RU2292213C2 - METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis - Google Patents
METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2292213C2 RU2292213C2 RU2004127572/13A RU2004127572A RU2292213C2 RU 2292213 C2 RU2292213 C2 RU 2292213C2 RU 2004127572/13 A RU2004127572/13 A RU 2004127572/13A RU 2004127572 A RU2004127572 A RU 2004127572A RU 2292213 C2 RU2292213 C2 RU 2292213C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- escherichia coli
- strains
- cultivation
- enterococcus faecalis
- fecal
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Coloring Foods And Improving Nutritive Qualities (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской промышленности, в частности биотехнологии, и может быть использовано при производстве лекарственных средств.The invention relates to the medical industry, in particular biotechnology, and can be used in the manufacture of medicines.
В настоящее время лекарственные средства, состоящие из живых микроорганизмов (препараты-пробиотики), широко применяются в медицине и ветеринарии для нормализации кишечной микрофлоры и повышения общей резистентности организма. (Шевелева С.А. Пробиотики, пребиотики и пробиотические продукты. Современное состояние вопроса. //Вопросы питания. - 1999. - Том 68. - №2. - с.32-40)Currently, drugs consisting of living microorganisms (probiotic preparations) are widely used in medicine and veterinary medicine to normalize the intestinal microflora and increase the general resistance of the body. (Sheveleva SA Probiotics, prebiotics and probiotic products. Current status of the issue. // Nutrition issues. - 1999. - Volume 68. - No. 2. - p. 32-40)
Известны работы О.Карапетяна и А.Карапетян, в результате которых была разработана биологически активная добавка к пище - концентрат бактериальный сухой Окарин (ТУ 550 МУ 0583467001-93), предназначенная для нормализации микрофлоры желудочно-кишечного тракта. В ее состав вошли три штамма кишечной палочки Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61, и один штамм фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62, зарегистрированные в Государственном научно-исследовательском институте стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов им. Л.А.Тарасевича 22.03.83 г. (паспорт №01-07/89) и в коллекции культур США (1992 г.) под депозитными номерами АТСС №55343, АТСС №55344, АТСС №55345, АТСС №55346. Данные штаммы выделены из организма здорового человека, обладают высокой адгезивной и антагонистической активностью против широкого спектра патогенных и условно-патогенных микроорганизмов, устойчивы к антибиотикотерапии и лучевому воздействию и обладают канцеролитическими свойствами.The works of O. Karapetyan and A. Karapetyan are known, as a result of which a biologically active food supplement - bacterial dry Okarin concentrate (TU 550 MU 0583467001-93), designed to normalize the microflora of the gastrointestinal tract, was developed. It included three strains of Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35-3 / 61, and one strain of fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62, registered at the State Research Institute for Standardization and Control of Medical Biological Preparations. L.A. Tarasevich 03.22.83 (passport No. 01-07 / 89) and in the collection of US cultures (1992) under deposit numbers ATCC No. 55343, ATCC No. 55344, ATCC No. 55345, ATCC No. 55346. These strains were isolated from the body of a healthy person, have high adhesive and antagonistic activity against a wide range of pathogenic and opportunistic microorganisms, are resistant to antibiotic therapy and radiation exposure, and have carcinolytic properties.
Наиболее близким к заявляемому по технической сущности и достигаемому результату, выбранным в качестве прототипа, является способ получения концентрата бактериального сухого Окарин, изложенный Карапетяном О.Г., Карапетян А.О., Фанарджан Б.А., Тер-Казарьян С.Ш. в статье «Улучшение дискомфортного состояния при хронических желудочно-кишечных заболеваниях путем восстановления кишечной микрофлоры с помощью кисломолочного продукта» //Сб.науч.тр. Современная технология сыроделия и безотходная переработка молока. Ереван, 1989 г., стр.310-311//, разрешенного к применению в качестве биологически активной добавке к пище в 1993 г.Closest to the claimed technical essence and the achieved result, selected as a prototype, is a method of obtaining a bacterial dry concentrate Okarin described by Karapetyan OG, Karapetyan A.O., Fanardzhan B.A., Ter-Kazaryan S.Sh. in the article “Improving the uncomfortable state in chronic gastrointestinal diseases by restoring the intestinal microflora using a dairy product” // Sb.auch.tr. Modern cheese making technology and non-waste milk processing. Yerevan, 1989, pp. 310-311 //, approved for use as a biologically active food supplement in 1993
Способ включает получение маточных культур штаммов в питательной среде на основе экстракта кукурузы и стационарное раздельное культивирование микроорганизмов в молоке, с последующим смешиванием выращенных культур, добавлением сахарозы и желатины в качестве среды защиты и лиофильным высушиванием.The method includes obtaining uterine cultures of strains in a nutrient medium based on corn extract and stationary separate cultivation of microorganisms in milk, followed by mixing the grown cultures, adding sucrose and gelatin as a protection medium and freeze drying.
Недостатком известного способа является невысокое качество конечного продукта: т.е. в нем не удавалось создать равное количество живых микробных клеток каждого из используемых штаммов, при этом значительно превалировал энтерококк; показатель антагонистической активности концентрата при отсроченном антагонизме, выраженный в зонах задержки роста тест-штаммов, составлял не более 10 мм. Это связано с тем, что при стационарном выращивании невозможно создать стандартные условия культивирования в каждой серии: отсутствует возможность контролирования процесса культивирования контрольно-измерительными приборами; молоко, являющееся одним из компонентов питательной среды, имеет ряд недостатков: нестандартность состава в различных регионах, присутствие в молоке антимикробных препаратов, содержание лактозы, контаминация посторонней микрофлорой. Кроме того, питательная среда на экстракте кукурузы не рекомендована в технологии получения медицинских иммунобиологических препаратов. Выбранные условия способа стационарного культивирования не экономичны, т.к. при длительности культивирования в течение (18±1) ч выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет не более 6·106 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности концентрата при отсроченном антагонизме, выраженный в зонах задержки роста тест-штаммов, составляет не более 10 мм.The disadvantage of this method is the low quality of the final product: i.e. it was not possible to create an equal number of living microbial cells of each of the used strains, while enterococcus prevailed significantly; the indicator of antagonistic activity of the concentrate with delayed antagonism, expressed in zones of growth inhibition of the test strains, was not more than 10 mm This is due to the fact that with stationary cultivation it is impossible to create standard cultivation conditions in each series: there is no possibility to control the cultivation process with instrumentation; Milk, which is one of the components of the nutrient medium, has a number of disadvantages: non-standard composition in different regions, the presence of antimicrobial agents in milk, lactose content, and contamination by extraneous microflora. In addition, the nutrient medium on the extract of corn is not recommended in the technology for medical immunobiological preparations. The selected conditions of the method of stationary cultivation are not economical, because with a cultivation duration of (18 ± 1) h, the biomass yield from 1 ml of the nutrient medium is not more than 6 · 10 6 live microbial cells of Escherichia coli and fecal enterococcus strains. The index of antagonistic activity of the concentrate with delayed antagonism, expressed in zones of growth inhibition of test strains, is not more than 10 mm.
Задача, решаемая предлагаемым изобретением, - создание промышленного способа получения пробиотика на основе штаммов кишечной палочки Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62.The problem solved by the invention is the creation of an industrial method of producing a probiotic based on Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35-3 / 61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62.
Технический результат от использования изобретения заключается в получении стандартного препарата с равным количеством живых микробных клеток каждого из исследуемых штаммов и увеличении антагонистической активности пробиотического препарата.The technical result from the use of the invention is to obtain a standard preparation with an equal number of living microbial cells of each of the studied strains and to increase the antagonistic activity of the probiotic preparation.
Указанный результат достигается тем, что в способе получения пробиотика на основе штаммов кишечной палочки Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62 методом глубинного культивирования маточных культур в питательной среде, добавление защитной среды и лиофильное высушивание, глубинное культивирование маточных культур осуществляют совместно в казеиновом бульоне с желатиной в течение 7-9 час при рН 7,4-7,8, при температуре 37-38°С, постоянном перемешивании, аэрации и подаче 40%-ного раствора глюкозы.This result is achieved by the fact that in the method for producing a probiotic based on E. coli strains Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35-3 / 61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G -35-4 / 62 by the method of deep cultivation of uterine cultures in a nutrient medium, the addition of a protective environment and lyophilic drying, the deep cultivation of uterine cultures is carried out together in casein broth with gelatin for 7-9 hours at a pH of 7.4-7.8, at temperature of 37-38 ° С, constant stirring, aeration and supply of a 40% glucose solution .
Глубинное культивирование осуществляют раздельно или совместно, на любых стандартных питательных средах, используемых при промышленном способе культивирования этих микроорганизмов, при постоянном перемешивании и аэрации, и подаче питательных растворов. В качестве среды защиты используют любые среды, используемые при получении бактерийных препаратов. Среду защиты или приготавливают заранее и вносят в реактор после окончания культивирования, или отдельные компоненты защитной среды вводят в питательную среду.Deep cultivation is carried out separately or together, on any standard nutrient media used in the industrial method of cultivating these microorganisms, with constant stirring and aeration, and the supply of nutrient solutions. As the protection medium use any medium used in the preparation of bacterial preparations. The protection medium is either prepared in advance and introduced into the reactor after cultivation, or the individual components of the protective medium are introduced into the nutrient medium.
Преимущество предлагаемого способа заключается в том, что процесс культивирования осуществляют в стандартных условиях, время культивирования сокращается до 8 ч, при этом выход биомассы увеличивается в 10 раз, что позволяет получить высокий экономический эффект. Антагонистическая активность, являющаяся одной из основных качественных характеристик препарата, увеличивается в 1,5-2 раза.The advantage of the proposed method is that the cultivation process is carried out under standard conditions, the cultivation time is reduced to 8 hours, while the biomass yield is increased 10 times, which allows to obtain a high economic effect. Antagonistic activity, which is one of the main qualitative characteristics of the drug, increases by 1.5-2 times.
Способ осуществляют следующим образом:The method is as follows:
Используют одну из готовых питательных сред, например казеиново-дрожжевую, казеиновый бульон, казеиновый бульон с желатиной, казеиновый бульон с желатиной и альгинатом натрия. В питательную среду вводят при раздельном культивировании маточную культуру одного из штаммов, при совместном культивировании последовательно маточные культуры штаммов кишечных палочек Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62.One of the prepared culture media is used, for example casein-yeast, casein broth, casein broth with gelatin, casein broth with gelatin and sodium alginate. During separate cultivation, the uterine culture of one of the strains is introduced into the nutrient medium, while the uterine cultures of Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35-3 / 61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62.
Культивирование проводят при постоянном контроле показателей рН, температуры, постоянном или периодическом перемешивании и аэрации, подаче питательного раствора. После окончания процесса культивирования в реактор вводят одну из заранее приготовленных сред защиты, например сахарозо-желатино-молочную, сахарозо-молочную. Полученную биомассу разливают и далее высушивают.Cultivation is carried out with constant monitoring of pH, temperature, constant or periodic mixing and aeration, the supply of a nutrient solution. After the cultivation process is completed, one of the previously prepared protection media is introduced into the reactor, for example, sucrose-gelatin-milk, sucrose-milk. The resulting biomass is poured and then dried.
Нижеследующие примеры иллюстрируют изобретение.The following examples illustrate the invention.
Пример 1.Example 1
В биореактор с питательной казеиново-дрожжевой средой (производственный регламент ПР 732-98) вносят последовательно маточные культуры каждого из четырех штаммов. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования в реактор вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-желатино-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 2·107 до 4·107 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 14 до 16 мм.The uterine cultures of each of the four strains are introduced sequentially into the bioreactor with a nutritious casein-yeast medium (production schedule PR 732-98). The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, a previously prepared sterile sugar-gelatin-milk protection medium (PR 732-98) is introduced into the reactor. The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 2 · 10 7 to 4 · 10 7 live microbial cells of strains of E. coli and fecal enterococcus. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth inhibition of the test strains, is from 14 to 16 mm.
Пример 2.Example 2
Культивирование проводят в четырех биореакторах. В каждый из четырех биореакторов с питательной казеиново-дрожжевой средой (ПР 732-98) вносят по одной маточной культуре штаммов кишечных палочек Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования соединяют содержимое четырех биореакторов в один и вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-желатино-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 107 до 3·107 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 10 до 13 мм.Cultivation is carried out in four bioreactors. In each of the four bioreactors with nutritious casein-yeast medium (PR 732-98), one uterine culture of Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35 is introduced into the uterine culture -3/61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62. The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and the supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, the contents of the four bioreactors are combined into one and the previously prepared sterile milky sucrose-milk protection medium is introduced (PR 732-98). The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring into either bottles or metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 10 7 to 3 · 10 7 live microbial cells of strains of Escherichia coli and fecal enterococcus. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth retardation of the test strains, is from 10 to 13 mm.
Пример 3.Example 3
В биореактор с казеиновым бульоном (ПР 730-98) вносят последовательно маточные культуры каждого из четырех штаммов. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования в реактор вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-желатино-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 2·108 до 6·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 17 до 19 мм.In a bioreactor with casein broth (PR 730-98), uterine cultures of each of the four strains are added sequentially. The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, a previously prepared sterile sugar-gelatin-milk protection medium (PR 732-98) is introduced into the reactor. The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 2 · 10 8 to 6 · 10 8 live microbial cells of E. coli and fecal enterococcus strains. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth retardation of the test strains, is from 17 to 19 mm.
Пример 4.Example 4
Культивирование проводят в четырех биореакторах. В каждый из четырех биореакторов с казеиновым бульоном (ПР 730-98) вносят маточные культуры каждого штамма кишечных палочек Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования соединяют содержимое четырех биореакторов в один и вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-желатино-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 108 до 2·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 15 до 17 мм.Cultivation is carried out in four bioreactors. In each of the four casein broth bioreactors (PR 730-98), uterine cultures of each E. coli strain Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35-3 / 61 are introduced and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62. The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, the contents of the four bioreactors are combined into one and the previously prepared sterile milky sucrose-milk protection medium is introduced (PR 732-98). The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 10 8 to 2 · 10 8 live microbial cells of strains of Escherichia coli and fecal enterococcus. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth retardation of the test strains, is from 15 to 17 mm.
Пример 5.Example 5
В биореактор с казеиновым бульоном с желатиной (ПР 730-98) вносят последовательно маточные культуры каждого из четырех штаммов. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования в реактор вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют.Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 4·108 до 7·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 18 до 20 мм.In the bioreactor with casein broth with gelatin (PR 730-98), uterine cultures of each of the four strains are added sequentially. The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, a previously prepared sterile sucrose-milk protection medium (PR 732-98) is introduced into the reactor. The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The output of biomass from 1 ml of nutrient medium is from 4 · 10 8 to 7 · 10 8 living microbial cells of E. coli and fecal enterococcus strains. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth inhibition of the test strains, is from 18 to 20 mm.
Пример 6.Example 6
Культивирование проводят в четырех биореакторах. В каждый из четырех биореакторов с казеиновым бульоном (ПР 730-98) с желатиной вносят маточные культуры каждого штамма, кишечных палочек Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62.Cultivation is carried out in four bioreactors. Uterine cultures of each strain, Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G-35- are introduced into each of the four casein broth bioreactors (PR 730-98) with gelatin. 3/61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62.
Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования соединяют содержимое четырех биореакторов в один и вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 2·108 до 4·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 14 до 16 мм.The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and the supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, the contents of the four bioreactors are combined into one and the previously prepared sterile milky sucrose protection medium is introduced (PR 732-98). The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 2 · 10 8 to 4 · 10 8 live microbial cells of E. coli and fecal enterococcus strains. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth inhibition of the test strains, is from 14 to 16 mm.
Пример 7.Example 7
В биореактор с казеиновым бульоном (ПР 730-98) с желатиной и альгинатом натрия вносят последовательно маточные культуры каждого штамма. Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования в реактор вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 6·108 до 8·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 19 до 22 мм.In the bioreactor with casein broth (PR 730-98) with gelatin and sodium alginate, uterine cultures of each strain are introduced sequentially. The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and the supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, a previously prepared sterile sucrose-milk protection medium (PR 732-98) is introduced into the reactor. The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 6 · 10 8 to 8 · 10 8 live microbial cells of E. coli and fecal enterococcus strains. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth retardation of test strains, is from 19 to 22 mm.
Пример 8Example 8
Культивирование проводят в четырех биореакторах. В каждый из четырех биореакторов с казеиновым бульоном (ПР 730-98) с желатиной и альгинатом натрия вносят маточные культуры каждого штамма, кишечных палочек Escherichia coli Г-35-1/59, Escherichia coli Г-35-2/60, Escherichia coli Г-35-3/61 и фекального энтерококка Enterococcus faecalis Г-35-4/62.Cultivation is carried out in four bioreactors. Uterine cultures of each strain, Escherichia coli G-35-1 / 59, Escherichia coli G-35-2 / 60, Escherichia coli G are introduced into each of the four casein broth bioreactors (PR 730-98) with gelatin and sodium alginate. -35-3 / 61 and fecal enterococcus Enterococcus faecalis G-35-4 / 62.
Осуществляют процесс культивирования в течение (8±1) ч при рН 7,4-7,8, температуре (37,5±0,5)°С, постоянном перемешивании и подаче стерильного воздуха и 40%-ного раствора глюкозы. После окончания процесса культивирования соединяют полученные культуры каждого штамма в одном реакторе и вводят заранее приготовленную стерильную среду защиты сахарозо-молочную (ПР 732-98). Полученную биомассу охлаждают до температуры (27±3)°С и разливают при постоянном перемешивании, или во флаконы, или в металлические емкости и далее лиофилизируют. Выход биомассы с 1 мл питательной среды составляет от 3·108 до 4·108 живых микробных клеток штаммов кишечной палочки и фекального энтерококка. Показатель антагонистической активности препарата, выраженный в зоне задержки роста тест-штаммов, составляет от 16 до 18 мм.The cultivation process is carried out for (8 ± 1) hours at pH 7.4-7.8, temperature (37.5 ± 0.5) ° C, constant stirring and supply of sterile air and 40% glucose solution. After the cultivation process is completed, the resulting cultures of each strain are combined in one reactor and a pre-prepared sterile sugar-milk protection medium is introduced (PR 732-98). The resulting biomass is cooled to a temperature of (27 ± 3) ° C and poured with constant stirring, or in bottles or in metal containers and then lyophilized. The biomass yield from 1 ml of culture medium is from 3 · 10 8 to 4 · 10 8 live microbial cells of strains of Escherichia coli and fecal enterococcus. The antagonistic activity of the drug, expressed in the zone of growth retardation of test strains, is from 16 to 18 mm.
Изучение эффективности полученного заявленным способом пробиотика проводилось в Гастроэнтерологическом центре Дорожной клинической больницы (г.Н.Новгород) по разрешению Минздрава РФ (от 13.02.2003 г. №42). В результате проведенных клинических испытаний на 80 больных была показана высокая эффективность препарата для профилактики и лечения дисбактериоза кишечника у больных с хроническими заболеваниями желудочно-кишечного тракта, выразившаяся в уменьшении сроков купирования основных симптомов заболевания на 2-3 дня, полной нормализации микробного пейзажа кишечника у 95% больных.A study of the effectiveness of the probiotic obtained by the claimed method was carried out in the Gastroenterological Center of the Road Clinical Hospital (Nizhny Novgorod) with the permission of the Ministry of Health of the Russian Federation (No. 42 dated February 13, 2003). As a result of clinical trials for 80 patients, the drug was shown to be highly effective for the prevention and treatment of intestinal dysbiosis in patients with chronic diseases of the gastrointestinal tract, expressed in a reduction in the term of relief of the main symptoms of the disease by 2-3 days, and the normalization of the microbial landscape of the intestine in 95 % of patients.
По решению Комитета медицинских иммунобиологических препаратов (Протокол №4 от 25.06.2003 г.) пробиотик окарин рекомендован к регистрации в РФ.According to the decision of the Committee of Medical Immunobiological Preparations (Minutes No. 4 dated 06/25/2003), probiotic okarin was recommended for registration in the Russian Federation.
Изучение эффективности полученного заявленным способом пробиотика проводилось также на базе Нижегородского ветеринарного института нечерноземной зоны РФ и Нижегородской государственной сельскохозяйственной академии в ряде животноводческих хозяйств Нижегородской области. Испытания проводились на двух видах сельскохозяйственных животных: телятах и цыплятах. В результате проведенных клинических испытаний была показана высокая эффективность препарата для профилактики и лечения желудочно-кишечных болезней телят, выразившаяся в положительном действии окарина на сохранность поголовья цыплят и телят, а также в большем приросте живой массы опытных животных по сравнению с контролем.The effectiveness of the probiotic obtained by the claimed method was also studied on the basis of the Nizhny Novgorod Veterinary Institute of the Non-Chernozem Zone of the Russian Federation and the Nizhny Novgorod State Agricultural Academy in a number of livestock farms in the Nizhny Novgorod Region. Tests were conducted on two types of farm animals: calves and chickens. As a result of clinical trials, the drug was shown to be highly effective for the prevention and treatment of gastrointestinal diseases of calves, expressed in the positive effect of ocarin on the safety of the number of chickens and calves, as well as in a greater increase in live weight of experimental animals compared to the control.
Преимущество предлагаемого способа заключается в том, что процесс культивирования осуществляют в стандартных условиях, время культивирования сокращается до 8 ч, при этом выход биомассы увеличивается в 10 раз, что позволяет получить высокий экономический эффект. Предлагаемый способ позволяет получить стандартный препарат с равным количеством живых микробных клеток каждого из используемых штаммов. Антагонистическая активность, являющаяся одной из основных качественных характеристик препарата, увеличивается в 1,5-2 раза.The advantage of the proposed method is that the cultivation process is carried out under standard conditions, the cultivation time is reduced to 8 hours, while the biomass yield is increased 10 times, which allows to obtain a high economic effect. The proposed method allows to obtain a standard preparation with an equal number of living microbial cells of each of the used strains. Antagonistic activity, which is one of the main qualitative characteristics of the drug, increases by 1.5-2 times.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2004127572/13A RU2292213C2 (en) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2004127572/13A RU2292213C2 (en) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2004127572A RU2004127572A (en) | 2006-02-20 |
| RU2292213C2 true RU2292213C2 (en) | 2007-01-27 |
Family
ID=36050748
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2004127572/13A RU2292213C2 (en) | 2004-09-16 | 2004-09-16 | METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2292213C2 (en) |
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2000116C1 (en) * | 1991-07-22 | 1993-09-07 | Институт Микробиологии И Вирусологии Им.Д.К.Заболотного | Method of preparing of probiotic for cattle breeding, mainly for poultry farming |
| RU2086248C1 (en) * | 1996-04-02 | 1997-08-10 | Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов | Probiotic preparation for animals |
| RU2091075C1 (en) * | 1995-06-28 | 1997-09-27 | Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов | Complex bacterial preparation for treatment and prophylaxis of gastroenteric disease in animals |
-
2004
- 2004-09-16 RU RU2004127572/13A patent/RU2292213C2/en active IP Right Revival
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2000116C1 (en) * | 1991-07-22 | 1993-09-07 | Институт Микробиологии И Вирусологии Им.Д.К.Заболотного | Method of preparing of probiotic for cattle breeding, mainly for poultry farming |
| RU2091075C1 (en) * | 1995-06-28 | 1997-09-27 | Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов | Complex bacterial preparation for treatment and prophylaxis of gastroenteric disease in animals |
| RU2086248C1 (en) * | 1996-04-02 | 1997-08-10 | Всероссийский государственный научно-исследовательский институт контроля, стандартизации и сертификации ветеринарных препаратов | Probiotic preparation for animals |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| КАРАПЕТЯН О.Г. и др. Улучшение дискомфортного состояния при хронических желудочно-кишечных заболеваниях путем восстановления кишечной микрофлоры. Сборник научных трудов Современная технология сыроделия и безотходная переработка молока. Ереван, 1989, с.310-311. * |
| ОСИПОВА И.Г. и др. Изучение безопасности производственных штаммов, составляющих основу Окарина и Колибактерина, Международная конференция Пробиотики, пребиотики, синбиотики и функциональные продукты питания. Современное состояние и перспективы. М., 2-4 июня 2004, с.209-210. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2004127572A (en) | 2006-02-20 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| RU2104706C1 (en) | Method of bifido-containing preparation making | |
| US20130236600A1 (en) | Probiotics for dietary dairy product | |
| RU2652836C1 (en) | Fodder additive with probiotic activity for farm animals, birds, horses and fish | |
| WO2010001509A1 (en) | Novel lactic acid bacterium having high immunoglobulin-a-inducing ability | |
| RU2264453C2 (en) | Veterinary biopreparation | |
| KR20230125654A (en) | Novel Pediococcus pentosaceus strain and Composition for Preventing or Improving Pig diarrhea Comprising the same | |
| RU2398872C1 (en) | Bacillus licheniformis BACTERIA STRAIN USED FOR MAKING PROBIOTIC SUPPLEMENT FEED USED FOR PRODUCING HIGH-QUALITY FODDER IMPROVING PERFORMANCE AND REDUCING RISK OF GASTROINTESTINAL DISTURBANCES IN ANIMALS, BIRDS AND FISHES | |
| RU2119796C1 (en) | Complex probiotic preparation for animals | |
| RU2292213C2 (en) | METHOD FOR PROBIOTIC PRODUCTION BASED ON 3 COLIFORM BACTERIUM STRAINS Echerichia coli AND FECAL STREPTOCOCCUS STRAIN Enterococcus faecalis | |
| RU2086248C1 (en) | Probiotic preparation for animals | |
| RU2453593C1 (en) | Strain lactobacillus helveticus used for making lactic acid bacillus containing products | |
| RU2326938C2 (en) | Consortium of lactobacteria strains and method of receiving preparation on its basis, which is used as dietary supplement or ferment for production of sour milk products | |
| RU2292156C1 (en) | Method for rearing in broilers | |
| US8414878B2 (en) | Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein | |
| RU2203947C1 (en) | Strain of bacterium bacillus licheniformis used for preparing probiotic preparation designated for prophylaxis and treatment of gastroenteric diseases in animals, poultry and fishes | |
| RU2493723C1 (en) | Biopreparation with probiotic activity for optimisation of assimilation of fodders intended for farm animals and birds | |
| RU2176668C1 (en) | Strain of bacterium lactobacillus acidophilus nv ep 317/402 "narine" tnci used for preparing curative-prophylactic preparations for intestine microflora normalization | |
| RU2376366C2 (en) | Lactis acid bacillus strains syndicate and production method of biologically active additive or leaven for production of fermented milk products based on this syndicate | |
| CN114032200A (en) | Preparation method of bacillus subtilis feed additive for breeding animals | |
| RU2180348C1 (en) | Bifidobacterium and lactobacillus consortium used for preparing bacterial preparations, ferments for fermented-milk foodstuffs, fermented and nonfermented foodstuffs, biologically active supplements designated for correction of microflora in children of age from 3 to 12 years | |
| RU2301828C1 (en) | Strain bifidobacterium gallinarum gb used for preparing bacterial preparations, biologically active supplements to fodders, fermented and nonfermented fodders designated for prophylaxis and treatment of intestine disease in young stock agricultural poultry | |
| RU2203076C1 (en) | Method for treating and preventing gastrointestinal diseases in calves | |
| RU2173159C2 (en) | Method of production of biologically active food addition | |
| RU2031937C1 (en) | Strain of bacterium bifidobacterium globosum used for preparing of probiotic preparation for veterinary | |
| RU2253674C2 (en) | Treatment biological preparation against animal endometritis |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20070917 |
|
| NF4A | Reinstatement of patent |
Effective date: 20100210 |
|
| PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20180328 |
|
| PD4A | Correction of name of patent owner |