[go: up one dir, main page]

RU2807808C1 - Set of primers and probes for genotyping of rs12566098 (cg) polymorphic locus of serbp1 gene in human using real-time pcr - Google Patents

Set of primers and probes for genotyping of rs12566098 (cg) polymorphic locus of serbp1 gene in human using real-time pcr Download PDF

Info

Publication number
RU2807808C1
RU2807808C1 RU2023107987A RU2023107987A RU2807808C1 RU 2807808 C1 RU2807808 C1 RU 2807808C1 RU 2023107987 A RU2023107987 A RU 2023107987A RU 2023107987 A RU2023107987 A RU 2023107987A RU 2807808 C1 RU2807808 C1 RU 2807808C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
gene
genotyping
serbp1
probes
real
Prior art date
Application number
RU2023107987A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Юрьевна Бушуева
Мария Олеговна Солдатова
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации filed Critical Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации
Application granted granted Critical
Publication of RU2807808C1 publication Critical patent/RU2807808C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology; molecular genetic diagnostics; medicine.
SUBSTANCE: invention can be used in determining the hereditary predisposition to the development of diseases associated with carriage of rs12566098 polymorphic variant (C>G) of SERPINE1 gene of mRNA-binding protein 1. The following is proposed: a set of primers for genotyping of rs12566098 polymorphic locus (C>G) of SERBP1 gene in a human using real-time PCR.
EFFECT: invention makes it possible to expand the arsenal of tools for genotyping of polymorphic variants of SERBP1 gene and increase the accuracy of genotyping.
1 cl, 1 dwg

Description

Изобретение относится к области биотехнологии, молекулярно-генетической диагностики, в частности к оценке однонуклеотидного полиморфизма rs12566098 (C>G) гена SERPINE1 мРНК-связывающего белка 1 молекулярно-генетическим методом исследования.The invention relates to the field of biotechnology, molecular genetic diagnostics, in particular to the assessment of single nucleotide polymorphism rs12566098 (C>G) SERPINE1 gene mRNA-binding protein 1 molecular genetic research method.

Ген SERBP1 (Gene ID: 26135) локализован на хромосоме 1p31.3. Согласно SNPinfo Web Server/ LD TAG SNP Selection [https://snpinfo.niehs.nih.gov/snpinfo/snptag.html] полиморфный вариант rs12566098 гена SERBP1 является таргетным (то есть репрезентативным однонуклеотидным полиморфизмом в геномной области с высокой степенью неравновесия по сцеплению с группами других полиморфных локусов, составляющих гаплотип).GeneSERBP1(Gene ID: 26135) is located on chromosome 1p31.3. According to SNPinfo Web Server/LD TAG SNP Selection [https://snpinfo.niehs.nih.gov/snpinfo/snptag.html] polymorphic variant rs12566098 geneSERBP1 is targeted (that is, a representative single-nucleotide polymorphism in a genomic region with a high degree of linkage disequilibrium with groups of other polymorphic loci that make up the haplotype).

Однонуклеотидный полиморфизм rs12566098, позиция chr1:67423888 (GRCh38.p14) [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/rs12566098] локализован в интроне и характеризуется заменой С>G,T. Однако, аллель T встречается с частотой <0.000001 в европейских популяциях и также характеризуется низкой частотой в других популяциях мира, в связи с чем именно замена С>G является наиболее актуальной для проведения исследований. По данным транскриптомного анализа GTex Portal rs12566098 влияет на уровень экспрессии SERBP1 [https://gtexportal.org/home/].Single nucleotide polymorphism rs12566098, position chr1:67423888 (GRCh38.p14) [https://www.ncbi.nlm.nih.gov/snp/rs12566098] is localized in the intron and is characterized by the C>G,T substitution. However, the T allele occurs with a frequency of <0.000001 in European populations and is also characterized by a low frequency in other populations of the world, and therefore the C>G substitution is the most relevant for research. According to GTex Portal transcriptomic analysis, rs12566098 affects the expression level of SERBP1 [https://gtexportal.org/home/].

Это создает потребность в создании простого в исполнении, недорогого и доступного всем исследователям, работающим в области генетической эпидемиологии, метода идентификации таргетного полиморфного варианта rs12566098 (С>G) гена SERBP1.This creates a need to create a method for identifying the targeted polymorphic variant rs12566098 (C>G) of the SERBP1 gene that is simple to implement, inexpensive and accessible to all researchers working in the field of genetic epidemiology.

Известен способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом секвенирования амплифицированных участков ДНК [Mardis E. R. DNA sequencing technologies: 2006-2016 //Nature protocols. - 2017. - Vol. 12. - №. 2. - P. 213-218]. Недостатками метода являются высокая стоимость оборудования и реагентов, что исключает широкое внедрение метода в экспериментальные исследования, особенно изучение многофакторных заболеваний, которые требуют большого размера выборок для обеспечения высокой мощности исследований.There is a known method for analyzing genetic variations in the human genome by sequencing amplified sections of DNA [Mardis E. R. DNA sequencing technologies: 2006-2016 //Nature protocols. - 2017. - Vol. 12. - No. 2. - P. 213-218]. The disadvantages of the method are the high cost of equipment and reagents, which excludes the widespread implementation of the method in experimental studies, especially the study of multifactorial diseases that require large sample sizes to ensure high power of studies.

Известен способ анализа генетических вариаций в геноме человека методом матричноактивированной лазерной десорбционно-ионизационной масс-спектрометрии (MALDI). Метод заключается в том, анализируемая ДНК переносится на подложку, где она кристаллизуется с матрицей. Затем кристаллизованные аналиты переносят, облучают лазером, вызывая десорбцию и ионизацию молекул в вакуумной камере. Положительно заряженные ионы ДНК ускоряются и мигрируют через вакуумную трубку к высокочувствительному детектору с разной скоростью в зависимости от массы ионов, что приводит к различному времени пролета. Используя время пролета отдельных ионизированных ДНК-аналитов, система определяет массу и отображает масс-спектр, идентифицирующий различные генетические мишени [Li D. et al. MALDI-TOF mass spectrometry in clinical analysis and research //ACS Measurement Science Au. - 2022. - Vol. 2. - №. 5. - P. 385-404]. Недостатками метода являются трудоемкость, высокая стоимость оборудования, высокая стоимость эксперимента, наличие высококвалифицированного персонала.There is a known method for analyzing genetic variations in the human genome using matrix-assisted laser desorption ionization mass spectrometry (MALDI). The method involves transferring the DNA to be analyzed onto a substrate, where it crystallizes with a matrix. The crystallized analytes are then transferred and irradiated with a laser, causing desorption and ionization of the molecules in a vacuum chamber. Positively charged DNA ions are accelerated and migrate through a vacuum tube to a highly sensitive detector at different speeds depending on the mass of the ions, resulting in different times of flight. Using the time of flight of individual ionized DNA analytes, the system determines mass and displays a mass spectrum identifying various genetic targets [Li D. et al. MALDI-TOF mass spectrometry in clinical analysis and research //ACS Measurement Science Au. - 2022. - Vol. 2. - No. 5. - P. 385-404]. The disadvantages of the method are labor intensity, high cost of equipment, high cost of the experiment, and the presence of highly qualified personnel.

За прототип выбран коммерческий набор по генотипированию rs12566098 (C/G) SERBP1 (Assay ID C___2694736_10; каталожный номер 4351379) компании ThermoFisher. Однако, генотипирование с использованием коммерческого набора характеризуется высокой стоимостью, а информация о структуре необходимых для проведения ПЦР праймеров и аллель-специфических зондов является закрытой для исследователей, в связи с чем данные методику невозможно воспроизвести в ПЦР-лабораториях со стандартным набором оборудования и реактивов.The commercial genotyping kit rs12566098 (C/G) SERBP1 (Assay ID C___2694736_10; catalog number 4351379) from ThermoFisher was selected as the prototype. However, genotyping using a commercial kit is characterized by high cost, and information about the structure of primers and allele-specific probes necessary for PCR is closed to researchers, and therefore these methods cannot be reproduced in PCR laboratories with a standard set of equipment and reagents.

Таким образом, существует реальная потребность в создании быстрого, недорогого и легко воспроизводимого способа идентификации полиморфизма rs12566098 (C>G) гена SERBP1, который мог бы использоваться в качестве «рутинного» метода генотипирования в ПЦР-лабораториях со стандартным набором оборудования и реактивов.Thus, there is a real need to create a fast, inexpensive and easily reproducible method for identifying the rs12566098 (C>G) polymorphism of the SERBP1 gene, which could be used as a “routine” genotyping method in PCR laboratories with a standard set of equipment and reagents.

Техническим результатом данного изобретения является разработка простого в исполнении и экономически целесообразного способа генотипирования однонуклеотидного полиморфизма rs12566098 (C>G), локализованного в позиции chr1:67423888 (GRCh38.p14) гена SERBP1 (Gene ID:26135) методом полимеразной цепной реакции в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических сигнальных зондов, содержащие флуорофоры FAM и ROX.The technical result of this invention is the development of an easy-to-use and economically feasible method for genotyping the single nucleotide polymorphism rs12566098 (C>G), localized at position chr1:67423888 (GRCh38.p14) of the SERBP1 gene (Gene ID: 26135) using the polymerase chain reaction method in “real” mode time" using allele-specific signal probes containing FAM and ROX fluorophores.

Технический результат достигается тем, что идентификацию аллельных вариантов rs12566098 (C>G) гена SERBP1 осуществляют с использованием прямого общего праймера 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO 1), обратного общего праймера 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO 2), C-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′- (FAM)CACATAAACCACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO 3), G-аллель-специфичного флуоресцентно-меченого зонда 5′- (ROX)CACATAAAGCACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).The technical result is achieved by the fact that the identification of allelic variants rs12566098 (C>G) of the SERBP1 gene is carried out using the forward general primer 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO 1), the reverse general primer 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO 2), C-allele-specific fluorescently labeled probe 5′- (FAM)CACATAAA C CACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO 3), G-allele-specific fluorescently labeled probe 5′- (ROX) CACATAAA G CACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).

Изобретение поясняется следующей фигурой: дискриминация аллелей по локусу rs12566098 гена SERBP1 при генотипировании методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) на амплификаторе CFX96: генотипы rs12566098-С/С показаны оранжевыми кругами, генотипы rs12566098-С/G показаны зелеными треугольниками, генотипы rs12566098-G/G показаны голубыми квадратами; черным ромбом отмечен отрицательный контроль. The invention is illustrated by the following figure: discrimination of alleles at the rs12566098 locus of the SERBP1 gene when genotyping by real-time PCR using allele-specific fluorescent probes according to RFU values (relative fluorescence units) on a CFX96 amplifier: rs12566098-C/C genotypes are shown in orange circles, rs12566098-C/G genotypes are shown as green triangles, rs12566098-G/G genotypes are shown as blue squares; The black diamond indicates the negative control.

Работа над дизайном олигонуклеотидов включала несколько этапов:Work on the design of oligonucleotides included several stages:

1) С применением открытой базы данных Ensembl genome browser 109 [https://www.ensembl.org/index.html] выбран синвенс, фланкирующий искомую однонуклеотидную замену C/G rs12566098 SERBP1, и затем с помощью доступного онлайн программного обеспечения Primer3web version 4.1.0 [https://primer3.ut.ee/] подобрана последовательность олигонуклеотидов, используемых для проведения ПЦР-реакции:1) Using the open database Ensembl genome browser 109 [https://www.ensembl.org/index.html], a synvenge flanking the desired single nucleotide C/G substitution rs12566098 SERBP1 was selected, and then using the available online software Primer3web version 4.1 .0 [https://primer3.ut.ee/] the sequence of oligonucleotides used to carry out the PCR reaction has been selected:

прямой общий праймер rs12566098 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO 1), forward general primer rs12566098 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO 1),

обратный общий праймер rs12566098 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO 2). Размер амплифицируемого в ходе ПЦР фрагмента гена SERBP1 с использованием данных праймеров составляет 156 пар нуклеотидов:reverse general primer rs12566098 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO 2). The size of the SERBP1 gene fragment amplified during PCR using these primers is 156 nucleotide pairs:

2) Для дизайна зондов пользовались практическими рекомендациями [Basu C. (ed.). PCR primer design. - New york : Humana Press, 2015]. В реакции использовались гидролизные зонды. Последовательность зонда подбирали таким образом, чтобы он отжигался на матрицу между прямым и обратным праймерами. Каждый зонд снабжали флуорофором и гасителем флуоресценции, спектр поглощения которого соответствует длинам волн спектра флуорофора. Для гашения флуоресценции FAM пользовались гасителем RTQ1; для гашения флуоресценции ROX - гасителем BHQ2. На основании изложенных критериев и практических рекомендаций были подобраны зонды со следующей структурой:2) For the design of probes, we used practical recommendations [Basu C. (ed.). PCR primer design. - New york: Humana Press, 2015]. Hydrolysis probes were used in the reaction. The probe sequence was selected so that it would anneal to the template between the forward and reverse primers. Each probe was equipped with a fluorophore and a fluorescence quencher whose absorption spectrum corresponded to the wavelengths of the fluorophore spectrum. To quench FAM fluorescence, we used the RTQ1 quencher; for ROX fluorescence quenching - BHQ2 quencher. Based on the stated criteria and practical recommendations, probes with the following structure were selected:

rs12566098-C-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′- (FAM)CACATAAACCACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′(SEQ ID NO 3), rs12566098-C-allele-specific fluorescently labeled probe 5′- (FAM)CACATAAACCACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′(SEQ ID NO 3),

rs12566098-G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′- (ROX)CACATAAAGCACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).rs12566098-G allele-specific fluorescently labeled probe 5′- (ROX)CACATAAAGCACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO 4).

3) Изготовление праймеров и зондов осуществлялось в сервисном центре НПК «Синтол», Москва.3) The production of primers and probes was carried out at the service center of NPK Syntol, Moscow.

4) С помощью практических экспериментов подобраны оптимальные условия для проведения генотипирования, которые включают следующие этапы: 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов [95°C в течение 15 секунд и 56°C в течение 1 минуты].4) Using practical experiments, the optimal conditions for genotyping were selected, which include the following steps: 95°C for 10 minutes, then 39 cycles [95°C for 15 seconds and 56°C for 1 minute].

5) Разработанный способ был апробирован на 95 образцах ДНК здоровых индивидуумов биобанка НИИ генетической и молекулярной эпидемиологии КГМУ. Генотипирование осуществляли по данным величин RFU (относительные единицы флуоресценции) зонда с флуоресцентными красителями. По результатам генотипирования rs12566098 5 человек (5,3%) оказались гомозиготами по аллелю C (генотип C/C); 31 человек (32,6%) являлись гетерозиготами (генотип C/G), 59 человек (62,1%) оказались гомозиготами G/G.5) The developed method was tested on 95 DNA samples of healthy individuals from the biobank of the Research Institute of Genetic and Molecular Epidemiology of KSMU. Genotyping was carried out according to the RFU (relative fluorescence units) values of the probe with fluorescent dyes. According to the results of genotyping rs12566098, 5 people (5.3%) turned out to be homozygous for the C allele (genotype C/C); 31 people (32.6%) were heterozygotes (genotype C/G), 59 people (62.1%) were homozygotes G/G.

6) Валидацию способа проводили с методом масс-спектрометрического анализа на геномном времяпролетном масс-спектрометре MassArray analyzer 4 (Agena Bioscience). Результаты обоих способов генотипирования полностью (100% генотипов) совпали. Однако патентуемый способ генотипирования полиморфного локуса rs12566098 (C>G) гена SERBP1 методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических зондов позволяет значительно (на 6 часов) сократить время проведения анализа, а также снижает себестоимость анализа (в 4-5 раз).6) Validation of the method was carried out with the method of mass spectrometric analysis on a genomic time-of-flight mass spectrometer MassArray analyzer 4 (Agena Bioscience). The results of both genotyping methods completely coincided (100% of genotypes). However, the patented method for genotyping the polymorphic locus rs12566098 (C>G) of the SERBP1 gene using real-time PCR using allele-specific probes allows to significantly (by 6 hours) reduce the time of analysis, and also reduces the cost of analysis (by 4-5 once).

Способ осуществляют следующим образом:The method is carried out as follows:

1. Выделение ДНК из периферической венозной крови. На первом этапе к 0,5 мл крови добавляли 0,5 мл PBS и центрифугировали 10 мин при 12 тыс. об/мин. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 1 мл PBS и вновь центрифугировали при тех же условиях. Надосадочную жидкость сливали, добавляли 200 мкл ТЕ-буфера, пипетировали до растворения осадка и затем последовательно добавляли 10 мкл 1% раствора додецилсульфата натрия SDS и 5 мкл протеиназы К. Пробирки инкубировали в термостате при t=37°C 12 ч. В ходе второго этапа проводили четыре последовательных центрифугирования с фенолом и хлороформом согласно протоколу методики (10 мин, 8 тыс. об/мин), после чего ДНК осаждали ледяным раствором 95% этилового спирта и центрифугировали 10 мин при 14,3 тыс. об/мин. По испарении спирта ДНК растворяли в 100 мкл деионизированной дистиллированной воды. Получаемый раствор ДНК в воде имел чистоту в диапазоне А260/280=1,5-2,0 и среднюю концентрацию около 180-200 нг/мкл.1. Isolation of DNA from peripheral venous blood. At the first stage, 0.5 ml of PBS was added to 0.5 ml of blood and centrifuged for 10 min at 12 thousand rpm. The supernatant was discarded, 1 ml of PBS was added and centrifuged again under the same conditions. The supernatant was discarded, 200 μl of TE buffer was added, pipetted until the precipitate dissolved, and then 10 μl of 1% sodium dodecyl sulfate SDS and 5 μl of proteinase K were sequentially added. The tubes were incubated in a thermostat at t=37°C for 12 hours. During the second stage Four successive centrifugations with phenol and chloroform were performed according to the protocol (10 min, 8 thousand rpm), after which the DNA was precipitated with an ice-cold solution of 95% ethyl alcohol and centrifuged for 10 min at 14.3 thousand rpm. After the alcohol had evaporated, the DNA was dissolved in 100 μl of deionized distilled water. The resulting DNA solution in water had a purity in the range A260/280=1.5-2.0 and an average concentration of about 180-200 ng/μl.

2. Подготовка образцов ДНК к генотипированию. Качество выделенной ДНК оценивали по степени чистоты и концентрации раствора на спектрофотометре NanoDrop (Thermo Fisher Scientific, США). Все анализируемые образцы ДНК были разведены деионизированной водой до концентрации 15-20 нг/мкл при А260/280=1,5-2,0.2. Preparation of DNA samples for genotyping. The quality of the isolated DNA was assessed by the degree of purity and concentration of the solution using a NanoDrop spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific, USA). All analyzed DNA samples were diluted with deionized water to a concentration of 15-20 ng/μl at A260/280=1.5-2.0.

3. Анализ полиморфизма rs12566098 (C>G) гена SERBP1 с помощью полимеразной цепной реакции в реальном времени с использованием аллель-специфических зондов. Для генотипирования использовали два фланкирующих праймера, прямой (SEQ ID NO 1) и обратный (SEQ ID NO 2), а также аллель-специфические зонды: С-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 3), G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд (SEQ ID NO 4).3. Real-time polymerase chain reaction analysis of the rs12566098 (C>G) polymorphism of the SERBP1 gene using allele-specific probes. For genotyping, two flanking primers were used, forward (SEQ ID NO 1) and reverse (SEQ ID NO 2), as well as allele-specific probes: C-allele-specific fluorescently labeled probe (SEQ ID NO 3), G-allele- specific fluorescently labeled probe (SEQ ID NO 4).

ПЦР в реальном времени проводили в 25 мл реакционной смеси, содержащей 1,25 ЕД ДНК-полимеразы Hot Start Taq («Биолабмикс», Новосибирск, Россия), 20 нг ДНК, по 10 мкМ каждого праймера, по 5 мкМ каждого зонда, 0.03 мМ каждого dNTP, 2,5 мМ MgCl2; 1xПЦР-буфер [67 мМ Tris-HCl, pH 8,8, 16,6 мМ (NH4)2SO4, 0,01% Tween-20]. Реакция амплификации состояла из стадии нагревания до 95°C в течение 10 минут, затем 39 циклов (95°C в течение 15 секунд и 56°C в течение 1 минуты).Real-time PCR was carried out in 25 ml of a reaction mixture containing 1.25 U of Hot Start Taq DNA polymerase (Biolabmix, Novosibirsk, Russia), 20 ng of DNA, 10 μM of each primer, 5 μM of each probe, 0.03 mM each dNTP, 2.5 mM MgCl2; 1xPCR buffer [67 mM Tris-HCl, pH 8.8, 16.6 mM (NH4)2SO4, 0.01% Tween-20]. The amplification reaction consisted of a heating step to 95°C for 10 minutes, then 39 cycles (95°C for 15 seconds and 56°C for 1 minute).

4. Генотипирование. При проведении ПЦР в амплификаторе с флуоресцентной детекцией (Bio-Rad CFX96 или аналогичном амплификаторе) генотипирование осуществляют по данным величин RFU (относительных единиц флуоресценции). Для rs12566098 (C>G) гена SERBP1 зонд с флуоресцентным красителем FAM соответствует аллелю C, зонд с красителем ROX - аллелю G (фиг.). На фигуре видно четкое разделение образцов на кластеры, где черный ромб соответствуют отрицательному контролю, кластер оранжевых кругов - соответствует зонду с флуоресцентным красителем FAM и позволяет идентифицировать гомозигот C/C. Кластер синих квадратов соответствует зонду с красителем ROX и позволяет идентифицировать гомозигот G/G. Кластер зеленых треугольников позволяет идентифицировать гетерозигот C/G.4. Genotyping. When performing PCR in a cycler with fluorescent detection (Bio-Rad CFX96 or similar cycler), genotyping is carried out according to RFU (relative fluorescence units) values. For rs12566098 (C>G) of the SERBP1 gene, the probe with the fluorescent dye FAM corresponds to the C allele, and the probe with the ROX dye corresponds to the G allele (Fig.). The figure shows a clear division of the samples into clusters, where the black diamond corresponds to the negative control, the cluster of orange circles corresponds to the probe with the fluorescent dye FAM and allows the identification of C/C homozygotes. The cluster of blue squares corresponds to the ROX dye probe and allows the identification of G/G homozygotes. The green triangle cluster allows identification of C/G heterozygotes.

РезюмеSummary

Таким образом, разработан эффективный и недорогой способ для экспресс- идентификации аллельных вариантов С и G полиморфизма rs12566098 гена SERBP1 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени» с применением аллель-специфических флуоресцентных зондов, который может быть использован в медицине при определении наследственной предрасположенности к развитию заболеваний, ассоциированных с носительством полиморфного варианта rs12566098 гена SERBP1, а также в научных целях.Thus, an effective and inexpensive method has been developed for the rapid identification of allelic variants C and G of the rs12566098 polymorphism of the SERBP1 gene in humans using real-time PCR using allele-specific fluorescent probes, which can be used in medicine to determine the hereditary predisposition to the development of diseases associated with carriage of the rs12566098 polymorphic variant of the SERBP1 gene, as well as for scientific purposes.

Claims (1)

Набор праймеров и зондов для генотипирования полиморфного локуса rs12566098 (C>G) гена SERBP1 у человека методом ПЦР в режиме «реального времени», отличающийся тем, что в качестве праймеров используют прямой общий праймер 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO: 1), обратный общий праймер 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO: 2), а в качестве зондов – C-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′-(FAM)CACATAAACCACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO: 3) и G-аллель-специфичный флуоресцентно-меченый зонд 5′-(ROX)CACATAAAGCACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO: 4).A set of primers and probes for genotyping the polymorphic locus rs12566098 (C>G) of the SERBP1 gene in humans using real-time PCR, characterized in that the direct general primer 5′-CAGTTGTATGACAATGGTAAAATGA-3′ (SEQ ID NO: 1), reverse general primer 5′-CTCCCAAAGTGCTGGGATTA-3′ (SEQ ID NO: 2), and as probes – C-allele-specific fluorescently labeled probe 5′-(FAM)CACATAAACCACTCTTTTAAG(RTQ1)-3′ (SEQ ID NO: 3) and G-allele-specific fluorescently labeled probe 5′-(ROX)CACATAAAGCACTCTTTTAAG(BHQ2)-3′ (SEQ ID NO: 4).
RU2023107987A 2023-03-31 Set of primers and probes for genotyping of rs12566098 (cg) polymorphic locus of serbp1 gene in human using real-time pcr RU2807808C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2807808C1 true RU2807808C1 (en) 2023-11-21

Family

ID=

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2830632C1 (en) * 2024-06-01 2024-11-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs556439 (AG) OF HSF2 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES

Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109868313A (en) * 2018-06-25 2019-06-11 山东大学 Application of the HMGA2 gene in Stein-Leventhal syndrome disease
RU2709710C1 (en) * 2019-03-26 2019-12-19 Общество с Ограниченной Ответственностью ООО "Синтез-Групп" Method for human genotype determination by mutation ivs14+1ga b 14 intron of dpyd gene
RU2709645C1 (en) * 2019-03-26 2019-12-19 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Блохина" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина" Минздрава России) METHOD FOR HUMAN GENOTYPE DETERMINATION BY MUTATION c.1236GA IN 11 EXON OF DPYD GENE
RU2740575C1 (en) * 2020-05-21 2021-01-15 Иван Дмитриевич Ивановский Set of synthetic oligonucleotides for simultaneous genotyping 63 dna-markers associated with blood group av0, main haplogroups of y-chromosome, color of iris of eye, hair, skin and gender, by pcr with subsequent hybridisation

Patent Citations (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN109868313A (en) * 2018-06-25 2019-06-11 山东大学 Application of the HMGA2 gene in Stein-Leventhal syndrome disease
RU2709710C1 (en) * 2019-03-26 2019-12-19 Общество с Ограниченной Ответственностью ООО "Синтез-Групп" Method for human genotype determination by mutation ivs14+1ga b 14 intron of dpyd gene
RU2709645C1 (en) * 2019-03-26 2019-12-19 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный медицинский исследовательский центр онкологии имени Н.Н. Блохина" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "НМИЦ онкологии им. Н.Н. Блохина" Минздрава России) METHOD FOR HUMAN GENOTYPE DETERMINATION BY MUTATION c.1236GA IN 11 EXON OF DPYD GENE
RU2740575C1 (en) * 2020-05-21 2021-01-15 Иван Дмитриевич Ивановский Set of synthetic oligonucleotides for simultaneous genotyping 63 dna-markers associated with blood group av0, main haplogroups of y-chromosome, color of iris of eye, hair, skin and gender, by pcr with subsequent hybridisation

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Emma Poole et al., Latency-associated upregulation of SERBP1 is important for the recruitment of transcriptional repressors to the viral major immediate early promoter of human cytomegalovirus during latent carriage Front. Microbiol., 24 November 2022, Sec. Virology, Volume 13 - 2022, P. 1-9 | https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.999290. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2830632C1 (en) * 2024-06-01 2024-11-25 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Курский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs556439 (AG) OF HSF2 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2807808C1 (en) Set of primers and probes for genotyping of rs12566098 (cg) polymorphic locus of serbp1 gene in human using real-time pcr
RU2830882C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs61882275 (GA) OF ELF5 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2808842C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs10104 (A&gt;G) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2808839C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs346158 (T&gt;C) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2828031C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs117245733 (G&gt;A) OF LOC124903162 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2828032C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs58415480 (C&gt;G) OF SYNE1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2826734C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7986407 (A&gt;G) OF FOXO1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2831059C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs111837807 (T&gt;C) OF CCHCR1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2834032C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7907606 (T&gt;G) IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2850914C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs641760 (TC) OF PITPNM2 GENE IN HUMANS USING PCR METHOD IN &#34;REAL TIME&#34; MODE USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2830632C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs556439 (AG) OF HSF2 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2810474C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs2901077 (C&gt;T) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2808841C1 (en) METHOD OF GENOTYPING rs346157 (A&gt;G) POLYMORPHIC LOCUS OF C19orf53 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2822044C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs143334143 (G&gt;A) OF CCHCR1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2850915C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs6991952 (A&gt;G) OF EBF2 GENE IN HUMANS BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821081C1 (en) Method for genotyping polymorphic locus rs12585036 (c&gt;t) of atp11a gene in humans by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2830244C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs4279640 (T&gt;C) OF HSF1 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2830246C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs6909985 (G&gt;T) OF HSF2 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2833707C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs3170633 (C&gt;T) OF GCLM GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2821083C1 (en) Method for genotyping polymorphic locus rs17078346 (a&gt;c) in human by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes
RU2852770C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs2236626 (C&gt;T) OF GGT1 GENE IN HUMANS BY PCR METHOD IN REAL TIME USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2828270C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs17155992 (G&gt;A) OF HSPA14 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2819835C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7951676 (GT) OF C11orf58 GENE IN PERSON BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2825466C1 (en) METHOD FOR GENOTYPING POLYMORPHIC LOCUS rs7928675 (A&gt;C) OF C11orf58 GENE IN HUMAN BY REAL-TIME PCR USING ALLELE-SPECIFIC FLUORESCENT PROBES
RU2835194C1 (en) Method for genotyping a polymorphic locus rs547025 (t&gt;c) of the sirt3 gene in a human by real-time pcr using allele-specific fluorescent probes