RU2841400C1 - Method of producing liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira - Google Patents
Method of producing liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira Download PDFInfo
- Publication number
- RU2841400C1 RU2841400C1 RU2024120774A RU2024120774A RU2841400C1 RU 2841400 C1 RU2841400 C1 RU 2841400C1 RU 2024120774 A RU2024120774 A RU 2024120774A RU 2024120774 A RU2024120774 A RU 2024120774A RU 2841400 C1 RU2841400 C1 RU 2841400C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- medium
- leptospira
- bacteriological
- liquid
- culturing
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии, а именно, к получению питательных сред жидких для культивирования лептоспир.The invention relates to microbiology and biotechnology, namely, to the production of liquid nutrient media for cultivating leptospires.
При бактериологическом исследовании на лептоспироз и для накопления бактериальной массы лептоспир используют твин-альбуминовую среду. Среду готовят поэтапно. Основные растворы получают, растворяя следующие ингредиенты (в 100,0 мл дистиллированной воды каждый): NH4Cl-25,0 г, ZnSO4⋅7H2O-0,4 г, MgCl2⋅6H2O и СаС12⋅2H2O - по 1,5 г каждый, FeSO4⋅7H2O-0,5 г, пируват натрия - 10,0 г, глицерин - 10,0 г, Твин-80 - 10,0 г, тиамин - 0,5 г и цианкобаламин - 0,02 г. Раствор FeSO4 должен быть свежеприготовленным и прозрачным. Приготовление альбуминовой добавки: 10,0 г бычьего сывороточного альбумина (V фракция) растворяют в 50,0 мл дистиллированной воды, размешивают на магнитной мешалке, добавляя следующие растворы: СаС12 или MgCl2-1,0 мл; FeSO4-10,0 мл; цианкобаламин - 1,0 мл; Твин-80 - 12,5 мл. рН доводят до 7,4 и добавляют дистиллированную воду до конечного объема 100,0 мл. Альбуминовую добавку стерилизуют фильтрацией. Готовят основу среды: к 996 мл дистиллированной воды добавляют: Na2HPO4 (обезвоженный) - 1 г; K2HPO4 (обезвоженный) - 0,3 г и NaCl-1,0 г. Затем добавляют следующие растворы: NH4Cl - 1,0 мл; тиамин - 1,0 мл; пируват натрия - 1,0 мл и глицерин - 1,0 мл. рН основы среды доводят до 7,4, а затем стерилизуют автоклавированием при 120°С в течение 20 мин. Приготовление жидкой твин-альбуминовой среды: 1 объем альбуминовой добавки смешивают с 9 объемами основы среды при соблюдении асептики.Tween-albumin medium is used for bacteriological examination for leptospirosis and for accumulation of leptospira bacterial mass. The medium is prepared in stages. Basic solutions are obtained by dissolving the following ingredients (each in 100.0 ml of distilled water): NH 4 Cl - 25.0 g, ZnSO 4 ⋅7H 2 O - 0.4 g, MgCl 2 ⋅6H 2 O and СаС1 2 ⋅2H 2 O - 1.5 g each, FeSO 4 ⋅7H 2 O - 0.5 g, sodium pyruvate - 10.0 g, glycerol - 10.0 g, Tween-80 - 10.0 g, thiamine - 0.5 g and cyanocobalamin - 0.02 g. The FeSO 4 solution should be freshly prepared and transparent. Preparation of albumin supplement: Dissolve 10.0 g of bovine serum albumin (fraction V) in 50.0 ml of distilled water, stir with a magnetic stirrer, and add the following solutions: CaCl 2 or MgCl 2 -1.0 ml; FeSO 4 -10.0 ml; cyanocobalamin - 1.0 ml; Tween-80 - 12.5 ml. Adjust pH to 7.4 and add distilled water to a final volume of 100.0 ml. Sterilize the albumin supplement by filtration. Prepare the base medium: Add 1 g of Na 2 HPO 4 (dehydrated) to 996 ml of distilled water; 0.3 g of K 2 HPO 4 (dehydrated) and 1.0 g of NaCl. Then add the following solutions: 1.0 ml of NH 4 Cl; thiamine - 1.0 ml; sodium pyruvate - 1.0 ml and glycerol - 1.0 ml. The pH of the medium base is adjusted to 7.4 and then sterilized by autoclaving at 120°C for 20 min. Preparation of liquid twin-albumin medium: 1 volume of albumin supplement is mixed with 9 volumes of the medium base while maintaining asepsis.
Недостатки данной среды - многокомпонентность, длительность и сложность изготовления.The disadvantages of this environment are its multi-component nature, duration and complexity of production.
Наиболее близкой к предполагаемому изобретению является питательная среда Ферворта-Вольфа в модификации С.И. Тарасова. Состав среды: дистиллированной воды - 900 мл, натрия хлористого -0,5 г, пептона (Дифко или Витте) - 1 г, маточного раствора фосфатного буфера с рН 7,2 - 100 мл. Смесь в колбе автоклавируют при 120°С 30 мин. На следующий день ее дважды фильтруют через двухслойный бумажный фильтр, разливают в пробирки по 5 мл и снова автоклавируют при 120°С 30 мин. В пробирки с прозрачной средой добавляют по 0,5 мл инактивированной (при 56°С в течение 30 мин на водяной бане) кроличьей сыворотки. Среду дважды прогревают на водяной бане при температуре 56-58°С по 30 мин. Для проверки на стерильность пробирки со средой выдерживают в термостате при температуре 37°С в течение 3-5 сут.The closest to the proposed invention is the Ferworth-Wolf nutrient medium modified by S.I. Tarasov. Composition of the medium: distilled water - 900 ml, sodium chloride - 0.5 g, peptone (Difco or Witte) - 1 g, stock solution of phosphate buffer with pH 7.2 - 100 ml. The mixture in the flask is autoclaved at 120 ° C for 30 minutes. The next day, it is filtered twice through a two-layer paper filter, poured into test tubes of 5 ml and autoclaved again at 120 ° C for 30 minutes. To the test tubes with a transparent medium, 0.5 ml of inactivated (at 56 ° C for 30 minutes in a water bath) rabbit serum are added. The medium is heated twice in a water bath at a temperature of 56-58 ° C for 30 minutes. To check for sterility, test tubes with the medium are kept in a thermostat at a temperature of 37°C for 3-5 days.
К недостаткам данной среды относятся длительность, многоэтапность изготовления, а также быстрая истощаемость, которая приводит к ослаблению и гибели диагностических штаммов, требующих длительного сохранения.The disadvantages of this medium include the lengthy, multi-stage production process, as well as rapid depletion, which leads to the weakening and death of diagnostic strains that require long-term preservation.
Целью изобретения является разработка питательной среды жидкой обогащенной для культивирования лептоспир с высокими ростовыми свойствами в отношении возбудителей лептоспирозов и простой методикой изготовления.The aim of the invention is to develop a liquid enriched nutrient medium for cultivating leptospira with high growth properties in relation to leptospirosis pathogens and a simple manufacturing method.
Сущность предполагаемого изобретения состоит в том, что обогащение состава питательной среды полисорбатом Твин-80 и тиамином оказывает благоприятное сочетанное влияние на скорость роста, количество и стабильность формируемых на ней клеток лептоспир, при этом замена кроличьей сыворотки, инактивированной при температуре 56°С в течение 30 мин на водяной бане, на готовый коммерческий препарат - сыворотку лошадиную нормальную для бактериологических питательных сред жидкую позволяет упростить и сократить процесс изготовления среды благодаря исключению этапа ее двукратного прогревания на водяной бане после добавления сыворотки. Кроме того, нет необходимости повторного автоклавирования при 120°С в течение 30 мин после розлива среды в пробирки, что также упрощает методику изготовления предлагаемой среды.The essence of the proposed invention is that enrichment of the nutrient medium composition with polysorbate Tween-80 and thiamine has a favorable combined effect on the growth rate, quantity and stability of leptospira cells formed on it, while replacing rabbit serum inactivated at a temperature of 56°C for 30 minutes in a water bath with a ready-made commercial preparation - normal horse serum for bacteriological nutrient media liquid allows to simplify and shorten the process of preparing the medium by eliminating the stage of its double heating in a water bath after adding the serum. In addition, there is no need for repeated autoclaving at 120°C for 30 minutes after pouring the medium into test tubes, which also simplifies the method of preparing the proposed medium.
Технический результат достигается тем, что в состав питательной среды жидкой включены: сыворотка лошадиная нормальная для бактериологических питательных сред жидкая - в качестве основного источника азота; пептон ферментативный сухой и тиамин - в качестве дополнительных питательных факторов; полисорбат Твин-80 - как источник жирных кислот, для интенсификации роста лептоспир; рабочий раствор, содержащий фосфаты натрия и калия - для обеспечения буферности среды; натрий хлористый - для поддержания уровня осмотического давления в среде, дистиллированная вода - в качестве растворителя, при следующем соотношении ингредиентов, на 1 л:The technical result is achieved by the fact that the liquid nutrient medium includes: normal horse serum for liquid bacteriological nutrient media - as the main source of nitrogen; dry enzymatic peptone and thiamine - as additional nutrient factors; polysorbate Tween-80 - as a source of fatty acids, to intensify the growth of leptospira; a working solution containing sodium and potassium phosphates - to ensure buffering of the medium; sodium chloride - to maintain the osmotic pressure level in the medium, distilled water - as a solvent, with the following ratio of ingredients, per 1 l:
Получение рабочего раствора фосфатно-буферной смеси. Готовят два исходных 1/15-М маточных раствора: в 1 л дистиллированной воды растворяют 11,867 г двузамещенного фосфорнокислого натрия; в 1 л дистиллированной воды растворяют 9,067 г однозамещенного фосфорнокислого калия. Растворы хранят при 2-4°С до 1 мес. Для получения рабочего буферного раствора (рН 7,2) смешивают 72 мл 1/15-молярного раствора двузамещенного фосфорнокислого натрия (щелочной раствор) и 28 мл 1/15-М раствора однозамещенного фосфорнокислого калия (кислый раствор). К полученным 100 мл фосфатного буфера добавляют 900 мл дистиллированной воды. При отклонении рН в кислую или щелочную сторону, соответственно, добавляют раствор двузамещенного фосфорнокислого натрия или однозамещенного фосфорнокислого калия. Основу дважды фильтруют через двуслойный бумажный фильтр, разливают во флаконы и стерилизуют в автоклаве при 120°С в течение 20 мин. После автоклавирования флаконы с помутневшим или давшим осадок раствором выбраковываются. Срок хранения рабочего раствора 1 мес при температуре 2-4°С[1].Obtaining a working solution of phosphate buffer mixture. Prepare two initial 1/15-M stock solutions: dissolve 11.867 g of sodium dibasic phosphate in 1 L of distilled water; dissolve 9.067 g of potassium monobasic phosphate in 1 L of distilled water. Store the solutions at 2-4°C for up to 1 month. To obtain a working buffer solution (pH 7.2), mix 72 ml of a 1/15-molar solution of sodium dibasic phosphate (alkaline solution) and 28 ml of a 1/15-M solution of potassium monobasic phosphate (acidic solution). Add 900 ml of distilled water to the resulting 100 ml of phosphate buffer. If the pH deviates towards the acidic or alkaline side, add a solution of sodium dibasic phosphate or potassium monobasic phosphate, respectively. The base is filtered twice through a two-layer paper filter, poured into vials and sterilized in an autoclave at 120°C for 20 minutes. After autoclaving, vials with a cloudy or sedimented solution are discarded. The shelf life of the working solution is 1 month at a temperature of 2-4°C [1].
Твин-80 - оксиэтилированный сложный моноэфир ангидрогексавитов жирных кислот, химическая формула - С64Н26О124. Представляет собой прозрачную, маслянистую, слегка вязкую жидкость от желтого, ярко-янтарного, до коричневого цвета с легким характерным запахом, растворимую в воде и маслах растительного и животного происхождения. Добавление небольших количеств Твин-80 к эфирным и жирным маслам придает им способность легко растворяться в воде, при сохранении всех полезных свойств масел в смеси. Также хорошо растворяется в изопропиловом и этиловом спирте, бензоле. В минеральных маслах не растворяется. Получают химическим способом из сорбита и жирных кислот оливкового масла. Применяется для бактериологических исследований, используется в качестве компонента обогащения питательных сред, для поддержания жизнеспособности микроорганизмов, а также для нейтрализации дезинфектантов в санитарных образцах [2].Tween-80 is an oxyethylated monoester of fatty acid anhydrohexavites with the chemical formula C 64 H 26 O 124 . It is a transparent, oily, slightly viscous liquid from yellow, bright amber, to brown in color with a slight characteristic odor, soluble in water and vegetable and animal oils. Adding small amounts of Tween-80 to essential and fatty oils gives them the ability to easily dissolve in water, while preserving all the beneficial properties of the oils in the mixture. It also dissolves well in isopropyl and ethyl alcohol, benzene. It does not dissolve in mineral oils. It is obtained chemically from sorbitol and olive oil fatty acids. It is used for bacteriological research, used as a component for enriching nutrient media, to maintain the viability of microorganisms, and to neutralize disinfectants in sanitary samples [2].
Пептон ферментативный сухой для бактериологических целей (ГОСТ 13805-76), или панкреатический перевар, получают за счет ферментов поджелудочной железы. Пептон выпускают, главным образом, в сухом состоянии, в виде желто-бежевого порошка. Пептон характеризуется высокой питательной ценностью для микроорганизмов [3].Dry enzymatic peptone for bacteriological purposes (GOST 13805-76), or pancreatic digest, is obtained from pancreatic enzymes. Peptone is produced mainly in a dry state, in the form of a yellow-beige powder. Peptone is characterized by high nutritional value for microorganisms [3].
Тиамин (витамин B1) является фактором роста, в котором возбудители лептоспироза испытывают потребность [1]. Многие бактерии лишены способности синтезировать все необходимые для роста органические соединения, и зависят от наличия в среде определенных факторов роста. Потребность в витаминах является общим свойством всех микроорганизмов.Thiamine (vitamin B 1 ) is a growth factor that is required by the causative agents of leptospirosis [1]. Many bacteria lack the ability to synthesize all the organic compounds necessary for growth and depend on the presence of certain growth factors in the environment. The need for vitamins is a common property of all microorganisms.
Натрий хлористый необходим для поддержания изотоничности среды. Растворенные в питательной среде и находящиеся в состоянии электролитического распада, ионизируемые минеральные соединения являются одновременно катализаторами различных химических процессов, происходящих в микробной клетке. Ионы натрия (Na+) участвуют в транспорте веществ через клеточные мембраны и в регуляции синтеза белка [4].Sodium chloride is necessary to maintain the isotonicity of the medium. Dissolved in the nutrient medium and in a state of electrolytic decomposition, ionizable mineral compounds are simultaneously catalysts for various chemical processes occurring in the microbial cell. Sodium ions (Na + ) participate in the transport of substances through cell membranes and in the regulation of protein synthesis [4].
Сыворотка лошадиная нормальная для бактериологических питательных сред жидкая - коммерческий препарат, является основным источником азота в питательной среде жидкой, обеспечивает формирование полноценных, активно подвижных микробных клеток лептоспир.Horse serum normal for bacteriological nutrient media liquid - a commercial preparation, is the main source of nitrogen in the liquid nutrient medium, ensures the formation of full-fledged, actively mobile microbial cells of leptospira.
Подготовка посудыPreparing the dishes
Предназначенную для культивирования лептоспир посуду необходимо подвергать специальной обработке, дезинфицировать и мыть отдельно от другой. В настоящей работе пользовались пробирками, обработанными по специальной методике [1], включающей следующие этапы:The dishes intended for culturing leptospires must be subjected to special treatment, disinfected and washed separately from other dishes. In this work, we used test tubes treated according to a special method [1], which included the following steps:
- погружение на 24 ч в 1-2% раствор соляной кислоты в стеклянной или в эмалированной посуде;- immersion for 24 hours in a 1-2% solution of hydrochloric acid in a glass or enamel container;
- промывание проточной водопроводной водой (12 - 15 раз);- rinsing with running tap water (12 - 15 times);
- обработку ершами в горячем мыльном растворе (1 кусок хозяйственного мыла на 10 л воды);- treatment with brushes in a hot soapy solution (1 bar of laundry soap per 10 liters of water);
- тщательное промывание проточной водопроводной водой (12-15 раз);- thorough rinsing with running tap water (12-15 times);
- погружение в дистиллированную воду на 24 ч;- immersion in distilled water for 24 hours;
- сушку и стерилизацию вместе с ватными пробками.- drying and sterilization together with cotton plugs.
Новые резиновые шланги и пробки промывали проточной водопроводной водой, кипятили в течение 30-40 мин в 2% растворе пищевой соды, промывали водопроводной водой и снова кипятили в дистиллированной воде 30-45 мин, после чего просушивали. New rubber hoses and plugs were washed with running tap water, boiled for 30-40 minutes in a 2% solution of baking soda, washed with tap water and boiled again in distilled water for 30-45 minutes, after which they were dried.
Изготовление питательной среды Preparation of nutrient medium
Для изготовления питательной среды жидкой обогащенной для культивирования лептоспир на весах взвешивали натрий хлористый - 0,5 г; пептон ферментативный сухой - 1,0 г; тиамин - 0,005 г. Навески ссыпали в эмалированную емкость, добавляли 12,5 мл Твин-80 и до 1,0 л доливали готовый рабочий раствор фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде. Кипятили 1-2 мин до полного растворения всех ингредиентов. Измеряли рН среды, он должен быть в пределах 7,4±0,2, и разливали по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, после чего завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Остужали до температуры 56°С, затем в каждый флакон над факелом спиртовки вносили стерильной бактериологической пипеткой по 3,3 мл сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой (из расчета 10 мл/л), и разливали стерильными бактериологическими пипетками в стерильные бактериологические пробирки высокой степени чистоты по 5 мл среды. Количество полисорбата Твин-80 и сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой, добавляемое из расчета на 1 л среды, в приведенных примерах от первого к третьему увеличивали на 2,5 мл для Твин-80 и на 5 мл для сыворотки, начиная с доз 10 мл и 5 мл, соответственно.To prepare a liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira, sodium chloride - 0.5 g; dry enzymatic peptone - 1.0 g; thiamine - 0.005 g were weighed on a scale. The samples were poured into an enamel container, 12.5 ml of Tween-80 was added and the ready working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water was added to 1.0 l. Boil for 1-2 minutes until all ingredients are completely dissolved. The pH of the medium was measured, it should be within 7.4 ± 0.2, and 333 ml were poured into graduated 450 ml bottles, then sealed and sterilized at a temperature of 115 ° C for 15 minutes. Cool to 56°C, then add 3.3 ml of normal horse serum for bacteriological nutrient media liquid (at a rate of 10 ml/l) to each vial over the torch of an alcohol lamp using a sterile bacteriological pipette, and pour 5 ml of the medium into sterile bacteriological tubes of high purity using sterile bacteriological pipettes. The amount of polysorbate Tween-80 and normal horse serum for bacteriological nutrient media liquid, added at a rate of 1 l of medium, in the given examples from the first to the third was increased by 2.5 ml for Tween-80 and by 5 ml for the serum, starting with doses of 10 ml and 5 ml, respectively.
Оценка ростовых свойств предлагаемой питательной среды жидкой обогащенной для культивирования лептоспирEvaluation of growth properties of the proposed liquid enriched nutrient medium for the cultivation of leptospira
Для контроля стерильности среду выдерживали при температуре 37°С в течение 2 сут и до 7 сут - при комнатной температуре (20-25°С), среда должна оставаться прозрачной.To control sterility, the medium was kept at a temperature of 37°C for 2 days and at room temperature (20-25°C) for up to 7 days; the medium should remain transparent.
Ростовые свойства оценивали в соответствии с методическими указаниями МУ 3.1.1128-02 Эпидемиология, диагностика и профилактика заболеваний людей лептоспирозами [5] и с учетом требований СанПиН 3.3686-21 Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней [6], используя культуры диагностических вирулентных штаммов Leptospira interrogans П.O.5621 (серогруппа Pomona); штамм М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae); штамм Перепелицин (серогруппа Tarassovi); штамм Ballico (серогруппа Australis); штамм Akiyami А (серогруппа Autumnalis), ослабленные многократным пассированием на питательной среде Ферворта-Вольфа в модификации СИ. Тарасова. Эту же среду применяли в экспериментах для сравнения ростовых свойств.The growth properties were assessed in accordance with the guidelines MU 3.1.1128-02 Epidemiology, diagnostics and prevention of human diseases with leptospirosis [5] and taking into account the requirements of SanPiN 3.3686-21 Sanitary and epidemiological requirements for the prevention of infectious diseases [6], using cultures of diagnostic virulent strains of Leptospira interrogans P.O.5621 (serogroup Pomona); strain M20 (serogroup Icterohaemorrhagiae); strain Perepelitsin (serogroup Tarassovi); strain Ballico (serogroup Australis); strain Akiyami A (serogroup Autumnalis), attenuated by multiple passaging on the Verworth-Wolff nutrient medium modified by SI. Tarasov. The same medium was used in experiments to compare the growth properties.
Посевы на обе среды производили параллельно по 0,5 мл на каждую пробирку из исходных пробирок с хранящимися культурами, после чего помещали в термостат при температуре 29±1°С Рост лептоспир в предлагаемой и взятой для сравнения питательных средах наблюдался в виде едва заметного помутнения. Так как данные возбудители плохо воспринимают окраску, бактериоскопические исследования с лептоспирами проводят в темном поле микроскопа, готовя препарат «раздавленная капля».The cultures on both media were made in parallel, 0.5 ml per test tube from the original test tubes with stored cultures, after which they were placed in a thermostat at a temperature of 29±1°C. The growth of leptospires in the proposed and comparison nutrient media was observed as a barely noticeable turbidity. Since these pathogens poorly perceive color, bacterioscopic studies with leptospires are carried out in a dark field of a microscope, preparing a “crushed drop” preparation.
Для обнаружения роста лептоспир с 5 по 14 сут культивирования штаммов готовили препараты «раздавленной капли», петлей нанося капли по 5 мкл из пробирок на предметные стекла толщиной не более 1,0-1,1 мм и накрывая покровным стеклом толщиной 0,2 мм. Живых возбудителей наблюдали при помощи микроскопа с конденсором темного поля и, в связи с достаточно крупным размером микроба, - сухих систем: объектива ×40 и окуляра ×10. Препараты исследовали путем просмотра 10 полей зрения при увеличении ×400. Учитывали наличие тонких, гибких, подвижных серебристых нитей с загнутыми в виде крючков концами, активность микробов, количество их в поле зрения.To detect the growth of leptospira from the 5th to the 14th day of culturing the strains, we prepared “crushed drop” preparations by applying 5 μl drops from test tubes with a loop onto slides no more than 1.0-1.1 mm thick and covering with a 0.2 mm thick cover glass. Live pathogens were observed using a microscope with a dark field condenser and, due to the relatively large size of the microbe, dry systems: a ×40 objective and an ×10 eyepiece. The preparations were examined by viewing 10 fields of view at a magnification of ×400. The presence of thin, flexible, mobile silvery threads with hooked ends, the activity of the microbes, and their number in the field of view were taken into account.
Представлена таблица с данными о количестве клеток лептоспир, наблюдаемых в препаратах «раздавленной капли» со среды сравнения и предлагаемой питательной среды.A table is presented with data on the number of leptospira cells observed in the “crushed drop” preparations from the comparison medium and the proposed nutrient medium.
В препаратах «раздавленной капли» из посевов со среды сравнения через 5 сут культивирования диагностических штаммов L. interrogans наблюдали, в среднем, 63±0,6 клеток лептоспир типичной морфологии: от 62±1,7 м.к. (у штамма Перепелицин (серогруппа Tarassovi) до 65±2,3 м.к. (у штамма Akiyami А серогруппа Autumnalis).In the “crushed drop” preparations from the comparison medium cultures after 5 days of culturing the diagnostic strains of L. interrogans, an average of 63±0.6 leptospira cells of typical morphology were observed: from 62±1.7 m.c. (in the Perepelitsin strain (serogroup Tarassovi) to 65±2.3 m.c. (in the Akiyami A strain, serogroup Autumnalis).
На 14 сут после посева повторный просмотр показал незначительное снижение числа микробных клеток в поле зрения для всех тестируемых штаммов.At 14 days after sowing, a repeat examination showed a slight decrease in the number of microbial cells in the field of view for all tested strains.
Пример 1. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: натрия хлористого - 0,5 г; пептона ферментативного сухого - 1,0 г; тиамина - 0,005 г; полисорбата Твин-80 - 10,0 мл; сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой -5 мл, готового рабочего раствора фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде - до 1,0 л. Сухие навески помещали в эмалированную емкость, добавляли Твин-80 и рабочий раствор фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде. Кипятили 1-2 мин до полного растворения всех ингредиентов. Измеряли рН, убеждались, что он находится в пределах 7,4±0,2, и разливали среду по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, после чего завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Остужали до температуры 56°С, в каждый флакон над факелом спиртовки вносили стерильной бактериологической пипеткой по 1,67 мл сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой, и разливали стерильными бактериологическими пипетками в стерильные бактериологические пробирки высокой степени чистоты по 5 мл среды. Выдерживали среду при температуре 37°С в течение 2 сут и при комнатной температуре (20-25°С) в течение 7 сут для контроля стерильности, после чего производили посев культур по 0,5 мл на каждую пробирку и культивировали при температуре 29±1°С.Example 1. The test strains were grown on a liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: sodium chloride - 0.5 g; dry enzymatic peptone - 1.0 g; thiamine - 0.005 g; polysorbate Tween-80 - 10.0 ml; normal horse serum for liquid bacteriological nutrient media - 5 ml, ready-made working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water - up to 1.0 l. Dry samples were placed in an enamel container, Tween-80 and a working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water were added. Boil for 1-2 minutes until all ingredients are completely dissolved. The pH was measured, it was confirmed that it was within the range of 7.4±0.2, and the medium was poured into graduated 450-ml flasks (333 ml), then sealed and sterilized at 115°C for 15 min. Cooled to 56°C, 1.67 ml of normal horse serum for liquid bacteriological nutrient media was added to each flask over an alcohol lamp torch using a sterile bacteriological pipette, and 5 ml of the medium was poured into sterile high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes. The medium was maintained at 37°C for 2 days and at room temperature (20-25°C) for 7 days to control sterility, after which the cultures were inoculated at 0.5 ml per test tube and cultivated at 29±1°C.
При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 41±0,4 типичных, активно подвижных клеток лептоспир: от 41±1,7 м.к. штамма Ballico (серогруппа Australis) до 43±1,0 м.к. штамма П.О.5621 (серогруппа Pomona). При повторном просмотре через 14 сут после посева количество микробных клеток и их морфология существенно не менялись.With this ratio of ingredients in the liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira in the “crushed drop” preparations from the cultures kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 41±0.4 typical, actively motile leptospira cells were observed in the dark field of view at a magnification of ×400: from 41±1.7 m.c. of the Ballico strain (Australis serogroup) to 43±1.0 m.c. of the P.O.5621 strain (Pomona serogroup). When re-examined 14 days after culture, the number of microbial cells and their morphology did not change significantly.
Пример 2. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: натрия хлористого - 0,5 г; пептона ферментативного сухого - 1,0 г; тиамина - 0,005 г; полисорбата Твин-80 - 12,5 мл; сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой -10 мл; готового рабочего раствора фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде - до 1,0 л. Сухие навески помещали в эмалированную емкость, добавляли Твин-80 и рабочий раствор фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде. Кипятили 1-2 мин до полного растворения всех ингредиентов. Измеряли рН, убеждались, что он находится в пределах 7,4±0,2, и разливали среду по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, после чего завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Остужали до температуры 56°С, в каждый флакон над факелом спиртовки вносили стерильной бактериологической пипеткой по 3,3 мл сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой, и разливали стерильными бактериологическими пипетками в стерильные бактериологические пробирки высокой степени чистоты по 5 мл среды. Выдерживали среду при температуре 37°С в течение 2 сут и при комнатной температуре (20-25°С) в течение 7 сут для контроля стерильности, после чего производили посев культур по 0,5 мл на каждую пробирку и культивировали при температуре 29±1°С.Example 2. The test strains were grown on a liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: sodium chloride - 0.5 g; dry enzymatic peptone - 1.0 g; thiamine - 0.005 g; polysorbate Tween-80 - 12.5 ml; normal horse serum for bacteriological nutrient media, liquid - 10 ml; ready-made working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water - up to 1.0 l. Dry samples were placed in an enamel container, Tween-80 and a working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water were added. Boil for 1-2 minutes until all ingredients are completely dissolved. The pH was measured, it was confirmed that it was within the range of 7.4±0.2, and the medium was poured into graduated 450-ml flasks (333 ml), then sealed and sterilized at 115°C for 15 min. Cooled to 56°C, 3.3 ml of normal horse serum for liquid bacteriological nutrient media was added to each flask over an alcohol lamp torch using a sterile bacteriological pipette, and 5 ml of the medium was poured into sterile high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes. The medium was maintained at 37°C for 2 days and at room temperature (20-25°C) for 7 days to control sterility, after which the cultures were inoculated at 0.5 ml per test tube and cultivated at 29±1°C.
При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 121±4,0 активно подвижных клеток лептоспир с типичными морфологическими признаками: от 111±3,3 м.к. штамма М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae) до 130±4,1 м.к. штамма Akiyami А (серогруппа Autumnalis). На 14 сут количество типичных и подвижных клеток сохранялось.With this ratio of ingredients in the liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira in the “crushed drop” preparations from the crops kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 121±4.0 actively motile leptospira cells with typical morphological features were observed in the dark field of vision at a magnification of ×400: from 111±3.3 m.c. of the M20 strain (Icterohaemorrhagiae serogroup) to 130±4.1 m.c. of the Akiyami A strain (Autumnalis serogroup). On the 14th day, the number of typical and motile cells remained the same.
Пример 3. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: натрия хлористого - 0,5 г; пептона ферментативного сухого - 1,0 г; тиамина - 0,005 г; полисорбата Твин-80 - 15,0 мл; сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой -15 мл; готового рабочего раствора фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде - до 1,0 л. Сухие навески помещали в эмалированную емкость, добавляли Твин-80 и рабочий раствор фосфатно-буферной смеси в дистиллированной воде. Кипятили 1-2 мин до полного растворения всех ингредиентов. Измеряли рН, убеждались, что он находится в пределах 7,4±0,2, и разливали среду по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, после чего завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Остужали до температуры 56°С, в каждый флакон над факелом спиртовки вносили стерильной бактериологической пипеткой по 5,0 мл сыворотки лошадиной нормальной для бактериологических питательных сред жидкой, и разливали стерильными бактериологическими пипетками в стерильные бактериологические пробирки высокой степени чистоты по 5 мл среды. Выдерживали среду при температуре 37°С в течение 2 сут и при комнатной температуре (20-25°С) в течение 7 сут для контроля стерильности, после чего производили посев культур по 0,5 мл на каждую пробирку и культивировали при температуре 29±1°С.Example 3. The test strains were grown on a liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: sodium chloride - 0.5 g; dry enzymatic peptone - 1.0 g; thiamine - 0.005 g; polysorbate Tween-80 - 15.0 ml; normal horse serum for bacteriological nutrient media, liquid - 15 ml; ready-made working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water - up to 1.0 l. Dry samples were placed in an enamel container, Tween-80 and a working solution of phosphate-buffer mixture in distilled water were added. Boil for 1-2 minutes until all ingredients are completely dissolved. The pH was measured, it was confirmed that it was within the range of 7.4±0.2, and the medium was poured into 333 ml graduated 450 ml flasks, then sealed and sterilized at 115°C for 15 min. Cooled to 56°C, 5.0 ml of normal horse serum for liquid bacteriological nutrient media was added to each flask over an alcohol lamp torch using a sterile bacteriological pipette, and 5 ml of the medium was poured into sterile high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes. The medium was maintained at 37°C for 2 days and at room temperature (20-25°C) for 7 days to control sterility, after which the cultures were inoculated at 0.5 ml per test tube and cultivated at 29±1°C.
При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой обогащенной для культивирования лептоспир в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 161±1,6 клеток лептоспир: от 156±1,1 м.к. штамма М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae) до 164±3,7 м.к. штамма Akiyami А (серогруппа Autumnalis), однако подсчет клеток был затруднен из-за спонтанной агглютинации, наблюдавшейся у всех испытуемых штаммов. При просмотре через 14 сут культивирования во всех пробирках наблюдалось некоторое снижение числа лептоспир: их количество, в среднем, составило 154±1,2 м.к.: от 151±1,1 м.к. штамма М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae) до 157±1,8 м.к. штамма Перепелицин (серогруппа Tarassovi).With this ratio of ingredients in the liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira in “crushed drop” preparations from crops kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 161±1.6 leptospira cells were observed in the dark field of vision at a magnification of ×400: from 156±1.1 m.c. of the M20 strain (serogroup Icterohaemorrhagiae) to 164±3.7 m.c. of the Akiyami A strain (serogroup Autumnalis), however, cell counting was difficult due to spontaneous agglutination observed in all the strains tested. When examining after 14 days of cultivation, a slight decrease in the number of leptospires was observed in all test tubes: their number, on average, was 154±1.2 m.c.: from 151±1.1 m.c. of the M20 strain (serogroup Icterohaemorrhagiae) to 157±1.8 m.c. of the Perepelitsin strain (serogroup Tarassovi).
Таким образом, заявленная питательная среда жидкая обогащенная для культивирования лептоспир, изготовленная по методике, описанной в примере 2, является оптимальной по количеству полученных клеток лептоспир, обладающих типичными морфологическими признаками и активной подвижностью, наблюдаемых в препаратах «раздавленной капли» в темном поле зрения микроскопа при увеличении ×400.Thus, the declared enriched liquid nutrient medium for cultivating leptospira, prepared according to the method described in Example 2, is optimal in terms of the number of leptospira cells obtained, possessing typical morphological characteristics and active motility, observed in “crushed drop” preparations in the dark field of view of a microscope at a magnification of ×400.
Предлагаемая питательная среда готовится по упрощенной методике и обладает высокими ростовыми свойствами, позволяющими восстанавливать жизнеспособность ослабленных многократными пассажами культур, что имеет существенное значение для сохранения диагностических штаммов возбудителей лептоспирозов.The proposed nutrient medium is prepared using a simplified method and has high growth properties, allowing the restoration of the viability of cultures weakened by multiple passages, which is essential for preserving diagnostic strains of leptospirosis pathogens.
Список использованной литературыList of references
1. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство / Под редакцией академика РАМН Г.Г. Онищенко и академика В.В. Кутырева. Изд. 2-е, переработанное и дополненное. -Москва.: ЗАО «Шико», 2013. - С. 468-498.1. Laboratory diagnostics of dangerous infectious diseases. Practical guide / Edited by Academician of the Russian Academy of Medical Sciences G.G. Onishchenko and Academician V.V. Kutyrev. 2nd edition, revised and supplemented. - Moscow: ZAO "Shiko", 2013. - P. 468-498.
2. Партанен Л., Марттинен Н. и Алатоссава Т. (2001). Жиры и жирные кислоты как факторы роста Lactobacillus delbrueckii. System. Appl. Микробиол. 24, 500-506. doi: 10.1078/0723-2020-00078.2. Partanen, L., Marttinen, N., and Alatossava, T. (2001). Fats and fatty acids as growth factors for Lactobacillus delbrueckii. System. Appl. Microbiol. 24, 500–506. doi: 10.1078/0723-2020-00078.
3. Поляк M.C., Сухаревич В.И., Сухаревич М.Э. Питательные среды для медицинской и санитарной микробиологии. - СПб.: ЭЛБИ-СПб, 2008. -352 с. 3. Polyak M.S., Sukharevich V.I., Sukharevich M.E. Nutrient media for medical and sanitary microbiology. - St. Petersburg: ELBI-SPb, 2008. -352 p.
4. Меджидов М.М. Справочник по микробиологическим питательным средам. М., «Медицина», 2003. - С.18.4. Medzhidov M.M. Handbook of microbiological nutrient media. Moscow, "Medicine", 2003. - P.18.
5. МУ 3.1.1128-02 Эпидемиология, диагностика и профилактика заболеваний людей лептоспирозами. - Минздрав России, - Москва. - 2002.5. MU 3.1.1128-02 Epidemiology, diagnostics and prevention of human diseases with leptospirosis. - Ministry of Health of Russia, - Moscow. - 2002.
6. Санитарные правила и нормы СанПиН 3.3686-21 Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней. - Москва, МЗ РФ. - 2021.6. Sanitary rules and regulations SanPiN 3.3686-21 Sanitary and epidemiological requirements for the prevention of infectious diseases. - Moscow, Ministry of Health of the Russian Federation. - 2021.
Claims (1)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2841400C1 true RU2841400C1 (en) | 2025-06-06 |
Family
ID=
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| МАЛАХОВ Ю.А. и др. Инструкция о мероприятиях по борьбе с лептоспирозом животных, МЕТОДИЧЕСКИЕ УКАЗАНИЯ ПО ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКЕ ЛЕПТОСПИРОЗА ЖИВОТНЫХ, Москва, "Колос", 1977, с. 47-48. РОМАНЕНКО О.А. и др. ПРОБЛЕМЫ ПРОИЗВОДСТВЕННОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ ЛЕПТОСПИР И ПУТИ ИХ РЕШЕНИЯ, Ветеринарная патология. N 3, 2013, с. 49-53, найдено в Интернет 25.12.2024, адрес сайта: file:///C:/Users/otd1357/Downloads/449-397-1-PB.pdf. VOLINA EG, et al. Kul'tivirovanie leptopir v zhidko pitatel; no srede s lizirovanno krolich'e krov'iu [Cultivation of Leptospira in a liquid culture medium with lysed rabbit blood]. Zh Mikrobiol Epidemiol Immunobiol. 2001 Jan-Feb (1): 3-5. Russian. PMID: 11236498. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Ananthanarayan | Ananthanarayan and Paniker's textbook of microbiology | |
| Dubos et al. | Media for tubercle bacilli | |
| Vasanthakumari | Textbook of microbiology | |
| Hajna et al. | New enrichment and plating media for the isolation of Salmonella and Shigella organisms | |
| US20230323283A1 (en) | Microbiological growth media and methods of using the same | |
| EA007791B1 (en) | COMPOSITION WITH STABILIZED OXIDATIVE RECOVERY PROPERTIES AND METHOD OF STABILIZATION OF OXIDATIVE RECOVERY PROPERTIES | |
| Fairbrother et al. | A Text-book of Bacteriology | |
| RU2841400C1 (en) | Method of producing liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira | |
| US4472378A (en) | Live vaccine for the prevention of salmonellosis in water fowl, a process for making and applying the same | |
| RU2626568C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of plague microbe of ypestis ev vaccine strain | |
| RU2841394C1 (en) | Method for producing liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of leptospirosis agent | |
| RU2681285C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation | |
| RU2529364C1 (en) | Biphasic transport nutrient medium for isolation and growing brucellar microbe | |
| RU2702174C1 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev | |
| RU2827845C1 (en) | Elective nutrient medium for pseudomonas aeruginosa recovery | |
| CN102517240B (en) | Be applicable to the solid medium of Candida albicans and staphylococcus syntrophism | |
| RU2681499C1 (en) | Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms | |
| Scherp et al. | The growth of Neisseria meningitidis in simple chemically defined media | |
| RU2708029C1 (en) | Nutrient medium for cultivation of yersinia pestis ev | |
| RU2111245C1 (en) | Nutrient medium for yeast-like fungi of genus candida culturing | |
| RU2764139C1 (en) | Dense nutrient medium with kombucha hydrolysate, stimulating the accumulation of bacterial mass of brucella | |
| RU2510416C1 (en) | Nutritive medium for extraction of lactobacteria | |
| RU2175671C1 (en) | Nutrient medium for isolation of hemoculture in diagnosis of typhoid fever and paratyphoid fever | |
| RU2719723C1 (en) | Wound healing liniment, containing bacteriostatic metabolites trichoderma atrobrunneum f-1434 and sum of buckwheat bioflavonoids | |
| RU2644248C2 (en) | Dense nutrient medium for cultivation and growing of tularemic microbe |