[go: up one dir, main page]

RU2433794C2 - Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells - Google Patents

Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells Download PDF

Info

Publication number
RU2433794C2
RU2433794C2 RU2010100536/14A RU2010100536A RU2433794C2 RU 2433794 C2 RU2433794 C2 RU 2433794C2 RU 2010100536/14 A RU2010100536/14 A RU 2010100536/14A RU 2010100536 A RU2010100536 A RU 2010100536A RU 2433794 C2 RU2433794 C2 RU 2433794C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone
bone tissue
stimulation
extract
tissue cells
Prior art date
Application number
RU2010100536/14A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Наталья Андреевна Кононович (RU)
Наталья Андреевна Кононович
Наталья Виловна Петровская (RU)
Наталья Виловна Петровская
Елена Николаевна Горбач (RU)
Елена Николаевна Горбач
Лариса Олеговна Марченкова (RU)
Лариса Олеговна Марченкова
Михаил Александрович Ковинька (RU)
Михаил Александрович Ковинька
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение "Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" имени академика Г.А. Илизарова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение "Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" имени академика Г.А. Илизарова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" filed Critical Федеральное государственное учреждение "Российский научный центр "Восстановительная травматология и ортопедия" имени академика Г.А. Илизарова Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи"
Priority to RU2010100536/14A priority Critical patent/RU2433794C2/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2433794C2 publication Critical patent/RU2433794C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention relates to medicine and can be applied for modelling stimulation of reparative osteogenesis. Osteosynthesis is performed. Stimulating preparation is introduced. As stimulating preparation used is dry extract of fetal bone tissue cells of animal, prepared from bones of calvarium, which is dissolved in sterile solvent immediately before introduction and after 14 days of fixation is introduced once in dose 1 mg per 1 kg of body weight into paraossal tissues of fracture region.
EFFECT: method makes it possible to prevent resorption in zone of fragment junction, reduce term of fracture consolidation.
1 ex, 10 dwg

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к ортопедии и травматологии, и ветеринарии, может быть использовано для стимуляции репаративных процессов поврежденных костей, в частности при значительной степени травматизации остеогенных тканей (костный мозг, надкостница) и повреждении питающих кость сосудов.The invention relates to medicine, namely to orthopedics and traumatology, and veterinary medicine, can be used to stimulate the reparative processes of damaged bones, in particular with a significant degree of trauma to osteogenic tissues (bone marrow, periosteum) and damage to the vessels feeding the bone.

Известен способ моделирования стимуляции регенерации костной ткани, заключающийся в отграничении области циркулярного дефекта длинной трубчатой кости от проникновения окружающих тканей пленкой из динитроцеллюлозы, которую накладывают циркулярно с перекрытием краев дефекта на 5-7 мм и плотно фиксируют капроновыми нитями, предварительно с концов костных фрагментов удаляя надкостницу (Заявка РФ 2005100265/14. Способ моделирования стимуляции регенерации костной ткани / Шевцов В.И., Дьячков А.Н., Ручкина И.В., Государственное учреждение Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А.Илизарова (РФ); заявл. 11.01.2005., опубл. 20.06.2006, Бюл. №17).A known method of modeling stimulation of bone tissue regeneration, which consists in delimiting the region of a circular defect of a long tubular bone from the penetration of surrounding tissues by a film of dinitrocellulose, which is applied circularly with overlapping edges of the defect by 5-7 mm and tightly fixed with nylon threads, previously removing the periosteum from the ends of bone fragments (RF Application 2005100265/14. Method for modeling bone tissue regeneration stimulation / Shevtsov V.I., Dyachkov A.N., Ruchkina I.V., Russian State Institution The 1st Scientific Center “Reconstructive Traumatology and Orthopedics” named after Academician G.A. Ilizarov (RF); declared on January 11, 2005, published on June 20, 2006, Bull. No. 17).

Однако известный способ используется для стимуляции репаративной регенерации костной ткани при замещении циркулярных дефектов.However, the known method is used to stimulate the reparative regeneration of bone tissue when replacing circular defects.

Известен способ стимуляции репаративного процесса кости, заключающийся в том, что после завершения периода дистракции одновременно сближают дистальную и проксимальную части костного реагента, осуществляя компрессию соединительнотканной прослойки регенерата (Патент 2071740 РФ, МКИ6 A61B 17/56. Способ стимуляции репаративного процесса кости / В.И.Шевцов (РФ), А.В.Попков (РФ). - №94013185/14; заявл. 13.04.94; опубл. 20.01.97, Бюл.2).A known method of stimulating the repair process of the bone, which consists in the fact that after the end of the distraction period, the distal and proximal parts of the bone reagent are brought together, compressing the connective tissue layer of the regenerate (Patent 2071740 of the Russian Federation, MKI6 A61B 17/56. Method of stimulating the repair process of the bone / V.I. . Shevtsov (RF), A.V. Popkov (RF). - No. 94013185/14; application. 13.04.94; publ. 20.01.97, Bull. 2).

Однако известный способ предназначен для стимуляции формирования костного регенерата при дистракционном остеогенезе.However, the known method is intended to stimulate the formation of bone regenerate during distraction osteogenesis.

Известен способ механической стимуляции замедленного остеогенеза при переломах костей, заключающийся в том, что отломки кости фиксируют аппаратом для чрескостного остеосинтеза с возможностью перемещения и через 3-5 дней после операции к отломкам кости прикладывают дозированные дистракционные усилия с темпом 0,5 мм в сутки, на протяжении 4-х суток, затем фиксируют отломки в достигнутом положении в течение 3-х суток, после чего осуществляют компрессию, точно сопоставляя отломки, ориентируя их относительно продольной оси, и фиксируют до сращения (Патент 2354322 РФ, МПК8 A61B 17/58. Способ механической стимуляции замедленного остеогенеза при переломах костей / Кононович Н.А. (RU), Дюрягин Е.В. (RU), Дьячков А.Н. (RU), ФГУ «РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А.Илизарова Росмедтехнологий» (RU). - №20071364269/14; заявл. 01.10.2007; опубл. 10.05.2009, Бюл. №13).A known method of mechanical stimulation of delayed osteogenesis in bone fractures, which consists in the fact that bone fragments are fixed with a device for transosseous osteosynthesis with the ability to move and 3-5 days after surgery, metered distraction efforts are applied to bone fragments at a rate of 0.5 mm per day, for 4 days, then the fragments are fixed in the reached position for 3 days, after which they are compressed, precisely matching the fragments, orienting them relative to the longitudinal axis, and fixing to the joint patent (Patent 2354322 RF, IPC8 A61B 17/58. Method for mechanical stimulation of delayed osteogenesis in bone fractures / N. Kononovich (RU), E. Dyuryagin (RU), A. Dyachkov (RU), Federal State Institution “ RRC “WTO” named after Academician G. A. Ilizarov of Rosmedtehnologii ”(RU). - No. 20071364269/14; declared. 01.10.2007; publ. 10.05.2009, Bull. No. 13).

Однако известный способ предполагает в качестве прямого стимулирующего воздействия нарушение неподвижности костных отломков на этапе фиксации, что может быть достигнуто только при помощи специальной фиксирующей конструкции, позволяющей создать дозированные дистракционные и компрессионные усилия в зоне излома.However, the known method assumes as a direct stimulating effect the violation of the immobility of bone fragments at the fixation stage, which can be achieved only with the help of a special fixing structure that allows you to create metered distraction and compression forces in the fracture zone.

Известна заливочная композиция для стимуляции образования кости и сращения кости, содержащая сульфат кальция и вязкие биополимеры, предотвращающая рост нежелательных соединительных тканей, а также индуцирующая рост кровеносных сосудов и развитие костных остеобластов на ранней стадии (Патент РФ №2296588 C2, МПК A61L 27/40, 27/44, 27/00, A61P 19/00. Заливочная композиция для стимуляции образования кости и сращения кости, содержащая сульфат кальция и вязкие биополимеры / КИМ Ин-Сан, ЧО Биунг Чае., РЕДЖЕН БАЙОТЕК, ИНК. (KR) - №2005113276/15; заявл. 30.09.2002., опубл. 10.04.2007, Бюл. №10).Known casting composition for stimulating bone formation and bone fusion, containing calcium sulfate and viscous biopolymers, preventing the growth of unwanted connective tissues, as well as inducing the growth of blood vessels and the development of bone osteoblasts at an early stage (RF Patent No. 2296588 C2, IPC A61L 27/40, 27/44, 27/00, A61P 19/00 Filling composition for stimulating bone formation and bone fusion containing calcium sulfate and viscous biopolymers / KIM In-San, Cho Biung Tea., REGEN BYOTEK, INC. (KR) - No. 2005113276/15; claimed 30.09.2002., Published 10.04.2007, Bull . No. 10).

Однако известная композиция применяется для заполнения полостей костных дефектов, а также вводится в полость диастаза с целью стимуляции остеогенеза после вытяжения костей, в частности челюсти, и не была использована для стимуляции остеогенеза при сращении переломов костей.However, the known composition is used to fill the cavities of bone defects, and is also introduced into the cavity of the diastasis in order to stimulate osteogenesis after stretching of the bones, in particular the jaw, and was not used to stimulate osteogenesis during the healing of bone fractures.

Известен способ моделирования замедленного остеогенеза, включающий нарушение целостности костной ткани, фиксацию отломков кости аппаратом для чрескостного остеосинтеза, в котором препарируют прилегающие к кости мягкие ткани. Осуществляют остеотомию берцовых костей экспериментального животного, выводят концы фрагментов из раны. Удаляют из каждого содержимое костномозговой полости и участок питательной артерии. Затем концы фрагментов сопоставляют и фиксируют до сращения. В созданных неблагоприятных физиологических условиях через 30 суток после остеосинтеза определяется выраженная остеокластическая резорбция концов костных отломков. Полное костное сращение перелома происходит к 60-75 суткам стабильной фиксации и характеризуется эндохондральным остеогенезом (Патент РФ №2301457, МКИ8 G09B 23/28. Способ моделирования замедленного остеогенеза / Кононович Н.А. (RU), Дюрягин E.B. (RU), Дьячков A.H. (RU), ФГУН «РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А.Илизарова Росздрава» (RU). - №2005104529/14; заявл. 18.02.2005; опубл. 20.06.2007, Бюл. 17).A known method of modeling delayed osteogenesis, including violation of the integrity of bone tissue, fixation of bone fragments by the apparatus for transosseous osteosynthesis, in which dissected adjacent to the bone soft tissue. An osteotomy of the tibia of the experimental animal is carried out, the ends of the fragments are removed from the wound. The contents of the bone marrow cavity and the area of the nutrient artery are removed from each. Then the ends of the fragments are compared and fixed to fusion. Under unfavorable physiological conditions created, 30 days after osteosynthesis, pronounced osteoclastic resorption of the ends of bone fragments is determined. Complete bone fusion coalescence occurs at 60-75 days of stable fixation and is characterized by endochondral osteogenesis (RF Patent No. 2301457, MKI8 G09B 23/28. Modeling method for delayed osteogenesis / Kononovich N.A. (RU), Dyuryagin EB (RU), Dyachkov AH (RU), Federal State Budgetary Institution Scientific and Research Center “WTO” named after Academician G.A. Ilizarov of Roszdrav (RU) - No. 2005104529/14; announced on February 18, 2005; published on June 20, 2007, Bull. 17).

Известно, что в качестве источника фетального материала служат нежизнеспособные плоды человека, полученные от женщин, искусственно прерывающих беременность по социальным и медицинским показаниям (Доскалиев Ж.А., Каюпов Б.А. Роль фетальных стволовых клеток в восстановлении нарушенных функций органов и тканей // Ежегодная Всероссийская и международная конференция «Стволовые клетки и перспектива их использования в здравоохранении». 2007. URL: http://www.stemcell.ru/news/phpnews/cell_news.php?nom_news=930 (дата обращения: 28.09.2009)).It is known that nonviable human fetuses obtained from women who artificially terminate pregnancy for social and medical reasons (Doskaliev Zh.A., Kayupov B.A., The role of fetal stem cells in the restoration of impaired functions of organs and tissues // serve as a source of fetal material). Annual All-Russian and International Conference “Stem Cells and the Prospect for Their Use in Health Care.” 2007. URL: http://www.stemcell.ru/news/phpnews/cell_news.php?nom_news=930 (accessed September 28, 2009)) .

Известны фетальные органопрепараты (трансплантаты, группы клеток, клеточные экстракты, гидролизаты и отдельные биомолекулы), которые приготавливаются из органов и тканей здоровых животных (http://www.regbiomed.com/journal/cabines/Cabines№14_2004.doc).Fetal organ preparations are known (transplants, groups of cells, cell extracts, hydrolysates and individual biomolecules), which are prepared from organs and tissues of healthy animals (http://www.regbiomed.com/journal/cabines/Cabines№14_2004.doc).

Известен способ стимуляции остеогенеза, включающий внутримышечное введение взвеси аллогенного гидроксилаппатита в изотоническом растворе хлорида натрия и обеспечивающий ускорение формирования костной ткани на месте деминерализованного костного матрикса в эксперименте (Патент РФ №2219933, МПК A61K 33/00. Способ стимуляции остеогенеза / Волова Л.Т., Подковкин В.Г., Власов М.Ю. - №2002119768/14; заявл. 22.07.2002., опубл. 27.12.2003).A known method of stimulating osteogenesis, including intramuscular injection of a suspension of allogeneic hydroxylappatite in an isotonic sodium chloride solution and providing acceleration of bone tissue formation at the site of demineralized bone matrix in the experiment (RF Patent No. 2219933, IPC A61K 33/00. Method of stimulation of osteogenesis / Volova L.T. , Podkovkin V.G., Vlasov M.Yu. - No. 2002119768/14; declared. 22.07.2002., Published. 27.12.2003).

Известен способ стимуляции репаративных процессов в костной ткани после остеосинтеза, при выполнении которого животным в послеоперационном периоде внутрь вводят сел-плекс в дозе 5 мг на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 14 дней (Патент РФ №2295962 C1, МПК A61K 33/04, A61P 19/00. Способ стимуляции репаративных процессов в костной ткани после остеосинтеза / Сахно Н.В., Садовников Н.В., Папазян Т.Т., Садовникова Н.Ю., Черванев В.А., Трояновская Л.П., Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Орловский государственный аграрный университет» (РФ). - №2005128000/14; заявл. 07.09.2005, опубл. 27.03.2007, Бюл. №9).There is a method of stimulating reparative processes in bone tissue after osteosynthesis, during which animals in the postoperative period are injected with SELPLEX at a dose of 5 mg per 1 kg of live weight 1 time per day for 14 days (RF Patent No. 2295962 C1, IPC A61K 33 / 04, A61P 19/00 Method of stimulation of reparative processes in bone tissue after osteosynthesis / Sakhno NV, Sadovnikov NV, Papazyan TT, Sadovnikova N.Yu., Chervanev VA, Troyanovskaya L .P., Federal State Educational Establishment of Higher Professional Education "Oryol State stressed agricultural university "(RF). - No. 2005128000/14; declared. 07.09.2005, published. 03.03.2007, Bull. No. 9).

Однако известный способ не оказывает прямого стимулирующего действия на репаративные процессы в зоне повреждения, не предотвращают возникновения остеокластической резорбции концов отломков и не способствуют развитию интрамембранозного остеогенеза.However, the known method does not have a direct stimulating effect on reparative processes in the lesion area, does not prevent the occurrence of osteoclastic resorption of the ends of the fragments, and does not contribute to the development of intramembranous osteogenesis.

Задачей настоящего изобретения является разработка способа, который оказывает прямое стимулирующее действие на репаративные процессы в зоне повреждения, предотвращает возникновение остеокластической резорбции концов отломков, способствует развитию интрамембранозного остеогенеза и тем самым сокращает сроки консолидации перелома. Поставленная задача решается тем, что в способе моделирования стимуляции репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани, включающем остеосинтез и введение стимулирующего препарата, в качестве стимулирующего препарата используют сухой экстракт клеток фетальной костной ткани, приготовленный из костей свода черепа, который непосредственно перед введением растворяют в стерильном растворителе и вводят однократно в дозе 1 мг на 1 кг массы тела в параоссальные ткани области перелома.The objective of the present invention is to develop a method that has a direct stimulating effect on reparative processes in the lesion zone, prevents the occurrence of osteoclastic resorption of the ends of the fragments, promotes the development of intra-membranous osteogenesis and thereby reduces the time of fracture consolidation. The problem is solved in that in the method for modeling stimulation of reparative osteogenesis with an extract of fetal bone tissue cells, including osteosynthesis and administration of a stimulating drug, a dry extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault, which is dissolved in sterile immediately before administration, is used as a stimulating drug solvent and injected once at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight into the paraossal tissue of the fracture area.

Целесообразно в качестве растворителя использовать воду для инъекций или изотонический раствор натрия хлорида.It is advisable to use water for injection or an isotonic sodium chloride solution as a solvent.

Настоящее изобретение поясняют подробным описанием, прилагаемыми фото, рентгенограммами и гистотопограммами, на которых:The present invention is illustrated by a detailed description, the attached photos, radiographs and histotopograms, on which:

Фиг.1 - вид голени собаки после нарушения целостности кости и наложения аппарата чрескостной фиксации (далее аппарат);Figure 1 - view of the leg of the dog after violation of the integrity of the bone and the imposition of the transosseous fixation apparatus (hereinafter the apparatus);

Фиг.2 - сухой экстракт клеток фетальной костной ткани;Figure 2 - dry extract of cells of fetal bone tissue;

Фиг.3 - раствор сухого экстракта клеток фетальной костной ткани;Figure 3 - a solution of a dry extract of cells of fetal bone tissue;

Фиг.4 - инъекция раствора экстракта фетальной костной ткани в параоссальные ткани области перелома;Figure 4 - injection of a solution of extract of fetal bone tissue in the paraossal tissue of the fracture area;

Фиг.5 - копия рентгенограммы костей голени, 30 суток фиксации, согласно изобретению;5 is a copy of an x-ray of the bones of the leg, 30 days of fixation, according to the invention;

Фиг.6 - копия рентгенограммы костей голени, 45 суток фиксации, согласно изобретению;6 is a copy of the x-ray of the bones of the leg, 45 days of fixation, according to the invention;

Фиг.7 - копия гистотопограммы регенерата диафиза большеберцовой кости собаки через 45 суток фиксации конечности в аппарате. Препарат окрашен по Ван-Гизону. Увеличение - 1,5x.;7 is a copy of the histotopogram of the regeneration of the diaphysis of the tibia of the dog after 45 days of limb fixation in the apparatus. The drug is stained according to Van Gieson. Magnification - 1.5x .;

Фиг.8 - копия микрофотографии интермедиарной области зоны костного сращения. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 250x;Fig. 8 is a copy of a micrograph of the intermediate region of the bone fusion zone. Hematoxylin and eosin stain. Magnification - 250x;

Фиг.9 - копия микрофотографии периостальной области зоны костного сращения. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 250x;Figure 9 is a copy of the micrograph of the periosteal region of the bone fusion zone. Hematoxylin and eosin stain. Magnification - 250x;

Фиг.10 - копия микрофотографии красного костного мозга в костномозговом канале регенерата. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 630x.Figure 10 is a copy of a micrograph of red bone marrow in the bone marrow channel of the regenerate. Hematoxylin and eosin stain. The magnification is 630x.

Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.

Перелом костей, сопровождающийся значительным повреждением остеогенных тканей и питающих кость сосудов, точно репонируют и стабильно фиксируют (Фиг.1). Через 14 суток фиксации осуществляют стимуляцию репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани, приготовленным из костей свода черепа. Для этого сухой экстракт клеток фетальной костной ткани (Фиг.2), приготовленный из костей свода черепа, в дозе 1 мг на 1 кг массы тела растворяют в стерильном растворителе в количестве, необходимом для инъекции малого объема (Фиг.3). В качестве растворителя используют воду для инъекций или изотонический раствор натрия хлорида. Полученный раствор вводят однократно путем инъекции в параоссальные ткани в области стыка костных отломков (Фиг.4). В результате этого к 30 суткам после остеосинтеза отсутствуют признаки остеокластической резорбции концов отломков в зоне их стыка (Фиг.5) и через 45 суток стабильной фиксации наступает полное костное сращение, обеспеченное формированием губчатой кости, как в интермедиарной зоне, так и за счет периостальных костных образований (Фиг.6, 7). В этот период фиксацию перелома прекращают.A bone fracture, accompanied by significant damage to the osteogenic tissues and the vessels supplying the bone, is precisely repaired and stably fixed (Figure 1). After 14 days of fixation, reparative osteogenesis is stimulated with an extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault. For this, a dry extract of cells of fetal bone tissue (Figure 2), prepared from the bones of the cranial vault, at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight is dissolved in a sterile solvent in an amount necessary for small volume injection (Figure 3). As a solvent, water for injection or an isotonic sodium chloride solution is used. The resulting solution is administered once by injection into paraossal tissues at the junction of bone fragments (Figure 4). As a result, by 30 days after osteosynthesis, there are no signs of osteoclastic resorption of the ends of the fragments in the area of their junction (Fig. 5) and after 45 days of stable fixation, complete bone fusion ensured by the formation of the spongy bone, both in the intermediate zone and due to periosteal bone formations (Fig.6, 7). During this period, the fixation of the fracture is stopped.

Пример выполнения способа.An example of the method.

У экспериментального животного (собака №4790) смоделировали открытый перелом костей голени, сопровождающийся значительным повреждением надкостницы, костного мозга и разрывом питающих кость сосудов. Для этого в условиях операционной у наркотизированного животного, после обработки операционного поля 5% спиртовым раствором йода, на правую голень наложили аппарат Илизарова. В области средней трети диафиза берцовых костей осуществили открытую поперечную остеотомию при помощи пилы Джигли. Для усиления степени травматизации остеогенных тканей из костномозговых полостей проксимального и дистального отломков удалили содержимое на глубину не менее 1 см, после чего отломки точно сопоставили. На мягкие ткани наложили узловатые швы. Операционное поле обработали 5% спиртовым раствором йода.In an experimental animal (dog No. 4790), an open fracture of the lower leg bones was simulated, accompanied by significant damage to the periosteum, bone marrow and rupture of the vessels feeding the bone. For this, in the operating room of an anesthetized animal, after treating the surgical field with a 5% alcohol solution of iodine, the Ilizarov apparatus was placed on the right shin. An open transverse osteotomy was performed in the middle third of the tibia diaphysis with a Jigley saw. To enhance the degree of trauma to osteogenic tissues from the bone marrow cavities of the proximal and distal fragments, the contents were removed to a depth of at least 1 cm, after which the fragments were accurately compared. Knotted stitches were applied to the soft tissue. The surgical field was treated with 5% alcohol solution of iodine.

Через 14 суток после остеосинтеза в параоссальные ткани области стыка отломков путем инъекции малого объема ввели раствор сухого экстракта клеток фетальной костной ткани, приготовленный из костей свода черепа, в дозе 1 мг на 1 кг массы тела, где в качестве растворителя использовали стерильный изотонический раствор.14 days after osteosynthesis, a solution of a dry extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault was injected into a paraossal tissue at the junction of the fragments by a small volume at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight, where a sterile isotonic solution was used as a solvent.

Через 30 суток после остеосинтеза рентгенологически контуры концов отломков были нечеткие. Межотломковая щель не увеличена. Ее перекрывали гомогенные тени средней интенсивности. Вблизи линии излома наблюдали тени периостальных наслоений, не объединяющие отломки между собой.30 days after osteosynthesis, radiological contours of the ends of the fragments were fuzzy. The inter-fragment gap is not enlarged. It was covered by homogeneous shadows of medium intensity. Near the fracture line, shadows of periosteal layers were observed, not combining fragments among themselves.

К 45 суткам после остеосинтеза на рентгенограммах линия перелома слабо визуализировалась. Контуры концов отломков были размыты. Межотломковое пространство перекрывали гомогенные тени высокой интенсивности. Тени периостальных наслоений объединяли костные отломки между собой в области их стыка.By 45 days after osteosynthesis in the radiographs, the fracture line was poorly visualized. The contours of the ends of the fragments were blurred. The inter-fragment space was blocked by high-intensity homogeneous shadows. The shadows of periosteal layers united bone fragments among themselves in the area of their junction.

При клиническом обследовании паталогическая подвижность и болезненность отсутствовали. После чего фиксацию аппаратом Илизарова прекратили.In a clinical examination, pathological mobility and soreness were absent. After that, the fixation by the Ilizarov apparatus was stopped.

К этому сроку на гистотопограммах определялось костное сращение, обеспеченное формированием губчатой кости как в интермедиарной зоне, так и за счет периостальных костных образований, спаивающих концы отломков. В интермедиарной зоне остеоны ориентированы по ходу врастания сосудов со стороны периоста и эндоста. Костные балки, формирующие остеоны, по строению приближались к пластинчатой костной ткани (Фиг.8). Периостальная зона регенерата была представлена с медиальной поверхности трабекулярной среднеячеистой костью (Фиг.9), с латеральной поверхности - участками трабекулярной кости грубоволокнистого строения и небольшими фрагментами волокнистой соединительной ткани. Эндостальная костная мозоль в области перелома представлена узкой полосой губчатой кости. Отмечалось формирование костномозговой полости, заполненной в проекции перелома участками ретикулярной ткани с элементами кроветворения и рыхлой волокнистой соединительной ткани, единичными костными трабекулами. Ближе к эндосту определялось формирование красного костного мозга (Фиг.10), выше и ниже места перелома отмечали единичные костные трабекулы и красно-желтый костный мозг с расширенными синусоидами.By this time, bone fusion determined by the formation of a trabecular bone both in the intermediate zone and due to periosteal bone formations soldering the ends of fragments was determined on histotopograms. In the intermediate zone, osteons are oriented along the growth of vessels from the side of the periosteum and endosta. Bone beams that form osteons were close in structure to lamellar bone tissue (Fig. 8). The periosteal zone of the regenerate was represented from the medial surface of the trabecular mediastinal bone (Fig. 9), from the lateral surface — portions of the trabecular bone of the coarse-fibrous structure and small fragments of fibrous connective tissue. Endosteal callus in the fracture area is represented by a narrow strip of cancellous bone. The formation of a bone marrow cavity filled in the projection of the fracture with sections of the reticular tissue with hematopoietic elements and loose fibrous connective tissue, single bone trabeculae was noted. Closer to the endostomy, the formation of red bone marrow was determined (Figure 10), single and bony trabeculae and a red-yellow bone marrow with dilated sinusoids were noted above and below the fracture site.

Предлагаемый способ моделирования стимуляции репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани позволяет создавать благоприятные условия для репаративной регенерации при переломах костей, что позволяет предотвратить возникновение остеокластической резорбции в зоне стыка отломков и способствует формированию интрамембранозного остеогенеза. Это приводит к сокращению сроков стабильной фиксации переломов в 1,5 раза. Кроме того, предлагаемый способ является легко и быстро выполнимым.The proposed method for modeling stimulation of reparative osteogenesis with an extract of cells of fetal bone tissue allows creating favorable conditions for reparative regeneration in case of bone fractures, which helps to prevent the occurrence of osteoclastic resorption in the junction of the fragments and contributes to the formation of intramembranous osteogenesis. This leads to a reduction in the terms of stable fixation of fractures by 1.5 times. In addition, the proposed method is easy and quick to perform.

Предлагаемый способ разработан в ФГУ «Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А.Илизарова Росмедтехнологий» и предназначен для его использования в клинической медицинской практике и в ветеринарии.The proposed method was developed at the Federal State Institution “Russian Scientific Center“ Reconstructive Traumatology and Orthopedics ”named after Acad. GA Ilizarova Rosmedtekhnologii ”and is intended for its use in clinical medical practice and in veterinary medicine.

Claims (1)

Способ моделирования стимуляции репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани, включающий остеосинтез и введение стимулирующего препарата, отличающийся тем, что в качестве стимулирующего препарата используют сухой экстракт клеток фетальной костной ткани животного, приготовленный из костей свода черепа, который непосредственно перед введением растворяют в стерильном растворителе и через 14 сут фиксации вводят однократно в дозе 1 мг на 1 кг массы тела в параоссальные ткани области перелома. A method of modeling stimulation of reparative osteogenesis with an extract of fetal bone tissue cells, including osteosynthesis and administration of a stimulating preparation, characterized in that the dry extract of fetal bone tissue cells of an animal prepared from bones of the cranial vault, which is dissolved in a sterile solvent immediately before administration, is used as the stimulating preparation after 14 days of fixation, they are administered once at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight into the paraossal tissue of the fracture area.
RU2010100536/14A 2010-01-11 2010-01-11 Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells RU2433794C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) 2010-01-11 2010-01-11 Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) 2010-01-11 2010-01-11 Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2433794C2 true RU2433794C2 (en) 2011-11-20

Family

ID=45316809

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) 2010-01-11 2010-01-11 Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2433794C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2717217C1 (en) * 2019-04-18 2020-03-18 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Уральский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО УГМУ Минздрава России) Method for simulating and treating an open fracture of a tubular bone in an experiment
RU2783642C1 (en) * 2022-05-25 2022-11-15 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) Method for stimulation of reparative osteogenesis in experiment

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1456099A1 (en) * 1985-01-31 1989-02-07 Кемеровский государственный медицинский институт Method of treatment of two-sided chronic frontal sinusitis
MD305C2 (en) * 1984-02-20 1996-02-29 Государственный Университет Молд0 The method of stimulation the osteogenesis by G.I.Lavrishcheva and P.I.Chebanu
MD899G2 (en) * 1997-04-14 1998-06-30 Государственный Университет Молд0 Process for activation of the reparative osteogenesis
RU2370227C1 (en) * 2008-03-20 2009-10-20 Общество с ограниченной ответственностью "Транс-Технологии" Method of treating multi-splintered and multiple fractures of long tubular bones

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD305C2 (en) * 1984-02-20 1996-02-29 Государственный Университет Молд0 The method of stimulation the osteogenesis by G.I.Lavrishcheva and P.I.Chebanu
SU1456099A1 (en) * 1985-01-31 1989-02-07 Кемеровский государственный медицинский институт Method of treatment of two-sided chronic frontal sinusitis
MD899G2 (en) * 1997-04-14 1998-06-30 Государственный Университет Молд0 Process for activation of the reparative osteogenesis
RU2370227C1 (en) * 2008-03-20 2009-10-20 Общество с ограниченной ответственностью "Транс-Технологии" Method of treating multi-splintered and multiple fractures of long tubular bones

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
НАКУ В.Е. Оптимизация костной регенерации при нарушении репаративного остеогенеза длинных костей. Клiнiчна анатомiя та оперативна хiрургiя, 2007, т.6, №2, с.49-52. BYUNG-JUN JANG et al. Implantantion of canine umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells mixed with beta-tricalcium phosphate enhances osteogenesis in bone defect model dogs. J. Vet. Sci. 2008, 9(4), p.387-393. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2717217C1 (en) * 2019-04-18 2020-03-18 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Уральский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО УГМУ Минздрава России) Method for simulating and treating an open fracture of a tubular bone in an experiment
RU2783642C1 (en) * 2022-05-25 2022-11-15 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) Method for stimulation of reparative osteogenesis in experiment

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2668372C1 (en) Methods for treating degenerative bone conditions
Sawaki et al. Mandibular lengthening by distraction osteogenesis using osseointegrated implants and an intraoral device: A preliminary report
Abdelrahim et al. Effect of pulsed electromagnetic field on healing of mandibular fracture: a preliminary clinical study
Xie et al. A preliminary study of the effect of low intensity pulsed ultrasound on new bone formation during mandibular distraction osteogenesis in rabbits
Seman et al. Model of a critical size defect in the new zealand white rabbit’s tibia
RU2676653C1 (en) Method for producing of osteoarthrosis model of rabbit knee joint of traumatic genesis
RU2433794C2 (en) Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells
Zwetyenga et al. Reconstruction of large mandibular and surrounding soft-tissue defects using distraction with bone transport
RU2354322C1 (en) Method of mechanical stimulation of retarded osteogenesis in case of bone fractures
Zandi et al. Histological assessment of the effects of teriparatide therapy on mandibular fracture healing: a preclinical study
do Nascimento et al. Laser versus ultrasound on bone density recuperation after distraction osteogenesis—a cone-beam computer tomographic analysis
Zhang et al. Evaluation of a pig femoral head osteonecrosis model
Polyzois et al. Current concepts in delayed bone union and non-union
RU2816808C1 (en) Method for optimizing reparative osteogenesis of long bones in animals
RU2797629C1 (en) Method of modeling pseudoarthrosis of the tibia in rabbits
RU2180534C2 (en) Surgical method for treating traumatic bone injuries
Rickert et al. Growth modulation by stimulating the growth plate: a pilot study
RU2225212C2 (en) Method for stimulating distraction regenerate
RU2071740C1 (en) Method for stimulating repair process in bone
MUHAMAD et al. ENHANCING BONE DEFECT HEALING IN RABBITS BY USING AUTOLOGOUS BONE MARROW ASPIRATE AND ELECTRICAL STIMULATION.
RU2844452C1 (en) Method for experimental simulation of tubular bone defect in rats
RU2301457C2 (en) Method for modeling delayed osteogenesis
Pena-Martinez et al. Interosseous electrostimulation in a model of lengthening with external fixation
RU104445U1 (en) LOCK FOR OSTEOSYNTHESIS OF THE TIBERA
RU2463668C1 (en) Method for experimental simulation of delayed distraction osteogenesis accompanying shortening of extremity bones

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20130112