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WO2005043166A1 - 子宮腺癌の診断薬及び腺癌細胞の検出方法 - Google Patents

子宮腺癌の診断薬及び腺癌細胞の検出方法 Download PDF

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WO2005043166A1
WO2005043166A1 PCT/JP2004/015784 JP2004015784W WO2005043166A1 WO 2005043166 A1 WO2005043166 A1 WO 2005043166A1 JP 2004015784 W JP2004015784 W JP 2004015784W WO 2005043166 A1 WO2005043166 A1 WO 2005043166A1
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antibody
cytokeratin
cells
adenocarcinoma
cell group
Prior art date
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PCT/JP2004/015784
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English (en)
French (fr)
Inventor
Koichi Nakano
Miharu Watanabe
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Sysmex Corp
Original Assignee
Sysmex Corp
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Publication date
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    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/574Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor for cancer
    • G01N33/57407Specifically defined cancers
    • G01N33/57411Specifically defined cancers of cervix
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K16/00Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies
    • C07K16/18Immunoglobulins [IGs], e.g. monoclonal or polyclonal antibodies against material from animals or humans

Definitions

  • the present invention relates to an adenocarcinoma diagnostic agent and a method for detecting adenocarcinoma cells that specifically detect the presence or absence of adenocarcinoma cells from a cell group in the cervix.
  • Cervical cancer is classified into squamous cell carcinoma and adenocarcinoma, and it is said that 95% of cervical cancer is squamous cell carcinoma.
  • the proportion of adenocarcinoma has been increasing.
  • Adenocarcinoma is relatively frequent in the younger population and has a clinical problem due to poor prognosis (Lea JS, Sheets EE, Wenham RM, Duska LR, Coleman RL, Miller DS, Schorge JO.
  • cytodiagnosis that is, a method in which cells are stained with Papanicolaou stain to determine the degree of malignancy based on the morphology
  • the adenocarcinoma cells are found to be similar to normal and malignant cells, so that adenocarcinoma is detected Is difficult (Channg WC, Matisic JP, Zhou C, Thorns on T, Clement PB, Hayes MM. Cancer. 1999; 87 (1): 5-11) (Gallup DG, Harper RH, Stock RJ. Gynecol 1985; 65 (3): 416-422 .;).
  • the likelihood of adenocarcinoma is high from the symptoms and local findings in many cases.
  • SCC squamous cell carcinoma
  • SCC antibodies are indistinguishable from squamous cell carcinomas because they have a low positive rate for adenocarcinoma and are not specific for adenocarcinoma. Also, for early cancer Since the positive rate is not high, it is hard to say that it is effective as a diagnostic agent for screening mainly aimed at early detection.
  • cytokeratin which is a fibrous protein present in cells
  • a cytokeratin antibody capable of directly binding to this keratin marker is used as a diagnostic agent.
  • Non-Patent Document 1 discloses detecting colon cancer using cytokeratin 8 antibody.
  • Patent Document 2 discloses a uterine cancer detection reagent using a monoclonal antibody that binds to cytokeratin 19.
  • cytokeratin 19 reacts not only with adenocarcinoma cells but also with squamous cell carcinoma, it cannot be used to distinguish between squamous cell carcinoma and adenocarcinoma.
  • Patent Document 1 USP4775620
  • Patent Document 2 USP5288614
  • Non-patent Document l Makin CA, Bobrow LG, Bodmer WF.Monoclonal ant ibody to cytokeratin for use in routine histopathology.J Clin Pat hoi. 1984; 37 (9): 975-983.
  • the present invention has been made in view of the above circumstances, and has as its object to provide a diagnostic agent capable of determining the presence or absence of adenocarcinoma cells from a cervical cell group collected for cytology,
  • a diagnostic agent or a diagnostic agent kit capable of specifically detecting adenocarcinoma in distinction from squamous cell carcinoma cells, and a method for detecting adenocarcinoma cells.
  • the diagnostic agent for adenocarcinoma of the present invention is a reagent for diagnosing the presence or absence of adenocarcinoma from a sample of a cervical cell group, and contains a cytokeratin 8 antibody. It also contains the HIK1083 antibody.
  • the reagent kit for uterine adenocarcinoma of the present invention comprises a first reagent containing a cytokeratin 8 antibody and a second reagent containing a secondary antibody that is capable of binding to and labeled with the cytokeratin 8 antibody.
  • the method for detecting adenocarcinoma cells of the present invention is a method for detecting adenocarcinoma cells from a specimen of a cervical cell group, and includes a step of reacting the cell group with a cytokeratin 8 antibody.
  • the method may include a step of removing an unreacted liquid to collect a cell group; and a step of detecting a complex of the cytokeratin 8 antibody and the adenocarcinoma cell from the collected cell group.
  • the specimen may be a cervical tissue or an individually dispersed cell group.
  • the sorting method of the present invention is a method for sorting adenocarcinoma cells from a specimen of a cervical cell group containing squamous cell carcinoma cells and adenocarcinoma cells, wherein the cell group is labeled with cytokeratin 8 Reacting the antibody with an antibody; and detecting a complex of the cytokeratin 8 antibody and adenocarcinoma cells.
  • the diagnostic agent and the diagnostic agent kit of the present invention contain a cytokeratin 8 antibody that can bind to cytokeratin 8 that is a marker specific to adenocarcinoma cells
  • normal Gland cells can be distinguished from adenocarcinoma cells, and can also be distinguished from squamous cell carcinoma cells. Therefore, by using the diagnostic agent or the diagnostic agent kit of the present invention, adenocarcinoma cells can be specifically detected not only in tissue diagnosis but also in the strength of each dispersed cell group.
  • FIG. 1 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 200) of a tissue specimen having cervical adenocarcinoma.
  • FIG. 2 is a photomicrograph ( ⁇ 200) of a tissue sample having cervical adenocarcinoma stained with hematoxylin and eosin.
  • FIG. 3 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 200) of normal cervical squamous epithelium.
  • FIG. 4 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 200) of normal cervical gland tissue.
  • FIG. 5 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 400) of a child cervix adenocarcinoma cell (HeLa cell).
  • FIG. 6 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 400) of a child squamous cell carcinoma cell (C33A cell).
  • FIG. 7 is a fluorescence micrograph ( ⁇ 400) of squamous epithelial cells of the oral mucosa.
  • the diagnostic agent for cervical adenocarcinoma of the present invention contains a cytokeratin 8 antibody.
  • Cytokeratin is one of the cytoplasmic fibrous structures, where the intermediate filaments It belongs to the protein group to be formed. Cytokeratin 8 is contained not only in adenocarcinoma cells but also in squamous cell carcinoma cells, normal gland cells, and squamous cell epithelial cells, but the content is predominant in adenocarcinoma cells. Therefore, since the cytokeratin 8 antibody preferentially binds to adenocarcinoma cells, adenocarcinoma cells can be detected from normal cells and squamous cell carcinoma cells.
  • the cytokeratin 8 antibody used in the present invention is not particularly limited as long as it has an antibody capable of binding to cytokeratin 8; the structure of the Fc fragment, the constant region of Fab, and the like are not particularly limited.
  • an "anti-human cytokeratin 8, 35H11 mouse monoclonal antibody" commercially available from Dako's Cytometry can be used.
  • the diagnostic agent for adenocarcinoma of the present invention preferably contains physiological saline, a phosphate buffer, or the like as a solvent for the cytokeratin 8 antibody.
  • Saline solution (PBS) and PBS containing a surfactant (for example, PBST) are preferably used.
  • the diagnostic agent of the present invention may contain HIK1083 antibody in addition to cytokeratin 8 antibody.
  • HIK1083 antibody specifically reacts with mucus (special mucin) produced by ovarian cancer cells and ovarian and cervical adenocarcinoma cells. Therefore, the combined use of the cytokeratin 8 antibody and the HIK1083 antibody makes it possible to detect nearly 100% of childhood cervical adenocarcinoma.
  • the diagnostic agent of the present invention may label the cytokeratin 8 antibody itself! /, And use the cytokeratin 8 antibody as a primary antibody, A secondary antibody that binds to the primary antibody may be labeled.
  • the reagent of the present invention becomes a diagnostic reagent kit that also has a combined power of the first reagent containing the cytokeratin 8 antibody and the second reagent containing the labeled secondary antibody.
  • Labels for the primary antibody (cytokeratin 8 antibody) and the secondary antibody are not particularly limited, and a conventionally known labeled conjugate such as a fluorescent substance, a radioactive substance, or an enzyme can be used.
  • the diagnostic agent or diagnostic agent kit of the present invention uses a nonspecific protein (for example, serum) to previously coat the tissue surface of a specimen with a protein (eg, serum) in order to enhance the specificity of the reaction between cytokeratin 8 antibody and adenocarcinoma cells. It is preferable to cover. Therefore, the diagnostic agent or diagnostic agent kit of the present invention, It is preferable to use the antibody in combination with a reagent (blocking reagent) for blocking nonspecific reaction to a protein other than the protein targeted by the cytokeratin 8 antibody.
  • a reagent blocking reagent
  • a protein having no specificity that is, serum, IgG, BSA, skim milk or the like can be used, and may be appropriately diluted with physiological saline or the like.
  • the method for detecting adenocarcinoma cells of the present invention includes a step of reacting a specimen with a cytokeratin 8 antibody.
  • the specimen to be subjected to the method for detecting adenocarcinoma of the present invention may be a cervical cell group, a collected tissue, or a cell group dispersed in individual cells.
  • the tissue does not need to undergo the mucus removal treatment, but it is preferable to perform the mucus removal treatment on the dispersed cell group.
  • the method of removing mucus is not particularly limited, but it is preferable that the method does not affect the morphology of cells.
  • a method for removing mucus by using a cysteine compound proposed by the present inventors may be applied!
  • cysteine-based compound methyl cysteine, acetyl cysteine, L-cystine and the like can be used as the cysteine-based compound, and water, physiological saline, PBS (phosphate buffered saline) can be used as a solvent for the cysteine-based compound. Buffer solutions such as dani saline) and Tris.
  • the content of the cysteine compound is preferably 5% by mass or more, more preferably 10 to 20% by mass. If the amount is less than 5% by mass, the mucus removing action is insufficient.
  • aldehyde compound paraformaldehyde, formaldehyde, glutaraldehyde, or a mixture thereof can be used.
  • a solvent for the aldehyde compound any solvent may be used as long as it does not react with the aldehyde group. Water such as distilled water, ion-exchanged water, and purified water is used.
  • picric acid is preferably contained in an amount of about 0.1 to 0.4% by mass. Picric acid can enhance the tissue permeability of aldehyde compounds.
  • the protease include trypsin, pronase, pepsin, elastase, collagenase and the like, and one or a combination of two or more thereof may be used.
  • collagenase is preferably used.
  • the time required for dispersal can be determined within a relatively wide range, so that differences in the appropriate digestion time due to individual differences in the sample do not matter.
  • the type of collagenase is not particularly limited, and it may be bacterial or animal, and the substrate specificity of animal collagenase is not particularly limited.
  • As a solvent for the protease any solvent may be used as long as it does not degrade protease, and preferably, water such as distilled water, ion-exchanged water, and purified water is used.
  • the concentration of the protease is appropriately determined according to the type of the enzyme. Generally, about 0.05-0.1% by mass is preferred for enzymes having high digestive power such as trypsin, and about 0.1-1.0% by mass is preferred for collagenase.
  • the blocking reagent serum, IgG, BSA, skim milk, and the like as described above for the diagnostic agent of the present invention can be used.
  • the specimen in which the non-specific reaction has been blocked is reacted with cytokeratin 8 antibody.
  • the specimen is a tissue, it is only necessary to leave the tissue in contact with the solution containing cytokeratin 8 antibody on the tissue surface for about 30 minutes.
  • the reaction is performed by mixing the cytokeratin 8 antibody-containing solution and the cell group so as to be uniform.
  • the bound substance of the adenocarcinoma cells and the cytokeratin 8 antibody should be detected based on the label of the cytokeratin 8 antibody.
  • cytokeratin 8 antibody is labeled, otherwise, it is necessary to separately react with the labeled compound.
  • a secondary antibody having a binding site for cytokeratin 8 antibody and having a labeled conjugate bound thereto By reacting with a secondary antibody having a binding site for cytokeratin 8 antibody and having a labeled conjugate bound thereto, a complex of cytokeratin 8 antibody and adenocarcinoma cells is detected based on the label.
  • Labeling conjugates that can be used in the present invention are not particularly limited, but include cyanine dyes such as Cy3 (registered trademark of Amersham Life Science), fluorescein isothiacine HFITC), rhodamine, fluorescent substances such as quantum dots; light scattering material, such as gold particles; absorbing substance such as ferrite; Yodo (12 radioactive material 3 ⁇ 4 like; Peruokishidaze, alkaline phosphatase Fataze, DAB (3, 3'-di ⁇ amino benzidine tetrahydronaphthalene Chloride), glucose oxidase and the like.
  • cyanine dyes such as Cy3 (registered trademark of Amersham Life Science), fluorescein isothiacine HFITC), rhodamine, fluorescent substances such as quantum dots; light scattering material, such as gold particles; absorbing substance such as ferrite; Yodo (12 radioactive material 3 ⁇ 4 like; Peruokishidaze, alkaline phosphatase Fata
  • an excess of the labeling solution is removed, and observation is performed by a method suitable for labeling.
  • a method suitable for labeling for example, in the case of a fluorescent label, fluorescence may be detected.
  • the detection method of the present invention may further include a step of reacting with the HIK1083 antibody.
  • Cytokeratin 8 antibody is an antibody against the cytoskeleton and does not easily react with some cells that produce mucus.
  • the HIK1083 antibody reacts specifically with mucus produced from cancer cells. Therefore, by using the cytokeratin 8 antibody and the HIK1083 antibody together, it becomes possible to detect cancer cells with 100% efficiency.
  • the combined use of the cytokeratin 8 antibody and the HIK1083 antibody makes it possible to detect, with high sensitivity, adenocarcinoma cells which are not significantly affected by the state of mucus removal of cells or tissues as samples.
  • the order of the reaction step with the cytokeratin 8 antibody and the reaction step with the HIK1083 antibody is not particularly limited. After reacting with the HIK1083 antibody and washing, it may be reacted with the cytokeratin 8 antibody, or it may be first reacted with the cytokeratin 8 antibody, washing and reacting with the HIK1083 antibody. In addition, use a reagent containing both cytokeratin 8 antibody and HIK1083 antibody and react it with the sample.
  • a paraffin-embedded sliced specimen fixed with formalin was deparaffinized with a biopsy sample of human ovarian adenocarcinomas, and then allowed to stand in 100% xylene at room temperature for 10 minutes. Then, after standing in 100% ethanol at room temperature for 30 seconds, 80% ethanol followed by 70% ethanol Each was left standing at room temperature for 30 seconds in ethanol. Next, it was left still at room temperature for 30 seconds in distilled water.
  • Non-specific proteins are blocked by allowing to stand at room temperature for 10 minutes in PBST containing 1% goat serum (PBS (phosphate buffered saline) containing 0.05% Tween20). did.
  • PBS phosphate buffered saline
  • the unreacted antibody reaction solution was removed by suction, and the plate was shake-washed in PBST at room temperature for 5 minutes three times.
  • FIG. 1 For reference, a photograph of the same biopsy sample stained with hematoxylin eosin is shown in FIG.
  • the nucleus is larger at the abnormal site (adenocarcinoma).
  • the abnormal site was stained with fluorescence. Therefore, it is found that the cytokeratin 8 antibody does not react with normal tissues but reacts only with the adenocarcinoma part.
  • FIG. 3 shows a fluorescence micrograph of the fluorescently stained normal squamous epithelial tissue.
  • FIG. 4 shows a fluorescence micrograph of the fluorescently stained normal gland tissue.
  • cultured cells of oral mucosal squamous epithelial cells negative Eve control
  • C33A a cultured cell line derived from cervical squamous cell carcinoma cells
  • HeLa cells a cultured cell line derived from cervical adenocarcinoma cells.
  • Each cultured cell sample solution was fixed with 100% methanol, and then centrifuged (10000 rpm, 1 minute, 4 ° C), the supernatant was removed, and the cells were collected.
  • the collected cells are washed by adding PBS and PBST (1 ml each). After centrifugation again (10 OOO rpm, 1 minute, 4 ° C), the supernatant was separated, and the cells were collected. Subsequently, 1 ml of PBST containing 1% goat serum was added, and mixed by shaking at room temperature for 10 minutes to block non-specific proteins on the cell surface. After blocking, centrifugation (10000 rpm, 1 minute, 4 ° C) was performed to remove excess blocking solution.
  • a solution containing 5 gZml of cytokeratin 8 antibody (solvent: PBST containing 1% goat serum) was added, and the mixture was shaken and mixed at room temperature for 30 minutes to allow an antibody reaction. After the reaction, centrifugation (10000 rpm, 1 minute, 4 ° C) was performed to remove unreacted antibody solution.
  • the cells were washed by adding 1 ml of PBST, the supernatant was removed, and the cells were collected.
  • the cells were washed by adding PBST to lml, the cells were collected by centrifugation (10000 rpm, 1 minute, 4 ° C), the supernatant was removed, and the cells were collected.
  • the cells were resuspended in a PBS solution containing 50% glycerol and observed with a fluorescence microscope. The results are shown in Figure 5-7.
  • the adenocarcinoma diagnostic agent of the present invention can specifically detect adenocarcinoma from the tissue of the cervical cell group and the individually dispersed cell group. It can be used for diagnostics that want to distinguish from cancer, and for diagnosis.
  • the method for detecting adenocarcinoma cells of the present invention comprises the steps of: It can be used when it is desired to specifically detect adenocarcinoma from a group tissue and an individually dispersed cell group.

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Abstract

 細胞診用に採取された子宮頸部細胞群から、腺癌細胞の有無を判定できる診断薬、特に扁平上皮癌細胞と区別して腺癌を特異的に検出できる診断薬又は診断薬キット、及び腺癌細胞の検出方法を提供する。子宮頸部細胞群のうち腺癌細胞に最も多く含まれるサイトケラチン8をサイトケラチン8抗体又はこの二次抗体を用いて腺癌細胞を検出する。HIK1083抗体を併用することにより、検出感度を上げることができる。対象とする検体は、子宮頸部組織であってもよいし、個々に分散された細胞群であってもよい。

Description

明 細 書
子宮腺癌の診断薬及び腺癌細胞の検出方法
技術分野
[0001] 本発明は、子宮頸部の細胞群から腺癌細胞の有無を特異的に検出する腺癌診断 薬及び腺癌細胞の検出方法に関する。
背景技術
[0002] 子宮頸部癌は、扁平上皮癌と腺癌に分類され、子宮頸部癌の 95%は扁平上皮癌 であると言われているが、近年腺癌の比率が増加しつつある。腺癌は比較的若年者 層に多発し、予後が悪いため臨床上問題となっている(Lea JS, Sheets EE, Wenham RM, Duska LR, Coleman RL, Miller DS, Schorge JO.
Gynecol Oncol. 2002 ; 84 (1) : 115— 119. )。
[0003] 一般的な細胞診、すなわちパパニコロウ染色で細胞を染色し、その形態から悪性 度を判定する方法では、腺癌細胞が正常と悪性細胞の形態が類似しているため、腺 癌を見つけ出すことは困難である(Channg WC, Matisic JP, Zhou C, Thorns on T, Clement PB, Hayes MM. Cancer. 1999 ; 87 (1) : 5— 11. ) (Gallup DG, Harper RH, Stock RJ. Gynecol. 1985 ; 65 (3) : 416—422.;)。このため 、腺癌については見逃されやすぐ細胞診では陰性と判定されたにもかかわらず、症 状と局所所見から腺癌の可能性が高!ヽ場合が多 ヽ。
[0004] 病理組織診では、癌細胞による細胞配列での乱れなどを観察することができるため 、細胞診より発見の度合いが高いが、生検の採取には痛みを伴うため、単なる健康 診断レベルには適用できな 、。
[0005] 一方、細胞診であっても、癌細胞に特異的なマーカーが存在すればより適格な診 断が可能となる。子宮癌に関する腫瘍マーカーとしては、従来より SCC (squamous cell carcinoma)がよく知られている。 SCCは、扁平上皮癌組織より抽出された S CC抗原であり、この SCC抗原に対する SCC抗体は、扁平上皮癌の検出に対して有 効である。しかしながら、 SCC抗体は腺癌に対する陽性率は低ぐまた腺癌に対して 特異的ではないため、扁平上皮癌と区別することはできない。また、早期癌に対する 陽性率も高くないので、早期発見を主目的とする検診用診断薬としては、有効とは言 い難い。
[0006] この他、細胞内に存在する繊維状タンパクであるサイトケラチンをマーカーとして、 このケラチンマーカーに直接結合できるサイトケラチン抗体を診断薬として利用する ことが提案されて ヽる (特許文献 1)。
[0007] 例えば、非特許文献 1には、サイトケラチン 8抗体を用いて大腸癌を検出することが 開示されている。また、特許文献 2には、サイトケラチン 19と結合するモノクローナル 抗体を用いる子宮癌検出試薬が開示されている。しかし、サイトケラチン 19は、腺癌 細胞のみならず、扁平上皮癌とも反応するため、扁平上皮癌と腺癌の区別には用い ることができない。
[0008] 特許文献 1: USP4775620
特許文献 2 :USP5288614
非特許文献 l : Makin CA, Bobrow LG, Bodmer WF. Monoclonal ant ibody to cytokeratin for use in routine histopathology. J Clin Pat hoi. 1984 ; 37 (9) : 975-983.
発明の開示
発明が解決しょうとする課題
[0009] 本発明は、以上のような事情に鑑みてなされたものであり、その目的は、細胞診用 に採取された子宮頸部細胞群から、腺癌細胞の有無を判定できる診断薬、特に扁平 上皮癌細胞と区別して腺癌を特異的に検出できる診断薬又は診断薬キット、及び腺 癌細胞の検出方法を提供することにある。
課題を解決するための手段
[0010] 本発明の腺癌診断薬は、子宮頸部細胞群の検体から腺癌の有無を診断するため の試薬であって、サイトケラチン 8抗体を含有する。さらに HIK1083抗体を含有して ちょい。
[0011] 本発明の子宮腺癌の試薬キットは、サイトケラチン 8抗体を含有する第 1試薬、及び サイトケラチン 8抗体に結合可能で且つ標識されている 2次抗体を含有する第 2試薬 を含む。 [0012] 本発明の腺癌細胞の検出方法は、子宫頸部細胞群の検体から腺癌細胞を検出す る方法であって、前記細胞群とサイトケラチン 8抗体とを反応させる工程を含む。さら に、未反応液を除去して、細胞群を回収する工程;及び回収された細胞群から、前 記サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞の複合体を検出する工程を含んでもょ 、。前記検 体は、子宫頸部組織であってもよいし、個々に分散された細胞群であってもよい。
[0013] 本発明の分別方法は、扁平上皮癌細胞と腺癌細胞を含む子宮頸部細胞群の検体 から、腺癌細胞を分別する方法であって、前記細胞群と標識されたサイトケラチン 8 抗体とを反応させる工程;及び前記サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞の複合体を検出 する工程を含む。
発明の効果
[0014] 本発明の診断薬及び診断薬キットは、腺癌細胞に特異的なマーカーであるサイトケ ラチン 8と結合できるサイトケラチン 8抗体を含有しているので、細胞形態的に類似し ている正常腺細胞と腺癌細胞を区別することができ、また扁平上皮癌細胞とも区別 することができる。よって、本発明の診断薬又は診断薬キットを用いれば、組織診断 はもちろん、個々の分散された細胞群力 も腺癌細胞を特異的に検出することができ る。
図面の簡単な説明
[0015] [図 1]子宮頸部腺癌を有する組織検体の蛍光顕微鏡写真 (200倍)である。
[図 2]子宮頸部腺癌を有する組織検体をへマトキシリンェォジン染色した顕微鏡写真 (200倍)である。
[図 3]正常子宮頸部扁平上皮組織の蛍光顕微鏡写真 (200倍)である。
[図 4]正常子宮頸部腺組織の蛍光顕微鏡写真 (200倍)である。
[図 5]子宫頸部腺癌細胞 (HeLa細胞)の蛍光顕微鏡写真 (400倍)である。
[図 6]子宫頸部扁平上皮癌細胞 (C33A細胞)の蛍光顕微鏡写真 (400倍)である。
[図 7]口腔粘膜の扁平上皮細胞の蛍光顕微鏡写真 (400倍)である。
発明を実施するための最良の形態
[0016] 本発明の子宮頸部腺癌診断薬は、サイトケラチン 8抗体を含む。
サイトケラチンは細胞質内繊維状構造物の一つで、その中の中間径フィラメントを 形成するタンパク質群に属する。サイトケラチン 8は、腺癌細胞の他、扁平上皮癌細 胞、正常な腺細胞、扁平上皮細胞にも含まれるが、その含有量は、腺癌細胞が圧倒 的に多い。従って、サイトケラチン 8抗体は、腺癌細胞に優先特異的に結合するので 、正常細胞、扁平上皮癌細胞の中から、腺癌細胞を検出することができる。
[0017] 本発明に用いられるサイトケラチン 8抗体は、サイトケラチン 8と結合できる部位を有 する抗体であればよぐ Fcフラグメントの構造、 Fabの不変領域などは特に限定しな い。例えば、ダコ 'サイトメーシヨン社から市販されている「抗ヒトサイトケラチン 8、 35H 11マウスモノクローナル抗体」を使用することができる。
[0018] 本発明の腺癌診断薬には、サイトケラチン 8抗体の溶媒として、生理食塩水、リン酸 系緩衝液等が含有されることが好ましぐ具体的には、リン酸緩衝化生理食塩水(PB S)、界面活性剤入り PBS (例えば PBST)が好ましく用いられる。
[0019] また、本発明の診断薬には、サイトケラチン 8抗体の他、 HIK1083抗体を含有する ことができる。サイトケラチン 8抗体のみを用いた場合でも子宮頸部腺癌を検出できる 力 特に検体に粘液が大量に含まれている場合などには、サイトケラチン 8抗体と反 応しにくい場合がある。この点、 HIK1083抗体は、卵巣癌細胞及び子宫頸部腺癌 細胞の産生する粘液 (特殊なムチン)に対して特異的に反応する。よって、サイトケラ チン 8抗体と HIK1083抗体との併用により、子宫頸部腺癌をほぼ 100%近く検出す ることが可能となる。
[0020] 本発明の診断薬は、サイトケラチン 8をマーカーとして腺癌細胞を検出するために、 サイトケラチン 8抗体自体を標識してもよ!/、し、サイトケラチン 8抗体を一次抗体とし、 この一次抗体と結合する二次抗体を標識してもよい。この場合、本発明の試薬は、サ イトケラチン 8抗体を含有する第 1試薬、及び標識された二次抗体を含有する第 2試 薬の組合わせ力もなる診断薬キットとなる。
[0021] 一次抗体 (サイトケラチン 8抗体)、二次抗体の標識としては、特に限定せず、蛍光 物質、放射性物質、酵素など、従来より公知の標識ィ匕合物を用いることができる。
[0022] 本発明の診断薬又は診断薬キットは、サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞との反応の 特異性を高めるために、予め検体の組織表面を、特異性のないタンパク質 (例えば 血清)で覆ってしまうことが好ましい。従って、本発明の診断薬又は診断薬キットは、 サイトケラチン 8抗体の標的となるタンパク質以外のタンパク質に対する非特異的反 応をブロックするための試薬 (ブロック試薬)と組合わせて用いることが好まし 、。
[0023] ブロック試薬としては、特異性のな!、タンパク質、すなわち血清、 IgG、 BSA、スキ ムミルクなどを用いることができ、適宜生理食塩水等で希釈したものであってもよい。
[0024] 次に、本発明の腺癌検出方法について説明する。
本発明の腺癌細胞の検出方法は、検体をサイトケラチン 8抗体と反応する工程を含 む。
[0025] 本発明の腺癌検出方法の対象となる検体は、子宮頸部細胞群であって、採取した 組織であってもよ 、し、個々の細胞に分散させた細胞群であってもよ 、。
ここで、組織は粘液除去処理の必要はないが、分散された細胞群においては粘液 除去処理を行うことが好ま U、。
[0026] 粘液除去方法としては特に限定しないが、細胞の形態等に影響を与えることがない ようにすることが好ましい。例えば、本発明者が提案しているシスティン系化合物を用 V、て粘液を除去する方法を適用してもよ!、。
[0027] ここで、システィン系化合物としては、メチルシスティン、ァセチルシスティン、 L—シス ティンなどを用いることができ、システィン系化合物の溶媒として、水、生理食塩水、 P BS (リン酸緩衝ィ匕生理食塩水)、トリス等の緩衝液を用いることができる。システィン 系化合物含有率は、 5質量%以上が好ましぐより好ましくは 10— 20質量%である。 5質量%未満では粘液除去作用が不十分だ力 である。
[0028] 個々の細胞に分散する方法しては、細胞の形態を壊すことなく分散させることが好 ましい。例えば、本発明者が提案している方法、アルデヒドィ匕合物等で安定ィ匕した後 、プロテアーゼで処理することが好ましい。
[0029] アルデヒド化合物としては、パラホルムアルデヒド、ホルムアルデヒド、グルタルアル デヒド、またはこれらの混合物を用いることができ、アルデヒドィ匕合物の溶媒としては、 アルデヒド基と反応しない溶媒であればよいが、好ましくは蒸留水、イオン交換水、精 製水等の水が用いられる。他の成分として、ピクリン酸を 0. 1-0. 4質量%程度含有 することが好ましい。ピクリン酸は、アルデヒド化合物の組織浸透性を増強することが できる。 [0030] プロテアーゼとしては、トリプシン、プロナーゼ、ペプシン、エラスターゼ、コラゲナー ゼなどが挙げられ、 1種又は 2種以上の組合わせを用いてもょ 、。
これらのうち、コラゲナーゼが好ましく用いられる。消化力が弱い酵素では、分散化 に必要な時間を比較的広い範囲内で決めることができるため、検体個々人の差異に よる適切な消化時間の差異が問題にならずに済む。コラゲナーゼの種類は特に限定 せず、細菌性、動物性のいずれであってもよぐまた動物性コラゲナーゼについて、 その基質特異性は特に限定しない。プロテアーゼの溶媒としては、プロテア一ゼを変 性させない溶媒であればよいが、好ましくは、蒸留水、イオン交換水、精製水等の水 が用いられる。プロテアーゼの濃度は、酵素の種類に応じて適宜決定される。一般に 、トリプシンのように消化力の高い酵素では、 0. 05-0. 1質量%程度が好ましぐコ ラゲナーゼでは 0. 1-1. 0質量%程度が好ましい。
[0031] 検体をサイトケラチン 8抗体と反応させるにあたり、前処理として、ブロック試薬で非 特異的反応が生じ得る検体のタンパク質をブロックしておくことが好ましい。
[0032] ブロック試薬としては、上記本発明の診断薬で挙げたような、血清、 IgG、 BSA、ス キムミルク等を用いることができる。
[0033] 非特異的反応をブロックした検体を、サイトケラチン 8抗体と反応させる。ここで、検 体が組織の場合には、組織表面にサイトケラチン 8抗体含有液と組織を接触させた 状態で、 30分ほど、静置しておくだけでよい。
[0034] 検体が個々に分散された細胞群の場合には、サイトケラチン 8抗体含有液と細胞群 とが均一になるように混和することにより反応させる。
反応後、過剰な抗体含有液を除去する。
[0035] サイトケラチン 8抗体自体が標識付けられて 、る場合には、未反応のサイトケラチン
8抗体を除去した後、腺癌細胞とサイトケラチン 8抗体の結合物を、サイトケラチン 8抗 体の標識に基づ 、て検出すればょ 、。
[0036] 一方、サイトケラチン 8抗体が標識されて 、な 、場合、別途標識化合物と反応させ る必要がある。サイトケラチン 8抗体との結合部位を有し且つ標識ィ匕合物が結合され た二次抗体と反応させ、標識に基づ!、てサイトケラチン 8抗体と腺癌細胞の複合体を 検出する。 [0037] 本発明で用いることができる標識ィ匕合物は、特に限定しないが、 Cy3 (Amersham Life Science社の登録商標)等のシァニン系色素、フルォレセインイソチアシネー HFITC)、ローダミン、量子ドットなどの蛍光物質;金粒子などの光散乱物質;フェラ イトなどの吸光物質;ョード (12¾等の放射性物質;ペルォキシダーゼ、アルカリフォス ファターゼ、 DAB (3, 3'—ジァミノベンチジンテトラヒドロクロライド)、グルコースォキ シダーゼ等の酵素などが挙げられる。
[0038] 標識化合物 (二次抗体)を反応させた後、余分な標識液を除外し、標識に適した方 法で観察する。例えば、蛍光標識であれば、蛍光を検出すればよい。
なお、各工程と工程の間で、適宜検体を洗浄することが好ましい。
[0039] 本発明の検出方法において、さらに HIK1083抗体と反応させる工程を含んでいて もよい。サイトケラチン 8抗体は、細胞骨格に対する抗体であり、粘液を産生する一部 の細胞とは反応しにくい。一方、 HIK1083抗体は、癌細胞から産生される粘液と特 異的に反応する。よって、サイトケラチン 8抗体と HIK1083抗体を併用することにより 、癌細胞を 100%の効率で検出することが可能となる。また、サイトケラチン 8抗体と H IK1083抗体との併用により、検体たる細胞や組織の粘液除去状況等にそれ程、影 響されることなぐ腺癌細胞を、高感度で検出することができる。
[0040] ここで、 HIK1083抗体とサイトケラチン 8抗体を併用する場合、サイトケラチン 8抗 体との反応工程と、 HIK1083抗体との反応工程の順番は、特に限定しない。 HIK1 083抗体と反応させ、洗浄後、サイトケラチン 8抗体と反応させてもよいし、まずサイト ケラチン 8抗体と反応させ、洗浄後、 HIK1083抗体と反応させてもよい。また、サイト ケラチン 8抗体と HIK1083抗体の双方を含有する試薬を用いて、これを検体と反応 させてちょい。
実施例
[0041] 〔サイトケラチン 8抗体の特異性〕
(1)免疫組織化学での検定
ヒト子宫腺癌の生検サンプルで、ホルマリンで固定したパラフィン包埋薄切標本の 脱パラフィン処理を行った後、 100%キシレン中に、室温で 10分間静置した。次いで 100%エタノール中に、室温で 30秒間静置した後、 80%エタノール、続いて 70%ェ タノール中で、それぞれ室温で 30秒間静置した。次に、蒸留水中に、室温で 30秒間 静置した。
[0042] 1%ャギ血清を含む PBST(0. 05%Tween20を含有する PBS (リン酸緩衝生理食 塩水)液)中で、室温で 10分間静置することにより、非特異的タンパク質をブロックし た。
5 μ gZmlのサイトケラチン 8抗体含有液 (溶媒は 1%ャギ血清を含む PBST)を、サ ンプル上に静置し、室温にて 30分間静置して、抗体反応をさせた。
[0043] 反応後、未反応の抗体反応液を吸引除去した後、 PBST中で、室温で 5分間の振 盪洗浄を 3回繰り返した。
[0044] 蛍光色素 Alexa488 (Molecular Probes社の商品名)で標識されたャギ由来の 抗マウス IgGの F (ab)フラグメント(溶媒は 1%ャギ血清を含む PBST) 5 μ gZmlを
2
組織上に静置し、抗体反応をさせた。反応終了後、未反応の抗体含有液を吸引除 去した後、 PBST中で、室温で 5分間の振盪洗浄を 3回行った。洗浄後、 50%マウン ティングメディウムを含む PBSTを重層し、カバーグラスをかけて、蛍光顕微鏡で観察 したところ、図 1に示す写真をえた。
[0045] 参考のために、同生検サンプルをへマトキシリンェォジンで染色した場合の写真を 図 2に示す。
図 2からわ力るように、異常部位 (腺癌部分)では、核が大きくなつている。これと対 応する図 1において、異常部位には蛍光で染色されたことが確認された。従って、サ イトケラチン 8抗体は、正常な組織には反応せず、腺癌部分にだけ反応することがわ かる。
[0046] (2)正常扁平上皮組織及び正常腺組織とサイトケラチン 8抗体での検定
採取した生検サンプルで、正常扁平上皮組織及び正常腺組織について、上記と同 様の操作を行った。
蛍光染色した正常扁平上皮組織の蛍光顕微鏡写真を図 3に示す。
蛍光染色した正常腺組織の蛍光顕微鏡写真を図 4に示す。
[0047] (3)免疫細胞化学での検定
検体として、正常扁平上皮細胞である口腔粘膜扁平上皮細胞の培養細胞 (ネガテ イブコントロール)、子宫頸部扁平上皮癌細胞由来の培養細胞系である C33A、及び 子宫頸部腺癌由来の培養細胞系である HeLa細胞を用 ヽた。
[0048] 各培養細胞サンプル液を 100%メタノールで固定した後、遠心分離(10000rpm、 1分、 4°C)にかけて、上清を除去して、細胞を回収した。
回収した細胞を、 PBSおよび PBSTを各 lml添加し、洗浄する。再度遠心分離(10 OOOrpm、 1分、 4°C)に掛け、上清を分離して、細胞を回収した。続けて、 1%ャギ血 清を含む PBSTを lml添加し、室温にて 10分間振盪混和して、細胞表面の非特異 的タンパクのブロックを行った。ブロック後、遠心分離(10000rpm、 1分、 4°C)にか けて、余分なブロッキング液を除去した。
[0049] 次に、 5 gZmlのサイトケラチン 8抗体含有液 (溶媒は 1%ャギ血清を含む PBST )を添加し、室温にて 30分間振盪混和して、抗体反応をさせた。反応後、遠心分離( 10000rpm、 1分、 4°C)にかけて、未反応の抗体液を除去した。
PBSTを lml添加して細胞を洗浄し、上清を除去して、細胞を回収した。
[0050] 蛍光色素 Alexa488で標識されたャギ由来の抗マウス IgGの F (ab)フラグメント含
2
有液 (溶媒は 1%ャギ血清を含む PBST) 5 μ gZmlを添加し、室温にて 30分間振盪 混和して、抗体反応をさせた。反応後、遠心分離(10000rpm、 1分、 4°C)にかけ、 上清を除去して細胞を回収した。
[0051] PBSTを lml添カ卩して細胞を洗浄し、遠心分離(10000rpm、 1分、 4°C)に力 4ナ、 上清を除去して、細胞を回収した。
50%グリセロールを含む PBS液中に再懸濁して、蛍光顕微鏡で観察した。結果を 図 5— 7に示す。
[0052] 図 6及び図 7より、扁平上皮細胞にはサイトケラチン 8抗体は反応しないことが認め られた。一方、子宮頸部腺癌細胞に対しては、蛍光部分が観察され、サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞が反応することが確認できた(図 5)。
産業上の利用可能性
[0053] 本発明の腺癌診断薬は、子宮頸部細胞群の組織及び個々に分散した細胞群から 、腺癌を特異的に検出できるので、子宮頸部腺癌、特に扁平上皮癌と腺癌とを区別 したい診断薬、診断に利用できる。本発明の腺癌細胞検出方法は、子宮頸部細胞 群の組織及び個々に分散した細胞群から、腺癌を特異的に検出したい場合に利用 できる。

Claims

請求の範囲
[1] 子宮頸部細胞群の検体力 腺癌の有無を診断するための試薬であって、サイトケラ チン 8抗体を含有する診断薬。
[2] さらに HIK1083抗体を含有する請求項 1に記載の診断薬。
[3] サイトケラチン 8抗体を含有する第 1試薬、及び
サイトケラチン 8抗体に結合可能で且つ標識されている 2次抗体を含有する第 2試 薬を含む子宮腺癌の試薬キット。
[4] 子宫頸部細胞群の検体力 腺癌細胞を検出する方法であって、
前記細胞群とサイトケラチン 8抗体とを反応させる工程を含む検出方法。
[5] 子宫頸部細胞群の検体力 腺癌細胞を検出する方法であって、
前記細胞群とサイトケラチン 8抗体を含む試薬とを反応させる工程;
未反応液を除去して、細胞群を回収する工程;及び
回収された細胞群から、前記サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞の複合体を検出する 工程
を含む腺癌細胞の検出方法。
[6] 前記検体は、子宫頸部組織又は個々に分散された細胞群である請求項 4に記載の 検出方法。
[7] 前記検体は、子宫頸部組織又は個々に分散された細胞群である請求項 5に記載の 検出方法。
[8] 扁平上皮癌細胞と腺癌細胞を含む子宮頸部細胞群の検体から、腺癌細胞を分別す る方法であって、
前記細胞群と標識されたサイトケラチン 8抗体とを反応させる工程;及び 前記サイトケラチン 8抗体と腺癌細胞の複合体を検出する工程
を含む分別方法。
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