JP7752675B2 - ウイルスに対するタウロリジンの使用 - Google Patents

Description

本出願は、出願日が２０２０年７月６日である中国出願第２０２０１０６３８９２６．９号、出願日が２０２０年７月６日である中国出願第２０２０１０６３９１８６．０号、及び出願日が２０２０年９月２１日である中国出願第２０２０１０９９４９２８．１号に基づいてそれらの優先権を主張し、それらの中国出願の開示内容は、その全体が本出願に組み込まれる。

本発明は、薬物療法の分野に関し、具体的にはウイルスに対するタウロリジンの使用、特に新型コロナウイルス及びインフルエンザウイルスによって引き起こされる感染症の治療及び／又は予防における使用に関する。

コロナウイルスは、自然界に広く存在する大きなクラスのウイルスである。生物学的分類では、コロナウイルスは、ニドウイルス目、コロナウイルス科、コロナウイルス属に属し、エンベロープ及び直線状の一本鎖プラス鎖ゲノムを有するＲＮＡウイルスであり、８０～１２０ｎｍの直径を有し、その核酸は、２７～３１ｋｂの長さを有する非分節型（non-segmented）一本鎖（＋）ＲＮＡである。コロナウイルスは、ＲＮＡウイルスの中で最も長いＲＮＡ核酸鎖を有するウイルスであり、プラス鎖ＲＮＡに固有の重要な構造的特徴を含み、すなわち、ＲＮＡ鎖の５’末端にメチル化された「キャップ」があり、３’末端にポリＡ「テール」構造がある。この構造は、真核生物のｍＲＮＡと非常に類似しており、ゲノムＲＮＡ自体が翻訳鋳型として機能するための重要な構造基盤でもある。

コロナウイルスは、呼吸器分泌物とともに排泄され、口腔液、くしゃみ、接触、及び空気の飛沫を介して拡散し、ヒト、マウス、ウマ、ブタ、ネコ、イヌ、鳥類などの脊椎動物及びヒトに感染し、呼吸器系感染症及び急性胃腸炎などの疾患を引き起こす。

インフルエンザウイルスは、インフルエンザに至る急性呼吸器感染症を引き起こす主なウイルスである。インフルエンザウイルスは、ＲＮＡウイルスであるオルトミクソウイルス科に属し、これには主にＡ型インフルエンザウイルス、Ｂ型インフルエンザウイルス、Ｃ型インフルエンザウイルスが含まれる。Ａ型インフルエンザウイルスは、高い変異性、感染性、及び病原性を有し、非常に容易に季節性流行を引き起こす。インフルエンザウイルスによる人への感染は、重度の肺炎、急性呼吸窮迫症候群、ショックを伴う敗血症などを引き起こし得、死亡率は非常に高く、社会公衆衛生安全に大きな脅威をもたらす。現在、一般的に使用されている抗インフルエンザウイルス薬には、主にアルキルアミン薬及びノイラミニダーゼ阻害薬が含まれる。しかしながら、アルキルアミン系薬はＡ型インフルエンザウイルスにしか効果がなく、インフルエンザウイルスは、遺伝子変異及び薬剤応答などにより、これらの抗ウイルス薬に対する耐性を急速に獲得し得ることが見出されている。ノイラミニダーゼ阻害薬は、子孫ウイルスの放出を防ぐことにより、ウイルスの複製を阻害することができる。しかしながら、これらの薬物の副作用は、幻覚、異常行動、聴覚障害、及び視覚障害を含む臨床適用において常に問題となっている。したがって、インフルエンザウイルスの複数のサブタイプに対して普遍的な適用性を備えたクラスの薬物を検索及び開発することは非常に重要である。

新型コロナウイルス（重症急性呼吸器症候群コロナウイルス２、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２）は、現在、ヒトに感染する７番目のコロナウイルスとして知られている。このウイルスは潜伏期間が長く、感染力が強く、複製率が高く、予防及び制御が困難である。ヒトが新型コロナウイルスに感染した場合、臨床症状には、発熱、倦怠感、空咳、及び漸進的な呼吸困難があり、重症の場合には、急性呼吸窮迫症候群、敗血症性ショック、代謝性アシドーシス、及び凝固機能障害があり、これらは治すことが困難であり、そのため、国民経済及びヒトの健康に深刻な影響を与え得る。現在、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の治療に有効な薬はなく、合併症の発生は対症療法に基づいて積極的に予防することしかできない。したがって、新型コロナウイルスの予防又は治療することができる有効な薬剤の開発が急務であり、そのような薬剤の研究開発にも世界中の研究者の関心が集まっている。

タウロリジン（化学名：４，４′－メチレンビス［テトラヒドロ－２Ｈ－１，２，４－チアジアジン］１，１，１′，１′－テトラオキシド、分子式：Ｃ_７Ｈ_１６Ｎ_４Ｏ_４Ｓ_２）は、アミノ酸タウリンの誘導体であり、その構造は以下の通りである。

タウロリジンは、抗エンドトキシン、抗菌、及び抗接着特性を有する。細菌に関して、タウロリジンは、細胞壁、内毒素及び外毒素と化学的に反応し、微生物の接着を阻害し、抗菌の役割を果たすことができる。さらに、抗腫瘍に関して、タウロリジンは、アポトーシス、オートファジー、及びネクローシスを誘導することにより、腫瘍細胞に細胞毒性を誘導することができる。これらのプロセスが関与する程度は、腫瘍細胞の種類によって変動し得る。２０２０年７月まで、タウロリジンの研究に関する２６０超の外国の文献があり、研究の殆どは腫瘍関連シグナル伝達経路におけるタウロリジンの役割の調査に焦点を当てていたが、その抗ウイルス活性に関する報告はなかった。

現在、先行技術におけるタウロリジンに関する薬物研究は、抗腫瘍及び抗菌の態様に焦点を当てている。本発明の研究結果は、タウロリジンが、インフルエンザウイルス（例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ３Ｎ２、又はＨ５Ｎ１）及びコロナウイルス（例えば、新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、イヌコロナウイルスＣＣＶ、又はマウス肝炎ウイルスＭＨＶ）を細胞レベルで有意に阻害することができることが示している。インビボ実験により、タウロリジンが肺に対する有意な保護効果を有し、インフルエンザウイルス又はコロナウイルスに感染したマウスの生存期間を延長することができることが確認されている。上記の結果は、タウロリジンがインフルエンザウイルス又はコロナウイルスによる肺疾患の予防及び治療に使用することができることを証明している。したがって、本出願の１つの目的は、タウロリジンの有効範囲を広げ、その抗ウイルス用途を提供することである。

一態様では、本願は、抗ウイルス医薬の製造における、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物の使用を提供する。

別の態様では、本願は、細胞中でのウイルスの複製及び／又は繁殖を阻害するための医薬の製造における、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物の使用を提供する。

別の態様では、本出願は、ウイルスによって引き起こされる疾患又は感染症を予防及び／又は治療するための医薬の製造における、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物の使用を提供する。

別の態様では、本出願は、ウイルス感染を阻害する方法であって、ウイルスに感染した細胞、ウイルスに感染しやすい細胞、又はそれを必要とする対象に、有効量のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物を投与することを含む、方法を提供する。

いくつかの実施形態では、方法は、有効量の抗生物質、例えば、エリスロマイシン、アセチルスピラマイシン、又はアジスロマイシンなどを細胞又は対象に投与するステップをさらに含む。いくつかの実施形態では、抗生物質は、バンコマイシンではない。いくつかの実施形態では、抗生物質は、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはその組成物と同時に、別々に、又は逐次的に投与される。

別の態様では、本願は、細胞におけるウイルスの複製及び／又は繁殖を阻害する方法であって、細胞を有効量のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物と接触させるステップを含む、方法を提供する。

いくつかの実施形態では、方法は、細胞を有効量の抗生物質、例えば、エリスロマイシン、アセチルスピラマイシン、又はアジスロマイシンなどと接触させるステップをさらに含む。いくつかの実施形態では、抗生物質は、バンコマイシンではない。いくつかの実施形態では、抗生物質は、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはその組成物と同時に、別々に、又は逐次的に細胞に投与される。

別の態様では、本出願は、ウイルスによって引き起こされる疾患又は感染症を予防及び／又は治療するための方法であって、それを必要とする対象に、有効量のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、若しくはその薬学的に許容される塩、或いはタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む組成物を投与するステップを含む、方法を提供する。

いくつかの実施形態では、方法は、有効量の抗生物質、例えば、エリスロマイシン、アセチルスピラマイシン、又はアジスロマイシンを対象に投与するステップをさらに含む。いくつかの実施形態では、抗生物質は、バンコマイシンではない。いくつかの実施形態では、抗生物質は、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩、或いはその組成物と同時に、別々に、又は逐次的に対象に投与される。

いくつかの実施形態では、上記の項目のうちのいずれか１つに記載のウイルスは、インフルエンザウイルス、コロナウイルス、肝炎ウイルス、又はＨＩＶなどのＲＮＡウイルスである。いくつかの実施形態では、インフルエンザウイルスは、インフルエンザＡウイルス、インフルエンザＢウイルス、又はインフルエンザＣウイルス、例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ２Ｎ２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１、Ｈ７Ｎ７、又はＨ９Ｎ２である。いくつかの実施形態では、コロナウイルスは、新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、イヌコロナウイルスＣＣＶ、又はマウス肝炎ウイルスＭＨＶである。いくつかの実施形態では、コロナウイルスは、ＣＣＶである。いくつかの実施形態では、コロナウイルスは、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２である。いくつかの実施形態では、コロナウイルスは、ＭＨＶである。

いくつかの実施形態では、上記の項目のうちのいずれか１つに記載の細胞は、哺乳動物細胞である。いくつかの実施形態では、哺乳動物は、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、げっ歯類、及び霊長類からなる群から選択される。いくつかの実施形態では、哺乳動物は、ヒト、ネコ、ニワトリ、ブタ、又はイヌである。いくつかの実施形態では、細胞は、ヒト由来の細胞又はニワトリ胚細胞である。

いくつかの実施形態では、上記の項目のうちのいずれか１つに記載の疾患又は感染症は、肺疾患である。いくつかの実施形態では、上記の項目のうちのいずれか１つに記載の疾患又は感染症は、インフルエンザ、単純感染症、重症肺炎を含む肺炎、急性又は重症急性呼吸器感染症、低酸素性呼吸不全、急性呼吸窮迫症候群、敗血症、敗血症性ショック又は重症急性呼吸器症候群（ＳＡＲＳ）、中東呼吸器症候群（ＭＥＲＳ）、及び新型コロナウイルス肺炎（ＣＯＶＩＤ－１９）から選択される。いくつかの実施形態では、単純感染症は、発熱、咳、又は喉の痛みである。いくつかの実施形態では、疾患又は感染症は、ＣＯＶＩＤ－１９である。

いくつかの実施形態では、上記の項目のうちのいずれか１つに記載の組成物は、エリスロマイシン、アセチルスピラマイシン、及びアジスロマイシンなどの抗生物質をさらに含む。いくつかの実施形態では、抗生物質は、バンコマイシンではない。いくつかの実施形態では、組成物はまた、希釈剤、吸収剤、湿潤剤、賦形剤、充填剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、及びそれらの任意の組み合わせなどの薬学的に許容される担体を含み得る。いくつかの実施形態では、組成物は、ＰＶＰ－ＫＦ－１７を含む。いくつかの実施形態では、組成物は、注射剤、注入剤、錠剤、カプセル剤、スプレー剤、エアゾール剤、又はリンス剤である。いくつかの実施形態では、組成物は、単位剤形で提供される。いくつかの実施形態では、組成物は、１～１０００ｍｇ（例えば、１～８００ｍｇ、１～５００ｍｇ、１～２００ｍｇ、１～１００ｍｇ、１～５０ｍｇ、１～２０ｍｇ、又は１～１０ｍｇ）のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む。

いくつかの実施形態では、組成物は、１００ｍｌの溶液あたりに含まれる２ｇのタウロリジン及び５ｇのＰＶＰ－ＫＦ－１７の製剤を有し得る。調製方法は、ＰＶＰ－ＫＦ－１７を最初に室温で水に溶解し、完全に溶解した後、４５℃～５０℃でタウロリジンを添加し、完全に溶解するまで攪拌し、次いで適量の４％水酸化ナトリウムを添加して溶液のｐＨを調整し、次いで適量の活性炭を添加し、上記温度を３０分間維持し、温かくしながら濾過することを含む。濾液を０．２５ｍｍ濾過膜を通して濾過し、瓶詰めして蓋をする。

用語の定義
本出願において、別段の記載がない限り、本明細書で使用される科学用語及び技術用語は、当業者によって一般に理解される意味を有する。さらに、本明細書で使用される細胞培養、分子遺伝学、核酸化学、及び免疫学の実験室操作ステップはすべて、対応する分野で広く使用される日常的なステップである。一方、本開示をより良く理解するために、関連用語の定義及び説明を以下に提供する。

本明細書で使用される場合、「ＴＲＤ」はタウロリジンを指す。

本明細書で使用される、「薬学的に許容される塩」という用語には、タウロリジンの無機又は有機酸塩だけでなく、例えば、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩、リチウム塩、メグルミン塩、塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、硝酸塩、硫酸塩、重硫酸塩、リン酸塩、リン酸水素塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、酪酸塩、シュウ酸塩、トリメチル酢酸塩、アジピン酸塩、アルギン酸塩、乳酸塩、クエン酸塩、酒石酸塩、コハク酸塩、マレイン酸塩、フマル酸塩、ピクリン酸塩、アスパラギン酸塩、グルコン酸塩、安息香酸塩、メシル酸塩、エタンスルホン酸塩、ベンゼンスルホン酸塩、ｐ－トルエンスルホン酸塩、又はパモ酸塩などの無機又は有機塩基塩が含まれる。

本書では、「誘導体」とは、タウロリジンの生物活性の１０％超を有する、水素原子又は他の原子基が置換された、タウロリジンから誘導されたスルホンアミド化合物を指す。例えば、タウロリジン分子中の２つのチオキシル基を単に置き換えるか、又は基－ＮＨ－及び－ＣＨ_２－を付加又は除去することによる構造の変更によって、類似化合物が形成される。

本書では、「プロドラッグ」とは、それ自体は元の薬物（すなわち、タウロリジン）の薬理作用を示さないがインビボで元の薬物に変換されて役割を果たす、タウロリジンの化学構造を修飾することによって得られる新しい物理的、化学的、及び生物学的特性を有する誘導体を指す。

タウロリジンは、極性溶媒、特に、水、メタノール、又はエタノールをタウロリジン結晶の構造構成要素として含む、溶媒和物（好ましくは水和物）の形態で存在し得る。極性溶媒、特に水の量は、化学量論比又は非化学量論比で存在し得る。本願に記載の疾患又は感染症の治療に使用されるタウロリジンの任意の溶媒和物は、異なる特性（薬物動態特性を含む）を提供し得るが、対象に吸収された際に、タウロリジンが得られ、したがって、タウロリジンの使用がタウロリジンの任意の溶媒和物の使用をそれぞれ包含すると理解する必要がある。

本明細書で使用される場合、「治療有効量」又は「予防有効量」という用語は、健全な医学的判断の範囲内で、（合理的な利益／リスク比で）患者における疾患を治療又は予防するのに十分な量であるが重篤な副作用を回避するのに十分な低い量を指す。化合物の治療有効量は、（例えば、化合物の効力、有効性、及び半減期を考慮して）選択された特定の化合物、選択された投与経路、治療される疾患、治療される疾患の重症度、治療される患者の年齢、サイズ、体重、及び身体疾患、治療される患者の病歴、治療期間、併用療法の性質、望ましい治療効果などの多くの要因に依存するが、依然として当業者によって日常的に決定され得る。

さらに、様々な患者に対する特定の投与量及び使用法は、年齢、体重、性別、自然な健康状態、患者の栄養状態、薬剤の効力、投与時間、代謝率、疾患の重症度、及び医師の主観的判断などの多くの要因に依存する。本明細書では、０．００１～１０００ｍｇ／ｋｇ体重／日の用量が好ましく使用される。

本発明の有益な効果
本願は、抗ウイルス剤におけるタウロリジンの使用を提供する。Ｖｅｒｏ－Ｅ６、ＭＤＣＫ、Ａ５４９、Ｈｕｈ７などの細胞をタウロリジンの抗ウイルス効果を評価するための細胞モデルとして使用し、ウイルスを細胞に接種し、細胞の病理学的状態に応じてウイルス液を回収し、ウイルスに対するタウロリジンの阻害効果を測定した。結果は、タウロリジンがインフルエンザウイルス（例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ３Ｎ２、又はＨ５Ｎ１）及びコロナウイルス（例えば、新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、イヌコロナウイルスＣＣＶ、又はマウス肝炎ウイルスＨＭＶ）を細胞レベルで有意に阻害することができることを示した。さらに、インビボ実験により、タウロリジンが肺に対して有意な保護効果を有し、インフルエンザウイルス又はＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスに感染したマウスの生存期間を延長することができることが確認されている。これにより、タウロリジンがインフルエンザウイルス又はコロナウイルスによって引き起こされる肺疾患の予防及び治療に使用することができることが示された。本願の研究結果は、タウロリジンの有効範囲を広げ、研究基盤を提供し、ウイルスによって引き起こされる肺感染症の予防薬又は治療薬の研究開発に新たな方向性を切り開くものである。

ここで説明される添付の図面は、本発明のさらなる理解を提供するために使用され、本出願の一部を構成する。本発明の例示的な実施形態及びその説明は、本発明を説明するために使用され、本発明に対する適切でない制限を構成するものではない。図面は以下の通りである。

図１は、タウロリジンに対するＭＤＣＫ、Ｖｅｒｏ－Ｅ６、Ｆ８１細胞の感受性の試験結果を示す。 図２は、インフルエンザウイルスサブタイプＨ３Ｎ２に対する１４μＭのタウロリジンの阻害効果を示す。 図３は、インフルエンザウイルスサブタイプＨ１Ｎ１に対するＴＲＤの阻害効果を示す。図３Ａ：Ａ５４９細胞にインフルエンザウイルス株ＨＩＮ１－ＵＩ１８２を感染させ（ＭＯＩ＝０．１）、ＤＭＳＯ及びＴＲＤでそれぞれ１２時間処理し、用量反応曲線をプロットした。図３Ｂは、ＴＲＤ濃度を対数に変換し、ウイルス力価をパーセンテージに変換した後、片対数適合曲線によって計算されたＥＣ５０値を示す。図３Ｃは、溶媒ＤＭＳＯ及び異なるＴＲＤ濃度で２４時間処理した後にＭＴＴによって測定されたＡ５４９細胞の感受性を示す。図３Ｄ：示されたＭＯＩでＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２に感染させた後、細胞を溶媒ＤＭＳＯ及びＴＲＤで１２時間処理し、オセルタミビル（ＯＳＴＡ）を対照として使用した。核をＤＡＰＩで染色し、感染細胞を核ｖＮＰ染色によって検出した（スケールバー１０μｍ）。図３Ｅは、ＮＰ陽性核の数の定量化を示す。図３Ｆは、Ａ５４９細胞におけるＮＰの総タンパク質発現レベルを示す。β－アクチンを対照として使用し、全細胞抽出物をウエスタンブロットによって分析した。図３Ｇは、ＮＰ発現レベルの定量化を示す。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１。 図４は、異なるインフルエンザウイルスサブタイプに対するＴＲＤの阻害効果を示す。図４Ａ～４Ｄ：Ａ５４９細胞にインフルエンザウイルス株Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１を１２時間感染させた後、細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤで２４時間処理し、ウイルス力価を測定した。図４Ｅ～４Ｈ：ＭＤＣＫ細胞にインフルエンザウイルスＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２株、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８株、Ｈ３Ｎ２株、及びＨ５Ｎ１株を感染させた後、細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤで２４時間処理し、ウイルス力価を測定した。ＯＳＴＡを陽性対照薬として使用した。株のウイルス力価をＬｏｇ_１０ＴＣＩＤ_５０として表した。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。 図５は、仮性狂犬病ウイルスに対する１５μＭ及び３０μＭのタウロリジンの阻害効果を示す。 図６は、パルボウイルスに対する１５μＭ及び３０μＭのタウロリジンの阻害効果を示す。 図７は、ＴＲＤが細胞におけるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の複製を阻害したことを示している。図７Ａは、ウイルス病原性の検出を示す。図７Ｂは、新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に感染させた後（ＭＯＩ＝０．１）、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤでそれぞれ２４時間処理し、用量反応曲線をプロットしたことを示す。図７Ｃは、溶媒ＤＭＳＯ及び異なる濃度のＴＲＤで２４時間処理した後にＭＴＴによって測定されたＶｅｒｏ－Ｅ６細胞の感受性を示す。図７Ｄは、新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２（１００ＴＣＩＤ_５０）及び（２００ＴＣＩＤ_５０）に感染させた後、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤで２４時間処理し、ウイルス力価を測定したことを示す。図７Ｅは、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞におけるＮＰの総タンパク質発現レベルを示す。β－アクチンを対照として使用し、全細胞抽出物をウエスタンブロットによって分析した。図７Ｆは、ＮＰ発現レベルの定量化を示す。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１。 図８は、ＴＲＤの抗ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２活性を示す。図８Ａ及び８Ｃは、Ｖｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞を光学顕微鏡によって画像化して、典型的なＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２誘導細胞溶解を検出したことを示す。図８Ｂ及び８Ｄは、ＲＴ－ｑＰＣＲによる細胞上清中のウイルス収量の定量化を示す。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、＊＊ｐ＜０．０１、^＊＊＊ｐ＜０．００１。 図９は、ＴＲＤの抗ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２活性を示す。図９Ａ及び９Ｃは、特定のＭＯＩでＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に感染させた後、Ｖｅｒｏ－Ｅ６（左）及びＨｕｈ７（右）細胞を溶媒ＤＭＳＯ及び異なる用量のＴＲＤで２４時間処理し、ＤＡＰＩで染色し、感染細胞をウイルス核ＮＰ染色によって検出したことを示している（スケールバー１０μｍ）。図９Ｂ及び９Ｄは、ＮＰ陽性核の数の定量化を示す。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、^＊＊＊ｐ＜０．００１。 図１０は、インビボでのＴＲＤ処理後に、インフルエンザウイルス感染の進行が制限されたことを示している。図１０Ａは、マウスをブランク対照群 、ウイルス対照群
、及びＴＲＤ処置群
に分け、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２感染後の日数に対して累積体重変化をプロットしたことを示す。図１０Ｂは、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２を感染させたマウスの生存率の変化を示す生存曲線である。図１０Ｃ及び１０Ｄは、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２感染後３日目及び５日目に測定したマウス肺組織におけるウイルス力価を示す。図１０Ｅは、５日目のマウス肺組織におけるＮＰの総タンパク質発現レベルを示している。β－アクチンを対照として使用し、全細胞抽出物をウエスタンブロットによって分析した。図１０Ｆは、ＮＰ発現レベルの定量化を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。
図１１は、ＴＲＤの投与が異なるインフルエンザウイルスサブタイプによるマウスの感染経過を制限したことを示している。図１１Ａは、マウスをブランク対照群 、ウイルス対照群
、及びＴＲＤ処置群
に分け、Ｈ３Ｎ２感染後の日数に対して累積体重変化をプロットしたことを示す。図１１Ｂは、Ｈ３Ｎ２感染後のマウスの生存率の変化を示す生存曲線である。図１１Ｃ及び１１Ｄは、Ｈ３Ｎ２感染後３日目及び５日目に測定されたマウス肺組織におけるウイルス力価を示す。図１１Ｅは、Ｈ５Ｎ１感染後の日数に対してプロットした体重の累積変化を示す。図１１Ｆは、Ｈ５Ｎ１感染後のマウスの生存率の変化を示す生存曲線である。図１１Ｇ及び１１Ｈは、Ｈ５Ｎ１感染後３日目及び５日目に測定したマウス肺組織におけるウイルス力価を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。
図１２は、肺に対するＴＲＤの保護効果を示す。図１２Ａ及び１２Ｂは、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２ウイルス感染後３日目及び５日目に検出されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの肺組織に対する薬物の保護効果を示す。図１２Ｃ及び１２Ｄは、Ｈ３Ｎ２ウイルス感染後３日目及び５日目に検出されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの肺組織に対する薬物の保護効果を示す。図１２Ｅ及び１２Ｆは、Ｈ５Ｎ１ウイルス感染後３日目及び５日目に検出されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの肺組織に対する薬物の保護効果を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。 図１３は、ＴＲＤが肺損傷の程度を改善したことを示している。ＨＥ染色をそれぞれ対照群、ウイルス群、ＴＲＤ治療群におけるマウスの肺組織で行い、異なる群の代表的な写真を得た：左（ＨＩＮ１－ＵＩ１８２）、中央（Ｈ３Ｎ２）、右（Ｈ５Ｎ１）。 図１４は、ＴＲＤがＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染マウスの体重及び生存率を改善したことを示している。図１４Ａは、ＢＡＬＢ－Ｃ雌マウスを対照群 、ウイルス対照群
及びＴＲＤ処置群
に分け、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後の日数に対して累積体重変化をプロットしたことを示す。図１４Ｂは、ウイルス感染ＢＡＬＢ－Ｃマウスの生存曲線を示す。図１４Ｃは、Ｃ５７ＢＬマウスを対照群
、ウイルス対照群
及びＴＲＤ処置群
に分け、ウイルス感染後の日数に対して累積体重変化をプロットしたことを示す。図１４Ｄは、ウイルス感染後のＣ５７ＢＬマウスの生存率を示す生存曲線である。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、^＊＊＊ｐ＜０．００１。
図１５は、ＴＲＤがＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染マウスの予後を改善したことを示している。図１５Ａは、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後３日目及び５日目に測定された異なる群のＢＡＬＢ－Ｃマウスの肺組織におけるウイルスＲＮＡの収量を示す。図１５Ｂは、ウイルス感染後３日目及び５日目に検出されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの肺組織に対する薬剤の保護効果を示す。図１５Ｃは、ウイルス感染後３日目及び５日目に測定されたＣ５７ＢＬマウスの肺組織におけるウイルス力価を示す。図１５Ｄは、ウイルス感染後３日目及び５日目に検出されたＣ５７ＢＬマウスの肺組織に対する薬物の保護効果を示す。データは、平均±ＳＤ、ｎ＝３の独立した実験を表す。対照と比較して、^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、^＊＊＊ｐ＜０．００１。 図１６は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後の白血球に対するＴＲＤの効果を示している。図１６Ａ及び１６Ｂは、ウイルス感染後３日目及び５日目に測定されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの血清中の免疫細胞の割合を示す。図１６Ｃ及び１６Ｄは、ウイルス感染後３日目及び５日目に決定されたＣ５７ＢＬマウスの血清中の免疫細胞の割合を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。 図１７は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後の宿主血小板に対するＴＲＤの効果を示す。図１７Ａ及び１７Ｂは、ウイルス感染後３日目及び５日目の測定されたＢＡＬＢ－Ｃマウスの血清中の血小板数を示す。図１７Ｃ及び１７Ｄは、ウイルス感染後３日目及び５日目のＣ５７ＢＬマウスの血清中の血小板数を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。 図１８は、ＴＲＤがマウスの肺組織病変におけるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の悪性度を改善したことを示している。図１８Ａは、病理学的分析プロセスを示す。図１８Ｂは、異なる群のマウスの肺組織をサンプリングし、写真撮影したことを示す。黒色の矢印（→）は、重度の組織病変を示す。 図１９は、ＴＲＤがマウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓組織病変におけるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の悪性度を改善したことを示している。ＨＥ染色を対照群、ウイルス群、及びＴＲＤ治療群のマウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓組織でそれぞれ行い、異なる群の代表的な写真を示した。黒色の矢印（→）は、重度の組織出血を示す。 図２０は、ＴＲＤがウイルス感染後にＡＣＥ２の組織病理学的発現を阻害したことを示している。ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス感染後、それぞれ対照群、ウイルス群、及びＴＲＤ治療群のマウス（ＢＡＬＢ－Ｃ及びＣ５７ＢＬ）の肺組織について免疫組織化学的検出を行い、異なる群の代表的な写真を示した（左）。ＮＰ陽性発現細胞の割合を定量分析によって計算した（右）。赤色の矢印（→）は、ＮＰ陽性細胞を示す。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。

具体的な実施形態
本発明の実施例における技術的解決策は、添付の図面を参照して、以下の本発明の実施例において明確かつ完全に説明される。明らかに、記載された実施例は、本発明の例のすべてではなく、一部にすぎない。少なくとも１つの例示的な実施例の以下の記載は、本質的に例示にすぎず、本発明、その適用又は使用を限定するものと決してみなされない。本発明の実施例に基づいて、創造的な努力なしに当業者によって得られる他のすべての例は、本発明の保護範囲内である。

実施例で使用したＢＡＬＢ／ｃ及びＣ５７ＢＬ／６Ｎマウス並びにタウロリジンはすべて市販されており、タウロリジンは、Ｃｈａｎｇｃｈｕｎ Ｍａｉｌｉｎｇ Ｂｉｏｅｎｇｉｎｅｅｒｉｎｇ Ｃｏ．， Ｌｔｄ．から提供され、Ｖｅｒｏ－Ｅ６、ＭＤＣＫ、Ａ５４９、Ｈｕｈ７細胞、及びインフルエンザウイルスは、軍事科学院軍事医学研究院軍事獣医学研究所から提供され、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスは、軍事科学院軍事医学研究院軍事獣医学研究所に保存されていた北京からの単離株である。

実施例１：細胞の安全性に対するタウロリジンの効果
ＭＤＣＫ、Ｖｅｒｏ－Ｅ６、及びＦ８１細胞を液体窒素中に保存し、取り出して蘇生させ、連続的に３世代継代し、細胞が十分に増殖した後に実験研究に使用した。ＭＤＣＫ、Ｖｅｒｏ－Ｅ６、及びＦ８１細胞を９６ウェルプレートに播種し、１ウェルあたりの細胞数は１×１０^５個で、これを５％ＣＯ_２の恒温細胞インキュベーター中３７℃で一晩培養した。細胞密度が６０～７０％であったとき、異なる濃度（初期濃度は４ｍｇ／ｍｌであり、試験薬を１０倍勾配で希釈し、合計１０個の濃度とした）のタウロリジンを含む２％ＦＢＳ ＤＭＥＭ維持液を１００μＬ／ウェルで添加し、各濃度について４つの複製ウェルを測定した。さらに、ブランク対照及びＰＢＳ対照を設け、４回繰り返し、培養を継続し、細胞の状態を顕微鏡で毎日観察した。投与後２日目に１０μＬのＭＴＴ溶液（５ｍｇ／ｍｌ）を添加し、３７℃及び５％ＣＯ_２で１時間インキュベーションし、ＯＤ_５７０値を測定した。Ｇｒａｐｈｐａｄ Ｐｒｉｓｍ８．０ソフトウェアを使用してデータを分析し、上記３種類の細胞に対する薬物の半阻害濃度（ＩＣ_５０）を計算した。

試験結果を図１に示す。ＭＤＣＫ細胞（Ａ）に対するタウロリジンのＩＣ_５０値は２２．８８μＭであり、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞（Ｂ）に対するＩＣ_５０値は２０．３８μＭであり、Ｆ８１細胞（Ｃ）に対するＩＣ_５０値は３６．７４μＭであったことを見出すことができた。

実施例２：タウロリジンによって阻害されたインフルエンザウイルス感染力の検出結果
ＭＤＣＫ細胞を液体窒素中で保存し、取り出して蘇生させ、連続的に３世代継代し、細胞が十分に増殖した後、実験研究に使用した。保存したＨ３Ｎ２インフルエンザウイルス株を氷上に置いてゆっくりと解凍し、ＭＤＣＫ細胞の単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、ウイルス液を細胞の病理学的状態に応じて回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μｌを計算単位として使用して、ウイルス含有量を測定した。

薬剤を上記で得られたＨ３Ｎ２サブタイプインフルエンザウイルス液と混合し、次いで細胞に接種した。よく増殖したＭＤＣＫ細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１×１０^５個の細胞数で播種した。薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。ウイルス含量１００ＴＣＩＤ_５０のＨ３Ｎ２サブタイプインフルエンザウイルスを接種し、タウロリジン（１４μＭ）と混合し、室温で１０分間反応させ、次いでコーティングした９６ウェルプレートに播種した。さらに、ブランク細胞対照及びウイルス対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃の５％ＣＯ_２インキュベーターに入れ、７２時間培養を継続し、次いで細胞の病変を観察し、細胞増殖率を算出した。

計算式は、細胞の相対増殖率（Ｐ％）：Ｐ％＝ＯＤ実験群／ＯＤ対照群×１００％とした。
観察結果を図２に示した。１４μＭの用量のタウロリジンがインフルエンザウイルスに対して細胞レベルで有意な阻害効果を有することが見出された。検出結果により、タウロリジンがインフルエンザによって引き起こされる細胞変性を明らかに阻害することができることが示され、結果により、タウロリジンがインフルエンザウイルスの感染を阻害することができることが示された。

実施例３：細胞におけるタウロリジンによるインフルエンザウイルスの繁殖阻害
１．実験材料
１．１ 細胞：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのヒト肺がん細胞Ａ５４９及びアフリカミドリザル腎臓細胞ＭＤＣＫ；
１．２ ウイルス株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１ウイルス；
１．３ 試薬：ＤＭＥＭ、０．２５％トリプシン、ＦＢＳ、ＰＢＳ（ｐＨ＝７．０）；
１．４ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法
２．１ 細胞培養：Ａ５４９及びＭＤＣＫを蘇生させ、連続的に３世代継代し、細胞が十分に増殖した後に実験研究に使用した。

２．２ ウイルス培養：保存されたウイルス液を氷上に置いてゆっくり解凍し、次いでＭＤＣＫの単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、ウイルス液を細胞の病理学的状態に応じて回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μＬを計算単位として使用して、ウイルス含有量を決定した。

２．３ タウロリジンの毒性試験
ＭＴＴアッセイ（Ｐｒｏｍｅｇａ）によって細胞毒性を決定した。継代培養細胞を２４時間培養した後、細胞を９６ウェルプレートに播種し（１ウェルあたり４０００個の細胞）、培養した。ＭＴＴアッセイを使用して製造元の指示書に従って、感受性について細胞を試験した。簡単に述べると、１０ｕｌのＭＴＴ溶液を各ウェルに添加し、４時間インキュベートした後、各ウェルのＯＤ_５７０値を測定して記録した。

２．４ タウロリジンの阻害効果
薬物及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖した細胞（Ａ５４９及びＭＤＣＫ）をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１０^５個の細胞を播種し、細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に薬物効果研究を行った。１００ＴＣＩＤ_５０のＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１をタウロリジン（２０μｇ／ｍＬ）と混合し、コーティングした６ウェルプレートに直ちに播種した。さらに、ブランク細胞対照及びタウロリジン細胞毒性対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ_２インキュベーターに入れ、培養を継続し、細胞変性の変化を観察した。

２．５ 免疫蛍光検出
ＭＤＣＫ細胞を固定し（３．７％ＰＦＡ）、次いで細胞穿孔（２％Ｔｒｉｔｏｎ－１００）に供した。一次抗体のインキュベーション前に、それらを２％ＢＳＡでブロッキングした。続いて、二次抗体と共にインキュベーションを行った後、核を染色した。最後に、細胞を蛍光顕微鏡で観察した。

３．実験結果
インフルエンザウイルス感染後のＭＤＣＫ細胞における薬物用量と感染結果との相関関係を観察した。

インフルエンザウイルス株ＨＩＮ１－ＵＩ１８２（ＭＯＩ＝０．１）に感染させた後、ＭＤＣＫ細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤでそれぞれ１２時間処理し、用量反応曲線をプロットした。ＴＲＤは強力な抗インフルエンザウイルス活性を示し、インフルエンザウイルスＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２株の力価を抑制した（図３Ａ）。ＴＲＤ濃度を対数に変換し、ウイルス力価をパーセンテージに変換した後、片対数適合曲線を使用してＥＣ_５０値を計算した。５０％有効濃度（ＥＣ５０値）が低用量で観察され、高用量のＴＲＤではインフルエンザウイルスの感染を９４％まで減少させることができた（図３Ｂ）。

次に、細胞毒性に対するＴＲＤの効果を確認するために、ＭＴＴ実験を行った。Ａ５４９細胞をＤＭＳＯ及び異なる濃度のＴＲＤで２４時間処理し、次いでＡ５４９細胞の感受性を測定した。細胞増殖とＴＲＤ用量との間に逆相関が観察された（図３Ｃ）。したがって、毒性の低い濃度（５０μｇ／ｍＬ）を追跡研究のために選択した。ＴＲＤの潜在的な抗ウイルス効果をさらに調査するために、ウイルス感染の治療に一般的に使用される薬剤であるオセルタミビル（ＯＳＴＡ）を陽性対照として選択した。ＴＲＤ抗ウイルス作用がインフルエンザウイルス感染の初期段階であるかどうかを調べるために、１サイクルの感染アッセイを行った。示されたＭＯＩでＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２に感染させた後、細胞をＤＭＳＯ、ＴＲＤ、及びＯＳＴＡでそれぞれ１２時間処理した。核をＤＡＰＩで染色し、感染細胞を核ｖＮＰ染色で検出した（スケールバー１０μｍ）。ウイルス核タンパク質（ＮＰ）の核の外観を感染に成功した細胞として定量化した（図３Ｄ）。予想通り、ＯＳＴＡはインフルエンザウイルスに対して有意な阻害効果を有していたが、ＤＭＳＯ処理した対照細胞では、ＭＤＣＫ核の３８％がＮＰ陽性であり、ＴＲＤ処理後のＮＰ陽性細胞の割合は２１％に有意に減少した（図３Ｅ）。その後に、β－アクチンを対照として使用したウエスタンブロットによって全細胞抽出物を分析したが、これも同じ結果を示した（図３Ｆ及び３Ｇ）。

ＴＲＤの抗ウイルス効力をさらに調査するために、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１株を含む異なるインフルエンザウイルスサブタイプを使用して、Ａ５４９及びＭＤＣＫ細胞を含む異なる細胞に感染させた。Ａ５４９細胞にインフルエンザウイルス株Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１株を１２時間感染させた後、細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤ（２０μｇ／ｍＬ）で２４時間処理し、ウイルス力価を測定した。ＯＳＴＡを陽性対照薬として使用した。株のウイルス力価をＬｏｇ_１０ＴＣＩＤ_５０として表した。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（_＊ｐ＜０．０５、_＊＊ｐ＜０．０１、及び_＊＊＊ｐ＜０．００１）。結果は、ＴＲＤの投与がＡ５４９細胞におけるウイルス力価を有意に低下させたことを示した（図４Ａ～４Ｄ）。同様に、インフルエンザウイルス株Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ１Ｎ１－ＰＲ８、Ｈ３Ｎ２、及びＨ５Ｎ１株に感染させた後、ＭＤＣＫ細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤで２４時間処理し、ウイルス力価を決定した。ＯＳＴＡを陽性対照薬として使用した。株のウイルス力価をＬｏｇ_１０ＴＣＩＤ_５０として表した。データは、平均±ＳＤを表し、統計的有意性をＡＮＯＶＡ分析によって評価した（^＊ｐ＜０．０５、^＊＊ｐ＜０．０１、及び^＊＊＊ｐ＜０．００１）。結果は、ＴＲＤの投与がＭＤＣＫ細胞におけるウイルス力価も有意に低下させたことを示した（図４Ｅ～Ｈ）。

４．結論
タウロリジンは広範囲の抗インフルエンザウイルス効果を有し、インフルエンザウイルスの予防及び治療に使用することができる。

実施例４：タウロリジンによって阻害された仮性狂犬病ウイルス感染力の検出結果
ウイルス：仮性狂犬病ウイルスは、エンベロープを有するＤＮＡウイルスであり、１５０ｎｍ～１８０ｎｍのウイルス粒子径を有する。

ＭＤＣＫ細胞を液体窒素中で保存し、取り出して蘇生させ、連続的に３世代継代し、細胞が十分に増殖した後、実験研究に使用した。保存されたエンベロープを有する仮性狂犬病ウイルス株を氷上に置いてゆっくりと解凍し、ＭＤＣＫ細胞の単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、ウイルス液を細胞の病理学的状態に応じて回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μｌを計算単位として使用して、その含有量を決定した。

薬剤を上記で得られた仮性狂犬病ウイルス液と混合し、次いで細胞に接種した。よく増殖したＭＤＣＫ細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１×１０^５個の細胞を播種した。薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。１００ＴＣＩＤ_５０の仮性狂犬病ウイルスを１５μＭのタウロリジン及び３０μＭのタウロリジンとそれぞれ混合し、室温で１０分間反応させた後、コーティングされた９６ウェルプレートに播種した。さらに、ブランク細胞対照及びウイルス対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃の５％ＣＯ_２インキュベーターに入れ、７２時間培養を継続し、細胞の病変を観察し、細胞増殖率を算出した。

計算式は、細胞の相対増殖率（Ｐ％）：Ｐ％＝ＯＤ実験群／ＯＤ対照群×１００％とした。

観察結果を図５に示した。１５μＭ及び３０μＭ濃度のタウロリジンが、仮性狂犬病ウイルスに対して細胞レベルで阻害効果を有しないことを見出すことができた。試験結果により、１５μＭ及び３０μＭのタウロリジンは仮性狂犬病ウイルスによって引き起こされる細胞変性を阻害することができないことが示され、これにより、タウロリジンが仮性狂犬病ウイルスの感染を阻害することができないことが示された。

実施例５：タウロリジンによって阻害されたパルボウイルス感染力の検出結果
ウイルス：パルボウイルスは、エンベロープを有さないＤＮＡウイルスであり、１８～２６ｎｍのウイルス粒子直径を有する。

Ｆ８１細胞を液体窒素中で保存し、取り出して蘇生させ、連続的に３世代継代し、細胞が十分に増殖した後に実験研究に使用した。保存されたパルボウイルス株を氷上でゆっくりと解凍し、Ｆ８１細胞の単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、細胞の病理学的状態に応じてウイルス液を回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μｌを計算単位として使用して、その含有量を決定した。

薬剤を上記で得られたパルボウイルス溶液と混合し、次いで細胞に接種した。十分に増殖したＦ８１細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１×１０^５細胞を播種した。薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。１００ＴＣＩＤ_５０のパルボウイルスを１５μＭのタウロリジン及び３０μＭのタウロリジンとそれぞれ混合し、室温で１０分間反応させた後、コーティングされた９６ウェルプレートに播種した。さらに、ブランク細胞対照及びウイルス対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃の５％ＣＯ_２インキュベーターに入れ、７２時間培養を継続して、細胞病変を観察し、細胞増殖率を算出した。

計算式は、細胞の相対増殖率（Ｐ％）：Ｐ％＝ＯＤ実験群／ＯＤ対照群×１００％とした。

観察結果を図６に示した。１５μＭ及び３０μＭ濃度のタウロリジンは、パルボウイルスに対して細胞レベルで阻害効果を有さないことを見出すことができた。試験結果は、１５μＭ及び３０μＭのタウロリジンがパルボウイルスによって引き起こされる細胞変性を阻害することができないことを示し、これにより、タウロリジンがパルボウイルスの感染を阻害することができないことが示された。

実施例６：イヌコロナウイルスＣＣＶに対するタウロリジンの阻害実験
１．実験材料：
１．１ 細胞：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのネコ腎臓細胞株Ｆ８１；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのイヌコロナウイルス；
１．３ 試薬：ＤＭＥＭ、０．２５％トリプシン、ＦＢＳ、ＰＢＳ（ｐＨ＝７．０）；
１．４ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 細胞培養：ネコ腎臓細胞株Ｆ８１を蘇生させ、連続的に３世代継代し、よく増殖した細胞を実験研究に使用した。

２．２ ウイルス培養：保存されたウイルス液を氷上でゆっくり解凍し、単層のネコ腎臓細胞株Ｆ８１に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、細胞の病理学的状態に応じてウイルス液を回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μＬを計算単位として使用して、ウイルス含有量を決定した。

２．３ タウロリジンの阻害効果
薬剤及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖したネコ腎臓細胞株Ｆ８１をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１０^５個の細胞数で播種し、薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。２００ＴＣＩＤ_５０のＨＣｏＶ－２２９Ｅウイルスをタウロリジン（２０μｇ／ｍＬのタウロリジン溶液、薬物用量は５０μＬ、２５μＬ、１２．５μＬ、７．５μＬ、３．７５μＬとした）と混合し、コーティングした６ウェルプレートに直ちに播種した。ブランク細胞対照及びタウロリジン細胞毒性対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ_２インキュベーターに入れ、培養を継続し、細胞変性の変化を観察した。

３．実験結果
上記の実験方法に従い、３７℃のＣＯ_２インキュベーター中で７２時間、顕微鏡下で細胞の状態を観察した。５０μＬ及び２５μＬの薬物を接種した群の細胞は良好な状態であり、細胞変性の変化は生じなかったが、１２．５μＬ、７．５μＬ、及び３．７５μＬの群の細胞はすべて異なる程度の細胞変性を示し、３．７５μＬのタウロリジンで処理した群と２００ＴＣＩＤ_５０を接種した群との間に細胞変性の差異はなかった。

４．結論
上記の実験結果より、５０μＬ及び２５μＬの接種用量では、２００ＴＣＩＤ_５０を完全に阻害することができ、１２．５μＬ及び７．５μＬの接種用量では、２００ＴＣＩＤ_５０ウイルスの細胞への感染を完全には阻害することができず、３．７５μＬの接種用量では、２００ＴＣＩＤ_５０ウイルスの細胞への感染を阻害することができないことが決定された。

実施例７：マウス肝炎ウイルスＨＭＶに対するタウロリジンの阻害実験
１．実験材料：
１．１ 細胞：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＬ９２９（マウス繊維芽細胞）；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのマウス肝炎ウイルス；
１．３ 試薬：ＤＭＥＭ、０．２５％トリプシン、ＦＢＳ、ＰＢＳ（ｐＨ＝７．０）；
１．４ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 細胞培養：Ｌ９２９細胞を蘇生させ、連続的に３世代継代し、よく増殖した細胞を実験研究に使用した。

２．２ ウイルス培養：保存されたウイルス液を氷上でゆっくり解凍し、Ｌ９２９細胞の単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、細胞の病理学的状態に応じてウイルス液を回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μＬを計算単位として使用して、ウイルス含有量を決定した。

２．３ タウロリジンの阻害効果
薬物及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖したＬ９２９細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１０^５個の細胞を播種し、薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。２００ＴＣＩＤ_５０のマウス肝炎ウイルスをタウロリジン（２０μｇ／ｍＬのタウロリジン溶液、薬物用量は５０μＬ、２５μＬ、１２．５μＬ、７．５μＬ、３．７５μＬとした）と混合し、次いでコーティングした９６ウェルプレートに直ちに播種した。ブランク細胞対照及びタウロリジン細胞毒性対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ_２インキュベーターに入れ、培養を継続し、細胞変性の変化を観察した。

３．実験結果
上記の実験方法に従い、３７℃のＣＯ_２インキュベーター中で７２時間、顕微鏡下で細胞の状態を観察した。５０μＬ及び２５μＬの接種用量を用いた群の細胞は良好な状態であり、細胞変性の変化は生じなかった。１２．５μＬ、７．５μＬ、及び３．７５μＬの細胞は、異なる程度の細胞変性を有し、３．７５μＬのタウロリジンで処理した群と２００ＴＣＩＤ_５０を接種した群との間に細胞変性の差異はなかった。

４．結論
上記の実験結果より、接種用量５０μＬ及び２５μＬでは、２００ＴＣＩＤ_５０を完全に阻害することができ、接種用量１２．５μＬ及び７．５μＬでは、２００ＴＣＩＤ_５０ウイルスの細胞への感染を完全には阻害することができず、接種用量３．７５μＬでは、２００ＴＣＩＤ_５０ウイルスの細胞への感染を阻害することができないことが決定された。

実施例８：タウロリジンによるコロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の阻害
１．実験材料：
１．１ 細胞：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＶｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルス。
１．３ 試薬：ＤＭＥＭ培地、０．２５％トリプシン、ＦＢＳ、ＰＢＳ（ｐＨ＝７．０）；
１．４ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 細胞培養：Ｖｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞を蘇生させ、連続的に３世代継代し、よく増殖した細胞を実験研究に使用した。

２．２ ウイルス培養：保存されたウイルス液を氷上でゆっくり解凍し、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞の単層に接種し（２４時間以下）、７２～９６時間培養を継続し、細胞の病理学的状態に応じてウイルス液を回収した。また、ＴＣＩＤ_５０／１００μＬを計算単位として使用して、ウイルス含有量を決定した。

２．３タウロリジンの阻害効果
薬物及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖したＶｅｒｏ－Ｅ６細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、９６ウェルプレートに１ウェルあたり１０^５個の細胞を播種し、薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。２００ＴＣＩＤ_５０のＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをタウロリジン（２０μｇ／ｍＬのタウロリジン溶液、薬物用量は５０μＬ、２５μＬ、１２．５μＬ、７．５μＬ、３．７５μＬとした）と混合し、次いでコーティングされた９６ウェルに接種した。さらに、ブランク細胞対照及びタウロリジン細胞毒性対照を設け、３回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ_２インキュベーターに入れ、培養を継続し、細胞変性の変化を観察した。

２．４ Ｖｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞におけるタウロリジンによるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２のウイルス量の阻害
薬剤及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖したＶｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、６ウェルプレートに１ウェルあたり１０^６個の細胞を播種し、薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種１２時間以内に行った。１００ＴＣＩＤ_５０のＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをタウロリジンと混合し、次いでコーティングした６ウェルプレートに播種し、２％タウロリジン溶液及び薬物の用量は、５０μＬ及び２５μＬの用量を有していた。さらに、ブランク細胞対照及びウイルス対照も設け、６回繰り返した。播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ２インキュベーターに入れ、２４時間培養を継続した後、全細胞（上清を含む）中のウイルスＲＮＡを回収し、ウイルス量を測定した。

２．５ Ｖｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞におけるタウロリジンによるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の複製阻害
薬剤及びウイルスを混合し、細胞に同時に接種した。よく増殖したＶｅｒｏ－Ｅ６及びＨｕｈ７細胞をトリプシンで消化して細胞量を計算し、１２ウェルプレートに１ウェルあたり１０^６個の細胞を播種し、薬物効果研究を細胞が単層状態にある接種の１２時間以内に行った。１００ＴＣＩＤ_５０のＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２ウイルスをタウロリジン（２０μｇ／ｍＬのタウロリジン溶液、薬物用量はそれぞれ５０μＬ及び２５μＬとした）と混合し、次いでコーティングされた１２ウェルプレートに播種した。さらに、ウイルス対照ウェル（ＤＭＳＯ処理）も設け、播種した細胞プレートを３７℃のＣＯ_２インキュベーターに入れ、２４時間培養を継続し、次いでβ－アクチンを対照として用い、全細胞抽出物をウエスタンブロットによって分析した。ウイルスＮＰタンパク質の陽性発現が決定された。

３．実験結果
ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に対するＴＲＤの抗ウイルス効果をさらに調査するために、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞でのウイルス接種実験を行った。ウイルス増幅の結果は、細胞を４８時間感染させた後、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２が、低い感染多重度（ＭＯＩ＝０．０５）及び高い感染多重度（ＭＯＩ＝０．１）の両方で優れた病原性を示すことを示し、２つのＭＯＩ値が非常に類似したウイルス産生をもたらすことが示された（図７Ａ）。したがって、以下の実験では、０．０５のＭＯＩを使用した。

ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の病原性とＴＲＤの用量との間に負の相関関係があったこと、すなわち、薬剤の用量が増加するにつれて、細胞に対するウイルスの病原性が徐々に減弱したことは注目に値する。新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に感染させた後（ＭＯＩ＝０．１）、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤでそれぞれ２４時間処理し、用量反応曲線をプロットした（図７Ｂ）。細胞増殖に対する薬剤の効果を考慮して、ＭＴＴ実験を行った。ＤＭＳＯ及び異なるＴＲＤ濃度で２４時間処理した後、ＭＴＴによってＶｅｒｏ－Ｅ６細胞の感受性を測定した。結果は、薬物用量が１００μｇ／ｍＬの場合でも、細胞増殖に有意な変化は見られないことを示した（図７Ｃ）。Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞に新型コロナウイルスＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２（１００ＴＣＩＤ_５０）及び（２００ＴＣＩＤ_５０）をそれぞれ感染させ、次いで細胞をＤＭＳＯ及びＴＲＤで２４時間処理し、ウイルス力価を測定した。実際、ＴＲＤは、１００ＴＣＩＤ_５０又は２００ＴＣＩＤ_５０ウイルスに関係なく優れた抗ウイルス効果を示した（図７Ｄ）。

その後、毒性の少ない用量（５０μｇ／ｍＬ）を選択して追跡研究を行った。重要なことに、ＴＲＤの投与は細胞中のウイルス核タンパク質（ＮＰ）の発現を有意に阻害することができ、この阻害は薬物用量と正の相関があった（図７Ｅ及び７Ｆ）。ビリオン中の各ＲＮＡ分子については多くのＮＰのコピーがあり、一定の免疫反応性バンドが異なる用量において検出可能だったため、投与開始時のウイルスタンパク質の存在により、処理中に観察された用量依存的な阻害効果が覆い隠されたことを反映している可能性がある。

次に、ＴＲＤの潜在的な抗ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２効果を評価した。ＶｅｒｏＥ６細胞に中国の武漢から単離されたＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の元の株を感染させ、６時間後に、それらをＴＲＤの非存在下で、又は低用量（２５μｇ／ｍＬ）及び高用量（５０μｇ／ｍＬ）のＴＲＤで培養した。対照群と比較して、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２はＶｅｒｏ－Ｅ６細胞の溶解を促進したが、この現象はＴＲＤの投与によって抑制され、高用量では限られた細胞変性効果しか検出できなかった（図８Ａ及び８Ｃ）。ウイルス粒子産生に対するＴＲＤの有意な阻害効果は、Ｖｅｒｏ－Ｅ６細胞培養上清中のウイルスＲＮＡコピー数の定量化によって実証され、すなわち、未処理の感染細胞と比較して、低用量ではほぼ２倍減少し、高用量では約１５，０００倍減少した（図８Ｂ及び８Ｄ）。

さらに、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の核タンパク質（ＮＰ）の蛍光標識により、ＴＲＤがＮＰ蓄積の有意な阻害を引き起こすことが確認された（図９Ａ及び９Ｃ）。ＤＭＳＯ対照のＶｅｒｏ－Ｅ６細胞では、低用量では約５７％の細胞がＮＰ陽性であったが、高用量ではＮＰ陽性細胞が約８．５％に有意に減少した（図９Ｂ）。一方、Ｈｕ７細胞では、低用量では約６０％の細胞がＮＰ陽性であったが、高用量ではＮＰ陽性細胞数が約１２％に有意に減少した（図９Ｄ）。これにより、ＴＲＤ投与が細胞に対するＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の病原性効果を有意に阻害し、この阻害効果が薬物用量と正の相関があることが示された。

４．結論
タウロリジンは、細胞レベルでＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に対して有意な阻害効果を有した。試験結果は、タウロリジンがＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって引き起こされる細胞変性を有意に阻害し、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２の予防及び治療のための薬剤の研究開発に使用することができることを示した。

ＴＲＤが細胞培養モデルにおいて有意な抗ウイルス効果を示したことを考慮して、この薬剤の治療特性をさらに評価するために動物モデルに焦点を移した。

実施例９：タウロリジン投与によるインフルエンザウイルス致死感染の耐性
１．実験材料
１．１ 実験動物：Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｖｉｔａｌ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．からのＢＡＬＢ／ｃマウス；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１ウイルス；
１．３ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法
２．１ インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。マウスの生活条件及び体重変化を観察し、記録した。

２．２ タウロリジンの阻害効果
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。接種後３日目及び５日目にそれぞれ、マウス肺組織を採取し、インフルエンザウイルスによって引き起こされるマウス肺指数に対するタウロリジンの影響を観察した。

２．３ タウロリジンによる肺のウイルス量の阻害
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。また、薬物処理後３日目及び５日目にマウス肺組織を採取し、そのウイルス量を測定した。

３．実験結果
異なる種間の追加の分極化処理用量については、異所測定方法及び種変換係数に基づくファクターバイファクター投与方法（factor-by-factor dose method）を使用した。生存率の改善がＵＩ１８２感染の治療中に失われた体重の量に関連していることが見出された（図１０Ａ及び１０Ｂ）。さらに、Ｈ３Ｎ２（図１１Ａ及び１１Ｂ）及びＨ５Ｎ１（図１１Ｅ及び１１Ｆ）でも同様の結果が見出された。

インフルエンザウイルス感染後の宿主に対するＴＲＤ治療の保護効果をさらに研究するために、ＵＩ８２株への感染後３日目及び５日目の肺組織におけるウイルス力価を調べた。結果は、ＴＲＤ治療後にウイルス力価が有意に低下したことを示した（図１０Ｃ及び１０Ｄ）。この効果は、Ｈ３Ｎ２株（図１１Ｃ及び１１Ｄ）又はＨ５Ｎ１株（図１１Ｇ及び１１Ｈ）に感染した後も持続した。ウエスタンブロットの結果によっても、ＴＲＤの投与がマウスの肺組織におけるウイルスの複製を有意に阻害することが確認された（図１０Ｅ及び１０Ｆ）。これらの結果は、ＴＲＤ治療により、インフルエンザウイルス感染時の生存率が有意に増加し、死亡率が有意に低下したことを示した。

４．結論
対照群と比較して、インフルエンザウイルスを接種したマウスは有意に体重が減少した。ウイルス対照群と比較して、薬物治療群のマウスの体重減少傾向は有意に小さくなり、マウスの生存期間は有意に延長された。試験結果は、タウロリジンがインフルエンザウイルスに感染したマウスの生存期間を延長し、インフルエンザウイルスの予防及び治療に使用することができることを示した。

実施例１０：マウスにおけるインフルエンザウイルスの病原性に対するタウロリジンの効果
１．実験材料
１．１ 実験動物：Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｖｉｔａｌ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．からのＢＡＬＢ／ｃマウス；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＨ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１ウイルス；
１．３ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法
２．１ インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。

２．２ タウロリジンの阻害効果
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。接種後３日目及び５日目にそれぞれ、マウス肺組織を採取し、インフルエンザウイルスによって引き起こされるマウス肺指数に対するタウロリジンの影響を観察した。計算式は、肺指数＝（マウス肺組織重量÷マウス体重）×１００％とした。

２．３ タウロリジンはインフルエンザウイルスによるマウスの肺の損傷を改善する
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。薬物治療後５日目にマウスの肺組織を固定し、組織病理学的変化を検出した。

３．実験結果
肺指数レベルは、拘束性肺疾患の重症度を決定するための重要な指標として使用することができた。したがって、３日目及び５日目を含む、それぞれＴＲＤ投与の前後におけるマウスの肺指数への影響を分析した。インフルエンザウイルス感染が肺指数の増加をもたらす一方、Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２（図１２Ａ及び１２Ｂ）、Ｈ３Ｎ２（図１２Ｃ及び１２Ｄ）、及びＨ５Ｎ１（図１２Ｅ及び１２Ｆ）株への感染後３日目及び５日目に、薬物治療が肺指数を有意に低下させることが見出された。これらの結果は、ＴＲＤの投与がマウスの肺組織に正の保護効果を有することを示している。

さらに、薬物治療は、マウスの肺に対するインフルエンザウイルスの損傷を大幅に改善することができた（図１３）。これらの観察結果は、インビトロで観察された抗ウイルス効果が実際にインビボで生じたこと、及び少なくとも抗菌薬ＴＲＤが屋内ウイルス空気感染症の治療において潜在的な抗ウイルス効果を有することを明確に示唆している。

４．結論
対照と比較して、タウロリジンの投与は、マウスの肺に対して有意な保護効果を有し、インフルエンザウイルスによって引き起こされる肺組織の病理学的損傷を改善することができ、インフルエンザウイルスの予防及び治療に使用することができた。

実施例１１：ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２モデルマウスの予後に対するタウロリジン投与の効果
１．実験材料：
１．１ 実験動物：Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｖｉｔａｌ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．からのＢＡＬＢ／ｃ及びＣ５７ＢＬ／６Ｎマウス；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２（Ｃ５７ＭＡ１４株）；
１．３ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 新型コロナウイルス（Ｃ５７ＭＡ１４）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。マウスの生活条件及び体重変化を観察し、記録した。

２．２ タウロリジンの阻害効果
新型コロナウイルス（Ｃ５７ＭＡ１４株）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。また、接種後３日目及び５日目にそれぞれ、マウスの肺組織を採取し、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって引き起こされるマウスの肺指数に対するタウロリジンの影響を観察した。計算式は、肺指数＝（マウス肺組織重量÷マウス体重）×１００％とした。

２．３ タウロリジンはインフルエンザウイルスによるマウスの肺の損傷を改善する
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。薬物治療後５日目にマウスの肺組織を固定し、組織病理学的変化を検出した。

３．実験結果
我々の研究チームは、アカゲザル、カニクイザル、マウス、ゴールデンハムスター、イヌ、ネコ、センザンコウなどを含む、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２動物感染モデルの構築に初期段階で成功した。前の結果により、ＴＲＤがインビトロでＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２に対して優れた阻害効果を有することが示された。インビボでのＴＲＤの抗ウイルス効果をさらに評価するために、マウス感染モデル（ＢＡＬＢ－Ｃ雌マウス及びＣ５７ＢＬ雄マウスを含む）を実行した。異所性測定方法及び種変換係数に基づくファクターバイファクター投与方法を用いて、注射によってモデル動物に投与した。実験結果は、ウイルス感染後２日目にマウスは体重が減少し始め、３日目にマウスは死亡し、７日目には死亡率が１００％に達したことを示した（図１４）。上記の結果により、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２株がマウスに致死感染を誘発することができたことが示された。重要なことに、ＴＲＤの投与は、ＢＡＬＢ－Ｃマウス（図１４Ａ）及びＣ５７ＢＬマウス（図１４Ｃ）の両方においてウイルス感染マウスの体重減少を阻害した。さらに、ＴＲＤの投与は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染中の致死率からマウスを有意に保護し、保護率はＢＡＬＢ－Ｃマウスで９２．３１％であり（図１４Ｂ）、Ｃ５７ＢＬマウスで８４．６２％であった（図１４Ｄ）。

ＴＲＤの抗ウイルス効果と時間との関係を調査するために、投与後３日目及び５日目に感染マウスをサンプリングして分析した。ウイルス粒子産生に対する薬物治療の有意な阻害効果が、マウス肺組織におけるウイルスＲＮＡコピー数の定量化によって確認された（図１５Ａ及び１５Ｃ）。特に、ＴＲＤの投与は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後の肺組織に対して優れた保護効果を示した（図１５Ｂ及び１５Ｄ）。通常、ウイルス感染によって宿主自身の免疫防御が生じ、このことは、ウイルス感染後４日目よりもウイルス感染後６日目の肺組織におけるウイルスＲＮＡの産生が少ないことを良好に説明している。それでも、ＴＲＤの投与は、肺におけるウイルスの産生に対して有意な抑制効果を有した。

４．結論
対照群と比較して、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２を接種したマウスは体重が有意に減少した。薬物治療は、マウスを体重減少から保護することができ、マウスの生存期間を延長することができた。試験結果により、タウロリジンがマウスの肺におけるウイルスＲＮＡコピーの数を減少し、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２マウスの生存期間を改善することができ、したがって、新型コロナウイルスの予防及び治療に使用することができることが示された。

実施例１２：タウロリジンはマウスのＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染の予後を改善する
１．実験材料：
１．１ 実験動物：Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｖｉｔａｌ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．からのＢＡＬＢ／ｃ及びＣ５７ＢＬ／６Ｎマウス；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２（Ｃ５７ＭＡ１４株）；
１．３ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 新型コロナウイルス（Ｃ５７ＭＡ１４株）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。

２．２ タウロリジンの阻害効果
新型コロナウイルス（Ｃ５７ＭＡ１４株）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。接種後３日目及び５日目にマウスの採血を行い、白血球の総数を数えた。

３．実験結果
次に、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後の臨床転帰に対するＴＲＤの効果をさらに評価した。予想した結果と一致して、ＢＡＬＢ－Ｃマウスの薬物治療後３日目（図１６Ａ）及び５日目（図１６Ｂ）に、血清中のリンパ球の割合が増加し、好中球の割合が減少することが見出された。この現象はＣ５７ＢＬマウスでも生じた（図１６Ｃ及び１６Ｄ）。

さらに、結果は、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染が宿主血清中の血小板数の急激な増加をもたらすことも示した。しかしながら、ＢＡＬＢ－Ｃマウスでの薬物治療から３日後及び５日後に、血清中の血小板の数は有意に減少した（図１７Ａ及び１７Ｂ）。重要なことに、Ｃ５７ＢＬマウスでも同じ結果が得られた（図１７Ｃ及び１７Ｄ）。これらの所見により、ＴＲＤ治療後に病原性新型コロナウイルスから重要な生物学的表現型が生じることが示された。

４．結論
非投与群と比較して、タウロリジンの投与は、マウスのリンパ球及び単球の数を有意に増加させることができ、ウイルス感染後の好中球及び血小板の総数を有意に減少させることができ、これにより、タウロリジンが新型コロナウイルス感染の予後全体を軽減及び改善することができることが示唆された。

実施例１３：タウロリジンは、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって引き起こされるマウスの肺組織の損傷を改善する
１．実験材料：
１．１ 実験動物：Ｂｅｉｊｉｎｇ Ｖｉｔａｌ Ｒｉｖｅｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ａｎｉｍａｌ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ Ｃｏ．，Ｌｔｄ．からのＢＡＬＢ／ｃ及びＣ５７ＢＬ／６Ｎマウス；
１．２ 株：軍事獣医学研究所のウイルス学実験室からのＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２（Ｃ５７ＭＡ１４株）；
１．３ 器具及び消耗品：ピペット及びサポートチップ、１．５ｍＬ遠心管、アイスボックス、製氷機、生物学的安全キャビネット、二酸化炭素インキュベーター。

２．実験方法：
２．１ 新型コロナウイルス（Ｃ５７ＭＡ１４）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。

２．２ 新型コロナウイルスによって引き起こされるマウスの肺損傷に対するタウロリジンの改善
インフルエンザウイルス（Ｈ１Ｎ１－ＵＩ１８２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１）をウイルス対照群及び薬物治療群のマウスに接種し、薬物治療群のマウスにそれぞれ毎朝及び毎夕に異なる経路により薬物（１００ｕＬ／回（２ｍｇ））を連続的に投与した。薬物治療後５日目にマウスの肺組織を固定し、組織病理学的変化を検出した。

３．実験結果
前の結果により、ＴＲＤの投与が肺組織をＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２から保護し、ウイルス感染の臨床転帰を改善することができることが示された。ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって誘発される肺損傷におけるＴＲＤの役割をさらに決定するために、ＢＡＬＢ－Ｃ及びＣ５７ＢＬマウスに鼻腔内注入によりウイルスを接種し、２４時間後にＴＲＤを投与し、投与後３日目及び５日目に肺組織を採取した（図１８Ａ）。結果は、ウイルス感染が肺組織内に大きな領域のうっ血を引き起こし、深刻な病理学的症状をもたらしたことを示した。重要なことに、この現象はＴＲＤの投与によって逆転した（図１８Ｂ）。

ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって誘発される宿主組織（肺、肝臓、脾臓、及び腎臓を含む）の損傷の改善又は治療におけるＴＲＤの役割をさらに決定するために、ウイルスＴＲＤの鼻腔内注入によりＢＡＬＢ－Ｃ及びＣ５７ＢＬマウスに接種した。２４時間後にＴＲＤを投与し、投与後７日目にマウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓を採取した。ＨＥ染色の結果は、ウイルス感染後、肺、肝臓、脾臓、及び腎臓が大規模にうっ血し、深刻な病理学的症状をもたらしたことを示した。重要なことに、この現象はＴＲＤの投与後に有意に逆転した（図１９）。さらに、病理学的分析は、ウイルス感染が組織の内部出血を引き起こすことを示した（黒色の矢印で示されている）。

薬物治療前後の組織病理学的発現の変化をさらに調査するために、ＢＡＬＢ－Ｃ及びＣ５７ＢＬマウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓におけるＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２核タンパク質ＮＰの発現変化を検出した。ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２感染後、ＮＰを発現する陽性細胞の割合は、マウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓で有意に増加した。特に、上記の現象はＴＲＤ治療によって抑制された（図２０）。これは、ＴＲＤの投与が組織でのウイルスのさらなる複製を効果的に阻害し、それにより、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２によって引き起こされる宿主組織の病理学的損傷を改善することを示した。

４．結論
タウロリジンは、新型コロナウイルスに感染したマウスの肺、肝臓、脾臓、及び腎臓の組織病理学的損傷を大幅に改善し、上記の組織のウイルス量を減少させることができ、これにより、この薬物が新型コロナウイルス感染を予防及び治療する効果を有することが示唆された。

上記の結果に基づき、タウロリジンは、インフルエンザウイルス及び新型コロナウイルス又は類似のＲＮＡウイルスに対して非常に効果的な阻害効果を有し、インフルエンザウイルス及び新型コロナウイルスに感染したマウスの生存期間を延長し、マウスの肺に対するウイルスの病原性の効果を改善することができ、これにより、タウロリジンがこの種のウイルスの予防及び関連する治療薬の研究開発に使用することができることが示唆された。

本明細書に記載された変更に加えて、本発明の様々な変更は、上記の説明から当業者には明らかであろう。そのような変更もまた、添付の特許請求の範囲内にあることが意図される。すべての特許、特許出願、学術論文、書籍、及び任意の他の刊行物を含む、本出願で引用される各参考文献は、参照によりその全体が本明細書に組み込まれる。
本発明は、下記の態様を含む：
〈態様１〉
抗ウイルス医薬組成物であって、
タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
組成物。
〈態様２〉
細胞におけるウイルスの複製及び／又は繁殖を阻害するための医薬組成物であって、
タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含み、
好ましくは、前記細胞は、哺乳動物細胞であり、好ましくは、前記哺乳動物は、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、げっ歯類、及び霊長類からなる群から選択され、好ましくは、前記哺乳動物は、ヒト、ネコ、ニワトリ、ブタ、又はイヌであり、好ましくは、前記細胞は、ヒト細胞又はニワトリ胚細胞である、
組成物。
〈態様３〉
ウイルスによって引き起こされる疾患又は感染症を予防及び／又は治療するための医薬組成物であって、
タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
組成物。
〈態様４〉
前記ウイルスが、インフルエンザウイルス、コロナウイルス、肺炎ウイルス、又はＨＩＶなどのＲＮＡウイルスであり、
好ましくは、前記インフルエンザウイルスが、インフルエンザＡウイルス、インフルエンザＢウイルス、又はインフルエンザＣウイルス、例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ２Ｎ２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１、Ｈ７Ｎ７、又はＨ９Ｎ２であり、
好ましくは、前記コロナウイルスが、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、ＣＣＶ、又はＭＨＶであり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２であり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＣＣＶであり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＭＨＶである、
態様１～３のいずれか一項に記載の組成物。
〈態様５〉
前記疾患又は感染症が、インフルエンザ、単純感染症、重症肺炎を含む肺炎、急性又は重症急性気道感染症、低酸素性呼吸不全、急性呼吸窮迫症候群、敗血症症候群、敗血症性ショック、及び新型コロナウイルス肺炎（ＣＯＶＩＤ－１９）からなる群から選択され、好ましくは、前記単純感染症が、発熱、咳、又は喉の痛みであり、
好ましくは、前記疾患又は感染症が、ＣＯＶＩＤ－１９である、
態様３に記載の組成物。
〈態様６〉
前記組成物が、希釈剤、吸収剤、湿潤剤、賦形剤、充填剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、及びそれらの任意の組み合わせなどの薬学的に許容される担体を含み、
好ましくは、前記組成物が、ＰＶＰ－ＫＦ－１７を含む、
態様１～５のいずれか一項に記載の組成物。
〈態様７〉
前記組成物が、注射剤、輸液剤、錠剤、カプセル剤、スプレー剤、エアゾール剤、又はリンス剤であり、
好ましくは、前記組成物が、単位剤形で存在し、好ましくは、前記組成物が、１～１０００ｍｇ（例えば、１～８００ｍｇ、１～５００ｍｇ、１～２００ｍｇ、１～１００ｍｇ、１～５０ｍｇ、１～２０ｍｇ、又は１～１０ｍｇ）のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
態様１～６のいずれか一項に記載の組成物。
〈態様８〉
ウイルス感染を阻害する方法における使用のための医薬組成物であって、
前記方法が、前記ウイルスに感染した細胞、前記ウイルスに感染しやすい細胞、又はそれを必要とする対象に、有効量の前記組成物を投与するステップを含み、
前記組成物が、タウロリジン又は誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくはその薬学的に許容される塩を含む、
組成物。
〈態様９〉
細胞におけるウイルスの複製及び／又は繁殖を阻害する方法における使用のための医薬組成物であって、
前記方法が、前記細胞を有効量の前記組成物と接触させるステップを含み、
前記組成物が、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含み、
好ましくは、前記細胞は、哺乳動物細胞であり、好ましくは、前記哺乳動物は、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、げっ歯類、及び霊長類からなる群から選択され、好ましくは、前記哺乳動物は、ヒト、ネコ、ニワトリ、ブタ、又はイヌであり、好ましくは、前記細胞は、ヒト細胞又はニワトリ胚細胞である、
組成物。
〈態様１０〉
ウイルスによって引き起こされる疾患又は感染症を予防及び／又は治療するための方法における使用のための医薬組成物であって、
前記方法が、それを必要とする対象に、有効量の前記組成物を投与するステップを含み、
前記組成物が、タウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
組成物。
〈態様１１〉
前記ウイルスが、インフルエンザウイルス、コロナウイルス、肺炎ウイルス、又はＨＩＶなどのＲＮＡウイルスであり、
好ましくは、前記インフルエンザウイルスが、インフルエンザＡウイルス、インフルエンザＢウイルス、又はインフルエンザＣウイルス、例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ２Ｎ２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１、Ｈ７Ｎ７、又はＨ９Ｎ２であり、
好ましくは、前記コロナウイルスが、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、ＣＣＶ、又はＭＨＶであり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２であり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＣＣＶであり、好ましくは、前記コロナウイルスが、ＭＨＶである、
態様８～１０のいずれか一項に記載の組成物。
〈態様１２〉
前記疾患又は感染症が、インフルエンザ、単純感染症、重症肺炎を含む肺炎、急性若しくは重症急性呼吸器感染症、低酸素性呼吸不全、急性呼吸窮迫症候群、敗血症症候群、敗血症性ショック、又は新型コロナウイルス肺炎（ＣＯＶＩＤ－１９）から選択され、好ましくは、前記単純感染症が、発熱、咳、又は喉の痛みであり、
好ましくは、前記疾患又は感染症が、ＣＯＶＩＤ－１９である、
態様１０に記載の組成物。
〈態様１３〉
前記組成物が、希釈剤、吸収剤、湿潤剤、賦形剤、充填剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、及びそれらの任意の組み合わせなどの薬学的に許容される担体を含み、
好ましくは、前記組成物が、ＰＶＰ－ＫＦ－１７を含む、
態様８～１２のいずれか一項に記載の組成物。
〈態様１４〉
前記組成物が、注射剤、注入剤、錠剤、カプセル剤、スプレー剤、エアゾール剤、又はリンス剤であり、
好ましくは、前記組成物が、単位剤形で存在し、好ましくは、前記組成物が、１～１０００ｍｇ（例えば、１～８００ｍｇ、１～５００ｍｇ、１～２００ｍｇ、１～１００ｍｇ、１～５０ｍｇ、１～２０ｍｇ、又は１～１０ｍｇ）のタウロリジン又はその誘導体、プロドラッグ、溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
態様８～１３のいずれか一項に記載の組成物。

Claims (13)

1. 細胞におけるウイルスの複製及び／又は繁殖を阻害するための医薬組成物であって、
   タウロリジン又はその溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含み、
   前記ウイルスが、インフルエンザウイルス又はコロナウイルスである、
   組成物。
2. 前記細胞は、哺乳動物の細胞である、請求項１に記載の医薬組成物。
3. 前記哺乳動物は、ウシ、ウマ、ヒツジ、ブタ、イヌ、ネコ、げっ歯類、及び霊長類からなる群から選択される、請求項２に記載の医薬組成物。
4. 前記細胞は、ヒト細胞又はニワトリ胚細胞である、請求項１に記載の医薬組成物。
   組成物。
5. ウイルスによって引き起こされる疾患又は感染症を予防及び／又は治療するための医薬組成物であって、
   タウロリジン又はその溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含み、
   前記ウイルスが、インフルエンザウイルス又はコロナウイルスである、
   組成物。
6. 前記インフルエンザウイルスが、インフルエンザＡウイルス、インフルエンザＢウイルス、又はインフルエンザＣウイルス、例えば、Ｈ１Ｎ１、Ｈ２Ｎ２、Ｈ３Ｎ２、Ｈ５Ｎ１、Ｈ７Ｎ７、又はＨ９Ｎ２であり、かつ／又は
   前記コロナウイルスが、ＳＡＲＳ－ＣｏＶ－２、ＣＣＶ、又はＭＨＶである、
   請求項１～５のいずれか一項に記載の医薬組成物。
7. 前記疾患又は感染症が、インフルエンザ、単純感染症、重症肺炎を含む肺炎、急性又は重症急性気道感染症、低酸素性呼吸不全、急性呼吸窮迫症候群、敗血症症候群、敗血症性ショック、及び新型コロナウイルス肺炎（ＣＯＶＩＤ－１９）からなる群から選択される、請求項５に記載の医薬組成物。
8. 前記単純感染症が、発熱、咳、又は喉の痛みである、請求項７に記載の医薬組成物。
9. 前記疾患又は感染症が、ＣＯＶＩＤ－１９である、請求項５に記載の医薬組成物。
10. 前記組成物が、希釈剤、吸収剤、湿潤剤、賦形剤、充填剤、結合剤、崩壊剤、界面活性剤、及びそれらの任意の組み合わせから選択される薬学的に許容される担体を含む、
    請求項１～９のいずれか一項に記載の医薬組成物。
11. 前記医薬組成物が、注射剤、輸液剤、錠剤、カプセル剤、スプレー剤、エアゾール剤、又はリンス剤である、請求項１～１０のいずれか一項に記載の医薬組成物。
12. 前記組成物が、単位剤形で存在する、請求項１１に記載の医薬組成物。
13. 前記医薬組成物が、１～１０００ｍｇ、１～８００ｍｇ、１～５００ｍｇ、１～２００ｍｇ、１～１００ｍｇ、１～５０ｍｇ、１～２０ｍｇ、又は１～１０ｍｇのタウロリジン又はその溶媒和物、若しくは薬学的に許容される塩を含む、
    請求項１２に記載の医薬組成物。