RU2578818C1 - Method for simulating osteomyelitis - Google Patents
Method for simulating osteomyelitis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2578818C1 RU2578818C1 RU2014154473/14A RU2014154473A RU2578818C1 RU 2578818 C1 RU2578818 C1 RU 2578818C1 RU 2014154473/14 A RU2014154473/14 A RU 2014154473/14A RU 2014154473 A RU2014154473 A RU 2014154473A RU 2578818 C1 RU2578818 C1 RU 2578818C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- carrier
- wound
- defect
- osteomyelitis
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 15
- 206010031252 Osteomyelitis Diseases 0.000 title claims description 10
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 claims abstract description 17
- 230000007547 defect Effects 0.000 claims abstract description 14
- 244000000010 microbial pathogen Species 0.000 claims abstract description 13
- 244000052769 pathogen Species 0.000 claims abstract description 5
- 230000001717 pathogenic effect Effects 0.000 claims abstract description 5
- 229920002799 BoPET Polymers 0.000 claims abstract description 4
- 239000005041 Mylar™ Substances 0.000 claims abstract description 4
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 4
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims description 8
- 238000010171 animal model Methods 0.000 claims description 7
- 239000005020 polyethylene terephthalate Substances 0.000 claims description 6
- 241000700112 Chinchilla Species 0.000 claims description 4
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 claims description 4
- 241000191967 Staphylococcus aureus Species 0.000 claims description 4
- 229920004934 Dacron® Polymers 0.000 claims description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims description 3
- 206010031256 Osteomyelitis chronic Diseases 0.000 abstract description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 abstract description 5
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 4
- 230000000877 morphologic effect Effects 0.000 abstract description 4
- 201000010099 disease Diseases 0.000 abstract description 3
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 abstract description 3
- 239000004744 fabric Substances 0.000 abstract description 3
- 230000003902 lesion Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 229920004936 Lavsan® Polymers 0.000 description 3
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- 238000002560 therapeutic procedure Methods 0.000 description 3
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 description 3
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 2
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 208000013210 hematogenous Diseases 0.000 description 2
- 239000000463 material Substances 0.000 description 2
- 230000001338 necrotic effect Effects 0.000 description 2
- 230000002421 anti-septic effect Effects 0.000 description 1
- 230000000721 bacterilogical effect Effects 0.000 description 1
- 238000001804 debridement Methods 0.000 description 1
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 1
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 1
- 238000001727 in vivo Methods 0.000 description 1
- 210000000281 joint capsule Anatomy 0.000 description 1
- 239000003589 local anesthetic agent Substances 0.000 description 1
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 1
- 238000009343 monoculture Methods 0.000 description 1
- 210000003205 muscle Anatomy 0.000 description 1
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 1
- 210000000426 patellar ligament Anatomy 0.000 description 1
- 239000004576 sand Substances 0.000 description 1
- 230000009919 sequestration Effects 0.000 description 1
- 239000000377 silicon dioxide Substances 0.000 description 1
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 230000001502 supplementing effect Effects 0.000 description 1
- 238000011477 surgical intervention Methods 0.000 description 1
- 238000010998 test method Methods 0.000 description 1
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 1
Landscapes
- Materials For Medical Uses (AREA)
Abstract
Description
Способ моделирования остеомиелитаThe method of modeling osteomyelitis
Изобретение относится к медицине, а именно к ортопедии и травматологии, может быть использовано для моделирования очага хронического остеомиелита, а также для разработок и апробации методик хирургического и консервативного лечения хронического остеомиелита.The invention relates to medicine, namely to orthopedics and traumatology, can be used to model the focus of chronic osteomyelitis, as well as to develop and test methods for surgical and conservative treatment of chronic osteomyelitis.
Известен способ моделирования хронического остеомиелита, включающий формирование костного дефекта в кости подопытного животного с помещением в него носителя штамма патогенного микроорганизма и последующей санацией. (Патент RU 2499295 С1 3, 19.05.2012 г, опубл. 20.11.2013 г.). В качестве штамма патогенного микроорганизма используют штамм Staphylococcus Aureus. В качестве носителя штамма Staphylococcus Aureus используют кварцевый песок, который помещают в здоровую кость подопытного животного с последующим удалением некротических масс и гноя из зоны костного дефекта и сохранением раны в свищевом виде.A known method for modeling chronic osteomyelitis, including the formation of a bone defect in the bones of an experimental animal with the carrier of a strain of a pathogenic microorganism in it and subsequent rehabilitation. (Patent RU 2499295 C1 3, 05/19/2012, publ. November 20, 2013). As a strain of a pathogenic microorganism, a Staphylococcus Aureus strain is used. Silica sand is used as the carrier of the Staphylococcus Aureus strain, which is placed in the healthy bone of the experimental animal, followed by removal of necrotic masses and pus from the area of the bone defect and keeping the wound fistulous.
Недостатком известного способа является невозможность полного удаления носителя St. Aureus из раны, при этом исследователи получают искажение картины течения остеомиелита в естественных условиях.The disadvantage of this method is the inability to completely remove the media St. Aureus from the wound, while researchers get a distortion of the flow pattern of osteomyelitis in vivo.
Задачей, на решение которой направленно заявляемое изобретение, является повышение достоверности течения хронического остеомиелита, достижение простоты и повторимости эксперимента, упрощение способа введения, дозирования патогена и последующей санации гнойно-септического очага.The task to which the invention is directed is to increase the reliability of the course of chronic osteomyelitis, achieve simplicity and repeatability of the experiment, simplify the route of administration, dosage of the pathogen and subsequent sanitation of the purulent-septic focus.
Техническим результатом заявляемого изобретения является обеспечение полного удаления носителя штамма патогенного микроорганизма из раны с сохранением клинической и морфологической картины заболевания.The technical result of the claimed invention is to ensure complete removal of the carrier of the strain of the pathogenic microorganism from the wound while maintaining the clinical and morphological picture of the disease.
Для решения поставленной задачи в способе моделирования остеомиелита, включающем формирование костного дефекта у подопытного животного с помещением в этот дефект носителя штамма патогенного микроорганизма и последующим удалением носителя, согласно изобретению в качестве носителя используют лавсановую ткань, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма путем выдерживания полоски лавсановой ткани в суспензии возбудителя 1.5 McF(1*10∧8 КОЭ), при этом после размещения полоски в дефекте кости его герметизируют костным воском, а рану послойно ушивают, удаление полоски производят на 7-е сутки.To solve the problem in a method for modeling osteomyelitis, including the formation of a bone defect in an experimental animal with the carrier of a strain of a pathogenic microorganism inserted into this defect and subsequent removal of the carrier, according to the invention, a lavsan tissue contaminated by a strain of a pathogenic microorganism by keeping a strip of dacron tissue in suspension is used as a carrier exciter 1.5 McF (1 * 10 ∧ 8 CFU), while after placing the strips in bone defects it is sealed with bone wax, and Dr. sutured in layers, the removal strip produced on the 7th day.
В качестве штамма патогенного микроорганизма используют штамм Staphylococcus Aureus.As a strain of a pathogenic microorganism, a Staphylococcus Aureus strain is used.
В качестве подопытного животного используют кролика породы «Шиншилла».As an experimental animal using a rabbit breed "Chinchilla."
Использование в качестве носителя штамма St. Aureus полоски лавсановой ткани позволяет полностью удалить носитель из раны на этапе санации, так как свойства материала позволяют удалить его из раны единым фрагментом, предоставляют исследователю широкий спектр возможностей управления гнойным процессом, максимально полно имитирует естественный гематогенный остеомиелит.Use as a carrier of strain St. Aureus strips of lavsan tissue allows the carrier to be completely removed from the wound at the stage of rehabilitation, since the properties of the material allow it to be removed from the wound with a single fragment, provide the researcher with a wide range of possibilities for controlling the purulent process, imitates the natural hematogenous osteomyelitis to the fullest extent.
Заявляемый способ моделирования гнойного остеомиелита осуществляют следующим образом.The inventive method for modeling purulent osteomyelitis is as follows.
Проводят обезболивание подопытного животного (кролика породы «Шиншилла» массой 3-4 кг, ранее не участвовавшего в эксперименте) в/м введением препарата «Золетил 50» в дозе 15 мг/кг в/м, «Ксила» в дозе 0,1 мг/кг в/м, дополняя анестезию раствором местного анестетика в области хирургического доступа. По передней поверхности в/3 голени проводят линейный разрез кожного покрова до 3-х см. Осуществляют доступ к передненаружному краю метаэпифиза б/берцовой кости без повреждения суставной капсулы, собственной связки надколенника, мышц голени. Формируют костный дефект кусачками «Люэра» 5×5 мм, в который помещают полоску лавсановой ткани размером 2 квадратных сантиметра, контаминированную штаммом патогенного микроорганизма, например St. Aureus. Полоску лавсановой ткани, выдержанную в суспензии возбудителя 1.5 McF(1*10∧8 КОЭ), оставляют в сформированном дефекте, дефект большеберцовой кости герметизируют костным воском, рану послойно ушивают. В послеоперационном периоде проводят симптоматическую терапию, обезболивание. На 7-е сутки проводят разведение всех швов, удаление полоски лавсановой ткани, при требованиях эксперимента проводят резекцию некротизированных тканей, выполняют некрсеквестрэктомию. У исследуемой группы проводят обработку антисептическим препаратом либо проводят апробацию новой хирургической методики. У группы контроля проводят хирургическую обработку раны. Рану после обработки послойно ушивают. В послеоперационном периоде проводят симптоматическую терапию. На 14-е сутки проводят снятие швов. На 21-е сутки после хирургической санации животных выводят из эксперимента. Производят взятие гистологического материала из области оперативного вмешательства -мягкие ткани, костная ткань, берут посевы на рост неспецифической микрофлоры.Anesthetized an experimental animal (rabbit breed "Chinchilla" weighing 3-4 kg, previously not participating in the experiment) v / m with the introduction of the drug "Zoletil 50" at a dose of 15 mg / kg v / m, "Xila" at a dose of 0.1 mg / kg i / m, supplementing anesthesia with a solution of local anesthetic in the field of surgical access. A linear incision of the skin cover up to 3 cm is performed along the anterior surface of the in / 3 tibia. Access to the anterior outer edge of the metaepiphysis of the tibia without damage to the joint capsule, own patellar ligament, and tibial muscles. A bone defect is formed with 5 × 5 mm “Luer” nippers, in which a 2 square centimeter dacron tissue strip contaminated with a strain of a pathogenic microorganism is placed, for example St. Aureus. A strip of mylar fabric, soaked in a suspension of the pathogen 1.5 McF (1 * 10 ∧ 8 CFU), is left in the defect formed, the defect of the tibia is sealed with bone wax, the wound is sutured in layers. In the postoperative period, symptomatic therapy, anesthesia are performed. On the 7th day, all sutures are diluted, strips of lavsan tissue are removed, according to the requirements of the experiment, necrotic tissues are resected, necsecestrectomy is performed. The study group is being treated with an antiseptic drug or a new surgical technique is being tested. The control group conducts surgical treatment of the wound. The wound after treatment is sutured in layers. In the postoperative period, symptomatic therapy is performed. On the 14th day, sutures are removed. On the 21st day after surgical debridement, the animals are removed from the experiment. Histological material is taken from the area of surgical intervention — soft tissues, bone tissue, crops are taken for the growth of non-specific microflora.
Пример. Способ выполнен на 15 особях кроликов породы «Шиншилла». Для ввода в эксперимент животным было выполнено хирургическое вмешательство по заявляемому способу. Послеоперационный период включал симптоматическую терапию. На 14-е сутки снятие швов. На 21-е сутки животные выведены из эксперимента. Были выполнены бактериологические исследования полученного раневого отделяемого, в результате которых культуральными методами выявлен рост монокультуры S. Aureus из сформированного очага остеомиелита у каждого животного. Гистологическим исследованием костной ткани из очага подтвержден активный остеомиелит.Example. The method is performed on 15 specimens of rabbits of the breed "Chinchilla." For input into the experiment, the animals underwent surgery according to the claimed method. The postoperative period included symptomatic therapy. On the 14th day, the removal of sutures. On the 21st day, the animals were withdrawn from the experiment. Bacteriological studies of the obtained wound were performed, as a result of which cultural methods revealed the growth of a monoculture of S. Aureus from the formed focus of osteomyelitis in each animal. Histological examination of bone tissue from the lesion confirmed active osteomyelitis.
Использование заявляемого изобретения позволяет обеспечить полное удаление носителя штамма патогенного микроорганизма из раны с сохранением клинической и морфологической картины заболевания. Заявляемый способ отличается полнотой санации, наибольшей схожестью по клинической и морфологической картине с гематогенным остеомиелитом за счет солидного удаления экспериментально-сформированного секвестра.The use of the claimed invention allows for the complete removal of the carrier of the strain of the pathogenic microorganism from the wound while maintaining the clinical and morphological picture of the disease. The inventive method is characterized by the completeness of rehabilitation, the greatest similarity in the clinical and morphological picture with hematogenous osteomyelitis due to the solid removal of the experimentally formed sequestration.
Claims (3)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2014154473/14A RU2578818C1 (en) | 2014-12-30 | 2014-12-30 | Method for simulating osteomyelitis |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2014154473/14A RU2578818C1 (en) | 2014-12-30 | 2014-12-30 | Method for simulating osteomyelitis |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2578818C1 true RU2578818C1 (en) | 2016-03-27 |
Family
ID=55656870
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2014154473/14A RU2578818C1 (en) | 2014-12-30 | 2014-12-30 | Method for simulating osteomyelitis |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2578818C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2703709C1 (en) * | 2018-08-23 | 2019-10-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2233486C1 (en) * | 2003-03-19 | 2004-07-27 | Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР | Method for modeling traumatic osteomyelitis |
| CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
| RU2499295C1 (en) * | 2012-03-19 | 2013-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for simulating chronic infected bone wound |
-
2014
- 2014-12-30 RU RU2014154473/14A patent/RU2578818C1/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2233486C1 (en) * | 2003-03-19 | 2004-07-27 | Научно-исследовательский и учебно-методический центр биомедицинских технологий ВИЛАР | Method for modeling traumatic osteomyelitis |
| CN102068693A (en) * | 2009-11-20 | 2011-05-25 | 复旦大学 | Application of complete Freund adjuvant (CFA) to preparation of tibia inflammatory pain model |
| RU2499295C1 (en) * | 2012-03-19 | 2013-11-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Нижегородский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Method for simulating chronic infected bone wound |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ЛАДОНИН С.В. и др. Моделирование хронического остеомиелита. Вестник экспериментальной и клинической хирургии, 2011, том IV, N2,с. 344-348. JOHANSSON A et al. Collagen and fibronectin binding in experimental staphylococcal osteomyelitis Clin Orthop Relat Res. 2001 Jan;(382):241-6, abstr. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2703709C1 (en) * | 2018-08-23 | 2019-10-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Huynh et al. | Histone deacetylase inhibition enhances in-vivo bone regeneration induced by human periodontal ligament cells | |
| RU2636227C2 (en) | Pharmaceutical composition for thermal injuries and wounds treatment in combination with bone damage | |
| Hu et al. | Combined magnetic fields accelerate bone‐tendon junction injury healing through osteogenesis | |
| JP2022510982A (en) | Composition for biological transplantation of organoids | |
| RU2578818C1 (en) | Method for simulating osteomyelitis | |
| Safi et al. | Migration of mesenchymal stem cells of bursal tissue after rotator cuff repair in rats | |
| RU2622209C1 (en) | Method for localized metaphyseal chronic osteomyelitis simulation in rabbit | |
| RU2421823C1 (en) | Method of simulating tubercular osteitis of various severities | |
| RU2703333C2 (en) | Method for replacement of bone-cartilage defects of joints with autograft | |
| RU2507600C1 (en) | Method and device for simulating infected oral mucosa wound in experiment | |
| RU2720838C1 (en) | Method for simulating chronic osteomyelitis | |
| RU2698415C2 (en) | Method for reconstruction of combined iliac region defect | |
| RU2703709C1 (en) | Method for simulating an experimental soft tissue wound in rats for developing a therapeutic approach | |
| MacIsaac et al. | Biomechanical integrity in craniofacial surgery: calvarial reconstruction in favorable and infected defects with bone morphogenetic protein 2 | |
| RU2732877C1 (en) | Method for inducing focal osteoarthrosis in distal epiphysial cartilage of femur in sheep | |
| RU2495641C1 (en) | Method of treating aseptic necrosis of navicular bone of hand | |
| RU2844452C1 (en) | Method for experimental simulation of tubular bone defect in rats | |
| Ren et al. | GEMINI-supported spinal cord transplantation for the treatment of chronic spinal paralysis: overview and initial clinical translation | |
| RU2798905C1 (en) | Method of treating bone marrow osteomyelitic cavity | |
| RU2523622C1 (en) | Method for simulation of false joint in shin fractures and device for implementing it | |
| RU2550129C1 (en) | Modified method for experimental surgical approach to rat's shoulder blade | |
| RU2351020C1 (en) | Method of treatment of full-layer defects of knee joint cartilage with use of autologous mesenchymal stem cells culture | |
| RU2232430C1 (en) | Method for modeling acute purulent cholangitis in experimental animals | |
| RU2463668C1 (en) | Method for experimental simulation of delayed distraction osteogenesis accompanying shortening of extremity bones | |
| RU2433794C2 (en) | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20161231 |