BE1029435B1 - Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon - Google Patents
Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon Download PDFInfo
- Publication number
- BE1029435B1 BE1029435B1 BE20225466A BE202205466A BE1029435B1 BE 1029435 B1 BE1029435 B1 BE 1029435B1 BE 20225466 A BE20225466 A BE 20225466A BE 202205466 A BE202205466 A BE 202205466A BE 1029435 B1 BE1029435 B1 BE 1029435B1
- Authority
- BE
- Belgium
- Prior art keywords
- hmo
- membrane
- neutral
- sialylated
- containing stream
- Prior art date
Links
- 238000000855 fermentation Methods 0.000 title claims abstract description 81
- 230000004151 fermentation Effects 0.000 title claims abstract description 81
- 229920001542 oligosaccharide Polymers 0.000 title claims abstract description 55
- 150000002482 oligosaccharides Chemical class 0.000 title claims abstract description 55
- 235000020256 human milk Nutrition 0.000 title claims abstract description 44
- 210000004251 human milk Anatomy 0.000 title claims abstract description 44
- 238000000926 separation method Methods 0.000 title description 25
- 230000007935 neutral effect Effects 0.000 claims abstract description 167
- 238000000034 method Methods 0.000 claims abstract description 137
- 239000012528 membrane Substances 0.000 claims abstract description 136
- 238000001728 nano-filtration Methods 0.000 claims abstract description 104
- 238000000746 purification Methods 0.000 claims abstract description 68
- 238000000108 ultra-filtration Methods 0.000 claims abstract description 52
- 239000002028 Biomass Substances 0.000 claims abstract description 34
- 239000002699 waste material Substances 0.000 claims abstract description 19
- 238000001035 drying Methods 0.000 claims abstract description 16
- 238000011084 recovery Methods 0.000 claims abstract description 6
- OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N Carbon Chemical compound [C] OKTJSMMVPCPJKN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 78
- 238000011282 treatment Methods 0.000 claims description 60
- 239000012466 permeate Substances 0.000 claims description 56
- 238000011026 diafiltration Methods 0.000 claims description 45
- 229910052799 carbon Inorganic materials 0.000 claims description 44
- CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L Magnesium sulfate Chemical compound [Mg+2].[O-][S+2]([O-])([O-])[O-] CSNNHWWHGAXBCP-UHFFFAOYSA-L 0.000 claims description 36
- 229920002647 polyamide Polymers 0.000 claims description 36
- 238000005119 centrifugation Methods 0.000 claims description 35
- FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M Sodium chloride Chemical compound [Na+].[Cl-] FAPWRFPIFSIZLT-UHFFFAOYSA-M 0.000 claims description 32
- 239000004952 Polyamide Substances 0.000 claims description 31
- 239000000047 product Substances 0.000 claims description 28
- GLUUGHFHXGJENI-UHFFFAOYSA-N Piperazine Chemical compound C1CNCCN1 GLUUGHFHXGJENI-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 24
- NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 1,2-bis(ethenyl)benzene;1-ethenyl-2-ethylbenzene;styrene Chemical compound C=CC1=CC=CC=C1.CCC1=CC=CC=C1C=C.C=CC1=CC=CC=C1C=C NWUYHJFMYQTDRP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 23
- OIZGSVFYNBZVIK-FHHHURIISA-N 3'-sialyllactose Chemical compound O1[C@@H]([C@H](O)[C@H](O)CO)[C@H](NC(=O)C)[C@@H](O)C[C@@]1(C(O)=O)O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]([C@H](O)CO)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)O[C@H](CO)[C@@H]1O OIZGSVFYNBZVIK-FHHHURIISA-N 0.000 claims description 22
- 238000001704 evaporation Methods 0.000 claims description 22
- 230000008020 evaporation Effects 0.000 claims description 22
- 239000000463 material Substances 0.000 claims description 21
- 238000005374 membrane filtration Methods 0.000 claims description 21
- 239000003729 cation exchange resin Substances 0.000 claims description 19
- 239000012535 impurity Substances 0.000 claims description 19
- DVGKRPYUFRZAQW-UHFFFAOYSA-N 3 prime Natural products CC(=O)NC1OC(CC(O)C1C(O)C(O)CO)(OC2C(O)C(CO)OC(OC3C(O)C(O)C(O)OC3CO)C2O)C(=O)O DVGKRPYUFRZAQW-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 18
- 229910052943 magnesium sulfate Inorganic materials 0.000 claims description 18
- 235000019341 magnesium sulphate Nutrition 0.000 claims description 18
- 238000001694 spray drying Methods 0.000 claims description 17
- SNFSYLYCDAVZGP-UHFFFAOYSA-N UNPD26986 Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)OC(CO)C(O)C1O SNFSYLYCDAVZGP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 16
- 239000011780 sodium chloride Substances 0.000 claims description 16
- AXQLFFDZXPOFPO-UHFFFAOYSA-N UNPD216 Natural products O1C(CO)C(O)C(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(NC(=O)C)C1OC(C1O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(O)C(O)OC1CO AXQLFFDZXPOFPO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 15
- AXQLFFDZXPOFPO-UNTPKZLMSA-N beta-D-Galp-(1->3)-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-beta-D-Glcp Chemical compound O([C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]([C@H]1O)O[C@H]1[C@@H]([C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O1)O[C@H]1[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1)O)NC(=O)C)[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]1CO AXQLFFDZXPOFPO-UNTPKZLMSA-N 0.000 claims description 14
- USIPEGYTBGEPJN-UHFFFAOYSA-N lacto-N-tetraose Natural products O1C(CO)C(O)C(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(NC(=O)C)C1OC1C(O)C(CO)OC(OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O)C1O USIPEGYTBGEPJN-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 14
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 claims description 13
- 238000000909 electrodialysis Methods 0.000 claims description 12
- IEQCXFNWPAHHQR-UHFFFAOYSA-N lacto-N-neotetraose Natural products OCC1OC(OC2C(C(OC3C(OC(O)C(O)C3O)CO)OC(CO)C2O)O)C(NC(=O)C)C(O)C1OC1OC(CO)C(O)C(O)C1O IEQCXFNWPAHHQR-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 12
- 229940062827 2'-fucosyllactose Drugs 0.000 claims description 10
- HWHQUWQCBPAQQH-UHFFFAOYSA-N 2-O-alpha-L-Fucosyl-lactose Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O HWHQUWQCBPAQQH-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 10
- 239000003957 anion exchange resin Substances 0.000 claims description 10
- TYALNJQZQRNQNQ-JLYOMPFMSA-N alpha-Neup5Ac-(2->6)-beta-D-Galp-(1->4)-beta-D-Glcp Chemical compound O1[C@@H]([C@H](O)[C@H](O)CO)[C@H](NC(=O)C)[C@@H](O)C[C@@]1(C(O)=O)OC[C@@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)O)O1 TYALNJQZQRNQNQ-JLYOMPFMSA-N 0.000 claims description 9
- 229930193965 lacto-N-fucopentaose Natural products 0.000 claims description 9
- WJPIUUDKRHCAEL-UHFFFAOYSA-N 3FL Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(CO)OC(O)C1O WJPIUUDKRHCAEL-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 7
- 239000003456 ion exchange resin Substances 0.000 claims description 7
- 229920003303 ion-exchange polymer Polymers 0.000 claims description 7
- 229940062780 lacto-n-neotetraose Drugs 0.000 claims description 7
- RBMYDHMFFAVMMM-PLQWBNBWSA-N neolactotetraose Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@H]([C@@H](O[C@@H]1CO)O[C@@H]1[C@H]([C@H](O[C@H]([C@H](O)CO)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)O[C@H](CO)[C@@H]1O)O)NC(=O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O RBMYDHMFFAVMMM-PLQWBNBWSA-N 0.000 claims description 7
- AUNPEJDACLEKSC-ZAYDSPBTSA-N 3-fucosyllactose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]1O AUNPEJDACLEKSC-ZAYDSPBTSA-N 0.000 claims description 6
- 239000002253 acid Substances 0.000 claims description 6
- TVVLIFCVJJSLBL-SEHWTJTBSA-N Lacto-N-fucopentaose V Chemical compound O[C@H]1C(O)C(O)[C@H](C)O[C@H]1OC([C@@H](O)C=O)[C@@H](C(O)CO)O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](OC2[C@@H](C(OC3[C@@H](C(O)C(O)[C@@H](CO)O3)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 TVVLIFCVJJSLBL-SEHWTJTBSA-N 0.000 claims description 5
- RQNFGIWYOACERD-OCQMRBNYSA-N alpha-L-Fucp-(1->4)-[alpha-L-Fucp-(1->2)-beta-D-Galp-(1->3)]-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-D-Glcp Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](CO)O[C@@H](O[C@@H]3[C@H]([C@H](O[C@@H]4[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]4O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]3O)O)[C@@H]2NC(C)=O)O[C@H]2[C@H]([C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O2)O)O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]1O RQNFGIWYOACERD-OCQMRBNYSA-N 0.000 claims description 5
- PDWGIAAFQACISG-QZBWVFMZSA-N beta-D-Gal-(1->3)-beta-D-GlcNAc-(1->3)-[beta-D-Gal-(1->4)-beta-D-GlcNAc-(1->6)]-beta-D-Gal-(1->4)-D-Glc Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@H]([C@@H](O[C@@H]1CO)OC[C@@H]1[C@@H]([C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O3)O)[C@H](O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O1)O)NC(=O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O PDWGIAAFQACISG-QZBWVFMZSA-N 0.000 claims description 5
- NPPRJALWPIXIHO-PNCMPRLYSA-N beta-D-Gal-(1->4)-beta-D-GlcNAc-(1->3)-[beta-D-Gal-(1->4)-beta-D-GlcNAc-(1->6)]-beta-D-Gal-(1->4)-D-Glc Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@H]([C@@H](O[C@@H]1CO)OC[C@@H]1[C@@H]([C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O3)O)[C@@H](CO)O2)NC(C)=O)[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O1)O)NC(=O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O NPPRJALWPIXIHO-PNCMPRLYSA-N 0.000 claims description 5
- IEQCXFNWPAHHQR-YKLSGRGUSA-N beta-D-Gal-(1->4)-beta-D-GlcNAc-(1->3)-beta-D-Gal-(1->4)-D-Glc Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@H]([C@@H](O[C@@H]1CO)O[C@@H]1[C@H]([C@H](O[C@@H]2[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]1O)O)NC(=O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O IEQCXFNWPAHHQR-YKLSGRGUSA-N 0.000 claims description 5
- RQNFGIWYOACERD-UHFFFAOYSA-N lacto-N-Difucosylhexaose I Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(CO)OC(OC3C(C(OC4C(OC(O)C(O)C4O)CO)OC(CO)C3O)O)C2NC(C)=O)OC2C(C(O)C(O)C(C)O2)O)OC(CO)C(O)C1O RQNFGIWYOACERD-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- OQIUPKPUOLIHHS-UHFFFAOYSA-N lacto-N-difucohexaose I Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(CO)OC(OC3C(C(OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O)OC(CO)C3O)O)C2NC(C)=O)OC2C(C(O)C(O)C(C)O2)O)OC(CO)C(O)C1O OQIUPKPUOLIHHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 5
- TYALNJQZQRNQNQ-UHFFFAOYSA-N #alpha;2,6-sialyllactose Natural products O1C(C(O)C(O)CO)C(NC(=O)C)C(O)CC1(C(O)=O)OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(C(O)C(O)OC2CO)O)O1 TYALNJQZQRNQNQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- CILYIEBUXJIHCO-UHFFFAOYSA-N 102778-91-6 Natural products O1C(C(O)C(O)CO)C(NC(=O)C)C(O)CC1(C(O)=O)OC1C(O)C(OC2C(C(O)C(O)OC2CO)O)OC(CO)C1O CILYIEBUXJIHCO-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- PSJVAGXZRSPYJB-UUXGNFCPSA-N Lacto-N-difucohexaose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H](CO)[C@H]([C@H](O[C@@H]1[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1)NC(C)=O)[C@@H](O[C@@H]1[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1)O)C=O)O[C@@H]1[C@H](O[C@H]2[C@H]([C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O2)O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 PSJVAGXZRSPYJB-UUXGNFCPSA-N 0.000 claims description 4
- CILYIEBUXJIHCO-UITFWXMXSA-N N-acetyl-alpha-neuraminyl-(2->3)-beta-D-galactosyl-(1->4)-beta-D-glucose Chemical compound O1[C@@H]([C@H](O)[C@H](O)CO)[C@H](NC(=O)C)[C@@H](O)C[C@@]1(C(O)=O)O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@H](O)O[C@@H]2CO)O)O[C@H](CO)[C@@H]1O CILYIEBUXJIHCO-UITFWXMXSA-N 0.000 claims description 4
- OIZGSVFYNBZVIK-UHFFFAOYSA-N N-acetylneuraminosyl-D-lactose Natural products O1C(C(O)C(O)CO)C(NC(=O)C)C(O)CC1(C(O)=O)OC1C(O)C(OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O)OC(CO)C1O OIZGSVFYNBZVIK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- FZIVHOUANIQOMU-YIHIYSSUSA-N alpha-L-Fucp-(1->2)-beta-D-Galp-(1->3)-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-D-Glcp Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@@H]2[C@H]([C@H](O[C@@H]3[C@H]([C@H](O[C@@H]4[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]4O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]3O)O)O[C@H](CO)[C@H]2O)NC(C)=O)O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]1O FZIVHOUANIQOMU-YIHIYSSUSA-N 0.000 claims description 4
- CMQZRJBJDCVIEY-JEOLMMCMSA-N alpha-L-Fucp-(1->3)-[beta-D-Galp-(1->4)]-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-D-Glcp Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](CO)O[C@@H](O[C@@H]2[C@H]([C@H](O[C@@H]3[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]3O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]2O)O)[C@@H]1NC(C)=O CMQZRJBJDCVIEY-JEOLMMCMSA-N 0.000 claims description 4
- DUKURNFHYQXCJG-JEOLMMCMSA-N alpha-L-Fucp-(1->4)-[beta-D-Galp-(1->3)]-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-D-Glcp Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](NC(C)=O)[C@H](O[C@@H]2[C@H]([C@H](O[C@@H]3[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]3O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]2O)O)O[C@@H]1CO DUKURNFHYQXCJG-JEOLMMCMSA-N 0.000 claims description 4
- DMYPRRDPOMGEAK-XWDFSUOISA-N beta-D-Galp-(1->3)-[alpha-L-Fucp-(1->4)]-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-[alpha-L-Fucp-(1->3)]-D-Glcp Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O[C@H]4[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O4)O)[C@H](O[C@H]4[C@H]([C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O4)O)[C@@H](CO)O3)NC(C)=O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](CO)OC(O)[C@@H]1O DMYPRRDPOMGEAK-XWDFSUOISA-N 0.000 claims description 4
- 238000001914 filtration Methods 0.000 claims description 4
- 229930187367 lacto-N-difucohexaose Natural products 0.000 claims description 4
- DMYPRRDPOMGEAK-UHFFFAOYSA-N lacto-N-difucohexaose II Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(OC3C(C(OC4C(C(O)C(O)C(CO)O4)O)C(OC4C(C(O)C(O)C(C)O4)O)C(CO)O3)NC(C)=O)C(O)C(CO)O2)O)C(CO)OC(O)C1O DMYPRRDPOMGEAK-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- FZIVHOUANIQOMU-UHFFFAOYSA-N lacto-N-fucopentaose I Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(OC3C(C(OC4C(OC(O)C(O)C4O)CO)OC(CO)C3O)O)OC(CO)C2O)NC(C)=O)OC(CO)C(O)C1O FZIVHOUANIQOMU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- FKADDOYBRRMBPP-UHFFFAOYSA-N lacto-N-fucopentaose II Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(NC(C)=O)C(OC2C(C(OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O)OC(CO)C2O)O)OC1CO FKADDOYBRRMBPP-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- CMQZRJBJDCVIEY-UHFFFAOYSA-N lacto-N-fucopentaose III Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(O)C(O)C(CO)O2)O)C(CO)OC(OC2C(C(OC3C(OC(O)C(O)C3O)CO)OC(CO)C2O)O)C1NC(C)=O CMQZRJBJDCVIEY-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- RJTOFDPWCJDYFZ-UHFFFAOYSA-N lacto-N-triose Natural products CC(=O)NC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(OC(C(O)CO)C(O)C(O)C=O)OC(CO)C1O RJTOFDPWCJDYFZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 4
- OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 100676-05-9 Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OCC1C(O)C(O)C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)O1 OWEGMIWEEQEYGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- ODDPRQJTYDIWJU-UHFFFAOYSA-N 3'-beta-D-galactopyranosyl-lactose Natural products OC1C(O)C(O)C(CO)OC1OC1C(O)C(OC2C(OC(O)C(O)C2O)CO)OC(CO)C1O ODDPRQJTYDIWJU-UHFFFAOYSA-N 0.000 claims description 3
- ODDPRQJTYDIWJU-OAUIKNEUSA-N beta-D-Galp-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-beta-D-Glcp Chemical compound O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@@H]2[C@H](O[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]1O ODDPRQJTYDIWJU-OAUIKNEUSA-N 0.000 claims description 3
- 238000001223 reverse osmosis Methods 0.000 claims description 3
- HWHQUWQCBPAQQH-BWRPKUOHSA-N 2-fucosyllactose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@H]([C@H](O)CO)[C@H](O)[C@@H](O)C=O HWHQUWQCBPAQQH-BWRPKUOHSA-N 0.000 claims 3
- AXQLFFDZXPOFPO-FSGZUBPKSA-N beta-D-Gal-(1->3)-beta-D-GlcNAc-(1->3)-beta-D-Gal-(1->4)-D-Glc Chemical compound O([C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]([C@H]1O)O[C@H]1[C@@H]([C@H]([C@H](O)[C@@H](CO)O1)O[C@H]1[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1)O)NC(=O)C)[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]1CO AXQLFFDZXPOFPO-FSGZUBPKSA-N 0.000 claims 1
- 235000013305 food Nutrition 0.000 abstract description 12
- 235000010633 broth Nutrition 0.000 description 60
- 238000004977 Hueckel calculation Methods 0.000 description 43
- 235000002639 sodium chloride Nutrition 0.000 description 37
- 239000012465 retentate Substances 0.000 description 32
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 32
- XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N water Chemical compound O XLYOFNOQVPJJNP-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 26
- 239000007787 solid Substances 0.000 description 25
- 150000003839 salts Chemical class 0.000 description 24
- 108090000623 proteins and genes Proteins 0.000 description 22
- 150000001720 carbohydrates Chemical class 0.000 description 21
- 235000014633 carbohydrates Nutrition 0.000 description 21
- 102000004169 proteins and genes Human genes 0.000 description 21
- 235000018102 proteins Nutrition 0.000 description 20
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N lactose group Chemical group OC1[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@H](O2)CO)[C@H](O1)CO GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 description 16
- 238000001471 micro-filtration Methods 0.000 description 16
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 16
- HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M Sodium hydroxide Chemical compound [OH-].[Na+] HEMHJVSKTPXQMS-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 15
- 239000008101 lactose Substances 0.000 description 15
- 239000011347 resin Substances 0.000 description 15
- 229920005989 resin Polymers 0.000 description 15
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 14
- SNFSYLYCDAVZGP-OLAZETNGSA-N 2'-fucosyllactose Chemical compound O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)[C@H](C)O[C@H]1O[C@H]1[C@H](O[C@@H]2[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]2O)CO)O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]1O SNFSYLYCDAVZGP-OLAZETNGSA-N 0.000 description 13
- 235000013350 formula milk Nutrition 0.000 description 13
- 230000000813 microbial effect Effects 0.000 description 13
- 239000006228 supernatant Substances 0.000 description 13
- 239000007921 spray Substances 0.000 description 12
- 108020004414 DNA Proteins 0.000 description 9
- LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N Ethanol Chemical compound CCO LFQSCWFLJHTTHZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 9
- -1 cationic ion Chemical class 0.000 description 9
- 238000004587 chromatography analysis Methods 0.000 description 9
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 9
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 9
- 239000007864 aqueous solution Substances 0.000 description 8
- 238000011146 sterile filtration Methods 0.000 description 8
- 239000012607 strong cation exchange resin Substances 0.000 description 8
- 230000002378 acidificating effect Effects 0.000 description 7
- 150000001875 compounds Chemical class 0.000 description 7
- 239000000975 dye Substances 0.000 description 7
- 239000002158 endotoxin Substances 0.000 description 7
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 description 7
- 150000002772 monosaccharides Chemical class 0.000 description 7
- 238000002203 pretreatment Methods 0.000 description 7
- 108091032973 (ribonucleotides)n+m Proteins 0.000 description 6
- 239000012141 concentrate Substances 0.000 description 6
- 150000002016 disaccharides Chemical class 0.000 description 6
- 238000010828 elution Methods 0.000 description 6
- 230000002255 enzymatic effect Effects 0.000 description 6
- 239000012634 fragment Substances 0.000 description 6
- 238000006386 neutralization reaction Methods 0.000 description 6
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 6
- 239000000126 substance Substances 0.000 description 6
- 102000040650 (ribonucleotides)n+m Human genes 0.000 description 5
- 239000006227 byproduct Substances 0.000 description 5
- 150000001768 cations Chemical class 0.000 description 5
- 238000013461 design Methods 0.000 description 5
- 239000012153 distilled water Substances 0.000 description 5
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 5
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 5
- 238000010438 heat treatment Methods 0.000 description 5
- 229910052500 inorganic mineral Inorganic materials 0.000 description 5
- 235000010755 mineral Nutrition 0.000 description 5
- 239000011707 mineral Substances 0.000 description 5
- 238000010979 pH adjustment Methods 0.000 description 5
- 239000011148 porous material Substances 0.000 description 5
- 125000005630 sialyl group Chemical group 0.000 description 5
- SHZGCJCMOBCMKK-UHFFFAOYSA-N D-mannomethylose Natural products CC1OC(O)C(O)C(O)C1O SHZGCJCMOBCMKK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N Silicium dioxide Chemical compound O=[Si]=O VYPSYNLAJGMNEJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M Sodium bicarbonate Chemical compound [Na+].OC([O-])=O UIIMBOGNXHQVGW-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 4
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N Sulfuric acid Chemical compound OS(O)(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 239000012736 aqueous medium Substances 0.000 description 4
- 230000008901 benefit Effects 0.000 description 4
- SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N beta-D-Pyranose-Lyxose Natural products OC1COC(O)C(O)C1O SRBFZHDQGSBBOR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- SQVRNKJHWKZAKO-UHFFFAOYSA-N beta-N-Acetyl-D-neuraminic acid Natural products CC(=O)NC1C(O)CC(O)(C(O)=O)OC1C(O)C(O)CO SQVRNKJHWKZAKO-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 4
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 4
- 239000000919 ceramic Substances 0.000 description 4
- 239000000356 contaminant Substances 0.000 description 4
- 238000012258 culturing Methods 0.000 description 4
- 238000010790 dilution Methods 0.000 description 4
- 239000012895 dilution Substances 0.000 description 4
- 239000003814 drug Substances 0.000 description 4
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 4
- 244000005700 microbiome Species 0.000 description 4
- 235000013336 milk Nutrition 0.000 description 4
- 239000008267 milk Substances 0.000 description 4
- 210000004080 milk Anatomy 0.000 description 4
- 239000011541 reaction mixture Substances 0.000 description 4
- 239000011734 sodium Substances 0.000 description 4
- 238000007711 solidification Methods 0.000 description 4
- 230000008023 solidification Effects 0.000 description 4
- 238000003786 synthesis reaction Methods 0.000 description 4
- WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N Glucose Natural products OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-GASJEMHNSA-N 0.000 description 3
- 108700023372 Glycosyltransferases Proteins 0.000 description 3
- SHZGCJCMOBCMKK-DHVFOXMCSA-N L-fucopyranose Chemical group C[C@@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O SHZGCJCMOBCMKK-DHVFOXMCSA-N 0.000 description 3
- RJTOFDPWCJDYFZ-SPVZFZGWSA-N Lacto-N-triaose Chemical compound CC(=O)N[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]([C@H](O)CO)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)O[C@H](CO)[C@@H]1O RJTOFDPWCJDYFZ-SPVZFZGWSA-N 0.000 description 3
- LKOHREGGXUJGKC-UHFFFAOYSA-N Lactodifucotetraose Natural products OC1C(O)C(O)C(C)OC1OC1C(OC2C(C(O)C(O)OC2CO)OC2C(C(O)C(O)C(C)O2)O)OC(CO)C(O)C1O LKOHREGGXUJGKC-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- KFEUJDWYNGMDBV-LODBTCKLSA-N N-acetyllactosamine Chemical group O[C@@H]1[C@@H](NC(=O)C)[C@H](O)O[C@H](CO)[C@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 KFEUJDWYNGMDBV-LODBTCKLSA-N 0.000 description 3
- 241000235648 Pichia Species 0.000 description 3
- 240000004808 Saccharomyces cerevisiae Species 0.000 description 3
- 235000014680 Saccharomyces cerevisiae Nutrition 0.000 description 3
- LKOHREGGXUJGKC-GXSKDVPZSA-N alpha-L-Fucp-(1->3)-[alpha-L-Fucp-(1->2)-beta-D-Galp-(1->4)]-beta-D-Glcp Chemical compound C[C@@H]1O[C@@H](O[C@@H]2[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]2O[C@@H]2[C@@H](CO)O[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]2O[C@@H]2O[C@@H](C)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]2O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O LKOHREGGXUJGKC-GXSKDVPZSA-N 0.000 description 3
- 125000000129 anionic group Chemical group 0.000 description 3
- 150000001450 anions Chemical class 0.000 description 3
- 239000002585 base Substances 0.000 description 3
- 239000003610 charcoal Substances 0.000 description 3
- 229920001429 chelating resin Polymers 0.000 description 3
- 238000002425 crystallisation Methods 0.000 description 3
- 230000008025 crystallization Effects 0.000 description 3
- 238000004042 decolorization Methods 0.000 description 3
- 239000003480 eluent Substances 0.000 description 3
- 125000003147 glycosyl group Chemical group 0.000 description 3
- 238000004128 high performance liquid chromatography Methods 0.000 description 3
- 238000005342 ion exchange Methods 0.000 description 3
- 239000002207 metabolite Substances 0.000 description 3
- IVXQBCUBSIPQGU-UHFFFAOYSA-N piperazine-1-carboxamide Chemical compound NC(=O)N1CCNCC1 IVXQBCUBSIPQGU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000002243 precursor Substances 0.000 description 3
- 102000004196 processed proteins & peptides Human genes 0.000 description 3
- 108090000765 processed proteins & peptides Proteins 0.000 description 3
- 238000004062 sedimentation Methods 0.000 description 3
- SQVRNKJHWKZAKO-OQPLDHBCSA-N sialic acid Chemical compound CC(=O)N[C@@H]1[C@@H](O)C[C@@](O)(C(O)=O)OC1[C@H](O)[C@H](O)CO SQVRNKJHWKZAKO-OQPLDHBCSA-N 0.000 description 3
- 159000000000 sodium salts Chemical class 0.000 description 3
- 238000001179 sorption measurement Methods 0.000 description 3
- 239000012609 strong anion exchange resin Substances 0.000 description 3
- 238000012546 transfer Methods 0.000 description 3
- WQZGKKKJIJFFOK-SVZMEOIVSA-N (+)-Galactose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-SVZMEOIVSA-N 0.000 description 2
- GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N Alpha-Lactose Chemical group O[C@@H]1[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]1O[C@@H]1[C@@H](CO)O[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-XLOQQCSPSA-N 0.000 description 2
- 241000193830 Bacillus <bacterium> Species 0.000 description 2
- 241000894006 Bacteria Species 0.000 description 2
- 238000009010 Bradford assay Methods 0.000 description 2
- 241000588724 Escherichia coli Species 0.000 description 2
- PNNNRSAQSRJVSB-SLPGGIOYSA-N Fucose Natural products C[C@H](O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)C=O PNNNRSAQSRJVSB-SLPGGIOYSA-N 0.000 description 2
- PNNNRSAQSRJVSB-UHFFFAOYSA-N L-rhamnose Natural products CC(O)C(O)C(O)C(O)C=O PNNNRSAQSRJVSB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L Magnesium chloride Chemical compound [Mg+2].[Cl-].[Cl-] TWRXJAOTZQYOKJ-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 2
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 2
- OVRNDRQMDRJTHS-UHFFFAOYSA-N N-acelyl-D-glucosamine Natural products CC(=O)NC1C(O)OC(CO)C(O)C1O OVRNDRQMDRJTHS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- OVRNDRQMDRJTHS-FMDGEEDCSA-N N-acetyl-beta-D-glucosamine Chemical group CC(=O)N[C@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O OVRNDRQMDRJTHS-FMDGEEDCSA-N 0.000 description 2
- MBLBDJOUHNCFQT-LXGUWJNJSA-N N-acetylglucosamine Natural products CC(=O)N[C@@H](C=O)[C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)CO MBLBDJOUHNCFQT-LXGUWJNJSA-N 0.000 description 2
- HESSGHHCXGBPAJ-UHFFFAOYSA-N N-acetyllactosamine Natural products CC(=O)NC(C=O)C(O)C(C(O)CO)OC1OC(CO)C(O)C(O)C1O HESSGHHCXGBPAJ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 239000002033 PVDF binder Substances 0.000 description 2
- 102000007079 Peptide Fragments Human genes 0.000 description 2
- 108010033276 Peptide Fragments Proteins 0.000 description 2
- 239000004743 Polypropylene Substances 0.000 description 2
- XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N Urea Chemical compound NC(N)=O XSQUKJJJFZCRTK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 238000011481 absorbance measurement Methods 0.000 description 2
- 125000000738 acetamido group Chemical group [H]C([H])([H])C(=O)N([H])[*] 0.000 description 2
- PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N aldehydo-D-ribose Chemical compound OC[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-LMVFSUKVSA-N 0.000 description 2
- 238000005349 anion exchange Methods 0.000 description 2
- PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N arabinose Natural products OCC(O)C(O)C(O)C=O PYMYPHUHKUWMLA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- HMQPEDMEOBLSQB-RCBHQUQDSA-N beta-D-Galp-(1->3)-alpha-D-GlcpNAc Chemical group CC(=O)N[C@H]1[C@@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 HMQPEDMEOBLSQB-RCBHQUQDSA-N 0.000 description 2
- UTVHXMGRNOOVTB-IXBJWXGWSA-N beta-D-Galp-(1->4)-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-beta-D-GlcpNAc-(1->3)-beta-D-Galp-(1->4)-D-Glcp Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@H]([C@@H](O[C@@H]1CO)O[C@@H]1[C@H]([C@H](O[C@@H]2[C@H](O[C@@H](O[C@@H]3[C@H]([C@H](O[C@@H]4[C@H](OC(O)[C@H](O)[C@H]4O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]3O)O)[C@H](NC(C)=O)[C@H]2O)CO)O[C@H](CO)[C@@H]1O)O)NC(=O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O UTVHXMGRNOOVTB-IXBJWXGWSA-N 0.000 description 2
- 238000005341 cation exchange Methods 0.000 description 2
- 210000003850 cellular structure Anatomy 0.000 description 2
- 239000001913 cellulose Substances 0.000 description 2
- 229920002678 cellulose Polymers 0.000 description 2
- 229920002301 cellulose acetate Polymers 0.000 description 2
- 239000002801 charged material Substances 0.000 description 2
- 238000004140 cleaning Methods 0.000 description 2
- 239000002131 composite material Substances 0.000 description 2
- 239000002537 cosmetic Substances 0.000 description 2
- 238000005115 demineralization Methods 0.000 description 2
- 230000002328 demineralizing effect Effects 0.000 description 2
- 235000015872 dietary supplement Nutrition 0.000 description 2
- FCIROHDMPFOSFG-LAVSNGQLSA-N disialyllacto-N-tetraose Chemical compound O1[C@@H]([C@H](O)[C@H](O)CO)[C@H](NC(=O)C)[C@@H](O)C[C@@]1(C(O)=O)OC[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O[C@]3(O[C@H]([C@H](NC(C)=O)[C@@H](O)C3)[C@H](O)[C@H](O)CO)C(O)=O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](NC(C)=O)[C@H](O[C@@H]2[C@H]([C@H](O[C@H]3[C@@H]([C@@H](O)C(O)O[C@@H]3CO)O)O[C@H](CO)[C@@H]2O)O)O1 FCIROHDMPFOSFG-LAVSNGQLSA-N 0.000 description 2
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 2
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 2
- 238000012262 fermentative production Methods 0.000 description 2
- 239000012458 free base Substances 0.000 description 2
- 229930182830 galactose Natural products 0.000 description 2
- 238000001641 gel filtration chromatography Methods 0.000 description 2
- 108700014210 glycosyltransferase activity proteins Proteins 0.000 description 2
- 102000045442 glycosyltransferase activity proteins Human genes 0.000 description 2
- 230000002209 hydrophobic effect Effects 0.000 description 2
- 239000004615 ingredient Substances 0.000 description 2
- 150000002597 lactoses Chemical class 0.000 description 2
- 230000000670 limiting effect Effects 0.000 description 2
- 230000014759 maintenance of location Effects 0.000 description 2
- 238000005259 measurement Methods 0.000 description 2
- 239000002609 medium Substances 0.000 description 2
- 229920005615 natural polymer Polymers 0.000 description 2
- 235000016709 nutrition Nutrition 0.000 description 2
- 150000007524 organic acids Chemical class 0.000 description 2
- 235000005985 organic acids Nutrition 0.000 description 2
- ZDZMLVPSYYRJNI-CYQYEHMMSA-N p-lacto-n-hexaose Chemical compound O([C@H]1[C@H](O)[C@@H](CO)O[C@H]([C@@H]1N=C(C)O)O[C@@H]1[C@@H](O)[C@H](O[C@H]([C@H](O)CO)[C@H](O)[C@@H](O)C=O)OC([C@@H]1O)CO[C@H]1[C@@H]([C@H](C(O[C@H]2[C@@H]([C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O2)O)[C@@H](CO)O1)O)N=C(O)C)[C@@H]1O[C@H](CO)[C@H](O)[C@H](O)[C@H]1O ZDZMLVPSYYRJNI-CYQYEHMMSA-N 0.000 description 2
- 230000008823 permeabilization Effects 0.000 description 2
- 229920000747 poly(lactic acid) Polymers 0.000 description 2
- 229920002492 poly(sulfone) Polymers 0.000 description 2
- 229920002239 polyacrylonitrile Polymers 0.000 description 2
- 239000004626 polylactic acid Substances 0.000 description 2
- 229920001155 polypropylene Polymers 0.000 description 2
- 229920001282 polysaccharide Polymers 0.000 description 2
- 229920002981 polyvinylidene fluoride Polymers 0.000 description 2
- 230000002829 reductive effect Effects 0.000 description 2
- 238000004366 reverse phase liquid chromatography Methods 0.000 description 2
- 235000017557 sodium bicarbonate Nutrition 0.000 description 2
- 229910000030 sodium bicarbonate Inorganic materials 0.000 description 2
- 241000894007 species Species 0.000 description 2
- 229920001059 synthetic polymer Polymers 0.000 description 2
- 239000010409 thin film Substances 0.000 description 2
- 150000004043 trisaccharides Chemical class 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- KFEUJDWYNGMDBV-UHFFFAOYSA-N (N-Acetyl)-glucosamin-4-beta-galaktosid Natural products OC1C(NC(=O)C)C(O)OC(CO)C1OC1C(O)C(O)C(O)C(CO)O1 KFEUJDWYNGMDBV-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- GOWMBYUZXIZENX-CAUSLRQDSA-N 1-[(2r,3s,4s,5r)-3,4-dihydroxy-5-(hydroxymethyl)oxolan-2-yl]-4-(hexadecylamino)pyrimidin-2-one Chemical compound O=C1N=C(NCCCCCCCCCCCCCCCC)C=CN1[C@H]1[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](CO)O1 GOWMBYUZXIZENX-CAUSLRQDSA-N 0.000 description 1
- QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M Acetate Chemical group CC([O-])=O QTBSBXVTEAMEQO-UHFFFAOYSA-M 0.000 description 1
- ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-N Adenosine triphosphate Chemical compound C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1[C@@H]1O[C@H](COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)[C@@H](O)[C@H]1O ZKHQWZAMYRWXGA-KQYNXXCUSA-N 0.000 description 1
- ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N Adenosine triphosphate Natural products C1=NC=2C(N)=NC=NC=2N1C1OC(COP(O)(=O)OP(O)(=O)OP(O)(O)=O)C(O)C1O ZKHQWZAMYRWXGA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710098620 Alpha-1,2-fucosyltransferase Proteins 0.000 description 1
- 241000193744 Bacillus amyloliquefaciens Species 0.000 description 1
- 241000194108 Bacillus licheniformis Species 0.000 description 1
- 244000063299 Bacillus subtilis Species 0.000 description 1
- 235000014469 Bacillus subtilis Nutrition 0.000 description 1
- IERHLVCPSMICTF-XVFCMESISA-N CMP group Chemical group P(=O)(O)(O)OC[C@@H]1[C@H]([C@H]([C@@H](O1)N1C(=O)N=C(N)C=C1)O)O IERHLVCPSMICTF-XVFCMESISA-N 0.000 description 1
- 241000222120 Candida <Saccharomycetales> Species 0.000 description 1
- RFSUNEUAIZKAJO-VRPWFDPXSA-N D-Fructose Natural products OC[C@H]1OC(O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-VRPWFDPXSA-N 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N D-mannopyranose Chemical compound OC[C@H]1OC(O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-QTVWNMPRSA-N 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-SOOFDHNKSA-N D-ribopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-SOOFDHNKSA-N 0.000 description 1
- LKDRXBCSQODPBY-IANNHFEVSA-N D-sorbose Chemical compound OCC1(O)OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@H]1O LKDRXBCSQODPBY-IANNHFEVSA-N 0.000 description 1
- LKDRXBCSQODPBY-OEXCPVAWSA-N D-tagatose Chemical compound OCC1(O)OC[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H]1O LKDRXBCSQODPBY-OEXCPVAWSA-N 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N D-xylopyranose Chemical compound O[C@@H]1COC(O)[C@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-IOVATXLUSA-N 0.000 description 1
- RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N Fructose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O RFSUNEUAIZKAJO-ARQDHWQXSA-N 0.000 description 1
- 230000005526 G1 to G0 transition Effects 0.000 description 1
- 229930186217 Glycolipid Natural products 0.000 description 1
- 102000051366 Glycosyltransferases Human genes 0.000 description 1
- 101000588377 Homo sapiens N-acylneuraminate cytidylyltransferase Proteins 0.000 description 1
- 101000972853 Hordeum vulgare Non-specific lipid-transfer protein 3 Proteins 0.000 description 1
- 208000007976 Ketosis Diseases 0.000 description 1
- 241000235649 Kluyveromyces Species 0.000 description 1
- 235000014663 Kluyveromyces fragilis Nutrition 0.000 description 1
- 241001138401 Kluyveromyces lactis Species 0.000 description 1
- 241000235058 Komagataella pastoris Species 0.000 description 1
- SHZGCJCMOBCMKK-PQMKYFCFSA-N L-Fucose Natural products C[C@H]1O[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O SHZGCJCMOBCMKK-PQMKYFCFSA-N 0.000 description 1
- SRBFZHDQGSBBOR-OWMBCFKOSA-N L-ribopyranose Chemical compound O[C@H]1COC(O)[C@@H](O)[C@H]1O SRBFZHDQGSBBOR-OWMBCFKOSA-N 0.000 description 1
- OVRNDRQMDRJTHS-CBQIKETKSA-N N-Acetyl-D-Galactosamine Chemical compound CC(=O)N[C@H]1[C@@H](O)O[C@H](CO)[C@H](O)[C@@H]1O OVRNDRQMDRJTHS-CBQIKETKSA-N 0.000 description 1
- MBLBDJOUHNCFQT-UHFFFAOYSA-N N-acetyl-D-galactosamine Natural products CC(=O)NC(C=O)C(O)C(O)C(O)CO MBLBDJOUHNCFQT-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- OVRNDRQMDRJTHS-RTRLPJTCSA-N N-acetyl-D-glucosamine Chemical compound CC(=O)N[C@H]1C(O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O OVRNDRQMDRJTHS-RTRLPJTCSA-N 0.000 description 1
- OVRNDRQMDRJTHS-OZRXBMAMSA-N N-acetyl-beta-D-mannosamine Chemical compound CC(=O)N[C@@H]1[C@H](O)O[C@H](CO)[C@@H](O)[C@@H]1O OVRNDRQMDRJTHS-OZRXBMAMSA-N 0.000 description 1
- SQVRNKJHWKZAKO-PFQGKNLYSA-N N-acetyl-beta-neuraminic acid Chemical compound CC(=O)N[C@@H]1[C@@H](O)C[C@@](O)(C(O)=O)O[C@H]1[C@H](O)[C@H](O)CO SQVRNKJHWKZAKO-PFQGKNLYSA-N 0.000 description 1
- 102100031349 N-acylneuraminate cytidylyltransferase Human genes 0.000 description 1
- 241000320412 Ogataea angusta Species 0.000 description 1
- 241001452677 Ogataea methanolica Species 0.000 description 1
- 235000019482 Palm oil Nutrition 0.000 description 1
- 235000019484 Rapeseed oil Nutrition 0.000 description 1
- 241000235070 Saccharomyces Species 0.000 description 1
- 235000018370 Saccharomyces delbrueckii Nutrition 0.000 description 1
- 244000253911 Saccharomyces fragilis Species 0.000 description 1
- 235000018368 Saccharomyces fragilis Nutrition 0.000 description 1
- 235000019485 Safflower oil Nutrition 0.000 description 1
- 241000235346 Schizosaccharomyces Species 0.000 description 1
- 241000235347 Schizosaccharomyces pombe Species 0.000 description 1
- 241000311088 Schwanniomyces Species 0.000 description 1
- 241001123650 Schwanniomyces occidentalis Species 0.000 description 1
- FKNQFGJONOIPTF-UHFFFAOYSA-N Sodium cation Chemical compound [Na+] FKNQFGJONOIPTF-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L Sulfate Chemical compound [O-]S([O-])(=O)=O QAOWNCQODCNURD-UHFFFAOYSA-L 0.000 description 1
- 235000019486 Sunflower oil Nutrition 0.000 description 1
- 241000235006 Torulaspora Species 0.000 description 1
- 244000288561 Torulaspora delbrueckii Species 0.000 description 1
- 235000014681 Torulaspora delbrueckii Nutrition 0.000 description 1
- 241000700605 Viruses Species 0.000 description 1
- 108010046377 Whey Proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000007544 Whey Proteins Human genes 0.000 description 1
- 241000235013 Yarrowia Species 0.000 description 1
- 241000235015 Yarrowia lipolytica Species 0.000 description 1
- 241000235017 Zygosaccharomyces Species 0.000 description 1
- 241000235029 Zygosaccharomyces bailii Species 0.000 description 1
- 241000235033 Zygosaccharomyces rouxii Species 0.000 description 1
- 241000222124 [Candida] boidinii Species 0.000 description 1
- 238000010521 absorption reaction Methods 0.000 description 1
- 239000000370 acceptor Substances 0.000 description 1
- 238000009825 accumulation Methods 0.000 description 1
- PNNNRSAQSRJVSB-BXKVDMCESA-N aldehydo-L-rhamnose Chemical compound C[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)C=O PNNNRSAQSRJVSB-BXKVDMCESA-N 0.000 description 1
- 150000001412 amines Chemical class 0.000 description 1
- 150000001413 amino acids Chemical class 0.000 description 1
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 1
- WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N beta-D-glucose Chemical compound OC[C@H]1O[C@@H](O)[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H]1O WQZGKKKJIJFFOK-VFUOTHLCSA-N 0.000 description 1
- 102000005936 beta-Galactosidase Human genes 0.000 description 1
- 108010005774 beta-Galactosidase Proteins 0.000 description 1
- 230000000035 biogenic effect Effects 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 230000031018 biological processes and functions Effects 0.000 description 1
- FNAQSUUGMSOBHW-UHFFFAOYSA-H calcium citrate Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O.[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O FNAQSUUGMSOBHW-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 239000001354 calcium citrate Substances 0.000 description 1
- 239000001506 calcium phosphate Substances 0.000 description 1
- 229910000389 calcium phosphate Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011010 calcium phosphates Nutrition 0.000 description 1
- 239000004202 carbamide Substances 0.000 description 1
- 125000004432 carbon atom Chemical group C* 0.000 description 1
- 239000005018 casein Substances 0.000 description 1
- BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N casein, tech. Chemical compound NCCCCC(C(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CC(C)C)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(C(C)O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=O)N=C(O)C(COP(O)(O)=O)N=C(O)C(CCC(O)=N)N=C(O)C(N)CC1=CC=CC=C1 BECPQYXYKAMYBN-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 235000021240 caseins Nutrition 0.000 description 1
- 125000002091 cationic group Chemical group 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 238000011210 chromatographic step Methods 0.000 description 1
- 238000005345 coagulation Methods 0.000 description 1
- 239000003240 coconut oil Substances 0.000 description 1
- 235000019864 coconut oil Nutrition 0.000 description 1
- 239000006103 coloring component Substances 0.000 description 1
- 239000000470 constituent Substances 0.000 description 1
- 238000011035 continuous diafiltration Methods 0.000 description 1
- 238000010924 continuous production Methods 0.000 description 1
- 238000004132 cross linking Methods 0.000 description 1
- 239000008367 deionised water Substances 0.000 description 1
- 229910021641 deionized water Inorganic materials 0.000 description 1
- 150000008266 deoxy sugars Chemical class 0.000 description 1
- 230000001419 dependent effect Effects 0.000 description 1
- 238000011033 desalting Methods 0.000 description 1
- 238000009826 distribution Methods 0.000 description 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 description 1
- 208000016139 endolymphatic sac tumor Diseases 0.000 description 1
- 238000011013 endotoxin removal Methods 0.000 description 1
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 1
- 239000011552 falling film Substances 0.000 description 1
- 235000019197 fats Nutrition 0.000 description 1
- 230000002349 favourable effect Effects 0.000 description 1
- 239000010408 film Substances 0.000 description 1
- 239000000706 filtrate Substances 0.000 description 1
- 229940013317 fish oils Drugs 0.000 description 1
- 238000003818 flash chromatography Methods 0.000 description 1
- 125000002446 fucosyl group Chemical group C1([C@@H](O)[C@H](O)[C@H](O)[C@@H](O1)C)* 0.000 description 1
- 108020001507 fusion proteins Proteins 0.000 description 1
- 102000037865 fusion proteins Human genes 0.000 description 1
- 239000008103 glucose Substances 0.000 description 1
- 150000004676 glycans Chemical class 0.000 description 1
- MNQZXJOMYWMBOU-UHFFFAOYSA-N glyceraldehyde Chemical compound OCC(O)C=O MNQZXJOMYWMBOU-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 238000000338 in vitro Methods 0.000 description 1
- 238000011065 in-situ storage Methods 0.000 description 1
- 238000009776 industrial production Methods 0.000 description 1
- 239000002198 insoluble material Substances 0.000 description 1
- 238000009434 installation Methods 0.000 description 1
- 150000002584 ketoses Chemical class 0.000 description 1
- 229940031154 kluyveromyces marxianus Drugs 0.000 description 1
- 229930191176 lacto-N-biose Natural products 0.000 description 1
- JCQLYHFGKNRPGE-FCVZTGTOSA-N lactulose Chemical compound OC[C@H]1O[C@](O)(CO)[C@@H](O)[C@@H]1O[C@H]1[C@H](O)[C@@H](O)[C@@H](O)[C@@H](CO)O1 JCQLYHFGKNRPGE-FCVZTGTOSA-N 0.000 description 1
- 229960000511 lactulose Drugs 0.000 description 1
- PFCRQPBOOFTZGQ-UHFFFAOYSA-N lactulose keto form Natural products OCC(=O)C(O)C(C(O)CO)OC1OC(CO)C(O)C(O)C1O PFCRQPBOOFTZGQ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 150000002632 lipids Chemical class 0.000 description 1
- 239000007791 liquid phase Substances 0.000 description 1
- 238000011068 loading method Methods 0.000 description 1
- 239000006166 lysate Substances 0.000 description 1
- 229910001629 magnesium chloride Inorganic materials 0.000 description 1
- 235000011147 magnesium chloride Nutrition 0.000 description 1
- 239000011159 matrix material Substances 0.000 description 1
- 230000003278 mimic effect Effects 0.000 description 1
- 238000002156 mixing Methods 0.000 description 1
- 125000000896 monocarboxylic acid group Chemical group 0.000 description 1
- 125000001483 monosaccharide substituent group Chemical group 0.000 description 1
- 229950006780 n-acetylglucosamine Drugs 0.000 description 1
- ZQPPMHVWECSIRJ-KTKRTIGZSA-N oleic acid group Chemical group C(CCCCCCC\C=C/CCCCCCCC)(=O)O ZQPPMHVWECSIRJ-KTKRTIGZSA-N 0.000 description 1
- 230000020477 pH reduction Effects 0.000 description 1
- 239000002540 palm oil Substances 0.000 description 1
- 230000036961 partial effect Effects 0.000 description 1
- 239000012071 phase Substances 0.000 description 1
- 229930029653 phosphoenolpyruvate Natural products 0.000 description 1
- DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N phosphoenolpyruvic acid Chemical compound OC(=O)C(=C)OP(O)(O)=O DTBNBXWJWCWCIK-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229920001467 poly(styrenesulfonates) Polymers 0.000 description 1
- 239000005017 polysaccharide Substances 0.000 description 1
- 229920003053 polystyrene-divinylbenzene Polymers 0.000 description 1
- 239000001508 potassium citrate Substances 0.000 description 1
- 229960002635 potassium citrate Drugs 0.000 description 1
- QEEAPRPFLLJWCF-UHFFFAOYSA-K potassium citrate (anhydrous) Chemical compound [K+].[K+].[K+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O QEEAPRPFLLJWCF-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 235000011082 potassium citrates Nutrition 0.000 description 1
- 238000001556 precipitation Methods 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000012545 processing Methods 0.000 description 1
- 238000011027 product recovery Methods 0.000 description 1
- 239000008213 purified water Substances 0.000 description 1
- 230000000630 rising effect Effects 0.000 description 1
- 238000002390 rotary evaporation Methods 0.000 description 1
- 239000003813 safflower oil Substances 0.000 description 1
- 235000005713 safflower oil Nutrition 0.000 description 1
- 238000005070 sampling Methods 0.000 description 1
- 239000013049 sediment Substances 0.000 description 1
- 125000005629 sialic acid group Chemical group 0.000 description 1
- 235000020183 skimmed milk Nutrition 0.000 description 1
- 150000003384 small molecules Chemical class 0.000 description 1
- 229910052708 sodium Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000001509 sodium citrate Substances 0.000 description 1
- NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K sodium citrate Chemical compound O.O.[Na+].[Na+].[Na+].[O-]C(=O)CC(O)(CC([O-])=O)C([O-])=O NLJMYIDDQXHKNR-UHFFFAOYSA-K 0.000 description 1
- 235000011083 sodium citrates Nutrition 0.000 description 1
- 229910001415 sodium ion Inorganic materials 0.000 description 1
- 239000007790 solid phase Substances 0.000 description 1
- 239000012265 solid product Substances 0.000 description 1
- 239000002904 solvent Substances 0.000 description 1
- 238000010561 standard procedure Methods 0.000 description 1
- 238000003756 stirring Methods 0.000 description 1
- 238000003860 storage Methods 0.000 description 1
- 239000010902 straw Substances 0.000 description 1
- 238000012799 strong cation exchange Methods 0.000 description 1
- 239000000758 substrate Substances 0.000 description 1
- 125000001273 sulfonato group Chemical group [O-]S(*)(=O)=O 0.000 description 1
- 239000002600 sunflower oil Substances 0.000 description 1
- 230000002195 synergetic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001225 therapeutic effect Effects 0.000 description 1
- QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H tricalcium bis(phosphate) Chemical compound [Ca+2].[Ca+2].[Ca+2].[O-]P([O-])([O-])=O.[O-]P([O-])([O-])=O QORWJWZARLRLPR-UHFFFAOYSA-H 0.000 description 1
- 235000013337 tricalcium citrate Nutrition 0.000 description 1
- 238000013060 ultrafiltration and diafiltration Methods 0.000 description 1
- 235000015112 vegetable and seed oil Nutrition 0.000 description 1
- 239000008158 vegetable oil Substances 0.000 description 1
- 239000011782 vitamin Substances 0.000 description 1
- 235000013343 vitamin Nutrition 0.000 description 1
- 229940088594 vitamin Drugs 0.000 description 1
- 229930003231 vitamin Natural products 0.000 description 1
- 235000019155 vitamin A Nutrition 0.000 description 1
- 239000011719 vitamin A Substances 0.000 description 1
- 235000019156 vitamin B Nutrition 0.000 description 1
- 239000011720 vitamin B Substances 0.000 description 1
- 235000019164 vitamin B2 Nutrition 0.000 description 1
- 239000011716 vitamin B2 Substances 0.000 description 1
- 235000019154 vitamin C Nutrition 0.000 description 1
- 239000011718 vitamin C Substances 0.000 description 1
- 235000019166 vitamin D Nutrition 0.000 description 1
- 239000011710 vitamin D Substances 0.000 description 1
- 239000012610 weak anion exchange resin Substances 0.000 description 1
- 235000021119 whey protein Nutrition 0.000 description 1
Classifications
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/02—Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
- B01D61/029—Multistep processes comprising different kinds of membrane processes selected from reverse osmosis, hyperfiltration or nanofiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/02—Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
- B01D61/025—Reverse osmosis; Hyperfiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/02—Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
- B01D61/027—Nanofiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/02—Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
- B01D61/027—Nanofiltration
- B01D61/0271—Nanofiltration comprising multiple nanofiltration steps
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/02—Reverse osmosis; Hyperfiltration ; Nanofiltration
- B01D61/04—Feed pretreatment
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/14—Ultrafiltration; Microfiltration
- B01D61/145—Ultrafiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/58—Multistep processes
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/04—Specific process operations in the feed stream; Feed pretreatment
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/18—Details relating to membrane separation process operations and control pH control
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/26—Further operations combined with membrane separation processes
- B01D2311/2623—Ion-Exchange
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/26—Further operations combined with membrane separation processes
- B01D2311/2626—Absorption or adsorption
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/26—Further operations combined with membrane separation processes
- B01D2311/2673—Evaporation
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/26—Further operations combined with membrane separation processes
- B01D2311/2676—Centrifugal separation
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2311/00—Details relating to membrane separation process operations and control
- B01D2311/26—Further operations combined with membrane separation processes
- B01D2311/2699—Drying
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D2315/00—Details relating to the membrane module operation
- B01D2315/16—Diafiltration
-
- B—PERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
- B01—PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
- B01D—SEPARATION
- B01D61/00—Processes of separation using semi-permeable membranes, e.g. dialysis, osmosis or ultrafiltration; Apparatus, accessories or auxiliary operations specially adapted therefor
- B01D61/14—Ultrafiltration; Microfiltration
- B01D61/147—Microfiltration
Landscapes
- Engineering & Computer Science (AREA)
- Chemical & Material Sciences (AREA)
- Water Supply & Treatment (AREA)
- Nanotechnology (AREA)
- Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
De uitvinding heeft betrekking op een methode voor de terugwinning en de zuivering van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide (HMO) uit een fermentatiebouillon, die bestaat uit de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, de zuivering van de HMO-bevattende stroom door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraang met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, de zuivering van de HMO-bevattende stroom door nanofiltratie, de concentratie van de gezuiverde HMO-bevattende stroom en de droging van de gezuiverde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen. Bovendien heeft de uitvinding ook betrekking op een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding, en op het gebruik ervan in levensmiddelen, voeder en medische toepassingen.
Description
' BE2022/5466
SCHEIDING VAN MOEDERMELKOLIGOSACHARIDEN UIT EEN
FERMENTATIEBOUILLON
GEBIED VAN DE UITVINDING
De uitvinding heeft betrekking op de scheiding en de isolatie van neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden (HMO's) uit een reactiemengsel waarin ze zijn geproduceerd.
ACHTERGROND VAN DE UITVINDING
In de afgelopen decennia is de interesse in de bereiding en commercialisering van moedermelkoligosachariden (HMO's) gestaag toegenomen. Het belang van HMO's houdt rechtstreeks verband met hun unieke biologische activiteiten. Daarom zijn HMO's belangrijke potentiële producten voor voedings- en therapeutische doeleinden geworden. Er werd dan ook gezocht naar goedkope manieren om HMO's industrieel te produceren.
Tot vandaag zijn de structuren van meer dan 140 HMO's bepaald en waarschijnlijk zijn er aanzienlijk meer aanwezig in moedermelk (Urashima et al.: Milk oligosaccharides, Nova
Biomedical Books, 2011; Chen Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 72, 113 (2015)). De HMO's bevatten een lactosedeel (GalB1-4Glc) aan het reducerende uiteinde en kunnen worden verlengd met een N-acetylglucosaminedeel of een of meerdere N-acetyllactosaminedelen (GalB1-4GIcNAc) en/of een lacto-N-biosedeel (GalB1-3GlcNAc). Lactose en de N- acetyllactosaminyl- of lacto-N-biosylderivaten van lactose kunnen verder worden gesubstitueerd met een of meerdere fucose- en/of siaalzuurresiduen of lactose kan worden gesubstitueerd met een extra galactose om de tot dusver bekende HMO's te verkrijgen.
De inspanningen voor de ontwikkeling van processen voor de synthese van HMO's, inclusief gesialyleerde HMO's, zijn in de laatste tien jaar sterk toegenomen wegens hun rol in talrijke menselijke biologische processen. In dit verband zijn processen ontwikkeld voor de productie van HMO's door microbiële fermentaties, enzymatische processen, chemische syntheses of combinaties van deze technologieën.
De directe fermentatieve productie van HMO's, vooral van HMO's die een trisacharide zijn, is onlangs in de praktijk gebracht (Han et al. Biotechnol. Adv. 30, 1268 (2012) en hierin aangegeven referenties). Bij een dergelijke fermentatietechnologie werd een recombinant Æ. coli-systeem gebruikt waarbij een of meerdere types glycosyltransferases afkomstig van virussen of bacteriën zijn gecoëxpresseerd om exogeen toegevoegde lactose te glycosyleren, die is geïnternaliseerd door de LacY-permease van de Æ. coli. Het gebruik van een recombinante glycosyltransferase, voornamelijk reeksen van recombinante glycosyltransferasen voor de productie van oligosachariden met vier of meer monosacharide-
° BE2022/5466 eenheden, heeft echter altijd geleid tot de vorming van bijproducten, wat resulteert in een complex mengsel van oligosachariden in de fermentatiebouillon. Verder bevat een fermentatiebouillon onvermijdelijk een uitgebreid gamma van niet-oligosacharidestoffen zoals cellen, celfragmenten, eiwitten, erwitfragmenten, DNA, DNA-fragmenten, endotoxinen, gekarameliseerde bijproducten, mineralen, zouten of andere geladen moleculen. Daarom is het een bijzondere uitdaging om neutrale of gesialyleerde HMO's uit een complexe matrix zoals een fermentatiebouillon te isoleren.
Voor de scheiding van HMO's van koolhydraatbijproducten en andere verontreinigende bestanddelen werd een behandeling met actieve koolstof in combinatie met een gelfiltratiechromatografie voorgesteld als een voorkeursmethode (WO 01/04341, EP-A- 2479263, Dumon et al. Glycoconj. J. 18, 465 (2001), Priem et al. Glycobiology 12, 235 (2002), Drouillard et al. Angew. Chem. Int. Ed. 45, 1778 (2006), Gebus et al. Carbohydr. Res. 361, 83 (2012), Baumgärtner et al. ChemBioChem 15, 1896 (2014)). Hoewel gelfiltratiechromatografie een geschikte methode is voor in het laboratorium, kan die niet efficiënt worden opgeschaald voor industriële productie.
EP-A-2896628 beschrijft een proces voor de zuivering van 2'-FL uit een fermentatiebouillon verkregen door microbiële fermentatie, dat uit de volgende stappen bestaat: ultrafiltratie, harschromatografie met sterke kationenwisseling (H*-vorm), neutralisatie, harschromatografie met sterke anionenwisseling (acetaatvorm), neutralisatie, behandeling met actieve koolstof, elektrodialyse, tweede harschromatografie met sterke kationenwisseling (H*- of Na*-vorm), tweede harschromatografie met sterke anionenwisseling (Cl-vorm), tweede behandeling met actieve koolstof, optionele tweede elektrodialyse en steriele filtratie. Een dergelijk zuiveringsproces is intrinsiek beperkt tot neutrale moedermelkoligosachariden.
WO 2017/182965 en WO 2017/221208 beschrijven een proces voor de zuivering van LNT of
LNnT uit fermentatiebouillon bestaande uit ultrafiltratie, nanofiltratie, behandeling met actieve koolstof en behandeling met hars met sterke kationenwisseling (H”-vorm) gevolgd door hars met zwakke anionenwisseling (basevorm).
WO 2015/188834 en WO 2016/095924 beschrijven de kristallisatie van 2'-FL uit een gezuiverde fermentatiebouillon, waarbij de zuivering bestaat uit ultrafiltratie, nanofiltratie, behandeling met actieve koolstof en behandeling met hars met sterke kationenwisseling (H*- vorm) gevolgd door zwak basisch hars (basevorm).
Eerdere documenten beschreven zuiveringsmethoden die zijn uitgewerkt voor fermentatiebouillons met een laag lactosegehalte of zonder lactose. Volgens deze procedures is lactose die tijdens de fermentatieve productie van een neutrale HMO in overmaat is
> BE2022/5466 toegevoegd, na voltooiing van de fermentatie in situ gehydrolyseerd door de werking van een
B-galactosidase, wat leidt tot een bouillon die in wezen geen residuele lactose meer bevat.
Overeenkomstig beschrijft WO 2012/112777 een reeks stappen om 2'-FL te zuiveren, bestaande uit centrifugeren, het vastleggen van de oligosacharide op koolstof gevolgd door elutie en flashchromatografie op ionenwisselingsmiddelen. WO 2015/106943 beschrijft de zuivering van 2'-FL bestaande uit ultrafiltratie, chromatografie met hars met sterke kationenwisseling (H'-vorm), neutralisatie, chromatografie met hars met sterke anionenwisseling (Cl-vorm), neutralisatie, nanofiltratie/diafiltratie, behandeling met actieve koolstof, elektrodialyse, facultatieve tweede chromatografie met hars met sterke kationenwisseling (Na*-vorm), tweede chromatografie met hars met sterke anionenwisseling (CI-vorm), tweede behandeling met actieve koolstof, optionele tweede elektrodialyse en steriele filtratie. WO 2019/063757 beschrijft een proces voor de zuivering van een neutrale
HMO, bestaande uit het scheiden van biomassa uit fermentatiebouillon en behandeling met een kationenwisselingsmateriaal, een anionenwisselingsmateriaal en een kationenwisselingsadsorptiehars.
Antoine et al. Angew. Chem. Int. Ed. 44, 1350 (2005) en US 2007/0020736 beschreven de productie van 3'-SL en bijbehorende di- en trigesialyleerde lactoses door een genetisch gemodificeerde Æ. coli; de bouillon met ca. 0,8 mM 3'-SL werd als volgt behandeld: adsorptie van de producten uit het gecentrifugeerde supernatans op houtskool/celiet, wegspoelen van de in water oplosbare zouten met gedestilleerd water, elueren van de verbindingen met gradiënt waterig ethanol, scheiding van de gesialyleerde producten op een Biogel-kolom en ontzouten, wat leidde tot 49 mg 3'-SL uit 1 liter bouillon. WO 01/04341 en Priem et al. Glycobiology 12, 235 (2002) beschreven de productie van 3'-SL door een genetisch gemodificeerde Æ. coli; 3'-
SL werd geïsoleerd door de volgende opeenvolging van bewerkingen: warmtepermeabilisatie van de producerende cellen gevolgd door centrifugatie, adsorptie van het product uit het supernatans op houtskool/celiet, wegspoelen van de in water oplosbare zouten met gedestilleerd water, elueren van de verbinding met gradiënt waterig ethanol, binden van de verbinding aan een sterke anionenwisselaar in HCO:'-vorm, elutie van de verbinding met een lineaire gradiënt NaHCO:-oplossing, vervolgens verwijdering van het natriumbicarbonaat met een kationenwisselaar (in H”-vorm), wat leidde tot geïsoleerd 3'-SL met een zuiveringsrendement van 49 %. WO 2007/101862 en Fierfort et al. J. Biotechnol. 134, 261 (2008) beschreven een alternatieve verwerkingsprocedure van een 3'-SL fermentatiebouillon.
De procedure bestaat uit de volgende stappen: warmtepermeabilisatie van de producerende cel, centrifugatie, aanpassing van de pH van het extracellulaire tot 3,0 door de toevoeging van
‘ BE2022/5466 een hars met sterke kationenwisseling in zuurvorm, verwijdering van de neergeslagen eiwitten door centrifugatie, aanpassing van de pH van het supernatans aan 6,0 door de toevoeging van een zwakke anionenwisselaar in basevorm, binding van de sialyllactose aan een anionenwisselaar in HCO:'-vorm, spoeling met gedestilleerd water, elutie van de verbinding met een continue gradiënt NaHCO:-oplossing, verwijdering van het natriumbicarbonaat met een kationenwisselaar (in H”-vorm) tot pH 3,0 is bereikt, vervolgens aanpassing van de pH tot 6,0 met NaOH. Met de bovenstaande zuivering kon 15 g 3'-SL worden geïsoleerd uit 1 liter bouillon met 25,5 g 3'-SL. Drouillard et al. Carbohydr. Res. 345, 1394 (2010)) paste de bovenstaande procedure van Fierfort toe op een fermentatiebouillon met 6'-SL (11 g/l) en een beetje 6,6'-disialyllactose (DSL) en isoleerde zo 3,34 g 6'-SL + DSL in een verhouding van 155/86.
WO 2006/034225 beschrijft twee alternatieve zuiveringen van 3'-SL uit een producerende fermentatiebouillon. Volgens de eerste procedure werd het lysaat van de kweek verdund met gedestilleerd water en geroerd met actieve koolstof/celiet. Het influent werd met water gespoeld, waarna het product met waterig ethanol van de houtskool/celiet werd geëlueerd.
Volgens de tweede methode werden de kweekcellen warmtebehandeld en werden de neergeslagen vaste deeltjes door centrifugatie van het supernatans gescheiden. Het resulterende supernatans werd door een microfilter geleid, het permeaat werd door een 10 kDa-membraan geleid en vervolgens nanogefiltreerd. Het resulterende retentaat werd vervolgens gediafiltreerd om het uiteindelijke monster te verzamelen. Beide zuiveringsmethoden zorgden voor 90-100 mg 3'-SL uit 1 liter fermentatiebouillon.
Gilbert et al. Nature Biotechnol. 16, 769 (1998) en WO 99/31224 beschrijven de enzymatische productie van 3'-SL vanaf lactose, siaalzuur, fosfoenolpyruvaat, ATP en CMP met behulp van een CMP-Neu5Ac synthetase/a-2,3-sialyltransferase fusie-eiwitextract. Het product werd gezuiverd door een opeenvolging van ultrafiltratie (3000 MWCO), C18 omgekeerde-fasechromatografie, nanofiltratie/diafiltratie bij pH = 3 en pH = 7, aanzuring met een hars met sterke kationenwisseling (H”), neutralisatie met NaOH-oplossing en ontkleuring met actieve koolstof.
WO 2009/113861 beschrijft een proces voor de isolatie sialyllactose uit een ontvette en eiwitvrije melkstroom, bestaande uit een contact van deze melkstroom met een eerste anionenwisselaarshars in vrije basevorm en met een vochtgehalte van 30-48 %, zodat de negatief geladen mineralen aan het hars gebonden zijn en de sialyllactose niet, gevolgd door een behandeling met een tweede anionenwisselaarshars in vrije basevorm, van het macroporeuze of geltype, met een vochtgehalte tussen 50 en 70 %, zodat de sialyllactose aan
> BE2022/5466 het hars wordt gebonden. Bij dit proces is de sialyllactose bevattende stroom redelijk verdund (een concentratie van enkele honderden ppm) en is de terugwinning van sialyllactose uit het eerste hars matig.
WO 2017/152918 beschrijft een methode voor het verkrijgen van een gesialyleerd oligosacharide uit een fermentatiebouillon, waarin dit gesialyleerd oligosacharide wordt geproduceerd door het kweken van een genetisch gemodificeerd micro-organisme dat in staat is om dit gesialyleerd oligosacharide te produceren uit een geïnternaliseerde koolhydraatprecursor, bestaande uit de volgende stappen: 1) ultrafiltratie (UF), ii) nanofiltratie (NF), 111) optionele behandeling met actieve koolstof, en iv) behandeling van de bouillon met een hars met sterke anionenwisseling en/of een kationenwisselaarshars.
EP-A-3456836 beschrijft een methode voor de scheiding van een gesialyleerd oligosacharide uit een waterig medium, waarbij de methode bestaat uit een behandeling van een waterige oplossing die dit gesialyleerd oligosacharide bevat, met minstens twee soorten ionenwisselaarshars, waarvan de ene een sterk anionenwisselaarshars in Cl-vorm en de andere een sterk kationenwisselaarshars is.
WO 2019/043029 beschrijft een methode voor de zuivering van gesialyleerde oligosachariden die zijn geproduceerd door microbiële fermentatie of in vitro biokatalyse, waarbij de methode bestaat uit de volgende stappen: 1) de scheiding van biomassa uit de fermentatiebouillon, 11) de verwijdering van kationen uit de fermentatiebouillon of het reactiemengsel, iii) de verwijdering van anionische onzuiverheden uit de fermentatiebouillon of het reactiemengsel, en iv) de verwijdering van verbindingen met een lager molecuulgewicht dan dat van het te zuiveren gesialyleerde oligosacharide uit de fermentatiebouillon of het reactiemengsel.
WO 2019/2291 18 beschrijft een methode voor de zuivering van een sialyllactose uit andere koolhydraten, waarbij de sialyllactose wordt geproduceerd door fermentatie, bestaande uit: a) de scheiding van de celmassa met ultrafiltratie, b) de behandeling met een sterk kationische ionenwisselaar, gevolgd door de behandeling van het filtraat met een sterk anionische ionenwisselaar (Cl’-vorm), c) eerste nanofiltratie, d) tweede nanofiltratie,
° BE2022/5466 e) elektrodialyse, f) omgekeerde osmose, g) behandeling met actieve koolstof, h) steriele filtratie, en 1) sproeidroging.
Er is echter behoefte aan alternatieve en/of verbeterde procedures voor de isolatie en zuivering van neutrale of gesialyleerde HMO's uit niet-koolhydraatbestanddelen van de fermentatiebouillon waarin ze zijn geproduceerd, met name procedures die geschikt zijn voor industriële schaal, om het terugwinningsrendement van de neutrale of gesialyleerde HMO's te verbeteren en/of de geavanceerde methoden te vereenvoudigen terwijl de zuiverheid van de neutrale of gesialyleerde HMO's minstens behouden blijft en bij voorkeur wordt verbeterd.
Bovendien leiden dergelijke alternatieve zuiveringsprocedures bij voorkeur tot gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO's die vrij zijn van eiwitten en recombinant materiaal afkomstig van de gebruikte recombinante microbiële stammen, en die dus zeer geschikt zijn voor gebruik in levensmiddelen, medische levensmiddelen en voedertoepassingen.
SAMENVATTING VAN DE UITVINDING
De uitvinding heeft betrekking op een methode voor de terugwinning en de zuivering van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide (HMO) uit een fermentatiebouillon, die bestaat uit de volgende stappen: a. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen; b. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is en waarbij de afstotingsfactor voor de
HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden; c. de zuivering van het bovengenoemde permeaat door nanofiltratie en opvang van het
HMO-bevattende retentaat; d. de concentratie van het HMO-bevattende retentaat; en e. de droging van het concentraat om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
7 BE2022/5466
In een ander aspect heeft de uitvinding betrekking op een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding.
Een ander aspect van de uitvinding heeft betrekking op een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding, voor gebruik in de geneeskunde.
Een ander aspect van de uitvinding heeft betrekking op het gebruik van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding, voor voedings- en/of voedertoepassingen.
Een ander aspect van de uitvinding heeft betrekking op een voedingsmiddel of cosmetisch product dat de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevat, verkregen volgens de methode van de uitvinding.
GEDETAILLEERDE BESCHRIJVING VAN DE UITVINDING
1. Termen en definities
De term ”fermentatiebouillon”, zoals gebruikt in deze specificatie, verwijst naar een product verkregen door de fermentatie van het microbiële organisme. Het fermentatieproduct omvat dus cellen (biomassa), het fermentatiemedium, zouten, residueel substraatmateriaal en alle moleculen/bijproducten die tijdens de fermentatie ontstaan, zoals de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO. Na elke stap van de zuiveringsmethode worden een of meerdere bestanddelen van het fermentatieproduct verwijderd, wat leidt tot een meer gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO.
De term ”monosacharide” duidt op een suiker met 5-9 koolstofatomen, zijnde een aldose (bijv. D-glucose, D-galactose, D-mannose, D-ribose, D-arabinose, L-arabinose, D-xylose enz.), een ketose (bijv. D-fructose, D-sorbose, D-tagatose enz. ), een deoxysuiker (bijv. L- rhamnose, L-fucose enz.), een deoxyaminosuiker (bijv. N-acetylglucosamine, N- acetylmannosamine, N-acetylgalactosamine enz.), een ureumzuur, een ketoaldonzuur (bijv. siaalzuur) of equivalenten daarvan.
De term ”disacharide” betekent een koolhydraat bestaande uit twee monosacharide-eenheden die via een interglycosidebinding met elkaar zijn verbonden.
De term ”trioligosacharide” of hoger betekent een suikerpolymeer dat bestaat uit minstens drie, bij voorkeur drie tot acht, en bij voorkeur drie tot zes monosacharide-eenheden (vide supra). De oligosacharide kan een lineaire of vertakte structuur hebben die monosacharide- eenheden bevat die via een interglycosidebinding met elkaar zijn verbonden.
De term ”moedermelkoligosacharide” of ”HMO” betekent een complex koolhydraat dat voorkomt in moedermelk (Urashima et al.: Milk Oligosaccharides, Nova Medical Books, NY,
° BE2022/5466 2011; Chen Adv. Carbohydr. Chem. Biochem. 72, 113 (2015)). De HMO's hebben een kernstructuur bestaande uit een lactose-eenheid aan het reducerende uiteinde die wordt verlengd i) door een B-N-acetyl-glucosaminylgroep of ii) door een of meerdere B-N-acetyl- lactosaminyl- en/of een of meerdere B-lacto-N-biosyl-eenheden. De kernstructuren kunnen worden gesubstitueerd door een a-L-fucopyranosyl- en/of een a-N-acetyl-neuraminyl (sialyl)- deel. In dit verband zijn de niet-zure (of neutrale) HMO's vrij van een sialylresidu en hebben de zure HMO's minstens één sialylresidu in hun structuur. De niet-zure (of neutrale) HMO's kunnen gefucosyleerd of niet-gefucosyleerd zijn. Voorbeelden van dergelijke neutrale niet- gefucosyleerde HMO's zijn lacto-N-triose II (LNTri, GlcNAc{(B1-3)Gal(B1-4)Glc), lacto-N- tetraose (LNT), lacto-N-neotetraose (LNnT), lacto-N-neohexaose (LNnH), para-lacto-N- neohexaose (pLNnH), para-lacto-N-hexaose (pLNH) en lacto-N-hexaose (LNH).
Voorbeelden van neutrale gefucosyleerde HMO's zijn 2'-fucosyllactose (2'-FL), lacto-N- fucopentaose I (LNFP-I), lacto-N-difucohexaose I (LNDFH-I), 3-fucosyllactose (3-FL), difucosyllactose (DFL), lacto-N-fucopentaose II (LNFP-H), lacto-N-fucopentaose III (LNFP-
III), lacto-N-difucohexaose III (LNDFH-III), fucosyl-lacto-N-hexaose II (FLNH-II), lacto-N- fucopentaose V (LNFP-V), lacto-N-difucohexaose II (LNDFH-H), fucosyl-lacto-N-hexaose I (FLNH-I), fucosyl-para-lacto-N-hexaose I (FPLNH-I), fucosyl-para-lacto-N-neohexaose II (F-pLNnH II) en fucosyl-lacto-N-neohexaose (FLNnH). Voorbeelden van zure HMO's zijn 3'- sialyllactose (3'-SL), 6'-sialyllactose (6'-SL), 3-fucosyl-3'-sialyllactose (FSL), LST a, fucosyl-
LST a (ELST a), LST b, fucosyl-LST b (FLST b), LST c fucosyl-LST c (FLST c), sialyl-LNH (SLNH), sialyl-lacto-N-hexaose (SLNH), sialyl-lacto-N-neohexaose I (SLNH-I), sialyl-lacto-
N-neohexaose II (SLNH-IT) en disialyl-lacto-N-tetraose (DSLNT).
De term ”sialyl” of ”sialyldeel” duidt op het glycosylresidu van siaalzuur (N-acetyl- neuraminezuur, NeuSAc), bij voorkeur verbonden met een a-binding: to Pp! COOH
HO Ho
De term ”fucosyl” betekent een L-fucopyranosylgroep, bij voorkeur verbonden met een a- interglycosidebinding: 27 OH
HO
OH
? BE2022/5466 ”N-acetyl-glucosaminyl” betekent een N-acetyl-2-amino-2-deoxy-D-glucopyranosylgroep (GleNAc), bij voorkeur verbonden met een B-binding:
OH a %
HO
NHAc ”N-acetyl-lactosaminyl” betekent het glycosylresidu van N-acetyl-lactosamine (LacNAc,
GalpB1-4GlcNAc), bij voorkeur verbonden met een B-binding:
OH OH
OH eg °
HO na %
NHAc
Verder betekent de term ”lacto-N-biosyl” het glycosylresidu van lacto-N-biose (LNB,
GalpB1-3GlcNAc), bij voorkeur verbonden met een B-binding:
OH OH OH
Cala
HO O
OH NHAC
De term ”biomassa”, in de context van fermentatie, verwijst naar de gesuspendeerde, neergeslagen of onoplosbare materialen afkomstig van fermentatiecellen, zoals intacte cellen, ontregelde cellen, celfragmenten, eiwitten, eiwitfragmenten, polysachariden.
De term ”Brix” verwijst naar graden Brix, d.w.z. het suikergehalte van een waterige oplossing (g suiker in 100 g oplossing). In dit verband verwijst de Brix van een moedermelkoligosacharideoplossing van deze toepassing naar het totale koolhydraatgehalte van de oplossing, inclusief de moedermelkoligosachariden en de begeleidende koolhydraten.
Brix wordt met een geijkte refractometer gemeten. ”Demineralisatie” betekent bij voorkeur een proces voor het verwijderen van mineralen of minerale zouten uit een vloeistof. In de context van deze uitvinding kan de demineralisatie plaatsvinden in de nanofiltratiestap, vooral wanneer die wordt gecombineerd met diafiltratie of door kation- en anionenwisselingsharsen te gebruiken (indien van toepassing).
De term ”eiwitvrij waterig medium” betekent bij voorkeur een waterig medium of een waterige bouillon, afkomstig van een fermentatie- of enzymatisch proces dat een neutraal of gesialyleerd HMO oplevert en dat is behandeld voor de verwijdering van nagenoeg alle eiwitten en peptiden, peptidefragmenten, RNA's en DNA's en endotoxinen en glycolipiden die de uiteindelijke zuivering van een of meerdere neutrale of gesialyleerde HMO's en/of een of meerdere bestanddelen ervan, met name het mengsel ervan, uit de fermentatiebouillon of het enzymatische procesmengsel zouden kunnen hinderen.
De term ”HMO-bevattende stroom” betekent een waterig medium dat neutrale of gesialyleerde HMO's bevat die zijn verkregen uit een fermentatieproces en dat is behandeld om gesuspendeerde deeltjes en verontreinigingen uit het proces te verwijderen, met name cellen, celbestanddelen, onoplosbare metabolieten en afval dat de uiteindelijke zuivering van een of meerdere hydrofiele oligosacharideneen, in het bijzonder een of meerdere neutrale of gesialyleerde HMO's en/of een of meerdere bestanddelen ervan, met name mengels ervan, zouden kunnen hinderen.
De term ”biomassa-afvalstroom” betekent bij voorkeur gesuspendeerde deeltjes en verontreinigingen van het fermentatieproces, met name cellen, celbestanddelen, onoplosbare metabolieten en afval.
De afstotingsfactor van een zout (in procent) wordt berekend als (1-kp/kr)-100, waarbij kp het geleidingsvermogen van het zout in het permeaat en kr het geleidingsvermogen van het zout in het retentaat is.
De afstotingsfactor van een koolhydraat (in procent) wordt berekend als (1-Cp/Cr)-100, waarbij Cp de concentratie van het koolhydraat in het permeaat en C: de concentratie van het koolhydraat in het retentaat is.
De term ”diafiltratie” verwijst naar de toevoeging van oplosmiddel (water) tijdens het membraanfiltratieproces. Als diafiltratie tijdens ultrafiltratie wordt toegepast, verbetert dit het rendement van de gewenste HMO in het permeaat. Als diafiltratie tijdens nanofiltratie wordt toegepast, verbetert dit de scheiding van kleinschalige onzuiverheden en zouten naar het permeaat. Het rendement van de opgeloste stof en dus de verrijking van het product kunnen worden berekend aan de hand van de formules die de professional kent op basis van de afstotingsfactoren en de relatieve hoeveelheid toegevoegd water.
De term ”concentreren”, zoals gebruikt in stap d) van de methode volgens de uitvinding, verwijst naar de verwijdering van vloeistof, meestal water, waardoor een hogere concentratie van een neutrale of gesialyleerde HMO in de gezuiverde HMO-bevattende productstroom ontstaat. 2. Methode voor de zuivering van neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon
De uitvinding heeft betrekking op een methode voor de terugwinning en de zuivering van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide (HMO) uit een fermentatiebouillon, die bestaat uit de volgende stappen:
ll BE2022/5466 a. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen; b. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is en waarbij de afstotingsfactor voor de
HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden; c. de zuivering van het bovengenoemde permeaat door nanofiltratie en opvang van het
HMO-bevattende retentaat; d. de concentratie van het HMO-bevattende retentaat; en e. de droging van het concentraat om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
Bij voorkeur bevat de methode geen behandeling met een basisch anionenwisselaarshars, meer bij voorkeur bevat de methode geen behandeling met een ionenwisselaarshars.
Bij voorkeur bevat de methode geen behandeling met een basisch anionenwisselaarshars en elektrodialyse, meer bij voorkeur bevat de methode geen behandeling met een ionenwisselaarshars en elektrodialyse.
Bij voorkeur bestaat de methode volgens de uitvinding uit de stappen a)-e).
Bij voorkeur worden de methodestappen a)-e) uitgevoerd in de opeenvolgende volgorde a)-e) zoals hierboven vermeld.
De fermentatiebouillon
In een uitvoering werd de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide in de fermentatiebouillon verkregen door het kweken van een genetisch gemodificeerd micro- organisme dat in staat is om deze neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide te produceren uit een geïnternaliseerde koolhydraatprecursor. Het microbiële organisme is een genetisch gemodificeerde bacterie of gist, zoals een E. coli-stam, een Bacillus-stam, een
Saccharomyces-stam, een Candida-stam, een Hansenula-stam, een Kluyveromyces-stam, een
Pichia-stam, een Schizosaccharomyces-stam, een Schwanniomyces-stam, een Torulaspora- stam, een Yarrowia-stam of een Zygosaccharomyces-stam. Meer bij voorkeur is de gist
Saccharomyces cerevisiae, Hansenula polymorpha, Kluyveromyces lactis, Kluyveromyces marxianus, Pichia pastoris, Pichia methanolica, Pichia stipites, Candida boidinii,
Schizosaccharomyces pombe, Schwanniomyces occidentalis, Torulaspora delbrueckii,
Yarrowia lipolytica, Zygosaccharomyces rouxii, Zygosaccharomyces bailii; en de Bacillus is
Bacillus amyloliquefaciens, Bacillus licheniformis of Bacillus subtilis.
In een uitvoering is minstens één neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide aanwezig in de fermentatiebouillon niet verkregen door microbiële fermentatie, maar is het bijvoorbeeld aan de fermentatiebouillon toegevoegd nadat het is geproduceerd door een niet- microbiële methode, bijvoorbeeld chemische en/of enzymatische synthese.
In een uitvoering is de zuiverheid van de neutrale of gesialyleerde HMO in de fermentatiebouillon <70 %, bij voorkeur <60 %, nog meer bij voorkeur <50 %, meest bij voorkeur <40 %.
De HMO is bij voorkeur een neutrale HMO. In een uitvoering wordt de neutrale HMO bij voorkeur gekozen uit de groep bestaande uit 2'-fucosyllactose, 3-fucosyllactose, 2',3- difucosyllactose, lacto-N-triose II, lacto-N-tetraose, lacto-N-neotetraose, lacto-N- fucopentaose I, lacto-N-fucopentaose II, lacto-N-fucopentaose III, lacto-N-fucopentaose V, lacto-N-neofucopentaose V (alternatieve naam: lacto-N-fucopentaose VI), lacto-N- difucohexaose I, lacto-N-difucohexaose II, lacto-N-difucohexaose III, 6'-galactosyllactose, 3'- galactosyllactose, lacto-N-hexaose, lacto-N-neohexaose en elk mengsel daarvan. Nog meer bij voorkeur is de HMO 2'-fucosyllactose, 3-fucosyllactose, 2',3-difucosyllactose, lacto-N- triose IL, lacto-N-tetraose, lacto-N-neotetraose of een lacto-N-fucopentaose, meer bij voorkeur 2'-fucosyllactose, LNT, LNnT of een lacto-N-fucopentaose.
In een uitvoering wordt de gesialyleerde HMO gekozen uit de groep bestaande uit 3'- sialyllactose (3'-SL) en 6'-sialyllactose (6'-SL).
In een uitvoering is de HMO in de fermentatiebouillon één enkele neutrale of gesialyleerde
HMO.
In een uitvoering is de HMO in de fermentatiebouillon een mengsel van verschillende afzonderlijke neutrale of gesialyleerde HMO's.
In een uitvoering is de HMO een mengsel van twee afzonderlijke neutrale of gesialyleerde
HMO's. In een andere uitvoering is de HMO een mengsel van drie afzonderlijke neutrale of gesialyleerde HMO's. In een andere uitvoering is de HMO een mengsel van vier afzonderlijke neutrale of gesialyleerde HMO's. In een andere uitvoering is de HMO een mengsel van vijf afzonderlijke neutrale of gesialyleerde HMO's.
In een uitvoering is de neutrale of gesialyleerde HMO in de fermentatiebouillon een mengsel van een neutrale of gesialyleerde HMO die door microbiële fermentatie is verkregen en een
HMO die niet door microbiële fermentatie is verkregen, maar bijv. door chemische en/of enzymatische synthese.
De scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen in stap a) van de methode volgens de uitvinding
Instap a) van de methode volgens de uitvinding wordt de HMO-bevattende stroom van de biomassa-afvalstroom gescheiden.
De fermentatiebouillon bevat doorgaans, naast de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO, de biomassa van de cellen van het gebruikte micro-organisme samen met eiwitten, eiwitfragmenten, peptiden, DNA's, RNA's, endotoxinen, biogene aminen, aminozuren, organische zuren, anorganische zouten, niet-gereageerde koolhydraatacceptoren zoals lactose, suikerachtige bijproducten, monosachariden, kleurstoffen enz. In stap a) van de methode volgens de uitvinding wordt de biomassa van de neutrale of gesialyleerde HMO gescheiden.
Bij voorkeur wordt de biomassa van de neutrale of gesialyleerde HMO in stap a) gescheiden door microfiltratie. De microfiltratiestap is bedoeld om de biomassa en, bij voorkeur, ook de hoogmoleculaire bestanddelen en gesuspendeerde vaste stoffen te scheiden van de laagmoleculaire oplosbare bestanddelen van de bouillon, die door het microfiltratiemembraan in het permeaat gaan. Dit microfiltratiepermeaat is een waterige oplossing die de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevat, ook wel de HMO-bevattende stroom genoemd, terwijl het microfiltratieretentaat de biomassa-afvalstroom omvat. Elk conventioneel microfiltratiemembraan met een poriegrootte van 0,1 tot 10 um kan worden gebruikt. Stap a) van de methode volgens de uitvinding kan meer dan één microfiltratiestap met membranen met een verschillende poriegrootte bevatten, bijvoorbeeld met toepassing van twee microfiltratiescheidingen, waarbij het eerste membraan een grotere poriegrootte heeft dan het tweede membraan. Deze opstelling kan zorgen voor een betere scheidingsefficiëntie van de bestanddelen met een hoger molecuulgewicht van de bouillon. Na deze scheidingsstap bevat het permeaat de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden die van belang zijn.
In een andere voorkeursuitvoering wordt de biomassa in stap a) door ultrafiltratie gescheiden van de neutrale of gesialyleerde HMO. De ultrafiltratiestap 1s bedoeld om de biomassa en, bij voorkeur, ook de hoogmoleculaire bestanddelen en gesuspendeerde vaste stoffen te scheiden van de laagmoleculaire oplosbare bestanddelen van de bouillon, die door het ultrafiltrattemembraan in het permeaat gaan. Het ultrafiltratiepermeaat is een waterige oplossing die de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevat, ook wel de
HMO-bevattende stroom genoemd, terwijl het ultrafiltratieretentaat de biomassa-afvalstroom omvat.
Elk conventioneel ultrafiltratiemembraan met een molecuulgewicht cut-off (MWCO) hoger dan 10 kDa en lager dan 500 kDa, zoals 10-50 kDa, 50-100 kDa, 100-250 kDa, 300-400 kDa of een ander geschikt subbereik kan worden gebruikt. Het membraanmateriaal kan keramisch zijn of gemaakt zijn van een synthetisch of natuurlijk polymeer, bijv. polysulfon, polyvinylideenfluoride, polyacrylonitril, polypropyleen, cellulose, celluloseacetaat of polymelkzuur. De ultrafiltratiestap kan in doodlopende of doorstromingsmodus worden toegepast. Stap a) van de methode volgens de uitvinding kan meer dan één ultrafiltratiestap met membranen met een verschillende MWCO zoals hierboven gedefinieerd bevatten, bijvoorbeeld met toepassing van twee ultrafiltratiescheidingen, waarbij het eerste membraan een hogere MWCO heeft dan het tweede membraan. Deze opstelling kan zorgen voor een betere scheidingsefficiëntie van de bestanddelen met een hoger molecuulgewicht van de bouillon. Na deze scheidingsstap bevat het permeaat materialen met een molecuulgewicht dat lager is dan de MWCO van het tweede membraan, inclusief de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden die van belang zijn.
In een andere uitvoering wordt de door fermentatie verkregen bouillon onderworpen aan centrifugatie om de biomassa in stap a) van de methode volgens de uitvinding van de neutrale of gesialyleerde HMO (HMO-bevattende stroom) te scheiden. In deze uitvoering vertegenwoordigt het supernatans de HMO-bevattende stroom, terwijl het resterende materiaal, d.w.z. de ”biomassa-afvalstroom”, kan worden gescheiden. Door centrifugatie kan een helder supernatans met de neutrale of gesialyleerde HMO worden verkregen, die de
HMO-bevattende stroom vormt.
De centrifugatie kan op laboratoriumschaal of, bij voorkeur over eerdere centrifugeermethoden, op commerciële schaal (bijv. industriële schaal, volledige productieschaal) plaatsvinden.
In sommige uitvoeringen kan een centrifugatie in meerdere stappen worden gebruikt. Er kan bijvoorbeeld een reeks van 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9 of 10 centrifugatiestappen worden uitgevoerd.
In andere uitvoeringen kan de centrifugatie in één enkele stap gebeuren. De centrifugatie zorgt voor een snelle verwijdering van de biomassa.
In bepaalde uitvoeringen kan een Sedicanter®-centrifuge, ontworpen en geproduceerd door
Flottweg, worden gebruikt.
Dit specifieke type centrifuge is niet beperkend. Er kunnen vele types centrifuges worden gebruikt. Het centrifugeren kan een continu proces zijn. In sommige uitvoeringen kan het centrifugeren een toevoer hebben. Het centrifugeren kan bijvoorbeeld een continue toevoer hebben. In bepaalde uitvoeringen kan het centrifugeren een verwijdering van vaste stoffen omvatten, zoals de verwijdering van natte vaste stoffen. De verwijdering van natte vaste stoffen kan in sommige implementaties continu en in andere implementaties periodiek zijn.
Er kan bijvoorbeeld een conische plaatcentrifuge (bijv. schijkomcentrifuge of schijfstapelscheider) worden gebruikt. De conische plaatcentrifuge kan worden gebruikt om vaste stoffen (doorgaans onzuiverheden) uit vloeistoffen te verwijderen of om twee vloeistoffasen met een grote centrifugale kracht van elkaar te scheiden. De dichtere vaste stoffen of vloeistoffen die aan deze krachten worden onderworpen, bewegen zich naar buiten in de richting van de draaiende komwand, terwijl de minder dichte vloeistoffen zich naar het midden bewegen. De speciale platen (bekend als schijfstapels) vergroten het bezinkingsoppervlak waardoor het scheidingsproces sneller verloopt. Voor verschillende processen worden verschillende stapelontwerpen, schikkingen en vormen gebruikt, afhankelijk van het aanwezige type voeder. De geconcentreerde dichtere vaste stof of vloeistof kan dan continu handmatig of met tussenpozen worden verwijderd, afhankelijk van het ontwerp van de conische plaatcentrifuge. Deze centrifuge is zeer geschikt voor het klaren van vloeistoffen met een kleine hoeveelheid gesuspendeerde vaste stoffen.
De centrifuge werkt volgens het principe van de hellende plaat. Een reeks parallelle platen met een kantelhoek 6 ten opzichte van het horizontale vlak wordt geïnstalleerd om de afstand van de deeltjesbezinking te verkleinen. De reden voor de schuine hoek is dat de neergeslagen vaste stoffen op de platen door de centrifugale kracht naar beneden kunnen glijden, zodat ze zich niet ophopen en het kanaal tussen de aangrenzende platen verstoppen.
Dit type centrifuge bestaat in verschillende ontwerpen, zoals met nozzle, handmatige reiniging, zelfreiniging en hermetisch. De specifieke centrifuge is niet beperkend.
Factoren met een invloed op de centrifuge zijn onder andere de schijfhoek, het effect van de g-kracht, de schijfafstand, de toegevoerde vaste stoffen, de hoek van de kegel voor de afvoer, de afvoerfrequentie en de vloeistofafvoer.
Als alternatief kan een centrifuge met vaste kom (bijv. een decanteercentrifuge) worden gebruikt. Dit is een soort centrifuge volgens het sedimentatieprincipe. Een centrifuge wordt gebruikt om een mengsel van twee substanties met verschillende dichtheid te scheiden door de centrifugale kracht als gevolg van de voortdurende rotatie te gebruiken. Hij wordt doorgaans gebruikt voor het scheiden van mengsels van een vaste stof en een vloeistof, twee vloeistoffen en twee vaste stoffen. Een voordeel van centrifuges met vaste kommen voor industrieel gebruik is de eenvoud van de installatie in vergelijking met andere soorten centrifuges. Er zijn drie ontwerptypes van centrifuges met vaste kommen, namelijk conisch, cilindrisch en conisch-cilindrisch.
Centrifuges met vaste kommen kunnen een aantal verschillende ontwerpen hebben, die allemaal voor de beschreven methode kunnen worden gebruikt. Er kunnen bijvoorbeeld conische centrifuges met vaste kom, cilindrische centrifuges met vaste kom en conisch- cilindrische centrifuges met vaste kom worden gebruikt.
Het centrifugeren kan met een aantal snelheden en verblijftijden worden uitgevoerd. Het centrifugeren kan bijvoorbeeld met een relatieve centrifugale kracht (RCF) van 20000 g, 15000 g, 10000 g of 5000 g worden uitgevoerd. In sommige uitvoeringen kan het centrifugeren met een relatieve centrifugale kracht (RCF) van minder dan 20000 g, 15000 g, 10000 g of 5000 g worden uitgevoerd. In sommige uitvoeringen kan het centrifugeren met een relatieve centrifugale kracht (RCF) van meer dan 20000 g, 15000 g, 10000 g of 5000 g worden uitgevoerd.
In sommige uitvoeringen kan het centrifugeren door het werkvolume worden gekarakteriseerd. In sommige uitvoeringen kan het werkvolume 1, 5, 10, 15, 20, 50, 100, 300, of 500 | zijn. In sommige uitvoeringen kan het werkvolume minder dan 1, 5, 10, 15, 20, 50, 100, 300, of 500 | zijn. In sommige uitvoeringen kan het werkvolume meer dan 1, 5, 10, 15, 20, 50, 100, 300, of 500 1 zijn.
In sommige uitvoeringen kan het centrifugeren door het toevoerdebiet worden gekarakteriseerd. In sommige uitvoeringen kan het toevoerdebiet 100, 500, 1000, 1500, 2000, 5000, 10000, 20000, 40000, of 100000 l/uur zijn. In sommige uitvoeringen kan het toevoerdebiet meer dan 100, 500, 1000, 1500, 2000, 5000, 10000, 20000, 40000, of 100000
Vuur zijn. In sommige uitvoeringen kan het toevoerdebiet minder dan 100, 500, 1000, 1500, 2000, 5000, 10000, 20000, 40000, of 100000 l/uur zijn.
Detijd die aan centrifugeren wordt besteed (bijv. verblijftijd), kan ook variëren. De verblijftijd kan bijvoorbeeld 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, of 10 minuten zijn. In sommige uitvoeringen kan de verblijftijd meer dan 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, of 10 minuten zijn. In sommige uitvoeringen kan de verblijftijd minder dan 0,1, 0,2, 0,5, 1, 2, 3, 4, 5,6, 7, 8, 9, of 10 minuten zijn.
Elk van de bovengenoemde eigenschappen van het supernatans kan door één keer centrifugeren worden verkregen. Ze kunnen ook door meerdere keren te centrifugeren worden geproduceerd.
Gezien het bovenstaande kan stap a) van de methode volgens de uitvinding worden uitgevoerd via microfiltratie zoals hierboven gedefinieerd, ultrafiltratie zoals hierboven gedefinieerd of centrifugatie, of via een combinatie van: ultrafiltratie en centrifugatie, microfiltratie en ultrafiltratie, microfiltratie en centrifugatie, microfiltratie en ultrafiltratie en centrifugatie. Bij voorkeur wordt methodestap a) uitgevoerd door ultrafiltratie zoals hierboven gedefinieerd om de HMO-bevattende stroom te verkrijgen die van de biomassa-afvalstroom 1s gescheiden.
Bij voorkeur is het rendement van de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO in het permeaat/supernatans na de microfiltratie-, ultrafiltratie- of centrifugatiestap, of een combinatie daarvan, uitgevoerd in stap a) groter dan 50 %, groter dan 60 %, groter dan 70 %, groter dan 80 %, groter dan 90 %, groter dan 91 %, groter dan 92 %, groter dan 93 %, groter dan 94%, groter dan 95 %, groter dan 96 %, groter dan 97 %, groter dan 98 %, of groter dan 99 %.
Voor de ultrafiltratie- en/of de microfiltratie- en/of de centrifugatiestap kan de fermentatiebouillon aan een voorbehandelingsstap worden onderworpen. De voorbehandeling van de fermentatiebouillon kan een aanpassing van de pH en/of een verdunning en/of een warmtebehandeling omvatten. In bepaalde implementaties kunnen de aanpassing van de pH, de verdunning en de warmtebehandeling allemaal worden uitgevoerd. In alternatieve uitvoeringen kunnen de aanpassing van de pH en de verdunning worden uitgevoerd. In alternatieve uitvoeringen kunnen de aanpassing van de pH en de warmtebehandeling worden uitgevoerd. In alternatieve uitvoeringen kunnen de warmtebehandeling en de verdunning worden uitgevoerd. Een combinatie van verschillende voorbehandelingsmethoden kan een verbeterd synergetisch effect opleveren dat bij afzonderlijke voorbehandelingen niet wordt aangetroffen.
In bepaalde uitvoeringen kunnen een of meerdere van de bovengenoemde voorbehandelingsstappen plaatsvinden tijdens de verwijdering van biomassa in stap a) door centrifugatie en/of ultrafiltratie en/of microfiltratie. Bijvoorbeeld tussen de stappen in een meerstapscentrifuge of het centrifugeervat kan de fermentatiebouillon tijdens het centrifugeren verwarmen.
De voorbehandeling kan de bezinkingssnelheid van de vaste deeltjes (biomassa) in de fermentatiebouillon met een factor van 100 tot 20000 verhogen, waardoor de scheiding van de biomassa door centrifugatie veel efficiënter wordt en dus op industriële schaal kan worden toegepast. Naast de bezinkingssnelheid worden door de voorbehandelingminstens drie andere parameters aanzienlijk verbeterd, namelijk een beter rendement van neutrale of gesialyleerde
HMO's in de HMO-bevattende stroom, een lager eiwit- en DNA-gehalte in het supernatans en een aanzienlijke verlaging van het gehalte aan residuen van gesuspendeerde vaste stoffen.
De zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom in stap b) door ultrafiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is
In de methode volgens de uitvinding wordt de gescheiden HMO-bevattende stroom gezuiverd door ultrafiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is.
Stap b) is bedoeld voor de scheiding van de bestanddelen met een hoog molecuulgewicht die aanwezig zijn in de HMO-bevattende stroom en die nog niet zijn gescheiden van de neutrale of gesialyleerde HMO in stap a) van de methode volgens de uitvinding en die een molecuulgewicht hebben dat hoger is dan dat van de te zuiveren neutrale of gesialyleerde
HMO. Dergelijke bestanddelen met een hoog molecuulgewicht kunnen residuele eiwitten en peptiden, residuele DNA's, RNA's en fragmenten daarvan, lipiden, residuele endotoxinen, hogere oligosachariden enz. zijn. Het feit dat stap b) wordt uitgevoerd nadat de ruwe biomassa reeds van de HMO-bevattende stroom is gescheiden in stap a) van de methode volgens de uitvinding, leidt tot een algemeen verbeterd scheidings- en zuiveringsrendement.
Het toegepaste membraanmateriaal in stap b) kan keramisch zijn of gemaakt zijn van een synthetisch of natuurlijk polymeer, bijv. polysulfon, polyvinylideenfluoride, polyacrylonitril, polypropyleen, cellulose, celluloseacetaat of polymelkzuur, met uitzondering van polyamide.
Stap b) kan in doodlopende of doorstromingsmodus worden toegepast.
Bovendien bedraagt de afstotingsfactor van HMO voor het membraan dat wordt toegepast in stap b) onder de procesomstandigheden minder dan 90 %, zodat minstens een deel van de
HMO in het permeaat kan worden doorgelaten met optionele diafiltratie om de ophoping van de HMO daarin te verzekeren en het grootste deel van de onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht in het retentaat tegen te houden. Bij voorkeur is de afstotingsfactor minder dan 70 % of 50 %. Voorbeelden van geschikte membranen zijn Synder XT (1 kDa), Synder
VT (3 kDa), Suez (GE) PT (5 kDa), Microdyn UH004 (4 kDa), Tami keramische fijne UF- membranen (1 kDa, 3 kDa, 5 kDa).
Stap b) van de methode volgens de uitvinding kan meer dan één membraanfiltratiestap omvatten met een membraan met een andere MWCO dan voordien, zolang de andere parameters van het membraan overeenkomen met de parameters die hierboven zijn beschreven, bijvoorbeeld door twee membraanfiltratiescheidingen toe te passen.
Het verkregen ultrafiltratiepermeaat na stap b) is een waterige oplossing die de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevat, ook wel de HMO-bevattende stroom genoemd, terwijl het ultrafiltratieretentaat de bovengenoemde bestanddelen met hoog molecuulgewicht bevat die van de HMO-bevattende stroom moeten worden gescheiden.
Bij voorkeur is het rendement van de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO in het permeaat na de ultrafiltratiestap in stap b) hoger dan 50 %, hoger dan 60 %, hoger dan 70 %, hoger dan 80 %, hoger dan 90 %, hoger dan 91 %, hoger dan 92 %, hoger dan 93 %, hoger dan 94 %, hoger dan 95 %, hoger dan 96 %, hoger dan 97 %, hoger dan 98 %, of hoger dan 99 %.
In een uitvoering bevat de gezuiverde oplossing verkregen na stap b) van de methode volgens de uitvinding de neutrale of gesialyleerde HMO met een zuiverheid van >50 %, bij voorkeur >60 %, meer bij voorkeur >70 %, meest bij voorkeur >80 %.
Verdere zuivering van de HMO-bevattende stroom in stap c) door nanofiltratie
In stap c) van de methode volgens de uitvinding wordt de HMO-bevattende stroom verder gezuiverd door nanofiltratie.
Nanofiltratie (NF) kan worden gebruikt om moleculen met een laag molecuulgewicht die kleiner zijn dan de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO's te verwijderen, zoals mono- en disachariden, korte peptiden, kleine organische zuren, water en zouten.
De productstroom, d.w.z. de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stoom, is het NF- retentaat. Het nanofiltratiemembraan heeft dus een MWCO of een poriegrootte die de retentie van de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide garandeert, d.w.z. dat de MWCO van het nanofiltrattemembraan overeenkomstig wordt aangepast.
In een uitvoering ligt het NF-membraan in het bereik van 150-300 Da MWCO, die worden gedefinieerd als ”dichte” NF-membranen.
Bij voorkeur is het membraan groter dan 300 Da MWCO en bij voorkeur niet groter dan 3000
Da MWCO. In deze uitvoering worden de membranen beschouwd als ”losse” NF- membranen.
Bij voorkeur heeft het ”losse” nanofiltratiemembraan een molecuulgewicht cut-off (MWCO) van 500-3000 Da en is de actieve (top)laag van het membraan samengesteld uit polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine. Daarbij wordt de retentie van trioligosachariden of hoger gegarandeerd en kan minstens een deel van de disachariden het membraan passeren.
In deze uitvoering moet het toegepaste nanofiltratiemembraan dicht zijn voor trioligosachariden of hoger, zodat die efficiënt worden tegengehouden. Tegelijkertijd moet het membraan relatief los zijn voor MgSO4, zodat de afstoting ongeveer 50-90 % bedraagt, zodat disachariden het membraan kunnen passeren. Op deze manier is het mogelijk om bijv. lactose, die een precursor is bij het maken van moedermelkoligosachariden bijv. door fermentatie, af te scheiden van het neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharidenproduct met een goede efficiëntie, en bovendien gaat een aanzienlijk deel van de divalente tonen ook naar het permeaat. In sommige uitvoeringen is de MgSO4y-afstotingsfactor 60-90 %, 70-90 %, 50-80 %, 50-70 %, 60-70 % of 70-80 %. Bij voorkeur bedraagt de MgSO4-afstotingsfactor op dit membraan 80-90 %. Bij voorkeur heeft het membraan een afstotingsfactor voor NaCl die lager is dan die voor MgSO4. In een uitvoering is de afstotingsfactor voor NaCl niet meer dan 50 %. In een andere uitvoering is de afstotingsfactor voor NaCl niet hoger dan 40 %. In een andere uitvoering is de afstotingsfactor voor NaCl niet hoger dan 30 %. In deze laatste uitvoering kan ook een aanzienlijke vermindering van alle monovalente zouten in het retentaat worden bereikt. In deze uitvoering is het membraan een dunnefilmcomposietmembraan (TFC). Een voorbeeld van een geschikt op piperazine gebaseerd polyamide TFC-membraan is TriSep” UA60. Andere voorbeelden van geschikte
NF-membranen zijn Synder NFG (600-800 Da), Synder NDX (500-700 Da) en TriSep® XN- 45 (500 Da).
Voor het hierboven gedefinieerde ”losse” NF-membraan bedraagt de HMO-afstotingsfactor >90 %, bij voorkeur >98 %, zodat het HMO-product in het retentaat met optionele diafiltratie wordt tegengehouden en het grootste deel van de onzuiverheden met een lager molecuulgewicht, waaronder monosachariden, disachariden, kleine bacteriële metabolieten en zouten, in het permeaat terechtkomt.
Bij voorkeur is het rendement van de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO in het retentaat na een nanofiltratiestap hoger dan 50 %, hoger dan 60 %, hoger dan 70 %, hoger dan 80 %, hoger dan 90 %, hoger dan 91 %, hoger dan 92 %, hoger dan 93 %, hoger dan 94 %, hoger dan 95 %, hoger dan 96 %, hoger dan 97 %, hoger dan 98 % of hoger dan 99 %.
Bij voorkeur omvat stap c) een diafiltratiestap, dat wil zeggen dat de nanofiltratie in diafiltratiemodus wordt uitgevoerd. Bij voorkeur volgt de diafiltratiestap op de bovengenoemde (conventioneel uitgevoerde) nanofiltratiestap.
Diafiltratie is een proces waarbij tijdens het membraanfiltratieproces gezuiverd water aan een oplossing wordt toegevoegd om de membraandoorlaatbare bestanddelen efficiënter te verwijderen. Diafiltratie kan dus worden gebruikt om bestanddelen te scheiden op basis van hun eigenschappen, met name molecuulgrootte, lading of polariteit, door geschikte membranen te gebruiken, waarbij één of meerde soorten efficiënt worden tegengehouden en andere soorten membraandoorlaatbaar zijn.
Bij voorkeur worden de diafiltratie en de nanofiltratie in een stap (nanofiltratie/diafiltratie of
NF/DF genoemd) gecombineerd, waarbij de diafiltratie wordt uitgevoerd met een nanofiltrattemembraan dat doeltreffend is voor de scheiding van verbindingen en/of zouten met een laag molecuulgewicht uit de neutrale of gesialyleerde HMO's. Diafiltratie met een ”los” NF-membraan, zoals hierboven gedefinieerd, is bijzonder efficiënt voor zowel de verwijdering van mono- en divalente zouten als de verwijdering van disachariden uit neutrale of gesialyleerde HMO's.
Bij voorkeur wordt de DF-stap of de NF/DF-stap zodanig uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0. Onder deze omstandigheden worden zouten bestaande uit monovalente kationen zoals natriumzouten (d.w.z. natriumion samen met de co-anionen) effectief verwijderd, zodat een zoutarme of vrijwel zoutloze gezuiverde oplossing ontstaat die een neutrale of gesialyleerde
HMO in het retentaat bevat.
In een uitvoering wordt een tweede nanofiltratiestap uitgevoerd in de methode volgens de uitvinding, zodat deze stap deel uitmaakt van stap c). In deze tweede nanofiltratiestap is het nanofiltratiemembraan een ”los” NF-membraan of een ”dicht” NF-membraan. De tweede optionele nanofiltratiestap wordt uitgevoerd na de eerste nanofiltratiestap, maar wordt bij voorkeur uitgevoerd voor stap d) van de methode volgens de uitvinding.
Evenzo kan een tweede diafiltratie volgens de uitvinding worden uitgevoerd. De tweede optionele diafiltratiestap kan ook met de tweede nanofiltratiestap worden gecombineerd. Deze tweede NF/DF-stap, wanneer een ”los” NF-membraan wordt toegepast zoals hierboven beschreven, wordt zodanig uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0.
In een uitvoering bevat de gezuiverde oplossing verkregen na stap c) van de methode volgens de uitvinding de neutrale of gesialyleerde HMO met een zuiverheid van >80 %, bij voorkeur >85 %, meer bij voorkeur >90 %.
Ineen uitvoering is de gezuiverde oplossing (HMO-bevattende stroom) verkregen na stap c) van de methode volgens de uitvinding vrij van eiwitten en/of recombinant genetisch materiaal.
Concentratie van de gezuiverde HMO-bevattende stroom in stap d) van de methode volgens de uitvinding
Een concentratiestap wordt gebruikt om aanzienlijke hoeveelheden vloeistof, meestal water, op een economische manier uit de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom te verwijderen door middel van bijv. verdamping, nanofiltratie of omgekeerde-osmosefiltratie.
Verdampingsprocessen kunnen bijvoorbeeld dalende filmverdamping, klimmende filmverdamping en roterende verdamping omvatten. De verdamping kan ook onder vacuüm worden uitgevoerd. De concentratie inkomende vaste stoffen in het proces is bij voorkeur ongeveer 5 tot 30 massaprocent. De concentratie uitgaande vaste stoffen uit een dergelijk proces is doorgaans meer dan 30 massaprocent, bij voorkeur meer dan 50 massaprocent. Meer bij voorkeur bedraagt de concentratie uitgaande stoffen bij het ontwateringsproces 60 tot 80 massaprocent. Het gedeelte vaste stoffen van het teruggewonnen materiaal is bij voorkeur groter dan 80 massaprocent neutrale of gesialyleerde HMO.
In een uitvoering wordt de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom geconcentreerd tot een concentratie van > 100 g/l neutrale of gesialyleerde HMO, bij voorkeur > 200 g/l, en nog meer bij voorkeur > 300 g/l.
Wanneer de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom wordt geconcentreerd door verdamping, wordt de verdamping bij voorkeur uitgevoerd bij een temperatuur van ongeveer 20 tot ongeveer 80 °C. In sommige uitvoeringen wordt de verdamping uitgevoerd bij een temperatuur van 25 tot 75 °C. In sommige uitvoeringen wordt de verdamping uitgevoerd bij een temperatuur van 30 tot 70 °C. In sommige uitvoeringen wordt de verdamping uitgevoerd bij een temperatuur van 30 tot 65 °C. Bij voorkeur wordt de verdamping onder vacuüm uitgevoerd.
Wanneer de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom wordt geconcentreerd door membraanfiltratie, is elk membraan, doorgaans een nanofiltrattemembraan, geschikt dat de neutrale of gesialyleerde HMO voldoende afstoot. Een concentratie door membraanfiltratie levert doorgaans een HMO-oplossing van ongeveer 30- 35 massaprocent op. Deze concentratie kan geschikt zijn voor de uitvoering van de daaropvolgende drogingsstollingsstap, bijv. vriesdrogen. Voor andere drogingsmethoden kunnen echter meer geconcentreerde oplossingen nodig zijn, bijv. sproeidroging of kristallisatie. In dit geval gaat de voorkeur uit naar een concentratie door verdamping, bij voorkeur onder vacuüm. Bij wijze van alternatief wordt de in de vorige stap verkregen neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom geconcentreerd tot ongeveer 30-35 massaprocent met behulp van een nanofiltratiemembraan en wordt de oplossing verder geconcentreerd door verdamping.
In een uitvoering van de concentratie door membraanfiltratie is het gekozen membraan een ”dicht” NF met 150-300 Da MWCO.
In een andere uitvoering van de concentratie door membraanfiltratie is het gekozen membraan een nanofiltratiemembraan met een molecuulgewicht cut-off (MWCO) van 500-3500 Da en een actieve (top)laag van polyamide (”los” NF-membraan) en wordt de concentratiestap zodanig uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0. In deze laatste uitvoering kan ook een aanzienlijke vermindering van alle monovalente zouten in het retentaat worden bereikt. In deze uitvoering is het membraan bij voorkeur een dunnefilmcomposietmembraan (TFC), een polyamidemembraan op basis van piperazin, met een MgSO4-afstoting van ongeveer 50-90 %, en een NaCl-afstoting van niet meer dan 50 %. Een voorbeeld van een dergelijk membraan is TriSep” UA60. Onder deze omstandigheden worden ook de resterende zouten effectief verwijderd, zodat een zoutarm of vrijwel zoutloos gezuiverd neutrale of gesialyleerde HMO- concentraat ontstaat. In deze uitvoering wordt na voltooiing van de concentratiestap de pH van het neutrale of gesialyleerde HMO-concentraat bij voorkeur ingesteld tussen 4-6 voordat de volgende stap wordt uitgevoerd (bijv. verdamping, drogingsstolling, steriele filtratie).
De concentratiestap kan optioneel zijn wanneer stap e) uit vriesdroging bestaat.
Droging van de gezuiverde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen in stap e)
Bij voorkeur wordt de neutrale of gesialyleerde HMO na de scheidings-/zuiverings- /concentratiestappen volgens de stappen a) tot en met d) en de hieronder aangegeven optionele methodestappen in vaste vorm via een drogingsstap (stap e)) bezorgd.
Bij voorkeur bestaat de drogingsstap e) uit de sproeidroging van de neutrale of gesialyleerde
HMO-bevattende stroom, bij voorkeur uit de sproeidroging van de neutrale of gesialyleerde
HMO-bevattende stroom.
Bij voorkeur leidt de sproeidroging tot een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO met een amorfe structuur, d.w.z. dat een amorf poeder wordt verkregen.
In een uitvoering wordt de sproeidroging uitgevoerd bij een concentratie van de neutrale of gesialyleerde HMO van 20-60 % (w/v), bij voorkeur 30-50 % (w/v), meer bij voorkeur 35-45 % (w/v), en een inlaattemperatuur van 110-150 °C, bij voorkeur 120-140 °C, meer bij voorkeur 125-135 °C en/of een uitlaattemperatuur van 60-80 °C, bij voorkeur 65-70 °C.
In sommige uitvoeringen heeft de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom die in de sproeidroger wordt gevoerd een Brix-waarde van ongeveer 8 tot ongeveer 75 % Brix. In sommige uitvoeringen ligt de Brix-waarde tussen ongeveer 30 en ongeveer 65 % Brix. In sommige uitvoeringen ligt de Brix-waarde tussen ongeveer 50 en ongeveer 60 % Brix. In sommige uitvoeringen heeft de toevoer in de sproeidroger een temperatuur van ongeveer 2 tot ongeveer 70 °C vlak voordat hij in druppeltjes in de sproeidroger wordt verdeeld. In sommige uitvoeringen heeft de toevoer in de sproeidroger een temperatuur van ongeveer 30 tot ongeveer 60 °C vlak voordat hij in druppeltjes in de sproeidroger wordt verdeeld. In sommige uitvoeringen heeft de toevoer in de sproeidroger een temperatuur van ongeveer 2 tot ongeveer
30 °C vlak voordat hij in druppeltjes in de sproeidroger wordt verdeeld. In sommige uitvoeringen wordt bij de sproeidroging lucht met een inlaattemperatuur van 120 tot 280 °C gebruikt. In sommige uitvoeringen is de luchtinlaattemperatuur van 120 tot 210 °C. In sommige uitvoeringen is de luchtinlaattemperatuur van ongeveer 130 tot ongeveer 190 °C. In sommige uitvoeringen is de luchtinlaattemperatuur van ongeveer 135 tot ongeveer 160 °C. In sommige uitvoeringen wordt bij de sproeidroging lucht met een luchtuitlaattemperatuur van ongeveer 80 tot ongeveer 110 °C gebruikt. In sommige uitvoeringen is de luchtuitlaattemperatuur van ongeveer 100 tot ongeveer 110 °C. In sommige uitvoeringen wordt de sproeidroging bij een temperatuur van ongeveer 20 tot ongeveer 90 °C uitgevoerd.
In sommige uitvoeringen is de sproeidroger een co-current sproeidroger. In sommige uitvoeringen is de sproeidroger aan een extern vloeistofbed vastgemaakt. In sommige uitvoeringen bestaat de sproeidroger uit een roterende schijf, een hogedrukspuitstuk of een spuitstuk met twee vloeistoffen. In sommige uitvoeringen bestaat de sproeidroger uit een verstuiverwiel. In sommige uitvoeringen is de sproeidroging de laatste zuiveringsstap voor de gewenste neutrale of gesialyleerde HMO.
Een andere mogelijkheid is dat de drogingsstollingsstap uit een indirecte drogingsmethode bestaat. In deze specificatie zijn indirecte drogers apparaten die geen gebruik maken van direct contact van het te drogen materiaal met een verwarmd procesgas voor de droging, maar in plaats daarvan rekenen op de warmteoverdracht via de wanden van de droger, bijv. via de wanden van de kuip in het geval van een trommeldroger, of afwisselend via de wanden van holle schoepen van een schoependroger, wanneer deze door de vaste stoffen draaien terwijl het warmteoverdrachtsmedium in de holle binnenkant van de schoepen circuleert. Andere voorbeelden van indirecte drogers zijn contactdrogers en vacuümtrommeldrogers.
Een andere mogelijkheid is dat de drogingsstollingsstap uit een vriesdroging bestaat.
Een andere mogelijkheid is dat de drogingsstollingsstap uit een kristallisatie bestaat (op voorwaarde dat de HMO in kristallijne vorm kan worden verkregen).
Optionele stappen
Bij voorkeur omvat de methode volgens de uitvinding verder een zuivering door een behandeling met actieve koolstof.
De behandeling met actieve koolstof is een ontkleuringsstap (verwijdering van de kleurende bestanddelen) en/of een chromatografische stap op een neutrale vaste fase, bij voorkeur omgekeerde-fasechromatografie om hydrofobe verontreinigingen te verwijderen. Bij voorkeur kan actieve koolstof, zoals Norit CA1 actieve koolstof, worden gebruikt.
De behandeling met actieve koolstof kan dienen om de kleurstoffen te verwijderen en kan de hoeveelheden in water oplosbare verontreinigingen, zoals zouten, verder verminderen.
Bovendien kan de behandeling met actieve koolstof dienen om eiwitten, DNA's, RNA's of endotoxine te verwijderen die in de HMO-bevattende stroom aanwezig kunnen zijn.
De behandeling met actieve koolstof leidt dus tot een vermindering van kleurstoffen en/of zouten en/of eiwitten en/of DNA's en/of RNA 's en/of endotoxines in de HMO-bevattende stroom.
Onder bepaalde omstandigheden worden de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden niet of althans niet sterk aan de koolstofdeeltjes geadsorbeerd en geeft de elutie met water een waterige oplossing van de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden zonder een aanzienlijk verlies van hun hoeveelheden, terwijl de kleurstoffen, etwitten, DNA's, RNA 's, endotoxines enz. geadsorbeerd blijven. Het is slechts een kwestie van routine om de omstandigheden te bepalen waaronder de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosachariden aan de koolstof uit zijn waterige oplossing worden gebonden.
De optionele stap van de behandeling met actieve koolstof wordt dus zodanig uitgevoerd dat de neutrale of gesialyleerde HMO niet of althans niet aanzienlijk door de actieve koolstof wordt geadsorbeerd. Onder ”niet aanzienlijk geadsorbeerd” wordt verstaan dat minder dan 10 %, bij voorkeur minder dan 5 %, en meer bij voorkeur minder dan 1 % van de neutrale of gesialyleerde HMO door de actieve koolstof wordt geadsorbeerd. De hoeveelheid actieve koolstof die in dit aspect wordt gebruikt is <100 % in gewicht ten opzichte van de neutrale of gesialyleerde HMO die in de HMO-bevattende stroom aanwezig is, bij voorkeur <10 %.
Hierdoor kan het grootste deel van de neutrale of gesialyleerde HMO passeren, terwijl residuele biomoleculen, gekleurde verbindingen en andere hydrofobe moleculen door de actieve koolstof worden tegengehouden. In een uitvoering bedraagt de hoeveelheid actieve koolstof ongeveer 2-6 massaprocent. Dit is economisch omdat alle hierboven beschreven voordelen eenvoudig met een zeer kleine hoeveelheid koolstof kunnen worden bereikt. In een andere uitvoering wordt de actieve koolstof toegevoegd in een hoeveelheid tussen 0,25 en 3 massaprocent, bij voorkeur tussen 0,5 en 2,5 massaprocent, en meer bij voorkeur tussen 0,75 en 2,2 massaprocent, en nog meer bij voorkeur tussen 1,0 en 2,0 massaprocent, waarbij de percentages gebaseerd zijn op het totale gewicht van de HMO-bevattende stroom die aan de behandeling met actieve koolstof wordt onderworpen. Deze kleine hoeveelheid actieve koolstof maakt een aanzienlijke vermindering van het verbruik van actieve koolstof en een aanzienlijke vermindering van productverliezen (neutrale of gesialyleerde HMO) mogelijk.
In een aspect kan de behandeling met actieve koolstof worden uitgevoerd door koolstofpoeder al roerend aan de HMO-bevattende stroom toe te voegen en de koolstof te filteren.
In een ander aspect wordt voor de zuivering op grotere schaal de waterige oplossing die de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide (HMO-bevattende stroom) bevat, bij voorkeur geladen in een kolom die is gevuld met koolstof, die een gegranuleerde koolstof kan zijn of eventueel kan zijn gemengd met inerte filterhulpstof, waarna de kolom met het vereiste eluent wordt gespoeld. De fracties die de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevatten, worden verzameld.
In één uitvoering is de gebruikte actieve koolstof gegranuleerd. Dit zorgt voor een gunstige stroomsnelheid zonder hoge druk.
In een uitvoering wordt de behandeling met actieve koolstof, bij voorkeur bestaande uit een chromatografie met actieve koolstof, bij een verhoogde temperatuur uitgevoerd. Bij een verhoogde temperatuur vindt de binding van kleurstoffen, resterwitten enz. aan de koolstofdeeltjes in een kortere contacttijd plaats, zodat de stroomsnelheid eenvoudig kan worden verhoogd. Bovendien zorgt de behandeling met actieve koolstof bij een verhoogde temperatuur voor een aanzienlijke vermindering het totale aantal levensvatbare micro- organismen (totaal microbieel aantal) in de HMO-bevattende stroom. De verhoogde temperatuur mag minstens 30-35 °C bedragen, zoals minstens 40 °C, minstens 50 °C, circa 40-50 °C of circa 60 °C.
In een uitvoering wordt de actieve koolstof toegevoegd als een poeder met een deeltjesgrootteverdeling met een diameter d50 tussen 2 um en 25 um, bij voorkeur tussen 3 um en 20 um, en meer bij voorkeur tussen 3 um en 7 um, en nog meer bij voorkeur tussen 5 um en 7 um. De d50-waarde wordt met standaardprocedures bepaald.
In een uitvoering wordt de pH van de HMO-bevattende stroom aangepast voordat de behandeling met actieve koolstof wordt uitgevoerd om de vermindering van kleurstoffen en/of eiwitten tijdens stap b) van de methode volgens de uitvinding te verbeteren. Bij voorkeur wordt de pH aangepast tot 5,5, bij voorkeur tot 5,0 en nog meer bij voorkeur tot 4,5 door een geschikt zuur toe te voegen.
De optionele behandeling met actieve koolstof volgt bij voorkeur op de optionele behandeling met kationenwisselaarshars of de nanofiltratie en wordt bij voorkeur uitgevoerd vóór stap d) van de methode volgens de uitvinding (concentratie).
Bij voorkeur omvat de methode volgens de uitvinding verder een zuivering van de HMO- bevattende stroom met een kationenwisselaarshars, bij voorkeur een sterk zuur kationenwisselaarshars. Bij voorkeur is het kattonenwisselaarshars een polystyreen- divinylbenzeen-kationenwisselaarshars.
In een dergelijke optionele behandeling met kationenwisselaarshars kunnen positief geladen materialen verder efficiënt uit de HMO-bevattende stroom worden verwijderd, aangezien zij zich aan het hars binden, terwijl zure en neutrale HMO's niet door het zure kationenwisselaarshars zullen worden vastgehouden. Daarbij kunnen ook de hoeveelheden zouten en/of kleurstoffen en/of eiwitten verder worden verminderd.
In een uitvoering bevat de stationaire fase (hars) sulfonaatgroepen. De bindingscapaciteit van de gebruikte harsen ligt doorgaans tussen 1,2 en 2,2 eq/l.
Wanneer een kationisch 1onenwisselaarshars wordt gebruikt, kan de mate van verknoping worden gekozen afhankelijk van de bedrijfsomstandigheden van de ionenwisselaarskolom.
Een sterk verknoopt hars biedt het voordeel van duurzaamheid en een hoge mate van mechanische integriteit, maar heeft een verminderde porositeit en een afname van de massa- overdracht. Een zwak verknoopt hars is kwetsbaarder en heeft de neiging om op te zwellen door absorptie van de mobiele fase. De deeltjesgrootte van het ionenwisselaarshars wordt zodanig gekozen dat een efficiënte stroming van het eluent mogelijk is, terwijl de geladen materialen toch effectief worden verwijderd. Een geschikt debiet kan ook worden verkregen door een negatieve druk op het eluerende uiteinde van de kolom of een positieve druk op het ladende uiteinde van de kolom uit te oefenen en het eluent op te vangen. Een combinatie van positieve en negatieve druk kan ook worden gebruikt. De behandeling met kationisch ionenwisselaarshars kan op een conventionele manier worden uitgevoerd, bijv. per batch of continu.
Niet-limitatieve voorbeelden van een geschikt zuur kationenwisselaarshars zijn Amberlite
IR100, Amberlite IR120, Amberlite FPC22, Dowex 50WX, Finex CS16GC, Finex CS13GC,
Finex CS12GC, Finex CS11GC, Lewatit S, Diaion SK, Diaion UBK, Amberjet 1000 en
Amberjet 1200.
Bij voorkeur wordt de bovengenoemde optionele behandeling met kationenuitwisselaarshars uitgevoerd na stap c) van de methode volgens de uitvinding. Bovendien kan deze stap ook voor of na de optionele behandeling met actieve koolstof worden uitgevoerd.
In een andere voorkeursuitvoering omvat de methode volgens de uitvinding, inclusief de voorkeurs- en meer voorkeursrealisaties ervan, verder een stap waarin de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende oplossing, bij voorkeur na de concentratie volgens stap d) en voor de drogingsstap volgens stap e), steriel wordt gefilterd en/of aan endotoxineverwijdering wordt onderworpen, bij voorkeur door filtratie van de gezuiverde oplossing door een filter met 3 kDa of met behulp van een membraan met een poriegrootte van minder dan 0,5 um, minder dan 0,4 um, minder dan 0,3 um, of minder dan 0,2 um. Er moet echter worden opgemerkt dat de steriele filtratiestap niet bijdraagt aan de oplossing van het technische probleem, namelijk het verkrijgen van gezuiverde HMO of HMO's die geschikt zijn voor toediening aan de mens.
Volgens een uitvoering maken de stap van de behandeling met actieve koolstof en de stap van de steriele filtratie, die hierboven zijn beschreven, deel uit van de methode van de uitvinding.
Volgens een uitvoering maken de stap van de behandeling met kationenwisselaarshars en de stap van de steriele filtratie, die hierboven zijn beschreven, deel uit van de methode van de uitvinding.
Volgens een uitvoering maken de stap van de behandeling met kationenwisselaarshars en de stap van de behandeling met actieve koolstof, die hierboven zijn beschreven, deel uit van de methode van de uitvinding.
Volgens een uitvoering maken de behandeling met actieve koolstof, de stap van de behandeling met kationenwisselaarshars en de stap van de steriele filtratie, die hierboven zijn beschreven, deel uit van de methode van de uitvinding.
Bijzondere uitvoeringen van de uitvinding
Bij voorkeur omvat de methode volgens deze uitvinding geen behandelingsstap met een basisch anionenwisselaarshars.
Bij voorkeur omvat de methode volgens deze uitvinding geen ionenwisselaarsbehandelingsstap, d.w.z. dat de methode geen behandeling met een kationisch en/of anionisch ionenwisselaarshars omvat.
Bij voorkeur omvat de methode volgens deze uitvinding geen elektrodialysestap.
Bij voorkeur omvat de methode volgens deze uitvinding geen behandeling met ionenwisselaarshars en evenmin een elektrodialysestap.
Bij voorkeur omvat de methode volgens deze uitvinding geen behandeling met basisch anionenwisselaarshars en evenmin een elektrodialysestap.
Bij voorkeur bestaat de methode volgens de uitvinding uit de volgende stappen (in de opeenvolgende volgorde): i. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltrattemembraan met een MWCO van meer dan 10 kDa en minder dan 500 kDa:
ii. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal 1s en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden; iii. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie; iv. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof, v. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratiestap, optioneel gecombineerd met diafiltratie, waarbij het nanofiltratiemembraan een MWCO-waarde van 500-3000
Da en een actieve (top)laag van polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een
NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0; vi. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en vii. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
In een uitvoering bestaat de methode volgens de uitvinding uit de volgende stappen (in de opeenvolgende volgorde): i. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraan met een MWCO van meer dan 30 kDa en minder dan 500 kDa: ii. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal 1s en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 %
bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden; iii. de zuivering van de HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie, waarbij het nanofiltratiemembraan bij voorkeur in het bereik van 500- 3000 Da MWCO ligt en de actieve (top)laag van het membraan uit polyamide bestaat; iv. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door diafiltratie; v. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof, vi. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratie, waarbij het nanofiltrattemembraan bij voorkeur in het bereik van 150-300 Da MWCO ligt; vii. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede diafiltratiestap; viii. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en ix. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
In een aspect omvat de methode volgens de uitvinding, inclusief de hierboven beschreven voorkeurs- en meer voorkeursuitvoeringen, minstens een nanofiltratiestap waarbij het nanofiltrattemembraan een molecuulgewicht cut-off (MWCO) van 500-3000 Da heeft, de actieve (top)laag van het membraan uit polyamide bestaat, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, het membraan een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft en de nanofiltratiestap wordt uitgevoerd zodat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0, zodat de te zuiveren neutrale of gesialyleerde
HMO wordt tegengehouden en de mono- en divalente zouten kunnen passeren en zich in het permeaat ophopen, en ook minstens een deel van de lactose kan passeren en zich in het permeaat kan ophopen.
In een uitvoering bestaat de methode volgens de uitvinding uit de volgende stappen (in de opeenvolgende volgorde):
1. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraan met een MWCO van meer dan 30 kDa en minder dan 500 kDa; il. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal 1s en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden; iii. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie; iv. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof,
V. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratiestap, optioneel gecombineerd met diafiltratie, waarbij het nanofiltratiemembraan een MWCO-waarde van 500-3000
Da en een actieve (top)laag van polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0, vl. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en vii. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen. 3. Neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide geproduceerd volgens de methode van de uitvinding
In een ander aspect heeft de uitvinding betrekking op een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding.
De neutrale of gesialyleerde HMO die volgens de beschreven methode in deze specificatie wordt gewonnen en gezuiverd, kan amorf of kristallijn zijn, maar is bij voorkeur amorf.
Bij voorkeur is de zuiverheid van de neutrale of gesialyleerde HMO op droge basis groter dan 80 massaprocent voor een enkele neutrale of gesialyleerde HMO op basis van droog materiaal; of voor mengsels van HMO's is de zuiverheid groter dan 70 % op basis van droog materiaal, voor de combinatie. Nog meer bij voorkeur is de zuiverheid van een enkele neutrale of gesialyleerde HMO groter dan 90 massaprocent.
Bij voorkeur heeft de neutrale of gesialyleerde HMO minstens een van de volgende kenmerken (in gewicht): <2 % lactulose, <3 % fucose, <1 % galactose of <3 % glucose.
In een uitvoering heeft de neutrale of gesialyleerde HMO een fijne fractie (kleiner dan of gelijk aan 10 um), van minder dan 10 %, bij voorkeur minder dan 5 %, meer bij voorkeur minder dan 1 %, meest bij voorkeur minder dan 0,1 %. De neutrale of gesialyleerde HMO heeft bij voorkeur ook een gemiddelde deeltjesgrootte (d 50) van meer dan 100 um, bij voorkeur meer dan 150 um, nog meer bij voorkeur meer dan 200 um.
De neutrale of gesialyleerde HMO geproduceerd volgens de methode van de uitvinding heeft een goede stroombaarheid. Bij voorkeur heeft de neutrale of gesialyleerde HMO een Carr- index van minder dan 30, waarbij de Carr-index (C) wordt bepaald aan de hand van de formule C = 100(1-p B/ p T), waarbij p B de vrij neergeslagen bulkdichtheid van het poeder en p T de afgetapte bulkdichtheid van het poeder na het ”neerslaan” is. Voor vrij stromende vaste stoffen zouden de waarden van bulkdichtheid en afgetapte dichtheid gelijkaardig zijn, met een lage waarde tot gevolg. Voor minder goed stromende vaste stoffen zouden de verschillen tussen deze waarden groter zijn, waardoor de Carr-index groter zou zijn.
Bij voorkeur heeft de neutrale of gesialyleerde HMO een watergehalte van minder dan 15 massaprocent, minder dan 10 massaprocent, minder dan 9 massaprocent, minder dan 8 massaprocent, minder dan 7 massaprocent of minder dan 6 massaprocent. Om de terugwinning van het product te optimaliseren, heeft de HMO bij voorkeur een pH groter dan 3,01in een oplossing van minstens 5 % en bij voorkeur een pH groter dan 4,0. Doorgaans wordt dit bereikt door de pH van de HMO-bevattende stroom voor de drogingsstap aan te passen tot meer dan 3,0. Bij voorkeur heeft de neutrale of gesialyleerde HMO een pH tussen 4 en 7, meer bij voorkeur tussen 4,5 en 5,5.
In een uitvoering is de volgens de methode van de uitvinding verkregen HMO een gedroogde neutrale of gesialyleerde HMO, bij voorkeur met een watergehalte van minder dan 6 massaprocent.
De HMO is bij voorkeur een neutrale HMO. In een uitvoering wordt de neutrale HMO bij voorkeur gekozen uit de groep bestaande uit 2'-fucosyllactose, 3-fucosyllactose, 2',3- difucosyllactose, lacto-N-triose II, lacto-N-tetraose, lacto-N-neotetraose, lacto-N-
fucopentaose I, lacto-N-fucopentaose II, lacto-N-fucopentaose III, lacto-N-fucopentaose V, lacto-N-neofucopentaose V (alternatieve naam: lacto-N-fucopentaose VI), lacto-N- difucohexaose I, lacto-N-difucohexaose II, lacto-N-difucohexaose III, 6'-galactosyllactose, 3'- galactosyllactose, lacto-N-hexaose, lacto-N-neohexaose en elk mengsel daarvan. Nog meer bij voorkeur is de HMO 2'-fucosyllactose, 3-fucosyllactose, 2',3-difucosyllactose, lacto-N- triose IL, lacto-N-tetraose, lacto-N-neotetraose of een lacto-N-fucopentaose, meer bij voorkeur 2'-fucosyllactose, LNT, LNnT of een lacto-N-fucopentaose.
In een uitvoering wordt de gesialyleerde HMO gekozen uit de groep bestaande uit 3'- sialyllactose (3'-SL) en 6'-sialyllactose (6'-SL).
Ineen uitvoering is de volgens de methode van de uitvinding verkregen neutrale of gesialyleerde HMO in een voedingsproduct (bijv. voedsel voor mensen of dieren), voedingssupplement of geneesmiddel verwerkt.
In een uitvoering is de volgens de methode van de uitvinding verkregen neutrale of gesialyleerde HMO in een voedingsproduct (bijv. voedsel voor mensen of dieren), voedingssupplement of geneesmiddel verwerkt.
In sommige uitvoeringen wordt de neutrale of gesialyleerde HMO in babyvoeding verwerkt (bijv. zuigelingenvoeding). Zuigelingenvoeding is in het algemeen een gefabriceerd voedingsmiddel voor het voeden van zuigelingen als volledige of gedeeltelijke vervanging van moedermelk. In sommige uitvoerignen wordt zuigelingenvoeding verkocht als een poeder voor flesvoeding aan een zuigeling door het met water te mengen. De samenstelling van zuigelingenvoeding is meestal zodanig ontworpen dat ze moedermelk min of meer nabootst.
In sommige uitvoeringen wordt een neutrale of gesialyleerde HMO gezuiverd volgens een methode in deze specificatie in zuigelingenvoeding verwerkt om voedingsvoordelen te bieden die vergelijkbaar zijn met de voordelen die worden geboden door een of meerdere HMO's in moedermelk. In sommige uitvoeringen wordt de neutrale of gesialyleerde HMO met een of meerdere ingrediënten van de zuigelingenvoeding gemengd. Voorbeelden van ingrediënten van zuigelingenvoeding zijn magere melk, koolhydraatbronnen (bijv. lactose), eiwitbronnen (bijv. wei-eiwitconcentraat en caseïne), vetbronnen (bijv. plantaardige oliën zoals palmolie, saffloerolie met een hoog oliegehalte, raapzaadolie, kokosolie en/of zonnebloemolie, en visoliën), vitaminen (zoals vitamine A, B, B2, C en D), mineralen (zoals kaliumcitraat, calciumcitraat, magnesiumchloride, natriumchloride, natriumcitraat en calciumfosfaat).
Een ander aspect van de uitvinding heeft dus betrekking op een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding, voor gebruik in de geneeskunde.
Een ander aspect van de uitvinding heeft dus betrekking op het gebruik van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide, verkregen volgens de methode van de uitvinding, voor voedings- en/of voedertoepassingen.
Een ander aspect van de uitvinding heeft dus betrekking op een voedingsmiddel of cosmetisch product dat de neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide bevat, verkregen volgens de methode van de uitvinding.
VOORBEELDEN
Voorbeeld 1
Algemeen: Het gehalte aan koolhydraten en onzuiverheden werd gekwantificeerd met behulp van gekalibreerde HPLC en/of HPAEC. De oplosbare eiwitten werden met de Bradford- bepaling gekwantificeerd. De kleur werd gekwantificeerd door UV-absorptiemeting bij 400 nm in een cuvette met een pad van 1 cm. De kleurindex CI 400 wordt aan de hand van de volgende formule berekend: CI 400 = 1000* Abs 400/Brix.
Fermentatie: LNT werd geproduceerd door microbiële fermentatie met behulp van een genetisch gemodificeerde E.coli-stam. De fermentatie werd uitgevoerd door de stam te kweken in aanwezigheid van exogeen toegevoegde lactose en een geschikte koolstofbron, waarbij LNT werd geproduceerd dat vergezeld ging van de trisacharide LNT-IT, de hexasacharide p-LNH-2 en niet-gereageerde lactose als belangrijkste koolhydraatonzuiverheden in de fermentatiebouillon. Aan het einde van de fermentatie werd de pH op 4 gebracht door 25 % zwavelzuur toe te voegen.
Voorbehandeling van de bouillon en verwijdering van de biomassa door centrifugati: een deel van de verkregen bouillon (4,3 kg, pH 4,45 na opslag) werd verdund tot een totaal van 11,1 kg met gedestilleerd water, gevolgd door een verwarming tot 80 °C binnen 40 minuten en onmiddellijk laten afkoelen tot de omgevingstemperatuur. De pH werd op 3,2 gebracht en de bouillon werd gecentrifugeerd. Het verkregen supernatans (9,0 kg) werd voorzichtig weggepompt om het van het sedigment (2130 g) te scheiden.
Het verkregen geklaarde supernatans had de volgende parameters: Brix = 8,1, geleidingsvermogen 7,50 mS/cm, pH 3,27.
Membraanfiltratie: een deel van het verkregen supernatans (4,5 kg) werd onderworpen aan membraanfiltratie in een MMS SW 18-systeem uitgerust met Synder-XT2B-1812F- membraanelement (UF PES-membraan, MWCO 1000 Da, oppervlakte 0,32 m°) bij transmembraandruk (TMP) = 3,0 bar, T = 23-25 °C en een doorstroming van 400 l/u. 3,5 kg membraanpermeaat werd in 35 min. opgevangen. Vervolgens werd het resterende retentaat (Brix 9,7, geleidingsvermogen 7,28 mS/cm) gediafiltreerd door continue toevoeging van water (3,0 | bij een debiet van 5,4 l/uur) onder dezelfde omstandigheden, zodat uiteindelijk een membraanpermeaat (6,9 kg, Brix 5,4) werd verkregen en een retentaat dat grotendeels ontdaan was van HMO's (Brix 1,0) en verrijkt was met eiwitten en resterende gesuspendeerde vaste stoffen.
Losse NF: het hierboven verkregen productbevattend membraanpermeaat (6,8 kg, geleidingsvermogen 5,84 mS/cm, pH 3,40) werd eerst geconcentreerd in hetzelfde SW18- systeem uitgerust met Trisep UA60-1812-membraanelement (piperazine-amide, MWCO 1000-3500 Da, oppervlakte 0,23 m°, LNT-afstotingsfactor >99 %) door 5,44 kg permeaat te verwijderen in 26 minuten (TMP = 30 bar, T = 40-42 °C, doorstroming 400 l/u), gevolgd door diafiltratie onder dezelfde omstandigheden met toevoeging van 4 | water met een debiet van 5,0 l/u debiet om in totaal 9,4 kg NF-permeaat te bekomen (Brix 0,6, geleidingsvermogen 4,28 mS/cm, pH 3,21). Het verkregen retentaat (Brix 20,2, geleidingsvermogen 1,67 mS/cm, pH 3,54) werd verder gediafiltreerd met nog eens 10 liter water om een tweede NF-permeaat te verkrijgen (10,3 kg, Brix 0,1, geleidingsvermogen 0,458 mS/cm, pH 3,71) en het uiteindelijke NF-retentaat dat vrijwel zoutvrij was (ca. 1500 g, Brix 18,2, geleidingsvermogen 0,48 mS/cm, pH 4,28).
AC-behandeling: een deel van het verkregen NF-retentaat (379 g) werd met een toevoersnelheid van ca. 6 ml/min. door een korte kolom gevoerd, die wa gevuld met Silcarbon
CW20 (6,00 g, ID = 2,1 cm, bedhoogte = 5,3 cm, voorgespoeld met 200 ml gedeïoniseerd water), gevolgd door 50 ml waterelutie om 407 g kleurloze oplossing te verkrijgen (Brix 16,2, geleidingsvermogen 0,455 mS/cm, pH 4,17, Abs 400 0,0130 in overeenstemming met
CI 400 = 0,80). Isolatie van vaste producten door vriesdroging: 62 g witte vaste stof.
Voorbeeld 2
Algemeen: Het gehalte aan koolhydraten en onzuiverheden werd gekwantificeerd met behulp van gekalibreerde HPLC en/of HPAEC. De oplosbare eiwitten werden met de Bradford- bepaling gekwantificeerd. De kleur werd gekwantificeerd door UV-absorptiemeting bij 400 nm in een cuvette met een pad van 1 cm. De kleurindex CI 400 wordt aan de hand van de volgende formule berekend: CI 400 = 1000* Abs 400/Brix.
Fermentatie: 2'-FL werd geproduceerd door microbiële fermentatie met behulp van een genetisch gemodificeerde Æ. coli-stam die een recombinant gen bevat dat een a-1,2- fucosyltransferase codeert. De fermentatie werd uitgevoerd door de stam te kweken in aanwezigheid van exogeen toegevoegde lactose en een geschikte koolstofbron, waarbij 2°-FL werd geproduceerd dat vergezeld ging van DFL en niet-gereageerde lactose als belangrijkste koolhydraatonzuiverheden in de fermentatiebouillon.
Zuivering: 1. UF/DF: De verkregen bouillon werd aangezuurd tot pH = 3,8 met zwavelzuur, gevolgd door ultrafiltratie-diafiltratie door keramische membraanelementen van 15 kDa bij T = +60 °C in een industrieel continu UF-systeem met een DF-waterstroom van ongeveer 2 keer de toevoerstroom en een UF-retentaatstroom van ca. de helft van de toevoerstroom. 2. NF/DF: De productbevattende UF-permeaatstroom (Brix ca. 5) werd onmiddellijk verwerkt door losse nanofiltratie met diafiltratie in een industrieel continu NF-systeem dat was uitgerust met Trisep UA60-membraanelementen (piperazine-amide, MWCO 1000- 3500 Da) (TMP = 30 bar, T = 15 °C) en met een DF-waterstroom die ongeveer twee keer zo groot was als de toevoerstroom (UF-permeaat). 3. Behandeling met een sterk kationenwisselaarshars: Een monster van het verkregen
NF-retentaat (4,7 kg, Brix 23,8, geleidingsvermogen: 2,20 mS/cm, pH = 3,9, CI 400: 134) werd door een kolom geleid die was gevuld met 800 ml Dowex-88 hars in H*-vorm (capaciteit 1,8 eq/l) bij een debiet van 2 bedvolumes per uur, gevolgd door elutie met water (730 ml). Er werd 400 ml fracties verzameld. Elke fractie werd getitreerd met IM
NaOH tot pH = 4,5 en geanalyseerd op suiker-, kleur- en eiwitgehalte. De fracties #2-13 met aangepaste pH werden gecombineerd om 5,4 kg gele oplossing te verkrijgen (Brix 20,2, geleidingsvermogen: 3,48 mS/cm, pH = 4,55, CI 400: 67,3). 4. Ontkleuring met actieve houtskool: Een deel van de verkregen oplossing (3,5 kg) werd door gegranuleerde actieve houtskool CPG LF (75 g, 150 ml) geleid die in een kolom (ID = 16 mm) was geplaatst bij +60 °C en een debiet van 2 bedvolumes per uur, gevolgd door elutie met water (300 ml). Er werd 150 ml fracties verzameld. De fracties #2-24 werden gecombineerd om 3,5 kg vrijwel kleurloze oplossing te verkrijgen (Brix 19,7, geleidingsvermogen 3,42 mS/cm, pH = 5,19, CI 400: 1,23). 5. NF/DF: De verkregen oplossing (3,4 kg) werd onderworpen aan diafiltratie met constant volume in een MMS SW 18-membraanfiltratiesysteem, uitgerust met een spiraalgewonden
Trisep UA60-membraan met een grootte van 1812, onder de volgende omstandigheden: doorstroming = 400 l/u, TMP = 30 bar, T = 30-35 °C en DF waterstroom 4,0 l/u. Eerst werd de DF uitgevoerd bij een pH van ongeveer 5 (10 1), vervolgens bij 3,8 (nog eens 10 1). Tot slot werd het retentaat verder geconcentreerd bij TMP = 39 bar, gevolgd door een aanpassing van de pH tot 4,5 met een 4 % NaOH-oplossing en uit het systeem gepompt om 1,8 kg eindoplossing te verkrijgen (Brix 30,6, geleidingsvermogen: 0,216 mS/em, pH = 4,49, CI 400: 1,35).
6. Microfiltratie en vriesdroging: Het hierboven verkregen NF-retentaat werd door een
PES-microfilter van 0,2 um geleid, zodat 1,6 kg oplossing (Brix 30,6) overbleef en werd gevriesdroogd tot 492 g wit poeder.
Voorbeeld 3: vergelijking van MgSO4- en Na,SO4-afstoting 2,01 van 0,2 % MgSO4-oplossing werd geladen in een MMS SW 18-systeem uitgerust met spiraalgewonden Trisep UA60-element met een grootte van 1812 (piperazine-amide, MWCO 1000-3500 Da, membraanoppervlakte 0,23 m?). Het systeem draaide met een doorstroming van 400 l/u, waarbij het permeaat terug naar de toevoertank vloeide. Er werd gedurende minstens 5 min. of tot een constant geleidingsvermogen in het permeaat onder elke omstandigheid gestabiliseerd. De pH werd aangepast door een kleine hoeveelheid 25 %
H;SO:-oplossing toe te voegen. Het geleidingsvermogen van het permeaat en het retentaat wordt in de onderstaande tabel aangegeven.
MgSO4-afstoting vs pH
T 25 % Stro | Geleidingsver | Geleidingsver
T pH | Deb
MP H;SO4 | om mogen mogen Afstotingsf (© (retent | iet (ba toegevo (1/m? retentaat permeaat actor
C) aat) | (lu) r) egd (ul) u) (mS/em) (mS/em) 24, 10 , 6,06 | 21,1 | 91,6 2.100 0,785 62,61 % 25, 10 , 20 491 | 20,9 | 90,8 2.100 0,587 72,05 % 24, 10 N 40 435 20,9 | 90,8 2.130 0,624 70,70 % 25, 10 1 3,93 20,5 | 89,2 2.170 0,520 76,04 % 25, 10 160 3,56 | 20,2 | 87,7 2.260 0,538 76,19 % 1
Hetzelfde experiment werd uitgevoerd met een 0,2 % Na:SO4-oplossing.
T pH Deb
MP H;SO4 om mogen mogen Afstotingsf (© (retent | iet (ba toegevo (1/m? retentaat permeaat actor
C) aat) | (lu) r) egd (ul) u) (mS/em) (mS/em) 10 | 22, 5,70 | 16,7 | 72,6 2.840 0,0755 97,34 %
DH S
10 |22,| 10 5,24 | 15,6 | 678 2.840 0,1706 93,99 %
PEL LVL EE
10 | 22, 30 439 | nvt|nvt. 2.840 0,824 70,99 %
PM
10 | 22, 70 3,91 13,6 | 59,1 2.850 1.706 40,14%
DH LITE
10 | 22, 110 3,71 18,0 | 78,3 2.880 1.939 32,67 %
EL LL
10 | 22, 190 3,48 18,4 | 80,0 2.970 2.090 28,67 %
IP
10 | 22, 350 3,21 18,4 | 80,0 3.060 2.230 27,12 %
DE LVL
10 | 22, 670 2,94 18,4 | 80,0 3.280 2.500 23,78 %
SL LT
10 | 22, 1310 2,65 18,1 | 78,7 3.730 2.870 23,06 %
IL
Er werd aangetoond dat de afstoting van natriumzout met divalent tegenion, zoals sulfaat, sterk pH-afhankelijk is in het geval van NF met polyamidemembraan. Omdat na de behandeling met een sterk kationenwisselaarshars een aanzienlijke hoeveelheid natriumzout in de verzamelde fracties aanwezig is als gevolg van de neutralisatie met een NaOH-oplossing (zie stap #3 in voorbeeld 2), kunnen deze zouten doeltreffend worden verwijderd in een tweede NF/DF (zie stap #5 in voorbeeld 2) wanneer de DF wordt uitgevoerd bij een pH van minder dan 4,5, bij voorkeur minder dan 4,0, wat leidt tot een vrijwel zoutvrije oplossing (zoals beoordeeld aan de hand van het geleidingsvermogen). In dit opzicht is het niet nodig om basische anionische harsen te gebruiken om een zoutvrije oplossing te verkrijgen.
Voorbeeld 4 — Bepaling van de afstotingsfactor van een substantie op een membraan
De afstoting van NaCl en MgSO4 op een membraan wordt als volgt bepaald: in een membraanfiltratiesysteem wordt een NaCl- (0,1 %) of een MgSO4-oplossing (0,2 %) over de gekozen membraanplaat (voor Tami: buismodule) gecirculeerd terwijl de permeaatstroom terug naar de toevoertank wordt geleid. Het systeem wordt gedurende 10 minuten bij 10 bar en 25 °C gestabiliseerd voordat monsters van het permeaat en het retentaat worden genomen.
De afstotingsfactor wordt aan de hand van het gemeten geleidingsvermogen van de monsters berekend: (1-kp/kr): 100, waarbij kp het geleidingsvermogen van NaCl of MgSO4 in het permeaat en kr het geleidingsvermogen van NaCl of MgSO4 in het retentaat is. membraan | actieve laag | MWCO spec. meting in spec. meting in
Trisep piperazine- | 1000-
Eee |] = qe
Ta eme ES
De afstotingsfactor van een koolhydraat wordt op een gelijkaardige manier, met dit verschil dat de afstotingsfactor wordt berekend op basis van de concentratie van de monsters (bepaald door HPLC): (1-Cp/Cr)-100, waarbij Cp de concentratie van het koolhydraat in het permeaat en Cr de concentratie van het koolhydraat in het retentaat is.
Claims (21)
1. Een methode voor de terugwinning en de zuivering van een neutrale of gesialyleerde moedermelkoligosacharide (HMO) uit een fermentatiebouillon, die bestaat uit de volgende stappen:
a. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen;
b. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden;
c. de zuivering van de HMO-bevattende stroom door nanofiltratie;
d. de optionele concentratie van de gezuiverde HMO-bevattende stroom; en e. de droging van de gezuiverde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen. waarbij de methode geen behandelingsstap met basisch anionenwisselaarshars en/of een elektrodialysestap omvat.
2. De methode volgens conclusie 1 waarbij de methode geen behandelingsstap met ionenwisselaarshars en/of een elektrodialysestap omvat.
3. De methode volgens conclusie 1 of 2 waarbij stap a) ultrafiltratie omvat met een ultrafiltrattemembraan met een molecuulgewicht cut-off (MWCO) hoger dan 30 kDa en lager dan 500 kDa en/of centrifugatie.
4. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij het nanofiltrattemembraan in stap c) een molecuulgewicht cut-off (MWCO) van 500-3000 Da heeft en de actieve laag van het membraan bij voorkeur bestaat uit polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, en de MgSO4-afstotingsfactor ongeveer 50-90 % bedraagt.
5. De methode volgens conclusie 4, waarbij stap c) wordt uitgevoerd zodat de pH lager wordt dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0.
6. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij stap c) verder een nanofiltratie in diafiltratiemodus omvat.
7. De methode volgens een van de conclusies 1 of 3 tot 6, waarbij de methode een verdere zuivering van de HMO-bevattende stroom met een kationenwisselaarshars, bij voorkeur een sterk zuur kationenwisselaarshars, omvat.
8. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij de methode een verdere zuivering van de HMO-bevattende stroom met een behandeling met actieve koolstof omvat.
9. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij stap d) bestaat uit verdamping, nanofiltratie en/of omgekeerde-osmosefiltratie, bij voorkeur uit verdamping.
10. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij stap d) een concentratie met een nanofiltratiemembraan omvat, waarbij het nanofiltratiemembraan bij voorkeur een molecuulgewicht cut-off (MWCO) van 150-300 Da heeft.
11. De methode volgens een van de conclusies 1 tot 9, waarbij stap d) een concentratie met een nanofiltrattemembraan omvat, het nanofiltrattemembraan een MWCO-waarde van 500-3000 Da en een actieve (top)laag van polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0.
12. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij stap d) wordt uitgevoerd en stap e) bij voorkeur bestaat uit de sproeidroging om een gestolde HMO te verkrijgen.
13. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij de methode verder bestaat uit een behandeling met actieve koolstof, bij voorkeur volgend op stap c) en/of stap d).
14. De methode volgens een van de conclusies 1 tot 3 die bestaat uit de volgende stappen, bij voorkeur in de volgende volgorde:
1. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraan met een MWCO van meer dan 10 kDa en minder dan 500 kDa;
ii. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal 1s en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden;
iii. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie;
iv. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof,
v. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratiestap, optioneel gecombineerd met diafiltratie, waarbij het nanofiltratiemembraan een MWCO-waarde van 500- 3000 Da en een actieve (top)laag van polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0;
vi. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en vii. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
15. De methode volgens een van de conclusies 1 tot 3 die bestaat uit de volgende stappen, bij voorkeur in de volgende volgorde:
1. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraan met een MWCO van meer dan 10 kDa en minder dan 500 kDa;
ii. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal is en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden;
iii. de zuivering van de HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie, waarbij het nanofiltratiemembraan bij voorkeur in het bereik van 500-3000 Da MWCO ligt en de actieve (top)laag van het membraan uit polyamide bestaat;
iv. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door diafiltratie;
v. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof,
vi. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratie, waarbij het nanofiltrattemembraan bij voorkeur in het bereik van 150-300 Da MWCO ligt;
vii. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratiestap; viii. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en ix. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
16. De methode volgens conclusie 14 of 15, waarbij het nanofiltrattemembraan een actieve (top)laag heeft die bestaat uit polyamide, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, het membraan een MgSO:-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en een NaCl-afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager dan 5,0 is, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0.
17. De methode volgens een van de conclusies 1 tot 3 die bestaat uit de volgende stappen, bij voorkeur in de volgende volgorde:
i. de scheiding van de fermentatiebouillon om een gescheiden HMO-bevattende stroom en een biomassa-afvalstroom te vormen, bij voorkeur door ultrafiltratie met een ultrafiltratiemembraan met een MWCO van meer dan 10 kDa en minder dan 500 kDa;
ii. de zuivering van de gescheiden HMO-bevattende stroom door membraanfiltratie met een membraan met een MWCO van 500 Da tot 5 kDa, waarbij de actieve (top)laag van het membraan geen polyamidemateriaal 1s en waarbij de afstotingsfactor voor de HMO met betrekking tot het membraan minder dan 90 % bedraagt, zodat minstens een deel van het HMO-product in het permeaat wordt toegelaten met optionele diafiltratie zodat de HMO zich in het permeaat ophoopt en ervoor wordt gezorgd dat onzuiverheden met een hoger molecuulgewicht dan dat van de HMO worden tegengehouden;
iii. de zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door gecombineerde nanofiltratie en diafiltratie;
iv. de zuivering van de neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door behandeling met actieve koolstof,
v. de optionele zuivering van de gescheiden neutrale of gesialyleerde HMO- bevattende stroom door een tweede nanofiltratiestap, optioneel gecombineerd met diafiltratie, waarbij het nanofiltrattemembraan een actieve (top)laag van polyamide heeft, bij voorkeur polyamide op basis van piperazine, het membraan een MgSO4-afstotingsfactor van ongeveer 50-90 % en bij voorkeur een NaCl- afstotingsfactor van niet meer dan 50 % heeft, en de nanofiltratiestap zodanig wordt uitgevoerd dat de pH lager is dan 5,0, bij voorkeur lager dan 4,5, bij voorkeur lager dan 4,0, maar bij voorkeur niet lager dan 3,0;
vi. de concentratie van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom door verdamping; en vii. de sproeidroging van de gezuiverde neutrale of gesialyleerde HMO-bevattende stroom om een gestolde neutrale of gesialyleerde HMO te verkrijgen.
18. De methode volgens een van de voorgaande conclusies, waarbij de HMO een neutrale HMO is.
19. De methode volgens conclusie 18, waarbij de HMO wordt gekozen uit de groep bestaande uit: 2'-fucosyllactose, 3-fucosyllactose, 2',3-difucosyllactose, lacto-N-triose IL lacto-N-tetraose, lacto-N-neotetraose, lacto-N-fucopentaose I, lacto-N-fucopentaose II, lacto-N-fucopentaose III lacto-N-fucopentaose V, lacto-N-fucopentaose VI, lacto- N-difucohexaose I, lacto-N-difucohexaose II, lacto-N-difucohexaose III, 6'- galactosyllactose, 3'-galactosyllactose, lacto-N-hexaose en lacto-N-neohexaose.
20. De methode volgens conclusie 18 of 19, waarbij de HMO 2'-fucosyllactose, 3- fucosyllactose, 2',3-difucosyllactose, lacto-N-triose IL, lacto-N-tetraose, lacto-N-
neotetraose of een lacto-N-fucopentaose is, bij voorkeur 2'-fucosyllactose, LNT, LNnT of een lacto-N-fucopentaose.
21. De methode volgens een van de conclusies 1 tot 17, waarbij de HMO een gesialyleerde HMO is, bij voorkeur 3'-sialyllactose (3'-SL) of 6'-sialyllactose (6'-SL).
Applications Claiming Priority (2)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| DKPA202100630 | 2021-06-15 | ||
| DKPA202100629A DK181124B1 (en) | 2021-06-15 | 2021-06-15 | Separation of neutral human milk oligosaccharides from a fermentation broth |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| BE1029435A1 BE1029435A1 (nl) | 2022-12-21 |
| BE1029435B1 true BE1029435B1 (nl) | 2023-07-31 |
Family
ID=82258550
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| BE20225466A BE1029435B1 (nl) | 2021-06-15 | 2022-06-14 | Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon |
Country Status (4)
| Country | Link |
|---|---|
| US (1) | US20240286081A1 (nl) |
| EP (1) | EP4355463A1 (nl) |
| BE (1) | BE1029435B1 (nl) |
| WO (1) | WO2022263424A1 (nl) |
Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20020034805A1 (en) * | 1997-12-15 | 2002-03-21 | Michel Gilbert | Fusion proteins for use in enzymatic synthyesis of oligosaccharides |
| WO2006034225A2 (en) * | 2004-09-17 | 2006-03-30 | Neose Technologies, Inc. | Production of oligosaccharides by microorganisms |
| WO2017152918A1 (en) * | 2016-03-07 | 2017-09-14 | Glycom A/S | Separation of oligosaccharides from fermentation broth |
| US20200215486A1 (en) * | 2017-06-30 | 2020-07-09 | Glycom A/S | Synthesis of oligosaccharides |
| WO2020233958A1 (en) * | 2019-05-21 | 2020-11-26 | Jennewein Biotechnologie Gmbh | Purification of oligosaccharides from a fermentation broth by using filtration |
| WO2021124234A1 (en) * | 2019-12-19 | 2021-06-24 | Glycom A/S | Separation of sialylated oligosaccharides from fermentation broth |
Family Cites Families (15)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| FR2796082B1 (fr) | 1999-07-07 | 2003-06-27 | Centre Nat Rech Scient | Procede de production d'oligosaccharides |
| US7820422B2 (en) | 2005-06-16 | 2010-10-26 | Centre National De La Recherche Scientifique (Cnrs) | Efficient production of oligosaccharides using metabolically engineered microorganisms |
| CN101415834B (zh) | 2006-03-09 | 2014-09-24 | 国家科学研究中心 | 生产涎化低聚糖的方法 |
| NL2001377C2 (nl) | 2008-03-14 | 2009-09-15 | Friesland Brands Bv | Werkwijze voor het isoleren van siaalzuur bevattende oligosachariden, alsmede de hiermee verkrijgbare siaalzuur bevattende oligosachariden bevatttende samenstellingen. |
| DK2479263T3 (da) | 2011-01-20 | 2014-02-03 | Jennewein Biotechnologie Gmbh | Nye fucosyltransferaser og deres anvendelser |
| US9453230B2 (en) | 2011-02-16 | 2016-09-27 | Glycosyn LLC | Biosynthesis of human milk oligosaccharides in engineered bacteria |
| EP2896628B1 (en) | 2014-01-20 | 2018-09-19 | Jennewein Biotechnologie GmbH | Process for efficient purification of neutral human milk oligosaccharides (HMOs) from microbial fermentation |
| DK3154995T3 (da) | 2014-06-11 | 2023-11-20 | Glycom As | Separation of 2'-o-fucosyllactose from fermentation broth |
| DE202015009775U1 (de) | 2014-12-16 | 2020-02-05 | Glycom A/S | Abscheidung von 2'-FL aus einer Fermentationsbrühe |
| EP3445770B1 (en) | 2016-04-19 | 2025-11-26 | Glycom A/S | Separation of oligosaccharides from fermentation broth |
| WO2017221208A1 (en) | 2016-06-24 | 2017-12-28 | Glycom A/S | Compositions comprising hmos, their production and use for the prevention and/or treatment of viral and/or bacterial infections |
| EP3450443A1 (en) | 2017-08-29 | 2019-03-06 | Jennewein Biotechnologie GmbH | Process for purifying sialylated oligosaccharides |
| EP3456836A1 (en) | 2017-09-13 | 2019-03-20 | Glycom A/S | Separation of sialylated oligosaccharides from fermentation broth |
| CN111164090A (zh) | 2017-09-29 | 2020-05-15 | 菲仕兰坎皮纳荷兰公司 | 用于从微生物发酵纯化中性母乳寡糖(hmo)的方法 |
| KR102837674B1 (ko) | 2018-06-01 | 2025-07-23 | 크리스찬 한센 에이치엠오 게엠베하 | 시알릴락토스의 정제를 위한 간단한 방법 |
-
2022
- 2022-06-14 BE BE20225466A patent/BE1029435B1/nl active IP Right Grant
- 2022-06-14 US US18/570,003 patent/US20240286081A1/en active Pending
- 2022-06-14 EP EP22734263.1A patent/EP4355463A1/en not_active Withdrawn
- 2022-06-14 WO PCT/EP2022/066131 patent/WO2022263424A1/en not_active Ceased
Patent Citations (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| US20020034805A1 (en) * | 1997-12-15 | 2002-03-21 | Michel Gilbert | Fusion proteins for use in enzymatic synthyesis of oligosaccharides |
| WO2006034225A2 (en) * | 2004-09-17 | 2006-03-30 | Neose Technologies, Inc. | Production of oligosaccharides by microorganisms |
| WO2017152918A1 (en) * | 2016-03-07 | 2017-09-14 | Glycom A/S | Separation of oligosaccharides from fermentation broth |
| US20200215486A1 (en) * | 2017-06-30 | 2020-07-09 | Glycom A/S | Synthesis of oligosaccharides |
| WO2020233958A1 (en) * | 2019-05-21 | 2020-11-26 | Jennewein Biotechnologie Gmbh | Purification of oligosaccharides from a fermentation broth by using filtration |
| WO2021124234A1 (en) * | 2019-12-19 | 2021-06-24 | Glycom A/S | Separation of sialylated oligosaccharides from fermentation broth |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| BE1029435A1 (nl) | 2022-12-21 |
| US20240286081A1 (en) | 2024-08-29 |
| EP4355463A1 (en) | 2024-04-24 |
| WO2022263424A1 (en) | 2022-12-22 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| AU2018373610B2 (en) | Process for the purification of L-fucose from a fermentation broth | |
| KR20220116001A (ko) | 발효액으로부터 시알릴화된 올리고사카라이드의 분리 | |
| BE1029437B1 (nl) | Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon | |
| BE1029436B1 (nl) | Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon | |
| BE1029435B1 (nl) | Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon | |
| BE1029434B1 (nl) | Scheiding van moedermelkoligosachariden uit een fermentatiebouillon | |
| CN117480000A (zh) | 从发酵液中分离人乳寡糖 | |
| DK181124B1 (en) | Separation of neutral human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| DK181291B1 (en) | Separation of neutral human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| DK181615B1 (en) | Separation of human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| DK202100635A1 (en) | Separation of neutral human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| CN117651602A (zh) | 从发酵液中分离人乳寡糖 | |
| CN117480001A (zh) | 从发酵液中分离人乳寡糖 | |
| EP4539967A1 (en) | Separation of human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| RU2789351C2 (ru) | Способ очистки l-фукозы от ферментационного бульона | |
| DK202330368A1 (en) | Separation of human milk oligosaccharides from a fermentation broth | |
| HK40023985A (en) | Process for the purification of l-fucose from a fermentation broth |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| FG | Patent granted |
Effective date: 20230731 |