RU2811822C1 - Method of modeling cavity of a long tubular bone for research on bone replacement materials - Google Patents
Method of modeling cavity of a long tubular bone for research on bone replacement materials Download PDFInfo
- Publication number
- RU2811822C1 RU2811822C1 RU2023111586A RU2023111586A RU2811822C1 RU 2811822 C1 RU2811822 C1 RU 2811822C1 RU 2023111586 A RU2023111586 A RU 2023111586A RU 2023111586 A RU2023111586 A RU 2023111586A RU 2811822 C1 RU2811822 C1 RU 2811822C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bone
- cavity
- flap
- periosteum
- tibia
- Prior art date
Links
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 60
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 16
- 239000000316 bone substitute Substances 0.000 title description 7
- 208000006735 Periostitis Diseases 0.000 claims abstract description 13
- 210000003460 periosteum Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 claims abstract description 12
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 claims abstract description 11
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 claims abstract description 10
- 239000000463 material Substances 0.000 claims abstract description 9
- 229910003460 diamond Inorganic materials 0.000 claims abstract description 6
- 239000010432 diamond Substances 0.000 claims abstract description 6
- 238000012360 testing method Methods 0.000 claims abstract description 6
- GHXZTYHSJHQHIJ-UHFFFAOYSA-N Chlorhexidine Chemical compound C=1C=C(Cl)C=CC=1NC(N)=NC(N)=NCCCCCCN=C(N)N=C(N)NC1=CC=C(Cl)C=C1 GHXZTYHSJHQHIJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims abstract description 5
- 229960003260 chlorhexidine Drugs 0.000 claims abstract description 5
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 abstract description 13
- 238000010171 animal model Methods 0.000 abstract description 7
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 abstract description 5
- 230000000278 osteoconductive effect Effects 0.000 abstract description 4
- 230000002138 osteoinductive effect Effects 0.000 abstract description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 3
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 abstract description 2
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 10
- 230000001054 cortical effect Effects 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 5
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 4
- 238000011282 treatment Methods 0.000 description 4
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 3
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 3
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 3
- 239000007943 implant Substances 0.000 description 3
- 210000002414 leg Anatomy 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- 241000700112 Chinchilla Species 0.000 description 2
- 206010052428 Wound Diseases 0.000 description 2
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 210000000544 articulatio talocruralis Anatomy 0.000 description 2
- 239000012620 biological material Substances 0.000 description 2
- 210000004394 hip joint Anatomy 0.000 description 2
- 238000007918 intramuscular administration Methods 0.000 description 2
- 238000010883 osseointegration Methods 0.000 description 2
- IWVCMVBTMGNXQD-PXOLEDIWSA-N oxytetracycline Chemical compound C1=CC=C2[C@](O)(C)[C@H]3[C@H](O)[C@H]4[C@H](N(C)C)C(O)=C(C(N)=O)C(=O)[C@@]4(O)C(O)=C3C(=O)C2=C1O IWVCMVBTMGNXQD-PXOLEDIWSA-N 0.000 description 2
- 229960003924 oxytetracycline dihydrate Drugs 0.000 description 2
- 230000002784 sclerotic effect Effects 0.000 description 2
- 239000008174 sterile solution Substances 0.000 description 2
- 101100008046 Caenorhabditis elegans cut-2 gene Proteins 0.000 description 1
- 206010031252 Osteomyelitis Diseases 0.000 description 1
- 208000037273 Pathologic Processes Diseases 0.000 description 1
- 208000034189 Sclerosis Diseases 0.000 description 1
- 241000191940 Staphylococcus Species 0.000 description 1
- 239000002251 absorbable suture material Substances 0.000 description 1
- 230000001154 acute effect Effects 0.000 description 1
- 229940035676 analgesics Drugs 0.000 description 1
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 1
- 239000000730 antalgic agent Substances 0.000 description 1
- 230000002146 bilateral effect Effects 0.000 description 1
- 230000003115 biocidal effect Effects 0.000 description 1
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 1
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 1
- 239000002639 bone cement Substances 0.000 description 1
- MLYYVTUWGNIJIB-BXKDBHETSA-N cefazolin Chemical compound S1C(C)=NN=C1SCC1=C(C(O)=O)N2C(=O)[C@@H](NC(=O)CN3N=NN=C3)[C@H]2SC1 MLYYVTUWGNIJIB-BXKDBHETSA-N 0.000 description 1
- 229960001139 cefazolin Drugs 0.000 description 1
- 238000002591 computed tomography Methods 0.000 description 1
- 238000012790 confirmation Methods 0.000 description 1
- 238000011161 development Methods 0.000 description 1
- 238000002224 dissection Methods 0.000 description 1
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 1
- 208000013210 hematogenous Diseases 0.000 description 1
- 229910052588 hydroxylapatite Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000001771 impaired effect Effects 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 239000007927 intramuscular injection Substances 0.000 description 1
- 238000010255 intramuscular injection Methods 0.000 description 1
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 1
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 1
- 230000009054 pathological process Effects 0.000 description 1
- XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D pentacalcium;hydroxide;triphosphate Chemical compound [OH-].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O XYJRXVWERLGGKC-UHFFFAOYSA-D 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 238000011321 prophylaxis Methods 0.000 description 1
- 230000001172 regenerating effect Effects 0.000 description 1
- 231100000241 scar Toxicity 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 1
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к клинико-экспериментальной травматологии и ортопедии, и предназначено для изучения остеоиндуктивных и остеокондуктивных свойств костезамещающих материалов различного характера при патологических состояниях костей, сопровождающихся образованием полости.The invention relates to medicine, namely to clinical and experimental traumatology and orthopedics, and is intended to study the osteoinductive and osteoconductive properties of bone replacement materials of various types in pathological bone conditions accompanied by the formation of a cavity.
Проведенный анализ патентной и специальной литературы показал, что аналоги данного изобретения применительно к оценке биологический доступности и остеоинтеграции костезамещающих имплантов при асептических полостных образованиях костной ткани, включающие макроскопические, лабораторные и гистологические данные, отсутствуют.The analysis of patent and specialized literature showed that there are no analogues of this invention in relation to assessing the biological availability and osseointegration of bone replacement implants in aseptic cavity formations of bone tissue, including macroscopic, laboratory and histological data.
Известен способ моделирования хронической гнойной костной полости у лабораторных животных путем формирования дефекта большеберцовой кости при помощи фрезы и обсеменения смесью суточной культуры стафилококка в стерильном физиологическом растворе (Экспериментальная модель хронической гнойной костной полости / О.П. Живцов, В.Н. Митрофанов, С.Н. Бургов, Н.А. Гординская // Современные проблемы науки и образования. - 2015. - №6. - С.232.).There is a known method for modeling a chronic purulent bone cavity in laboratory animals by forming a tibial bone defect using a cutter and inoculating with a mixture of a daily culture of staphylococcus in a sterile physiological solution (Experimental model of a chronic purulent bone cavity / O.P. Zhivtsov, V.N. Mitrofanov, S. N. Burgov, N.A. Gordinskaya // Modern problems of science and education. - 2015. - No. 6. - P. 232.).
Однако известный способ создает гнойную костную полость для изучения вариантов лечения секвестральной формы гематогенного остеомиелита.However, the known method creates a purulent bone cavity to study treatment options for the sequestral form of hematogenous osteomyelitis.
Известен способ моделирования переломо-дефекта длинной трубчатой кости, при котором наносят Z-образный распил длиной 2 мм вдоль оси кости для создания перелома. Формируют два дефекта, выполняя остеотомию проксимального и дистального отломков и отсекая диафизарную костную ткань. Фиксируют переломо-дефект билатеральным аппаратом внешней фиксации. (КОВАЛЕНКО А.Ю. Изучение в эксперименте специфического действия лекарственного препарата на основе нанокристаллического "геля гидроксиапатита" при переломе длинной трубчатой кости. Медицинский журнал. N4 2010, стр. 109-114.)There is a known method for modeling a fracture-defect of a long tubular bone, in which a Z-shaped cut 2 mm long is applied along the axis of the bone to create a fracture. Two defects are formed by performing an osteotomy of the proximal and distal fragments and cutting off the diaphyseal bone tissue. The fracture defect is fixed with a bilateral external fixation device. (KOVALENKO A.Yu. Experimental study of the specific effect of a drug based on nanocrystalline “hydroxyapatite gel” for a fracture of a long tubular bone. Medical journal. N4 2010, pp. 109-114.)
В предложенном способе происходит формирование модели краевых дефектов кости именно для лечения аппаратом внешней фиксации, а не замещения материалом, для которого необходимо формировать полостные дефекты.In the proposed method, a model of marginal bone defects is formed specifically for treatment with an external fixation device, and not replacement with material for which it is necessary to form cavity defects.
Наиболее близким известным способом, является моделированние хронического дефекта костной ткани со склерозированной стенкой (Патент РФ 2578836 С1, 2016). В способе на медиальной поверхности проксимального метаэпифиза большеберцовой кости под острым углом относительно ее поверхности формируют дефект стоматологическим бором с последующим склерозом стенок полости разогретым до 100 градусов инструментом, после чего заполняют полость костным цементом.The closest known method is the modeling of a chronic bone tissue defect with a sclerotic wall (RF Patent 2578836 C1, 2016). In the method, a defect is formed on the medial surface of the proximal metaepiphysis of the tibia at an acute angle relative to its surface with a dental bur, followed by sclerosis of the cavity walls with an instrument heated to 100 degrees, after which the cavity is filled with bone cement.
Однако использовать известный способ для исследования свойств костезамещающих материалов невозможно, так как он предназначен для оценки прорастания рубцовой ткани в склерозированных стенках и исследования регенеративных свойств костной ткани после обработки высокой температурой.However, it is impossible to use the known method to study the properties of bone replacement materials, since it is intended to evaluate the growth of scar tissue in sclerotic walls and study the regenerative properties of bone tissue after treatment with high temperature.
Задачей настоящего изобретения является создание адекватной модели костной полости, заполняемой костезамещаемым материалом для исследования его остеоиндуктивных и остеокондуктивных свойств.The objective of the present invention is to create an adequate model of a bone cavity filled with bone-replaceable material to study its osteoinductive and osteoconductive properties.
Поставленная задача достигается путем трепанации метадиафизарной области длинной трубчатой кости лабораторного кролика, истончения внутренних стенок кортикального слоя кости, последующего заполнения исследуемым материалом, укрытия дефекта и послойного ушивания мягких тканей. Для этого формирование костной полости проводят поэтапно:The goal is achieved by trephination of the metadiaphyseal region of the long tubular bone of a laboratory rabbit, thinning the inner walls of the cortical bone, subsequent filling with the material under study, covering the defect and layer-by-layer suturing of soft tissues. To do this, the formation of the bone cavity is carried out in stages:
1) В стерильных условиях осуществляется линейный разрез длинной до 3 см по медиальной поверхности верхней трети голени. Тупым и острым путем производится диссекция мягких тканей над костью до уровня надкостницы. Надкостница рассекается скальпелем и аккуратно отсепаровывается без ее повреждения, предоставляя доступ к медиальной поверхности верхней трети большеберцовой кости лабораторного животного.1) Under sterile conditions, a linear incision up to 3 cm long is made along the medial surface of the upper third of the leg. Blunt and sharp dissection of soft tissues above the bone to the level of the periosteum is performed. The periosteum is cut with a scalpel and carefully removed without damaging it, providing access to the medial surface of the upper third of the tibia of the laboratory animal.
2) Далее при помощи гравера и стерильной циркулярной пилы с алмазным наконечником (для предотвращения ожога кости), выполняется трепанационное окно квадратной формы, с краями 0,4-0,7 см.2) Next, using an engraver and a sterile circular saw with a diamond tip (to prevent bone burns), a square-shaped trepanation window is made, with edges of 0.4-0.7 cm.
3) Полученный квадратный участок кортикальной кости убирается и замачивается в стерильном растворе водного хлоргексидина.3) The resulting square section of cortical bone is removed and soaked in a sterile solution of aqueous chlorhexidine.
4) При помощи ложки Фолькмана из костномозгового канала удаляется костный мозг, циркулярная насадка меняется на булавовидную, и происходит обработка внутренних стенок костной полости для их истончения.4) Using a Volkmann spoon, the bone marrow is removed from the bone marrow canal, the circular attachment is changed to a club-shaped one, and the internal walls of the bone cavity are processed to thin them.
5) После этого костная полость высушивается стерильными марлевыми тампонами и заполняется исследуемым костезамещающим материалом в необходимом объеме.5) After this, the bone cavity is dried with sterile gauze swabs and filled with the test bone replacement material in the required volume.
6) После имплантации материала на долженствующее место устанавливается предварительно выпиленный квадратный участок кортикальной кости, фиксацию которого осуществляют путем ушивания над ним надкостницы отдельными узловыми швами с помощью рассасывающегося шовного материала.6) After implantation of the material, a pre-cut square section of cortical bone is installed in its proper place, which is fixed by suturing the periosteum over it with separate interrupted sutures using absorbable suture material.
7) Завершается операция ушиванием мягких тканей и кожи отдельными узловыми швами.7) The operation is completed by suturing the soft tissues and skin with separate interrupted sutures.
Способ осуществляют следующим образом.The method is carried out as follows.
Тазовые конечности кролика от области тазобедренного сустава до голеностопного сустава выстригаются от шерсти. Операция выполняется в стерильных условиях под общей внутримышечной анестезией лабораторного животного (кролик вида «Советская шиншилла»). Выполняется линейный разрез кожи в верхней трети голени по передневнутренней поверхности, длиной до 3 см. Тупым и острым путем происходит диссекция мягких тканей над костью до уровня надкостницы. Надкостница рассекается скальпелем в продольном направлении и аккуратно отсепаровывается без ее повреждения, предоставляя доступ к медиальной поверхности верхней трети большеберцовой кости лабораторного животного. Разведенные мягкие ткани удерживаются крючками. Далее, используя гравер с насадкой в виде циркулярного диска с алмазным наконечником, выполняют поступательные пилящие движения по кортикальному слою большеберцовой кости, формируя трепанационное окно квадратной формы с размером краев от 0,4 до 0,7 см. Выкроенный костный фрагмент удаляется при помощи инструмента и сохраняется в контейнере со стерильным раствором водного хлоргексидина. После этого, происходит очищение костной полости от костного мозга с помощью ложки Фолькмана. Далее, на электроинструменте меняется насадка на булавовидную и происходит обработка внутренних стенок сформированной костной полости для их истончения. После подготовки костной полости в нее производится имплантация исследуемого материала до полного заполнения сформированной полости. После чего окно дефекта закрывается, ранее оставленным в растворе, костным лоскутом. Лоскут фиксируется путем плотного ушивания над ним надкостницы узловыми швами. И завершается операция послойным ушиванием мягких тканей и обработкой раны раствором терамицина (окситетрациклина дигидрата).The pelvic limbs of the rabbit from the hip joint to the ankle joint are trimmed of hair. The operation is performed under sterile conditions under general intramuscular anesthesia of a laboratory animal (rabbit of the “Soviet chinchilla” species). A linear skin incision is made in the upper third of the leg along the anterior internal surface, up to 3 cm long. The soft tissue is dissected over the bone to the level of the periosteum using a blunt and sharp method. The periosteum is cut longitudinally with a scalpel and carefully separated without damaging it, providing access to the medial surface of the upper third of the tibia of the laboratory animal. The separated soft tissues are held with hooks. Next, using an engraver with an attachment in the form of a circular disk with a diamond tip, forward sawing movements are performed along the cortical layer of the tibia, forming a square-shaped trepanation window with an edge size of 0.4 to 0.7 cm. The cut out bone fragment is removed using an instrument and stored in a container with a sterile aqueous chlorhexidine solution. After this, the bone cavity is cleansed from the bone marrow using a Volkmann spoon. Next, on the power tool, the nozzle is changed to a club-shaped one and the internal walls of the formed bone cavity are processed to thin them. After preparing the bone cavity, the test material is implanted into it until the formed cavity is completely filled. After which the window of the defect is closed with a bone flap previously left in the solution. The flap is fixed by tightly suturing the periosteum over it with interrupted sutures. And the operation is completed with layer-by-layer suturing of the soft tissues and treatment of the wound with a solution of teramycin (oxytetracycline dihydrate).
В послеоперационном периоде все животные получают анальгетики (флексопрофен). Периоперационная антибиотикопрофилактика проводится в течение суток путем последующих двух внутримышечных инъекций цефазолина с интервалом в 8 часов.In the postoperative period, all animals receive analgesics (flexoprofen). Perioperative antibiotic prophylaxis is carried out during the day by subsequent two intramuscular injections of cefazolin with an interval of 8 hours.
Для подтверждения адекватности полученной модели и исследования степени остеоинтеграции импланта, животным на 28 сутки проводится компьютерная томография тазовых конечностей. Для морфологического исследования животные выводились из опыта каждый месяц. Для лабораторного исследования выполнялся трехкратный забор крови (7-е, 14-е и 28-е сутки) путем пункции ушной вены.To confirm the adequacy of the resulting model and study the degree of osseointegration of the implant, the animals underwent computed tomography of the pelvic limbs on the 28th day. For morphological studies, animals were removed from the experiment every month. For laboratory testing, blood was taken three times (on the 7th, 14th and 28th day) by puncture of the ear vein.
В результате эксперимента опороспособность тазовых конечностей не была нарушена, кролики передвигались самостоятельно без видимых ограничений. Клинически у животных в течение первых 7 суток отклонений в опороспособности и свободе движений не наблюдалось.As a result of the experiment, the support ability of the pelvic limbs was not impaired; the rabbits moved independently without visible restrictions. Clinically, no deviations in support ability and freedom of movement were observed in the animals during the first 7 days.
У 10 прооперированных животных по предлагаемому способу отработана модель создания костной полости с последующим ее замещением исследуемым костезамещающим материалом.In 10 animals operated on using the proposed method, a model was developed for creating a bone cavity with its subsequent replacement with the studied bone replacement material.
Таким образом, в данной модели учтены основные аспекты развития патологического процесса в кости и организме животного в целом с рентгенологическим, макроскопическим, морфогистологическим и лабораторным подтверждением.Thus, this model takes into account the main aspects of the development of the pathological process in the bone and the animal’s body as a whole with x-ray, macroscopic, morphohistological and laboratory confirmation.
Пример выполнения способа.An example of the method.
Кролик К №1 (протокол эксперимента от 17.01.2023 г.) Тазовые конечности кролика от области тазобедренного сустава до голеностопного сустава выстригаются от шерсти. Операция выполняется в стерильных условиях под общей внутримышечной анестезией лабораторного животного (кролик вида «Советская шиншилла»).Rabbit K No. 1 (experiment protocol dated January 17, 2023) The pelvic limbs of the rabbit from the hip joint to the ankle joint are trimmed of hair. The operation is performed under sterile conditions under general intramuscular anesthesia of a laboratory animal (rabbit of the “Soviet chinchilla” species).
На фото из операционной по созданию модели формирования костной полости для исследования костезамещающих материалов у лабораторного кролика К №1 представлены этапы операции Фиг. 1-5.The photo from the operating room to create a model of bone cavity formation for the study of bone replacement materials in laboratory rabbit K No. 1 shows the stages of the operation. Fig. 1-5.
Выполняется линейный разрез кожи в верхней трети голени по передневнутренней поверхности, длинной до 3 см. Тупым и острым путем происходит диссекция мягких тканей над костью до уровня надкостницы. Надкостница рассекается скальпелем в продольном направлении и аккуратно отсепаровывается без ее повреждения, предоставляя доступ к медиальной поверхности верхней трети большеберцовой кости лабораторного животного (Фиг. 1 - Показан доступ к медиальной поверхности проксимального метафиза большеберцовой кости).A linear skin incision is made in the upper third of the leg along the anterior internal surface, up to 3 cm long. The soft tissue is dissected over the bone to the level of the periosteum using a blunt and sharp method. The periosteum is dissected with a scalpel in the longitudinal direction and carefully separated without damaging it, providing access to the medial surface of the upper third of the tibia of a laboratory animal (Fig. 1 - Access to the medial surface of the proximal metaphysis of the tibia is shown).
Далее, используя гравер с насадкой в виде циркулярного диска с алмазным наконечником, выполняют поступательные пилящие движения по кортикальному слою большеберцовой кости, формируя трепанационное окно квадратной формы с размером краев от 0,4 до 0,7 см. (Фиг. 2 - Показано выполнение при помощи циркулярной пилы с алмазным наконечником (для предотвращения ожога кости) выкраивание «окна» в кортикальном слое проксимального метафиза большеберцовой кости).Next, using an engraver with an attachment in the form of a circular disk with a diamond tip, perform translational sawing movements along the cortical layer of the tibia, forming a square-shaped trepanation window with an edge size of 0.4 to 0.7 cm. (Fig. 2 - Shows execution with using a circular saw with a diamond tip (to prevent bone burns) cutting out a “window” in the cortical layer of the proximal metaphysis of the tibia).
Выкроенный костный фрагмент удаляется при помощи инструмента и сохраняется в контейнере со стерильным раствором водного хлоргексидина. (Фиг. 3А - Выкроенный костный лоскут в области проксимального метафиза большеберцовой кости; Б - Вид сформированной костной полости).The cut out bone fragment is removed using an instrument and stored in a container with a sterile solution of aqueous chlorhexidine. (Fig. 3A - Cut out bone flap in the area of the proximal metaphysis of the tibia; B - View of the formed bone cavity).
Производится очищение костной полости от костного мозга с помощью ложки Фолькмана. Далее, на электроинструменте меняется насадка на булавовидную и проводится обработка внутренних стенок сформированной костной полости для их истончения. (Фиг. 4 - Показано выполнение обработки внутренних поверхностей костной полости с помощью электроинструмента с булавовидным наконечником).The bone cavity is cleansed from bone marrow using a Volkmann spoon. Next, on the power tool, the nozzle is changed to a club-shaped one and the internal walls of the formed bone cavity are processed to thin them. (Fig. 4 - Shows the processing of the internal surfaces of the bone cavity using a power tool with a club-shaped tip).
После очищения костная полость высушивается стерильными марлевыми тампонами и производится имплантация, исследуемым биоматериалом «Лиопласт» в костную полость до полного ее заполнения (0,5 кубических см), по завершении окно дефекта закрывается, ранее оставленным в растворе, костным лоскутом. (Фиг. 5 - Показано заполнение сформированной костной полости костезамещающим имплантом).After cleansing, the bone cavity is dried with sterile gauze swabs and the test biomaterial “Lioplast” is implanted into the bone cavity until it is completely filled (0.5 cubic cm); upon completion, the defect window is closed with a bone flap previously left in the solution. (Fig. 5 - Filling of the formed bone cavity with a bone replacement implant is shown).
Лоскут был зафиксирован путем плотного ушивания над ним надкостницы узловыми швами. Операция завершается послойным ушиванием мягких тканей после чего рана обрабатывается раствором терамицина (окситетрациклина дигидрата). В дальнейшем были проведены исследования остеоиндуктивных и остеокондуктивных свойств биоматериала «Лиопласт».The flap was fixed by tightly suturing the periosteum over it with interrupted sutures. The operation is completed by layer-by-layer suturing of the soft tissues, after which the wound is treated with a solution of teramycin (oxytetracycline dihydrate). Subsequently, studies were carried out on the osteoinductive and osteoconductive properties of the Lioplast biomaterial.
Таким образом, предлагаемый способ моделирования полостного образования трубчатой кости довольно прост в исполнении и позволяет проводить исследования интегративных свойств костезамещающих материалов, включающие макроскопические, лабораторные и гистологические исследования.Thus, the proposed method for modeling the cavity formation of tubular bone is quite simple to implement and allows for studies of the integrative properties of bone replacement materials, including macroscopic, laboratory and histological studies.
Claims (1)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2811822C1 true RU2811822C1 (en) | 2024-01-17 |
Family
ID=
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| UA60512U (en) * | 2010-11-10 | 2011-06-25 | Государственное Учреждение "Институт Генетической И Регенеративной Медицины Академии Медицинских Наук Украины" | Simulation method for mouse bone tissue injury |
| CN108451581A (en) * | 2018-04-04 | 2018-08-28 | 中国人民解放军总医院 | A kind of osteotomy protective device |
| RU2697790C1 (en) * | 2018-10-16 | 2019-08-19 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии имени Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | Method for simulating bone tissue defects for studying soft tissues refixation to porous titanium implants using additive technologies |
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| UA60512U (en) * | 2010-11-10 | 2011-06-25 | Государственное Учреждение "Институт Генетической И Регенеративной Медицины Академии Медицинских Наук Украины" | Simulation method for mouse bone tissue injury |
| CN108451581A (en) * | 2018-04-04 | 2018-08-28 | 中国人民解放军总医院 | A kind of osteotomy protective device |
| RU2697790C1 (en) * | 2018-10-16 | 2019-08-19 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Российский ордена Трудового Красного Знамени научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии имени Р.Р. Вредена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "РНИИТО им. Р.Р. Вредена" Минздрава России) | Method for simulating bone tissue defects for studying soft tissues refixation to porous titanium implants using additive technologies |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| АНАНЬЕВА А.Ш. и др. Моделирование повреждений костных структур в экспериментах на животных. Инновационная медицина Кубани. 2021;(1):47-55. LI Y. et al. Bone defect animal models for testing efficacy of bone substitute biomaterials. J Orthop Translat. 2015 Jun 16;3(3):95-104. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Laubach et al. | Clinical translation of a patient-specific scaffold-guided bone regeneration concept in four cases with large long bone defects | |
| RU2811822C1 (en) | Method of modeling cavity of a long tubular bone for research on bone replacement materials | |
| RU2578839C1 (en) | Method for elimination of metacarpal bone defect with loss of distal portion and replacement of fetlock joint | |
| RU2345423C1 (en) | Simulation method for femoral bone defect | |
| RU2747694C1 (en) | Method of skin and bone reconstruction of the finger of the hand and the guide for its implementation | |
| Moissonnier et al. | Cranioplasty after en bloc resection of calvarial chondroma rodens in two dogs | |
| Böhmer | Small mammal dental surgery | |
| RU2845121C1 (en) | Method for replacing a diaphyseal bone defect of a long bone with an individual double-loop liner | |
| RU2796438C1 (en) | Method for distraction lengthening of the stump of the metacarpal bone | |
| RU2717217C1 (en) | Method for simulating and treating an open fracture of a tubular bone in an experiment | |
| SU1725864A1 (en) | Method for surgically treating hip joint osteochondropathy | |
| RU2250756C2 (en) | Method for treating destructive forms of chronic periodontitis | |
| RU2225212C2 (en) | Method for stimulating distraction regenerate | |
| RU2807898C1 (en) | Method of replacing clavila defect | |
| RU2802431C1 (en) | Method of simulation of posttraumatic compression bone defect | |
| RU2798905C1 (en) | Method of treating bone marrow osteomyelitic cavity | |
| RU2737586C1 (en) | Method of intra-sinus superaxillary elimination of maxillary sinus upper wall defects | |
| RU2827452C1 (en) | Method for elimination of acquired vertical deformations of alveolar process of jaws | |
| Silva et al. | Novel model of mono cortical bone defect in rat mandible: an interesting tool for osseous investigations | |
| RU2761755C1 (en) | Method for transantral reconstruction of the lower orbital wall in children | |
| RU2791230C1 (en) | Method for modeling osteomyelitis of the femoral bone in small laboratory animals | |
| SU1607804A1 (en) | Method of recovering floor of orbit | |
| Bozo et al. | Experimental and pilot clinical study of different tissue‐engineered bone grafts based on calcium phosphate, mesenchymal stem cells, and adipose‐derived stromal vascular fraction | |
| RU2758556C1 (en) | Method for modeling a bone tissue defect for studying osseointegration of osteoplastic material and regeneration of cancellous bone tissue in an experiment on rabbits | |
| RU2822703C1 (en) | Method for single-stage surgical and orthopedic complex treatment of patients with facial bone tumor |