JP2008538901A - 癌胎児性抗原未熟型ラミニンレセプタータンパク質から誘導されるhla−2提示t細胞エピトープの同定およびそれらの使用 - Google Patents
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Abstract
【選択図】 図3A
Description
図2は、ILR1について、CD8、MHCクラスIまたはTCRを認識する抗体による標的細胞溶解の阻止を示している。
図3は、(A)1回目の実験、(B)2回目の実験で、HLA-A*02/ILR1に特異的なCTLがCLL患者の腫瘍細胞を死滅させることが示されている。
図4は、(A)1回目の実験、(B)2回目の実験で、HLA-A*02/ILR1に特異的なCTLがAML患者の腫瘍細胞を死滅させることが示されている。
図5Aは、ILR1特異的CTLによる、ペプチドパルスT2標的細胞の溶解の投与量依存性を示している。図5Aは、非放射性標的によるILR1特異的CTLの阻害を示している(非放射性標的阻害分析)。
図6は、ILR2に特異的なCTLによる種々のセルラインの認識を示している。
図7は、ILR2について、CD8、MHCクラスIまたはTCRを認識する抗体による標的細胞溶解の阻止を示している。
図8は、(A)1回目の実験、(B)2回目の実験で、HLA-A*02/ILR2に特異的なCTLがAML患者の腫瘍細胞を死滅させることを示している。
図9は、(A)1回目の実験、(B)2回目の実験で、HLA-A*02/ILR2に特異的なCTLがCLL患者の腫瘍細胞を死滅させることを示している。
図10Aは、ILR2特異的CTLによる、ペプチドパルスT2標的細胞の溶解の投与量依存性を示している。図10Bは、非放射性標的によるILR2特異的CTLの阻害を示している(非放射性標的阻害分析)。
図11は、TAP(transporter associated with antigen processing)欠損Tセルラインを用いるin vitro再構築分析を示しており、2つのペプチド(iLR1、iLR2)のみが、Flu 核タンパク質58-66と比較した場合、HLA-A*0201に対する強力な結合親和性を示している(図11AおよびB)。ILR3〜ILR14とインフルエンザウィルス(Flum1)由来の対照ペプチドとを比較すると、ILR1ペプチドとILR2ペプチドはHLA-A*02に対する良好な結合親和性を示している。
図12は、末梢血由来のA2/RPS-001およびA2/RPS-002特異的なCD8陽性リンパ球の増大を引き起こす微粒子(microsphere)の代表的な四量体分析を示している。健常HLA-A2陽性ドナーHBC-065のウェルあたり1×106CD8陽性濃縮PBMCを、若干の変更しながら前述のように、1ウェルで、抗CD28パルス高密度腫瘍抗原A*0201/RPS-001(上方パネル)また高密度腫瘍抗原A*0201/PRS-002(下方パネル)に結合した微粒子により、週に1度刺激した(Walter S, Herrgen L, Schoor O, Jung G, Wernet D, Buhring HJ, Rammensee HG, Stevanovic S.、最前線:較正されたMHC/抗CD28被覆ミクロスフィア上に発現したヒトCD8T細胞の所定の親和性、J Immunol. 2003年11月15;171(10):4974-8)。3度のin vitro刺激後、両方のウェルの細胞は、抗体CD8FITCパルス四量体A*0201/RPS-001APCとA*0201/RPS-002PEで染色した。細胞は、リンパ球集団上(左と中央のパネル)、またはCD8陽性リンパ球集団上(右のパネル)にゲート(gate)される。数はCD8陽性リンパ球内における四量体陽性のパーセンテージを示している。RPS-001=LLAARAIVAI (配列番号1); RPS-002 = ALCNTDSPL (配列番号2)
本発明を通して使用する略語は以下の通りである。
Ab: 抗体(Antibody)
Ag: 抗原(Antigen)
APC: 抗原提示細胞(antigen presenting cell)
CD: 分化クラスタ(Cluster of Differentiation)
cpm: 数/分(counts per minute)
DC: 樹状細胞(Dendritic Cell)
EBV:エプステイン-バーウィルス(Epstein-Barr Virus)
ESI: エレクトロスプレーイオン化(electrospray ionization)
HLA:ヒト白血球抗原(Human Leukocyte Antigen)
HPLC: 高速液体クロマトグラフィ(High Performance Liquid Chromatography)
IFN: インターフェロン(Interferon)
Ii: 不変鎖(invariant chain)(CD74)
IL: インターロイキン(Interleukin)
MALDI: マトリックス支援レーザ脱離/イオン化(matrix assisted laser desorption/ionization)
MHC: 主要組織適合抗原複合体(Major Histocompatibility Complex)
MS: 質量分析法(mass spectrometry)
OD450: 波長450 nmでの光学濃度(Optical Density at a wavelength of 450 nm)
PBMC: 末梢血単核細胞(Peripheral Blood Mononuclear Cells)
PCR: ポリメラーゼ鎖反応(Polymerase Chain Reaction)
PHA: フィトヘマグルチニン(Phytohemagglutinin)
SDS-PAGE: ドデシル硫酸ナトリウムポリアクリルアミドゲル電気泳動(Sodium Dodecyl Sulfate Polyacrylamide Gel Electrophoresis)
S.I.: 刺激インデックス(stimulation index)
TOF: 飛行時間(time of flight)
この研究で用いる全てのセルラインは、American Type Culture Collection(米国ヴァージニア州マナッサス)から得た。PBMC、CD34+前駆細胞、骨髄細胞および腫瘍試料は、インフォームドコンセントを行い、治験承認委員会の承認を得た後、健常ドナー、急性骨髄性白血病(AML)患者、慢性リンパ球性白血病(CLL)患者、および多発性骨髄腫(MM)患者からそれぞれ採取した。
MAM-6に対する抗体:スイス国Alexis Corp.、D-35305グリュンベルク、グラウスストラーセ10のAXXORA DEUTSCHLAND GmbHを通じて得た製品No. SIG-614、
BD HLA-A*02に対する抗体:PharmingenからのクローンBB7.2、カタログNo. 551230、
CD8に対する抗体:Beckman Coulterからのclone SFCI21Thy2D3 (T8)、Part. No. 6602139、
TCRに対する抗体:Beckman CoulterからのクローンBMA031、Part. No. IM1466、
CD4に対する抗体:Beckman CoulterからのクローンSFCI12T4D11 (T4)、Part. No. 6602138、
HMFG-1に対する抗体:Beckman Coulterからのクローン1.10F3、Part. No. IM0271
ペプチドFluM158-66 (GILGFVFTL)、HIV-Pol476-484 (ILKEPVHGV、ELISPOT分析における陰性コントロール)、msurv33 (LYLKNYRIA、T2結合分析における陰性コントロール、H2d、に特異的なネズミサバイビンペプチドエピトープ)、iLR159-68 (LLAARAIVAI)、iLR2146-154 (ALCNTDSPL)、iLR360-68 (LAARAIVAI)、iLR458-66 (LLLAARAIV)、iLR57-15 (VLQMKEEDV)、iLR650-58 (NLKRTWEKL)、iLR766-74 (VAIENPADV)、iLR8139-147 (YVNLPTIAL)、iLR9177-185 (MLAREVLRM)、iLR10249-257 (SEGVQVPSV)、iLR1118-26 (FLAAGTHLG)、iLR1257-66 (KLLLAARAIV)、iLR1367-76 (AIENPADVSV)、iLR14173-182 (LMWWMLAREV)は、Biosynthan(独国ベルリン)から購入した、純度90%以上のものであり、高速液体クロマトグラフィと質量分析法によって解析した。
ペプチドは、Fmoc/tBu法に従い、自動ペプチド合成装置EPS221(独国ランゲンフェルドのAbimed)で合成した。TFA/フェノール/エタンジチオール/チオアニソール/水(容量で、90/3.75/1.25/2.5/2.5)で1〜3時間処理することによって樹脂から除去した後(アルギニン含有ペプチド)、ペプチドをメチル-t-ブチルエーテルから沈殿させ、メチル-t-ブチルエーテルで1回洗浄し、ジメチルエーテルで2回洗浄後、凍結乾燥前に水に懸濁した。合成生成物は、HPLC(Varian star、独国ミュンヘンのZinsser analytics)、およびMALDI-TOF質量分析計(future、GSG;独国ブルフザール)で分析した。80%未満の純度のペプチドを調製用HPLCで精製した。
Casatiら(Casati C, Dalerba P, Rivoltini Lら)から採用したプロトコルを用いて、T2全細胞結合分析を実施した。アポトーシス阻害タンパク質サバイビンは、結腸癌患者において腫瘍特異的なCD8陽性とCD4陽性T細胞を誘導する(Cancer Res. 2003; 63, 4507-4515)。
健康なHLA-A*0201陽性の個体由来CTLを、いずれか(Zeis M, Siegel S, Schmitz Mら、サバイビンRNAトランスフェクト樹状細胞による血液腫瘍に対する細胞毒性Tリンパ球の誘導、J Immunol. 2003年; 170, 5391-5397)に開示のプロトコルを用いて産生した。AMLとCLLの患者から得た自己OFA/iLRペプチド特異的CTLの誘導のため、免疫磁気ビーズ(MACS(登録商標)、独国ベルギッシュ-グラッドバッハのMiltenyi)を用いてCD8陽性T細胞をPBMCから分離し、自己OFA/iLRペプチドパルス完全成熟DCで培養し、IL-2(1 ng/ml、独国ヴァイスキルシュのCellConcepts)の存在下で、自己ペプチドパルスPBMCで再刺激した。少なくとも再刺激の4週間後、CTL反応性を通常の4時間51クロム放出分析で測定した。非放射性標的阻害分析および抗体阻害試験は、前述したように実施した(Zeis M, Siegel S, Schmitz Mら、サバイビンRNAトランスフェクト樹状細胞による血液腫瘍に対する細胞毒性Tリンパ球の誘導、J Immunol. 2003年; 170, 5391-5397)。
患者におけるOFA/iLRペプチド特異的T細胞の発現頻度を測定するため、製造元の手引きに従ってインターフェロン-γ-ELISPOTキット(独国ハイデルベルクのBecton Dickinson)を用いてELISPOT分析を実施した。
ペプチド:ILR1 (LLAARAIVAI, 配列番号1)およびILR2 (ALCNTDSPL, 配列番号2)
全てのELISPOT解析において、IFN-γ-陽性スポットに与えられる数は、105PBMC当たりである。解析の前に、患者由来のT細胞と健常ドナー由来のT細胞とを7日間インターロイキン-2(IL-2)(10単位/ml)とペプチド(10 μg/106PBMC/ml)の存在下で保持した。
ILR1ペプチドを認識するT細胞を、K562(ヒト前赤芽球白血病セルライン、慢性骨髄性白血病(CML)セルラインとしても知られ、HLAレベルが非常に低いことから、エフェクター細胞としてのNK細胞を排除するためのコントロールとして作用する)、IM9(ヒトBリンパ芽球様セルライン)、Karpas-422(ヒトB細胞リンパ腫)、Balm-3(ヒト非バーキットBリンパ腫セルライン)、U266(ヒト多発性骨髄腫)、REH(ヒトB細胞前駆体白血病)、MEC-1(ヒト慢性B細胞白血病)で試験した。同じT細胞は、コントロールとして健常ドナー由来の自己および同種のPBMCを試験した。MEC-1を除く全てのセルラインは、HLA-A*02対立遺伝子を発現せず、一般にHLAクラスI遺伝子発現欠損のK562はILR1特異的T細胞により認識された(図1参照)。健常ドナー由来の同種かつ自己細胞は認識されず、これは以下であることを示している。
1.ILR1は、腫瘍細胞中でのみ、ペプチドレベルで顕著に発現されるが、HLA適合健常ドナー由来の血液単核細胞では発現されない。
2.応答は、同種主要または副組織適合抗原に対するものではない。
3.ILR1ペプチドは、HLA拘束性様式で認識される。
4.拘束性は、対立遺伝子特異的である(A*02に特異的)。
HLA-A*02拘束性ILR1に特異的なT細胞を、AML患者由来の腫瘍細胞(4人の患者、試料AML-01、-02、-03、-06)について試験した(図4A)。A*02陽性患者(3/4)由来の細胞は、25.9%〜39.8%の範囲の40:1であるE:T比における最大溶解により認識した。A*02陰性患者AML-06由来のAML細胞は認識されなかった。
1.T細胞レセプター(TCR)担持細胞が、
2.MHCクラスI(HLAクラスI)の構成において、それらの標的を認識し、
3.それはCD4ではなくコレセプターCD8に依存した相互作用の機構によるものである。
1.ILR1は、試験したA*02陽性AML患者(8/13)の100%(8/8)で腫瘍関連抗原であること。
2.ILR1はHLA-A*02によって拘束されること。
3.ILR1特異的T細胞は、腫瘍細胞上で天然に処理されたILR2を認識し、一方、同時にはILR1ペプチドが骨髄およびCD34陽性前駆細胞には存在しないようであること。
4.標的とエフェクター細胞との間の相互作用が、MHCクラスI、TCR又はCD8に対するmAbで特に阻害されるうること。
HLA-A*02拘束性ILR1に特異的なT細胞を、CLL患者(5人の患者、試料CLL-01、-02、-03、-05、-06)由来の腫瘍細胞で試験した。A*02陽性患者(3/5)由来の細胞は、全ての場合(3/3)で認識された。A*02陰性患者由来の細胞は、いずれの場合でも(0/2)認識されなかった(図3B)。8人のさらなるCLL患者で実験を繰り返したところ(図3A)、それらの4/8はA*02陽性であった。4/4のA*02陽性患者由来のCLL細胞が認識され、一方、0/4のA*02陰性標的細胞が認識されたため、これらの追加実験により前述の結果が確認された。要約すると以下の通りである。
1.ILR1は、試験したA*02陽性CLL患者の100%(7/7)において腫瘍関連抗原である。
2.ILR1は、HLA-A*02で拘束される。
TAP("Transporter associated with Antigen Processing")の発現のためT2細胞を欠損しており、これは細胞質から小胞体(ER)まで短いペプチドを往復させる働きを担い、ペプチドを空のMHCクラスI分子上に載せる。その結果、ペプチドを添加しない場合(外部からの取り込み)、T2細胞のMHCクラスI分子は空のままである。そのため、細胞表面上の空のHLA-A*02分子を発現するT2細胞は、HLA-A*02拘束性T細胞によるペプチド特異的な死滅について適定曲線を確立するための最適な標的である。
結果:T細胞は、ILR1ペプチドでパルスしたT2細胞のみを認識した。HIVペプチドでパルスしたT2細胞は認識されなかった。ILR1ペプチドパルスT2標的は投与量に依存する様式で溶解した。溶解は試験した濃度範囲内では飽和に達しなかった。
非放射性標的阻害分析(cold target inhibition assay)を実施した。ILR1特異的T細胞がILR1ペプチドパルスT2細胞を特異的にかつHLA-A*02の構成中で溶解するか否かを試験するために、非放射性標的阻害分析を以下のように行った:51Cr標識を付したT2細胞を、10μgペプチド/106T2細胞/mlの濃度でペプチドで負荷した。同じまたはコントロールのペプチドで同等に負荷された全部で2×105の標識を付していないT2細胞を、次いで104ペプチドパルス51Crラベルを付したT2細胞に、容量で50μlのAIMV中に添加した。ILR1に特異的なエフェクターT細胞を添加し、51Cr放出分析を上述のように行った。解析の結果は、ILR1特異的CTLに関連しないペプチド(サバイビンとILR2)も、それら細胞表面上で空のHLA-A*02分子を示す負荷されていないT2細胞のいずれも、ILR1特異的CTLによるILR1ペプチドで負荷された標的の溶解に対抗しないことを示す。対照的に、合成ILR1ペプチドまたは、HLA-A*02の構成中でILR1を天然に示すAML腫瘍細胞でパルスした標的は2回目の(非放射性)標的としていったん用いられ、次いでILR1特異的CTLによる溶解に対して、主要標的細胞(放射性、ILR1ペプチドパルスT2)に対抗する(図5B)。
ILR2ペプチドを認識するT細胞(図6)を、K562(ヒト前赤芽球白血病セルライン、あるいは、慢性骨髄性白血病(CML)セルラインとしても知られ、HLAレベルが非常に低いことから、エフェクター細胞としてのNK細胞を排除するためのコントロールとして作用する)、IM9(ヒトBリンパ芽球様セルライン)、Karpas-422(ヒトB細胞リンパ腫)、Balm-3(ヒト非バーキットBリンパ腫セルライン)、U266(ヒト多発性骨髄腫)、REH(ヒトB細胞前駆体白血病)、Ramos(別名RA 1、ヒトバーキットリンパ腫Bリンパ芽球)、MEC-1(ヒト慢性B細胞白血病)について試験した。同じT細胞を用いて、健常ドナー由来の自己および同種PBMCをコントロールとして試験した。
1.ILR2は、腫瘍細胞においてペプチドレベルで顕著に発現されるが、HLA適合健常ドナー由来の血液単核細胞では発現されない。
2.応答は、同種の主要または副組織適合複合抗体に対するものではない。
3.ILR2ペプチドはHLA拘束性様式で認識される。
4.拘束性は対立遺伝子特異的である(A*02に対して特異的)。
HLA-A*02拘束性ILR2に特異的なT細胞を、AML患者(8人の患者、試料AML-01、-02、-04、-05、-06、-07、-10、-12)由来腫瘍細胞について試験した。A*02陽性患者由来細胞(4/8、AML-02、-04、-05、-10)は全ての場合(4/4)で認識された。A*02陰性患者由来細胞(4/8、AML-01、-06、-07、-12)は認識されなかった(4/4)(図8A)。実験は、以前に試験されなかった患者由来の試料で2回行った。2回目の実験において、HLA-A*02拘束性ILR2に特異的なT細胞を、AML患者由来腫瘍細胞(4人の患者、試料AML-01、-02、-03、-06)について再度試験した。A*02陽性患者由来細胞(3/4)は全ての場合で認識された。A*02陰性患者由来細胞は認識されなかった(0/1)(図8B)。
1.ILR2は、試験したA*02陽性AML患者の100%(7/7)において腫瘍関連抗原であること。
2.ILR2はHLA-A*02によって拘束されること。
3.ILR2特異的T細胞は、腫瘍細胞上で天然に処理されるILR2を認識し、一方、同時にはILR2ペプチドが骨髄およびCD34陽性前駆細胞には存在しないようであること。
4.標的とエフェクター細胞との間の相互作用が、MHCクラスI、TCR又はCD8に対するmAbで特異的に阻害されること。
HLA-A*02拘束性ILR2に特異的なT細胞を、CLL患者由来腫瘍細胞(8人の患者、試料CLL-01、-02、-03、-04、-05、-06、-07、-08)について試験した。A*02陽性患者由来細胞(4/8)は全ての場合で認識された(4/4)。A*02陰性患者由来細胞はいずれの場合でも認識されなかった(0/4)(図9A)。実験を5人のさらなるCLL患者で繰り返し(図9B)、それら患者の3/5はA*02陽性であった。3/3のA*02陽性患者由来CLL細胞が認識され、一方で0/2のA*02陰性標的細胞が認識されたことから、これら追加の実験により前述の結果が確認された。結果と概要:
1.ILR2は、試験したA*02陽性CLL患者の100%(7/7)において腫瘍関連抗原である。
2.ILR2はHLA-A*02によって拘束される。
T2細胞はTAP(Transporter associated with Antigen Processing)の発現を欠損しており、これは細胞質から小胞体(ER)までの短いペプチドの往復の働きを担い、該ペプチドは空のMHCクラスI分子上に載せられる。その結果、ペプチドを加えない場合(外部からの取り込み)、T2細胞のMHCクラスI分子は空のままである。そのため、細胞表面上で空のHLA-A*02分子を発現するT2細胞は、HLA-A*02拘束性T細胞によるペプチド特異的な死滅についての滴定曲線を確立するのに最適な標的である。この実験において、ILR2に特異的なT細胞を、HIV由来の前述のT細胞エピトープまたはILR2ペプチドALCNTDSPLのいずれかでパルスしたT2細胞について試験した。結果:T細胞は、ILR2ペプチドでパルスしたT2細胞のみを認識した。HIVペプチドでパルスしたT2細胞は認識されなかった。ILR2ペプチドパルスT2標的は、投与量に依存する様式で溶解した。溶解は、試験した濃度範囲内では飽和に達しなかった(図10A)。
非放射性標的阻害分析を上記「T2+ILR1」のように実施した。この実験の結果によりILR2特異的CTLに関連のないペプチド(サバイビンとILR1)も、それら細胞表面上に空のHLA-A*02分子を示す、負荷されなかったT2細胞のいずれも、ILR2特異的CTLによるILR2ペプチドで負荷された標的の溶解に対抗しないことを確認した。対照的に、合成ILR2ペプチド、またはHLA-A*02の構成中でILR2を天然に示すAML腫瘍細胞によりパルスされた標的を、二次(非放射性)標的としていったん用いた後は、ILR2特異的CTLによる溶解について主要標的細胞(放射性、ILR2ペプチドパルスT2)に対抗する(図10B)。
Claims (28)
- 配列番号1もしくは配列番号2のいずれかに記載の配列、またはそれらの変異体の少なくとも1つを含むペプチドの群から選択され、完全なヒト腫瘍関連ポリペプチドではない腫瘍関連ペプチド。
- 前記ペプチドが、配列番号1もしくは配列番号2のいずれかに記載のアミノ酸配列、またはそれらの変異体から本質的になる、請求項1記載の腫瘍関連ペプチド。
- 前記ペプチドが9〜30アミノ酸の全長を示す、請求項1または2に記載の腫瘍関連ペプチド。
- 配列番号1または配列番号2のいずれかに記載のアミノ酸配列からなる、請求項1〜3いずれかに記載の腫瘍関連ペプチド。
- ヒト主要組織適合複合体(MHC)クラスI、特にHLA-A*0201の分子に対する結合能を有する、請求項1〜4のいずれかに記載の腫瘍関連ペプチド。
- HLA-A*0201に結合したとき、該結合ペプチドが所与のアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現する細胞を認識する細胞毒性Tリンパ球(CTL)の生成を誘発することができる、請求項5に記載の腫瘍関連ペプチド。
- ヒト主要組織適合複合体(MHC)クラスII、特にHLA-DRB1の分子に対する結合能を有する、請求項1〜4のいずれかに記載の腫瘍関連ペプチド。
- 前記ペプチドが非ペプチド結合を含む、請求項1〜7のいずれかに記載の腫瘍関連ペプチド。
- 前記ペプチドが融合タンパク質である、請求項1〜8のいずれかに記載の腫瘍関連ペプチド。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載のペプチドをコードする核酸。
- DNA、cDNA、PNA、CNA、RNAまたはそれらの組み合わせである、請求項10に記載の核酸。
- 請求項10または11に記載の核酸を発現可能な発現ベクター。
- 請求項10または11に記載の核酸あるいは請求項12に記載の発現ベクターを含む宿主細胞。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の腫瘍関連ペプチドの作製方法であって、請求項13に記載の宿主細胞を培養すること、および該宿主細胞またはその培養培地から前記ペプチドを分離することを含む方法。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の腫瘍関連ペプチド、請求項10もしくは11に記載の核酸または請求項12に記載の発現ベクターと、薬学的に許容可能な担体とを含む、医薬組成物。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の腫瘍関連ペプチド、請求項10または11に記載の核酸、あるいは請求項12に記載の発現ベクターの、医薬における使用。
- 請求項1〜9のいずれか1に記載の腫瘍関連ペプチドと、請求項10もしくは11のいずれかに記載の核酸または請求項12に記載の発現ベクターとを含む、癌ワクチン。
- 標的細胞が請求項1〜9のいずれかに与えられるアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現する患者において、標的細胞を死滅させるための医薬の製造における、請求項1〜9のいずれか1に記載の腫瘍関連ペプチド、あるいは請求項10もしくは11に記載の核酸または請求項12に記載の発現ベクターの使用。
- 活性化細胞毒性Tリンパ球(CTL)のin vitro作製方法であって、該方法が、該CTLを活性化させるのに十分な時間、抗原特異的な様式で、好適な抗原提示細胞の表面上で発現したヒトクラスIまたはII MHC分子に載せられた抗原とCTLをin vitroで接触させること含み、該抗原が請求項1〜9のいずれか1に記載のペプチドである方法。
- 十分量の前記抗原を抗原提示細胞に接触させることにより、前記抗原が、好適な抗原提示細胞の表面上で発現するクラスIまたはII MHC分子上に載せられる、請求項19に記載の方法。
- 前記抗原提示細胞が請求項12に記載の発現ベクターを含む、請求項19に記載の方法。
- 前記クラスI MHC分子がHLA-A*0201である、請求項19〜21のいずれか1に記載の方法。
- 前記クラスII MHC分子がHLA-DRB1である、請求項19〜21のいずれか1に記載の方法。
- 請求項19〜23のいずれか1に記載の方法により作製された活性化細胞毒性Tリンパ球(CTL)であって、該CTLが請求項1〜9のいずれか1で与えられるアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現する細胞を選択的に認識する、活性化細胞毒性Tリンパ球。
- 請求項1〜9のいずれか1で与えられるアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現する細胞を認識するT細胞レセプター(TCR)であって、該TCRが請求項24の細胞毒性Tリンパ球(CTL)またはTCRに機能的に等価な分子から得られうる、T細胞レセプター。
- 請求項25に記載のT細胞レセプター(TCR)をコードする、核酸。
- 請求項26に記載の核酸をコードするT細胞レセプター(TCR)を発現可能な発現ベクター。
- 標的細胞が請求項1〜9のいずれかで与えられるアミノ酸配列を含むポリペプチドを発現する患者において、標的細胞を死滅させるための医薬の製造における、請求項24に記載の細胞毒性Tリンパ球の使用。
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