RU2844477C1 - Method for producing an accumulation liquid culture medium for culturing a vaccine strain of yersinia pestis ev plague microbe - Google Patents
Method for producing an accumulation liquid culture medium for culturing a vaccine strain of yersinia pestis ev plague microbeInfo
- Publication number
- RU2844477C1 RU2844477C1 RU2024120771A RU2024120771A RU2844477C1 RU 2844477 C1 RU2844477 C1 RU 2844477C1 RU 2024120771 A RU2024120771 A RU 2024120771A RU 2024120771 A RU2024120771 A RU 2024120771A RU 2844477 C1 RU2844477 C1 RU 2844477C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- enzymatic hydrolysate
- distilled water
- enzymatic
- casein
- sodium
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии и микробиологии, а именно к приготовлению микробиологических накопительных питательных сред жидких для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Y. pestis EV, и может быть использовано в получении питательной среды, обеспечивающей выход биомассы с высокой концентрацией микробных клеток.The invention relates to biotechnology and microbiology, namely to the preparation of microbiological storage liquid nutrient media for cultivating the vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV, and can be used in obtaining a nutrient medium that ensures the yield of biomass with a high concentration of microbial cells.
Известна питательная среда жидкая для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Yersinia pestis EV, где в качестве питательной основы используют ферментативный гидролизат говяжьего мяса - 170,0-190,0 мл. Также питательная среда содержит: натрий хлористый 3,0-5,0 г; натрий сернистокислый 3,0-5,0 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный 3,0-5,0 г; стимулятор Карпузиди 0,006-0,010 мл; очищенную воду - до 1 л (Патент РФ №2433170 «Питательная среда жидкая для культивирования чумного микроба вакцинного штамма ЕВ». Опубл. 10.11.2011. Бюл. №31).A liquid nutrient medium is known for cultivating the vaccine strain of the plague microbe Yersinia pestis EV, where the enzymatic hydrolysate of beef meat is used as the nutrient base - 170.0-190.0 ml. The nutrient medium also contains: sodium chloride 3.0-5.0 g; sodium sulfite 3.0-5.0 g; disodium phosphate 3.0-5.0 g; Karpuzidi stimulator 0.006-0.010 ml; purified water - up to 1 l (Patent of the Russian Federation No. 2433170 "Liquid nutrient medium for cultivating the plague microbe of the vaccine strain EV". Published. 11/10/2011. Bulletin No. 31).
Недостатком данной среды является ее низкая продуктивность.The disadvantage of this environment is its low productivity.
Наиболее близкой к предлагаемому изобретению является питательная среда жидкая для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Yersinia pestis EV, где в качестве питательной основы используют ферментативный гидролизат сои (бобов) - 320,0-420,0 мл и следующие ингредиенты: натрий хлористый 4,0-6,0 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный 3,0-5,0 г; натрий сернистокислый 0,3-0,5 г; липоевую кислоту 0,4-0,6 г; 20% раствор гидроокиси натрия 2,5-3,5 мл; дистиллированную воду - до 1 л. (Патент РФ №2260620 «Питательная среда (жидкая) для культивирования чумного микроба вакцинного штамма ЕВ» Опубл. 20.09.2005. Бюлл. №26).The closest to the proposed invention is a liquid nutrient medium for cultivating the vaccine strain of the plague microbe Yersinia pestis EV, wherein the enzymatic hydrolysate of soybeans (beans) - 320.0-420.0 ml and the following ingredients are used as the nutrient base: sodium chloride 4.0-6.0 g; dibasic sodium phosphate 3.0-5.0 g; sodium sulfite 0.3-0.5 g; lipoic acid 0.4-0.6 g; 20% sodium hydroxide solution 2.5-3.5 ml; distilled water - up to 1 l. (Patent of the Russian Federation No. 2260620 “Nutrient medium (liquid) for cultivating the plague microbe of the EB vaccine strain.” Published on September 20, 2005. Bulletin No. 26).
Недостатком данной среды является сложность ее приготовления.The disadvantage of this environment is the difficulty of its preparation.
Целью изобретения является получение накопительной питательной среды жидкой для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Y. pestis EV.The aim of the invention is to obtain a liquid nutrient medium for cultivating the vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV.
Технический результат изобретения заключается в том, что в качестве основного источника азотного питания при приготовлении среды используется ферментативный гидролизат казеина совместно с ферментативным гидролизатом сои (бобов) и пептоном сухим ферментативным, а также натрий хлористый, натрий фосфорнокислый двузамещенный 12-водный, магний сернокислый, уголь активированный, дистиллированная вода и ростостимулирующие добавки - аммоний молибденовокислый 4-х водный и натрий сернистокислый.The technical result of the invention consists in that the enzymatic hydrolysate of casein together with the enzymatic hydrolysate of soybeans (beans) and dry enzymatic peptone, as well as sodium chloride, sodium phosphate dibasic 12-aqueous, magnesium sulfate, activated carbon, distilled water and growth-stimulating additives - ammonium molybdate 4-aqueous and sodium sulfite - are used as the main source of nitrogen nutrition in the preparation of the medium.
Используемые ингредиенты в совокупности повышают накопительные свойства питательной среды при следующем соотношении:The ingredients used together increase the cumulative properties of the nutrient medium in the following ratio:
Ферментативный гидролизат казеина 89,0 млEnzymatic hydrolysate of casein 89.0 ml
Ферментативный гидролизат сои (бобов) 89,0 млEnzymatic hydrolysate of soybeans (beans) 89.0 ml
Пептон сухой ферментативный 10,0 гDry enzymatic peptone 10.0 g
Натрий хлористый 3,0 гSodium chloride 3.0 g
Натрий фосфорнокислый 2-замещенный 12-водный 4,0 гSodium phosphate dibasic 12-hydrate 4.0 g
Аммоний молибденовокислый 4-водный 0,5 гAmmonium molybdate 4-aqueous 0.5 g
Натрий сернистокислый 0,3 гSodium sulfite 0.3 g
Магний сернокислый 0,2 гMagnesium sulfate 0.2 g
Уголь активированный 20,0 гActivated carbon 20.0 g
Дистиллированная вода до 1 лDistilled water up to 1 l
Казеин (ТУ 8-5344-113607) фосфорсодержащий белок, получаемый из обезжиренного молока и являющийся наиболее полноценным видом сырья для питательных сред. Его содержание колеблется от 23 до 90% от общего содержания белков молока. Элементарный средний состав нефракционированного казеина (в %) следующий: углерод - 53; водород - 7,1; азот - 15,63; кислород - 22,6; сера - 0,82; фосфор - 0,85. Панкреатический гидролизат казеина получают с использованием ферментов поджелудочной железы. Ферментативная основа казеина содержит низкомолекулярные пептиды и полный набор аминокислот: глицин, аланин, валин, лейцин, изолейцин, пролин, фенилаланин, цистеин+цистин, метионин, триптофан, аргинин, гистидин, лизин, аспарагиновая кислота, глутаминовая кислота, серии, треонин, тирозин, чем обеспечивает биологическую потребность микроорганизмов в азотном питании.Casein (TU 8-5344-113607) is a phosphorus-containing protein obtained from skim milk and is the most complete type of raw material for nutrient media. Its content ranges from 23 to 90% of the total content of milk proteins. The elemental average composition of unfractionated casein (in %) is as follows: carbon - 53; hydrogen - 7.1; nitrogen - 15.63; oxygen - 22.6; sulfur - 0.82; phosphorus - 0.85. Pancreatic hydrolysate of casein is obtained using pancreatic enzymes. The enzymatic base of casein contains low-molecular peptides and a full set of amino acids: glycine, alanine, valine, leucine, isoleucine, proline, phenylalanine, cysteine + cystine, methionine, tryptophan, arginine, histidine, lysine, aspartic acid, glutamic acid, serine, threonine, tyrosine, which provides the biological need of microorganisms for nitrogen nutrition.
Ферментативный гидролизат сои (бобов) (ТУ 9385-018-78095326-2006) содержит около 40% белка. Соевый белок содержит около 18 разных типов аминокислот, включая незаменимые, в том числе глутаминовую и аспарагиновую кислоты, которые тесно связаны с углеводным обменом через цикл трикарбоновых кислот, поставляющий макроэргические связи, также соя богата микроэлементами и витаминами.Enzymatic hydrolysate of soybeans (beans) (TU 9385-018-78095326-2006) contains about 40% protein. Soy protein contains about 18 different types of amino acids, including essential ones, including glutamic and aspartic acids, which are closely related to carbohydrate metabolism through the tricarboxylic acid cycle, supplying macroergic bonds, soy is also rich in microelements and vitamins.
Пептон сухой ферментативный (ГОСТ 13805-76). Пептон содержит различные аминокислоты, продукты ферментативного гидролиза белков, неорганические микроэлементы, необходимые для культивирования микроорганизмов различных систематических групп. Является легко доступным источником азота для микроорганизмов.Dry enzymatic peptone (GOST 13805-76). Peptone contains various amino acids, products of enzymatic hydrolysis of proteins, inorganic microelements necessary for the cultivation of microorganisms of various systematic groups. It is an easily accessible source of nitrogen for microorganisms.
Натрий хлористый (ГОСТ 4233-77, хч, чда) служит для поддержания изотоничности среды и окислительно-восстановительного потенциала.Sodium chloride (GOST 4233-77, chemically pure, analytical grade) is used to maintain the isotonicity of the medium and the oxidation-reduction potential.
Натрий фосфорнокислый 2-замещенный 12-водный (ГОСТ 4172-76, чда). Его применение обосновано широким использованием фосфатов при приготовлении питательных сред, т.к. это единственные неорганические соединения, обладающие буферным действием в физиологически важном диапазоне рН.Sodium phosphate disubstituted 12-aqueous (GOST 4172-76, analytical grade). Its use is justified by the widespread use of phosphates in the preparation of nutrient media, since these are the only inorganic compounds that have a buffering effect in the physiologically important pH range.
Натрий сернистокислый (ГОСТ 195-77, чда) стимулирует рост микроба чумы, способствуя поддержанию уровня рН среды в нужном диапазоне. Это свойство создает благоприятные условия в среде для роста и размножения подавляющего числа микроорганизмов, в том числе патогенных. Присутствующая в соединении сера необходима для формирования белка клеток микроорганизмов. Кроме того, добавление натрия сернистокислого повышает прозрачность среды.Sodium sulfite (GOST 195-77, analytical grade) stimulates the growth of the plague microbe, helping to maintain the pH level of the environment in the desired range. This property creates favorable conditions in the environment for the growth and reproduction of the overwhelming majority of microorganisms, including pathogenic ones. The sulfur present in the compound is necessary for the formation of the protein of the cells of microorganisms. In addition, the addition of sodium sulfite increases the transparency of the environment.
Аммоний молибденовокислый 4-водный (ГОСТ 3765-78, хч, чда) обеспечивает раскрытие пептидных связей белковых молекул и повышает накопительные свойства питательных сред.Ammonium molybdate tetrahydrate (GOST 3765-78, chemically pure, analytical grade) ensures the opening of peptide bonds of protein molecules and improves the accumulative properties of nutrient media.
Магний сернокислый (ГОСТ 4523-77, хч) способствует быстрому осаждению биомассы. Магний, как важный катион клетки, является неорганическим кофактором для многих ферментативных реакций, в том числе для реакций с участием АТФ; участвует в связывании ферментов с субстратами. Сера - входит в состав белков (в аминокислотах цистеине и метионине) и некоторых коферментов (КоА, кокарбоксилазы и др.).Magnesium sulfate (GOST 4523-77, chemically pure) promotes rapid sedimentation of biomass. Magnesium, as an important cation of the cell, is an inorganic cofactor for many enzymatic reactions, including reactions involving ATP; it is involved in the binding of enzymes to substrates. Sulfur is a part of proteins (in the amino acids cysteine and methionine) and some coenzymes (CoA, cocarboxylase, etc.).
Активированный уголь ОУ-А (ГОСТ 4453-74) представляет собой черный мелкий порошок без запаха и вкуса, не растворимый в воде и других растворителях, обладает адсорбционной способностью. Уголь добавляют в среду для сорбции микробных метаболитов, негативно влияющих на высокочувствительные патогенные микроорганизмы.Activated carbon OU-A (GOST 4453-74) is a black fine powder without smell or taste, insoluble in water and other solvents, has adsorption capacity. Carbon is added to the environment for the sorption of microbial metabolites that negatively affect highly sensitive pathogenic microorganisms.
Дистиллированная вода (ГОСТ Р 58144-2018) - важнейший компонент всех питательных сред. Вода составляет 80-90% от клеточной массы микроорганизмов и играет важную роль в осуществлении всех физиологических процессов.Distilled water (GOST R 58144-2018) is the most important component of all nutrient media. Water makes up 80-90% of the cellular mass of microorganisms and plays an important role in the implementation of all physiological processes.
Приготовление ферментативного гидролизата казеинаPreparation of enzymatic hydrolysate of casein
На 10-12,5 л воды питьевой используют 1 кг сухого казеина. Навеску сухого казеина замачивают в холодной воде (количество воды учитывается).For 10-12.5 liters of drinking water, use 1 kg of dry casein. The dry casein sample is soaked in cold water (the amount of water is taken into account).
Первые двое суток воду меняют ежедневно, на третьи сутки воду сливают, казеин хорошо отжимают через марлю.The first two days the water is changed daily, on the third day the water is drained, the casein is squeezed out well through cheesecloth.
В варочный котел наливают питьевую воду (за вычетом впитавшейся в казеин), доводят до кипения. Добавлением 20% раствора натрия гидроокиси устанавливают рН 8,0±0,1. В кипящую щелочную воду небольшими порциями при помешивании опускают размоченный казеин. Кипятят, помешивая и поддерживая рН 8,0±0,1 путем добавления небольших порций 20% раствора натрия гидроокиси. Когда масса станет однородной, без крупинок, при стойком рН в пределах 8,0±0,1, кипячение прекращают. Проверяют объем, если нужно, доливают горячей дистиллированной водой до первоначального объема, и снова корректируют рН.Drinking water (minus that absorbed by casein) is poured into the cooking kettle and brought to a boil. The pH is set to 8.0±0.1 by adding 20% sodium hydroxide solution. The soaked casein is lowered into the boiling alkaline water in small portions while stirring. Boil, stirring and maintaining the pH of 8.0±0.1 by adding small portions of 20% sodium hydroxide solution. When the mass becomes homogeneous, without grains, with a stable pH within 8.0±0.1, stop boiling. Check the volume, if necessary, add hot distilled water to the original volume, and adjust the pH again.
Смесь охлаждают до температуры (45±1)°С, заливают в реактор, добавляют поджелудочную железу (с активностью не менее 5000 единиц по Фульд-Гроссу) из расчета 100 г на 1 л взятой воды. Смесь хорошо перемешивают, добавляют хлороформ до 2% к объему, герметично закрывают реактор.The mixture is cooled to a temperature of (45±1)°C, poured into the reactor, pancreas is added (with an activity of at least 5000 units according to Fould-Gross) at a rate of 100 g per 1 liter of water taken. The mixture is mixed well, chloroform is added to 2% of the volume, the reactor is hermetically sealed.
Процесс гидролиза осуществляют при температуре (37±1)°С или (45±1)°С. В первый день смесь перемешивают через каждые 15-20 мин по 5 мин, а в дальнейшем - через каждые 1-2 ч (автоматическая мешалка) по 5 мин. Процесс продолжается 7-9 сут при ежедневном контроле аминного азота, с прекращением нарастания которого гидролиз останавливают.Дают отстояться в прохладном месте 1-2 сут до полного выпадения осадка. Надосадочную жидкость сливают, осадок фильтруют через фильтровальное полотно при помощи пресс-фильтра. Гидролизат разливают по бутылям с добавлением 1% хлороформа от объема, закрывают стерильными резиновыми пробками и хранят при температуре (4±2)°С.The hydrolysis process is carried out at a temperature of (37±1)°C or (45±1)°C. On the first day, the mixture is stirred every 15-20 minutes for 5 minutes, and then every 1-2 hours (automatic stirrer) for 5 minutes. The process continues for 7-9 days with daily monitoring of amine nitrogen, when the increase ceases, the hydrolysis is stopped. Allow to settle in a cool place for 1-2 days until the sediment completely falls out. The supernatant liquid is drained, the sediment is filtered through a filter cloth using a press filter. The hydrolysate is poured into bottles with the addition of 1% chloroform by volume, closed with sterile rubber stoppers and stored at a temperature of (4±2)°C.
Приготовление ферментативного гидролизата сои (бобов)Preparation of enzymatic hydrolysate of soybeans (beans)
0,5 кг бобов сои вымачивают в 5 литрах горячей воды в течение суток, пятикратно меняя воду. Последний настой с бобами кипятят в течение 5 мин. После охлаждения настой переливают в десятилитровый баллон, бобы измельчают на мясорубке и помещают в настой. Добавлением 20% раствора натрия гидроокиси устанавливают рН 8,2±0,1. Добавляют поджелудочную железу (с активностью не менее 5000 единиц по Фульд-Гроссу) из расчета 200 г на 1 л и хлороформ до 2%.0.5 kg of soybeans are soaked in 5 liters of hot water for 24 hours, changing the water five times. The last infusion with beans is boiled for 5 minutes. After cooling, the infusion is poured into a ten-liter bottle, the beans are ground in a meat grinder and placed in the infusion. By adding a 20% sodium hydroxide solution, the pH is set to 8.2 ± 0.1. The pancreas is added (with an activity of at least 5000 units according to Fould-Gross) at the rate of 200 g per 1 liter and chloroform up to 2%.
Гидролиз ведут в термокамере при температуре (37±1)°С в течение 3 сут. Первые 2 ч смесь перемешивают по 5 мин через каждые 15 мин, в последующем - по 5 мин через каждые 6 ч. Ежедневно измеряют уровень аминного азота, по окончании процесса он должен достигнуть 0,6±005%.Hydrolysis is carried out in a thermal chamber at a temperature of (37±1)°C for 3 days. During the first 2 hours, the mixture is stirred for 5 minutes every 15 minutes, then for 5 minutes every 6 hours. The level of amine nitrogen is measured daily; at the end of the process, it should reach 0.6±005%.
После прекращения перемешивания гидролизат отстаивают в прохладном месте 1-2 сут до полного выпадения осадка. Надосадочную жидкость сливают, осадок фильтруют через фильтровальное полотно при помощи пресс-фильтра. Гидролизат разливают по бутылям с добавлением хлороформа (1% от объема), закрывают стерильными резиновыми пробками и хранят при температуре (4±2)°С.After stopping stirring, the hydrolyzate is left to settle in a cool place for 1-2 days until the sediment has completely settled. The supernatant is drained, the sediment is filtered through a filter cloth using a press filter. The hydrolyzate is poured into bottles with the addition of chloroform (1% of the volume), closed with sterile rubber stoppers and stored at a temperature of (4±2)°C.
Приготовление накопительной питательной среды жидкой для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Y. pestis EVPreparation of liquid nutrient medium for culturing the vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV
Ферментативный гидролизат казеина и ферментативный гидролизат сои (бобов) разбавляют дистиллированной водой до содержания аминного азота 120 мг%. Смешивают 89,0 мл ферментативного гидролизата казеина, 89,0 мл ферментативного гидролизата сои (бобов), 10,0 г пептона сухого ферментативного, 0,2 г магния сернокислого, 3,0 г натрия хлористого, 4,0 г натрия фосфорнокислого двузамещенного 12-водного, 20,0 г активированного угля, добавляют дистиллированную воду до 1 л. Устанавливают рН 8,3±0,1 с помощью 20% раствора натрия гидроокиси. Среду кипятят в течение 3-5 мин, затем фильтруют через тканевый фильтр Бельтинга и фильтровальную бумагу.Enzymatic hydrolysate of casein and enzymatic hydrolysate of soybeans are diluted with distilled water to an amine nitrogen content of 120 mg%. Mix 89.0 ml of enzymatic hydrolysate of casein, 89.0 ml of enzymatic hydrolysate of soybeans, 10.0 g of dry enzymatic peptone, 0.2 g of magnesium sulfate, 3.0 g of sodium chloride, 4.0 g of dibasic sodium phosphate 12-aqueous, 20.0 g of activated carbon, add distilled water to 1 l. Adjust the pH to 8.3±0.1 using a 20% sodium hydroxide solution. Boil the medium for 3-5 min, then filter through a Belting fabric filter and filter paper.
В фильтрат вносят ростостимулирующие добавки: натрий сернистокислый 0,3 г и аммоний молибденовокислый 4-водный 0,5 г, интенсивно размешивают. Доливают кипяченую дистиллированную воду до первоначального объема, устанавливают рН 7,2±0,1 с помощью раствора соляной кислоты в разведении 1:1. Стерилизуют в течение 20 мин при температуре (115±1)°С.Growth-stimulating additives are added to the filtrate: 0.3 g sodium sulfite and 0.5 g ammonium molybdate tetrahydrate, and stirred vigorously. Boiled distilled water is added to the initial volume, the pH is adjusted to 7.2±0.1 using a 1:1 dilution of hydrochloric acid. Sterilize for 20 minutes at a temperature of (115±1)°C.
Контроль качества питательной средыQuality control of the nutrient medium
Физико-химические показатели - определение проводят по МУК 4.2.2316-08 «Методы контроля бактериологических питательных сред».Physicochemical indicators - determination is carried out according to MUK 4.2.2316-08 “Methods for control of bacteriological nutrient media”.
Внешний вид. Прозрачный бульон от светло-желтого до светло-коричневого цвета. Оценку внешнего вида питательной среды проводят визуально.Appearance. Transparent broth from light yellow to light brown. The appearance of the nutrient medium is assessed visually.
рН. От 7,1 до 7,3. Определение проводят потенциометрическим методом.pH. From 7.1 to 7.3. Determination is carried out by potentiometric method.
Сухой остаток. От 2,6% до 3,4%.Dry residue. From 2.6% to 3.4%.
Аминный азот. От 0,09 до 0,15%.Amine nitrogen. From 0.09 to 0.15%.
Хлориды. В пересчете на натрия хлорид от 0,5% до 0,7%.Chlorides. In terms of sodium chloride from 0.5% to 0.7%.
Стерильность. Определение проводят высевом бульона на чашки Петри с агаром Хоттингера рН 7,4±0,1 и инкубации посевов при температуре (37±1)°С в течение (48±2) ч. На чашках не должно наблюдаться роста.Sterility. The determination is carried out by seeding the broth on Petri dishes with Hottinger agar pH 7.4±0.1 and incubating the cultures at a temperature of (37±1)°C for (48±2) hours. No growth should be observed on the dishes.
Биологические показатели. Ампулу с производственной культурой штамма Y. pestis EV вскрывают с соблюдением правил асептики, восстанавливают 1,8 мл 0,9% раствора натрия хлорида. Полученной суспензией засевают ряд пробирок со скошенным агаром Хоттингера, рН7,1±0,1 (культура I генерации). Посевы инкубируют при (27±1)°С в течение 48 ч. Культуру I генерации пересевают в матрацы с бульоном Хоттингера рН 7,1±0,1 (культура II генерации). Посевы инкубируют при (27±1)°С. Через 48 ч культурой II генерации засевают бутыли с бульоном Хоттингера рН 7,1±0,1. Выращивают 24 ч при температуре (27±1)°С и непрерывной аэрации в объеме 1,0-1,5 л воздуха на 1 л бульона. Полученную посевную культуру используют для определения эффективности питательной среды.Biological parameters. The ampoule with the production culture of the Y. pestis EV strain is opened in compliance with aseptic rules and reconstituted with 1.8 ml of 0.9% sodium chloride solution. The resulting suspension is used to inoculate a series of test tubes with Hottinger slant agar, pH 7.1 ± 0.1 (generation 1 culture). The cultures are incubated at (27 ± 1) ° C for 48 hours. The generation 1 culture is subcultured into mattresses with Hottinger broth, pH 7.1 ± 0.1 (generation 2 culture). The cultures are incubated at (27 ± 1) ° C. After 48 hours, the generation 2 culture is used to inoculate bottles with Hottinger broth, pH 7.1 ± 0.1. The culture is grown for 24 hours at a temperature of (27 ± 1) ° C and continuous aeration in a volume of 1.0-1.5 l of air per 1 l of broth. The resulting seed culture is used to determine the effectiveness of the nutrient medium.
Методика определения эффективности питательной среды жидкойMethodology for determining the efficiency of liquid nutrient medium
Определяют прирост микроорганизмов относительно засеянного (показатель эффективности) по МУК 4.2.2316-08.The increase in microorganisms relative to the seeded ones (efficiency indicator) is determined according to MUK 4.2.2316-08.
Посевную культуру доводят титрованием до разведений 10-4, 10-5 и 10-6. По 1,0 мл из каждого разведения вносят в пробирку с 9,0 мл испытуемой питательной среды, тщательно перемешивают и высевают по 0,1 мл на три чашки Петри с агаром Хоттингера рН 7,1±0,1 («нулевой посев»). Посевы инкубируют при (27±1)°С в течение 48 ч.The seed culture is titrated to dilutions of 10 -4 , 10 -5 and 10 -6 . 1.0 ml of each dilution is added to a test tube with 9.0 ml of the test nutrient medium, mixed thoroughly and 0.1 ml is seeded onto three Petri dishes with Hottinger agar pH 7.1 ± 0.1 (“zero seeding”). The crops are incubated at (27 ± 1) ° C for 48 hours.
Засеянные пробирки с питательной средой инкубируют при (27±1)°С в течение 24 ч. Затем из каждого разведения после перемешивания проводят высев по 0,1 мл на три чашки Петри с агаром Хоттингера рН 7,1±0,1, инкубируют при (27±1)°С в течение 48 ч.The seeded test tubes with the nutrient medium are incubated at (27±1)°C for 24 hours. Then, after mixing, 0.1 ml of each dilution is seeded onto three Petri dishes with Hottinger agar, pH 7.1±0.1, and incubated at (27±1)°C for 48 hours.
Прирост числа микроорганизмов в накопительной среде в процессе инкубации определяют по формуле (%):The increase in the number of microorganisms in the cumulative medium during the incubation process is determined by the formula (%):
где Where
Э - показатель эффективности (прирост);E - efficiency indicator (growth);
nt - среднее число колоний на чашках после инкубации культуры в жидкой накопительной среде;n t - average number of colonies on plates after incubation of the culture in a liquid accumulation medium;
К - степень разведения;K - degree of dilution;
n0 - среднее число колоний при «нулевом посеве».n 0 - average number of colonies with “zero seeding”.
После 48 ч инкубации производят подсчет сформировавшихся колоний на чашках Петри, засеянных из исходных взвесей культуры («нулевой» посев) и после обогащения в жидкой питательной среде в течение 24 ч.After 48 hours of incubation, the formed colonies are counted on Petri dishes seeded from the initial culture suspensions (“zero” seeding) and after enrichment in a liquid nutrient medium for 24 hours.
За показатель эффективности среды принимают значение, равное среднему арифметическому количеству определенных показателей из трех разведений.The indicator of the effectiveness of the environment is taken as a value equal to the arithmetic mean of the number of certain indicators from three dilutions.
Пример 1. Вакцинный штамм чумного микроба Y. pestis EV выращивали в накопительной питательной среде жидкой, содержащей: ферментативных гидролизатов казеина и сои (бобов) - по 69 мл; пептона сухого ферментативного - 8,0 г; магния сернокислого - 0,1 г; натрия хлористого - 1,0 г; натрия фосфорнокислого двузамещенного 12-водного - 2,0 г; активированного угля - 18,0 г; натрия сернистокислого - 0,1 г; аммония молибденовокислого 4-водного - 0,3 г; дистиллированной воды - до 1 литра. Эффективность питательной среды жидкой определяли по приросту микроорганизмов относительно засеянного количества (показатель эффективности) по МУК 4.2.2316-08.Example 1. The vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV was grown in a liquid nutrient medium containing: enzymatic hydrolysates of casein and soybeans - 69 ml each; dry enzymatic peptone - 8.0 g; magnesium sulfate - 0.1 g; sodium chloride - 1.0 g; sodium phosphate dibasic 12-hydrate - 2.0 g; activated carbon - 18.0 g; sodium sulfite - 0.1 g; ammonium molybdate tetrahydrate - 0.3 g; distilled water - up to 1 liter. The effectiveness of the liquid nutrient medium was determined by the increase in microorganisms relative to the inoculated amount (effectiveness indicator) according to MUK 4.2.2316-08.
При таком соотношении ингредиентов прирост числа микробных клеток Y. pestis EV в накопительной среде в процессе инкубации посевов в течение 24 ч составил 60%.With this ratio of ingredients, the increase in the number of Y. pestis EV microbial cells in the cumulative medium during incubation of the crops for 24 hours was 60%.
Пример 2. Вакцинный штамм чумного микроба Y. pestis EV выращивали в накопительной питательной среде жидкой, содержащей ферментативных гидролизатов казеина и сои бобов по - 89 мл; пептон сухой ферментативный - 10,0 г; магний сернокислый - 0,2 г; натрий хлористый - 3,0 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный 12-водный - 4,0 г; активированный уголь - 20,0 г; натрий сернистокислый - 0,3 г; аммоний молибденовокислый 4-водный - 0,5 г; дистиллированную воду - до 1 литра. Эффективность питательной среды жидкой определяли по приросту микроорганизмов относительно засеянного (показатель эффективности) по МУК 4.2.2316-08.Example 2. The vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV was grown in a liquid nutrient medium containing 89 ml of enzymatic hydrolysates of casein and soybeans; 10.0 g of dry enzymatic peptone; 0.2 g of magnesium sulfate; 3.0 g of sodium chloride; 4.0 g of dibasic sodium phosphate 12-hydrate; 20.0 g of activated carbon; 0.3 g of sodium sulfite; 0.5 g of ammonium molybdate 4-hydrate; and up to 1 liter of distilled water. The efficiency of the liquid nutrient medium was determined by the growth of microorganisms relative to those inoculated (efficiency indicator) according to MUK 4.2.2316-08.
При таком соотношении ингредиентов прирост числа микробных клеток Y. pestis EV в накопительной среде в процессе инкубации посевов в течение 24 ч составил 104%.With this ratio of ingredients, the increase in the number of Y. pestis EV microbial cells in the cumulative medium during incubation of the crops for 24 hours was 104%.
Пример 3. Вакцинный штамм чумного микроба Y. pestis EV выращивали в накопительной питательной среде жидкой, содержащей ферментативных гидролизатов казеина и сои бобов по - 109 мл; пептон сухой ферментативный - 12,0 г; магний сернокислый - 0,3 г; натрий фосфорнокислый двузамещенный 12-водный - 6,0 г; активированный уголь - 22,0 г; натрий сернистокислый - 0,3 г; аммоний молибденовокислый 4-водный - 0,5 г; дистиллированную воду - до 1 литра. Эффективность питательной среды жидкой определяли по приросту микроорганизмов относительно засеянного (показатель эффективности) по МУК 4.2.2316-08.Example 3. The vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV was grown in a liquid nutrient medium containing 109 ml of enzymatic hydrolysates of casein and soybeans; 12.0 g of dry enzymatic peptone; 0.3 g of magnesium sulfate; 6.0 g of dibasic sodium phosphate dodecahydrate; 22.0 g of activated carbon; 0.3 g of sodium sulfite; 0.5 g of ammonium molybdate tetrahydrate; and up to 1 liter of distilled water. The efficiency of the liquid nutrient medium was determined by the growth of microorganisms relative to those inoculated (efficiency indicator) according to MUK 4.2.2316-08.
При таком соотношении ингредиентов прирост числа микробных клеток Y. pestis EV в накопительной среде в процессе инкубации посевов в течение 24 ч составил 75%.With this ratio of ingredients, the increase in the number of Y. pestis EV microbial cells in the cumulative medium during incubation of the crops for 24 hours was 75%.
Таким образом, заявленная накопительная питательная среда жидкая для культивирования вакцинного штамма чумного микроба Y. pestis EV (пример 2) обеспечивает получение биомассы с высокой концентрацией микробных клеток через 24 ч инкубации.Thus, the claimed liquid cumulative nutrient medium for cultivating the vaccine strain of the plague microbe Y. pestis EV (example 2) ensures the production of biomass with a high concentration of microbial cells after 24 hours of incubation.
Claims (1)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2844477C1 true RU2844477C1 (en) | 2025-07-31 |
Family
ID=
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2086143C1 (en) * | 1991-11-08 | 1997-08-10 | Ново Нордиск А/С | Casein hydrolyzate and method of its producing |
| RU2260620C1 (en) * | 2004-02-16 | 2005-09-20 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Liquid nutrient medium for culturing plague microorganism of vaccine strain eb |
| RU2295249C2 (en) * | 2005-05-13 | 2007-03-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for production of soybean hydrolyzate |
| RU2433170C1 (en) * | 2010-06-21 | 2011-11-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb |
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2086143C1 (en) * | 1991-11-08 | 1997-08-10 | Ново Нордиск А/С | Casein hydrolyzate and method of its producing |
| RU2260620C1 (en) * | 2004-02-16 | 2005-09-20 | Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт | Liquid nutrient medium for culturing plague microorganism of vaccine strain eb |
| RU2295249C2 (en) * | 2005-05-13 | 2007-03-20 | Федеральное государственное унитарное предприятие "Научно-производственное объединение по медицинским иммунобиологическим препаратам "Микроген" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for production of soybean hydrolyzate |
| RU2433170C1 (en) * | 2010-06-21 | 2011-11-10 | Федеральное государственное учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| ROCHENMACHER M., et al, The nutrition and physiology of P.pestis.l. A chemically defined culture medium for P. pestis, J.Bacteriol. - 1952. - v.63. - p.788-794. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| JP2008054688A (en) | Osmotically controlled fermentation process for preparation of acarbose | |
| RU2844477C1 (en) | Method for producing an accumulation liquid culture medium for culturing a vaccine strain of yersinia pestis ev plague microbe | |
| RU2245362C2 (en) | Nutrient medium for culturing plague microorganism vaccine strain | |
| RU2412240C1 (en) | Culture medium for growing legionella | |
| KR20020033764A (en) | Microorganisms and methods for producing threonine | |
| RU2260620C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing plague microorganism of vaccine strain eb | |
| RU2301256C1 (en) | Liquid nutrient medium for culturing cholera vibrio | |
| CN110241170A (en) | A kind of pure chemistry synthetic proteins peptone water reference culture medium and its preparation method and application | |
| JP3957132B2 (en) | Separation medium for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria, separation method for low turbidity soy sauce lactic acid bacteria using the same medium, and method for producing highly clear soy sauce using the same lactic acid bacteria | |
| CN111647583B (en) | Preparation method of neutral protease | |
| RU2757428C1 (en) | Liquid nutrient medium for deep cultivation of vaccine strain of plague microbe y. pestis ev | |
| RU2380409C1 (en) | Nutrient medium for pestilential microbe cultivation | |
| RU2745504C1 (en) | Liquid nutritional medium for cultivation and discharge of biomass of vaccine strain of plague microbe (yersinia pestis ev) | |
| RU2460774C1 (en) | Nutrient medium for legionella cultivation | |
| RU2270856C2 (en) | Nutrient medium for submerged culturing plague microorganism of vaccine antibiotic-resistant strain eb p2 | |
| RU2083664C1 (en) | Nutrient medium for plague microbe culturing | |
| RU2748492C1 (en) | Dense nutrient medium for monitoring the number of live microbial cells of the vaccine strain of the plague microbe y.pestis ev | |
| SU671738A3 (en) | Method of obtaining biomass of microorganisms | |
| RU2207019C1 (en) | Biologically active food additive and a method of preparation thereof | |
| RU2040539C1 (en) | Culture medium for cultivating bifidum bacteria and lactic bacilles | |
| RU1549227C (en) | Method for producing a complex of lytic enzymes | |
| RU2708029C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of yersinia pestis ev | |
| CN116042753B (en) | A method for preparing corn pulp bacterial protein composite hydrolyzate and a method for preparing L-isoleucine | |
| RU2303630C1 (en) | Dense nutrient medium for cholera vibrio cultivation | |
| KR100442036B1 (en) | Method for Culturing Artificially Mutated L-Lysine-Producing Microorganism and process for Producing L-Lysine |