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WO2019066599A2 - 신규 유산균 및 이의 용도 - Google Patents

신규 유산균 및 이의 용도 Download PDF

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WO2019066599A2
WO2019066599A2 PCT/KR2018/011607 KR2018011607W WO2019066599A2 WO 2019066599 A2 WO2019066599 A2 WO 2019066599A2 KR 2018011607 W KR2018011607 W KR 2018011607W WO 2019066599 A2 WO2019066599 A2 WO 2019066599A2
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WO
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proteobacteria
lactic acid
group
kccm
composition
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PCT/KR2018/011607
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김동현
한명주
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Kyung Hee University
Navipharm Co Ltd
Original Assignee
Kyung Hee University
Navipharm Co Ltd
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    • Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
    • Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
    • Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change

Definitions

  • the present invention relates to novel lactobacillus, Lactobacillus luterium and Bifidobacterium adolescentis, and more particularly to a composition comprising novel lactic acid bacteria useful for the prevention and treatment of cranial nerve diseases or inflammatory diseases.
  • the present invention relates to a composition for diagnosing a brain nerve disorder, which comprises an agent for measuring intestinal microbial levels.
  • Korean Patent Laid-Open No. 10-2017-0061457 discloses a composition for treating psychiatric disorders using the extract of Horseshoe-toe mushroom and extract of lettuce, but it has not yet been found that effective lactic acid bacteria There is a need for continuous research.
  • the inventors of the present invention have confirmed that, while studying the preventive and therapeutic agent for psychiatric disorders, it is possible to diagnose psychiatric disorders from the change of intestinal microbial community, and further, the novel lactic acid bacteria isolated from human and mouse feces, Inhibition of disease inducing factors, and improvement of anxiety and depressive behaviors.
  • the present invention can be used effectively for preventing or treating cranial nerve diseases, specifically, neurodegenerative diseases and psychiatric disorders.
  • Patent Document 1 Published Japanese Patent Application No. 10-2017-0061457
  • Another object of the present invention is to provide a composition for the prevention or treatment of cranial nerve diseases including novel lactic acid bacteria.
  • It is still another object of the present invention to provide a composition for diagnosing neuropsychiatric disorders comprising an agent for measuring the level of intestinal microorganisms.
  • Yet another object of the present invention is to provide a method for diagnosing cranial nerve disease, comprising the steps of: And comparing the level of the intestinal microorganism with the intestinal microbial level of the feces of the control rather than the brain nerve mental disease.
  • the present invention provides a novel lactic acid bacterium.
  • the novel lactic acid bacterium is selected from the group consisting of Lactobacillus reuteri NK33 (Depository Institution: Korean Microorganism Conservation Center, Deposit Date: 2017.08.04, Accession Number: KCCM 12090P) or Bifidobacterium adolescentis NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) (Depository: Korean Microorganism Conservation Center, deposit date: 2018.08.03, accession number: KCCM12297P).
  • the Lactobacillus luterian NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention is a novel lactic acid bacterium isolated and identified from human or mouse feces.
  • the 16S rDNA nucleotide sequence for identification and classification of Lactobacillus lutein NK33 of the present invention is shown in SEQ ID NO: 1 attached hereto.
  • the Lactobacillus reuteri NK33 of the present invention may comprise the 16S rDNA of SEQ ID NO: 1.
  • 99% homology with known Lactobacillus luterian strains showed the highest molecular phylogenetic relationship with Lactobacillus luteri. Therefore, the lactic acid bacterium was identified as Lactobacillus reuteri and designated as Lactobacillus luteri NK33, and deposited on Aug. 4, 2017 (Accession No. KCCM12090P) at the Korean Microorganism Conservation Center.
  • Lactobacillus lutein NK33 of the present invention is a gram-positive bacterium, and the cell type is bacillus. More specific Lactobacillus lutein NK33 physiological characteristics can be analyzed according to conventional methods in the art, and the results are shown in Table 3 below.
  • Lactobacillus luteriin NK33 is a carbon source which is selected from the group consisting of L-arabinose, D-ribose, D-xylose, D-galactose, D- glucose, D-fructose, D- mannose, mannitol, sorbitol, N- But are not limited to, acetyl-glucosamine, amigalline, arbutin, esculine, salicin, cellobiose, maltose, lactose, melibiose, sucrose, trehalose, melizitose, raffinose, gentiobiose, D-turanose and gluconate Can be used.
  • the 16S rDNA nucleotide sequence for identification and classification of Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention is shown in SEQ ID NO: 38 attached hereto.
  • the Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention may comprise the 16S rDNA of SEQ ID NO: 38.
  • the 16S rDNA sequence of SEQ ID NO: 38 it showed 98% homology with the known Bifidobacterium adolescentis strain and showed the highest molecular phylogenetic relationship with Bifidobacterium adolescentis.
  • Bifidobacterium adolescentis NK98 the lactic acid bacteria were identified as Bifidobacterium adolescentis , named Bifidobacterium adolescentis NK98, and deposited on August 3, 2018 at the Korean Microorganism Conservation Center (Accession No. KCCM 12297P).
  • the physiological characteristics of the Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention can be analyzed according to a conventional method in the art, and the results are shown in Table 4 below.
  • the Bifidobacterium adolescentis NK98 is a carbon source which is selected from the group consisting of D-glucose, D-mannitol, D-lactose, D-saccharose, D-maltose, salicin, D-xylose, L-arabinose, Ferric citrate, D-cellobiose, D-raffinose and D-trehalose may be used.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition for preventing or treating a neuropsychiatric disorder including a novel lactic acid bacterium.
  • the novel lactic acid bacteria may be Lactobacillus reuteri NK33, Bifidobacterium adolescentis NK98, or a mixture thereof.
  • Lactobacillus reuteri NK33 and " Bifidobacterium adolescentis NK98" of the present invention are as described above.
  • the lactic acid bacterium contained in the pharmaceutical composition of the present invention may be a biomass of the present invention, a bacterium thereof, a culture thereof, a disruption thereof or an extract thereof, but may be in the form of a lactic acid bacterium Can be used without limitation.
  • " culture product " in the present invention means an object obtained by culturing a lactic acid bacterium in a known liquid medium or a solid medium, and the present invention includes a novel lactic acid bacterium.
  • the neuropsychiatric disorder of the present invention may be a neurodegenerative disease or psychiatric disorder.
  • the neuropsychiatric disorders of the present invention can be psychiatric disorders, which include anxiety, depression, mood disorders, insomnia, delusional disorders, obsessive compulsive disorders, migraine, stress, memory disorders, cognitive disorders and attention disorders May be any one or more selected from the group.
  • Lactobacillus lutein NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 when administered to an animal model in which stress is induced, anxiety and depressive behavior due to stress are remarkably improved, Inhibition of NF- ⁇ B activity in the hippocampus of an animal model and the expression of brain-derived neurotrophic factor are increased, and blood stress markers such as corticosterone, IL-6, TNF- ⁇ and lipopolysaccharide (LPS ) was decreased.
  • the pharmaceutical composition containing the above-mentioned lactic acid bacteria can be effectively used for preventing or treating cranial mental diseases, specifically mental disorders.
  • the neurodegenerative diseases of the present invention may be neurodegenerative diseases, and the neurodegenerative diseases include Parkinson's disease, Huntington's disease, Alzheimer's disease, amyotrophic lateral sclerosis, Spinocerebellar Atrophy, Tourette's Syndrome, Friedrich's Ataxia, Machado-Joseph's disease, dementia, dystonia, progressive supranuclear palsy, And frontotemporal dementia. ≪ Desc / Clms Page number 7 >
  • NF- ⁇ B which is known as a substance causing neurodegenerative diseases such as Alzheimer's disease
  • BDNF Induced neurotrophic factor
  • Lactobacillus lutein NK33 and Bifidobacterium adolescentis NK98 were administered in combination, the effect of improving the psychological mental diseases, specifically stress, (Table 20).
  • the pharmaceutical composition may further include Bifidobacterium adolescentis IM38 KCCM 11807P.
  • the Bifidobacterium adolescentis IM38 KCCM 11807P is a known lactic acid bacterium disclosed in Korean Patent Laid-open Publication No. 10-2017-0090359, and is readily available on the basis of Korean Patent Publication No. 10-2017-0090359 Is possible.
  • the combination of Lactobacillus lutein NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 and Bifidobacterium adolescentis IM38 in a stress-induced animal model significantly improved stress anxiety and depressive behavior And the amount of corticosterone as a blood stress indicator factor was decreased.
  • the present invention provides a method of preventing or treating an inflammatory disease comprising Lactobacillus reuteri NK33, Bifidobacterium adolescentis NK98, or a mixture thereof
  • an inflammatory disease comprising Lactobacillus reuteri NK33, Bifidobacterium adolescentis NK98, or a mixture thereof
  • a pharmaceutical composition is provided.
  • Lactobacillus reuteri NK33 and " Bifidobacterium adolescentis NK98" of the present invention are as described above.
  • the lactic acid bacterium contained in the pharmaceutical composition of the present invention may be a biomass thereof, a bacterium thereof, a culture thereof, a disruption thereof or an extract thereof, but in the form of a lactic acid bacterium capable of achieving an effect of preventing or treating an inflammatory disease Can be used without limitation.
  • " culture product " in the present invention means an object obtained by culturing a lactic acid bacterium in a known liquid medium or a solid medium, and the present invention includes a novel lactic acid bacterium.
  • the inflammatory diseases of the present invention can be used for the treatment and prophylaxis of arthritis, gout, hepatitis, asthma, obesity, keratitis, gastritis, enteritis, nephritis, colitis, diabetes, tuberculosis, bronchitis, pleurisy, peritonitis, spondylitis, pancreatitis, Inflammation, scleroderma, sepsis, burns, dermatitis, periodontitis and gingivitis.
  • the inflammatory reaction was significantly inhibited in the treatment of the lactic acid bacteria together with lipopolysaccharide, which is an inflammatory reaction inducer, in macrophages isolated from mice (Table 5 and Table 6).
  • the pharmaceutical composition comprising the lactic acid bacterium of the present invention can be effectively used for the prevention and treatment of inflammatory diseases.
  • the inflammatory disease may be colitis.
  • the Lactobacillus lutein NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 when administered to an animal model in which colitis has been induced by stress, the length of the colon, which is an index of colitis, is restored to a normal level, The amounts of myeloperoxidase, COX-2 and iNOS were decreased and the activity of TNF- ⁇ was decreased (FIG. 15 and Table 15). Accordingly, it has been confirmed that the pharmaceutical composition comprising Lactobacillus lutein NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 can be effectively used for the prevention and treatment of inflammatory diseases, particularly, colitis.
  • compositions for the prevention or treatment of cranial nerve diseases according to the present invention are suitable for administration to mammals after administration to a mammal in order to provide rapid, sustained or delayed release of the active ingredient ≪ / RTI > method.
  • the pharmaceutical compositions according to the invention may additionally comprise a pharmaceutically acceptable carrier to the extent that the activity of the novel lactic acid bacteria is not inhibited.
  • Such pharmaceutically acceptable carriers may be those conventionally used such as lactose, dextrose, sucrose, sorbitol, mannitol, xylitol, erythritol, maltitol, starch, acacia rubber, alginate, gelatin, calcium phosphate, calcium silicate, But are not limited to, cellulose, methylcellulose, microcrystalline cellulose, polyvinylpyrrolidone, water, methylhydroxybenzoate, propylhydroxybenzoate, talc, magnesium stearate and mineral oil.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may contain diluents or excipients such as fillers, extenders, binders, wetting agents, disintegrants, surfactants, and other pharmaceutically acceptable additives.
  • the dosage of the pharmaceutical composition according to the present invention should be a pharmaceutically effective amount.
  • a " pharmaceutically effective amount " means an amount sufficient to prevent or treat a neuropsychiatric or inflammatory disease at a reasonable benefit / risk ratio applicable to medical treatment.
  • Effective dose levels may be varied by those skilled in the art depending on factors such as the formulation method, the condition and weight of the patient, the sex, age, disease severity, form of the drug, route and duration of administration, excretion rate, have. Effective amounts may vary depending on the route of treatment, the use of excipients, and the likelihood of use with other agents, as will be appreciated by those skilled in the art.
  • the composition of the present invention is generally administered to an adult at a dose of 0.0001 to 100 mg / kg per day, preferably 0.001 to 100 mg / kg per 1 kg of body weight per day .
  • the administration agent is administered as described above, Lactobacillus lutein NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention can be administered at 1 x 10 2 CFU / 60 kg to 1 x 10 11 CFU / 60 kg per day.
  • the administration may be carried out once a day or divided into several times.
  • the dose is not intended to limit the scope of the invention in any way.
  • the pharmaceutical composition for preventing or treating cranial nerve diseases of the present invention or the pharmaceutical composition for preventing or treating inflammatory diseases can be administered to mammals such as mice, livestock, and humans through various routes.
  • the pharmaceutical composition of the present invention may be administered orally or parenterally (for example, coated or intravenously, subcutaneously, intraperitoneally injected), but oral administration is preferred.
  • Solid formulations for oral administration may include powders, granules, tablets, capsules, soft capsules, pills, and the like.
  • liquid formulations for oral use include suspensions, solutions, emulsions, syrups and aerosols.
  • formulations may be formulated in the form of sterilized aqueous solutions, liquid preparations, non-aqueous solutions, suspensions, emulsions, eye drops, ointments, syrups, suppositories, And preferably pharmaceutical compositions of creams, gels, patches, sprays, ointments, alerts, lotions, liniments, ointments, eye drops, pastes or cataplasms can be prepared and used , But is not limited thereto.
  • the formulations for topical administration may be anhydrous or water-based, depending on the clinical formulation.
  • the suspending agent include propylene glycol, polyethylene glycol, vegetable oil such as olive oil, injectable ester such as ethyl oleate, and the like.
  • the suppository base include witepsol, macrogol, tween 61, cacao butter, laurin, glycerogelatin and the like.
  • the present invention provides a method for the treatment and / or prophylaxis of cancer, comprising administering to a subject a Lactobacillus reuteri NK33, a Bifidobacterium adolescentis NK98 or a mixture thereof
  • a method for preventing or treating cranial nerve diseases is provided.
  • the present invention provides a method for the treatment and / or prophylaxis of cancer, comprising administering to a subject a Lactobacillus reuteri NK33, a Bifidobacterium adolescentis NK98 or a mixture thereof A method for preventing or treating an inflammatory disease.
  • the individual refers to an animal and can typically be a mammal capable of exhibiting beneficial effects in the treatment of the novel lactic acid bacteria of the present invention.
  • Preferred examples of such an object may include primates, such as humans, rats, mice, monkeys, dogs, cats, cows, horses, pigs, sheep or chlorine.
  • Such individuals may also include all individuals suffering from, or at risk of having, symptoms of neuropsychiatric or inflammatory diseases.
  • the present invention provides a method for preventing or treating cranial mental disorders comprising Lactobacillus reuteri NK33, Bifidobacterium adolescentis NK98, or a mixture thereof, And provides a health functional food for improvement.
  • the present invention provides a method for preventing or ameliorating an inflammatory disease comprising Lactobacillus reuteri NK33, Bifidobacterium adolescentis NK98, or a mixture thereof, And a health functional food.
  • the health functional food is a food emphasizing the biological control function of food, and is added with added value so as to function and manifest to a specific purpose using physical, biochemical and biotechnological methods.
  • These health functional food ingredients are designed and manufactured so that the body control functions related to regulation of body defense and body rhythm, prevention and recovery of disease are sufficiently exhibited to the living body, and food additives, And may contain raw materials.
  • Lactobacillus luterian NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 of the present invention is used as a health functional food (or a health functional drink additive)
  • the lactic acid bacteria may be directly added or used together with other foods or food ingredients, And the like.
  • the amount of the lactic acid bacteria to be mixed may suitably be determined according to the purpose of use (prevention, health or improvement, therapeutic treatment).
  • the health functional food may contain flavors such as various nutrients, vitamins, minerals (electrolytes), synthetic flavors and natural flavors, colorants and enhancers (cheese, chocolate etc.), pectic acid and its salts, organic acids, A pH adjuster, a stabilizer, a preservative, a glycerin, an alcohol, a carbonating agent used in a carbonated drink, and the like.
  • the health functional food of the present invention may contain pulp for the production of fruit and vegetable drinks. These components may be used singly or in combination, and the proportion of such additives is generally selected in the range of 0.001 to 50 parts by weight based on the total weight of the composition.
  • the foodstuff to which the lactic acid bacteria can be added is selected from the group consisting of dairy products including sausages, meat, bread, chocolates, snacks, candies, confectionery, ramen, pizza and other noodles, gums, ice cream, various soups, drinks, tea, Beverages and vitamin complexes.
  • the liquid ingredient to be added in addition to the novel lactic acid bacteria may include various flavors or natural carbohydrates such as ordinary beverages as an additional ingredient.
  • natural carbohydrates may be used in combination with monosaccharides such as glucose and fructose, disaccharides such as maltose and sucrose and polysaccharides such as dextrins and cyclodextrins and xylitol and sorbitol , Erythritol, and the like.
  • monosaccharides such as glucose and fructose
  • disaccharides such as maltose and sucrose
  • polysaccharides such as dextrins and cyclodextrins and xylitol and sorbitol , Erythritol, and the like.
  • the present invention provides a composition for diagnosing a brain nerve disorder, which comprises an agent for measuring the level of intestinal microorganisms.
  • &quot cranial nerve disorder " and the like of the present invention are as described above.
  • " intestinal microorganism " in the present invention refers to a microorganism specifically present in intestines, specifically bacteroidetes, actinobacteria, firmicutes, bifidobacteria, Bifidobacteria, Lactobacilli,? -Proteobacteria,? -Proteobacteria,? -Proteobacteria,? -Proteobacteria and Enterobacteriaceae. And the like.
  • the diagnostic composition of the present invention can be used for the treatment and / or prophylaxis of intestinal microorganisms such as? -Proteobacteria,? -Proteobacteria,? -Proteobacteria,?
  • the present invention relates to a method for diagnosing a cranial nerve disease in an intestinal microorganism, comprising the steps of: (a) culturing the host microorganism in a culture medium containing a microorganism selected from the group consisting of bacteroidetes, actinobacteria, the present invention can be diagnosed as a brain nerve mental disorder when the level of any one selected from the group consisting of firmicutes, Bifidobacteria and Lactobacilli is decreased, and ⁇ -proteobacteria, ⁇ - proteobacteria,? -Proteobacteria,?
  • the intestinal bacteria in which the level is increased may be any one or more selected from the group consisting of Klebsiella oxytoca , Escherichia coli , and Morganella morganii .
  • the lactic acid bacteria for which the level is decreased may be any one or more selected from the group including Lactobacillus reuteri , Lactobacillus johnsonii , Lactobacillus rhamnosus , Bifidobacterium may be Bifidobacterium animalis .
  • the composition for diagnosing neuropsychiatric diseases includes an agent capable of measuring the level of intestinal microorganisms.
  • the composition contained in the composition can be used to detect By measuring the level of intestinal microorganisms in the brain.
  • the subject may be an animal and is preferably a mammal, such as a primate, such as a human, a rat, a mouse, a monkey, a dog, a cat, a cow, a horse, a pig, a sheep or a goat.
  • the agent capable of measuring the level of the intestinal microorganism is not particularly limited as long as it can be used for quantitatively analyzing intestinal microorganisms isolated from the feces of an individual, but specifically, the agent capable of measuring the level of a specific gene of the intestinal microorganism A primer or a probe, and may be an antibody or an aptamer capable of measuring the level of the protein expressed from the specific gene, and may be a primer or a probe for quantitatively analyzing the sequence of 16S rDNA of the intestinal microorganism And the like, and may be a preparation for pyrosequencing for quantitatively analyzing the genomic DNA sequence of intestinal microorganisms.
  • primers specific for the intestinal microorganism Firmicutes are primer pairs consisting of SEQ ID NO: 2 and SEQ ID NO: 3, and primers specific for Bacteroidetes are SEQ ID NO: And a primer pair consisting of the sequence number of SEQ ID NO: 5, a primer specific for? -Proteobacteria is a pair of primers consisting of SEQ ID NO: 6 and SEQ ID NO: 7, and? /?
  • a primer specific for a bacterium is a primer pair consisting of SEQ ID NOS: 8 and 9, and a primer specific for an epsilon-proteobacteria is a nucleotide sequence consisting of SEQ ID NO: 10 and SEQ ID NO: 11 Primer pair, and the primer specific to actinobacteria is a primer pair consisting of SEQ ID NO: 12 and SEQ ID NO: 13, Primers specific to the bacteria (Enterobacteriaceae) may ssangil primer consisting of a sequence of SEQ ID NO: 18 and SEQ ID NO: 19.
  • pyrosequencing was performed using a preparation for pyrosequencing comprising the barcoded primers of SEQ ID NOS: 2 to 19 in Table 1 to measure levels of intestinal microorganisms (Experimental Example 3).
  • composition of the present invention may further comprise an agent for measuring the amount of lipopolysaccharide (LPS).
  • LPS lipopolysaccharide
  • the agent for measuring the amount of the lipopolysaccharide may be the agent conventionally used for measuring the amount of lipopolysaccharide, more specifically, the agent contained in the Limulus amoebocyte lysate (LAL) assay kit But is not limited thereto.
  • fecal analysis of an animal model in which mental disorder was induced confirmed that the amount of lipopolysaccharide was increased (FIGS. 1, 2, 7, and 11).
  • kits for diagnosing cranial nervous disorders comprising the composition.
  • the kit of the present invention can be used as a collection container capable of collecting feces of an object to be examined for the onset of brain nerve mental disease using the composition, a buffer for extracting intestinal microorganisms in the feces, a measuring means used for measuring intestinal microorganisms, .
  • the present invention also provides a method for measuring the level of intestinal microorganisms from a feces isolated from a subject suspected of having a brain mental disorder, and comparing the level of the intestinal microorganism with an intestinal microbial level of the feces of the control,
  • the present invention provides a method for diagnosing a brain nerve mental disease including a nervous system.
  • the present invention also encompasses the steps of measuring the level of intestinal microorganisms from feces isolated from individuals suspected of having brain mental illness and comparing the level of intestinal microorganisms with intestinal microbial levels of the feces of the control,
  • the present invention provides a method for providing information for diagnosing a brain nerve mental disorder.
  • the feces is a sample for measuring the level of intestinal microorganisms, and means feces collected separately from an individual.
  • the intestinal microorganisms are selected from the group consisting of bacteroidetes, actinobacteria, firmicutes, Bifidobacteria, Lactobacilli,? -Proteobacteria,? May be any one selected from the group consisting of proteobacteria, gamma-proteobacteria, epsilon-proteobacteria and enterobacteriaceae.
  • the diagnostic or information providing method of the cranial nerve disease of the present invention can diagnose the onset or the risk of the cranial nerve mental disease by identifying the microorganisms whose levels increase in the intestinal microorganisms.
  • the diagnostic or information-providing method of the neuropsychiatric disorder is characterized in that the intestinal microbial level of the feces of the suspected mental disorder is higher than the intestinal microbial level of the feces of the control, A step of judging the individual as a brain nerve mental disorder may be additionally included.
  • Intestinal microorganisms in which the level is increasing include proteobacteria, delta-proteobacteria, gamma-proteobacteria, proteobacteria and Enterobacteriaceae. Or a combination thereof.
  • the intestinal bacteria are Klebsiella oxytoca , Escherichia coli , and Morganella morganii .
  • diagnosis or information providing method of the cranial nerve disease of the present invention can diagnose the onset or the risk of the cranial nerve disease by identifying the microorganisms whose levels are decreased in the intestinal microorganisms.
  • &quot cranial nerve disorder " and the like of the present invention are as described above.
  • the diagnostic or information-providing method of the neuropsychiatric disorder is a method in which the intestinal microbial level of the feces of suspected mental brain disease is lower than the intestinal microbial level of the feces of the control, not the mental neuropathy, A step of judging the individual as a brain nerve mental disorder may be additionally included.
  • Intestinal microorganisms in which the level is decreased may be any one or more selected from the group consisting of bacteroidetes, actinobacteria, firmicutes, Bifidobacteria and Lactobacilli. have.
  • the lactic acid bacteria may be any one or more selected from the group consisting of Lactobacillus reuteri , Lactobacillus johnsonii , and Lactobacillus rhamnosus
  • the bifidobacteria may be Bifidobacterium It may be Bifidobacterium animalis .
  • intestinal microbial community changes using feces isolated from an animal model that induced stress such as restraint stress or antibiotic stress were compared with those of unstressed animal models, proteobacteria, proteobacteria,? -proteobacteria,? -proteobacteria and Enterobacteriaceae, and bacteroidets, such as bacteroidetes, The levels of actinobacteria, firmicutes, Bifidobacteria and Lactobacilli decreased (FIGS. 2, 6, 8, 10 and 12).
  • specific intestinal bacteria with increased levels include Klebsiella oxytoca , Escherichia coli and Morganella morganii , and specific lactic acid bacteria with reduced levels of Lactobacillus reuteri ), Lactobacillus johnsonii , and Lactobacillus rhamnosus .
  • the specific bifidobacteria with reduced levels were found to have Bifidobacterium animalis .
  • Another aspect of the present invention provides the use of a novel lactic acid bacterium for the prevention or treatment of cranial nerve diseases.
  • the present invention provides the use of Lactobacillus reuteri NK33 for the prevention or treatment of cranial nerve diseases.
  • the present invention also provides the use of Bifidobacterium adolescentis NK98 for the prevention or treatment of neuropsychiatric disorders.
  • Another aspect of the present invention provides the use of novel lactic acid bacteria for the prevention or treatment of inflammatory diseases.
  • the present invention provides the use of Lactobacillus reuteri NK33 for the prevention or treatment of inflammatory diseases.
  • the present invention also provides the use of Bifidobacterium adolescentis NK98 for the prevention or treatment of inflammatory diseases.
  • the invention provides the use of a composition comprising a novel lactic acid bacterium in the manufacture of a medicament for the prevention or treatment of cranial nerve diseases.
  • the present invention provides the use of a composition comprising Lactobacillus reuteri NK33 in the manufacture of a medicament for the prevention or treatment of neuropsychiatric disorders.
  • the present invention also provides the use of a composition comprising Bifidobacterium adolescentis NK98 in the manufacture of a medicament for the prevention or treatment of neuropsychiatric disorders.
  • novel lactic acid bacterium Lactobacillus reuteri NK33 or Bifidobacterium adolescentis NK98 according to the present invention has an effect of inhibiting neurodegenerative disease-inducing factors and improving anxiety and depressive behavior . Accordingly, the novel lactic acid bacterium according to the present invention can be used as a composition for preventing or treating cranial nerve diseases, and is particularly effective for prevention and treatment of neurodegenerative diseases and psychiatric disorders.
  • novel lactic acid bacteria according to the present invention have an effect of inhibiting the inflammatory reaction and thus can be used in a composition for the prevention or treatment of inflammatory diseases, and are particularly effective for prevention and treatment of colitis.
  • composition for measuring the level of intestinal microorganisms according to the present invention is effective for diagnosing brain nerve mental diseases by measuring levels of intestinal microorganisms.
  • FIG. 1 shows the result of measurement of anxiety behavior and measurement of blood index for a mouse (IS) subjected to restraint stress;
  • (a) is a graph showing that the time (OT) and open passage entrance (OE) spent in the open passage decrease as a result of the high price plus labyrinth test;
  • (b) is a graph showing that the light transmission test result shows a decrease in the time spent in the bright place;
  • (c) is a graph showing an increase in bead burial behavior in the bead burial test;
  • (d) confirms that the increase of NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65) and expression of brain derived neurotrophic factor (BDNF) in the hippocampus is decreased;
  • (e) is a graph showing an increase in corticosterone in blood;
  • (f) is a graph showing that IL-6 in blood is increased;
  • (g) is a graph showing an increase in TNF-? in blood;
  • (h) is a graph showing that
  • FIG. 2 (a) shows changes in intestinal microbial community of feces of a mouse (IS) subjected to restraint stress
  • FIG. 2 (b) is a graph showing that the lipopolysaccharide increases in the feces of a mouse (IS) subjected to restraint stress.
  • FIG. 3 shows the results of measurement of colitis indicator for mouse (IS) subjected to restraint stress;
  • (a) is a graph showing that the length of the large intestine of a mouse (IS) subjected to restraint stress is decreased;
  • (b) is a graph showing an increase in myeloperoxidase in the large intestine;
  • (c) is a graph showing that TNF-a is increased in the large intestine;
  • (d) confirms an increase in NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65), expression of COX-2 and iNOS in the large intestine;
  • (e) is a figure confirming the reduction of occludin and claudin-1 in the large intestine.
  • FIG. 4 shows the result of confirming the state of an animal model (FIS) administered with feces in an animal model inducing restraint stress;
  • (a) is a graph showing that the time (OT) and open passage entrance (OE) spent in the open passage decrease as a result of the high price plus labyrinth test;
  • (b) is a graph showing that the light transmission test result shows a decrease in the time spent in the bright place;
  • (c) is a graph showing an increase in bead burial behavior in the bead burial test;
  • (d) confirms that the increase of NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65) and expression of brain derived neurotrophic factor (BDNF) in the hippocampus is decreased;
  • (e) is a graph showing that the length of the large intestine decreases;
  • (f) is a graph showing an increase in myeloperoxidase in the large intestine.
  • FIG. 5 shows the result of measuring the blood index of an animal model (FIS) administered with feces of an animal model inducing restraint stress;
  • FIS animal model
  • FIG. 5 shows the result of measuring the blood index of an animal model (FIS) administered with feces of an animal model inducing restraint stress;
  • (a) is a graph showing an increase in corticosterone in blood;
  • (b) is a graph showing that IL-6 in blood is increased;
  • (c) is a graph showing an increase in TNF-a in blood.
  • FIG. 6 shows colitis indicator and microbial community changes for an animal model (FIS) administered with feces of an animal model inducing restraint stress;
  • (a) is a graph showing that TNF-a is increased;
  • (b) is a graph showing that IL-6 is increased in the large intestine;
  • (c) is a graph showing that IL-10 is decreased in the large intestine;
  • (d) confirms an increase in NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65), expression of COX-2 and iNOS in the large intestine;
  • (e) shows that the intestinal microbial community of the feces is changed.
  • FIG. 7 shows the result of measurement of anxiety behavior and measurement of blood index for a mouse (AP) subjected to antibiotic stress;
  • (a) is a graph showing that the time (OT) and open passage entrance (OE) spent in the open passage decrease as a result of the high price plus labyrinth test;
  • (b) is a graph showing that the light transmission test result shows a decrease in the time spent in the bright place;
  • (c) is a graph showing an increase in bead burial behavior in the bead burial test;
  • (d) confirms that the increase of NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65) and expression of brain derived neurotrophic factor (BDNF) in the hippocampus is decreased;
  • (e) is a graph showing an increase in corticosterone in blood;
  • (f) is a graph showing that IL-6 in blood is increased;
  • (g) is a graph showing an increase in TNF-? in blood;
  • (h) is a graph showing that lipo
  • FIG. 8 (a) shows changes in intestinal microbial community of feces of antibiotic-stressed mouse (AP);
  • FIG. 8 (b) is a graph showing that the lipopolysaccharide in the feces of the mouse (AP) subjected to the antibiotic stress is increased.
  • FIG. 9 shows the results of measuring colitis indicator for mouse (AP) subjected to antibiotic stress;
  • (a) is a graph showing that the length of the large intestine decreases;
  • (b) is a graph showing an increase in myeloperoxidase in the large intestine;
  • (c) is a graph showing that TNF-a is increased in the large intestine;
  • (d) confirms an increase in NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65), expression of COX-2 and iNOS in the large intestine;
  • (e) is a figure confirming the reduction of occludin and claudin-1 in the large intestine.
  • FIG. 10 (A) is a graph showing an increase in the number of fungi in a mouse (IS) to which restraint stress is applied and a mouse (AP) to which antibiotic stress is applied in a selective medium
  • FIG. 10 (B) is a graph showing a decrease in the number of fungi of the mouse subjected to restraint stress (IS) and antibiotic stressed mouse (AP) in a selective medium.
  • FIG. 11 shows the result of measurement of anxiety behavior and blood indicators of mice administered with microorganisms increased in the feces of mice to which restraint stress and antibiotic stress were applied;
  • (a) is a high-level plus-maze test result of mice administered with Klebsiella ovidoxa (KO), Escherichia coli (EC), Aerococcus urinaeequi (AU) and Morganella morganii (MM) (OT) and open-path entry (OE) in the open passages of the group administered with celiac oxytocase were significantly decreased;
  • (b) is a graph showing a decrease in the time (OT) and open passage entrance (OE) in the open passages of the high-cost plus maze test of mice administered with Klebsiella oxytoca (KO);
  • (c) is a graph showing that the light transmission test results show that the time spent in a bright place is reduced;
  • (d) is a graph showing an increase in bead burial behavior in the bead burial test
  • FIG. 12 (a) shows changes in intestinal microbial community of the feces of mouse (KO) administered with Klebsiella oxytoca
  • Fig. FIG. 12 (b) is a graph showing that the amount of lipopolysaccharide in the feces of mouse (KO) treated with Klebsiella oxytocre was increased.
  • FIG. 13 shows the results of measurement of colitis indicator for mouse treated with Klebsiella oxytocin (KO);
  • (a) is a graph showing that the length of the large intestine decreases;
  • (b) is a graph showing an increase in myeloperoxidase in the large intestine;
  • (c) is a graph showing that TNF-a is increased in the large intestine;
  • (d) confirms an increase in NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65), expression of COX-2 and iNOS in the large intestine;
  • (e) is a figure confirming the reduction of occludin and claudin-1 in the large intestine.
  • FIG. 14 is a graph comparing the anxiety measurement and the blood index of the group administered with physiological saline (IS) and the group of the novel lactic acid bacterium Lactobacillus reuteri NK33 (IS + LR) administered to restraint stressed mice
  • IS physiological saline
  • OE open-path entry
  • BDNF brain-derived neurotrophic factor
  • FIG. 15 is a graph showing the results of measurement of colitis indicator for the group administered with physiological saline (IS) and the group administered with the novel lactic acid bacterium Lactobacillus reuteri NK33 (IR) to mice subjected to restraint stress;
  • (a) is a graph showing that the length of the large intestine is restored;
  • (b) is a graph showing reduction of myeloperoxidase in the large intestine;
  • (c) is a graph showing a decrease in TNF-a in the large intestine;
  • (d) shows a decrease in NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65) and a decrease in the expression of COX-2 and iNOS in the large intestine.
  • mice were immobilized on a 3x10 cm cylindrical restraint stress device.
  • the mouse fixed on the apparatus was repeatedly placed for 12 hours with the head up, and the restraint stress was repeated twice for one day each day. Lactobacillus was administered once daily for 5 days and behavioral tests were performed 1 hour after the last administration.
  • Ampicillin 100 mg / kg was administered to mice for 2 consecutive days to induce mental disorders such as anxiety, depression or stress. Anxiety behaviors were measured 10 days after administration.
  • Restraint stress was initiated on the mouse model inducing restraint stress, and lactic acid bacteria or physiological saline was administered to the experimental group for 3 days once a day from the 7th day.
  • Antibiotic stress was induced in the mouse model induced by antibiotic stress, and lactic acid bacteria or saline solution was administered to the experimental group for 3 days once a day from day 7.
  • Anxiety behaviors were measured 5 hours after the administration of lactic acid bacteria or physiological saline.
  • Blood indicators corticosterone, IL-6, TNF- ⁇ , etc. were measured after 1 hour after completion of the high price plus labyrinth test.
  • the high price plus maze is an experimental device for measuring the degree of mental disorders such as stress or anxiety.
  • the high-cost plus labyrinths used in this experiment consisted of two open channels (30 x 7 cm) and two closed channels (Enclosed arm (30 x 7 cm)) with a height of 20 cm 50 cm high, and a black plexiglass device extending 7 cm from the center platform.
  • This test recorded the movement of a mouse placed in a high-plus-maze in a room with a video camera installed at a brightness of 20 lux.
  • C57BL / 6 mice male, 19-22 g were placed in the middle of the high-valued plus maze, with the head facing the open passageway. The time and frequency of the open and closed passages were measured for 5 minutes. The arm entry allowed all four feet to enter.
  • the time spent in open arms was calculated as [time spent in open passageway / (time spent in open passageway + time spent in closed passageway) x 100 during the entire test time.
  • open arm entries were calculated as [open path entry / (open path entry + closed path entry)] x100. After each behavioral experiment, the remaining odor with 70% ethanol was removed.
  • the device used for the dark / light conversion test consisted of a bright portion (21x42x25 cm, 390 lux white diode) and a dark portion (21x42x25 cm, 2 lux) of the same size in the partition with the door (7.5x7.5 cm) have.
  • the time in bright area and the number of transitions to the bright part were measured while the mouse was placed on the bright part and observed for 5 minutes. After each behavioral experiment, the remaining odor with 70% ethanol was removed.
  • mice were placed in a transparent cage filled with sawdust 5 cm deep for 15 minutes. Then 25 beads (2 cm diameter transparent beads) were placed on the sawdust at 5 cm intervals. The mouse was placed in the center of one side and the number of beads buried for 30 minutes was measured.
  • Porsolt et al. Porsolt RD, Le Pichon, Jalfre M (1977) Depression: A new animal model sensitive to antidepressant treatments, Nature, Vol. 266; pp. 730-732)
  • Floating state refers to a state in which a person stands upright and does not move, with minimal movement to expose only the head to the water.
  • the tail suspension test A new method for screening antidepressants in mice, Psychopharmacology, Vol. And a fixture was attached to the tip of a tail of a mouse at a height of 50 cm, and then hanged at a distance of 50 cm from the ground. Immobilization time of the experimental animals was measured for a total of 6 minutes.
  • the fecal DNA from the animal model was isolated using a QIAamp DNA stool mini kit (Qiagen, Germany).
  • barcoded primers V1 to V3 portions of the bacterial 16S rDNA gene
  • qPCR was analyzed using the primers shown in Table 1 below.
  • the feces (20 mg) was suspended in 30 mL of PBS, sonicated for 1 hour to pulverize the microorganisms, and centrifuged at 500 rpm for 15 minutes. The supernatant was filtered through a 0.45 ⁇ m filter, followed by filtration through a 0.22 ⁇ m filter, followed by treatment at 70 ° C. for 10 minutes. The samples were assayed for lipopolysaccharide using the Limulus amoebocyte lysate (LAL) assay kit (Cape Cod Inc., East Falmouth, MA, U.S.A.).
  • LAL Limulus amoebocyte lysate
  • Western blotting was used to measure inflammatory response indicators such as p-p65, p65, iNOS, COX-2 and ⁇ -actin. Specifically, 50 ⁇ g of the supernatant obtained in the same manner as in the measurement of the activity of Myeloperoxidase (MPO) was subjected to immunoblotting. The expression level of cytokines was measured by ELISA kit and LPS by LAL assay kit.
  • Example 1 Determination of the state of an animal model inducing restraint stress
  • Experiments 2 to 5 were performed on a mouse (IS) subjected to a total of five times of restraint stress once every two days in the same manner as in Experimental Example 1- (1).
  • Example 2 Determination of the status of an animal model administered feces in an animal model inducing restraint stress
  • Example 3 Determination of the status of an animal model that induced antibiotic stress
  • mice (AP) mice to which antibiotic stress was applied by administering ampicillin (100 mg / kg) continuously for 2 days in the same manner as in Experimental Example 1- (2).
  • Example 4 Determination of the status of an animal model administered with a microorganism isolated from the feces of a stress-induced animal model
  • mice subjected to restraint stress and to the antibiotic stressed mice were cultured in a selective medium.
  • enterobacteriaceae growing in the DHL medium were increased, and in particular, Klebsiella oxytoca , Escherichia coli and Morganella morganii were increased 10 (A)).
  • Bifidobacteria and Lactobacilli that grew in the BL medium were decreased, especially Lactobacillus reuteri , Lactobacillus johnsonii , Lactobacillus rhamnosus and Bifidobacterium, It was confirmed that Bifidobacterium animalis decreased (FIG. 10 (B)).
  • mice (KO) treated with Klebsiella oxytoca were carried out on mice (KO) treated with Klebsiella oxytoca.
  • NF- ⁇ B activity (p-p65 / p65) increased and the expression level of brain-derived neurotrophic factor decreased (FIG. 11 (e)), indicating that corticosterone, IL-6, TNF- (Fig. 11 (f) to (i)).
  • the physiological characteristics and 16S rDNA sequence of strains isolated from feces of human or mouse were analyzed to identify strains, and strain names were assigned.
  • Table 2 shows the strain names of the lactic acid bacteria. Specifically, the lactic acid bacteria isolated from feces of human or mouse were 9 species of Lactobacillus genus and 22 species of Bifidobacterium genus.
  • Lactobacillus reuteri NK33 (Accession No. KCCM 12090P) was confirmed to be a gram-positive bacterium.
  • the 16S rDNA of Lactobacillus lutein NK33 was found to have the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 1.
  • the 16S rDNA sequence of Lactobacillus lutein NK33 was compared with a BLAST search. As a result, Lactobacillus luteri strains having the same 16S rDNA sequence were not found and 99% homology with the 16S rDNA sequence of the known Lactobacillus luteri strains Respectively.
  • the 16S rDNA of Bifidobacterium adolescentis NK98 (Accession No. KCCM12297P) among the strains described in Table 2 was found to have the nucleotide sequence of SEQ ID NO: 38.
  • a comparison of the 16S rDNA sequence of Bifidobacterium adolescentis NK98 with a BLAST search showed that the Bifidobacterium adolescentis strain having the same 16S rDNA base sequence was not detected and that the known Bifidobacterium And 98% homology with the 16S rDNA sequence of the Lei adolescentis strain.
  • Example 7 Comparison of activity of isolated lactic acid bacteria
  • DPPH 2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl
  • a suspension of lactic acid bacteria (1 ⁇ 10 8 CFU / ml) or a vitamin C solution (1 g / ml) was added to 0.1 ml of the DPPH solution and cultured at 37 ° C. for 20 minutes. The culture was centrifuged at 3000 rpm for 5 minutes to obtain a supernatant. Then, the antioxidant activity of the isolated lactic acid bacteria was calculated by measuring the absorbance of the supernatant at 517 nm.
  • the antioxidative activity of each lactic acid bacterium is the same as in Table 5 (Lactobacillus sp.) And Table 6 (Bifidobacterium sp.).
  • mice 2 ml of 4% thioglycolate sterilized in C57BL / 6 mice (male, 20-23 g at 6 weeks of age) was administered intraperitoneally. After 96 hours, the mice were anesthetized and 8 ml of RPMI 1640 medium was administered to the abdominal cavity of the mice. After 5 to 10 minutes, the RPMI medium (macrophage) in the abdominal cavity of the mouse was removed, centrifuged at 1000 g for 10 minutes, and then washed twice with RPMI 1640 medium. The macrophages were spread on a 24-well plate at a number of 0.5 ⁇ 10 6 per well, and the separated Lactobacillus sp.
  • Lactic acid bacteria and lipopolysaccharide, an inflammatory reaction inducer were treated for 2 hours or 24 hours, .
  • the obtained cells were homogenized in RIPA buffer (Gibco).
  • Expression of p65 (NF- ⁇ B), p-p65 (phosphor-NF- ⁇ B) and ⁇ -actin from cells obtained by treating the amount of cytokine expression such as TNF- ⁇ in the culture supernatant treated for 24 hours for 2 hours Were measured by an immunoblotting method.
  • the level of expression of the inflammatory index for each Lactobacillus sp. Lactic acid bacteria is shown in Table 5 below.
  • BV-2 macrophage cells were plated on a 24-well plate at a number of 0.5 x 10 6 per well, and the treated lipid polysaccharide, which is an inflammatory reaction inducer, was treated for 2 hours or 24 hours, And cells.
  • the obtained cells were homogenized in RIPA buffer (Gibco).
  • the expression levels of p65 (NF-kB), p-p65 (phosphor-NF-kB) and ⁇ -actin were measured by immunoblotting method from the cells obtained from the cells for 2 hours.
  • the level of expression of the inflammatory markers in each Bifidobacterium sp. Lactic acid bacteria is shown in Table 6 below.
  • SH-SY5Y cells which are neurons, were cultured in DMEM medium supplemented with 10% FBS and 1% antibiotic, and dispensed at a rate of 2 ⁇ 10 6 cells per well on a 12-well plate. Then, corticosterone was added to each well at a concentration of 300 mg / ml together with lactic acid bacteria (1 ⁇ 10 4 CFU / ml), and then NF- ⁇ B (p65, p-p65) The expression level of brain derived neurotrophic factor (BDNF) was measured by the immunoblotting method. BDNF expression level and NF- ⁇ B activation level for each lactic acid bacteria are the same as in Table 5 (Lactobacillus sp.) And Table 6 (Bifidobacterium sp.).
  • the activity of the isolated lactic acid bacteria was evaluated.
  • the antioxidative activity and the inflammatory response inhibitory effect of Lactobacillus lutein NK33 and Bifidobacterium adolescentis NK98 of the Lactobacillus sp. Or Bifidobacterium sp. Respectively.
  • it inhibits the activity of NF- ⁇ B, which is known to cause aging-related diseases such as Alzheimer's disease, suppresses the inflammatory reaction of microglial cells such as senescence and dementia, And increased the expression of the derived neurotrophic factor (Table 5 and Table 6).
  • mice 2 ml of 4% thioglycolate sterilized in the abdominal cavity of C57BL / 6 mice (male, 20-23 g at 6 weeks of age, Raun Bio Co., Ltd.) was administered. After 96 hours of administration, the mice were anesthetized and 8 ml of RPMI 1640 medium was administered to the abdominal cavity of the mice. After 5-10 minutes, the RPMI medium (including macrophages) in the abdominal cavity of the mouse was removed, centrifuged at 1000 rpm for 10 minutes, and then washed twice with RPMI 1640 medium. The macrophages were plated on a 24-well plate at a number of 0.5 ⁇ 10 6 per well, cultured for 24 hours, and then unattached cells were removed.
  • Bifidobacterium adolescentis NK98 and lipopolysaccharide, which is an inflammatory reaction inducer, were treated with the above macrophage culture solution for 2 hours or 24 hours, and supernatants and cells were obtained.
  • the lactic acid bacteria treatment concentration was 1 ⁇ 10 4 CFU / Ml.
  • the obtained cells were homogenized in RIPA buffer (Gibco).
  • the amount of expression of TNF-? From the obtained supernatant was measured by an ELISA kit and the expression amount of p65 (NF-kB), p-p65 (phosphor-NF-kB) and? -Actin was determined from the obtained cells by an immunoblotting method .
  • the nitrocellulose paper to which the sample was transferred was blocked with 5% skim milk for 30 minutes, washed with PBS-Tween three times for 5 minutes, and then washed with a primary antibody (Santa Cruz Biotechnology, USA) at a ratio of 1: 100 Lt; / RTI > Then, the cells were washed three times for 10 minutes each and reacted for 1 hour and 20 minutes at a ratio of 1: 1000 with a secondary antibody (Santa Cruz Biotechnology, USA). Thereafter, the resultant was washed three times for 15 minutes each time, developed after fluorescence color development, and the intensity of the color development band was measured. The results are shown in Table 7 below.
  • CD4 T cells were isolated using a CD4 T cell isolation kit (Miltenyi Biotec, Bergisch Gladbach, Germany) and the isolated CD4 T cells were divided into 5 ⁇ 10 5 cells per well in a 12-well plate.
  • CD3, anti-CD28, IL-2 and IL-12 to induce the differentiation of T cells into Th1 cells in order to induce the differentiation of T cells into Th1 cells.
  • CD3, anti-CD28, IL-6 and TGF-? To induce the differentiation of T cells into Th17 cells in order to induce the differentiation of T cells into T17 cells -CD3 and anti-CD28 were added, and the cells were cultured in an amount of 1 x 10 < 5 > CFU / ml per well and cultured for 4 days.
  • the ability of the T cells isolated from the spleen to differentiate into Th1 cells, Th2 cells, Th17 cells and Treg cells was measured. Specifically, cells of the culture medium were stained with anti-FoxP3 or anti-IL-17A antibody, and Th1 cells and Th2 cells were cultured using a fluorescence-activated cell sorting (C6 flow cytometer, San Jose, CA, USA) , Th17 cells and Treg cells were analyzed. The results are shown in Table 8 below.
  • Th1 cells, Th2 cells, Th17 cells and Treg cells differentiated from spleen T cells were measured.
  • T-bet, IFN- ⁇ and IL-12 were obtained from the Th1 cell differentiation inducing culture medium by using qRT-PCR, GATA3 and IL-5 from the Th2 cell differentiation inducing culture medium, ROR ⁇ and IL -17 were analyzed for the expression levels of Foxp3 and IL-10 from the culture medium for inducing differentiation of Treg cells. The results are shown in Table 9 below.
  • Bifidobacterium adolescentis NK98 has a high inhibitory rate of differentiation of T cells into Th1 cells, Th2 cells and Th17 cells, and particularly, the rate of differentiation of T cells into Treg cells It is possible to effectively suppress the inflammatory reaction and thus to effectively improve the inflammatory disease.
  • Example 9 Stress-improving effect of Lactobacillus lutein NK33
  • Lactobacillus lutein NK33 a novel lactic acid bacterium, was found to be excellent in improving mental disorders such as anxiety, depression and stress.
  • Example 10 Stress-improving effect of Bifidobacterium adolescentis NK98
  • the group (IS) administered with physiological saline to the restraint stress model had a significantly higher time (OT) in the open passageway and open passageway entry in the high cost plus labyrinth test than the control group without restraint stress OE) were all decreased.
  • the time and frequency in the open passages increased and the amount of the costiocosterone in the blood decreased remarkably. This effect was superior to that of Bifidobacterium adolescentis IM38 Respectively.
  • the saline-administered group showed a reduction in the time spent in the light compared to the control group without restraint stress, but the Biffy's Taxolium adolescentis NK98 In the group administered, the time spent in the light was increased, which was found to be higher than that of the group administered with Bifidobacterium adolescent IM38.
  • the group administered with physiological saline (IS) to the depressed mouse model showed an increase in immobility time as compared with the control group without restraint stress, but the administration of Bifidobacterium adolescentis NK98 Group showed a decrease in immobility time, which was lower than that of Bifidobacterium adolescent IM38.
  • the group administered with physiological saline (IS) to the depressed mouse model showed an increase in immobility time compared to the control group without restraint stress, but the administration of Bifidobacterium adolescentis NK98 Group showed a decrease in immobility time.
  • mice were anesthetized 2 hours after the last behavioral experiment of depressed mice.
  • the corticosterone of the blood was assayed by ELISA using brain-derived neurotrophic factor and NF-kB of the brain and NF-kB Were measured by immunoblotting, and the results are shown in Table 14 below.
  • the group administered with physiological saline (IS) showed an increase in NF-kB activity (p-p65 / p65) in the hippocampus, a decrease in the expression amount of neurotrophic factor derived from brain, And increased the amount of terrone.
  • the NF-kB activity was inhibited, the expression amount of brain-derived neurotrophic factor was increased, the amount of corticosterone in the blood was decreased, and this effect was superior to the IM38-treated group.
  • MPO, COX-2, TNF- ⁇ and NF-kB were measured in the same manner as in Experimental Example 5, except that the mice were anesthetized 2 hours after the final behavioral test of the anxious mice of Experimental Example 1 , And the results are shown in Table 15 below.
  • the resting stress model (IS) in the group administered with physiological saline showed a decrease in the elongation and an increase in the MPO and inflammation index compared to the control group without restraint stress, but the Bifidobacterium adal
  • the group receiving Resentis NK98 was found to have recovered long - lived, improved MPO inhibition and inflammatory indicators.
  • Experiments 2 and 5 were performed on mice that received antibiotic stress induced by administration of ampicillin (100 mg / kg) continuously for 2 days in the same manner as in Experimental Example 1- (2) 16 and 17, respectively.
  • Example 11 Improvement of cognitive function of Bifidobacterium adolescentis NK98
  • E. coli isolate LPS (0.5 mg / kg / day) for 5 days after administration to the abdominal cavity of mice for 5 days. Lactobacillus was administered from the next day, and the effect of improving the cognitive function of the lactic acid bacteria was examined. Blotting, and the results are shown in Table 18 below.
  • two objects (A, A ') having the same shape and size were fixed in a box (40 ⁇ 40 ⁇ 40 cm) made to be invisible from the inside to the outside, And recorded the number of times the mouse touched the two objects for 10 minutes. After 24 hours, one of the two objects was changed to a new object (A, B), and the number of times the original object and the new object were touched were recorded and quantified.
  • the experimental apparatus is composed of the same three arms (8 cm in width, 30 cm in height, and 14 cm in height) and arranged at a constant angle of 120 ° with respect to each other Respectively.
  • the spontaneous alteration (%) was assessed by placing the mouse at the end of one arm and then freely moving around the Y maze for 8 minutes and measuring the number and order of entry into each arm. Alteration is defined as the sequential entry of three cancers, ABC, BCA, CAB, and so on.
  • Example 12 Stress-improving effect by the combination of two kinds of lactic acid bacteria
  • Lactobacillus lutein NK33 which is a novel lactic acid bacterium, Bifidobacterium adolescentis IM38 (accession number: KCCM 11807P), which is a lactic acid bacterium disclosed in Korean Patent Laid-open No. 10-2017-0090359, or a mixture thereof, Were compared.
  • the inventors of the present invention deposited Lactobacillus reuteri NK33 on the KCCM 12090P with a patent deposited at the Korea Microorganism Conservation Center (address: 45 Yugimil Bldg., 2 Gagil in Haejeon, Seoul, Korea) .

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Abstract

본 발명은 신규한 유산균에 관한 것으로, 구체적으로 신규 유산균인 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P을 포함하는 뇌신경정신질환 또는 염증 질환의 예방 및 치료에 유용한 조성물에 관한 것이다. 또한, 본 발명은 장내 미생물의 수준을 측정하는 제제를 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 조성물, 이를 포함하는 키트 및 장내 미생물의 수준을 측정하는 단계를 포함하는 뇌신경정신질환의 진단 방법에 관한 것이다.

Description

신규 유산균 및 이의 용도
본 발명은 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리 및 비피도박테리움 아돌레센티스에 관한 것으로, 구체적으로 뇌신경정신질환 또는 염증질환의 예방 및 치료에 유용한 신규한 유산균을 포함하는 조성물에 관한 것이다.
또한, 본 발명은 장내 미생물 수준을 측정하는 제제를 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 조성물에 관한 것이다.
현대사회는 급증하는 스트레스 등으로 인해 불안, 우울, 정신분열 등을 포함하는 뇌신경정신질환이 증가하고 있다. 특히 개인주의가 팽배한 현 시대의 사회적, 구조적 원인 등의 다양한 원인으로 우울증 및 불안증 등의 정신 장애를 겪는 환자들이 증가하는 추세이다.
정신 장애를 겪는 환자들은 심할 경우 자살 사고로 이어질 수 있고, 특히 우울증 환자의 과반수 이상이 자살을 고려하는 것으로 보고된 바 있으며, 실제로 10 내지 15%의 환자들이 자살을 시행하는 것으로 알려져 있다.
정신 장애는 명확하고 객관적인 판단기준이 없어 각각의 환자마다 증상이 달리 나타날 수 있고, 정신 장애가 의심될 경우 정확한 진단 및 검사에 따른 치료가 요구되나, 정신 장애로 인한 병원치료에 대한 부정적인 사회 인식으로 제대로 된 치료가 이루어지지 않는 실정이다. 또한, 정신 장애를 치료하기 위해 사용되는 항우울제 등의 약물들은 치료 효과가 크지 않고, 심혈관계 질환 및 자살 등의 심각한 부작용이 나타날 수 있어 사용이 제한적이다.
한편, 천연물을 이용한 연구의 결과로서, 국내공개특허 제10-2017-0061457호에서는 말굽버섯 추출물 및 자초 추출물을 이용한 정신 장애 치료용 조성물이 개시되어 있으나, 아직까지 정신 장애를 치료할 수 있는 효과적인 유산균에 대해서는 지속적인 연구가 필요한 실정이다.
이러한 배경 하에, 본 발명자들은 정신 장애의 예방 및 치료제를 연구하던 중, 장내 미생물 군집의 변화로부터 정신 장애를 진단할 수 있음을 확인하고, 나아가 인간 및 마우스의 분변에서 분리된 신규한 유산균이 신경 퇴행성 질환 유발 인자를 억제하고 불안 및 우울 행동을 개선하는 효과 등을 나타내어 뇌신경정신질환, 구체적으로 신경 퇴행성 질환 및 정신 장애의 예방 또는 치료에 유용하게 사용할 수 있음을 확인하고 본 발명을 완성하였다.
[선행기술문헌]
[특허문헌]
(특허문헌 1) 국내공개특허 제10-2017-0061457호
본 발명의 목적은 신규한 유산균을 제공하는 것이다.
본 발명의 다른 목적은 신규한 유산균을 포함하는 뇌신경정신 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 신규한 유산균을 포함하는 염증 질환의 예방 또는 치료용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 장내 미생물의 수준을 측정하는 제제를 포함하는 뇌신경정신 질환 진단용 조성물을 제공하는 것이다.
본 발명의 또 다른 목적은 뇌신경정신 질환이 의심되는 개체에서 분리된 분변으로부터 장내 미생물의 수준을 측정하는 단계; 및 상기 장내 미생물의 수준을 뇌신경정신 질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하는 단계를 포함하는 뇌신경정신 질환의 진단 방법을 제공하는 것이다.
상기 목적을 수행하기 위한 하나의 양태로서, 본 발명은 신규한 유산균을 제공한다.
구체적으로 본 발명에 있어, 상기 신규한 유산균은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) (기탁기관: 한국미생물보존센터, 기탁일: 2017.08.04, 수탁번호: KCCM12090P) 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) (기탁기관: 한국미생물보존센터, 기탁일: 2018.08.03, 수탁번호: KCCM12297P)일 수 있다.
본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98은 인간 또는 마우스의 분변으로부터 분리 및 동정된 신규한 유산균임을 특징으로 한다.
본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33의 동정 및 분류를 위한 16S rDNA 염기서열은 본 명세서에 첨부된 서열번호 1과 같다. 따라서, 본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33( Lactobacillus reuteri NK33)은 서열번호 1의 16S rDNA를 포함할 수 있다. 상기 서열번호 1의 16S rDNA 염기서열의 분석 결과, 공지된 락토바실러스 루테리 균주들과 99%의 상동성을 나타내어 락토바실러스 루테리와 가장 높은 분자계통학적 유연관계를 보였다. 따라서, 상기 유산균을 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri)로 동정하고, 락토바실러스 루테리 NK33으로 명명하였으며, 한국미생물보존센터에 2017년 8월 4일자로 기탁하였다(수탁번호 KCCM12090P).
본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33은 그람양성균이고, 세포의 형태는 간균이다. 보다 구체적인 락토바실러스 루테리 NK33의 생리학적 특성은 당해 기술분야의 통상의 방법에 따라 분석할 수 있고, 그 결과는 하기 표 3과 같은 것으로 나타났다. 구체적으로, 락토바실러스 루테리 NK33은 탄소원으로 L-아라비노오스, D-리보오스, D-자일로오스, D-갈락토오스, D-글루코오스, D-프럭토오스, D-만노오스, 만니톨, 솔비톨, N-아세틸-글루코사민, 아미그달린, 알부틴, 에스큘린, 살리신, 셀로비오스, 말토오스, 락토오스, 멜리비오스, 수크로오스, 트레할로오스, 멜리지토오스, 라피노오스, 겐티오비오스, D-투라노오스 및 글루코네이트를 이용할 수 있다.
본 발명의 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 동정 및 분류를 위한 16S rDNA 염기서열은 본 명세서에 첨부된 서열번호 38과 같다. 따라서, 본 발명의 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98)은 서열번호 38의 16S rDNA를 포함할 수 있다. 상기 서열번호 38의 16S rDNA 염기서열의 분석 결과, 공지된 비피도박테리움 아돌레센티스 균주와 98%의 상동성을 나타내어 비피도박테리움 아돌레센티스와 가장 높은 분자계통학적 유연관계를 보였다. 따라서, 상기 유산균을 비피도박테리움 아돌레센티스 ( Bifidobacterium adolescentis)로 동정하고, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98으로 명명하였으며, 한국미생물보존센터에 2018년 8월 3일자로 기탁하였다 (수탁번호 KCCM 12297P).
본 발명의 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 생리학적 특성은 당해 기술분야의 통상의 방법에 따라 분석할 수 있고, 그 결과는 하기 표 4와 같다. 구체적으로, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98은 탄소원으로 D-글루코오스, D-만니톨, D-락토오스, D-사카로즈, D-말토오스, 살리신, D-자일로스, L-아라비노스, 젤라틴, 에스쿨린 구연산철, D-셀로비오스, D-라피노오스 및 D- 트레할로스를 이용할 수 있다.
상기 목적을 수행하기 위한 다른 하나의 양태로서, 본 발명은 신규한 유산균을 포함하는 포함하는 뇌신경정신 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명에 있어, 상기 신규한 유산균은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물일 수 있다.
본 발명의 “락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)” 및 “비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)”은 상기에서 설명한 바와 같다.
구체적으로, 본 발명의 약학 조성물에 포함되는 유산균은 이의 생균체, 이의 사균체, 이의 배양물, 이의 파쇄물 또는 이의 추출물일 수 있으나, 뇌신경정신 질환의 예방 또는 치료 효과를 달성할 수 있는 유산균의 형태라면 제한없이 사용될 수 있다.
본 발명에서 용어, “배양물”은 유산균을 공지의 액체 배지 또는 고체 배지에서 배양시켜 수득한 사물을 의미하며, 본 발명에서는 신규한 유산균을 포함하는 개념이다.
본 발명의 뇌신경정신질환은 신경 퇴행성 질환 또는 정신 장애일 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 뇌신경정신질환은 정신 장애일 수 있고, 상기 정신 장애는 불안, 우울증, 기분 장애, 불면증, 망상 장애, 강박 장애, 편두통, 스트레스, 기억 장애, 인지 장애 및 주의력 장애를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 스트레스가 유도된 동물모델에 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 투여시, 스트레스에 의한 불안 및 우울 행동이 현저히 개선되고, 스트레스가 유도된 동물모델의 해마에서 NF-κB의 활성이 억제되고, 뇌유래신경영양인자의 발현이 증가하며, 혈중 스트레스 지표 인자인 코르티코스테론, IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드(lipopolysaccharide, LPS)의 양이 감소함을 확인하였다. 이를 통해, 상기 유산균들을 포함하는 약학 조성물이 뇌신경정신질환, 구체적으로 정신 장애의 예방 또는 치료에 유용하게 사용될 수 있음을 확인하였다.
구체적으로, 본 발명의 뇌신경정신질환은 신경 퇴행성 질환일 수 있고, 상기 신경 퇴행성 질환은 파킨슨 병, 헌팅턴 병, 알츠하이머 병, 근위축성 측삭경화증(amyotrophic lateral sclerosis), 척수소뇌성 운동실조증(Spinocerebellar Atrophy), 뚜렛 증후군(Tourette`s Syndrome), 프리드리히 보행실조(Friedrich`s Ataxia), 마차도-조셉 병(Machado-Joseph`s disease), 치매, 근육긴장이상(Dystonia), 진행성 핵상 마비(Progressive Supranuclear Palsy) 및 전두측두엽 치매(Frontotemporal Dementia)로 구성된 군으로부터 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 신경 세포에 스트레스 호르몬인 코르티코스테론과 함께 상기 유산균들의 처리시 알츠하이머와 같은 신경 퇴행성 질환을 유발하는 물질로 알려진 NF-κB의 활성이 억제됨과 동시에 노화 및 치매 등에서 발현이 감소하는 것으로 알려진 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현이 증가함을 확인하였다(표 5 및 6). 이를 통해, 상기 유산균들을 포함하는 약학 조성물이 뇌신경정신질환, 구체적으로 신경 퇴행성 질환의 예방 및 치료에 유용하게 사용될 수 있음을 확인하였다.
또한, 본 발명의 일 실시예에서는 락토바실러스 루테리 NK33 및 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 병용 투여하는 경우, 상기 유산균들의 단독 투여군과 비교하여 뇌신경정신질환, 구체적으로 스트레스 개선 효과가 현저히 상승함을 확인하였다(표 20).
본 발명에 있어서, 상기 약학 조성물은 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38 ( Bifidobacterium adolescentis IM38) KCCM 11807P를 추가적으로 포함할 수 있다.
상기 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38 ( Bifidobacterium adolescentis IM38) KCCM 11807P은 국내공개특허 제10-2017-0090359호에 개시된 공지의 유산균으로서, 국내공개특허 제10-2017-0090359호를 근거로 용이하게 입수가 가능하다.
본 발명의 일 실시예에서는 스트레스가 유도된 동물모델에 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98와 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38의 병용 투여시 스트레스에 의한 불안 및 우울 행동이 현저히 개선되고, 혈중 스트레스 지표 인자인 코르티코스테론의 양이 감소함을 확인하였다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물을 포함하는 염증 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물을 제공한다.
본 발명의 “락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)” 및 “비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)”은 상기에서 설명한 바와 같다.
구체적으로, 본 발명의 약학 조성물에 포함되는 유산균은 이의 생균체, 이의 사균체, 이의 배양물, 이의 파쇄물 또는 이의 추출물일 수 있으나, 염증 질환의 예방 또는 치료 효과를 달성할 수 있는 유산균의 형태라면 제한없이 사용될 수 있다.
본 발명에서 용어, “배양물”은 유산균을 공지의 액체 배지 또는 고체 배지에서 배양시켜 수득한 사물을 의미하며, 본 발명에서는 신규한 유산균을 포함하는 개념이다.
본 발명의 염증 질환은 관절염, 통풍, 간염, 천식, 비만, 각막염, 위염, 장염, 신장염, 대장염, 당뇨, 결핵, 기관지염, 흉막염, 복막염, 척추염, 췌장염, 염증 통증, 요도염, 방광염, 질염, 동맥경화증, 패혈증, 화상, 피부염, 치주염 및 치은염을 포함하는 군에서 선택되는 어느 하나 이상일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 마우스로부터 분리된 대식세포에 염증 반응 유도물질인 리포폴리사카라이드와 함께 상기 유산균들의 처리시 염증반응이 현저히 억제됨을 확인하였다(표 5 및 표 6). 이를 통해, 본 발명의 상기 유산균을 포함하는 약학 조성물이 염증 질환의 예방 및 치료에 유용하게 사용될 수 있음을 확인하였다.
구체적으로, 상기 염증 질환은 대장염일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 스트레스로 인해 대장염이 유도된 동물모델에 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 투여시 대장염의 지표인 대장의 길이가 정상 수준으로 회복되고, 대장염의 지표인자인 미엘로퍼옥시다아제, COX-2 및 iNOS의 양이 감소하며 TNF-α의 활성이 감소함을 확인하였다(도 15 및 표 15). 이를 통해, 상기 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 포함하는 약학 조성물이 염증 질환, 구체적으로 대장염의 예방 및 치료에 유용하게 사용될 수 있음을 확인하였다.
본 발명에 따른 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물 또는 염증 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물은 포유동물에 투여된 후 활성 성분의 신속, 지속 또는 지연된 방출을 제공할 수 있도록 당업계에 잘 알려진 방법을 사용하여 약학적 제형으로 제조될 수 있다. 제형의 제조에 있어서, 본 발명에 따른 약학 조성물은 신규한 유산균의 활성을 저해하지 않는 범위 내에서 추가적으로 약제학적으로 허용가능한 담체를 포함할 수 있다.
상기 약제학적으로 허용가능한 담체는 통상적으로 사용되는 것들, 예컨대 락토즈, 덱스트로즈, 수크로스, 솔비톨, 만니톨, 자일리톨, 에리스리톨, 말티톨, 전분, 아카시아 고무, 알지네이트, 젤라틴, 칼슘 포스페이트, 칼슘 실리케이트, 셀룰로즈, 메틸 셀룰로즈, 미정질 셀룰로스, 폴리비닐 피롤리돈, 물, 메틸히드록시벤조에이트, 프로필히드록시벤조에이트, 탈크, 마그네슘 스테아레이트 및 광물유 등을 포함하나 이에 제한되지 않는다. 또한, 본 발명의 약학적 조성물은 충진제, 증량제, 결합제, 습윤제, 붕해제, 계면활성제 등의 희석제 또는 부형제, 기타 약제학적으로 허용 가능한 첨가제를 포함할 수 있다.
본 발명에 따른 약학 조성물의 투여량은 약제학적으로 유효한 양이어야 한다. “약학적으로 유효한 양”은 의학적 치료에 적용 가능한 합리적인 수혜/위험 비율로 뇌신경정신 질환 또는 염증 질환을 예방 또는 치료하기에 충분한 양을 의미한다. 유효 용량 수준은 제제화 방법, 환자의 상태 및 체중, 환자의 성별, 연령, 질환의 정도, 약물형태, 투여경로 및 기간, 배설 속도, 반응 감응성 등과 같은 요인들에 따라 당업자에 의해 다양하게 선택될 수 있다. 유효량은 당업자에게 인식되어 있듯이 처리의 경로, 부형제의 사용 및 다른 약제와 함께 사용할 수 있는 가능성에 따라 변할 수 있다. 그러나, 바람직한 효과를 위해서, 경구 투여제의 경우 일반적으로 성인에게 1일에 체중 1 ㎏당 본 발명의 조성물을 1일 0.0001 내지 100 ㎎/㎏으로, 바람직하게는 0.001 내지 100 ㎎/㎏으로 투여할 수 있다. 상기와 같이 투여제를 투여할 경우, 본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 1일 1x10 2 CFU/60kg 내지 1x10 11 CFU/60kg으로 투여할 수 있다. 투여는 하루에 한번 투여할 수도 있고, 수회 나누어 투여할 수도 있다. 상기 투여량은 어떠한 면으로든 본 발명의 범위를 한정하는 것은 아니다.
본 발명의 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물, 또는 염증 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물은 마우스, 가축, 인간 등의 포유동물에 다양한 경로를 통해 투여될 수 있다. 구체적으로, 본 발명의 약학 조성물은 경구 또는 비경구 투여(예를 들어, 도포 또는 정맥 내, 피하, 복강 내 주사)할 수 있으나 경구 투여가 바람직하다. 경구 투여를 위한 고형제제에는 산제, 과립제, 정제, 캡슐제, 연질캡슐제, 환제 등이 포함될 수 있다. 경구를 위한 액상 제제로는 현탁제, 내용액제, 유제, 시럽제, 에어로졸 등이 해당되는데 흔히 사용되는 단순희석제인 물, 리퀴드 파라핀 이외에 여러 가지 부형제, 예를 들면 습윤제, 감미제, 방향제, 보존제 등이 포함될 수 있다. 비경구 투여를 위한 제제로는 각각 통상의 방법에 따라 멸균된 수용액, 액제, 비수성용제, 현탁제, 에멀젼, 점안제, 안연고제, 시럽, 좌제, 에어로졸 등의 외용제 및 멸균 주사제제의 형태로 제형화하여 사용될 수 있으며, 바람직하게는 크림, 젤, 패취, 분무제, 연고제, 경고제, 로션제, 리니멘트제, 안연고제, 점안제, 파스타제 또는 카타플 라스마제의 약제학적 조성물을 제조하여 사용할 수 있으나, 이에 한정되는 것은 아니다. 국소 투여를 위한 제제는 임상적 처방에 따라 무수형 또는 수성형일 수 있다. 비수성용제, 현탁제로는 프로필렌글리콜(propylene glycol), 폴리에틸렌 글리콜, 올리브 오일과 같은 식물성 기름, 에틸올레이트와 같은 주사 가능한 에스테르 등이 사용될 수 있다. 좌제의 기제로는 위텝솔(witepsol), 마크로골, 트윈(tween) 61, 카카오지, 라우린지, 글리세로제라틴 등이 사용될 수 있다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료방법을 제공한다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물을 개체에 투여하는 단계를 포함하는 염증 질환의 예방 또는 치료방법을 제공한다.
본 발명의 “락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)” “비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)” “투여”, “뇌신경정신질환” 및 “염증 질환” 등의 용어는 상기에서 설명한 바와 같다.
상기 개체는 동물을 말하며, 전형적으로 본 발명의 신규한 유산균을 이용한 치료로 유익한 효과를 나타낼 수 있는 포유동물일 수 있다. 이러한 개체의 바람직한 예로 인간과 같은 영장류, 랫트, 마우스, 원숭이, 개, 고양이, 소, 말, 돼지, 양 또는 염소가 포함될 수 있다. 또한 이와 같은 개체들에는 뇌신경정신 질환 또는 염증 질환의 증상을 갖거나 이와 같은 증상을 가질 위험이 있는 개체들이 모두 포함될 수 있다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물을 포함하는 뇌신경정신질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품을 제공한다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33), 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98) 또는 이들의 혼합물을 포함하는 염증 질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품을 제공한다.
본 발명의 “락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)” “비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)” “투여” “뇌신경정신 질환” 및 “염증 질환” 등의 용어는 상기에서 설명한 바와 같다.
상기 건강기능 식품은 식품의 생체 조절 기능을 강조한 식품으로 물리적, 생화학적, 생물공학적인 방법을 이용하여 특정 목적에 작용 및 발현하도록 부가가치를 부여한 식품이다. 이러한 건강기능 식품의 성분은 생체 방어와 신체 리듬의 조절, 질환의 방지 및 회복에 관계하는 신체 조절 기능을 생체에 대하여 충분히 발휘하도록 설계하여 가공하게 되며, 식품으로 허용 가능한 식품 보조 첨가제, 감미료 또는 기능성 원료를 함유할 수 있다.
본 발명의 락토바실러스 루테리 NK33 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 건강기능 식품(또는 건강기능 음료 첨가물)으로 사용할 경우, 상기 유산균들을 그대로 첨가하거나 다른 식품 또는 식품 성분과 함께 사용하고, 통상적인 방법에 따라 적절하게 사용할 수 있다. 상기 유산균들의 혼합량은 그의 사용 목적(예방, 건강 또는 개선, 치료적 처치)에 따라 적합하게 결정될 수 있다.
상기 건강기능 식품은 여러 가지 영양제, 비타민, 광물(전해질), 합성 풍미제 및 천연 풍미제 등의 풍미제, 착색제 및 증진제(치즈, 초콜릿 등), 펙트산 및 그의 염, 유기산, 보호성 콜로이드 점증제, pH 조절제, 안정화제, 보존제, 글리세린, 알코올, 탄산음료에 사용되는 탄산화제 등을 함유할 수 있다. 또한, 본 발명의 건강기능 식품은 과일 및 야채 음료의 제조를 위한 과육을 함유할 수 있다. 이러한 성분은 단독으로 또는 조합으로 사용될 수 있으며, 이러한 첨가제의 비율은 조성물 전체 중량당 0.001 내지 50 중량부의 범위에서 선택되는 것이 일반적이다.
상기 건강기능 식품의 종류에는 특별한 제한은 없다. 상기 유산균을 첨가할 수 있는 식품은 소세지, 육류, 빵, 초콜릿류, 스넥류, 캔디류, 과자류, 라면, 피자, 기타 면류, 껌류, 아이스크림류를 포함한 낙농제품, 각종 스프, 음료수, 차, 드링크제, 알코올 음료 및 비타민 복합제 등이 있다. 음료수로 제형화할 경우에 신규한 유산균 이외에 첨가되는 액체 성분으로는 이에 한정되지는 않으나, 통상의 음료와 같이 여러 가지 향미제 또는 천연 탄수화물 등을 추가 성분으로서 함유할 수 있다. 상술한 천연 탄수화물은 모노사카라이드(예, 포도당, 과당 등), 디사카라이드(예, 말토오스, 수크로오스 등) 및 폴리사카라이드(예, 덱스트린, 시클로덱스트린 등과 같은 통상적인 당), 및 자일리톨, 소르비톨, 에리스리톨 등의 당 알코올일 수 있다.
상기 목적을 수행하기 위한 또 다른 양태로서, 본 발명은 장내 미생물의 수준을 측정하는 제제를 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 조성물을 제공한다.
본 발명의 “뇌신경정신질환” 등의 용어는 상기에서 설명한 바와 같다.
본 발명에서 용어, “장내 미생물”은 소화관, 구체적으로 장내에 특이적으로 존재하는 미생물로서, 구체적으로 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria), 젖산균(Lactobacilli), β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
구체적으로, 본 발명의 진단용 조성물은 상기 장내 미생물 중 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상의 수준이 증가하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단할 수 있고, 상기 장내 미생물 중 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나의 수준이 감소하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단할 수 있으며, 상기 장내 미생물 중 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상의 수준이 증가하고, 장내 미생물 중 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나의 수준이 감소하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단할 수 있다.
구체적으로, 상기 수준이 증가하는 장내세균은 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
또한, 상기 수준이 감소하는 젖산균은 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri), 락토바실러스 존소니( Lactobacillus johnsonii), 락토바실러스 람노서스( Lactobacillus rhamnosus)를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있고, 상기 수준이 감소하는 비피더스균은 비피도박테리움 애니말리스( Bifidobacterium animalis)일 수 있다.
본 발명에서 제공하는 뇌신경정신질환 진단용 조성물은 장내 미생물의 수준을 측정할 수 있는 제제를 포함하는데, 상기 조성물에 포함된 제제를 사용하여 뇌신경정신질환의 발병여부를 확인하고자 하는 개체로부터 분리된 분변으로부터의 장내 미생물의 수준을 측정함으로써 개체의 뇌신경정신질환의 발병 여부를 확인할 수 있다. 상기 개체는 동물일 수 있으며, 바람직하게 포유류이며, 예를 들어 인간과 같은 영장류, 랫트, 마우스, 원숭이, 개, 고양이, 소, 말, 돼지, 양 또는 염소이다.
개체의 분변으로부터 분리된 장내 미생물의 수준을 측정함으로써, 상기 개체에 뇌신경정신질환이 발병되었는지의 여부를 확인하는데 사용될 수 있다.
상기 장내 미생물의 수준을 측정할 수 있는 제제는 개체의 분변으로부터 분리된 장내 미생물을 정량적으로 분석하는데 사용될 수 있는 한 특별히 이에 제한되지 않으나, 구체적으로 장내 미생물의 특이적인 유전자의 수준을 측정할 수 있는 프라이머 또는 프로브 등이 될 수 있고, 상기 특이적인 유전자로부터 발현되는 단백질의 수준을 측정할 수 있는 항체 또는 앱타머 등이 될 수 있고, 장내 미생물의 16S rDNA의 서열을 정량적으로 분석하기 위한 프라이머 또는 프로브 등이 될 수 있으며, 장내 미생물의 게놈 DNA 서열을 정량적으로 분석하기 위한 파이로시퀀싱용 제제 등이 될 수 있다.
구체적으로, 상기 장내 미생물인 피르미쿠테스(Firmicutes)에 특이적인 프라이머는 서열번호 2 및 서열번호 3의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이고, 박테로이데테스(Bacteroidetes)에 특이적인 프라이머는 서열번호 4 및 서열번호 5의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이고, β-프로테오박테리아(proteobacteria)에 특이적인 프라이머는 서열번호 6 및 서열번호 7의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이고, δ/γ-프로테오박테리아(proteobacteria)에 특이적인 프라이머는 서열번호 8 및 9의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이고, ε-프로테오박테리아(proteobacteria)에 특이적인 프라이머는 서열번호 10 및 서열번호 11의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이고, 방선균류(actinobacteria)에 특이적인 프라이머는 서열번호 12 및 서열번호 13의 서열번호로 구성되는 프라이머쌍이며, 장내세균(Enterobacteriaceae)에 특이적인 프라이머는 서열번호 18 및 서열번호 19의 서열로 구성되는 프라이머쌍일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 표 1의 서열번호 2 내지 19의 barcoded 프라이머를 포함하는 파이로시퀀싱용 제제를 사용하여 파이로시퀀싱을 수행하여 장내 미생물의 수준을 측정하였다(실험예 3).
본 발명의 조성물은 리포폴리사카라이드(lipopolysacharide, LPS)의 양을 측정하는 제제를 추가적으로 포함할 수 있다. 구체적으로 상기 리포폴리사카라이드의 양을 측정하는 제제는 리포폴리사카라이드의 양을 측정하는데 통상적으로 사용되는 제제일 수 있고, 보다 구체적으로 Limulus amoebocyte lysate (LAL) assay kit에 포함되는 제제일 수 있으나 이에 제한되는 것은 아니다.
본 발명의 일 실시예에서는 정신 장애가 유도된 동물모델의 분변을 분석한 결과, 리포폴리사카라이드의 양이 증가하였음을 확인하였다(도 1, 2, 7 및 11).
본 발명은 또 다른 양태로서 상기 조성물을 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 키트를 제공한다.
본 발명의 키트는 상기 조성물을 이용하여 뇌신경정신질환 발병 여부의 확인 대상 개체의 분변을 수집할 수 있는 수집용기, 분변 내 장내 미생물을 추출하기 위한 완충액, 장내 미생물을 측정하는데 사용되는 측정수단 등을 포함할 수 있다.
본 발명은 또 다른 양태로서 뇌신경정신질환이 의심되는 개체에서 분리된 분변으로부터 장내 미생물의 수준을 측정하는 단계 및 상기 장내 미생물의 수준을 뇌신경정신질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하는 단계를 포함하는 뇌신경정신질환의 진단 방법을 제공한다.
또한, 본 발명은 뇌신경정신질환이 의심되는 개체에서 분리된 분변으로부터 장내 미생물의 수준을 측정하는 단계 및 상기 장내 미생물의 수준을 뇌신경정신질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하는 단계를 포함하는 뇌신경정신질환의 진단을 위한 정보제공 방법을 제공한다.
상기 분변은 장내 미생물의 수준을 측정하기 위한 시료로서, 개체로부터 분리되어 수집된 분변을 의미한다.
구체적으로, 상기 장내 미생물은 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria), 젖산균(Lactobacilli), β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
본 발명의 뇌신경정신질환의 진단 또는 정보제공 방법은 상기 장내 미생물 중에서 수준이 증가하는 미생물을 확인하여 뇌신경정신질환의 발병 또는 위험성 여부를 진단할 수 있다.
구체적으로, 상기 뇌신경정신질환의 진단 또는 정보제공 방법은 뇌신경정신질환이 의심되는 개체의 분변의 장내 미생물 수준이 뇌신경정신질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하여 장내 미생물의 수준이 증가하는 개체에 대해 뇌신경정신질환으로 판단하는 단계를 추가적으로 포함할 수 있다.
상기 수준이 증가하는 장내 미생물은 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
특히, 상기 장내세균은 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
또한, 본 발명의 뇌신경정신질환의 진단 또는 정보제공 방법은 상기 장내 미생물 중에서 수준이 감소하는 미생물을 확인하여 뇌신경정신질환의 발병 또는 위험성 여부를 진단할 수 있다.
본 발명의 “뇌신경정신질환” 등의 용어는 상기에서 설명한 바와 같다.
구체적으로, 상기 뇌신경정신질환의 진단 또는 정보제공 방법은 뇌신경정신질환이 의심되는 개체의 분변의 장내 미생물 수준이 뇌신경정신질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하여 장내 미생물의 수준이 감소하는 개체에 대해 뇌신경정신질환으로 판단하는 단계를 추가적으로 포함할 수 있다.
상기 수준이 감소하는 장내 미생물은 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있다.
특히, 상기 젖산균은 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri), 락토바실러스 존소니( Lactobacillus johnsonii), 락토바실러스 람노서스( Lactobacillus rhamnosus)를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상일 수 있고, 상기 비피더스균은 비피도박테리움 애니말리스( Bifidobacterium animalis)일 수 있다.
본 발명의 일 실시예에서는 구속 스트레스 또는 항생제 스트레스 등의 스트레스를 유도한 동물모델로부터 분리된 분변을 사용하여 장내 미생물의 군집 변화를 확인한 결과, 스트레스를 받지 않은 동물모델에 비해 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)의 수준이 증가하고, 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)의 수준이 감소함을 확인하였다(도 2, 6, 8, 10 및 12). 특히, 수준이 증가한 구체적인 장내세균으로 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)이 있고, 수준이 감소한 구체적인 젖산균으로 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri), 락토바실러스 존소니( Lactobacillus johnsonii), 락토바실러스 람노서스( Lactobacillus rhamnosus)가 있으며, 수준이 감소한 구체적인 비피더스균은 비피도박테리움 애니말리스( Bifidobacterium animalis)가 있음을 확인하였다.
본 발명은 또 다른 양태로서 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 신규 유산균의 용도를 제공한다. 구체적으로, 본 발명은 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)의 용도를 제공한다. 또한, 본 발명은 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)의 용도를 제공한다.
본 발명은 또 다른 양태로서 염증 질환의 예방 또는 치료를 위한 신규 유산균의 용도를 제공한다. 구체적으로, 본 발명은 염증 질환의 예방 또는 치료를 위한 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)의 용도를 제공한다. 또한, 본 발명은 염증 질환의 예방 또는 치료를 위한 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)의 용도를 제공한다.
본 발명은 또 다른 양태로서 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 약제의 제조에 있어서 신규 유산균을 포함하는 조성물의 용도를 제공한다. 구체적으로, 본 발명은 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 약제의 제조에 있어서 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)을 포함하는 조성물의 용도를 제공한다. 또한, 본 발명은 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료를 위한 약제의 제조에 있어서 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)을 포함하는 조성물의 용도를 제공한다.
본 발명의 “락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33)”“비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)”“뇌신경정신질환” 및 “염증 질환” 등의 용어는 상기에서 설명한 바와 같다.
이상 본 명세서에 기재된 수치값은 달리 명시되어 있지 않은 한 균등범위까지 포함하는 것으로 해석되어야 한다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 실시예에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
본 발명에 따른 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 ( Bifidobacterium adolescentis NK98)은 신경 퇴행성 질환 유발 인자를 억제하고 불안 및 우울 행동을 개선하는 효과가 있다. 따라서, 본 발명에 따른 신규한 유산균은 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 조성물로 이용될 수 있으며, 특히, 신경 퇴행성 질환 및 정신 장애의 예방 및 치료에 효과적이다.
또한, 본 발명에 따른 신규한 유산균은 염증 반응을 억제하는 효과가 있어 염증 질환의 예방 또는 치료용 조성물에 이용될 수 있으며, 특히, 대장염의 예방 및 치료에 효과적이다.
나아가 본 발명에 따른 장내 미생물의 수준을 측정하는 조성물은 장내 미생물의 수준을 측정하여 뇌신경정신질환을 진단하는데 효과적이다.
도 1은 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)에 대한 불안 행동 측정 및 혈액지표를 측정한 결과이다; (a)는 고가플러스미로 시험 결과 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 명암이행 시험 결과 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소함을 확인한 그래프이다; (c)는 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소함을 확인한 도이다; (e)는 혈액 중의 코르티코스테론이 증가함을 확인한 그래프이다; (f)는 혈액 중의 IL-6가 증가함을 확인한 그래프이다; (g)는 혈액 중의 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (h)는 혈액 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 2 (a)는 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)의 분변의 장내 미생물 군집이 변화함을 확인한 도이다; 도 2 (b)는 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)의 분변에서 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 3은 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)에 대한 대장염 지표를 측정한 결과이다; (a)는 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)의 대장의 길이가 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 대장에서 미엘로퍼옥시다아제가 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 대장에서 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 대장에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가, COX-2 및 iNOS의 발현이 증가함을 확인한 도이다; (e)는 대장에서 오클루딘과 클라우딘-1이 감소함을 확인한 도이다.
도 4는 구속 스트레스를 유도한 동물모델의 분변을 투여한 동물모델(FIS)의 상태를 확인한 결과이다; (a)는 고가플러스미로 시험 결과 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 명암이행 시험 결과 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소함을 확인한 그래프이다; (c)는 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소함을 확인한 도이다; (e)는 대장의 길이가 감소함을 확인한 그래프이다; (f)는 대장에서 미엘로퍼옥시다아제가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 5는 구속 스트레스를 유도한 동물모델의 분변을 투여한 동물모델(FIS)의 혈액지표를 측정한 결과이다; (a)는 혈액 중의 코르티코스테론이 증가함을 확인한 그래프이다; (b)는 혈액 중의 IL-6가 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 혈액 중의 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 6은 구속 스트레스를 유도한 동물모델의 분변을 투여한 동물모델(FIS)에 대한 대장염 지표 및 미생물 군집 변화를 확인한 결과이다; (a)는 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (b)는 대장에서 IL-6가 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 대장에서 IL-10이 감소함을 확인한 그래프이다; (d)는 대장에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가, COX-2 및 iNOS의 발현이 증가함을 확인한 도이다; (e)는 분변의 장내 미생물 군집이 변화함을 확인한 도이다.
도 7은 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)에 대한 불안 행동 측정 및 혈액지표를 측정한 결과이다; (a)는 고가플러스미로 시험 결과 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 명암이행 시험 결과 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소함을 확인한 그래프이다; (c)는 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소함을 확인한 도이다; (e)는 혈액 중의 코르티코스테론이 증가함을 확인한 그래프이다; (f)는 혈액 중의 IL-6가 증가함을 확인한 그래프이다; (g)는 혈액 중의 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (h)는 혈액 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 8 (a)는 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)의 분변의 장내 미생물 군집이 변화함을 확인한 도이다; 도 8 (b)는 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)의 분변의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 9는 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)에 대한 대장염 지표를 측정한 결과이다; (a)는 대장의 길이가 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 대장에서 미엘로퍼옥시다아제가 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 대장에서 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 대장에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가, COX-2 및 iNOS의 발현이 증가함을 확인한 도이다; (e)는 대장에서 오클루딘과 클라우딘-1이 감소함을 확인한 도이다.
도 10 (A)는 구속 스트레스를 가한 마우스(IS) 및 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)의 분변을 선택배지에서 배양한 결과 증가하는 균을 확인한 도이다; 도 10 (B)는 구속 스트레스를 가한 마우스(IS) 및 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)의 분변을 선택배지에서 배양한 결과 감소하는 균을 확인한 도이다.
도 11은 구속 스트레스 및 항생제 스트레스를 가한 마우스의 분변에서 증가한 미생물을 투여한 마우스에 대한 불안 행동 측정 및 혈액지표를 측정한 결과이다; (a)는 클렙시엘라 옥시토카(KO), 대장균(EC), 에어로코커스 우리내에쿠이 ( Aerococcus urinaeequi, AU) 및 모르가넬라 모르가니균(MM)을 투여한 마우스의 고가플러스미로 시험 결과 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 군이 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 현저히 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 클렙시엘라 옥시토카(KO)를 투여한 마우스의 고가플러스미로 시험 결과 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소함을 확인한 그래프이다; (c)는 명암이행 시험 결과 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소함을 확인한 그래프이다; (d)는 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인한 그래프이다; (e)는 해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소함을 확인한 도이다; (f)는 혈액 중의 코르티코스테론이 증가함을 확인한 그래프이다; (g)는 혈액 중의 IL-6가 증가함을 확인한 그래프이다; (h)는 혈액 중의 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (i)는 혈액 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 12 (a)는 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 마우스(KO)의 분변의 장내 미생물 군집이 변화함을 확인한 도이다; 도 12 (b)는 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 마우스(KO)의 분변의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인한 그래프이다.
도 13은 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 마우스(KO)에 대한 대장염 지표를 측정한 결과이다; (a)는 대장의 길이가 감소함을 확인한 그래프이다; (b)는 대장에서 미엘로퍼옥시다아제가 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 대장에서 TNF-α가 증가함을 확인한 그래프이다; (d)는 대장에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 증가, COX-2 및 iNOS의 발현이 증가함을 확인한 도이다; (e)는 대장에서 오클루딘과 클라우딘-1이 감소함을 확인한 도이다.
도 14는 구속 스트레스를 가한 마우스에 생리식염수를 투여한 군(IS)과 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri) NK33(IS+LR)을 투여한 군에 대한 불안 행동 측정 및 혈액지표를 비교한 결과이다; (a)는 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri) NK33(IS+LR)을 투여한 군의 고가플러스미로 시험 결과 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 증가함을 확인한 그래프이다; (b)는 명암이행 시험 결과 밝은 곳에서 보내는 시간이 증가함을 확인한 그래프이다; (c)는 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 감소함을 확인한 그래프이다; (d)는 해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 억제 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 증가함을 확인한 도이다; (e)는 혈액 중의 코르티코스테론이 감소함을 확인한 그래프이다; (f)는 혈액 중의 IL-6가 감소함을 확인한 그래프이다; (g)는 혈액 중의 TNF-α가 감소함을 확인한 그래프이다.
도 15는 구속 스트레스를 가한 마우스에 생리식염수를 투여한 군(IS)과 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri) NK33(IR)을 투여한 군에 대한 대장염 지표를 측정한 결과이다; (a)는 대장의 길이가 회복됨을 확인한 그래프이다; (b)는 대장에서 미엘로퍼옥시다아제가 감소함을 확인한 그래프이다; (c)는 대장에서 TNF-α가 감소함을 확인한 그래프이다; (d)는 대장에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)의 감소, COX-2 및 iNOS의 발현이 감소함을 확인한 도이다.
이하, 본 발명의 이해를 돕기 위하여 바람직한 실시예 및 실험예를 제시한다. 그러나 하기의 실시예 및 실험예는 본 발명을 보다 쉽게 이해하기 위하여 제공되는 것일 뿐, 이에 의해 본 발명의 내용이 한정되는 것은 아니다.
실험예 1: 정신 장애 유도 동물모델
(1) 구속 스트레스
불안증, 우울증 또는 스트레스 등의 정신 장애를 유도하기 위해 3x10 cm의 원통모양의 구속 스트레스 기구에 마우스를 움직일 수 없도록 고정하였다.
구체적으로, 구속 스트레스로 인한 불안 유도 마우스를 제작하기 위해, 기구에 고정된 상기 마우스를 2일에 한 번씩 머리가 위로 가도록 2시간씩 세워놓는 방법으로 구속 스트레스를 5회 반복하고, 마지막 구속 스트레스 2시간 후에 행동실험을 수행하였다.
또한, 구속 스트레스로 인한 우울 유도 마우스를 제작하기 위해, 기구에 고정된 상기 마우스를 머리가 위로 가도록 12시간씩 세워놓는 방법으로 매일 1회씩 2일간 연속 구속 스트레스를 반복하였다. 유산균 투여는 매일 1회씩 5일간 투여하였고, 최종 투여 1시간 후에 행동실험을 수행하였다.
(2) 항생제 스트레스
불안증, 우울증 또는 스트레스 등의 정신 장애를 유도하기 위해 암피실린(100 mg/kg)을 2일간 연속으로 마우스에 투여하였다. 투여 10일 후에 불안 행동을 측정하였다.
(3) 정신 장애 유도 동물모델에 대한 실험 방법
구속 스트레스를 유도한 마우스 모델에 대해서 구속 스트레스를 시작하고 7일째부터 1일 1회씩 3일간 실험군에 따라 유산균 또는 생리식염수를 투여하였다. 항생제 스트레스를 유도한 마우스 모델에 대해서 항생제 스트레스를 유도하고 7일째부터 1일 1회씩 3일간 실험군에 따라 유산균 또는 생리식염수를 투여하였다.
불안 행동은 유산균 또는 생리식염수의 투여 5시간 후에 측정하였고, 혈액 지표(코르티코스테론, IL-6, TNF-α 등)는 고가플러스미로 시험이 끝나고 1시간 후에 혈액을 채취하여 측정하였다.
실험예 2: 스트레스 진단을 위한 행동 측정 방법
(1) 고가플러스미로(elevated plus maze, EPM) 시험
고가플러스미로는 스트레스 또는 불안증 등의 정신 장애의 정도를 측정하기 위한 실험 장치이다. 본 실험에 사용된 고가플러스미로 실험 장치는 두 개의 개방 통로(Open arm (30 x 7 cm))와 20 cm 높이의 벽을 가진 두 개의 폐쇄 통로(Enclosed arm (30 x 7 cm))가 바닥으로부터 50 cm만큼 높고, 중앙 플랫폼으로부터 7 cm씩 뻗어 있는 검정색 플렉시 유리 장치이다. 본 시험은 20 룩스의 밝기에 비디오 카메라가 위에 설치되어 있는 방에서 고가플러스미로에 놓인 쥐의 움직임을 기록하였다.
구체적으로, C57BL/6 마우스(수컷, 19-22 g)를 고가플러스미로의 정중앙에 두고, 머리는 개방 통로를 향하게 두었다. 5분 동안 개방 통로와 폐쇄 통로에서 보낸 시간과 횟수를 측정하였다. 통로의 진입(Arm entry)은 네 발이 모두 들어간 것을 인정하였다.
전체 시험 시간 중 개방 통로에서 보낸 시간(Time spent in open arms, OT)은 [개방 통로에서 보낸 시간/(개방 통로에서 보낸 시간+폐쇄 통로에서 보낸 시간)]x100으로 계산하였다. 그리고 개방 통로 진입(open arm entries, OE)는 [개방 통로 입장/(개방 통로 입장+폐쇄 통로 입장)]x100으로 계산하였다. 매 행동실험 종료 후에는 70% 에탄올로 남아있는 냄새를 제거하였다.
공지된 시험 결과 해석에 따라, 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하는 경우 불안증 또는 우울증 등의 정신 장애 증상이 나타난 것으로 해석하였다.
(2) 명암이행(Light-dark transition) 시험
어둠 / 빛으로 전환 시험에 사용되는 장치는 문(7.5x7.5 cm)이 있는 파티션에서 동일한 크기의 밝은 부분(21x42x25 cm, 390 룩스 백색 다이오드)과 어두운 부분(21x42x25 cm, 2 룩스)로 구성되어 있다. 밝은 부분에 마우스를 두고 5분 동안 관찰하면서 밝은 부분에 머문 시간(time in bright area) 및 밝은 부분으로 왕복한 횟수(number of transitions)를 측정하였다. 매 행동실험 종료 후에는 70% 에탄올로 남아있는 냄새를 제거하였다.
공지된 시험 결과 해석에 따라, 밝은 부분에 머문 시간 및 밝은 부분으로 왕복한 횟수가 감소하는 경우 불안증 또는 우울증 등의 정신 장애 증상이 나타난 것으로 해석하였다.
(3) 구슬매장(marble burying) 시험
톱밥이 5 cm 깊이로 채워져 있는 투명 케이지에 마우스를 15분간 두었다. 이후 5 cm 간격으로 25개의 구슬(지름 2 cm 투명구슬)을 톱밥 위에 두었다. 마우스를 한쪽의 중앙에 놓고 30분간 매장한 구슬의 개수를 측정하였다.
공지된 시험 결과 해석에 따라, 마우스가 매장한 구슬을 숨기는 행동이 증가하는 경우 불안증 또는 우울증 등의 정신 장애 증상이 나타난 것으로 해석하였다.
(4) 강제수영 실험(Forced Swimming Test, FST)
Porsolt 등(Porsolt RD, Le Pichon, Jalfre M (1977) Depression: A new animal model sensitive to antidepressant treatments, Nature, Vol.266; pp.730-732)의 방법에 따라 높이 40 cm, 직경 20 cm인 수조에 온도 25±1℃의 물을 25 cm 높이까지 채웠다. 실험용 마우스를 한 마리씩 수조에 넣고 총 6분 중 최초 2분은 적응시간으로 측정하지 않고, 마지막 4분 동안 실험동물의 부동상태(immobility) 시간을 측정하였다. 부동상태는 머리만을 물 위로 드러내기 위한 최소한의 움직임만 하면서 똑바로 서서 움직이지 않고 떠있는 상태를 의미한다.
(5) 꼬리 매달기 실험(Tail Suspension Test, TST)
Steru 등(Steru L, Chermat R, Thierry B, Simon P (1985) The tail suspension test: A new method for screening antidepressants in mice, Psychopharmacology, Vol.85; pp.367-370)의 방법에 따라 직경 35 cm 및 높이 50 cm인 통속에 마우스 꼬리 끝 1 cm 정도에 고정 장치를 장착 후 지면에서 50 cm 떨어진 위치에 매달았다. 총 6분 동안 실험동물의 부동상태(immobility) 시간을 측정하였다.
실험예 3: 장 내 미생물 군집 확인 실험
장내 미생물 군집에서 피르미쿠테스(Firmicutes), 프로테오박테리아(Proteobacteria), 방선균류(Actinobacteria) 및 박테로이데테스(Bacteroidetes) 등의 점유율을 측정하기 위해 실시간 PCR(real-time PCR) 또는 454 파이로시퀀싱(pyrosequencing)을 수행하였다.
구체적으로, 동물모델로부터 얻은 분변의 DNA는 QIAamp DNA stool mini kit(Qiagen, Germany)를 사용하여 분리하였다. 파이로시퀀싱은 barcoded 프라이머(bacterial 16S rDNA 유전자의 V1 내지 V3 부분)를 사용하였다. qPCR은 하기 표 1의 프라이머를 사용하여 분석하였다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000001
실험예 4: 리포폴리사카라이드 측정 방법(1) 분변 중의 리포폴리사카라이드 측정 방법
분변(20 mg)을 30 mL의 PBS에 현탁하고, 1시간동안 초음파처리하여 미생물을 분쇄한 다음 500 rpm에서 15분간 원심분리하였다. 그 상등액을 0.45 μm 필터로 여과하고, 이어서 0.22 μm 필터로 여과한 다음 70℃에서 10분간 처리하여 검체로 사용하였다. 상기 검체를 Limulus amoebocyte lysate (LAL) assay kit (Cape Cod Inc., East Falmouth, MA, U.S.A.)를 사용하여 리포폴리사카라이드를 측정하였다.
(2) 혈액 중의 리포폴리사카라이드 측정 방법
혈액을 PBS로 10배 희석하고, 원심분리한 다음 상등액을 0℃에서 10분간 처리하였다. 상기 상등액을 0.45 μm 필터로 여과하고, 이어서 0.22 μm 필터로 여과하여 검체로 사용하였다. 상기 검체를 Limulus amoebocyte lysate (LAL) assay kit (Cape Cod Inc., East Falmouth, MA, U.S.A.)를 사용하여 리포폴리사카라이드를 측정하였다.
실험예 5: 대장염 지표 측정 방법
(1) 미엘로퍼옥시다아제 활성 측정
대장조직 100 ㎎에 0.5% 헥사데실 트리메틸 암모늄 브롬화물(hexadecyl trimethyl ammonium bromide) 함유 10 mM 인산칼슘 완충액(potassium phosphate buffer, pH 7.0) 200 ㎕를 넣고 균질화(homogenization)하였다. 4℃ 및 10,000 g의 조건에서 10분간 원심분리하여 상등액을 얻었다. 상등액 50 ㎕를 0.95 ㎖의 반응액(1.6 mM 테트라메틸 벤지딘(tetramethyl benzidine)과 0.1 mM H 2O 2 함유)에 넣고 37℃에서 반응시키면서 650 ㎚에서 경시적으로 흡광도를 측정하였다. 상기 미엘로퍼옥시다아제(myeloperoxidase, MPO)의 활성은 반응물로서 생긴 H 2O 2 1 μmol/ml을 1 유닛으로 계산하였다.
(2) 염증 지표의 측정
웨스턴블롯팅 방법을 이용하여 p-p65, p65, iNOS, COX-2 및 β-actin과 같은 염증 반응 지표 물질을 측정하였다. 구체적으로, 상기 미엘로퍼옥시다아제(Myeloperoxidase, MPO) 활성 측정 실험과 동일한 방법으로 얻은 상등액 50 ㎍을 취해 면역블롯팅을 수행하였다. 또한, 사이토카인의 발현량은 ELISA kit로, LPS는 LAL assay kit를 이용하여 측정하였다.
실시예 1: 구속 스트레스를 유도한 동물모델의 상태 확인
상기 실험예 1-(1)과 같은 방법으로 2일에 1회씩 총 5회 구속 스트레스를 가한 마우스(IS)에 대하여 실험예 2 내지 5의 실험을 수행하였다.
실험예 2의 수행 결과, 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하고, 명암이행 시험에서 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인하였다(도 1 (a) 내지 (c)).
또한 웨스턴블랏을 통해 확인한 결과, 해마(히포캠퍼스, Hippocampus)에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소하고(도 1 (d)), 혈액 중의 코르티코스테론(corticosterone), IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드의 양이 증가함을 확인하였다(도 1 (e) 내지 (h)).
실험예 3의 수행 결과, 분변 중의 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes)가 감소하고, δ,γ-프로테오박테리아(proteobacteria)와 ε-프로테오박테리아(proteobacteria)가 증가함을 확인하였고, 실험예 4의 수행 결과, 분변 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인하였다(도 2).
실험예 5의 수행 결과, 대장염의 지표인 대장의 길이가 감소하고, 미엘로퍼옥시다아제가 증가하고, 대장의 TNF-α가 증가하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 증가하고, NF-κB의 활성이 증가하며, 밀착연접단백질인 오클루딘(occludin)과 클라우딘-1(claudin-1)이 감소함을 확인하였다(도 3 (a) 내지 (e)).
실시예 2: 구속 스트레스를 유도한 동물모델의 분변을 투여한 동물모델의 상태 확인
상기 실험예 1-(1)과 같은 방법으로 2일에 1회씩 총 5회 구속 스트레스를 가한 마우스의 분변을 투여한 마우스(FIS)에 대하여 실험예 2 내지 4의 실험을 수행하였다.
실험예 2의 수행 결과, 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하고, 명암이행 시험에서 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인하였다(도 4 (a) 내지 (c)).
또한, 웨스턴블랏을 통해 확인한 결과, 해마(히포캠퍼스, Hippocampus)에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소하고(도 4 (d)), 혈액 중의 코르티코스테론(corticosterone), IL-6 및 TNF-α의 양이 증가함을 확인하였다(도 5 (a) 내지 (c)).
실험예 5의 수행 결과, 대장염의 지표인 대장의 길이가 감소하고, 미엘로퍼옥시다아제가 증가하고(도 4 (e) 및 (f)), 대장의 TNF-α 및 IL-6가 증가하고, 대장의 IL-10이 감소하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 증가하며, NF-κB의 활성이 증가함을 확인하였다(도 6 (a) 내지 (d)).
실험예 3의 수행 결과, 분변 중의 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes)가 감소하고, γ-프로테오박테리아(proteobacteria)와 ε-프로테오박테리아(proteobacteria)가 증가함을 확인하였다(도 6 (e)).
실시예 3: 항생제 스트레스를 유도한 동물모델의 상태 확인
상기 실험예 1-(2)과 같은 방법으로 암피실린(100 mg/kg)을 2일간 연속으로 투여하여 항생제 스트레스를 가한 마우스(AP)에 대하여 실험예 2 내지 5의 실험을 수행하였다.
실험예 2의 수행 결과, 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하고, 명암이행 시험에서 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인하였다(도 7 (a) 내지 (c)).
해마(히포캠퍼스, Hippocampus)에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량이 감소하고(도 7 (d)), 혈액 중의 코르티코스테론(corticosterone), IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드의 양이 증가함을 확인하였다(도 7 (e) 내지 (h)).
실험예 3의 수행 결과, 분변 중의 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes)가 감소하고, δ,γ-프로테오박테리아(proteobacteria)와 ε-프로테오박테리아(proteobacteria)가 증가함을 확인하였고, 실험예 4의 수행 결과, 분변 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인하였다(도 8 (a) 및 (b)).
실험예 5의 수행 결과, 대장염의 지표인 대장의 길이가 감소하고, 미엘로퍼옥시다아제가 증가하고, 대장의 TNF-α가 증가하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 증가하고, NF-κB의 활성이 증가하며, 밀착연접단백질인 오클루딘(occludin)과 클라우딘-1(claudin-1)이 감소함을 확인하였다(도 9 (a) 내지 (e)).
실시예 4: 스트레스 유도 동물모델의 분변에서 분리된 미생물을 투여한 동물모델의 상태 확인
(1) 스트레스 유도 동물모델의 분변에서 미생물 분리
구속 스트레스를 가한 마우스 및 항생제 스트레스를 가한 마우스의 분변을 선택배지에서 배양하였다. 그 결과, DHL 배지에서 자라는 장내세균(Enterobacteriaceae)이 증가하였는데, 특히 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)이 증가함을 확인하였다(도 10 (A)).
반면, BL 배지에서 자라는 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)은 감소하였는데, 특히 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri), 락토바실러스 존소니( Lactobacillus johnsonii), 락토바실러스 람노서스( Lactobacillus rhamnosus) 및 비피도박테리움 애니말리스( Bifidobacterium animalis)가 감소함을 확인하였다(도 10 (B)).
(2) 미생물을 투여한 동물모델의 상태 확인
구속 스트레스를 가한 마우스 및 항생제 스트레스를 가한 마우스의 분변에서 증가한 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)을 각각 마우스에 1x10 9 cfu 만큼 투여한 후, 상기 실험예 2-(1)의 고가플러스미로 시험을 수행하였다. 그 결과, 다른 미생물 투여군에 비해 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 군의 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 현저히 감소함을 확인하였다(도 11 (a)).
이후, 클렙시엘라 옥시토카를 투여한 마우스(KO)에 대하여 실험예 2 내지 5의 실험을 수행하였다.
실험예 2의 수행 결과, 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하고, 명암이행 시험에서 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가함을 확인하였다(도 11 (b) 내지 (d)).
해마에서 NF-κB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자의 발현량이 감소하고(도 11 (e)), 혈액 중의 코르티코스테론, IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드의 양이 증가함을 확인하였다(도 11 (f) 내지 (i)).
실험예 3의 수행 결과, 분변 중의 박테로이데테스균, 방선균, 피르미쿠테스가 감소하고, δ,γ-프로테오박테리아와 ε-프로테오박테리아가 증가함을 확인하였고, 실험예 4의 수행 결과, 분변 중의 리포폴리사카라이드가 증가함을 확인하였다(도 12 (a) 및 (b)).
실험예 5의 수행 결과, 대장염의 지표인 대장의 길이가 감소하고, 미엘로퍼옥시다아제가 증가하고, 대장의 TNF-α가 증가하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 증가하고, NF-κB의 활성이 증가하며, 밀착연접단백질인 오클루딘(occludin)과 클라우딘-1(claudin-1)이 감소함을 확인하였다(도 13 (a) 내지 (e)).
실시예 5: 유산균의 분리 및 동정
(1) 사람 및 마우스의 분변으로부터 유산균의 분리
사람 및 마우스의 신선한 분변을 GAM 액체 배지(GAM broth; Nissui Pharmaceutical, Japan)에 넣고 현탁하였다. 이후, 상등액을 취해 MRS, BHI(Brain-Heart-Infusion) 또는 BL 한천 배지(BL agar medium; Nissui Pharmaceutical, Japan)에 이식하고 37℃에서 약 48시간 내지 72시간 동안 혐기적으로 배양한 후, 콜로니(colony)를 형성한 균주들을 분리하였다.
(2) 분리된 유산균의 동정
사람 또는 마우스의 분변으로부터 분리한 균주들의 생리학적 특성 및 16S rDNA 서열을 분석하여 균주의 종을 확정하고, 균주명을 부여하였다. 부여된 유산균의 균주명은 하기 표 2와 같다. 구체적으로, 사람 또는 마우스의 분변으로부터 분리된 유산균은 락토바실러스 속 9종 및 비피도박테리움 속 22종 이었다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000002
(3) 신규한 유산균 락토바실러스 루테리 NK33의 생리학적 특성
상기 표 2에 기재된 균주들 중 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri) NK33(수탁번호 KCCM12090P)은 그람양성 간균인 것으로 확인되었다. 또한, 락토바실러스 루테리 NK33의 16S rDNA는 서열번호 1의 염기서열을 갖는 것으로 나타났다. 락토바실러스 루테리 NK33의 16S rDNA 염기서열을 BLAST 검색으로 비교한 결과, 동일한 16S rDNA 염기서열을 갖는 락토바실러스 루테리 균주는 검색되지 않았고, 공지된 락토바실러스 루테리 균주의 16S rDNA 서열과 99% 상동성을 보임을 확인하였다.
락토바실러스 루테리 NK33의 생리학적 특성 중 탄소원 이용성을 API 50 CHL 키트(BioMerieux's, USA)를 사용하여 당 발효 시험으로 분석하였다. 그 결과는 하기 표 3과 같다. 하기 표 3에서 “+”는 탄소원 이용성이 양성인 경우를 나타내고, “-”는 탄소원 이용성이 음성인 경우를 나타낸다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000003
(4) 신규한 유산균 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 생리학적 특성
상기 표 2에 기재된 균주들 중 비피도박테리움 아돌레센티스 ( Bifidobacterium adolescentis) NK98(수탁번호 KCCM12297P)의 16S rDNA는 서열번호 38의 염기서열을 갖는 것으로 나타났다. 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 16S rDNA 염기서열을 BLAST 검색으로 비교한 결과, 동일한 16S rDNA 염기서열을 갖는 비피도박테리움 아돌레센티스 ( Bifidobacterium adolescentis) 균주는 검색되지 않았고, 공지된 비피도박테리움 아돌레센티스 균주의 16S rDNA 서열과 98% 상동성을 보임을 확인하였다.
비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 생리학적 특성 중 탄소원 이용성 등을 API 키트(API 20A, BioMerieux's, USA)를 사용하여 당 발효 시험으로 분석하였다. 그 결과는 하기 표 4와 같다. 하기 표 4에서 “+”는 탄소원 이용성이 양성인 경우를 나타내고, “-”는 탄소원 이용성이 음성인 경우를 나타낸다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000004
실시예 7: 분리된 유산균들의 활성 비교
(1) 항산화 활성(in vitro)
DPPH(2,2-Diphenyl-1-picrylhydrazyl)를 0.2 mM 농도가 되도록 에탄올에 녹여 DPPH 용액을 제조하였다. 상기 DPPH 용액 0.1 ㎖에 유산균의 현탁액(1×10 8 CFU/㎖) 또는 비타민 C 용액(1 g/㎖)을 넣고 20분간 37℃에서 배양하였다. 배양액을 3000 rpm에서 5분간 원심분리하여 상등액을 수득하였다. 이후, 517 ㎚에서 상등액의 흡광도를 측정하여 분리된 유산균들의 항산화 활성을 계산하였다. 각 유산균 별 항산화 활성은 하기 표 5(락토바실러스 속) 및 표 6(비피도박테리움 속)과 같다.
(2) 대식세포에서의 염증 지표 측정
C57BL/6 마우스(male, 6주령 20-23 g)의 복강에 멸균된 4% 티오글라이콜레이트(thioglycolate) 2 ㎖를 투여하였다. 96시간이 지난 뒤에 마우스를 마취시키고, 마우스의 복강에 RPMI 1640 배지 8 ㎖를 투여하였다. 5~10분 후에 마우스의 복강 내의 RPMI 배지(대식세포)를 뽑아, 1000 g에서 10분간 원심분리하고 다시 RPMI 1640 배지로 2회 세척하였다. 상기 대식세포를 각 웰 당 0.5×10 6의 수로 24-웰 플레이트에 깔고, 분리된 락토바실러스 속 유산균과 염증 반응 유도 물질인 리포폴리사카라이드를 2시간 또는 24시간 동안 처리한 후 상등액 및 세포를 수득하였다. 수득한 세포를 RIPA 버퍼(Gibco사)에 넣고 균질화하였다. 24시간 처리한 배양 상등액에서 TNF-α 등의 사이토카인 발현량을, 2시간 동안 처리하여 수득한 세포로부터 p65(NF-κB), p-p65(phosphor-NF-κB) 및 β-actin의 발현량을 면역블롯팅(immunoblotting) 방법으로 측정하였다. 각 락토바실러스 속 유산균 별 염증 지표의 발현 수준은 하기 표 5와 같다.
(3) 소교세포의 염증 지표 측정
BV-2 소교세포를 각 웰 당 0.5×10 6의 수로 24-웰 플레이트에 깔고, 분리된 비피도박테리움 유산균과 염증 반응 유도 물질인 리포폴리사카라이드를 2시간 또는 24시간 동안 처리한 후 상등액 및 세포를 수득하였다. 수득한 세포를 RIPA 버퍼(Gibco사)에 넣고 균질화하였다. 2시간 처리하고, 세포를 수득한 세포로부터 p65(NF-kB), p-p65(phosphor-NF-kB) 및 β-actin의 발현량을 면역블롯팅 방법으로 측정하였다. 각 비피도박테리움 속 유산균 별 염증 지표의 발현 수준은 하기 표 6과 같다.
(4) SH - SY5Y 세포에 대한 뇌유래신경영양인자 ( BDNF ) 발현 효과 및 NF - κB 활성화 효과
신경 세포인 SH-SY5Y 세포를 한국 세포주 은행에서 분양하여 10% FBS 및 1% 항생제가 첨가된 DMEM 배지에서 배양하고, 12-웰 플레이트에 웰 당 2×10 6 세포수로 분주하였다. 이 후, 각 웰에 유산균 (1×10 4 CFU/㎖)과 함께 코르티코스테론(corticosterone)을 300 ㎎/㎖의 농도로 첨가하여 배양한 뒤, NF-κB(p65, p-p65) 및 뇌유래신경영양인자(brain derivated neurotrophic factor, BDNF)의 발현량을 면역블롯팅 방법으로 측정하였다. 각 유산균 별 BDNF 발현 수준 및 NF-κB 활성화 수준은 하기 표 5(락토바실러스 속) 및 표 6(비피도박테리움 속)과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000005
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000006
(5) 실험 결과
분리된 유산균들의 활성을 평가한 결과, 분리된 락토바실러스 속 또는 비피도박테리움 속 유산균들 중 본원의 락토바실러스 루테리 NK33 및 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 항산화 활성 및 염증반응 억제 효과가 현저히 우수함을 확인하였다. 특히, 알츠하이머와 같은 노화관련 질환을 유발하는 물질로 알려진 NF-κB의 활성을 억제하고, 노화 및 치매 등에서 보이는 소교세포의 염증반응을 억제하며, 노화 및 치매 등에서 감소하는 뇌의 신경이 생산하는 뇌유래신경영양인자의 발현을 증가시킴을 확인하였다(표 5 및 표 6).
실시예 8: 분리된 비피도박테리움 속 유산균들의 면역 조절 효능 평가
분변으로부터 분리한 비피도박테리움 속 유산균의 면역조절 효능을 평가하기 위하여, 대식세포 및 비장세포의 면역반응에 비피도박테리움 속 유산균이 미치는 영향을 측정하였다.
(1) 대식세포에서의 면역반응
C57BL/6 마우스(수컷, 6주령 20-23 g, 라운바이오㈜)의 복강에 멸균된 4% 티오글라이콜레이트(thioglycolate) 2 ㎖를 투여하였다. 투여 후 96시간이 지난 뒤에 마우스를 마취시키고, 마우스의 복강에 RPMI 1640 배지 8 ㎖를 투여하였다. 5~10분 후에 마우스의 복강 내의 RPMI 배지(대식세포 포함)를 뽑아내고 1000 rpm에서 10분간 원심분리한 후 다시 RPMI 1640 배지로 2회 세척하였다. 상기 대식세포를 각 웰 당 0.5×10 6의 수로 24-웰 플레이트에 깔고, 24시간 동안 배양한 후 부착하지 않은 세포를 제거하여 사용하였다.
상기 대식세포 배양액에 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98과 염증 반응 유도 물질인 리포폴리사카라이드를 2시간 또는 24시간 동안 처리한 후 상등액 및 세포를 수득하였으며, 이때 유산균 처리 농도는 1×10 4 CFU/㎖ 이었다. 수득한 세포를 RIPA 버퍼(Gibco사)에 넣고 균질화하였다. 수득한 상등액으로부터 TNF-α의 발현량을 ELISA kit로 측정하고, 수득한 세포로부터 p65(NF-κB), p-p65(phosphor-NF-κB) 및 β-actin의 발현량을 면역블롯팅 방법으로 측정하였다. 구체적으로, 상등액 50 ㎍을 취해 SDS 10%(w/v) polyacrylamide gel에서 1시간 30분간 전기영동을 하였다. 전기영동한 샘플을 니트로셀룰로스지에 100 V 및 400 ㎃의 조건에서 1시간 10분간 트랜스퍼(transfer) 하였다. 샘플이 트랜스퍼된 니트로셀룰로스지를 5% 탈지유로 30분간 blocking 한 후, 5분씩 3회에 걸쳐 PBS-Tween으로 세척하고, 1차 항체(Santa Cruz Biotechnology, 미국)를 1:100의 비율로 하여 하룻밤 동안 반응시켰다. 이후, 10분씩 3회에 걸쳐 세척하고, 2차 항체(Santa Cruz Biotechnology, 미국)를 1:1000의 비율로 하여 1시간 20분간 반응시켰다. 이후, 15분씩 3회에 걸쳐 세척하고, 형광발색 시킨 후 현상하고, 발색밴드의 강도(Intensity)를 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 7과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000007
(2) 비장세포에서의 면역반응
C57BL/6 마우스(숫컷, 6주령, 20-22 g, (주)오리엔트바이오)의 비장을 분리 및 분쇄하여 10% FCS 함유 RPMI 1640 배지에 현탁하였다. CD4 T cell isolation kit(MiltenyiBiotec, Bergisch Gladbach, 독일)를 사용하여 CD4 T 세포를 분리하고, 분리한 CD4 T 세포를 12-웰 플레이트에 각 웰 당 5×10 5 수로 분주하였다.
T 세포의 Th1 세포로의 분화를 유도하기 위해 항-CD3, 항-CD28, IL-2 및 IL-12를, T 세포의 Th2 세포로의 분화를 유도하기 위해 항-CD3, 항-CD28, IL-2 및 IL-4를, T 세포의 Th17 세포로의 분화를 유도하기 위해 항-CD3, 항-CD28, IL-6 및 TGF-β를, T 세포의 Treg 세포로의 분화를 유도하기 위해 항-CD3 및 항-CD28을 넣고 세포를 배양하면서 유산균을 웰 당 1×10 5 CFU/㎖의 양으로 넣고 4일간 배양하였다.
이후, 비장으로부터 분리된 T 세포의 Th1 세포, Th2 세포, Th17 세포 및 Treg 세포로의 분화능을 측정하였다. 구체적으로, 배양액의 세포를 항-FoxP3 또는 항-IL-17A 항체로 염색하고 FACS(Fluorescence-activated cell sorting) 장치(C6 Flow Cytometer System, San Jose, CA, USA)를 이용하여 Th1 세포, Th2 세포, Th17 세포 및 Treg 세포의 분포를 분석하였으며, 그 결과는 하기 표 8과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000008
또한, 비장 T 세포로부터 분화된 Th1 세포, Th2 세포, Th17 세포 및 Treg 세포의 전사인자 및 사이토카인 발현율을 측정하였다. 구체적으로, qRT-PCR을 이용하여 Th1 세포 분화 유도 배양액으로부터 T-bet, IFN-γ및 IL-12를, Th2 세포 분화 유도 배양액으로부터 GATA3 및 IL-5을, Th17 세포 분화 유도 배양액으로부터 RORγ및 IL-17을, Treg 세포 분화 유도 배양액으로부터 Foxp3 및 IL-10의 발현량을 분석하였으며, 그 결과는 하기 표 9와 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000009
상기 표 8 및 표 9에서 확인되는 바와 같이, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98은 T 세포의 Th1 세포, Th2 세포, Th17 세포로의 분화 억제율이 높고, 특히 T 세포의 Treg 세포로의 분화 증가율이 높아 염증반응을 효과적으로 억제할 수 있고, 이에 따라 염증성 질환을 효과적으로 개선할 수 있음을 확인하였다.
실시예 9: 락토바실러스 루테리 NK33의 스트레스 개선 효과
상기 실험예 1과 같이 구속 스트레스를 가한 마우스에 구속 스트레스를 시작하고 7일째부터 1일 1회씩 5일간 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리 NK33 1x10 9 cfu 또는 생리식염수를 투여하였다. 상기 마우스들에 대하여 실험예 2 내지 5의 실험을 수행하였다.
실험예 2의 수행 결과, 생리식염수를 투여한 군(IS)은 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 감소하고, 명암이행 시험에서 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 증가하였다. 그러나, 락토바실러스 루테리 NK33을 투여한 군(IS+LR)은 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 증가하고, 밝은 곳에서 보내는 시간이 증가하였으며, 구슬매장 시험에서 구슬을 매장하는 행동이 감소함을 확인하였다(도 14 (a) 내지 (c)).
해마에서 생리식염수를 투여한 군(IS)은 NF-κB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자의 발현량이 감소하고, 혈액 중의 코르티코스테론, IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드의 양이 증가함을 확인하였다. 그러나, 락토바실러스 루테리 NK33을 투여한 군(IS+LR)은 NF-κB 활성화(p-p65/p65)가 억제되고, 뇌유래신경영양인자의 발현량이 증가하고, 혈액 중의 코르티코스테론, IL-6, TNF-α 및 리포폴리사카라이드의 양이 감소함을 확인하였다(도 14 (d) 내지 (g)).
실험예 5의 수행 결과, 생리식염수를 투여한 군(IS)은 대장염의 지표인 대장의 길이가 감소하고, 미엘로퍼옥시다아제가 증가하고, 대장의 TNF-α가 증가하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 증가하고, NF-κB의 활성이 증가함을 확인하였다. 그러나, 락토바실러스 루테리 NK33을 투여한 군(IR)은 대장의 길이가 정상 수준으로 회복되고, 미엘로퍼옥시다아제가 감소하고, 대장의 TNF-α가 감소하고, 대장의 COX-2 및 iNOS의 발현이 감소하고, NF-κB의 활성이 억제됨을 확인하였다(도 15 (a) 내지(d)).
이를 통해, 신규한 유산균인 락토바실러스 루테리 NK33는 불안증, 우울증 및 스트레스 등의 정신 장애의 개선 효과가 우수함을 확인하였다.
실시예 10: 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 스트레스 개선 효과
상기 실험예 1의 구속 스트레스를 가한 마우스에 구속 스트레스를 시작하고 7일째부터 1일 1회씩 3일간 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 1x10 9 cfu(NK98), 비피도박테리움 아돌레센티스( Bifidobacterium adolescentis) IM38 1x10 9 cfu(IM38), 생리식염수(IS) 또는 부스피론(Buspirone) 1 mg/kg를 투여하고, 상기 실험예 2 및 실험예 5의 실험을 수행하였다.
(1) 고가플러스미로 시험
상기 실험예 2-(1)의 고가플러스미로 실험과 함께 혈중 코르티코스테론(BC)의 양을 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 10과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000010
상기 표 10에서 확인되는 바와 같이, 구속스트레스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 구속스트레스를 주지 않은 정상대조군에 비해 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간(OT) 및 개방 통로 진입(OE)이 모두 감소하였다. 그러나 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 개방통로에서 보내는 시간과 빈도가 증가하고 혈중 코스티코스테론의 양이 현저히 감소하였으며, 이러한 효과는 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38 대비 우수함을 확인하였다.
(2) 명암이행 시험
상기 실험예 2-(2)의 명암이행 실험을 수행하였으며, 그 결과는 하기 표 11과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000011
상기 표 11에서 확인되는 바와 같이, 구속스트레스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 구속스트레스를 주지 않은 정상대조군에 비해 밝은 곳에서 보내는 시간이 감소하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 밝은 곳에서 보내는 시간이 증가하였으며, 이는 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38을 투여한 군보다 증가한 것을 확인하였다.
(3) 강제수영 실험
상기 실험예 2-(4)의 강제수영 실험을 수행하였으며, 그 결과는 하기 표 12와 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000012
상기 표 12에서 확인되는 바와 같이, 우울마우스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 구속스트레스를 주지 않은 정상대조군에 비해 부동상태 시간이 증가하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 부동상태 시간이 감소하였으며, 이는 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38을 투여한 군보다 보다 감소하였음을 확인하였다.
(4) 꼬리 매달기 실험
상기 실험예 2-(5)의 꼬리 매달기 실험을 수행하였으며, 그 결과는 하기 표 13과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000013
상기 표 13에서 확인되는 바와 같이, 우울마우스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 구속스트레스를 주지 않은 정상대조군에 비해 부동상태 시간이 증가하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 부동상태 시간이 감소하였음을 확인하였다.
(5) 바이오마커 측정
우울마우스의 마지막 행동실험을 수행하고 2시간 후에 마우스를 마취시키고, 상기 실험예 5와 같은 방법으로 혈액의 코르티코스테론은 ELISA로, 뇌의 뇌유래신경영양인자 및 NF-kB와 대장의 NF-kB는 면역블롯팅으로 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 14와 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000014
상기 표 14에서 확인되는 바와 같이, 생리식염수를 투여한 군(IS)은 해마에서 NF-kB 활성(p-p65/p65)이 증가하고, 뇌유래신경영양인자의 발현량이 감소하고, 혈액 중의 코르티코스테론양이 증가함을 확인하였다. 그러나, NK98을 투여한 군은 NF-kB 활성이 억제되고, 뇌유래신경영양인자의 발현량이 증가하였으며, 혈액 중의 코르티코스테론양이 감소하였으며, 이러한 효과는 IM38을 투여한 군 대비 우수함을 확인하였다.
(6) 대장염 개선 효과
실험예 1의 불안마우스의 마지막 행동실험을 수행하고 2시간 후에 마우스를 마취시키고, 상기 실험예 5와 같은 방법으로 장길이, MPO, COX-2, TNF-α 및 NF-kB의 활성화를 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 15와 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000015
상기 표 15에서 확인되는 바와 같이, 구속스트레스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 구속스트레스를 주지 않은 정상대조군에 비해 장길이가 줄어들고, MPO 및 염증지표가 증가하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 장길이가 회복되고, MPO 저해능 및 염증 지표들이 개선되었음을 확인하였다.
(7) 항생제 유도 스트레스 개선 효과
상기 실험예 1-(2)와 같은 방법으로 암피실린(100 mg/kg)을 2일간 연속으로 투여하여 항생제 스트레스를 유도한 마우스에 대하여 실험예 2 및 5의 실험을 수행하였으며, 그 결과는 하기 표 16 및 17과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000016
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000017
상기 표 16에서 확인되는 바와 같이, 항생제 유도 스트레스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 정상대조군에 비해 고가플러스미로 시험에서 개방 통로에서 보낸 시간 및 개방 통로 진입이 모두 감소하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 개방통로에서 보내는 시간과 빈도가 증가하고 혈중 코스티코스테론의 양이 현저히 감소하였으며, 이러한 효과는 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38 대비 우수함을 확인하였다.
또한, 표 17에서 확인되는 바와 같이, 항생제 유도 스트레스 모델에 생리식염수를 투여한 군(IS)은 정상대조군에 비해 장길이가 줄어들고, MPO 및 염증지표가 증가하였으나, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 장길이가 회복되고, MPO 저해능 및 염증 지표들이 개선되었음을 확인하였다.
실시예 11: 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98의 인지기능 개선 효과
E. coli 분리 LPS(0.5 mg/kg/day)로 마우스의 복강에 5일간 투여한 후 익일부터 유산균을 투여하고 유산균의 인지기능 개선 효능을 물체인지실험, Y미로실험 및 히포캠퍼스에서 BDNF를 면역블롯팅으로 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 18과 같다.
구체적으로, 물체 인지 실험 방법으로서, 내부에서 외부가 보이지 않도록 제작된 상자(40×40×40 cm) 안에 모양과 크기가 같은 두 개의 물체(A, A')를 고정시킨 후 마우스를 상자의 중심에서 출발시켜, 10분간 마우스가 두 물체를 만지는 횟수를 기록하였다. 24시간이 지난 다음 두 개의 물체 중 하나를 새로운 물체로 바꾼 후(A, B) 원래 있던 물체와 새로운 물체를 만지는 횟수를 기록하여 수치화하였다.
또한, Y 미로(Y maze) 실험 방법으로서, 실험 장치는 동일한 3개의 암(arm)(가로 8 cm, 세로 30 cm, 높이 14 cm)으로 구성되어 있으며, 각각은 서로 120°의 일정한 각도로 배치하였다. 마우스를 한쪽 암 끝에 위치시킨 다음 8분 동안 자유롭게 Y 미로를 돌아다니도록 하고, 각 암에 들어간 횟수 및 순서를 측정하여 자발적 변경(spontaneous alteration)(%)을 평가하였다. 변경(alteration)은 3개의 암을 순차적으로 들어가는 경우, 즉 ABC, BCA, CAB 등으로 정의하였다.
% 변경(alteration) = [총 변경 수]/[암(arm)에 들어간 총 횟수-2] x 100
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000018
상기 표 18에서 확인되는 바와 같이, 물체인지 실험 및 Y미로 실험을 통해 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98을 투여한 군은 인지기능이 개선되고 BDNF 발현이 증가함을 확인하였다.
실시예 12: 2종의 유산균 병용 투여에 따른 스트레스 개선 효과
신규한 유산균인 락토바실러스 루테리 NK33, 국내공개특허 제10-2017-0090359호에 개시된 유산균인 비피도박테리움 아돌레센티스( Bifidobacterium adolescentis) IM38(수탁번호: KCCM 11807P) 또는 이들의 혼합물의 스트레스 개선 효과를 비교하였다.
구체적으로, 상기 실험예 1-(1)과 같이 구속 스트레스가 유도된 모델에 생리식염수(IS), 1x10 9 cfu의 락토바실러스 루테리 NK33(NK33), 1x10 9 cfu의 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38(IM38) 또는 상기 유산균을 병용(NK33+IM38)하여 각각 0.5x10 9 cfu씩 투여한 후, 고가플러스미로 시험을 수행하였다. 그 후, 각 군별로 혈액을 채취하여 혈중 코르티코스테론의 양을 측정하였으며, 그 결과는 하기 표 19와 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000019
상기 표 19에서 확인되는 바와 같이, 단독의 유산균 투여군에 비해 병용 투여군의 개방 통로에서 보낸 시간 및 개방 통로 진입이 증가하였고, 혈중 코르티코스테론의 양이 현저히 감소함을 확인하였다.또한, 락토바실러스 루테리 NK33 및 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 혼합물의 스트레스 개선 효과를 상기 NK33 및 IM38의 병용 투여 실험과 동일한 방법으로 비교하였으며, 그 결과는 하기 표 20과 같다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000020
상기 표 20에서 확인되는 바와 같이, 단독의 유산균 투여군에 비해 병용 투여군의 개방 통로에서 보낸 시간 및 개방 통로 진입이 증가하였고, 혈중 코르티코스테론의 양이 현저히 감소함을 확인하였다.
<유산균의 수탁 정보>
본 발명의 발명자들은 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri) NK33을 2017년 8월 4일에 공인기탁기관인 한국미생물보존센터(주소: 대한민국 서울 서대문구 홍제내 2가길 45 유림빌딩)에 특허기탁하여 KCCM12090P의 수탁번호를 부여받았다.
또한, 본 발명의 발명자들은 비피도박테리움 아돌레센티스 ( Bifidobacterium adolescentis) NK98을 2018년 8월 3일에 공인기탁기관인 한국미생물보존센터(주소: 대한민국 서울 서대문구 홍제내 2가길 45 유림빌딩)에 특허기탁 하여 KCCM12297P의 수탁번호를 부여받았다.
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000021
Figure PCTKR2018011607-appb-img-000022

Claims (23)

  1. 분변에서 분리된 유산균.
  2. 제1항에 있어서, 상기 유산균은 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P인 유산균.
  3. 제2항에 있어서, 상기 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P는 서열번호 1의 16S rDNA 염기서열을 포함하는 유산균.
  4. 제2항에 있어서, 상기 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P는 서열번호 38의 16S rDNA 염기서열을 포함하는 유산균.
  5. 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P 또는 이들의 혼합물을 포함하는 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  6. 제5항에 있어서, 상기 락토바실러스 루테리 NK33 KCCM12090P 또는 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98 KCCM 12297P은 이의 생균체, 이의 사균체, 이의 배양물, 이의 파쇄물 또는 이의 추출물인, 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  7. 제5항에 있어서, 상기 뇌신경정신질환은 신경 퇴행성 질환 또는 정신 장애인, 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  8. 제7항에 있어서, 상기 정신 장애는 불안, 우울증, 기분 장애, 불면증, 망상 장애, 강박 장애, 편두통, 스트레스, 기억 장애, 인지 장애 및 주의력 장애를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상인, 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  9. 제7항에 있어서, 상기 신경 퇴행성 질환은 파킨슨 병, 헌팅턴 병, 알츠하이머 병, 근위축성 측삭경화증(amyotrophic lateral sclerosis), 척수소뇌성 운동실조증(Spinocerebellar Atrophy), 뚜렛 증후군(Tourette`s Syndrome), 프리드리히 보행실조(Friedrich`s Ataxia), 마차도-조셉 병(Machado-Joseph`s disease), 치매, 근육긴장이상(Dystonia) 및 진행성 핵상 마비(Progressive Supranuclear Palsy)를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상인, 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  10. 제5항에 있어서, 상기 약학 조성물은 비피도박테리움 아돌레센티스 IM38 ( Bifidobacterium adolescentis IM38) KCCM 11807P를 추가적으로 포함하는, 뇌신경정신질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  11. 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P 또는 이들의 혼합물을 포함하는 뇌신경정신질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품.
  12. 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P 또는 이들의 혼합물을 포함하는 염증 질환의 예방 또는 치료용 약학 조성물.
  13. 락토바실러스 루테리 NK33 ( Lactobacillus reuteri NK33) KCCM12090P, 비피도박테리움 아돌레센티스 NK98( Bifidobacterium adolescentis NK98) KCCM 12297P 또는 이들의 혼합물을 포함하는 염증 질환의 예방 또는 개선용 건강기능 식품.
  14. 장내 미생물의 수준을 측정하는 제제를 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 조성물로서, 상기 장내 미생물은 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria), 젖산균(Lactobacilli), β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상인, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  15. 제14항에 있어서, 상기 조성물은 장내 미생물 중 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상의 수준이 증가하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단하는, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  16. 제15항에 있어서, 상기 장내세균은 클렙시엘라 옥시토카( Klebsiella oxytoca), 대장균( Escherichia coli) 및 모르가넬라 모르가니균( Morganella morganii)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상인, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  17. 제14항에 있어서, 상기 조성물은 장내 미생물 중 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나의 수준이 감소하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단하는, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  18. 제17항에 있어서, 상기 젖산균은 락토바실러스 루테리( Lactobacillus reuteri), 락토바실러스 존소니( Lactobacillus johnsonii), 락토바실러스 람노서스( Lactobacillus rhamnosus)를 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상이고, 상기 비피더스균은 비피도박테리움 애니말리스( Bifidobacterium animalis)인, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  19. 제14항에 있어서, 상기 조성물은 장내 미생물 중 β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상의 수준이 증가하고, 장내 미생물 중 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria) 및 젖산균(Lactobacilli)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나의 수준이 감소하는 경우 뇌신경정신질환으로 진단하는, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  20. 제14항에 있어서, 상기 제제는 장내 미생물의 특이적인 유전자의 수준을 측정할 수 있는 프라이머 또는 프로브; 상기 특이적인 유전자로부터 발현되는 단백질의 수준을 측정할 수 있는 항체 또는 앱타머; 장내 미생물의 16S rDNA의 서열을 정량적으로 분석하기 위한 프라이머 또는 프로브; 또는 장내 미생물의 게놈 DNA 서열을 정량적으로 분석하기 위한 파이로시퀀싱용 제제인, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  21. 제14항에 있어서, 상기 조성물은 리포폴리사카라이드(lipopolysacharide, LPS)의 양을 측정하는 제제를 추가적으로 포함하는, 뇌신경정신질환 진단용 조성물.
  22. 제14항 내지 제21항 중 어느 한 항의 조성물을 포함하는 뇌신경정신질환 진단용 키트.
  23. 뇌신경정신질환이 의심되는 개체에서 분리된 분변으로부터 장내 미생물의 수준을 측정하는 단계; 및 상기 장내 미생물의 수준을 뇌신경정신질환이 아닌 대조군의 분변의 장내 미생물 수준과 비교하는 단계를 포함하는 뇌신경정신질환의 진단을 위한 정보제공 방법으로서, 상기 장내 미생물은 박테로이데테스균(bacteroidetes), 방선균류(actinobacteria), 피르미쿠테스(firmicutes), 비피더스균(Bifidobacteria), 젖산균(Lactobacilli), β-프로테오박테리아(proteobacteria), δ-프로테오박테리아(proteobacteria), γ-프로테오박테리아(proteobacteria), ε-프로테오박테리아(proteobacteria) 및 장내세균(Enterobacteriaceae)을 포함하는 군에서 선택된 어느 하나 이상인, 정보제공 방법.
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