[go: up one dir, main page]

RU2841394C1 - Method for producing liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of leptospirosis agent - Google Patents

Method for producing liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of leptospirosis agent Download PDF

Info

Publication number
RU2841394C1
RU2841394C1 RU2024120768A RU2024120768A RU2841394C1 RU 2841394 C1 RU2841394 C1 RU 2841394C1 RU 2024120768 A RU2024120768 A RU 2024120768A RU 2024120768 A RU2024120768 A RU 2024120768A RU 2841394 C1 RU2841394 C1 RU 2841394C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
leptospirosis
microbial cells
culturing
temperature
rate
Prior art date
Application number
RU2024120768A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Людмила Семеновна Катунина
Анна Алексеевна Курилова
Ольга Александровна Зайцева
Юлия Владимировна Сирица
Захар Юрьевич Крячок
Ольга Николаевна Киселева
Александр Николаевич Куличенко
Оксана Васильевна Васильева
Original Assignee
Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное казённое учреждение здравоохранения "Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Application granted granted Critical
Publication of RU2841394C1 publication Critical patent/RU2841394C1/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention represents a method for preparing a liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of a leptospirosis agent involving mixing dry weights of: 12-aqueous disubstituted sodium phosphate – 1.00 g, monosubstituted potassium phosphate – 0.30 g, sodium chloride – 1.00 g, ammonium chloride – 0.25 g, thiamine – 0.005 g in a container and adding up to 1 l of distilled water, mixture is brought to the boiling point, boiled until all the ingredients are dissolved, allowed to cool, pH is corrected to 7.4 and dispensed into graduated flasks, canted and sterilized at temperature of 115 °C for 15 minutes, cooled to temperature 56 °C, normal inactivated rabbit serum is added in a sterile manner at rate of 40 ml/l and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile, at rate of 20 ml/l, and sterilely dispensed from flasks by bacteriological pipettes into bacteriological test tubes.
EFFECT: invention enables preparing the easy-to-prepare liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis agent with increasing the number of formed microbial cells with preserving their typical morphology and active mobility in strain passage up to 14 days (follow-up period).
1 cl, 1 tbl, 3 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии и биотехнологии, а именно, к получению питательных сред, которые создают оптимальные условия для культивирования возбудителя лептоспироза.The invention relates to microbiology and biotechnology, namely, to the production of nutrient media that create optimal conditions for cultivating the causative agent of leptospirosis.

Для накопления бактериальной массы лептоспир используется среда ВГНКИ, которая готовится следующим образом: необходимое количество буферной смеси Зеренсена (рН 7,2) вносят в бутыль с сифоном и стерилизуют в автоклаве при 0,8 атм в течение 30 мин, к охлажденной смеси добавляют 5-8% инактивированной сыворотки кролика или барана до концентрации белка в среде 0,22-0,25% и витамины: В12 - до концентрации 1 мг/мл и B1 - до концентрации 0,25 мл/л 6% раствора.To accumulate the bacterial mass of leptospira, the VGNKI medium is used, which is prepared as follows: the required amount of Zerensen buffer mixture (pH 7.2) is added to a bottle with a siphon and sterilized in an autoclave at 0.8 atm for 30 min, 5-8% inactivated rabbit or ram serum is added to the cooled mixture until the protein concentration in the medium is 0.22-0.25% and vitamins: B 12 - to a concentration of 1 mg / ml and B 1 - to a concentration of 0.25 ml / l of 6% solution.

Смесь Зеренсена: раствор А: 11,867 г двузамещенного фосфорнокислого натрия растворяют в 1 л воды дистиллированной; раствор Б: 9,067 г однозамещенного фосфорнокислого калия растворяют в 1 л воды дистиллированной. К 72 мл раствора А добавляют 28 мл раствора Б и доводят объем водой дистиллированной до 1000 мл.Zerensen's mixture: solution A: 11.867 g of sodium dibasic phosphate are dissolved in 1 liter of distilled water; solution B: 9.067 g of potassium monobasic phosphate are dissolved in 1 liter of distilled water. To 72 ml of solution A add 28 ml of solution B and bring the volume to 1000 ml with distilled water.

Среду фильтруют через стерилизующие пластины фильтра Зейтца и разливают в стерильные пробирки по 5-10 мл или флаконы. Для проверки на стерильность среду выдерживают при температуре 37°С в течение 3 дней и при комнатной температуре - до 10 дней [1].The medium is filtered through sterilizing Seitz filter plates and poured into sterile 5-10 ml test tubes or bottles. To test for sterility, the medium is kept at 37°C for 3 days and at room temperature for up to 10 days [1].

Недостатками данной среды являются сложность и длительность изготовления. The disadvantages of this environment are the complexity and time required to manufacture it.

Наиболее близкой к предполагаемому изобретению является среда Терских, состоящая из фосфатной смеси Зеренсена и кроличьей сыворотки.The closest to the proposed invention is Terskikh's medium, consisting of Zerensen's phosphate mixture and rabbit serum.

Смесь Зеренсена дважды фильтруют через двухслойный бумажный фильтр, разливают в пробирки по 5 мл, стерилизуют в автоклаве при температуре 120°С в течение 20 мин, и стерильно добавляют в каждую пробирку инактивированную сыворотку кролика из расчета 1-2 капли на 1 мл среды. Пробирки со средой двукратно прогревают в водяной бане при температуре 56°С в течение 1 ч [1].The Zerensen mixture is filtered twice through a two-layer paper filter, poured into 5 ml test tubes, sterilized in an autoclave at 120°C for 20 min, and inactivated rabbit serum is sterilely added to each test tube at a rate of 1-2 drops per 1 ml of medium. The test tubes with the medium are heated twice in a water bath at 56°C for 1 hour [1].

Недостатками данной среды являются сложность изготовления и снижение ростовых свойств при длительных пассажах культур.The disadvantages of this medium are the complexity of production and the reduction of growth properties during long passages of cultures.

Целью изобретения является разработка простой в изготовлении питательной среды жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза с улучшенными ростовыми свойствами.The aim of the invention is to develop a simple-to-manufacture liquid nutrient medium for cultivating and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen with improved growth properties.

Сущность предполагаемого изобретения заключается в том, что в качестве основного источника азотного питания при изготовлении питательной среды жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза совместно со свежевзятой сывороткой кролика, инактивированной прогреванием на водяной бане в течение 30 мин при температуре 56°С, используется коммерческий препарат -сыворотка крови лошади нормальная для культивирования микоплазм на питательных средах жидкая стерильная.The essence of the proposed invention is that a commercial preparation - normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas in liquid sterile nutrient media - is used as the main source of nitrogen nutrition in the preparation of a liquid nutrient medium for cultivating and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen together with freshly taken rabbit serum, inactivated by heating in a water bath for 30 minutes at a temperature of 56°C.

Технический результат достигается тем, что питательная среда жидкая для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза, кроме основного источника питания - сывороток, содержит аммоний хлористый и тиамин, повышающие накопительные свойства среды как дополнительные факторы роста; фосфаты, обладающие буферным действием, - 12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий и однозамещенный фосфорнокислый калий, а также натрия хлорид и дистиллированную воду, при следующем соотношении ингредиентов, г/л:The technical result is achieved in that the liquid nutrient medium for cultivating and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen, in addition to the main source of nutrition - serums, contains ammonium chloride and thiamine, which increase the accumulative properties of the medium as additional growth factors; phosphates with a buffering effect - 12-aqueous dibasic sodium phosphate and monobasic potassium phosphate, as well as sodium chloride and distilled water, with the following ratio of ingredients, g / l:

12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий12-hydrate sodium dihydrogen phosphate 1,001.00 Однозамещенный фосфорнокислый калийPotassium monophosphate 0,300.30 Натрия хлоридSodium chloride 1,001.00 Аммоний хлористый Ammonium chloride 0,250.25 ТиаминThiamine 0,0050.005 Кроличья сыворотка нормальная инактивированнаяRabbit serum normal inactivated 40,0 мл 40.0 ml Сыворотка крови лошади нормальная дляHorse blood serum is normal for культивирования микоплазм на питательных средахcultivation of mycoplasmas on nutrient media жидкая стерильнаяliquid sterile 20,0 мл20.0 ml Дистиллированная водаDistilled water до 1 лup to 1 l

Фосфаты, 12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий и однозамещенный фосфорнокислый калий широко применяются при приготовлении питательных сред, что обосновано их буферным действием в физиологически важном диапазоне рН и низкой токсичностью [2].Phosphates, sodium diphosphate dodecyl phosphate and potassium diphosphate are widely used in the preparation of nutrient media, which is justified by their buffering action in the physiologically important pH range and low toxicity [2].

Натрия хлорид необходим для поддержания изотоничности среды. Растворенные в питательной среде и находящиеся в состоянии электролитического распада, ионизируемые минеральные соединения являются одновременно катализаторами различных химических процессов, происходящих в микробной клетке. Ионы натрия (Na+) участвуют в транспорте веществ через клеточные мембраны и в регуляции синтеза белка [3].Sodium chloride is necessary to maintain the isotonicity of the medium. Dissolved in the nutrient medium and in a state of electrolytic decomposition, ionizable mineral compounds are simultaneously catalysts for various chemical processes occurring in the microbial cell. Sodium ions (Na + ) participate in the transport of substances through cell membranes and in the regulation of protein synthesis [3].

Свежевзятая кроличья сыворотка нормальная инактивированная является источником азота, альбуминов и глобулинов [4] в питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза.Freshly taken normal inactivated rabbit serum is a source of nitrogen, albumins and globulins [4] in a liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the causative agent of leptospirosis.

Кровь для получения сыворотки брали от кроликов массой 1,5-3 кг. Животных фиксировали на спине, в месте прощупывания сердечного толчка выстригали шерсть, обрабатывали поверхность спиртом и йодом. Кровь брали, вводя иглу шприца в сердце, в количестве 30-40 мл и переливали в стерильные пробирки или флаконы. Емкость с кровью ставили в термостат при 37°С на 30-40 мин. Образовавшийся сгусток обводили металлической стерильной спицей и помещали в холодильник на 1 -2 сут.Blood for obtaining serum was taken from rabbits weighing 1.5-3 kg. The animals were fixed on their backs, the hair was cut off at the site of palpation of the cardiac impulse, the surface was treated with alcohol and iodine. Blood was taken by inserting a syringe needle into the heart, in an amount of 30-40 ml and poured into sterile test tubes or bottles. The container with blood was placed in a thermostat at 37 ° C for 30-40 minutes. The resulting clot was outlined with a sterile metal needle and placed in the refrigerator for 1-2 days.

Отстоявшуюся сыворотку сливали в стерильные флаконы емкостью 100-200 мл и инактивировали при температуре 56-58°С в течение 30 мин. Строго следили за температурой, так как перегретая сыворотка непригодна для приготовления питательных сред. Инактивированную сыворотку хранили при температуре 2-4°С [1].The settled serum was poured into sterile 100-200 ml vials and inactivated at a temperature of 56-58°C for 30 min. The temperature was strictly monitored, since overheated serum is unsuitable for the preparation of nutrient media. The inactivated serum was stored at a temperature of 2-4°C [1].

Сыворотка крови лошади нормальная для культивирования микоплазм на питательных средах жидкая стерильная - коммерческий препарат, используется для интенсификации роста и ускорения процесса накопления лептоспир, при сохранении их активной подвижности.Horse blood serum normal for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile - a commercial preparation, used to intensify growth and accelerate the process of accumulation of leptospira, while maintaining their active mobility.

Аммоний хлористый повышает накопительные свойства питательных сред, являясь дополнительным фактором роста; участвует в регуляции осмотического давления внутри клеток и направления биохимических реакций; благоприятно влияет на коллоидные свойства живой протоплазмы. Из литературных источников известно, что лептоспиры могут утилизировать неорганические соли аммония как главный источник азота [1].Ammonium chloride increases the accumulative properties of nutrient media, being an additional growth factor; participates in the regulation of osmotic pressure inside cells and the direction of biochemical reactions; has a beneficial effect on the colloidal properties of living protoplasm. It is known from literary sources that leptospires can utilize inorganic ammonium salts as the main source of nitrogen [1].

Тиамин (витамин B1) является фактором роста, в котором возбудители лептоспироза испытывают потребность [1]. Многие бактерии лишены способности синтезировать все необходимые для роста органические соединения, и зависят от наличия в среде определенных факторов роста. Потребность в витаминах является общим свойством всех микроорганизмов.Thiamine (vitamin B 1 ) is a growth factor that is required by the causative agents of leptospirosis [1]. Many bacteria lack the ability to synthesize all the organic compounds necessary for growth and depend on the presence of certain growth factors in the environment. The need for vitamins is a common property of all microorganisms.

Дистиллированная вода, в соответствии с санитарно-гигиеническими требованиями, - прозрачная, бесцветная жидкость без запаха, содержащая: ионов аммония, нитрат-ионов, цинка - не более 0,2 мг/дм3; сульфат-ионов и хлорид-ионов - не более 0,5 мг/дм3; алюминия, железа, свинца - не более 0,05 мг/дм3; кальция - не более 0,8 мг/дм3; меди - не более 0,02 мг/дм3; имеющая удельную электропроводность при температуре 20°С не более 4,3⋅10-4 См/м и рН - от 5,0 до 7,0 [5].Distilled water, in accordance with sanitary and hygienic requirements, is a transparent, colorless, odorless liquid containing: ammonium ions, nitrate ions, zinc - no more than 0.2 mg / dm 3 ; sulfate ions and chloride ions - no more than 0.5 mg / dm 3 ; aluminum, iron, lead - no more than 0.05 mg / dm 3 ; calcium - no more than 0.8 mg / dm 3 ; copper - no more than 0.02 mg / dm 3 ; having a specific conductivity at a temperature of 20 ° C of no more than 4.3⋅10 -4 S / m and pH - from 5.0 to 7.0 [5].

Вода составляет 80-90% от клеточной массы микроорганизмов и играет важнейшую роль в их физиологических функциях, входит в состав структурных элементов клетки, служит средой для биохимических реакций, источником кислорода в процессах метаболизма, непосредственно участвует в метаболических реакциях и реакциях гидролиза.Water makes up 80-90% of the cellular mass of microorganisms and plays a vital role in their physiological functions, is part of the structural elements of the cell, serves as a medium for biochemical reactions, a source of oxygen in metabolic processes, and is directly involved in metabolic reactions and hydrolysis reactions.

Подготовка посудыPreparing the dishes

Предназначенную для культивирования лептоспир посуду дезинфицировали и мыли отдельно от другой. Пользовались пробирками, обработанными по специальной методике, включающей следующие этапы:The dishes intended for culturing leptospires were disinfected and washed separately from other dishes. The test tubes used were processed using a special method, which included the following steps:

- погружение на 24 ч в 1-2% раствор соляной кислоты в стеклянной или в эмалированной посуде;- immersion for 24 hours in a 1-2% solution of hydrochloric acid in a glass or enamel container;

- промывание проточной водопроводной водой (12 - 15 раз);- rinsing with running tap water (12 - 15 times);

- обработку ершами в горячем мыльном растворе (1 кусок хозяйственного мыла на 10 л воды);- treatment with brushes in a hot soapy solution (1 bar of laundry soap per 10 liters of water);

- тщательное промывание проточной водопроводной водой (12-15 раз);- thorough rinsing with running tap water (12-15 times);

- погружение в дистиллированную воду на 24 ч;- immersion in distilled water for 24 hours;

- сушку и стерилизацию вместе с ватными пробками.- drying and sterilization together with cotton plugs.

Новые резиновые шланги и пробки промывали проточной водопроводной водой, кипятили в течение 30-40 мин в 2% растворе пищевой соды, промывали водопроводной водой и снова кипятили в дистиллированной воде 30-45 мин, после чего просушивали [1].New rubber hoses and plugs were washed with running tap water, boiled for 30-40 minutes in a 2% solution of baking soda, washed with tap water and boiled again in distilled water for 30-45 minutes, after which they were dried [1].

Изготовление питательной средыPreparation of nutrient medium

Для изготовления питательной среды жидкой на весах взвешивали сухие навески: 12-водного двузамещенного фосфорнокислого натрия -1,00 г; однозамещенного фосфорнокислого калия - 0,30 г; натрия хлорида - 1,00 г; аммония хлористого - 0,25 г, тиамина - 0,005 г. Навески ссыпали в эмалированную емкость и добавляли до 1 л дистиллированную воду. На газовой плите смесь доводили до кипения, кипятили до растворения всех ингредиентов, давали остыть, корректировали рН до 7,4 и разливали по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин.To prepare the liquid nutrient medium, the following dry samples were weighed on scales: 12-hydrate dibasic sodium phosphate - 1.00 g; monobasic potassium phosphate - 0.30 g; sodium chloride - 1.00 g; ammonium chloride - 0.25 g, thiamine - 0.005 g. The samples were poured into an enamel container and distilled water was added to 1 liter. On a gas stove, the mixture was brought to a boil, boiled until all the ingredients were dissolved, allowed to cool, the pH was adjusted to 7.4 and poured into 333 ml graduated bottles with a volume of 450 ml, crimped and sterilized at a temperature of 115 ° C for 15 minutes.

Охлажденную до температуры 56°С среду разливали стерильными бактериологическими пипетками вместимостью 5 мл в бактериологические пробирки высокой степени чистоты, предварительно добавив стерильно над факелом кроличью сыворотку нормальную инактивированную - по 13,3 мл на флакон (из расчета 40 мл/л) и сыворотку крови лошади нормальную для культивирования микоплазм на питательных средах жидкую стерильную - по 6,7 мл на флакон (из расчета 20 мл/л). В приведенных примерах добавляемое количество сывороток варьировали с шагом 10 мл/л.The medium cooled to a temperature of 56°C was poured into bacteriological tubes of high purity using sterile bacteriological pipettes with a capacity of 5 ml, after first adding in a sterile manner over a torch normal inactivated rabbit serum - 13.3 ml per bottle (at the rate of 40 ml/l) and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile - 6.7 ml per bottle (at the rate of 20 ml/l). In the examples given, the added amount of serums was varied in increments of 10 ml/l.

Контролировали стерильность среды выдерживанием при температуре 37°С в течение 2 сут и до 7 сут - при комнатной температуре (20-25°С), среда должна оставаться прозрачной.The sterility of the medium was controlled by keeping it at a temperature of 37°C for 2 days and at room temperature (20-25°C) for up to 7 days; the medium should remain transparent.

Методика прямой микроскопииDirect microscopy technique

Лептоспиры плохо воспринимают окраску, поэтому все наблюдения проводили с живыми возбудителями в темном поле зрения микроскопа. С этой целью использовали микроскоп с конденсором темного поля. Для выявления лептоспир методом микроскопии готовили препараты «раздавленной капли»: из пробирок с исследуемыми средами после термостатирования по 5 мкл наносили петлей на предметное стекло толщиной не более 1,0-1,1 мм и накрывали покровным стеклом толщиной 0,2 мм. Ввиду значительной величины микроба для исследования использовали сухие системы: объектив ×40 и окуляр ×10.Leptospires do not perceive color well, so all observations were carried out with live pathogens in the dark field of view of the microscope. For this purpose, a microscope with a dark field condenser was used. To identify leptospires by microscopy, "crushed drop" preparations were prepared: 5 μl of test tubes with the studied media after thermostatting were applied with a loop onto a slide no more than 1.0-1.1 mm thick and covered with a cover glass 0.2 mm thick. Due to the significant size of the microbe, dry systems were used for the study: a ×40 objective and an ×10 eyepiece.

Ростовые свойства предлагаемой питательной среды жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза оценивали в соответствии с методическими указаниями МУ 3.1.1128-02 Эпидемиология, диагностика и профилактика заболеваний людей лептоспирозами [6] и с учетом требований СанПиН 3.3686-21 Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней [7], используя диагностические вирулентные штаммы Leptospira interrogans П.O.5621 (серогруппа Pomona); штамм М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae); штамм Перепелицин (серогруппа Tarassovi); штамм Ballico (серогруппа Australis); штамм Akiyami А (серогруппа Autumnalis).The growth properties of the proposed liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen were assessed in accordance with the guidelines MU 3.1.1128-02 Epidemiology, diagnostics and prevention of human diseases caused by leptospirosis [6] and taking into account the requirements of SanPiN 3.3686-21 Sanitary and epidemiological requirements for the prevention of infectious diseases [7], using diagnostic virulent strains of Leptospira interrogans P.O.5621 (serogroup Pomona); strain M20 (serogroup Icterohaemorrhagiae); strain Perepelitsin (serogroup Tarassovi); strain Ballico (serogroup Australis); strain Akiyami A (serogroup Autumnalis).

Средой сравнения служила питательная среда Терских. По 0,5 мл взвесей из исходных пробирок с хранящимися культурами засевали на каждую пробирку с заявляемой и контрольной средами и культивировали при температуре 29±1°С. Рост возбудителей лептоспироза в предлагаемой и взятой для сравнения питательных средах наблюдался в виде едва заметного помутнения. Для обнаружения роста возбудителей лептоспироза с 5 по 14 сут культивирования из пробирок готовили препараты «раздавленной капли» и исследовали их в темном поле микроскопа путем просмотра 10 полей зрения при увеличении ×400. Учитывали подвижность, количество клеток в поле зрения, а также характерный морфологический признак лептоспир - крючкообразный конец микробного тела.The Terskikh nutrient medium served as the comparison medium. 0.5 ml of suspensions from the original test tubes with stored cultures were inoculated into each test tube with the declared and control media and cultivated at a temperature of 29±1°C. The growth of leptospirosis pathogens in the proposed and comparison nutrient media was observed as a barely noticeable turbidity. To detect the growth of leptospirosis pathogens from the 5th to the 14th day of cultivation, “crushed drop” preparations were prepared from the test tubes and examined in a dark field microscope by viewing 10 fields of vision at a magnification of ×400. Mobility, the number of cells in the field of vision, as well as a characteristic morphological feature of leptospira - a hook-shaped end of the microbial body - were taken into account.

При обнаружении в пробирках после термостатирования лептоспир их содержимое пересевали по 0,5 мл в пробирки с 5 мл свежей питательной среды жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза в каждой для дальнейшего сохранения культур.When leptospires were detected in the test tubes after thermostatting, their contents were transferred by 0.5 ml into test tubes with 5 ml of fresh liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen in each for further preservation of the cultures.

Представлена таблица с данными о количестве клеток лептоспир, наблюдаемых в препаратах «раздавленной капли» со среды сравнения и предлагаемой питательной среды.A table is presented with data on the number of leptospira cells observed in the “crushed drop” preparations from the comparison medium and the proposed nutrient medium.

В препаратах «раздавленной капли» из посевов со среды сравнения через 5 сут культивирования диагностических штаммов L. interrogans наблюдали, в среднем, 63±11,8 клеток лептоспир типичной морфологии: от 48±2,6 м.к. (у штамма Ballico, серогруппа Australis) до 79±4,0 м.к. (у штамма Akiyami А серогруппа Autumnalis).In the “crushed drop” preparations from the comparison medium cultures after 5 days of culturing the diagnostic strains of L. interrogans, an average of 63±11.8 leptospira cells of typical morphology were observed: from 48±2.6 m.c. (in the Ballico strain, serogroup Australis) to 79±4.0 m.c. (in the Akiyami A strain, serogroup Autumnalis).

При повторном просмотре через 14 сут после посева для всех пяти штаммов наблюдалось незначительное снижение числа микробных клеток в поле зрения.When re-examined 14 days after sowing, a slight decrease in the number of microbial cells in the field of view was observed for all five strains.

Пример 1. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: 12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий - 1,00; однозамещенный фосфорнокислый калий - 0,30; натрия хлорид - 1,00; аммоний хлористый -0,25, тиамин - 0,005. В эмалированной емкости, добавив дистиллированной воды до 1 л, кипятили 1-2 мин до полного растворения ингредиентов, давали остыть и корректировали рН до 7,4. Разливали по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Охлажденную до 56°С среду разливали стерильными бактериологическими пипетками вместимостью 5 мл в бактериологические пробирки высокой степени чистоты, предварительно добавив стерильно над факелом кроличью сыворотку нормальную инактивированную - по 10,0 мл на флакон (из расчета 30 мл/л) и сыворотку крови лошади нормальную для культивирования микоплазм на питательных средах жидкую стерильную -по 3,3 мл на флакон (из расчета 10 мл/л).Example 1. The test strains were grown on a liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: 12-aqueous dibasic sodium phosphate - 1.00; monobasic potassium phosphate - 0.30; sodium chloride - 1.00; ammonium chloride - 0.25, thiamine - 0.005. In an enamel container, adding distilled water to 1 l, boiled for 1-2 minutes until the ingredients were completely dissolved, allowed to cool and adjusted to pH 7.4. Poured 333 ml into graduated 450 ml bottles, crimped and sterilized at a temperature of 115 ° C for 15 min. The medium cooled to 56°C was poured into high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes with a capacity of 5 ml, after first adding in a sterile manner over a torch normal inactivated rabbit serum - 10.0 ml per bottle (at the rate of 30 ml/l) and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile - 3.3 ml per bottle (at the rate of 10 ml/l).

При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 76±5,2 типичных, активно подвижных клеток лептоспир: от 68±3,4 м.к. штамма П.O.5621 (серогруппа Pomona) до 93±3,6 м.к. штамма Akiyami А (серогруппа Autumnalis). При повторном просмотре через 14 сут после посева картина существенно не менялась.With this ratio of ingredients in the liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen in the “crushed drop” preparations from the cultures kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 76±5.2 typical, actively motile leptospira cells were observed in the dark field of view at a magnification of ×400: from 68±3.4 m.c. of the strain P.O.5621 (serogroup Pomona) to 93±3.6 m.c. of the strain Akiyami A (serogroup Autumnalis). When re-examining 14 days after culture, the picture did not change significantly.

Пример 2. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: 12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий - 1,00; однозамещенный фосфорнокислый калий - 0,30; натрия хлорид - 1,00; аммоний хлористый -0,25, тиамин - 0,005. В эмалированной емкости, добавив дистиллированной воды до 1 л, кипятили 1-2 мин до полного растворения ингредиентов, давали остыть и корректировали рН до 7,4. Разливали по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Охлажденную до 56°С среду разливали стерильными бактериологическими пипетками вместимостью 5 мл в бактериологические пробирки высокой степени чистоты, предварительно добавив стерильно над факелом кроличью сыворотку нормальную инактивированную - по 13,3 мл на флакон (из расчета 40 мл/л) и сыворотку крови лошади нормальную для культивирования микоплазм на питательных средах жидкую стерильную -по 6,7 мл на флакон (из расчета 20 мл/л).Example 2. The test strains were grown on a liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: 12-aqueous dibasic sodium phosphate - 1.00; monobasic potassium phosphate - 0.30; sodium chloride - 1.00; ammonium chloride - 0.25, thiamine - 0.005. In an enamel container, adding distilled water to 1 l, boiled for 1-2 minutes until the ingredients were completely dissolved, allowed to cool and adjusted to pH 7.4. Poured 333 ml into graduated 450 ml bottles, crimped and sterilized at a temperature of 115 ° C for 15 min. The medium cooled to 56°C was poured into high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes with a capacity of 5 ml, after first adding in a sterile manner over a torch normal inactivated rabbit serum - 13.3 ml per bottle (at a rate of 40 ml/l) and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile - 6.7 ml per bottle (at a rate of 20 ml/l).

При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 119±3,8 типичных, активно подвижных клеток лептоспир: от 107±2,5 м.к. штамма М20 (серогруппа Icterohaemorrhagiae) до 126±3,6 м.к. штамма Akiyami А (серогруппа Autumnalis). При просмотре через 14 сут количество типичных и подвижных клеток сохранялось.With this ratio of ingredients in the liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen in the “crushed drop” preparations from the crops kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 119±3.8 typical, actively motile leptospira cells were observed in the dark field of view at a magnification of ×400: from 107±2.5 m.c. of the M20 strain (Icterohaemorrhagiae serogroup) to 126±3.6 m.c. of the Akiyami A strain (Autumnalis serogroup). When viewed after 14 days, the number of typical and motile cells remained the same.

Пример 3. Испытуемые штаммы выращивали на питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза при оптимальном рН 7,4±0,2, содержащей, г/л: 12-водный двузамещенный фосфорнокислый натрий - 1,00; однозамещенный фосфорнокислый калий - 0,30; натрия хлорид - 1,00; аммоний хлористый -0,25, тиамин - 0,005. В эмалированной емкости, добавив дистиллированной воды до 1 л, кипятили 1-2 мин до полного растворения ингредиентов, давали остыть и корректировали рН до 7,4. Разливали по 333 мл в градуированные флаконы объемом 450 мл, завальцовывали и стерилизовали при температуре 115°С в течение 15 мин. Охлажденную до 56°С среду разливали стерильными бактериологическими пипетками вместимостью 5 мл в бактериологические пробирки высокой степени чистоты, предварительно добавив стерильно над факелом кроличью сыворотку нормальную инактивированную - по 16,7 мл на флакон (из расчета 50 мл/л), и сыворотку крови лошади нормальную для культивирования микоплазм на питательных средах жидкую стерильную -по 10,0 мл на флакон (из расчета 30 мл/л).Example 3. The test strains were grown on a liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen at an optimal pH of 7.4±0.2, containing, g/l: 12-aqueous dibasic sodium phosphate - 1.00; monobasic potassium phosphate - 0.30; sodium chloride - 1.00; ammonium chloride - 0.25, thiamine - 0.005. In an enamel container, adding distilled water to 1 l, boiled for 1-2 minutes until the ingredients were completely dissolved, allowed to cool and adjusted to pH 7.4. Poured 333 ml into graduated 450 ml bottles, crimped and sterilized at 115°C for 15 min. The medium cooled to 56°C was poured into high-purity bacteriological test tubes using sterile bacteriological pipettes with a capacity of 5 ml, after first adding in a sterile manner over a torch normal inactivated rabbit serum - 16.7 ml per bottle (at a rate of 50 ml/l), and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile - 10.0 ml per bottle (at a rate of 30 ml/l).

При таком соотношении ингредиентов в питательной среде жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза в препаратах «раздавленной капли» из посевов, выдержанных в термостате в течение 5 сут при температуре 29±1°С, в темном поле зрения при увеличении ×400 наблюдалось, в среднем, 251±13,9 клеток лептоспир: от 221±3,2 м.к. штамма Ballico (серогруппа Australis до 281±3,8 м.к. штамма Akiyami А (серогруппа Autumnalis), однако из-за спонтанной агглютинации подсчет клеток всех испытуемых штаммов был затруднен. Во всех пробирках, при просмотре через 14 сут культивирования, наблюдалось снижение числа лептоспир, их количество, в среднем, составило 134±2,7 м.к.: от 130±3,0 м.к. штамма Ballico (серогруппа Australis) до 142±8,7 м.к. штамма П.O.5621 (серогруппа Pomona).With this ratio of ingredients in the liquid nutrient medium for cultivating and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen in “crushed drop” preparations from crops kept in a thermostat for 5 days at a temperature of 29±1°C, an average of 251±13.9 leptospira cells were observed in the dark field of vision at a magnification of ×400: from 221±3.2 m.k. strain Ballico (serogroup Australis) to 281±3.8 m.c. strain Akiyami A (serogroup Autumnalis), however, due to spontaneous agglutination, cell counting of all tested strains was difficult. In all test tubes, when viewed after 14 days of cultivation, a decrease in the number of leptospira was observed, their number, on average, was 134±2.7 m.c.: from 130±3.0 m.c. strain Ballico (serogroup Australis) to 142±8.7 m.c. strain P.O.5621 (serogroup Pomona).

Таким образом, заявленная питательная среда жидкая для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза (пример 2) является оптимальной по количеству полученных клеток лептоспир с типичной морфологией и активной подвижностью, наблюдаемых в препаратах «раздавленной капли» в темном поле зрения микроскопа при увеличении ×400.Thus, the declared liquid nutrient medium for cultivating and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen (example 2) is optimal in terms of the number of leptospira cells obtained with typical morphology and active motility, observed in “crushed drop” preparations in the dark field of view of a microscope at a magnification of ×400.

Питательная среда качественная, простая в изготовлении, при культивировании возбудителей лептоспироза полноценные микробные клетки формируются на 5 сут, снижения роста не наблюдается до 14 сут (срок наблюдения).The nutrient medium is high-quality, easy to manufacture, when cultivating leptospirosis pathogens, full-fledged microbial cells are formed on the 5th day, and no decrease in growth is observed up to the 14th day (observation period).

Список использованной литературы List of references

1. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство / Под редакцией академика РАМН Г.Г.1. Laboratory diagnostics of dangerous infectious diseases. Practical guide / Edited by Academician of the Russian Academy of Medical Sciences G.G.

Онищенко и академика В.В. Кутырева. Изд. 2-е, переработанное и дополненное. - Москва.: ЗАО «Шико», 2013. - С. 468-498.Onishchenko and Academician V.V. Kutyrev. 2nd edition, revised and supplemented. - Moscow: ZAO Shiko, 2013. - P. 468-498.

2. Методические рекомендации по изготовлению и использованию питательных сред и растворов для микробиологических целей, культивирования клеток и вирусов. - М., 1986.2. Methodological recommendations for the preparation and use of nutrient media and solutions for microbiological purposes, cell and virus cultivation. - M., 1986.

3. Меджидов М.М. Справочник по микробиологическим питательным средам. М., «Медицина», 2003. - С. 18.3. Medzhidov M.M. Handbook of microbiological nutrient media. Moscow, "Medicine", 2003. - P. 18.

4. Перетрухина А.Т., Блинова Е.И. Бактерийные и вирусные препараты: учебное пособие для студентов высших учебных заведений, обучающихся по специальности: 020209.65 - "Микробиология" и направлений подготовки 020400.62 - "Биология" (бакалавриат), профиль "Микробиология"; 020400.68 - "Биология" (магистратура), профиль "Микробиология" / А.Т. Перетрухина, Е.И. Блинова; Федер. агентство по рыболовству, ФГБОУ ВПО "Мурм. гос. техн. ун-т". - Москва: Изд. дом Акад. Естествознания, 2011. - 311 с. 4. Peretrukhina A.T., Blinova E.I. Bacterial and viral preparations: a textbook for students of higher educational institutions studying in the specialty: 020209.65 - "Microbiology" and areas of training 020400.62 - "Biology" (bachelor's degree), profile "Microbiology"; 020400.68 - "Biology" (master's degree), profile "Microbiology" / A.T. Peretrukhina, E.I. Blinova; Federal Agency for Fisheries, FGBOU HPE "Murm State Technical University". - Moscow: Publishing House of the Academy of Natural Sciences, 2011. - 311 p.

5. ГОСТ Р 58144-2018. Вода дистиллированная. Технические условия.5. GOST R 58144-2018. Distilled water. Technical conditions.

6. МУ 3.1.1128-02 Эпидемиология, диагностика и профилактика заболеваний людей лептоспирозами. - Минздрав России, - Москва. - 2002.6. MU 3.1.1128-02 Epidemiology, diagnostics and prevention of human diseases with leptospirosis. - Ministry of Health of Russia, - Moscow. - 2002.

7. Санитарные правила и нормы СанПиН 3.3686-21 Санитарно-эпидемиологические требования по профилактике инфекционных болезней. - Москва, МЗ РФ. - 2021.7. Sanitary rules and regulations SanPiN 3.3686-21 Sanitary and epidemiological requirements for the prevention of infectious diseases. - Moscow, Ministry of Health of the Russian Federation. - 2021.

Claims (1)

Способ получения питательной среды жидкой для культивирования и накопления микробных клеток возбудителя лептоспироза, включающий смешивание сухих навесок: 12-водного двузамещенного фосфорнокислого натрия - 1,00 г, однозамещенного фосфорнокислого калия - 0,30 г, натрия хлорида - 1,00 г, аммония хлористого - 0,25 г, тиамина - 0,005 г в емкости и добавление до 1 л дистиллированной воды, смесь доводят до кипения, кипятят до растворения всех ингредиентов, дают остыть, корректируют рН до 7,4 и разливают в градуированные флаконы, завальцовывают и стерилизуют при температуре 115°С в течение 15 мин, охлаждают до температуры 56°С, стерильно вносят кроличью сыворотку нормальную инактивированную из расчета 40 мл/л и сыворотку крови лошади нормальную для культивирования микоплазм на питательных средах жидкую стерильную из расчета 20 мл/л, и стерильно разливают из флаконов бактериологическими пипетками в бактериологические пробирки.A method for obtaining a liquid nutrient medium for culturing and accumulating microbial cells of the leptospirosis pathogen, including mixing dry samples of: 12-aqueous sodium dibasic phosphate - 1.00 g, monobasic potassium phosphate - 0.30 g, sodium chloride - 1.00 g, ammonium chloride - 0.25 g, thiamine - 0.005 g in a container and adding up to 1 l of distilled water, the mixture is brought to a boil, boiled until all ingredients are dissolved, allowed to cool, the pH is adjusted to 7.4 and poured into graduated vials, sealed and sterilized at a temperature of 115 ° C for 15 minutes, cooled to a temperature of 56 ° C, normal inactivated rabbit serum is sterilely added at a rate of 40 ml / l and normal horse blood serum for cultivating mycoplasmas on nutrient media, liquid sterile at a rate of 20 ml/l, and sterilely poured from vials with bacteriological pipettes into bacteriological test tubes.
RU2024120768A 2024-07-19 Method for producing liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of leptospirosis agent RU2841394C1 (en)

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2841394C1 true RU2841394C1 (en) 2025-06-06

Family

ID=

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2202608C2 (en) * 2000-07-27 2003-04-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Ставропольская биофабрика" Method of leptospira culturing

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2202608C2 (en) * 2000-07-27 2003-04-20 Федеральное государственное унитарное предприятие "Ставропольская биофабрика" Method of leptospira culturing

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
WOLK D.M., et al. New Technologies in Clinical Microbiology. J. Clin. Microbiol. 2011; 49 (9): 62-7. *
ОНИЩЕНКО Г.Г. и др. Лабораторная диагностика опасных инфекционных болезней. Практическое руководство, Изд. 2-е, переработанное и дополненное, Москва: ЗАО "Шико", 2013, с. 468-498. КИСЕЛЕВА Е.Ю. и др. Методы лабораторной диагностики лептоспирозов: особенности постановки, преимущества и недостатки, Бюллетень ВСНЦ СО РАМН, 2015, N 3 (103), с. 83-93. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Ananthanarayan Ananthanarayan and Paniker's textbook of microbiology
Ehrenkranz et al. Antibiotic-sensitive Serratia marcescens infections complicating cardiopulmonary operations: contaminated disinfectant as a reservoir
Hajna et al. New enrichment and plating media for the isolation of Salmonella and Shigella organisms
Morton et al. The bacteriostatic and bactericidal actions of some mercurial compounds on hemolytic streptococci: in vivo and in vitro studies
RU2841394C1 (en) Method for producing liquid culture medium for culturing and accumulating microbial cells of leptospirosis agent
Rose et al. Resistance to American foulbrood in honey bees IX. Effects of honey-bee larval food on the growth and viability of Bacillus larvae
RU2084233C1 (en) Method of probiotic preparing for veterinary science
RU2759831C1 (en) Nutrient medium for cultivating microorganisms from burkholderia cepacia complex
RU2841400C1 (en) Method of producing liquid enriched nutrient medium for culturing leptospira
RU2206337C1 (en) Medicinal preparation for treatment of muscle dystonia and method for its preparing
RU2158758C2 (en) Nutrient medium for accumulation of listeria
RU2681285C1 (en) Nutrient medium for cultivation of brucella neotomae species cultivation
RU2455351C1 (en) Nutrient medium for cultivation of diphtheria bacteria
Ross et al. Agglutinins in serum and saliva of rabbits inoculated with B. acidophilus
RU2688335C1 (en) Dense nutrient medium for cultivation of brucellosis agent
RU2529364C1 (en) Biphasic transport nutrient medium for isolation and growing brucellar microbe
RU2748808C1 (en) Dense universal nutrient medium for growing brucella biomass
CN102517240B (en) Be applicable to the solid medium of Candida albicans and staphylococcus syntrophism
RU2827845C1 (en) Elective nutrient medium for pseudomonas aeruginosa recovery
RU2702174C1 (en) Dense nutrient medium for cultivation and collection of biomass of vaccine strain of plague microbe yersinia pestis ev
RU2681499C1 (en) Nutrient medium on basis of secondary product of beef hydrolyzate for cultivation of microorganisms
RU2100029C1 (en) Medium for culturing bacterium-symbiont bacillus pulvifaciens or bacillus subtilis - a producer of probiotic
RU2738858C1 (en) Method of extracting uncultivated forms of staphylococci
RU2650863C1 (en) Cardiovascular nutritive medium for diagnosis of infection in blood circular and method of its obtaining
RU2111245C1 (en) Nutrient medium for yeast-like fungi of genus candida culturing