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WO2011118764A1 - 生菌数の測定方法及び培地 - Google Patents

生菌数の測定方法及び培地 Download PDF

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WO2011118764A1
WO2011118764A1 PCT/JP2011/057335 JP2011057335W WO2011118764A1 WO 2011118764 A1 WO2011118764 A1 WO 2011118764A1 JP 2011057335 W JP2011057335 W JP 2011057335W WO 2011118764 A1 WO2011118764 A1 WO 2011118764A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
medium
bifidobacterium
species
breve
concentration
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2011/057335
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English (en)
French (fr)
Inventor
正達 武藤
文明 阿部
智子 八重島
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Morinaga Milk Industry Co Ltd
Original Assignee
Morinaga Milk Industry Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Morinaga Milk Industry Co Ltd filed Critical Morinaga Milk Industry Co Ltd
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Priority to CN2011800038605A priority patent/CN102510902A/zh
Priority to DK11759568.6T priority patent/DK2554677T3/en
Priority to EP20110759568 priority patent/EP2554677B1/en
Priority to JP2011544522A priority patent/JP5286424B2/ja
Priority to CA2781516A priority patent/CA2781516C/en
Publication of WO2011118764A1 publication Critical patent/WO2011118764A1/ja
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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Classifications

    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12Q—MEASURING OR TESTING PROCESSES INVOLVING ENZYMES, NUCLEIC ACIDS OR MICROORGANISMS; COMPOSITIONS OR TEST PAPERS THEREFOR; PROCESSES OF PREPARING SUCH COMPOSITIONS; CONDITION-RESPONSIVE CONTROL IN MICROBIOLOGICAL OR ENZYMOLOGICAL PROCESSES
    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/06—Quantitative determination
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N1/00—Microorganisms, e.g. protozoa; Compositions thereof; Processes of propagating, maintaining or preserving microorganisms or compositions thereof; Processes of preparing or isolating a composition containing a microorganism; Culture media therefor
    • C12N1/20—Bacteria; Culture media therefor
    • C—CHEMISTRY; METALLURGY
    • C12—BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
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    • C12Q1/00—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions
    • C12Q1/02—Measuring or testing processes involving enzymes, nucleic acids or microorganisms; Compositions therefor; Processes of preparing such compositions involving viable microorganisms
    • C12Q1/04—Determining presence or kind of microorganism; Use of selective media for testing antibiotics or bacteriocides; Compositions containing a chemical indicator therefor
    • C12Q1/045—Culture media therefor
    • G—PHYSICS
    • G01—MEASURING; TESTING
    • G01N—INVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2333/00—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature
    • G01N2333/195—Assays involving biological materials from specific organisms or of a specific nature from bacteria

Definitions

  • the present invention relates to a method for measuring the viable count of only the Breve species from a test bacterium containing bifidobacteria by a culture method, and a medium useful as a selective medium for the measurement method.
  • Bifidobacteria are widely known as one of useful enteric bacteria, and there are many reports on their physiological significance. For example, the effects of producing organic acids such as lactic acid and acetic acid in the intestine and suppressing the growth of harmful bacteria, production of vitamins, activation of immunity, etc. have been clarified. For this reason, various bifidobacterial viable preparations have been proposed (Non-Patent Document 1). In addition, various foods containing bifidobacteria such as fermented milk such as yogurt, confectionery, beverages, and health foods have been developed for the purpose of maintaining health by ingesting bifidobacteria.
  • Non-patent Document 2 discloses a non-patent Document for infants inoculated with breast milk. Since infants inoculated with breast milk become dominant in bifidobacteria during infancy, infant formula containing bifidobacteria and lactic acid bacteria has been developed outside of Japan. Currently, longum species are listed as bifidobacteria species mainly added to foods in the global market, and there are also products that use breve species together (Non-patent Document 2).
  • Non-patent Document 3 As a method for measuring the number of bifidobacteria and the number of viable bacteria in a product containing multiple types of bifidobacteria or lactic acid bacteria, smear on a medium obtained by adding sterile defibrinated blood to a BL agar medium, and perform anaerobic culture. There is a method of judging from the form (color, shape, etc.) of a colony formed by growing on a medium or the form of a fungus by Gram staining (Non-patent Document 3).
  • Non-Patent Document 3 requires specialized knowledge to determine the bacterial species when the colony form and the fungus shape are similar. Therefore, it is sometimes very difficult to measure the viable count of individual bacterial species. In many countries, it is impossible to obtain sterile defibrillated blood. In such a country, a blood-containing BL agar medium cannot be prepared, and the above method cannot be performed.
  • breve and longum are blended, and in the global probiotic market, breve, longum, and lactis are widely used.
  • the present invention has been made in order to solve the above-mentioned problem, and from a test bacterium containing bifidobacteria, a measurement method that can easily measure the number of viable bacteria of only a breve species by using a specific culture method, Another object of the present invention is to provide a medium that is useful as a selective medium for the measurement method and that can be easily prepared.
  • the present inventors utilize the assimilation property of breve species mannitol and sorbitol, and by limiting the concentration of the medium components, the colony-forming ability of other bifidobacteria is reduced, and only the breve species are viable.
  • the measuring method and medium of the present invention for solving the above problems have the following modes.
  • a method for measuring the viable count of only a microorganism belonging to Bifidobacterium breve from a test bacterium containing a microorganism belonging to the genus Bifidobacterium using a medium Satisfies the following 1) and 2), and the measurement of the viable cell count measures colonies with a diameter of 0.7 mm or more formed in the medium: 1) Contains only at least one sugar alcohol selected from sorbitol and mannitol as a sugar source, 2) Contains peptone, meat extract, and yeast extract as nitrogen sources.
  • [2] The method according to [1], wherein the concentration of the sugar alcohol in the medium is 4% by mass or less with respect to the total mass of the medium.
  • the content of the peptone is 6.0 to 14.0 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium
  • the content of the meat extract is 6.0 to 14.0 g / 1000 mL
  • the yeast extract The method according to [1] or [2], wherein the content is 1.8 to 4.2 g / 1000 mL.
  • [4] The method according to any one of [1] to [3], wherein the microorganism belonging to Bifidobacterium breve is Bifidobacterium breve M-16V strain.
  • the test bacterium belongs to the microorganism belonging to Bifidobacterium breve, Bifidobacterium longum subsp. Longum (Bifidobacterium longum subsp. Longum) Microorganisms belonging to Bifidobacterium longum subsp. Infantis, microorganisms belonging to Bifidobacterium animalis subsp. Lactis, and microorganisms belonging to Bifidobacterium longum subsp.
  • infantis comprising at least one microorganism selected from the group consisting of: [6]
  • [7] Number of living bacteria only from microorganisms belonging to Bifidobacterium breve from test bacteria containing microorganisms belonging to the genus Bifidobacterium used in the method according to any one of [1] to [6] Medium for measuring.
  • the yeast extract contains 1.8 to 4.2 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium. 4)
  • the meat extract contains 6.0 to 14.0 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • Peptone is contained at 6.0 to 14.0 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • Bifidobacterium refers to a microorganism belonging to the genus Bifidobacterium.
  • the Breve species indicates a microorganism belonging to Bifidobacterium breve, and the longum species indicates a microorganism belonging to Bifidobacterium longum subsp. Longum. Indicates a microorganism belonging to Bifidobacterium animalis, Lactis species indicates a microorganism belonging to Bifidobacterium animalis subsp.
  • Bacterial powder refers to powdered bacteria.
  • a test bacterium containing bifidobacteria from a test bacterium containing bifidobacteria, it is possible to easily measure the number of breve species only by using a specific culture method, and useful as a selective medium for the measurement method In addition, a medium that can be easily prepared can be provided.
  • the viable count of only the Breve species is measured from a test bacterium containing bifidobacteria using a medium containing only at least one sugar alcohol selected from sorbitol and mannitol as a sugar source. To do.
  • the medium will be described in detail later.
  • the bifidobacteria contained in the test bacterium may be only the breve species, but in terms of the usefulness of the present invention, in addition to the breve species, at least one other bifidobacteria other than the breve species should be contained. Is preferred.
  • the bifidobacteria other than the Breve species are not particularly limited, and examples thereof include bifidobacteria that are generally widely used as probiotics.
  • the size of the colonies formed in the medium is small and can be easily distinguished from the Breve colonies, it preferably contains at least one selected from Longham species, Lactis species, and Infantis species. .
  • longum species, ATCC15707 T strain, longum species, BB536 strain (deposited number: ATCC BAA-999; commercially available from Morinaga Milk Industry Co., Ltd. as BB536 bacterial powder), lactis species, DSM 10140 T strain, Infan
  • the specimen containing the test bacterium for measuring the viable cell count according to the present invention is not particularly limited as long as it contains the test bacterium. Specifically, fermented milk, confectionery, beverages, health foods, foods such as infant formula, products such as pharmaceuticals, livestock feed, etc., those subjected to processing such as grinding, dilution with a diluent, etc. Etc.
  • a known culture method conventionally used for measuring the number of viable microorganisms by a culture method can be used except that the medium of the present invention is used as a medium.
  • the culture method include a solid culture method (a culture method in which culture is performed on an agar medium).
  • the solid culture method includes a pour method, a flat plate coating method, and a spiral method.
  • the pour method is a method in which a test sample (a specimen or a diluted product obtained by diluting a specimen with a diluent) is mixed with an agar medium that has been dissolved by heating, solidified by cooling, and cultured.
  • the plate smearing method is a method in which a test sample is smeared on an agar medium and cultured.
  • the spiral method is a method in which a test sample is plated on a medium with a concentration gradient using an instrument or the like.
  • the measurement method of the present invention includes a test sample (a specimen or a dilution obtained by diluting a specimen with a diluent) in the medium of the present invention containing agar at a concentration of about 1.5% by mass. It can be carried out by counting the number of colonies of a certain size or larger (for example, a diameter of 0.7 mm or more) among the colonies that have been cultured and formed. The number of colonies counted at this time corresponds to the number of viable bacteria of the breve species contained in the test sample cultured on the agar medium. Therefore, the viable count (/ g) of the Breve species contained in the specimen is obtained from the value and the dilution rate.
  • the diluent is not particularly limited, and known diluents such as physiological saline, the diluent (A) described in Non-Patent Document 3 described above (anaerobic specimen diluent described in the guidelines for food hygiene inspection), and the like. Available.
  • known culture conditions can be used as the culture conditions for the Breve species. Counting the number of colonies is usually carried out visually after culturing at 37 ° C. for about 48 hours under anaerobic conditions.
  • the medium used in the measurement method of the present invention contains only at least one sugar alcohol selected from sorbitol and mannitol (hereinafter sometimes referred to as a specific sugar source) as a sugar source.
  • the specific sugar source may be sorbitol alone or mannitol alone. Alternatively, a combination of sorbitol and mannitol may be used.
  • the sorbitol is preferably D-sorbitol, and the mannitol is preferably D-mannitol. Alternatively, a combination of D-sorbitol and D-mannitol may be used.
  • the concentration of the specific sugar source (the concentration of sorbitol or mannitol) is preferably 4% by mass or less with respect to the total mass of the medium from the viewpoint of the selectivity of the Breve species. Considering the influence on the osmotic pressure and the economical aspect, 1 to 4% by mass is more preferable. It is more preferably 1 to 3% by mass.
  • sugar sources other than the specific sugar source include glucose, starch, sucrose, raffinose, galactose, arabinose and the like.
  • the medium may contain components other than the specific sugar source.
  • components other than the specific sugar source, which is included only as a sugar source, constituting the medium are described as basal medium components.
  • Basic medium components include nitrogen sources such as yeast extract, meat extract and peptone; sodium salts such as sodium chloride, sodium acetate and sodium propionate, L-cysteine hydrochloride, phosphate and sulfate (for example, magnesium sulfate, And salts such as manganese sulfate).
  • the culture medium used for the measurement method of the present invention contains a yeast extract, meat extract, and peptone as a nitrogen source.
  • yeast extract is a nutrient source that is appropriately decomposed by autolysis enzyme or the like using yeast as a raw material, and specific examples thereof include Yeast Extract (manufactured by BD).
  • Meat extract is a nutrient source obtained from meat leachate, and supplements the properties of peptone nutrients by adding essential elements such as minerals, phosphoric acid, and energy sources that peptone does not have. .
  • 'LAB-MEMCO' powder manufactured by OXOID
  • Peptone is obtained by partially hydrolyzing milk casein, animal meat, soy protein, etc.
  • the yeast extract content is preferably 1.8 to 4.2 g / 1000 mL. More preferably, it is 2.7 to 4.2 g / 1000 mL.
  • the content of meat extract in 1000 mL of medium is preferably 6.0 to 14.0 g / 1000 mL. More preferably, it is 9.0 to 14.0 g / 1000 mL.
  • the content of peptone in 1000 mL of the medium is preferably 6.0 to 14.0 g / 1000 mL. More preferably, it is 9.0 to 14.0 g / 1000 mL.
  • Each content (g / 1000 mL) of the said yeast extract, meat extract, and peptone shows the solid content (g) contained in 1000 mL of culture media.
  • the medium used in the present invention preferably contains the salts from the viewpoint of osmotic pressure.
  • the salts sodium salts are preferable, and sodium chloride and sodium acetate are particularly preferable.
  • the content of the salts in the medium is preferably 5 to 15 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • the medium used in the present invention is particularly easy to form a large colony only by the breve species, and since it is easy to accurately measure the viable count of only the breve species among a plurality of bifidobacteria species, the following 1 ) To 5) are preferably satisfied.
  • Only the specific sugar source is contained as a sugar source.
  • the concentration of the specific sugar source is 4% by mass or less based on the total mass of the medium.
  • the yeast extract contains 1.8 to 4.2 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • the meat extract is contained in 6.0 to 14.0 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • Peptone is contained at 6.0 to 14.0 g / 1000 mL in 1000 mL of the medium.
  • the culture medium of the present invention may contain other components other than those described above as necessary, as long as the effects of the present invention are not impaired.
  • the other components are not particularly limited, and can generally include components added to the medium.
  • a solid culture method is used as a culture method when measuring the number of viable bacteria
  • agar is added. Agar is usually blended so that the concentration in the finally obtained medium is about 1.5% by mass.
  • the Breve species can be selected from among products containing a plurality of Bifidobacteria including the Breve species. It is possible to easily determine the number of viable bacteria. That is, in such a medium, only the breve species form large colonies. For example, even in the case of an Infantis species in which a strain having an ability to assimilate the specific sugar source is also present, the size of the colony formed in the medium of the present invention is smaller than that of the Breve species. .
  • the size of the colonies becomes even smaller.
  • the above medium composition reduces the colony forming ability of Bifidobacterium species other than the Breve species. Therefore, when a product containing multiple types of bifidobacteria, including breve species, is cultured using the medium of the present invention, the number of colonies that have grown greatly can be determined by measuring the number of colonies that have grown greatly, without distinguishing the form of colonies and fungi. It is easy to identify only the species and measure the number of viable bacteria.
  • the measured value is as accurate as that of an existing medium such as a medium in which sterile defibrillated blood is added to the BL agar medium. Therefore, the culture medium of the present invention is useful as a selective medium for measuring the viable count of breve species in a product in which a plurality of types of bifidobacteria including breve species are mixed. Furthermore, the medium of the present invention does not require difficult-to-obtain materials such as sterile defibrillated blood, so that it can be easily prepared. In obtaining the above effect, it is important that the components of peptone, meat extract, and yeast extract are combined at a predetermined concentration as a nitrogen source.
  • magnesium sulfate and manganese sulfate are preferable as the content in the medium is smaller because colony growth becomes better.
  • the content of magnesium sulfate in 1000 mL of the culture medium is preferably 0.1 g / 1000 mL or less, and particularly preferably 0 g / 1000 mL.
  • the content of manganese sulfate is preferably 0.05 g / 1000 mL or less, particularly preferably 0 g / 1000 mL.
  • the production method of the medium is not particularly limited, and can be produced using a known method.
  • a basal medium is prepared by adding water to yeast extract, meat extract, and peptone together with optional components such as agar, sodium chloride, sodium acetate, and L-cysteine hydrochloride to dissolve them.
  • the concentration of each component in the basal medium at this time is about 1.25 times calculated from the final concentration.
  • the basal medium is sterilized at 121 ° C. for 15 minutes by an autoclave.
  • a sugar solution is prepared by dissolving the specific sugar source with water.
  • the sugar concentration in the sugar solution at this time is about 5 times calculated from the final concentration.
  • the sugar solution is sterilized by filter sterilization.
  • the culture medium of 1000 mL represents a basal medium component and sugar diluted with water to a total volume of 1000 mL.
  • the medium used for the method of measuring the viable count of only the breve species from the test bacterium containing bifidobacteria is the breve species selection medium, at least one selected from sorbitol and mannitol as the sugar source It can also be described as a breve seed selection medium containing only the sugar alcohol.
  • concentration of each basal medium component is shown, maintaining.
  • the viable count of bifidobacteria includes RCA medium (Reinformed Crossed Medium Agar), MRS medium (de Man Rogosa and Sharpe) and mMRS medium (modified MRS medium) in which L-cysteine hydrochloride is added. in use. Therefore, basal medium A and basal medium B containing basal medium components shown in Table 1 were prepared with reference to the medium composition of RCA medium and mMRS medium.
  • Agar is added to each of the above basal media so that the final concentration (concentration after addition of D-mannitol or D-sorbitol) is 1.5% by mass with respect to the total mass of the medium, and further D-mannitol or D -Sorbitol was added to a final concentration of 1% by mass with respect to the total mass of the medium to prepare each medium 1-1 to 1-14 and 2-1 to 2-8.
  • the viable cell count was measured according to the following procedure.
  • M-16V fungal powder manufactured by Morinaga Milk Industry Co., Ltd., containing 1.7 ⁇ 10 11 / g
  • % Saline was used as a test sample.
  • a test sample was diluted with a diluent to prepare a measurement sample.
  • the measurement sample was plated on a plate by a pour method together with a medium heated and dissolved in advance at 45 ° C. After the agar solidified, culture was performed at 37 ° C. for 48 hours under anaerobic conditions.
  • the media 1-1 and 1-2 having a concentration of 0.1 times and the media 1 having a concentration of 3.0 times
  • the viable cell count was less than 5.0 ⁇ 10 9 / g.
  • each viable cell count was 1.6 ⁇ 10 11 /g,1.4 ⁇ 10 11 / g , colonies The diameter became 0.5 mm, and a relatively small colony was formed.
  • the viable cell number is 1.4 ⁇ 10 11 /g ⁇ 1.8 ⁇ 10 11 / g , colony diameter 0.8 ⁇ 1.3 mm
  • the same composition as the basal medium A as the basal medium within a concentration range of 0.6 to 2.0 times
  • an identifiable colony having a high viable count and a colony diameter of 0.8 mm or more can be obtained. It was found to form.
  • Table 3 among the cultures 2-1 to 2-8 using the same composition as the basal medium B, the number of viable bacteria was increased in the case of culturing in the mediums 2-1 and 2-2 having a concentration of 0.1 times.
  • basal medium B As the basal medium within a concentration range of 0.6 to 1.0, an identifiable colony having a high viable count and a colony diameter of 0.9 mm or more can be obtained. It was found to form. From the composition of basal medium A and basal medium B and the results in Tables 2-3, 6.0-20.0 g of peptone, 6.0-20.0 g of meat extract, and 3.0- It was confirmed that a basal medium containing 6.0 g of yeast extract is effective for good growth of the Breve species.
  • ⁇ Test Example 2 Examination of separability due to differences in bifidobacteria species> As Bifidobacteria, the Breve species ATCC 15700 T strain, the Breve species M-16V strain, the Longham species ATCC 15707 T strain, the Longham species BB536 strain, and the Lactis species DSM10140 T strain were used. The superscript T indicates that it is a reference stock. Among them, the Breve type M-16V strain is deposited under the accession number: BCCM / LMG23729, and the Longum species BB536 strain is deposited under the accession number: ATCC BAA-999.
  • the value extracted from Document B indicates the number of strains whose denominator value is tested, and the value of the numerator indicates the number of strains having assimilation among the tested strains.
  • the assimilation ability of breve mannitol and sorbitol is 11 to 89%, but according to the document B, all breve species assimilates mannitol and sorbitol sugars. I know I have. In addition, it has been found that most strains of Infantis, Longham, and Lactis have no mannitol and sorbitol assimilation.
  • Basal medium A containing 3 g of yeast extract, 10 g of meat extract, 10 g of peptone, 5 g of sodium chloride, 3 g of sodium acetate and 0.5 g of L-cysteine hydrochloride in 1000 mL of medium, and said basal medium A was prepared to prepare a basal medium in which the concentration of each medium component of basal medium A (concentration of 1.0 times) was the concentration (0.1 to 0.9 times) shown in Table 5.
  • Basal media 3-1 to 3-4 were prepared by adding agar to each of the above basal media so that the final concentration (concentration after addition of the sugar source) was 1.5% by mass.
  • agar is added to each of the above basal media so that the final concentration (concentration after addition of the sugar source) is 1.5% by mass with respect to the total mass of the medium, and D-glucose is used as the sugar source.
  • Each medium 3-5 to 3-16 was prepared by adding D-sorbitol or D-mannitol to a final concentration of 1% by mass with respect to the total mass of the medium.
  • Each of the above strains was subcultured for 15 hours at 37 ° C. in an intake amount of 3% in an mMRS culture solution. A culture solution that was confirmed to be stably grown was diluted to an appropriate concentration with 0.85% physiological saline.
  • the diluted culture solution was plated on a plate together with a medium preheated and dissolved at 45 ° C. by a pour method. After the agar solidified, culture was performed at 37 ° C. for 48 ⁇ 2 hours under anaerobic conditions. After the culture, the diameter (mm) of the colonies grown on the medium was measured in the same manner as in Test Example 1. The results are shown in Table 5. In Table 5, N.I. T.A. Indicates that the test (culture and measurement of colony diameter) was not performed.
  • the Breve ATCC15700 T strain and the M-16V strain All formed colonies with a diameter of 0.7 mm or more.
  • the colony diameter formed by four strains of Infantis, Longham, and Lactis, other than Breve is 0.3 mm or less, and only grows colonies that are easily distinguishable from those of Breve. I understood that.
  • Example 1 A powdered milk product was prepared that was known to contain both the powder of the Breve M-16V strain and the powder of the Longham BB536 strain.
  • a culture medium BL agar medium containing horse defibrillated blood (medium that has conventionally been regarded as a medium that can be distinguished by colony shape), RCA medium (a medium in which two strains of bifidobacteria colonies are known to form)
  • the following basic medium supplemented with 1% by mass of D-sorbitol the medium of the present invention
  • the number of viable bacteria in each powdered milk product was determined in the same manner as in Test Example 1. It was measured.
  • Basal medium in 1000 mL of medium, 2.5 g yeast extract, 8.2 g meat extract, 8.2 g peptone, 4.1 g sodium chloride, 4.1 g sodium acetate, 0.41 g L-cysteine hydrochloride Basal medium containing salt and 15 g agar.
  • Basal medium in 1000 mL of medium, 2.5 g yeast extract, 8.2 g meat extract, 8.2 g peptone, 4.1 g sodium chloride, 4.1 g sodium acetate, 0.41 g L-cysteine hydrochloride Basal medium containing salt and 15 g agar.
  • the shape of the colony grown on the BL medium and the microscope were used to separate and measure the Breve species and the Longham species. The total value was displayed as the total number of viable bacteria.
  • the number of viable bacteria was counted from the number of colonies obtained by growth.
  • “-” indicates that the colony size was not counted because it was less than 0.2 mm.
  • “%” represents
  • the viable cell count measured using the medium of the present invention was equal to or greater than the viable cell count of the Breve species measured using the BL medium containing horse defibrillated blood. Therefore, by using the culture medium of the present invention, it is possible to identify only the breve species and measure the viable cell value, and the viable cell value is also approximately the same accurate value as when using the BL medium. It has been shown.
  • the viable cell count measured using the RCA medium was equivalent to the total viable cell count of the Breve species and the longum species measured using the BL media containing horse defibrillated blood. Therefore, when the RCA medium was used, it was impossible to distinguish the viable counts of the Breve species and the Longum species.
  • a test bacterium containing bifidobacteria from a test bacterium containing bifidobacteria, it is possible to easily measure the number of breve species only by using a specific culture method, and useful as a selective medium for the measurement method In addition, a medium that can be easily prepared can be provided.

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Abstract

本発明は、糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する培地を使用して、ビフィドバクテリウム属に属する微生物を含有する被検菌からビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物のみを識別して、その生菌数を測定する方法に関する。また、前記測定方法に用いられる選択培地として有用であり、調製も容易な培地を提供することができる。

Description

生菌数の測定方法及び培地
　本発明は、ビフィズス菌を含有する被検菌からブレーベ種のみの生菌数を培養法により測定する方法、及び前記測定方法用の選択培地として有用な培地に関する。
本願は、２０１０年３月２６日に、日本に出願された特願２０１０－７２３６９号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　ビフィズス菌は有用な腸内細菌の一つとして広く知られており、その生理学的意義については多数の報告がある。たとえば腸内において乳酸、酢酸等の有機酸を生産し、かつ有害菌の増殖を抑制する作用、ビタミンの産生、免疫力の賦活化等が明らかにされている。
　そのため、従来、種々のビフィズス菌生菌製剤が提案されている（非特許文献１）。また、ビフィズス菌を摂取することにより健康を維持することを目的として、ビフィズス菌を含有する種々の食品、たとえばヨ－グルトなどの発酵乳、菓子、飲料、健康食品等が開発されている。また、乳幼児期において、母乳を接種する乳幼児はビフィズス菌が優勢になることから、日本外ではビフィズス菌・乳酸菌を含んだ育児用粉乳なども開発されている。現在、世界市場において食品に主に添加されているビフィズス菌種としてロンガム種が挙げられ、ブレーベ種を併用した製品も存在する（非特許文献２）。
　製品中に添加されている有用菌の生菌数を個別に表示することは、消費者にとって製品の情報量が多く表示される観点から、有益なことであると考えられる。また、生菌数の表示に関して、インドネシア国では製品中に添加される有用菌について、菌種ごとに生菌数を表示する法律が成立している。
　現在のところ、ビフィズス菌と乳酸菌を両方含む製品からいずれかの菌の生菌数を測定する方法として、ビフィズス菌のみが生育する培地を用いる方法や、好気培養により乳酸菌のみを培養する方法が既に確立されている。
　また、ビフィズス菌もしくは乳酸菌を複数種含む製品中のビフィズス菌の菌種及びその生菌数を測定する方法としては、ＢＬ寒天培地に無菌脱繊血液を加えた培地上に塗抹し、嫌気培養により培地上に生育させて形成したコロニーの形態（色、形状等）又はグラム染色法による菌の形態などから判定する方法がある（非特許文献３）。
光岡知足編著、「ビフィズス菌の研究」、財団法人日本ビフィズス菌センタ－、１９９４年、第２６６－２６７頁 光岡知足編著、「ビフィズス菌の研究」、財団法人日本ビフィズス菌センタ－、１９９４年、第２８２－２８３頁 「はっ酵乳・乳酸菌飲料中のビフィズス菌の菌数測定法」、社団法人全国はっ酵乳乳酸菌飲料協会　ビフィズス菌検査法検討委員会、２０００年３月、第１－１３頁
　しかし、上記非特許文献３に記載されるような方法では、コロニーの形態や菌の形状が近似している場合には菌種の判別に専門的な知識を必要とする。従って、個々の菌種の生菌数の測定が時に非常に困難である。また、海外においては無菌脱繊血液を入手することが不可能である国も多い。このような国においては、血液入りのＢＬ寒天培地を作成できず、前記方法を行うことが不可能である。
　現在、上述したようにブレーベ種とロンガム種とが配合されている製品が存在すること、世界のプロバイオティクス市場では、ブレーベ種、ロンガム種、ラクティス種などが広く使用されていることなどから、それら複数のビフィズス菌種が混在する製品中から、培養法によって特定の菌種、たとえばブレーベ種を容易に測定することができる技術が求められている。
　本発明は、上記課題を解決するためになされたものであり、ビフィズス菌を含有する被検菌から、ブレーベ種のみの生菌数を特定の培養法を用いることにより容易に測定できる測定方法、及び前記測定方法用の選択培地として有用で、且つ調製も容易な培地を提供することを目的とする。
　本発明者らは、上記課題を解決すべく、バージェイズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー（ＢＥＲＧＥＹ’Ｓ　ＭＡＮＵＡＬ　ＯＦ　Ｓｙｓｔｅｍａｔｉｃ　Ｂａｃｔｅｒｉｏｌｏｇｙ），１９８６年，第２巻，第１４２８頁，表１５．５１及び表１５．５４記載の糖類、及びビフィドバクテリア・マイクロフローラ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉａ　Ｍｉｃｒｏｆｌｏｒａ），第１（１）巻，第３－２４頁（Ｍｉｔｓｕｏｋａ　Ｔｏｍｏｔａｒｉ著，「リーセント・トレンズ・イン・リサーチ・オン・インテスティナル・フローラ（Ｒｅｃｅｎｔ　Ｔｒｅｎｄｓ　ｉｎ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｎ　Ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ　Ｆｌｏｒａ）」）に記載の糖類を詳細に検討した。その結果、培養法による生菌数測定の際に、ブレーベ種、ロンガム種、アニマリス種、インファンティス種の中で、ブレーベ種のほとんどがソルビトール、及びマンニトールを資化し得ること、ロンガム種、アニマリス種、インファンティス種の中では、インファンティス種の一部の株でマンニトール、及びソルビトールを資化する株があるものの、その割合は非常に少ないことが分かった。このことから、本発明者らは、鋭意検討を行った結果、マンニトール及び／又はソルビトールを唯一の糖源として含有させ、糖以外の培地成分（タンパク質、ペプチド等）の濃度を一定範囲濃度にすることで、培地中でブレーベ種のみが大きいコロニーを形成する培地を開発することに成功した。つまり、本発明者らは、ブレーベ種のマンニトール及びソルビトールの資化性を利用し、培地成分の濃度を限定することで、他のビフィズス菌のコロニー形成能が低下し、ブレーベ種のみの生菌数測定が可能になる培地を開発することに成功した。これによって、前記４菌種の中から、ブレーベ種のみの生菌数を測定することが可能になった。
　上記課題を解決する本発明の測定方法、及び培地は、以下の様態を有する。
［１］培地を用いてビフィドバクテリウム属に属する微生物を含有する被検菌からビフィドバクテリウム・ブレーベ（Bifidobacterium breve）に属する微生物のみの生菌数を測定する方法であって、前記培地が以下の１）、及び２）を満たすこと、及び前記生菌数の測定が前記培地に形成される直径０．７ｍｍ以上のコロニーを計測することを特徴とする方法：
　１）糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する、
　２）窒素源としてペプトン、肉エキス、及び酵母エキスを含有する。
［２］前記培地中の前記糖アルコールの濃度が、培地の総質量に対し、４質量％以下である［１］に記載の方法。
　［３］前記培地中、前記ペプトンの含有量が、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ、前記肉エキスの含有量が６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ、及び前記酵母エキスの含有量が１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬである、［１］又は［２］に記載の方法。
　［４］前記ビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物が、ビフィドバクテリウム・ブレーベ・Ｍ－１６Ｖ株である［１］～［３］のいずれかに記載の方法。
［５］前記被検菌が、前記ビフィドバクテリウム属に属する微生物として、前記ビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物と、ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガム（Bifidobacterium longum subsp. longum）に属する微生物、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシーズ・ラクティス（Bifidobacterium animalis subsp. lactis）に属する微生物、及びビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・インファンティス（Bifidobacterium longum subsp. infantis）に属する微生物からなる群から選択される少なくとも１種の微生物と、を含有する［１］～［４］のいずれかに記載の方法。
　［６］前記ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガムに属する微生物が、ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガム・ＢＢ５３６株である［５］に記載の方法。
　［７］［１］～［６］のいずれかに記載の方法に用いられるビフィドバクテリウム属に属する微生物を含有する被検菌から、ビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物のみの生菌数を測定するための培地。
［８］以下の１）～５）を満たすことを特徴とする［７］に記載の培地：
　１）糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する、
　２）前記糖アルコールの濃度が、培地の総質量に対し、４質量％以下である、
　３）酵母エキスを、培地１０００ｍＬ中、１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬ含有する、
　４）肉エキスを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する、
　５）ペプトンを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する。
　本明細書及び特許請求の範囲において、特に断りのない限り、濃度（％）はｗ／ｖ（質量／体積）による値である。
　ビフィズス菌はビフィドバクテリウム属（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ）に属する微生物を示す。
　また、ブレーベ種はビフィドバクテリウム・ブレーベ（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｂｒｅｖｅ）に属する微生物を示し、ロンガム種はビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガム（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｌｏｎｇｕｍ　ｓｕｂｓｐ．　ｌｏｎｇｕｍ）に属する微生物を示し、アニマリス種はビフィドバクテリウム　アニマリス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ａｎｉｍａｌｉｓ）に属する微生物を示し、ラクティス種はビフィドバクテリウム　アニマリス　サブスピーシーズ　ラクティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ａｎｉｍａｌｉｓ　ｓｕｂｓｐ．　ｌａｃｔｉｓ）に属する微生物を示し、インファンティス種はビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・インファンティス（Ｂｉｆｉｄｏｂａｃｔｅｒｉｕｍ　ｌｏｎｇｕｍ　ｓｕｂｓｐ．　ｉｎｆａｎｔｉｓ）に属する微生物を示す。
　「菌末」は、菌を粉末化したものを示す。
　本発明によれば、ビフィズス菌を含有する被検菌から、ブレーベ種のみの生菌数を、特定の培養法を用いることにより容易に測定できる測定方法、及び前記測定方法用の選択培地として有用で、且つ調製も容易な培地を提供できる。
　本発明の測定方法では、糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する培地を使用して、ビフィズス菌を含有する被検菌からブレーベ種のみの生菌数を測定する。
　培地については詳しくは後述する。
　ブレーベ種の菌株としては特に制約はなく、これまで、ブレーベ種に属するものとして公的な微生物保存機関（ＡＴＣＣ、ＮＴＣＣ、ＪＣＭ、ＤＳＭＺ、ＢＣＣＭ、ＬＭＧ等）に寄託されている公的機関寄託株であってもよく、公知の方法により自然界から分離した分離株であってもよい。公的機関寄託株としては、たとえば、ＡＴＣＣ　１５７００Ｔ株、Ｍ－１６Ｖ株（受託番号：ＢＣＣＭ／ＬＭＧ２３７２９にて寄託。Ｍ－１６Ｖ菌末として森永乳業（株）から市販）等が挙げられる。上付文字Ｔは基準株を意味する。
　被検菌が含有するビフィズス菌は、ブレーベ種のみであってもよいが、本発明の有用性の点では、ブレーベ種に加えて、ブレーベ種以外の他のビフィズス菌を少なくとも１種含有することが好ましい。
　前記ブレーベ種以外の他のビフィズス菌としては、特に限定されず、たとえば一般的にプロバイオティクスとして広く用いられているようなビフィズス菌が挙げられる。これらの中でも、前記培地に形成されるコロニーの大きさが小さく、ブレーベ種のコロニーと区別しやすいことから、ロンガム種、ラクティス種、インファンティス種から選択される少なくとも１種を含むことが好ましい。なかでも、ロンガム種・ＡＴＣＣ１５７０７Ｔ株、ロンガム種・ＢＢ５３６株（受託番号：ＡＴＣＣ　ＢＡＡ－９９９にて寄託。ＢＢ５３６菌末として森永乳業（株）から市販）、ラクティス種・ＤＳＭ　１０１４０Ｔ株、インファンティス種・ＡＴＣＣ　１５６９７Ｔ株から選択される少なくとも１種を含むことが好ましく、ロンガム種・ＢＢ５３６株を含むことが特に好ましい。
　本発明により生菌数を測定する被検菌を含有する検体としては、前記被検菌を含むものであれば特に限定されない。具体的には、発酵乳、菓子、飲料、健康食品、育児用粉乳等の食品、医薬品、家畜用飼料等の製品、前記製品に対して粉砕、希釈液による希釈等の処理を施したもの、等が挙げられる。
　前記検体の培養は、培地として本発明の培地を用いる以外は、従来、培養法による微生物の生菌数の測定に用いられている公知の培養法が利用できる。前記培養法としては固体培養法（寒天培地にて培養を行う培養法）が挙げられる。
　固体培養法として具体的には、混釈法、平板塗沫法、スパイラル法等が挙げられる。混釈法は、試験試料（検体、又は検体を希釈液で希釈した希釈物）を、加温溶解した寒天培地と混和し、冷却固形化して培養する方法である。平板塗沫法は、試験試料を、寒天培地上に塗抹して培養する方法である。スパイラル法は、試験試料を、機器等を使用して濃度勾配を付けて培地上にプレーティングする方法である。
　本発明の測定方法は、具体的には、試験試料（検体、又は検体を希釈液で希釈した希釈物）を、寒天を１．５質量％程度の濃度で含有させた本発明の培地にて培養し、形成されたコロニーのうち、一定以上の大きさ（たとえば直径０．７ｍｍ以上）のコロニーの数をカウントすることにより実施できる。このときカウントされたコロニー数が、前記寒天培地で培養した試験試料中に含まれるブレーベ種の生菌数に該当する。そのため、その値と希釈倍率とから、検体中に含まれるブレーベ種の生菌数（／ｇ）が求められる。
　希釈液としては、特に限定されず、生理食塩水、上述した非特許文献３に記載の希釈液（Ａ）（食品衛生検査指針に記載された嫌気性検体希釈液）等の公知の希釈液が利用できる。
　本発明における培養条件は、ブレーベ種の培養条件として公知の培養条件を利用できる。
　コロニー数のカウントは、通常、嫌気条件下、３７℃で４８時間程度培養した後に、目視にて行う。
　前記本発明の測定方法に用いられる培地は、糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコール（以下、特定糖源ということがある。）のみを含有する。
　前記特定糖源としては、ソルビトールのみであってもよく、マンニトールのみであってもよい。あるいは、ソルビトールとマンニトールとを組み合わせたものでもよい。また、ソルビトールは、Ｄ－ソルビトールであることが好ましく、マンニトールは、Ｄ－マンニトールであることが好ましい。あるいは、Ｄ－ソルビトールとＤ－マンニトールとを組み合わせたものでもよい。
　前記培地において、前記特定糖源の濃度（ソルビトール又はマンニトールの濃度）は、ブレーベ種の選択性の観点から、培地の総質量に対し、４質量％以下であることが好ましい。浸透圧への影響や経済性の面を考慮すると、１～４質量％がより好ましい。１～３質量％がさらに好ましい。
　なお、本発明の培地に含まれない、前記特定糖源以外の糖源としては、例えばグルコース、デンプン、スクロース、ラフィノース、ガラクトース、アラビノース等が挙げられる。
　前記培地は、前記特定糖源以外の成分を含有してもよい。以下、前記培地を構成する、糖源として唯一含まれる前記特定糖源以外の成分を基礎培地成分と記載する。
　基礎培地成分としては、酵母エキス、肉エキス、ペプトン等の窒素源；塩化ナトリウム、酢酸ナトリウム、プロピオン酸ナトリウム等のナトリウム塩、Ｌ－システイン塩酸塩、リン酸塩、硫酸塩（たとえば、硫酸マグネシウム、硫酸マンガン）等の塩類；を例示することができる。これらのうち、前記本発明の測定方法に用いられる培地は、窒素源として酵母エキス、肉エキス、及びペプトンを含有する。
　酵母エキス、肉エキス、ペプトンとしては、それぞれ、通常、微生物の培養のために用いられるものが利用できる。
　酵母エキスは、酵母を原料として自己消化酵素などによって適度に分解された栄養源であり、具体的には、Yeast Extract（ＢＤ社製）等を例示することができる。肉エキスは、肉の浸出液から得られる栄養源であり、ペプトンに備わっていないミネラル、リン酸、エネルギー源等の必須な要素を付与することにより、ペプトンの栄養素の特性を補完する栄養源である。具体的には、'LAB-MEMCO' powder（ＯＸＯＩＤ社製）等を例示することができる。ペプトンは、牛乳カゼイン、獣肉、大豆タンパク質等をタンパク質分解酵素又は酸で部分的に加水分解したものである。具体的には、BactoTM peptone（ＢＤ社製）等を例示することができる。
　培地１０００ｍＬ中、酵母エキスの含有量は、１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬが好ましい。より好ましくは２．７～４．２ｇ／１０００ｍＬである。
　培地１０００ｍＬ中、肉エキスの含有量は、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬが好ましい。より好ましくは９．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬである。
　培地１０００ｍＬ中、ペプトンの含有量は、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬが好ましい。より好ましくは９．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬである。
　上記酵母エキス、肉エキス、ペプトンそれぞれの含有量（ｇ／１０００ｍＬ）は、培地１０００ｍＬ中に含まれる固形分量（ｇ）を示す。
　本発明に用いられる培地は、浸透圧の観点から、前記塩類を含むことが好ましい。前記塩類としては、ナトリウム塩が好ましく、塩化ナトリウム、及び酢酸ナトリウムが特に好ましい。
　培地中、前記塩類の含有量は、培地１０００ｍＬ中、５～１５ｇ／１０００ｍＬが好ましい。
　本発明に用いられる培地は、特に、ブレーベ種のみが大きいコロニーを形成しやすく、複数のビフィズス菌種が混在するなかからブレーベ種のみの生菌数を正確に測定しやすいことから、以下の１）～５）を全て満たすことが好ましい。
　１）糖源として前記特定糖源のみを含有する。
　２）前記特定糖源の濃度が、培地の総質量に対し、４質量％以下である。
　３）酵母エキスを、培地１０００ｍＬ中、１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬ含有する。
　４）肉エキスを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する。
　５）ペプトンを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する。
　本発明の培地は、必要に応じて、本発明の効果を損なわない範囲で、上記以外の他の成分を含有してもよい。
　前記他の成分としては、特に限定されず、一般的に培地に添加されている成分を含有できる。たとえば生菌数測定の際に培養法として固体培養法を用いる場合は、寒天が配合される。寒天は、通常、最終的に得られる培地中の濃度が１．５質量％程度となるように配合される。
　なお、ブレーベ種のコロニー生育と生菌数への影響を及ぼさない範囲で、任意の抗生物質を添加することが可能である。
　上記のように、ブレーベ種が資化性を有する前記特定糖源を唯一の糖源として含有させた培地を用いることで、ブレーベ種を含む複数種のビフィズス菌が混在する製品中から、ブレーベ種のみを識別して、その生菌数を容易に測定できる。つまり、かかる培地においては、ブレーベ種のみが大きいコロニーを形成する。
　たとえば、同じく前記特定糖源の資化性を有する菌株が一部存在するインファンティス種であっても、本発明の培地において形成されるコロニーの大きさは、ブレーベ種よりも小さいものとなる。
　前記特定糖源の資化性を有さないビフィズス菌種（たとえばロンガム種、ラクティス種等）の場合、前記コロニーの大きさはさらに小さいものとなる。コロニーの大きさに違いが生じる理由としては、上記培地組成が、ブレーベ種以外のビフィズス菌種のコロニー形成能を低下させることが考えられる。
　そのため、ブレーベ種を含む複数種のビフィズス菌が混在する製品を本発明の培地を用いて培養すると、コロニーや菌の形態を判別しなくても、大きく生育したコロニー数を計測することで、ブレーベ種のみを識別して、その生菌数を測定でき、簡便である。また、その測定値は、前記ＢＬ寒天培地に無菌脱繊血液を加えた培地のような既存の培地と同程度正確なものである。
　したがって、本発明の培地は、ブレーベ種を含む複数種のビフィズス菌が混在する製品中のブレーベ種の生菌数を培養法により測定するための選択培地として有用である。
　さらに本発明の培地は、無菌脱繊血液のように入手困難な材料を必要としないため、調製も容易である。
　上記効果を得るうえでは、窒素源として、ペプトン、肉エキス、酵母エキスの各成分が所定濃度で組み合わされることが重要である。
　なお、本発明の培地中に含有させることが可能な塩類の中で、硫酸マグネシウム、及び硫酸マンガンは、培地中における含有量が少ないほど、コロニーの生育が良好となるため好ましい。具体的には、培地１０００ｍＬ中、硫酸マグネシウムの含有量は０．１ｇ／１０００ｍＬ以下が好ましく、０ｇ／１０００ｍＬが特に好ましい。硫酸マンガンの含有量は０．０５ｇ／１０００ｍＬ以下が好ましく、０ｇ／１０００ｍＬが特に好ましい。
　培地の作製方法は、特に限定されず、公知の方法を利用して作製できる。
　具体例を挙げると、まず、酵母エキス、肉エキス、及びペプトンに、寒天、塩化ナトリウム、酢酸ナトリウム、Ｌ－システイン塩酸塩等の任意成分と共に水を加えて溶解して基礎培地を調製する。この時点の基礎培地中の各成分濃度は、最終濃度から計算して１．２５倍程度とする。次に前記基礎培地に対し、オートクレーブにより１２１℃１５分間の滅菌処理を行う。
　別途、前記特定糖源を水で溶解させることにより糖溶液を調製する。この時点の糖溶液中の糖濃度は、最終濃度から計算して５倍程度とする。次にフィルター滅菌により前記糖溶液の滅菌処理を行う。
　そして、前記基礎培地と糖溶液とを４：１の割合（体積比）にて混合することにより、各成分を所望の濃度で含む培地が得られる。本明細書中、培地１０００ｍＬとは、基礎培地成分及び糖を、水で希釈して全量が１０００ｍＬとしたものを表す。
　なお、本発明において、ビフィズス菌を含有する被検菌からブレーベ種のみの生菌数を測定する方法に用いられる培地は、ブレーベ種選択用培地、糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有するブレーベ種選択用培地等として記載することも可能である。
　次に、試験例及び実施例を示して本発明を更に詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。
＜試験例１：基礎培地についての検討＞
　１０００ｍＬ中に表１に示す各基礎培地成分を含む基礎培地Ａ又はＢであって、各基礎培地中の基礎培地成分の濃度（１．０倍の濃度）を表２～３に示す倍率の濃度としたものを用いることにより、基礎培地における有効成分濃度の検討を行った。表２～３に示す濃度の倍率は、基礎培地１０００ｍＬ中、表１に示す基礎培地成分の含有量を基準（１．０倍）とした場合に、基礎培地１０００ｍＬ中、表１の配合比を維持しながら各基礎培地成分の濃度を変更した割合を示す。
　一般的に、ビフィズス菌の生菌数測定には、ＲＣＡ培地（Ｒｅｉｎｆｏｒｃｅｄ　Ｃｌｏｓｔｒｉｄｉａｌ　Ｍｅｄｉｕｍ　Ａｇａｒ）、ＭＲＳ培地（ｄｅ　Ｍａｎ　Ｒｏｇｏｓａ　ａｎｄ　Ｓｈａｒｐｅ）にＬ－システイン塩酸塩を添加したｍＭＲＳ培地（ｍｏｄｉｆｉｅｄ　ＭＲＳ培地）などが使用されている。そこで、ＲＣＡ培地、ｍＭＲＳ培地の培地組成を参考に、表１に示す基礎培地成分を含む基礎培地Ａ、及び基礎培地Ｂをそれぞれ調製した。
　上記の各基礎培地に、寒天を最終濃度（Ｄ－マンニトール又はＤ－ソルビトール添加後の濃度）が培地の総質量に対し、１．５質量％になるように添加し、さらにＤ－マンニトール又はＤ－ソルビトールを、培地の総質量に対し、最終濃度が１質量％になるように添加して、各培地１－１～１－１４、２－１～２－８を調製した。
　調製した培地を用い、培養法（混釈法）による生菌数測定を以下の手順で実施した。
　試験試料として、Ｍ－１６Ｖ菌末（森永乳業社製、１．７×１０１１／ｇ含有品）を使用し、生菌数測定の際に試験試料を希釈する希釈液としては、０．８５％生理食塩水を用いた。
　試験試料を希釈液で希釈して測定試料を調製した。前記測定試料を、予め４５℃に加熱して溶解させた培地とともに混釈法によりプレートに撒き、寒天が固まった後、嫌気条件下にて３７℃、４８時間の培養を行った。
　培養後、培地に生育したコロニー数を目視により測定し、前記測定値から、試験試料中の生菌数値を算出した。その結果を表２～３に示す。また、前記コロニーの直径（ｍｍ）を０．１ｍｍ目盛のスケールにより測定し、その平均値を求めた。前記平均値を「コロニー直径」として表２～３に示す。表中、「％」は「質量％」を表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000001
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000002
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000003
　表２に示すように、培地成分Ａと同じ組成を用いた培地１－１～１－１４のうち、濃度０．１倍の培地１－１、１－２及び濃度３．０倍の培地１－１３、１－１４で培養した例では、生菌数が５．０×１０９／ｇ未満であった。
　また、濃度０．３倍の培地１－３、１－４で培養した例では、それぞれ生菌数が１．６×１０１１／ｇ、１．４×１０１１／ｇであったが、コロニーの直径が０．５ｍｍとなり、比較的小さいコロニーが形成された。
　一方、その他の培地１－５～１－１２で培養した例では、生菌数値が１．４×１０１１／ｇ～１．８×１０１１／ｇ、コロニー直径が０．８～１．３ｍｍであり、良好な生育が観察された。
　よって、基礎培地として、基礎培地Ａと同じ組成を濃度０．６倍から２．０倍の範囲内で用いることによって、生菌数が高く、コロニー直径が０．８ｍｍ以上の識別可能なコロニーを形成することがわかった。
　表３に示すように、基礎培地Ｂと同じ組成を用いた培地２－１～２－８のうち、濃度０．１倍の培地２－１、２－２で培養した例では、生菌数が５．０×１０９／ｇ未満であった。
　また、濃度０．３倍の培地２－３、２－４のうち、糖源としてＤ－マンニトールを配合した培地２－３で培養した例では良好な生育が観察されたが、糖源としてＤ－ソルビトールを配合した培地２－４で培養した例では、生菌数が１．６×１０１１／ｇであったものの、コロニーの直径が０．６ｍｍとなり、比較的小さいコロニーが形成された。
　一方、その他の培地２－５～２－８で培養した例では、生菌数値が１．７×１０１１／ｇ～１．９×１０１１／ｇ、コロニー直径が０．９～１．１ｍｍであり、良好な生育が観察された。
　よって、基礎培地として、基礎培地Ｂと同じ組成を濃度０．６倍から１．０倍の範囲内で用いることによって、生菌数が高く、コロニー直径が０．９ｍｍ以上の識別可能なコロニーを形成することがわかった。
　基礎培地Ａ、及び基礎培地Ｂの組成、ならびに表２～３の結果より、培地１０００ｍＬ中、６．０～２０．０ｇのペプトン、６．０～２０．０ｇの肉エキス、及び３．０～６．０ｇの酵母エキスを含む基礎培地がブレーベ種の良好な生育に有効であることが確認された。
＜試験例２：ビフィズス菌種の違いによる分離性についての検討＞
　ビフィズス菌として、ブレーベ種　ＡＴＣＣ　１５７００Ｔ株、ブレーベ種　Ｍ－１６Ｖ株、ロンガム種　ＡＴＣＣ　１５７０７Ｔ株、ロンガム種　ＢＢ５３６株、ラクティス種　ＤＳＭ１０１４０Ｔ株を用いた。上付き文字Ｔは基準株であることを示す。
　上記のうち、ブレーベ種　Ｍ－１６Ｖ株は受託番号：ＢＣＣＭ／ＬＭＧ２３７２９にて寄託されており、ロンガム種　ＢＢ５３６株は受託番号：ＡＴＣＣ　ＢＡＡ－９９９にて寄託されている。
　表４に、バージェイズ・マニュアル・オブ・システマティック・バクテリオロジー，１９８６年，第２巻，第１４２８頁，表１５．５１（以下、文献Ａという。）、ビフィドバクテリア・マイクロフローラ，第１（１）巻，第３－２４頁（以下、文献Ｂという。）それぞれの文献より抜粋した、ブレーベ種、インファンティス種、ロンガム種、ラクティス種のマンニトールの資化性及びソルビトールの資化性を示す。
　文献Ａから抜粋した値は、ｄが、１１～８９％の菌株が資化性を有することを示し、－が、９０％以上の菌株が資化性を有しないことを示す。文献Ｂから抜粋した値は、分母の値が試験した菌株数を示し、分子の値が、試験した菌株の中で資化性を有していた菌株数を示す。
　なお、前記バージェイズ・マニュアルでは、ブレーベ種のマンニトール及びソルビトールの資化性は１１～８９％であるが、文献Ｂによれば、ブレーベ種全ての菌株がマンニトール及びソルビトールの糖の資化性を有することがわかっている。また、インファンティス種、ロンガム種、ラクティス種ではほとんどの株においてマンニトール及びソルビトールの資化性を有さないことがわかっている。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000004
　培地１０００ｍＬ中に、３ｇの酵母エキス、１０ｇの肉エキス、１０ｇのペプトン、５ｇの塩化ナトリウム、３ｇの酢酸ナトリウム及び０．５ｇのＬ－システイン塩酸塩を含有する基礎培地Ａ、及び前記基礎培地Ａを希釈して基礎培地Ａの各培地成分の濃度（１．０倍の濃度）を表５に示す倍率（０．１～０．９倍）の濃度とした基礎培地を調製した。
　上記の各基礎培地に、寒天を最終濃度（糖源添加後の濃度）が１．５質量％になるように添加して基礎培地３－１～３－４を調製した。
　また、上記の各基礎培地に、寒天を最終濃度（糖源添加後の濃度）が、培地の総質量に対し、１．５質量％になるように添加し、さらに、糖源としてＤ－グルコース、Ｄ－ソルビトール又はＤ－マンニトールを、培地の総質量に対し、最終濃度が１質量％になるように添加して、各培地３－５～３－１６を調製した。
　上記の各菌株を、ｍＭＲＳ培養液にて、摂取量３％、３７℃にて１５時間の継代培養を行った。安定的に生育が確認された培養液を、０．８５％生理食塩水にて適当な濃度に希釈した。
　希釈した培養液を、予め４５℃に過熱して溶解させた培地とともに混釈法によりプレートに撒き、寒天が固まった後、嫌気条件下にて３７℃、４８±２時間の培養を行った。培養後、培地に生育したコロニーの直径（ｍｍ）を試験例１と同様に測定した。その結果を表５に示す。
　表５中、Ｎ．Ｔ．は試験（培養、及びコロニー直径の測定）を行っていないことを示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000005
　表５に示すように、糖源を添加していない培地（３－１～３－４）で培養を行っても、試験した全ての菌株において０．３ｍｍ以下のコロニーしか生育しなかった。
　１質量％のＤ－グルコースを添加した培地（３－５～３－７）の場合には、培地成分濃度に比例して、形成されるコロニー直径が大きくなっており、培地成分濃度が０．６倍以上の培地ではいずれの菌種でも直径０．７ｍｍ以上のコロニーが形成されたが、菌種間の差は見られなかった。
　１質量％のＤ－ソルビトールを添加した培地（３－８～３－１２）の場合、培地成分濃度が０．３倍から１．０倍の時に、ブレーベ種ＡＴＣＣ１５７００Ｔ株、及びＭ－１６Ｖ株がいずれも直径０．７ｍｍ以上のコロニーを形成した。
　一方、ブレーベ種以外のインファンティス種、ロンガム種、ラクティス種の４株が形成したコロニー直径はいずれも０．３ｍｍ以下であり、ブレーベ種のコロニーと容易に区別できる大きさのコロニーしか生育しないことが分かった。
　以上の結果から、特定の基礎培地に所定量のＤ－ソルビトール又はＤ－マンニトールを唯一の糖源として添加した培地を用いることによって、ブレーベ種のコロニーのみを大きく形成させ、その生菌数を容易に測定できることが確認された。
　したがって、被検菌中に、ブレーベ種以外に、インファンティス種、ロンガム種、ラクティス種等が混在していたとしても、上記培地を用いて培養を行うことにより、ブレーベ種のみを識別して、その生菌数を容易に測定することができる。
＜実施例１、比較例１～２＞
　ブレーベ種Ｍ－１６Ｖ株の菌末、及びロンガム種ＢＢ５３６株の菌末の両方を配合していることが分かっている粉ミルク製品を用意した。
　培地として、馬脱繊血液入りのＢＬ寒天培地（従来、コロニー形状による区別が可能な培地とされている培地）、ＲＣＡ培地（２株のビフィズス菌のコロニーが形成することが知られている培地）、下記の基礎培地にＤ－ソルビトールを１質量％添加した培地（本発明培地）、の３種を用いて、前記粉ミルク製品中の各菌種の生菌数を、試験例１と同様に測定した。ただしＢＬ培地のみ、混釈法ではなく塗沫法により培養を行った。
　基礎培地：培地１０００ｍＬ中に、２．５ｇの酵母エキス、８．２ｇの肉エキス、８．２ｇのペプトン、４．１ｇの塩化ナトリウム、４．１ｇの酢酸ナトリウム、０．４１ｇのＬ－システイン塩酸塩、及び１５ｇの寒天を含む基礎培地。
　ＢＬ培地を用いた例では、前記ＢＬ培地上に生育させたコロニーの形状、検鏡により、ブレーベ種とロンガム種を分離して計測した。その合算値を２種合計の生菌数値として表示した。
　ＲＣＡ培地、及び本発明培地を用いた例では、生育して得られたコロニー数から生菌数を計測した。
　なお、表６中、「－」は、コロニーの大きさが０．２ｍｍ未満であったためカウントしなかったものを示す。また、表６中、「％」は「質量％」を表す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000006
　表６による結果に示すとおり、本発明の培地を用いて測定された生菌数値は、馬脱繊血液入りのＢＬ培地を用いて測定されたブレーベ種の生菌数値と同等以上であった。よって、本発明の培地を用いることで、ブレーベ種のみを識別して、その生菌数値を測定でき、その生菌数値も前記ＢＬ培地を用いた場合とほぼ同程度の正確な値であることが示された。
　一方、ＲＣＡ培地を用いて測定された生菌数値は、馬脱繊血液入りのＢＬ培地を用いて測定されたブレーベ種、及びロンガム種の合計の生菌数値と同等であった。よって、ＲＣＡ培地を用いた場合、ブレーベ種、及びロンガム種の生菌数を区別することができなかった。
　本発明によれば、ビフィズス菌を含有する被検菌から、ブレーベ種のみの生菌数を、特定の培養法を用いることにより容易に測定できる測定方法、及び前記測定方法用の選択培地として有用で、且つ調製も容易な培地を提供できる。

Claims (8)

  1. 　培地を用いてビフィドバクテリウム属に属する微生物を含有する被検菌からビフィドバクテリウム・ブレーベ（Bifidobacterium breve）に属する微生物のみの生菌数を測定する方法であって、
    前記培地が以下の１）、及び２）を満たすこと、及び前記生菌数の測定が前記培地に形成される直径０．７ｍｍ以上のコロニーを計測することを特徴とする方法：
    　１）糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する、
    　２）窒素源としてペプトン、肉エキス、及び酵母エキスを含有する。
  2. 　前記培地中の前記糖アルコールの濃度が、培地の総質量に対し、４質量％以下である請求項１に記載の方法。
  3. 　前記培地中、培地１０００ｍＬ中、前記ペプトンの含有量が６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ、前記肉エキスの含有量が６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ、及び前記酵母エキスの含有量が１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬである、請求項１又は２に記載の方法。
  4. 　前記ビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物が、ビフィドバクテリウム・ブレーベ・Ｍ－１６Ｖ株である請求項１～３のいずれか一項に記載の方法。
  5. 　前記被検菌が、前記ビフィドバクテリウム属に属する微生物として、前記ビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物と、
    ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガム（Bifidobacterium longum subsp. longum）に属する微生物、ビフィドバクテリウム・アニマリス・サブスピーシーズ・ラクティス（Bifidobacterium animalis subsp. lactis）に属する微生物、及びビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・インファンティス（Bifidobacterium longum subsp. infantis）に属する微生物からなる群から選択される少なくとも１種の微生物と、を含有する請求項１～４のいずれか一項に記載の方法。
  6. 　前記ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガムに属する微生物が、ビフィドバクテリウム・ロンガム・サブスピーシーズ・ロンガム・ＢＢ５３６株である請求項５に記載の方法。
  7. 　請求項１～６のいずれか一項に記載された方法に用いられるビフィドバクテリウム属に属する微生物を含有する被検菌からビフィドバクテリウム・ブレーベに属する微生物のみの生菌数を測定するための培地。
  8. 　以下の１）～５）を満たすことを特徴とする請求項７に記載の培地：
    　１）糖源としてソルビトール及びマンニトールから選ばれる少なくとも１種の糖アルコールのみを含有する、
    　２）前記糖アルコールの濃度が、培地の総質量に対し、４質量％以下である、
    　３）酵母エキスを、培地１０００ｍＬ中、１．８～４．２ｇ／１０００ｍＬ含有する、
    　４）肉エキスを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する、
    　５）ペプトンを、培地１０００ｍＬ中、６．０～１４．０ｇ／１０００ｍＬ含有する。
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Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8993259B2 (en) 2012-05-02 2015-03-31 Charles River Laboratories, Inc. Method of viability staining with membrane permeable fluorescent dye and membrane impermeable fluorescence quencher
US9709500B2 (en) 2012-05-02 2017-07-18 Charles River Laboratories, Inc. Optical method for detecting viable microorganisms in a cell sample
US10324036B2 (en) 2012-05-02 2019-06-18 Charles River Laboratories, Inc. Porous planar cell capture system
WO2019215873A1 (ja) * 2018-05-10 2019-11-14 森永乳業株式会社 生菌数の測定方法

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
KR102728956B1 (ko) * 2020-02-18 2024-11-11 오브 가부시키가이샤 신규 비피도박테리움 속 세균 및 이를 포함하는 조성물

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010072369A (ja) 2008-09-18 2010-04-02 Sumitomo Bakelite Co Ltd 光導波路の製造方法

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2010072369A (ja) 2008-09-18 2010-04-02 Sumitomo Bakelite Co Ltd 光導波路の製造方法

Non-Patent Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Method for the enumeration of bifidobacteria in fermented milks and fermented milk drinks", March 2000, BIFIDOBACTERIUM TESTING METHODS REVIEW COMMITTEE OF THE JAPANESE ASSOCIATION OF FERMENTED MILKS AND FERMENTED MILK DRINKS, pages: 1 - 13
BERGEY'S: "Manual of Systematic Bacteriology", vol. 2, 1986, pages: 1,428
BIFIDOBACTERIA MICROFLORA, vol. 1, no. 1, pages 3 - 24
BONJOCH, X. ET AL.: "Enumeration of bifidobacterial populations with selective media to determine the source of waterborne fecal pollution.", WATER RES., vol. 39, no. 8, 2005, pages 1621 - 1627, XP008154846 *
LONG, S.C. ET AL.: "An optimized enumeration method for sorbitol-fermenting Bifidobacteria in water samples.", CAN. J. MICROBIOL., vol. 51, no. 5, 2005, pages 413 - 422, XP008154841 *
MARA, D.D. ET AL.: "Sorbitol-fermenting bifidobacteria as specific indicators of human faecal pollution.", J. APPL. BACTERIOL., vol. 55, no. 2, 1983, pages 349 - 357, XP008154842 *
MITSUOKA, T.: "Recent Trends in Research on Intestinal Flora.", BIFIDOBACTERIA MICROFLORA, vol. 1, no. 1, 1982, pages 3 - 24, XP008155156 *
RHODES, M.W. ET AL.: "Sorbitol-fermenting bifidobacteria as indicators of diffuse human faecal pollution in estuarine watersheds.", J. APPL. MICROBIOL., vol. 87, no. 4, 1999, pages 528 - 535, XP008154848 *
ROY, D. ET AL.: "Evaluation of rapid methods for differentiation of Bifidobacterium species.", J. APPL. BACTERIOL., vol. 69, no. 5, 1990, pages 739 - 749, XP008154304 *
See also references of EP2554677A4 *
SILVI, S. ET AL.: "An assessment of three selective media for bifidobacteria in faeces.", J. APPL. BACTERIOL., vol. 81, no. 5, 1996, pages 561 - 564, XP008154849 *
TOMOTARI MITSUOKA: "Recent Trends in Research on Intestinal Flora", BIFIDOBACTERIA MICROFLORA, vol. 1, no. 1, pages 3 - 24, XP008155156, DOI: doi:10.12938/bifidus1982.1.1_3
TOMOTARI MITSUOKA: "Research on bifidobacteria", 1994, JAPAN BIFIDUS FOUNDATION, pages: 266 - 267
TOMOTARI MITSUOKA: "Research on bifidobacteria", 1994, JAPAN BIFIDUS FOUNDATION, pages: 282 - 283

Cited By (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8993259B2 (en) 2012-05-02 2015-03-31 Charles River Laboratories, Inc. Method of viability staining with membrane permeable fluorescent dye and membrane impermeable fluorescence quencher
US8993260B2 (en) 2012-05-02 2015-03-31 Charles River Laboratories, Inc. Fluorescence-based viability staining method using a membrane permeable flourescent dye and membrane impermeable fluorescence quencher
US9709500B2 (en) 2012-05-02 2017-07-18 Charles River Laboratories, Inc. Optical method for detecting viable microorganisms in a cell sample
US10324036B2 (en) 2012-05-02 2019-06-18 Charles River Laboratories, Inc. Porous planar cell capture system
US10976258B2 (en) 2012-05-02 2021-04-13 Charles River Laboratories, Inc. Porous planar cell capture system and method of use
WO2019215873A1 (ja) * 2018-05-10 2019-11-14 森永乳業株式会社 生菌数の測定方法
JPWO2019215873A1 (ja) * 2018-05-10 2021-03-18 森永乳業株式会社 生菌数の測定方法
JP7084474B2 (ja) 2018-05-10 2022-06-14 森永乳業株式会社 生菌数の測定方法

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