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WO2006016468A1 - リポソーム含有製剤の製造方法 - Google Patents

リポソーム含有製剤の製造方法 Download PDF

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Publication number
WO2006016468A1
WO2006016468A1 PCT/JP2005/013309 JP2005013309W WO2006016468A1 WO 2006016468 A1 WO2006016468 A1 WO 2006016468A1 JP 2005013309 W JP2005013309 W JP 2005013309W WO 2006016468 A1 WO2006016468 A1 WO 2006016468A1
Authority
WO
WIPO (PCT)
Prior art keywords
ribosome
drug
producing
carbon dioxide
containing preparation
Prior art date
Legal status (The legal status is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the status listed.)
Ceased
Application number
PCT/JP2005/013309
Other languages
English (en)
French (fr)
Inventor
Chiaki Nagaike
Yasuyuki Motokui
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Konica Minolta Medical and Graphic Inc
Original Assignee
Konica Minolta Medical and Graphic Inc
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Konica Minolta Medical and Graphic Inc filed Critical Konica Minolta Medical and Graphic Inc
Priority to JP2006531374A priority Critical patent/JP5176320B2/ja
Priority to EP05766258.7A priority patent/EP1776948B1/en
Publication of WO2006016468A1 publication Critical patent/WO2006016468A1/ja
Priority to NO20070764A priority patent/NO20070764L/no
Anticipated expiration legal-status Critical
Ceased legal-status Critical Current

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Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K9/00Medicinal preparations characterised by special physical form
    • A61K9/10Dispersions; Emulsions
    • A61K9/127Synthetic bilayered vehicles, e.g. liposomes or liposomes with cholesterol as the only non-phosphatidyl surfactant
    • A61K9/1277Preparation processes; Proliposomes
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P35/00Antineoplastic agents

Definitions

  • the present invention relates to a method for producing a ribosome-containing preparation comprising a ribosome having excellent in vivo stability and a high drug encapsulation rate, and a ribosome-containing preparation obtained by the method.
  • Ribosomes are closed membranes of bilayer membranes (ribosome membranes) formed mainly by phospholipids, and have similar structures and functions as biological membranes. It has been. Ribosomes can build a so-called capsule structure that holds water-soluble drugs in the aqueous phase inside and oil-soluble drugs inside the bilayer membrane. It has been used in the field. In recent years, application to drug delivery systems (DDS) has been actively studied.
  • DDS drug delivery systems
  • the conventional method has a problem that the drug cannot be sufficiently encapsulated in the ribosome, and it is necessary to administer a large amount of the liposome-containing preparation, resulting in an excessive burden on the patient.
  • a ribosome-containing preparation with high contrast substance retention efficiency (encapsulation rate) has been demanded.
  • Patent Document 1 discloses a method for producing a ribosome encapsulating a water-soluble electrolyte drug using supercritical carbon dioxide. This method sets various manufacturing conditions. Therefore, the encapsulation rate of the water-soluble drug can be improved relatively easily as compared with the conventional method for producing a suspension of ribosome.
  • ribosomes used for applications including drugs for diagnosis and treatment are unstable in the living body, the ribosome membrane is destroyed and the encapsulated drug flows out early. Therefore, there is a problem that the drug cannot be delivered to a desired site, and further, it is difficult to control the sustained release, which is one function of the ribosome. Therefore, a ribosome that is excellent in in vivo stability has been demanded.
  • the stability of ribosomes can be achieved by including in the dispersion a buffer solution having a pH of 9.5 or less at 15 ° C and containing an ammonia or a water-soluble amine.
  • a buffer solution having a pH of 9.5 or less at 15 ° C and containing an ammonia or a water-soluble amine.
  • the present invention solves the problems of the prior art, and is a method for producing a ribosome-containing preparation comprising ribosomes having excellent in vivo stability and high drug encapsulation rate, and ribosomes It aims at providing a formulation containing.
  • Patent Document 1 Japanese Patent Laid-Open No. 2003-119120
  • Patent Document 2 Japanese Translation of Special Publication 2000-515487
  • the method for producing a ribosome-containing preparation comprises mixing a supercritical or subcritical carbon dioxide, a ribosome membrane-constituting substance containing at least a phospholipid having a transition temperature, and a drug.
  • the transition temperature of the phospholipid is preferably in the range of 22 to 60 ° C.
  • the inclusion rate of the drug in the ribosome is improved by mixing the supercritical or subcritical carbon dioxide, the ribosome membrane constituent, and the drug under strong stirring. I also like it.
  • Phospholipid power having the above transition temperature Preferably, at least one selected from the group consisting of dimyristoyl phosphatidylcholine, dipalmitoyl phosphatidylcholine, hydrogenated soybean soy lecithin, hydrogenated soybean soy phosphatidylcholine and distearoylphosphatidylcholine. Dimyristoylphosphatidylcholine and Z or dipalmitoylphosphatidylcholine are particularly preferred.
  • the drug is a contrast compound or an anticancer substance.
  • the ribosome-containing preparation according to the present invention is characterized by being produced by the method described above.
  • the method for producing a ribosome-containing preparation according to the present invention comprises supercritical or subcritical carbon dioxide (hereinafter also simply referred to as “supercritical diacid-carbon”) and a phospholipid having a transition temperature.
  • supercritical diacid-carbon supercritical or subcritical carbon dioxide
  • phospholipid having a transition temperature This is a method for preparing a ribosome by mixing at least a ribosome membrane-constituting substance and a drug.
  • phospholipid and Z or glycolipid are preferably used and contain at least a phospholipid having a transition temperature.
  • Examples of phospholipids include phospholipids typified by phosphatidylcholine, phosphatidylserine, phosphatidylethanolamine, phosphatidylglycerol, phosphatidylinositol, phosphatidic acid, cardiolipin, and sphingomyelin. It is used without limitation to phospholipids derived from egg yolk, soybeans and other animal and plant materials, hydrogenated products thereof, semi-synthetic phospholipids such as hydroxide derivatives, or synthetic processed products.
  • the fatty acid constituting the phospholipid is not particularly limited, and may be either a saturated fatty acid or an unsaturated fatty acid.
  • neutral phospholipids include dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC), distearoylphosphatidylcholine (DSPC), dimyristolphosphatidylcholine (DMP C), dioleylphosphatidylcholine (DOPC), dimyristoylphosphatidylethanolamine.
  • DPPC dipalmitoylphosphatidylcholine
  • DSPC distearoylphosphatidylcholine
  • DMP C dimyristolphosphatidylcholine
  • DOPC dioleylphosphatidylcholine
  • dimyristoylphosphatidylethanolamine dimyristoylphosphatidylethanolamine.
  • Dipalmitoyl phosphatidylethanolamine, distearoyl phosphatid Examples include ruethanolamine.
  • charged phospholipids such as cation phospholipids and cationic phospholipids, polymerized phospholipids, and cationic (positively charged) lipids may also be included.
  • Negatively charged phospholipids include dipalmitoylphosphatidylglycerol (DPPG), dimyristoylphosphatidylglycerol, distearoylphosphatidylglycerol (DSPG), dipalmitoylphosphatidylserine (DPPS), distearoylphosphatidylserine (DSPS), Examples include dipalmitoyl phosphatidylinositol (DPPI), distearoyl phosphatidylinositol (DSPI), distearoyl phosphatidic acid (DSPA), dipalmitoyl phosphatidic acid (DPPA), and dimyristoyl phosphatidic acid.
  • DPPG dipalmitoylphosphatidylglycerol
  • DSPG distearoylphosphatidylglycerol
  • DPPS dipalmitoylphosphatidylserine
  • DSPS distearoylphosphatidyls
  • cationic phospholipid examples include esters of phosphatidic acid and amino alcohols, such as esters of dipalmitoyl phosphatidic acid (DPPA) or distearoyl phosphatidic acid (DSPA) and hydroxyethylenediamine.
  • esters of phosphatidic acid and amino alcohols such as esters of dipalmitoyl phosphatidic acid (DPPA) or distearoyl phosphatidic acid (DSPA) and hydroxyethylenediamine.
  • the phospholipid used in the present invention includes at least a phospholipid having a transition temperature.
  • the “(phase) transition temperature” of a phospholipid is a temperature at which a phase transition between both the gel and liquid crystal states that the phospholipid can take.
  • the measurement is by differential thermal analysis using a differential scanning calorimeter (DSC).
  • DSC differential scanning calorimeter
  • the transition temperature of the phospholipid is 22-60 ° C, preferably 30-60 ° C, more preferably 40-55 ° C! /.
  • Phospholipids having a phase transition temperature include dimyristoyl phosphatidylcholine (phase transition temperature (hereinafter the same): 23 to 24 ° C), dipalmitoyl phosphatidylcholine (41.0 to 41.5 ° C), hydrogenated carbon ⁇ Soybean lecithin (53 ° C), hydrogenated soybean phosphatidylcholine (54 ° C), distearoyl phosphatidylcholine (54. 1-58.0 ° C), etc., preferably dimyristyl phosphatidylcholine, dipalmitoyl It is desirable to use phosphatidylcholine, more preferably dipalmitoyl phosphatidylcholine. In the present invention, these forces are used alone or in combination of two or more.
  • the phospholipid having these phase transition temperatures is desirably used in an amount of 40 to: LOO mass%, preferably 50 to 80 mass%, based on the total lipid mass. Having this phase transition temperature By using the phospholipid in the above amount, a ribosome having excellent in vivo stability can be prepared at the mixing temperature described later.
  • the phospholipid used in the present invention usually contains at least a phospholipid having a transition temperature, but one or more other phospholipids may be used in combination. However, when using two or more kinds of charged phospholipids, it is desirable to use negatively charged phospholipids or positively charged phospholipids from the viewpoint of preventing ribosome aggregation.
  • Examples of cationic lipids include 1, 2 dioleoyloxy 3- (trimethylammonium) propane (DOTAP), N, N dioctadecylamidoglycylspermine (DOGS), dimethyl Dioctadecylammobromide (DDAB), N— [1— (2,3 dioleoxy) propyl] — N, N, N Trimethylammoumum chloride (DOTMA), 2, 3— dioleyloxy N— [2 (Spermine Carboxamido) ethyl] N, N Dimethyl-1 Propaneamyltrifluoroacetate (DOSPA) and N— [1— (2,3-Dimyristyloxy) propyl] N, N Dimethyl N— ( And 2-hydroxyethyl) ammobromide (DMRIE).
  • DOTAP 1, 2 dioleoyloxy 3- (trimethylammonium) propane
  • DOGS dioctadecylamidoglycylsper
  • glycolipids include glyce mouth lipids such as digalatatosyl diglyceride and galactosyl diglyceride sulfate, galactosylceramide, galactosylceramide sulfate, latatosyl ceramide, gandarioside G7, ganglioside G6, and sulphingoglycolipids such as ganglioside G4. be able to.
  • glyce mouth lipids such as digalatatosyl diglyceride and galactosyl diglyceride sulfate, galactosylceramide, galactosylceramide sulfate, latatosyl ceramide, gandarioside G7, ganglioside G6, and sulphingoglycolipids such as ganglioside G4.
  • sterols that act as membrane stabilizers such as cholesterol, dihydrocholesterol, cholesterol, phytosterol, sitosterol, stigmasterol, campesterol, cholestanol, or lanosterol.
  • sterol derivatives such as 1 O-sterol darcoside, l-O-sterol maltoside or l-O-sterol galactoside have been shown to have an effect on ribosome stability (Japanese Patent Laid-Open No. 5-245357). Publication). Cholesterol is particularly preferred.
  • the amount of sterols used is 0.05 to 1 part by weight of phospholipid: 5 parts by weight of L, preferably 0.2 to 1 part by weight, more preferably 0.3 to 0.8 part by weight.
  • the proportion of parts is desirable. 0.05 If the amount is less than the amount, the stability due to the sterols that improve the dispersibility of the mixed lipid will not be exhibited. If the amount exceeds 1.5 parts by weight, it will be unstable even if the force that inhibits ribosome formation is formed.
  • Cholesterol in the ribosome membrane can also serve as an anchor for introducing polyalkylene oxide.
  • Japanese Patent Application Laid-Open No. 09-3093 discloses a novel cholesterol derivative in which various functional substances can be covalently fixed to the end of a polyoxyalkylene chain and can be used as a component for ribosome formation. Is disclosed.
  • glycols may be added as a constituent component of the ribosome membrane.
  • examples of glycols include ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, propylene glycol, dipropylene glycol, trimethylene glycol, and 1,4 butanediol.
  • the amount of glycols used is desirably a ratio of 0.01 to 20% by mass, preferably 0.5 to 10% by mass, based on the total mass of lipid.
  • a compound having a polyethylene glycol (PEG) group preferably a phospholipid or cholesterol having a polyethylene glycol group
  • the phospholipid to be derivatized is appropriately selected from the phospholipids exemplified above.
  • a compound having a polyethylene glycol (PEG) group is one (CH 2 CH 2
  • polyethylene glycol having an oxyethylene unit (n) force of O to 3500, preferably 100 to 2000 is suitable.
  • a compound having a polyethylene glycol group can be produced by the method described in JP-A-7-165770.
  • a ribosome having a high encapsulation rate is prepared without using an organic solvent. be able to.
  • the drugs used in the present invention are drugs encapsulated in the lipid membrane or in its internal aqueous phase. Yes, specifically, contrast substances, pile cancer substances, antifungal substances, antioxidant substances, antibacterial substances, anti-inflammatory substances, blood circulation promoting substances, whitening substances, rough skin prevention substances, anti-aging substances , Hair growth-promoting substances, moisturizing substances, hormones, vitamins, pigments, and proteins.
  • the drug used in the present invention is water-soluble, it is dissolved in a predetermined amount of an aqueous medium by a conventionally known method and used as an aqueous solution.
  • concentration of the water-soluble drug is appropriately selected according to the drug solubility and production conditions.
  • aqueous medium water such as distilled water, pharmacopoeia water, and pure water, as well as aqueous solutions containing physiological saline, various buffers, salts, and the like are used.
  • the ribosome-containing preparation of the present invention preferably uses a contrast-enhancing substance or an anticancer substance as a water-soluble drug.
  • a water-soluble iodine compound can be used as the contrast medium.
  • the water-soluble compound is not particularly defined as long as it has a contrast property, regardless of whether it is ionic or nonionic.
  • non-ionic iodine compounds are less osmotic than ionic iodine compounds and have a lower burden on the administered human body.
  • a nonionic iodide compound containing an iodide film for example, having at least one 2,4,6 triodephenol group is preferable.
  • nonionic compound examples include Iopamidol, Iomeprol, Iohexol, Iopentol, Iopromide, and Iopromide.
  • These compounds may be used alone or in combination of two or more. You can use in combination.
  • a suitable iodine compound is highly hydrophilic and nonionic iodine that does not increase osmotic pressure even at high concentrations.
  • Compounds such as iomeprol, iopamidol, iotrolan, iodixa Nord is preferred.
  • Such a non-electrolyte material can be efficiently encapsulated in the liposome according to the supercritical diacid-carbon method.
  • the concentration of the water-soluble iodine compound in the ribosome-containing preparation of the present invention can be arbitrarily set based on factors such as the nature of the contrast-enhancing compound, the intended administration route of the preparation, and clinical indicators. .
  • the amount of iodine compound encapsulated in the ribosome is typically from 5 to 40% by weight, preferably from 5 to 35% by weight, more preferably from 10 to 25% by weight of the total compound in the X-ray contrast medium. It is desirable that Since the encapsulation rate is below the limit of fine packing of ribosome particles, the retention stability of the contrast medium in the ribosome is not impaired.
  • anticancer compounds include methotrexate, doxorubicin, ebirubicin, daunorubicin, vincristine, vinblastine, etovoside, elibucitin, captodecin, paclitaxel, docetaxol, cisbratin, and bradnisone. These compounds can be used alone or in combination of two or more.
  • the above-mentioned compound may be referred to including its salt, hydrate and the like in addition to the free form.
  • the method for producing a ribosome-containing preparation according to the present invention specifically includes:
  • a ribosome membrane component containing at least a phospholipid having a transition temperature, liquefied carbon dioxide, and lipophilic drug as necessary are stirred and mixed (step 1), and then the pressure vessel is filled.
  • the liquid carbon oxynitride is brought into a supercritical or subcritical state (step 2),
  • An aqueous solution of a water-soluble drug is supplied while stirring and mixing the ribosome membrane component and supercritical carbon dioxide and carbon (Step 3).
  • the pressure vessel is depressurized to discharge carbon dioxide from the mixed solution, thereby preparing an aqueous dispersion of ribosome containing the drug (step 4).
  • a liposome membrane component containing at least a phospholipid having a transition temperature, liquefied carbon dioxide, and, if necessary, a lipophilic drug are mixed in a pressure vessel with stirring.
  • the order of addition is not particularly limited, and the stirring conditions are not particularly limited as long as they can be mixed.
  • a stainless steel autoclave is preferably used, which can withstand pressure up to 500 atm and is configured so that the inside can be visually observed through a glass window.
  • the addition amount of the ribosome membrane component is appropriately determined according to the type of drug, formulation scale, and the like, while the addition amount of the lipophilic drug used as needed depends on the activity of the lipophilic drug, It is determined appropriately according to the ribosome encapsulation rate and the like.
  • the drug, liquefied carbon dioxide, gas, and the like charged in the pressure vessel and the pressure vessel are managed in a sterile state in each step. Furthermore, it is preferable to sterilize by filtration means or the like when put into the pressure vessel.
  • step 2 the pressure vessel is heated to 32 to 55 ° C and pressurized to bring the liquefied carbon dioxide into a supercritical state.
  • the supercritical state including the subcritical state is set.
  • the temperature of the supercritical carbon dioxide used in the production method of the present invention is desirably 32 to 55 ° C, preferably 32 to 50 ° C, and more preferably 35 to 50 ° C.
  • a suitable pressure of carbon dioxide in the supercritical state is appropriately selected from the above temperature range, but is 50 to 500 kgZcm 2 , preferably 100 to 400 kg / cm 2 .
  • the ribosome formation temperature and the drug were administered as a preparation.
  • the temperature (body temperature) that the ribosome later receives in vivo is approximately equal. Therefore, after the ribosome preparation of the present invention is administered in vivo, the ribosome is heated in vivo. Even if it is heated at, the forceful temperature is almost the same as the temperature at which the ribosome was formed, so that the stability of the ribosome in vivo, where the phospholipid sequence is hardly affected by temperature, is improved. Conceivable.
  • the temperature of carbon dioxide in the supercritical state is not higher than "transition temperature + 10 ° C", preferably “transition temperature + 5 ° C” with respect to phospholipids having a transition temperature in the above temperature range. It becomes more prominent by setting it to be not higher than “C”, more preferably not higher than “transition temperature”.
  • the phospholipid having a transition temperature becomes a liquid crystal state and the fluidity is increased, and the phospholipid is more efficient than supercritical diacid-carbon. This was preferably done because it was well mixed and ribosome preparation was facilitated.
  • the present inventors modify the phospholipid because excessive heat is not applied to the phospholipid by setting the temperature of carbon dioxide in the supercritical state to be near or below the transition temperature of the phospholipid as described above.
  • phospholipids were regularly arranged to form a ribosome membrane, and the present invention was completed.
  • the ribosome obtained in this way has a stable membrane structure, making it easy to control the sustained release of the ribosome, and further improving the in vivo stability, so that the drug can be selectively delivered to the desired site. be able to.
  • Step 3 a drug aqueous solution is supplied while stirring and mixing the ribosome membrane constituent and supercritical carbon dioxide with a predetermined stirring means to prepare a mixed solution.
  • the stirring conditions are preferably strong stirring.
  • “Strong agitation” has a preferable range that varies depending on the volume of the mixed solution and the stirring means. This means that a columnar stirrer is used and the magnetic stirrer is used for stirring at a rotational speed of 400 to 4000 rpm, preferably 1000 to 1500 rpm. Even if the volume of the mixed solution is different from the stirring means, it is preferable to appropriately determine the stirring conditions in consideration of the breaking force given to the mixed solution under the stirring conditions. Specifically, it is particularly preferred that the stirring conditions satisfy the following formula:
  • the strong stirring time is 1 to 120 minutes, preferably 5 to 60 minutes.
  • the time for supplying the aqueous drug solution is included in the time for the strong stirring.
  • the diacid carbon is brought into a supercritical or subcritical state at the above-mentioned temperature, and the supercritical diacid carbon and the ribosome membrane constituent component are further mixed with each other under strong stirring. It is particularly preferable to mix for a time, whereby a ribosome-containing preparation comprising ribosomes with improved in vivo stability and a higher drug encapsulation rate can be obtained. Furthermore, within this range, a tendency for the drug inclusion rate to be high in the ribosome tends to be high by maintaining the supercritical state for a longer time and continuing strong stirring.
  • ribosome membrane components lipids
  • lipids can be dispersed as fine particles in supercritical diacid-carbon, resulting in a ribosome-containing preparation with higher ribosome production rate and drug encapsulation rate. Can be prepared.
  • a ribosome membrane component In a pressure vessel, a ribosome membrane component, an aqueous drug solution, and, if necessary, a lipophilic drug are stirred and mixed.
  • liquefied carbon dioxide is supplied into the pressure vessel, Heat and pressurize the inside of the pressure vessel to bring the liquefied carbon dioxide into a supercritical state, and (3) prepare a mixed solution by mixing the ribosome membrane component, drug, and supercritical carbon dioxide for a predetermined time. It is also preferable.
  • it is not necessary to add a water-soluble drug after producing supercritical carbon dioxide it is easy to control the temperature and pressure in the pressure vessel, and the ribosome production rate. And the inclusion rate of drugs will be improved.
  • the suspension may be prepared by mixing the ribosome membrane component and the aqueous drug solution after being put into the pressure vessel. However, in the preferred embodiment of Step 1, the suspension is mixed and suspended. The suspension is made turbid and this suspension is fed into the pressure vessel. By making the suspension in advance, the liposome membrane constituent and the aqueous drug solution can be easily supplied into the pressure vessel, and the ribosome production rate and the drug encapsulation rate can be improved.
  • step 1 in the present invention a pharmaceutical aqueous solution and a dissolution aid are mixed, and then a ribosome membrane component is further mixed to prepare a suspension. Dispersing a solubilizing agent in the aqueous drug solution in advance enables the ribosome membrane constituents to be dissolved in the aqueous drug solution, so the above effect is excellent.
  • step 1 in the present invention when the ribosome membrane component and the aqueous drug solution are mixed, or the aqueous drug solution and the dissolution aid are mixed, and then the ribosome is further mixed.
  • a suspension is prepared by mixing membrane components, the suspension is prepared by irradiating ultrasonic waves, and this suspension is supplied into a pressure vessel.
  • the ultrasonic irradiation conditions are forces appropriately selected according to the form of ribosomes contained in the suspension of ribosomes, the particle size distribution, the encapsulation rate, etc. 10-: LOOkHz, preferably 15-45kHz ultrasonic waves For 1 to 600 wZmlZ, preferably 5 to 500 wZmlZ.
  • the amount of irradiation can be calculated from the rated output of the ultrasonic disperser used, the amount of dispersion to be irradiated, and the time force to be irradiated.
  • ribosome membrane constituents lipids
  • a ribosome-containing preparation with a high production rate and high drug encapsulation rate can be prepared.
  • Such an effect is obtained by preparing a suspension by irradiating ultrasonic waves under the above conditions, and then arranging phospholipids in the suspension. This is thought to promote the formation of ribosomes by mixing with carbon.
  • the ultrasonic wave is irradiated under the above conditions, and the phospholipid transition temperature to the transition temperature + 50 ° C (however, exceeding 100 ° C). It is even more preferred to prepare a suspension by warming.
  • step 1 liquefied carbon dioxide is supplied into a pressure vessel containing the above suspension.
  • Liquefied carbon dioxide is prepared by cooling and pressurizing gaseous carbon dioxide by a conventionally known method.
  • the obtained liquefied carbon dioxide is supplied into the pressure vessel while maintaining the liquid state.
  • the supply into the pressure vessel is not particularly limited, and may be added at once or intermittently.
  • the amount of liquid phosphonate carbon supplied is appropriately selected depending on the ribosome membrane constituent, the type of water-soluble drug, the production scale, and the like.
  • step 4 in the third step, the ribosome membrane component, supercritical carbon dioxide, and an aqueous solution of the drug are mixed, and then the pressure vessel is depressurized to discharge carbon dioxide from the mixed solution.
  • An aqueous dispersion of ribosome containing the drug is prepared.
  • Step 3 since it is presumed that the ribosome has phase-inverted into the aqueous phase, when the system is depressurized and carbon dioxide is discharged, an aqueous dispersion in which the ribosome encapsulating the drug is dispersed is produced. To do.
  • a drug may be contained in an aqueous phase other than the inside of the ribosome. Since the aqueous solution is also encapsulated inside the ribosome, the contrast medium exists mainly in the aqueous phase inside the ribosome, and is in a so-called “encapsulation” state.
  • the aqueous dispersion of ribosome obtained in the fourth step is filtered through a filtration membrane having a pore size of 0.1 to 1.0 m.
  • a filter-sterilized gas is supplied into the pressure vessel.
  • the gas include air, carbon dioxide, nitrogen, helium, and argon.
  • the gas is supplied to adjust the inside of the pressure vessel to atmospheric pressure, and the aqueous dispersion of ribosome is filtered through a filter membrane having a pore size of 0.1 to 1. O / zm.
  • a filter membrane having a pore size of 0.1 to 1. O / zm.
  • a hydrostatic extrusion apparatus equipped with a filter having a pore diameter of 0.1 to 1.0 m.
  • various hydrostatic extruders such as “Estas Ruder” (trade name, manufactured by NOF Ribosome) and “Liponizer” (trade name, manufactured by Nomura Microscience) are used to force the filter.
  • a filter type such as a polycarbonate type or a cellulose type can be used as appropriate, and the extrusion filtration method is described in, for example, Biochim. Biophys. Acta 557 ⁇ ⁇ ⁇ , page 9 (1979).
  • the aqueous dispersion of ribosome is filtered through a filtration membrane as described above, and if necessary, it is not retained in the ribosome by a method such as centrifugation, ultrafiltration, or gel filtration. It can be purified by removing the drug, or concentrated to a predetermined concentration, and further prepared by appropriately mixing formulation adjuvants such as a commonly used diluent.
  • the ribosome-containing preparation of the present invention can also be obtained by freeze-drying ribosomes from an aqueous dispersion of ribosomes according to a conventional method. If ribosomes are lyophilized, resuspend them in an aqueous medium immediately before use.
  • a drug that does not require the use of an organic solvent can be efficiently encapsulated in the ribosome, and the ribosome excellent in stability in vivo.
  • a ribosome-containing preparation comprising can be obtained.
  • the ribosome-containing preparation of the present invention produced as described above contains a liposome encapsulating a drug, and the average particle size of the ribosome is usually 0.05-2.
  • the power is 0.05.O ⁇ m, more preferably 0.05.05-0.5m.
  • the pores in the neoplastic blood vessel in the solid cancer tissue are abnormally larger than the pore size (about 0.03-0.08 ⁇ m) of the capillary wall window (fenestra) of normal thread and tissue.
  • Even molecules with a size of about 1 to 0.2 m leak vascular wall force, so ribosomes in the above range can be selectively concentrated in cancer tissues. This is known as the “EPR effect” and takes advantage of the fact that the neovascular wall in cancer tissue is more permeable than the microvascular wall in normal tissue.
  • the particle size can be measured by freezing the dispersion containing the ribosome encapsulating the drug, then vapor-depositing the crushed interface and observing this carbon with an electron microscope (freeze-crushing TEM method). It can.
  • the “central particle size” refers to the particle size that appears most frequently in the particle distribution.
  • the ribosome obtained as described above is a ribosome substantially consisting of a single membrane or several membranes.
  • Single-membrane ribosomes are ribosomes composed of a single layer of phospholipid bilayers (unilamellar vesicles), which can be used for observation with a transmission electron microscope (TEM) using the Freeze fractu re replica method.
  • TEM transmission electron microscope
  • a ribosome is composed of a phospholipid bilayer in which a replica is generally recognized as one layer. That is, it is determined that a single film has no step between the traces of particles left on the observed carbon film.
  • the term “substantially” means that in the ribosome preparation of the present invention, at least 80% of the total number of ribosomes contained in the preparation, Preferably it means containing 90% or more.
  • the single-membrane ribosome or the ribosome composed of several membranes can be efficiently produced by a phase separation method using water, using the supercritical carbon dioxide or subcritical carbon dioxide as a solvent for lipids.
  • Single- or multi-membrane ribosomes have the advantage that the dose of ribosomes, in other words, the amount of lipids administered, does not increase compared to ribosomes consisting of multilamellar vesicles (MLV).
  • MLVs of various sizes and forms are often present in a considerable proportion.
  • the power to irradiate sound waves It was necessary to perform operations such as passing through a filter with a fixed pore size many times. But However, as in the present invention, by preparing ribosomes using supercritical diacid carbon, single-walled ribosomes or ribosomes composed of several films can be efficiently prepared. The entrapment rate of the drug inside can be improved.
  • the amount of the drug encapsulated in the liposome is encapsulated in a weight ratio of 1 to 8, preferably 3 to 8, more preferably 5 to 8 with respect to the ribosome membrane component.
  • the weight ratio of the drug encapsulated in the ribosome is less than 1, it is necessary to inject a relatively large amount of the preparation, resulting in poor drug delivery efficiency. Also, the viscosity of the drug product increases and the force applied during injection increases, which increases pain for the patient. On the other hand, when the weight ratio of the drug encapsulated in the ribosome exceeds 8, the ribosome becomes structurally unstable, and the ribosomal drug diffuses and leaks during storage or after being injected into the living body.
  • the ribosome-containing preparation of the present invention various drugs can be encapsulated in the ribosome as described above, and the form of the preparation is determined in consideration of the action effect and storage stability of the drug.
  • the ribosome-containing preparation is used as an injection or infusion. Is administered intravascularly to the patient.
  • Dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC, manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.) 300 mg and PE G—phospholipid (SUNBRIGHT DSPE- 020CN, manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.) lOOmg were charged into a stainless steel pressure vessel, and then liquid carbon dioxide 13 g After the injection, the inside of the container was set to 50 ° C, 120 kgZcm 2 to bring the carbon dioxide into a supercritical state, and while maintaining this state, 10 g of iohexol solution (240 mgZmL of iodine content) was mixed and mixed.
  • Table 1 shows the measurement results of the drug inclusion rate, average particle size, and particle size distribution (ratio of 1 ⁇ m or more:%) of ribosome contained in the preparation.
  • Dipalmitoylphosphatidylcholine (DPPC, manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.) 900 mg is charged into a stainless steel pressure vessel, then liquid carbon dioxide 40 g is injected, the inside of the vessel is heated to 40 ° C, 120 kgZcm 2 While maintaining this state in a critical state, 40 g of iopamidol solution (200 mg ZmL of odod content) was mixed, and 2 at a rotational speed of 2000 rpm using a three-one motor equipped with a stirring blade (butterfly type four blades, approximately ⁇ 50 mm). Stir vigorously for 0 minutes.
  • DPPC Dipalmitoylphosphatidylcholine
  • the dispersion was discharged from the container and recovered to obtain a dispersion of ribosomes containing ionomidol. Further, the obtained dispersion was subjected to pressure filtration with a cellulose filter of 0.45 m. After filtration, the ribosome dispersion was placed in a glass vial and autoclaved at 121 ° C for 20 minutes to obtain a ribosome-containing preparation.
  • Table 1 shows the measurement results of the drug inclusion rate, average particle size, and particle size distribution (ratio of 1 ⁇ m or more:%) of ribosome contained in the preparation.
  • Dimyristoylphosphatidylcholine 300 mg, cholesterol glycerol HP (manufactured by NOF Corporation) 40 mg, dipalmitylphosphatidylglycerol (COATSOME MG-6060LS, manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.) 50 mg as glycerol phospholipid
  • DMPC dimyristoylphosphatidylcholine
  • HP cholesterol glycerol HP
  • dipalmitylphosphatidylglycerol COATSOME MG-6060LS, manufactured by Nippon Oil & Fats Co., Ltd.
  • 50 mg as glycerol phospholipid Into a stainless steel pressure vessel and then 13 g of liquid carbon dioxide After injection of the vessel 48 ° C, the diacid I ⁇ oxygen as 120KgZcm 2 to the supercritical state, while maintaining that state, mixing taxol solution (Yodo content 200mgZmL) 10g to I O, Magne Using a
  • the dispersion liquid was discharged and collected from the container to obtain a ribosome dispersion liquid containing iohexol. Further, the obtained dispersion was subjected to pressure filtration through a 0.45 m cellulose filter. After filtration, the ribosome dispersion was placed in a glass vial and autoclaved at 121 ° C for 20 minutes to obtain a ribosome-containing preparation.
  • Table 1 shows the measurement results of the drug inclusion rate, average particle size, and particle size distribution (ratio of 1 ⁇ m or more:%) of ribosome contained in the preparation.
  • ELS-800 type electrophoretic light scattering photometer
  • DPPC dipalmitoylphosphatidylcholine
  • SUNBRI GHT DSPE-020CN PEG-phospholipid
  • iopamidol solution with a content of 250 mg / mL
  • stirrer stirrer
  • Dipalmitoylphosphatidylcholine 300 mg, cholesterol HP (manufactured by NOF Corporation) 40 mg, dipalmitoylphosphatidylglycerol (COATSOME MG-6060LS, NOF Corporation) 50 mg, iopam
  • DPPC dipalmitoylphosphatidylcholine
  • COATSOME MG-6060LS dipalmitoylphosphatidylglycerol
  • iopam After mixing 10 g of a doll solution (with a content of 250 mg ZmL), the mixture was dispersed for 3 minutes at a rotational speed of about 6000 rpm using a small homogenizer (product name: Ultra Tarrax, IKA Japan) to obtain a suspension.
  • DPPC Dipalmitoylphosphatidylcholine
  • This suspension was charged into a stainless steel pressure vessel, and after 13 g of liquid diacid-carbon was injected, the inside of the vessel was brought to 60 ° C and 120 kgZcm 2 to bring the diacid-carbon to a supercritical state. The mixture was stirred for 5 minutes while maintaining the state. After that, the pressure vessel is depressurized and the pressure is reduced to about 10 kgZcm 2 to discharge carbon dioxide. Then, using the pressure in the vessel, the dispersion is discharged and collected from the vessel, and the ribosome containing doxorubicin is collected. A dispersion was obtained. Further, the obtained dispersion was subjected to pressure filtration with a cellulose filter of 0.45 m. After filtration, the liposomal dispersion was placed in a glass vial and autoclaved at 121 ° C for 20 minutes to obtain a ribosome-containing preparation.

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Abstract

 本発明は、生体内での安定性に優れ、さらに薬物の内包率が高いリポソームを含んでなるリポソーム含有製剤の製造方法、該方法により得られたリポソーム含有製剤を提供する。  本発明に係るリポソーム含有製剤の製造方法は、超臨界もしくは亜臨界状態の二酸化炭素と、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有するリポソーム膜構成物質と、水溶性薬物とを、圧力容器内で混合した後に、該圧力容器内を減圧して二酸化炭素を排出することにより水溶性薬剤が内包されたリポソームの水性分散液を調製することを特徴とする。

Description

明 細 書
リボソーム含有製剤の製造方法
技術分野
[0001] 本発明は、生体内での安定性に優れ、かつ薬物の内包化率が高いリボソームを含 んでなるリボソーム含有製剤の製造方法、および該方法により得られたリボソーム含 有製剤に関する。
背景技術
[0002] リボソームは、主にリン脂質によって形成される二分子膜 (リボソーム膜)の閉鎖小 胞体であり、生体膜と類似の構造や機能を有するため、従来から様々な製剤材料と して用いられてきている。リボソームは、内部に有する水相には水溶性薬物を、二分 子膜の内部には油溶性の薬物を保持するという、いわゆるカプセル構造を構築でき ることから、診断、治療、化粧などの様々な分野で用いられてきている。さらに、近年 では、薬物送達システム(DDS)への応用が盛んに研究されている。
[0003] このような薬物が内包されたリボソームを調製するには、従来力 Bangham法や逆 相蒸発法 (REV法)などが用いられている。これらの方法では、素材としての安全性 が高ぐ生体内で適度な分解性を有するリボソームの中に薬物を内包させて 、るにも かかわらず、製造過程においてリボソーム膜を構成するリン脂質の溶剤として、有機 溶媒を使用する必要がある。そのため、上記方法で得られるリボソーム含有製剤にお いては、完全に除去できな力つた有機溶媒が製剤中に残留する問題があり、人体へ の副作用が生ずる問題があった。
[0004] さらに、従来の方法では、リボソーム内に薬物を充分に内包させることができず、リ ポソーム含有製剤を大量に投与する必要があるため患者に過度の負担となる問題が あった。このように、治療用薬剤に比べて投与量が多くなる診断用造影剤への応用 を考えた場合、造影物質の保持効率(内包率)が高いリボソーム含有製剤が求めら れていた。
[0005] 一方、特許文献 1には、超臨界二酸化炭素を用いて、水溶性電解質の薬物が内包 されたリボソームを製造する方法が開示されている。この方法は、製造条件を種々設 定することが可能であることから、従来のリボソームの懸濁液の製造方法に比べ、比 較的容易に水溶性薬物の内包率を向上させることができる。し力しながら、特許文献
1に記載の超臨界二酸化炭素を用いた方法は、従来の方法に比べ水溶性薬物の内 包率が向上したリボソームを調製することができるものの、その内包率に改良の余地 かあつた。
[0006] また、診断及び治療用の薬物を包含する用途に用いられているリボソームは、生体 内で不安定であると、リボソーム膜が破壊され内包されていた薬物が早期に流出して しまう。したがって、薬物を所望の部位に送達することができず、さらにリボソームの一 つの機能である徐放性を制御するのが困難である問題があった。したがって、生体 内での安定性に優れるリボソームが求められていた。
[0007] そのような問題を解決するものとして、 15°Cでの pHが 9. 5以下でありかつアンモ- ァまたは水溶性アミンを含む緩衝液を分散液に含有させることによってリボソームの 安定性を向上させる方法が開示されている (特許文献 2参照)。しかしながら、このよう な方法によって得られるリボソームであっても、生体内での安定性には依然として問 題があった。
[0008] 本発明は、従来技術の問題を解決するものであって、生体内での安定性に優れ、 薬物の内包率が高いリボソームを含んでなるリボソーム含有製剤の製造方法、およ びリボソーム含有製剤を提供することを目的とする。
特許文献 1:特開 2003— 119120号公報
特許文献 2:特表 2000 - 515487号公報
発明の開示
[0009] 本発明の上記目的は、下記の各々の構成によって達成される。
[0010] 本発明に係るリボソーム含有製剤の製造方法は、超臨界もしくは亜臨界状態の二 酸化炭素と、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有するリボソーム膜構成物質 と、薬物とを混合することを特徴とする。
[0011] 前記リン脂質の転移温度が、 22〜60°Cの範囲にあることが好ましい。
[0012] 前記超臨界もしくは亜臨界状態の二酸化炭素と、前記リボソーム膜構成物質と、前 記薬物とを強攪拌下で混合することにより、リボソームへの薬物の内包率を向上させ ることも好まし 、。
[0013] 前記転移温度を有するリン脂質力 ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイ ルホスファチジルコリン、水素添カ卩大豆レシチン、水素添カ卩大豆ホスファチジルコリン およびジステアロイルホスファチジルコリンカもなる群より 1種以上選ばれることが好ま しく、ジミリストイルホスファチジルコリンおよび Zまたはジパルミトイルホスファチジル コリンであることが特に好ましい。
[0014] 前記薬物が、造影化合物または抗がん性物質であることが好ま 、。
[0015] 本発明に係るリボソーム含有製剤は、前記の方法によって製造されたことを特徴と する。
発明を実施するための最良の形態
[0016] 本発明に係るリボソーム含有製剤の製造方法は、超臨界もしくは亜臨界状態の二 酸化炭素 (以下、単に「超臨界二酸ィ匕炭素」ともいう)と、転移温度を有するリン脂質 を少なくとも含有するリボソーム膜構成物質と、薬物とを混合してリボソームを調製す る方法である。
[0017] (リボソーム膜構成成分)
本発明に用いられるリボソーム膜構成成分としては、通常リン脂質および Zまたは 糖脂質が好ましく使用され、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有する。
[0018] リン脂質としては、ホスファチジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルエタ ノールァミン、ホスファチジルグリセロール、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジ ン酸、カルジォリピン、スフインゴミエリンなどに代表されるリン脂質が挙げられる。卵 黄、大豆その他の動植物材料に由来するリン脂質、それらの水素添加物、水酸化物 の誘導体といった半合成のリン脂質、または合成加工品など、限定されることなく用 いられる。リン脂質の構成脂肪酸も特に限定されることはなぐ飽和脂肪酸、不飽和 脂肪酸のどちらでもよい。
[0019] 具体的な中性リン脂質の例として、ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC)、ジ ステアロイルホスファチジルコリン(DSPC)、ジミリストリルホスファチジルコリン(DMP C)、ジォレイルホスファチジルコリン(DOPC)、ジミリストイルホスファチジルエタノー ルァミン、ジパルミトイルホスファチジルエタノールァミン、ジステアロイルホスファチジ ルエタノールァミンなどが挙げられる。
[0020] 上記中性リン脂質のほかに、ァ-オン性リン脂質、カチオン性リン脂質といった荷電 リン脂質、さらには重合性リン脂質、ならびにカチオン性 (正荷電)脂質を含んでもよ い。
[0021] 負に荷電したリン脂質として、ジパルミトイルホスファチジルグリセロール (DPPG)、 ジミリストイルホスファチジルグリセロール、ジステアロイルホスファチジルグリセロール (DSPG)、ジパルミトイルホスファチジルセリン(DPPS)、ジステアロイルホスファチジ ルセリン(DSPS)、ジパルミトイルホスファチジルイノシトール(DPPI)、ジステアロイ ルホスファチジルイノシトール(DSPI)、ジステアロイルホスファチジン酸(DSPA)、ジ パルミトイルホスファチジン酸(DPPA)、ジミリストイルホスファチジン酸などを挙げる ことができる。
[0022] カチオン性リン脂質として、ホスファチジン酸とァミノアルコールとのエステル、たとえ ばジパルミトイルホスファチジン酸(DPPA)もしくはジステアロイルホスファチジン酸( DSPA)とヒドロキシエチレンジァミンとのエステルなどが挙げられる。
[0023] 本発明にお ヽて用いられるリン脂質には、転移温度を有するリン脂質を少なくとも 含む。リン脂質の「(相)転移温度」とは、リン脂質がとり得るゲルと液晶との両状態間 の相転移を生じる温度である。その測定は、示差走査熱量計 (DSC)を使用する示 差熱分析による。リン脂質の転移温度は、 22〜60°C、好ましくは 30〜60°C、さらに 好ましくは 40〜55°Cであることが望まし!/、。
[0024] 相転移温度を有するリン脂質としては、ジミリストイルホスファチジルコリン (相転移 温度(以下同じ): 23〜24°C)、ジパルミトイルホスファチジルコリン(41. 0〜41. 5°C )、水素添カ卩大豆レシチン(53°C)、水素添カ卩大豆ホスファチジルコリン(54°C)、ジス テアロイルホスファチジルコリン(54. 1-58. 0°C)などが挙げられ、好ましくはジミリ ストィルホスファチジルコリン、ジパルミトイルホスファチジルコリン、さらに好ましくはジ パルミトイルホスファチジルコリンを用いることが望ましい。本発明においては、これら 力 選択される 1種または 2種以上組み合わせて用いられる。
[0025] これらの相転移温度を有するリン脂質は、脂質全質量に対して 40〜: LOO質量%、 好ましくは 50〜80質量%となる量で用いることが望ましい。この相転移温度を有する リン脂質を上記の量で用いることにより、後述する混合温度において生体内での安定 性に優れたリボソームを調製することができる。
[0026] 本発明で用いられるリン脂質は、通常、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有 するが、その他のリン脂質を 1種または 2種以上併用してもよい。ただし 2種以上の荷 電リン脂質を使用する場合には、負電荷のリン脂質同士または正電荷のリン脂質同 士で使用することが、リボソームの凝集防止の観点から望ましい。
[0027] カチオン性脂質の例としては、 1、 2 ジォレオイルォキシ 3— (トリメチルアンモ- ゥム)プロパン(DOTAP)、 N、 N ジォクタデシルアミドグリシルスペルミン(DOGS) 、ジメチルジォクタデシルアンモ-ゥムブロミド(DDAB)、 N— [1— (2、 3 ジォレイ ルォキシ)プロピル]— N、 N、 N トリメチルアンモ -ゥムクロリド(DOTMA)、 2、 3— ジォレイルォキシー N— [2 (スペルミン カルボキサミド)ェチル] N、 N ジメチル - 1 プロパンアミ-ゥムトリフルォロアセテート(DOSPA)および N— [1— (2、 3— ジミリスチルォキシ)プロピル] N、 N ジメチルー N— (2—ヒドロキシェチル)アン モ-ゥムブロミド(DMRIE)などが挙げられる。
[0028] 糖脂質としては、ジガラタトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド硫酸エステルな どのグリセ口脂質、ガラクトシルセラミド、ガラクトシルセラミド硫酸エステル、ラタトシル セラミド、ガンダリオシド G7、ガングリオシド G6、ガンダリオシド G4などのスフインゴ糖 脂質などを挙げることができる。
[0029] リボソーム膜の構成成分として、上記脂質の他に必要に応じて他の物質を加えるこ ともできる。例えば、膜安定化剤として作用するステロール類、例えばコレステロール 、ジヒドロコレステロ一ノレ、コレステロ一ノレエステノレ、フィトステロ一ノレ、シトステロ一ノレ、 スチグマステロール、カンペステロール、コレスタノール、またはラノステロールなどが 挙げられる。また 1 O—ステロールダルコシド, l—O—ステロールマルトシドまたは l— O—ステロールガラクトシドといったステロール誘導体もリボソームの安定ィ匕に効 果があることが示されて 、る(特開平 5— 245357号公報)。特にコレステロールが好 ましい。
[0030] ステロール類の使用量として、リン脂質 1重量部に対して 0. 05〜: L 5重量部、好ま しくは 0. 2〜1重量部、より好ましくは 0. 3〜0. 8重量部の割合が望ましい。 0. 05重 量部未満であると混合脂質の分散性を向上させるステロール類による安定ィ匕が発揮 されず、 1. 5重量部を超えるとリボソームの形成が阻害される力 形成されても不安 定となる。
[0031] リボソーム膜中のコレステロールは、ポリアルキレンォキシド導入用のアンカーにも なり得る。特開平 09— 3093号公報には、ポリオキシアルキレン鎖の先端に、種々の 機能性物質を共有結合により固定ィ匕することができ、リボソーム形成用の成分として 利用することができる新規なコレステロール誘導体が開示されている。
[0032] 上記ステロール類の他にリボソーム膜の構成成分として、グリコール類をカ卩えてもよ い。グリコール類として、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリ コーノレ、プロピレングリコール、ジプロピレングリコール、トリメチレングリコール、 1, 4 ブタンジオールなどが挙げられる。グリコール類の使用量として、脂質全質量に対 して 0. 01〜20質量%、好ましくは 0. 5〜10質量%の割合が望ましい。
[0033] 本発明では、リボソーム膜の一成分として、ポリエチレングリコール (PEG)基を有す る化合物、好ましくはポリエチレングリコール基を有するリン脂質またはコレステロ一 ルを用いることが望ましい。誘導体化されるリン脂質は、上記に例示されたリン脂質か ら適宜選択される。ポリエチレングリコール (PEG)基を有する化合物は、一(CH CH
2
O) Hであらわされる PEG基のォキシエチレン単位の長さと導入する割合を適宜
2 n
変えることにより、その機能を調節することができる。 PEG基として、ォキシエチレン単 位(n)力 O〜3500、好ましくは 100〜2000のポリエチレングリコールが好適である 。ポリエチレングリコールを使用する場合の使用量は、該リボソームを構成する脂質 に対して 0. 1〜30質量0 /0、好ましくは 1〜15質量%程度含むのがよい。ポリエチレン グリコール基を有する化合物は、特開平 7— 165770号に記載の方法により製造する ことができる。
[0034] このようなポリエチレングリコール基を有する化合物を超臨界二酸ィ匕炭素への溶解 助剤として用いてリボソームを調製すると、有機溶媒を使用することなく内包率の高!ヽ リボソームを調製することができる。
[0035] (薬物)
本発明で用いられる薬物は、脂質膜内またはその内部水相に内包させる薬物類で あり、具体的には、造影物質、杭がん性物質、抗真菌物質、抗酸化性物質、抗菌性 物質、抗炎症性物質、血行促進性物質、美白物質、肌荒れ防止物質、老化防止物 質、発毛促進性物質、保湿性物質、ホルモン剤、ビタミン類、色素、およびタンパク質 類などの薬物が挙げられる。
[0036] 本発明で用いられる薬物が水溶性である場合には、所定量の水性媒体に従来公 知の方法で溶解させて水溶液として用いられる。水溶性薬物の濃度は、薬物の溶解 度、製造条件に応じて適宜選択される。水性媒体には、蒸留水、局方注射用水、純 水などの水のほか、生理食塩水、各種緩衝液、塩類などを含む水溶液などが用いら れる。
[0037] 本発明のリボソーム含有製剤は、水溶性薬物として造影性物質、または抗がん性 物質を用いることが好まし 、。
[0038] 造影物質としては、水溶性ヨウドィ匕合物を用いることができる。水溶性ョウド化合物 は、造影性があればイオン性、非イオン性を問わず、特に規定されない。一般的には 非イオン性ヨウドィ匕合物の方が、イオン性ヨウドィ匕合物よりも浸透圧が低ぐ投与され た人体に対する負荷が小さ!/、ためにより望ま U、。水溶性の非イオン性ヨウドィ匕合物 としてヨウ化フエ-ルを含み、例えば 2, 4, 6 トリョードフエ-ル基を少なくとも 1個有 する非イオン性ョウド化合物が好適である。
[0039] そのような非イオン性ョウド化合物として、具体的には、ィォパミドール (Iopamidol) 、ィオメプロ一ノレ (Iomeprol)、ィォへキソーノレ (Iohexol)、ィォペントーノレ (Iopentol )、ィォプ口 ド (Iopromide、ィォシ ド (Iosimide)、ィォぺノレソーノレ (Ioversol)、 Λ オトロラン(Iotrolan)、ィオタズル(Iotasul)、ィォジキサノール(Iodixanol)、ィォデ シノモール(Iodecimol)、 (1, 3 ビス一(N— 3, 5 ビス一 [2, 3 ジヒドロキシプロ ピルアミノカルボ-ル] 2, 4, 6 トリョードフエ-ル)一 N ヒドロキシァセチルァミノ )プロパンなどが挙げられる。これらの化合物は単独で用いてもよぐあるいは 2種以 上を組み合わせて用いてもょ 、。
[0040] 本発明のリボソーム含有製剤を X線検査用造影剤として用いる場合、好適なョウド 化合物としては、高度に親水性であり、かつ高濃度でも浸透圧が高くならない非ィォ ン性のヨウド化合物として、ィォメプロール、ィォパミドール、ィオトロラン、ィォジキサ ノールが好ましい。このような非電解質物質も超臨界二酸ィ匕炭素法によると、リポソ一 ム内に効率良く内包することができる。
[0041] 本発明のリボソーム含有製剤における水溶性ヨウドィ匕合物の濃度は、該造影化合 物の性質、意図する製剤の投与経路および臨床上の指標といった要因に基づき任 意に設定することができる。リボソーム内に封入されたヨウドィ匕合物の量は、典型的に は X線造影剤における全ョウド化合物の 5〜40質量%、好ましくは 5〜35質量%、よ り好ましくは 10〜25質量%であることが望ましい。この内包化率はリボソーム粒子の 細密充填の限界を下回るため、リボソームにおける造影物質の保持安定性は損なわ れない。
[0042] 抗がん化合物としては、具体的には、メトトレキサート、ドキソルビシン、ェビルビシン 、ダウノルビシン、ビンクリスチン、ビンブラスチン、エトボシド、エリブシチン、カプトデ シン、パクリタキセル、ドセタキソル、シスブラチン、ブレドニゾンなどが挙げられる。こ れらの化合物は単独で用いてもよぐあるいは 2種以上を組み合わせて用いてもょ ヽ
[0043] なお本明細書において、上記化合物は遊離形態の他に、その塩、水和物なども含 めて言及することがある。
[0044] 以下に、このような成分を用いた本発明に係るリボソーム含有製剤の製造方法を詳 細に説明する。
[0045] 本発明に係るリボソーム含有製剤の製造方法は、具体的には、
圧力容器内で、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有するリボソーム膜構成 成分と、液化二酸化炭素と、必要に応じて親油性の薬物とを攪拌混合し (工程 1)、 次いで、圧力容器内を 32〜55°Cに加温するとともに加圧することにより液ィ匕ニ酸 化炭素を超臨界もしくは亜臨界状態とし (工程 2)、
リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸ィ匕炭素とを攪拌混合しながら水溶性薬物の 水溶液を供給して、混合溶液を調製し (工程 3)、
前記混合溶液を得た後に、圧力容器内を減圧して混合溶液から二酸化炭素を排 出し、薬物が内包されたリボソームの水性分散液を調製する(工程 4)ことにより行わ れる。 [0046] さらに、リボソームの水性分散液を、 0. 1〜0. 45 μ mの孔径を有する濾過膜で濾 過する(第 5工程)ことも好ま 、。
[0047] 以下、各工程に沿って説明する。
[0048] 工程 1
工程 1では、圧力容器内で、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有するリポソ ーム膜構成成分と、液化二酸化炭素と、必要に応じて親油性の薬物とを攪拌混合す る。これらの添加順序は特に限定されず、また攪拌条件は、これらを混合することが できれば特に限定されな 、。
[0049] 圧力容器としては、 500気圧まで耐圧可能であり、内部をガラス窓により目視観察 することができるように構成されて 、るステンレス製のオートクレープが好ましく用いら れる。
[0050] リボソーム膜構成成分の添加量は、薬物の種類、製剤スケール等に応じて適宜決 定され、一方、必要に応じて用いられる親油性薬物の添加量は、親油性薬物の活性 や、リボソームの内包化率等に応じて適宜決定される。
[0051] 本発明にお 、ては、各工程にぉ 、て、圧力容器内や、圧力容器に投入される薬物 、液化二酸化炭素、気体などは無菌状態に管理されていることが好ましぐさらに圧 力容器内に投入する際には濾過手段などにより滅菌することが好ましい。
[0052] 工程 2
工程 2では、圧力容器内を 32〜55°Cに加温するとともに加圧して液化二酸化炭素 を超臨界状態とする。本発明においては、亜臨界状態を含めて超臨界状態とする。
[0053] 本発明の製造方法で使用する超臨界状態の二酸化炭素の温度は、 32〜55°C、 好ましくは 32〜50°C、さらに好ましくは 35〜50°Cであることが望ましい。また、超臨 界状態の二酸化炭素の好適な圧力は、上記温度範囲から適宜選択されるが、 50〜 500kgZcm2、好ましくは 100〜400kg/cm2である。
[0054] 本発明にお 、ては、このように体温に近 、温度で二酸化炭素を超臨界状態としてリ ン脂質力 リボソームを形成しているため、リボソームの形成温度と、製剤として投与 された後にリボソームが生体内で受ける温度 (体温)とが略等しい。したがって、本発 明のリボソーム製剤が生体内に投与された後に、生体内においてリボソームが体温 で加温されても、力かる温度はリボソームが形成した際の温度と略等しいことから、リ ン脂質の配列が温度による影響をほとんど受けることがなぐリボソームの生体内での 安定性が向上すると考えられる。
[0055] このような効果は、超臨界状態の二酸化炭素の温度を、上記温度範囲の転移温度 を有するリン脂質に対し、「転移温度 + 10°C」以下、好ましくは「転移温度 + 5°C」以 下、さらに好ましくは「転移温度」以下となるように設定することにより、さらに顕著とな る。従来は、「リン脂質の転移温度 + 20°C程度」に加温すると、転移温度を有するリ ン脂質は液晶状態となって流動性が高まり、リン脂質が超臨界二酸ィ匕炭素と効率良 く混合され、リボソームの調製が容易となるため好ましく行われていた。しかしながら、 本発明者らは、超臨界状態の二酸化炭素の温度を、上記のようにリン脂質の転移温 度付近またはそれ以下とすることにより、リン脂質に過度の熱が力からないため変性 することがなぐさらにリン脂質が規則的に配列してリボソーム膜が生成されることを見 出し、本発明を完成させたのである。このようにして得られるリボソームは膜構造が安 定するためリボソームの徐放性を制御するのが容易となり、さらに生体内での安定性 が向上するため所望の部位に薬物を選択的に送達することができる。
[0056] 工程 3
工程 3では、リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸化炭素とを所定の攪拌手段によ り攪拌混合しながら、薬物水溶液を供給して、混合溶液を調製する。上記攪拌条件 は、強攪拌であることが好ましい。
[0057] 「強攪拌」とは、混合溶液の容量や攪拌手段によって好ましい範囲が異なるが、例 えば、混合溶液の容量が 10〜: LOOml程度の場合において、長さ 15mm、直径 5mm の略円柱状の攪拌子を用い、マグネチックスターラーで回転数 400〜4000rpm、好 ましくは 1000〜1500rpmで攪拌することを意味する。なお、混合溶液の容量ゃ攪 拌手段が上記とは異なる場合であっても、前記攪拌条件で混合溶液に与えられるせ ん断カ等を考慮して、適宜攪拌条件を定めることが好ましい。具体的には、攪拌条件 が以下の式を満たすことが特に好ま 、。
[0058] 式: C = N X V"0· 15
C :回転数 (rpm) V:混合溶液の容量 (L)
N : 300〜3000
また、強攪拌の時間は、 1〜120分間、好ましくは 5〜60分間であることが望ましい 。なお、上記強攪拌の時間には、薬物水溶液を供給する時間も含む。
[0059] このような条件を満たす強攪拌下で、リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸化炭素 とを所定の時間混合することにより、リボソームの生成率がより高ぐ薬物の内包率が より高いリボソームを含有する製剤を得ることができる。すなわち、このような条件で強 攪拌することにより、リボソームの生成が促進され、薬物の内包率も向上する。
[0060] したがって、本発明においては、上記の温度で二酸ィ匕炭素を超臨界もしくは亜臨 界状態とし、さらに強攪拌下で超臨界二酸ィ匕炭素とリボソーム膜構成成分とを所定の 時間混合することが特に好ましぐこれにより、生体内での安定性が向上し、さらに薬 物の内包率がより高いリボソームを含んでなるリボソーム含有製剤を得ることができる 。さらに、この範囲の中でも、より長時間超臨界状態を維持し強攪拌を継続することに より、リボソームへの薬物の内包率が高い傾向が認められる。
[0061] また、強攪拌下で超臨界二酸ィ匕炭素とリボソーム膜構成成分とを所定の時間混合 する際に、超音波を印加することも好ましい。超音波を印加することにより、リボソーム 膜構成成分 (脂質)を微細な粒子として超臨界二酸ィ匕炭素に分散させることができ、 リボソームの生成率と薬物の内包率がより高いリボソーム含有製剤を調製することが できる。
[0062] 本発明のリボソーム含有製剤の製造方法においては、(1)圧力容器内で、リポソ一 ム膜構成成分と、液化二酸化炭素と、必要に応じて親油性の薬物とを攪拌混合し、 ( 2)次いで、圧力容器内を加温加圧して液ィ匕ニ酸ィ匕炭素を超臨界もしくは亜臨界状 態とし、(3)リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸ィ匕炭素とを攪拌混合しながら薬物 水溶液を供給して、混合溶液を調製する、態様によって説明したが、
(1)圧力容器内で、リボソーム膜構成成分と、薬物水溶液と、必要に応じて親油性 の薬物とを攪拌混合し、(2)次いで、液化二酸化炭素を該圧力容器内に供給し、該 圧力容器内を加温加圧して液化二酸化炭素を超臨界状態とし、 (3)リボソーム膜構 成成分と、薬物と、超臨界二酸化炭素とを所定の時間混合して混合溶液を調製する 、ことも好ましい。このような態様の製造工程によれば、超臨界二酸化炭素を生成し た後に水溶性薬物を添加する必要がないため、圧力容器内の温度および圧力の制 御が容易であり、リボソームの生成率と薬物の内包率がより向上する。
[0063] 懸濁液は、リボソーム膜構成成分と薬剤水溶液とは、圧力容器内に投入された後 に混合して調製してもよいが、工程 1の好ましい態様においては、予め混合して懸濁 液とし、この懸濁液を圧力容器内に供給する。予め懸濁液とすることにより、リポソ一 ム膜構成成分と薬剤水溶液を、圧力容器内に容易に供給することができるとともに、 リボソームの生成率と薬剤の内包率を向上させることができる。
[0064] また、本発明における工程 1の別の好ましい態様においては、薬剤水溶液と溶解助 剤とを混合し、次いで、さらにリボソーム膜構成成分を混合して懸濁液を調製する。 薬剤水溶液に予め溶解助剤を分散させておくことにより、薬剤水溶液中にリボソーム 膜構成成分を溶解させることができるため、上記効果に優れる。
[0065] また、本発明における工程 1の更に別の好ましい態様においては、リボソーム膜構 成成分と薬剤水溶液とを混合する際に、または薬剤水溶液と溶解助剤とを混合し、 次いで、さらにリボソーム膜構成成分を混合して懸濁液を調製する際に、超音波を照 射して懸濁液を調製し、この懸濁液を圧力容器内に供給する。
[0066] 超音波の照射条件は、リボソームの懸濁液に含有されるリボソームの形態、粒子径 分布、内包化率等により適宜選択される力 10〜: LOOkHz、好ましくは 15〜45kHz の超音波を、 l〜600wZmlZ分、好ましくは 5〜500wZmlZ分照射することが望 ましい。照射量は、使用する超音波分散機の定格出力、照射する分散液の量、照射 する時間力 計算することができる。
[0067] このような照射条件で懸濁液を調製することにより、リボソーム膜構成成分 (脂質)を 薬剤水溶液に微細な粒子として分散させることができ、実生産スケールの製造装置 においても、リボソームの生成率と薬剤の内包率が高いリボソーム含有製剤を調製す ることができる。このような効果は、上記条件で超音波を照射して懸濁液を調製するこ とにより懸濁液中でリン脂質の配列が開始されており、その後、懸濁液と超臨界二酸 化炭素とを混合してリボソームを形成する際に、その形成を促進するためと考えられ る。 [0068] さらに、リボソーム膜構成成分と薬剤水溶液とを混合する際に、上記の条件で超音 波を照射するとともに、リン脂質の転移温度〜転移温度 + 50°C (ただし 100°Cを超え な 、)に加温して懸濁液を調製することがさらに好ま 、。
[0069] 工程 1にお 、ては、上記のような懸濁液を収容して 、る圧力容器内に、液化二酸化 炭素を供給する。
[0070] 液化二酸化炭素は、従来公知の方法により、気体の二酸化炭素を冷却、加圧する ことによって調製される。得られた液化二酸化炭素を、液体状態を維持しながら圧力 容器内に供給する。圧力容器内への供給は、特に限定されず、一度に添加してもよ ぐ間欠的に添加してもよい。また、液ィ匕ニ酸ィ匕炭素の供給量は、リボソーム膜構成 成分や水溶性薬剤の種類、製造スケールなどにより適宜選択される。
[0071] 工程 4
工程 4では、第 3工程において、リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸化炭素と、薬 物の水溶液とを混合した後に、圧力容器内を減圧して、この混合溶液から二酸化炭 素を排出し、薬物が内包されたリボソームの水性分散液を調製する。
[0072] 工程 3において、リボソームは水相に転相していると推定されるため、系内を減圧し て二酸化炭素を排出すると、薬物を内包するリボソームが分散している水性分散液 が生成する。造影剤を製造する場合、該リボソームの内部以外の水相に薬物が含ま れていてもよい。リボソーム内部にも上記水溶液が封入されているため、造影物質は リボソームの外部水相のほ力、主としてリボソーム内部の水相に存在し、いわゆる「内 包」の状態にある。
[0073] 第 5工程
第 5工程では、第 4工程により得られたリボソームの水性分散液を、 0. 1〜1. 0 m の孔径を有する濾過膜で濾過する。
[0074] 具体的には、圧力容器内が負圧となっている場合には、圧力容器内にフィルター 滅菌された気体を供給する。この気体としては、大気、二酸化炭素、窒素、ヘリウム、 アルゴン等が挙げられる。
[0075] このように気体を供給して圧力容器内を大気圧に調整し、リボソームの水性分散液 を 0. 1〜1. O /z mの孔径を有する濾過膜で濾過する。濾過操作により、リボソームの 粒径を容易に調整することができ、均一な粒径のリボソームを含有する製剤が得られ る。
[0076] 具体的には、 0. 1〜1. 0 mの孔径のフィルターを装着した静圧式押出し装置に 通すことにより行われる。具体的には、各種の静圧式押出し装置、たとえば「エタスト ルーダー」(商品名、 日油リボソーム製)、「リポナイザー」(商品名、野村マイクロサイ エンス製)などを使用して、フィルターを強制的に通過させる。フィルタ一は、ポリカー ボネート系、セルロース系などのタイプを適宜使用することができ、押出し濾過法に ついては、たとえば Biochim. Biophys. Acta 557卷, 9ページ(1979)に記載さ れている。
[0077] このような「押出し」操作工程を取り入れることにより、上記サイジングに加えて、リポ ソーム分散液の交換、望ましくない物質の除去、濾過滅菌も併せて可能になるという 利点もある。なお、上記孔径の濾過膜で濾過する前に、 1. 0〜2. 0 m程度の濾過 膜で濾過し、サイジングゃ、望ましくない物質の除去を予備的に行ってもよい。
[0078] 本発明のリボソーム含有製剤は、リボソームの水性分散液を上記のように濾過膜で 濾過し、必要に応じて遠心分離、限外濾過、ゲル濾過などの方法により、リボソーム 内に未保持の薬物を除去して精製してもよぐまた所定の濃度となるように濃縮し、さ らに通常使用される希釈剤等の製剤補助剤を適宜混合して製造することもできる。
[0079] また、本発明のリボソーム含有製剤は、常法にしたがって、リボソームの水性分散液 から、リボソームを凍結乾燥させて得ることもできる。リボソームを凍結乾燥した場合に は、使用直前に水性媒体などで再懸濁させて用 、る。
[0080] このような本発明のリボソーム含有製剤の製造方法によれば、有機溶剤を使用する 必要がなぐ薬物をリボソームに効率よく内包させることができ、さらに生体内での安 定性に優れたリボソームを含んでなるリボソーム含有製剤を得ることができる。
[0081] 上述のようにして製造される本発明のリボソーム含有製剤は、薬物を内包してなるリ ポソームを含み、そのリボソームの平均粒径は、通常 0. 05-2. O ^ m,好ましくは 0 . 05-1. O ^ m,より好ましくは 0. 05-0. 5 mであること力 ^望まし!/ヽ。平均粒径は 、治療、診断、 X線撮像の目的に応じて適切に設定することが好ましぐたとえば腫瘍 部分に選択的に送達させるには、リボソームの粒径を 0. 10-0. 20 /z m、より好まし くは 0. 11〜0. 13 mnmとすることが望ましい。これにより癌組織へ選択的に薬効 物質または造影剤を集中させることが可能となる。つまり、固形癌組織にある新生血 管壁の孔は、正常糸且織の毛細血管壁窓(fenestra)の孔サイズ (0. 03-0. 08 ^ m 程度)に比べて異常に大きぐ 0. 1〜0. 2 m程度の大きさの分子でも血管壁力 漏 れ出るため、上記範囲のリボソームであれば癌組織へ選択的に集中させることができ る。これは「EPR効果」として知られており、癌組織にある新生血管壁では、正常組織 の微小血管壁より透過性が高いことを利用するものである。
[0082] 粒径は薬物を内包するリボソームを含む分散液を凍結し、その後破砕した界面を力 一ボン蒸着し、このカーボンを電子顕微鏡で観察すること (凍結破砕 TEM法)により 測定することができる。ここで「中心粒径」とは、粒子分布で最も出現頻度の高い粒径 を指している。
[0083] さらに、上記のようにして得られるリボソームは、実質的に一枚膜もしくは数枚膜から なるリボソームである。一枚膜のリボソームとは、リン脂質二重層が一層としてなる膜( unilamellar vesicle)で構成されるリボソームであり、凍結かつ断(Freeze fractu re )レプリカ法による透過型電子顕微鏡 (TEM)による観察にぉ 、て、レプリカが概 ね 1つの層として認められるリン脂質二重層によりリボソームが構成されているもので ある。すなわち、観察したカーボン膜に残された粒子の跡について段差がないものが 一枚膜と判定される。また、「実質的に」とは、本発明のリボソーム製剤において、この ような一枚膜のリボソームまたは数枚膜で構成されるリボソームを、製剤中に含まれる 全リボソームのうち、少なくとも 80%、好ましくは 90%以上含むことを意味する。
[0084] 上記の一枚膜リボソームまたは数枚膜からなるリボソームは、脂質類の溶媒として 前記超臨界二酸化炭素もしくは亜臨界二酸化炭素を使用し、水による相分離方法に より効率よく作製できる。一枚膜または数枚膜のリボソームは、多重層膜 (multilame liar vesicles ; MLV)からなるリボソームと比較して、リボソームの投与量、換言す ると投与脂質量が大きくならないという利点がある。これに対して従来のリボソーム作 製方法によると、様々なサイズ、形態の MLVがかなりの割合で存在することが多ぐ 一枚膜または数枚膜のリボソームの比率を高めるためには、さらに超音波を照射する 力 一定孔サイズのフィルターに何度も通すなどの操作を必要としていた。しかしな がら、本発明のようにさらに、超臨界二酸ィ匕炭素を使用してリボソームを調製すること により、一枚膜リボソームまたは数枚膜からなるリボソームを効率よく調製することがで き、さらにリボソーム内への薬物の内包率を向上させることができる。
[0085] 本発明のリボソーム含有製剤のように、造影剤ゃ抗がん性ィ匕合物などの薬物をリポ ノームに封入する場合には、抗がん性ィ匕合物などの送達効率および保持安定性に 加えてリボソームの膜構成成分の重量も考慮する必要がある。具体的には、リポソ一 ム内への薬物の封入量は、リボソーム膜構成成分に対して 1〜8、好ましくは 3〜8、 より好ましくは 5〜8の重量比で薬物が内包されて 、ることが望まし 、。
[0086] リボソーム内に内包された薬物の重量比が 1未満であると、比較的多量の製剤を投 入することが必要となり、結果的に薬物の送達効率が悪くなる。また製剤の粘度が増 大し、注入する際に加える力が増大するため、患者に与える苦痛が大きくなる。一方 、リボソーム内に内包された薬物の重量比が 8を超えると、リボソームは構造的にも不 安定となり、貯蔵中または生体内に注入された後に、リボソーム力 薬物が拡散、漏 出する。
[0087] 本発明のリボソーム含有製剤は、そのリボソーム内に、上記したように様々な薬物類 を内包させることができ、薬物の作用効果や保存安定性などを考慮して、製剤形態 が決定される。造影剤ゃ抗がん性ィ匕合物などの薬物をリボソームに封入して用いる 場合には、リボソーム含有製剤は注射剤または点滴注入剤として用いられ、この製剤 は、非経口的に、具体的には患者の血管内に投与される。
実施例
以下、実施例に基づいて本発明をさらに具体的に説明する力 本発明はこれらの 実施例に限定されるものではな 、。
[0088] 実施例 1
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC、日本油脂株式会社製) 300mgと、 PE G—リン脂質(SUNBRIGHT DSPE— 020CN、日本油脂株式会社製) lOOmgと を、ステンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体二酸化炭素 13gを注入した後、 容器内を 50°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態にし、その状態を維持 したまま、ィォへキソール溶液(ョード含有率 240mgZmL) 10gを混合し、マグネチ ックスターラー(攪拌子:長さ 15mm、直径 5mmの略円柱状)を用いて回転数 lOOOr pmで 10分間激しく攪拌を行う。その後、圧力容器内を減圧して圧力を約 lOkgZcm 2まで下げて二酸ィ匕炭素を排出する。容器内の圧力を利用して、容器内から分散液 を排出回収して、ィォへキソールを含有するリボソームの分散液を得た。さらに、得ら れた分散液をセルロース系フィルター 0. 45 mで加圧濾過を行った。濾過後、リポ ノームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条件でオートクレー ブ殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0089] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率: %)の測定結果を表 1に示す。
[0090] 実施例 2
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC、日本油脂株式会社製) 900mgを、ス テンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体二酸化炭素 40gを注入し、容器内を 40°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態にし、その状態を維持したまま 、ィォパミドール溶液 (ョード含有率 200mgZmL) 40gを混合し、攪拌翼 (バタフライ 型 4枚羽根、約 φ 50mm)を備えたスリーワンモーターを用いて回転数 2000rpmで 2 0分間激しく攪拌を行う。その後、圧力容器内を減圧して圧力を約 lOkgZcm2まで 下げて二酸ィ匕炭素を排出する。容器内の圧力を利用して、容器内から分散液を排出 回収して、ィオノミドールを含有するリボソームの分散液を得た。さらに、得られた分 散液をセルロース系フィルター 0. 45 mで加圧濾過を行った。濾過後、リボソーム の分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条件でオートクレープ殺菌 し、リボソーム含有製剤を得た。
[0091] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率: %)の測定結果を表 1に示す。
[0092] 実施例 3
ジミリストイルホスファチジルコリン(DMPC、日本油脂株式会社製) 300mgと、コレ ステロール HP (日本油脂株式会社製) 40mg、グリセロールリン脂質としてジパルミト ィルホスファチジルグリセロール(COATSOME MG— 6060LS、 日本油脂株式会 社製) 50mgとを、ステンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体二酸化炭素 13g を注入した後、容器内を 48°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態にし、 その状態を維持したまま、ィォへキソール溶液 (ョード含有率 200mgZmL) 10gを 混合し、マグネチックスターラー (攪拌子:長さ 15mm、直径 5mmの略円柱状)を用 いて回転数 1200rpmで 3分間激しく攪拌を行う。その後、圧力容器内を減圧して圧 力を約 lOkgZcm2まで下げて二酸ィ匕炭素を排出する。容器内の圧力を利用して、 容器内から分散液を排出回収して、ィォへキソールを含有するリボソームの分散液を 得た。さらに、得られた分散液をセルロース系フィルター 0. 45 mで加圧濾過を行 つた。濾過後、リボソームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条 件でオートクレープ殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0093] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率: %)の測定結果を表 1に示す。
<測定法 >
(1)リボソーム内包率の測定
リボソーム含有製剤 0. 5gを透析膜中に入れ、生理食塩水中で 3回透析を行った後 、エタノール Z水、 3Z1の中に入れてリボソームを壊し、分光光度計で吸光度を測 定してリボソーム内のョード化合物量を求めた。(2)平均粒径、粒度分布(1 μ m以上 の比率:0 /0)
大塚電子製電気泳動光散乱光度計 (ELS— 800型)により測定して求めた。
[0094] [表 1]
Figure imgf000019_0001
[実施例 4]
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC) 300mgと、ィォへキソール溶液(ョード 含有率 200mg/mL) 10gとを混合した後、小型ホモジナイザー (製品名:ウルトラタ ラックス、 IKA Japan社製)を用いて回転数 6000rpm程度で 5分間分散して、懸濁 液を得た。この懸濁液をステンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体二酸ィ匕炭素 13gを注入した後、容器内を 60°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態 にし、その状態を維持したまま 10分間撹拌した。その後、圧力容器内を減圧して圧 力を約 lOkgZcm2まで下げて二酸ィ匕炭素を排出した後、容器内の圧力を利用して 、容器内から分散液を排出回収して、ィォへキソールを含有するリボソームの分散液 を得た。さらに、得られた分散液をセルロース系フィルター 0. 45 mで加圧濾過を 行った。濾過後、リボソームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の 条件でオートクレープ殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0096] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率:%)を以下の測定法により求めた。結果を表 2に示す。
[0097] [実施例 5]
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC) 300mgと、 PEG—リン脂質(SUNBRI GHT DSPE-020CN,日本油脂株式会社製) lOOmgと、ィォパミドール溶液 (ョ ード含有率 250mg/mL) 10gとを混合した後、マグネチックスターラー (攪拌子:長 さ 15mm、直径 5mmの略円柱状)を用いて回転数 1200rpm程度で 5分間激しく分 散し、懸濁液を得た。この懸濁液をステンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体 二酸化炭素 13gを注入した後、容器内を 60°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を 超臨界状態にし、その状態を維持したまま 5分間撹拌した。その後、圧力容器内を減 圧して圧力を約 lOkgZcm2まで下げて二酸ィ匕炭素を排出した後、容器内の圧力を 利用して、容器内から分散液を排出回収して、ィォパミドールを含有するリボソーム の分散液を得た。さらに、得られた分散液をセルロース系フィルター 1 μ mで加圧濾 過を行った。濾過後、リボソームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分 間の条件でオートクレープ殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0098] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率:%)を以下の測定法により求めた。結果を表 2に示す。
[0099] [実施例 6]
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC) 300mgと、コレステロール HP (日本油 脂株式会社製) 40mgと、グリセロール脂質としてジパルミトイルホスファチジルグリセ ロール(COATSOME MG— 6060LS、日本油脂株式会社製) 50mgと、ィォパミ ドール溶液 (ョード含有率 250mgZmL) 10gを混合した後、小型ホモジナイザー (製 品名:ウルトラタラックス、 IKA Japan社製)を用いて回転数 6000rpm程度で 3分間 分散して、懸濁液を得た。この懸濁液をステンレス製の圧力容器に仕込み、次いで 液体二酸化炭素 13gを注入した後、容器内を 55°C、 120kg/cm2として二酸ィ匕炭 素を超臨界状態にし、その状態を維持したまま 5分間撹拌した。その後、圧力容器内 を減圧して圧力を約 lOkgZcm2まで下げて二酸ィ匕炭素を排出した後、容器内の圧 力を利用して、容器内から分散液を排出回収して、ィォパミドールを含有するリポソ ームの分散液を得た。さらに、得られた分散液をセルロース系フィルター 1 μ mでカロ 圧濾過を行った。濾過後、リボソームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条件でオートクレープ殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0100] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率:%)を以下の測定法により求めた。結果を表 2に示す。
[0101] [実施例 7]
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC) 300mgと、コレステロール HP (日本油 脂株式会社製) 40mgと、 PEG—リン脂質(SUNBRIGHT DSPE— 020CN、日本 油脂株式会社製) lOOmgと、ドキソルビシン lOmgを生理食塩水 10mlに溶解してな る薬剤溶液とを混合した後、小型ホモジナイザー (製品名:ウルトラタラックス、 IKA J apan社製)を用いて回転数 6000rpm程度で 3分間分散して、懸濁液を得た。この懸 濁液をステンレス製の圧力容器に仕込み、次 、で液体二酸ィ匕炭素 13gを注入した後 、容器内を 60°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態にし、その状態を維 持したまま 5分間撹拌した。その後、圧力容器内を減圧して圧力を約 lOkgZcm2ま で下げて二酸化炭素を排出した後、容器内の圧力を利用して、容器内から分散液を 排出回収して、ドキソルビシンを含有するリボソームの分散液を得た。さらに、得られ た分散液をセルロース系フィルター 0. 45 mで加圧濾過を行った。濾過後、リポソ ームの分散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条件でオートクレーブ 殺菌し、リボソーム含有製剤を得た。
[0102] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率:%)を以下の測定法により求めた。結果を表 2に示す。 [0103] [実施例 8]
ジパルミトイルホスファチジルコリン(DPPC) 300mgと、コレステロール HP (日本油 脂株式会社製) 60mgと、グリセロール脂質としてジパルミトイルホスファチジルグリセ ロール(COATSOME MG— 6060LS、日本油脂株式会社製) 20mgと、ィォパミ ドール溶液 (ョード含有率 250mgZmL) 10gを混合した後、 20kHzの超音波を照射 しながら、マグネチックスターラー (攪拌子:長さ 15mm、直径 5mmの略円柱状)を用 いて回転数 1200rpm程度で 5分間激しく分散し、懸濁液を得た。この懸濁液をステ ンレス製の圧力容器に仕込み、次いで液体二酸ィ匕炭素 13gを注入した後、容器内を 55°C、 120kgZcm2として二酸ィ匕炭素を超臨界状態にし、その状態を維持したまま 20分間撹拌した。その後、圧力容器内を減圧して圧力を約 lOkgZcm2まで下げて 二酸ィ匕炭素を排出した後、容器内の圧力を利用して、容器内力ゝら分散液を排出回収 して、ィオノミドールを含有するリボソームの分散液を得た。さらに、得られた分散液 をセルロース系フィルター 0. 45 μ mでカ卩圧濾過を行った。濾過後、リボソームの分 散液をガラスバイアル中に入れ、 121°Cで 20分間の条件でオートクレープ殺菌し、リ ポソーム含有製剤を得た。
[0104] 製剤中に含まれるリボソームの薬剤内包率、平均粒径、粒度分布(1 μ m以上の比 率:%)を以下の測定法により求めた。結果を表 2に示す。
[0105] [表 2]
1 jU m以上 添加順 内包率 平均粒径
;比ロ方) £ の比率
1→2→3 (% ) ( jU m )
( % ) 実施例 4 膜成分→薬剤→c o 2 ホモジナイザー 1 7 0. 3 1 < 5 実施例 5 膜成分→薬剤→0 02 攪拌子 1 6 0 . 3 5 9 実施例 6 膜成分→薬剤→0 02 ホモジナイザー 1 7 0 . 2 6 8 実施例 7 膜成分→薬剤→0 02 ホモジナイザー 1 9 0 . 2 9 < 5 実施例 8 膜成分→薬剤→0 02 超音波 +攪拌子 1 7 0 . 2 2 < 5

Claims

請求の範囲
[1] 超臨界もしくは亜臨界状態の二酸化炭素と、転移温度を有するリン脂質を少なくと も含有するリボソーム膜構成物質と、薬物とを、混合することを特徴とするリボソーム 含有製剤の製造方法。
[2] 前記リン脂質の転移温度が、 22〜60°Cの範囲にあることを特徴とする請求の範囲 第 1項に記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[3] 前記転移温度を有するリン脂質が、ジミリストイルホスファチジルコリン、ジパルミトイ ルホスファチジルコリン、水素添カ卩大豆レシチン、水素添カ卩大豆ホスファチジルコリン およびジステアロイルホスファチジルコリンカゝらなる群より 1種以上選ばれることを特徴 とする請求の範囲第 1項又は第 2項に記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[4] 前記転移温度を有するリン脂質が、ジミリストイルホスファチジルコリンおよび Zまた はジパルミトイルホスファチジルコリンであることを特徴とする請求の範囲第 1項力 第
3項のいずれかに記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[5] 前記薬物が、造影化合物または抗がん性物質であることを特徴とする請求の範囲 第 1項力も第 4項のいずれかに記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[6] 前記造影化合物が水溶性ヨウドィ匕合物であることを特徴とする請求の範囲第 5項に 記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[7] 前記製造方法は、
圧力容器内で、転移温度を有するリン脂質を少なくとも含有するリボソーム膜構成 成分と、液化二酸化炭素とを攪拌混合し (工程 1)、
次いで、圧力容器内を 32〜55°Cに加温するとともに加圧することにより液ィ匕ニ酸 化炭素を超臨界もしくは亜臨界状態とし (工程 2)、
リボソーム膜構成成分と、超臨界二酸ィ匕炭素とを攪拌混合しながら水溶性薬物の 水溶液を供給して、混合溶液を調製し (工程 3)、
前記混合溶液を得た後に、圧力容器内を減圧して混合溶液から二酸化炭素を排 出し、薬物が内包されたリボソームの水性分散液を調製する(工程 4)ことにより行わ れることを特徴とする請求の範囲第 1項力 第 6項のいずれかに記載のリボソーム含 有製剤の製造方法。
[8] 前記超臨界もしくは亜臨界状態の二酸化炭素と、前記リボソーム膜構成物質と、前 記薬物とを強攪拌下で混合することを特徴とする請求の範囲第 7項に記載のリポソ一 ム含有製剤の製造方法。
[9] 前記超臨界もしくは亜臨界状態の二酸化炭素と、前記リボソーム膜構成物質と、前 記薬物とを強攪拌下で混合する(工程 3)ことを特徴とする請求の範囲第 7項に記載 のリボソーム含有製剤の製造方法。
[10] さらに、リボソームの水性分散液を、 0. 1〜1. 0 mの孔径を有する濾過膜で濾過 する (第 5工程)ことを特徴とする請求の範囲第 7項に記載のリボソーム含有製剤の製 造方法。
[11] 前記製造方法は、
圧力容器内で、リボソーム膜構成成分と、薬物水溶液とを攪拌混合し (工程 1)、 次いで、液化二酸化炭素を該圧力容器内に供給し、該圧力容器内を加温加圧し て液ィ匕ニ酸ィ匕炭素を超臨界状態とし (工程 2)、
リボソーム膜構成成分と、薬物と、超臨界二酸化炭素とを所定の時間混合して混合 溶液を調製する(工程 3)、
前記混合溶液を得た後に、圧力容器内を減圧して混合溶液から二酸化炭素を排 出し、薬物が内包されたリボソームの水性分散液を調製する(工程 4)ことにより行わ れることを特徴とする請求の範囲第 1項力 第 6項のいずれかに記載のリボソーム含 有製剤の製造方法。
[12] 前記リボソーム膜構成成分と、水溶性薬剤を含有する水溶液とを混合して懸濁液 が調製され、次!、で圧力容器内に供給されることを特徴とする請求の範囲第 11項に 記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[13] 前記懸濁液の調製が、超音波を照射しながら行われることを特徴とする請求の範囲 第 12項に記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[14] さらに、リボソームの水性分散液を、 0. 1〜1. 0 mの孔径を有する濾過膜で濾過 する (第 5工程)ことを特徴とする請求の範囲第 11項に記載のリボソーム含有製剤の 製造方法。
[15] 前記リボソーム膜構成物質は、更にコレステロールを含有することを特徴とする請求 の範囲第 1項に記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[16] 前記リボソーム膜構成物質は、更にポリエチレングリコール基を有する化合物を含 有することを特徴とする請求の範囲第 1項に記載のリボソーム含有製剤の製造方法。
[17] 請求の範囲第 1項力 第 16項のいずれかに記載の方法によって製造されたことを 特徴とするリボソーム含有製剤。
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Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007261984A (ja) * 2006-03-28 2007-10-11 Konica Minolta Medical & Graphic Inc 脂肪酸エステルを有するリポソ−ムおよびその製剤
JP2014180625A (ja) * 2013-03-19 2014-09-29 Fujiyakuhin Co Ltd 無菌乳化システム
JP2019198860A (ja) * 2018-05-10 2019-11-21 学校法人福岡大学 リポソームの製造方法および製造装置

Families Citing this family (8)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20060239925A1 (en) * 2005-04-21 2006-10-26 Konica Minolta Medical & Graphic, Inc. Method of manufacturing pharmaceutical preparation containing liposomes
US20100215582A1 (en) * 2007-05-14 2010-08-26 Konica Minolta Holdings, Inc. Liposome and method for producing liposome
WO2010019649A2 (en) * 2008-08-13 2010-02-18 Dow Global Technologies Inc. Active polymer compositions
US9445975B2 (en) * 2008-10-03 2016-09-20 Access Business Group International, Llc Composition and method for preparing stable unilamellar liposomal suspension
CN101810610B (zh) * 2010-04-19 2012-09-26 海南美兰史克制药有限公司 一种阿莫西林钠氟氯西林钠药物组合物脂质体注射剂
MX381655B (es) 2015-05-04 2025-03-13 Versantis AG Metodo para preparar vesiculas con gradiente de ph de transmembrana.
EP3463305B1 (en) * 2016-05-26 2025-07-02 Becton, Dickinson and Company Methods for liposome preparation by centrifugation
CN115804756B (zh) * 2022-12-28 2024-04-05 山东中医药大学附属医院 超临界流体制备奥硝唑脂质体及其制剂

Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH01249717A (ja) * 1988-03-30 1989-10-05 Fuji Photo Film Co Ltd リポソームの製造方法
JPH02500192A (ja) * 1987-05-22 1990-01-25 ブラッコ インドゥストリア キミカ ソチエタ ペル アツィオニ X線検査用の高封入容量のリポソームを含有する注射可能な不透明組成物
JPH0680560A (ja) * 1992-09-03 1994-03-22 D D S Kenkyusho:Kk リポソームの製造法
JPH06315624A (ja) * 1993-03-24 1994-11-15 Ciba Geigy Ag 高圧条件下でのリポソーム分散体の製造方法
JPH07165770A (ja) * 1993-12-16 1995-06-27 Nippon Oil & Fats Co Ltd リン脂質誘導体
JPH08502444A (ja) * 1992-10-14 1996-03-19 ザ リポソーム カンパニー,インコーポレイテッド 嵌合−融合リポソーム及びゲル
JPH10509459A (ja) * 1994-11-18 1998-09-14 アフィオス・コーポレーション 疏水性薬剤を含むリポソームを製造するための方法及び装置
JPH10513466A (ja) * 1995-02-09 1998-12-22 シェリング アクチェンゲゼルシャフト 脈管内空間を視覚化するための造影剤を含むリポソーム
JP2002037883A (ja) * 2000-07-24 2002-02-06 Nof Corp ポリアルキレンオキシド修飾リン脂質、その製造方法および用途
WO2002032564A1 (fr) * 2000-10-13 2002-04-25 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Procede et appareil de production de liposomes
JP2003119120A (ja) * 2001-10-12 2003-04-23 Masahiko Abe リポソームの製造方法、及び該リポソームを含有する化粧料、及び皮膚外用剤
JP2005162678A (ja) * 2003-12-03 2005-06-23 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム用脂質、リポソームおよびそれらの製造方法
JP2005220034A (ja) * 2004-02-03 2005-08-18 Konica Minolta Medical & Graphic Inc X線検査用造影剤の製造方法
JP2005255588A (ja) * 2004-03-10 2005-09-22 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム含有x線造影剤

Family Cites Families (10)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4192859A (en) * 1978-09-29 1980-03-11 E. R. Squibb & Sons, Inc. Contrast media containing liposomes as carriers
DE68901733T2 (de) * 1988-03-04 1993-03-25 Takeda Chemical Industries Ltd Liposom-zusammensetzung.
US5277914A (en) * 1989-03-31 1994-01-11 The Regents Of The University Of California Preparation of liposome and lipid complex compositions
US5326552A (en) * 1992-12-17 1994-07-05 Sterling Winthrop Inc. Formulations for nanoparticulate x-ray blood pool contrast agents using high molecular weight nonionic surfactants
US5340614A (en) * 1993-02-11 1994-08-23 Minnesota Mining And Manufacturing Company Methods of polymer impregnation
US5554382A (en) * 1993-05-28 1996-09-10 Aphios Corporation Methods and apparatus for making liposomes
US6270806B1 (en) * 1999-03-03 2001-08-07 Elan Pharma International Limited Use of peg-derivatized lipids as surface stabilizers for nanoparticulate compositions
CN1218746C (zh) * 2002-04-12 2005-09-14 中国农业大学 药物靶向脂质体的制备方法
JP2005170928A (ja) * 2003-10-21 2005-06-30 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム含有x線造影剤およびその製造方法
JP2005170923A (ja) * 2003-10-21 2005-06-30 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム含有x線造影剤およびその製造方法

Patent Citations (14)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JPH02500192A (ja) * 1987-05-22 1990-01-25 ブラッコ インドゥストリア キミカ ソチエタ ペル アツィオニ X線検査用の高封入容量のリポソームを含有する注射可能な不透明組成物
JPH01249717A (ja) * 1988-03-30 1989-10-05 Fuji Photo Film Co Ltd リポソームの製造方法
JPH0680560A (ja) * 1992-09-03 1994-03-22 D D S Kenkyusho:Kk リポソームの製造法
JPH08502444A (ja) * 1992-10-14 1996-03-19 ザ リポソーム カンパニー,インコーポレイテッド 嵌合−融合リポソーム及びゲル
JPH06315624A (ja) * 1993-03-24 1994-11-15 Ciba Geigy Ag 高圧条件下でのリポソーム分散体の製造方法
JPH07165770A (ja) * 1993-12-16 1995-06-27 Nippon Oil & Fats Co Ltd リン脂質誘導体
JPH10509459A (ja) * 1994-11-18 1998-09-14 アフィオス・コーポレーション 疏水性薬剤を含むリポソームを製造するための方法及び装置
JPH10513466A (ja) * 1995-02-09 1998-12-22 シェリング アクチェンゲゼルシャフト 脈管内空間を視覚化するための造影剤を含むリポソーム
JP2002037883A (ja) * 2000-07-24 2002-02-06 Nof Corp ポリアルキレンオキシド修飾リン脂質、その製造方法および用途
WO2002032564A1 (fr) * 2000-10-13 2002-04-25 National Institute Of Advanced Industrial Science And Technology Procede et appareil de production de liposomes
JP2003119120A (ja) * 2001-10-12 2003-04-23 Masahiko Abe リポソームの製造方法、及び該リポソームを含有する化粧料、及び皮膚外用剤
JP2005162678A (ja) * 2003-12-03 2005-06-23 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム用脂質、リポソームおよびそれらの製造方法
JP2005220034A (ja) * 2004-02-03 2005-08-18 Konica Minolta Medical & Graphic Inc X線検査用造影剤の製造方法
JP2005255588A (ja) * 2004-03-10 2005-09-22 Konica Minolta Medical & Graphic Inc リポソーム含有x線造影剤

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
JP2007261984A (ja) * 2006-03-28 2007-10-11 Konica Minolta Medical & Graphic Inc 脂肪酸エステルを有するリポソ−ムおよびその製剤
JP2014180625A (ja) * 2013-03-19 2014-09-29 Fujiyakuhin Co Ltd 無菌乳化システム
JP2019198860A (ja) * 2018-05-10 2019-11-21 学校法人福岡大学 リポソームの製造方法および製造装置
JP7330488B2 (ja) 2018-05-10 2023-08-22 学校法人福岡大学 リポソームの製造方法および製造装置

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