular Probes). Después, los cultivos se lavaron y 10 micromolar DAPI (Molecular Probes) aplicaron durante 10 minutos para visualizar los núcleos celulares.

[0415] Después de la inmunotinción, la fluorescencia se visualizó usando el filtro de fluorescencia correspondiente en un microscopio invertido Olympus epi-fluorescencia (Olympus, Melville, NY). En todos los casos, la tinción positiva representó la señal de fluorescencia por encima de la tinción de control donde todo el procedimiento descrito anteriormente fue seguido con la excepción de la aplicación de una solución de anticuerpo primario. Imágenes representativas fueron capturadas utilizando un software ImagePro® (Media Cybernetics, Carlsbad, CA) y cámara de vídeo digital en color. Para las muestras de triple manchado, cada imagen fue tomada utilizando un solo filtro de emisión a la vez. montajes en capas se prepararon a continuación, utilizando el software Adobe Photoshop® (Adobe, San Jose, CA).

Resultados

[0416] Protocolo Woodbury-Black. (A) Tras la incubación en esta composición de inducción neural, todos los tipos de células transformadas en células con morfologías bipolares y procesos extendidos. También se observaron otras morfologías no bipolares más grandes. Además, las poblaciones de células inducidas se tiñeron positivamente para

70

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Claims (1)

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