RU2433794C2 - Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells - Google Patents
Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells Download PDFInfo
- Publication number
- RU2433794C2 RU2433794C2 RU2010100536/14A RU2010100536A RU2433794C2 RU 2433794 C2 RU2433794 C2 RU 2433794C2 RU 2010100536/14 A RU2010100536/14 A RU 2010100536/14A RU 2010100536 A RU2010100536 A RU 2010100536A RU 2433794 C2 RU2433794 C2 RU 2433794C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- bone
- bone tissue
- stimulation
- extract
- tissue cells
- Prior art date
Links
- 210000000988 bone and bone Anatomy 0.000 title claims abstract description 66
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 31
- 230000011164 ossification Effects 0.000 title claims abstract description 23
- 230000001605 fetal effect Effects 0.000 title claims abstract description 15
- 239000000284 extract Substances 0.000 title claims abstract description 14
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 title claims abstract description 11
- 230000004936 stimulating effect Effects 0.000 claims abstract description 15
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 claims abstract description 13
- 239000002904 solvent Substances 0.000 claims abstract description 6
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 claims abstract description 5
- 230000037396 body weight Effects 0.000 claims abstract description 5
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 claims abstract description 5
- 239000012634 fragment Substances 0.000 abstract description 27
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 7
- 238000007596 consolidation process Methods 0.000 abstract description 2
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 210000003625 skull Anatomy 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 208000010392 Bone Fractures Diseases 0.000 description 15
- 206010017076 Fracture Diseases 0.000 description 11
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 10
- 210000001185 bone marrow Anatomy 0.000 description 9
- 230000004927 fusion Effects 0.000 description 8
- WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N Haematoxylin Chemical compound C12=CC(O)=C(O)C=C2CC2(O)C1C1=CC=C(O)C(O)=C1OC2 WZUVPPKBWHMQCE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 6
- 244000309464 bull Species 0.000 description 6
- 238000005755 formation reaction Methods 0.000 description 6
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 6
- 230000001599 osteoclastic effect Effects 0.000 description 5
- 230000008569 process Effects 0.000 description 5
- 208000006735 Periostitis Diseases 0.000 description 4
- OSGAYBCDTDRGGQ-UHFFFAOYSA-L calcium sulfate Chemical compound [Ca+2].[O-]S([O-])(=O)=O OSGAYBCDTDRGGQ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 4
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 4
- 230000007547 defect Effects 0.000 description 4
- 230000003111 delayed effect Effects 0.000 description 4
- 210000003460 periosteum Anatomy 0.000 description 4
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 3
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 3
- 238000011161 development Methods 0.000 description 3
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 3
- YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N eosin Chemical compound [Na+].OC(=O)C1=CC=CC=C1C1=C2C=C(Br)C(=O)C(Br)=C2OC2=C(Br)C(O)=C(Br)C=C21 YQGOJNYOYNNSMM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 230000012010 growth Effects 0.000 description 3
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 3
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 3
- 210000002414 leg Anatomy 0.000 description 3
- 238000001000 micrograph Methods 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 3
- 230000000399 orthopedic effect Effects 0.000 description 3
- 230000002188 osteogenic effect Effects 0.000 description 3
- 230000008929 regeneration Effects 0.000 description 3
- 238000011069 regeneration method Methods 0.000 description 3
- 210000002303 tibia Anatomy 0.000 description 3
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 2
- 229920001222 biopolymer Polymers 0.000 description 2
- 210000003275 diaphysis Anatomy 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 210000001564 haversian system Anatomy 0.000 description 2
- 208000014674 injury Diseases 0.000 description 2
- 230000003902 lesion Effects 0.000 description 2
- 230000008439 repair process Effects 0.000 description 2
- 102220240796 rs553605556 Human genes 0.000 description 2
- 210000004872 soft tissue Anatomy 0.000 description 2
- 230000017423 tissue regeneration Effects 0.000 description 2
- 230000008733 trauma Effects 0.000 description 2
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000008215 water for injection Substances 0.000 description 2
- ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 7553-56-2 Chemical compound [I] ZCYVEMRRCGMTRW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010020649 Hyperkeratosis Diseases 0.000 description 1
- 239000004677 Nylon Substances 0.000 description 1
- 208000002565 Open Fractures Diseases 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 230000001133 acceleration Effects 0.000 description 1
- 230000000735 allogeneic effect Effects 0.000 description 1
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 description 1
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 description 1
- 210000002805 bone matrix Anatomy 0.000 description 1
- 238000005266 casting Methods 0.000 description 1
- 239000003153 chemical reaction reagent Substances 0.000 description 1
- 238000004581 coalescence Methods 0.000 description 1
- 230000006835 compression Effects 0.000 description 1
- 238000007906 compression Methods 0.000 description 1
- 239000003684 drug solvent Substances 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 210000003414 extremity Anatomy 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 210000000604 fetal stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 210000003754 fetus Anatomy 0.000 description 1
- 230000003394 haemopoietic effect Effects 0.000 description 1
- 230000035876 healing Effects 0.000 description 1
- 230000036541 health Effects 0.000 description 1
- 230000001771 impaired effect Effects 0.000 description 1
- 230000001939 inductive effect Effects 0.000 description 1
- 238000010255 intramuscular injection Methods 0.000 description 1
- 239000007927 intramuscular injection Substances 0.000 description 1
- PNDPGZBMCMUPRI-UHFFFAOYSA-N iodine Chemical compound II PNDPGZBMCMUPRI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910052740 iodine Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000011630 iodine Substances 0.000 description 1
- 239000000644 isotonic solution Substances 0.000 description 1
- 210000001699 lower leg Anatomy 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 1
- 229920001778 nylon Polymers 0.000 description 1
- 210000000963 osteoblast Anatomy 0.000 description 1
- 230000001575 pathological effect Effects 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- 230000004962 physiological condition Effects 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 230000035935 pregnancy Effects 0.000 description 1
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 1
- 238000005476 soldering Methods 0.000 description 1
- 210000000130 stem cell Anatomy 0.000 description 1
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 1
- 239000000725 suspension Substances 0.000 description 1
- 230000009772 tissue formation Effects 0.000 description 1
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, а именно к ортопедии и травматологии, и ветеринарии, может быть использовано для стимуляции репаративных процессов поврежденных костей, в частности при значительной степени травматизации остеогенных тканей (костный мозг, надкостница) и повреждении питающих кость сосудов.The invention relates to medicine, namely to orthopedics and traumatology, and veterinary medicine, can be used to stimulate the reparative processes of damaged bones, in particular with a significant degree of trauma to osteogenic tissues (bone marrow, periosteum) and damage to the vessels feeding the bone.
Известен способ моделирования стимуляции регенерации костной ткани, заключающийся в отграничении области циркулярного дефекта длинной трубчатой кости от проникновения окружающих тканей пленкой из динитроцеллюлозы, которую накладывают циркулярно с перекрытием краев дефекта на 5-7 мм и плотно фиксируют капроновыми нитями, предварительно с концов костных фрагментов удаляя надкостницу (Заявка РФ 2005100265/14. Способ моделирования стимуляции регенерации костной ткани / Шевцов В.И., Дьячков А.Н., Ручкина И.В., Государственное учреждение Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А.Илизарова (РФ); заявл. 11.01.2005., опубл. 20.06.2006, Бюл. №17).A known method of modeling stimulation of bone tissue regeneration, which consists in delimiting the region of a circular defect of a long tubular bone from the penetration of surrounding tissues by a film of dinitrocellulose, which is applied circularly with overlapping edges of the defect by 5-7 mm and tightly fixed with nylon threads, previously removing the periosteum from the ends of bone fragments (RF Application 2005100265/14. Method for modeling bone tissue regeneration stimulation / Shevtsov V.I., Dyachkov A.N., Ruchkina I.V., Russian State Institution The 1st Scientific Center “Reconstructive Traumatology and Orthopedics” named after Academician G.A. Ilizarov (RF); declared on January 11, 2005, published on June 20, 2006, Bull. No. 17).
Однако известный способ используется для стимуляции репаративной регенерации костной ткани при замещении циркулярных дефектов.However, the known method is used to stimulate the reparative regeneration of bone tissue when replacing circular defects.
Известен способ стимуляции репаративного процесса кости, заключающийся в том, что после завершения периода дистракции одновременно сближают дистальную и проксимальную части костного реагента, осуществляя компрессию соединительнотканной прослойки регенерата (Патент 2071740 РФ, МКИ6 A61B 17/56. Способ стимуляции репаративного процесса кости / В.И.Шевцов (РФ), А.В.Попков (РФ). - №94013185/14; заявл. 13.04.94; опубл. 20.01.97, Бюл.2).A known method of stimulating the repair process of the bone, which consists in the fact that after the end of the distraction period, the distal and proximal parts of the bone reagent are brought together, compressing the connective tissue layer of the regenerate (Patent 2071740 of the Russian Federation, MKI6 A61B 17/56. Method of stimulating the repair process of the bone / V.I. . Shevtsov (RF), A.V. Popkov (RF). - No. 94013185/14; application. 13.04.94; publ. 20.01.97, Bull. 2).
Однако известный способ предназначен для стимуляции формирования костного регенерата при дистракционном остеогенезе.However, the known method is intended to stimulate the formation of bone regenerate during distraction osteogenesis.
Известен способ механической стимуляции замедленного остеогенеза при переломах костей, заключающийся в том, что отломки кости фиксируют аппаратом для чрескостного остеосинтеза с возможностью перемещения и через 3-5 дней после операции к отломкам кости прикладывают дозированные дистракционные усилия с темпом 0,5 мм в сутки, на протяжении 4-х суток, затем фиксируют отломки в достигнутом положении в течение 3-х суток, после чего осуществляют компрессию, точно сопоставляя отломки, ориентируя их относительно продольной оси, и фиксируют до сращения (Патент 2354322 РФ, МПК8 A61B 17/58. Способ механической стимуляции замедленного остеогенеза при переломах костей / Кононович Н.А. (RU), Дюрягин Е.В. (RU), Дьячков А.Н. (RU), ФГУ «РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А.Илизарова Росмедтехнологий» (RU). - №20071364269/14; заявл. 01.10.2007; опубл. 10.05.2009, Бюл. №13).A known method of mechanical stimulation of delayed osteogenesis in bone fractures, which consists in the fact that bone fragments are fixed with a device for transosseous osteosynthesis with the ability to move and 3-5 days after surgery, metered distraction efforts are applied to bone fragments at a rate of 0.5 mm per day, for 4 days, then the fragments are fixed in the reached position for 3 days, after which they are compressed, precisely matching the fragments, orienting them relative to the longitudinal axis, and fixing to the joint patent (Patent 2354322 RF, IPC8 A61B 17/58. Method for mechanical stimulation of delayed osteogenesis in bone fractures / N. Kononovich (RU), E. Dyuryagin (RU), A. Dyachkov (RU), Federal State Institution “ RRC “WTO” named after Academician G. A. Ilizarov of Rosmedtehnologii ”(RU). - No. 20071364269/14; declared. 01.10.2007; publ. 10.05.2009, Bull. No. 13).
Однако известный способ предполагает в качестве прямого стимулирующего воздействия нарушение неподвижности костных отломков на этапе фиксации, что может быть достигнуто только при помощи специальной фиксирующей конструкции, позволяющей создать дозированные дистракционные и компрессионные усилия в зоне излома.However, the known method assumes as a direct stimulating effect the violation of the immobility of bone fragments at the fixation stage, which can be achieved only with the help of a special fixing structure that allows you to create metered distraction and compression forces in the fracture zone.
Известна заливочная композиция для стимуляции образования кости и сращения кости, содержащая сульфат кальция и вязкие биополимеры, предотвращающая рост нежелательных соединительных тканей, а также индуцирующая рост кровеносных сосудов и развитие костных остеобластов на ранней стадии (Патент РФ №2296588 C2, МПК A61L 27/40, 27/44, 27/00, A61P 19/00. Заливочная композиция для стимуляции образования кости и сращения кости, содержащая сульфат кальция и вязкие биополимеры / КИМ Ин-Сан, ЧО Биунг Чае., РЕДЖЕН БАЙОТЕК, ИНК. (KR) - №2005113276/15; заявл. 30.09.2002., опубл. 10.04.2007, Бюл. №10).Known casting composition for stimulating bone formation and bone fusion, containing calcium sulfate and viscous biopolymers, preventing the growth of unwanted connective tissues, as well as inducing the growth of blood vessels and the development of bone osteoblasts at an early stage (RF Patent No. 2296588 C2, IPC A61L 27/40, 27/44, 27/00, A61P 19/00 Filling composition for stimulating bone formation and bone fusion containing calcium sulfate and viscous biopolymers / KIM In-San, Cho Biung Tea., REGEN BYOTEK, INC. (KR) - No. 2005113276/15; claimed 30.09.2002., Published 10.04.2007, Bull . No. 10).
Однако известная композиция применяется для заполнения полостей костных дефектов, а также вводится в полость диастаза с целью стимуляции остеогенеза после вытяжения костей, в частности челюсти, и не была использована для стимуляции остеогенеза при сращении переломов костей.However, the known composition is used to fill the cavities of bone defects, and is also introduced into the cavity of the diastasis in order to stimulate osteogenesis after stretching of the bones, in particular the jaw, and was not used to stimulate osteogenesis during the healing of bone fractures.
Известен способ моделирования замедленного остеогенеза, включающий нарушение целостности костной ткани, фиксацию отломков кости аппаратом для чрескостного остеосинтеза, в котором препарируют прилегающие к кости мягкие ткани. Осуществляют остеотомию берцовых костей экспериментального животного, выводят концы фрагментов из раны. Удаляют из каждого содержимое костномозговой полости и участок питательной артерии. Затем концы фрагментов сопоставляют и фиксируют до сращения. В созданных неблагоприятных физиологических условиях через 30 суток после остеосинтеза определяется выраженная остеокластическая резорбция концов костных отломков. Полное костное сращение перелома происходит к 60-75 суткам стабильной фиксации и характеризуется эндохондральным остеогенезом (Патент РФ №2301457, МКИ8 G09B 23/28. Способ моделирования замедленного остеогенеза / Кононович Н.А. (RU), Дюрягин E.B. (RU), Дьячков A.H. (RU), ФГУН «РНЦ «ВТО» им. акад. Г.А.Илизарова Росздрава» (RU). - №2005104529/14; заявл. 18.02.2005; опубл. 20.06.2007, Бюл. 17).A known method of modeling delayed osteogenesis, including violation of the integrity of bone tissue, fixation of bone fragments by the apparatus for transosseous osteosynthesis, in which dissected adjacent to the bone soft tissue. An osteotomy of the tibia of the experimental animal is carried out, the ends of the fragments are removed from the wound. The contents of the bone marrow cavity and the area of the nutrient artery are removed from each. Then the ends of the fragments are compared and fixed to fusion. Under unfavorable physiological conditions created, 30 days after osteosynthesis, pronounced osteoclastic resorption of the ends of bone fragments is determined. Complete bone fusion coalescence occurs at 60-75 days of stable fixation and is characterized by endochondral osteogenesis (RF Patent No. 2301457, MKI8 G09B 23/28. Modeling method for delayed osteogenesis / Kononovich N.A. (RU), Dyuryagin EB (RU), Dyachkov AH (RU), Federal State Budgetary Institution Scientific and Research Center “WTO” named after Academician G.A. Ilizarov of Roszdrav (RU) - No. 2005104529/14; announced on February 18, 2005; published on June 20, 2007, Bull. 17).
Известно, что в качестве источника фетального материала служат нежизнеспособные плоды человека, полученные от женщин, искусственно прерывающих беременность по социальным и медицинским показаниям (Доскалиев Ж.А., Каюпов Б.А. Роль фетальных стволовых клеток в восстановлении нарушенных функций органов и тканей // Ежегодная Всероссийская и международная конференция «Стволовые клетки и перспектива их использования в здравоохранении». 2007. URL: http://www.stemcell.ru/news/phpnews/cell_news.php?nom_news=930 (дата обращения: 28.09.2009)).It is known that nonviable human fetuses obtained from women who artificially terminate pregnancy for social and medical reasons (Doskaliev Zh.A., Kayupov B.A., The role of fetal stem cells in the restoration of impaired functions of organs and tissues // serve as a source of fetal material). Annual All-Russian and International Conference “Stem Cells and the Prospect for Their Use in Health Care.” 2007. URL: http://www.stemcell.ru/news/phpnews/cell_news.php?nom_news=930 (accessed September 28, 2009)) .
Известны фетальные органопрепараты (трансплантаты, группы клеток, клеточные экстракты, гидролизаты и отдельные биомолекулы), которые приготавливаются из органов и тканей здоровых животных (http://www.regbiomed.com/journal/cabines/Cabines№14_2004.doc).Fetal organ preparations are known (transplants, groups of cells, cell extracts, hydrolysates and individual biomolecules), which are prepared from organs and tissues of healthy animals (http://www.regbiomed.com/journal/cabines/Cabines№14_2004.doc).
Известен способ стимуляции остеогенеза, включающий внутримышечное введение взвеси аллогенного гидроксилаппатита в изотоническом растворе хлорида натрия и обеспечивающий ускорение формирования костной ткани на месте деминерализованного костного матрикса в эксперименте (Патент РФ №2219933, МПК A61K 33/00. Способ стимуляции остеогенеза / Волова Л.Т., Подковкин В.Г., Власов М.Ю. - №2002119768/14; заявл. 22.07.2002., опубл. 27.12.2003).A known method of stimulating osteogenesis, including intramuscular injection of a suspension of allogeneic hydroxylappatite in an isotonic sodium chloride solution and providing acceleration of bone tissue formation at the site of demineralized bone matrix in the experiment (RF Patent No. 2219933, IPC A61K 33/00. Method of stimulation of osteogenesis / Volova L.T. , Podkovkin V.G., Vlasov M.Yu. - No. 2002119768/14; declared. 22.07.2002., Published. 27.12.2003).
Известен способ стимуляции репаративных процессов в костной ткани после остеосинтеза, при выполнении которого животным в послеоперационном периоде внутрь вводят сел-плекс в дозе 5 мг на 1 кг живой массы 1 раз в сутки в течение 14 дней (Патент РФ №2295962 C1, МПК A61K 33/04, A61P 19/00. Способ стимуляции репаративных процессов в костной ткани после остеосинтеза / Сахно Н.В., Садовников Н.В., Папазян Т.Т., Садовникова Н.Ю., Черванев В.А., Трояновская Л.П., Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования «Орловский государственный аграрный университет» (РФ). - №2005128000/14; заявл. 07.09.2005, опубл. 27.03.2007, Бюл. №9).There is a method of stimulating reparative processes in bone tissue after osteosynthesis, during which animals in the postoperative period are injected with SELPLEX at a dose of 5 mg per 1 kg of live weight 1 time per day for 14 days (RF Patent No. 2295962 C1, IPC A61K 33 / 04, A61P 19/00 Method of stimulation of reparative processes in bone tissue after osteosynthesis / Sakhno NV, Sadovnikov NV, Papazyan TT, Sadovnikova N.Yu., Chervanev VA, Troyanovskaya L .P., Federal State Educational Establishment of Higher Professional Education "Oryol State stressed agricultural university "(RF). - No. 2005128000/14; declared. 07.09.2005, published. 03.03.2007, Bull. No. 9).
Однако известный способ не оказывает прямого стимулирующего действия на репаративные процессы в зоне повреждения, не предотвращают возникновения остеокластической резорбции концов отломков и не способствуют развитию интрамембранозного остеогенеза.However, the known method does not have a direct stimulating effect on reparative processes in the lesion area, does not prevent the occurrence of osteoclastic resorption of the ends of the fragments, and does not contribute to the development of intramembranous osteogenesis.
Задачей настоящего изобретения является разработка способа, который оказывает прямое стимулирующее действие на репаративные процессы в зоне повреждения, предотвращает возникновение остеокластической резорбции концов отломков, способствует развитию интрамембранозного остеогенеза и тем самым сокращает сроки консолидации перелома. Поставленная задача решается тем, что в способе моделирования стимуляции репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани, включающем остеосинтез и введение стимулирующего препарата, в качестве стимулирующего препарата используют сухой экстракт клеток фетальной костной ткани, приготовленный из костей свода черепа, который непосредственно перед введением растворяют в стерильном растворителе и вводят однократно в дозе 1 мг на 1 кг массы тела в параоссальные ткани области перелома.The objective of the present invention is to develop a method that has a direct stimulating effect on reparative processes in the lesion zone, prevents the occurrence of osteoclastic resorption of the ends of the fragments, promotes the development of intra-membranous osteogenesis and thereby reduces the time of fracture consolidation. The problem is solved in that in the method for modeling stimulation of reparative osteogenesis with an extract of fetal bone tissue cells, including osteosynthesis and administration of a stimulating drug, a dry extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault, which is dissolved in sterile immediately before administration, is used as a stimulating drug solvent and injected once at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight into the paraossal tissue of the fracture area.
Целесообразно в качестве растворителя использовать воду для инъекций или изотонический раствор натрия хлорида.It is advisable to use water for injection or an isotonic sodium chloride solution as a solvent.
Настоящее изобретение поясняют подробным описанием, прилагаемыми фото, рентгенограммами и гистотопограммами, на которых:The present invention is illustrated by a detailed description, the attached photos, radiographs and histotopograms, on which:
Фиг.1 - вид голени собаки после нарушения целостности кости и наложения аппарата чрескостной фиксации (далее аппарат);Figure 1 - view of the leg of the dog after violation of the integrity of the bone and the imposition of the transosseous fixation apparatus (hereinafter the apparatus);
Фиг.2 - сухой экстракт клеток фетальной костной ткани;Figure 2 - dry extract of cells of fetal bone tissue;
Фиг.3 - раствор сухого экстракта клеток фетальной костной ткани;Figure 3 - a solution of a dry extract of cells of fetal bone tissue;
Фиг.4 - инъекция раствора экстракта фетальной костной ткани в параоссальные ткани области перелома;Figure 4 - injection of a solution of extract of fetal bone tissue in the paraossal tissue of the fracture area;
Фиг.5 - копия рентгенограммы костей голени, 30 суток фиксации, согласно изобретению;5 is a copy of an x-ray of the bones of the leg, 30 days of fixation, according to the invention;
Фиг.6 - копия рентгенограммы костей голени, 45 суток фиксации, согласно изобретению;6 is a copy of the x-ray of the bones of the leg, 45 days of fixation, according to the invention;
Фиг.7 - копия гистотопограммы регенерата диафиза большеберцовой кости собаки через 45 суток фиксации конечности в аппарате. Препарат окрашен по Ван-Гизону. Увеличение - 1,5x.;7 is a copy of the histotopogram of the regeneration of the diaphysis of the tibia of the dog after 45 days of limb fixation in the apparatus. The drug is stained according to Van Gieson. Magnification - 1.5x .;
Фиг.8 - копия микрофотографии интермедиарной области зоны костного сращения. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 250x;Fig. 8 is a copy of a micrograph of the intermediate region of the bone fusion zone. Hematoxylin and eosin stain. Magnification - 250x;
Фиг.9 - копия микрофотографии периостальной области зоны костного сращения. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 250x;Figure 9 is a copy of the micrograph of the periosteal region of the bone fusion zone. Hematoxylin and eosin stain. Magnification - 250x;
Фиг.10 - копия микрофотографии красного костного мозга в костномозговом канале регенерата. Окраска гематоксилином и эозином. Увеличение - 630x.Figure 10 is a copy of a micrograph of red bone marrow in the bone marrow channel of the regenerate. Hematoxylin and eosin stain. The magnification is 630x.
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
Перелом костей, сопровождающийся значительным повреждением остеогенных тканей и питающих кость сосудов, точно репонируют и стабильно фиксируют (Фиг.1). Через 14 суток фиксации осуществляют стимуляцию репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани, приготовленным из костей свода черепа. Для этого сухой экстракт клеток фетальной костной ткани (Фиг.2), приготовленный из костей свода черепа, в дозе 1 мг на 1 кг массы тела растворяют в стерильном растворителе в количестве, необходимом для инъекции малого объема (Фиг.3). В качестве растворителя используют воду для инъекций или изотонический раствор натрия хлорида. Полученный раствор вводят однократно путем инъекции в параоссальные ткани в области стыка костных отломков (Фиг.4). В результате этого к 30 суткам после остеосинтеза отсутствуют признаки остеокластической резорбции концов отломков в зоне их стыка (Фиг.5) и через 45 суток стабильной фиксации наступает полное костное сращение, обеспеченное формированием губчатой кости, как в интермедиарной зоне, так и за счет периостальных костных образований (Фиг.6, 7). В этот период фиксацию перелома прекращают.A bone fracture, accompanied by significant damage to the osteogenic tissues and the vessels supplying the bone, is precisely repaired and stably fixed (Figure 1). After 14 days of fixation, reparative osteogenesis is stimulated with an extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault. For this, a dry extract of cells of fetal bone tissue (Figure 2), prepared from the bones of the cranial vault, at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight is dissolved in a sterile solvent in an amount necessary for small volume injection (Figure 3). As a solvent, water for injection or an isotonic sodium chloride solution is used. The resulting solution is administered once by injection into paraossal tissues at the junction of bone fragments (Figure 4). As a result, by 30 days after osteosynthesis, there are no signs of osteoclastic resorption of the ends of the fragments in the area of their junction (Fig. 5) and after 45 days of stable fixation, complete bone fusion ensured by the formation of the spongy bone, both in the intermediate zone and due to periosteal bone formations (Fig.6, 7). During this period, the fixation of the fracture is stopped.
Пример выполнения способа.An example of the method.
У экспериментального животного (собака №4790) смоделировали открытый перелом костей голени, сопровождающийся значительным повреждением надкостницы, костного мозга и разрывом питающих кость сосудов. Для этого в условиях операционной у наркотизированного животного, после обработки операционного поля 5% спиртовым раствором йода, на правую голень наложили аппарат Илизарова. В области средней трети диафиза берцовых костей осуществили открытую поперечную остеотомию при помощи пилы Джигли. Для усиления степени травматизации остеогенных тканей из костномозговых полостей проксимального и дистального отломков удалили содержимое на глубину не менее 1 см, после чего отломки точно сопоставили. На мягкие ткани наложили узловатые швы. Операционное поле обработали 5% спиртовым раствором йода.In an experimental animal (dog No. 4790), an open fracture of the lower leg bones was simulated, accompanied by significant damage to the periosteum, bone marrow and rupture of the vessels feeding the bone. For this, in the operating room of an anesthetized animal, after treating the surgical field with a 5% alcohol solution of iodine, the Ilizarov apparatus was placed on the right shin. An open transverse osteotomy was performed in the middle third of the tibia diaphysis with a Jigley saw. To enhance the degree of trauma to osteogenic tissues from the bone marrow cavities of the proximal and distal fragments, the contents were removed to a depth of at least 1 cm, after which the fragments were accurately compared. Knotted stitches were applied to the soft tissue. The surgical field was treated with 5% alcohol solution of iodine.
Через 14 суток после остеосинтеза в параоссальные ткани области стыка отломков путем инъекции малого объема ввели раствор сухого экстракта клеток фетальной костной ткани, приготовленный из костей свода черепа, в дозе 1 мг на 1 кг массы тела, где в качестве растворителя использовали стерильный изотонический раствор.14 days after osteosynthesis, a solution of a dry extract of fetal bone tissue cells prepared from bones of the cranial vault was injected into a paraossal tissue at the junction of the fragments by a small volume at a dose of 1 mg per 1 kg of body weight, where a sterile isotonic solution was used as a solvent.
Через 30 суток после остеосинтеза рентгенологически контуры концов отломков были нечеткие. Межотломковая щель не увеличена. Ее перекрывали гомогенные тени средней интенсивности. Вблизи линии излома наблюдали тени периостальных наслоений, не объединяющие отломки между собой.30 days after osteosynthesis, radiological contours of the ends of the fragments were fuzzy. The inter-fragment gap is not enlarged. It was covered by homogeneous shadows of medium intensity. Near the fracture line, shadows of periosteal layers were observed, not combining fragments among themselves.
К 45 суткам после остеосинтеза на рентгенограммах линия перелома слабо визуализировалась. Контуры концов отломков были размыты. Межотломковое пространство перекрывали гомогенные тени высокой интенсивности. Тени периостальных наслоений объединяли костные отломки между собой в области их стыка.By 45 days after osteosynthesis in the radiographs, the fracture line was poorly visualized. The contours of the ends of the fragments were blurred. The inter-fragment space was blocked by high-intensity homogeneous shadows. The shadows of periosteal layers united bone fragments among themselves in the area of their junction.
При клиническом обследовании паталогическая подвижность и болезненность отсутствовали. После чего фиксацию аппаратом Илизарова прекратили.In a clinical examination, pathological mobility and soreness were absent. After that, the fixation by the Ilizarov apparatus was stopped.
К этому сроку на гистотопограммах определялось костное сращение, обеспеченное формированием губчатой кости как в интермедиарной зоне, так и за счет периостальных костных образований, спаивающих концы отломков. В интермедиарной зоне остеоны ориентированы по ходу врастания сосудов со стороны периоста и эндоста. Костные балки, формирующие остеоны, по строению приближались к пластинчатой костной ткани (Фиг.8). Периостальная зона регенерата была представлена с медиальной поверхности трабекулярной среднеячеистой костью (Фиг.9), с латеральной поверхности - участками трабекулярной кости грубоволокнистого строения и небольшими фрагментами волокнистой соединительной ткани. Эндостальная костная мозоль в области перелома представлена узкой полосой губчатой кости. Отмечалось формирование костномозговой полости, заполненной в проекции перелома участками ретикулярной ткани с элементами кроветворения и рыхлой волокнистой соединительной ткани, единичными костными трабекулами. Ближе к эндосту определялось формирование красного костного мозга (Фиг.10), выше и ниже места перелома отмечали единичные костные трабекулы и красно-желтый костный мозг с расширенными синусоидами.By this time, bone fusion determined by the formation of a trabecular bone both in the intermediate zone and due to periosteal bone formations soldering the ends of fragments was determined on histotopograms. In the intermediate zone, osteons are oriented along the growth of vessels from the side of the periosteum and endosta. Bone beams that form osteons were close in structure to lamellar bone tissue (Fig. 8). The periosteal zone of the regenerate was represented from the medial surface of the trabecular mediastinal bone (Fig. 9), from the lateral surface — portions of the trabecular bone of the coarse-fibrous structure and small fragments of fibrous connective tissue. Endosteal callus in the fracture area is represented by a narrow strip of cancellous bone. The formation of a bone marrow cavity filled in the projection of the fracture with sections of the reticular tissue with hematopoietic elements and loose fibrous connective tissue, single bone trabeculae was noted. Closer to the endostomy, the formation of red bone marrow was determined (Figure 10), single and bony trabeculae and a red-yellow bone marrow with dilated sinusoids were noted above and below the fracture site.
Предлагаемый способ моделирования стимуляции репаративного остеогенеза экстрактом клеток фетальной костной ткани позволяет создавать благоприятные условия для репаративной регенерации при переломах костей, что позволяет предотвратить возникновение остеокластической резорбции в зоне стыка отломков и способствует формированию интрамембранозного остеогенеза. Это приводит к сокращению сроков стабильной фиксации переломов в 1,5 раза. Кроме того, предлагаемый способ является легко и быстро выполнимым.The proposed method for modeling stimulation of reparative osteogenesis with an extract of cells of fetal bone tissue allows creating favorable conditions for reparative regeneration in case of bone fractures, which helps to prevent the occurrence of osteoclastic resorption in the junction of the fragments and contributes to the formation of intramembranous osteogenesis. This leads to a reduction in the terms of stable fixation of fractures by 1.5 times. In addition, the proposed method is easy and quick to perform.
Предлагаемый способ разработан в ФГУ «Российский научный центр «Восстановительная травматология и ортопедия» им. акад. Г.А.Илизарова Росмедтехнологий» и предназначен для его использования в клинической медицинской практике и в ветеринарии.The proposed method was developed at the Federal State Institution “Russian Scientific Center“ Reconstructive Traumatology and Orthopedics ”named after Acad. GA Ilizarova Rosmedtekhnologii ”and is intended for its use in clinical medical practice and in veterinary medicine.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) | 2010-01-11 | 2010-01-11 | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) | 2010-01-11 | 2010-01-11 | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2433794C2 true RU2433794C2 (en) | 2011-11-20 |
Family
ID=45316809
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2010100536/14A RU2433794C2 (en) | 2010-01-11 | 2010-01-11 | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2433794C2 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2717217C1 (en) * | 2019-04-18 | 2020-03-18 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Уральский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО УГМУ Минздрава России) | Method for simulating and treating an open fracture of a tubular bone in an experiment |
| RU2783642C1 (en) * | 2022-05-25 | 2022-11-15 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for stimulation of reparative osteogenesis in experiment |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1456099A1 (en) * | 1985-01-31 | 1989-02-07 | Кемеровский государственный медицинский институт | Method of treatment of two-sided chronic frontal sinusitis |
| MD305C2 (en) * | 1984-02-20 | 1996-02-29 | Государственный Университет Молд0 | The method of stimulation the osteogenesis by G.I.Lavrishcheva and P.I.Chebanu |
| MD899G2 (en) * | 1997-04-14 | 1998-06-30 | Государственный Университет Молд0 | Process for activation of the reparative osteogenesis |
| RU2370227C1 (en) * | 2008-03-20 | 2009-10-20 | Общество с ограниченной ответственностью "Транс-Технологии" | Method of treating multi-splintered and multiple fractures of long tubular bones |
-
2010
- 2010-01-11 RU RU2010100536/14A patent/RU2433794C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| MD305C2 (en) * | 1984-02-20 | 1996-02-29 | Государственный Университет Молд0 | The method of stimulation the osteogenesis by G.I.Lavrishcheva and P.I.Chebanu |
| SU1456099A1 (en) * | 1985-01-31 | 1989-02-07 | Кемеровский государственный медицинский институт | Method of treatment of two-sided chronic frontal sinusitis |
| MD899G2 (en) * | 1997-04-14 | 1998-06-30 | Государственный Университет Молд0 | Process for activation of the reparative osteogenesis |
| RU2370227C1 (en) * | 2008-03-20 | 2009-10-20 | Общество с ограниченной ответственностью "Транс-Технологии" | Method of treating multi-splintered and multiple fractures of long tubular bones |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| НАКУ В.Е. Оптимизация костной регенерации при нарушении репаративного остеогенеза длинных костей. Клiнiчна анатомiя та оперативна хiрургiя, 2007, т.6, №2, с.49-52. BYUNG-JUN JANG et al. Implantantion of canine umbilical cord blood-derived mesenchymal stem cells mixed with beta-tricalcium phosphate enhances osteogenesis in bone defect model dogs. J. Vet. Sci. 2008, 9(4), p.387-393. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2717217C1 (en) * | 2019-04-18 | 2020-03-18 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Уральский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО УГМУ Минздрава России) | Method for simulating and treating an open fracture of a tubular bone in an experiment |
| RU2783642C1 (en) * | 2022-05-25 | 2022-11-15 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Кубанский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО КубГМУ Минздрава России) | Method for stimulation of reparative osteogenesis in experiment |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2668372C1 (en) | Methods for treating degenerative bone conditions | |
| Sawaki et al. | Mandibular lengthening by distraction osteogenesis using osseointegrated implants and an intraoral device: A preliminary report | |
| Abdelrahim et al. | Effect of pulsed electromagnetic field on healing of mandibular fracture: a preliminary clinical study | |
| Xie et al. | A preliminary study of the effect of low intensity pulsed ultrasound on new bone formation during mandibular distraction osteogenesis in rabbits | |
| Seman et al. | Model of a critical size defect in the new zealand white rabbit’s tibia | |
| RU2676653C1 (en) | Method for producing of osteoarthrosis model of rabbit knee joint of traumatic genesis | |
| RU2433794C2 (en) | Method of modelling stimulation of reparative osteogenesis with extract of fetal bone tissue cells | |
| Zwetyenga et al. | Reconstruction of large mandibular and surrounding soft-tissue defects using distraction with bone transport | |
| RU2354322C1 (en) | Method of mechanical stimulation of retarded osteogenesis in case of bone fractures | |
| Zandi et al. | Histological assessment of the effects of teriparatide therapy on mandibular fracture healing: a preclinical study | |
| do Nascimento et al. | Laser versus ultrasound on bone density recuperation after distraction osteogenesis—a cone-beam computer tomographic analysis | |
| Zhang et al. | Evaluation of a pig femoral head osteonecrosis model | |
| Polyzois et al. | Current concepts in delayed bone union and non-union | |
| RU2816808C1 (en) | Method for optimizing reparative osteogenesis of long bones in animals | |
| RU2797629C1 (en) | Method of modeling pseudoarthrosis of the tibia in rabbits | |
| RU2180534C2 (en) | Surgical method for treating traumatic bone injuries | |
| Rickert et al. | Growth modulation by stimulating the growth plate: a pilot study | |
| RU2225212C2 (en) | Method for stimulating distraction regenerate | |
| RU2071740C1 (en) | Method for stimulating repair process in bone | |
| MUHAMAD et al. | ENHANCING BONE DEFECT HEALING IN RABBITS BY USING AUTOLOGOUS BONE MARROW ASPIRATE AND ELECTRICAL STIMULATION. | |
| RU2844452C1 (en) | Method for experimental simulation of tubular bone defect in rats | |
| RU2301457C2 (en) | Method for modeling delayed osteogenesis | |
| Pena-Martinez et al. | Interosseous electrostimulation in a model of lengthening with external fixation | |
| RU104445U1 (en) | LOCK FOR OSTEOSYNTHESIS OF THE TIBERA | |
| RU2463668C1 (en) | Method for experimental simulation of delayed distraction osteogenesis accompanying shortening of extremity bones |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20130112 |