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WO2005035754A1 - 機能蛋白質を代替する二重特異性抗体 - Google Patents

機能蛋白質を代替する二重特異性抗体 Download PDF

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WO2005035754A1
WO2005035754A1 PCT/JP2003/013123 JP0313123W WO2005035754A1 WO 2005035754 A1 WO2005035754 A1 WO 2005035754A1 JP 0313123 W JP0313123 W JP 0313123W WO 2005035754 A1 WO2005035754 A1 WO 2005035754A1
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WO
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chain
amino acid
acid sequence
seq
antibody
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Ceased
Application number
PCT/JP2003/013123
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English (en)
French (fr)
Inventor
Kunihiro Hattori
Tetsuo Kojima
Taro Miyazaki
Tetsuhiro Soeda
Chiaki Senoo
Osamu Natori
Keiko Kasutani
Shinya Ishii
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Original Assignee
Chugai Pharmaceutical Co Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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    • C07K2317/62—Immunoglobulins specific features characterized by non-natural combinations of immunoglobulin fragments comprising only variable region components
    • C07K2317/622—Single chain antibody (scFv)

Definitions

  • the present invention relates to a bispecific antibody that substitutes for a functional protein. More specifically, the present invention relates to a bispecific antibody that substitutes for the function of a ligand for a heteroreceptor, a bispecific antibody that substitutes for the action of a cofactor that enhances an enzymatic reaction, and a pharmaceutical composition containing the antibody as an active ingredient. . Background art
  • Antibodies are attracting attention as pharmaceuticals because of their high stability in blood and low antigenicity. Among them are bispecific antibodies that can recognize two kinds of antigens simultaneously. Bispecific antibodies have been proposed for a long time. However, until now, only antibodies that merely connect two types of antigens, such as for the purpose of retargeting NK cells, macrophages, and T cells, have been reported (see Non-Patent Document 8). For example, MDX-210, which is undergoing clinical trials, is only a bispecific antibody that retargets FcrRI-expressing monocytes and the like to HER-2 / neu-expressing cancer cells. . Thus, to date, there have been no examples of using bispecific antibodies as an alternative to proteins that function in vivo.
  • IL interleukin
  • EP0 erythropoietin
  • G-CSF growth hormone
  • TP0 thrombopoietin
  • GM-CSF macrophage collo stimulating factor
  • M-CSF macrophage colony stimulating factor
  • IFN-a IFN- / 3, IFN- ⁇ , etc.
  • CNTF ciliary neurotrophic factor
  • LIF Leukemia inhibitory factor
  • CT-1 Oncostat in M
  • TNF tumor necrosis factor
  • a suitable anti-receptor antibody can be an antibody that can mimic receptor dimerization or quantification by a ligand.
  • Monoclonal antibodies have already been reported that show a homodimeric TP0 receptor (MPL) (see Patent Document 1 and Non-Patent Document 1), an EP0 receptor, and a GH receptor as ligand substitutes. These antibodies are thought to exhibit a platelet count recovery effect during thrombocytopenia, an erythrocytosis effect during anemia, or a growth promotion effect for short stature, and are expected to be applied to pharmaceuticals. .
  • Cofactors include, for example, tissue factor (TF), blood coagulation factor V (F.V), activated blood coagulation factor V (F.Va), blood coagulation factor VIII (F.VIII), Activated Blood Coagulation Factor VIII (F. Villa), Thrompomodulin (TM), Protein S (PS), Protein Z (PZ), Heparin, Complement C4b, Complement Regulatory Factor H), Membrane Coiactor Protein (MCP), Complement Receptor 1 (CRD, etc.).
  • tissue factor TF
  • F.V blood coagulation factor V
  • F.Va activated blood coagulation factor V
  • F.VIII blood coagulation factor VIII
  • TM Thrompomodulin
  • PS Protein S
  • PZ Protein Z
  • Heparin Complement C4b
  • Complement Regulatory Factor H Membrane Coiactor Protein
  • MCP Membrane Coiactor Protein
  • CCD Complement Receptor 1
  • F. Vin / F. Villa is a cofactor necessary for sufficient expression of F.IXa activity.
  • Scheiilinger F et al. Have found that certain anti-F.IX / F.IXa antibodies have an effect of promoting F.IXa-induced F.X activation in chromogenic assays. Reference 2).
  • the coagulation recovery ability of F.VIII-deficient plasma the coagulation recovery ability by this antibody alone is not shown, and the coagulation recovery ability is shown only when F.IXa is added exogenously.
  • the present inventors have made intensive studies and succeeded in producing a bispecific antibody that substitutes for the function of a functional protein, leading to the present invention.
  • Patent Document 1 U.S. Patent Application Publication No. 98/17364
  • Patent Document 2 WO 01/19992
  • Patent Document 3 U.S. Patent No. 4,474,893
  • Patent Document 4 EP404, 097
  • Patent Document 5 WO 93 / U161
  • Patent Document 6 Japanese Patent Application No. 2002-112369
  • Patent Document 7 Japanese Patent Application No. 2003-G12648
  • Patent Document 8 JP-A-5-304992
  • Patent Document 9 JP-A-2-145187
  • Patent Document 10 JP-A-5-213775
  • Patent Document 11 JP-A-10-165184
  • Patent Document 13 Japanese Patent Application Publication No. 2002-518041
  • Patent Document 14 Japanese Patent Publication No. 11-5G631Q
  • Patent Document 15 JP-A-5-199894
  • Patent Literature 16 Tokiohei 1G-511G85 (Patent Document 17) JP-A-5-184383
  • Non-Patent Document 1 Deng D et al., "Blood”, 1998, Vol. 92, No. 6, p. 1981-1988
  • Non-Patent Document 2 Nilsson IM et al., ⁇ J. Intern. Med. '', 1992,
  • Non-Patent Document 3 Lofqvist T et al., ⁇ Intern. Med. J, 1997,
  • Non-Patent Document 4 The 24th Annual Meeting of the Japanese Society of Thrombosis and Hemostasis, Academic Subcommittee, Hemophilia Standardization Study Group, Mini Symposium, 2001, http: //ww.,isth.org
  • Non-Patent Document 5 Medical Bulletin # 193 1994
  • Non-Patent Document 6 Mertens K et al., "Thromb. Haemost.J, 1999, Vol. 82, p. 209-217.
  • Non-Patent Document 7 Lapan KA et al., "Thromb. Haemost.j, 1998, Vol. 80, p. 418-422.
  • Non-Patent Document 8 Segal DM et al., ⁇ Journal of Immunological Methods J ',
  • Non-Patent Document 9 Bos R and Nieuwenhuitzen W, "Hybridoma”, 1992, Vol. 11, No. 1, p. 41-51
  • Non-Patent Document 11 Karpovsky B et al., ⁇ J. Exp.Med. '', 1984,
  • Non-Patent Document 1 2) Suresh MR et al., ⁇ Methods Enzymol.J, 1986, Vol. 121, p. 210-28
  • Non-Patent Document 13 Massimo YS et al., ⁇ J. Immunol.Methods '', 1997,
  • Non-Patent Document 14 Brennan M et al., ⁇ Science '', 1985, Vol.229, p.
  • Non-Patent Document 15 Shalaby M et al., ⁇ J. Exp. Med. '', 1992, Vol. 175, p. 217-25
  • Non-Patent Document 16 Hol liner P et al., ⁇ Proc. Natl. Acad. Sci. USAj,
  • Non-Patent Document 17 Ridgway JB et al., ⁇ Protein Eng. J, 1996, Vol. 9, p. 617-21
  • Non-Patent Document 18 Ha erling U et al., Rj.Exp.Med., 1968, Vol. 128, p. 1461-73
  • Non-Patent Document 19 Kurokawa T et al., ⁇ Bio / Teclmology '', 1989, Vol. 7, p. 1163
  • Non-Patent Document 20 Link BK et al., ⁇ Blood '', 1993 ', Vol. 81, .3343
  • Non-Patent Document 21 Nitta T et al., RLancetJ, 1990, Vol. 335, p. 368-71
  • Non-Patent Document 22 deLeij L et al., ⁇ Foundation Nationale de
  • Non-Patent Document 23 Le Doussal JM et al., ⁇ J. Nucl.Med. '', 1993, Vol. 34, p. 1662-71
  • Non-Patent Document 24 Stickney DR et al., Cancer Res., 1991, Vol. 51, p. 6650-5
  • Non-Patent Document 26 Kroesen BJ et al., ⁇ Br. J. Cancerj, 1994, Vol. 70, p. 652-61.
  • Non-Patent Document 27 Weiner GJ et al., ⁇ L Immunol. J, 1994, Vol. 152, p. 2385
  • Non-Patent Document 28 Suresh MR et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USAJ, 1986, Vol. 83, p. 7989-93.
  • Non-Patent Document 29 By Milstein C and Cuel lo AC, "Nature”, 1983, Vol. 305, p. 537
  • Non-Patent Document 30 Xiang J et al., ⁇ Mol. Immunol. J, 1990, Vol. 27, p. 809
  • Non-Patent Document 31 Bebbington CR et al., ⁇ / Technologyj, 1992, Vol. 10, p. 169
  • Non-Patent Document 32 Huse WD et al., "Science”, 1989, Vol. 246, p. 1275
  • Non-Patent Document 33 McCafierty J et al., Naturej, 1990, Vol. 348, p. 552.
  • Non-Patent Document 34 Kang AS et al., HProc. Natl. Acad. Sci. USAJ, 1991, Vol. 88, p.
  • An object of the present invention is to provide a bispecific antibody that substitutes for the function of a functional protein. More specifically, it is an object of the present invention to provide a bispecific antibody that substitutes a ligand function for a receptor including a heteroreceptor molecule and a bispecific antibody that substitutes a function of a cofactor that enhances an enzymatic reaction.
  • the present inventors have succeeded in separating an antibody that substitutes a ligand function for a type I interferon receptor composed of two types of molecules, mm and AM chains. That is, the present inventors have succeeded in separating, for the first time, a bispecific antibody having a function of substituting a ligand function for a receptor composed of a hetero molecule.
  • the present inventors firstly developed a bispecific antibody having a function of substituting a functional protein for the first time. It can be said that it was developed.
  • the present invention relates to a bispecific antibody that substitutes for a functional protein. More specifically, it relates to a bispecific antibody having a ligand function-substituting action on a receptor including a heteromolecule, and a bispecific antibody which substitutes a function of a cofactor for enhancing an enzymatic reaction. ,.
  • the antibody of (6), wherein the type I interface receptor comprises an AR1 chain and an M2 chain;
  • the antibody of (7) which has an action of substituting the function of interferon, which is a ligand for a type I interferon receptor;
  • the antibody according to (8) comprising a variable region of an anti-AR1 chain antibody and a variable region of an anti-AR2 chain antibody; A variable region comprising the amino acid sequence of the following (a) in the anti-AR1 chain antibody; and a variable region comprising the amino acid sequence of any of the following (bl) to (blO) in the anti-AR2 chain antibody:
  • variable region of the H chain has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 1
  • variable region of the L chain has the amino acid sequence of SEQ ID NO: 2.
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 7
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 8.
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 19
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 20
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 13
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 14.
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 23
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 24
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 5
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 6
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 17
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 18.
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 15
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 16.
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 22.
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 11
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 12
  • a variable region consisting of the amino acid sequence of the following) in the anti-AR1 chain antibody and a variable region consisting of the amino acid sequence of any of the following (bl) to (b3) in the anti-AR2 chain antibody The antibody according to (9),
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 3
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 4.
  • the H chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 25
  • the L chain variable region is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 26
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 9
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 10
  • variable region of the H chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 21
  • variable region of the L chain is the amino acid sequence of SEQ ID NO: 22.
  • composition according to (12) which is a pharmaceutical composition used for prevention and / or treatment of viral diseases, malignant neoplasms, and immune diseases.
  • composition according to (13), wherein the viral disease is a disease that develops and / or progresses due to hepatitis C virus infection;
  • composition according to [14] wherein the disease which develops and / or progresses due to hepatitis C virus infection is acute or chronic hepatitis C, cirrhosis, or liver cancer;
  • the viral disease is B
  • 9) a method for preventing and / or treating a viral disease, a malignant neoplasm or an immune disease, comprising the step of administering the composition according to any one of (2) to (2) to (11).
  • (22) at least the antibody according to any of (2) to (11), or (1)
  • proteolytic enzymes, substrates, and cofactors are blood coagulation / fibrinolysis-related factors
  • the enzyme of blood coagulation / fibrinolysis-related factor is blood coagulation factor IX and / or activated blood coagulation factor IX
  • the substrate is blood coagulation factor X
  • the cofactor is blood coagulation factor VIII and / or Activated blood coagulation factor VIII, the antibody according to (25).
  • a complementarity-determining region comprising the amino acid sequence of CDR3 of the following (al) or (a2) or a functionally equivalent complementarity-determining region in the anti-coagulation factor IX / IXa antibody:
  • a blood coagulation factor X antibody comprising a complementarity-determining region consisting of the amino acid sequence of CDR3 described in any of the following (bl) to (b9) or a complementarity-determining region functionally equivalent thereto: [2] 3)
  • the antibody according to any one of to 26, (a 1) the amino acid sequence of SEQ ID NO: 42 wherein the CDR3 of the H chain is
  • a complementarity-determining region comprising the amino acid sequence of the following (al) or (a2) CDR of an anti-coagulation factor IX / IXa antibody or a functionally equivalent complementarity-determining region;
  • a factor X antibody comprising a complementarity-determining region comprising the amino acid sequence of the CDR according to any one of the following (b1) to (b9) or a functionally equivalent complementarity-determining region: [23] -The antibody according to any one of (26),
  • the composition according to [29] which is a pharmaceutical composition used for prevention and / or treatment of bleeding, a bleeding disorder, or a disease caused by bleeding; [31] bleeding or bleeding;
  • the associated disease, or a disease caused by bleeding is a disease that develops and / or progresses due to decreased or defective activity of blood coagulation factor VIII and / or activated blood coagulation factor VIII, [30]
  • composition according to [31], wherein the disease which develops and / or progresses due to a decrease or deficiency in the activity of blood coagulation factor VIII and / or activated blood coagulation factor VIII is hemophilia A, object,
  • a disease that develops and / or progresses due to a decrease or deficiency in the activity of blood coagulation factor VIII and / or activated blood coagulation factor VIII may be associated with blood coagulation factor VIII and / or activated blood coagulation.
  • the bispecific antibody (bispecific antibody) in the present invention is a molecule composed of two kinds of antibodies or antibody fragments having specificity for different antigens.
  • the bispecific antibody is not particularly limited, but is preferably a monoclonal antibody.
  • the bispecific antibody of the present invention is preferably a recombinant antibody produced using a gene recombination technique.
  • a gene recombination technique See, for example, Borrebaeck CAK and Larrick JW, THERAPE UTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, Clared in the United Kingdom by MACMILLA PUBLISHERS LTD, 1990.
  • Recombinant antibodies are produced by cloning the DNA encoding them from hybridomas or antibody-producing cells such as sensitized lymphocytes that produce the antibodies, incorporating them into an appropriate vector, and introducing them into a host. Can be obtained.
  • the antibody in the present invention may be an antibody fragment or a modified antibody thereof.
  • Antibody fragments include diabody (Db), linear antibodies, single-chain antibody (hereinafter also referred to as scFv) molecules, and the like.
  • Db diabody
  • scFv single-chain antibody
  • the “Fv” fragment is the smallest antibody fragment and contains a complete antigen recognition and binding site.
  • the “Fv” fragment is a dimer (V H -V L dimer) in which one heavy (H) chain variable region (V H ) and light (L) chain variable region (V L ) are strongly linked by non-covalent bonds. It is.
  • variable region Comp l ementari ty determining region; CDR
  • V H - on the surface of the V L dimer form the antigen binding site.
  • Six CDRs confer an antigen-binding site on the antibody.
  • one variable region or half of an Fv containing only three antigen-specific CDRs
  • it has a lower affinity than all binding sites, but has the ability to recognize and bind antigen.
  • the Fab fragment (also referred to as F (ab)) further contains a constant region for an L chain and a constant region (CH1) for an H chain.
  • Fab 'fragments differ from Fab fragments by having additional few residues from the carboxy terminus of the heavy chain CH1 region including one or more cysteines from the hinge region of the body.
  • Fab'-SH refers to Fab 'in which one or more cysteine residues in the constant region has a free thiol group.
  • F (a) fragments are produced by cleavage of disulfide bonds in cysteines at the hinge of the F (ab ') 2 pepsin digest. Other antibody fragments which are chemically linked are known to those skilled in the art.
  • Diapody refers to a bivalent antibody fragment constructed by gene fusion (Holliger P et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA 90: 6444-6448 (1993), EP404, 097, W093 / 11161). Diapody is a dimer composed of two polypeptide chains, and each of the polypeptide chains cannot bind to the L chain variable region (V L ) and the H chain variable region (V H ) in the same chain. It is linked by a linker with a short position, for example, about 5 residues. When encoded on the same polypeptide chain, VH cannot form a single-chain variable region fragment due to the short linker between them, and forms a dimer. Will have.
  • Single chain antibodies or scFv antibody fragments include the VH and regions of the antibody, which regions are present in a single polypeptide chain.
  • Fv polypeptides further include a polypeptide linker between and the VL region, which allows the scFv to form the necessary structure for antigen binding (for a review of scFv, see Pluckthun See The Pharmacology of Monoclonal Ant ibodies, Vol. 113 (Rosenburg and Mooreed (Springer Verlag, New York) pp. 269-315, 1994).
  • the linker in the present invention is not particularly limited as long as it does not inhibit the expression of the antibody variable regions linked to both ends.
  • Bispecific IgG type antibodies can be secreted by hybrid ybridoma (auadroma) generated by fusing two hybridomas producing IgG antibodies (Milstein C et al. Nature 1983, 305: 537-540) .
  • secretion can be achieved by co-expressing the genes of the L chain and the H chain, which constitute the two types of desired IgG, by introducing the genes into a total of four genes.
  • Bispecific antibodies can also be made by chemically cross-linking Fab '.
  • Fal) ' prepared from one antibody is maleimidated with ⁇ PDM (// i ⁇ phenylenedi-maleimide) and reacted with Fal)' prepared from the other antibody.
  • bispecific F (ab ') 2 can be produced (Keler T et al. Cancer Research 1997, 57: 4008-4014).
  • a method of chemically binding an antibody fragment such as Fab'-thionitrobenzoic acid (TNB) derivative to Fab'-thiol (SH) is known (Breiman M et al. Science 1985, 229: 81-83).
  • Leucine zippers derived from Fos, Jun, etc. can be used instead of chemical crosslinking.
  • Fos,; Tim forms homodimers, but takes advantage of the preferential formation of heterodimers.
  • Bispecific F (ab ') 2 can be formed by mixing and reacting the monomer Fab'-Fos, Fab'-Jim reduced under mild conditions (Kostelny SA eta al. J of Immunology, 1992 , 148: 1547-53). This method is not limited to Fab ', but can be applied to scFv, Fv, etc.
  • Bispecific antibodies can also be made in diapody.
  • Bispecific diabodies are heterodimers of two cross-over scFv fragments.
  • VH and V derived from two types of antibodies A and B are connected by a relatively short linker of about 5 residues.
  • modified antibody examples include an antibody bound to various molecules such as polyethylene glycol (PEG).
  • PEG polyethylene glycol
  • the substance to be bound is not limited.
  • Such a modified antibody can be obtained by subjecting the obtained antibody to chemical modification. These methods are well established in K in this area.
  • the origin of the antibody of the present invention is not limited, such as a human antibody, a mouse antibody, and a rat antibody. Genetically modified antibodies such as chimeric antibodies and humanized antibodies may also be used.
  • a target human antibody can be obtained by immunizing a transgenic animal having the entire repertoire of human antibody genes with a target antigen (International Patent application publication numbers W093 / 12227, W092 / 03918, W094 / 02602, W094 / 25585, W096 / 34096, W096 / 33735).
  • a chimeric antibody is an antibody comprising the variable regions of the H and L chains of an antibody of an immunized animal and the constant regions of the H and L chains of a human antibody.
  • DM which codes for the variable region of an antibody derived from an immunized animal, is ligated to DNA that codes for the constant region of a human antibody.
  • a chimeric antibody can be obtained by integrating the gene into a current vector, introducing the vector into a host, and producing the host.
  • a humanized antibody is a modified antibody, also called a reshaped human antibody.
  • a humanized antibody is constructed by grafting the CDR of an antibody derived from an immunized animal into the complementarity determining region of a human antibody. Its general gene recombination technique is also known. Specifically, a DNA sequence designed to link the CDR of a mouse antibody and the framework region (FR) of a human antibody was prepared by preparing several DNA fragments having overlapping portions at the ends. It is synthesized from oligo nucleotides by PCR. The resulting MA is ligated to MA encoding the constant region of a human antibody, then integrated into an expression vector, and introduced into a host to produce it (European Patent Application Publication No.
  • the present invention provides a bispecific antibody having a function of substituting a functional protein, and more preferably a bispecific antibody having a function of substituting a functional protein.
  • a preferred embodiment of the antibody of the present invention is an antibody having a ligand function-substituting activity for a receptor containing a hetero molecule.
  • the term "receptor containing a hetero molecule” means a receptor (multimer) composed of two or more different proteins (receptor molecules).
  • the multimer is not limited by the number of proteins (receptor molecules) such as dimer, trimer and tetramer, but is preferably a dimer.
  • a heteroreceptor indicates that the two constituent proteins (receptor molecules) are not identical.
  • An antibody having a ligand function-substituting activity refers to an antibody having an agonist action for a certain receptor.
  • the ligand-functional replacement antibody can perform the same function as a ligand by dimerizing the receptor at an appropriate distance and angle. That is, a suitable anti-receptor antibody can mimic receptor dimerization with a ligand, and can serve as a ligand function replacement antibody.
  • the receptor of the present invention includes a cytokine heteroreceptor.
  • Cytokine is usually used as a generic term for bioactive proteins that control the proliferation and differentiation of various blood cells, but may also refer to growth factors and growth-suppressing factors in cells including non-immune cells. Therefore, cytokins are released from cells and are a generic term for proteinaceous factors that mediate cell-cell interactions such as immunity, control of inflammatory response, antiviral action, antitumor action, regulation of cell growth and differentiation.
  • cytokine acting on the heteroreceptor referred to in the present invention include IL-2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 15, colony stimulating factor (GM-CSF, etc.), interferon (IFN- ⁇ , i- ⁇ , IFN- ⁇ , etc.), CNTF, LIF,
  • Oncostat in M, CT-1 and the like can be mentioned, preferably an interfering mouth, and particularly preferably a type I in evening ferron.
  • Interferons include IFN-H, IFN-jS, IFN- ⁇ , IFN-te, and the like.
  • IFN- ⁇ ; and IFN- / 3 have high homology, these two IFNs can react via the same receptor.
  • IFN-HI, IFN- / 3 and IFN- are classified as Type I in Yuichi Feron.
  • Examples of the type I interferon receptor include the AR1 chain (GenBank ACCESSION No: J0317K Reference: Uze G et al. Cel l 1990, 60: 225-34) and the M2 chain (GenBank ACCESSION No: U2958 Reference: Domanski P et al. J of Biological Chemistry 1995, 270: 21606-11, LutfaUa G et al. EMBO J 1995, 14: 5100-8).
  • the method for obtaining the bispecific antibody with alternative ligand function of the present invention is not particularly limited, and may be obtained by any method.
  • a bispecific antibody that substitutes for a ligand function for a heteroreceptor consisting of two types of receptor molecules (A chain and B chain) an anti-A chain antibody and an anti-B chain antibody are obtained.
  • a bispecific antibody containing the H and L chains of the anti-A chain antibody and the H and L chains of the anti-B chain antibody is prepared.
  • a plurality of anti-A chain antibodies and a plurality of anti-B chain antibodies are obtained, respectively, and it is preferable to use these to produce bispecific antibodies in as many combinations as possible.
  • an antibody having a ligand function-substituting activity is selected.
  • the bispecific antibody can be prepared by a known method, such as fusion of each antibody-producing hybridoma or introduction of an antibody expression vector into cells.
  • Antibodies to the receptor can be obtained by methods known to those skilled in the art. For example, it can be prepared by immunizing an immunized animal with an antigen. Antigens that immunize animals include intact antigens that are immunogenic and incomplete antigens (including haptens) that are not immunogenic. In the present invention, a receptor whose ligand function-substituting antibody of the present invention is considered to act as a ligand is used as the antigen (immunogen).
  • the receptor in the present invention is not particularly limited, but is preferably a heterodimer. As an animal to be immunized, for example, a mouse, a hamster, a macaque, and the like can be used.
  • variable regions of the L chain and the H chain of the antibody are recovered from the immunized animal or cells of the animal. This operation can be performed by those skilled in the art using generally known techniques. Animals immunized with the antigen express antibodies to the antigen, especially in spleen cells.
  • MRNA is prepared from the spleen cells of the animal, and the variable regions of the L and H chains can be recovered by RT-PCR using primers corresponding to the variable regions of the animal.
  • an animal is immunized with each of the A and B chains of the receptor.
  • the receptor to be used as the immunogen may be the entire protein constituting the receptor or a partial peptide of the protein.
  • an immunogen used to immunize an animal an antigen that can be an antigen in some cases can be bound to another molecule to be a soluble antigen, and a fragment thereof can also be used in some cases. Good.
  • a transmembrane molecule such as a receptor
  • it is preferable to use these fragments eg, the extracellular region of the receptor.
  • cells expressing the transmembrane molecule on the cell surface can be used as an immunogen.
  • Such cells may be cells of natural origin (such as tumor cell lines) or cells constructed to express transmembrane molecules by recombinant techniques.
  • MRNA is extracted from the spleen cells of this animal, and the cDNA of the L chain and H chain variable region is recovered by RT-PCR using a primer corresponding to the vicinity of the variable region.
  • Primers corresponding to the CDR primers corresponding to the framework less diverse than CDR or signal sequence and CH1 Moshiku, can be used primers corresponding to the L chain constant region (C L).
  • Lymphocytes can also be immunized in vitro. Using this, a library displaying sc'Fv or Fab is constructed.
  • a bispecific antibody can be obtained by introducing an anti-A chain antibody expression vector and an anti-B chain antibody expression vector into the same cell and expressing the antibody.
  • screening it is also possible to perform screening using a similar library using mRNA derived from peripheral blood mononuclear cells, spleen tonsils, and the like of human non-immunized animals.
  • Selection of an antibody having a ligand function-substituting activity can be performed, for example, by the following method.
  • the cells usually express a heteroreceptor on which the antibody can act as an agonist on the cell surface, and the receptor emits a signal when bound to a ligand.
  • the cells used in the above method are preferably cells that can proliferate in a ligand-dependent manner of a receptor (ligand-dependent proliferating cells).
  • the receptor usually emits a cell proliferation signal by binding to a ligand.
  • the receptor may be used in the above method by fusing the receptor with a receptor of the type that emits a cell proliferation signal to form a so-called chimeric receptor. Can be.
  • the chimeric receptor emits a cell proliferation signal when bound to a ligand.
  • the receptor suitable for constructing a chimeric receptor by fusing it with a receptor is not particularly limited as long as it is a type of receptor that emits a cell proliferation signal, but is usually a membrane protein, and more preferably a membrane protein.
  • the extracellular domain is a receptor fragment having a ligand binding function
  • the intracellular domain is a receptor fragment having a signal transduction function.
  • Receptors used for the intracellular region include GH receptor, G-CSF receptor, MPL, EP0 receptor, c-Kit, Flt-3, IL-2 receptor, IL-3 receptor, IL-5 receptor, GM-CSF receptor and the like can be mentioned.
  • a chimeric receptor in which the extracellular region is a ligand receptor fragment and the intracellular region is a G-CSF receptor fragment is expressed.
  • the ligand-dependent proliferating cell Ba / F3 can be shown.
  • Other cells that can be used in the above method include, for example, NFS60, FDC-PK FDC-P2, CTLL-2, DA-1, KT-3 and the like.
  • the obtained antibody can be purified to homogeneity.
  • the separation and purification of the antibody may be performed by the separation and purification methods used for ordinary proteins.
  • antibodies can be separated and purified.
  • chromatography columns such as affinity chromatography, filters, ultrafiltration, salting out, dialysis, SDS polyacrylamide gel electrophoresis, isoelectric focusing, etc.
  • antibodies can be separated and purified.
  • chromatography columns such as affinity chromatography, filters, ultrafiltration, salting out, dialysis, SDS polyacrylamide gel electrophoresis, isoelectric focusing, etc.
  • the antibody of the present invention is, for example, an antibody having a ligand function-substituting activity for a type I interferon receptor containing an AR1 chain and an AR2 chain
  • the antibody preferably comprises a variable region in an anti-AR 1 chain antibody, And a variable region in an anti-AR2 chain antibody.
  • the interferon function-substituting antibody was prepared by the following method. IL-3 dependent mouse pro-B cell line Ba /, which expresses the receptor molecule of type I interferon receptor AR1 chain and chimeric receptor in the extracellular region of M2 chain and the intracellular region of G-CSF receptor, respectively F3 was established. Each cell was immunized intraperitoneally with BALB / c.
  • RNA was extracted from the spleen of an immunized mouse with an increased antibody titer, and a scFv was synthesized by RT-PCR to construct a scFv-displaying phage library.
  • the AR1 chain-expressing Ba / F3 immunized mouse The phage library derived from the spleen of the mouse and the biotinylated soluble AR1 chain were mixed, and the bound phages were concentrated by the panning method of capturing with streptavidin magnetic beads. Phage displaying anti-AR1 chain antibody was selected by phage ELISA using soluble AR1 chain.
  • an anti-AR2 chain antibody phage was selected using a library phage derived from the spleen of a soluble AR2 chain and an AR2 / chain-expressing Ba / F3 immunized mouse. Antibodies were selected that differ in the amino acid sequence of the CDR3 of the H chain, which is said to be most involved in the specificity of the antibody.
  • the scFv was inserted between the signal sequence for animal cells and CHI-hinge-CH2-CH3 to prepare an scFv-CHI-Fc expression vector.
  • Antibodies against the AR1 and AR2 chains were introduced into cells in various combinations to express bispecific antibodies.
  • BaF3-ARG was established by introducing an expression vector for a chimeric molecule of the extracellular region of each of the l-chain and AR2 chain and the intracellular region of the G-CSF receptor into Ba / F3. The cells proliferated in an IFN-dependent manner. Bispecific antibodies were selected that were combinations of antibodies that could support the growth of BaF3-ARG.
  • Daudi cells are human ⁇ cell lines highly sensitive to the cytostatic activity of IFN- ⁇ .
  • the bispecific antibody selected above was added to Daudi cells, and it was confirmed that proliferation was inhibited in the same manner as IFN- ⁇ .
  • Examples of the antibody include, but are not particularly limited to, an antibody including any of the following variable regions of an anti-AR1 chain antibody and any of the following variable regions of an anti-AR2 chain antibody: be able to.
  • AR2 chain antibody variable regions AR2-37, A2-11, AR2-13, A2-45, AR2-22, AR2-43, AR2-40, AR2-14, AR2-44, AR2-33, AR2-31
  • amino acid sequences of V H and of each of the above variable regions are shown in SEQ ID NOs: 1 to 26 (the relationship between V H and of each variable region and SEQ ID NOs is shown in Table 1).
  • the partner anti-AR2 chain antibody is preferably AR2-13, AR2-31, or AR2-44, and when the anti-AR1 chain antibody force is 41, the partner is
  • the anti-AR2 chain antibody is AR2-11, AR2-13, AR2-14, AR2-22, AR2-33, AR2-37, AR2-40, AR2-43, A2-44, or AR2-45 Is preferred.
  • M2-13 and AR2-44 are capable of partnering with both ⁇ -41 and AR1-24 antibodies. Antibodies that form such pairs are also included in the present invention.
  • bispecific antibody having a function of substituting the functional protein of the present invention
  • a bispecific antibody that substitutes for a function of a cofactor that recognizes both an enzyme and a substrate of the enzyme is used. It is.
  • the cofactor in the present invention is not particularly limited as long as it acts on the enzyme and can enhance the enzyme reaction.
  • Examples of the cofactor in the present invention include a cofactor for a protease.
  • Specific examples of proteolytic enzyme cofactors include cofactors (F.VIII / F.Villa, PZ, TM, TM / PS system) in blood coagulation-fibrinolysis-related factors.
  • Cofactors for complement reaction C4b, MCP, CR1, factor H
  • the cofactor F. Villa enhances the activation of F.Xa by F.IXa by binding to both F.IXa and F.X.
  • Some bispecific antibodies that recognize both the enzyme F.IXa and the substrate F.X have an action of enhancing F.X activation. It is considered that some of such anti- #: have an action that substitutes for the action function of cofactor F.VIII / F. Villa.
  • Cofactor PZ enhances ZPI-induced F.Xa inhibition by binding to serpin family ZPI and F.Xa. That is, it is considered that among the bispecific antibodies that recognize both ZPI and F.X / F.Xa, those that have an action to substitute the function of PZ exist.
  • Cofactor TM enhances the activation of TAFI by thrombin. That is, it is considered that among the bispecific antibodies that recognize both thrombin and TAFI, there are those that have an action of substituting the function of TM.
  • the TM / PS system enhances the activation of PC by thrombin. That is, it is considered that some bispecific antibodies that recognize both thrombin and PC substitute for the function of the TM / PS system.
  • C4b has the effect of promoting the decomposition of C2 by Cls. In other words, it is considered that some bispecific antibodies that recognize both Cls and C2 substitute for the function of C4b.
  • Complement Regulatory Factor H MCP and CRl have C3b decomposition promoting action by Complement Regulatory Factor I. That is, among the bispecific antibodies that recognize both Co-lenient Regulatory Factor I and C3b,
  • F.VIII / F.Villa F. VI II / F. Vil la is subject to limited degradation by proteolytic enzymes such as thrombin, but any form is possible as long as it has a cofactor activity of F. Vin / R VII Ia. Also, mutation ?. ⁇ 111 111 & Also, regarding F.VIII / F.Vil la artificially modified by genetic recombination technology,
  • the method for obtaining the bispecific antibody alternative to the cofactor function of the present invention is not particularly limited, and may be obtained by any method.
  • immunized animals are immunized with enzyme A and substrate B, respectively, to obtain anti-enzyme A antibodies and anti-substrate B antibodies.
  • a bispecific antibody containing the H chain and L chain of the anti-enzyme A antibody and the H chain and L chain of the anti-substrate B antibody is prepared.
  • a plurality of anti-enzyme A antibodies and a plurality of anti-substrate B antibodies are obtained, respectively, and it is preferable to use these to produce as many combinations of bispecific antibodies as possible.
  • an antibody having a cofactor function-substituting activity is selected.
  • Antibodies to enzymes or substrates can be obtained by methods known to those skilled in the art. For example, it can be prepared by immunizing an immunized animal with an antigen. Antigens that immunize animals include complete immunogenic antigens and incomplete non-immunogenic antigens (including haptens). In the present invention: An enzyme or a substrate which is considered to act as a cofactor by the cofactor function-substituting antibody of the present invention is used as the antigen (immunogen). As an animal to be immunized, for example, a mouse, a hamster, a rhesus monkey, or the like can be used. Immunization of these animals with an antigen can be carried out by those skilled in the art by well-known methods.
  • variable regions of the L chain and the H chain of the antibody are recovered from the immunized animal or the cells of the animal.
  • This operation can be performed by those skilled in the art using generally known techniques.
  • Animals immunized with the antigen express antibodies to the antigen, especially in spleen cells. Therefore, for example, mRNA can be prepared from spleen cells of an immunized animal, and the variable regions of the light chain and light chain can be recovered by RT-PCR using primers corresponding to the variable region of the animal.
  • an animal is immunized with each of an enzyme and a substrate.
  • the enzyme or substrate used as an immunogen may be the whole protein or a partial peptide of the protein.
  • exempt animals As an immunogen used for immunization, it is also possible to bind an antigen which may be an antigen in some cases to another molecule to form a soluble antigen, or to use a fragment thereof in some cases.
  • the niNA is extracted from the spleen cells of the immunized animal, and the cDNA of the L chain and H chain variable region is recovered by RT-PCR using a primer corresponding to the vicinity of the variable region.
  • a library that presents scFv or Fab is constructed using this.
  • An antigen-binding antibody clone is enriched and cloned by panning, and an antibody expression vector is constructed using the variable region.
  • the bispecific antibody can be obtained by introducing the anti-enzyme antibody expression vector and the anti-substrate antibody expression vector into the same cell and expressing the antibody. Screening was performed using a similar library of mRNA derived from peripheral blood mononuclear cells, spleen, tonsils, etc. of non-treated animals. It is also possible.
  • An antibody having a cofactor function-substituting activity can be selected, for example, by the following method.
  • reaction system containing the enzyme and the substrate, and select the enzyme based on the increase in the enzyme activity (substrate resolution) caused by the addition of the antibody.
  • the obtained antibody can be purified to homogeneity.
  • the separation and purification of the antibody may be performed by the separation and purification methods used for ordinary proteins. For example, chromatography columns such as affinity chromatography, filters, ultrafiltration, salting out, dialysis, SDS polyacrylamide gel electrophoresis, isoelectric focusing, etc. If selected and combined, antibodies can be separated and purified (Ant ibodies: A
  • the bispecific antibody of the present invention for example, when the alternative cofactor is F.VIII / F.Villa, that is, when the combination of the enzyme and the substrate is a blood coagulation / fibrinolysis-related factor, F.IXa and F.IX.
  • F.IXa blood coagulation / fibrinolysis-related factor
  • F.IXX blood coagulation / fibrinolysis-related factor
  • X it preferably has a structure including a variable region in an anti-F, IXa antibody and a variable region in an anti-F.X antibody.
  • the F.VIII / F.Villa function alternative bispecific antibody of the present invention was prepared by the following method. Mice were immunized subcutaneously with commercially available F.IXa and F.X, respectively. Splenocytes were isolated from the spleen of the immunized mouse with an increased antibody titer, and fused with mouse myeloma cells to produce a hybridoma. Hybridomas that bind to the antigen (F.IXa, F.X) were selected, and the variable regions of the L and H chains were recovered by RT-PCR using primers corresponding to the variable regions. The L chain variable region was incorporated into an L chain expression vector containing and the H chain variable region was incorporated into an H chain expression vector containing an H chain constant region.
  • the expression vector for the anti-F.IXa antibody H chain, L chain
  • the expression vector for the F.X antibody H chain, [chain]
  • Two types of antibodies are expressed. Specific antibodies were obtained. Regarding the obtained bispecific antibodies, F. XIa (F. IX activating enzyme), F. IX (F. X activating enzyme), F. X and F. Xa synthetic substrates (S-2222) ), A measuring system composed of phospholipids,
  • the activity of substituting F.VIII / F.Villa (a cofactor for F.X activation by F.IXa) was evaluated. Based on the results, bispecific antibodies having F.VIII / F.Villa replacement activity were selected. Regarding the bispecific antibodies selected above, the coagulation recovery ability was measured using a coagulation measurement system (APTT) using F.VIII-deficient human plasma. As a result, it was confirmed that a bispecific antibody having an ability to recover coagulation against F.VIII-deficient human plasma was obtained.
  • APTT coagulation measurement system
  • the H chain CDR3 of the antibody of the present invention is not particularly limited.
  • the complementarity-determining region consisting of the amino acid sequence of the X-chain H3 CDR3 sequence (SEQ ID NO: 42) or the XT04 H-chain CDR3 sequence (SEQ ID NO: 46) of It has an equivalent complementarity determining region, and has an H04 CDR3 sequence of SB04, SB05, SB06, SB07, SB2K SB30, SB34, SB38 or SB42 (SEQ ID NOS: 50, 54, 58, 62, 66, respectively) 70, 74, 78 or 82), or has a complementarity-determining region functionally equivalent thereto.
  • the above-mentioned antibody of the present invention is, as a specific example, composed of the amino acid sequence of either the X-chain H chain CDR sequence (SEQ ID NOS: 40 to 42) or the XT04 H-chain CDR sequence (SEQ ID NOs: 44 to 46)
  • One having a complementarity-determining region or a functionally equivalent complementarity-determining region and the H chain CDR sequence of SB04, SB05, SB06, SB07, SB2K SB30, SB34, SB38 or SB42 (SEQ ID NOS: 48 to 50) , 52-54, 56-58, 60-62, 64-66, 68-70, 72-74, 76-78 or 80-82), or a complementarity determining region comprising Antibodies can be suitably shown in combination with those having a functionally equivalent complementarity determining region.
  • amino acid sequences of the heavy chain variable regions of XB12, XT04, SB04, SB05, SB06, SB07, SB2L SB30, SB34, SB38 and SB42 described in the present invention are shown in SEQ ID NOs: 39, 43, 47, 51, 55, 59, 63 , 67, 71, 75 and 79.
  • the constant region is not particularly limited, and a constant region known to those skilled in the art can be used.
  • a constant region known to those skilled in the art can be used.
  • the Sequences of proteins of immunological interest (1991), US Department of Health and Human Services.Public Health Service National Institutes of Health, and An efficient route to human bispecific IgG, (1998) .Nature Biotechnology vol. 16, 677-681. Can be used.
  • One embodiment of the antibody in the present invention is to have a ligand function replacement action.
  • the antibody of the present invention is expected to be an effective drug against diseases caused by a decrease in the activity (function) of the receptor on which the antibody acts.
  • the alternative ligand function of the antibody of the present invention is IFN-a /) S
  • examples of the disease include a viral disease, a malignant neoplasm, and an immune disease.
  • Viral diseases include, for example, diseases caused and / or developed by the hepatitis C virus, and more specifically, examples include acute hepatitis C, chronic hepatitis C, cirrhosis, and liver cancer. it can.
  • Chronic hepatitis C is a chronic inflammatory disease caused by the host's immune response to hepatitis C virus-infected cells. As the symptoms progress, liver function gradually decreases, leading to liver cirrhosis and liver cancer at the end. Chronic hepatitis C patients are treated with Interferon-HI / 3 to eliminate hepatitis C virus.However, due to the short half-life in blood, daily administration is necessary. Burden is considerable. Accordingly, there has been a demand for a drug having an interferon-// 3 action and having excellent sustainability.
  • Examples of other viral diseases include, for example, diseases caused and / or developed by hepatitis B virus, and more specifically, acute hepatitis B, chronic hepatitis B, cirrhosis, and liver cancer. Can be exemplified.
  • Malignant neoplasms include chronic myelogenous leukemia, malignant melanoma, multiple myeloma, renal cancer, glioblastoma, medulloblastoma, astrocytoma, hairy cell leukemia, AIDS-related sarcoma, skin T cells Examples include lymphoma and non-Hodgkin's lymphoma. Examples of the immune disease include multiple sclerosis.
  • the antibody of the present invention has an action of substituting the function of a cofactor, so that the antibody of the present invention can be used for a disease caused by reduced activity (function) of the cofactor. It is expected to be an effective drug.
  • the cofactor that substitutes for the antibody of the present invention is a blood coagulation / fibrinolysis-related factor
  • the above diseases include, for example, bleeding, Diseases involving blood or diseases caused by bleeding can be mentioned.
  • F.VIII / F.Villa, F.IX / F.IXa, and F.XI / F.XIa are known to cause a dysfunction or deficiency, which causes hemorrhagic disorders called hemophilia.
  • hemophilia bleeding disorders due to congenital F.VIII / F.VIIIa hypofunction or deficiency are called hemophilia A. If hemophilia A bleeds, F.VIII replacement therapy is given.
  • prophylactic administration of F.VIII preparations may be performed if frequent intra-articular bleeding occurs on the day of intense exercise or excursion, or if the patient is classified as severe hemophilia (Non-patent Document 2 and 3).
  • the prophylactic administration of this F.VIII preparation has become very widespread in recent years because it drastically reduces bleeding episodes in hemophilia A patients. Reducing bleeding episodes not only reduces the risk of fatal and non-fatal bleeding and the associated pain, but also prevents haemophilic joint damage due to frequent joint bleeding. As a result, it greatly contributes to improving Q0L of hemophilia A patients.
  • the F.VIIi preparation is administered intravenously.
  • administration to young patients is further complicated by the narrow venous vein used for administration.
  • hemophilia A inhibitor patients develop bleeding, they are usually treated with neutralization therapy using large doses of F.VIII or bypass using complex lex concentrate or F.Vila. Therapy is administered.
  • neutralization therapy administration of large amounts of F.VIII preparations may, on the contrary, increase titers of inhibitory (anti-F.VIII antibodies).
  • Another problem with bypass therapy is the short-lived half-life (about 2 to 8 hours) of conjugates and F. Vila.
  • their mechanism of action is independent of the function of F.VIII / F.Villa, that is, the function of catalyzing the activation of F.Xa by F.IXa. In some cases, they cannot respond, resulting in a non-response.
  • haemophilia A inhibitors often do not have a sufficient hemostatic effect compared to non-inhibitor hemophilia A patients.
  • bleeding disorders related to F.VIII / F.VIIIa include hemophilia, acquired hemophilia having anti-F.VIII autoantibodies, and bleeding caused by abnormal or defective vWF function.
  • Onville-brand disease is known.
  • vWF is not only required for platelets to adhere properly to the subendothelial tissue at the site of injury to the vessel wall, but also forms a complex with F.VIII and maintains normal levels of F.VI II in plasma It is also necessary. In patients with von Willebrand disease, these functions are impaired, leading to abnormal hemostasis.
  • C4b binding protein C4bp
  • PS protein S
  • C4bp dissociates C2b from the C4b C2b complex and has the effect of eliminating the aPC coiactor activity of PS.
  • C4bp has a regulatory effect on the complement system and the blood coagulation system.
  • Bispecific antibodies to C4b and PS are thought to have an action to replace the action of C4bp.
  • C4bp also acts as a cofactor for the degradation of C4b by factor I. Therefore, bispecific antibodies to factor I and C4b are also considered to have an action to replace the action of C4bp.
  • the present invention provides a pharmaceutical composition comprising the antibody of the present invention as an active ingredient.
  • the antibody of the present invention is an antibody having an activity of substituting interferon for a cytokine receptor
  • the antibody is considered to have a cytodynamic effect. Therefore, the antibody is expected to be a drug (pharmaceutical composition) or drug having an antiviral action, an antitumor action, a cell growth and differentiation regulating action.
  • antibodies that substitute for the function of IL-2 replace the function of drugs (pharmaceutical compositions) or drugs that have immunostimulatory / anti-tumor effects by differentiation and activation of T cells and NK cells, and the function of IL-3 Antibodies that promote the recovery of blood cells by proliferating hematopoietic progenitor cells (pharmaceutical compositions) or drugs. Antibodies that substitute for IL-4 function have antiallergic effects by inducing T (humoral immunity).
  • compositions or drugs that have the function of IL-5 are B cells • Eosinophil proliferation • Immunostimulation by inducing differentiation • Pharmaceuticals (pharmaceutical compositions) or drugs that have antitumor activity -Antibodies that substitute the function of 6 are pharmaceuticals (pharmaceutical compositions) or drugs that have the effect of stimulating platelet production, and antibodies that substitute the function of IL-7 have immunostimulatory activity due to proliferation of T cells and B cells.
  • Pharmaceuticals (pharmaceutical compositions) or drugs, antibodies that replace the function of IL-9 replace mast cell proliferation-drugs (pharmaceutical compositions) or drugs that promote hematopoietic recovery by hematopoiesis, replace the function of IL-10
  • Antibodies replace drugs (pharmaceutical compositions) or drugs with immunosuppressive action
  • IL-11 function Antibodies replace drugs (pharmaceutical compositions) or drugs with platelet production stimulating action
  • IL-12 function Antibodies that stimulate Thl (cellular immunity) induce immunostimulation.
  • Drugs that have antitumor activity (pharmaceutical compositions) or antibodies that substitute for IL-15 function are activated by NK cell activation.
  • compositions or drugs that have antitumor activity, or antibodies that substitute for the function of GM-CSF are pharmaceuticals (pharmaceutical compositions) or drugs that promote leukocyte recovery after chemotherapy or bone marrow transplantation, or CNTF of Antibodies that replace the function are drugs (pharmaceutical compositions) or drugs that have an anti-obesity effect, and antibodies that replace the function of LIF are drugs (pharmaceutical compositions) or drugs that have a platelet production stimulating / blood cholesterol-lowering effect
  • Antibodies that substitute the function of Oncostat in M are drugs (pharmaceutical compositions) or drugs with hematopoietic promoting action, and antibodies that replace the function of CT-1 are drugs (pharmaceutical compositions) or drugs with cardioprotective action It is expected.
  • the antibody of the present invention is an antibody that recognizes F.IX or both F.IXa and F.X and that substitutes for the function of F.VIIIa
  • the antibody may be used for bleeding or bleeding. It is expected to be a drug (medicinal composition) or drug for the prevention or treatment of diseases associated with bleeding or diseases caused by bleeding.
  • antibodies that bind to ZPI and F.X to replace the function of PZ are drugs (pharmaceutical compositions) or drugs that have an antithrombotic effect
  • antibodies that replace the function of TM by binding to thrombin and TAFI are It is expected to be a drug (pharmaceutical composition) or drug that promotes hemostasis, or a drug (pharmaceutical composition) or drug that binds to thrombin and PC and replaces the function of the PS / TM system. .
  • an antibody that substitutes for the action of C4b should be a drug (pharmaceutical composition) that has SLE onset suppression effect. Is expected to be a drug. Since deficiency of factor H causes suppurative infection and autoimmune glomerulonephritis, antibodies that substitute for the action of factor H become pharmaceuticals (pharmaceutical compositions) or drugs that have the effect of suppressing the onset of these diseases It is expected.
  • an antibody that substitutes for the action of C4bp is expected to be a drug (pharmaceutical composition) or drug having an action to suppress the onset of Behcet's disease.
  • the pharmaceutical composition containing the antibody of the present invention used as an active ingredient for therapeutic or prophylactic purposes may be mixed, if necessary, with a suitable pharmaceutically acceptable carrier, medium or the like which is inactive against them. It can be formulated. For example, sterile water or saline, stabilizers, excipients, antioxidants (ascorbic acid, etc.), buffers (phosphoric acid, citric acid, other organic acids, etc.), preservatives, surfactants (PEG , Awake, etc.), chelating agents (EDTA, etc.), binders and the like.
  • aqueous solution for injection for example, physiological saline
  • an isotonic solution containing glucose and other adjuvants for example, D-sorbyl, D-mannose, D-manni!
  • alcohols eg, ethanol
  • polyalcohols eg, propylene glycol, PEG
  • nonionic surfactants eg, Polysorbate 80, HC0-50
  • the antibody of the present invention may be encapsulated in a microcapsule (microcapsule such as hydroxymethylcellulose, gelatin, poly [methylmethacrylic acid]), or a colloid drug delivery system (ribosome, albumin microsphere). , Microemulsions, nanoparticles and nanocapsules). Remington's Pharmaceutical Science 16th edition ", Oslo Ed. (1980) reference). Furthermore, a method for converting a drug into a sustained-release drug is also known and can be applied to the antibody of the present invention (Langer et al., J. Biomed. Mater. Res. 15: 267-277 (1981); Langer, Chemtech. 12: 98-105 (1982); U.S. Pat. No.
  • the dosage of the pharmaceutical composition of the present invention is determined by a physician in consideration of the type of dosage form, the administration method, the age and weight of the patient, the symptoms of the patient, the type of disease and the degree of progression, etc. In general, for adults, 0.1 to 2000 mg per day can be orally administered in one or several divided doses. More preferably l-1000 mg / day, even more preferably 50-500 mg / day, most preferably 100-300 mgZ day. These doses vary depending on the weight and age of the patient, the administration method, and the like, but those skilled in the art can appropriately select an appropriate dose. It is preferable that the administration period is appropriately determined according to the healing process of the patient.
  • Administration methods include direct administration using naked plasmids, packaging in ribosomes, retrovirus vectors, adenovirus vectors, vaccinia virus vectors, box virus vectors, adenovirus-related vectors, and HVJ. It can be formed as a vector such as a vector (see Adolph “Virus Genome Method”, CRC Press, Florid (1996)) or coated on a bead carrier such as colloidal gold particles (W093 / 17706) Etc.).
  • the antibody may be administered by any method as long as the antibody is expressed in vivo and can exert its action.
  • injection, infusion, or gas-induced particle bombardment e.g., via an intravenous, intraperitoneal, subcutaneous, intradermal, adipose tissue, adipose tissue, mammary tissue, inhalation or intramuscular route
  • a sufficient amount is administered by a method such as through a gun or a mucosal route such as nasal drops).
  • the cells are administered to blood cells and bone marrow-derived cells using ribosome transfection, particle bombardment (US Pat. No. 4,945,050), or viral infection. May be administered again to an animal to administer the gene encoding the antibody of the present invention.
  • the present invention also provides a method for preventing and / or treating bleeding, a disease associated with bleeding, or a disease caused by bleeding, comprising a step of administering the antibody or the composition of the present invention.
  • Administration of the antibody or the composition can be performed, for example, by the method described above.
  • the present invention also relates to the use of the antibody of the present invention for producing the (pharmaceutical) composition of the present invention.
  • the present invention provides a kit for use in the above method, comprising at least the antibody or the composition of the present invention.
  • the kit can be packaged with a syringe, a needle, a pharmaceutically acceptable medium, an alcohol swab, a bandage, or instructions describing the method of use.
  • FIG. 1 shows the insertion region of PCDNA4-g4H.
  • FIG. 2 is a diagram showing insertion regions of PCDNA4-g4L and pIND-g4L.
  • FIG. 3 is a diagram showing the insertion region of pIND-g4H.
  • Figure 4 shows anti-F.IXa antibody XB12 and anti-F.X antibody SB04, SB2 SB42, SB38, SB30, SB07, SB05, SB06, and SB34 prepared anti-F.IXa / anti-F.X bispecific antibodies. The result of measuring F. Vila-like activity is shown. The concentration of the antibody solution is lO ⁇ z g / niL (final concentration
  • bispecific antibodies showed an increase in F.VI I Ia-like activity, XB12 / SB04, XB12 / SB2K XB12 / SB42, XB12 / SB38 XB12 / SB30, XB12 / SB07, XB12 / SB05, XB12 The activity was strong in the order of / SB06 and XB12 / SB34.
  • Figure 5 shows the anti-F.IXa / anti-F.X bispecific antibody or XT04 prepared with anti-F.IXa antibody ⁇ 04 and anti-F.X antibody SB04, SB2K SB42, SB38, SB30, SB07, SB05, SB06, SB34.
  • Fig. 9 shows the results of measuring F.VIIIa-like activity of the antibody.
  • Antibody solution concentration is 10 g / mL (Final concentration lg / mL). Result, XT04 / SB04, XT04 / SB2K XT04 / SB42,
  • FIG. 6 shows the results of measuring F. Villa-like activity at various concentrations for XB12 / SB04, which had the highest activity in FIG. As a result, XB12 / SB04 showed an increase in F. Villa-like activity in a concentration-dependent manner.
  • Figure 7 shows the measurement of plasma coagulation time (APTT) in the presence of XB12 / SB30, XB12 / SB07, XB12 / SB05, XB12 / SB06, XB12 / SB34.XB12 / SB04, XB12 / SB2K XB12 / SB42, XB12 / SB38.
  • the concentration of the antibody solution is 3.4 / ig / mL for XB12 / SB06, and 20 ig / mL for all others.
  • Result XB12 / SB04, XB12 / SB2K XB12 / SB42, XB12 / SB38,
  • XB12 / SB30, XB12 / SB07, XB12 / SB05, XB12 / SB06, and XB12 / SB34 showed an effect of shortening the clotting time as compared to the absence of the antibody.
  • Figure 8 shows the plasma clotting time (APTT) measured in the presence of XT04 / SB04, XT04 / SB2K, XT04 / SB42, XT04 / SB38, XT04 / SB30, XT04 / SB07, XT04 / SB05, XT04 / SB06, and XT04 / SB34. The results are shown.
  • the concentration of the antibody solution is 10 ig / mL for XT04 / SB06, and 20 / ig / mL for the others.
  • FIG. 9 shows the results of measuring the coagulation time at various concentrations for XB12 / SB04, which had the highest effect of reducing the coagulation time (APTT) in FIGS. 7 and 8. As a result,
  • XB12 / SB04 showed a coagulation time shortening effect in a concentration-dependent manner.
  • FIGS. 10 to 13 show the ability of the antibody against pISRE-Luc-transfected K562 cells to activate ISRE.
  • the mouth indicates IFN-o? 2a, and the hata indicates the combination of anti-AR1 chain and anti-AR2 chain bispecific antibodies in the figure.
  • the antibody is dose-dependent with the same specific activity per molecule as IFN
  • FLAG At the C-terminus of the extracellular region of each of the human AR1 and AR2 chains, FLAG (AR1FLAG,
  • AR2FLAG or His6 (face is, AR2His) -tagged soluble receptor expression vectors were introduced into CH0 cells and purified from the culture supernatant using affinity columns.
  • High expression cells were established by introducing a chimeric molecule expression vector of the extracellular region of the human AR1 chain and the intracellular region of the G-CSF receptor into the mouse pro-B cell line Ba / F3.
  • PolyA W RNA was extracted from the spleen of the immunized mouse, scFv was synthesized by RT-PCR, and a phagemid library in which the scFv was expressed as a fusion protein with the gene 3 of f phage was constructed (J. I band un. Methods , 201, (1997), 35-55).
  • the phage was precipitated by centrifugation at 0,800 ⁇ g for 30 minutes and suspended in 5 mL PBS.
  • AR1FLAG and AR2FLAG prepared in Example 1 No- Weigh Premeasured NHS- PE0 4 - was Piochin labeled using Biot in Microtu bes (Pierce). 100 pmol of a biotin-labeled AR1FLAG or AR2FLAG was added to one of the phage libraries and contacted with the antigen for 60 minutes. 600 L of Streptavidin MagneSphere (Promeg a) washed with 5% M-PBS (PBS containing 5% skim milk) was added and allowed to bind for 15 minutes.
  • the beads were washed three times with 1 mL of PBST (PBS containing 0.1% Tween-20) and PBS.
  • the peas were suspended in 0.8 mL of 0.1 mol / L glycine / HC1 (pH 2.2) for 5 minutes to elute the phage.
  • Lmol / L IPTG, 10 "piu helper phage (VCSM13) was added to 10 mL of the culture, and the mixture was allowed to stand at 37 ° C for 30 minutes.
  • the cells were resuspended in 2xYTAG lOOmL containing 25 g / mL kanamycin.
  • the cells were cultured at 30 ° C for 10 hours
  • the culture supernatant was collected by centrifugation, mixed with 20 mL PEG-NaCl, and allowed to stand at 4 ° C for 20 minutes.
  • the single colony described above was inoculated into 150 / zL 2xYTAG and cultured at 30 ° C overnight. After inoculating 5 L of this into 500 L of 2xYTAG and culturing at 37 ° C for 2 hours, add 2 ⁇ YTAG containing 2.5 ⁇ 10 iu of helper phage and 0.3 L of lmol / L IPTG to IOOL, and add at 37 ° C. Let stand for 30 minutes. Subsequently, the cells were cultured overnight at 30 and the centrifuged supernatant was subjected to ELISA. Load StreptaWel 96 microtiter plate (Roche) with 1.
  • An expression vector pCAGGss-g4CHhetero IgG4 capable of inserting the E. coli was constructed.
  • an amino acid substitution to the CH3 part of IgG4 was prepared with reference to IgGl knobs-into-holes (Ridgway JB et al. Protein in Engineering 1996, 9: 617-621).
  • Type A is a substitution of Y349C and T366W.
  • Type B is a substitution of E356 T366S, L368A, Y407V.
  • a substitution (-ppcpScp- ⁇ -ppcpPcp-) was introduced into both hinges.
  • a type was constructed using the signal sequence of human IL-3, and B type was constructed using the signal sequence of human IL-6 (pCAGG-IL3SS-g4CHPa, pCAGG-IL6ss-g4CHPb).
  • the PCR product of the scFv region of the clone selected from the nucleotide sequence was treated with Siil, and the anti-AR1 chain clone was subcloned into pCAGG-IL3ss_g4CHPa, and the anti-AR2 chain clone was subcloned into pCAGG-IL3ss-g4CHPb.
  • Expression vectors were transfected into HEK293 cells using Ribofectamine 2000 for a total of 2025 kinds of anti-AR1 chain and anti-AR2 chain clones 45 ⁇ 45, and the culture supernatant after 3 days was collected.
  • BaF3-MG was established by introducing an expression vector for a chimeric molecule of the extracellular regions of the AR1 and AR2 chains and the intracellular region of the G-CSF receptor into Ba / F3, a mouse IL-3-dependent proliferating cell.
  • B aF3- ARG grew depending on IFN a.
  • a 96-well plate was seeded with 0.1 ml of a medium containing 3 cells / sample and 1 lxlO per well washed three times. After culturing for 4 days, 10 L of viable cell counting reagent SF (nacalai tesQue) was added, and the mixture was incubated at 37 ° C for 2 hours, and A450 was measured.
  • Daudi cells are a human B cell line that is highly sensitive to IFN. 6.25xl0 3 cells / well were seeded in a 96-well plate in 0.1 mL medium containing the sample. After culturing for 4 days, add 10 L of viable cell counting reagent SF (nacalai tesQue) and keep at 37 ° C for 2 hours. After warming, A450 was measured.
  • viable cell counting reagent SF nacalai tesQue
  • amino acid sequences of the variable regions of the antibodies selected in the above screening are shown in SEQ ID NOs: 1 to 26.
  • the relationship between the name of each antibody and the sequence number is shown in Table 1 above.
  • the concentration of bispeciiic scFv_CH in the culture supernatant of HEK293 was adjusted to 12.5 ng / mL in terms of IgG, and a 5-fold dilution series was prepared.
  • the C0S7 culture supernatant expressing Bispeciiic IgG was diluted 2-fold, and a 5-fold dilution series was prepared. This was added at 30 / L / well to cells into which the repo overnight plasmid had been introduced. To the well of the positive control, a 5-fold dilution of IFN-hi 2a was dispensed at 30 L / wdl.
  • Factor IXaj3 emulsified with FIA Incomplete Freund's Adjuvant (Diico laboratories) was subcutaneously administered at 40 g / head. Thereafter, booster immunizations were performed 3 to 7 times at weekly intervals. After confirming the increase in serum antibody titer against Factor IXaj3 by EUSA (Enzyme linked immunosorbent assay) shown in 5-2, it was diluted with PBS (-) (phosphate buffered saline without calcium ion and magnesium ion) as final immunity. Factor IXaj8 was administered intravenously at 40 ⁇ g / liead.
  • mouse spleen cells were fused with mouse myeloma cells P3X63Ag8U.1 (ATCC CRL-1597, called P3U1) according to a conventional method using PEG1500 (Roche's Diagnostics).
  • the fused cells suspended in RPMI1640 medium (Invitrogen) containing 10% FBS (Invitrogen) (hereinafter referred to as 10 FBS / RPMI1640) were seeded on a 96-well culture plate, and MT was selected 1, 2, 3, and 5 days after fusion.
  • Hybridomas were selectively cultured by substituting a medium (10 FBS / RPMI1640 I2 50x concentrate (Dainippon Pharmaceutical) I53 ⁇ 4 BM-Condimed HI (Roche Diagnostics)) .
  • a medium 10 FBS / RPMI1640 I2 50x concentrate (Dainippon Pharmaceutical) I53 ⁇ 4 BM-Condimed HI (Roche Diagnostics)
  • the binding activity to Factor IXa was measured by EUSA shown in 5-2 to select a hybridoma having Factor IXa binding activity.
  • the neutralizing activity for the enzyme activity of Factor IXa was measured by the method shown in 5-3, and a hybridoma having no neutralizing activity for Factor IXa was selected.
  • Hybrids were cloned by limiting dilution twice by seeding one cell per well in a 96-well culture plate. Cells confirmed to be a single colony by microscopic observation were subjected to ELISA and neutralization activity measurement shown in 5-2 and 5-3, and clones were selected. Ascites of the cloned antibody was prepared by the method shown in 5-4, and the antibody was purified from the ascites. It was confirmed by the method shown in 5-5 that the purified antibody did not prolong APTT (activated partial thromboplastin time). 5-2. Factor IXa EL ISA
  • diluent buffer 50 ⁇ Tris-HCl, ⁇ 8, 1% bovine serum albumin, lni MgCl 2 , 0.15M NaCl, 0.05% Tween (R) 20, 0.02 % sodium azide
  • 100 xL / weIl of mouse antiserum or hybridoma culture supernatant diluted with the diluent buffer was added to the plate, and the plate was incubated at room temperature for 1 hour.
  • Phospholipid (Sigma-Aldrich) was dissolved in distilled water for injection and sonicated to prepare a phospholipid solution of 400 g / fflL.
  • the ascites of the established hybridoma was prepared according to a conventional method.
  • BALB / c mice male, 5-7 weeks old at the start of the experiment, Nippon Chillers' Liver
  • BALB / c nude mice female, 5-6 weeks old at the start of the experiment, Nippon Challus, Riva and Clea Japan
  • ascites was collected from mice whose abdomen was enlarged.
  • Antibody purification from ascites is performed using Protein G Sepharose TM 4 Fast Flow (Amersham
  • Binding Buffer 20 mM sodium acetate, pH 5.0
  • the antibody was eluted with 5 column volumes of Elution Buffer (0.1 M glycine-HC1, pH 2.5) and neutralized with Neutralizing Buffer (1 M Tris-HCl, pH 9.0). This was concentrated with Centriprep TM 10 (Millipore), and the solvent was replaced with TBS (50 mM Tris-buffered Saline).
  • APTT was measured by KC10A (Amelung) connected to CR-A (Amelung).
  • TBSB 50 L of diluted antibody solution, 50 / i L of standard human plasma (Dade Behring) and APTT reagent
  • Factor X diluted to 1 g / mL with Coating buffer was dispensed into a Nunc-Immuno plate at 100 iL / well, and then incubated at 4 ° C for one hour. After washing three times with PBS (-) containing Tween w 20, the plate was blocked with a diluent buffer at room temperature for 2 hours.
  • antiserum of mouse diluted with diluent buffer or culture supernatant of hybridoma was added to the plate, and the plate was incubated at room temperature for 1 hour.
  • alkaline phosphatase-labeled goat anti-mouse IgG (H + L) diluted 1/2000 with a diluent buffer was added, and incubated at room temperature for 1 hour.
  • 100 L / well of a chromogenic substrate 100 L / well of a chromogenic substrate, Blue-Phos TM Phosphate Substrate (Kirkegaad & Perry Laboratories) was added, and the plate was incubated at room temperature for 20 minutes.
  • Single-stranded cDNA was synthesized by RT-PCR using Superscript cDNA synthesis system (Invitrogen) according to the method described in the instruction manual.
  • PCR was performed using a thermal cycler, GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer), depending on the efficiency of amplification of the cDNA fragment.
  • Condition A After heating at 98 ° C for 3 minutes, 98 ° C for 20 seconds, 58 ° C 32 cycles of one cycle consisting of 20 seconds and 72 ° C for 30 seconds
  • Condition B After heating at 94 ° C for 3 minutes, then from 94 ° C for 20 seconds, 46 ° C for 20 seconds, and 68 ° C for 30 seconds
  • the reaction was performed under any of the following conditions: 5 cycles for one cycle, and 30 cycles for one cycle consisting of 94 ° C for 20 seconds, 58 ° C for 20 seconds, and 72 ° C for 30 seconds.
  • the reaction solution was subjected to 1% agarose gel electrophoresis. Amplified fragment of desired size (about 400 bp)
  • the following operation was performed to add a restriction site for cloning Sfi I to both ends of the amplified fragment of the antibody variable region.
  • PCR was performed under the condition A (heating at 98 ° C for 3 minutes, then at 98 ° C for 20 seconds, and at 58 ° C for 20 seconds) using the Thermocycler GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) according to the efficiency of fragment amplification.
  • the amplified fragment of the desired size (about 400 bp) was purified using the QIAtiuick Gel Extraction Kit (QIAGEN) according to the method described in the attached instruction manual, and eluted with 30 ⁇ L of sterile water.
  • VL mouse antibody L chain variable region
  • PCR was performed at 94 ° C for 3 minutes, then at 94 ° C for 20 seconds, at 46 ° C for 20 seconds, and at 68 ° C, according to the efficiency of fragment amplification using the ThermoCycler GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer).
  • the reaction was performed under the conditions of 5 cycles of a reaction composed of 30 seconds of C as one cycle, and 30 cycles of a reaction composed of 30 seconds of 94 ° C for 20 seconds, 58 ° C for 20 seconds and 72 ° C for 30 seconds.
  • the reaction solution was subjected to 1 agarose gel electrophoresis.
  • the amplified fragment of the target size (about 400 bp) was purified using the QIAaucick Gel Extractio Kit (QIAGEN) according to the method described in the attached instruction manual, and eluted with sterile water.
  • the fragment is in a state where (Gly4Ser) 3-linker arrangement ⁇ ! Derived from primer LF has been added to its C-terminal.
  • the (Gly4Ser) 3-linker sequence of primer LF was changed to a sequence (SEQ ID NO: 32) having a SiiI cleavage site (Primer-1 VL -3 'end).
  • Sii I-VL Sii I cleavage site-added VL fragment
  • Sii I-VL Sii I-VL
  • 0.5 L of each IOM VL-3 'end primer mixture and 10 xM scback primers to a 20 L reaction solution (purified VL cDNA amplification).
  • Fragment solution IL, KOD plus buffer (Toyobo), 0.2 ⁇ dNTPs, 1.5 mM MgCl 2 , 0.5 units DNA polymerase KODplus (Toyobo) were prepared.
  • PCR was performed using a Thermocycler GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) at 94 ° C for 3 minutes, followed by a reaction consisting of 94 ° C for 20 seconds, 46 ° C for 20 seconds, and 68 ° C for 30 seconds. The reaction was performed under the conditions of 5 cycles as a cycle, and 30 cycles of a reaction consisting of 94 ° C for 20 seconds, 58 DC for 20 seconds and 72 ° C for 30 seconds. After PCR, the reaction solution was subjected to 1% agarose gel electrophoresis. The amplified fragment of the target size (about 400 bp) was purified using the QIAQuick Gel Extraction Kit (QIAGEN) according to the method described in the attached instruction manual, and eluted with 30 L of sterile water.
  • QIAQuick Gel Extraction Kit QIAQuick Gel Extraction Kit
  • a reaction solution was prepared with Sii I (Yukara Bio) according to the method described in the attached instruction manual, and digested at 50 ° C overnight. Thereafter, the reaction solution was purified using the QIAquick PCR Purification Kit (QIAGEN) according to the method described in the attached instruction manual, and eluted with Buffer EB attached to the kit. 7-4. Plasmid for expressing human IgG4-mouse chimeric bispecific IgG antibody When producing the desired bispecific IgG antibody, the knobs of IgGl are used to form each H chain heteromolecule. -Amino acid substitution to the CH3 part of IgG4 was prepared with reference to holes technology (Ridgway et al., Protein Eng. 1996; 9: 617-621). 'Type a
  • IgG4 r a is a substitution of Y349 T366W
  • type b is a substitution of E356C, T366S-, L368A, Y407V.
  • a substitution (-ppcpScp--> -ppcpPcp-) was introduced into the hinge region of both substitutions.
  • This technology can be almost heterologous, but not limited to the L chain, and the generation of unnecessary antibody molecules may affect subsequent activity measurements. Therefore, in this strategy, one arm of each specific antibody molecule (referred to as HL molecule) is separately expressed, and corresponding to each HL molecule in order to efficiently produce the target bispecific IgG antibody in cells.
  • the expression vectors used were those induced by different drugs.
  • the corresponding region of each of the H chain or L chain (Fig. 1 or Fig. 2) to tetracycline-inducible vector pcDNA4 (Invitrogen), ie, animal cell Signal sequence for IL3ss (Pro Nat l.
  • pcDNA4-g4H was digested with restriction sites Eco RV and Not I (Yukara Bio) at the multiple cloning site. After digesting the right arm H-chain or L-chain expression unit (approximately 1.6 kb to approximately 1.
  • the other arm (referred to as the left arm HL molecule for convenience) is linked to an ecdysone analog-inducible vector, pIND (Invitrogen), for each of the H and L chains ( Figures 2 and 3), ie, the signal sequence for animal cells ( An appropriate mouse antibody variable region (VH or VL) and a human IgG4rb constant region (SEQ ID NO: 35) or a ⁇ constant region (SEQ ID NO: 34) are incorporated downstream of IL3ss) (EMBO. J. 1987; 6: 2939). (PIND-g4H to pIND-g4L) were prepared according to the method described above, and each plasmid DNA was isolated.
  • the tetracycline-inducible expression plasmid (PCDNA4-g4H or PCDNA4-g4L) prepared in 7-4 was digested with SiiI, and the reaction solution was subjected to 1% agarose gel electrophoresis. Purify the fragment (about 5 kb) from which the original antibody variable region (VH or VL (see Figures 1 and 2)) has been removed using the QIAduick Gel Extraction Kit (QIAGEN) as described in the attached manual And eluted with 30 L of sterile water.
  • the Sfi I-VH or Sii I-VL fragment derived from the Sfi I digested anti-F.IXa antibody prepared in 7-3 corresponding to each fragment was attached using the Quick Ligation Kit (New England Biolabs). The ligation reaction was performed according to the method described in the manual. Escherichia coli DH5 strain (Competent high DH5a (Toyobo)) was transformed with the reaction solution. From the Sii I digested ecdysone analog-inducible expression plasmid (pIND-g4H or pIND-g4L) prepared in 7-4, the antibody variable region (VH to VL (Fig. (See Fig. 3) The fragments excluding) and the corresponding Sfi I-derived Sii I-digested anti-FX antibody prepared in 7-3 VH or Sii I-VL fragments were incorporated in a similar manner.
  • insertion of the target fragment was confirmed by colony PCR using a primer that sandwiched the insert fragment.
  • a two-mer primer CMVF SEQ ID NO: 36
  • BGHR SEQ ID NO: 37
  • the hair upstream of the insertion site is lost 24-111 ⁇ 2]: the primer ( ⁇ (SEQ ID NO: 38)) and the BGH existing downstream of the insertion site Synthesized 18-mer primer BGHR (SEQ ID NO: 37) that anneals to the reverse priming site (Sigma Genosys)
  • ⁇ SEQ ID NO: 38
  • BGHR SEQ ID NO: 37
  • PCR was performed PCR was performed using Thermal Cycler GeneAmp PCR system 9700 After heating at 96 ° C for 1 minute using (Parkin Elmer), the reaction was performed under the conditions of 30 cycles of 96 ° C for 10 seconds, 55 ° C for 10 seconds, and 72
  • the reaction solution is subjected to 1% agarose gel electrophoresis, and the amplified fragment of the desired size is The resulting clones were selected, and the PCR product was inactivated with excess primer and dNTPs using ExoSAP-IT (Amersham Biosciences) according to the attached instructions.
  • ExoSAP-IT Amersham Biosciences
  • the DNA sequencer was determined using the ABI PRISM 3100 Genetic Analyzer (Applied Biosystems) according to the method described in the attached manual. Analyze with RC Version 6.1 (Genetyx) and find the target clones that do not contain the insertion / deletion mutation etc. for VH, and the insertion / deletion mutation etc.
  • the target clone which did not enter was selected. Plasmid DNA was isolated from the target clone using QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN) and dissolved in 100 / xL sterile water.
  • PCDNA4-g4IXa3 ⁇ 4i, pcDNA4-g4IXaLn, pIND-g4XHn and pIND-g4XLn were used at 218.8 ng each, and pcDNA6 / TR and pVgRXR at 1312.5 ng each.
  • Goat affinity purified antibody to human IgG Fc was prepared at lg / mL using a coating buffer and immobilized on a Nunc-Immuno plate. After blocking treatment with Diluent buffer (DB), a culture supernatant sample appropriately diluted using DB was added.
  • human IgG4 humanized anti-TF antibody, see TO 99/51743
  • DB Diluent buffer
  • Goat anti-human IgG and alkaline phosphatase Biosource International
  • Sigma 104 (R) phosphatase substrate (Sigma-Aldrich) was used as a substrate.
  • the sample was colored, and the absorbance at 405 nm was measured using an absorbance reader Model 3550 (Bio-Rad Laboratories) with a reference wavelength of 655 nm.
  • the concentration of human IgG in the culture supernatant was calculated from the standard calibration curve.
  • TBSB-S TBSB containing 5 xL, 5 mM CaCl 2 and 1 MgCl 2
  • F. Villa-like activity was expressed as a value obtained by subtracting the change in absorbance for 30 minutes without addition of the antibody from the change in absorbance for 30 minutes after addition of the antibody (see FIGS. 4 and 5).
  • TBSB was used as the Phospholipid solvent
  • TBSB-S was used as the Factor XIa Factor IX and Factor X solvents.
  • the chromogenic substrate solution is a 1: 1 mixture of test team chromogenic substrate S-2222 (Chromogenix) and polybrene solution (0.6 mg / L hexadimethrine 'bromide (Sigma)) dissolved according to the attached instructions.
  • a bispecific antibody having a function of substituting a ligand function for a receptor containing a heteromolecule is provided.
  • the present invention provides a bispecific antibody that recognizes both an enzyme and a substrate of the enzyme, and that substitutes for a function of a cofactor that enhances enzyme activity.
  • the bispecific antibody of the present invention has high stability in blood and is considered to be low in origin, and is therefore expected to be a pharmaceutical.

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Abstract

AR1鎖,AR2鎖の二種の分子から成るI型インターフェロン受容体に対するリガンド機能代替二種特異性抗体の分離に成功した。また、血液凝固第IX因子/活性化血液凝固第IX因子及び血液凝固第X因子の双方に結合し、酵素反応を増強させる血液凝固第VIII因子/活性化血液凝固第VIII因子の作用を代替する二種特異性抗体を作製することに成功した。

Description

明細書 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体 技術分野
本発明は、 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体に関する。 詳しくはへテロ受 容体に対するリガンドの機能を代替する二種特異性抗体、 酵素反応を増強する補 因子の作用を代替する二種特異性抗体、 および該抗体を有効成分として含有する 医薬組成物に関する。 背景技術
抗体は血中での安定性が高く、 抗原性も低いこと力 ^ら医薬品として注目されて いる。 その中には二種類の抗原を同時に認識できる二種特異性抗体がある。 二種 特異性抗体は提唱されて久しい。 しかしながらこれまでに、 NK細胞、 マクロフ ァージ、 T細胞の retarget ingを目的とするなど、 二種類の抗原を単に繋ぐだけ の抗体しか報告されていない （非特許文献 8参照） 。 例えば、 臨床試験が行なわ れている MDX- 210は、 Fc rRIを発現している monocyte等を HER- 2/neuを発現し ている癌細胞に retarget ingする二種特異性抗体であるに過ぎない。 従って現在 まで、 二種特異性抗体を生体内で機能する蛋白質の代替手段として利用した例は なかった。
生体内で機能する蛋白質の 1つとして、 受容体に対するリガンドが挙げられる。 これらのリガンドとしては、 インターロイキン （IL) -2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 15、 エリスロポエチン （EP0) 、 成長ホルモン （GH) 、 顆粒球コロ 二一刺激因子 （G- CSF) 、 トロンボポェチン （TP0) 、 顆粒球マクロファージコロ 二一刺激因子 （GM- CSF) 、 マクロファージコロニ一刺激因子 （M-CSF) 、 インタ —フエロン （IFN- a、 IFN- /3、 IFN-ァなど） 、 毛様体神経向性因子 （CNTF) 、 白血病抑制因子 （LIF) 、 Oncostat in M, カルジォトロピン - 1 (CT- 1)、 腫瘍壊死 因子 （TNF) などが挙げられる。
これらの受容体では、 リガンドが結合することによって、 二量体あるいは数量 体を形成する受容体分子の距離 ·角度に変化が生じ、 細胞内にシグナルを伝え得 ると考えられている。 つまり適切な抗受容体抗体は、 リガンドによる受容体の二 量体化もしくは数量体化を模倣できる抗体となりうる。
既にホモ二量体から成る TP0受容体 （MPL) (特許文献 1および非特許文献 1 参照） 、 EP0受容体、 GH受容体に対してリガンド代替作用を示すモノクローナル 抗体が報告されている。 これらの抗体はそれぞれ、 血小板減少時の血小板数回復 作用、 貧血時における赤血球増多作用、 あるいは低身長症の成長促進作用を示す と考えられ、 医薬への応用が期待されている。 .
しかしながら、 ヘテロ二量体を形成する受容体の場合は、 二種あるいは数種の 受容体分子の複合体を形成させる必要があるため、 一般的な抗体ではリガンド機 能の代替を期待できない。 この目的には二種類の受容体分子を二本の腕でそれぞ れ認識出来る上記の二種特異性抗体が適すると考えられるが、 報告例は未だなか つた。
また、 生体内で機能する蛋白質の 1つとして、 補因子 （coiactor) が挙げられ る。.補因子としては、 例えば、 組織因子 （TF) 、 血液凝固第 V因子 （F. V) 、 活 性化血液凝固第 V因子 （F. Va) 、 血液凝固第 VIII因子 （F. VIII) 、 活性化血液 凝固第 VIII因子 （F. Villa) 、 トロンポモデュリン （TM) 、 プロテイン S (PS) 、 プロテイン Z (PZ)、 へパリン、 補体 C4b、 補体制御タンパク H因子 （Complement Regulatory Factor H) 、 Membrane Coiactor Protein (MCP) 、 Complement Receptor 1 (CRD 等が挙げられる。
これらのうち、 F. Vin/F. Villaは、 十分な F. IXaの活性発現に必要な補因子で ある。 Scheiil inger Fらは、 ある種の抗 F. IX/F. IXa抗体に、 chromogenic assay において F. IXaによる F. X活性化を促進する作用があることを見出している （特許 文献 2参照） 。 しかしながら、 F. VIII欠乏血漿の凝固回復能測定においては、 こ の抗体単独による凝固回復能は示されておらず、 外来的に F. IXaを添加した状態 でのみ凝固回復能を示している。
VIIIaは、 F. IXaと相互作用するだけでなく F.Xとも相互作用することが知ら れている （非特許文献 6および 7参照） 。 この点で、 Scheiilinger Fらの抗体は、 F.VIII/F. Villaの機能を十分に代替しているといえず、 その活性も不十分である と推測される。
本発明者らは、 鋭意研究の結果、 機能蛋白質の作用を代替する二種特異性抗体 の作製に成功し、 本発明に至った。
(特許文献 1) 米国特許出願公開第 98/17364号明細書
(特許文献 2) 国際公開第 01/19992号
(特許文献 3) 米国特許第 4, 474， 893号公報
(特許文献 4) EP404, 097号
(特許文献 5) 国際公開第 93/U161号
(特許文献 6) 特願 2002- 112369号公報
(特許文献 7) 特願 2003- G12648号公報
(特許文献 8) 特開平 5-304992号公報
(特許文献 9) 特開平 2-145187号公報
(特許文献 10) 特開平 5- 213775号公報
(特許文献 11) 特開平 10-165184号公報
(特許文献 12) 特開平 11- 71288号公報
(特許文献 13) 特表 2002- 518041号公報
(特許文献 14) 特表平 11-5G631Q号公報
(特許文献 15) 特開平 5- 199894号公報
(特許文献 16) 特表平 1G- 511G85号公報 (特許文献 1 7 ) 特開平 5-184383号公報
(非特許文献 1 ) Deng D ら著、 「Blood」 、 1998年、 Vol. 92、 No. 6、 • p. 1981-1988
(非特許文献 2 ) Nilsson IM ら著、 「J. Intern. Med.」 、 1992年、
Vol. 235、 p. 25-32
(非特許文献 3 ) Lofqvist T ら著、 Γ Intern. Med. j 、 1997年、
Vol. 241、 p. 395-400
(非特許文献 4 ) 第 24回日本血栓止血学会学術集会 学術専門部会血友病標 準化検討部会 ミニシンポジウム、 2001年、 http : //ww. ,isth. org
(非特許文献 5 ) Medical Bulletin #193 1994
(非特許文献 6 ) Mertens K ら著、 「Thromb. Haemost. J 、 1999年、 Vol. 82、 p. 209-217
(非特許文献 7 ) Lapan KA ら著、 「Thromb. Haemost. j 、 1998年、 Vol. 80、 p. 418-422
(非特許文献 8 ) Segal DM ら著、 「Journal of Immunological Methods J ' ,
2001年、 Vol. 248、 p. 1-6
(非特許文献 9 ) Bos Rおよび Nieuwenhuitzen W著、 「Hybridoma」 、 1992 年、 Vol. 11、 No. 1、 p. 41-51
(非特許ズ献 1 0 ) Brennan M ら著、 「Science」 、 1985年、 Vol. 229、 No. 1708、 p. 81-3
(非特許文献 1 1 ) Karpovsky B ら著、 「J. Exp. Med.」 、 1984年、
Vol. 160、 No. 6、 p. 1686-701
(非特許文献 1 2 ) Suresh MR ら著、 「Methods Enzymol. J 、 1986年、 Vol. 121、 p. 210-28
(非特許文献 1 3 ) Massimo YS ら著、 「J. Immunol. Methods」 、 1997年、
Vol. 201、 p. 57-66 W 一 5 -
(非特許文献 14) Brennan M ら著、 「Science」 、 1985年、 Vol.229、 p.
81
(非特許文献 15) Shalaby M ら著、 「J. Exp. Med.」 、 1992年、 Vol.175、 p.217-25
(非特許文献 16) Hol liner P ら著、 「Proc. Natl. Acad. Sci. USAj 、
1993年、 Vol.90、 p. 6444-8 '
(非特許文献 17) Ridgway JB ら著、 「Protein Eng. J 、 1996年、 Vol.9、 p. 617-21
(非特許文献 18) Ha職 erling U ら著、 rj. Exp. Med.」 、 1968年、 Vol.128、 p.1461-73
(非特許文献 19) Kurokawa T ら著、 「Bio/Teclmology」 、 1989年、 Vol.7、 p.1163
(非特許文献 20) Link BK ら著、 「Blood」 、 1993年'、 Vol.81、 .3343 (非特許文献 21) Nitta T ら著、 rLancetJ 、 1990年、 Vol.335, p.368- 71
(非特許文献 22) deLeij L ら著、 「Foundation Nationale de
Transfusion Sanguine, Les Ulis FranceJ 、 1990年、 p.249-53
(非特許文献 23) Le Doussal JM ら著、 「J. Nucl. Med.」 、 1993年、 Vol.34、 p. 1662-71
(非特許文献 24) Stickney DR ら著、 「Cancer Res.」 、 1991年、 Vol.51、 p.6650-5
(非特許文献 25) einer LM ら著、 「Cancer Res. J 、 1993年、 Vol.53、 p.94-100
(非特許文献 26) Kroesen BJ ら著、 「Br. J. Cancerj 、 1994年、 Vol.70、 p.652-61
(非特許文献 27) Weiner GJら著、 「L Immunol. J 、 1994年、 Vol.152、 p. 2385
(非特許文献 2 8 ) Suresh MR ら著、 「Proc. Nat l. Acad. Sci. USAJ 、 1986年、 Vol. 83、 p. 7989-93
(非特許文献 2 9 ) Mi lstein C および Cuel lo AC著、 「Nature」 、 1983年、 Vol. 305、 p. 537
(非特許文献 3 0 ) Xiang J ら著、 「Mol. Immunol. J 、 1990年、 Vol. 27、 p. 809
(非特許文献 3 1 ) Bebbington CR ら著、 ΓΒΐο/Technologyj 、 1992年、 Vol. 10、 p. 169
(非特許文献 3 2 ) Huse WD ら著、 「Science」 、 1989年、 Vol. 246、 p. 1275
(非特許文献 3 3 ) McCaf ierty J ら著、 「Naturej 、 1990年、 Vol. 348、 p. 552
(非特許文献 3 4 ) Kang AS ら著、 HProc. Nat l. Acad. Sci. USAJ 、 1991 年、 Vol. 88、 p. 4363 発明の開示
本発明は、 機能蛋白質の作用を代替する二種特異性抗体の提供を課題とする。 より詳しくは、 ヘテロ受容体分子を含む受容体に対するリガンド機能を代替する 二種特異性抗体、 および酵素反応を増強する補因子の機能を代替する二種特異性 抗体の提供を課題とする。
本発明者らは鋭意研究を行った結果、 mm, AM鎖の二種の分子から成る I型ィ ンターフェロン受容体に対するリガンド機能代替抗体の分離に成功した。 即ち本 発明者らは、 ヘテロ分子からなる受容体に対してリガンド機能代替作用を有する 二種特異性抗体を初めて分離することに成功した。
さらに本発明者らは鋭意研究を行った結果、 F. IX/F. IXa及び R Xの双方に特異 的に結合し、 F. Villaの補因子作用、 すなわち F. 1 による F. X活性化を促進する 作用を代替する二種特異性抗体を見出すことに成功した。 即ち、 本発明者らは、 酵素および該酵素の基質の両者を認識し、 該酵素の補因子の機能を代替し得る二 種特異性抗体の作製に成功した
上記へテロ分子からなる受容体のリガンド蛋白質、 および上記酵素補因子は共 に、 機能蛋白質であることから、 本発明者らによって初めて、 機能蛋白質の代替 機能を有する二種特異性抗体が実際に開発されたものと言える。
即ち本発明は、 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体に関する。 より詳しくは、 ヘテロ分子を含む受容体に対してリガンド機能代替作用を有する二種特異性抗体、 および酵素反応を増強する補因子の機能を代替する二種特異性抗体に関し、 より 具体的には、 .
〔 1〕 機能蛋白質の作用を代替する二種特異性抗体、
〔2〕 ヘテロ分子を含む受容体に対してリガンド機能代替活性を有する二種特 異性抗体、
〔3〕 ヘテロ分子を含む受容体が二量体である 〔2〕 に記載の抗体、
〔4〕 受容体がサイト力イン受容体である 〔2〕 に記載の抗体、
〔5〕 サイト力イン受容体がインターフェロン受容体である 〔4〕 に記載の抗 体、
〔6〕 インターフェロン受容体が I型インターフェロン受容体である 〔5〕 に 記載の抗体、
〔 7〕 I型インターフエ口ン受容体が AR1鎖及び M2鎖を含んでいることを特徴 とする 〔6〕 に記載の抗体、
〔8〕 I型インタ一フエロン受容体のリガンドであるインターフェロンの機能 を代替する作用を有する、 〔7〕 に記載の抗体、
〔9〕 抗 AR1鎖抗体の可変領域と、 抗 AR2鎖抗体の可変領域とを含む、 〔8〕 に 記載の抗体、 〕 抗 ARl鎖抗体における下記 （a) のアミノ酸配列からなる可変領域と、 抗 AR2鎖抗体における下記 （b l) 〜 （b l O) のいずれかに記載のアミ ノ酸配列からなる可変領域とを含む、 〔9〕 に記載の抗体、
(a) H鎖可変領域が配列番号： 1に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 2に記載のアミノ酸配列
(b l) H鎖可変領域が配列番号： 7に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 8に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖可変領域が配列番号： 9に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 10に記載のアミノ酸配列
(b 3) H鎖可変領域が配列番号： 19に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 20に記載のァミノ酸配列
(b4) H鎖可変領域が配列番号： 13に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 14に記載のアミノ酸配列
(b 5) H鎖可変領域が配列番号： 23に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 24に記載のアミノ酸配列
(b 6) H鎖可変領域が配列番号： 5に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 6に記載のアミノ酸配列
(b 7) H鎖可変領域が配列番号： 17に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 18に記載のアミノ酸配列
(b 8) H鎖可変領域が配列番号： 15に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 16に記載のアミノ酸配列
(b 9) H鎖可変領域が配列番号： 21に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 22に記載のアミノ酸配列
(b 10) H鎖可変領域が配列番号： 1 1に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： .12に記載のアミノ酸配列 〔1 1〕 抗 ARl鎖抗体における下記 ) のアミノ酸配列からなる可変領域と、 抗 AR2鎖抗体における下記 （b l) 〜 （b 3) のいずれかに記載のアミ ノ酸配列からなる可変領域とを含む、 〔9〕 に記載の抗体、
(a) H鎖可変領域が配列番号： 3に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 4に記載のァミノ酸配列
(b l) H鎖可変領域が配列番号： 25に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 26に記載のァミノ酸配列
(b 2) H鎖可変領域が配列番号： 9に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖可 変領域が配列番号： 1 0に記載のァミノ酸配列
(b 3) H鎖可変領域が配列番号： 21に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 22に記載のアミノ酸配列
〔1 2〕 〔2〕 〜 〔1 1〕 のいずれかに記載の抗体および薬学的に許容される 担体を含む組成物、
〔1 3〕 ウィルス性疾患、 悪性新生物、 免疫性疾患の予防および/または治療 に用いられる医薬組成物である、 〔12〕 に記載の組成物、
〔14〕 ウィルス性疾患が C型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進 展する疾患である、 〔13〕 に記載の組成物、
〔1 5〕 C型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展する疾患が、 急 性または慢性 C型肝炎、 肝硬変、 肝癌である、 〔14〕 に記載の組成物、 〔16〕 ウィルス性疾患が B型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進 展する疾患である、 〔1 3〕 に記載の組成物、
〔17〕 B型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展する疾患が、 急 性または慢性 B型肝炎、 肝硬変、 肝癌である、 〔1 6〕 に記載の組成物、 〔1 8〕 悪性新生物が、 慢性骨髄性白血病、 悪性黒色腫、 多発性骨髄腫、 腎癌、 膠芽腫、 髄芽腫、 ァストロサイトーマ、 ヘアリーセル白血病、 AIDS関連 力ポジ肉腫、 皮膚 T細胞リンパ腫、 非ホジキンリンパ腫である、 〔1
3〕 に記載の組成物、
〔1 9〕 免疫性疾患がとりわけ多発性硬化症である、 '〔1 3〕 に記載の組成物、 〔2 0〕 〔2〕 〜 〔1 1〕 のいずれかに記載の抗体、 または 〔1 2〕 〜 〔1
9〕 のいずれかに記載の組成物を投与する工程を含む、 ウィルス性疾患、 悪性新生物もしくは免疫性疾患を予防および/または治療する方法、 〔2 1〕 〔2〕 〜 〔1 1〕 のいずれかに記載の抗体の、 〔1 2〕 〜 〔1 9〕 の いずれかに記載した組成物の製造のための使用
〔2 2〕 少なくとも 〔2〕 〜 〔1 1〕 のいずれかに記載の抗体、 または 〔1
2〕 に記載の組成物を含む、 〔2 0〕 に記載の予防および/または治療 する方法に用いるためのキット、
〔2 3〕 酵素、 および該酵素の基質の両方を認識する抗体であって、 酵素反応 を増強する補因子の機能を代替する二種特異性抗体、
〔2 4〕 酵素が蛋白質分解酵素である、 〔2 3〕 に記載の抗体、
〔2 5〕 蛋白質分解酵素、 基質ならびに補因子が血液凝固線溶関連因子である、
〔2 4〕 に記載の抗体、
〔2 6〕 血液凝固線溶関連因子の酵素が血液凝固第 IX因子および/または活性 化血液凝固第 IX因子で、 基質が血液凝固第 X因子で、 補因子が血液凝固 第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子である、 〔2 5〕 . に記載の抗体、
〔2 7〕 抗血液凝固第 IX/IXa因子抗体における下記 （a l ) もしくは （a 2 ) の CDR3のアミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に同 等の相補性決定領域と、 抗血液凝固第 X因子抗体における下記 （b l ) 〜 （b 9 ) のいずれかに記載の CDR3のアミノ酸配列からなる相補性決定 領域またはこれと機能的に同等の相補性決定領域とを含む、 〔2 3〕 〜 〔 2 6〕 のいずれかに記載の抗体、 (a 1) H鎖 CDR 3が配列番号： 42に -記載のアミノ酸配列
(a 2) H鎖 CDR 3が配列番号： 46に記載のアミノ酸配列
(b 1) H鎖 CD R 3が配列番号： 50に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖 CD R 3が配列番号： 54に記載のアミノ酸配列
(b 3) H鎖 CD R 3が配列番号： 58に記載のアミノ酸配列
(b 4) H鎖 CD R 3が配列番号： 62に記載のアミノ酸配列
(b 5) H鎖 CD R 3が配列番号： 66に記載のアミノ酸配列
(b 6') H鎖 CD R 3が配列番号： 70に記載のアミノ酸配列
(b 7) H鎖 CD R 3が配列番号： 74に記載のアミノ酸配列
(b 8) H鎖 CD R 3が配列番号： 78に記載のアミノ酸配列
(b 9) H鎖 CD R 3が配列番号： 82に記載のアミノ酸配列
〕 抗血液凝固第 IX/IXa因子抗体における下記 （a l) もしくは （a 2) の C D Rのァミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に 同等の相補性決定領域と、 抗血液凝固第 X因子抗体における下記 （b 1) 〜 （b 9) のいずれかに記載の CDRのアミノ酸配列からなる相補 性決定領域またはこれと機能的に同等の相補性決定領域とを含む、 〔2 3〕 〜 〔26〕 のいずれかに記載の抗体、
(a 1) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号 : 40, 41, 42に記載のアミノ酸配列
(a 2) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： ： 44, 45, 46に記載のアミノ酸配列
(b 1) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： : 48, 49, 50に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： ： 52, 53, 54に記載のアミノ酸配列
(b 3) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： ： 56, 57, 58に記載のアミノ酸配列
(b4) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： ： 60, 61, 62に記載のアミノ酸配列
(b 5) H鎖 CMl, 2, 3が配列番号： ： 64, 65, 66に記載のアミノ酸配列
(b 6) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： 68, 69, 70に記載のアミノ酸配列
(b 7) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： 72, 73, 74に記載のアミノ酸配列 (b 8 ) H鎖 CDM, 1, 3が配列番号： 76, 77, 78に記載のアミノ酸配列 (b 9 ) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 80, 81, 82に記載のアミノ酸配列 〔2 9〕 〔2 3〕 〜 〔2 8〕 のいずれかに記載の抗体および薬学的に許容され る担体を含む組成物、
〔3 0〕 出血、 出血を う疾患、 もしくは出血に起因する疾患の予防および/ または治療に用いられる医薬組成物である、 〔2 9〕 に記載の組成物、 〔3 1〕 出血、 出血を伴う疾患、 もしくは出血に起因する疾患が、 血液凝固第 VI I I因子および/または活性化血液凝固第 VII I因子の活性の低下ないし 欠損によって発症および/または進展する疾患である、 〔3 0〕 に記載 の組成物、
〔3 2〕 血液凝固第 ΉΠ因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性 の低下ないし欠損によって発症および/または進展する疾患が、 血友病 A である、 〔3 1〕 に記載の組成物、
〔3 3〕 血液凝固第 VI II因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性 の低下ないし欠損によって発症および/または進展する疾患が、 血液 固第 VI I I因子および/または活性化血液凝固第 VI II因子に対するインヒ ビタ一が出現している疾患である、 〔3 1〕 に記載の組成物、 〔3 4〕 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VII I因子の活性 の低下ないし欠損によって発症および/または進展する疾患が、 後天性 血友病である、 〔3 1〕 に記載の組成物、
〔3 5〕 血液凝固第 VI II因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性 の低下によつて発症および/または進展する疾患が、 フォンビルブラン ド病である、 〔3 1〕 に記載の組成物、
〔3 6〕 〔2 3〕 〜 〔2 8〕 のいずれかに記載の抗体、 または 〔2 9〕 〜 〔3 5〕 のいずれかに記載の組成物を投与する工程を含む、 出血、 出血を伴 う疾患、 もしくは出血に起因する疾患を予防および/または治療する方
I 法、
〔3 7〕 〔2 3〕 〜 〔2 8〕 のいずれかに記載の抗体の、 〔2 9〕 〜 〔3 5〕 のいずれかに記載した組成物の製造のための使用、
〔3 8〕 少なくとも 〔2 3〕 〜 〔2 8〕 のいずれかに記載の抗体、 または 〔2 9〕 に記載の組成物を含む、 〔3 6〕 に記載の予防および/または治療 する方法に用いるためのキット、
を提供するものである。
本発明における二種特異性抗体 （bi spec i i ic抗体） は、 異なる抗原に対して特 異性を有する 2種類の抗体もしくは抗体断片からなる分子である。 二種特異性抗 体は特に制限されないが、 モノクローナルであることが好ましい。
本発明の二種特異性抗体は、 遺伝子組換 技術を用いて産生させた組換え型抗 体であることが好ましい。 （例えば、 Borrebaeck CAK and Larr ick JW, THERAPE UTIC MONOCLONAL ANTIBODIES, Publ i shed in the Uni ted Kingdom by MACMILLA PUBLISHERS LTD, 1990 参照） 。 組換え型抗体は、 それをコードする DNAをハイ プリドーマ、 または抗体を産生する感作リンパ球等の抗体産生細胞からクロー二 ングし、 適当なベクターに組み込んで、 これを宿主に導入し産生させることによ り得ることができる。
さらに、 本発明における抗体は、 その抗体断片や抗体修飾物であってよい。 抗 体断片としては、 ダイアポディ（diabody ; Db)、 線状抗体、 一本鎖抗体 （以下、 s cFvとも記載する） 分子などが含まれる。 ここで、 「Fv」 断片は最小の抗体断片 であり、 完全な抗原認識部位と結合部位を含む。 「Fv」 断片は 1つの重 （H) 鎖可 変領域 （VH) および軽 （L) 鎖可変領域 （VL) が非共有結合により強く連結され たダイマ一 （VH- VLダイマー） である。 各可変領域の 3つの相補鎖決定領域 （comp l ementari ty determining region； CDR) が相互作用し、 VH- VLダイマーの表面に 抗原結合部位を形成する。 6つの CDRが抗体に抗原結合部位を付与している。 しか しながら、 1つの可変領域 （または、 抗原に特異的な 3つの CDRのみを含む Fvの半 分） であっても、 全結合部位よりも親和性は低いが、 抗原を認識し、 結合する能 力を有する。
また、 Fab断片 （F (ab)とも呼ばれる） はさらに、 L鎖の定常領域および H鎖の定 常領域 （CH1) を含む。 Fab'断片は、 体のヒンジ領域からの 1またはそれ以上の システィンを含む H鎖 CH1領域のカルポキシ末端由来の数残基を付加的に有する点 で Fab断片と異なっている。 Fab' - SHとは、 定常領域の 1またはそれ以上のシステ イン残基が遊離のチオール基を有する Fab'を示すものである。 F (a )断片は、 F (ab' ) 2ぺプシン消化物のヒンジ部のシスティンにおけるジスルフィド結合の切断 により製造される。 化学的に結合されたその他の抗体断片も当業者には知られて いる。
ダイアポディは、 遺伝子融合により構築された二価 (bivalent)の抗体断片を指 す (Hol l iger P et al. , Proc. Nat l. Acad. Sci. USA 90 : 6444-6448 (1993)、 EP404, 097号、 W093/11161号等)。 ダイアポディは、 2本のポリペプチド鎖から構成され るダイマ一であり、 ポリペプチド鎖は各々、 同じ鎖中で L鎖可変領域 (VL)及び H鎖 可変領域 (VH)が、 互いに結合できない位に短い、 例えば、 5残基程度のリンカ一 により結合されている。 同一ポリペプチド鎖上にコードされる と VHとは、 その 間のリンカーが短いため単鎖可変領域フラグメントを形成することが出来ず二量 体を形成するため、 ダイアポディは 2つの抗原結合部位を有することとなる。
一本鎖抗体または scFv抗体断片には、 抗体の VHおよび 領域が含まれ、 これら の領域は単一のポリペプチド鎖中に存在する。 一般に、 Fvポリペプチドはさらに および VL領域の間にポリべプチドリンカ一を含んでおり、 これにより scFvは、 抗原結合のために必要な構造を形成することができる （scFvの総説については、 Pluckthun 『The Pharmacology of Monoclonal Ant ibodies』 Vol. 113 (Rosenburg and Moore ed (Springer Verlag, New. York) pp. 269-315, 1994) を参照） 。 本 発明におけるリンカ一は、 その両端に連結された抗体可変領域の発現を阻害する ものでなければ特に限定されない。 ' IgGタイプ二種特異性抗体は IgG抗体を産生するハイプリドーマ二種を融合する ことによって生じる hybrid ybridoma (auadroma)によって分泌させることが出来 る (Milstein C et al. Nature 1983, 305: 537-540) 。 また目的の二種の IgGを 構成する L鎖及び H鎖の遺伝子、 合計 4種の遺伝子を細胞に導入することによって 共発現させることによって分泌させることが出来る。 この際 H鎖の CH3領域に適当 なァミノ酸置換を施すことによつて H鎖についてへテ口な組合せの IgGを優先的に 分泌させることも出来る (Ridgway JB et al. Protein Engineering 1996, 9: 6 17-621、 Merchant AM et al. Nature Biotechnology 1998, 16: 677-681) 。
Fab' を化学的に架橋することによつても二種特異性抗体を作製し得る。 例え ば一方の抗体から調製した Fal)' を ^ PDM( // i^phenylenedi- maleimide)にてマ レイミドィ匕し、 これともう一方の抗体から調製した Fal)' を反応させることによ り、 異なる抗体由来 Fab' 同士を架橋させ二種特異性 F(ab' )2を作製すること が出来る (Keler T et al. Cancer Research 1997, 57: 4008-4014) 。 また Fab' -チォニトロ安息香酸 (TNB)誘導体と Fab' -チオール (SH)等の抗体断片を化 学的に結合する方法も知られている （Breiman M et al. Science 1985, 229: 81-83) 。
化学架橋の代りに Fos， Junなどに由来するロイシンジッパーを用いることも 出来る。 Fos, ； Timはホモダイマーも形成するが、 ヘテロダイマーを優先的に形 成することを利用する。 Fosロイシンジッパーを付加した Fab' と； funのそれを 付加したもう一方の Fab' を発現調製する。 温和な条件で還元した単量体 Fab' ― Fos, Fab' -Jimを混合し反応させることによって二種特異性 F(ab' )2が形成で きる （Kostelny SA eta al. J of Immunology, 1992, 148: 1547-53) 。 この方 法は Fab' には限定されず、 scFv, Fvなどにおいても応用可能である。
ダイアポディにおいても二種特異性抗体を作製し得る。 二種特異性ダイァボデ ィは二つの cross- over scFv断片のへテロダイマーである。 つまり二種の抗体 A, B由来の VHと V,.を 5残基前後の比較的短いリンカーで結ぶことによって作製 された VH (A) -VL (B) , V„ (B) -VL (A)を用いてへテロダイマーを構成することによつ て出来る (Hol l iger P et al. Proc of the Nat ional Academy of Sciences of the USA 1993, 90 : 6444-6448) 。
この際、 二種の scFvを 15残基程度の柔軟な比較的長いリンカーで結ぶ (一本 鎖ダイアポディ ：Kipriyanov SM et al. J οί Molecular Biology. 1999, 293 : 41 - 56)、 適当なアミノ酸置換 (knobs - into-holes : Zhu Z et al. Protein
Sc ience. 1997, 6 : 781-788)を行うことによって目的の構成を促進させることも 出来る。
二種の scFvを 15残基程度の柔軟な比較的長いリンカ一で結ぶことによって作 製できる sc (Fv) 2も二種特異性抗体となり得る （Mal lender WD et al. J of Biological Chemistry, 1994, 269 : 199-206) 。
抗体修飾物としては、 例えば、 ポリエチレングリコール （PEG) 等の各種分子 と結合した抗体を挙げることができる。 本発明の抗体修飾物においては、 結合さ れる物質は限定されない。 このような抗体修飾物を得るには、 得られた抗体に化 学的な修飾を施すことによって得ることができる。 これらの方法はこの分野にお いて Kに確立されている。
本発明の抗体は、 ヒト抗体、 マウス抗体、 ラット抗体など、 その由来は限定さ れない。 またキメラ抗体ゃヒト化抗体などの遺伝子改変抗体でもよい。
ヒト抗体の取得方法は既に知られており、 例えば、 ヒト抗体遺伝子の全てのレ パートリ一を有するトランスジエニック動物を目的の抗原で免疫することで目的 のヒト抗体を取得することができる （国際特許出願公開番号 W0 93/12227, W0 92 /03918, W0 94/02602, W0 94/25585, W0 96/34096, W0 96/33735参照） 。
遺伝子改変抗体は、 既知の方法を用いて製造することができる。 具体的には、 たとえばキメラ抗体は、 免疫動物の抗体の H鎖、 および L鎖の可変領域と、 ヒト抗 体の H鎖および L鎖の定常領域からなる抗体である。 免疫動物由来の抗体の可変領 域をコードする DMを、 ヒト抗体の定常領域をコードする DNAと連結し、 これを発 現ベクターに組み込んで宿主に導入し産生させることによって、 キメラ抗体を得 ることができる。
ヒト化抗体は、 再構成 （reshaped) ヒト抗体とも称される改変抗体である。 ヒ ト化抗体は、 免疫動物由来の抗体の CDRを、 ヒト抗体の相補性決定領域へ移植す ることによって構築される。 その一般的な遺伝子組換え手法も知られている。 具体的には、 マウス抗体の CDRとヒト抗体のフレームワーク領域 （framework r egion； FR) を連結するように設計した DNA配列を、 末端部にオーバーラップする 部分を有するように作製した数個のォリゴヌクレオチドから PCR法により合成す る。 得られた MAを、 ヒト抗体定常領域をコードする MAと連結し、 次いで発現べ クタ一に組み込んで、 これを宿主に導入し産生させることにより得られる （欧州 特許出願公開番号 EP 239400, 国際特許出願公開番号 W0 96/02576参照） 。 CDRを 介して連結されるヒト抗体の FRは、 相補性決定領域が良好な抗原結合部位を形成 するものが選択される。 必要に応じ、 再構成ヒト抗体の相補性決定領域が適切な 抗原結合部位を形成するように抗体の可変領域におけるフレームワーク領域のァ ミノ酸を置換してもよい （Sato K et al, Cancer Research 1993, 53 : 851-85 6) 。 また、 様々なヒト抗体由来のフレームワーク領域に置換してもよい （国際 特許出願公開番号 W0 99/51743参照） 。
本発明は、 機能蛋白質の代替機能を有する二種特異性抗体、 より好ましくは機 能蛋白質の代替機能を有する二種特異性抗体を提供する。 本発明の抗体の好まし い態様としては、 ヘテロ分子を含む受容体に対してリガンド機能代替活性を有す る抗体である。
本発明においてへテロ分子を含む受容体とは、 受容体 （多量体） が異なる 2つ 以上の蛋白質 （受容体分子） で構成されているものをいう。 多量体は二量体、 三 量体、 四量体など、 その蛋白質 （受容体分子） 数により限定はされないが、 好ま しくは二量体である。 例えば、 受容体が二量体の場合には、 ヘテロ受容体は 2つ の構成蛋白質 （受容体分子） が同一でないことを表す。 リガンド機能代替活性を有する抗体とは、 ある受容体に対して、 ァゴニスト作 用を有する抗体を指す。 一般的に、 ァゴニストであるリガンドが受容体と結合す ると、 受容体蛋白質の立体構造が変化し、 受容体が活性化 （受容体が膜蛋白質で ある場合には、 通常、 細胞増殖などのシグナルを発する） される。 二量体を形成 するタイプの受容体である場合には、 リガンド機能代替抗体は適切な距離、 角度 で受容体を二量体化させることにより、 リガンドと同様の働きをすることができ る。 つまり、 適当な抗受容体抗体はリガンドにより受容体の二量体化を模倣でき、 リガンド機能代替抗体となり得る。
本発明の好ましい態様においては、 本発明の受容体としてサイトカインヘテロ 受容体を挙げることができる。
サイト力インは、 通常、 各種の血球細胞の増殖と分化を制御する生理活性蛋白 質の総称として用いられるが、 非免疫系細胞を含む細胞の増殖因子及び増殖抑制 因子を指すこともある。 従って、 サイト力インは細胞から放出され、 免疫、 炎症 反応の制御作用、 抗ウィルス作用、 抗腫瘍作用、 細胞増殖 ·分化の調節作用など 細胞間相互作用を媒介する蛋白質性因子の総称である。
本発明でいうへテロ受容体に作用するサイトカインの具体的な例としては、 IL-2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10, 11, 12, 13, 15、 コロニー刺激因子 （GM- CSFな ど） 、 インタ一フエロン （IFN- α、 i - β , IFN-ァなど） 、 CNTF、 LIF、
Oncostat in M、 CT- 1などを挙げることができるが、 好ましくはインターフエ口 ンであり、 特に好ましくは I型イン夕一フエロンである。
インターフェロンには IFN-ひ、 IFN- jS、 IFN-ァ、 IFN-てなどが含まれる。
IFN- ο;と IFN- /3は相同性が高い為、 これら 2つの IFNは同一のレセプ夕一を介し て反応することができる。 又、 IFN-ひ、 IFN - /3ならびに IFN -ては I型イン夕一 フエロンに分類される。
I型インターフェロン受容体の例として、 AR1鎖 （GenBank ACCESSION No ： J0317K 文献： Uze G et al. Cel l 1990, 60 : 225-34) および M2鎖 (GenBank ACCESSION No ： U2958 文献： Domanski P et al. J of Biological Chemistry 1995, 270 : 21606-11、 LutfaUa G et al. EMBO J 1995, 14 : 5100-8) を有する 受容体を挙げることができる。
本発明のリガンド機能代替二種特異性抗体を得る方法は特に制限されず、 どの ような方法で取得されてもよい。 例えば、 二種の受容体分子 （A鎖， B鎖） からな るへテロ受容体に対するリガンド機能代替二種特異性抗体を得る場合、 抗 A鎖抗 体及び抗 B鎖抗体を取得する。 その後、 抗 A鎖抗体の H鎖と L鎖及び抗 B鎖抗体の H鎖 と L鎖を含む二種特異性抗体を作製する。 ここで、 抗 A鎖抗体と抗 B鎖抗体はそれ ぞれ複数種得られていることが望ましく、 これらを用いてなるべく多くの組合せ の二種特異性抗体を作製することが好ましい。 二種特異性抗体を作製後、 リガン ド機能代替活性を有する抗体を選択する。 二種特異性抗体の作製は、 それぞれの 抗体産生ハイプリドーマ同士の融合、 もしくは抗体発現ベクターの細胞導入など、 公知の方法により行うことができる。
受容体に対する抗体は、 当業者に公知の方法により得ることができる。 例えば、 免疫動物に対して抗原を免疫することにより調製することができる。 動物を免疫 する抗原としては、 免疫原性を有する完全抗原と、 免疫原性を有さない不完全抗 原 （ハプテンを含む） が挙げられる。 本発明においては、 本発明のリガンド機能 代替抗体がリガンドとして作用すると考えられる受容体を、 上記抗原 （免疫原） として使用する。 本発明における上記受容体は特に制限されないが、 好ましくは ヘテロ二量体である。 免疫化する動物として、 例えば、 マウス、 ハムスター、 ま たはァカゲザル等を用いることができる。 これら動物に対して、 抗原を免疫化す ることは、 当業者においては、 周知の方法によって行うことができる。 本発明に おいて好ましくは、 免疫化された動物または該動物の細胞から抗体の L鎖および H鎖の可変領域の回収を行う。 この操作は、 当業者においては一般的に公知の技 術を用いて行うことができる。 抗原によって免疫化された動物は、 とりわけ脾臓 細胞において該抗原に対する抗体を発現する。 従って、 例えば、 免疫化された動 物の脾臓細胞から mRNAを調製し、 該動物の可変領域に対応するプライマーを用い て、 RT-PCRにより L鎖および H鎖の可変領域の回収を行うことができる。
詳細には、 動物に受容体の A鎖、 B鎖それぞれを免疫する。 免疫原とする受容体 は、 該受容体を構成する蛋白質全体、 もしくは該蛋白質の部分ペプチドであって もよい。 また、 動物を免疫するのに用いる免疫原としては、 場合により抗原とな るものを他の分子に結合させ可溶性抗原とすることも可能であり、 また、 場合に よりそれらの断片を用いてもよい。 受容体のような膜貫通分子を抗原として用い る場合、 これらの断片 (例えば、 受容体の細胞外領域）を用いるのが好ましい。 ま た、 膜貫通分子を細胞表面上に発現する細胞を免疫原とすることもできる。 この ような細胞は天然 （腫瘍セルライン等） 由来の細胞、 または、 組換え技術により 膜貫通分子を発現するように構成された細胞であってもよい。 この動物の脾細胞 から mRNAを抽出し、 可変領域付近に対応するプライマ一を用いて RT-PCRにて L鎖、 H鎖可変領域の cDNAを回収する。 CDRに対応するプライマー、 CDRよりも多様性の 低いフレームワークに対応するプライマー、 あるいはシグナル配列と CH1もしく は L鎖定常領域 （CL) に対応するプライマーを用いることができる。 また、 in vi troにおいてリンパ球を免疫化することもできる。 これを用いて sc'Fvもしくは Fabを提示するライブラリーを構築する。 パンニングによって抗原結合抗体クロ —ンを濃縮 ·クローン化し、 その可変領域を用いて抗体発現べクタ一を作製する。 抗 A鎖抗体発現べクタ一と抗 B鎖抗体発現べクターを同一の細胞に導入し、 抗体を 発現させることにより二種特異性抗体を得ることができる。 この際、 ヒトゃ免疫 していない動物の末梢血単核球、 脾齓 扁桃腺などに由来する mRNAを材料とする 同様のライブラリ一を用いてスクリーニングを行うことも可能である。
リガンド機能代替活性を有する抗体の選択は、 例えば、 以下のような方法によ り行うことができる。
( 1 ) リガンド依存的に増殖する細胞の培養時に抗体を添加することによって、 リガンド同様に細胞が増殖するか否かを指標とする。 細胞が増殖する場合 に、 被験多種特異性抗体は、 リガンド機能代替作用を有するものと判定す る。
( 2 ) リガンドの本来の活性 （増殖とは限らない） を示す細胞株の培養時に加え ることによって、 リガンド同様の反応を示すか否かを指標とする。 リガン ド同様の反応を示す場合に、 抗体は、 リガンド機能代替作用を有するもの と判定する。
上記細胞は、.，通常、 抗体がァゴニストとして作用し得るヘテロ受容体を細胞表 面に発現しており、 該受容体はリガンドと結合することによりシグナルを発する。 上記方法において使用する細胞は、 受容体のリガンド依存的に増殖できる細胞 (リガンド依存性増殖細胞） であることが好ましい。 また、 上記受容体は、 通常、 リガンドと結合することにより、 細胞増殖シグナルを発するものであることが好 ましい。 しかし、 上記受容体が細胞増殖シグナルを出さないものである場合、 該 受容体を、 細胞増殖シグナルを発するタイプの受容体と融合させ、 所謂キメラ受 容体とすることにより、 上記方法に使用することができる。 該キメラ受容体は、 リガンドと結合することにより、 細胞増殖シグナルを発する。 受容体と融合させ ることによりキメラ受容体を構築するのに適した受容体は、 細胞増殖シグナルを 発するタイプの受容体であれば特に制限されないが、 通常、 膜蛋白質であり、 よ り好ましくは細胞外領域がリガンド結合機能を有する受容体断片であり、 細胞内 領域がシグナル伝達機能を有する受容体断片であるような受容体である。 細胞内 領域に用いる受容体は、 具体的に GH受容体、 G-CSF受容体、 MPL、 EP0受容体、 c - Ki t, Fl t-3, IL-2受容体、 IL-3受容体、 IL-5受容体、 GM-CSF受容体等を挙げるこ とができる。 本発明における上記リガンド依存性増殖細胞の好適な例として、 具 体的には、 細胞外領域がリガンド受容体断片であり細胞内領域が G-CSF受容体断 片であるキメラ受容体を発現させたリガンド依存性増殖細胞 Ba/F3を示すことが できる。 その他、 上記方法において使用できる細胞として、 例えば、 NFS60、 FDC-PK FDC- P2、 CTLL-2、 DA- 1、 KT - 3等を挙げることができる。 得られた抗体は、 均一にまで精製することができる。 抗体の分離、 精製は通常 の蛋白質で使用されている分離、 精製方法を使用すればよい。 例えばァフィニテ ィークロマトグラフィー等のクロマトグラフィーカラム、 フィルタ一、 限外濾過、 塩析、 透析、 SDSポリアクリルアミドゲル電気泳動、 等電点電気泳動等を適宜選 択、 組合せれば、 抗体を分離、 精製することができる （Ant ibodies ： A
Laboratory Manual. Ed Harlow and David Lane, Cold Spring Harbor
Laboratory, 1988) が、 これらに限定されるものではない。 ァフィ二ティーク口 マトグラフィ一に用いるカラムとしては、 プロテイン Aカラム、 プロテイン Gカラ ムなどが挙げられる。
本発明の抗体は、 例えば、 AR1鎖および AR2鎖を含む I型インターフェロン受容 体に対して、 リガンド機能代替活性を有する抗体である場合には、 好ましくは、 抗 AR 1鎖抗体における可変領域と、 抗 AR2鎖抗体における可変領域とを含む構造を 有する。 インターフェロン機能代替抗体は以下の方法で作製した。 I型インター フエロン受容体の受容体分子 AR1鎖及び M2鎖それぞれの細胞外領域と G-CSF受容 体の細胞内領域のキメラ受容体をそれぞれ発現する IL- 3依存性マウスプロ B細胞 株 Ba/F3を樹立した。 それぞれの細胞を BALB/cの腹腔に免疫した。
抗体価の上昇した免疫マウスの脾臓より polyA (+) RNAを抽出し、 RT- PCRにて scFvを合成し、 scFv提示ファージライブラリ一を構築した。 AR1鎖発現 Ba/F3免疫 マウス脾臓由来のファージライブラリ一とピオチン化可溶型 AR1鎖を混合後スト レプトアビジン磁気ビーズで捕捉するパンニング法にて、 結合ファージを濃縮し た。 可溶型 AR1鎖を用いたファージ ELISAにて抗 AR1鎖抗体提示ファージを選択し た。 また同様に可溶型 AR2鎖及び AR2鎖発現 Ba/F3免疫マウス脾臓由来のライブラ リーファージを用いて抗 AR2鎖抗体ファージを選択した。 抗体の特異性に最も関 与するといわれている H鎖の CDR3のアミノ酸配列が異なる抗体を選択した。 scFvを動物細胞用のシグナル配列と CHI- hinge- CH2- CH3の間に挿入し、 scFv - CHI- Fc発現ベクターを作製した。 AR1鎖に対する抗体と AR2鎖に対する抗体を様々 な組合せで細胞に導入し、 二種特異性抗体を発現させた。
BaF3- ARGは、 Ba/F3に l鎖及び AR2鎖のそれぞれの細胞外領域と G- CSF受容体の細 胞内領域とのキメラ分子の発現ベクターを導入して樹立した。 この細胞は IFN-ひ に依存して増殖した。 BaF3- ARGの増殖を支持できる抗体の組合せの二種特異性抗 体を選択した。
Daud i細胞は IFN- αによる細胞増殖抑制活性について高感受性なヒト Β細胞株で ある。 先に選択された二種特異性抗体を Daudi細胞に加え、 IFN- αと同様に増殖 を阻害することを確認した。 該抗体としては、 特に制限されるものではないが、 例えば、 抗 AR1鎖抗体の下記のいずれかの可変領域と、 抗 AR2鎖抗体の下記のいず れかの可変領域とを含む抗体を挙げることができる。
•抗 AR1鎖抗体の可変領域： AR1- 41、 AR1-24
• ¾AR2鎖抗体の可変領域 : AR2-37, A 2- 11、 AR2-13, A 2-45, AR2- 22、 AR2- 43、 AR2-40, AR2-14, AR2- 44、 AR2- 33、 AR2-31
上記のそれぞれの可変領域の VHおよび のアミノ酸配列を、 配列番号： 1〜2 6に示す （各可変領域の VHおよび と、 配列番号との関係を表 1に示す） 。
Figure imgf000024_0001
配列番号
Figure imgf000024_0002
1-41 2
AR1-24 3 4 AR2-37 5 6
A 2-11 7 8
AR2-13 9 1 0
AR2-45 1 1 1 2
AR2-22 1 3 1 4
AR2-43 1 5 1 6
AR2-40 1 7 1 8
AR2-14 1 9 2 0
AR2-44 2 1 2 2
AR2-33 2 3 2 4
A 2-31 2 5 2 6
抗 AR1鎖抗体が AR卜 24の場合、 パートナーとなる抗 AR2鎖抗体は、 AR2- 13、 AR2 - 31、 あるいは AR2-44であることが好ましく、 抗 AR1鎖抗体力 41の場合、 パー トナーとなる抗 AR2鎖抗体は、 AR2- 11、 AR2- 13、 AR2-14, AR2-22, AR2 - 33、 AR2- 37、 AR2- 40、 AR2- 43、 A 2-44, あるいは AR2- 45であることが好ましい。 M2- 13お よび AR2- 44は、 Αΐ -41および AR1 - 24の両方の抗体に対してパートナーとなること が可能である。 上記のような対を形成する抗体もまた、 本発明に含まれる。
また本発明の機能蛋白質の代替機能を有する二種特異性抗体の好ましい態様と しては、 酵素および該酵素の基質の両方を認識するような補因子の機能を代替す る二種特異性抗体である。
本発明における補因子は、 酵素に作用し酵素反応を増強し得るものであれば特 に制限されない。 本発明における補因子としては、 例えば、 蛋白質分解酵素の補 因子を挙げることができる。 蛋白質分解酵素の補因子の具体例としては、 血液凝 固線溶関連因子における補因子 (F. VIII/F. Vi l la, PZ、 TM、 TM/PSシステム) や 補体反応の補因子 （C4b、 MCP, CR1、 H因子） 等を挙げることができる。
本発明における酵素、 および該酵素の基質、 および該酵素の捕因子の具体例と しては、 例えば、 以下の組合せを挙げることができる。
(a) 血液凝固線溶関連因子における補因子の例 1
酵素： F. IXa
基質： F. X
補因子： F.VIII/F. Villa
補因子 F. Villaは、 F. IXaと F.Xの両方に結合することによって、 F. IXaによる F.Xの活性化を増強する。 上記の酵素 F. IXa、 基質 F. Xの両方を認識する二種特異 性抗体の中には、 F.Xの活性化を増強する作用を有するものがある。 このような 抗#：の中には、 補因子 F.VIII/F. Villaの作用機能を代替する作用を有するものが 存在すると考えられる。
(b) 血液凝固線溶関連因子における補因子の例 2
酵素： ZPI
基質： F.X/F.Xa
補因子： PZ
補因子 PZは、 serpinファミリーの ZPIと F.Xaに結合することで、 ZPIによる F.Xa 阻害活性を増強する。 すなわち、 ZPIと F.X/F.Xaの両方を認識する二種特異性抗 体の中には、 PZの機能を代替する作用を有するものが存在すると考えられる。
(C) 血液凝固線溶関連因子における補因子の例 3
酵素： トロンビン
基質： TAFI
補因子： TM
補因子 TMは、 トロンビンによる TAFIの活性化を増強する。 すなわち、 トロンビ ンと TAFIの両方を認識する二種特異性抗体の中には、 TMの機能を代替する作用を 有するものが存在すると考えられる。 (d) 血液凝固線溶関連因子における補因子の例 4
酵素： トロンビン
基質： PC
補因子： TM/PS
TM/PSシステムは、 トロンビンによる PCの活性化を増強する。 すなわち、 トロ ンビンと PCの両方を認識する二種特異性抗体の中には、 TM/PSシステムの機能を 代替するものが存在すると考えられる。
(e) 補体反応の補因子の例 1
酵素： Cls
基質： C2
補因子： C4b
C4bは Clsによる C2の分解促進作用を有する。 すなわち Clsと C2の両方を認識す る二種特異性抗体の中には、 C4bの機能を代替するものが存在すると考えられる。
(f) 補体反応の補因子の例 2
酵素：補体制御タンパク I因子 （Co即 lenient Regulatory Factor I) 基質： C3b
補因子：補体制御タンパク H因子 （Co即 lement Regulatory Factor H)
Membrane Cof ac tor Prote in (MCP)
Complement Receptor 1 (CRl)
Complement Regulatory Factor H、 MCP, CRlは、 Complement Regul atory Factor Iによる C3b分解促進作用を有する。 すなわち、 Co即 lenient Regul atory Factor Iと C3bの両方を認識する二種特異性抗体の中には、 Co即 lement
Regulatory Factor H、 MCP, CRlの機能を代替するものが存在すると考えられる。 上記補因子の中で、 特に好ましいのは F. VIII/F. Villaである。 F. VI I I/F. Vil la は、 トロンビン等の蛋白分解酵素により限定分解を受けるが、 F. Vin/R VII Iaの 補因子活性を有している限り、 その形態は問わない。 また、 変異?. ¥111 111& や、 遺伝子組換技術により人為的に改変した F. VIII/F. Vil laに関しても、
F. VIII/F. Vi llaの補因子活性を有している限り、 F. VIII/ ' Villaに含まれる。 本発明の補因子機能代替二種特異性抗体を得る方法は特に制限されず、 どのよ うな方法で取得されてもよい。 例えば、 酵素 A及び基質 Bに対する補因子機能代替 二種特異性抗体を得る場合、 酵素 A、 基質 Bそれぞれを免疫動物に免疫し、 抗酵素 A抗体及び抗基質 B抗体を取得する。 その後、 抗酵素 A抗体の H鎖と L鎖及び抗基質 B 抗体の H鎖と L鎖を含む二種特異性抗体を作製する。 ここで、 抗酵素 A抗体と抗基 質 B抗体はそれぞれ複数種得られていることが望ましく、 これらを用いてなるベ く多くの組合せの二種特異性抗体を作製することが好ましい。 二種特異性抗体を 作製後、 補因子機能代替活性を有する抗体を選択する。
酵素あるいは基質に対する抗体は、 当業者に公知の方法により得ることができ る。 例えば、 免疫動物に対して抗原を免疫することにより調製することができる。 動物を免疫する抗原としては、 免疫原性を有する完全抗原と、 免疫原性を有さな い不完全抗原 （ハプテンを含む） が挙げられる。 本発明においては： 本発明の補 因子機能代替抗体が補因子として作用すると考えられる酵素あるいは基質を、 上 記抗原 （免疫原） として使用する。 免疫する動物として、 例えば、 マウス、 ハム スター、 またはァカゲザル等を用いることができる。 これら動物に対して、 抗原 を免疫することは、 当業者においては、 周知の方法によって行うことができる。 本発明において好ましくは、 免疫された動物または該動物の細胞から抗体の L鎖 および H鎖の可変領域の回収を行う。 この操作は、 当業者においては一般的に公 知の技術を用いて行うことができる。 抗原によって免疫された動物は、 とりわけ 脾臓細胞において該抗原に対する抗体を発現する。 従って、 例えば、 免疫された 動物の脾臓細胞から mRNAを調製し、 該動物の可変領域に対応するプライマーを用 いて、 RT-PCRにより L鎖および Ή鎖の可変領域の回収を行うことができる。
詳細には、 動物に酵素、 基質それぞれを免疫する。 免疫原とする酵素、 基質は、 蛋白質全体、 もしくは該蛋白質の部分ペプチドであってもよい。 また、 動物を免 疫するのに用いる免疫原としては、 場合により抗原となるものを他の分子に結合 させ可溶性抗原とすることも可能であり、 また、 場合によりそれらの断片を用い てもよい。
この免疫された動物の脾細胞から ni NAを抽出し、 可変領域付近に対応するブラ イマ一を用いて RT- PCRにて L鎖、 H鎖可変領域の cDNAを回収する。 CDRに対応する プライマー、 CDRよりも多様性の低いフレームワークに対応するプライマー、 あ るいはシグナル配列と CH1もしくは L鎖定常領域 （C に対応するプライマーを用 いることができる。 また、 in vi troにおいてリンパ球を免疫することもできる。 これを用いて scFvもしくは Fabを提示するライブラリ一を構築する。 パンニング によって抗原結合抗体クローンを濃縮 'クローン化し、 その可変領域を用いて抗 体発現べクタ一を作製する。 抗酵素抗体発現べクタ一と抗基質抗体発現べクタ一 を同一の細胞に導入し、 抗体を発現させることにより二種特異性抗体を得ること ができる。 この際、 ヒトゃ免疫していない動物の末梢血単核球、 脾臓、 扁桃腺な どに由来する m NAを材料とする同様のライブラリ一を用いてスクリーニングを行 うことも可能である。
補因子機能代替活性を有する抗体の選択は、 例えば、 以下のような方法により 行うことができる。
( 1 ) 該酵素，該基質を含む反応系を用い、 該抗体を加えることによる該酵素活 ' 性 （基質分解能） の上昇を指標とし、 選択する。
( 2 ) 該酵素 ·該基質 ·該補因子が関わる生体機能を測定するあるいは模倣する 系 （例えば、 血漿凝固測定系） を用い、 該補因子非存在条件下にて該抗体を加え ることによる機能回復活性を指標とし、 選択する。
得られた抗体は、 均一にまで精製することができる。 抗体の分離、 精製は通常 の蛋白質で使用されている分離、 精製方法を使用すればよい。 例えばァフィニテ ィークロマトグラフィー等のクロマトグラフィーカラム、 フィルタ一、 限外濾過、 塩析、 透析、 SDSポリアクリルアミドゲル竃気泳動、 等電点電気泳動等を適宜選 択、 組合せれば、 抗体を分離、 精製することができる (Ant ibodies ： A
Laboratory Manual. Ed Harlow and David Lane, Cold Spring Harbor
Laboratory, 1988) が、 これらに限定されるものではない。 ァフィ二ティーク口 マトグラフィ一に用いるカラムとしては、 プロテイン Aカラム、 プロテイン Gカラ ムなどが挙げられる。
本発明の二種特異性抗体は、 例えば代替する補因子が F. VIII/F. Villaである場 合、 すなわち酵素および基質の組合せが、 血液凝固線溶関連因子の F. IXa、 及び F. Xである場合には、 好ましくは、 抗 F, IXa抗体における可変領域と、 抗 F. X抗体 における可変領域とを含む構造を有する。
本発明の F. VIII/F. Villa機能代替二種特異性抗体は以下の方法で作製した。 市販 の F. IXa及び F. Xをそれぞれマウスの皮下に免疫した。 抗体価の上昇した免疫マウ スの脾臓から脾細胞を単離し、 マウスミエローマ細胞と融合し、 ハイプリドーマ を作製した。 抗原 （F. IXa、 F. X) に結合するハイプリドーマをそれぞれ選択し、 可変領域に対応するプライマーを用いて RT-PCRにて L鎖、 H鎖の可変領域を回収し た。 L鎖可変領域は を含む L鎖発現ベクターに、 H鎖可変領域は H鎖定常領域を含 む H鎖発現ベクターにそれぞれ組み込んだ。
抗 F. IXa抗体 （H鎖、 L鎖） の発現べクタ一と F. X抗体 （H鎖、 【鎖） の発現べクタ —を同一の細胞に導入し、 抗体を発現させることにより二種特異性抗体を得た。 得られた二種特異性抗体に関しては、 F. XIa (F. IX活性化酵素) 、 F. IX (F. X活 性化酵素） 、 F. X、 F. Xaの合成基質 （S-2222) 、 リン脂質から成る測定系で、
F. VIII/F. Villa (F. IXaによる F. X活性化の補因子） を代替する活性を評価した。 その結果を以つて、 F. VIII/F. Villa代替活性を有する二種特異性抗体を選択した。 上記で選択された二種特異性抗体に関しては、 F. VIII欠乏ヒト血漿を用いた凝 固測定系 （APTT) .を用い、 凝固回復能を測定した。 その結果、 F. VIII欠乏ヒト血 漿に対し、 凝固回復能を有する二種特異性抗体を得たことを確認した。
本発明の抗体の H鎖 CDR3は、 特に制限されないが、 具体的には、 後述の実施例 に記載の XB12の H鎖 CDR3配列 （配列番号： 42) または XT04の H鎖 CDR3配列 （配列 番号： 46) のいずれかのアミ.ノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機 能的に同等の相補性決定領域を有し、 且つ、 SB04、 SB05、 SB06、 SB07、 SB2K SB30、 SB34、 SB38もしくは SB42の H鎖 CDR3配列 （それぞれの配列番号： 50、 5 4、 58、 62、 66、 70、 74、 78もしくは 82) のいずれかに記載のァ ミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に同等の相補性決定領域 を有する。
さらに、 本発明の上記抗体は具体例としては、 XB12の H鎖 CDR配列 （配列番号： 40〜42) もしくは XT04の H鎖 CDR配列 （配列番号： 44〜 46 ) のいずれかの アミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に同等の相補性決定領 域を有するものと、 SB04、 SB05、 SB06、 SB07、 SB2K SB30、 SB34、 SB38もしくは SB42の H鎖 CDR配列 （配列番号： 48〜50、 52〜54、 56〜58、 60〜 6 2、 64〜66、 68〜70、 72〜74、 76〜 78もしくは 80〜 82) の いずれかのァミノ酸配列からなる相補性決定領域、 またはこれと機能的に同等の 相補性決定領域を有するものとの組合せによる抗体を好適に示すことができる。 本発明記載の XB12、 XT04、 SB04、 SB05、 SB06、 SB07、 SB2L SB30、 SB34、 SB38 ならびに SB42の H鎖可変領域のアミノ酸配列は、 配列番号： 39、 43、 47、 51、 55, 59, 63， 67, 71， 75ならびに 79で示される。
本発明で開示されている可変領域を用いて全長抗体を作製する場合、 定常領域 は特に限定されず、 当業者に公知の定常領域を用いることが可能であり、 例えば、 Sequences of proteins of immunological interest, (1991) , U. S. Department of Health and Human Services. Public Health Service National Institutes of Healthや、 An efficient route to human bispecif ic IgG, (1998) . Nature Biotechnology vol. 16, 677- 681、 等に記載されている定常領域を用いることが できる。
本発明における抗体の一つの態様としてはリガンド機能代替作用を有すること から、 本発明の抗体は、 該抗体が作用する受容体の活性 （機能） 低下に起因する 疾病に対して、 有効な薬剤となることが期待される。'
本発明の抗体の代替するリガンド機能が IFN- a/)Sである場合には、 上記疾患 として、 例えば、 ウィルス性疾患、 悪性新生物、 免疫性疾患を挙げることができ る。
ウィルス性疾患としては、 例えば、 C型肝炎ウィルスによって発症および/ま たは進展する疾患が挙げられ、 より具体的には、 急性 C型肝炎、 慢性 C型肝炎、 肝硬変、 肝癌を例示することができる。
慢性 C型肝炎は、 C型肝炎ウィルス感染細胞に対する宿主の免疫反応により引 き起こされる慢性炎症疾患である。 症状の進行に伴い、 徐々に肝機能は低下し、 肝硬変を経て、 末期には肝癌に至る。 慢性 C型肝炎患者においては、 C型肝炎ゥ ィルスを排除するため、 インタ一フエロン-ひ/ 3による治療が行われているが、 血中半減期が短いことから連日投与が必要なため、 患者の負担は相当に重い。 従 つて、 インターフェロン -ひ//3の作用を有し、 持続性に優れた薬剤が求められて いた。
また、 別のウィルス性疾患と'しては、 例えば、 B型肝炎ウィルスによって発症 および/または進展する疾患が挙げられ、 より具体的には、 急性 B型肝炎、 慢性 B型肝炎、 肝硬変、 肝癌を例示することができる。
悪性新生物としては、 慢性骨髄性白血病、 悪性黒色腫、 多発性骨髄腫、 腎癌、 膠芽腫、 髄芽腫、 ァストロサイト一マ、 ヘアリーセル白血病、 AIDS関連力ポジ 肉腫、 皮膚 T細胞リンパ腫、 非ホジキンリンパ腫を例示することができる。 また、 免疫性疾患としては、 多発性硬化症を例示することができる。
また、 本発明における抗体の別の態様としては、 補因子の機能を代替する作用 を有することから、 本発明の抗体は、 該補因子の活性 （機能） 低下に起因する疾 病に対して、 有効な薬剤となることが期待される。 本発明の抗体の代替する補因 子が血液凝固線溶関連因子である場合には、 上記疾病として、 例えば、 出血、 出 血を伴う疾患、 もしくは出血に起因する疾患等を挙げることができる。 特に、 F. VIII/F. Villa, F. IX/F. IXa, F. XI/F. XIaの機能低下や欠損は、 血友病と呼ばれる 出血異常症を引き起こすことで知られる。
血友病のうち、 先天性な F. VIII/F. VIII a機能低下または欠損による出血異常症 は、 血友病 Aと呼ばれる。 血友病 A患者が出血した場合、 F. VIII製剤の補充療法が 行われる。 また、 激しい運動や遠足の当日、 頻回に関節内出血を来たす場合、 あ るいは重症血友病に分類される場合には、 F. VIII製剤の予防投与が行われること がある （非特許文献 2および 3参照） 。 この F. VIII製剤の予防投与は、 血友病 A 患者の出血エピソードを激減させるため、 近年、 大きく普及しつつある。 出血ェ ピソードを減らすことは、 致死性及び非致死性の出血の危険及びそれに伴う苦痛 を低下させるだけでなく、 頻回の関節内出血に起因する血友病性関節障害を未然 に防ぐ。 その結果、 血友病 A患者の Q0L向上に大きく寄与する。
F. VIII製剤の血中半減期は短く、 約 12 〜 16時間程度である。 それ故、 継続的 な予防のためには、 F. VIII製剤を週に 3回程度投与する必要がある。 これは、 F. VIII活性として、 概ね 1%以上を維持することに相当する （非特許文献 4および 5参照） 。 また、 出血時の補充療法においても、 出血が軽度な場合を除き、 再出 血を防ぎ、 完全な止血を行うため、 一定期間、 F. VIII製剤を定期的に追加投与す る必要がある。
また、 F. VIIi製剤は、 静脈内に投与される。 静脈内投与実施には、 技術的な困 ·難さが存在する。 特に年少の患者に対する投与においては、 投与に用いられる静 脈が細い故、 困難さが一層増す。
前述の、 F. VIII製剤の予防投与や、 出血の際の緊急投与においては、 多くの場 合、 家庭療法 ·自己注射が用いられる。 頻回投与の必要性と、 投与の際の技術的 困難さは、 投与に際し患者に苦痛を与えるだけでなく、 家庭療法 ·自己注射の普 及を妨げる要因となっている。
従って、 現存の血液凝固第 VI II因子製剤に比し、 投与間隔が広い薬剤、 あるい は投与が簡単な薬剤が、 強く求められていた。
さらに、 血友病 A患者、 特に重症血友病 A患者には、 インヒビターと呼ばれる F. VIIIに対する抗体が発生する場合がある。 インヒビターが発生すると、 F. VIII 製剤の効果がインヒビタ一により妨げられる。 その結果、 患者に対する止血管理 が非常に困難になる。
このような血友病 Aインヒビター患者が出血を来たした場合は、 通常、 大量の F. VIII製剤を用いる中和療法か、 複合体製剤 （co即 lex concentrate) あるいは F. Vila製剤を用いるバイパス療法が、 実施される。 しかしな力 ら、 中和療法では、 大量の F. VIII製剤の投与が、 逆に、 インヒビ夕一 （抗 F. VIII抗体） 力価を上げて しまう場合がある。 また、 バイパス療法では、 複合体製剤や F. Vila製剤の短血中 半減期 （約 2〜 8時間） が問題となっている。 その上、 それらの作用機序が、 F. VIII/F. Villaの機能、 すなわち F. IXaによる F. X活性化を触媒する機能に非依存 であるため、 場合によっては、 止血機構をうまく機能させられず、 不応答になつ てしまうケースがある。 そのため、 血友病 Aインヒビ夕一患者では、 非インヒビ ター血友病 A患者に比し、 十分な止血効果を得られない場合が多いのである。
従って、 インヒビターの存在に左右されず、 且つ F. VIII/F. VIIIaの機能を代替 する薬剤が、 強く求められていた。
ところで、 F. VIII/F. VIIIaに関係する出血異常症として、 血友病、 抗 F. VII I自 己抗体を有する後天性血友病のほかに、 vWFの機能異常または欠損に起因するフ オンビルブランド病が知られている。 vWFは、 血小板が、 血管壁の損傷部位の内 皮下組織に正常に粘着するのに必要であるだけでなく、 F. VIIIと複合体を形成し、 血漿中 F. VI IIレベルを正常に保つのにも必要である。 フォンビルブランド病患者 では、 これらの機能が低下し、 止血機能異常を来たしている。
さて、 （i)投与間隔が広く、 （i i)投与が簡単であり、 （i i i)インヒビターの存在 に左右されず、 （iv) F. VIII/R VIIIa非依存的にその機能を代替する医薬品の創 製には、 抗体を利用する方法が考えられる。 抗体の血中半減期は、 一般に、 比較 W
- 34 - 的長く、 数日から数週間である。 また、 抗体は、 一般に、 皮下投与後に血中に移 行することが知られている。 すなわち、 抗体医薬品は、 上記の（i)、 （i i)を満た している。
本発明における機能蛋白質の他の態様として、 2種の異なる生理作用を有する 蛋白に結合して、 異なる複数の生理作用を制御する蛋白が挙げられる。 その好適 な例としては、 補体第四成分 C4bおよび protein S (PS) に結合する C4b binding prote in (C4bp) が挙げられる。 C4bpは、 C4b C2b複合体から C2bを解離させると 共に、 PSの aPC coiactor活性を消失させる作用を有する。 従って C4bpは補体系と 血液凝固系に対して制御作用を示す。 C4bおよび PSに対する二種特異性抗体は、 C4bpの作用を代替する作用を有すると考えられる。 また、 C4bpは I因子による C4b の分解に対する補因子としての作用も有する。 従って、 I因子および C4bに対する 二種特異性抗体も、 C4bpの作用を代替する作用を有すると考えられる。
' 本発明では、 本発明の抗体を有効成分として含有する医薬組成物を提供する。 例えば、 本発明の抗体がサイトカイン受容体に対してインタ一フエロンの機能代 替活性を有する抗体である場合には、 該抗体はサイト力イン様作用を有するもの と考えられる。 従って該抗体は抗ウィルス作用、 抗腫瘍作用、 細胞増殖，分化調 節作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤となることが期待される。 一 方で、 IL- 2の機能を代替する抗体は T細胞や NK細胞の分化 ·活性化による免疫賦 活-抗腫瘍作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 3の機能を代替 する抗体は造血前駆細胞を増殖することによる血球回復促進作用を有する医薬品 (医薬組成物） もしくは薬剤、 IL-4の機能を代替する抗体は T (体液性免疫） への誘導による抗アレルギー作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 5の機能を代替する抗体は B細胞 ·好酸球の増殖 ·分化誘導による免疫賦活 · 抗腫瘍作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 6の機能を代替する 抗体は血小板産生刺激作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 7の 機能を代替する抗体は T細胞 · B細胞の増殖による免疫賦活 ·抗腫瘍作用を有する 医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 9の機能を代替する抗体は肥満細胞の増 殖 -造血による血球回復促進作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 IL - 10の機能を代替する抗体は免疫抑制作用を有する医薬品 （医薬組成物） もし くは薬剤、 IL- 11の機能を代替する抗体は血小板産生刺激作用を有する医薬品 (医薬組成物） もしくは薬剤、 IL- 12の機能を代替する抗体は Thl (細胞性免疫） への誘導による免疫賦活 ·抗腫瘍作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬 剤、 IL- 15の機能を代替する抗体は NK細胞の活性化による免疫賦活 ·抗腫瘍作用 を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 GM-CSFの機能を代替する抗体は化 学療法や骨髄移植後の白血球回復促進作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしく は薬剤、 CNTFの機能を代替する抗体は抗肥満作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 LIFの機能を代替する抗体は血小板産生刺激 ·血中コレステロ一 ル低下作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 Oncostat in Mの機能を 代替する抗体は造血促進作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 CT-1 の機能を代替する抗体は心筋保護作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬 剤となることが期待される。
また、 本発明の抗体が F. IXもしくは F. IXa、 および F. Xの両方を認識する抗体の うち、 F. VIIIaの機能を代替する抗体である場合には、 該抗体は、 出血、 出血を 伴う疾患、 もしくは出血に起因する疾患の予防もしくは治療のための医薬品 （医 薬組成物） もしくは薬剤となることが期待される。
一方で、 ZPIと F. Xに結合して PZの機能を代替する抗体は抗血栓作用を有する医 薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 トロンビンと TAFIに結合して TMの機能を代替 する抗体は止血促進作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤、 トロンビ ンと PCに結合して PS/TMシステムの機能を代替する作用を有する医薬品 （医薬組 成物) もしくは薬剤となることが期待される。
また、 補体 C4の欠損は全身性エリテマトーデス（SLE)を引き起こすことから、 C4bの作用を代替する抗体は SLE発症抑制作用を有する医薬品 （医薬組成物） もし くは薬剤となることが期待される。 H因子の欠損は易化膿性感染症、 自己免疫性 の糸球体腎炎を引き起こすことから、 H因子の作用を代替する抗体はこれら疾患 の発症抑制作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤となることが期待さ れる。
C4bpの欠損はベーチェット病を引き起こすことから、 C4bpの作用を代替する抗 体はベーチェット病発症抑制作用を有する医薬品 （医薬組成物） もしくは薬剤と なることが期待される。
治療または予防目的で使用される本発明の抗体を有効成分として含む医薬組成 物は、 必要に応じて、 それらに対して不活性な適当な薬学的に許容される担体、 媒体等と混和して製剤化することができる。 例えば、 滅菌水や生理食塩水、 安定 剤、 賦形剤、 酸化防止剤（ァスコルビン酸等)、 緩衝剤（リン酸、 クェン酸、'他の 有機酸等)、 防腐剤、 界面活性剤 (PEG、 T醒等)、 キレ一ト剤 (EDTA等)、 結合剤 等を挙げることができる。 また、 その他の低分子量のポリペプチド、 血清アルブ ミン、 ゼラチンや免疫グロブリン等の蛋白質、 グリシン、 グルタミン、 ァスパラ ギン、 アルギニン及びリシン等のアミノ酸、 多糖及び単糖等の糖類や炭水化物、 マンニトールゃソルビトール等の糖アルコールを含んでいてもよい。 注射用の水 溶液とする場合には、 例えば生理食塩水、 ブドウ糖やその他の補助薬を含む等張 液、 例えば、 D-ソルビ! ル、 D-マンノース、 D -マンニ! ^一ル、 塩化ナトリウム が挙げられ、 適当な溶解補助剤、 例えばアルコール (エタノール等)、 ポリアルコ ール（プロピレングリコール、 PEG等）、 非イオン性界面活性剤（ポリソルべ一ト 80、 HC0- 50)等と併用してもよい。
また、 必要に応じ本発明の抗体をマイク口カプセル（ヒドロキシメチルセル口 ース、 ゼラチン、 ポリ [メチルメタクリル酸]等のマイクロカプセル）に封入した り、 コロイドドラッグデリバリーシステム（リボソーム、 アルブミンミクロスフ エア、 マイクロエマルジヨン、 ナノ粒子及びナノカプセル等）とすることもでき る Γ Remington' s Pharmaceut ical Sc ience 16th edi t ion" , Oslo Ed. (1980)等 参照）。 さらに、 薬剤を徐放性の薬剤とする方法も公知であり、 本発明の抗体に 適用し得る（Langer et al. , J. Biomed. Mater. Res. 15 : 267-277 (1981)； Langer, Chemtech. 12 : 98-105 (1982)；米国特許第 3， 773, 919号;欧州特許出願公開（EP) 第 58， 481号； Sidman et a Biopolymers 22 : 547-556 (1983) ;EP第 133, 988号）。 本発明の医薬組成物の投与量は、 ·剤型の種類、 投与方法、 患者の年齢や体重、 患者の症状、 疾患の種類や進行の程度等を考慮して、 最終的には医師の判断によ り適宜決定されるものであるが、 一般に大人では、 1日当たり、 0. l〜2000mgを 1 〜数回に分けて経口投与することができる。 より好ましくは l〜1000mg/日、 更 により好ましくは 50〜500mg/日、 最も好ましくは 100〜300mgZ日である。 これ らの投与量は患者の体重や年齢、 投与方法などにより変動するが、 当業者であれ ば適当な投与量を適宜選択することが可能である。 投与期間も、 患者の治癒経過 等に応じて適宜決定することが好ましい。
また、 本発明の抗体をコードする遺伝子を遺伝子治療用ベクターに組込み、 遺 伝子治療を行うことも考えられる。 投与方法としては、 nakedプラスミドによる 直接投与の他、 .リボソーム等にパッケージングするか、 レトロウイルスベクタ一、 アデノウイルスベクター、 ワクシニアウィルスベクタ一、 ボックスウィルスべク ター、 アデノウイルス関連べクタ一、 HVJベクター等の各種ウイするべクタ一と して形成するか (Adolph 『ウィルスゲノム法』 ， CRC Press, Florid (1996)参 照） 、 または、 .コロイド金粒子等のビーズ担体に被覆 （W093/17706等） して投与 することができる。 しかしながら、 生体内において抗体が発現され、 その作用を 発揮できる限りいかなる方法により投与してもよい。 好ましくは、 適当な非経口 経路 (静脈内、 腹腔内、 皮下、 皮内、 脂肪組織内、 乳腺組織内、 吸入または筋肉 内の経路を介して注射、 注入、 またはガス誘導性粒子衝撃法 （電子銃等による） 、 点鼻薬等粘膜経路を介する方法等）により十分な量が投与される。 ex vivoにおい てリボソームトランスフエクシヨン、 粒子衝撃法 （米国特許第 4, 945, 050号） 、 またはウィルス感染を利用して血液細胞及び骨髄由来細胞等に投与して、 該細胞 を動物に再導入することにより本発明の抗体をコードする遺伝子を投与してもよ い。
また本発明は、 本発明の抗体もしくは組成物を投与する工程を含む、 出血、 出 血を伴う疾患、 または出血に起因する疾患の予防および Zまたは治療するための 方法を提供する。 抗体もしくは組成物の投与は、 例えば、 前記の方法により実施 することができる。
また本発明は、 本発明の抗体の、 本発明の （医薬） 組成物の製造のための使用 に関する。
さらに本発明は、 少なくとも本発明の抗体もしくは組成物を含む、 上記方法に 用いるためのキットを提供する。 該キットには、 その他、 注射筒、 注射針、 薬学 的に許容される媒体、 アルコール綿布、 絆創膏、 または使甩方法を記載した指示 書等をパッケージしておくこともできる。 図面の簡単な説明
図 1は PCDNA4- g4Hの挿入領域を表した図である。
図 2は PCDNA4- g4Lおよび pIND- g4Lの挿入領域を表した図である。
図 3は pIND- g4Hの挿入領域を表した図である。
図 4は抗 F. IXa抗体 XB12と抗 F. X抗体 SB04、 SB2 SB42、 SB38、 SB30、 SB07、 SB05、 SB06、 SB34により作製した抗 F. IXa/抗 F. X二種特異性抗体の、 F. Vi lla様 活性を測定した結果を示している。 抗体溶液の濃度は lO ^z g/niL (最終濃度
1 /i g/mL)である。 結果、 9種の二種特異性抗体で F. VI I Ia様活性の上昇を示し、 XB12/SB04, XB12/SB2K XB12/SB42, XB12/SB38 XB12/SB30, XB12/SB07, XB12/SB05, XB12/SB06, XB12/SB34の順に活性が強かった。
図 5は抗 F. IXa抗体 Π04と抗 F. X抗体 SB04、 SB2K SB42、 SB38、 SB30、 SB07、 SB05、 SB06、 SB34により作製した抗 F. IXa/抗 F. X二種特異性抗体または XT04抗体 の、 F. VIIIa様活性を測定した結果を示している。 抗体溶液の濃度は 10 g/mL (最終濃度 l g/mL)である。 結果、 XT04/SB04, XT04/SB2K XT04/SB42,
XT04/SB38, XT04/SB30, XT04/SB07, XT04/SB05, XT04/SB06, XT04/SB34は
F. Villa様活性の上昇を示した。
図 6は、 図 4の中で最も活性の高かった XB12/SB04について、 様々な濃度での F. Villa様活性を測定した結果を示している。 結果、 XB12/SB04は濃度依存的に F. Villa様活性の上昇を示した。
図 7は XB12/SB04、 XB12/SB2K XB12/SB42, XB12/SB38. XB12/SB30, XB12/SB07, XB12/SB05, XB12/SB06, XB12/SB34存在下での、 血漿凝固時間 (APTT)を測定した 結果を示している。 抗体溶液の濃度は XB12/SB06に関しては 3. 4/i g/mL、 それ以外 は 20 i g/mLである。 結果、 XB12/SB04, XB12/SB2K XB12/SB42, XB12/SB38,
XB12/SB30, XB12/SB07, XB12/SB05, XB12/SB06, XB12/SB34は、 抗体非存在下と 比較して、 凝固時間の短縮効果を示した。
図 8は XT04/SB04、 XT04/SB2K XT04/SB42, XT04/SB38, XT04/SB30, XT04/SB07, XT04/SB05, XT04/SB06, XT04/SB34存在下での、 血漿凝固時間 (APTT)を測定した 結果を示している。 抗体溶液の濃度は XT04/SB06に関しては 10 i g/mL、 それ以外 は 20/i g/mLである。 結果、 XT04/SB04, XT04/SB21, XT04/SB42, XT04/SB38, XT04/SB30, XT04/SB07, XT04/SB05, XT04/SB06は、 抗体非存在下と比較して、 凝 固時間の短縮効果を示した。 XT04/SB34は凝固時間の短縮は認められなかった。 図 9は図 7、 図 8の中で最も凝固時間 (APTT)の短縮効果の高かった XB12/SB04 について、 様々な濃度での凝固時間を測定した結果が示されている。 結果、
XB12/SB04は濃度依存的に凝固時間の短縮効果を示した。
図 1 0 ~ 1 3は、 pISRE- Luc導入 K562細胞に対する抗体の ISRE活性化能を示し たものである。 口は IFN- o? 2a、 秦は図中の組合せの抗 AR1鎖、 抗 AR2鎖二種特異性 抗体を示す。 該抗体が IFNと同程度の分子当りの比活性をもって用量依存的に
ISREを活性化できることを示している。 発明を実施するための最良の形態
以下、 本発明を実施例により具体的に説明するが、 本発明はこれら実施例に制 限されるものではない。 〔実施例 1〕. 抗原および免疫
ヒト AR1鎖及び AR2鎖それぞれの細胞外領域の C末端に FLAG (AR1FLAG,
AR2FLAG) もしくは His6 (顏 is、 AR2His) のタグを付加した可溶型受容体の発 現ベクターを CH0細胞に導入し、 その培養上清からァフィ二ティーカラムを用い て精製した。 マウスプロ B細胞株 Ba/F3にヒト AR1鎖の細胞外領域と G-CSF受容体細 胞内領域とのキメラ分子の発現ベクターを導入し、 高発現細胞を樹立した。 同様 にヒト AR2鎖の細胞外領域と G-CSF受容体細胞内領域とのキメラ分子の高発現細胞 を樹立した。 それぞれの細胞を BALB/cの腹腔に免疫した。 脾臓を摘出する 3日前 に ARlHisもしくは AR.2Hisを静注した。 〔実施例 2〕 scFv提示ライブラリーからの抗体分離
( a ) ファージライブラリーのパンニング
免疫マウスの脾臓より polyA W RNAを抽出し、 RT- PCRにて scFvを合成し、 scFv が f ファージの gene3との融合蛋白として発現するファージミドライブラリ一を 構築した（J. I匪 un. Methods, 201, (1997) , 35-55)。 ライブラリーの大腸菌 （2 X 109cfu) を 50 mL 2xYTAG (100 g/mLアンピシリン、 2%グルコースを含む 2xT Υ) に植菌し、 0D 600 0. 4〜0. 5まで 37°Cにて培養した。 4 x 1011のヘルパーファ ージ VCSM13を加え 37°C、 15分間静置して感染させた。 ここに 450 mL 2xYTAG、 25 H i liol/L IPTGを添加し、 26°C 10時間培養した。 遠心分離にて培養上清を回収 し、 lOOniL PEG-NaCl (10 ポリエチレングリコール 8000, 2. 5 mol/L NaCl) を混 合後、 4° (：、 60分間静置した。 10, 800 X g、 30分間遠心にてファージを沈殿させ、 沈殿物を 40 mLの水に懸濁し、 8 L PEG- NaClを混合後、 4° (：、 20分間静置した。 1 0, 800 x g、 30分間遠心にてファージを沈殿させ 5 mL PBSに懸濁した。 実施例 1 で調製した AR1FLAGと AR2FLAGは No- Weigh Premeasured NHS- PE04- Biot in Microtu bes (Pierce) を用いてピオチン標識した。 ファージライブラリ一に 100 pmolの ピオチン標識 AR1FLAGもしくは AR2FLAGを加え、 60分間抗原と接触させた。 5% M - P BS (5%スキムミルクを含む PBS) で洗浄した Streptavidin MagneSphere (Promeg a) 600 Lを加え、 15分間結合させた。 ビーズを 1 mLの PBST (0. 1% Tween- 20を含 む PBS) と PBSにて 3回ずつ洗浄した。 0. 8 mLの 0. 1 mol/L グリシン/ HC1 (pH2. 2) 中にピーズを 5分間懸濁し、 ファージを溶出した。 回収したファージ溶液に 45 l 2 mol/L Trisを添加して中和し、 対数増殖期 (0D 600 = 0. 4〜0. 5) XLl-Blu e 10 mLに添加、 37°C、 30分間静置することで感染させた。 これを 2xYTAGプレー 卜に広げ、 30°Cで培養した。 コロニーを回収し、 2xYTAGに植菌、 0D 600 = 0. 4〜 0. 5まで 37°Cにて培養した。 培養液 10 mLに lmol/L IPTG、 10" piuヘルパー ファージ （VCSM13) を添加し 37°C 30分間静置した。 遠心集菌後、 25 g/mLカナ マイシンを含む 2xYTAG lOOmLに再懸濁し、 30°C、 10時間培養した。 遠心分離にて 培養上清を回収し、 20 mL PEG- NaClを混合後、 4°C、 20分間静置した。 10, 800 x g、 30分間遠心にてファ一ジを沈殿させ、 2 ml PBSに懸濁したものを次のパンニ ングに供した。 2回目のパンニングではビーズを PBSTと PBSにて 5回ずつ洗浄した。 溶出したファージを感染させ得られた大腸菌から 鎖結合ファージを産生するク ローンを ELISAにて選択した。
( b ) ファージ ELISA
上記のシングルコロニーを 150 /zL 2xYTAGに植菌し、 30°Cで一晩培養した。 こ の 5 Lを 500 L 2xYTAGに植菌、 37° 2時間培養後、 ヘルパーファージ 2. 5 x 10 iuと 0. 3 Lの lmol/L IPTGを含む 2xYTAGを IOO L添加し 37°Cにて 30分間静置し た。 続いて 30でにて一晩培養し、 遠心上清を ELISAに供した。 StreptaWel l 96マ イクロタイタ一プレート （Roche) を 1. (^ g/mLピオチン標識 AR1FLAGもしくは AR2 FLAGを含む PBS 100 xLにて一晩コートした。 PBSTにて洗浄し抗原を除いた後、 1 w/v % M-PBS 200 Lでー晚ブロッキングした。 2%(w/v) M- PBSを除き、. ここに培 養上清を加え 40分間静置し抗体を結合させた。 洗浄後、 結合ファージは 2 w/v % M- PBSにて希釈した HRP結合抗 Ml 3抗体 （Amersham Pharmacia Biotech) と BM blue POD基質 （Roche) で検出し、 硫酸の添加により反応を停止した後、 A450の値を 測定した。
(c) 配列決定とクローン選択 . ,
ELISAにて陽性であったクローンのファ一ジ液からプライマー PBG3- F1 (5'- CA GCTATGAAATACCTATTGCC - 3' Z配列番号： 27) と PBG3- R1 (5'- CTTTTCATAATCAAA ATCACCGG - 3' Z配列番号： 28) を用いて PCRにて scFv領域を増幅し、 その塩基 配列決定した。 ファ一ジ液 1^L、 10 X KOD Dash緩衝液 2 L、 10/imol/Lプライマ —を 0.5/^Lづっ、 KOD Dashポリメラ一ゼ （東洋紡績、 2.5 ϋ/ D 0.3 Lを含む P CR反応液 20 Lを、 Perkin Elmer9700で 96°C、 10秒、 55°C、 10秒、 72°C、 30秒、 3 0サイクルの増幅を行った。 PCR後、 5/ の反応液に ExoSAP- IT (アマシャム） を 3 L添加し、 37°C、 20分間、 引き続き 80°C、 15分間保温した。 このサンプルにつ いて PBG3- F2 (5'- ATTGCCTACGGCAGCCGCT -3' 配列番号 : 29) あるいは PBG3 - R 2 (5'- AAATCACCGGAACCAGAGCC - 3' /配列番号： 30) をプライマ一として BigDy e Terminator Cycle Sequencing kit (Applied Biosystems) ίこて反応を行レ 、 A pplied Biosystems PRISM 3700 DNA Sequencerで泳動した。 塩基配列から推定さ れるァミノ酸配列の CDR3の異なるクロ一ンを抗 AR 1鎖及び抗 AR2鎖についてそれぞ れ 45クローンずつ選択した。
〔実施例 3〕 二種特異性抗体の発現
scFv- CHI- Fcとして発現させるために CAGGプロモータ一で駆動されるヒトシグ ナル配列とイントロン- CHl-Fc (ヒト IgG4 cDNA) の間に Siilサイトを介して scFv を挿入できる発現べクタ一 pCAGGss- g4CHヘテロ IgG4を構築した。 ヘテロ分子とし て発現させるために IgGlの knobs- into-holes (Ridgway JB e t al. Prote in Engi neering 1996, 9 : 617-621) を参考に IgG4の CH3部分へのアミノ酸置換体を作成 した。 Aタイプは Y349C、 T366Wの置換体である。 Bタイプは E356 T366S, L368A、 Y407Vの置換体である。 両者のヒンジ部分にも置換 （- ppcpScp-→- ppcpPcp- ) を 導入した。 また Aタイプにはヒト IL- 3のシグナル配列を、 Bタイプにはヒト IL- 6の シグナル配列を用いて構築した （pCAGG- IL3SS- g4CHPa, pCAGG-IL6ss-g4CHPb) 。 塩基配列より選択したクローンの scFv領域の PCR産物を Si i l処理し、 抗 AR1鎖クロ ―ンは pCAGG- IL3 s s_g4CHPaに、 抗 AR2鎖クローンは pCAGG- IL3 s s-g4CHPbにサブク ローニングした。 抗 AR1鎖及び抗 AR2鎖クローン 45 x 45の合計 2025種類の全組合 せについて発現べクタ一を HEK293細胞にリボフェクトァミン 2000を用いてトラン スフエクシヨンし、 3日後の培養上清を回収した。
〔実施例 4〕 リガンド機能代替二種特異性抗体の分離
( a ) Ba/F3増殖アツセィ
BaF3- MGはマウス IL- 3依存性増殖細胞 Ba/F3に AR1鎖及び AR2鎖の細胞外領域と G-CSF受容体の細胞内領域とのキメラ分子の発現ベクターを導入して樹立した。 B aF3- ARGは IFN aに依存して増殖した。 3度洗浄したゥエル当り lxlO3個の細胞およ びサンプルを含む 0. lmLの培地で 96ゥエルプレートに播種した。 4日間培養後 10 Lの生細胞数測定試薬 SF (nacalai tesQue) を添加し、 2時間 37°C保温した後 A450 を測定した。
( b ) Daudi細胞増殖抑制アツセィ
Daudi細胞は IFNに対して高感受性を示すヒト B細胞株である。 サンプルを含む 0. lmLの培地でゥエル当り 6. 25xl03個の細胞を 96ゥエルプレートに播種した。 4日 間培養後 10 Lの生細胞数測定試薬 SF (nacalai tesQue) を添加し、 2時間 37°C保 温した後、 A450を測定した。
(c) リガンド機能代替二種特異性抗体の配列
上記スクリーニングにて選択された抗体の可変領域のアミノ酸配列を、 配列番 号： 1〜26に示す。 各抗体の名称および配列番号との関係は、 上記表 1に示す。
(d) ISREを用いたレポータージーンアツセィ .
3 mLの OPTト MEM Iに 100 μίの DMRIE-C (Invitrogen)を添加し攪拌したも のに、 pISRE- Lucを 40 g添カ卩し、 攪拌の後室温にて 20分間静置した。 これを 8 X 10V2 mL OPTI-MEM Iに調整したヒト細胞 K562に加え、 37°Cにて 4時間培 養した後、 lO mLの 15%FCS- RPMI1640を添加し更に一晩培養した。 翌日、 遠心操 作にて回収した K562を 10.5 mLの 10%FCS_RPMI1640で再度懸濁し 96well平底プ レートに 70 L/wellで播種した。
抗体遺伝子導入 HEK293培養上清中の bispeciiic scFv_CHを IgG換算で 12.5 ng/mLに濃度調整し、 更に 5倍希釈系列を作製した。 あるいは Bispeciiic IgG発 現 C0S7培養上清を 2倍に希釈し、 更に 5倍希釈系列を作製した。 これを、 レポ一 夕一プラスミドを導入した細胞に 30 /L/wellで添加した。 陽性対照の wellには' IFN -ひ 2aの 5倍希釈列を 30 L/wdl分注した。 37°Cにて 24時間培養後、 Bright- Glo Luciferase Assay System (Promega)を 50 juL/mL添加し室温 10分静置した後、 Analyst HT (UL)にてルシフェラーゼ活性を測定した （図 10、 図 11、 図 12、 図 13 ) 。
〔実施例 5〕 Factor IXa (F. IXa) に対する非中和抗体の作製
5-1. 免疫およびハイプリドーマ作製
BALB/cマウス （雄、 免疫開始時 6週齢、 日本チヤ一ルス ·リバ一） 8匹および MRL/lprマウス （雄、 免疫開始時 6週齢、 日本チヤ一ルス 'リバー） 5匹に、 Factor IXaj3 (Enzyme Research Laboratories, Inc. ) を以下の通り免疫した。 初回免 疫として FCA (フロイント完全アジュバント H37 Ra (Difco laboratories) ) で ェマルジヨン化した Factor IXa/3を 40^g/head皮下投与した。 2週間後に FIA (フ ロイント不完全アジュバント （Diico laboratories) ) でェマルジヨン化した Factor IXaj3を 40 g/head皮下投与した。 以後 1週間間隔で追加免疫を 3〜7回行 つた。 Factor IXaj3に対する血清抗体価の上昇を 5-2に示した EUSA (Enzyme linked immunosorbent assay) で確認後、 最終免疫として PBS (-) (カルシウムィ オン、 マグネシウムイオンを含まない phosphate buffered saline)に希釈した Factor IXaj8を 40^g/liead静脈内投与した。 最終免疫の 3日後、 マウスの脾臓細 胞とマウスミエローマ細胞 P3X63Ag8U.1 (P3U1と称す、 ATCC CRL-1597) を、 PEG1500 (ロシュ 'ダイァグノスティックス） を用いた常法に従い細胞融合した。 10%FBS(Invitrogen)を含む RPMI1640培地 （Invitrogen) (以下、 10 FBS/RPMI1640 と称す）に懸濁した融合細胞を 96 well culture plateに播種し、 融合 1, 2, 3, 5 日後に MT選択培地 (10 FBS/RPMI1640 I 2耀 50x concentrate (大日本製薬) I 5¾ BM-Condimed HI (ロシュ ·ダイァグノスティックス） ） への置換を行うこ とにより、 ハイブリド一マの選択培養を行った。 融合後 8日目または 9日目に採取 した培養上清を用いて、 5- 2に示した EUSAにより Factor IXaに対する結合活性 を測定することにより、 Factor IXa結合活性を有するハイプリドーマを選択した。 続いて 5-3に示した方法で Factor IXaの酵素活性に対する中和活性を測定し、 Factor IXaに対する中和活性を有さないハイプリドーマを選択した。 ハイプリド 一マは、 96 well culture plateに 1 wellあたり 1個の細胞を播種することによる 限界希釈を 2回行ってクローン化した。 顕微鏡観察により単一コロニーであるこ とが確認された細胞について、 5-2、 5- 3に示した ELISAおよび中和活性測定 を行い、 クローンを選択した。 5- 4に示した方法により、 クローン化した抗体 の腹水を作製し、 腹水から抗体を精製した。 精製抗体が、 APTT (活性化部分トロ ンボプラスチン時間） を延長させないことを、 5- 5に示した方法で確認した。 5-2. Factor IXa EL ISA
Coating buffer (lOOmM sodium bicarbonate, pH 9.6, 0.02% sodium azide) で 1 g/mLに希釈した Factor IXai3を、 Nunc- 1匪画 late (Nunc- 1腿 uno™ 96 MicroWell™ plates MaxiSorp™ (Nalge Nunc International) ) に 100 iL/well で分注後、 4°Cで一晩インキュベーションした。 Tween 20を含む PBS (-)で 3回洗 浄後、 diluent buffer (50πιΜ Tris-HCl, ρΗ8· 1， 1% bovine serum albumin, lni MgCl2, 0.15M NaCl, 0.05% Tween(R) 20, 0.02% sodium azide)で plateを室温で 2 時間 blockingした。 Bufferを除去後、 plateに diluent bufferで希釈したマウス の抗血清またはハイプリドーマの培養上清を 100 xL/weIl添加し、 室温で 1時間ィ ンキュベ一シヨンした。 Plateを 3回洗浄後、 diluent bufferで 1/2000希釈したァ ルカリホスファタ一ゼ標識ャギ抗マウス IgG (H+L) (Zymed Laboratories) を 100/zL/well添加し、 室温で 1時間インキュベーションした。 Plateを 6回洗浄後、 発色基質 Blue- Phos™ Phosphate Substrate (Kirkegaad & Perry
Laboratories) を 100 L/well添加し、 室温で 20分インキュベーションした。 Blue-Phos™ Stop Solution (Kirkegaad & Perry Laboratories) を 100/ L/well 添加した後、 595nmにおける吸光度を Microplate Reader Model 3550 (Bio-Rad Laboratories) で現 ij定した。
5-3. Factor IXa中和活性測定
Phospholipid (Sigma-Aldrich) を注射用蒸留水で溶解し、 超音波処理を施す ことにより、· 400 g/fflLの phospholipid溶液を調製した。 0.1%ゥシ血清アルブミ · ンを含むトリス緩衝生理食塩液 （以下、 TBSB) 40 Lと 30ng/mL Factor IXa^ (Enzyme Research Laboratories) IO Lと 400 g/mL phosphol ipid溶液 5 Lと
100 mM CaCl2、 20 iM MgCI.2を含む TBSB 5 Lとハイプリドーマ培養上清 IO Lを 96穴プレート中で混和し、 室温で 1時間インキュベーションした。 この混合溶液 に、 50 g/mL Factor X (Enzyme Research Laboratories) 20 Lおよび 3U/mL Factor Villa (Amrican diagnostica) 10 Lを加え、 室温で 30分間反応させた。 これに の 0.5M EDTAを添加することにより反応を停止させた。 この反応溶液 に、 50 iLの S-2222溶液 （Chromogenix) を添加し、 室温で 30分間インキュベーシ ヨンした後、 測定波長 405nm、 対照波長 655nmにおける吸光度を Microplate Reader Model 3550 (Bio- ad Laboratories, Inc. ) により測定した。
5-4. 腹水の作製および抗体の精製
樹立したハイプリドーマの腹水作製は常法に従って行った。 すなわち、 in vitroで培養したハイプリドーマ.2 106個を、 あらかじめプリスタン
(2, 6, 10, 14-tetramethylpentadecane; 和光純薬工業） を 2回腹腔内に投与して おいた BALB/cマウス （雄、 実験開始時 5〜7週齢、 日本チヤ一ルス'リバ一） また は BALB/cヌードマウス （雌、 実験開始時 5〜6週齢、 日本チヤ一ルス， リバ一およ び日本クレア） の腹腔内に移植した。 移植後 1〜4週目で腹部が肥大したマウスか ら腹水を回収した。
腹水からの抗体精製は Protein G Sepharose™ 4 Fast Flow (Amersham
Biosciences) カラムを用いて行った。 Binding Buffer (20 mM sodium acetate, pH5.0) にて 2倍希釈した腹水をカラムにアプライし、 10カラム容量の Binding Bufferで洗浄した。 5カラム容量の Elution Buffer (0.1 M glycine- HC1, pH2.5) にて抗体を溶出し、 Neutralizing Buffer (1 M Tris-HCl, pH9.0) で中 和した。 これを Centriprep™ 10 (Millipore) にて濃縮し、 TBS (50mM Tris- buffered Saline) に溶媒を置換した。 抗体濃度は、 280nmの吸光度から、 A(l%, km) = 13.5として算出した。 吸光度の測定は、 DU- 650 (Beckman
Coulter) にて測定した。 5-5. APTT (活性化部分トロンポプラスチン時間） の測定
APTTは CR - A (Amelung) を接続した KC10A (Amelung) により測定した。 TBSBで 希釈した抗体溶液 50 L、 標準ヒト血漿 （Dade Behring) 50 /i L及び APTT試薬
(Dade Behring) 50 /xLの混合液を 37°Cで 3分間加温した。 20 mMの CaCl2 (Dade Behring) 50 Lを同混合液に加えることにより凝固反応を開始させ、 凝固時間を 測定した。
〔実施例 6〕 Factor X (F. X) に対する非中和抗体の作製
6 - 1 . 免疫およびハイプリドーマ作製
BALB/cマウス （雄、 免疫開始時 6週齢、 日本チヤ一ルス'リバ一） 8匹および MRL/lprマウス （雄、 免疫開始時 6週齢、 日本チヤ一ルス'リバ一) 5匹に、 Factor X (Enzyme Research Laboratories) を以下の通り免疫した。 初回免疫として FCA でェマルジヨン化した Factor Xを 40 i g/head皮下投与した。 2週間後に FIAでエマ ルジョン化した Factor Xを 20または ^ ^ g/head皮下投与した。 以後 1週間間隔で 追加免疫を合計 3〜6回行った。 Factor Xに対する血清抗体価の上昇を 6 - 2に示 した ELISAで確認後、 最終免疫として PBS (-)に希釈した Factor .Xを 20または 40 x g/head静脈内投与した。 最終免疫の 3日後、 マウスの脾臓細胞とマウスミエ ローマ細胞 P3U1を、 PEG1500を用いた常法に従い細胞融合した。 10%FBS/RPMI 1640 培地に懸濁した融合細胞を 96 wel l cul ture plateに播種し、 融合 1, 1, 3, 5日 後に HAT選択培地への置換を行うことにより、 ハイプリドーマの選択培養を行つ た。 融合後 8日目に採取した培養上清を用いて 6 - 2に示した ELISAにより Factor Xに対する結合活性を測定した。 Factor X結合活性を有するハイプリドーマを選 択し、 6 - 3に示した方法で Factor Xaの酵素活性に対する中和活性を測定した。 Factor Xaに対する中和活性を有さないハイプリドーマを、 限界希釈を 2回行うこ とによりクローン化した。 5 - 4に示した方法により、 クローン化した抗体の腹 水を作製し、 腹水から抗体を精製した。 精製抗体が、 APTTを延長させないことを、 5 - 5に示した方法で確認した。 6-2. Factor X EL ISA
Coating bufferで 1 g/mLに希釈した Factor Xを、 Nunc- Imnumo plateに 100 iL/wellで分注後、 4°Cで一晚インキュベーションした。 Tweenw 20を含む PBS (-)で 3回洗浄後、 diluent bufferで plateを室温で 2時間 blockingした。
Bufferを除去後、 plateに diluent bufferで希釈したマウスの抗血清またはハイ プリドーマの培養上清を添加し、 室温で 1時間インキュベーションした。 Plateを 3回洗浄後、 diluent bufferで 1/2000希釈したアルカリホスファターゼ標識ャギ 抗マウス IgG (H+L)を添加し、 室温で 1時間インキュベーションした。 Plateを 6回 洗浄後、 発色基質 Blue- Phos™ Phosphate Substrate (Kirkegaad & Perry Laboratories) を 100 L/well添加し、 室温で 20分インキュベーションした。 Blue - Phos™ Stop Solution (Kirkegaad & Perry Laboratories) を 100/iL/well 添加した後、 595nmにおける吸光度を Microplate Reader Model 3550 (Bio-Rad Laboratories) で測定した。 6-3. Factor Xa中和活性測定 .
TBSBで 1/5希釈したハイプリドーマ培養上清 と の 250 pg/mL Factor Xa (Enzyme Research Laboratories) を含む TBCP (2.78 mM CaCI2、 22.2 MU > 脂質 （フォスファチジルコリン： フォスファチジルセリン =75 : 25、 Sigma- Aldrich) を含む TBSB) を混和し、 室温で 1時間インキュベーションした。 この混 合溶液に、 20 ig/mLプロトロンビン (Enzyme Research Laboratories) および 100 ng/iiiL活性化凝固第 V因子 (Factor Va (Haematologic Technologies) ) を含 む TBCPを 添加して室温で 10分間反応させた。 0.5 M EDTAを 10 L添加するこ とにより反応を停止させた。 この反応溶液に、 1 mM S- 2238溶液 （Chromogen ) を 50 L添加し、 室温で 30分間インキュベーションした後、 405 皿における吸光 度を Microplate Reader Model 3550 (Bio-Rad Laboratories) で測定した。 〔実施例 7〕 キメラ二種特異性抗体発現ベクターの構築
7-1. ハイプリドーマからの抗体可変領域をコードする DNA断片の調製
' 抗 F. IXa抗体あるいは抗 F.X抗体を産生するハイプリドーマから、 QIAGENM RNeasy® Mini Kit (QIAGEN) を用いて説明書記載の方法に従い全 RNAを抽出し た。 全 R Aを 40 iLの滅菌水に溶解した。 精製された RNA1〜2 gを铸型に、
Superscript cDNA合成システム （Invitrogen) を用いて説明書記載の方法に従い RT - PCR法により一本鎖 cDNAを合成した。
7-2. 抗体 H鎖可変領域の PCRによる増幅と配列解析
' マウス抗体 H鎖可変領域 （VH) cDNAの増幅用プライマーとして、 Krebberらの報 告 (J. Immunol. Methods 1997;201:35-55) に記載の HBプライマー混合物、 およ びffプライマー混合物を用意した。 各 0.5 Lの IOO M HB プライマー混合物およ び 100/iM HFプライマー混合物を用いて、 反応液 ( 7 - 1で調製した cDNA溶 液 2.5 1、 KOD plus buffer (東洋紡績） 、 0.2mM dNTPs, 1.5mM MgCl2, 0.75 units DNA polymerase KOD plus (東洋紡績） ） を調製した。 PCRは、 サーマルサ イクラ一 GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) を用いて、 cDNA断片の増幅 の効率性に応じて、 条件 A (98°Cで 3分間加熱後、 98°C 20秒、 58°C 20秒、 72°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 32サイクル） ないし条件 B (94°Cで 3分間加 熱後、 94°C 20秒、 46°C 20秒、 68°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 5サイ クル、 さらに 94°C 20秒、 58°C 20秒、 72°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 30サイクル） のいずれかの条件で行った。 PCR後、 反応液を 1% ァガローズゲル電 気泳動に供した。 目的のサイズ （約 400bp) の増幅断片を QIAciuick Gel
Extraction Kit (QIAGEN) を用い、 添付説明書記載の方法で精製し、 滅菌水 30 .1で溶出した。 各 DNA断片の塩基配列は、 BigDye Terminator Cycle
Sequencing Kit (Applied Biosystems) を用い、 DNAシークェンサ一 ABI PRISM 3100 Genetic Analyzer (Applied Biosystems) にて、 添付説明書記載の方法に 従い決定した。 本方法により決定した配列群を解析ソフト GENETYX- SV/RC
Version 6.1 (Genetyx) にて比較解析し、 異なる配列を有するものを選択した。
7 - 3.クローニング用抗体可変領域 MA断片の調製
クローニング用制限酵素 Sfi I切断サイトを抗体可変領域増幅断片の両末端へ 付加するために、 以下の操作を行った。
Sfi I切断部位付加 VH断片 （Sii I-YH) 増幅のために、 プライマ一 HBの
(Gly4Ser) 2- リンカ一配列を Sii I切断部位を有するに示す配列 （配列番号： 3 1) へ変更したもの （プライマ一 VH - 5' end) を用意した。 各 0.521の 10/iM 配列特異的プライマー VH- 5' endおよび IO M プライマー scior (J, Immunol. Methods 1997; 201: 35-55) を用いて、 反応液 20 L ( 7- 2で調製した精製 VH cDNA増幅断片溶液 l l, K0D plus buffer (東洋紡績) 、 0.2mM dNTPs, 1.5mM MgCl2, 0.5 units DNA polymerase K0D plus (東洋紡績) ) を調製した。 PCRは、 サ一マルサイクラ一 GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) を用いて、 断片 の増幅の効率性に従い、 条件 A (98°Cで 3分間加熱後、 98°C 20秒、 58°C 20秒、 72°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 32サイクル） ないし条件 B (94°Cで 3分 間加熱後、 94°C 20秒、 46°C 20秒、 68で 30秒からなる反応を 1サイクルとして 5 サイクル、 さらに 94°C 20秒、 58°C 20秒、 WC 30秒からなる反応を〖サイクルと して 30サイクル） のいずれかの条件で行った。 PCR後、 反応液を 1% ァガ口一ズゲ ル電気泳動に供した。 目的のサイズ （約 400bp) の増幅断片を QIAtiuick Gel Extraction Kit (QIAGEN) にて添付説明書記載の方法で精製し、 滅菌水 30 ^Lで 溶出した。
マウス抗体 L鎖可変領域 (VL) cDNA断片増幅のために、 まず Krebberらの報告 （J. Immunol. Methods 1997; 201: 35-55) 記載の各 0.5 Lの IOO M LBプライマー混 合物および 100 iM LFプライマー混合物を用いて、 反応液 (7-1で調製 した c - DNA溶液 2.5 L, K0D plus buffer (東洋紡績) 、 0.2mM dNTPs, 1.5mM MgCl2， 0.75 units DNA polymerase KOD plus (東洋紡績) ) を調製した。 PCRは、 サ一マルサイクラ一 GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) を用いて、 断片 の増幅の効率性に従い、 94°Cで 3分間加熱後、 94°C 20秒、 46°C 20秒、 68°C 30秒 からなる反応を 1サイクルとして 5サイクル、 さらに 94°C 20秒、 58°C 20秒、 72°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 30サイクルの条件で行った。 PCR後、 反応液 を 1 ァガローズゲル電気泳動に供した。 目的のサイズ （約 400bp) の増幅断片を QIAaucick Gel Extractio Kit (QIAGEN) にて添付説明書記載の方法で精製し、 滅菌水 で溶出した。 該断片はその C末端にプライマー LF由来の （Gly4Ser)3 - リンカ一配^!が付加された状態にある。 該断片 C末端へ Sii I切断部位を付加する 目的で、 プライマー LFの （Gly4Ser)3- リンカ一配列を Sii I切断部位を有するに 示す配列 （配列番号： 32) へ変更したもの （プライマ一 VL-3' end) を用意し た。 Sii I 切断部位付加 VL断片 （Sii I-VL) 増幅のために、 各 0.5 Lの IO M VL-3' endプライマ一混合物および 10 xM scbackプライマーを用いて、 反応液 20 L (精製 VL cDNA増幅断片溶液 I L, KOD plus buffer (東洋紡績） 、 0· 2πιΜ dNTPs, 1.5mM MgCl2, 0.5 units DNA polymerase KOD plus (東洋紡績) ) を調 製した。 PCRは、 サ一マルサイクラ一 GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) を用いて、 94°Cで 3分間加熱後、 94°C 20秒、 46°C 20秒、 68°C 30秒からなる反応 を 1サイクルとして 5サイクル、 さらに 94°C 20秒、 58DC 20秒、 72°C 30秒からな る反応を 1サイクルとして 30サイクルの条件で行った。 PCR後、 反応液を 1% ァガ ローズゲル電気泳動に供した。 目的のサイズ （約 400bp) の増幅断片を QIAQuick Gel Extraction Kit (QIAGEN) を用い、 添付説明書記載の方法で精製し、 滅菌水 30 Lで溶出した。
精製 Sii I- VHおよび Sii I- VL断片は Sii I (夕カラバイオ） にて添付説明書記 載の方法に従い反応液を調製し、 50°Cで一晩消化を行った。 その後、 反応液を QIAquick PCR Purification Kit (QIAGEN) を用いて添付説明書記載の方法で精 製し、 該キット添付の Buffer EB で溶出した。 7 - 4.ヒト IgG4-マウスキメラ二種特異性 IgG抗体発現用プラスミド 目的の二種特異性 IgG抗体を産生する際に、 各 H鎖のへテロ分子を形成させるた めに IgGlの knobs- into - holes技術 (Ridgway et al. , Protein Eng. 1996 ; 9 : 617-621) を参考に IgG4の CH3部分へのアミノ酸置換体を作製した。 'タイプ a
(IgG4 r a) は Y349 T366W置換体であり、 タイプ b (IgG4 r b) は E356C、 T366S-, L368A、 Y407Vの置換体である。 さらに、 両置換体のヒンジ領域にも置換 （- ppcpScp- - > -ppcpPcp-) を導入した。 本技術により、 殆どへテロ体となり得る が、 L鎖についてはその限りでなく、 不必要な抗体分子の生成がその後の活性測 定へ影響を及ぼしかねない。 そのため、 本方策では各特異性を有する抗体分子片 腕 （HL分子と称する） を別々に発現させ細胞内で目的型二種特異性 IgG抗体を効 率的に作らせる為に各 HL分子に対応する発現ベクターとして異なる薬剤で誘導が かかるものを用いた。
抗体分子片腕 （便宜上右腕 HL分子と称する） の発現用として、 テトラサイクリ ン誘導型べクタ一 pcDNA4 (Invi trogen) へ H鎖ないし L鎖それぞれの該領域 （図 1ないし図 2 ) 、 すなわち動物細胞用シグナル配列 （IL3ss) (Pro Nat l.
Acad. Sci. USA. 1984; 81 : 1075) の下流に適当なマウス抗体可変領域 （VHない し VL) とヒト IgG4 r a定常領域 （配列番号： 3 3 ) ないし/定常領域 （配列番 号： 3 4 ) を組み込んだもの （pcDNA4-g4Hないし PCDNA4- g4L) を作製した。 まず、 pcDNA4をそのマルチクローニングサイトに存在する制限酵素切断サイト Eco RVお よび Not I (夕カラバイオ） で消化した。 適当な抗体可変領域を有するキメラ二 種特異性抗体右腕 H鎖ないし L鎖発現ュニット （それぞれ約 1. 6kbないし約 1. Okb) を Xho I (夕カラバイオ） で消化した後に、 QIAauick PCR Puri f icat ion Ki t (QIAGEN)にて添付説明書記載の方法で精製し、 DNA polymerase K0D (東洋紡績） を用いて添付説明書記載の反応液組成にて 72°C 10分間反応させ、 末端を平滑化し た。 該平滑化末端断片を QIAauick PCR Puri f icat ion Ki t (QIAGEN) にて添付説 W
- 54 - 明書記載の方法で精製し、 Not I (夕カラバイオ） で消化した。 該 Not I- blunt断 片 （それぞれ約 1.6kbないし 1. Okb) と該 Eco RV- Not Iで消化した pcDNA4を、 Ligation High (東洋紡績） を用いて添付説明書記載の方法に従い連結反応を行 つた。 該反応液により大腸菌 DH5 株 （Co即 etent high DH5 α (東洋紡績） ） を 形質転換した。 得られたアンピシリン耐性クローンより QIAprep Spin Miniprep Kit (QIAGEN) を用いて各々プラスミド DNAを単離した。
もう一方の片腕 （便宜上左腕 HL分子と称する） はェクダイソン類似体誘導型べ クタ一 pIND (Invitrogen) へ H鎖ないし L鎖それぞれの （図 2ないし図 3) 、 す なわち動物細胞用シグナル配列 （IL3ss) (EMBO. J. 1987; 6: 2939) の下流に 適当なマウス抗体可変領域 （VHないし VL) とヒト IgG4rb定常領域 （配列番号： 35) ないし κ定常領域 （配列番号： 34) を組み込んだもの （pIND- g4Hないし pIND-g4L) を前述の方法に則り作製し、 各々のプラスミド DNAを単離した。
7-5.二種特異性抗体発現べクタ一構築
7- 4で調製されたテトラサイクリン誘導型発現プラスミド （PCDNA4- g4Hない し PCDNA4- g4L) を Sii Iで消化し、 反応液を 1% ァガローズゲル電気泳動に供した。 もともと有していた抗体可変領域部分 （VHないし VL (図 1ないし図 2参照） ） が 除かれた断片 (約 5kb) を QIAduick Gel Extraction Kit (QIAGEN) を用い、 添付 説明書記載の方法で精製し、 滅菌水 30 Lで溶出した。 該断片と、 それぞれに対 応する 7-3で調製された Sfi I 消化抗 F. IXa抗体由来 Sfi I- VHないし Sii I- VL断 片を Quick Ligation Kit (New England Biolabs) を用いて添付説明書記載の方 法に従い連結反応を行った。 該反応液により大腸菌 DH5ひ株 （Competent high DH5a (東洋紡績） ） を形質転換した。 また、 7- 4で調製された Sii I消化ェク ダイソン類似体誘導型発現プラスミド （pIND- g4Hないし pIND- g4L) から、 上述と 同様の手法で抗体可変領域部分 （VHないし VL (図 2ないし図 3参照） ) を除いた 断片と、 それぞれに対応する 7-3で調製された Sii I消化抗 F.X抗体由来 Sfi I - VHないし Sii I- VL断片を、 同様の手法にて組込んだ。
得られた各々のアンピシリン耐性形質転換体は、 挿入断片を挟み込むようなプ ライマーを用いて、 コロニー PCR法にて目的断片の挿入を確認した。 まず、 抗 F. IXa抗体キメラ H鎖ないし L鎖発現ベクターのために、 挿入部位上流に存在する CMV Forward priming siteヘアニールする 2卜 merのプライマ一 CMVF (配列番号： 36) と揷入部位下流に存在する BGH Reverse priming 3 6へァニールする18- merのプライマー BGHR (配列番号： 37) を合成した （Sigma Genosys) 。 抗 F. X 抗体キメラ H鎖ないし L鎖発現ベクターのために、 挿入部位上流ヘア二一ルする 24-11½]：のプラィマー£じ(^ (配列番号： 38) と挿入部位下流に存在する BGH Reverse priming siteヘアニールする 18- merのプライマー BGHR (配列番号： 3 7) を合成した （Sigma Genosys) 。 コロニー PCRのために、 反応液 20 L (各 IO Mプライマ一 0.2/zL、 KOD dash buffer (東洋紡績） 、 0.2mM dNTPs 0.75 units DNA polymerase KOD dash (東洋紡績） ) を調製した。 該反応液へ、 形質 転換株細胞を適量投入し PCRを行った。 PCRは、 サーマルサイクラ一 GeneAmp PCR system 9700 (Parkin Elmer) を用いて、 96°Cで 1分間加熱後、 96°C 10秒、 55°C 10秒、 72°C 30秒からなる反応を 1サイクルとして 30サイクル反応させる条件より 行った。 PCR後、 反応液を 1% ァガローズゲル電気泳動に供し、 目的サイズの増幅 断片が得られたクローンを選択した。 該 PCR産物は、 ExoSAP- IT (Amersham Biosciences) を用いて添付説明書に従い、 過剰のプライマーと dNTPsの不活性化 を行った。 各 DNA断片の塩基配列は、 BigDye Terminator Cycle Sequencing Kit (Applied Biosys terns) を用い、 DNAシークェンサ一 ABI PRISM 3100 Genetic Analyzer (Applied Biosystems) にて添付説明書記載の方法に従い決定した。 本 方法により決定した配列群を解析ソフト GENETYX- SV/RC Version 6.1 (Genetyx) にて解析し、 VHについて揷入欠失変異等の入っていない目的クローンを、 また、 VLについてハイプリドーマで使用された P3U1由来偽 VL遺伝子とは異なり挿入欠失 変異等のはいっていない目的クローンを選択した。 該目的クローンから、 QIAprep Spin Miniprep Ki t (QIAGEN) を用いて各々プ ラスミド DNAを単離し、 100 /xLの滅菌水へ溶解した。 抗 F. IXa抗体キメラ H鎖発現 ベクター、 抗 F. IXa抗体キメラ L鎖発現ベクター、 抗 F. X抗体キメラ H鎖発現べクタ 一、 そして抗 F. X抗体キメラ L鎖発現ベクターを、 それぞれ PCDNA4- g4IXaHn、 pcDNA4-g4IXaLn, pIND- g4X¾nそして pIND- g4XLnと名付けた。 各プラスミド溶液は、 使用するまで 4°Cで保存した。
〔実施例 8〕 キメラ二種特異性抗体の動物細胞での発現
8 - 1 . DNA溶液の調製
抗体右腕 HL分子発現用ベクター （PCDNA4- g4IXaHnそして PCDNA4- g4IXaLn) はテ トラサイクリンにより発現誘導がかかる。 テトラサイクリンが存在しない状況下 で発現を完全に抑制する為に Te tリブレッサ一をコードするプラスミド pcDNA6/TR
(Invi trogen) が要求される。 また、 抗体左腕 HL分子発現用べクタ一 （pIND- g4XHn そして pIND- g4XLn) は昆虫ホルモンであるェクダイソン類似体 （ボナステ ロン A) により発現誘導がかかる。 このとき、 ボナステロン Aと反応し誘導を行 ぅェクダイソンレセプターとレチノィド Xレセプターをコードするプラスミド VgRXR (Invi trogen) が要求される。 従って、 動物細胞のトランスフエクシヨン の為に計 6種類のプラスミド DNA混液を調製した。 細胞培養液 1 mLの為に、
PCDNA4- g4IXa¾i、 pcDNA4-g4IXaLn, pIND- g4XHnそして pIND- g4XLnを各 218. 8 ng、 pcDNA6/TRそして pVgRXRを各 1312. 5 ng用いた。
8 - 2. 動物細胞のトランスフエクシヨン
ヒト胎児腎癌細胞由来 HEK293H株 (Invi trogen) を 10%FCS (M0REGATE)を含む DMEM培地（Invi trogen)へ懸濁し、 5 x 105個/ mLの細胞密度で接着細胞用 12- we 11プ レート （CORNING) の各 wel lへ lniLずつ蒔きこみ C02インキュベーター （37^：、 5¾ C02) 内で培養した。 8 - 1で調製したプラスミド DNA混液をトランスフエクショ ン試薬、 Lipoiectamine 2000 (Invitrogen) 7 Lと Opti-MEM I培地 (Invitrogen) 250 Lの混液へ加えて室温 20分間静置したものを各 wellの細胞へ 投入し、 4〜5時間、 C02インキュベーター （37°Cにて 5% C02) 内でインキュべ一 卜した。
8-3. 二種特異性 IgG抗体の発現誘導
前項のようにトランスフエクシヨンした細胞培養液から培地を吸引除去し、 l g/mLのテトラサイクリン （和光純薬工業） を含む 1 mL CH0-S-SFM-II
(Invitrogen) 培地を投入し、 C02インキュベーター （37°C、 5¾ C02) 内で 1日 培養して、 抗体右腕 HL分子の第一次発現誘導を行った。 その後、 培地を吸引除去 し、 一旦 1 mL CH0- S- SFM- II培地にて洗浄した後、 5 Mのボナステロン A
(Invitrogen) を含む 1 mL CH0- S- SFM- Π培地を投入し、 C02インキュベータ一 (37°C、 5% C02) 内で 2日ないし 3日培養して、 抗体左腕 HL分子の第二次発現誘 導を行い培地中へ二種特異性 IgG抗体を分泌させた。 培養上清は回収された後、 遠心分離 （約 2000g、 5分間、 室温） して細胞を除去し、 必要に応じて Microcon® YM-50 (Millipore) で濃縮を行った。 該サンプルは使用するまで 4°Cで保存した。
〔実施例 9〕 ' ヒト IgG濃度の定量
Goat affinity purified antibody to human IgG Fc (Cappel) を coating bufferにて l g/mLに調製し、 Nunc- Immuno plateに固相化した。 Diluent buffer (D.B.) にてブロッキング処理した後、 D.B.を用いて適当に希釈した培養上清サ ンプルを添加した。 また、 抗体濃度算出のためのスタンダードとして、 1000 ng/niLから 2倍系列で D.B.にて 11段階希釈したヒト IgG4 (ヒト型化抗 TF抗体、 TO 99/51743参照） を同様に添加した。 3回洗浄したのち、 Goat anti-human IgG, alkaline phosphatase (Biosource International) を反応させた。 5回洗浄し たのち、 Sigma 104 (R) phosphatase substrate (Sigma-Aldrich) を基質として発 色させ、 吸光度リーダー Model 3550 (Bio-Rad Laboratories) より、 参照波長 655nmとして 405nmの吸光度を測定した。 Microplate Manager III (Bio-Rad Laboretories) ソフトウェアを用いて、 スタンダードの検量線から培養上清中の ヒト IgG濃度を算出した。
〔実施例 10〕 F. Villa (活性化凝固第 VIII因子） 様活性アツセィ
二種特異性抗体の F. Villa様活性は、 以下の酵素アツセィで評価した。 また、 以下の反応は全て室温で行った。 3. の Factor IX (Enzyme Research
Laboratories) 40^Lと抗体溶液 10 Lの混合液を 96穴プレート中で 1時間インキ ュべ一シヨンした。 さらにその混合液に、 10 ng/inLの Factor XIa (Enzyme Research Laboratories) IO L, 50 g/mLの Factor X (Enzyme Research Laboratories) 20 L, 400 g/mLの phospholipid (実施例 5-3参照） 5 xL, 5mM CaCl2と l MgCl2を含む TBSB (以下、 TBSB - Sと称す） 15 iLを添加し、 酵素反応 を開始させた。 1時間反応させたのち、 0.5M EDTA IO Lを加えることにより停止 させた。
発色基質溶液 50/xLをそれぞれのゥエルに加えた後、 0分、 30分の 405nm (参照 波長 655nm) における吸光度を Model 3550 Microplate Reader (Bio Rad
Loboratories) により測定した。 F. Villa様活性は、 抗体添加の 30分間の吸光度 変化値から抗体無添加の 30分間の吸光度変化値を引いた値で表した （図 4および 5参照） 。
Phospholipidの溶媒には TBSB、 Factor XIaゝ Factor IX及び Factor Xの溶媒に は TBSB- Sを用いた。 発色基質溶液は、 添付説明書に従い溶解したテストチーム発 色基質 S- 2222 (Chromogenix) とポリブレン液 (0.6 mg/L hexadimethrine ' bromide (Sigma) ) の 1:1混合液である。
さらに、 最も活性の高かった XB12/SB04について、 F. Villa様活性の濃度依存性 を測定した （図 6) 。 〔実施例 1 1〕 血漿凝固アツセィ
血友病 A血液の凝固能を二種特異性抗体が是正するか明らかにするために、 F. VIII欠乏血漿を用いた活性化部分トロンポプラスチン時間 （APTT) に対する同 抗体の影響を検討した。 様々な濃度の抗体溶液 50^L、 F. VIII欠乏血漿
(Biomerieux) 50 /iL及び APTT試薬 (Dade Behring) 50^Lの混合液を 37°Cで 3分 間加温した。 凝固反応は 20 mMの CaCl2 (Dade Behring) 50 Lを同混合液に加え ることにより開始させた。 CR-A (Aielung) が接続された KC10A (Amelung) によ り凝固するまでの時間を測定した （図 7および 8) 。
さらに、 最も凝固時間の短縮効果の高かった XB12/SB04について濃度依存性を 測定した （図 9) 。
〔実施例 1 2〕 抗体精製
実施例 8に記載の方法で得られた lOmLの培養上清を Centricon00 YM-50 (Millipore) により、 1 mLまで濃縮した。 これに IO Lの 10% BSA、 IO Lの 1 % Tween(R) 20及び lOO Lの rfrotein A Sepharose™ Fast Flow (Amersham , Biosciences) を添加し、 4°Cで一晩転倒混和した。 その溶液を 0.22 ΠΙのフィル 夕一カップ Ultrairee - MC (Millipore) に移し、 0.01% Tween(R) 20を含む TBS 500 Lにて 3回洗浄後、 rProtein A Sepharose™樹脂を 100 しの 0.01% Tween,R) 20を含む 10 mM HC1, pH2.0に懸濁して 3分間静置したのち、 抗体を溶出させた。 直ちに、 5 Lの 1M Tris-HCl , pH8.0を加えて中和した。 Microplate Manager III (Bio-Rad Laboretories) ソフトウェアを用いて、 スタンダードの検量線か ら培養上清中のヒ卜 IgG濃度を算出した。 抗体濃度は実施例 9に従い定量した。
産業上の利用の可能性 本発明によりへテロ分子を含む受容体に対してリガンド機能代替作用を有する 二種特異性抗体が提供された。
また本発明により酵素および該酵素の基質の両方を認識する抗体であって、 酵 素活性を増強する補因子の機能を代替する二種特異性抗体が提供された。
本発明の二種特異性抗体は、 血中での安定性が高く、 ^：原性も低いと考えられる ことから、 医薬品となるものと大いに期待される。

Claims

請求の範囲
1. 機能蛋白質の作用を代替する二種特異性抗体。
2. ヘテロ分子を含む受容体に対してリガンド機能代替活性を有する二種特異 性抗体。
3. ヘテロ分子を含む受容体が二量体である請求項 2に記載の抗体。
4. 受容体がサイト力イン受容体である請求項 2に記載の抗体。
5. サイトカイン受容体がインターフェロン受容体である請求項 4に記載の抗 体。
6. インターフェロン受容体が I型インターフェロン受容体である請求項 5に 記載の抗体。
7. I型ィンターフェ口ン受容体力 鎖及び AR2鎖を含んでいることを特徴と する請求項 6に記載の抗体。
8. I型インターフエ口ン受容体のリガンドであるインターフエ口ンの機能を 代替する作用を有する、 請求項 7に記載の抗体。
9. 抗 AR1鎖抗体の可変領域と、 抗 AR2鎖抗体の可変領域とを含む、 請求項 8に 記載の抗体。
10. 抗 AR1鎖抗体における下記 （a) のアミノ酸配列からなる可変領域と、 抗 AR2鎖抗体における下記 （b l) 〜 （bl O) のいずれかに記載のァミノ 酸配列からなる可変領域とを含む、 請求項 9に記載の抗体。
(a) H鎖可変領域が配列番号： 1に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 2に記載のアミノ酸配列
(b l) H鎖可変領域が配列番号： 7に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 8に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖可変領域が配列番号： 9に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 10に記載のアミノ酸配列 (b 3) H鎖可変領域が配列番号： 19に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 20に記載のアミノ酸配列
(b4) H鎖可変領域が配列番号： 13に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 14に記載のァミノ酸配列 · (b 5) H鎖可変領域が配列番号： 23に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 24に記載のアミノ酸配列
(b 6) H鎖可変領域が配列番号： 5に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 6に記載のアミノ酸配列
(b 7) H鎖可変領域が配列番号： 17に記載のアミノ酸配列であり、 L
'鎖可変領域が配列番号： 18に記載のアミノ酸配列
(b 8) H鎖可変領域が配列番号： 15に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 16に記載のアミノ酸配列
(b 9) H鎖可変領域が配列番号： 21に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 22に記載のアミノ酸配列
(b 10) H鎖可変領域が配列番号： 11に記載のアミノ酸配列であり、
L鎖可変領域が配列番号： 12に記載のアミノ酸配列
抗 AR1鎖抗体における下記 （a) のアミノ酸配列からなる可変領域と、 抗 AR2鎖抗体における下記 （b l) 〜 （b 3) のいずれかに記載のアミノ酸 配列からなる可変領域とを含む、 請求項 9に記載の抗体。
(a) . H鎖可変領域が配列番号： 3に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 4に記載のアミノ酸配列
(b l) H鎖可変領域が配列番号： 25に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 26に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖可変領域が配列番号： 9に記載のアミノ酸配列であり、 L鎖 可変領域が配列番号： 10に記載のアミノ酸配列 ( b 3 ) H鎖可変領域が配列番号： 2 1に記載のアミノ酸配列であり、 L 鎖可変領域が配列番号： 2 2に記載のアミノ酸配列 ·
1 2 . 請求項 2〜 1 1のいずれかに記載の抗体および薬学的に許容される担体を 含む組成物。
1 3 . ウィルス性疾患、 悪性新生物、 免疫性疾患の予防および/または治療に用 いられる医薬組成物である、 請求項 1 2に記載の組成物。
1 4 . ウィルス性疾患力 型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展す る疾患である、 請求項 1 3に記載の組成物。
1 5 . C型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展する疾患が、 急性ま たは慢性 C型肝炎、 肝硬変、 肝癌である、 請求項 1 4に記載の組成物。
1 6 . ウィルス性疾患が B型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展す る疾患である、 請求項 1 3に記載の組成物。
1 7 . B型肝炎ウィルス感染によって発症および/または進展する疾患が、 急性ま. たは慢性 B型肝炎、 肝硬変、 肝癌である、 請求項 1 6に記載の組成物。
1 8 . 悪性新生物が、 慢性骨髄性白血病、 悪性黒色腫、 多発性骨髄腫、 腎癌、 膠 " 芽腫、 髄芽腫、 ァストロサイトーマ、 ヘアリーセル白血病、 AIDS関連カポ ジ肉腫、 皮膚 T細胞リンパ腫、 非ホジキンリンパ腫である、 請求項 1 3に 記載の組成物。
1 9 . 免疫性疾患がとりわけ多発性硬化症である、 請求項 1 3に記載の組成物。
2 0 . 請求項 2〜 1 1のいずれかに記載の抗体、 または請求項 1 2〜 1 9のいず れかに記載の組成物を投与する工程を含む、 ウィルス性疾患、 悪性新生物 もしくは免疫性疾患を予防および/または治療する方法。
2 1 . 請求項 2〜1 1のいずれかに記載の抗体の、 請求項 1 2〜1 9のいずれか に記載した組成物の製造のための使用。 O 2005/035754
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2 2. 少なくとも請求項 2〜1 1のいずれかに記載の抗体、 または請求項 1 2に 記載の組成物を含む、 請求項 2 0に記載の予防および/または治療する方 法に用いるためのキット。
2 3. 酵素、 および該酵素の基質の両方を認識する抗体であって、 酵素反応を増 強する補因子の機能を代替する二種特異性抗体。
24. 酵素が蛋白質分^^酵素である、 請求項 2 3に記載の抗体。
2 5. 蛋白質分解酵素、 基質ならびに補因子が血液凝固線溶関連因子である、 請 求項 24に記載の抗体。
2 6. 血液凝固線溶関連因子の酵素が血液凝固第 IX因子および/または活性化血 液凝固第 IX因子で、 基質が血液凝固第 X因子で、 補因子が血液凝固第 VIII 因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子である、 請求項 2 5に記載 の抗体。
2 7. 抗血液凝固第 IX/IXa因子抗体における下記 （a l) もしくは （a 2) の GD 3のアミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に同等の 相補性決定領域と、 抗血液凝固第 X因子抗体における下記 （b l) 〜 （b
9) のいずれかに記載の CDR3のアミノ酸配列からなる相補性決定領域また はこれと機能的に同等の相補性決定領域とを含む、 請求項 2 3〜2 6のい ずれかに記載の抗体。
( a 1 ) H鎖 C D R 3が配列番号： 42に記載のアミノ酸配列
( a 2 ) H鎖 C D R 3が配列番号： 46に記載のァミノ酸配列
(b l) H鎖 CDR 3が配列番号： 50に記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖 CDR 3が配列番号： 54に記載のアミノ酸配列
(b 3) H鎖 CDR 3が配列番号： 5 8に記載のァミノ酸配列
(b 4) H鎖 CD R 3が配列番号： 6 2に記載のアミノ酸配列
(b 5) H鎖 CDR 3が配列番号： 6 6に記載のアミノ酸配列
(b 6) H鎖 C D R 3が配列番号： 7 0に記載のァミノ酸配列 (b 7) H鎖 CDR 3が配列番号： 74に記載のァミノ酸配列
(b 8) H鎖 C D R 3が配列番号： 78に記載のァミノ酸配列
(b 9) H鎖 C D R 3が配列番号： 82に記載のァミノ酸配列
28. 抗血液凝固第 IX/IXa因子抗体における下記 （a l) もしくは （a 2) の C . D Rのアミノ酸配列からなる相補性決定領域またはこれと機能的に同等の 相補性決定領域と、 抗血液凝固第 X因子抗体における下記 （b l) 〜 （b . 9) のいずれかに記載の CDRのアミノ酸配列からなる相補性決定領域ま たはこれと機能的に同等の相補性決定領域とを含む、 請求項 23〜26の いずれかに記載の抗体。
(a 1) H鎖 CDR1, 2， 3が配列番号 .: 40, 41, 42に .記載のアミノ酸配列
(a 2) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 44, 45, 46に記載のアミノ酸配列
(b 1) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 48, 49, 50に .記載のアミノ酸配列
(b 2) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 52, 53, 54に .記載のアミノ酸配列
(b 3) H鎖 CD 2, 3が配列番号： 56, 57, 58に .記載のアミノ酸配列
(b4) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 60, 61, 62に記載のアミノ酸配列
(b 5) H鎖 CDRl, 2, 3が配列番号： 64, 65, 66に記載のアミノ酸配列
(b 6) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 68, 69, 70に記載のアミノ酸配列
(b 7) H鎖 CDR1, I 3が配列番号： 72, 73, 74に記載のアミノ酸配列
(b 8) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 76, 77, 78に記載のアミノ酸配列
(b 9) H鎖 CDR1, 2, 3が配列番号： 80, 81, 82に記載のアミノ酸配列
29. 請求項 23〜 28のいずれ.かに記載の抗体および薬学的に許容される担体 を含む組成物。 '
30. 出血、 出血を伴う疾患、 もしくは出血に起因する疾患の予防および/また は治療に用いられる医薬組成物である、 請求項 29に記載の組成物。
31. 出血、 出血を伴う疾患、 もしくは出血に起因する疾患が、 血液凝固第 ΉΠ 因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性の低下ないし欠損に よって発症および/または進展する疾患である、 請求項 30に記載の組成 物。
32. 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性の低 下ないし欠損によつて発症および/または進展する疾患が、 血友病 Aである、 請求項 31に記載の組成物。
33. 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性の低 下ないし欠損によって発症および/または進展する疾患が、 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子に対するインヒビ夕一 が出現している疾患である、 請求項 31に記載の組成物。
34. 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性の低 下ないし欠損によって発症および/または進展する疾患が、 後天性血友病 である、 請求項 31に記載の組成物。
3 5. 血液凝固第 VIII因子および/または活性化血液凝固第 VIII因子の活性の低 下によつて発症および/または進展する疾患が、 フォンビルブランド病で ある、 請求項 31に記載の組成物。
36. 請求項 23〜 28のいずれかに記載の抗体、 または請求項 29〜 35のい ずれかに記載の組成物を投与する工程を含む、 出血、 出血を伴う疾患、 も しくは出血に起因する疾患を予防および/または治療する方法。
37,. 請求項 23〜 28のいずれかに記載の抗体の、 請求項 29〜 35のいずれ かに記載した組成物の製造のための使用。
38. 少なくとも請求項 23〜 28のいずれかに記載の抗体、 または請求項 29 に記載の組成物を含む、 請求項 36に記載の予防および/または治療する 方法に用いるためのキット。
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TW093130368A TW200514790A (en) 2003-10-10 2004-10-07 Bispecific antibody substituting for functional protein
HUE16162353A HUE053833T2 (hu) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecifikus ellenanyag funkcionális proteinek helyettesítésére
CN200480036248.8A CN1890369B (zh) 2003-10-10 2004-10-08 替代功能蛋白质的双特异性抗体
DK16162353.3T DK3085783T3 (da) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecifikt antistof som substitution for funktionelle proteiner
CA2541671A CA2541671C (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins
PL16162353T PL3085783T3 (pl) 2003-10-10 2004-10-08 Przeciwciało biswoiste zastępujące białka funkcjonalne
NZ546509A NZ546509A (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins wherein the antibody can recognize both a proteolytic enzyme and a substrate thereof such as blood coagulation/fibrinolysis associated factors
US10/575,193 US8062635B2 (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins
MXPA06003831A MXPA06003831A (es) 2003-10-10 2004-10-08 Anticuerpo bi-especifico que substituye las proteinas funcionales.
AU2004280421A AU2004280421B2 (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins
ES16162353T ES2865152T3 (es) 2003-10-10 2004-10-08 Anticuerpo biespecífico que sustituye a proteínas funcionales
NO20160762A NO345624B1 (no) 2003-10-10 2004-10-08 Fremgangsmåte for å oppnå bispesifikke antistoffer av IgG-type som funksjonelt erstatter faktor VIII/VIIIa.
DK04792180.4T DK1688488T3 (da) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecifikt antistof som erstatning for faktor III
PCT/JP2004/014911 WO2005035756A1 (ja) 2003-10-10 2004-10-08 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体
BRPI0415230-1A BRPI0415230B1 (pt) 2003-10-10 2004-10-08 Anticorpo biespecífico de substituição de proteínas funcionais, composição e seu uso
PT161623533T PT3085783T (pt) 2003-10-10 2004-10-08 Anticorpo biespecífico substituinte de proteínas funcionais
EP10180356A EP2289944A3 (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins
SI200432510T SI3085783T1 (sl) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecifično protitelo, ki nadomesti funkcionalne proteine
JP2005514610A JP5438880B2 (ja) 2003-10-10 2004-10-08 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体
AT04792180T ATE518952T1 (de) 2003-10-10 2004-10-08 Bispezifischer antikörper als ersatz für factor viii
EP04792180A EP1688488B9 (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for factor viii
RU2006115614/13A RU2339696C2 (ru) 2003-10-10 2004-10-08 Биспецифическое антитело, заменяющее функциональные белки
EP16162353.3A EP3085783B1 (en) 2003-10-10 2004-10-08 Bispecific antibody substituting for functional proteins
KR1020127033128A KR101361437B1 (ko) 2003-10-10 2004-10-08 기능 단백질을 대체하는 이종특이성 항체
IL174794A IL174794A (en) 2003-10-10 2006-04-05 A specific antibody substitute for functional proteins
KR1020067008860A KR101471194B1 (ko) 2003-10-10 2006-05-08 기능 단백질을 대체하는 이종특이성 항체
NO20062087A NO338686B1 (no) 2003-10-10 2006-05-09 Bispesifikt antistoff som gjenkjenner både et proteolytisk enzym og et substrat derav, hvor det er i stand til å fungere som en kofaktor som forsterker den enzymatiske reaksjonen, og hvor enzymet, substratet og kofaktoren er spesifikke blodkoagulasjonsfaktorer.
JP2011001733A JP5490734B2 (ja) 2003-10-10 2011-01-07 機能蛋白質を代替する二種特異性抗体

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Cited By (36)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP1876236A4 (en) * 2005-04-08 2009-07-29 Chugai Pharmaceutical Co Ltd ANTIBODY AS A FUNCTIONAL REPLACEMENT FOR BLOOD CREATION FACTOR VIII
US8062635B2 (en) 2003-10-10 2011-11-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Bispecific antibody substituting for functional proteins
WO2012067176A1 (ja) 2010-11-17 2012-05-24 中外製薬株式会社 血液凝固第viii因子の機能を代替する機能を有する多重特異性抗原結合分子
WO2015046554A1 (ja) 2013-09-30 2015-04-02 中外製薬株式会社 改変されたヘルパーファージを用いて抗原結合分子を作製する方法
US9096651B2 (en) 2007-09-26 2015-08-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US9228017B2 (en) 2009-03-19 2016-01-05 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody constant region variant
US9399680B2 (en) 2007-12-05 2016-07-26 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Nucleic acids encoding anti-NR10 antibodies
KR20170015517A (ko) 2014-06-20 2017-02-08 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액 응고 제 viii 인자 및/또는 활성화 혈액 응고 제 viii 인자의 활성의 저하 내지 결손에 의해 발증 및/또는 진전되는 질환의 예방 및/또는 치료에 이용되는 의약 조성물
US9670269B2 (en) 2006-03-31 2017-06-06 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of modifying antibodies for purification of bispecific antibodies
US9688762B2 (en) 2007-09-26 2017-06-27 Chugai Sciyaku Kabushiki Kaisha Modified antibody constant region
WO2017110980A1 (ja) 2015-12-25 2017-06-29 中外製薬株式会社 増強された活性を有する抗体及びその改変方法
US9868948B2 (en) 2008-04-11 2018-01-16 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to two or more antigen molecules repeatedly
WO2018021450A1 (ja) 2016-07-29 2018-02-01 中外製薬株式会社 増強されたｆｖｉｉｉ補因子機能代替活性を有する二重特異性抗体
US9975966B2 (en) 2014-09-26 2018-05-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Cytotoxicity-inducing theraputic agent
US10011858B2 (en) 2005-03-31 2018-07-03 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for producing polypeptides by regulating polypeptide association
WO2019065795A1 (ja) 2017-09-29 2019-04-04 中外製薬株式会社 血液凝固第ｖｉｉｉ因子（ｆｖｉｉｉ）補因子機能代替活性を有する多重特異性抗原結合分子および当該分子を有効成分として含有する薬学的製剤
US10253091B2 (en) 2009-03-19 2019-04-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody constant region variant
KR20190044673A (ko) 2016-09-06 2019-04-30 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 응고 제 ix 인자 및/또는 활성화 응고 제 ix 인자 및 응고 제 x 인자 및/또는 활성화 응고 제 x 인자를 인식하는 이중특이성 항체의 사용법
WO2019088143A1 (ja) 2017-11-01 2019-05-09 中外製薬株式会社 生物活性が低下した抗体バリアントおよびアイソフォーム
US10662245B2 (en) 2008-09-26 2020-05-26 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of reducing IL-6 activity for disease treatment
US10774148B2 (en) 2015-02-27 2020-09-15 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Composition for treating IL-6-related diseases
US10815308B2 (en) 2018-12-21 2020-10-27 Kymab Limited FIXaxFX bispecific antibody with common light chain
US11046784B2 (en) 2006-03-31 2021-06-29 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for controlling blood pharmacokinetics of antibodies
US11124576B2 (en) 2013-09-27 2021-09-21 Chungai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for producing polypeptide heteromultimer
US11142587B2 (en) 2015-04-01 2021-10-12 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for producing polypeptide hetero-oligomer
US11150254B2 (en) 2014-09-26 2021-10-19 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for measuring reactivity of FVIII
WO2021210667A1 (ja) 2020-04-17 2021-10-21 中外製薬株式会社 二重特異性抗原結合分子ならびに、それに関連する組成物、組成物の製造のための使用、キット、および方法
US11214623B2 (en) 2014-09-26 2022-01-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody capable of neutralizing substance having activity alternative to function of coagulation factor VIII (FVIII)
KR20220082000A (ko) 2019-10-11 2022-06-16 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 후천성 혈우병 a의 예방 및/또는 치료에 이용되는 의약 조성물, 및 당해 의약 조성물을 포함하는 제품
US11612562B2 (en) 2010-01-20 2023-03-28 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Solution preparation containing stabilized antibody
US11649262B2 (en) 2015-12-28 2023-05-16 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for promoting efficiency of purification of Fc region-containing polypeptide
US11851486B2 (en) 2017-05-02 2023-12-26 National Center Of Neurology And Psychiatry Method for predicting and evaluating therapeutic effect in diseases related to IL-6 and neutrophils
US11891434B2 (en) 2010-11-30 2024-02-06 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to plurality of antigen molecules repeatedly
US11919969B2 (en) 2017-06-22 2024-03-05 Kymab Limited Bispecific antibodies for factor IX and factor X
US12460014B2 (en) 2016-04-28 2025-11-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody-containing preparation
US12509511B2 (en) 2017-05-02 2025-12-30 National Center Of Neurology And Psychiatry Method for predicting and evaluating therapeutic effect in diseases related to IL-6 and neutrophils

Families Citing this family (26)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US20030114410A1 (en) 2000-08-08 2003-06-19 Technion Research And Development Foundation Ltd. Pharmaceutical compositions and methods useful for modulating angiogenesis and inhibiting metastasis and tumor fibrosis
US8597911B2 (en) * 2003-06-11 2013-12-03 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Process for producing antibodies
SI2185198T1 (sl) 2007-08-02 2015-04-30 Gilead Biologics, Inc. Inhibitorji LOX in LOXL2 ter njihova uporaba
US20090271163A1 (en) * 2007-12-06 2009-10-29 Wyeth Crystal structure of human factor VIII and uses thereof
US9107935B2 (en) 2009-01-06 2015-08-18 Gilead Biologics, Inc. Chemotherapeutic methods and compositions
US9079942B2 (en) * 2009-02-09 2015-07-14 Epitomics, Inc. CDR-anchored amplification method
US20100317539A1 (en) * 2009-06-12 2010-12-16 Guo-Liang Yu Library of Engineered-Antibody Producing Cells
CA2771702A1 (en) 2009-08-21 2011-02-24 Gilead Biologics, Inc. Catalytic domains from lysyl oxidase and loxl2
US8293483B2 (en) 2009-09-11 2012-10-23 Epitomics, Inc. Method for identifying lineage-related antibodies
SG183174A1 (en) 2010-02-04 2012-09-27 Gilead Biologics Inc Antibodies that bind to lysyl oxidase-like 2 (loxl2) and methods of use therefor
TW201437228A (zh) 2010-02-23 2014-10-01 Genentech Inc 用於診斷及治療腫瘤之組合物及方法
CA2817455C (en) * 2010-12-23 2019-04-16 F. Hoffmann-La Roche Ag Detection of a polypeptide dimer by a bivalent binding agent
CA2817928C (en) 2010-12-23 2019-10-01 Michael Gerg Detection of a posttranslationally modified polypeptide by a bi-valent binding agent
CA2817448C (en) 2010-12-23 2019-01-22 F. Hoffmann-La Roche Ag Binding agent
EP2655413B1 (en) 2010-12-23 2019-01-16 F.Hoffmann-La Roche Ag Polypeptide-polynucleotide-complex and its use in targeted effector moiety delivery
KR101718200B1 (ko) 2012-05-21 2017-03-21 제넨테크, 인크. 항-Ly6E 항체 및 면역접합체 및 사용 방법
AR091961A1 (es) 2012-08-02 2015-03-11 Genentech Inc Inmunoconjugados y anticuerpos anti-etbr (receptor de endotelina b)
EP2879711A4 (en) 2012-08-02 2016-03-16 Genentech Inc ANTI-ETBR ANTIBODIES AND IMMUNOCONJUGATES
EP3722320A3 (en) * 2012-10-25 2020-12-30 Bioverativ USA Inc. Anti-complement c1s antibodies and uses thereof
PT2914291T (pt) 2012-11-02 2022-05-05 Bioverativ Usa Inc Anticorpos anti-complemento c1s e suas utilizações
CN105658237B (zh) 2013-10-21 2021-03-09 基因泰克公司 抗Ly6E抗体及使用方法
HRP20230093T1 (hr) 2015-04-06 2023-03-31 Bioverativ Usa Inc. Humanizirana anti-c1s protutijela i postupci njihove primjene
US11365238B2 (en) * 2015-12-07 2022-06-21 Camas Incorporated Sequencing chicken antibody repertoires following hyperimmunization and the identification of antigen-specific monoclonal antibodies
CN116554320A (zh) 2016-10-12 2023-08-08 美国比奥维拉迪维股份有限公司 抗C1s抗体及其使用方法
CN110494163A (zh) * 2017-02-06 2019-11-22 应用干细胞有限公司 凝血因子viii模拟蛋白及其用途
CA3113797A1 (en) * 2018-08-01 2020-02-06 Novo Nordisk A/S Improved procoagulant antibodies

Citations (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3773919A (en) 1969-10-23 1973-11-20 Du Pont Polylactide-drug mixtures
EP0058481A1 (en) 1981-02-16 1982-08-25 Zeneca Limited Continuous release pharmaceutical compositions
US4474893A (en) 1981-07-01 1984-10-02 The University of Texas System Cancer Center Recombinant monoclonal antibodies
EP0133988A2 (de) 1983-08-02 1985-03-13 Hoechst Aktiengesellschaft Regulatorische Peptide enthaltende pharmazeutische Präparate mit protrahierter Freisetzung und Verfahren zu deren Herstellung
EP0239400A2 (en) 1986-03-27 1987-09-30 Medical Research Council Recombinant antibodies and methods for their production
JPH02145187A (ja) 1988-11-17 1990-06-04 Hybritech Inc ２機能性キメラ抗体
US4945050A (en) 1984-11-13 1990-07-31 Cornell Research Foundation, Inc. Method for transporting substances into living cells and tissues and apparatus therefor
EP0404097A2 (de) 1989-06-22 1990-12-27 BEHRINGWERKE Aktiengesellschaft Bispezifische und oligospezifische, mono- und oligovalente Rezeptoren, ihre Herstellung und Verwendung
WO1992003918A1 (en) 1990-08-29 1992-03-19 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
WO1993011161A1 (en) 1991-11-25 1993-06-10 Enzon, Inc. Multivalent antigen-binding proteins
WO1993012227A1 (en) 1991-12-17 1993-06-24 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
WO1993017706A1 (en) 1992-03-11 1993-09-16 Agracetus, Inc. Genetic vaccine for immunodeficiency viruses
JPH05304992A (ja) 1991-06-20 1993-11-19 Takeda Chem Ind Ltd ハイブリッド・モノクローナル抗体および抗体含有薬剤
WO1994002602A1 (en) 1992-07-24 1994-02-03 Cell Genesys, Inc. Generation of xenogeneic antibodies
WO1994025585A1 (en) 1993-04-26 1994-11-10 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
WO1996002576A1 (en) 1994-07-13 1996-02-01 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Reconstituted human antibody against human interleukin-8
WO1996033735A1 (en) 1995-04-27 1996-10-31 Abgenix, Inc. Human antibodies derived from immunized xenomice
WO1996034096A1 (en) 1995-04-28 1996-10-31 Abgenix, Inc. Human antibodies derived from immunized xenomice
WO1999051743A1 (en) 1998-04-03 1999-10-14 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Humanized antibody against human tissue factor (tf) and process for constructing humanized antibody
WO2001019992A2 (en) 1999-09-14 2001-03-22 Baxter Aktiengesellschaft FACTOR IX/FACTOR IXa ANTIBODIES AND ANTIBODY DERIVATIV ES
JP2002112369A (ja) 2000-10-03 2002-04-12 Sharp Corp 端末網制御装置
JP2003012648A (ja) 2001-05-02 2003-01-15 Pfizer Prod Inc ５ｈｔ７受容体アゴニスト活性を有する４−（２−ピリジル）ピペリジン類
WO2003042231A2 (de) 2001-11-12 2003-05-22 Gundram Jung Bispezifisches anti-cd28-antikörper-molekül
EP1505148A1 (en) 2002-04-26 2005-02-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of screening for agonistic antibodies

Family Cites Families (30)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US4208479A (en) * 1977-07-14 1980-06-17 Syva Company Label modified immunoassays
US4444878A (en) * 1981-12-21 1984-04-24 Boston Biomedical Research Institute, Inc. Bispecific antibody determinants
JPH01171288A (ja) 1987-12-25 1989-07-06 Nec Corp 埋め込み形半導体レーザ
US6010902A (en) * 1988-04-04 2000-01-04 Bristol-Meyers Squibb Company Antibody heteroconjugates and bispecific antibodies for use in regulation of lymphocyte activity
TW212184B (ja) * 1990-04-02 1993-09-01 Takeda Pharm Industry Co Ltd
JPH05184383A (ja) 1990-06-19 1993-07-27 Dainabotsuto Kk 二重特異性抗体
JPH05199894A (ja) 1990-08-20 1993-08-10 Takeda Chem Ind Ltd 二重特異性抗体および抗体含有薬剤
JPH05213775A (ja) 1992-02-05 1993-08-24 Otsuka Pharmaceut Co Ltd Ｂｆａ抗体
US6129914A (en) 1992-03-27 2000-10-10 Protein Design Labs, Inc. Bispecific antibody effective to treat B-cell lymphoma and cell line
US5744446A (en) * 1992-04-07 1998-04-28 Emory University Hybrid human/animal factor VIII
US5945311A (en) * 1994-06-03 1999-08-31 GSF--Forschungszentrumfur Umweltund Gesundheit Method for producing heterologous bi-specific antibodies
CA2207869A1 (en) 1994-12-02 1996-06-06 Chiron Corporation Method of promoting an immune response with a bispecific antibody
MA24512A1 (fr) * 1996-01-17 1998-12-31 Univ Vermont And State Agrienl Procede pour la preparation d'agents anticoagulants utiles dans le traitement de la thrombose
JPH10165184A (ja) 1996-12-16 1998-06-23 Tosoh Corp 抗体、遺伝子及びキメラ抗体の製法
US20030207346A1 (en) * 1997-05-02 2003-11-06 William R. Arathoon Method for making multispecific antibodies having heteromultimeric and common components
US20020062010A1 (en) * 1997-05-02 2002-05-23 Genentech, Inc. Method for making multispecific antibodies having heteromultimeric and common components
DE19725586C2 (de) * 1997-06-17 1999-06-24 Gsf Forschungszentrum Umwelt Verfahren zur Herstellung von Zellpräparaten zur Immunisierung mittels heterologer intakter bispezifischer und/oder trispezifischer Antikörper
US6207805B1 (en) 1997-07-18 2001-03-27 University Of Iowa Research Foundation Prostate cell surface antigen-specific antibodies
WO2000009560A2 (en) * 1998-08-17 2000-02-24 Abgenix, Inc. Generation of modified molecules with increased serum half-lives
WO2001090192A2 (en) 2000-05-24 2001-11-29 Imclone Systems Incorporated Bispecific immunoglobulin-like antigen binding proteins and method of production
US7732133B2 (en) 2000-07-17 2010-06-08 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Screening methods for biologically active ligands
EP1327681A4 (en) 2000-10-20 2004-09-01 Chugai Pharmaceutical Co Ltd Degraded agonist antibodies
AU2003227504A1 (en) * 2002-04-15 2003-10-27 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha METHOD OF CONSTRUCTING scDb LIBRARY
EP1510943A4 (en) * 2002-05-31 2007-05-09 Celestar Lexico Sciences Inc INTERACTION PREDICTION DEVICE
EP1605058B1 (en) * 2003-01-21 2009-05-13 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of screening light chain of antibody light chains
WO2005035753A1 (ja) * 2003-10-10 2005-04-21 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha 機能蛋白質を代替する二重特異性抗体
DK1876236T3 (da) * 2005-04-08 2014-10-20 Chugai Pharmaceutical Co Ltd Antistof som funktionel erstatning for blodkoagulationsfaktor VIII
EP1908482B1 (en) * 2005-06-10 2017-09-06 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Stabilizer for protein preparation comprising meglumine and use thereof
CA2647846C (en) * 2006-03-31 2016-06-21 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for controlling blood pharmacokinetics of antibodies
EP4218801A3 (en) * 2006-03-31 2023-08-23 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody modification method for purifying bispecific antibody

Patent Citations (24)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US3773919A (en) 1969-10-23 1973-11-20 Du Pont Polylactide-drug mixtures
EP0058481A1 (en) 1981-02-16 1982-08-25 Zeneca Limited Continuous release pharmaceutical compositions
US4474893A (en) 1981-07-01 1984-10-02 The University of Texas System Cancer Center Recombinant monoclonal antibodies
EP0133988A2 (de) 1983-08-02 1985-03-13 Hoechst Aktiengesellschaft Regulatorische Peptide enthaltende pharmazeutische Präparate mit protrahierter Freisetzung und Verfahren zu deren Herstellung
US4945050A (en) 1984-11-13 1990-07-31 Cornell Research Foundation, Inc. Method for transporting substances into living cells and tissues and apparatus therefor
EP0239400A2 (en) 1986-03-27 1987-09-30 Medical Research Council Recombinant antibodies and methods for their production
JPH02145187A (ja) 1988-11-17 1990-06-04 Hybritech Inc ２機能性キメラ抗体
EP0404097A2 (de) 1989-06-22 1990-12-27 BEHRINGWERKE Aktiengesellschaft Bispezifische und oligospezifische, mono- und oligovalente Rezeptoren, ihre Herstellung und Verwendung
WO1992003918A1 (en) 1990-08-29 1992-03-19 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
JPH05304992A (ja) 1991-06-20 1993-11-19 Takeda Chem Ind Ltd ハイブリッド・モノクローナル抗体および抗体含有薬剤
WO1993011161A1 (en) 1991-11-25 1993-06-10 Enzon, Inc. Multivalent antigen-binding proteins
WO1993012227A1 (en) 1991-12-17 1993-06-24 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
WO1993017706A1 (en) 1992-03-11 1993-09-16 Agracetus, Inc. Genetic vaccine for immunodeficiency viruses
WO1994002602A1 (en) 1992-07-24 1994-02-03 Cell Genesys, Inc. Generation of xenogeneic antibodies
WO1994025585A1 (en) 1993-04-26 1994-11-10 Genpharm International, Inc. Transgenic non-human animals capable of producing heterologous antibodies
WO1996002576A1 (en) 1994-07-13 1996-02-01 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Reconstituted human antibody against human interleukin-8
WO1996033735A1 (en) 1995-04-27 1996-10-31 Abgenix, Inc. Human antibodies derived from immunized xenomice
WO1996034096A1 (en) 1995-04-28 1996-10-31 Abgenix, Inc. Human antibodies derived from immunized xenomice
WO1999051743A1 (en) 1998-04-03 1999-10-14 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Humanized antibody against human tissue factor (tf) and process for constructing humanized antibody
WO2001019992A2 (en) 1999-09-14 2001-03-22 Baxter Aktiengesellschaft FACTOR IX/FACTOR IXa ANTIBODIES AND ANTIBODY DERIVATIV ES
JP2002112369A (ja) 2000-10-03 2002-04-12 Sharp Corp 端末網制御装置
JP2003012648A (ja) 2001-05-02 2003-01-15 Pfizer Prod Inc ５ｈｔ７受容体アゴニスト活性を有する４−（２−ピリジル）ピペリジン類
WO2003042231A2 (de) 2001-11-12 2003-05-22 Gundram Jung Bispezifisches anti-cd28-antikörper-molekül
EP1505148A1 (en) 2002-04-26 2005-02-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of screening for agonistic antibodies

Non-Patent Citations (32)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"An efficient route to human bispecific IgG", NATURE BIOTECHNOLOGY, vol. 16, 1998, pages 677 - 681
"Remington's Pharmaceutical Science", 1980
"Sequences of proteins of immunological interest", 1991, PUBLIC HEALTH SERVICE NATIONAL INSTITUTES OF HEALTH
ADOLPH: "Virus Genome Method", 1996, CRC PRESS
BEBBINGTON CR ET AL., BIO/TECHNOLOGY, vol. 10, 1992, pages 169
CARTER P.: "Bispecific human IgG by design", J. IMMUNOL. METHODS, vol. 248, no. 1-2, 2001, pages 7 - 15, XP002974199 *
DOMANSKI P ET AL., J OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, vol. 270, 1995, pages 21606 - 11
FRANCOIS C ET AL., J. IMMUNOL., vol. 150, 1993, pages 4610 - 19
FRANCOIS C. ET AL.: "Construction of a bispecific antibody reacting with the alpha- and beta-chains of the human IL-2 receptor", J. IMMUNOL., vol. 150, no. 10, 1993, pages 4610 - 4619, XP002974197 *
GROSSE-HOVEST L ET AL., EUR. J. IMMUNOL., vol. 33, 2003, pages 1334 - 40
HUSE WD ET AL., SCIENCE, vol. 246, 1989, pages 1275
KANG AS ET AL., PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 88, 1991, pages 4363
KIM S.H. ET AL.: "Mammalian type I interferon receptors consists of two subunits: IFNaR1 and IFNaR2", GENE, vol. 196, no. 1-2, 1997, pages 279 - 286, XP004126355 *
KROESEN BJ ET AL., BR. J. CANCER, vol. 70, 1994, pages 652 - 61
LANGER ET AL., J.BIOMED.MATER.RES, vol. 15, 1981, pages 267 - 277
LANGER, CHEMTECH, vol. 12, 1982, pages 98 - 105
LE DOUSSAL JM ET AL., J. NUCL. MED., vol. 34, 1993, pages 1662 - 71
LU D. ET AL.: "Di-antibody: a novel tetravalent bispecific antibody molecule by design", J. IMMUNOL. METHODS, vol. 279, no. 1-2, August 2003 (2003-08-01), pages 219 - 232, XP004455322 *
LU D. ET AL.: "Fab-scFv fusion protein: an efficient approach to production of bispecific antibody fragments", J. IMMUNOL. METHODS, vol. 267, no. 2, 2002, pages 213 - 226, XP004375842 *
LUTFAUA G ET AL., EMBO J, vol. 14, 1995, pages 5100 - 8
MCCAFFERTY J ET AL., NATURE, vol. 348, 1990, pages 552
MILSTEIN C; UELLO AC ET AL., NATURE, vol. 305, 1983, pages 537
SATO K ET AL., CANCER RESEARCH, vol. 53, 1993, pages 851 - 856
See also references of EP1693448A4
SEGAL D.M. ET AL.: "Introduction: bispecific antibodies", J. IMMUNOL. METHODS, vol. 248, no. 1-2, 2001, pages 1 - 6, XP003005880 *
SIDMAN ET AL., BIOPOLYMERS, vol. 22, 1983, pages 547 - 556
STICKNEY DR ET AL., CANCER RES., vol. 51, 1991, pages 6650 - 5
SURESH MR ET AL., PROC. NATL. ACAD. SCI. USA, vol. 83, 1986, pages 7989 - 93
UZE G ET AL., CELL, vol. 60, 1990, pages 225 - 34
WEINER GJ ET AL., J. IMMUNOL., vol. 152, 1994, pages 2385
WEINER LM ET AL., CANCER RES., vol. 53, 1993, pages 94 - 100
XIANG J ET AL., MOL. IMMUNOL., vol. VOL.27, 1990, pages 809

Cited By (69)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8062635B2 (en) 2003-10-10 2011-11-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Bispecific antibody substituting for functional proteins
US11168344B2 (en) 2005-03-31 2021-11-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for producing polypeptides by regulating polypeptide association
US10011858B2 (en) 2005-03-31 2018-07-03 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for producing polypeptides by regulating polypeptide association
EP1876236A4 (en) * 2005-04-08 2009-07-29 Chugai Pharmaceutical Co Ltd ANTIBODY AS A FUNCTIONAL REPLACEMENT FOR BLOOD CREATION FACTOR VIII
US12473375B2 (en) 2006-03-31 2025-11-18 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for controlling blood pharmacokinetics of antibodies
US9670269B2 (en) 2006-03-31 2017-06-06 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of modifying antibodies for purification of bispecific antibodies
US10934344B2 (en) 2006-03-31 2021-03-02 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of modifying antibodies for purification of bispecific antibodies
US11046784B2 (en) 2006-03-31 2021-06-29 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods for controlling blood pharmacokinetics of antibodies
US12116414B2 (en) 2007-09-26 2024-10-15 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US9096651B2 (en) 2007-09-26 2015-08-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US9688762B2 (en) 2007-09-26 2017-06-27 Chugai Sciyaku Kabushiki Kaisha Modified antibody constant region
US12122840B2 (en) 2007-09-26 2024-10-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US9828429B2 (en) 2007-09-26 2017-11-28 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US11248053B2 (en) 2007-09-26 2022-02-15 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method of modifying isoelectric point of antibody via amino acid substitution in CDR
US11332533B2 (en) 2007-09-26 2022-05-17 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Modified antibody constant region
US9399680B2 (en) 2007-12-05 2016-07-26 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Nucleic acids encoding anti-NR10 antibodies
US11359194B2 (en) 2008-04-11 2022-06-14 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding two or more antigen molecules repeatedly
US9890377B2 (en) 2008-04-11 2018-02-13 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to two or more antigen molecules repeatedly
US9868948B2 (en) 2008-04-11 2018-01-16 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to two or more antigen molecules repeatedly
US10472623B2 (en) 2008-04-11 2019-11-12 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding two or more antigen molecules repeatedly
US11371039B2 (en) 2008-04-11 2022-06-28 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to two or more antigen molecules repeatedly
US10662245B2 (en) 2008-09-26 2020-05-26 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of reducing IL-6 activity for disease treatment
US10066018B2 (en) 2009-03-19 2018-09-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody constant region variant
US9228017B2 (en) 2009-03-19 2016-01-05 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody constant region variant
US10253091B2 (en) 2009-03-19 2019-04-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody constant region variant
US11612562B2 (en) 2010-01-20 2023-03-28 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Solution preparation containing stabilized antibody
EP3318633A1 (en) 2010-11-17 2018-05-09 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Multi-specific antigen-binding molecule having alternative function to function of blood coagulation factor viii
US10450381B2 (en) 2010-11-17 2019-10-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Methods of treatment that include the administration of bispecific antibodies
WO2012067176A1 (ja) 2010-11-17 2012-05-24 中外製薬株式会社 血液凝固第viii因子の機能を代替する機能を有する多重特異性抗原結合分子
KR20130108407A (ko) 2010-11-17 2013-10-02 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액응고 제viii 인자의 기능을 대체하는 기능을 갖는 다중특이성 항원 결합 분자
US9334331B2 (en) 2010-11-17 2016-05-10 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Bispecific antibodies
KR20190033644A (ko) 2010-11-17 2019-03-29 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액응고 제viii 인자의 기능을 대체하는 기능을 갖는 다중특이성 항원 결합 분자
US11891434B2 (en) 2010-11-30 2024-02-06 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antigen-binding molecule capable of binding to plurality of antigen molecules repeatedly
US11124576B2 (en) 2013-09-27 2021-09-21 Chungai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for producing polypeptide heteromultimer
WO2015046554A1 (ja) 2013-09-30 2015-04-02 中外製薬株式会社 改変されたヘルパーファージを用いて抗原結合分子を作製する方法
EP3940065A1 (en) 2013-09-30 2022-01-19 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for producing antigen-binding molecule using modified helper phage
KR20240063162A (ko) 2014-06-20 2024-05-09 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액 응고 제 viii 인자 및/또는 활성화 혈액 응고 제 viii 인자의 활성의 저하 내지 결손에 의해 발증 및/또는 진전되는 질환의 예방 및/또는 치료에 이용되는 의약 조성물
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KR20170015517A (ko) 2014-06-20 2017-02-08 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액 응고 제 viii 인자 및/또는 활성화 혈액 응고 제 viii 인자의 활성의 저하 내지 결손에 의해 발증 및/또는 진전되는 질환의 예방 및/또는 치료에 이용되는 의약 조성물
US11001643B2 (en) 2014-09-26 2021-05-11 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Cytotoxicity-inducing therapeutic agent
US11150254B2 (en) 2014-09-26 2021-10-19 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for measuring reactivity of FVIII
US11214623B2 (en) 2014-09-26 2022-01-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody capable of neutralizing substance having activity alternative to function of coagulation factor VIII (FVIII)
US9975966B2 (en) 2014-09-26 2018-05-22 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Cytotoxicity-inducing theraputic agent
US10774148B2 (en) 2015-02-27 2020-09-15 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Composition for treating IL-6-related diseases
US12359001B2 (en) 2015-04-01 2025-07-15 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for producing polypeptide hetero-oligomer
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US12168697B2 (en) 2015-12-25 2024-12-17 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Bispecific antibodies which bind blood coagulation factor VIII and have enhanced activity, and methods of use thereof for treating bleeding and associated conditions
WO2017110980A1 (ja) 2015-12-25 2017-06-29 中外製薬株式会社 増強された活性を有する抗体及びその改変方法
US11649262B2 (en) 2015-12-28 2023-05-16 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Method for promoting efficiency of purification of Fc region-containing polypeptide
US12460014B2 (en) 2016-04-28 2025-11-04 Chugai Seiyaku Kabushiki Kaisha Antibody-containing preparation
WO2018021450A1 (ja) 2016-07-29 2018-02-01 中外製薬株式会社 増強されたｆｖｉｉｉ補因子機能代替活性を有する二重特異性抗体
KR20190037271A (ko) 2016-07-29 2019-04-05 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 증강된 fviii 보인자 기능 대체 활성을 갖는 이중특이성 항체
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US12509511B2 (en) 2017-05-02 2025-12-30 National Center Of Neurology And Psychiatry Method for predicting and evaluating therapeutic effect in diseases related to IL-6 and neutrophils
US11851486B2 (en) 2017-05-02 2023-12-26 National Center Of Neurology And Psychiatry Method for predicting and evaluating therapeutic effect in diseases related to IL-6 and neutrophils
US11919969B2 (en) 2017-06-22 2024-03-05 Kymab Limited Bispecific antibodies for factor IX and factor X
KR20200049764A (ko) 2017-09-29 2020-05-08 추가이 세이야쿠 가부시키가이샤 혈액 응고 제 viii 인자(fviii) 보인자 기능 대체 활성을 갖는 다중특이성 항원 결합 분자 및 당해 분자를 유효 성분으로서 함유하는 약학적 제제
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US11976135B2 (en) 2018-12-21 2024-05-07 Kymab Limited FIXaxFX bispecific antibody with common light chain
US10815308B2 (en) 2018-12-21 2020-10-27 Kymab Limited FIXaxFX bispecific antibody with common light chain
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