RU2421823C1 - Method of simulating tubercular osteitis of various severities - Google Patents
Method of simulating tubercular osteitis of various severities Download PDFInfo
- Publication number
- RU2421823C1 RU2421823C1 RU2009140048/14A RU2009140048A RU2421823C1 RU 2421823 C1 RU2421823 C1 RU 2421823C1 RU 2009140048/14 A RU2009140048/14 A RU 2009140048/14A RU 2009140048 A RU2009140048 A RU 2009140048A RU 2421823 C1 RU2421823 C1 RU 2421823C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bone
- osteitis
- tubercular
- tuberculosis
- culture
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к фтизиатрии, и может быть использовано для разработки способов хирургического лечения туберкулезного остита различной степени тяжести.The invention relates to medicine, namely to phthisiology, and can be used to develop methods for the surgical treatment of tuberculous osteitis of varying severity.
Появление новых хирургических технологий и необходимость дифференцированного подхода к выбору хирургической тактики в лечении туберкулеза костей и суставов определяет необходимость получения модели туберкулезного остита различной тяжести течения для продолжения экспериментального поиска новых методик оперативного лечения.The advent of new surgical technologies and the need for a differentiated approach to the choice of surgical tactics in the treatment of tuberculosis of bones and joints determines the need to obtain a model of tuberculous osteitis of varying severity to continue the experimental search for new surgical treatment methods.
Применяемый в настоящее время способ моделирования туберкулезного остита вблизи коленного сустава в экспериментах на кроликах был разработан Э.Н.Беллендиром в экспериментальной лаборатории Ленинградского института хирургии туберкулеза в 1967 г. (Беллендир Э.Н. Экспериментальная модель туберкулезного остита вблизи коленного сустава. // Патогенез и саногенез очаговых и деструктивных форм туберкулеза. - М., 1967). При использовании данного метода осуществляется доступ к внутреннему мыщелку бедренной кости. Освобождается костная площадка в области эпиметафиза бедра. Формируют отверстие диаметром 1 мм, длинной 5 мм, через которое на кончике иглы вносится сухая культура микобактерий туберкулеза (МБТ) в дозе 0,5 мг. Рана обрабатывается противотуберкулезным препаратом в порошкообразной форме. Отверстие заполняется стоматологическим цементом, накладывается послойный шов раны.The currently used method for modeling tuberculous osteitis near the knee joint in experiments on rabbits was developed by E.N. Blendir in the experimental laboratory of the Leningrad Institute of Tuberculosis Surgery in 1967 (Blendir E.N. Experimental model of tuberculous osteitis near the knee joint. // Pathogenesis and sanogenesis of focal and destructive forms of tuberculosis. - M., 1967). Using this method, access to the internal condyle of the femur is provided. The bone area in the hip epimetaphysis is released. A hole is formed with a diameter of 1 mm, a length of 5 mm, through which a dry culture of Mycobacterium tuberculosis (MBT) is introduced at the tip of the needle at a dose of 0.5 mg. The wound is treated with an anti-TB drug in powder form. The hole is filled with dental cement, a layered wound suture is applied.
Недостатки описанного способа моделирования - не позволяет использовать различные заражающие дозы; нет возможности получить различную тяжесть течения туберкулезного процесса; существует риск инфицирования культурой МБТ операционной раны на этапе ее внесения в сформированный костный дефект; есть опасность миграции агента заражения с током крови из костной ткани, что может изменить локализацию очага и течение туберкулезного процесса, а также повышает риск послеоперационных осложнений (абсцессы, свищи); длительные сроки развития туберкулезного очага.The disadvantages of the described modeling method - does not allow the use of various infectious doses; there is no way to get a different severity of the course of the tuberculosis process; there is a risk of infection of the surgical wound by the MBT culture at the stage of its introduction into the formed bone defect; there is a risk of migration of the infection agent with blood flow from the bone tissue, which can change the localization of the focus and the course of the tuberculosis process, and also increases the risk of postoperative complications (abscesses, fistulas); long periods of development of the tuberculous focus.
Задачей предлагаемого способа является создание модели костного туберкулезного поражения различной тяжести течения.The objective of the proposed method is to create a model of bone tuberculosis lesions of varying severity.
Поставленная задача решается тем, что перфорируют кортикальный слой вблизи суставной капсулы коленного сустава, формируют канал в губчатом веществе дистального эпифиза бедренной кости, куда при помощи троакара вводят фрагмент гемостатической губки с жидкой культурой микобактерий туберкулеза в концентрации от 1×103 до 1×108 клеток/µл, а затем аутокостным трансплантатом восполняют костный дефект.The problem is solved by perforating the cortical layer near the joint capsule of the knee joint, forming a channel in the spongy substance of the distal pineal gland of the femur, where a fragment of a hemostatic sponge with a liquid culture of mycobacterium tuberculosis in a concentration of 1 × 10 3 to 1 × 10 8 is introduced using a trocar cells / µl, and then the bone defect is filled with an autologous transplant.
Способ поясняется чертежами, где:The method is illustrated by drawings, where:
Фиг.1:Figure 1:
1. Гемостатическая губка, пропитанная жидкой культурой МБТ.1. Hemostatic sponge soaked in liquid culture of the Office.
2. Аутокостный трансплантат.2. Autologous graft.
3. Мандрен троакара.3. Mandren trocar.
4. Троакар.4. The trocar.
Фиг.2:Figure 2:
5. Дистальный эпиметафиз бедренной кости.5. Distal epimetaphysis of the femur.
1. Гемостатическая губка, пропитанная жидкой культурой МБТ.1. Hemostatic sponge soaked in liquid culture of the Office.
2. Аутокостный трансплантат.2. Autologous graft.
6. Цементная пломба.6. Cement filling.
Фиг.3:Figure 3:
7. Коленный сустав кролика.7. Knee joint of a rabbit.
8. Туберкулезный очаг в дистальном эпиметафизе бедренной кости.8. Tuberculous lesion in the distal epimetaphysis of the femur.
6. Цементная пломба.6. Cement filling.
Фиг.4:Figure 4:
7. Коленный сустав кролика.7. Knee joint of a rabbit.
8. Туберкулезный очаг в дистальном эпиметафизе бедренной кости.8. Tuberculous lesion in the distal epimetaphysis of the femur.
6. Цементная пломба.6. Cement filling.
9. Деформация контура медиального мыщелка.9. Deformation of the contour of the medial condyle.
Заявляемый способ позволяет:The inventive method allows you to:
1. Создавать модель костного туберкулезного поражения различной тяжести течения.1. Create a model of bone tuberculosis lesions of varying severity.
2. Ускорить скорость развития туберкулезного процесса.2. Speed up the development of the tuberculosis process.
3. Получить туберкулезный остит путем более точного интраоссального введения гемостатической губки, пропитанной суспензией культуры МБТ с заданной инфицирующей дозой.3. Obtain tuberculous osteitis by more accurate intraossal administration of a hemostatic sponge soaked in a suspension of MBT culture with a given infectious dose.
4. Избежать миграции инфекта с помощью его фиксации аутокостным трансплантатом.4. Avoid migration of the infection by fixing it with an autologous transplant.
Способ осуществляется следующим образом.The method is as follows.
С целью общей анестезии и седации перед оперативным вмешательством животному внутримышечно вводится раствор Рометара 2% (Xylazinum - препарат для использования в ветеринарии) в объеме 1,0-1,5 мл. Положение кролика на спине. Конечности колика фиксируются на станке в максимально вытянутом положении.For the purpose of general anesthesia and sedation, before surgery, the animal is injected intramuscularly with a solution of Rometar 2% (Xylazinum - a drug for use in veterinary medicine) in a volume of 1.0-1.5 ml. The position of the rabbit on the back. The limbs of colic are fixed on the machine in the most extended position.
1-й Этап - подготовка и осуществление хирургического доступа. Кожный покров в области коленного сустава выстригается и обрабатывается раствором йода. Разрез кожи и подкожной клетчатки длиной 5 см производится по передне-медиальной поверхности нижней трети правого бедра, кпереди и параллельно боковой связке. Мягкие ткани рассекаются у переднего края боковой связки до кости и отодвигаются распатором вместе с надкостницей книзу и медиально.Stage 1 - preparation and implementation of surgical access. The skin in the area of the knee joint is trimmed and treated with a solution of iodine. An incision of the skin and
2-й Этап - формирование канала в бедренной кости. Канал диаметром 2 мм и длиной 5 мм высверливался в области освободившейся костной площадки. Кровотечение из губчатой кости останавливается тампонадой канала турундой с перекисью водорода.Stage 2 - channel formation in the femur. A channel with a diameter of 2 mm and a length of 5 mm was drilled in the area of the released bone site. Bleeding from the cancellous bone is stopped by tamponade of the channel with turunda with hydrogen peroxide.
3-й Этап - заготовка аутотрансплантата. На 1,5-2 см проксимальнее области заражения из бедренной кости выкраивается кортикальный костный трансплантат 4×2×2 мм. Ему придается цилиндрическая форма.Stage 3 - autograft harvesting. 1.5-2 cm proximal to the area of infection from the femur
4-й Этап - интраоссальное введение инфекта. Приготавливается суспензия культуры МБТ заданной концентрации (1×103 или 1×108 клеток/µл). Необходимая доза культуры вносится в гемостатическую губку размером 2×2 мм. Полученный инфекционный агент устанавливается в троакар, заряженный аутокостным трансплантатом (фиг.1). Троакар устанавливается в сформированный костный канал. После чего гемостатическая губка с трансплантатом выталкивается мандреном до дна костного дефекта.Stage 4 - intraossal introduction of infect. A suspension of MBT culture is prepared at a given concentration (1 × 10 3 or 1 × 10 8 cells / μl). The required dose of culture is introduced into a
5-й Этап - пломбирование. Наружная поверхность установленного трансплантата и прилегающие к нему края восполненного костного дефекта изолируются от параоссальных мягких тканей цементной пломбой (фиг.2.). На рану накладывается послойный шов.5th Stage - filling. The outer surface of the installed graft and the adjacent edges of the replenished bone defect are isolated from the paraossal soft tissues with a cement filling (Fig. 2). A layered suture is applied to the wound.
Данная техника заражения позволяет формировать туберкулезный очаг у подопытных животных через 2-5 недель. Сроки возникновения и тяжесть течения туберкулезного процесса зависят от инфицирующей дозы, что позволяет разрабатывать хирургические методы лечения туберкулеза костей и суставов различных форм.This infection technique allows the formation of a tuberculosis focus in experimental animals after 2-5 weeks. The timing and severity of the tuberculosis process depend on the infectious dose, which allows the development of surgical methods for treating tuberculosis of bones and joints of various forms.
Пример №1Example No. 1
Кролик №4 породы шиншилла, пол - самец, исходная масса - 2950 г, температура - 39°C.Rabbit No. 4 of chinchilla breed, gender - male, initial weight - 2950 g, temperature - 39 ° C.
Внутримышечно введен 1,0 мл раствора Рометара 2%. Кролик зафиксирован в положении на спине. Конечности кролика фиксируются на станке в максимально вытянутом положении. Произведен разрез кожи и подкожной клетчатки длиной 5 см по передне-медиальной поверхности нижней трети правого бедра, кпереди и параллельно боковой связке. Мягкие ткани рассечены у переднего края боковой связки до кости и отодвинуты распатором вместе с надкостницей книзу и медиально. В области освободившейся костной площадки высверлен канал диаметром 2 мм и длиной 5 мм. Кровотечение из губчатой кости остановлено тампонадой канала турундой с перекисью водорода. На 1,5-2 см проксимальнее области заражения из бедренной кости выкраивается кортикальный костный трансплантат 4×2×2 мм. Ему придана цилиндрическая форма. Затем культура МБТ в дозе 1×103 клеток/µл погружается в сформированный костный канал с помощью троакара. Канал восполнен костным аутотрансплантатом. Область заражения изолирована от мягких тканей цементной пломбой при тщательном гемостазе. Рана послойно наглухо ушита кетгутом.Intramuscularly introduced 1.0 ml of
В раннем послеоперационном периоде животное ежедневно наблюдалось, производился осмотр животного, взвешивание, определение амплитуды движений в суставе. В дальнейшем клинический осмотр осуществлялся 1-3 раза в неделю. При осмотре животного отмечали его активность, позу и характер передвижения. Оперированный сустав пальпировали, сравнивали с контрлатеральным. Оценивали состояние кожных покровов, мягких тканей, окружающих сустав, определяли объем подвижности в суставе.In the early postoperative period, the animal was observed daily, the animal was examined, weighed, and the range of motion in the joint was determined. Further clinical examination was carried out 1-3 times a week. When examining the animal, its activity, posture and nature of movement were noted. The operated joint was palpated, compared with contralateral. Assessed the condition of the skin, soft tissues surrounding the joint, determined the amount of mobility in the joint.
Было отмечено, что животное после оперативного вмешательства было малоактивно. К 9 суткам масса кролика незначительно снизилась. Наблюдалась инфильтрация мягких тканей в области послеоперационной раны. В последующем отмечался регресс воспалительных изменений в области вмешательства, увеличивалась амплитуда движений в суставе. При дальнейшем наблюдении было отмечено, что воспалительные явления и заживление операционной раны сопровождались улучшением общего состояния животного. Кролик был активен, набрал исходную массу. К 30-м суткам объем движений постепенно уменьшался.It was noted that the animal after surgery was inactive. By 9 days, the weight of the rabbit slightly decreased. Soft tissue infiltration was observed in the area of the postoperative wound. Subsequently, a regression of inflammatory changes in the area of intervention was noted, the amplitude of movements in the joint increased. Upon further observation, it was noted that inflammation and healing of the surgical wound were accompanied by an improvement in the general condition of the animal. The rabbit was active, gained initial mass. By the 30th day, the range of motion gradually decreased.
Животное выведено из опыта на сроке 30 суток. Макроскопическая оценка костного препарата включала:The animal was withdrawn from the experiment for a period of 30 days. Macroscopic evaluation of the bone preparation included:
1) состояние миелоидного костного мозга дистального эпифиза бедренной кости - без дегенеративно-дистрофических изменений;1) the state of the myeloid bone marrow of the distal pineal gland of the femur - without degenerative-dystrophic changes;
2) состояние суставной поверхности бедренной кости - выявлено истончение суставного хряща. Поверхность хряща имела синюшный оттенок.2) the state of the articular surface of the femur - revealed a thinning of the articular cartilage. The surface of the cartilage had a bluish tint.
Визуальный осмотр других органов и систем не выявил признаков туберкулезного поражения. Наличие очага деструкции размером около 1,0 мм отмечалось в месте введения культуры к 1-му месяцу после заражения, что подтверждено рентгенологически.Visual examination of other organs and systems did not reveal signs of tuberculous lesion. The presence of a destruction site about 1.0 mm in size was observed at the site of culture injection by the 1st month after infection, which was confirmed by x-ray.
Гистологическое исследование показало, что в медиальном мыщелке дистального эпифиза бедренной кости определяется туберкулезный очаг диаметром 2,0 мм, содержащий казеозно-некротические массы. Отмечаются дегенеративно-дистрофические признаки в виде жировой дегенерации окружающей спонгиозной кости. Суставной хрящ фиброзно изменен в области медиального мыщелка, видны коллагеновые волокна и дистрофические изменения.Histological examination showed that in the medial condyle of the distal pineal gland of the femur, a tuberculous lesion with a diameter of 2.0 mm was determined, containing caseous-necrotic masses. Degenerative-dystrophic signs in the form of fatty degeneration of the surrounding spongy bone are noted. The articular cartilage is fibrously changed in the medial condyle, collagen fibers and degenerative changes are visible.
Пример №2Example No. 2
Кролик №5 породы шиншилла, пол - самец, исходная масса - 3100 г, температура - 38,5°C.Rabbit No. 5 of chinchilla breed, gender - male, initial weight - 3100 g, temperature - 38.5 ° C.
Животное было заражено предлагаемым способом. Заражающая доза составила 1×108 клеток/µл.The animal was infected by the proposed method. The infectious dose was 1 × 10 8 cells / µl.
Аналогично описанному примеру проводился ежедневный детальный клинический осмотр животного. Кролик взвешивался, оценивалась амплитуда движений в суставе. Наблюдения показали снижение активности в раннем послеоперационном периоде, снижение аппетита. Течение раневого процесса было сходным с предыдущим примером. На 14 сутки отмечалось уменьшение объема движений в оперированном суставе.Similarly to the described example, a daily detailed clinical examination of the animal was carried out. The rabbit was weighed, the range of motion in the joint was estimated. Observations showed a decrease in activity in the early postoperative period, a decrease in appetite. The course of the wound process was similar to the previous example. On the 14th day, a decrease in the range of movements in the operated joint was noted.
После эвтаназии животного (30 суток после операции) при макроскопической оценке костного препарата выявлено: контур дистального эпифиза деформирован за счет выбухания по медиальной поверхности внутреннего мыщелка; выраженные дегенеративно-дистрофические изменения миелоидного костного мозга в дистальном эпифизе бедренной кости; суставной хрящ повсеместно истончен, в области медиального мыщелка определяются участки отсутствия хрящевого покрова. Очаг деструкции имел размеры около 3,5 мм. Туберкулезных изменений в других органах и системах не обнаружено.After euthanasia of the animal (30 days after surgery), a macroscopic evaluation of the bone preparation revealed: the contour of the distal pineal gland is deformed due to bulging along the medial surface of the internal condyle; pronounced degenerative-dystrophic changes in the myeloid bone marrow in the distal pineal gland of the femur; articular cartilage is thinned everywhere, in the area of the medial condyle, areas of the absence of cartilage cover are determined. The destruction center had dimensions of about 3.5 mm. No tuberculous changes in other organs and systems were detected.
Гистологически выявлен костно-деструктивный очаг размером 4 мм с казеозно-некротическими массами, значительные дегенеративно-дистрофические изменения в виде остеопороза и жировой дегенерации обоих мыщелков, наиболее выраженные в области заражения. Хрящевой покров истончен, местами замещен соединительной тканью. В области медиального мыщелка участки отслоения и отсутствия суставного хряща.Histologically revealed a bone-
Таким образом, предлагаемый способ позволяет получить костно-деструктивные очаги туберкулезного воспаления разной степени выраженности на одном сроке после заражения. Это дает возможность разрабатывать тактику хирургического лечения туберкулеза костей и суставов на разных этапах его развития.Thus, the proposed method allows to obtain bone-destructive foci of tuberculous inflammation of varying severity at one time after infection. This makes it possible to develop tactics for the surgical treatment of tuberculosis of bones and joints at different stages of its development.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009140048/14A RU2421823C1 (en) | 2009-10-29 | 2009-10-29 | Method of simulating tubercular osteitis of various severities |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009140048/14A RU2421823C1 (en) | 2009-10-29 | 2009-10-29 | Method of simulating tubercular osteitis of various severities |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2009140048A RU2009140048A (en) | 2011-05-10 |
| RU2421823C1 true RU2421823C1 (en) | 2011-06-20 |
Family
ID=44732196
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2009140048/14A RU2421823C1 (en) | 2009-10-29 | 2009-10-29 | Method of simulating tubercular osteitis of various severities |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2421823C1 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2600926C2 (en) * | 2015-04-01 | 2016-10-27 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for modeling tuberculosis of female genital organs |
| RU2633084C2 (en) * | 2016-01-20 | 2017-10-11 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского" | Method for bone substitutes study |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2265891C2 (en) * | 2003-04-02 | 2005-12-10 | Государственное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии МЗ РФ" | Method for modeling tuberculous omarthritis |
| CN101008029A (en) * | 2006-01-27 | 2007-08-01 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | Antitubercular drug screening model using tubercle bacillus isocitrate lyase as target |
| JP4070216B2 (en) * | 1999-01-14 | 2008-04-02 | 独立行政法人科学技術振興機構 | Bacterial cell component unresponsive model mouse |
-
2009
- 2009-10-29 RU RU2009140048/14A patent/RU2421823C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| JP4070216B2 (en) * | 1999-01-14 | 2008-04-02 | 独立行政法人科学技術振興機構 | Bacterial cell component unresponsive model mouse |
| RU2265891C2 (en) * | 2003-04-02 | 2005-12-10 | Государственное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии МЗ РФ" | Method for modeling tuberculous omarthritis |
| CN101008029A (en) * | 2006-01-27 | 2007-08-01 | 中国医学科学院医药生物技术研究所 | Antitubercular drug screening model using tubercle bacillus isocitrate lyase as target |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| LI W.L., et al. Establishment of the guinea pig model of synovial tuberculosis of knee joint by mycobacterium tuberculosis H37Rv infection. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2006 Sep; 37(5):804-6, 809. * |
| БЕЛЛЕНДИР Э.Н. Экспериментальная модель туберкулезного остита вблизи коленного сустава. Патогенез и саногенез очаговых и деструктивных форм туберкулеза. - М., 1967, с.57. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2600926C2 (en) * | 2015-04-01 | 2016-10-27 | федеральное государственное бюджетное учреждение "Санкт-Петербургский научно-исследовательский институт фтизиопульмонологии" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for modeling tuberculosis of female genital organs |
| RU2633084C2 (en) * | 2016-01-20 | 2017-10-11 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского" | Method for bone substitutes study |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2009140048A (en) | 2011-05-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Adams Jr et al. | Arthroscopic particulated juvenile cartilage allograft transplantation for the treatment of osteochondral lesions of the talus | |
| Zhao et al. | Using 3D printing-assisted shaping titanium cages and Masquelet techniques to reconstruct calcaneal osteomyelitis complicated by extensive soft tissue and uncontrolled defects | |
| RU2421823C1 (en) | Method of simulating tubercular osteitis of various severities | |
| Kamimura et al. | Repair of a chronic large meniscal defect with implantation of autogenous meniscal fragments using a tubular-shaped fibrin clot | |
| Lavigne et al. | Bone-wax granuloma after femoral neck osteoplasty | |
| Roshan-Ghias et al. | In vivo assessment of local effects after application of bone screws delivering bisphosphonates into a compromised cancellous bone site | |
| RU134034U1 (en) | SPICER BARBAR TABLE BOARD | |
| US20190307928A1 (en) | Polymeric patch scaffolds for articular cartilage regeneration | |
| RU2637103C2 (en) | Method for substitution of cartilaginous tissue defects | |
| RU2265891C2 (en) | Method for modeling tuberculous omarthritis | |
| RU2129841C1 (en) | Combined autoplasty method for repairing cotyloid cavity in cases of hip joint diseases | |
| RU2470378C1 (en) | Method of modelling intra-articular injury in small laboratory animals | |
| Mayr et al. | Treatment of large chondral lesions with an autologous minced cartilage technique and synovial flap leads to superior results compared to matrix associated autologous chondrocyte transplantation technique after 24 months: A controlled clinical trial | |
| RU2372042C1 (en) | Method of arthrodesed knee joint | |
| RU2684356C1 (en) | Method of creating bilateral bone model for research of integration of osteotropic materials in experiment | |
| Adams Jr et al. | Particulated juvenile cartilage allograft transplantation for the treatment of osteochondral lesions of the talus | |
| RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
| Silva et al. | Novel model of mono cortical bone defect in rat mandible: an interesting tool for osseous investigations | |
| RU2303415C1 (en) | Method for substituting organic osteomyelitic defects of the lower tibial third with muscular flap upon proximal supporting pedicle | |
| Boehm et al. | Cartilage injuries and arthritis | |
| RU2802431C1 (en) | Method of simulation of posttraumatic compression bone defect | |
| Bischofreiter et al. | Arthroscopic Minced Cartilage Implantation for Chondral Lesion at the Glenoid in the Shoulder | |
| Ye et al. | Application and research of nano-biomaterials in repair and treatment of sports ligament injury | |
| RU2309691C1 (en) | Method for plasty of osseous defect of tibial epimetaphysis | |
| RU2712005C1 (en) | Method for restoring the head of the metatarsal bone of the foot in keller ii-freiberg disease |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20121030 |