JP2018171065A - インビトロでの研究使用のための操作した組織、そのアレイ、およびその製造方法 - Google Patents
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Abstract
Description
本出願は、2011年9月12日に出願の米国特許出願第61/533,757号、2011年9月12日出願の米国特許出願第61/533,753号、および2011年9月12日出願の米国特許出願第61/533,761号の利益を主張し、これらすべては、それら全体が引用によって本明細書に組み込まれる。
特に他に定義されない限り、本明細書で使用される全ての技術的及び科学的用語は、本発明の属する当業者によって一般に理解されるものと同じ意味を有する。
組織工学は、臓器または組織の増大、修復、または置換を介して組織機能を回復、維持、改善する生物学的代替物の開発に向けて、工学とライフサイエンスの原理を適用し、組み合わせる学際的分野である。典型的な組織工学に対する基本的なアプローチは、生体適合性であり、最終的に生物分解性である環境(例えば、スキャフォールド)へと生細胞を播種し、その後、前駆細胞の集団が、移植後に標的組織を生成するように、さらに拡大する且つ成熟するように、この構成物をバイオリアクター内で培養することである。生物学的な細胞外マトリックス(ECM)を模倣する適切なスキャフォールドによって、発達中の組織は、幾つかの場合において、インビトロおよびインビボの成熟後に所望の臓器の形態と機能の両方を取り入れる。しかしながら、天然組織のような構造を有する十分に高い細胞密度を達成することは、スキャフォールドの全体にわたる細胞の分布および空間的配置を制御する能力が限定されるため、困難である。これらの限定によって、しばしば結果的に、機械的性質が乏しい及び/又は機能が不十分な組織または臓器がもたらされる。さらなる困難は、スキャフォールドの生物分解、残留ポリマーの捕捉、および製造プロセスの工業上のスケールアップに関係している。スキャフォールドがないアプローチが試みられた。現在のスキャフォールドがないアプローチは、いくつかの制限を受ける:
・ 1つ以上の層が、他の層とは組成的に又は構造的に異なる、または1つ以上の層が、互いに対して空間的に定義された位置で複数の細胞型を含む、多層構造などの、複雑な平面及び/又は層状の幾何学的形状は、しばしば、天然組織のような結果を再生可能な方法で達成するために、具体的な構造内に細胞型の明確で高分解性の配置を必要とする。
・ 尺度および幾何学的形状は、拡散及び/又は栄養供給に対する機能的な血管網のための必要条件によって限定される。
・ 組織の生存能力は、幾つかの場合において、拡散を限定し、栄養に対する細胞のアクセスを制限する制限物質によって損なわれる。
・ 細胞を含む組織及び/又は臓器を生成することができる。
・ 再形成する天然組織のような細胞間の相互作用によって、天然組織の、発達、恒常性機能、及び/又は病因内で見られる環境条件を模倣する。
・ 随意に、広範囲の複雑なトポロジーおよび幾何学的形状(例えば、多層構造、セグメント、シート、チューブ、嚢など)を有する、生きている、三次元の組織および化合物組織を達成する。
・ 製造の自動化または半自動化した手段と適合性があり、スケーラブルである。
幾つかの実施形態では、血管壁セグメントを含む、操作した組織の少なくとも1つの成分およびそのアレイが、バイオプリントされる。さらなる実施形態では、バイオプリントされた構成物は、三次元の送達装置(例えば、バイオプリンター)によって、(例えば、ヒドロゲル及び/又は多孔質膜で作られた)生体適合性のある表面上に、細胞溶液、細胞懸濁液、細胞を含むゲル剤またはペースト剤、細胞濃縮液、多細胞体(例えば、円柱、楕円体、リボンなど)、および随意に制限物質を含む、細胞の三次元の、自動化した、コンピューター支援の堆積に基づいて、急速なプロトタイピング技術を利用する方法で作られる。本明細書で使用されるように、幾つかの実施形態において、組織及び/又は臓器に言及するために使用されるときの、用語「操作した(engineered)」は、細胞、細胞溶液、細胞懸濁液、細胞を含むゲル剤またはペースト剤、細胞濃縮液、多細胞集合体、およびそれらの層が、コンピュータースクリプトに従うコンピューター支援のデバイス(例えば、バイオプリンター)によって、三次元構造を形成するために位置付けられる。さらなる実施形態では、コンピュータースクリプトは、例えば、1つ以上のコンピュータープログラム、コンピューターアプリケーション、またはコンピューターモジュールである。またさらなる実施形態では、三次元の組織構造は、幾つかの場合において、初期の形態形成で自己集合現象に類似した細胞または多細胞体のプリンティング後の融合を介して形成される。
本明細書には、幾つかの実施形態において、少なくとも1つの接着細胞型を含む、生きている、三次元の組織構成物が開示され、ここで、少なくとも1つの接着細胞型は、多層の構造を有する組織構成物を形成するために凝集される且つ融合される。さらなる実施形態では、組織構成物の少なくとも1つの成分は、バイオプリントされた。幾つかの実施形態では、組織は、血管壁セグメントである(例えば、実施例16および図12および13を参照)。それ故、本明細書にはまた、幾つかの実施形態において、操作された血管壁セグメントが開示され、前記操作された血管壁セグメントは:平滑筋細胞;および随意に、線維芽細胞及び/又は内皮細胞を含み;ここで、細胞は、互いに凝集され;ここで、血管壁セグメントは、バイオプリントされ、非管状である。他の実施形態では、組織は、気道のアナログである(例えば、実施例15および図10および11を参照)。幾つかの実施形態では、気道のアナログは:肺線維芽細胞、および随意に、平滑筋細胞及び/又は内皮細胞を含み、ここで、組織の少なくとも1つの表面は、小さな気管上皮細胞によって層状にされる。他の実施形態では、組織は、肝臓のアナログである(例えば、実施例13および19および図6のA−D、図7、図17のA−Bを参照)。さらなる実施形態では、肝臓組織のアナログは:肝細胞または肝細胞様の細胞、および随意に、胆管上皮細胞、および随意に、限定されないが、星細胞、内皮細胞、クッパー細胞、免疫細胞、または筋線維芽細胞を含む、非実質細胞型を含む。
天然組織は、組織の細胞および細胞外(すなわち、空所、細胞外マトリックス、タンパク性物質など)の成分によってもたらされた空間的および構成的なパターンの存在を特徴とする。三次元性を達成するために合成のスキャフォールドを展開させる(deploy)組織工学の方策に対する固有の課題は、天然組織の幾何学的および生物学的な特質の両方を再生することができないことである。現在まで、天然組織を模倣する密度で細胞の取り込みも可能にしながら、スキャフォールドの構造内に天然組織のような層状または平面の幾何学的形状を作り出す試みは、技術的な制限によって妨げられている。バイオプリンティングは、図18A−Fで例証される例に従って、細胞で構成されたバイオインクの空間的に定義された堆積を介して両方の固有の課題(平面/層状の幾何学的形状および細胞密度)を克服する。幾つかの実施形態では、平面の幾何学的形状は、複数のバイオインク製剤から作り出され、それによって、2つ以上の組織成分(すなわち、間質、上皮、血管、骨、軟骨、柔組織、皮質、骨髄、乳頭、小葉など)が、図18A−Cで述べられる例によって、x、y、及び/又はz平面において互いに相対的な定義された位置に各組織成分/細胞集団/バイオインク製剤を位置決めする方法で成形される。幾つかの実施形態では、平面の幾何学的形状は、バイオプリンティングによって生成される。幾つかの実施形態では、平面の幾何学的形状は、腺組織、癌組織、組織界面(例えば、骨:軟骨)、血管化した組織、ピラミッド形の組織、帯状の組織、または分葉状の組織の少なくとも1つの空間的要素を再現する。幾つかの実施形態では、平面の幾何学的形状は、空所を組み込む。さらなる実施形態では、平面の幾何学的形状内の空所は、血液、リンパ液、胆液、尿、分泌液などの、体液の少なくとも1つの要素を模倣する流体に適応している。さらなる実施形態では、空所は、随意に、非接着細胞型または体液由来成分(例えば、血液細胞、骨髄細胞、リンパ細胞、免疫細胞、癌細胞、血小板、タンパク質など)を包含する。またさらなる実施形態では、体液由来成分の非接着細胞型は、随意に、成形の前、間、または後に、平面の幾何学的形状の細胞を含む成分へと導入された非空所の成分として存在する。またさらなる実施形態では、非接着細胞型または体液由来成分は、細胞間の相互作用または分泌された因子に対する反応の結果として、空所から平面の幾何学的形状内の細胞を含む空間へと動員される。
本明細書には、幾つかの実施形態において、1つ以上の型の哺乳動物細胞を含む操作した組織が開示される。本明細書にはまた、幾つかの実施形態において、平滑筋細胞を含む操作した血管壁セグメント;および随意に、線維芽細胞及び/又は内皮細胞が開示される。他の実施形態では、組織は、気道のアナログである。幾つかの実施形態では、気道のアナログは:肺線維芽細胞、および随意に、平滑筋細胞及び/又は内皮細胞を含み、ここで、組織の少なくとも1つの表面は、小さな気管上皮細胞によって層状にされる。他の実施形態では、組織は、肝臓のアナログである。さらなる実施形態では、肝臓のアナログは:肝細胞または肝細胞様の細胞、および随意に、胆管上皮細胞、および随意に、限定されないが、星細胞、内皮細胞、クッパー細胞、免疫細胞、または筋線維芽細胞を含む、非実質細胞型を含む。
本発明の操作した組織で使用される細胞型は、当該技術分野に既知の任意の方法で適切に培養される。細胞および組織の培養の方法は、当該技術分野で公知であり、例えば、Freshney, R., Culture of Animal Cells: A Manual of Basic Techniques, Wiley (1987)に記載され、それらの内容は、そのような情報のための引用によって本明細書に組み込まれる。本発明と併用して適切に使用される、一般的な哺乳動物細胞の培養技術、細胞株、および細胞培養システムも、Doyle, A., Griffiths, J. B., Newell, D. G., (eds.) Cell and Tissue Culture: Laboratory Procedures, Wiley (1998)に記載され、それらの内容は、そのような情報のための引用によって本明細書に組み込まれる。
本明細書には、特定の実施形態において、血管壁セグメントを含む、操作した三次元の生体組織、そのアレイ、およびバイオプリントされた細胞を含む方法が開示される。幾つかの実施形態では、細胞は、バイオプリンターからバイオインクを堆積させる又は押し出すことによってバイオプリントされる。幾つかの実施形態では、「バイオインク」は、複数の細胞を含む、液体、半固体、または固体の組成物を含む。幾つかの実施形態では、バイオインクは、液体または半固体の細胞溶液、細胞懸濁液、または細胞濃縮液を含む。さらなる実施形態では、細胞溶液、細胞懸濁液、または細胞濃縮液は、液体または半固体(例えば、粘着性)の担体、および複数の細胞を含む。またさらなる実施形態では、担体は、本明細書に記載されるような、適切な細胞栄養培地である。幾つかの実施形態では、バイオインクは、バイオプリンティング前に多細胞の集合体へと随意に凝集する複数の細胞を含む。さらなる実施形態では、バイオインクは、複数の細胞を含み、特定の平面及び/又は層状の幾何学的形状を生成するためにバイオプリントされ;ここで、バイオインク内の個々の細胞の凝集は、バイオプリンティングの前、間、及び/又は後に起こる。幾つかの実施形態では、バイオインクは、1)固定量で複数の細胞を集めることによって作り出され;ここで、細胞成分は、全容積の少なくとも約30%および高々100%を占める。幾つかの実施形態では、バイオインクは、半固体または固体の多細胞の集合体または多細胞体を含む。さらなる実施形態では、バイオインクは、1)結果的にバイオインクをもたらすために、予め決められた割合で複数の細胞または細胞集合体を生体適合性の液体またはゲル剤と混合することによって、および2)所望の細胞密度および粘性を有するバイオインクを生成するために、バイオインクを圧縮する(compacting)ことによって生成される。幾つかの実施形態では、バイオインクの圧縮は、遠心分離、タンジェント流ろ過(「TFF」)、またはその組み合わせによって達成される。幾つかの実施形態では、バイオインクの圧縮は、結果的に、押し出し成形できる組成物をもたらし、多細胞の集合体または多細胞体の形成を可能にする。幾つかの実施形態では、「押し出し成形できる」は、ノズルまたはオリフィス(例えば、1つ以上の穴またはチューブ)を通して押し進める(forcing)(例えば、圧力下で)ことにより形作られることができることを意味する。幾つかの実施形態では、バイオインクの圧縮は、適切な密度まで細胞を育てることから起因する。バイオインクに必要な細胞密度は、使用されている細胞および生成されている組織または臓器に応じて異なる。幾つかの実施形態では、バイオインクの細胞は、凝集及び/又は接着される。幾つかの実施形態では、「凝集する」、「凝集した」、および「凝集」は、細胞、多細胞集合体、多細胞体、及び/又はそれらの層を結合する細胞間の接着特性を指す。さらなる実施形態では、前記用語は、「融合する」、「融合した」、および「融合」と交換可能に使用される。幾つかの実施形態では、バイオインクはさらに、支持材、細胞培養培地(あるいはその補足物)、細胞外マトリックス(あるいはその成分)、細胞接着剤、細胞死抑制剤、抗アポトーシス性薬剤、抗酸化剤、押出化合物、およびそれらの組み合わせを含む。
幾つかの実施形態では、バイオインクは、細胞培養培地を含む。細胞培養培地は、任意の適切な培地である。様々な実施形態では、適切な細胞培養培地は、限定しない例として、ダルベッコ燐酸緩衝生理食塩水、Earle's Balanced Salts、Hanks' Balanced Salts、Tyrode's Salts、オルシーバー液、Gey's Balanced Salt Solution、Kreb's−Henseleit Buffer Modified、Kreb's−Ringer Bicarbonate Buffer、Puck's Saline、ダルベッコ変法イーグル培地、ダルベッコ変法イーグル培地/栄養素F−12Ham、栄養素混合物F−10Ham(Ham’s F−10)、培地199、最少必須培地イーグル、RPMI−1640培地、Ames' Media、BGJb培地(Fitton−Jackson Modification)、Click’s培地、CMRL−1066培地、Fischer's培地、Glascow最少必須培地(GMEM)、Iscove変法ダルベッコ培地(IMDM)、L−15培地(Leibovitz)、McCoy's 5A変法培地、NCTC培地、Swim's S−77培地、Waymouth培地、William’s培地E、あるいはそれらの組み合わせを含む。幾つかの実施形態では、細胞培養培地は、変更されるか又は補足される。幾つかの実施形態では、細胞培養培地はさらに、アルブミン、セレン、トランスフェリン、フェチュイン、砂糖、アミノ酸、ビタミン、増殖因子、サイトカイン、ホルモン、抗生物質、脂質、脂質担体、シクロデキストリン、多血小板血漿、またはそれらの組み合わせを含む。
幾つかの実施形態では、バイオインクはさらに、細胞外マトリックスまたはその誘導体の1つ以上の成分を含む。幾つかの実施形態では、「細胞外マトリックス」は、細胞によって生成され、細胞から細胞外空間へと輸送されるタンパク質を含み、ここで、タンパク質は、組織を一緒に保持するための支持として機能し、引っ張り強度を提供し、及び/又は細胞シグナル伝達を促進する。細胞外マトリックス成分の例は、限定されないが、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、ヒアルロナート、エラスチン、およびプロテオグリカンを含む。例えば、幾つかの実施形態では、多細胞集合体は、様々なECMタンパク質(例えば、ゼラチン、フィブリノゲン、フィブリン、コラーゲン、フィブロネクチン、ラミニン、エラスチン、及び/又はプロテオグリカン)を含有する。ECM成分またはECM成分の誘導体は、随意に、多細胞集合体を形成するために使用される細胞ペーストに加えられる。細胞ペーストに加えられたECM成分またはECM成分の誘導体は、随意に、ヒトまたは動物のソースから精製されるか、または当該技術分野に既知の組換え方法によって生成される。あるいは、ECM成分またはECM成分の誘導体は、細長い細胞体中の細胞によって自然に分泌されるか、または細長い細胞体を作るために使用される細胞は、随意に、当該技術分野に公知の任意の適切な方法によって遺伝子操作されることで、1以上のECM成分またはECM成分の誘導体及び/又は1以上の細胞接着分子または細胞基質接着分子(例えば、セレクチン、インテグリン、免疫グロブリン、およびアドヘリン(adherins))の発現レベルを変化させることができる。ECM成分またはECM成分の誘導体は、多細胞集合体中の細胞の凝集を促進する。例えば、ゼラチン及び/又はフィブリノゲンは、細胞ペーストに適切に加えられ、多細胞集合体を形成するために使用される。フィブリノゲンは、トロンビンの付加によってフィブリンに転換される。
幾つかの実施形態では、バイオインクはさらに、押出化合物(すなわちバイオインクの押出特性を変更する化合物)を含む。押出化合物の例は、限定されないが、ゲル剤、ヒドロゲル、ペプチドヒドロゲル、アミノ酸ベースのゲル剤、界面活性剤ポリオール(例えばPluronic F−127またはPF−127)、熱応答性ポリマー、ヒアルロナート、アルギナート、細胞外マトリックス成分(およびその誘導体)、コラーゲン、他の生体適合性の天然または合成のポリマー、ナノファイバー、および自己集合性ナノファイバーを含む。幾つかの実施形態では、押出化合物は、物理的、化学的、または酵素的な手段によってバイオプリントした後に取り除かれる。(ときにゼリー剤とも呼ばれる)ゲル剤は、様々な方法で定義されてきた。例えば、米国薬局方は、ゲル剤を、液体がしみこんだ小さな無機粒子または大きな有機分子のいずれかで構成されている懸濁液から成る半固体系として定義している。ゲル剤は、単相系または二相系を含む。単相ゲルは、分散した高分子と液体との間に明らかな境界が存在しない方法で、液体全体に均一に分布する有機高分子からなる。幾つかの単相ゲルは、合成高分子(例えば、カルボマー)または天然ゴム(例えば、トラガカント)から調製される。幾つかの実施形態では、単相ゲルは、一般的に水性であるが、アルコールおよび油を用いても作成されるであろう。二相ゲルは、小さな別個の粒子のネットワークからなる。
幾つかの実施形態では、バイオインクは、多細胞体を含み、これはさらに、平滑筋細胞および内皮細胞を含む。さらなる実施形態では、平滑筋細胞と内皮細胞の割合は、任意の適切な割合である。またさらなる実施形態では、平滑筋細胞と内皮細胞の割合は、約90:10から約60:40までである。特定の実施形態では、多細胞体は、平滑筋細胞と内皮細胞を含み、平滑筋細胞と内皮細胞の比率は、約85:15である。別の特定の実施形態では、多細胞体は、平滑筋細胞と内皮細胞を含み、平滑筋細胞と内皮細胞の割合は、約70:30である。
幾つかの実施形態では、構成物または組織を形成するために使用される多細胞集合体は、操作した組織に含められるすべての細胞型(例えば、内皮細胞、平滑筋細胞、線維芽細胞など)を含み;このような例では、各細胞型は、血管壁セグメントなどの操作した組織を形成するために、(例えば、成熟の間に)適切な位置へと遊走する。他の実施形態では、構造を形成するために使用される多細胞集合体は、操作した組織に含められるすべての細胞型より少ない細胞型を含む。幾つかの実施形態では、各型の細胞は、多細胞集合体または組織の領域または層内に均一に分散される。他の実施形態では、各型の細胞は、多細胞集合体または組織の領域または層内の特定の領域に局在化する。
幾つかの実施形態において、本明細書には、任意の予め形成されたスキャフォールドが略ない、操作された、移植可能な組織および臓器が開示される。さらなる実施形態では、「スキャフォールド」は、ポリマースキャフォールドおよび多孔性ヒドロゲルなどの合成のスキャフォールド、予め形成された細胞外マトリックスの層、死細胞の層、および脱細胞化組織などの非合成のスキャフォールド、および操作した組織及び/又は臓器の物理的構造にとって不可欠である、および組織及び/又は臓器から取り除かれることができない、任意の他の種類の予め形成されたスキャフォールドを指す。またさらなる実施形態では、脱細胞化組織のスキャフォールドは、例えば、生きている間に生成したECMを残して、死滅される又は脱細胞化される細胞層などの、任意の方法における培養細胞によって生じた、脱細胞化した天然組織または脱細胞化した細胞物質を含む。
幾つかの実施形態では、本明細書には、血管壁セグメントを含む操作した組織のアレイが開示される。幾つかの実施形態では、「アレイ」は、複数の試験がサンプル上で行われることを可能にする、1つ以上の試験が複数のサンプル上で行われることを可能にする、またはその両方を可能にするように空間的に配置された、複数の要素の関連性を含む科学的ツールである。幾つかの実施形態では、アレイは、中スループットまたは高スループットのスクリーニングに関連付けられるものを含む、スクリーニング方法およびデバイスに適応しているか又は適合性がある。さらなる実施形態では、アレイによって、複数の試験が同時に行われる。さらなる実施形態では、アレイによって、複数のサンプルが同時に試験される。幾つかの実施形態では、アレイは、細胞のマイクロアレイである。さらなる実施形態では、細胞のマイクロアレイは、固体担体の表面上で生細胞の多重の照合(multiplex interrogation)を可能にする研究器具である。他の実施形態では、アレイは、組織のマイクロアレイである。さらなる実施形態では、組織のマイクロアレイは、アレイで集められた複数の個別の組織または組織サンプルを含み、これによって、複数の生化学的、代謝的、分子的、または組織学的な解析の実施が可能となる。
幾つかの実施形態では、血管壁セグメントを含む操作した組織、および本明細書に開示されるアレイは、インビボでのアッセイに使用するためのものである。幾つかの実施形態では、「アッセイ」は、有機サンプルまたは生体サンプル(例えば、細胞集合体、組織、臓器、有機体など)において、物質(例えば、化学物質、分子、生化学物、薬物など)の存在または活性を試験または測定するための手順である。さらなる実施形態では、アッセイは、定性的アッセイおよび定量的アッセイを含む。またさらなる実施形態では、定量的アッセイは、サンプル中の物質の量を測定する。
本明細書には、幾つかの実施形態において、生きている、三次元の組織構成物を構成するための方法が開示され、前記方法は、少なくとも1つの接着細胞型を含むバイオインクを、形態内へとまたは形態上へとバイオプリントする工程、およびバイオインクを生きている、三次元の組織構成物へと融合する工程を含む。さらなる実施形態では、組織構成物は、インビトロでの使用のためのものである。またさらなる実施形態では、組織構成物は、血管チューブではない。
幾つかの実施形態において、方法は、1つ以上の型の哺乳動物細胞を含む、凝集した多細胞の集合体を調製する工程を含む。幾つかの実施形態において、方法は、平滑筋細胞を含む、凝集した多細胞の集合体を調製する工程を含む。幾つかの実施形態において、方法は、内皮細胞を更に含む、凝集した多細胞の集合体を調製する工程を含む。例えば、実施例3、4、及び7を参照する。幾つかの実施形態において、方法は、繊維芽細胞を更に含む、凝集した多細胞の集合体を調製する工程を含む。例えば、実施例5及び6を参照する。
多くの方法は、所望の三次元構造をもたらすため、多細胞の集合体を支持体上に置くのに適切である。例えば、幾つかの実施形態において、多細胞の集合体は、互いに接触して手作業で配置され、ピペット、ノズル、又は針からの押し出しにより適所に堆積され、又は、バイオプリンターなどの自動のコンピューター支援されたデバイスによって位置付けられる。
多くの方法は、凝集した哺乳動物細胞構成物の1つ以上の外部表面上に、細胞の1つ以上の層を適用するのに適切である。例えば、幾つかの実施形態において、細胞の層の適用は、細胞の懸濁液、シート、単層、又は融合した集合体により、前述の凝集した多細胞の集合体の1つ以上の表面をコーティングする工程を含む。様々な実施形態において、凝集した哺乳動物細胞構成物の1、2、3、4、又はそれ以上の表面が、コーティングされる。
幾つかの実施形態において、多細胞の集合体がインキュベートされる。更なる実施形態において、インキュベーションは、多細胞の集合体が血管壁セグメントなどの組織に付着及び/又は凝集することを可能にする。幾つかの実施形態において、多細胞の集合体は、細胞培養環境(例えばペトリ皿、細胞培養フラスコ、バイオリアクター等)で組織を形成するために凝集する。更なる実施形態において、多細胞の集合体は、多細胞の集合体に含まれる細胞型の増殖を促進するのに適切な条件を備える環境で組織を形成するために凝集する。1つの実施形態において、多細胞の集合体は、付着及び/又は凝集を促進するための要因及び/又はイオンを含む細胞培養培地の存在下で、約5%のCO2を含む湿った大気中で、約37℃でインキュベートされる。他の実施形態において、多細胞の集合体は、0.1%乃至21%のO2を含む環境において維持される。
幾つかの実施形態において、方法は、操作した組織の生存度を増加させるための工程を更に含む。更なる実施形態において、これらの工程は、制限物質の一時的又は半恒久的な格子を介して、組織と培養液の間の直接的な接触を提供する工程を含む。幾つかの実施形態において、組織は、多孔性又は間隙のある物質において抑制される。少なくとも幾つかの操作した組織の細胞の栄養素への直接アクセスは、操作した組織の生存度を増加させる。
特定の実施形態において、本明細書には、生きている三次元の組織が開示され、ここで、前記組織の少なくとも1つの成分がバイオプリントされ;ここで、前記組織は血管チューブではない。幾つかの実施形態において、組織は、予め形成したスキャフォールドがほぼない。幾つかの実施形態において、組織は、バイオプリンティング時に予め形成したスキャフォールドがほぼない。幾つかの実施形態において、組織は、使用時に予め形成したスキャフォールドがほぼない。幾つかの実施形態において、組織の少なくとも1つの成分は、層状又は平面の幾何学的形状を含む。幾つかの実施形態において、組織は、1以上の側部上の生体適合性表面に固定される。更なる実施形態において、生体適合性表面は多孔質膜である。更なる実施形態において、組織は、1以上の側部上で、流体流によって引き起こされる剪断力にさらされる。幾つかの実施形態において、組織は、バイオプリンティング時にその最も小さな寸法で少なくとも約25μmである。更なる実施形態において、組織は、バイオプリンティング時にその最も小さな寸法で少なくとも約100μmである。また更なる実施形態において、組織は、バイオプリンティング時にその最も小さな寸法で少なくとも約250μmである。また更なる実施形態において、組織は、バイオプリンティング時にその最も小さな寸法で少なくとも約500μmである。幾つかの実施形態において、組織は、バイオプリンティング時にその最大の寸法で3.0cm未満である。幾つかの実施形態において、組織は平滑筋細胞と内皮細胞を含み、ここで、平滑筋細胞対内皮細胞の比率は、約90:10乃至約60:40である。幾つかの実施形態において、組織は平滑筋細胞と内皮細胞を含み、ここで、平滑筋細胞対内皮細胞の比率は約85:15である。幾つかの実施形態において、組織は平滑筋細胞と内皮細胞を含み、ここで、平滑筋細胞対内皮細胞の比率は約70:30である。幾つかの実施形態において、組織は平滑筋細胞と繊維芽細胞を含み、ここで、平滑筋細胞対繊維芽細胞の比率は、約90:10乃至約60:40である。幾つかの実施形態において、組織は、平滑筋細胞、繊維芽細胞及び内皮細胞を含み、ここで、平滑筋細胞対繊維芽細胞対内皮細胞の比率は、約70:25:5である。幾つかの実施形態において、組織はインビトロのアッセイでの使用のためのものである。更なる実施形態において、組織は薬物検査で使用するためのものである。また更なる実施形態において、組織は心血管系作用薬試験で使用するためのものである。幾つかの実施形態において、平滑筋細胞、繊維芽細胞、及び内皮細胞は、成体の分化細胞である。幾つかの実施形態において、平滑筋細胞、繊維芽細胞、及び内皮細胞は、成体の非分化細胞である。幾つかの実施形態において、平滑筋細胞はヒト平滑筋細胞である。更なる実施形態において、平滑筋細胞は、次の:血液、血管、リンパ管、消化管の組織、尿生殖器管の組織、脂肪組織、呼吸器官の組織、生殖器系の組織、中胚葉由来の組織、骨髄、及び臍の組織から成る群から選択される組織から生じた。幾つかの実施形態において、内皮細胞は、ヒト内皮細胞である。更なる実施形態において、内皮細胞は、次の:血液、血管、リンパ管、消化管の組織、尿生殖器管の組織、脂肪組織、呼吸器官の組織、生殖器系の組織、中胚葉由来の組織、骨髄、及び臍の組織から成る群から選択される組織から生じる。幾つかの実施形態において、繊維芽細胞は、非血管性繊維芽細胞である。他の実施形態において、繊維芽細胞は血管の外膜に由来する。幾つかの実施形態において、前記細胞型の1つ以上は、特定の脊椎動物被験体に由来する。更なる実施形態において、細胞は、心血管系に影響を及ぼす疾患又は疾病を有する、脊椎動物被験体に由来する。幾つかの実施形態において、特定の病状を模倣するために細胞が選択される。幾つかの実施形態において、特定の病状を模倣するために細胞が構成される。幾つかの実施形態において、特定の病状を模倣する方法で細胞が処理又は調節される。
<平滑筋細胞>
初期のヒト大動脈平滑筋細胞(HASMC;GIBCO/Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)を、37℃で5%のCO2にて10%のウシ胎仔血清(FBS)、100U/mLペニシリン、0.1mg/mLストレプトマイシン、0.25μg/mLのアムホテリシンB、0.01MのHEPES(全てInvitrogen Corp., Carlsbad, CA由来)、50mg/Lのプロリン、50mg/Lのグリシン、20mg/Lのアラニン、50mg/Lのアスコルビン酸、及び3μg/LのCuSO4(全てSigma, St. Louis, MOに由来)で補われた、低いグルコースのダルベッコ変法イーグル培地(DMEM;Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の中で維持し、拡張した。継代4と8の間のHASMCの集密的培養を、全ての研究において使用した。
初期のヒト大動脈内皮細胞(HAEC;GIBCO/Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)を、10%のFBS、1μg/mLのヒドロコルチゾン、10ng/mLのヒト表皮増殖因子、3ng/mLの塩基性線維芽細胞増殖因子、10μg/mLのヘパリン、100U/mLのペニシリン、0.1mg/mLのストレプトマイシン、及び0.25μg/mLのアムホテリシンB(全てInvitrogen Corp., Carlsbad, CAに由来)で補われた、培地199(Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の中で維持し、拡張した。細胞を、37℃及び5%のCO2にて、ゼラチン(ブタ血清から;Sigma, St. Louis, MO)をコーティングした、組織培養により処理したフラスコ上で成長させた。継代4と8の間のHAECの集密的培養を、全ての研究において使用した。
初期のヒト真皮線維芽細胞(HAEC;GIBCO/Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)を、37℃及び5%のCO2にて、2%のFBS、1μg/mLのヒドロコルチゾン、10ng/mLのヒト表皮増殖因子、3ng/mLの塩基性線維芽細胞増殖因子、10μg/mLのヘパリン、100U/mLのペニシリン、及び0.1mg/mLのストレプトマイシン(全てInvitrogen Corp., Carlsbad, CAに由来)で補われた、培地106(Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の中で維持し、拡張した。継代4と8の間のHDFの集密的培養を、全ての研究において使用した。
SMC様細胞を、吸引脂肪組織のコラゲナーゼ消化の後に隔離された細胞の接着性画分から生じさせた。この消化は、間質の血管の画分(SVF)として知られる細胞の集団をもたらす。SVFの細胞を、標準組織培養プラスチック上に蒔き、付着細胞を適切な培養条件と共に更に選択した。脂肪組織の吸引脂肪組織のSVFからのSMC様細胞を、37℃及び5%のCO2にて、10%のウシ胎仔血清(FBS)、100U/mLペニシリン、0.1mg/mLストレプトマイシン、0.25μg/mLのアムホテリシンB、0.01MのHEPES(全てInvitrogen Corp., Carlsbad, CA由来)、50mg/Lのプロリン、50mg/Lのグリシン、20mg/Lのアラニン、50mg/Lのアスコルビン酸、及び3μg/LのCuSO4(全てSigma, St. Louis, MOに由来)で補われた、高グルコースのダルベッコ変法イーグル培地(DMEM;Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の中で維持し、拡張した。継代3と8の間のSVFSMCの融合性の副次培養を、全ての研究において使用した。
間質の血管の画分(SVF)の内皮細胞を、本物の内皮細胞(EC)の初期の分離を発達させるために共通して使用される成長媒体において維持し、拡張した。特に、SVF−ECを、10%のFBS、1μg/mLのヒドロコルチゾン、10ng/mLのヒト表皮増殖因子、3ng/mLの塩基性線維芽細胞増殖因子、10μg/mLのヘパリン、100U/mLのペニシリン、及び0.1mg/mLのストレプトマイシンにより補われるM199において維持した。細胞を、37℃及び5%のCO2にて、組織培養により処置したフラスコ上で成長させた。継代3と8の間のSVF−ECの集密的培養を、全ての研究において使用した。
<2%及び4%(w/v)のNovoGel(商標)の溶液の調製>
(それぞれ2%又は4%に関して)1g又は2gのNovoGel(商標)(Organovo, San Diego, CA)を、50mLのダルベッコ燐酸緩衝生理食塩水(DPBS;Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の中に溶解した。簡潔に、DPBS及びNovoGel(商標)を、NovoGel(商標)が完全に溶けるまで持続的に撹拌すると共に、ホットプレート上で85℃に加熱する。NovoGel(商標)溶液を25分間、125℃で蒸気殺菌によって殺菌する。温度が65.5℃より上に維持される限り、NovoGel(商標)溶液は液相で残る。この温度以下で相転移が生じ、NovoGel(商標)溶液の粘性が増加し、NovoGel(商標)は固体のゲルを形成する。
NovoGel(商標)鋳型を、10cmのペトリ皿に適合したTeflon(登録商標)鋳型を使用して、円柱状のバイオインクのインキュベーションのために作り上げた。簡潔に、Teflon(登録商標)鋳型を、70%のエタノール溶液を使用し、45分間、鋳型をUV光にさらして、予め殺菌した。殺菌した鋳型を、10cmのペトリ皿(VWR International LLC, West Chester, PA)の上に置き、しっかりと付けた。このアセンブリ(Teflon(登録商標)鋳型+ペトリ皿)を垂直に維持し、45mLの予め暖めた無菌の2%のNovoGel(商標)溶液を、Teflon(登録商標)鋳型とペトリ皿の間の空間に注いだ。その後、NovoGel(商標)の完全なゲル化を可能にするため、アセンブリを1時間、室温で平面に置いた。ゲル化後、Teflon(登録商標)プリントを除去し、NovoGel(商標)鋳型を、DPBSを使用して2回洗浄した。その後、17.5mLのHASMC培養培地を、多型の円柱状のバイオインクをインキュベートするためのNovoGel(商標)鋳型に加えた。
多型の円柱状のバイオインクを調製するため、HASMC及びHAECを別々に集め、その後、予め決定した比率で混合した。簡潔に、培養培地を集密的培養フラスコから取り除き、細胞をDPBS(成長地域の1ml/5cm2)により洗浄した。10分間、トリプシン(成長地域の1ml/15cm2;Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の存在下でのインキュベーションによって、培養フラスコの表面から細胞を分離した。0.15%のトリプシンを使用してHASMCを分離し、一方で0.1%のトリプシンを使用してHAECを分離した。インキュベーション後、適切な培養培地をフラスコ(トリプシン容積に関して2Xの容積)に加えた。細胞懸濁液を6分間200gで遠心分離し、その後、上清の溶液の除去を達成した。細胞ペレットをそれぞれの培養培地において再懸濁し、血球計算器を使用して数えた。HASMCとHAECの適切な容積を、15%のHAEC及び残り85%のHASMC(全体の細胞集団の%として)を含む多型の細胞懸濁液を得るために組み合わせた。多型の細胞懸濁液を5分間200gで遠心分離し、その後、上清の除去を達成した。多型の細胞ペレットを、6mLのHASMC培養培地において再懸濁し、20mLのグラスバイアル(VWR International LLC, West Chester, PA)に移し、その後、60分間、及び37℃並びに5%のCO2で、150rpmで軌道のシェーカー上でインキュベーションを行った。これは、細胞が互いに集合し、細胞間接着を起こすことを可能にする。インキュベーション後、細胞懸濁液を15mL遠心分離管に移し、5分間200gで遠心分離した。上清培地の除去後、細胞ペレットを400μlのHASMC培養培地において再懸濁し、全ての細胞集団が確実に崩壊する様々な時間で、ピペットアップ及びピペットダウンした(pipetted up and down)。細胞懸濁液を、15mL遠心分離管の内部に置かれた0.5mL微量遠心管(VWR International LLC, West Chester, PA)へ移し、その後、非常に密でコンパクトな細胞ペレットを形成するため、4分間2000gで遠心分離した。上清培地を吸引し、細胞を、長さ50mmの円柱状のバイオインクを得るように吸入によってキャピラリーチューブ(OD 1.5mm、ID 0.5mm、L 75mm;Drummond Scientific Co., Broomall, PA)へ移した。キャピラリー内部の細胞ペースト剤を、37℃及び5%のCO2にて、20分間HASMC培地でインキュベートした。その後、円柱状のバイオインクを、キャピラリーを供給したプランジャーを使用して、キャピラリーチューブから、NovoGel(商標)鋳型(例えば、実施例2を参照)(HASMC培地により覆われる)の溝へと押し出した。円柱状のバイオインクを、37℃及び5%のCO2で24時間インキュベートした。
血管壁を模倣するセグメントを、NovoGel(商標)でコーティングしたウェルの内部で、又はマルチウェルプレート(例えば、6のウェルプレート)におけるCorning(登録商標)Transwell(登録商標)挿入物上に直接、NovoGel(商標)ベースプレート(100mmのペトリ皿の大きさ)上で、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用してバイオプリントした。このプロセスは、以下の3段階を含む:
多型の円柱状のバイオインクを調製するため、HASMC、HDF、及びHAECを別々に集め、その後、予め決定した比率(例えば、70:25:5のHASMC:HDF:HAECの比率)で混合した。簡潔に、培養培地を集密的培養フラスコから取り除き、細胞をDPBS(成長地域の1ml/10cm2)により洗浄した。10分間、トリプシン(成長地域の1ml/15cm2;Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の存在下でのインキュベーションによって、培養フラスコの表面から細胞を分離した。0.15%のトリプシンを使用してHASMCとHDFを分離し、一方で0.1%のトリプシンを使用してHAECを分離した。インキュベーション後、適切な培養培地をフラスコ(トリプシン容積に関して2Xの容積)に加えた。細胞懸濁液を6分間200gで遠心分離し、その後、上清の溶液の除去を達成した。細胞ペレットをそれぞれの培養培地において再懸濁し、血球計算器を使用して数えた。HASMC、HDF、及びHAECの適切な容量を組み合わせ、多型の細胞懸濁液を得た。多型の細胞懸濁液を5分間、200gで遠心分離し、その後、上清溶液の吸収を達成した。多型の細胞ペレットを、6mLのHASMC培養培地において再懸濁し、20mLのグラスバイアル(VWR International LLC, West Chester, PA)に移し、その後、60分間、及び37℃並びに5%のCO2で、150rpmで軌道のシェーカー上でインキュベーションを行った。これは、細胞が互いに集合し、細胞間接着を起こすことを可能にする。インキュベーション後、細胞懸濁液を15mL遠心分離管に移し、5分間200gで遠心分離した。上清培地の除去後、細胞ペレットを400μlのHASMC培養培地において再懸濁し、全ての細胞集団が確実に崩壊する様々な時間で、ピペットアップ及びピペットダウンした。細胞懸濁液を、15mL遠心分離管の内部に置かれた0.5mL微量遠心管(VWR International LLC, West Chester, PA)へ移し、その後、非常に密でコンパクトな細胞ペレットを形成するため、4分間2000gで遠心分離した。上清培地を吸引し、細胞を、長さ50mmの円柱状のバイオインク集合体を得るように吸入によってキャピラリーチューブ(OD 1.25mm、ID 0.266mm、L 75mm;Drummond Scientific Co., Broomall, PA)へ移した。キャピラリー内部の細胞ペースト剤を、37℃及び5%のCO2にて、20分間HASMC培地でインキュベートした。その後、円柱状のバイオインクを、キャピラリーを供給したプランジャーを使用して、キャピラリーチューブから、NovoGel(商標)鋳型(例えば、実施例2を参照)(HASMC培地により覆われる)の溝へと押し出した。円柱状のバイオインクを、37℃及び5%のCO2で、6乃至24時間インキュベートした。
血管壁を模倣するセグメントを、NovoGel(商標)でコーティングしたウェルの内部で、又はマルチウェルプレート(例えば、6のウェルプレート)におけるCorning(登録商標)Transwell(登録商標)挿入物上に直接、NovoGel(商標)ベースプレート(100mmのペトリ皿の大きさ)上で、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用してバイオプリントした。このプロセスは、以下の3段階を含む:
HASMC、HAEC、及びHDFaの培養をトリプシン処理し、数え、適正量で混合して、70:15:15の比率でHASMC:HDFa:HAECを含んだバイオインクを得た。多型の細胞懸濁液を回転振盪機上で60分間振り混ぜ、集めて、遠心分離した。266又は500μm(ID)のグラスマイクロキャピラリーへと細胞を引き抜き、その後、培地で覆われたNovoGel(商標)プレートへと押し出し、最小で6時間インキュベートした。
マルチウェルプレートのウェルの内部又はNovoGel(商標)ベースプレート(100mmのペトリ皿の大きさ)上のNovoGel(商標)ベッド上にプリントする場合、NovoGel(商標)シリンダーの第1層をバイオプリントした。その後、内部の空間が長さ8mm×幅1.25mmとなるよう、その上に、NovoGel(商標)ロッドを使用して箱をバイオプリントした。成熟した円柱状のバイオインク集合体を、箱の内部でのプリンティングのためバイオプリンターに乗せた。最後に、NovoGel(商標)シリンダーの第3層を、細胞の全長を覆う、又は頂部に格子/メッシュを作る第2の頂部の上にプリントした。プレートのウェルの内部のTranswell(登録商標)挿入物上にプリントする場合、以前に述べたNovoGel(商標)ロッドの第1層を除去した。バイオプリントした構成物をその後、適切な細胞培養培地で覆い、バイオインクの近接のセグメントが細胞の三次元のパッチを形成するために融合される間にインキュベートした。
多型のHASMC−HDFa−HAECバイオインクを含むバイオプリントした構成物を、1−7日間インキュベートして、構成物の成熟を可能にし、構成物の周囲へ選別するのに十分なHAECの時間を提供し、それにより、血管壁のセクションを模倣する。幾つかの試験において、三次元細胞のパッチを剪断力(即ち、拍動流)にさらし、HAEC選別のプロセスを支援した。
多型の円柱状のバイオインクを調製するため、SVF−SMC及びSVF−ECを別々に集め、その後、予め決定した比率で混合した。簡潔に、培養培地を集密的培養フラスコから取り除き、細胞をDPBS(成長地域の1ml/5cm2)により洗浄した。5乃至10分間、TrypLE(Invitrogen Corp., Carlsbad, CA)の存在下でのインキュベーションによって、培養フラスコの表面から細胞を分離した。インキュベーション後、適切な培養培地をフラスコに加えた、酵素活性をクエンチした。細胞懸濁液を6分間200gで遠心分離し、その後、上清の溶液の除去を達成した。細胞ペレットをそれぞれの培養培地において再懸濁し、血球計算器を使用して数えた。SVF−SMCとSVF−ECの適切な容積を、15%のSVF−EC及び残り85%のSVF−SMC(全体の細胞集団の%として)を含む多型の細胞懸濁液を得るために組み合わせた。多型の細胞懸濁液を5分間200gで遠心分離し、その後、上清の除去を達成した。多型の細胞ペレットを、6mLのSVF−SMC培養培地において再懸濁し、20mLのグラスバイアル(VWR International LLC, West Chester, PA)に移し、その後、60分間、及び37℃並びに5%のCO2で、150rpmで軌道のシェーカー上でインキュベーションを行った。これは、細胞が互いに集合し、細胞間接着を起こすことを可能にする。インキュベーション後、細胞懸濁液を15mL遠心分離管に移し、5分間200gで遠心分離した。上清培地の除去後、細胞ペレットを400μlのSVF−SMC培養培地において再懸濁し、全ての細胞集団が確実に崩壊する様々な時間で、ピペットアップ及びピペットダウンした。細胞懸濁液を、15mL遠心分離管の内部に置かれた0.5mL微量遠心管(VWR International LLC, West Chester, PA)へ移し、その後、非常に密でコンパクトな細胞ペレットを形成するため、4分間2000gで遠心分離した。上清培地を吸引し、細胞を、長さ50mmの円柱状のバイオインク集合体を得るように吸入によってキャピラリーチューブ(OD 1.25mm、ID 0.266mm、L 75mm;Drummond Scientific Co., Broomall, PA)へ移した。キャピラリー内部の細胞ペースト剤を、37℃及び5%のCO2にて、20分間SVF−SMC培地でインキュベートした。その後、円柱状のバイオインクを、キャピラリーを供給したプランジャーを使用して、キャピラリーチューブから、NovoGel(商標)鋳型(例えば、実施例2を参照)(SVF−SMC培地により覆われる)の溝へと押し出した。円柱状のバイオインクを、37℃及び5%のCO2で、6乃至12時間インキュベートした。
血管壁構成物を、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用し、1.5mLの2%(w/v)のNovoGel(商標)で既に覆われていた6つのウェルの培養皿のウェルへとバイオプリントした。円柱状のバイオインクを、85:15又は70:30のSMC:EC比率で、ヒト血管平滑筋細胞(SMC)及びヒト内皮細胞(EC)の混合物と共に調製した。バイオインクを、500μm又は266μmの内径(ID)のいずれかを備えたグラスマイクロキャピラリーチューブへの細胞ペレット(SMC:EC)の吸入によって生じさせた。その後、バイオインクシリンダーを、適切な培地で覆われたNovoGel(商標)鋳型へ押し出した。バイオプリンティング前に、バイオインクを6〜18時間保持した。SMCとECの混合物を含む多型のバイオインクを使用した。これらの実験において、バイオインク内のECをバイオインク凝集物の周囲へと選別し、結果として、ECで覆われ、且つSMCの豊富な構成物の壁を含む構成物をもたらした。このプロセスは、SMC及びECの被覆(例えば、推定上の中膜及び内膜)で構成された壁を含む血管壁構成物の発達をもたらした。構成物を、バイオプリンティングプロトコルを使用して培養ウェルの中心にバイオプリントし、培養ウェルを、適切な培地で満たし、成熟と評価のために構成物をインキュベーターに戻した。バイオプリンティング後、構成物を、培養培地の適正量(例えば、6つのウェルプレートの1つのウェルにつき4mL)で覆った。要するに、この実施例は、血管壁セグメント又は標準の大きさのマルチウェル培養プレート内の模倣物をバイオプリントするための、血管のSMC及びECの使用を記載する。結果として生じる血管壁セグメント又は模倣物は、外層、又は大部分又は単独でSMCで構成されるECと内部壁の層を特徴とする。
血管壁構成物を、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用し、1.5mLの2%(w/v)のNovoGel(商標)で既に覆われていた6つのウェルの培養皿のウェルへとバイオプリントした。細胞のバイオインクを、ヒト血管平滑筋細胞(SMC)と共に調製した。バイオインクシリンダーを、500μm又は266μmの内径(ID)のいずれかを備えたグラスマイクロキャピラリーチューブへの細胞ペレット(SMC:EC)の吸入によって生じさせた。その後、円柱状のバイオインク集合体を、適切な培地で覆われたNovoGel(商標)鋳型へ押し出した。バイオプリンティング前に、バイオインクを6〜18時間保持した。EC−濃縮物(1−1.5×105細胞/μl)を、前にバイオプリントしたSMC構造の頂部に直接バイオプリントし、構成物の第2層を形成した。このプロセスは、SMC及びECの被覆(例えば、推定上の中膜及び内膜)で構成された壁を含む血管壁構成物の発達をもたらした。バイオプリンティングプロトコルを使用し、構成物を培養ウェルの中心にバイオプリントした。バイオプリンティング後、構成物を、培養培地の適正量(例えば、6つのウェルプレートの1つのウェルにつき4mL)で覆い、成熟と評価のためにインキュベーターに戻した。要するに、この実施例は、血管壁セグメント又は標準の大きさのマルチウェル培養プレート内の模倣物をバイオプリントするための、血管のSMC及びECの使用を記載する。結果として生じる血管壁セグメント又は模倣物は、ECの外層、及び大部分又は単独でSMCで構成される内部壁を特徴とする。
血管壁を模倣するセグメントを、NovoGel(商標)でコーティングしたウェルの内部で、又はマルチウェルプレート(例えば、6のウェルプレート)におけるCorning(登録商標)Transwell(登録商標)挿入物上に直接、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用してバイオプリントした。このプロセスは、以下の3段階を含む:
ヒト大動脈平滑筋細胞(HASMC)の培養をトリプシン処理し、その後、回転振盪機上で60分間振り混ぜた。振り混ぜた後、細胞を集め、遠心分離し、266又は500μm(ID)のグラスマイクロキャピラリーへと吸引した。最後に、細胞を、培地で覆ったNovoGel(商標)プレートへ押し出し、最小で6時間インキュベートした。
パッチ(例えばセグメント)のバイオプリンティングの直前、ヒト大動脈の内皮細胞(HAEC)培養を、培地の1×106細胞/10μLの作動濃度(working concentration)でHAEC培地においてトリプシン処理し、数え、その後、再懸濁した。HAEC懸濁液を、バイオプリントしたパッチを層にするために利用されるバイオプリンターに置く。マルチウェルプレートのウェルの内部のNovoGel(商標)ベッド上にプリントする場合、NovoGel(商標)シリンダーの第1層をバイオプリントした。その後、内部の空間が長さ8mm×幅1.25mmとなるよう、その上に、NovoGel(商標)ロッドを使用して箱をバイオプリントした。成熟した円柱状のHASMCバイオインクを、箱の内部でのプリンティングのためバイオプリンターに乗せた。その後、懸濁液中のHAECをバイオプリンターによって清潔なマイクロキャピラリーに引き抜き、プリントしたパッチの4つの角の近くでプリントしたHASMC層の上に4回分配した。各ドロップは2.5μLの容積であった。第3層をプリントし始める前に、構成物を15−30分間インキュベートした。最後に、NovoGel(商標)シリンダーの第3層を、第2層の頂部にプリントし、頂部に格子/メッシュを作った。プレートのウェルの内部のTranswell(登録商標)挿入物上にプリントする場合、以前に述べたNovoGel(商標)ロッドの第1層を除去した。その後、バイオプリントした構成物を、適切な細胞培養培地で覆い、インキュベートした。
バイオプリントした構成物を、1−7日間インキュベートし、構成物が成熟して、HASMCパッチの上に均一に薄い単層を形成するのに十分な時間HAECを提供することを可能にした。幾つかの試験において、三次元細胞のパッチを剪断力(即ち、拍動流)にさらした。
血管壁を模倣するセグメントを、マルチウェルプレート(例えば、6のウェルプレート)におけるCorning(登録商標)Transwell(登録商標)挿入物上に直接、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用してバイオプリンティングした。このプロセスは、以下の4段階を含む:
ヒト成体の真皮線維芽細胞(HDFa)を、20,000細胞/cm2の密度でTranswell(登録商標)細胞膜上に蒔き、最低6日間培養した。これは、細胞が付着し、増殖し、Transwell(登録商標)細胞膜上で集密的な層になることを可能にした。
ヒト大動脈平滑筋細胞(HASMC)の培養をトリプシン処理し、回転振盪機上で60分間振り混ぜた。振り混ぜた後、細胞を集め、遠心分離し、266又は500μm(ID)のグラスマイクロキャピラリーへと吸引した。その後、細胞を、培地で覆ったNovoGel(商標)プレートへ押し出し、最小で6時間インキュベートした。
パッチ(例えばセグメント)のバイオプリンティングの直前、ヒト大動脈の内皮細胞(HAEC)培養をトリプシン処理し、数え、その後、培地の1×106細胞/10μLの作動濃度でHAEC培地において再懸濁した。HAEC懸濁液を、バイオプリントしたパッチを層にするために利用されるバイオプリンターに置く。Transwell(登録商標)膜上で成長したHDFaを有するマルチウェルプレートにおける培養培地を、完全に吸引し、プレートをバイオプリンターに移した。定義された空間が、膜上のHDFaの頂部で直接、長さ8mm×幅1.25mmとなるように、NovoGel(登録商標)ロッドを使用し、箱をバイオプリントした。成熟したHASMCバイオインクシリンダーを、箱の内部でのプリンティングのためバイオプリンターに乗せた。その後、懸濁液中のHAECをバイオプリンターによって清潔なマイクロキャピラリーチューブに引き抜き、プリントしたパッチの4つの角の近くでプリントしたHASMC層の上に4回分配した。各ドロップは2.5μLの容積であった。頂部のNovoGel(商標)ロッド層をプリントし始める前に、構成物を15−30分間インキュベートした。最後に、NovoGel(商標)シリンダーの頂部の層をプリントし、頂部に格子/メッシュを作った。その後、バイオプリントした構成物を、適切な細胞培養培地で覆い、インキュベートした。
バイオプリントした構成物を、1−7日間インキュベートし、構成物が成熟して、HASMCパッチの上に薄い単層を均一に形成するのに十分な時間HAECを提供することを可能にした。
円柱状のヒドロゲル要素を、三次元細胞シートの頂部表面の一部にわたって、NovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用してバイオプリントした。格子はシートに空間の制限を提供し、シートと周囲媒質の間の直接的な接触を可能にした。最初に、ヒドロゲル基層をバイオプリントした。次に、ヒドロゲル窓をバイオプリントし、長さ8mm×幅1.25mmの空間を定義する。第3に、三次元細胞シートを形成するため、細胞のバイオインクを、ヒドロゲル窓の内部でバイオプリントした。そして、第4に、ヒドロゲル格子構造をバイオプリントした。様々な実験において、ヒドロゲル要素の大きさは、直径およそ100μm乃至1mmであり、要素間の間隔はおよそ100μm乃至10mmであった。
培養した肝臓組織を、連続的な堆積機構を使用するNovoGen MMX Bioprinter(商標)(Organovo, Inc., San Diego, CA)を利用して、バイオプリントした。肝臓組織の三次元構造は、繰り返しの機能ユニット、この場合、六角形に基づいた。バイオインクは、押し出し化合物(界面活性剤ポリオール−PF−127)に閉じ込められた肝星細胞及び内皮細胞からなっていた。
PBSを使用して30%のPF−127溶液(w/w)を作った。4℃で維持された磁気撹拌プレートを使用して、PF−127粉末を、冷凍したPBSと混合した。完全溶解はおよそ48時間で生じた。
遠心分離後に3つの細胞濃度:50×106細胞/ml、100×106細胞/ml、及び200×106細胞/mLを達成するため、82%の星細胞(SC)及び18%のヒト大動脈内皮細胞(HAEC)並びにヒト成体の真皮線維芽細胞(HDFa)で構成された細胞懸濁液を、15mLチューブへ分離した。各細胞ペレットを30%のPF−127中で再懸濁し、バイオプリンターを使用して3ccのリザーバへ吸引した。510μmのディスペンスチップと共に、カプセル化細胞を、単一の六角形(図6Aを参照)又は六角形の碁盤目状の構成(図6Bを参照)へと、PDMSベースプレート上でバイオプリントした。各構成物はおよそ200μLの培地を受け、室温で20分間インキュベートし、構成物の完全性を評価した。
六角形の碁盤目状の実験のために、(4)までの連続する層をバイオプリントし、より多くの細胞物質が存在する、より高い構造をもたらした。生成後、各構成物は最初におよそ200μLの完全培地を受け、構成物の完全性を評価した。構成物を室温で20分間インキュベートし、その後、20mLの完全培地に沈めた。
細胞集団(均質又は不均質)を、円柱状のバイオインク、又はPluronicF−127(Lutrol,BASF)における細胞懸濁液の何れかとしてバイオプリントするために調製した。簡潔に、バイオインクの調製のため、組み換え型のヒトトリプシン(75μg/mL,Roche)又は0.05%のトリプシン(Invitrogen)の何れかを使用して、細胞を標準組織培養プラスチックから遊離した。酵素遊離の後、細胞を洗浄し、収集し、数え、所望の比率(即ち、50:50、肝臓の星細胞(hSC):内皮細胞(EC))で組み合わせ、遠心分離によってペレット状にした。その後、上清を細胞ペレットから取り除き、細胞混合物を、所望の直径(典型的に500μm又は250μm)、内径のグラスマイクロキャピラリーに吸引した。その後、この円柱状の細胞調製物を鋳型へ押し出し、バイオインク成熟のための経路を有する非細胞接着ヒドロゲル物質から生成した。その後、結果として生じるバイオインクシリンダーを、経験に基づいて測定された時間の間、典型的に2〜24時間、完全な細胞培養培地において培養した。
細胞パターン化、層化、又は配列を、バイオプリンティングを使用して達成した。バイオインクを含む不均質の(即ち、多型性の)細胞集団でバイオプリントすることにより、又はバイオインク(均質又は不均質の細胞集団)を高密度細胞ゲル或いは細胞懸濁液と組み合わせることにより、異なる細胞組織化を観察した。湿ったチャンバ(インキュベーター)中のこれら新生組織の構成物の成熟は、これらバイオプリントした新生組織において異なる細胞配列、構成、及び/又は分離の更なる確立をもたらした。
円柱状のバイオインクを、正常ヒト肺線維芽細胞(NHLF)、小さな気道上皮細胞(SAEC)、及びヒト大動脈内皮細胞(EC)により調製した。細胞を標準の研究所条件下で増殖し、細胞と同じ売り手から購入した培地において、又は、特定の細胞型に関して標準の細胞培養行為の助けになると、典型的に初期の文献において見出される成分を含む培地において、細胞を培養した。簡潔に、細胞を、陽イオン遊離リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄することにより標準組織培養プラスチックから遊離し、その後、0.1−0.05%のトリプシン(Invitrogen)に暴露した。その後、遊離した細胞を血清を含む培地中で洗浄し、収集し、数え、適切な比率で組み合わせて、遠心分離によってペレット状にした。典型的に、NHLFとECを、90:10乃至50:50のNHLF:ECの比率で混合した。その後、上清を取り除き、細胞ペレットをグラスマイクロキャピラリーへ吸引し、その後、それらをおよそ15〜20分間、完全培地に沈めた。その後、この円柱状のバイオインク構造を、直線流路を含む非細胞接着ヒドロゲルの鋳型へ押し出し、2〜18時間保持した。
ECが並んだ(EC−lined)微細血管特性の組織されたネットワークを含むNHLF壁、及び小さな気道上皮細胞を含む先端面を含む、層を成した細胞構造を備える、バイオプリントしたヒト肺組織構成物を上手く作り上げ、培養下で維持した。バイオプリントした構成物を、NHLF又はNHLF:ECのバイオインクシリンダー及びSAECのバイオプリントした層を有する多層の方法を使用して、生成した。肺の疾患プロセスに重大であると考えられるサイトカインによる刺激後、組織肥厚及びNHLF活性化を含む形態変化を観察した。
円柱状のバイオインクを、血管平滑筋細胞(SMC)、及び幾つかの実験において真皮線維芽細胞(Fb)により調製した。簡潔に、細胞を、陽イオン遊離リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄することにより標準組織培養プラスチックから遊離し、その後、0.05%のトリプシン(Invitrogen)に暴露した。その後、遊離した細胞を血清を含む培地中で洗浄し、収集し、数え、Fbが含まれる実験のため、適切な比率で組み合わせて、遠心分離によってペレット状にした。その後、上清を取り除き、細胞ペレットをグラスマイクロキャピラリーへ吸引し、その後、それらをおよそ15〜20分間、完全培地に沈めた。その後、この円柱状のバイオインク構造を、直線流路を含む非細胞接着ヒドロゲルの鋳型へ押し出し、2〜18時間保持した。
SMCの豊富な培地及びECが並んだ内膜を含む、層を成した細胞構造を備えるバイオプリントした血管壁セグメントを、上手く作り上げ、培養下で維持した。バイオプリントした構成物を、SMC又はSCM:Fbのバイオインクシリンダー及びECのバイオプリントした層を有する多層の方法を使用して、生成した。
細胞集団(均質又は不均質)を、任意に押し出し化合物を含んでいる円柱状のバイオインク集合体、細胞の集合体の懸濁液、又は細胞懸濁液/ペースト剤を含み、随意に押し出し化合物を含む、様々なバイオインクフォーマットを使用してバイオプリントするために調製した。簡潔に、円柱状バイオインクの調製のため、組み換え型のヒトトリプシン(75μg/mL,Roche)又は0.05%のトリプシン(Invitrogen)の何れかを使用して、細胞を標準組織培養プラスチックから遊離した。酵素遊離の後、細胞を洗浄し、収集し、数え、所望の比率(即ち、50:50、肝臓の星細胞(hSC):内皮細胞(EC))で組み合わせ、遠心分離によってペレット状にした。その後、上清を細胞ペレットから取り除き、細胞混合物を、所望の直径(典型的に500μm又は250μm)、内径のグラスマイクロキャピラリーに吸引した。その後、この円柱状の細胞調製物を鋳型へ押し出し、バイオインク成熟のための経路を有する非細胞接着ヒドロゲル物質から生成した。その後、結果として生じるバイオインクシリンダーを、経験に基づいて測定された時間の間、典型的に2〜24時間、完全な細胞培養培地において培養した。
バイオプリントした組織を、マルチウェル培養プレート、又はその後マルチウェルプレートに挿入されるマルチウェル培養挿入物内で上手く作り上げた。この方法は、随意に培養され、同じ又は独特な培養条件をつくるために処理される、複製したバイオプリントした組織の生成を可能にする。この方法は、バイオプリンティングプロセスの処理量及びサンプル生成において、著しい増加をもたらす(図14を参照)。
関連する不均質な(即ち、多型性の)細胞集団を含む円柱状のバイオインクを調製した。細胞の生理学的に関連する集団(例えば、正常ヒト肺線維芽細胞(NHLF)及び小さな気道上皮細胞(SAEC)、又は、血管平滑筋細胞(SMC)及び血管内皮細胞(EC))を、特定の比率で組み合わせ、適切なバイオインクを生成した。追加の実験において、肝星細胞(hSC)をECと結合し、肝臓組織を生成した。追加の実験において、肝星細胞(hSC)をECと結合し、肝臓組織を生成した。細胞を標準の研究所条件下で維持及び増殖し、細胞と同じ売り手から購入した培地において、又は、特定の細胞型に関して標準の細胞培養行為の助けになると、典型的に初期の文献において見出される成分を含む培地において、細胞を培養した。バイオインク調製のための細胞の処理は、以下の通りであった:簡潔に、細胞を、陽イオン遊離リン酸緩衝生理食塩水(PBS)で洗浄することにより標準組織培養プラスチックから遊離し、その後、0.1−0.05%のトリプシン(Invitrogen)に暴露した。その後、遊離した細胞を血清を含む培地中で洗浄し、収集し、数え、実行される刺激のアッセイ又は実験のため適切な比率で組み合わせて、遠心分離によってペレット状にした。その後、上清を取り除き、細胞ペレットをグラスマイクロキャピラリーへ吸引し、その後、それらをおよそ15〜20分間、完全培地に沈めた。その後、この円柱状のバイオインク構造を、直線流路を含む非細胞接着ヒドロゲルの鋳型へ押し出し、2〜18時間保持した。
Claims (52)
- 生きている、三次元の組織構成物であって、前記組織構成物は、少なくとも1つの接着細胞型を含み、前記少なくとも1つの接着細胞型は、生きている、三次元の組織構成物を形成するために凝集且つ融合され、前記組織構成物は血管チューブでない多層構造を有し、前記組織構成物はインビトロでの使用のためのものであり、但し、少なくとも1つの組織の成分がバイオプリントされたことを条件とする、ことを特徴とする組織構成物。
- 組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドが略ないことを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、平面の幾何学的形状を作り出すために、互いに対して空間的に配置される、複数の細胞型を含む少なくとも1つの層を含むことを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、複数の層であって、少なくとも1つの層が、層状の幾何学的形状を作り出すために、少なくとも1つの他の層とは組成的に又は構造的に異なる、複数の層を含むことを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 非接着細胞型をさらに含むことを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、生体適合性の表面に固定されることを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 生体適合性の表面は、多孔質膜であることを特徴とする、請求項6に記載の組織構成物。
- 生体適合性の表面は、生体適合性のヒドロゲル、タンパク質、化学薬品、ペプチド、抗体、または増殖因子、の1つ以上でコーティングされることを特徴とする、請求項6に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、1つ以上の側面で、流体流によって引き起こされる、せん断力にさらされることを特徴とする、請求項6に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、バイオプリンティング時に、その最小の寸法が少なくとも約25μmであることを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、バイオプリンティング時に、その最大の寸法が約3cmを超えないことを特徴とする、請求項10に記載の組織構成物。
- インビトロでのアッセイに使用するための、請求項1に記載の組織構成物。
- 薬物検査に使用するための、請求項12に記載の組織構成物。
- 接着細胞は、分化細胞であることを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 接着細胞は、非分化細胞であることを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 接着細胞は、肝臓、胃腸、膵臓、腎臓、肺、気管、血管、骨格筋、心臓、皮膚、平滑筋、結合組織、角膜、尿生殖器、乳房、生殖器、内皮、上皮、線維芽細胞、神経、シュワン、脂肪、骨、骨髄、軟骨、周細胞、中皮、内分泌、間質、リンパ、血液、内胚葉、外胚葉、および中胚葉、から成る群から選択される組織から生じたことを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、血管壁セグメントであることを特徴とする、請求項1に記載の組織構成物。
- 生きている、三次元の組織構成物のアレイであって、各組織構成物は、少なくとも1つの接着細胞型を含み、前記少なくとも1つの接着細胞型は、生きている、三次元の組織構成物を形成するために凝集且つ融合され、各組織構成物は多層構造を有し、各組織構成物はインビトロでの使用のためのものであり、但し、少なくとも1つの組織の成分がバイオプリントされたことを条件とする、ことを特徴とするアレイ。
- 各組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドが略ないことを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- 接着細胞は、肝細胞、胃腸細胞、膵細胞、腎細胞、肺細胞、気管細胞、血管細胞、骨格筋細胞、心細胞、皮膚細胞、平滑筋細胞、結合組織細胞、角膜細胞、尿生殖器細胞、乳房細胞、生殖細胞、内皮細胞、上皮細胞、線維芽細胞、神経細胞、シュワン細胞、脂肪細胞、骨細胞、骨髄細胞、軟骨細胞、周細胞、中皮細胞、内分泌組織由来の細胞、間質細胞、幹細胞、前駆細胞、リンパ細胞、血液細胞、内胚葉由来の細胞、外胚葉由来の細胞、中胚葉由来の細胞、およびそれらの組み合わせ、から成る群から選択されることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- アレイ内の各組織構成物は、略類似していることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- アレイ内の組織構成物の1つ以上は、独特であることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- アレイ内の1つ以上の個々の組織は、血管またはリンパ管、筋肉、子宮、神経、粘膜、中皮、網、角膜、皮膚、肝臓、腎臓、心臓、気管、肺、骨、骨髄、脂肪、結合組織、膀胱、乳房、膵臓、ひ臓、脳、食道、胃、腸、結腸、直腸、卵巣、前立腺、内分泌組織、内胚葉、中胚葉、また外胚葉、から成る群から選択されるヒト組織を表わすことを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- 各組織構成物は、生体適合性のマルチウェル容器のウェル中に存在することを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- ウェルは、生体適合性のヒドロゲル、タンパク質、化学薬品、ペプチド、抗体、または増殖因子、の1つ以上でコーティングされることを特徴とする、請求項24に記載のアレイ。
- 各組織構成物は、マルチウェル容器のウェル内の、多孔性の、生体適合性の膜上へと置かれたことを特徴とする、請求項24に記載のアレイ。
- マルチウェル容器は、自動化または半自動化の薬物スクリーニングのプロセスと適合性があることを特徴とする、請求項24に記載のアレイ。
- 各組織構成物は、生体適合性の表面に固定されることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- 生体適合性の表面は、多孔質膜であることを特徴とする、請求項28に記載のアレイ。
- 生体適合性の表面は、生体適合性のヒドロゲル、タンパク質、化学薬品、ペプチド、抗体、または増殖因子、の1つ以上でコーティングされることを特徴とする、請求項28に記載のアレイ。
- 各組織構成物は、1つ以上の側面で、流体流によって引き起こされる、せん断力にさらされることを特徴とする、請求項28に記載のアレイ。
- アレイ内の各組織構成物は、培養下で独立して維持されることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- アレイ内の2つ以上の個々の組織構成物は、可溶性因子を交換することを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- インビトロでのアッセイに使用するための、請求項18に記載のアレイ。
- 薬物検査で使用するための、請求項34に記載のアレイ。
- アレイ内の少なくとも1つの組織は、血管壁セグメントであることを特徴とする、請求項18に記載のアレイ。
- 生きている、三次元の組織構成物であって、前記組織構成物は、1つ以上の層を含み、ここで、各層は、1つ以上の細胞型を含有し、1つ以上の層は、生きている、三次元の組織構成物を形成するために凝集され、前記組織構成物は、
a.平面の幾何学的形状を作り出すために、互いに対して空間的に配置された、複数の細胞型を含む少なくとも1つの層;および
b.複数の層であって、少なくとも1つの層が、層状の幾何学的形状を作り出すために、少なくとも1つの他の層とは組成的に又は構造的に異なる複数の層、の少なくとも1つを有することを特徴とする組織構成物。 - 組織の少なくとも1つの成分は、バイオプリントされたことを特徴とする、請求項37に記載の組織構成物。
- 組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドが略ないことを特徴とする、請求項38に記載の組織構成物。
- インビトロでのアッセイに使用するための、請求項37に記載の組織構成物。
- 薬物検査に使用するための、請求項40に記載の組織構成物。
- 生きている、三次元の組織構成物を構成するための方法であって、前記方法は、
a.少なくとも1つの接着細胞型を含むバイオインクを、形態内へとまたは形態上へとバイオプリントする工程;および
b.バイオインクを、生きている、三次元の組織構成物へと融合する工程を含み;
但し、組織構成物は、インビトロでの使用のためのものであり、血管チューブではない、ことを特徴とする方法。 - 組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドがないことを特徴とする、請求項42に記載の方法。
- 前記形態は、バイオプリントされることを特徴とする、請求項42に記載の方法。
- 前記形態は、バイオインクで略同時にバイオプリントされることを特徴とする、請求項44に記載の方法。
- 前記形態を溶解する工程をさらに含むことを特徴とする、請求項42に記載の方法。
- 生きている、三次元の組織構成物を構成するための方法であって、前記方法は、
a.哺乳動物細胞を含む1つ以上の凝集した多細胞集合体を調製する工程;
b.i.平面の幾何学的形状を作り出すために、互いに対して空間的に配置された、複数の細胞型を含む少なくとも1つの層;および
ii.複数の層であって、少なくとも1つの層が、層状の幾何学的形状を作り出すために、少なくとも1つの他の層とは組成的に又は構造的に異なる複数の層、の少なくとも1つを形成するために、前記1つ以上の凝集した多細胞集合体を、支持体上へと置く工程;
c.前記1つ以上の多細胞集合体を凝集させ、生きている、三次元の組織構成物を形成するために、前記1つ以上の多細胞集合体をインキュベートする工程を含む、ことを特徴とする方法。 - 組織構成物の少なくとも1つの成分は、バイオプリントされたことを特徴とする、請求項47に記載の方法。
- 組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドがないことを特徴とする、請求項48に記載の方法。
- 生きている、三次元の組織構成物のアレイを構成する方法であって、前記方法は、
a.哺乳動物細胞を含む凝集した多細胞集合体を調製する工程;
b.前記凝集した多細胞集合体を支持体上へと置く工程であって、ここで、前記多細胞集合体は、組織アレイに適した形態で空間的に配置される工程;および
c.前記多細胞集合体を凝集させ、生きている、三次元の組織構成物を形成するために、前記多細胞集合体をインキュベートする工程、を含むことを特徴とする方法。 - 各組織構成物の少なくとも1つの成分は、バイオプリントされたことを特徴とする、請求項50に記載の方法。
- 各組織構成物は、バイオプリンティング時または使用時に、任意の予め形成されたスキャフォールドが略ないことを特徴とする、請求項51に記載の方法。
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