PL188860B1 - Produkt tytoniowy, sposób wytwarzania produktu tytoniowego i sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych liściach tytoniu - Google Patents
Produkt tytoniowy, sposób wytwarzania produktu tytoniowego i sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych liściach tytoniuInfo
- Publication number
- PL188860B1 PL188860B1 PL98337582A PL33758298A PL188860B1 PL 188860 B1 PL188860 B1 PL 188860B1 PL 98337582 A PL98337582 A PL 98337582A PL 33758298 A PL33758298 A PL 33758298A PL 188860 B1 PL188860 B1 PL 188860B1
- Authority
- PL
- Poland
- Prior art keywords
- tobacco
- yellow
- content
- preserved
- leaves
- Prior art date
Links
- 235000002637 Nicotiana tabacum Nutrition 0.000 title claims abstract description 492
- 241000208125 Nicotiana Species 0.000 title claims abstract description 484
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 142
- 235000019505 tobacco product Nutrition 0.000 claims abstract description 88
- 230000005855 radiation Effects 0.000 claims abstract description 64
- 150000004005 nitrosamines Chemical class 0.000 claims abstract description 56
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 claims abstract description 45
- 235000019504 cigarettes Nutrition 0.000 claims abstract description 27
- 235000019506 cigar Nutrition 0.000 claims abstract description 11
- 241000196324 Embryophyta Species 0.000 claims abstract description 8
- FLAQQSHRLBFIEZ-UHFFFAOYSA-N N-Methyl-N-nitroso-4-oxo-4-(3-pyridyl)butyl amine Chemical compound O=NN(C)CCCC(=O)C1=CC=CN=C1 FLAQQSHRLBFIEZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 73
- 230000008569 process Effects 0.000 claims description 58
- XKLJHFLUAHKGGU-UHFFFAOYSA-N nitrous amide Chemical compound ON=N XKLJHFLUAHKGGU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 56
- 238000003306 harvesting Methods 0.000 claims description 41
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims description 37
- 238000004321 preservation Methods 0.000 claims description 34
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 claims description 26
- ZJOFAFWTOKDIFH-JTQLQIEISA-N 3-[(2s)-1-nitroso-3,6-dihydro-2h-pyridin-2-yl]pyridine Chemical compound O=NN1CC=CC[C@H]1C1=CC=CN=C1 ZJOFAFWTOKDIFH-JTQLQIEISA-N 0.000 claims description 22
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 claims description 17
- 230000001055 chewing effect Effects 0.000 claims description 14
- 238000010894 electron beam technology Methods 0.000 claims description 13
- -1 N-nitrosomethylamino Chemical group 0.000 claims description 9
- 239000011368 organic material Substances 0.000 claims description 9
- 244000061176 Nicotiana tabacum Species 0.000 claims description 8
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 7
- 238000001228 spectrum Methods 0.000 claims description 6
- 230000001413 cellular effect Effects 0.000 claims description 4
- 230000002401 inhibitory effect Effects 0.000 claims description 4
- XKABJYQDMJTNGQ-VIFPVBQESA-N n-nitrosonornicotine Chemical compound O=NN1CCC[C@H]1C1=CC=CN=C1 XKABJYQDMJTNGQ-VIFPVBQESA-N 0.000 claims description 3
- 238000007796 conventional method Methods 0.000 claims description 2
- 239000007788 liquid Substances 0.000 claims description 2
- 125000003349 3-pyridyl group Chemical group N1=C([H])C([*])=C([H])C([H])=C1[H] 0.000 claims 1
- 230000001603 reducing effect Effects 0.000 abstract description 17
- FFRBMBIXVSCUFS-UHFFFAOYSA-N 2,4-dinitro-1-naphthol Chemical compound C1=CC=C2C(O)=C([N+]([O-])=O)C=C([N+]([O-])=O)C2=C1 FFRBMBIXVSCUFS-UHFFFAOYSA-N 0.000 abstract description 11
- 230000000711 cancerogenic effect Effects 0.000 abstract description 8
- 231100000315 carcinogenic Toxicity 0.000 abstract description 7
- 231100000357 carcinogen Toxicity 0.000 abstract description 5
- 239000003183 carcinogenic agent Substances 0.000 abstract description 5
- 244000025254 Cannabis sativa Species 0.000 abstract 1
- 235000012766 Cannabis sativa ssp. sativa var. sativa Nutrition 0.000 abstract 1
- 235000012765 Cannabis sativa ssp. sativa var. spontanea Nutrition 0.000 abstract 1
- 241000366676 Justicia pectoralis Species 0.000 abstract 1
- 239000000523 sample Substances 0.000 description 88
- 238000012423 maintenance Methods 0.000 description 29
- 238000004383 yellowing Methods 0.000 description 18
- IOVCWXUNBOPUCH-UHFFFAOYSA-M Nitrite anion Chemical compound [O-]N=O IOVCWXUNBOPUCH-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 17
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Substances O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 17
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 16
- 239000000779 smoke Substances 0.000 description 16
- 239000013068 control sample Substances 0.000 description 13
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 12
- 241001301450 Crocidium multicaule Species 0.000 description 10
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 10
- 239000000796 flavoring agent Substances 0.000 description 10
- 235000019634 flavors Nutrition 0.000 description 10
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 description 9
- 230000009467 reduction Effects 0.000 description 8
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 8
- SOPPBXUYQGUQHE-JTQLQIEISA-N Anatabine Chemical compound C1C=CCN[C@@H]1C1=CC=CN=C1 SOPPBXUYQGUQHE-JTQLQIEISA-N 0.000 description 7
- 238000005520 cutting process Methods 0.000 description 7
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 7
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 7
- 238000012360 testing method Methods 0.000 description 7
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 6
- 239000003826 tablet Substances 0.000 description 6
- 229930013930 alkaloid Natural products 0.000 description 5
- 230000005670 electromagnetic radiation Effects 0.000 description 5
- 230000007246 mechanism Effects 0.000 description 5
- 230000000391 smoking effect Effects 0.000 description 5
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 5
- 241000894007 species Species 0.000 description 5
- SNICXCGAKADSCV-JTQLQIEISA-N (-)-Nicotine Chemical compound CN1CCC[C@H]1C1=CC=CN=C1 SNICXCGAKADSCV-JTQLQIEISA-N 0.000 description 4
- 229910002651 NO3 Inorganic materials 0.000 description 4
- NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N Nitrate Chemical compound [O-][N+]([O-])=O NHNBFGGVMKEFGY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 238000004458 analytical method Methods 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- 238000009924 canning Methods 0.000 description 4
- SNICXCGAKADSCV-UHFFFAOYSA-N nicotine Natural products CN1CCCC1C1=CC=CN=C1 SNICXCGAKADSCV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 229960002715 nicotine Drugs 0.000 description 4
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 4
- 230000002411 adverse Effects 0.000 description 3
- 238000013459 approach Methods 0.000 description 3
- 230000000903 blocking effect Effects 0.000 description 3
- 229930002875 chlorophyll Natural products 0.000 description 3
- 235000019804 chlorophyll Nutrition 0.000 description 3
- ATNHDLDRLWWWCB-AENOIHSZSA-M chlorophyll a Chemical compound C1([C@@H](C(=O)OC)C(=O)C2=C3C)=C2N2C3=CC(C(CC)=C3C)=[N+]4C3=CC3=C(C=C)C(C)=C5N3[Mg-2]42[N+]2=C1[C@@H](CCC(=O)OC\C=C(/C)CCC[C@H](C)CCC[C@H](C)CCCC(C)C)[C@H](C)C2=C5 ATNHDLDRLWWWCB-AENOIHSZSA-M 0.000 description 3
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 3
- 239000002778 food additive Substances 0.000 description 3
- 235000013373 food additive Nutrition 0.000 description 3
- 210000002816 gill Anatomy 0.000 description 3
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 3
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 3
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 description 3
- SOPPBXUYQGUQHE-UHFFFAOYSA-N Anatabine Natural products C1C=CCNC1C1=CC=CN=C1 SOPPBXUYQGUQHE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 2
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 2
- 230000015556 catabolic process Effects 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 2
- 230000006835 compression Effects 0.000 description 2
- 238000007906 compression Methods 0.000 description 2
- 238000010586 diagram Methods 0.000 description 2
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 2
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 description 2
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 2
- 230000006870 function Effects 0.000 description 2
- 239000007937 lozenge Substances 0.000 description 2
- 230000009935 nitrosation Effects 0.000 description 2
- 238000007034 nitrosation reaction Methods 0.000 description 2
- 235000015097 nutrients Nutrition 0.000 description 2
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 238000003825 pressing Methods 0.000 description 2
- 238000011160 research Methods 0.000 description 2
- 239000002356 single layer Substances 0.000 description 2
- 238000010025 steaming Methods 0.000 description 2
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 2
- 230000032258 transport Effects 0.000 description 2
- OGRXKBUCZFFSTL-UHFFFAOYSA-N 4-(methylnitrosamino)-1-(3-pyridyl)-1-butanol Chemical compound O=NN(C)CCCC(O)C1=CC=CN=C1 OGRXKBUCZFFSTL-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- NZSNJPDBPMIBSP-UHFFFAOYSA-N 4-[methyl(nitroso)amino]-4-pyridin-3-ylbutanoic acid Chemical compound OC(=O)CCC(N(N=O)C)C1=CC=CN=C1 NZSNJPDBPMIBSP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- ONPGOSVDVDPBCY-CQSZACIVSA-N 6-amino-5-[(1r)-1-(2,6-dichloro-3-fluorophenyl)ethoxy]-n-[4-(4-methylpiperazine-1-carbonyl)phenyl]pyridazine-3-carboxamide Chemical compound O([C@H](C)C=1C(=C(F)C=CC=1Cl)Cl)C(C(=NN=1)N)=CC=1C(=O)NC(C=C1)=CC=C1C(=O)N1CCN(C)CC1 ONPGOSVDVDPBCY-CQSZACIVSA-N 0.000 description 1
- 241000251169 Alopias vulpinus Species 0.000 description 1
- 206010002660 Anoxia Diseases 0.000 description 1
- 241000976983 Anoxia Species 0.000 description 1
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 1
- UGFAIRIUMAVXCW-UHFFFAOYSA-N Carbon monoxide Chemical compound [O+]#[C-] UGFAIRIUMAVXCW-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229910000975 Carbon steel Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000005979 Citrus limon Nutrition 0.000 description 1
- 244000131522 Citrus pyriformis Species 0.000 description 1
- 229920001875 Ebonite Polymers 0.000 description 1
- 206010021143 Hypoxia Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 108090000913 Nitrate Reductases Proteins 0.000 description 1
- 108010025915 Nitrite Reductases Proteins 0.000 description 1
- 241001479588 Packera glabella Species 0.000 description 1
- 229910000831 Steel Inorganic materials 0.000 description 1
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 1
- 230000009471 action Effects 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 150000003797 alkaloid derivatives Chemical class 0.000 description 1
- 229910052782 aluminium Inorganic materials 0.000 description 1
- XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N aluminium Chemical compound [Al] XAGFODPZIPBFFR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000007953 anoxia Effects 0.000 description 1
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 1
- 230000009286 beneficial effect Effects 0.000 description 1
- 230000005540 biological transmission Effects 0.000 description 1
- 239000010962 carbon steel Substances 0.000 description 1
- 235000021466 carotenoid Nutrition 0.000 description 1
- 150000001747 carotenoids Chemical class 0.000 description 1
- 229940112822 chewing gum Drugs 0.000 description 1
- 235000015218 chewing gum Nutrition 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000010411 cooking Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 238000006731 degradation reaction Methods 0.000 description 1
- 238000007791 dehumidification Methods 0.000 description 1
- 230000008021 deposition Effects 0.000 description 1
- 238000007599 discharging Methods 0.000 description 1
- 239000000428 dust Substances 0.000 description 1
- 230000005611 electricity Effects 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 210000001723 extracellular space Anatomy 0.000 description 1
- 238000000605 extraction Methods 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000003546 flue gas Substances 0.000 description 1
- 239000006260 foam Substances 0.000 description 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 description 1
- 239000007789 gas Substances 0.000 description 1
- 239000001046 green dye Substances 0.000 description 1
- 235000013402 health food Nutrition 0.000 description 1
- 239000000411 inducer Substances 0.000 description 1
- 230000005764 inhibitory process Effects 0.000 description 1
- 238000009434 installation Methods 0.000 description 1
- 239000012212 insulator Substances 0.000 description 1
- 230000003993 interaction Effects 0.000 description 1
- 230000001678 irradiating effect Effects 0.000 description 1
- 239000010410 layer Substances 0.000 description 1
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 1
- 239000000463 material Substances 0.000 description 1
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 1
- 230000004060 metabolic process Effects 0.000 description 1
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 1
- 229910052751 metal Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000002184 metal Substances 0.000 description 1
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 1
- 230000004048 modification Effects 0.000 description 1
- 238000012986 modification Methods 0.000 description 1
- IIDMFFRDEFHWCJ-UHFFFAOYSA-N n-(4-hydroxy-1-pyridin-3-ylbutyl)-n-methylnitrous amide Chemical compound OCCCC(N(N=O)C)C1=CC=CN=C1 IIDMFFRDEFHWCJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- VOVZXURTCKPRDQ-CQSZACIVSA-N n-[4-[chloro(difluoro)methoxy]phenyl]-6-[(3r)-3-hydroxypyrrolidin-1-yl]-5-(1h-pyrazol-5-yl)pyridine-3-carboxamide Chemical compound C1[C@H](O)CCN1C1=NC=C(C(=O)NC=2C=CC(OC(F)(F)Cl)=CC=2)C=C1C1=CC=NN1 VOVZXURTCKPRDQ-CQSZACIVSA-N 0.000 description 1
- 150000002826 nitrites Chemical class 0.000 description 1
- 125000000018 nitroso group Chemical group N(=O)* 0.000 description 1
- 244000045947 parasite Species 0.000 description 1
- 230000035515 penetration Effects 0.000 description 1
- 230000008659 phytopathology Effects 0.000 description 1
- 239000000049 pigment Substances 0.000 description 1
- 239000004033 plastic Substances 0.000 description 1
- 231100000614 poison Toxicity 0.000 description 1
- 230000007096 poisonous effect Effects 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002265 prevention Effects 0.000 description 1
- QQONPFPTGQHPMA-UHFFFAOYSA-N propylene Natural products CC=C QQONPFPTGQHPMA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 125000004805 propylene group Chemical group [H]C([H])([H])C([H])([*:1])C([H])([H])[*:2] 0.000 description 1
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 1
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 1
- 125000004076 pyridyl group Chemical group 0.000 description 1
- 238000002310 reflectometry Methods 0.000 description 1
- 230000000284 resting effect Effects 0.000 description 1
- 150000003335 secondary amines Chemical class 0.000 description 1
- 238000002791 soaking Methods 0.000 description 1
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 1
- 230000007480 spreading Effects 0.000 description 1
- 238000003892 spreading Methods 0.000 description 1
- 239000010959 steel Substances 0.000 description 1
- 235000000346 sugar Nutrition 0.000 description 1
- 150000008163 sugars Chemical class 0.000 description 1
- 150000003512 tertiary amines Chemical class 0.000 description 1
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 1
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 1
Classifications
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A24—TOBACCO; CIGARS; CIGARETTES; SIMULATED SMOKING DEVICES; SMOKERS' REQUISITES
- A24B—MANUFACTURE OR PREPARATION OF TOBACCO FOR SMOKING OR CHEWING; TOBACCO; SNUFF
- A24B3/00—Preparing tobacco in the factory
- A24B3/10—Roasting or cooling tobacco
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A24—TOBACCO; CIGARS; CIGARETTES; SIMULATED SMOKING DEVICES; SMOKERS' REQUISITES
- A24B—MANUFACTURE OR PREPARATION OF TOBACCO FOR SMOKING OR CHEWING; TOBACCO; SNUFF
- A24B15/00—Chemical features or treatment of tobacco; Tobacco substitutes, e.g. in liquid form
- A24B15/18—Treatment of tobacco products or tobacco substitutes
-
- A—HUMAN NECESSITIES
- A24—TOBACCO; CIGARS; CIGARETTES; SIMULATED SMOKING DEVICES; SMOKERS' REQUISITES
- A24B—MANUFACTURE OR PREPARATION OF TOBACCO FOR SMOKING OR CHEWING; TOBACCO; SNUFF
- A24B15/00—Chemical features or treatment of tobacco; Tobacco substitutes, e.g. in liquid form
- A24B15/18—Treatment of tobacco products or tobacco substitutes
- A24B15/22—Treatment of tobacco products or tobacco substitutes by application of electric or wave energy or particle radiation
Landscapes
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- General Chemical & Material Sciences (AREA)
- Health & Medical Sciences (AREA)
- General Health & Medical Sciences (AREA)
- Toxicology (AREA)
- Manufacture Of Tobacco Products (AREA)
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
Abstract
1. Produkt tytoniowy zawierajacy konserwowany n ie zielony lub zólty sypki tyton Virginia nadajacy sie do kon- sumpcji przez czlowieka, zasadniczo pozbawiony plynów organicznych stosowanych do odciagniecia napecznialych materialów organicznych, znam ienny tym, ze nie-zielony lub zólty sypki tyton ma laczna zawartosc N'-nitrozonomikotyny, 4- (N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydyto)-1-butanonu, N’ -nitrozo-anata biny i N -nitrozoanabazyny mniejsza niz 0,2 ng/g. 38. Sposób zapobiegania tworzeniu sie nitrozoamin w zebranych roslinach tytoniu, znam ienny tym, ze w (i) etapie (a) z lodyg tytoniu usuw a sie liscie, (b) sciska sie liscie tytoniu do usuniecia nadm iaru wilgoci lub (c) poddaje sie liscie tytoniu dzialaniu pary oraz w (ii) etapie poddaje sie przynajmniej czesc plonu dzialaniu promieniowania mikrofalowego, przy czym czesc ta jest zólta i nie poddana uprzedniej konserwacji i znaj- duje sie w stanie pozwalajacym na powstrzymanie wytwarzania nitrozoamin w czasie wystarczajacym na zmniejszenie ilosci lub zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej nitrozoaminy i ze promieniowaniu mikrofalowemu poddaje sie lisc tytoniu lub jego czesc po rozpoczeciu zólkniecia lisci a przed zasadniczym nagromadzeniem nitrozoamin wlasciwych dla lisci tytoniu a ponadto, ze lisc tytoniu lub jego czesc umieszcza sie w warstwie o pojedynczej grubosci, bez sklada- nia lisci w stos lub w sterty 40. Sposób zapobiegania tworzeniu sie nitrozoamin w zebranych roslinach tytoniu, znam ienny tym, ze poddaje sie przynajmniej czesc plonu skoncentrowanej formie promienio- wania o czestotliwosci wyzszej niz zakres mikrofal widma elektromagnetycznego, przy czym ta czesc nie jest poddawana konserwowaniu, jest zólta 1 znajduje sie w stanie ....................... FIG. 1 PL PL PL PL PL
Description
Przedmiotem wynalazku są produkty tytoniowe mające niską zawartość nitrozoamin i sposoby wytwarzania takich produktów tytoniowych. Wynalazek dotyczy także sposobów obróbki tytoniu dla zredukowania zawartości lub zapobiegania tworzeniu się szkodliwych nitrozoamin występujących normalnie w tytoniu.
Zgłoszenie obecne stanowi częściową kontynuację zgłoszenia nr seryjny 08/879905 złożonego 20 czerwca 1997, stanowiącego częściową kontynuację zgłoszenia nr seryjny 08/757104 złożonego 2 grudnia 1996, stanowiącego częściową kontynuację zgłoszenia nr seryjny 08/739942 złożonego 30 października 1996, obecnie zaniechanego, stanowiącego częściową kontynuację zgłoszenia nr seryjny 08/725691, złożonego 23 września 1996, obecnie zaniechanego, stanowiącego częściową kontynuację zgłoszenia nr seryjny 08/671718, złożonego 28 czerwca 1996. Obecne zgłoszenie i zgłoszenia cytowane powyżej, z wyjątkiem zgłoszenia nr seryjny 08/671718, złożonego 28 czerwca 1996, zastrzegają pierwszeństwo z tymczasowego zgłoszenia nr seryjny 60/023205, złożonego 5 sierpnia 1996.
Dotychczas opisywano stosowanie energii mikrofalowej do osuszania produktów rolnych. Zastosowanie energii mikrofalowej do utrwalania tytoniu jest ujawnione w patencie USA nr 4 430 806, Hopkins. W patencie USA nr 4 898 189 Wochnowski ujawnia stosowanie mikrofal do obróbki świeżego liścia tytoniowego dla kontrolowania zawartości w procesie przygotowania do magazynowania lub wysyłki. W patencie USA nr 3 699 976 opisano energię mikrofal stosowaną do zabijania pasożytów tytoniowych. Ponadto ujawniono technologię impregnowania tytoniu obojętnymi płynami organicznymi (patent USA nr 4 821 747) dla odciągania spęcznionych materiałów organicznych za pomocą substancji przemywającej, w której mieszaninę poddaje się oddziaływaniu energii mikrofal. W następnym rozwiązaniu ujawniono stosowanie energii mikrofal jako mechanizmu suszącego materiał zawierający wytłoczony tytoń (patent USA nr 4 874 000). W patencie USA nr 3 773 055 Stungis ujawnia stosowanie mikrofal do suszenia i spęczniania papierosów wytworzonych z wilgotnego tytoniu.
Uprzednie próby redukowania zawartości smoły i szkodliwych rakotwórczych nitrozoamin obejmowały głównie stosowanie filtrów w wyrobach tytoniowych. Ponadto dokonywano prób stosowania dodatków do blokowania skutków występowania szkodliwych substancji rakotwórczych w tytoniu. Próby te nie redukowały jednak rakotwórczych skutków towarzyszących paleniu tytoniu. Wiadomo, że świeżo cięty zielony tytoń w zasadzie nie zawiera rakotwórczych nitrozoamin. Patrz np. Wiemik i in. „Wpływ konserwowania powietrzem na skład chemiczny tytoniu” Postępy w nauce o tytoniu, Tom 21 str. 39 i następne Sympozjum na 49 Spotkaniu podczas Konferencji Chemików z branży tytoniowej wrzesień 24-27, 1995 Lexington, Kentucky (dalej Wiemik i in.”). Jednakże konserwowany tytoń zawiera liczne nitrozoaminy, obejmujące szkodliwą rakotwórczą N'-nitrozonornikotynę(NNN) i 3-(N-nitrozometylo-amino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon(NNK). Wiadomo, że tego rodzaju nitrozoaminy powstają po żniwach podczas procesu konserwowania jak opisano poniżej. Niestety, świeżo cięty zielony tytoń nie nadaje się do palenia lub innego spożycia.
188 860
W 1993 i 94, Burton i inni w Uniwersytecie w Kentucky przeprowadzili pewne eksperymenty dotyczące nitrozoamin specyficznych dla tytoniu (TSNA) jak przedstawiono w streszczeniu „Redukcja Azotynu - Azotu i Nitrozoamin N' specyficznych dla tytoniu w Konserwowanym Powietrzem Tytoniu przez Podnoszenie Temperatur Suszenia”, Agronomy & Phytopathology Joint Meeting, CORESTA, Oxford 1995. Burton i in. stwierdzili, że suszenie liści tytoniowych po ścięciu przez 24 godziny w .71°C w rozmaitych etapach konserwowania powietrzem, włącznie z końcem etapu żó-łknienia (EOY), eOy+3, EOY+5, itd. spowodowało pewną redukcję poziomów nitrozoaminy. Odniesiono się również do suszenia zamrożeniowego i oddziaływania mikrofal na niektóre próbki, bez podawania szczegółów a nie rezultatów. Zgłaszający potwierdził, że w bieżących pracach prowadzonych przez Burton i in. w Uniwersytecie Kentucky obróbka mikrofalami okazała się niezadowalająca. Niektóre aspekty badań Burtona i in., 1993-94 przedstawiono Wiemik i in., na stronach 54-57, pod tytułem „Zmodyfikowane Konserwowanie Powietrzem”. Artykuł Wiemika i in. postuluje, że poddawanie próbek liścia tytoniowego, pobieranych w rozmaitych etapach konserwowania powietrzem szybkiemu suszeniu w 70°C przez 24 godziny spowoduje usunięcie nadmiaru wody i zredukowanie wzrostu mikroorganizmów, i dlatego można uniknąć nagromadzenia azotynów i nitrozoaminy właściwej dla tytoniu (TSNA). W tabeli 2 na str. 56 Wiemik i in. zawarł niektóre dane zbiorcze Burtona i in. dotyczące zawartości azotynu i TSNA w próbkach KY160 i KY171 blaszek i żyłek. Zawarto tam dane pochodzące z suszenia zamrożeniowego i testów szybkiego suszenia, jednakże nie wspomniano o próbkach poddawanych działaniu mikrofal. Artykuł ten zawiera następujące stwierdzenie:
„Z badań tych można wyciągnąć wniosek że może być możliwe redukowanie poziomów azotynów i gromadzenia TSNA w blaszkach i żyłkach przez przykładanie ciepła (70°C) do ciemnego tytoniu po utracie integralności komórkowej liścia. Szybkie suszenie liścia tytoniowego w tym etapie konserwowania redukuje aktywność drobnoustrojów która występuje podczas powolnego postępowania w temperaturze otoczenia. Jednakże należy dodać, że tego rodzaju obróbka pogarsza jakość liścia tytoniowego”. Artykuł Wiemika (str. 56) omawia również tradycyjne konserwowanie tytoniu w Polsce (Skroniowski) jako przykład dwuetapowej procedury konserwowania. Artykuł ten stwierdza, że tytoń jest najpierw konserwowany powietrzem i gdy liść staje się żółty lub zbrązowieje, wówczas tytoń zostaje ogrzany do 65°C przez dwa dni dla zakonserwowania łodygi. Analizą tytoniu wytworzonego w ten sposób wykazała, że zarówno wartości azotynów jak i TSNA były niskie tj. mniej niż 10 mikrogramów na gram i odpowiednio 0,6 - 2,1 mikrograma na gram. Wiemik i in. stwierdzili, że rezultaty te dawały się wyjaśnić przez szybkie ogrzewanie, które uniemożliwiało dalszy wzrost bakterii. Wiemik i in, również stwierdzili jednakże, że w tytoniu poddawanym konserwowaniu powietrzem w Polsce otrzymano niskie wartości azotynu TSNA, mniejsze niż 15 mikrogramów na gram azotynu i 0,2 mikrogramy na gram TSNA.
Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń Virginia nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, według wynalazku charakteryzuje się tym, że nie-zielony lub żółty sypki tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(Nnitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejsza niż 0,2 (igzg. Ta zawartość wynosi 0,15 (ig/g lub mniej.
Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia i Burley, nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, charakteryzuje się tym, nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(N-nitrczo-metylcamino)-1-(3-pirydylc)-1butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszącą 0,05 (ig/g lub mniej. Konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub tytoń Burley.
Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia i Burley, nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, charakteryzuje się według wynalazku tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(N-nitrozcmetyloamino)-1-(38
188 860 pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozoanatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszącą 0,05 pg/g lub mniej. Konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub Burley.
Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń Virginia nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, charakteryzuje się tym, że niezielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(N-nitrozometyloamino)-1(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozoanatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejszą niż 0,2 pg/g. Ta zawartość wynosić może 0,15 (ig/g lub mniej a nawet 0,1 (ig/g lub mniej.
Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia, Stany Zjednoczone Ameryki i Burley, Stany Zjednoczone Ameryki, nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, według wynalazku charakteryzuje się tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(N-nitrozo-metyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszącą mniej niż 0,2 pg/g. Konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub tytoń Burley. Ta zawartość wynosi 0,15 pg/g lub mniej a nawet 0,1 pg/g lub mniej.
Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia, Stany Zjednoczone Ameryki i Burley, Stany Zjednoczone Ameryki, nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, charakteryzuje się tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejszą 0,2 (ig/g. Konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub tytoń Burley. Zawartość wynosi 0,15 pg/g lub mniej, nawet 0,1 pg/g lub mniej.
Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, charakteryzuje się tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1butanonu, wynoszącą 0,002 pg/g lub mniej. Zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3pirydylo)-1-butanonu wynosi 0,001 pg/g lub mniej. Konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub tytoń Burley.
Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń, nadający się do konsumpcji przez człowieka, mający postać liścia, charakteryzuje się tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu wynoszącą 0,002 pg/g lub mniej.
Zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu wynosić może 0,001 pg/g lub mniej. Konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia lub Burley.
Tytoń odpowiedni do konsumpcji przez człowieka stanowi konserwowany żółty tytoń. Produkt tytoniowy jest wybrany z grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń.
Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń nadający się do konsumpcji przez człowieka, charakteryzuje się według wynalazku tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy wybranej z grupy zawierającej N'-nitrozonomikotynę, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozoanatabinę i N'-nitrozoanabazynę, przynajmniej około 75% wag. niższą niż zawartość przynajmniej jednej właściwej dla danego tytoniu nitrozoaminy w konserwowanym brązowym tytoniu, wytwarzanym z tego samego plonu tytoniu, z którego uzyskano tytoń niezielony lub żółty, ale który był konserwowany bez etapów przewidzianych dla redukcji zawartości tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy. Zawartość ta jest przynajmniej około 90% wag. niższa niż zawartość konserwowanego brązowego tytoniu a nawet ta zawartość jest przynajmniej około 95% wag. niższa niż zawartość konserwowanego brązowego tytoniu. Produkt tytoniowy stanowi produkt wybrany z grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń.
Sposób wytwarzania produktu tytoniowego wybranego spośród grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń, w którym zebrane zielone liście tytoniu najpierw umieszcza się w stodole na określony czas, typowo na
188 860
24-48 godzin do zżółknięcia niekonserwowanych liści tytoniu a następnie konserwowane liście tytoniu podlegają cięciu i przetwarzaniu konwencjonalnymi metodami w produkty tytoniowe, charakteryzuje się według wynalazku tym, że zebrane niekonserwowane liście tytoniu poddaje się działaniu skoncentrowanej formy promieniowania o częstotliwości wyższej od częstotliwości zakresu mikrofal widma elektromagnetycznego, przy czym liście są żółte, niekonserwowane i znajdują się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania właściwych dla tytoniu nitrozoamin, w czasie wystarczającym na zmniejszenie ilości lub zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w liściach. Liście poddaje się promieniowaniu po rozpoczęciu żółknięcia liści a przed zasadniczym nagromadzeniem w liściach nitrozoamin właściwych dla danego tytoniu.
Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, według wynalazku wyróżnia się tym, że z łodyg tytoniu usuwa się liście, potem ściska się liście tytoniu do usunięcia nadmiaru wilgoci lub poddaje się liście tytoniu działaniu pary oraz poddaje się przynajmniej część plonu działaniu promieniowania mikrofalowego, przy czym część ta jest żółta i nie poddana uprzedniej konserwacji i znajduje się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania nitrozoamin w czasie wystarczającym na zmniejszenie ilości lub zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej nitrozoaminy, i że promieniowaniu mikrofalowemu poddaje się liść tytoniu lub jego część po rozpoczęciu żółknięcia liści a przed zasadniczym nagromadzeniem nitrozoamin właściwych dla liści tytoniu a ponadto, że liść tytoniu lub jego część umieszcza się w warstwie o pojedynczej grubości, bez składania liści w stos lub w sterty. Dokonuje się wyboru między etapem ściskania lub poddawania liści działaniu pary a liście tytoniu pozostają na łodygach.
Kolejny sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, według wynalazku charakteryzuje się tym, że poddaje się przynajmniej część plonu skoncentrowanej formie promieniowania o częstotliwości wyższej niż zakres mikrofal widma elektromagnetycznego, przy czym ta część nie jest poddawana konserwowaniu, jest żółta i znajduje się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania nitrozoamin, w czasie wystarczającym na zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej nitrozoaminy. Promieniowaniu poddaje się liść tytoniu lub jego część przed zasadniczym nagromadzeniem w liściu lub jego części nitrozoamin właściwych dla danego tytoniu.
Poddawanie promieniowaniu przeprowadza się przed zasadniczą utratą integralności komórkowej rośliny. Tytoń stanowi odmianę konserwowaną w kanale dymowym (piecowo), a poddawanie promieniowaniu przeprowadza się w przeciągu około 24 do około 72 godzin po zebraniu, przy czym promieniowaniu poddaje się plon w czasie przynajmniej około jednej sekundy przy ustalonym wcześniej poziomie mocy. Poddawaniem promieniowaniu zapobiega się zwykłemu gromadzeniu się w liściu przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu. Ta przynajmniej jedna nitrozoamina właściwa dla tytoniu wybrana jest z grupy obejmującej N'-nitrozonomikotynę, 4-(N-nitrozometyloamino)-1 -(3-pirydylo)-1 -butanon, N'-nitrozoanatabinę i N'-nitrozoanabazynę. Promieniowaniu poddaje się liść tytoniu ułożony w warstwie o pojedynczej grubości bez składania w stos lub w sterty. Przed promieniowaniem najpierw usuwa się liście tytoniu z łodyg, potem prasuje się liście tytoniu do usunięcia nadmiaru wilgoci lub poddaje się liście tytoniu działaniu pary. Część plonu suszy się po etapie promieniowania.
Promieniowanie jest generowane za pomocą wiązki laserowej a promieniowanie stanowi wiązka elektronowa wygenerowana przez akcelerator elektronowy.
Promieniowanie stanowi promieniowanie gamma.
Inny sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, według wynalazku charakteryzuje się tym, że suszy się przynajmniej część plonu, przy czym ta część stanowi niekonserwowany, żółty tytoń w stanie nadającym się do powstrzymania formowania nitrozoamin, za pomocą konwekcji krążącego powietrza w temperaturze od około 100°F (37,7°C) do około 500°F (260°C) przez czas wystarczający do zasadniczego zapobiegnięcia formowaniu się przynajmniej jednej nitrozoaminy.
Suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się na liściu tytoniowym lub jego części przed znaczącym nagromadzeniem nitrozoamin w liściu i suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się przed znaczącą utratą integralności komórkowej roślin.
188 860
Tytoń stanowi tytoń sypki Virginia, przy czym suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się w przeciągu około 24 do 72 godzin po zebraniu.
Suszenie za pomocą konwekcji krążącym powietrzem zapobiega się normalnemu gromadzeniu się przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w liściu. Ta przynajmniej jedna właściwa dla tytoniu nitrozoamina jest wybrana z grupy zawierającej N'-ni(rozonomikotynę, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozo-anatabinę i N'-nitrozoanabazynę.
Część plonu tytoniu, po suszeniu za pomocą konwekcji krążącym powietrzem, ma zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy, która jest przynajmniej 75% wag. niższa niż zawartość tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w konserwowanym brązowym tytoniu wytworzonym z tego samego plonu tytoniu, jednak który był konserwowany bez etapów przeznaczonych do redukcji zawartości tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy. Zawartość jest przynajmniej około 90% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu a nawet ta zawartość jest przynajmniej około 95% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu według innej postaci wykonania wynalazku charakteryzuje się tym, że suszy się przynajmniej część plonu, przy czym ta część stanowi niekonserwowany, żółty tytoń w stanie nadającym się do powstrzymania formowania 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, za pomocą konwekcji krążącym powietrzem w temperaturze od około 100°F (37,7°C) do około 500°F (260°C) przez czas wystarczający do zasadniczego zapobiegnięcia formowaniu się 4-(Nnitrozometyloamino)-! -(3-pirydylo)-1 -butanonu.
Tytoń stanowi tytoń sypki Virginia, przy czym suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się w przeciągu około 24 do 72 godzin po zebraniu.
Część plonu tytoniu, po suszeniu za pomocą konwekcji krążącego powietrza, ma zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, która jest przynajmniej 75% wag. niższa niż zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu w konserwowanym brązowym tytoniu utworzonym z tego samego plonu tytoniu, jednak który był konserwowany bez etapów przeznaczonych do redukcji zawartości 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3pirydylo)-1 -butanonu.
Ta zawartość jest przynajmniej około 90% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu a nawet ta zawartość jest przynajmniej około 95% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
Celem wynalazku jest znacznie wyeliminowanie lub zredukowanie zawartości nitrozoamin tytoniu przeznaczonym do palenia lub innego zużycia. Następnym celem wynalazku jest zredukowanie potencjału rakotwórczego produktów tytoniowych, obejmujących papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę zawierającą tytoń oraz tabletki tytoniowe.
Następnym celem wynalazku jest zasadnicze wyeliminowanie lub znaczne zredukowanie ilości nitrozoaminy właściwej dla tytoniu, obejmującej N'-nitrozonomikotynę (NNN), 4(N-nitrometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon (NNK), N'-nitrozoanatabinę (NAT) i N'nitrozo-anabazynę (NAB), w tego rodzaju produktach tytoniowych.
Następnym celem wynalazku jest obróbka niekonserwowanego tytoniu w odpowiednim czasie po żniwach tak, aby utrzymać prowadzenie procesu konserwowania bez ujemnego wpływu na przydatność tytoniu do spożycia przez ludzi.
Następnym celem wynalazku jest zredukowanie zawartości nitrozoamin właściwych dla tytoniu w całkowicie zakonserwowanym tytoniu.
Jeszcze innym celem wynalazku jest zredukowanie zawartości nitrozoamin właściwych dla tytoniu, w szczególności NNN i NNK i ich metabolitów, zawartych w tytoniu użytkowanym przez ludzi, przez opracowanie produktu tytoniowego nadającego się do użytku przez człowieka, który to produkt zawiera znacząco zredukowaną ilość nitrozoamin właściwych dla tytoniu, tym samym obniżając potencjał rakotwórczy takiego produktu. Korzystnie produkt tytoniowy stanowi papieros, cygaro, tytoń do żucia względnie guma lub pastylka zawierająca tytoń.
Te i inne cele i korzyści według wynalazku mogą być uzyskane poprzez proces redukowania ilości lub zapobiegania w wytwarzaniu nitrozoaminy w zżętym tytoniu, obejmujący poddawanie przynajmniej części zbioru tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowe188 860 go, przy czym ta część niekonserwowana jest w stanie nadającym się do zredukowania ilości nitrozoaminy lub przyblokowania wytwarzania nitrozoaminy, przez czas wystarczający dla redukowania tej ilości lub do zasadniczego zahamowania formowania się przynajmniej jednej nitrozoaminy.
Zaleca się aby w procesie według wynalazku etap poddawania promieniowaniu mikrofalowemu był prowadzony na liściach tytoniu lub na ich częściach po początku żółknięcia liści i przed znaczącym nagromadzeniem nitrozoamin właściwych dla tytoniu w liściu. Zaleca się również, aby w procesie według wynalazku etap poddawania promieniowaniu mikrofalowemu był przeprowadzony przed zasadniczą utratą integralności komórkowej liścia.
W dodatkowych przykładach wykonania sposobu tytoń stanowi tytoń sypki a etap poddawania promieniowaniu mikrofalowemu przeprowadza się w przeciągu około 24 do około 72 godziny po żniwach, a nawet korzystnie w przeciągu około 24 do około 36 godzin po żniwach. W jeszcze innych rozwiązaniach zżęty tytoń jest utrzymywany w powyższych warunkach temperatury otoczenia w środowisku kontrolowanym przed etapem poddawania promieniowaniu mikrofalowemu. Zalecane aspekty procesu obejmują przed poddaniem liścia tytoniowego korzystnie zawierającego łodygę oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego stosowania etapu fizycznego ściskania liścia dla wyciśnięcia z niego nadmiaru wilgoci, dla zapewnienia bardziej jednolitego suszenia przez urządzenie mikrofalowe. Etap ten może być korzystnie przeprowadzany przez przepuszczanie liścia przez parę odpowiednio oddalonych obrotowych cylindrycznych walców przed wejściem do komory mikrofalowej.
W innych przykładach wykonania wynalazku promieniowanie mikrofalowe ma częstotliwość około 900 do około 2500 MHz i jest stosowane przez okres przynajmniej około 1 sekundy a korzystnie od około 10 sekund do około 5 minut ze wstępnie określonym poziomem mocy. Stosowany poziom mocy określa długość czasu poddawania tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego i mieści się w zakresie od około 600 do około 1000 watów przy stosowaniu konwencjonalnych kuchennych pieców mikrofalowych, do kilku setek lub więcej kilowatów dla przemysłowych aplikatorów wielomodułowych. Zalecane poziomy mocy aplikatorów do obsługi pojedynczych liści są w zakresie od około 2 do około 75 kilowatów, korzystniej od około 5 do około 50 kilowatów, co umożliwia przeprowadzenie stosunkowo szybkiej obróbki.
Według wynalazku zaleca się również stosowanie promieniowania mikrofalowego na liść lub jego część przez czas wystarczający do skutecznego osuszenia liścia bez jego spalenia tak aby nadawał się do użycia przez człowieka.
Wynalazek obejmuje również poddawanie liści tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego dla uniknięcia normalnego gromadzenia przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu, takiej jak N'-nitrozonomikotyna, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozoanatabina i N'-nitrozoanabazyna.
Wynalazek obejmuje również produkt tytoniowy obejmujący niesurowy tytoń nadający się do użytku przez człowieka i mający zawartość przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu niższą niż w konwencjonalnie konserwowanym tytoniu. W rozwiązaniach zalecanych niesurowy produkt tytoniowy ma zawartość TSNa (NNN, NNK, NAB i NAT) mniejszą niż 0,2 mg/g, bardziej korzystnie mniej niż około 0,15 mg/g, a bardziej korzystnie mniej niż około 0,1 mg/g, zawartość NNN mniejszą niż około 0,15 mg/g, bardziej korzystnie mniej niż około 0,10 mg/g a bardziej korzystnie mniej niż około 0,05 mg/g, i zawartość NNK mniej niż około 0,002 mg/g, bardziej korzystnie mniej niż około 0,001 mg/g a bardziej korzystnie mniej niż około 0,0005 mg/g.
Wynalazek dotyczy produktu tytoniowego stanowiącego wysuszony tytoń żółty odpowiedni do użytku dla ludzi i mający mniejszą zawartość nitrozoaminy właściwej dla tytoniu niż konwencjonalnie konserwowany tytoń. W rozwiązaniach zalecanych żółty tytoń ma zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT), zawartość NNN i zawartość NNK w obrębie powyższych zalecanych zakresów. W innych rozwiązaniach, niesurowy lub żółty produkt tytoniowy stanowi niesurowy lub żółty tytoń odpowiedni do użytku dla ludzi i mający zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) w obrębie około 25% wagowo zawartości takiego TSNA w świeżo zżętym surowym tytoniu, z którego wytworzono ten produkt. Zaleca się, aby niesurowy lub żółty produkt tytoniowy miał zawartość TSNA w zakresie około 10% wagowo, bar12
188 860 dziej korzystnie w obrębie około 5% wagowo a najkorzystniej w zasadzie zbliżoną (np. w obrębie ilości do kilku procent wagowo) zawartości takiego TSNA w świeżo zżętym tytoniu, z którego wytworzono ten produkt. Zaleca się również aby niesurowy lub żółty produkt tytoniowy zawierał niesurowy lub żółty tytoń odpowiedni do użytku przez ludzi i mający zawartość przynajmniej jednego TSNA wybranego spośród NNN, NNK, NAB i NAT, mieszczącą się w obrębie około 15% wagowo, korzystnie w obrębie około 10% wagowo, a bardziej korzystnie w obrębie około 5% wagowo a najkorzystniej w zbliżonym (np. w obrębie ilości do kilku procent wagowo) zawartości TSNA w świeżo ściętym klonie surowego tytoniu, z którego wytworzono produkt.
W innych przykładach wykonania wynalazku, niesurowy lub żółty produkt tytoniowy zawiera niesurowy lub żółty tytoń nadający się do użytku przez ludzi i mający zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) stanowiącą przynajmniej około 75% wagowo, korzystnie przynajmniej około 90% wagowo, korzystniej przynajmniej około 95% wagowo a najkorzystniej przynajmniej około 99% wagowo mniejszą niż zawartość takiego TSNA w produkcie tytoniowym tego samego rodzaju wytworzonym z tego samego plonu tytoniu co produkt według wynalazku, jednakże zakonserwowanego bez promieniowania mikrofalowego lub innych technologii przeznaczonych do redukowania zawartości TSNA. Zaleca się również aby niesurowy lub żółty produkt tytoniowy zawierał niesurowy lub żółty tytoń nadający się do użytku przez ludzi, i mający zawartość przynajmniej jednego TSNA wybranego z grupy NNN, NNK, NAB i NAT, wynoszącą przynajmniej około 75% wagowo, korzystnie przynajmniej 90% wagowo, korzystniej przynajmniej 95% wagowo a najkorzystniej przynajmniej około 99% wagowo mniej niż zawartość odpowiednich TSNA w produkcie tytoniowym tego samego rodzaju, wytworzonym z tego samego plonu tytoniu co produkt według wynalazku, jednakże konserwowanym bez promieniowania mikrofalowego lub innych technologii zaprojektowanych do redukowania zawartości TSNA.
Korzystna postać wynalazku dotyczy produktu tytoniowego zawierającego tytoń mający zredukowaną zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy, wytworzonego poprzez proces obejmujący poddawanie tytoniu niekonserwowanego i podatnego na przyblokowane formowanie przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu, oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego.
W przykładzie wykonania wynalazek dotyczy sposobu wytwarzania produktu tytoniowego, obejmującego poddawanie ściętych liści tytoniowych oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego, które to liście są niezakonserwowane i w stanie nadającym się do zredukowania ilości nitrozoamin właściwych dla tytoniu lub do przyblokowania formowania nitrozoamin właściwych dla tytoniu, przez czas wystarczający do redukowania ilości lub do zasadniczego zapobiegania formowaniu się przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu w liściach, i wytwarzanie produktu tytoniowego zawierającego liście poddane obróbce mikrofalami, przy czym ten produkt stanowi papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę, oraz gumę i pastylki zawierające tytoń.
W następnym aspekcie wynalazek dotyczy sposobu redukowania zawartości przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w konserwowanym brązowym tytoniu, obejmującego ponowne nawilżanie zakonserwowanego brązowego tytoniu i poddawanie nawodnionego tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego na poziomie energii przez wstępnie określony okres czasu. Podobnie wynalazek obejmuje produkt tytoniowy stanowiący zakonserwowany tytoń brązowy mający zredukowaną zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy, wytworzony sposobem obejmującym nawadnianie zakonserwowanego brązowego tytoniu i poddawanie nawodnionego tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego na wstępie określonym poziomie energii, przez wstępnie określony czas.
Stwierdzono również, że można zastosować dla uzyskania podstawowego celu wynalazku postacie promieniowania elektromagnetycznego mające wyższe częstotliwości i krótsze długości fal niż mikrofale omówione powyżej i szczegółowo poniżej, dla zredukowania lub znaczącego wyeliminowania TSNA w produktach tytoniowych przez obróbkę tytoniu takimi postaciami energii w tym samym okresie czasu po żniwach jak omówiono powyżej w przypadku mikrofal. Tak więc wynalazek dotyczy również sposobu redukowania ilości lub zapo188 860 biegania formowaniu się nitrozoamin w zżętym plonie tytoniu, obejmującego poddawanie przynajmniej części plonu oddziaływaniu promieniowania o częstotliwości wyższej niż promieniowanie mikrofalowe, przy czym ta część plonu jest niezakonserwowana i w stanie podatnym na redukowanie ilości nitrozoamin lub na przyblokowanie formowania nitrozoamin przez czas wystarczający do zredukowania ilości lub zasadniczego uniknięcia formowania przynajmniej jednej nitrozoaminy.
Podobnie jak w rozwiązaniach stosujących mikrofale zaleca się, aby w procesie według wynalazku prowadzić etap poddawania promieniowaniu o częstotliwości wyższej niż mikrofalowa liścia tytoniu lub jego części po początku żółknięcia liści i przed znaczącym nagromadzeniem w liściu nitrozoamin właściwych dla tytoniu. Zaleca się również przeprowadzanie w procesie według wynalazku etapu poddawania takiemu promieniowaniu przed znaczącą utratą integralności komórkowej w liściach. Zalecane źródła energii nadające się do wytwarzania takiego promieniowania są opisane poniżej i obejmują promieniowania dalekiej podczerwieni i podczerwone, promieniowanie ultrafioletowe UV, miękkie promienie x lub laserowe, przyspieszone wiązki cząstek takie jak wiązki elektronów, promienie x i promieniowanie gamma.
Na fig. 1 przedstawiono fotografię ilustrującą „żółty” tytoń sypki Virginia przetrzymany przetrzymany 24 do 72 godzin po zżęciu, na fig. 2 przedstawiono fotografię ilustrującą „żółty” tytoń sypki typu Virginia o niskiej zawartości nitrozoaminy i poddany promieniowaniu mikrofalowemu według wynalazku, a fig. 3 - częściowy boczny widok perspektywiczny ruchomego aplikatora mikrofal na skalę przemysłową, stosowanego do prowadzenia obróbki mikrofalowej według wynalazku.
Praktyka konserwowania tytoniu stanowi więcej niż dziedzinę nauki, ponieważ warunki każdego konserwowania muszą być ustawiane dla uwzględniania takich czynników jak różnice gatunkowe, różnice w liściach stanowiących plony z rozmaitych pozycji łodygi, różnice między rozmaitymi pomieszczeniami (stodołami) do konserwowania, różnice środowiskowe w trakcie pojedynczego sezonu lub w rozmaitych sezonach, zwłaszcza zmiany pogody przy konserwowaniu powietrzem. Przykładowo, praktyka konserwowania sypkiego jest w pewnym stopniu empiryczna i jest optymalnie przeprowadzana przez fachowców mających nagromadzoną wiedzę z tej dziedziny w dłuższym okresie czasu. Patrz np. Peele i in. „Chemiczne i biochemiczne zmiany podczas konserwowania sypkiego tytoniu”, Postępy w badaniach nad tytoniem, Tom 21, str. 81 i następne, Konferencja naukowa, 49 Sympozjum, 24-27 wrzesień, 1995, Lexington, Kentucky (dalej „Peele i in.”). Tak więc fachowiec dziedziny konserwowania tytoniu uważa za oczywiste, że zewnętrzne parametry wynalazku, w ich najszerszej postaci, są zmienne w pewnym stopniu w zależności od dokładnego oznaczenia powyższych czynników dla poszczególnego plonu.
W pierwszym zalecanym rozwiązaniu, wynalazek polega na stwierdzeniu, że istnieje okienko podczas cyklu konserwowania tytoniu, w którym tytoń może być obrabiany w sposób zasadniczo zapobiegający tworzeniu się TSNA. Oczywiście precyzyjne okienko czasowe w trakcie którego może być skutecznie wyeliminowane lub zasadniczo zredukowane wytwarzanie TSNA zależy od rodzaju tytoniu, sposobu konserwowania i licznych innych zmiennych, włącznie ze wspomnianymi powyżej. Według tego zalecanego wynalazku, to okienko czasowe odpowiada okresowi czasu po żniwach gdy liść nie jest już w stanie świeżo ściętym lub „surowym” i przed czasem po którym w sposób znaczący gromadzą się TSNA i azotyny w liściach, przy czym ten okres czasu zwykle odpowiada okresowi, w którym liść podlega procesowi żółknienia lub jest w fazie żółtej, zanim liść zacznie brązowieć i przed znaczącą utratą integralności komórkowej. O ile nie wynika to z kontekstu, określenia „znaczący” i „istotny” odnoszą się do dominującej lub głównej wielkości w skali względnej. Podczas tego okresu czasowego, liście są podatne na zasadnicze zapobieganie wytwarzaniu TSNA lub na redukowanie zawartości jakichkolwiek już utworzonych TSNA przez poddawanie tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego na wstępnie określonym poziomie energii przez wstępnie określony okres czasu, jak omówiono poniżej. Ta obróbka mikrofalowa zasadniczo blokuje naturalne formowanie TSNA i dostarcza suchy, złotożółty liść nadający się do użytku przez człowieka. Jeżeli TSNA już zgromadziły się w znaczącym stopniu, zwykle w pobliżu końca fazy żółtej, to oddziaływanie energii mikrofalowej na liść skutecznie blokuje
188 860 według wynalazku naturalny cykl formowania TSNA, tym samym zapobiegając jakiemukolwiek dalszemu znaczącemu formowaniu TSNA. Gdy żółty lub żółkniejący tytoń jest obrobiony w ten sposób w najbardziej optymalnym czasie cyklu konserwowania, otrzymany produkt tytoniowy ma poziomy TSNA zasadniczo zbliżone do poziomów w świeżo zżętym surowym tytoniu, przy jednoczesnym utrzymaniu jego smaku i zapachu.
W następnym rozwiązaniu wynalazek dotyczy obróbki konserwowanego (brązowego) tytoniu dla skutecznego redukowania zawartości TSNA tego zakonserwowanego tytoniu przez jego namoczenie i poddanie nawodnionego zakonserwowanego tytoniu oddziaływaniu promieniowania mikrofalowego, jak będzie opisane poniżej.
Wynalazek nadaje się do obróbki ściętego tytoniu przeznaczonego do konsumpcji przez człowieka. Nad tytoniem przeprowadzano wiele badań ze szczególnym odniesieniem do nitrozoamin właściwych dla tytoniu. Świeżo ścięte liście tytoniu są zwane „tytoniem zielonym” i nie zawierają żadnych znanych substancji rakotwórczych, jednakże zielony tytoń nie nadaje się do konsumpcji przez człowieka. Proces konserwowania zielonego tytoniu zależy od rodzaju ściętego tytoniu. Przykładowo tytoń (jasny) gatunku Virginia jest zwykle piecowo, zaś gatunek Burley i niektóre ciemne gatunki są zwykle konserwowane powietrzem. Piecowe konserwowanie tytoniu trwa zwykle w przeciągu 5 do 7 dni w porównaniu z okresem 1 do 2 miesięcy dla konserwowania powietrzem. Według Peele i in., konserwowanie piecowe jest ogólnie podzielone na trzy etapy: etap żółknienia (35-40°C) przez około 36-72 godziny (jakkolwiek inni podają że żółknienie rozpoczyna się wcześniej niż 36 godzin, na przykład, przy około 24 godziny dla niektórych gatunków Virginia, etap suszenia liścia (40-57°C) przez 48 godzin, i etap suszenia łodygi (57-75°C) przez 48 godzin. Podczas etapu żółknienia rozpoczyna się wiele głównych zmian chemicznych i biochemicznych, które są kontynuowane poprzez wczesne fazy suszenia liścia.
W typowym procesie konserwowania piecowego, etap żółknienia jest przeprowadzany w stodole. Podczas tej fazy zielone liście stopniowo tracą kolor w wyniku degradacji chlorofilowej, z odpowiadającym wyglądem żółtych pigmentów karotenoidowych. Według badań Peele i in., etap żółknienia konserwowanego piecowo tytoniu jest realizowany przez zamknięcie zewnętrznych ujść powietrza w stodole, i utrzymywanie temperatury na poziomie około 35°-37°C. Proces ten wykorzystuje środowisko kontrolowane, utrzymuje wilgotność względną w stodole na poziomie około 85%, ogranicza straty wilgoci z liści, i umożliwia liściom kontynuację procesów metabolicznych rozpoczętych na polu. Operator stale monitoruje postęp konserwowania, głównie przez obserwowanie utraty chydrofilu i zielonego zabarwienia liści, oraz narastanie pożądanego cytrynowego do złoto-pomarańczowego koloru liścia. Przy szczególnej odmianie gatunków konserwowanego piecowo tytoniu Virginia na których przeprowadzono testowanie i opisano poniżej, świeżo ścięty zielony tytoń został umieszczony w stodole przez około 24-48 godzin przy około 100-110°C aż liście stały się mniej lub bardziej całkowicie żółte (patrz fig. 1). Żółty tytoń ma zredukowaną zawartość wilgoci, to jest od około 90% wag. w stanie zielonym do około 70-40% wag. w stanie żółtym. W tym etapie żółty tytoń nie zawiera zasadniczo żadnych znanych substancji rakotwórczych, a zawartość TSNA jest zasadniczo taka sama jak w świeżo ściętym zielonym tytoniu. Ten tytoń Virginia zwykle pozostaje w stanie żółtym przez około 6-7 dni, po którym to czasie liście z żółtych stają się brązowe. Brązowy tytoń Virginia zwykle ma zawartość wilgoci około 11 do około 15% wag. Konwersja tytoniu z żółtego na brązowy powoduje wytwarzanie i zasadnicze gromadzenie nitrozoamin i zwiększoną zawartość mikrobów. Dokładny mechanizm wytwarzania właściwych dla tytoniu nitrozoamin nie jest jasny, jednakże uważa się że jest to skutek zwiększony poprzez aktywność mikrobów, obejmującą mikrobiologiczne reduktazy azotanowe przy wytwarzaniu azotynu podczas procesu konserwowania.
Uważa się, że nitrozoaminy właściwe dla tytoniu tworzą się w warunkach kwasowych w reakcji amin i związków nitrozujących pochodzących od azotynów, takich jak NO2, N2O3 i N2O4. Tworzenie się postulowanych TsNa omawiają Wiemik i in., na str. 43-45; krótkie streszczenie przedstawiono poniżej.
Liście tytoniu zawierają znaczne ilości amin w postaci aminokwasów, białek i alkaloidów. Trzeciorzędowa amina, a mianowicie nikotyna (określona na poniższym diagramie jako (1)) jest głównym alkaloidem w tytoniu, zaś innymi alkaloidami typu nikotyny są drugorzędowe ami188 860 ny, takie jak nomikotyna (2), anatabina (3) i anabazyna (4). Tytoń zawiera zwykle do 5% azotanów i śladowe ilości azotynów.
W wyniku nitrozowania nomikotyny (2), anatabiny (3) i anabazyny (4) powstają odpowiednie nitrozoaminy: N'-nitrozo-nomikotyna (NNN, 5), N'-nitrozoanatabma (NAT, 6) i N'nitrozoanabazyna (NAB, 7). Nitrozowanie nikotyny (1) w roztworze wodnym prowadzi do otrzymania mieszaniny 4-(N-nitrozo-metyloamino)-l-(3-pirydvlo)-1-butanonu (NNK, 8) i (NNN, 5) oraz 4-(N-mtiOzometyloamino)-4-(3-pirydylo)-1-butanalu (NNA, 9). Mniej powszechnie występujące TSNA obejmują NNAL (4-N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanol, 10), izo-NNAL (4-N-nitrozometyloaminc)-4-(3-pirydylo)-1-butanol oraz izo-NNAC kwas (4-(Nnitrozcmetylcammc)-4-(3-pirydylc)-butanowy, 12). Wytwarzanie tych TSNA z odpowiednich alkaloidów tytoniowych przedstawiono schematycznie poniżej, stosując powyższe oznaczenia 1-12 (wykres zaczerpnięto z Wiemik i in., supra, str. 44):
Uważa się ogólnie, że zielony, świeżo zebrany tytoń nie zawiera widocznych ilości azotynu lub TSNA, i że związki te wytwarzają się podczas konserwowania i przechowywania tytoniu. W ostatnim dziesięcioleciu prowadzono badania zmierzające do określenia warunków związanych z tworzeniem się TSNA podczas konserwowania tytoniu, i określono kilka ważnych czynników.
Obejmują one genotyp rośliny, stopień dojrzałości rośliny podczas zbioru, warunki konserwowania i aktywność mikrobiologiczną
Badania wykazały, że azotyn i TSNA gromadzą się podczas konserwowania w powietrzu, w pewnych odstępach czasowych, począwszy od końca okresu żółknięcia, a skończywszy na okresie, gdy liście stają się całkowicie brązowe, np. 2-3 tygodnie po zbiorze dla pewnych gatunków konserwowanych w powietrzu i w około tydzień po zbiorze dla odmian konserwowanych w kanale dymowym.
W trakcie tego okresu dochodzi do utraty spoistości komórek ze względu na utratę wilgoci oraz do wycieku zawartości komórek do wnętrza przestrzeni międzykomórkowych. Wówczas, już po rozpadzie komórek, dochodzi do niewielkiej przerwy w trakcie konserwowania tytoniu, kiedy to mikroorganizmy wykorzystują zawarte w nim substancje odżywcze. Wiemik et al sugerowali, że wówczas dochodzić może do wytwarzania azotynu ze względu na zróżnicowaną redukcję azotanu, co umożliwia z kolei tworzenie się TSNA.
188 860
Jak dotąd opublikowano kilka raportów na temat efektów oddziaływania mikroflory na liście tytoniu w trakcie jego wzrostu i konserwacji, o czym mowa też w pracy Werinika et al. Nie można być jednak pewnym co do udziału mikroorganizmów - reduktazów azotynu w wytwarzaniu azotanu podczas konserwacji tytoniu. Po zniszczeniu struktury komórkowej po zżółknięciu liści, gdy mikroorganizmy zyskują dostęp do substancji odżywczych, dojść może w sprzyjających okolicznościach do powstania azotynu, to jest w razie wysokiej wilgotności, w odpowiedniej temperaturze i anoksji. Zazwyczaj okres, gdy aktywność wody jest dostatecznie wysoka, a komórki utraciły już spoistość, jest raczej krótki.
Zgodnie z niniejszym wynalazkiem, powstawaniu TSNA w tytoniu zapobiega lub spowalnia je poddanie zebranych liści działaniu mikrofal w warunkach podanych poniżej. Zgodnie z preferowanym rozwiązaniem, liście tytoniu wystawione są na działanie mikrofal w okresie pomiędzy rozpoczęciem żółknięcia liści a zasadniczą utratą spoistości komórek. W celu uzyskania optymalnych rezultatów korzystne jest poddanie zebranych liści działaniu mikrofal pojedynczo, a nie w stosach. Sposób taki, jak wykazano, całkowicie lub zasadniczo zapobiega tworzeniu się nitrozoamin właściwych dla tytoniu, w tym znanych związków rakotwórczych NNN i NNK.
Zgodnie z korzystnymi rozwiązaniami niniejszego wynalazku, uzyskać można produkty z liści tytoniu, które nie są już zielone i/lub są jeszcze żółte, a które nadawałyby się do konsumpcji. Zawierałyby one mniejszą ilość przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu niż to jest w przypadku tytoniu poddanego zwykłej konserwacji. Zielony lub dopiero co zebrany tytoń z reguły nie nadaje się do konsumpcji, o czym mowa była powyżej. Określenie Już nie są zielone” oznacza tu utratę przynajmniej większości chlorofilu, a obejmuje częściowo lub całkowicie pożółkłe liście oraz liście, które zaczęły brązowieć w niektórych miejscach. Zgodnie z preferowanym rozwiązaniem produkty z liści tytoniu, które nie sąjuż zielone, zawierają TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) w ilości poniżej .2 pg/g, a korzystniej poniżej .15 pg/g, a jeszcze korzystniej .1 pg/g, zaś NNN poniżej .15 pg/g, a korzystniej .10 pg/g, a jeszcze korzystniej .05 pg/g, zaś zawartość NNK poniżej .002 pg/g, a korzystniej .001 pg/g, a jeszcze korzystniej .0005 pg/g. Zgodnie z tym, co powiedziano powyżej, specjalista, znając czynniki, jakie wpłynąć mogą na tworzenie się TSNA w tytoniu, zrozumie, że podane tu wartości stanowią jedynie wartości preferowane.
Niniejszy wynalazek dotyczy również produktu tytoniowego zawierającego wysuszony żółty tytoń zdatny do konsumpcji, a charakteryzujący się niższą zawartością przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu niż to jest w przypadku tytoniu konserwowanego w tradycyjny sposób. Zgodnie z preferowanymi rozwiązaniami, zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) w żółtym tytoniu, zawartość NNN oraz NNN mieści się w podanych powyżej korzystnych przedziałach.
Zgodnie z innymi rozwiązaniami, produkty z liści tytoniu, które nie sąjuż zielone lub są żółte, zawierają tytoń zdatny do konsumpcji, a którego zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) wynosi 25% zawartości TSNA w świeżo zebranym zielonym tytoniu, z którego uzyskano ów produkt. Korzystniejsze jest, by zawartość TSNA w produktach z liści tytoniu, które nie sąjuż zielone lub są żółte, wynosiła 10%, a korzystniej 5%, zaś najkorzystniej zbliżała się (sięgając do kilkunastu procent) zawartości TSNA w świeżo zebranym tytoniu, z którego uzyskano ów produkt. I tak, przykładowo, niniejszy wynalazek pozwala na uzyskanie produktów tytoniowych o zawartości TSNA we wskazanych powyżej granicach, podczas gdy tytoń z tego samego zbioru, a poddany normalnej konserwacji, uzyskałby wielokrotnie wyższą zawartość TSNA w zestawieniu ze świeżo zebranym tytoniem. W przypadku niniejszego wynalazku niewielkie ilości nitrozoamin w świeżo zebranym tytoniu nie muszą ulegać zmianom. Korzystne jest również i to, by produkty z liści tytoniu, które już nie są zielone lub też są żółte zawierały tytoń zdatny do konsumpcji, a w których zawartość przynajmniej jednego z TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) wynosiła około 25%, a korzystniej 10%, jeszcze korzystniej 5%, a najkorzystniej była w przybliżeniu równa (wynosząc przykładowo do kilkunastu procent) zawartości odpowiedniej TSNA lub ich większej ilości w świeżo zebranym zielonym tytoniu, z którego uzyskano produkt. Innymi słowy, zawartość, przykładowo NNN w tytoniu mieści się w podanych powyżej zakresach względem ilości NNN w świeżo zebranym tytoniu, lub też zawartość NNN + NNK w tytoniu mieści się w podanych powyżej zakresach względem ilości
188 860
NNN + NNK w świeżo zebranym zielonym tytoniu i tak dalej. Przy wykonywaniu tych zestawień zawartość TSNA w świeżo zebranym zielonym tytoniu zmierzono w około 24 godziny po zbiorach.
Zgodnie z innymi rozwiązaniami niniejszego wynalazku, produkt z tytoniu, którego liście nie są już zielone lub też są żółte, zawiera tytoń zdatny do konsumpcji, a zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) wynosi przynajmniej 75%, a korzystniej przynajmniej około 90%, jeszcze korzystniej przynajmniej 95%, a najkorzystniej przynajmniej 99% mniej niż wynosi zawartość TSNA w produkcie tytoniowym tego typu z tego samego zbioru, którego nie poddano konserwacji w obecności mikrofal lub z wykorzystaniem innych sposobów mających na ceiu zmniejszenie zawartości TSNA. Korzystne jest również, by produkt z tytoniu, którego liście nie są już zielone lub też są żółte, zawierał tytoń zdatny do konsumpcji, a zawartość przynajmniej jednej z TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT) wynosiła przynajmniej 75%, a korzystniej przynajmniej około 90%, jeszcze korzystniej przynajmniej 95%, a najkorzystniej przynajmniej 99% mniej niż wynosi zawartość odpowiedniej TSNA lub ich większej ilości w produkcie tytoniowym tego typu (przykładowo w zestawieniu różnych papierosów) z tego samego zbioru, którego nie poddano konserwacji w obecności mikrofal lub z wykorzystaniem innych sposobów mających na ceiu zmniejszenie zawartości TSNA.
Zgodnie z tymi rozwiązaniami porównanie zawartości % wagowych przeprowadzić można przykładowo z wykorzystaniem papierosów jednego wyprodukowanego z użyciem żółtego tytoniu zgodnie z niniejszym wynalazkiem i drugiego - z użyciem tytoniu z tego samego zbioru, ale który to tytoń poddano tradycyjnym sposobom konserwacji bez użycia mikrofal.
Etap zżółknięcia liści, w trakcie którego liście tytoniu poddawane są korzystnie działaniu mikrofal, wyznaczyć można w jeden z podanych niżej sposobów: (a) badając barwę liścia, to jest sprawdzając, czy zielone liście zdążyły się już zażółcić; (b) mierząc procentowo stopień konwersji chlorofilu w cukry; (c) obserwując początek procesu tworzenia azotynu lub nitrozoaminy, co zazwyczaj towarzyszy zakończeniu etapu żółknięcia liści; (d) badając zawartość wilgoci w liściach, przykładowo, gdy zawartość ta wynosi od około 40 do około 70 procent. W przypadku poddania działaniu mikrofal zielonego tytoniu, nie stwierdza się zahamowania lub wyeliminowania procesu tworzenia nitrozoaminy. Jednak w przypadku zastosowania mikrofal po rozpoczęciu etapu żółknięcia liści, a przed utratą spoistości komórkowej lub istotnym nagromadzeniem TSNA w liściu, obserwuje się znaczące i zaskakujące zarazem zmniejszenie ilości lub całkowite zahamowanie tworzenia się nitrozoaminy, na co wskazują dane zamieszone poniżej. Optymalny czas, w trakcie którego zebrany tytoń poddawany jest działaniu mikrofal w trakcie żółtego etapu, waha się w zależności od czynników, w tym różnic gatunkowych, uwarunkowań środowiskowych itd. I tak w okresie począwszy od rozpoczęcia procesu żółknięcia (co wyznacza przykładowo utrata większości zielonego barwnika w liściu), poprzez etap utraty spoistości komórkowej (czemu towarzyszy brązowienie liści), specjalista może wyznaczyć optymalny czas poddania liści działaniu mikrofal dla danego rodzaju tytoniu. Dla określonego genotypu wykorzystać można przykładowo próbki liści do przeprowadzenia odpowiednich testów opisanych poniżej w ceiu wyznaczenia zawartości azotynu lub TSNA, a także by wyznaczyć moment w danym cyklu konserwacyjnym, w którym dochodzi do znacznego gromadzenia się TSNA lub też by wyznaczyć czas, w którym dochodzi do utraty spoistości komórkowej. Chociaż szczególnie korzystne rozwiązanie niniejszego wynalazku przewiduje poddanie liści działaniu mikrofal przed znaczącym gromadzeniem się TSNA, niniejszy wynalazek znajduje też zastosowanie w przypadku liści tytoniu, w przypadku których doszło już do znacznego nagromadzenia się TSNA. W takim przypadku istnieje możliwość zahamowania procesu dalszego wytwarzania TSNA. Jednak w przypadku zakończenia procesu konserwacji i ustabilizowaniu się poziomu TSNA, zastosowanie mikrofal nie pozwala już na zmniejszenie zawartości TSNA, chyba że w warunkach rehydratacji, o czym mowa będzie poniżej. Po poddaniu liści działaniu -mikrofal zgodnie z niniejszym wynalazkiem, zmniejsza się zawartość wilgoci, to jest wynosi ona poniżej 10%, a często i około 5%. W razie potrzeby dokonać można rehydratacji w ceiu przywrócenia zawartości wilgoci typowej dla brązowego, poddanego konserwacji liścia (to jest, przykładowo, około 11-15% dla tytoniu typu Virginia) jeszcze przed przystąpieniem do wytwarzania produktów tytoniowych typu papieros.
188 860
Niniejszy wynalazek znajduje zastosowanie w przypadku wszystkich gatunków tytoniu, w tym poddawanych konserwacji w kanale dymowym, odmian jasnych, odmian typu Burley, odmian ciemnych, orientalnych/tureckich i tak dalej. Korzystając z podanych tu wytycznych przeciętny specjalista jest w stanie wyznaczyć optymalny moment w cyklu konserwacji na przeprowadzenie etapu oddziaływania z pomocą mikrofal, a to by zrealizować cele niniejszego wynalazku i wykorzystać jego dobre strony.
Korzystne jest, by przed przystąpieniem do procesu oddziaływania z pomocą mikrofal liście tytoniu, które zgodnie z korzystnym rozwiązaniem zawierają łodyżki, poddać fizycznemu ściskaniu w celu usunięcia nadmiaru wilgoci ze środka, a co pozwala na jednorodne przeprowadzenie suszenia w jednostce wykorzystującej mikrofale. Dokonać tego można przepuszczając liście przez parę odpowiednio od siebie oddalonych obrotowych rolek cylindrycznych. Pozwoli to na usunięcie wilgoci z łodyżek oraz, w mniejszym stopniu, z centralnego i ważniejszych bocznych nerwów, co pozwoli z kolei na uzyskanie staranniej wysuszonego produktu. Rolki wykonać można z twardej gumy, plastiku lub stali; mogą się one charakteryzować dowolną długością i być umieszczone, zgodnie z korzystnym rozwiązaniem, w odstępie około jednej ósmej do jednej czwartej cala. Odległość tę wyznacza się korzystnie w taki sposób, by dostosować się do grubości pojedynczego liścia, która może się z kolei wahać. Rolki te wykorzystywać mogą napęd pasowy lub łańcuchowy z użyciem odpowiednio dobranego silnika. Istnieje też możliwość zastosowania innych środków ściskania oprócz obrotowych rolek w celu uzyskania tego samego efektu, czego świadomy jest przeciętny specjalista.
Opisane wyżej korzystne rozwiązanie, zgodnie z którym ściskane są liście, pozwala na przyspieszenie procesu produkcji, jako że wyeliminuje to konieczność odcięcia łodyżek, a ponadto skróci czas oddziaływania mikrofal. Rozwiązanie to jest szczególnie korzystne w przypadku liści tytoniu przeznaczonych do wykorzystania w papierosach, które zazwyczaj zawierają elementy łodygi, co przydaje im aromatu. Zgodnie z alternatywnym rozwiązaniem ominąć można etap ściskania w przypadku zastosowań, gdzie łodyżka odcinana jest od liścia i usuwana.
Zgodnie z innym korzystnym rozwiązaniem, zamiast ściskać lub wycinać łodyżki, liście poddać można przed zastosowaniem mikrofal działaniu pary. Podobnie jak w przypadku ściskania, poddanie działaniu pary powoduje równomierne rozmieszczenie wilgoci w łodyżkach i głównych nerwach, co pozwala na równomierne suszenie liści po poddaniu ich działaniu mikrofal.
W rezultacie przy zastosowaniu tej właśnie techniki w produktach tytoniowych wykorzystać można całe liście wraz z łodyżkami. Chociaż jej szczegóły wydadzą się oczywiste dla przeciętnego specjalisty, zadowalające rezultaty uzyskano wówczas, gdy liście umieszczono w odpowiednim naczyniu parowym w czasie wystarczającym na zmiękczenie liści, to jest od około 30 sekund do około pięciu minut.
Niniejszy wynalazek znajduje też zastosowanie w przypadku tytoniu brązowego lub poddanego uprzednio konserwacji, a dla którego zastosowano rehydratację. W takim wypadku obserwuje się znaczne i zarazem zaskakujące zmniejszenie zawartości TSNA, zwłaszcza NNN i NNK, w wypadku poddania brązowego tytoniu, dla którego zastosowano rehydratację, działaniu mikrofal. Jednak uzyskane rezultaty nie są tak zaskakujące jak w przypadku zastosowania niniejszego wynalazku dla żółtego tytoniu nie poddanego konserwacji, przed odłożeniem się znaczących ilości TSNA lub azotynów w liściach. Jednak zwiększenie wilgoci liści poddanych konserwacji, przykładowo poprzez ich zraszanie odpowiednio dużą ilością wody pozwala na ich nasączenie, a ich późniejsze poddanie działaniu mikrofal zmniejsza zawartość TSNA, co zaprezentowano w poniższych przykładach.
Zgodnie z tym, co powiedziano powyżej, wpływ działania mikrofal na zawartość nitrozoaminy w tytoniu poddanym konserwacji lub brązowym jest niemal niedostrzegalny.
Stwierdzono jednakże że rehydratacja tytoniu poddanego konserwacji przed poddamem go działaniu mikrofal wspomaga ich działanie w zakresie zmniejszania ilości nitrozoamin. Zgodnie z korzystnym rozwiązaniem, produkt uzyskany po konserwacji poddawany jest rehydratacji poprzez dodanie doń odpowiedniej ilości wody, to jest przynajmniej 10%, aż do poziomu maksymalnej wchłanialności. Wystawienie liści poddanych rehydratacji działaniu mikrofal w ten sam sposób, o jakim mowa była powyżej przy okazji tytoniu nie poddanego
188 860 uprzednio konserwacji, zmniejsza zawartość nitrozoaminy, co pokazano niżej. Liście zwilżyć można natomiast w dowolny sposób. Jeśli poddany konserwacji tytoń występuje w innej postaci niż liściastej, przykładowo w postaci sprasowanej, istnieje możliwość przeprowadzenia podobnej rehydratacji, to jest przykładowo przy użyciu 10-70% wody, a następnie poddanie go działaniu mikrofal. W zależności od stopnia ponownego nawilżenia liści dobrać można odpowiednie warunki działania mikrofal, jednak zazwyczaj nie wykraczają one poza parametry wskazane przy okazji omawiania procesu poddawania działaniu mikrofal tytoniu żółtego.
Zgodnie z niniejszym wynalazkiem, poddawanie działaniu mikrofal brązowego tytoniu, jaki poddano z kolei uprzednio rehydratacji, może, zgodnie z korzystnym rozwiązaniem, zmniejszyć zawartość TSNA (NNN, NNK, NAB i NAT), czy to mierzonej indywidualnie czy zbiorowo, o przynajmniej 25%, a korzystniej o przynajmniej 35%, a jeszcze korzystniej 0 około 50% w stosunku do zawartości TSNA w tytoniu brązowym przez przystąpieniem do jego rehydratacji.
Mówiąc o działaniu mikrofal uwzględnia się energię elektromagnetyczną w formie mikrofal o częstotliwości i długości fal typowej dla mikrofal. Termin „mikrofala” odnosi się zasadniczo do tej części widma elektromagnetycznego, która znajduje się między podczerwienią daleką a typową częstotliwością fal radiowych. Zakres mikrofal rozciąga się od długości fal wynoszącej około 1 milimetr i częstotliwości około 300000 MHz do długości fal wynoszącej około 30 centymetrów i częstotliwości nieco poniżej 3000 MHz. Korzystne jest, by niniejszy wynalazek wykorzystywał zastosowania mikrofal o dużej mocy, typowo dla dolnego końca podanego zakresu. Dla tego preferowanego zakresu istnieje zasadnicza różnica między procesem ogrzewania z pomocą mikrofal i, tradycyjnym sposobem, z pomocą promieniowania podczerwonego (przykładowo w trakcie gotowania), a to ze względu na większą penetrację, jako że mikrofale podgrzewają szybko do głębokości kilkunastu centymetrów, podczas gdy podgrzewanie z pomocą podczerwieni zachodzi znacznie bliżej powierzchni. W Stanach Zjednoczonych. sprzedawane na skalę przemysłową urządzenia wykorzystujące mikrofale, przykładowo kuchenki mikrofalowe dostępne są dla standardowych częstotliwości około 915 MHz i 2450 MHz. Są to standardowe zakresy wykorzystywane na potrzeby przemysłu. Natomiast w Europie powszechnie stosowane częstotliwości to 2450 i 896 MHz. Jednak przy odpowiednio dobranych warunkach wykorzystywać też by można mikrofale o innej częstotliwości i długości fal w celu realizacji celów niniejszego wynalazku i wykorzystania jego dobrych stron. Energię mikrofalową wytwarzać można na różnych poziomach mocy, w zależności od pożądanych zastosowań. Mikrofale wytwarza się z pomocą magnatronów, dla mocy 600-1000 watów dla typowych kuchenek mikrofalowych (typowo około 800 watów), jednak istnieje też możliwość zastosowań na skalę przemysłową, gdzie wykorzystywana będzie moc ponad tysiąca kilowatów. Zazwyczaj dokonuje się tego dodając modularne źródło o mocy około 1 kilowata. Magnatron zdolny jest do wytwarzania fal albo w sposób pulsacyjny albo ciągły o odpowiednio wysokiej częstotliwości.
Sama kuchenka stanowi istotny łącznik między generatorem mikrofal a podgrzewaną substancją. Dla celów niniejszego wynalazku, wykorzystać można dowolny wzbudnik fal, 0 ile tylko pozwala on na efektywne poddawanie liści tytoniu działaniu mikrofal. Wzbudnik taki winien być dopasowany do generatora mikrofal w celu optymalizacji przekazu mocy, a ponadto winien zabezpieczać przed wydostaniem się energii na zewnątrz. Szczególnie użyteczne są tu wielomodułowe urządzenia (przykładowo kuchenki mikrofalowe), których rozmiary przekraczać mogą w razie potrzeby kilkunastokrotnie długość fal. W celu zapewnienia jednorodnego podgrzewania liści, wzbudnik może być wyposażony w mieszadło (metalowe ruchome urządzenie, które stale wpływa na pole rozprowadzanie mikrofal) oraz w ruchomą powierzchnię oddziaływania, przykładowo w taśmę przenośnika. Najlepsze efekty uzyskać można przy oddziaływaniu mikrofal na pojedynczą warstwę liści, a nie na ich stosy.
Zgodnie z preferowanym rozwiązaniem, uwzględnia się częstotliwość mikrofal w granicach około 900-2500 MHz, a korzystniej około 915-2450 MHz, dla mocy od około 600 watów do 300 kilowatów, a korzystniej od około 600 do 1000 watów dla domowych zastosowań 1 od około 2 do 75 kilowatów, a korzystniej od około 5 do 50 kilowatów dla zastosowań przemysłowych. Czas podgrzewania wynosi zazwyczaj od około 1 sekundy, a zazwyczaj od około 10 sekund do około 5 minut. Dla mocy na poziomie 800-100 watów czas ogrzewania
188 860 wynosi korzystnie od około 1 minuty do około 2 minuty, w trakcie którego to czasu obróbce poddawany jest pojedynczy liść, a nie ich sterta. Na skalę przemysłową, gdzie wykorzystuje się urządzenia o mocy przykładowo 2-75 kilowatów czas podgrzewania będzie niższy, wahając się od 5 sekund do około 60 sekund, zaś zazwyczaj wynosi on 10-30 sekund przy mocy na poziomie 50 kilowatów. Również i w tym wypadku obróbce poddawane są pojedyncze liście, a nie ich sterty;
Oczywiście specjalista świadomy jest, że optymalną gęstość pola dla mikrofal wyznaczyć można dla dowolnego urządzenia w zależności od jego pojemności, poziomu mocy oraz ilości wilgoci zawartej w liściach. W uproszczeniu, zastosowanie wyższej mocy wymaga krótszego czasu, w jakim liść poddawany jest działaniu mikrofal.
Jednak podane tu warunki nie są ostateczne i przeciętny fachowiec sam jest w stanie wyznaczyć odpowiednie parametry oddziaływania mikrofalami. Promieniowanie to stosuje się korzystnie dla liścia lub ich większej ilości w czasie pozwalającym na ich dokładne wysuszenie bez zwęglenia, dzięki czemu uzyskany tytoń jest zdatny do spożycia. Preferuje się również, by promieniowanie to stosować dla liścia lub pewnej ich ilości w czasie i przy poziomie mocy wystarczających na zredukowanie zawartości wilgoci do wartości poniżej 20%, a korzystniej 10% wagowych.
Na fig. 3 w częściowym rzucie perspektywicznym przedstawiono urządzenie wytwarzające mikrofale, a stosowane na skalę przemysłową. I tak przedstawiono tu system 1 suszenia tytoniu z pomocą mikrofal MicroDry o mocy 300 kW, który to system obejmuje ruchomą ramę wózka 2, (na rysunku nie uwzględniono przedniej części po prawej stronie), piec mikrofalowy 3, na przenośniku zawierający cztery wnęki o konstrukcji pojedynczej ścianki (wykonanej przykładowo z aluminium 3003N14), przy czym każda wnęka charakteryzuje się długością około 16 cali, szerokością 84 cali i wysokością 48 cali. Każda wnęka wyposażona jest w cztery pary drzwiczek - po dwie pary umieszczone po każdej stronie. Drzwi te wyposażone są w podwójną blokadę, co pozwala zapobiec przypadkowemu kontaktowi z energią mikrofal.
Na fig. 3 przedstawiono automatyczny mechanizm tnący 5, obejmujący pewną liczbę (przykładowo dwanaście) ostrzy obrotowych do usuwania łodyżek z liści 4. Urządzenie tnące wykonane być może w postaci prostej taśmy o szerokości około 3,4 cala biegnącej przez centralną część liścia, podawanego ręcznie. Istnieje tu możliwość zastosowania odpowiedniego zabezpieczenia, które nie pozwalałoby na wsunięcie rąk do środka urządzenia. Chociaż na fig. 3 przedstawiono mechanizm wycinania łodygi, zgodnie z tym, co powiedziano wcześniej, istnieje też możliwość wykorzystania całych liści zgodnie z innymi rozwiązaniami niniejszego wynalazku. I tak, zamiast mechanizmu tnącego, urządzenie mogłoby obejmować pojemnik parowy lub też parę rolek do wyciskania wilgoci z liści. Zgodnie z tym, co pokazano na fig. 3, po przeprowadzeniu procesu wycinania łodyżek liście 6 przenoszone są z pomocą przenośnika taśmowego 7 do głównego pieca mikrofalowego 3, mieszczącego wspomniane już cztery wnęki. Zgodnie z jednym rozwiązaniem system ten charakteryzuje się długością pieca około 78 stóp. System przenoszenia obejmować może, zgodnie z alternatywnym rozwiązaniem, przykładowo sześć taśm propylenowych poruszających się z różną prędkością i rozmieszczonych w taki sposób, by odcięte łodyżki mogły spadać między parami taśm do wnętrza położonej niżej (nie pokazanej na rysunku) zsypni. Taśmy takie przenoszą ścięte liście tytoniu przez jedną z pułapek, umieszczonych po jednej w każdej wnęce, w której oddziałuje energia mikrofal, a następnie do wybranej wnęki, gdzie każdy liść poddawany jest działaniu mikrofal zgodnie z zasadami niniejszego wynalazku podanymi wyżej. Po poddaniu liści działaniu mikrofal przenośnik transportuje liście przez wyjście z wnęki, przez miejsce usuwania zawartości pieca na zewnątrz, gdzie liście przenoszone są z kolei do odpowiednich pojemników, w których zabierane są na miejsce dalszej obróbki.
W ceiu usunięcia wilgotnego powietrza z wnęk i samego pieca, zastosować można system wydechowy obejmujący odpowiednie dmuchawy, pod warunkiem, że w systemie tym uwzględnić można cyrkulujące powietrze (patrz: otwory wentylacyjne do usuwania wilgoci, z których przedstawiono w ramach przykładowej ilustracji jednostkę 8 na fig. 3). Podobnie istnieje też możliwość kontroli temperatury wnętrza pieca z pomocą odpowiednio rozmieszczonych konwekcyjnych źródeł ogrzewania, dzięki czemu wnętrze pieca na zewnątrz wnęk mikrofalowych utrzymywane jest w stałej temperaturze, przykładowo na poziomie 160-180°F,
188 860 w trakcie transportu liści. W przypadku przenośnego systemu, jaki zaprezentowano na fig. 3, stosowanego w terenie, energię elektryczną dostarczać można z pomocą pary typowych generatorów 9, 10, wykorzystujących silnik Diesla. Oczywiście system suszenia mikrofalami może też posiadać stałą lokalizację, a zasilany być z wykorzystaniem tradycyjnych źródeł mocy. Każda z czterech wnęk w piecu 3, na fig. 3 otrzymuje energię mikrofalową z odpowiedniego źródła energii typu MicroDry, model IV-75. Energia ta dostaje się do wnętrza każdej wnęki poprzez otwór w dwóch portach umieszczonych na szczycie każdej wnęki. Poniżej owych portów zlokalizowane jest w każdej wnęce mieszadło, wspomagające rozprowadzanie energii mikrofalowej. Każdą jednostkę oddziaływania z pomocą mikrofal stanowi zamknięta szafka, w której umieszczono elementy pożądane do obsługi magnetronu o mocy 75 kW. Regulatory mocy mikrofal umieszczone są na szafce. Poszczególne jednostki wykorzystywane są na skalę przemysłową - działają w sposób ciągły, nie wymagając jednocześnie stałej obsługi. Każdy generator mikrofal umieścić można w każdej z czterech wnęk, lub też w pewnym oddaleniu od niej. Jednak w odległości 50' straty na linii przesyłowej wynoszą około 2%. Każdy generator zapewnia energię o własnościach odpowiadających zapotrzebowaniu danego przemysłu. Moc na wyjściu wynosić może od 0 do 75 kW dla częstotliwości przyznanej przez państwo 915 MHz, a kontrolowana jest ona ręcznie z pomocą odpowiedniego pokrętła na panelu lub też zdalnie z pomocą sygnału kontrolnego o natężeniu 4-20 miliamperów wysyłanego z układu automatycznego sterowania. Zakres częstotliwości staje się szeroki na poziomie poniżej około 5 kW. Generator mocy dla każdej wnęki stanowi zasadniczo bezpośrednie źródło zasilania obsługujące magnetron wykorzystywany dla celów przemysłowych, a który obsługiwany jest i chroniony z wykorzystaniem funkcji połączeń dla obsługi ręcznej i automatycznej. Elektryczne funkcje generatora monitorowane są z pomocą mierników na panelu kontrolnym, umieszczonym na drzwiach szafki. Dokonuje się przy tym pomiarów prądu anodowego, napięcia anodowego, mocy na wyjściu, prądu żarzenia, prądu elektromagnetycznego i zdolności odbijania. Funkcje blokady elektromechanicznej kontrolowane są z kolei przy użyciu lamp umieszczonych na panelu kontrolnym. Każda szafka zawierająca generator mikrofal charakteryzuje się obecnością drzwi pełnej szerokości, pozwalających na łatwy dostęp do poszczególnych jego komponentów. Wbudowana osłona chroniąca przed interferencją elektromagnetyczną mieści magnetron oraz powiązane z nim elementy do wytwarzania mikrofal. Na instalację magnetronu i elektromagnesu pozwalają drzwi. Ów system obejmuje ponadto cyrkulator i ładunek wodny, umieszczone wewnątrz szafki, przy czym ten ostatni pełni funkcję izolatora chroniącego magnetron w razie znacznego odbijania fal. Generator mikrofal wykorzystuje do chłodzenia nagrzewających się elementów strumień powietrza oraz wodę. Magnetron oraz elektromagnes chłodzone są z pomocą zamkniętego obiegu odmineralizowanej wody. Do chłodzenia wody zawartej w tym obiegu wykorzystywać można odrębne źródło wody oraz wymiennik ciepła. Odrębne źródło wody wpływa też na stan powietrznego wymiennika ciepła położonego w szafce, co pozwala na schłodzenie powietrza w samej szafce. Dmuchawa wirnikowa działająca pod wysokim ciśnieniem pozwala na schładzanie wyjścia magnetronu i struktury katodowej. Temperatury wody i wewnątrz szafki powiązane są ze sobą w kontrolnym łańcuchu napędowym. Poniżej podano typowe wartości dla każdego generatora mikrofal we wspomnianym systemie:
Moc na wejściu: 95 KVA, 440-480 VAC, 3 fazy, 60 Hz Moc na wyjściu: 75 kW przy 915 +/- 10 MHz Rura magnetronu: CTL, CMW 75 I Poniżej podano typowe wartości dla magnetronu:
Przemienne natężenie żarzenia 11,4 V
Prąd żarzenia 85 A
Stałe natężenie anodowe 17 kV
Prąd anodowy 5,0 A
Stały prąd elektromagnesu 4,3 A
Wydajność 80%
188 860
Typowy generator mikrofal wykorzystywać może osłonę ze stali węglowej, a ponadto posiadać połączenie na wyjściu (falowód WR 975) w odpowiednim miejscu na szczycie szafki.
W wyniku przeprowadzonego testu wykazano, że system suszenia tytoniu z wykorzystaniem mikrofal okazał się skuteczny w wyeliminowaniu 80% zawartości wilgoci w liściach. I tak jedną z próbek 15 funtów liści o szacunkowej początkowej zawartości wody równej 85% i 15% ciał stałych przetransportowano przez wnękę, w której liście ułożone jednowarstwowo poddano działaniu mikrofal, z prędkością około 180 funtów na godzinę. Następnie liście zważono już po opuszczeniu wnęki. Waga końcowa wynosiła 4,61 funta, to jest 31% wagi początkowej. W oparciu o wstępne dane szacunkowe obliczono, że w liściach tych pozostało 2,35 funta wody, co odpowiada 18,5% jej początkowej zawartości w liściach.
Zgodnie z tym, co pokazano na fig. 2, poddanie działaniu mikrofal tytoniu żółtego zgodnie z niniejszym wynalazkiem wiąże się, zgodnie z korzystnym rozwiązaniem, z uzyskaniem suszonego produktu tytoniowego w kolorze złotym. Przedstawione tu dane wskazują że taki wysuszony tytoń charakteryzuje się znacznie niższą zawartością rakotwórczych nitrozoamin, a zwłaszcza NNN i NNK, niż to jest w przypadku tytoniu poddanego typowej konserwacji.
Stwierdzono też, że skupione promieniowanie elektromagnetyczne (przykładowo w odróżnieniu od działania promieni słonecznych czy światła elektrycznego w widzialnym zakresie) o wyższych częstotliwościach i krótszej długości fal niż to jest w przypadku mikrofal, wykorzystywać można do realizacji podstawowych celów niniejszego wynalazku - to jest do zmniejszenia lub zasadniczego wyeliminowania TSNA z produktów tytoniowych poprzez poddawanie tytoniu działaniu tego rodzaju energii w przybliżeniu w tym samym czasie po zbiorach co w przypadku oddziaływania mikrofalami. Innymi słowy, te same techniki, jakie omówiono powyżej odnośnie działania mikrofal, zastosować można przy wykorzystaniu alternatywnych źródeł energii. Przykładowo - tytoń poddaje się promieniowaniu w przybliżeniu w tym samym czasie po zbiorach, przy czym liście mogą zostać pozbawione łodyżek, zgniecione między rolkami lub poddane działaniu pary przed przystąpieniem do napromieniowania.
Jednakże, chociaż alternatywne źródła energii okazały się skuteczne w zmniejszaniu czy nawet eliminacji TSNA, żaden z przetestowanych dotąd sposobów nie okazał się równie skuteczny w suszeniu liści co promieniowanie mikrofalowe, omówione wyżej. Dlatego też, już po poddaniu liści działaniu owych alternatywnych źródeł energii, korzystna może się okazać ich dalsza obróbka dla pełnego przeprowadzenia procesu konserwacji. Przykładowo połączyć można etap napromieniowania z późniejszym suszeniem w piecu czy z pomocą suszarki bębnowej.
Sądzi się, że dowolne źródło promieniowania elektromagnetycznego, wiązki cząstek przyspieszonych, takie jak wiązki elektronów o częstotliwości powyżej zakresu mikrofal dla zwykłego zakresu promieniowania elektromagnetycznego, pozwalają na znaczne zmniejszenie czy też wyeliminowanie i/lub zapobieżenie powstawaniu TSNA, gdy tytoń nie został poddany konserwacji, a przy tym pozwala na zmniejszenie ilości TSNA lub zahamowanie procesu jego wytwarzania. Na skali widma elektromagnetycznego, dla którego mikrofale określa się jako te obejmujące promieniowanie elektromagnetyczne o częstotliwości 10 Hz i długości fali 3 x 10'* metra, takie źródła energii obejmują podczerwień daleką oraz podczerwień o częstotliwości około 1012 do 1014 Hz i długości fali 3 χ 10”4 do 3 x 10'° metra, ultrafiolet o częstotliwości około 10’6 do 1018 Hz i długości fali 3 χ 10'8 do 3 χ 10'10 metra, miękkie promieniowanie rentgenowskie lub laser, promienie katodowe (strumień elektronów o ładunku ujemnym pochodzący z katody lampy elektronowej próżniowej biegnący prostopadle do powierzchni), promieniowanie rentgenowskie oraz promieniowanie gamma charakteryzujące się zazwyczaj częstotliwościami 102rHz i więcej przy odpowiadających im długościach fal.
Przeciętny specjalista zdaje sobie sprawę z tego, że im większa jest dawka promieniowanią tym krócej poddawane mu muszą być liście w celu uzyskania pożądanych rezultatów. I tak promieniowanie o wysokiej częstotliwości wymaga czasu oddziaływania poniżej 1 minuty, a korzystnie poniżej 30 sekund, a jeszcze korzystniej poniżej 10 sekund. Innymi słowy preferuje się zastosowanie częstotliwości promieniowania, wykorzystywanego przynajmniej przez jedną sekundę. Jednakże zgodnie z tym, co pokazano w przykładach poniżej, istnieje możliwość wpływania na natężenie promieniowania, co pozwala na jego rozciągnięcie w cza188 860 sie. I tak przykładowo 1 megarad promieniowania dostarczyć można natychmiastowo (jak w przypadku akceleratora wiązki elektronowej omówionego poniżej w przykładzie 17) lub też w określonym uprzednio natężeniu (co zilustrowano przykładem promieniowania gamma w zamkniętej komorze w przykładzie 19, gdzie 11 megarad (10 kGrey) promieniowania przekazano w tempie około .8 megarada na godzinę). W przypadku wykorzystania źródeł promieniowania wysokiej częstotliwości, korzystne jest zastosowanie takiej jego ilości, która spowoduje przynajmniej 50% redukcji TSNA w zestawieniu z próbkami nie poddanymi obróbce tego rodzaju. I choć dawka promieniowania i jego natężenie uzależnione są od sprzętu i rodzaju wykorzystywanego źródła promieniowania, czego świadomy jest przeciętny fachowiec, preferuje się zasadniczo poddawanie próbek liści tytoniu promieniowaniu od około .1 to około 10 megaradów, a korzystniej 5 do 5 megaradów, zaś najkorzystniej od około .75 do około 1,5 megarada.
Zgodnie z tym, co przedstawiają poniższe przykłady, testy wykonano na różnych próbkach tytoniu z wykorzystaniem wiązki przyspieszonych elektronów, lasera CO2 oraz promieniowania gamma jako przykładowych dodatkowych źródeł promieniowania. W każdym przypadku próbki tytoniu nie poddane uprzedniej konserwacji, a po napromieniowaniu, wykazały znacznie mniejszą i/lub zasadniczo wyeliminowaną zawartość TSNA.
Zgodnie z innym rozwiązaniem niniejszego wynalazku, po umieszczeniu tytoniu w stanie podatności na zmiany w konwekcyjnym piecu z obiegiem powietrza również zaobserwowano zmniejszenie zawartości TSNA, jednak przy jednoczesnym obniżeniu jakości samych liści. Inaczej niż to jest w przypadku klasycznego pieca piekarskiego, który, raz, nie pozwala równie skutecznie na zmniejszenie zawartości TSNA, dwa, niekorzystnie wpływa na jakość liści, podgrzewanie w konwekcyjnym piecu z obiegiem powietrza w temperaturze od około 100°F do około 500°F, w okresie od jednej godziny przy niższej temperaturze do około 5 minut w wysokiej temperaturze, może również skutecznie zmniejszyć zawartość lub też zahamować tworzenie się TSNA w tytoniu, który znajduje się w stanie podatności na tego rodzaju zmiany. Zgodnie z jeszcze korzystniejszym rozwiązaniem, piec łączący w sobie konwekcyjny obieg powietrza oraz promieniowanie mikrofalowe pozwala na skrócenie czasu podgrzewania, zarazem korzystnie wpływając na jakość liści. Przykładowo, w przypadku zastosowania jedynie pieca konwekcyjnego, nerwy i łodyżki liści nie zostają starannie wysuszone w tym samym czasie, w którym wysuszeniu ulegają blaszki, co prowadzi z kolei do przesuszenia i kruchości blaszek. Połączenie działania mikrofal z piecem konwekcyjnym wpływa korzystnie na jakość liścia, to jest pozwala na uzyskanie równomiernie wysuszonego produktu. Zgodnie z kolejnym aspektem niniejszego wynalazku, odnosi się on do sposobu zmniejszania lub zasadniczej eliminacji zawartości nitrozoamin właściwych dla tytoniu (TSNA) w organizmie człowieka lub zwierzęcia, palącego, żującego lub też w inny sposób konsumującego tytoń, a to za sprawą produktu tytoniowego o znacznie zmniejszonej, czy też zasadniczo wyeliminowanej zawartości TSNA.
Wykazano, ze poddawanie tytoniu, który nie przeszedł przez proces konserwacji, działaniu mikrofal lub innego promieniowania jest skuteczne w pozyskiwaniu tytoniu o zaskakująco obniżonej zawartości nitrozoamin. Techniki te wspomagać można poprzez usuwanie łodyżek poniżej jednej trzeciej do jednej drugiej długości liścia, zwłaszcza w wypadku, gdy łodyżka i tak jest usuwana i nie wykorzystuje się sposobów usuwania z niej wilgoci, o których mowa była powyżej. Po usunięciu w ten sposób łodyżki, poddany działaniu mikrofal liść nie wymaga użycia młockami, jako że usunięto już niepożądaną część łodyżki. W rezultacie wyeliminowane są straty towarzyszące młóceniu, co obniża ogólne straty tytoniu o około 10 do 30%. Ten ulepszony rodzaj tytoniu, będący przedmiotem niniejszego wynalazku, zastąpić może częściowo lub całkowicie tytoń poddany normalnej konserwacji w dowolnym produkcie tytoniowym, w tym w papierosach, cygarach, tytoniu do żucia, gumie do żucia zawierającej tytoń, tabletkach zawierających tytoń, kapciuchach, tabace lub tytoniowych substancjach smakowych i dodatkach spożywczych. Niniejszy wynalazek zapewnia również mniej trujące produkty dla palaczy, przy zachowaniu ich pożądanych właściwości, pełnego smaku i normalnej zawartości nikotyny. W przypadku produktów tytoniowych wykorzystywanych do żucia, w kapciuchach, tabace i dodatkach spożywczych, tytoń uzyskany zgodnie z niniejszym wynalazkiem charakteryzuje się niezubożonym i przyjemnym smakiem.
188 860
Poniżej zaprezentowano przykłady, stanowiące ilustrację dla niniejszego wynalazku, a zarazem nie ograniczające jego zakresu.
Przykład 1
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze, zebrano próbki 1-3. Próbkę 1 stanowiły same blaszki liścia, pozbawione głównego nerwu, pieczone w piecu konwekcyjnym w temperaturze około 400-500°C przez około 1 godzinę, co spowodowało zbrązowienie blaszki. Próbkę 2 stanowił żółty liść, umieszczony w piecu mikrofalowym Goldstar model MA-1572M (2450MHz) i podgrzewany po ustawieniu wysokiej mocy (1000 watów) przy jednoczesnym obracaniu przez około 2 minuty.
Próbkę 3 stanowił żółty liść, nie poddany konserwacji, wykorzystywany dla celów kontrolnych. Próbki 4 i 5 pozostawały we wspomnianym pomieszczeniu w podwyższonej temperaturze około 180°C, przy czym próbka 4 była suszona poza suszarką, a próbka 5 na niej. Próbkę 6 stanowił brązowy liść, poddany typowej konserwacji w kanale dymowym.
Dla każdej próbki przeprowadzono analizę w celu zmierzenia zawartości NNN, NAT, NAB i NNK. W tym i kolejnych przykładach TSNA oznacza sumę tych czterech nitrozoamin właściwych dla tytoniu. Badanie próbek przeprowadzono zgodnie z typową metodą analizy zawartości TSNA (patrz, przykładowo, Burton et al, „Distribution of Tobacco Constituents in Tobacco Leaf Tissue. 1. Tobacco-specific Nitrosamines, Nitrate, Nitrite and Alkaloids”, J. Agrie Food Chem., tom 40, nr 6, 1992), zaś ilość TSNA zmierzono z pomocą analizatora energii cieplnej firmy Thermedics Inc., model TEA 532 w połączeniu z chromatografem gazowym firmy Hewlett-Packard model 5890A. Wyniki badań przedstawiono w tabeli 1 poniżej. Wszystkie wyniki przedstawione w tabelach podano w mikrogramach nitrozoaminy na gram próbki (to jest pg/g):
Tabela 1
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 1 - żółta pieczona blaszka | 0,310 | 0,843 | <0,0004 | 0,1157 |
| 2 - żółty, poddany działaniu mikrofal | <0,0004 | <0,0006 | <0,0005 | <0,0014 |
| 3 - żółty, próbka kontrolna | 0,0451 | 0,1253 | 0,0356 | 0,2061 |
| 4 - szybkie suszenie poza suszarką | 0,6241 | 1,-4862 | 1,2248 | 3,3351 |
| 5 - szybkie suszenie w suszarce | 0,7465 | 1,5993 | 1,3568 | 3,7044 |
| 6 - typowa konserwacj a w kanale dymowym | 1,0263 | 1,7107 | 2,2534 | 4,9904 |
Przykład 2
Zebrano tytoń typu Virginia. Próbkę 7 stanowił świeżo zebrany zielony liść wykorzystany dla celów kontrolnych, podczas gdy próbkę 8 stanowił świeżo zebrany zielony liść poddany działaniu mikrofal w wielomodułowym urządzeniu do emisji mikrofal, wyprodukowanym przez MicroDry z siedzibą w Louisville, Kentucky, o częstotliwości fal 2450 MHz i mocy 2,5 kilowatów, przez około 20 sekund. Próbki 9-12 stanowił brązowy tytoń poddany typowej konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 9 stanowił tytoń z papierosa, próbkę 10 - tytoń sypki, szatkowany i wykorzystywany do robienia papierosów, próbki 11 i 12 odpowiadały próbkom 9 i 10, z tą różnicą, że poddano je działaniu mikrofal w taki sam sposób jak w przypadku próbki 8. Zawartość TSNA zbadano w ten sam sposób, co w przykładzie 1. Wyniki podano w tabeli 2 poniżej:
188 860
Tabela 2
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 7 - świeży liść próbka kontrolna | <0,0104 | 0,126 | 0,0005 | 0,126 |
| 8 - świeży liść, poddany działaniu mikrofal | 0,029 | 0,135 | 0,0004 | 0,164 |
| 9 - papieros, próbka kontrolna | 1,997 | 3,495 | 2,735 | 8,226 |
| 10 - sypki, próbka kontrolna | 2,067 | 3,742 | 2,982 | 8,791 |
| 11 - papieros, poddany działaniu mikrofal | 2,056 | 3,499 | 2,804 | 8,359 |
| 12 - sypki, poddany działaniu mikrofal | 2,139 | 3,612 | 2,957 | 8,707 |
Przykład 3
Zakupiono następujące marki papierosów w przypadkowych punktach sprzedaży w Lexington, Kentucky, a następnie zanalizowano zawartość TSNA z wykorzystaniem sposoby opisanego w przykładzie 1.
Tabela 3
| Próbka # | Kod nr | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 13 - Marlboro-king | 288292 | 3,565 | 4,538 | 1,099 | 9,202 |
| 14 - Marlboro-king | 288292 | 4,146 | 4,992 | 1,142 | 10,279 |
| 15 - Marlboro-king | 288292 | 3,580 | 4,290 | 1,106 | 8,977 |
| 16 - Marlboro-king | 288292 | 3,849 | 4,748 | 1,130 | 9,728 |
| 17 - Marlboro-lights | 288192 | 4,604 | 5,662 | 1,223 | 11,489 |
| 18 - Marlboro-lights | 288182 | 3,471 | 3,859 | 1,211 | 8,541 |
| 19 - Marlboro-lights | 288182 | 3,488 | 4,136 | 1,074 | 8,698 |
| 20 - Marlboro-lights | 288182 | 3,566 | 4,240 | 1,164 | 8,970 |
| 21 - Winston | 123143 | 2,311 | 2,968 | 1,329 | 6, 608 |
| 22 - Winston-king | 123103 | 2,241 | 2,850 | 1,256 | 6,348 |
| 23 - Winston-king | 125123 | 2,162 | 2,831 | 1,326 | 6,319 |
| 24 - Winston-king | 123123 | 2,577 | 3,130 | 1,207 | 6,914 |
| 25 - Winston-king | 123103 | 1,988 | 2,563 | 1,234 | 5,786 |
| 26 - Winston-lights | 123133 | 2,161 | 2,706 | 1,258 | 6,124 |
| 27 - Winston-lights | 123133 | 2,189 | 2,699 | 1,262 | 6,150 |
| 28 - Winston-lights | 123133 | 2,394 | 3,385 | 2,330 | 8,109 |
Przykład 4 ....
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze, liście usunięto z pomieszczenia i poddano działaniu mikrofal w piecu mikrofalowym Goldstar model MA-1572M (2450 MHz) i podgrzewano po ustawieniu wysokiej mocy (1000 watów) przy jednoczesnym obracaniu przez około 2 minuty. W wyniku tego liście zostały starannie wysuszone, jednocześnie nie brązowiejąc, lecz zachowując złoto-żółtą barwę. Następnie liście te poszatkowano i wyprodukowano z nich papierosy.. Próbki 29-33 pobrano z grupy oznaczonej Red Full Flavor, podczas gdy
188 860 próbki 34-38 pochodziły z grupy blue Light. Próbki 39-42 stanowiły papierosy zakupione w sklepie ze zdrową żywnością, firmowane przez Natural American Spirit. W próbkach 29-42 zmierzono zawartość TSNA przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 4 poniżej:
Tabela 4
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA | |
| 29 - RED FULL FLAVOR, nr 1 | 0,138 | 0,393 | <0,0005 | 0,532 | |
| 30 - RED FULL FLAVOR, nr 2 | 0,192 | 0,231 | <0,0005 | 0,423 | |
| 31 - RED FULL FLAVOR, nr 3 | 0,129 | 0,220 | <0,0007 | 0,349 | |
| 32 - RED FULL FLAVOR, nr 4 | 0,145 | 0,260 | <0,0007 | 0,406 | |
| 33 - RED FULL FLAVOR, nr 5 | 0,140 | 0,293 | <0,0006 | 0,434 | |
| AVG | 0,149 | 0,279 | <0,0006 | 0,429 | |
| STD | 0,022 | 0,062 | 0,0001 | 0,059 | |
| 34 - BLUE LIGHT, nr 1 | 0,173 | 0,162 | <0,0005 | 0,335 | |
| 35 - BLUE LIGHT, nr 2 | 0,046 | 0,229 | <0, 0005 | 0,275 | |
| 36 - BLUE LIGHT, nr 3 | 0,096 | 0,188 | <0,0005 | 0,285 | |
| 37-BLUE LIGHT, nr4 | 0,067 | 0,215 | <0,0005 | 0,282 | |
| 38 - BLUE LIGHT, nr 5 | 0,122 | 0,218 | <0, 0005 | 0,341 | |
| AVG | 0,101 | 0,202 | <0,0005 | 0,304 | |
| STD | 0,044 | 0,024 | 0,0000 | 0,028 | |
| 39 -NATURAL AMERICAN SPIRIT | 0,747 | 1,815 | 1,455 | 4,017 | |
| 40 -NATURAL AMERICAN SPIRIT | 0,762 | 1,805 | 1,458 | 4,025 | |
| 41 -NATURAL AMERICAN SPIRIT | 0,749 | 1,826 | 1,-464 | 4,039 | |
| 42 -NATURAL AMERICAN SPIRIT | 0,749 | 1,760 | 1,462 | 3,971 | |
| AVG | 0,752 | 1,802 | 1,-460 | 4,013 | |
| STD | 0,006 | 0,025 | 0,04 | 0,025 |
STD w tabeli oznacza standardowe odchylenie dla średniej zaprezentowanych próbek..
Przykład 5
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze, liście próbek 43-44 usunięto z pomieszczenia i poddano działaniu mikrofal w opisanym wyżej wielomodułowym urządzeniu do emisji mikrofal firmy MicroDry odpowiednio przez około 20 i 30 sekund, przy ustawieniu mocy na poziomie około 6 kilowatów. Próbki 43 i 44 stanowiły wysuszone złoto-żółte liście poddane działaniu mikrofal. Próbki 45-51 stanowiły brązowe liście poddane typowej konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 45 potraktowano jako próbkę kontrolną, próbki 46 i 47 pieczono w piecu konwekcyjnym podgrzanym do temperatury około 400-500°F odpowiednio przez
188 860 około 1 i około 3 minut, zaś próbki 48 i 49 poddano działaniu mikrofal (915 MHz) z pomocą urządzenia firmy Waveguide model WR-975, dużego, wielomodułowego pieca firmy MicroDry (ustawienia mocy od 0-75 kW) przy mocy 50 kilowatów odpowiednio przez około 10 i 40 sekund. Próbki 50 i 51 stanowił cięty tytoń (sprasowany) wyprodukowany z liści poddanych konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 50 poddano działaniu mikrofal w piecu firmy Waveguide przy mocy 50 kilowatów przez około 1,5 minuty, podczas gdy próbkę 51 pieczono przez około 3 minuty w piecu konwekcyjnym podgrzanym do temperatury około 400-500°F. W próbkach tych zbadano zawartość TSNA z wykorzystaniem procedury opisanej w przykładzie 1. Wyniki podano w tabeli 5 poniżej:
Tabela 5
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 43 -20 SEKUND MIKROFAL | <0,0106 | <0,1068 | <0,0007 | <0,1181 |
| 44-30 SEKUND MIKROFAL | <0,0103 | <0,1065 | <0,0004 | <0,1172 |
| 45 - PRÓBKA KONTROLNA, BRAK MIKROFAL | 0,92 | 2,05 | 3,71 | 6,68 |
| 46 - PIEC 1 MIN. | 1,14 | 2,41 | 5,10 | 8,66 |
| 47 - PIEC 3 MIN. | 0,89 | 2,06 | 2,68 | 5,64 |
| 48 - WAVEGUIDE 10 SEK. 50 KW | 1,00 | 2,31 | 3,29 | 6,59 |
| 49 - WAVEGUIDE 40 SEK. 50 KW | 0,62 | 1,55 | 1,69 | 3,86 |
| 50 - CIĘTY TYTOŃ WAVEGUIDE 1,5 MIN. 50 KW | 4,22 | 4,91 | 0,99 | 10,12 |
| 51 - CIĘTY TYTOŃ, PIEC 3 MIN. | 4,76 | 5,60 | 1,08 | 11,44 |
Przykład 6
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbki 52-55 stanowiły papierosy wyprodukowane z żółtego tytoniu, jaki wyciągnięto z pomieszczenia po około 24-36 godzinach, a następnie poddano działaniu mikrofal przez około 2 minuty w piecu firmy Goldstar, model MA-1572M (2450 MHz) przy wysokiej mocy (1000 watów). Dla porównania próbki 61 i 62 stanowiły papierosy wyprodukowane z liści, które poddano typowej konserwacji w kanale dymowym bez promieniowania mikrofalami. Próbkę 56 stanowił poddany konserwacji liść; próbkę 57 stanowił liść tracący żółtą barwę, nie poddany jeszcze całkowitej konserwacji; próbkę 58 - poddane konserwacji blaszki liści, zaś próbki 59 i 60 - poddane konserwacji główne nerwy. W p^<3bl^^<^łi tych zbadano TSNA z wvkorzystaniem procedury opisanej w przykładzie 1. Wyniki podano w tabeli 6 poniżej:
Tabela 6
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 52 - Goldsmoke | 0,12 | 0,23 | 0,03 | 0,38 |
| 53 - Goldsmoke II, 85 mm | 0,062 | 0,326 | 0,016 | 0,404 |
| 54 - Goldsmoke, 85 mm | 0,128 | 0,348 | 0,029 | 0,504 |
188 860
c.d. tabeli 6
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 55 - Goldsmoke, 100', próbka B | 0,166 | 0,317 | 0,047 | 0,531 |
| 56 - próbka M-M | 3,269 | 4,751 | 0,833 | 8,853 |
| 57 - próbka B-C | 0,267 | 0,720 | 0,954 | 1,941 |
| 58 - blaszki M-C | 0,933 | 1,456 | 1,968 | 4,356 |
| 59-WM | 0,996 | 1,028 | 0,400, 3068 | 2,432 |
| 60 -SM | 1,745 | 1,753 | 0,492 | 3,804 |
| 61 - Goldsmoke, próbka kontrolna | 1,954 | 1,544 | 0,424 | 3,990 |
| 62 - Goldsmoke, próbka kontrolna | 1,952 | 1,889 | 4,265 |
Przykład 7
Zebrano tytoń typu Virginia. Próbki 63 i 66 stanowił świeżo zebrany zielony tytoń, nie poddany konserwacji, jednak upłynął ponad tydzień przed dokonaniem pomiarów TSNA, co oznacza, że zaszła częściowa konserwacja na wolnym powietrzu. Pozostałe liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 68 stanowił liść wyjęty z pomieszczenia po zżółknięciu, po około 24-36 godzinach, a następnie poddany działaniu mikrofal przez około 40 sekund w wielomodułowym urządzeniu firmy Waveguide, opisanym powyżej, przy mocy na poziomie 25 kilowatów.
Próbki 64/65 (liście) i 67/70 (tytoń „cięty”, sprasowany) prezentują efekt zastosowania niniejszego wynalazku, gdy poddany konserwacji tytoń ulega rehydratacji, a następnie poddawany jest działaniu mikrofal. Próbki 64 i 65 stanowiły liście, które poddano typowej konserwacji w kanale dymowym bez promieniowania mikrofalami, jednak próbkę 65 poddano rehydratacji poprzez umieszczenie jej pod odkręconym kranem przez około 5-10 sekund. Wówczas nastąpiła znaczna absorpcja wilgoci. Następnie obie próbki 64 i 65 poddano przez około 40 sekund działaniu mikrofal z pomocą wielomodułowego urządzenia firmy Waveguide, przy mocy na poziomie 25 kilowatów. Próbki 67 i 70 stanowiły próbki sprasowanego tytoniu, sporządzonego z liści poddanych konserwacji. Próbkę 67 poddano rehydratacji poprzez dodanie wody, co pozwoliło na znaczną jej absorpcję, a następnie - działaniu mikrofal w warunkach opisanych dla próbki 64. Próbki 70 nie poddano działaniu mikrofal. W ramach próbek kontrolnych wykorzystano próbki 69, 71 i 72, jakie stanowią dodatkowe liście poddane konserwacji. W próbkach tych zbadano zawartość TSNA z wykorzystaniem procedury opisanej w przykładzie 1. Wyniki podano w tabeli 7 poniżej:
Tabela 7
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 63 - KONTROLNA, NIE PODDANA KONSERWACJI | 0,010 | 0,263 | 0,000 | 0,274 |
| 64 - PODDANA KONSERWACJI 40 SEK. (WILGOTNA) | 0,737 | 1,252 | 1,893 | 3,882 |
| 65 - PODDANA KONSERWACJI 40 SEK. | 0,767 | 1,520 | 2,229 | 4,516 |
| 66 - NIE PODDANA KONSERWACJI 40 SEK. | 0,010 | 0,261 | 0,000 | 0,272 |
| 67 - TYTOŃ CIĘTY, PODDANY KONSERWACJI 40 SEK. (WILGOTNY) | 0,769 | 1,328 | 0,308 | 2,405 |
188 860
c.d. tabeli 7
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 68 - NIE PODDANA KONSERWACJI 40 SEK. 25 KW WAVEGUIDE | 0,051 | 0,244 | 0,014 | 0,308 |
| 69 - KONTROLNA, NIE PODDANA KONSERWACJI | 0,866 | 1,548 | 2,545 | 4,960 |
| 70 - KONTROLNA, TYTOŃ CIĘTY | 1,872 | 2,536 | 0,789 | 5,197 |
| 71 - KONTROLNA 'AL' CAŁY LIŚĆ | 0,230 | 0,606 | 0,746 | 1,582 |
| 72 - SML, CAŁY LIŚĆ | 0,413 | 0,884 | 1,514 | 2,810 |
Przykład 8
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 73 stanowił liść, jaki wyciągnięto z pomieszczenia po jego zżółknięciu po około 24-36 godzinach, a następnie poddano działaniu mikrofal przez około 2 minuty w piecu firmy Goldstar, model MA-1572M przy wysokiej mocy. Próbki 74-76 poddano typowej konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 74 użyto jako próbkę kontrolną. Próbki 75 i 76 poddano rehydratacji jak w przykładzie 7 (próbka 64), po czym obie poddano działaniu mikrofal z pomocą urządzenia firmy MicroDry (2450 MHz) przez około 20 sekund (próbka 75) i około 40 sekund (próbka 76), przy mocy na poziomie około 6 kilowatów. Próbki 77-79 stanowił sprasowany tytoń, wyprodukowany z poddanych konserwacji liści. Próbkę 77 potraktowano jako próbkę kontrolną, zaś próbki 78 i 79 poddano rehydratacji w sposób omówiony w przykładzie 7 (próbka 67). Próbki 78 i 79 poddano działaniu mikrofal z pomocą urządzenia firmy MicroDry przez około 30 sekund, przy czym próbka 78 spoczywała na dnie pieca, zaś próbka 79 uniesiona była na wysokość kilkunastu cali w wyniku umieszczenia sprasowanego tytoniu na miseczce z pianki, co pozwoliło na bardziej równomierne ogrzewanie. W próbkach tych zbadano zawartość TSNA z wykorzystaniem procedury opisanej w przykładzie 1. Wyniki podano w tabeli 8 poniżej:
Tabela 8
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 73 - żółty/poddany działaniu mikrofal | 0,052 | 0,260 | <0,0004 | 0,313 |
| 74 - liść kontrolny, poddany konserwacji | 1,168 | 1,904 | 1,662 | 4,734 |
| 75 - b 20 sek. | 0,791 | 1,705 | 1,115 | 3,611 |
| 76 - c 40 sek. | 0,808 | 1,624 | 1,160 | 3,592 |
| 77 - kontrolna, tytoń sprasowany | 4,417 | 3,697 | 0,960 | 9,073 |
| 78 - 30 sek. | 2,755 | 2,553 | 0,644 | 5,952 |
| 79 - 30 sek., uniesiona | 1,606 | 1,732 | 0,350 | 3,687 |
Przykład9
Próbki 80-81 stanowił tytoń do żucia firmy Redman, dostępny w sprzedaży. Próbkę 80 stanowiła próbka kontrolna, zaś próbkę 81 poddano działaniu mikrofal przez około 1-2 minut z pomocą urządzenia firmy Goldstar model MA-1572M, przy wysokim poziomie ustawienia mocy. Próbki 82-83 stanowiła tabaka firmy Skoal dostępna w sprzedaży. Próbkę 82 stanowiła próbka kontrolna, zaś próbkę 83 poddano działaniu mikrofal w taki sam sposób co w przypadku próbki 81. W próbkach tych zbadano zawartość TSNA. Wyniki podano w tabeli 9 poniżej:
188 860
Tabela 9
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 80 - TYTOŃ DO ŻUCIA PRZED | 0,712 | 0,927 | 0,975 | 1,713 |
| 81 - TYTOŃ DO ŻUCIA PO | 0,856 | 0,906 | 0,122 | 1,884 |
| 82 - TABAKA PRZED | 4,896 | 10.545 | 1,973 | 17,414 |
| 83 - TABAKA PO | 6,860 | 14.610 | 1,901 | 23,370 |
Przykład 10
W celu stwierdzenia, czy TSNA gromadzi się również po poddaniu działaniu mikrofal zżółkniętych liści, przetestowano dodatkowe próbki (oznaczone -A) papierosów, poddanych testom w przykładzie 4, przy czym próbki 29, 35 i 39 (kontrolne) przetestowano ponownie na zawartość TSNA ponad siedem miesięcy po pierwszym zbadaniu zawartości TSNA, o której poinformowano w przykładzie 4. Wyniki podano w tabeli 10 poniżej:
Tabela 10
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 29 A RED FF, NR#1 | 0,1109 | 0,1877 | 0,1078 | 0,4079 |
| 35A - BLUE LIGHT, NR #2 | 0,0508 | 0,1930 | 0,1075 | 0,3525 |
| 39A-NATURAL AMERICAN SPIRIT, NR 1 | 0,6151 | 1,2357 | 0,1072 | 2,8882 |
Pr zykł ad 11
Po zebraniu tytoniu typu □irginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w celu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze, liście usunięto z pomieszczenia i poddano działaniu mikrofal w piecu mikrofalowym Goldstar model MA-1572M i podgrzewano po ustawieniu wysokiej mocy przez około 2 do 2 minuty. W wyniku tego liście zostały starannie wysuszone, jednocześnie zachowując złoto-żółtą barwę. Niektóre próbki zmielono, uzyskując substancję o konsystencji mąki, jaką wykorzystuje się przykładowo przy produkcji gumy, tabletek oraz dodatków spożywczych. Po okresie ponad 6 miesięcy od poddania liści działaniu mikrofal, zmierzono w nich zawartość TSNA przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 11 poniżej:
Tabela 1
| Próbka # | NNN | NAT | NAB | NNK | TSNA |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 |
| 84 - zmielona | 0,0013 | 0,0018 | 0,0018 | 0,0015 | 0,0064 |
| 85 - zmielona | 0,0469 | 0,0341 | 0, 0011 | 0,0009 | 0,0831 |
| 86 - zmielona | 0,0009 | 0,0582 | 0,0013 | 0,0011 | 0,0615 |
| 87 - zmielona | 0,0113 | 0,1078 | 0,1078 | 0,0015 | 0,2284 |
| 88 - zmielona | 0,0569 | 0, 1401 | 0,1071 | 0,0009 | 0,3051 |
| 89 - zmielona | 0.0109 | 0,1642 | 0,1073 | 0,0011 | 0,2835 |
| 90 - zmielona | 0,0008 | 0, 0011 | 10011 | 0,0009 | 0,0038 |
| 91 - zmielona | 0,0009 | 0,0012 | 0,0012 | 0,0010 | 0,0044 |
188 860
c.d. tabeli 11
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 | 6 |
| 92 - zmielona | 0,0012 | 0,1059 | 0,0017 | 0,0014 | 0,1101 |
| 93 -zmielona | 0,0013 | 0,0529 | 0,0019 | 0,0015 | 0,0576 |
| 94 - zmielona | 0,0012 | 0,0613 | 0,0017 | 0,0014 | 0,0657 |
| 95 - zmielona | 0,0506 | 0,0989 | 0,0013 | 0,0010 | 0,1518 |
| 96 - zmielona | 0,0017 | 0,0894 | 0,0024 | 0,0019 | 0,0954 |
| 97 - zmielona | 0,0012 | 0,0017 | 0,0010,00237 | 0,0014 | 0,0061 |
| 98 - zmielona | 0,0016 | 0,0023 | 0,0016 | 0,0019 | 0,0082 |
| 99 - zmielona | 0,0342 | 0,0016 | 0,0020 | 0,0013 | 0,386 |
| 100 - zmielona | 0,0014 | 0,0020 | 0,0020 | 0,0016 | 0,0070 |
| 101 - liść | 0,0013 | 0,0539 | <0,0019 | <0,0016 | 0,0587 |
| 102- liść | 0,0009 | 0,0012 | <0,0010 | <0,0010 | 0,0043 |
| 103 - poszatkowane liście | 0,0202 | 0,0327 | <0,0007 | <0,0006 | 0,0542 |
Przykład 12
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbki 104 i 105 stanowiły liście poddane normalnemu procesowi konserwacji w kanale dymowym, bez późniejszego wystawienia na działanie mikrofal. Próbkę 104 stanowił główny nerw poddany konserwacji, zaś próbkę 105 blaszka poddana konserwacji. Próbkę 106 stanowił żółty tytoń, usunięty z pomieszczenia po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze. Po usunięciu z pomieszczenia, liście te poddano działaniu mikrofal w piecu mikrofalowym Goldstar model MA-1572M i podgrzewano po ustawieniu wysokiej mocy przez około 2 do 2 minuty. W wyniku tego liście zostały starannie wysuszone, jednocześnie zachowując złotożółtą barwę. Niektóre wysuszone liście poddano dalszej obróbce w tradycyjny sposób w ceiu uzyskania ekstraktu tytoniowego - próbki 107 wykorzystywanej na potrzeby analizy. W próbkach 104-107 zmierzono zawartość TSNA przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 12 poniżej:
Tabela 12
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 104 - kontrolna, nerw środkowy | 0,083 | 0,180 | <0,003 | 0,266 |
| 105 - kontrolna, blaszki | 0,928 | 1,367 | 2,613 | 4,908 |
| 106 - liście poddane działaniu mikrofal | <0,004 | <0,006 | <0,005 | <0,015 |
| 107 - ekstrakt poddany działaniu mikrofal | <0,004 | <0,005 | <0,004 | <0,013 |
Przykład 13
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbki 108 i 109 stanowiły liście poddane normalnemu procesowi konserwacji w kanale dymowym. Próbkę 108 stanowiła blaszka poddana konserwacji, zaś próbkę 109 - główny nerw poddany konserwacji. Próbki 110 i 111 stanowił żółty tytoń, usunięty z pomieszczenia po zżółknięciu liści, około 24-36 godzin po zbiorze. Po usunięciu z pomieszczenia, próbki te podgrzano w konwekcyjnym piecu z obiegiem powietrza - Sharp Carousel ConvectioI^/'Mierowave model
188 860
R-9H84B. Próbkę 110 podgrzewano gwałtownie w temperaturze około 300°F przez 5-10 minut. Próbkę 111 podgrzewano wolniej w niższej temperaturze, począwszy od około 100°F do 150°F po upływie ponad 10 minut, zaś całkowity czas podgrzewania wyniósł ponad 20 minut. W próbkach 108-111 zmierzono zawartość TSNA przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 13 poniżej:
Tabela 13
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 108 - kontrolna, blaszki | 1,267 | 2,509 | 1,377 | 5,153 |
| 109 - kontrolna, nerw środkowy | <0,004 | 0,464 | <0,004 | 0,472 |
| 110 - konwekcja, gwałtowna | <0,004 | <0,005 | <0,004 | <0,013 |
| 111 - konwekcja, powolna | <0,003 | <0, 004 | <0, 003 | <0, 010 |
Chociaż wykazano, że podgrzewanie w piecu konwekcyjnym zmniejsza poziom TSNA wpływa ono zarazem niekorzystnie na jakość tytoniu w stosunku do tego, który poddano działaniu mikrofal zgodnie z preferowanym przykładem niniejszego wynalazku. Ponadto istnieje tu konieczność wydłużenia czasu podgrzewania w zestawieniu z promieniowaniem mikrofalowym lub innymi formami promieniowania wysokiej częstotliwości. I tak w szczególności nie udało się tu zachować pożądanego złoto-żółtego koloru tytoniu, zaś blaszki były przesuszone i kruche, podczas gdy nerwy nie zostały z kolei dostatecznie wysuszone. Natomiast zgodnie z korzystnym rozwiązaniem niniejszego wynalazku liście poddane działaniu mikrofal były skutecznie wysuszone zachowując zarazem złoto-żółtą barwę, a zarazem elastyczność. Pozwalało to na ich dalszą obróbkę, zwłaszcza w przypadku produkcji papierosów. W przypadku próbek poddanych działaniu pieca konwekcyjnego wysuszone blaszki liści kruszyły się i rozpadały na proch.
Przykład 14.
Po zebraniu tytoniu typu Kentucky Burley, liście poddano dalszej obróbce po rozpoczęciu żółknięcia liści, około 24-36 godzin po zbiorze. Próbki 112-117 stanowiły próbki liści tego gatunku, poddane następnie opisanej tu obróbce. Próbkę 112 poddano działaniu mikrofal w przybliżeniu w tych samych warunkach co próbkę 106 w przykładzie 12. Liście charakteryzowały się złotą barwą i były dostatecznie wysuszone. Próbki 113, 114 i 117 podgrzewano w tym samym piecu konwekcyjnym, który opisano w przykładzie 13, przy czym próbkę 113 podgrzewano w przybliżeniu w tych samych warunkach co próbkę 110, próbkę 114 - w przybliżeniu w tych samych warunkach co próbkę 111, zaś próbkę 117 podgrzewano przez około 20 minut w temperaturze około 350°F przez 5-10 minut. Jakość próbek 113, 114 i 117 zbliżona była do jakości próbek 110 i 11, zgodnie z tym, co opisano w przykładzie 13. Próbki 115 i 116 podgrzewano w piecu Sharp Carousel Convection/Microwave, jaki opisano w przykładzie 13, przy wykorzystaniu zarówno mikrofal (30%) jak i konwekcji (300°C), aż do skutecznego wysuszenia liści na złoto-żółty kolor. W próbkach 112-117 zmierzono zawartość TSNA przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 14 poniżej:
Tabela 14
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 112 - mikrofale | <0,007 | <0,010 | <0,008 | <0,025 |
| 113 - konwekcja | <0,003 | <0,004 | <0,003 | <0,010 |
| 114 - konwekcja | <0,012 | <0,017 | <0,014 | <0,043 |
188 860
c.d. tabeli 14
| 1 | 2 | 3 | 4 | 5 |
| 115 - mikrofale (30%) /konwekcja | <0,002 | <0,003 | <0,003 | <0,008 |
| 116 - mikrofale (30%) /konwekcja | <0, 002 | <0,003 | <0,002 | <0,007 |
| 117 - konwekcja | 0,131 | 0,156 | <0,002 | 0,290 |
Przykład 15
Po zebraniu tytoniu typu Virginia, liście umieszczono w odpowiednim pomieszczeniu w temperaturze około 100-110°F w ceiu przeprowadzenia konserwacji w kanale dymowym. Próbki 118-120 stanowiły liście, usunięte z pomieszczenia po rozpoczęciu ich żółknięcia, a krótko potem poddawane działaniu mikrofal w typowej kuchence mikrofalowej przez około 2 do 2 minuty aż do skutecznego wysuszenia liści na złoto-żółty kolor, a bez jednoczesnego ich spalenia czy zwęglenia. Próbki 121-123 stanowiły próbki tytoniu Kentucky Burley, zebrane i poddane obróbce po rozpoczęciu ich żółknięcia w następujący sposób. Próbkę 121 umieszczono w tradycyjnej suszarce wykorzystywanej w przemyśle tytoniowym, w temperaturze około 200°F, aż do momentu zbrązowienia i częściowego wysuszenia liści. Próbkę 122 poddawano przez około 2 minuty działaniu mikrofal we wspomnianym wyżej urządzeniu firmy Goldstar ustawionym na wysoką moc, a następnie - rehydratacji wodą, po czym umieszczono ją w suszarce, w wyniku czego liście uległy nieznacznemu zbrązowieniu, co podobno korzystnie wpływa na smak tytoniu. Próbkę 123 potraktowano tak jak 122 z tą różnicą, że działano na nią mikrofalami przez 1 minutę i nie poddano jej rehydratacji przed umieszczeniem w suszarce.
Zawartość TSNA zmierzono przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 15 poniżej:
Tabela 15
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 118 | <0,003 | 0,150 | <0,003 | 0,156 |
| 119 | <0,003 | <0,004 | <0,003 | <0,010 |
| 120 | <0,002 | <0,003 | <0,003 | <0,008 |
| 121 | 0,486 | 1,059 | <0,003 | 1,548 |
| 122 | <0,004 | <0,005 | <0,004 | <0,013 |
| 123 | <0,003 | <0,004 | <0,004 | <0,011 |
Przykład 16
Po zebraniu tytoniu typu North Carolina Burley, liście poddano dalszej obróbce po rozpoczęciu ich żółknięcia, około 2-3 dni po zbiorach. Próbkę 118 stanowiły liście, poddawane działaniu mikrofal w tym samym typie pieca mikrofalowego firmy Goldstar, który opisano powyżej, przez około 2 minuty przy wysokim ustawieniu poziomu mocy. Po skończeniu promieniowania liście były skutecznie wysuszone na złoto-żółty kolor. Zawartość TSNA zmierzono przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 16 poniżej:
Tabela 16
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 118 | 0,024 | 0,048 | <0,001 | 0,073 |
188 860
Przykład 17
Przykład ten ilustruje skuteczność wykorzystywania wiązki elektronów w zmniejszaniu zawartości lub zasadniczym zatrzymaniu procesu tworzenia TSNA w próbkach żółtego tytoniu. Zebrano tytoń typu North Carolina Burley. Próbki 119-120 stanowiły liście poddane konserwacji na wolnym powietrzu poprzez ich rozwieszenie na zewnątrz w tradycyjny sposób, aż do momentu wysuszenia i zbrązowienia liści. Próbkę 119 wykorzystano jako próbkę kontrolną. Próbki 120 i 121 poddano na taśmie przenośnika działaniu promieniowania wiązki elektronów z wykorzystaniem akceleratora wiązki elektronowej Dynamitron firmy Radiation Dynamics Inc. (z siedzibą w Edgewood, N.Y.) - natężenie napromieniowania wynosiło lmegarad. Próbkę 122 poddawano przez 2 minuty promieniowaniu mikrofalowemu w piecu firmy Goldstar ustawionym na wysoką moc. Próbkę 123 pobrano z czubka liścia tytoniu typu Burley po rozpoczęciu procesu żółknięcia. Próbkę 124 stanowiła łodyżka usunięta z próbki 123, cały czas jeszcze zachowująca zieloną barwę. Próbki 125 i 126 stanowiły całe liście tytoniu typu Burley, w trakcie żółknięcia. Każdą z próbek 123-126 poddano działaniu wiązki elektronowej przy wykorzystaniu wspomnianego tu Dynamitronu w taki sam sposób i przy takim samym natężeniu co w przypadku próbek 120 i 121. Zawartość TSNA w powyższych próbkach zmierzono przy wykorzystaniu procedury opisanej w przykładzie 1, zaś wyniki zestawiono w tabeli 17 poniżej:
Tabela 17
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 119 - kontrolna, po konserwacji | 3,6351 | 1,0847 | 0,0470 | 4,7668 |
| 120 - wysoka moc, po konserwacji | 6,5718 | 3,7037 | 0,4368 | 10,7123 |
| 121 - niska moc, po konserwacji | 4,4771 | 1,6112 | 0,7468 | 6,8369 |
| 122 - działanie mikrofalami, po konserwacji | 4,8974 | 1,6393 | 1,1200 | 7,6567 |
| 123 - żółty wierzchołek | 0,1812 | 0,3667 | 0,0013 | 0,5492 |
| 124 - zielona łodyżka | 0,1918 | 0,8310 | 0,0016 | 1,0243 |
| 125 - cały liść | 0,0014 | 0,1019 | 0,0016 | 0,1048 |
| 126 - cały liść | 0,0646 | 0,2465 | 0,0019 | 0,3130 |
Chociaż stwierdzono, że promieniowanie wiązki elektronowej jest skuteczne w hamowaniu powstawania w próbkach żółtego tytoniu znacznych ilości nitrozoamin właściwych dla tytoniu, nie pozwala ono na równie skuteczne wysuszenie liści jak w przypadku poddawania liści znajdujących się w podobnym stanie promieniowaniu mikrofal, co opisano w innych przykładach. Dlatego też przemysłowe zastosowanie promieniowania wiązki elektronowej wymagać może uwzględnienia dodatkowego etapu suszenia, przykładowo poprzez przenoszenie napromieniowanych liści przez typowy piec suszący w ramach procesu konserwacji.
Przykład18
Niniejszy przykład wykazał, że również i wiązki energii laserów są skuteczne w zmniejszaniu i zawartości TSNA w tytoniu. Laser CO2 produkowany przez Luxar Corp., model LK20SP wykorzystano do napromieniowania liści tytoniu typu Virginia mniej więcej 2-3 dni po zbiorach. Wykorzystano też urządzenie NovaScan w programie E, mierzące prędkość zastosowania we wzorach na sekundę. Wykorzystano tu ustawienie E10, podające 10 wzorów na sekundę. Osiem podpróbek T-l do T-8 poddano napromieniowaniu zgodnie z mniejszym protokołem:
188 860
| E10 - 2 waty | E10 - 4 waty |
| T-1- 1 przejście dla każdej strony | T-5 - 1 przejście dla każdej strony |
| T-2 - 2 przejścia dla każdej strony | T-6 - 2 przejścia dla każdej strony |
| T-3 - 3 przejścia dla każdej strony | T-7 - 3 przejścia dla każdej strony |
| T-4 - 4 przejścia dla każdej strony | T-8 - 4 2 przejścia dla każdej strony |
Dal mocy 2 watów, dla każdego przejścia dostarczane jest około 120 mJ, zaś dla 4 - około 240 mJ.
Podpróbki T-1 do T-4 zmieszano ze sobą, tworząc próbkę 127, w przypadku której zawartość TSNA zmierzono w taki sam sposób jak w przykładzie 1. Podobnie połączono ze sobą podpróbki T-5 do T-8, tworząc próbkę 128, w przypadku której również zmierzono zawartość TSNA w podobny sposób. Wyniki zestawiono w tabeli 18 poniżej:
Tabela 18
| Próbka # | NNN | NAT+NAB | NNK | TSNA |
| 127 | 0,1031 | 0,2025 | 0,0006 | 0,3061 |
| 128 | 0,1019 | 0,1287 | 0,0010 | 0,2315 |
Podobnie jak w przypadku próbek opisanych w przykładzie 17, próbki poddane działaniu lasera CO2 nie zostały równie skutecznie osuszone jak w przypadku promieniowania mikrofalowego, chociaż zawartość TSNA była niska. Dlatego też korzystne byłoby wprowadzenie dodatkowego etapu suszenia w ceiu przyspieszenia procesu konserwacji. Pod wpływem promieniowania laserem CO2 a przed wykonaniem testów na obecność TSNA sześć z ośmiu próbek uległo częściowemu zbrązowieniu, co nie miało widocznego wpływu na zawartość TSNA.
Przykład 19
Przykład ten pokazuje skuteczność promieniowania gamma w hamowaniu tworzenia się znacznych ilości TSNA w żółtym tytoniu. Wykorzystano tu tytoń typu Virginia w około 2-3 dni po zbiorze, tuż po zażółceniu się liści. Każda próbkę 129-132 wybrano z części blaszki żółtych liści, a następnie poddawano je w zamkniętej komorze promieniowaniu gamma o wartości 10 kGrey (1 megarad) i natężeniu 8 kGrey (0,8 megarada) na godzinę, w okresie 75 minut. Następnie zmierzono zawartość TSNA w napromieniowanych próbkach w podobny co wcześniej sposób, a wyniki zestawiono w tabeli 19:
Tabela 19
| Próbka # | NNN | NAT + NAB | NNK | TSNA |
| 129 | 0,098 | 0,225 | 0,057 | 0,380 |
| 130 | <0, 001 | <0,001 | <0,001 | <0,003 |
| 131 | <0,001 | <0,001 | <0,001 | <0,003 |
| 132 | 0,033 | 0,079 | <0,001 | 0,113 |
Przeciętny fachowiec wie, że istnieje tu możliwość dokonania szeregu zmian i modyfikacji w preferowanych rozwiązaniach, nie wychodząc zarazem poza zakres niniejszego wynalazku. Dlatego też powyższy opis pełni jedynie rolę materiału ilustracyjnego, nie stanowiąc ograniczenia dla zakresu niniejszego wynalazku.
188 860
Ϊ88860
188 860
FIG. 1
FIG. 2
Departament Wydawnictw UP RP. Nakład 50 egz. Cena 6,00 zł.
Claims (66)
- Zastrzeżenia patentowe1. Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń Virginia nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty sypki tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(Nnitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejszą niż 0,2 (ig/g.
- 2. Produkt tytoniowy według zastrz. 1, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,15 pg/g lub mniej.
- 3. Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia i Burley, nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonornikotyny, 4-(N-nitrozo-metyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozoanatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszacą0,05 fiig/g lub mniej.
- 4. Produkt tytoniowy według zastrz. 3, znamienny tym, że konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 5. Produkt tytoniowy według zastrz. 3, znamienny tym, że konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.
- 6. Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia i Burley, nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną. zawartość N'-mtrozonornikotyny, 4-(N-nitrozometyloamino)-1 -(3-pirydylo)^ 1 -butanonu, N'-nitrozoanatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszącą0,05 pg/g lub mniej.
- 7. Produkt tytoniowy według zastrz. 6, znamienny tym, że konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 8. Produkt tytoniowy według zastrz. 6, znamienny tym, że konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.
- 9. Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń Virginia nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, znamienny tym, że niezielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonornikotyny, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozoanatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejszą niż 0,2 ng/g. _
- 10. Produkt tytoniowy według zastrz. 9, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,15 (ig/g lub mniej.
- 11. Produkt tytoniowy według zastrz. 10, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,1 (ągg lub mniej.
- 12. Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia, Stany Zjednoczone Ameryki i Burley, Stany Zjednoczone Ameryki, nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęcznianych materiałów organicznych, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-nitrozonomikotyny, 4-(N-nitrozo-metyloammo)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny wynoszącą mniej niż 0,2 (ig/g.
- 13. Produkt tytoniowy według zastrz. 12, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 14. Produkt tytoniowy według zastrz. 12, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.188 860
- 15. Produkt tytoniowy według zastrz. 12, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,15 pg/g lub mniej.
- 16. Produkt tytoniowy według zastrz. 15, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,1 pg/g lub mniej.
- 17. Produkt tytoniowy, zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń wybrany z grupy zawierającej gatunki sypkiego tytoniu Virginia, Stany Zjednoczone Ameryki i Burley, Stany Zjednoczone Ameryki, nadający się do konsumpcji przez człowieka, w postaci liścia, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość N'-ni.trozonornikotyny, 4(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, N'-nitrozo-anatabiny i N'-nitrozoanabazyny mniejszą0),2 pg/g.
- 18. Produkt tytoniowy według zastrz. 17, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 19. Produkt tytoniowy według zastrz. 17, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.
- 20. Produkt tytoniowy według zastrz. 17, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,15 pg/g lub mniej.
- 21. Produkt tytoniowy według zastrz. 20, znamienny tym, że ta zawartość wynosi 0,1 pg/g lub mniej.
- 22. Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty sypki tytoń nadający się do konsumpcji przez człowieka, zasadniczo pozbawiony płynów organicznych stosowanych do odciągnięcia napęczniałych materiałów organicznych, znamienny tym, że niezielony lub żółty tytoń ma łączną zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1butanonu, wynoszącą/),002 pg/g lub mniej.
- 23. Produkt tytoniowy według zastrz. 22, znamienny tym, że zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu wynosi 0,001 pg/g lub mniej.
- 24. Produkt tytoniowy według zastrz. 22, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 25. Produkt tytoniowy według zastrz. 22, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.
- 26. Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń, nadający się do konsumpcji przez człowieka, mający postać liścia, znamienny tym, że nie-zielony lub żółty tytoń ma zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu wynoszącą 0,002 pg/g lub mniej.
- 27. Produkt tytoniowy według zastrz. 26, znamienny tym, że zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu wynosi 0,001 pg/g lub mniej.
- 28. Produkt tytoniowy według zastrz. 26, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi sypki tytoń Virginia.
- 29. Produkt tytoniowy według zastrz. 26, znamienny tym, że konserwowany niezielony lub żółty tytoń stanowi tytoń Burley.
- 30. Produkt tytoniowy według dowolnego z zastrz. 1 albo 3, albo 6, albo 9, albo 12, albo 17, albo 22, albo 26, znamienny tym, że tytoń odpowiedni do konsumpcji przez człowieka stanowi konserwowany żółty tytoń.
- 31. Produkt tytoniowy według dowolnego zastrz. 1 albo 3, albo 6, albo 9, albo 12, albo 17, albo 22, albo 26, znamienny tym, że stanowi produkt wybrany z grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń.
- 32. Produkt tytoniowy zawierający konserwowany nie-zielony lub żółty tytoń nadający się do konsumpcji przez człowieka, znamienny tym, że nie- zielony lub żółty tytoń ma zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy wybranej z grupy zawierającej N'nitrozonomikotynę, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozoanatabinę i N'nitrozoanabazynę, przynajmniej około 75% wag. niższą niż zawartość przynajmniej jednej właściwej dla danego tytoniu nitrozoaminy w konserwowanym brązowym tytoniu, wytwarzanym z tego samego plonu tytoniu, z którego uzyskano tytoń nie-zielony lub żółty, ale który był konserwowany bez etapów przewidzianych dla redukcji zawartości tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy.188 860
- 33. Produkt tytoniowy według zastrz. 32, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 90% wag. niższa niż zawartość konserwowanego brązowego tytoniu.
- 34. Produkt tytoniowy według zastrz. 33, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 95% wag. niższa niż zawartość konserwowanego brązowego tytoniu.
- 35. Produkt tytoniowy według zastrz. 32, znamienny tym, że stanowi produkt wybrany z grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń.
- 36. Sposób wytwarzania produktu tytoniowego wybranego spośród grupy obejmującej papierosy, cygara, tytoń do żucia, tabakę i gumę oraz tabletki zawierające tytoń, w którym zebrane zielone liście tytoniu najpierw umieszcza się w stodole na określony czas, typowo na 24-48 godzin do zżółknięcia niekonserwowanych liści tytoniu a następnie konserwowane liście tytoniu podlegają cięciu i przetwarzaniu konwencjonalnymi metodami w produkty tytoniowe, znamienny tym, że zebrane niekonserwowane liście tytoniu poddaje się działaniu skoncentrowanej formy promieniowania o częstotliwości wyższej od częstotliwości zakresu mikrofal widma elektromagnetycznego, przy czym liście są żółte, niekonserwowane i znajdują się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania właściwych dla tytoniu nitrozoamin, w czasie wystarczającym na zmniejszenie ilości łub zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w liściach.
- 37. Sposób według zastrz. 36, znamienny tym, że liście poddaje się promieniowaniu po rozpoczęciu żółknięcia liści a przed zasadniczym nagromadzeniem w liściach nitrozoamin właściwych dla danego tytoniu.
- 38. Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, znamienny tym, że w (i) etapie (a) z łodyg tytoniu usuwa się liście, (b) ściska się liście tytoniu do usunięcia nadmiaru wilgoci lub (c) poddaje się liście tytoniu działaniu pary oraz w (ii) etapie poddaje się przynajmniej część plonu działaniu promieniowania mikrofalowego, przy czym część ta jest żółta i nie poddana uprzedniej konserwacji i znajduje się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania nitrozoamin w czasie wystarczającym na zmniejszenie ilości łub zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej nitrozoaminy, i że promieniowaniu mikrofalowemu poddaje się liść tytoniu lub jego część po rozpoczęciu żółknięcia liści a przed zasadniczym nagromadzeniem nitrozoamin właściwych dla liści tytoniu a ponadto, że liść tytoniu lub jego część umieszcza się w warstwie o pojedynczej grubości, bez składania liści w stos lub w sterty.
- 39. Sposób według zastrz. 38, znamienny tym, że dokonuje się wyboru między etapem (b) lub (c) a liście tytoniu zawierają łodygi.
- 40. Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, znamienny tym, że poddaje się przynajmniej część plonu skoncentrowanej formie promieniowania o częstotliwości wyższej niż zakres mikrofal widma elektromagnetycznego, przy czym ta część nie jest poddawana konserwowaniu, jest żółta i znajduje się w stanie pozwalającym na powstrzymanie wytwarzania nitrozoamin, w czasie wystarczającym na zasadnicze powstrzymanie wytwarzania przynajmniej jednej nitrozoaminy.
- 41. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że promieniowaniu poddaje się liść tytoniu lub jego część przed zasadniczym nagromadzeniem w liściu lub jego części nitrozoamin właściwych dla danego tytoniu.
- 42. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że poddawanie promieniowaniu przeprowadza się przed zasadniczą utratą integralności komórkowej rośliny.
- 43. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że tytoń stanowi odmianę konserwowaną w kanale dymowym (piecowo), a poddawanie promieniowaniu przeprowadza się w przeciągu około 24 do około 72 godzin po zebraniu.
- 44. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że promieniowaniu poddaje się plon w czasie przynajmniej około jednej sekundy przy ustalonym wcześniej poziomie mocy.
- 45. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że poddawaniem promieniowaniu zapobiega się zwykłemu gromadzeniu się w liściu przynajmniej jednej nitrozoaminy właściwej dla tytoniu.188 860
- 46. Sposób według zastrz. 45, znamienny tym, że ta przynajmniej jedna nitrozoamina właściwa dla tytoniu wybrana jest z grupy obejmującej N'-nitrozonomikotynę, 4-(Nnitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozo-anatabinę i N'-nitrozoanabazynę.
- 47. Sposób według zastrz. 41, znamienny tym, że promieniowaniu poddaje się liść tytoniu ułożony w warstwie o pojedynczej grubości bez składania w stos lub w sterty.
- 48. Sposób według zastrz. 47, znamienny tym, że przed promieniowaniem, w etapie (a) usuwa się liście tytoniu z łodyg, (b) prasuje się liście tytoniu do usunięcia nadmiaru wilgoci lub (c) poddaje się liście tytoniu działaniu pary.
- 49. posób według zastrz. 40, znamienny tym, że suszy się część plonu po etapie promieniowania.
- 50. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że promieniowanie jest generowane za pomocą wiązki laserowej.
- 51. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że promieniowanie stanowi wiązka elektronowa wygenerowana przez akcelerator elektronowy..
- 52. Sposób według zastrz. 40, znamienny tym, że promieniowanie stanowi promieniowanie gamma.
- 53. Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu, znamienny tym, że suszy się przynajmniej część plonu, przy czym ta część stanowi niekonserwowany, żółty tytoń w stanie nadającym się do powstrzymania formowania nitrozoamin, za pomocą konwekcji krążącego powietrza w temperaturze od około 100°F (37,7°C) do około 500°F (260°C) przez czas wystarczający do zasadniczego zapobiegnięcia formowaniu się przynajmniej jednej nitrozoaminy.
- 54. Sposób według zastrz. 53, znamienny tym, że suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się na liściu tytoniowym lub jego części przed znaczącym nagromadzeniem nitrozoamin w liściu.
- 55. Sposób według zastrz. 53, znamienny tym, że suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się przed znaczącą utratą integralności komórkowej roślin.
- 56. Sposób według zastrz. 53, znamienny tym, że tytoń stanowi tytoń sypki Virginia, przy czym suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się w przeciągu około 24 do 72 godzin po zebraniu.
- 57. Sposób według zastrz. 53, znamienny tym, że suszenie za pomocą konwekcji krążącym powietrzem zapobiega się normalnemu gromadzeniu się przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w liściu.
- 58. Sposób według zastrz. 57, znamienny tym, że ta przynajmniej jedna właściwa dla tytoniu nitrozoamina jest wybrana z grupy zawierającej N'-nitrozonomikotynę, 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanon, N'-nitrozo-anatabinę i N'-nitrozoanabazynę.
- 59. Sposób według zastrz. 58, znamienny tym, że część plonu tytoniu, po suszeniu za pomocą konwekcji krążącym powietrzem, ma zawartość przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy, która jest przynajmniej 75% wag. niższa niż zawartość tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy w konserwowanym brązowym tytoniu wytworzonym z tego samego plonu tytoniu, jednak który był konserwowany bez etapów przeznaczonych do redukcji zawartości tej przynajmniej jednej właściwej dla tytoniu nitrozoaminy.
- 60. Sposób według zastrz. 59, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 90% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
- 61. Sposób według zastrz. 60, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 95% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
- 62. Sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych roślinach tytoniu znamienny tym, że suszy się przynajmniej część plonu, przy czym ta część stanowi niekonserwowany. żółty tytoń w stanie nadającym się do powstrzymania formowania 4-(Nnitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu, za pomocą konwekcji krążącym powietrzem w temperaturze od około 100°F (37,7°C) do około 500°F (260°C) przez czas wystarczający do zasadniczego zapobiegnięcia formowaniu się4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu.188 860
- 63. Sposób według zastrz. 62, znamienny tym, że tytoń stanowi tytoń sypki Wirginia, przy czym suszenie za pomocą konwekcji krążącego powietrza przeprowadza się w przeciągu około 24 do 72 godzin po zebraniu.
- 64. Sposób według zastrz. 62, znamienny tym, że część plonu tytoniu, po suszeniu za pomocą konwekcji krążącego powietrza, ma zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3pirydylo)-1-butanonu, która jest przynajmniej 75% wag. niższa niż zawartość 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu w konserwowanym brązowym tytoniu utworzonym z tego samego plonu tytoniu, jednak który był konserwowany bez etapów przeznaczonych do redukcji zawartości 4-(N-nitrozometyloamino)-1-(3-pirydylo)-1-butanonu.
- 65. Sposób według zastrz. 64, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 90% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
- 66. Sposób według zastrz. 65, znamienny tym, że ta zawartość jest przynajmniej około 95% niższa niż zawartość w konserwowanym brązowym tytoniu.
Applications Claiming Priority (3)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| US08/879,905 US6135121A (en) | 1996-06-28 | 1997-06-20 | Tobacco products having reduced nitrosamine content |
| US99804397A | 1997-12-23 | 1997-12-23 | |
| PCT/US1998/012128 WO1998058555A1 (en) | 1997-06-20 | 1998-06-09 | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| PL337582A1 PL337582A1 (en) | 2000-08-28 |
| PL188860B1 true PL188860B1 (pl) | 2005-05-31 |
Family
ID=27128558
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| PL98337582A PL188860B1 (pl) | 1997-06-20 | 1998-06-09 | Produkt tytoniowy, sposób wytwarzania produktu tytoniowego i sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych liściach tytoniu |
Country Status (21)
| Country | Link |
|---|---|
| EP (1) | EP0991329A4 (pl) |
| JP (1) | JP3996958B2 (pl) |
| KR (1) | KR100458405B1 (pl) |
| CN (1) | CN1135070C (pl) |
| AP (1) | AP1524A (pl) |
| AU (1) | AU736493B2 (pl) |
| BR (1) | BR9810060A (pl) |
| CA (1) | CA2294130C (pl) |
| EA (1) | EA002448B1 (pl) |
| EE (1) | EE9900590A (pl) |
| GE (2) | GEP20022696B (pl) |
| HU (1) | HUP0002532A3 (pl) |
| IL (3) | IL133583A (pl) |
| IS (1) | IS5311A (pl) |
| NO (1) | NO312325B1 (pl) |
| NZ (2) | NZ501918A (pl) |
| OA (2) | OA11738A (pl) |
| PL (1) | PL188860B1 (pl) |
| TR (3) | TR200200638T2 (pl) |
| WO (1) | WO1998058555A1 (pl) |
| YU (1) | YU68799A (pl) |
Families Citing this family (79)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US6805134B2 (en) | 1999-04-26 | 2004-10-19 | R. J. Reynolds Tobacco Company | Tobacco processing |
| ES2535285T3 (es) * | 2000-10-05 | 2015-05-07 | Schweitzer-Mauduit International, Inc. | Reducción de nitrosaminas en el tabaco y en los productos de tabaco |
| US6789548B2 (en) | 2000-11-10 | 2004-09-14 | Vector Tobacco Ltd. | Method of making a smoking composition |
| ATE533365T1 (de) | 2002-07-18 | 2011-12-15 | Phasex Corp | Herabsetzung von tabakbestandteilen |
| JP3922985B2 (ja) * | 2002-08-22 | 2007-05-30 | 日本たばこ産業株式会社 | 空気乾燥種葉たばこの乾燥方法 |
| WO2006038558A1 (ja) * | 2004-10-01 | 2006-04-13 | Japan Tobacco Inc. | バーレー種葉タバコの乾燥方法および該乾燥方法により乾燥したバーレー種葉タバコ |
| CN101416770B (zh) * | 2008-11-25 | 2011-08-24 | 云南省烟草科学研究所 | 一种烟叶烘烤过程中防治黑蚂皮症状产生的烤烟烘烤工艺 |
| US8151804B2 (en) * | 2008-12-23 | 2012-04-10 | Williams Jonnie R | Tobacco curing method |
| US8539958B2 (en) | 2009-10-13 | 2013-09-24 | Philip Morris Usa Inc. | Oral moist smokeless tobacco products with net-structured gel coating and methods of making |
| CN101933656B (zh) * | 2010-08-13 | 2012-10-03 | 川渝中烟工业有限责任公司 | 应用蒸汽爆破与微波辐射技术相结合改善烟梗品质的方法 |
| RU2436481C1 (ru) * | 2010-12-15 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2437590C1 (ru) * | 2010-12-23 | 2011-12-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438506C1 (ru) * | 2010-12-23 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2448586C1 (ru) * | 2010-12-23 | 2012-04-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ выработки некурительного изделия из махорки |
| RU2436459C1 (ru) * | 2010-12-23 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2436458C1 (ru) * | 2010-12-23 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ выработки некурительного изделия из махорки |
| RU2436461C1 (ru) * | 2010-12-27 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2436460C1 (ru) * | 2010-12-27 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ производства некурительного изделия из махорки |
| RU2448587C1 (ru) * | 2010-12-27 | 2012-04-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2436462C1 (ru) * | 2011-01-11 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ производства некурительного изделия из махорки |
| RU2448588C1 (ru) * | 2011-01-11 | 2012-04-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ выработки некурительного изделия из махорки |
| RU2438510C1 (ru) * | 2011-01-13 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443244C1 (ru) * | 2011-01-13 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438511C1 (ru) * | 2011-01-13 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438530C1 (ru) * | 2011-01-13 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438513C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2436463C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2011-12-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443363C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2442473C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-02-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438532C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2438512C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-01-10 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443246C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443245C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443362C1 (ru) * | 2011-01-20 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443364C1 (ru) * | 2011-01-27 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443247C1 (ru) * | 2011-01-27 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443366C1 (ru) * | 2011-02-01 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ производства некурительного изделия из махорки |
| RU2443365C1 (ru) * | 2011-02-01 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| RU2443332C1 (ru) * | 2011-02-10 | 2012-02-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ выработки некурительного изделия из махорки |
| RU2451471C1 (ru) * | 2011-02-18 | 2012-05-27 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из махорки |
| US9066538B2 (en) | 2011-03-15 | 2015-06-30 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Cured tobacco and method therefor |
| RU2450759C1 (ru) * | 2011-05-11 | 2012-05-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из табака |
| RU2450760C1 (ru) * | 2011-05-11 | 2012-05-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из табака |
| RU2450761C1 (ru) * | 2011-05-17 | 2012-05-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ выработки некурительного изделия из табака (варианты) |
| RU2455910C1 (ru) * | 2011-05-27 | 2012-07-20 | Олег Иванович Квасенков | Способ получения некурительного изделия из табака (варианты) |
| CN102578697A (zh) * | 2011-12-20 | 2012-07-18 | 江苏省农业科学院 | 卷烟中烟草特有亚硝胺的辐照降解方法 |
| CN102599646B (zh) * | 2012-02-21 | 2013-07-10 | 河南省科学院同位素研究所有限责任公司 | 一种降低卷烟主流烟气中巴豆醛的方法 |
| CN102578700B (zh) * | 2012-02-21 | 2013-07-10 | 河南省科学院同位素研究所有限责任公司 | 一种降低卷烟主流烟气中氢氰酸的方法 |
| CN102599647B (zh) * | 2012-02-21 | 2013-10-16 | 河南省科学院同位素研究所有限责任公司 | 一种降低卷烟主流烟气中氨的方法 |
| CN102578701B (zh) * | 2012-02-21 | 2013-07-10 | 河南省科学院同位素研究所有限责任公司 | 一种降低卷烟烟气焦油中多环芳烃含量的方法 |
| CN102578694A (zh) * | 2012-03-16 | 2012-07-18 | 上海聚华科技股份有限公司 | 一种利用微波干燥技术在再造梗丝工艺中的方法 |
| MX2015008084A (es) | 2012-12-21 | 2016-03-31 | Philip Morris Products Sa | Reduccion de nitrosamina especifica de tabaco en plantas. |
| US20160029689A1 (en) * | 2013-03-15 | 2016-02-04 | Philip Morris Products S.A. | Methods for reducing one or more tobacco specific nitrosamines in tobacco material |
| EP2957185B1 (en) | 2013-03-27 | 2018-09-26 | Japan Tobacco Inc. | Oral tobacco product |
| US9155334B2 (en) | 2013-04-05 | 2015-10-13 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Modification of bacterial profile of tobacco |
| US9980509B2 (en) | 2013-04-05 | 2018-05-29 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Modification of bacterial profile of tobacco |
| CN103284301B (zh) * | 2013-04-16 | 2015-06-10 | 川渝中烟工业有限责任公司 | 采用滚筒管板式烘丝机降低卷烟nnk释放量的烘丝方法 |
| CN103478886A (zh) * | 2013-10-12 | 2014-01-01 | 云南烟草科学研究院 | 一种用膨胀梗制备造纸法再造烟叶的方法 |
| MX2016014635A (es) | 2014-05-08 | 2017-02-23 | Philip Morris Products Sa | Reduccion de la conversion de nicotina a nornicotina en plantas. |
| CN104146333B (zh) * | 2014-07-16 | 2016-03-23 | 云南农业大学 | 一种美引烤烟品种nc297的烘烤方法 |
| US20170238597A1 (en) * | 2014-08-20 | 2017-08-24 | Philip Morris Products S.A. | Methods for forming aerosol-generating substrates having a reduced amount of tobacco specific nitrosamines |
| CN104432459B (zh) * | 2014-12-29 | 2017-02-01 | 广东中烟工业有限责任公司 | 一种烟叶烘烤方法 |
| KR20160083785A (ko) | 2014-12-31 | 2016-07-12 | 한국기초과학지원연구원 | 질량 분석기 및 그것의 전자빔 주입을 제어하는 방법 |
| GB201504587D0 (en) * | 2015-03-18 | 2015-05-06 | British American Tobacco Co | Improvements in methods of treating tobacco. |
| CN105004722A (zh) * | 2015-05-18 | 2015-10-28 | 西北农林科技大学 | 一种烟叶成熟度快速检测方法 |
| CN105249522A (zh) * | 2015-09-25 | 2016-01-20 | 红云红河烟草(集团)有限责任公司 | 一种烟梗梗丝加工方法 |
| CN105973815B (zh) * | 2016-04-27 | 2019-02-26 | 华环国际烟草有限公司 | 一种测试在打叶复烤中基于均质化控制的效果的方法 |
| CN106235371B (zh) * | 2016-09-29 | 2018-06-01 | 贵州省烟草公司遵义市公司桐梓县分公司 | 密集烤房散叶堆积装烟持续升温烤香烤柔烘烤方法 |
| US10813383B2 (en) * | 2016-12-12 | 2020-10-27 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Dehydration of tobacco and tobacco-derived materials |
| CN106666806B (zh) * | 2017-02-23 | 2018-03-02 | 中国农业科学院烟草研究所 | 一种口含烟烟丝的制备方法 |
| US11278050B2 (en) | 2017-10-20 | 2022-03-22 | R.J. Reynolds Tobacco Company | Methods for treating tobacco and tobacco-derived materials to reduce nitrosamines |
| CN108185497B (zh) * | 2018-01-18 | 2020-06-23 | 福建中烟工业有限责任公司 | 翠碧一号烟叶的初烤方法、所得的烟叶及其应用 |
| JP6750835B2 (ja) * | 2018-08-15 | 2020-09-02 | 日本たばこ産業株式会社 | 口腔用たばこ組成物及びその製造方法 |
| US11213062B2 (en) | 2019-05-09 | 2022-01-04 | American Snuff Company | Stabilizer for moist snuff |
| CN111707785B (zh) * | 2020-06-10 | 2023-11-21 | 河南中烟工业有限责任公司 | 一种改善大深厚片型烟叶质量的方法 |
| CN112741362B (zh) * | 2021-01-07 | 2025-02-18 | 广东中烟工业有限责任公司 | 一种提升陈烟舒适性的方法及设备 |
| CN114617281B (zh) * | 2022-03-17 | 2023-03-28 | 吉林烟草工业有限责任公司 | 一种北方烤烟上部叶的烘烤方法 |
| CN114747783B (zh) * | 2022-05-14 | 2023-06-20 | 河南中烟工业有限责任公司 | 一种用于提高上部叶可溶性糖含量的方法 |
| CN118383543B (zh) * | 2024-05-08 | 2025-08-01 | 云南中烟工业有限责任公司 | 一种使用辐照调制晾晒烟的方法及用途 |
Family Cites Families (26)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| GB706052A (en) * | 1950-10-24 | 1954-03-24 | Helvar Oy | Method of treating tobacco and apparatus therefor |
| GB947280A (en) * | 1962-10-01 | 1964-01-22 | Kurt Koerber | Method and apparatus for drying tobacco or tobacco-containing articles |
| US3358694A (en) * | 1965-05-11 | 1967-12-19 | Herman V Boenig | Method of reducing irritants in tobacco by gamma irradiation |
| US3378208A (en) * | 1965-10-19 | 1968-04-16 | Carl R. Camenisch | Method for accelerated curing of tobacco |
| DE1767677A1 (de) * | 1968-06-04 | 1971-11-25 | Heimo Dr Scherz | Verfahren zur Behandlung von Tabak und Tabakwaren |
| JPS5017381B1 (pl) * | 1969-01-27 | 1975-06-20 | ||
| US3845774A (en) * | 1971-07-28 | 1974-11-05 | T Tso | Process for curing tobacco |
| US3773055A (en) | 1972-04-17 | 1973-11-20 | Brown & Williamson Tobacco Corp | Microwave treatment of cigarettes on a making machine |
| JPS5369897A (en) | 1976-11-30 | 1978-06-21 | Sanshu Sangyo Kk | Curing of native leaf tobacco |
| US4192323A (en) | 1977-09-21 | 1980-03-11 | Gas-Fired Products, Inc. | Apparatus and method for automatically controlling curing conditions in a tobacco curing barn |
| JPS54157898A (en) | 1978-05-29 | 1979-12-13 | Japan Tobacco Inc | Curing of yellow leaf tobacco |
| US4355648A (en) * | 1980-12-09 | 1982-10-26 | Philip Morris, Incorporated | Method of curing tobacco |
| US4430806A (en) | 1981-11-10 | 1984-02-14 | Hopkins Harry C | Microwave agricultural drying and curing apparatus |
| JPS58104483A (ja) | 1981-12-17 | 1983-06-21 | 富士電機株式会社 | 一次産品の自動乾燥制御システム |
| US4874000A (en) | 1982-12-30 | 1989-10-17 | Philip Morris Incorporated | Method and apparatus for drying and cooling extruded tobacco-containing material |
| US4620556A (en) * | 1983-04-12 | 1986-11-04 | Conwood Corporation | Loose leaf chewing tobacco |
| US4590954A (en) * | 1984-09-11 | 1986-05-27 | Gooden Eldon D | Process for packaging leaf tobacco |
| US4599954A (en) * | 1985-02-22 | 1986-07-15 | Williams Patent Crusher And Pulverizer Company | Sewage sludge disposal process and apparatus therefor |
| DE3661587D1 (en) | 1986-04-23 | 1989-02-09 | Reynolds Tobacco Gmbh | Process for treating tobacco and similar organic materials |
| US4898189A (en) * | 1987-07-11 | 1990-02-06 | Korber Ag | Method of and apparatus for treating uncured tobacco |
| US4898789A (en) * | 1988-04-04 | 1990-02-06 | Ppg Industries, Inc. | Low emissivity film for automotive heat load reduction |
| US5372149A (en) * | 1992-03-25 | 1994-12-13 | Roth; David S. | Sterilization process in the manufacturing of snuff |
| KR950014172B1 (ko) * | 1992-12-02 | 1995-11-22 | 합명회사국제산업공사 | 잎담배 건조용 제어장치 및 방법 |
| US6135121A (en) * | 1996-06-28 | 2000-10-24 | Regent Court Technologies | Tobacco products having reduced nitrosamine content |
| US5803081A (en) * | 1996-06-28 | 1998-09-08 | Regent Court Technologies | Tobacco and related products |
| US6805134B2 (en) | 1999-04-26 | 2004-10-19 | R. J. Reynolds Tobacco Company | Tobacco processing |
-
1998
- 1998-06-09 IL IL13358398A patent/IL133583A/xx not_active IP Right Cessation
- 1998-06-09 YU YU68799A patent/YU68799A/sh unknown
- 1998-06-09 GE GEAP19985156A patent/GEP20022696B/en unknown
- 1998-06-09 TR TR2002/00638T patent/TR200200638T2/xx unknown
- 1998-06-09 NZ NZ501918A patent/NZ501918A/en unknown
- 1998-06-09 TR TR1999/03160T patent/TR199903160T2/xx unknown
- 1998-06-09 HU HU0002532A patent/HUP0002532A3/hu unknown
- 1998-06-09 PL PL98337582A patent/PL188860B1/pl not_active IP Right Cessation
- 1998-06-09 CN CNB988083566A patent/CN1135070C/zh not_active Expired - Fee Related
- 1998-06-09 IL IL15416698A patent/IL154166A/xx not_active IP Right Cessation
- 1998-06-09 OA OA1200100168A patent/OA11738A/en unknown
- 1998-06-09 KR KR10-1999-7012064A patent/KR100458405B1/ko not_active Expired - Fee Related
- 1998-06-09 AP APAP/P/2000/001736A patent/AP1524A/en active
- 1998-06-09 BR BR9810060-2A patent/BR9810060A/pt not_active IP Right Cessation
- 1998-06-09 EA EA200000053A patent/EA002448B1/ru not_active IP Right Cessation
- 1998-06-09 EP EP98929002A patent/EP0991329A4/en not_active Withdrawn
- 1998-06-09 AU AU80670/98A patent/AU736493B2/en not_active Ceased
- 1998-06-09 WO PCT/US1998/012128 patent/WO1998058555A1/en not_active Ceased
- 1998-06-09 TR TR2002/00658T patent/TR200200658T2/xx unknown
- 1998-06-09 NZ NZ507948A patent/NZ507948A/en unknown
- 1998-06-09 JP JP50457799A patent/JP3996958B2/ja not_active Expired - Fee Related
- 1998-06-09 GE GEAP19985919A patent/GEP20033111B/en unknown
- 1998-06-09 CA CA002294130A patent/CA2294130C/en not_active Expired - Fee Related
- 1998-06-09 EE EEP199900590A patent/EE9900590A/xx unknown
-
1999
- 1999-12-17 NO NO19996314A patent/NO312325B1/no unknown
- 1999-12-20 IS IS5311A patent/IS5311A/is unknown
- 1999-12-20 OA OA9900297A patent/OA11240A/en unknown
-
2003
- 2003-01-29 IL IL15416603A patent/IL154166A0/xx unknown
Also Published As
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| PL188860B1 (pl) | Produkt tytoniowy, sposób wytwarzania produktu tytoniowego i sposób zapobiegania tworzeniu się nitrozoamin w zebranych liściach tytoniu | |
| CN1116830C (zh) | 处理烟草以降低亚硝胺含量的方法 | |
| US6202649B1 (en) | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby | |
| WO1998005226A9 (en) | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby | |
| US6311695B1 (en) | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby | |
| CA2344063C (en) | Tobacco curing barn | |
| USRE38123E1 (en) | Tobacco products having reduced nitrosamine content | |
| MXPA99012047A (en) | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby | |
| CZ9904636A3 (cs) | Způsob zpracování tabáku | |
| BG65186B1 (bg) | Метод за обработка на тютюн за намаляване на съдържанието на нитрозамини и продукти, получени по този метод | |
| UA75021C2 (en) | Method for tobacco processing by reducing the content of nitrosamine and a product obtained by this method | |
| MXPA99001292A (en) | Method of treating tobacco to reduce nitrosamine content, and products produced thereby |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| LAPS | Decisions on the lapse of the protection rights |
Effective date: 20050609 |