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WO2023112939A1 - 組成物の純化方法 - Google Patents

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WO2023112939A1
WO2023112939A1 PCT/JP2022/045954 JP2022045954W WO2023112939A1 WO 2023112939 A1 WO2023112939 A1 WO 2023112939A1 JP 2022045954 W JP2022045954 W JP 2022045954W WO 2023112939 A1 WO2023112939 A1 WO 2023112939A1
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WO
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compound
composition
group
liquid
formula
Prior art date
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PCT/JP2022/045954
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French (fr)
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雄大 宮崎
隆之 新井
祐敬 伊東
走 根岸
秀吉 原島
悠介 佐藤
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Hokkaido University NUC
JSR Corp
Original Assignee
Hokkaido University NUC
JSR Corp
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Publication date
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Priority to CA3242621A priority patent/CA3242621A1/en
Priority to EP22907463.8A priority patent/EP4450485A1/en
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    • C12N—MICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N2310/00—Structure or type of the nucleic acid
    • C12N2310/10—Type of nucleic acid
    • C12N2310/14—Type of nucleic acid interfering nucleic acids [NA]

Definitions

  • the drugs administered to the body are metabolized in the liver and excreted through the kidneys before reaching the target site (on-target) such as receptors and genes. In addition, they may act on off-target sites and cause side effects.
  • Lipid nanoparticles encapsulating drugs are known as DDS.
  • Patent Document 1 and Non-Patent Document 1 describe lipid nanoparticles encapsulating siRNA.
  • Patent Document 1 and Non-Patent Document 1 disclose that lipid nanoparticles encapsulating siRNA are useful for cancer immunotherapy and the like by knockdown using siRNA targeting immunosuppressive factors of dendritic cells. is described.
  • a method for purifying a composition comprising a step of dissolving a composition containing a compound represented by the following formula (1) in an aqueous layer and performing liquid-liquid extraction to purify the compound represented by the following formula (1), , the oil layer used in the liquid-liquid extraction is selected from the group consisting of ketone-based liquids, ester-based liquids, and ether-based liquids having a solubility parameter (SP value) of 14.8 to 20.5 (MPa 1/2 ).
  • SP value solubility parameter
  • R 1 represents -N(R 2 )-R 2 (wherein each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group), and R 3 represents a C3-C8 represents an alkanediyl group, R 4 represents a C3-C8 alkanediyl group, R 5 represents a hydroxyl group, R 6 each independently represents -R 7 -OH (wherein R 7 represents a C4-C12 alkanediyl group) or a hydrogen atom, and n is an integer of 0 or 1.
  • R 1 represents -N(R 2 )-R 2 (wherein each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group), and R 3 represents a C3-C8 represents an alkanediyl group, R 4 represents a C3-C8 alkanediyl group, R 5 represents a hydroxyl group or a hydrogen atom, R 9 each independently represents -R 7 -OC(O)-R 10 or - O—C(O)—R 10 wherein R 7 represents a C4-C12 alkanediyl group and R 10 represents a C4-C25 alkenyl group, wherein at least one R 9 is —R 7 —O—C(O)—R 10 and n is an integer of 0 or 1; ] [4]
  • FIG. 1 shows the reaction of scheme (I).
  • FIG. 2 shows the reaction of scheme (II).
  • FIG. 3 shows the reaction of scheme (III).
  • the present invention provides a composition comprising a step of dissolving a composition containing a compound represented by the following formula (1) in an aqueous layer and performing liquid-liquid extraction to purify the compound represented by the following formula (1): wherein the oil layer used in the liquid-liquid extraction is from a ketone-based liquid, an ester-based liquid, and an ether-based liquid with a solubility parameter (SP value) of 14.8 to 20.5 (MPa 1/2 )
  • SP value solubility parameter
  • a purification method comprising one or more liquids selected from the group consisting of:
  • R 1 represents -N(R 2 )-R 2 (wherein each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group), and R 3 represents a C3-C8 alkane. represents a diyl group, R 4 represents a C3-C8 alkanediyl group, R 5 represents a hydroxyl group, and R 6 represents -R 7 -OH (wherein R 7 represents a C4-C12 alkanediyl group; ) or a hydrogen atom, and n is an integer of 0 or 1.
  • the compound represented by the above formula (1) can be purified to remove contaminants, and the composition (lipid) described later can be produced. Then, when lipid nanoparticles encapsulating siRNA are produced with this lipid, compared with the case where the purification method of the present embodiment is not performed, the pharmacokinetics of the lipid nanoparticles to the target site is improved, and It is possible to suppress the decrease in target gene knockdown efficiency.
  • improving pharmacokinetics means increasing the proportion of lipid nanoparticles delivered to the target site among the administered lipid nanoparticles.
  • a composition containing the compound represented by formula (1) above can be obtained, for example, by the reaction of scheme (I) shown in FIG.
  • R 2 and R 7 are the same as in the above formula (1), each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group, and each R 7 independently represents a C4-C12 alkanediyl group. and R 8 represents a protecting group.
  • R 2 and R 7 are the same as in the above formula (1), each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group, and each R 7 independently represents a C4-C12 alkanediyl group. and R 8 represents a protecting group.
  • protective group for R 8 those commonly used as protective groups for hydroxyl groups can be appropriately used. Specific examples include tert-butyldimethylsilyl group, trimethylsilyl group, triethylsilyl group, benzyl group, tert-butyl group, methoxymethyl group, 2-tetrahydropyranyl group, acetyl group, benzoyl group and the like.
  • Liquid-liquid extraction is a separation/concentration method that utilizes the distribution of solutes between two immiscible liquids.
  • the composition containing the compound represented by the above formula (1) is dissolved in an aqueous layer, and extraction is performed between this and an immiscible oil layer.
  • the oil layer used in liquid-liquid extraction is selected from the group consisting of ketone-based liquids, ester-based liquids and ether-based liquids having a solubility parameter (SP value) of 14.8 to 20.5 (MPa 1/2 ). A seed or two or more liquids are used. Liquid-liquid extraction can be performed under normal conditions.
  • R 1 represents -N(R 2 )-R 2 (wherein each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group), and R 3 represents a C3-C8 , each R 7 independently represents a C4-C12 alkanediyl group, and each R 10 independently represents a C4-C25 alkenyl group. ]
  • R 1 represents -N(R 2 )-R 2 (wherein each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group), and R 3 represents a C3-C8 R 4 represents a C3-C8 alkanediyl group, R 7 independently represents a C4-C12 alkanediyl group, and R 10 independently represents a C4-C25 alkenyl group. . ]
  • composition of this embodiment can be obtained, for example, by the reaction of scheme (II) shown in FIG. Scheme (II) is a continuation reaction to scheme (I) shown in FIG.
  • R 2 and R 7 are the same as in the above formula (1), each R 2 independently represents a C1-C4 alkyl group, and each R 7 independently represents a C4-C12 alkanediyl group. indicates Each R 10 independently represents a C4-C25 alkenyl group.
  • R 6 is converted to R 9 (wherein X is a halogen atom) by reacting a composition containing compounds 5, 5′ and 5′′ with X—C(O)—R 10 and R 9 represents -R 7 -OC(O)-R 10 or -OC(O)-R 10. ).
  • the composition of this embodiment contains one or more compounds selected from the group consisting of the compounds (2-1), (2-2) and (2-3), and is included in the composition.
  • the total content of compound (2-1), compound (2-2) and compound (2-3) is 90% by mass or more, preferably 95% by mass or more, more preferably 98% by mass or more, and still more preferably is 99% by mass or more, and the remainder contains contaminants.
  • the composition of the present embodiment can be obtained by removing contaminants by carrying out the above-described method for purifying the composition.
  • the composition of the present embodiment preferably contains 85 to 99% by mass of the compound (2-1) contained in the composition.
  • the total content of compound (2-2) and compound (2-3) contained in the composition is preferably 0.1 to 15% by mass.
  • n is 0, one of R 9 is —R 7 —O—C(O)—R 10 and the other of R 9 is —O It provides a compound (2-2) wherein —C(O)—R 10 and R 5 is a hydrogen atom.
  • the general formula of compound (2-2) is as described above.
  • the present invention contains one or more compounds selected from the group consisting of compounds (2-1), (2-2) and (2-3) above, and in the composition
  • the total content of compound (2-1), compound (2-2) and compound (2-3) is 90% by mass or more, preferably 95% by mass or more, more preferably 98% by mass or more, and further Provided are drug-encapsulating lipid nanoparticles formed from a composition, preferably 99% by mass or more.
  • lipid nanoparticles in this specification refer to particles with a particle size of 10 nm to 1,000 nm, the main component of which is lipid. Lipid nanoparticles are also referred to as “Lipid Nanoparticles” (LNP).
  • LNP Lipid Nanoparticles
  • the lipid nanoparticles of the present embodiment have reduced contamination with adversely affecting contaminants, so they have good pharmacokinetics to the target site. Also, when the drug is siRNA, the knockdown efficiency of the target gene is high.
  • the lipid nanoparticles of the present embodiment can be formed from the composition from which contaminants have been removed by performing the above-described method for purifying the composition.
  • lipid component of the lipid nanoparticles only one or two or more compounds selected from the group consisting of the above compounds (2-1), (2-2) and (2-3) may be used, In general, for example, lipid nanoparticles are combined with one or more lipids selected from the group consisting of phospholipids, glycolipids, sterols, saturated or unsaturated fatty acids, and saturated or unsaturated fatty acid esters. form particles.
  • lipids selected from the group consisting of phospholipids, glycolipids, sterols, saturated or unsaturated fatty acids, and saturated or unsaturated fatty acid esters. form particles.
  • the combination of multiple lipids and the blending ratio thereof can be appropriately adjusted according to the purpose.
  • Phospholipids and phospholipid derivatives include, for example, phosphatidylethanolamine, phosphatidylcholine, phosphatidylserine, phosphatidylinositol, phosphatidylglycerol, cardiolipin, sphingomyelin, ceramide phosphorylethanolamine, ceramide phosphorylglycerol, ceramide phosphorylglycerol phosphate, 1 ,2-dimyristoyl-1,2-deoxyphosphatidylcholine, distearoylphosphatidylcholine, plasmalogen, phosphatidic acid and the like, and these can be used singly or in combination of two or more.
  • Glycolipids include, for example, glyceroglycolipids (e.g., sulfoxyribosylglyceride, diglycosyldiglyceride, digalactosyldiglyceride, galactosyldiglyceride, glycosyldiglyceride), glycosphingolipids (e.g., galactosylcerebroside, lactosylcerebroside, ganglioside), and the like. mentioned.
  • glyceroglycolipids e.g., sulfoxyribosylglyceride, diglycosyldiglyceride, digalactosyldiglyceride, galactosyldiglyceride, glycosyldiglyceride
  • glycosphingolipids e.g., galactosylcerebroside, lactosylcerebroside, ganglioside
  • sterols examples include animal-derived sterols (e.g., cholesterol, cholesterol succinate, lanosterol, dihydrolanosterol, desmosterol, dihydrocholesterol), plant-derived sterols (phytosterols) (e.g., stigmasterol, sitosterol, campesterol, Brassicasterol), microorganism-derived sterols (eg, zymosterol, ergosterol), and the like.
  • animal-derived sterols e.g., cholesterol, cholesterol succinate, lanosterol, dihydrolanosterol, desmosterol, dihydrocholesterol
  • plant-derived sterols e.g., stigmasterol, sitosterol, campesterol, Brassicasterol
  • microorganism-derived sterols eg, zymosterol, ergosterol
  • saturated or unsaturated fatty acids include saturated or unsaturated fatty acids having 12 to 20 carbon atoms such as palmitic acid, oleic acid, stearic acid, arachidonic acid and myristic acid.
  • the size of the lipid nanoparticles in the dispersed state can be appropriately selected according to the purpose.
  • the average particle size of lipid nanoparticles means the number average particle size measured by DLS. Measurement by DLS can be performed by a conventional method using a commercially available DLS device or the like.
  • the polydispersity index (PDI) is about 0.05-0.1, preferably about 0.06-0.08, more preferably about 0.07.
  • the composition of the aqueous solvent (dispersion medium) is not particularly limited. can be done.
  • These aqueous solvents (dispersion media) can stably disperse lipid nanoparticles, and furthermore, monosaccharides such as glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose, xylose sugar, lactose, sucrose, cellobiose, trehalose, Disaccharides such as maltose, trisaccharides such as raffinose and melezinose, polysaccharides such as cyclodextrin, sugars (aqueous solutions) such as sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol and maltitol, glycerin, diglycerin and polyglycerin , Polyhydric alcohol (aqueous solution) such as propylene glycol, polypropylene glycol,
  • lipid nanoparticles may be added.
  • electrolytes in the aqueous solvent it is preferable to eliminate electrolytes in the aqueous solvent as much as possible from the viewpoint of physical stability such as inhibition of aggregation.
  • lipid nanoparticles for example, monosaccharides of glucose, galactose, mannose, fructose, inositol, ribose, xylose sugar; lactose, sucrose, cellobiose, trehalose, Disaccharides such as maltose; trisaccharides such as raffinose and melezinose; polysaccharides such as cyclodextrin; sugar alcohols such as erythritol, xylitol, sorbitol, mannitol and maltitol; Sometimes.
  • the above sugars, glycerin, diglycerin, polyglycerin, propylene glycol, polypropylene glycol, ethylene glycol, diethylene glycol, triethylene glycol, polyethylene glycol, ethylene glycol monoalkyl ether , diethylene glycol monoalkyl ether, 1,3-butylene glycol, and other polyhydric alcohols (aqueous solutions) may improve stability.
  • the drug to be encapsulated in the lipid nanoparticles of this embodiment is not particularly limited.
  • active ingredients of any medicine such as antitumor agents, anti-inflammatory agents, antibacterial agents, and antiviral agents, sugars, peptides, low-molecular-weight compounds, metals
  • Any substance, such as a chemical compound, can be encapsulated in the lipid nanoparticles.
  • One type of these may be included alone, or two or more types may be mixed and included.
  • siRNA small interfering RNA
  • RNAi RNA interference
  • genes can be knocked down by RNA interference using siRNA, it is expected to be used as a medicine and applied in the therapeutic field of cancer and the like.
  • the type of siRNA that can be used is not particularly limited, and any siRNA can be used as long as it can cause RNA interference.
  • an RNA having a structure in which the 3′ portion of the RNA strand protrudes by two bases and each strand has a phosphate group at the 5′ end and a hydroxyl group at the 3′ end can be used as siRNA.
  • siRNAs in which the hydroxyl group at the 2'-position of the ribose backbone is partially substituted with a methoxy group, fluoro group or methoxyethyl group, and the phosphodiester bond is partially substituted with a phosphorothioate bond.
  • the form of the lipid nanoparticles of the present embodiment is not particularly limited. is mentioned.
  • composition (1-3) containing compound (4-1-1), compound (4-2-1), and compound (4-3-1)
  • composition (1-3) containing compound (4-1-1), compound (4-2-1), and compound (4-3-1)
  • tetrahydrofuran was added to 12.4 g of the composition of Experimental Example 1-2 and cooled to 4°C.
  • 7.38 mL (54.0 mmol) of dipropylamine was added to the flask and reacted at room temperature for 11 days. After distilling off the solvent using a rotary evaporator, the residue was suspended in ethyl acetate and separated and washed with 0.5N sodium hydroxide aqueous solution and saturated brine.
  • siRNA-encapsulating lipid nanoparticles (LNP2 to LNP11) were produced in the same manner except that compositions (3-2) to (3-11) were used instead of composition (3-1). .
  • each excised organ was diluted with PBS containing 0.25% Triton X-100 and homogenized with a bead crusher. Subsequently, the protein was heat denatured by treatment at 95° C. for 10 minutes. Subsequently, each sample was allowed to stand on ice for 5 minutes, and then centrifuged at 20,000 xg at 4°C for 20 minutes. Subsequently, the supernatant of each sample was treated at 95° C. for 10 minutes, and RNA reverse transcription reaction was performed. A commercially available kit (product name "TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit", Thermo Fisher Scientific) was used for the reverse transcription reaction. The reaction conditions were 16° C. for 30 minutes, followed by 42° C. for 30 minutes, followed by 85° C. for 5 minutes.
  • Example 8 In vivo knockdown activity evaluation of lipid nanoparticles encapsulating siRNA
  • the in vivo knockdown activity of lipid nanoparticles encapsulating siRNA was evaluated. Specifically, (LNP1 to LNP11) produced in Experimental Example 6 were added to mice (C57BL/6NCrSlc, 6 weeks old, female, Sankyo Lab Service Co., Ltd.) so that the amount of siRNA was 0.03 mg/kg body weight. Each was administered through the tail vein. Subsequently, mice were euthanized 24 hours later and bled from the inferior vena cava. Blood samples were then centrifuged at 800 xg for 5 minutes at 4°C to obtain plasma samples.

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Abstract

下記式（１）［式（１）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（Ｒ２はＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３及びＲ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基を示し、Ｒ６は－Ｒ７－ＯＨ（Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示す。）又は水素原子を示し、ｎは０又は１の整数を示す。］に示す化合物を含む組成物を水層に溶解させて液液抽出する工程を含む、組成物の純化方法であって、前記液液抽出で用いる油層が、溶解度パラメーター（ＳＰ値）が１４．８～２０．５（ＭＰａ１／２）の、ケトン系液体、エステル系液体及びエーテル系液体からなる群より選択される１種又は２種以上の液体を含む、純化方法。

Description

組成物の純化方法
　本発明は、組成物の純化方法に関する。より詳細には、本発明は、組成物の純化方法、組成物、化合物、及び、脂質ナノ粒子に関する。本願は、２０２１年１２月１６日に、日本に出願された特願２０２１－２０４５９４号に基づき優先権を主張し、その内容をここに援用する。
　生体に投与された薬物の大部分は、レセプターや遺伝子等の標的部位（ｏｎ－ｔａｒｇｅｔ）に到達する前に、肝臓で代謝され、腎臓より排泄される。また、非標的部位（ｏｆｆ－ｔａｒｇｅｔ）に作用し、副作用を起こすことがある。
　薬物送達システム（Ｄｒｕｇ　Ｄｅｌｉｖｅｒｙ　Ｓｙｓｔｅｍ、ＤＤＳ）とは、薬物の効果を最大限引き出すために、薬物の体内動態を制御する創薬技術である。ＤＤＳにより、薬物を、標的部位（ｏｎ－ｔａｒｇｅｔ）に適切な濃度及び期間、送達することができる。
　ＤＤＳとしては、薬剤を内包する脂質ナノ粒子等が知られている。例えば、特許文献１や非特許文献１には、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子が記載されている。また、特許文献１や非特許文献１には、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子が、樹状細胞の免疫抑制因子を標的部位とするｓｉＲＮＡを用いたノックダウンによる癌免疫療法等に有用であることが記載されている。
米国特許出願公開第２０１７／００２７３９０５号明細書
Warashina S., et al., A lipid nanoparticle for the efficient delivery of siRNA to dendritic cells, Journal of Controlled Release, 225, 183-191, 2016.
　しかしながら、本発明者らは、特許文献１や非特許文献１に記載の脂質ナノ粒子を構成する脂質に夾雑物が含まれており、この夾雑物が、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子の標的部位への体内動態に悪影響を与え、また、標的遺伝子のノックダウン効率を下げることを見出した。そこで、本発明は、脂質を含む組成物中に含まれる夾雑物を除去する技術を提供することを目的とする。
　本発明は以下の実施形態を含む。
［１］下記式（１）に示す化合物を含む組成物を水層に溶解させて液液抽出し、下記式（１）に示す化合物を精製する工程を含む、組成物の純化方法であって、前記液液抽出で用いる油層が、溶解度パラメーター（ＳＰ値）が１４．８～２０．５（ＭＰａ１／２）の、ケトン系液体、エステル系液体及びエーテル系液体からなる群より選択される１種又は２種以上の液体を含む、純化方法。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000003
 ［式（１）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基を示し、Ｒ６はそれぞれ独立に－Ｒ７－ＯＨ（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示す。）又は水素原子を示し、ｎは０又は１の整数を示す。］
［２］前記ケトン系液体が、シクロヘキサノン、メチルイソブチルケトン又はジイソプロピルケトンであり、前記エステル系液体が、酢酸エチル又は酢酸ブチルであり、前記エーテル系液体が、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、シクロペンチルメチルエーテル又はプロピレングリコールモノメチルエーテルアセテートである、［１］に記載の純化方法。
［３］下記式（２）に示す化合物において、ｎが０であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－１）、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物（２－２）、及び、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物を含み、組成物中に含まれる、化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の合計の含有割合が９０質量％以上である、組成物。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000004
 ［式（２）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基又は水素原子を示し、Ｒ９はそれぞれ独立に－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。）を示し、ここで、少なくとも１つのＲ９は－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、ｎは０又は１の整数を示す。］
［４］組成物中に含まれる、前記化合物（２－１）の含有割合が８５～９９質量％である、［３］に記載の組成物。
［５］組成物中に含まれる、前記化合物（２－２）及び前記化合物（２－３）の合計の含有割合が、０．１～１５質量％である、［３］又は［４］に記載の組成物。
［６］［３］に記載の式（２）において、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物。
［７］［３］に記載の式（２）において、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物。
［８］［３］～［５］のいずれかに記載の組成物に含まれる化合物から形成され、薬物を内包する脂質ナノ粒子。
［９］前記薬物がｓｉＲＮＡである、［８］に記載の脂質ナノ粒子。
　本発明によれば、脂質を含む組成物中に含まれる夾雑物を除去する技術を提供することができる。
図１は、スキーム（Ｉ）の反応を示す図である。 図２は、スキーム（ＩＩ）の反応を示す図である。 図３は、スキーム（ＩＩＩ）の反応を示す図である。
　以下、実施形態を示して本発明をさらに詳細に説明するが、本発明は以下の実施形態に何ら限定されるものではない。
［組成物の純化方法］
　一実施形態において、本発明は、下記式（１）に示す化合物を含む組成物を水層に溶解させて液液抽出し、下記式（１）に示す化合物を精製する工程を含む、組成物の純化方法であって、前記液液抽出で用いる油層が、溶解度パラメーター（ＳＰ値）が１４．８～２０．５（ＭＰａ１／２）の、ケトン系液体、エステル系液体及びエーテル系液体からなる群より選択される１種又は２種以上の液体を含む、純化方法を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000005
　式（１）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基を示し、Ｒ６は－Ｒ７－ＯＨ（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示す。）又は水素原子を示し、ｎは０又は１の整数を示す。
　上述したように、本発明者らは、特許文献１や非特許文献１に記載の脂質ナノ粒子を構成する脂質に夾雑物が含まれており、この夾雑物が、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子の標的部位への体内動態に悪影響を与え、また、標的遺伝子のノックダウン効率を下げることを見出した。この夾雑物は化学構造の同定が困難であり、化学構造は未だ不明である。
　しかしながら、本実施形態の純化方法により、上記式（１）に示す化合物を精製して夾雑物を除去し、後述する組成物（脂質）を製造することができる。そして、この脂質でｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子を作製した場合、本実施形態の純化方法を実施しなかった場合と比較して、脂質ナノ粒子の標的部位への体内動態を改善し、また、標的遺伝子のノックダウン効率の低下を抑制することができる。本明細書において、体内動態を改善するとは、投与した脂質ナノ粒子のうち、標的部位に送達される脂質ナノ粒子の割合が上昇することを意味する。
　上記式（１）に示す化合物を含む組成物は、例えば、図１に示すスキーム（Ｉ）の反応により得ることができる。図１中、Ｒ２、Ｒ７は上記式（１）におけるものと同様であり、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示し、Ｒ７はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ８は保護基を示す。図１中、化合物２’、２’’、３’、３’’、４’、４’’、５’、５’’は、目的外産物であるが、発明者らは、これらの化合物が存在していても、後述する組成物（脂質）を製造して、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子を作製した場合、脂質ナノ粒子の標的部位への体内動態、及び標的遺伝子のノックダウン効率には悪影響がないことを確認している。
　Ｒ８における保護基としては、通常ヒドロキシル基の保護基として使用されるものを適宜使用することができる。具体的には、例えば、ｔｅｒｔ－ブチルジメチルシリル基、トリメチルシリル基、トリエチルシリル基、ベンジル基、ｔｅｒｔ－ブチル基、メトキシメチル基、２－テトラヒドロピラニル基、アセチル基、ベンゾイル基等が挙げられる。
　液液抽出とは、互いに混じり合わない二液間における溶質の分配を利用した分離・濃縮方法である。本実施形態の純化方法では、上記式（１）に示す化合物を含む組成物を水層に溶解させ、これと混じり合わない油層との間で抽出を行う。液液抽出で用いる油層としては、溶解度パラメーター（ＳＰ値）が１４．８～２０．５（ＭＰａ１／２）の、ケトン系液体、エステル系液体及びエーテル系液体からなる群より選択される１種又は２種以上の液体を使用する。液液抽出は通常の条件で行うことができる。具体的には、例えば、室温で上記の水層と油層とを混合したのち、静置して水層と油層とを分離させ、水層を回収する。その結果、夾雑物が除去された、上記式（１）に示す化合物を回収した水層中に得ることができる。
　ここで、ケトン系液体としては、シクロヘキサノン、メチルイソブチルケトン、ジイソプロピルケトンが挙げられる。エステル系液体としては、酢酸エチル、酢酸ブチルが挙げられる。エーテル系液体としては、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、シクロペンチルメチルエーテル、プロピレングリコールモノメチルエーテルアセテートが挙げられる。本明細書では、プロピレングリコールモノメチルエーテルアセテートのように－Ｃ（Ｏ）－基とエーテル結合の両方を有する液体は、上記のとおり、エーテル系液体に分類する。これらの液体は、１種を単独で使用してもよく、２種以上を混合して使用してもよい。
［組成物］
　一実施形態において、本発明は、下記式（２）に示す化合物において、ｎが０であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－１）、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物（２－２）、及び、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物を含み、組成物中に含まれる、化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の合計の含有割合が９０質量％以上である、組成物を提供する。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000006
　式（２）中、Ｒ１は－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基又は水素原子を示し、Ｒ９はそれぞれ独立に－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。）を示し、ここで、少なくとも１つのＲ９は－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、ｎは０又は１の整数を示す。
　化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の一般式を下記に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000007
 ［式（２－１）中、Ｒ１は－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ７はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000008
 ［式（２）中、Ｒ１は－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。］
Figure JPOXMLDOC01-appb-C000009
 ［式（２－３）中、Ｒ１は－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ７はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。］
　本実施形態の組成物は脂質であり、薬物を内包する脂質ナノ粒子を製造することができる。本実施形態の組成物は、上述した純化方法により純化した、上記式（１）に示す化合物を含む組成物におけるＲ６を、Ｒ９（ここで、Ｒ９は、－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０を示す。）に変換することにより得ることができる。ここで、Ｒ９は、－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０である。
　本実施形態の組成物は、例えば、図２に示すスキーム（ＩＩ）の反応により得ることができる。スキーム（ＩＩ）は、図１に示すスキーム（Ｉ）に連続した反応である。図２中、Ｒ２、Ｒ７は上記式（１）におけるものと同様であり、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示し、Ｒ７はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示す。Ｒ１０はそれぞれ独立にＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。
　図２中、化合物６は上記化合物（２－１）の例であり、化合物６’は上記化合物（２－２）の例であり、化合物６’’は上記化合物（２－３）の例である。ここで、化合物６’、６’’は、目的外産物であるが、発明者らは、これらの化合物が存在していても、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子を作製した場合、脂質ナノ粒子の標的部位への体内動態、及び標的遺伝子のノックダウン効率には悪影響がないことを確認している。
　図２では、化合物５、５’、５’’を含む組成物に、Ｘ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０（ここで、Ｘはハロゲン原子）を反応させることにより、Ｒ６をＲ９（ここで、Ｒ９は、－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０を示す。）に変換している。
　本実施形態の組成物は、上記化合物（２－１）、（２－２）及び（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物を含み、組成物中に含まれる、化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の合計の含有割合が９０質量％以上、好ましくは９５質量％以上、より好ましくは９８質量％以上、更に好ましくは９９質量％以上であり、残余は夾雑物を含む。本実施形態の組成物は、上述した組成物の純化方法を実施し、夾雑物を除去することによって得ることができる。
　本実施形態の組成物は、組成物中に含まれる、上記化合物（２－１）の含有割合が８５～９９質量％であることが好ましい。また、組成物中に含まれる、上記化合物（２－２）及び上記化合物（２－３）の合計の含有割合が、０．１～１５質量％であることが好ましい。
［化合物］
　一実施形態において、本発明は、上記式（２）において、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物（２－２）を提供する。化合物（２－２）の一般式は上述した通りである。
　別の一実施形態において、本発明は、上記式（２）において、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－３）を提供する。化合物（２－３）の一般式は上述した通りである。
［脂質ナノ粒子］
　一実施形態において、本発明は、上記化合物（２－１）、（２－２）及び（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物を含み、組成物中に含まれる、化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の合計の含有割合が９０質量％以上、好ましくは９５質量％以上、より好ましくは９８質量％以上、更に好ましくは９９質量％以上である、組成物から形成され、薬物を内包する脂質ナノ粒子を提供する。
　本明細書における脂質ナノ粒子は、脂質を主成分とする１０ｎｍ～１，０００ｎｍの粒径の粒子を示す。脂質ナノ粒子は、「Ｌｉｐｉｄ　Ｎａｎｏｐａｒｔｉｃｌｅ」（ＬＮＰ）ともいう。
　本実施形態の脂質ナノ粒子は、悪影響のある夾雑物の混入が低減されているため、標的部位への体内動態が良好である。また、薬物がｓｉＲＮＡである場合、標的遺伝子のノックダウン効率が高い。本実施形態の脂質ナノ粒子は、上述した組成物の純化方法を実施し、夾雑物を除去した組成物から形成することができる。
　脂質ナノ粒子の脂質成分として、上記化合物（２－１）、（２－２）及び（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物のみを用いてもよいが、一般的には、例えば、リン脂質、糖脂質、ステロール、飽和若しくは不飽和の脂肪酸、及び飽和若しくは不飽和の脂肪酸エステルからなる群より選択される１種又は２種以上の脂質を組み合わせて脂質ナノ粒子を形成する。複数の脂質の組み合わせ及びその配合割合は、目的に応じて適宜調整することができる。
　リン脂質及びリン脂質誘導体としては、例えば、ホスファチジルエタノールアミン、ホスファリジルコリン、ホスファチジルセリン、ホスファチジルイノシトール、ホスファチジルグリセロール、カルジオリピン、スフィンゴミエリン、セラミドホスホリルエタノールアミン、セラミドホスホリルグリセロール、セラミドホスホリルグリセロールホスファート、１，２－ジミリストイル－１，２－デオキシホスファチジルコリン、ジステアロイルフォスファチジルコリン、プラスマロゲン、ホスファチジン酸等を挙げることができ、これらは１種又は２種以上を組み合わせて用いることができる。これらリン脂質における脂肪酸残基は特に限定されないが、例えば、炭素数１２～２０の飽和又は不飽和の脂肪酸残基を挙げることができ、具体的には、ラウリン酸、ミリスチン酸、パルミチン酸、ステアリン酸、オレイン酸、リノール酸等の脂肪酸由来のアシル基を挙げることができる。また、卵黄レシチン、大豆レシチン等の天然物由来のリン脂質を用いることもできる。
　糖脂質としては、例えば、グリセロ糖脂質（例えば、スルホキシリボシルグリセリド、ジグリコシルジグリセリド、ジガラクトシルジグリセリド、ガラクトシルジグリセリド、グリコシルジグリセリド）、スフィンゴ糖脂質（例えば、ガラクトシルセレブロシド、ラクトシルセレブロシド、ガングリオシド）等が挙げられる。
　ステロールとしては、例えば、動物由来のステロール（例えば、コレステロール、コレステロールコハク酸、ラノステロール、ジヒドロラノステロール、デスモステロール、ジヒドロコレステロール）、植物由来のステロール（フィトステロール）（例えば、スチグマステロール、シトステロール、カンペステロール、ブラシカステロール）、微生物由来のステロール（例えば、チモステロール、エルゴステロール）等が挙げられる。
　飽和又は不飽和の脂肪酸としては、例えば、パルミチン酸、オレイン酸、ステアリン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸等の炭素数１２～２０の飽和又は不飽和の脂肪酸が挙げられる。
　飽和又は不飽和の脂肪酸エステルとしては、グリセロールの１又は２個の水酸基が脂肪酸とエステル結合したグリセリン脂肪酸エステルが挙げられる。当該グリセリン脂肪酸エステル中の脂肪酸残基は、例えば、パルミチン酸、オレイン酸、ステアリン酸、アラキドン酸、ミリスチン酸等の炭素数１２～２０の飽和又は不飽和の脂肪酸由来のアシル基が挙げられる。具体的には、ジミリストイルグリセロール（ＤＭＧ）、ジステアロイルグリセロール（ＤＳＧ）等が挙げられる。
　脂質ナノ粒子の製造方法は特に限定されない。例えば、全ての脂質成分をクロロホルム等の有機溶媒に溶解し、エバポレータによる減圧乾固や噴霧乾燥機による噴霧乾燥を行うことによって脂質膜を形成した後、乾燥した上記の混合物に水系溶媒を添加し、さらにホモジナイザー等の乳化機、超音波乳化機、又は高圧噴射乳化機等により乳化することで製造することができる。また、脂質ナノ粒子は、例えば、逆相蒸発法等によっても製造することができる。脂質ナノ粒子の大きさを制御したい場合には、孔径のそろったメンブランフィルター等を用いて、高圧下でイクストルージョン（押し出し濾過）を行えばよい。
　分散した状態の脂質ナノ粒子の大きさは、目的に応じて適宜選択することができ、例えば、平均粒子径６０～１４０ｎｍ程度、例えば平均粒子径８０～１２０ｎｍ程度、例えば平均粒子径２０～５０ｎｍ程度であることができる。粒子径は、例えばＤＬＳ（ｄｙｎａｍｉｃ　ｌｉｇｈｔ　ｓｃａｔｔｅｒｉｎｇ）法により測定することができる。本願明細書において、脂質ナノ粒子の平均粒子径とは、ＤＬＳにより測定された個数平均粒子径を意味する。ＤＬＳによる測定は、市販のＤＬＳ装置等を用いて常法により行うことができる。多分散度指数（ＰＤＩ）は０．０５～０．１程度、好ましくは０．０６～０．０８程度、さらに好ましくは約０．０７程度である。
　水系溶媒（分散媒）の組成は特に限定されず、例えば、リン酸緩衝液、クエン酸緩衝液、リン酸緩衝生理食塩液等の緩衝液、生理食塩水、細胞培養用の培地等を挙げることができる。これら水系溶媒（分散媒）は脂質ナノ粒子を安定に分散させることができるが、さらに、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類、乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトース等の二糖類、ラフィノース、メレジノース等の三糖類、シクロデキストリン等の多糖類、エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトール等の糖アルコール等の糖（水溶液）や、グリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、１，３－ブチレングリコール等の多価アルコール（水溶液）等を加えてもよい。水系溶媒に分散した脂質ナノ粒子を安定に長期間保存するには、凝集抑制等の物理的安定性の面から、水系溶媒中の電解質を極力排除することが好ましい。また、脂質の化学的安定性の面からは、水系溶媒のｐＨを弱酸性から中性付近（ｐＨ３．０から８．０程度）に設定することが好ましく、窒素バブリング等により溶存酸素を除去することが好ましい。
　得られた脂質ナノ粒子の水性分散物を凍結乾燥又は噴霧乾燥する場合には、例えば、グルコース、ガラクトース、マンノース、フルクトース、イノシトール、リボース、キシロース糖の単糖類；乳糖、ショ糖、セロビオース、トレハロース、マルトース等の二糖類；ラフィノース、メレジノース等の三糖類、シクロデキストリン等の多糖類；エリスリトール、キシリトール、ソルビトール、マンニトール、マルチトール等の糖アルコール；等の糖（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。また、上記水性分散物を凍結する場合には、例えば、前記の糖類やグリセリン、ジグリセリン、ポリグリセリン、プロピレングリコール、ポリプロピレングリコール、エチレングリコール、ジエチレングリコール、トリエチレングリコール、ポリエチレングリコール、エチレングリコールモノアルキルエーテル、ジエチレングリコールモノアルキルエーテル、１，３－ブチレングリコール等の多価アルコール（水溶液）を用いると安定性を改善できる場合がある。
　本実施形態の脂質ナノ粒子において、内包する薬物は特に限定されない。例えば、ｓｉＲＮＡ、マイクロＲＮＡ、ｍＲＮＡ、プラスミド等の核酸類のほか、抗腫瘍剤、抗炎症剤、抗菌剤、抗ウイルス剤等の任意の医薬の有効成分、糖類、ペプチド類、低分子化合物、金属化合物等の任意の物質を脂質ナノ粒子に内包させることができる。これらは１種を単独で内包させてもよく、２種以上を混合して内包させてもよい。
　ｓｉＲＮＡ（ｓｍａｌｌ　ｉｎｔｅｒｆｅｒｉｎｇ　ＲＮＡ）は２１～２３塩基対からなる低分子二本鎖ＲＮＡであり、ＲＮＡ干渉（ＲＮＡｉ）に関与し、ｍＲＮＡの破壊によって配列特異的に遺伝子の発現を抑制する。ｓｉＲＮＡを用いたＲＮＡ干渉により遺伝子をノックダウンすることができることから、医薬としての利用や癌等の治療分野において応用が期待されている。使用可能なｓｉＲＮＡの種類は特に限定されず、ＲＮＡ干渉を引き起こすことができるものであればいかなるものを使用してもよいが、一般的には、２１～２３塩基対の二本鎖ＲＮＡであって、ＲＮＡ鎖の３’部分が２塩基分突出した構造をとり、それぞれの鎖は５’末端にリン酸基と３’末端にヒドロキシル基を有する構造のＲＮＡをｓｉＲＮＡとして使用することができる。また、リボース骨格の２’位のヒドロキシル基が、メトキシ基、フルオロ基又はメトキシエチル基に、ホスホジエステル結合がホスホロチオエート結合に一部置換されたｓｉＲＮＡも含まれる。
　本実施形態の脂質ナノ粒子の形態は特に限定されず、例えば、水系溶媒（例えば水、生理食塩水、リン酸緩衝生理食塩水等）に分散された形態、水性分散物を凍結乾燥した形態等が挙げられる。
　次に実施例を示して本発明を更に詳細に説明するが、本発明は以下の実施例に限定されるものではない。すべての動物実験は、北海道大学の施設内動物管理使用委員会が審査し、北海道大学学長が承認したプロトコルにしたがって実施された。また、組成物中に含まれる化合物の構造は、１Ｈ　ＮＭＲ（Ｂｒｕｋｅｒ社製、ＡＶＡＮＣＥ　ＩＩＩ　６００）にて同定した。
［実験例１］
（純化前の組成物の調製）
　図３に示すスキーム（ＩＩＩ）にしたがって、化合物（４－１－１）、化合物（４－２－１）、及び化合物（４－３－１）を含む純化前の組成物（組成物（１－１））を調製した。
［実験例１－１］
（化合物（２－１－１）、化合物（２－２－１）、及び化合物（２－３－１）を含む組成物の調製）
　２６ｍＬの乾燥ジエチルエーテルに（６－ブロモヘキシルオキシ）ｔｅｒｔ－ブチルジメチルシラン２６．０ｇ（８８．０ｍｍｏｌ）を溶解し溶液を調製した。アルゴン雰囲気下、上記溶液１ｍＬ、乾燥ジエチルエーテル４ｍＬ、削り屑状マグネシウム２．３５ｇ（９６．８ｍｍｏｌ）をフラスコに加え、続いてヨウ素一欠片加えた。溶液全体が褐色に変化するまで室温で静置した後、オイルバスで４０℃に加熱しながら撹拌し、脱色を確認した後、上記（６－ブロモヘキシルオキシ）ｔｅｒｔ－ブチルジメチルシラン溶液をフラスコに滴下した。４０℃で２時間反応させた後、氷冷した。続いて、乾燥ジエチルエーテル３．６７ｍＬに溶解したδ－バレロラクトン３．６７ｍＬ（３９．６ｍｍｏｌ）をフラスコに滴下し、室温で一晩反応させた。氷冷し、ジエチルエーテルを加えて希釈し、飽和クエン酸水溶液をフラスコに滴下することで残留したマグネシウムを溶解させた。有機層を水及び飽和食塩水で分液洗浄した。続いて、有機層に無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを濾過した後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、化合物（２－１－１）、化合物（２－２－１）、及び化合物（２－３－１）を含む組成物（実験例１－１の組成物）を得た。組成物（１－１）中に含まれる、化合物（２－１－１）、化合物（２－２－１）、及び化合物（２－３－１）の含有割合は、化合物（２－１－１）：化合物（２－２－１）：化合物（２－３－１）＝９９．０：０．２：０．８であった。
［実験例１－２］
（化合物（３－１－１）、化合物（３－２－１）、及び化合物（３－３－１）を含む組成物（組成物（１－２））の調製）
　フラスコ中で、実験例１－１の組成物１４．０ｇを５０ｍＬのジクロロメタンに溶解し、Ｎ，　Ｎ－ジメチル－４－アミノピリジン（ＤＭＡＰ）３２１ｍｇ（２．６３ｍｍｏｌ）とジイソプロピルエチルアミン５．５０ｍＬ（３９．５ｍｍｏｌ）を加え、氷冷した。ｐ－トルエンスルホニルクロリド６．０２ｇ（３１．６ｍｍｏｌ）をフラスコに徐々に加えていった後、室温で一晩反応させた。ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去した後、酢酸エチルで懸濁し、水及び飽和食塩水で分液洗浄した。有機層に無水硫酸ナトリウムを加えて脱水して、これを濾過した後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、化合物（３－１－１）、化合物（３－２－１）、及び化合物（３－３－１）を含む組成物（実験例１－２の組成物）を得た。
［実験例１－３］
（化合物（４－１－１）、化合物（４－２－１）、及び化合物（４－３－１）を含む組成物（組成物（１－３））の調製）
　フラスコ中で、実験例１－２の組成物１２．４ｇに３０ｍＬのテトラヒドロフランを加え、４℃に冷却した。続いて、ジプロピルアミン７．３８ｍＬ（５４．０ｍｍｏｌ）をフラスコに加えた後、室温で１１日間反応させた。ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去した後、酢酸エチルで懸濁し、０．５Ｎ水酸化ナトリウム水溶液及び飽和食塩水で分液洗浄した。有機層に無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを濾過した後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、化合物（４－１－１）、化合物（４－２－１）、及び化合物（４－３－１）を含む組成物（実験例１－３の組成物）を得た。
［実験例１－４］
（化合物（５－１－１）、化合物（５－２－１）、及び化合物（５－３－１）を含む組成物の調製）
　フラスコ中で、実験例１－３の組成物７．２７ｇに酢酸２．２３ｍＬ（３９ｍｍｏｌ）及び２６ｍＬの１．０Ｍテトラブチルアンモニウムフルオリド（ＴＢＡＦ）のテトラヒドロフラン溶液を加え、室温で一晩反応させた。ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、化合物（５－１－１）、化合物（５－２－１）、及び化合物（５－３－１）を含む組成物（組成物（１－１））を得た。
［実験例２］
（純化前の組成物（組成物（１－２））の調製）
　実験例１－１において、δ－バレロラクトン３．３４ｍＬ（３６．０ｍｍｏｌ）を用いた以外は同様の操作にて、化合物（２－１－１）：化合物（２－２－１）：化合物（２－３－１）＝９２．５：７．０：０．５の含有割合で含まれる組成物を得た。続いて、実験例１－２、実験例１－３、及び実験例１－４と同様の操作にて、組成物（１－２）を得た。
［実験例３］
（純化前の組成物（組成物（１－３））の調製）
　実験例１－１において、δ－バレロラクトン４．０４ｍＬ（４３．６ｍｍｏｌ）を用いた以外は同様の操作にて、化合物（２－１－１）：化合物（２－２－１）：化合物（２－３－１）＝８５．０：０．０：１５．０の含有割合で含まれる組成物を得た。続いて、実験例１－２、実験例１－３、及び実験例１－４と同様の操作にて、組成物（１－３）を得た。
［実験例４］
（組成物の純化）
　化合物（５－１－１）、化合物（５－２－１）、及び化合物（５－３－１）を含む組成物（組成物（１－１）、組成物（１－２）、及び組成物（１－３））（それぞれ９．５ｇ）を、それぞれ０．５Ｎ塩酸水溶液（１５０ｍＬ）に溶解させ、表１に記載の溶媒（１００ｍＬ）をそれぞれ投入後、１０分間攪拌した。続いて、分液漏斗で分液し、水層を回収した。この際、ＴＬＣ分析にて有機層に含まれる不純物が消失するか、又は変化がなくなるまで繰り返し分液洗浄した。その後、回収した水層に５Ｍ水酸化ナトリウム水溶液（３０ｍＬ）を投入し、１０分間攪拌した。さらに酢酸エチル（１００ｍＬ）を投入し、１０分間攪拌した。その後、溶液を分液漏斗で分液し、有機層を回収した。回収した有機層を飽和食塩水で１回分液洗浄した。有機層に無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを濾過した後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、純化した組成物を得た。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000010
［実験例５］
（化合物（６－１－１）、化合物（６－２－１）、及び化合物（６－３－１）を含む組成物の製造）
　図３に示すスキーム（ＩＩＩ）にしたがって、化合物（６－１－１）、化合物（６－２－１）、及び化合物（６－３－１）を含む組成物（組成物（３－１）～組成物（３－１１））を製造した。
［実験例５－１］
（組成物（３－１）～組成物（３－１１）の製造）
　フラスコ内で、実験例４で純化した各組成物（組成物（２－１）～組成物（２－１１））を、それぞれ５ｍＬのジクロロメタンに溶解した。続いて、オレイルクロリド９００ｍｇ（３．０ｍｍｏｌ）を加えた後、４℃に冷却した。トリエチルアミン（ＴＥＡ）６９７μＬ（５．０ｍｍｏｌ）をフラスコに滴下し、室温３時間反応させた。ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去した後、酢酸エチルで懸濁し、濾過によって不溶物を除去した。ろ液を０．５Ｎ水酸化ナトリウム水溶液及び飽和食塩水で分液洗浄した。有機層に無水硫酸ナトリウムを加えて脱水した。これを濾過した後、ロータリーエバポレーターを用いて溶媒を留去し、粗生成物を得た。粗生成物をシリカゲルクロマトグラフィー（溶離溶媒はジクロロエタン及びエタノールの連続勾配）で精製し、化合物（６－１－１）、化合物（６－２－１）、及び化合物（６－３－１）を含む組成物（それぞれ組成物（３－１）～組成物（３－１１））を得た。
［実験例５－２］
（組成物（３－１）～組成物（３－１１）に含まれる化合物（６－１－１）、化合物（６－２－１）、化合物（６－３－１）及び夾雑物の含有割合の評価）
　化合物（６－１－１）、化合物（６－２－１）、及び化合物（６－３－１）を含む組成物（組成物（３－１）～組成物（３－１１））を、カラム（Ｃ１８カラム、１．７μｍ、内径２．１ｍｍ×１５０ｍｍ）、溶離液（２０ｍＭ酢酸アンモニウム水溶液と２０ｍＭ酢酸アンモニウムエタノール溶液の連続勾配）を用いたＵＨＰＬＣ（ＣＡＤ）により分離分析した。評価結果を下記表２に示す。
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000011
［実験例６］
（ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子の製造）
　組成物（３－１）１．８３ｍｇ、リン脂質（ＤＳＰＣ、カタログ番号「ＣＯＡＴＳＯＭＥ　ＭＣ－８０８０」、油化産業）０．１５８ｍｇ、コレステロール（カタログ番号「Ｃ８６６７」、シグマ－アルドリッチ）０．６９６ｍｇ、ＰＥＧ脂質（ＰＥＧ－ＤＭＧ、製品名「ＳＵＮＢＲＩＧＨＴ　ＧＭ－０２０」、油化産業）０．０５０２ｍｇをエタノール０．５ｍＬに溶解させた脂質溶液、及びｓｉＲＮＡ０．０５９４ｍｇを酢酸緩衝液（ｐＨ４）で溶解させたｓｉＲＮＡ溶液１．５ｍＬをフローリアクターにより混合した。混合後の溶液をリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で透析し、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子（ＬＮＰ１）を製造した。ｓｉＲＮＡとしては、配列番号１に示す塩基配列を有する核酸及び配列番号２に示す塩基配列を有する核酸をハイブリダイズさせたものを使用した。このｓｉＲＮＡは、マウス血液凝固第ＶＩＩ因子のｍＲＮＡを標的とするものであった。
　また、組成物（３－１）の代わりに組成物（３－２）～（３－１１）を用いた以外は同様の方法により、ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子（ＬＮＰ２～ＬＮＰ１１）を製造した。
［実験例７］
（ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子のｉｎ　ｖｉｖｏにおける体内動態評価）
　ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子のｉｎ　ｖｉｖｏにおける体内動態を評価した。具体的には、実験例６で製造した（ＬＮＰ１～ＬＮＰ１１）を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６ＮＣｒＳｌｃ　６週齢、メス、三共ラボサービス社）に、ｓｉＲＮＡ量が０．０３ｍｇ／ｋｇ体重となるように、それぞれ尾静脈から投与した。続いて、２４時間後にマウスを安楽死させ、肝臓及び脾臓を摘出し、液体窒素により凍結させた。
　続いて、摘出した各臓器を、０．２５％ＴｒｉｔｏｎＸ－１００含有ＰＢＳで希釈し、ビーズ式破砕装置でホモジナイズした。続いて、９５℃で１０分間処理し、タンパク質を熱変性させた。続いて、各サンプルを氷上で５分静置した後、２０，０００×ｇ、４℃、２０分間遠心した。続いて、各サンプルの上清を９５℃で１０分間処理し、ＲＮＡの逆転写反応を行った。逆転写反応には市販のキット（製品名「ＴａｑＭａｎ　ＭｉｃｒｏＲＮＡ　Ｒｅｖｅｒｓｅ　Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　Ｋｉｔ」、サーモフィッシャーサイエンティフィック社）を使用した。反応条件は、１６℃で３０分間、続いて４２℃で３０分間、続いて、８５℃で５分間であった。
　続いて、逆転写反応後の各サンプルに、ＰＣＲ用試薬（製品名「ＴａｑＭａｎ　Ｕｎｉｖｅｒｓａｌ　Ｍａｓｔｅｒ　Ｍｉｘ　ＩＩ，　ｎｏ　ＵＮＧ」、サーモフィッシャーサイエンティフィック社）を添加し、リアルタイムＰＣＲにより、肝臓及び脾臓中のｓｉＲＮＡ量を定量した。
　続いて、以下の評価基準により、各脂質ナノ粒子のｉｎ　ｖｉｖｏにおける体内動態を評価した。結果を下記表３に示す。ＬＮＰ１～ＬＮＰ９のうち、肝臓及び脾臓中へのｓｉＲＮＡの送達量が最も低かった、ＬＮＰ９との比較により体内動態を評価した。
（評価基準）
　＋＋：肝臓及び脾臓中のｓｉＲＮＡ量の合計がＬＮＰ９の６５％以上。
　－：肝臓及び脾臓中のｓｉＲＮＡ量の合計がＬＮＰ９の６５％未満。
［実験例８］
（ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子のｉｎ　ｖｉｖｏにおけるノックダウン活性評価）
　ｓｉＲＮＡを内包する脂質ナノ粒子のｉｎ　ｖｉｖｏにおけるノックダウン活性を評価した。具体的には、実験例６で製造した（ＬＮＰ１～ＬＮＰ１１）を、マウス（Ｃ５７ＢＬ／６ＮＣｒＳｌｃ　６週齢、メス、三共ラボサービス社）に、ｓｉＲＮＡ量が０．０３ｍｇ／ｋｇ体重となるように、それぞれ尾静脈から投与した。続いて、２４時間後にマウスを安楽死させ、下大静脈から採血した。続いて、血液サンプルを、８００×ｇ、４℃で５分間遠心し、血漿サンプルを得た。続いて、ＢＩＯＰＨＥＮ　ＦＶＩＩキット（Ｈｙｐｈｅｎ　Ｂｉｏｍｅｄ社）を用いて、各サンプル中の血液凝固第ＦＶＩＩ因子量と、脂質ナノ粒子未投与群における血液凝固第ＦＶＩＩ因子量を測定し、下記式（１）に基づいて、ノックダウン率を算出した。
　ノックダウン率（％）＝（１－（サンプル中の血液凝固第ＦＶＩＩ因子量／脂質ナノ粒子未投与群における血液凝固第ＦＶＩＩ因子量））×１００　…（１）
　続いて、以下の評価基準により、各脂質ナノ粒子のノックダウン活性を評価した。結果を下記表３に示す。
（評価基準）
　＋＋：ノックダウン率が７０％以上
　＋：ノックダウン率が３０％以上７０％未満
　－：ノックダウン率が３０％未満
Figure JPOXMLDOC01-appb-T000012
　本発明によれば、脂質を含む組成物中に含まれる夾雑物を除去する技術を提供することができる。

Claims (11)

  1. 　下記式（１）に示す化合物を含む組成物を水層に溶解させて液液抽出し、下記式（１）に示す化合物を精製する工程を含む、組成物の純化方法であって、
    　前記液液抽出で用いる油層が、溶解度パラメーター（ＳＰ値）が１４．８～２０．５（ＭＰａ１／２）の、ケトン系液体、エステル系液体及びエーテル系液体からなる群より選択される１種又は２種以上の液体を含む、純化方法。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000001
     ［式（１）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基を示し、Ｒ６はそれぞれ独立に－Ｒ７－ＯＨ（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示す。）又は水素原子を示し、ｎは０又は１の整数を示す。］
  2. 　前記ケトン系液体が、シクロヘキサノン、メチルイソブチルケトン又はジイソプロピルケトンであり、前記エステル系液体が、酢酸エチル又は酢酸ブチルであり、前記エーテル系液体が、ジエチルエーテル、ジプロピルエーテル、シクロペンチルメチルエーテル又はプロピレングリコールモノメチルエーテルアセテートである、請求項１に記載の純化方法。
  3. 　下記式（２）に示す化合物において、ｎが０であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－１）、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物（２－２）、及び、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物（２－３）からなる群より選択される１種又は２種以上の化合物を含み、組成物中に含まれる、化合物（２－１）、化合物（２－２）及び化合物（２－３）の合計の含有割合が９０質量％以上である、組成物。
    Figure JPOXMLDOC01-appb-C000002
     ［式（２）中、Ｒ１は、－Ｎ（Ｒ２）－Ｒ２（ここで、Ｒ２はそれぞれ独立にＣ１～Ｃ４のアルキル基を示す。）を示し、Ｒ３はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ４はＣ３～Ｃ８のアルカンジイル基を示し、Ｒ５は水酸基又は水素原子を示し、Ｒ９はそれぞれ独立に－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０又は－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０（ここで、Ｒ７はＣ４～Ｃ１２のアルカンジイル基を示し、Ｒ１０はＣ４～Ｃ２５のアルケニル基を示す。）を示し、ここで、少なくとも１つのＲ９は－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、ｎは０又は１の整数を示す。］
  4. 　組成物中に含まれる、前記化合物（２－１）の含有割合が８５～９９質量％である、請求項３に記載の組成物。
  5. 　組成物中に含まれる、前記化合物（２－２）及び前記化合物（２－３）の合計の含有割合が、０．１～１５質量％である、請求項３又は請求項４に記載の組成物。
  6. 　請求項３に記載の式（２）において、ｎが０であり、Ｒ９の一方が－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ９の他方が－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水素原子である化合物。
  7. 　請求項３に記載の式（２）において、ｎが１であり、Ｒ９が２つとも－Ｒ７－Ｏ－Ｃ（Ｏ）－Ｒ１０であり、Ｒ５が水酸基である化合物。
  8. 　請求項３又は請求項４に記載の組成物に含まれる化合物から形成され、薬物を内包する脂質ナノ粒子。
  9. 　請求項５に記載の組成物に含まれる化合物から形成され、薬物を内包する脂質ナノ粒子。
  10. 　前記薬物がｓｉＲＮＡである、請求項８に記載の脂質ナノ粒子。
  11. 　前記薬物がｓｉＲＮＡである、請求項９に記載の脂質ナノ粒子。
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