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WO2001068670A2 - Famille de canaux potassium humains mecanosensibles et actives par les acides gras polyinsatures et leur utilisation - Google Patents

Famille de canaux potassium humains mecanosensibles et actives par les acides gras polyinsatures et leur utilisation Download PDF

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WO2001068670A2
WO2001068670A2 PCT/FR2001/000758 FR0100758W WO0168670A2 WO 2001068670 A2 WO2001068670 A2 WO 2001068670A2 FR 0100758 W FR0100758 W FR 0100758W WO 0168670 A2 WO0168670 A2 WO 0168670A2
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WO
WIPO (PCT)
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pathologies
human
sequence
potassium channel
animal subject
Prior art date
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Ceased
Application number
PCT/FR2001/000758
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English (en)
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WO2001068670A3 (fr
Inventor
Michel Lazdunski
Florian Lesage
François MAINGRET
Current Assignee (The listed assignees may be inaccurate. Google has not performed a legal analysis and makes no representation or warranty as to the accuracy of the list.)
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Original Assignee
Centre National de la Recherche Scientifique CNRS
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
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Publication date
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Priority to JP2001567760A priority patent/JP2003527114A/ja
Priority to AU2001242558A priority patent/AU2001242558A1/en
Priority to EP01915465A priority patent/EP1263953A2/fr
Publication of WO2001068670A2 publication Critical patent/WO2001068670A2/fr
Publication of WO2001068670A3 publication Critical patent/WO2001068670A3/fr
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    • A61K38/00—Medicinal preparations containing peptides

Definitions

  • the present invention relates to a new class of mechanosensitive potassium channels activated by polyunsaturated fatty acids.
  • the invention is based on the discovery of a new human potassium channel, called hTRAAK for human T ICK-Related AA-Actived K + channel, mechanosensitive activated by polyunsaturated fatty acids and also by riluzole which is a neuroprotective agent.
  • hTRAAK for human T ICK-Related AA-Actived K + channel
  • mechanosensitive activated by polyunsaturated fatty acids and also by riluzole which is a neuroprotective agent.
  • the properties of the TRAAK family channels and their tissue distribution give these channels a key role in the transport of potassium in a large number of cell types.
  • Potassium channels are ubiquitous proteins and their exceptional functional diversity makes them ideal candidates for a large number of biological processes. They intervene in particular in the regulation of neuronal and muscular excitability, on the heart rate and on the secretion of hormone.
  • T IK-1, T IK-2, TASK-1, TASK-2, TREK-1 and TRAAK (Chavez et al., 1999; Duprat et al., 1997; Fin et al., 1996; Fink et al., 1998; Lesage et al., 1996; Reyes et al., 1998).
  • sequence identity between these channels is weak (less than 30%).
  • TWIK-1 and T IK-2 are weak internal K + channels.
  • TASK-1 and TASK-2 are external K + rectifying channels sensitive to pH variations extracellular in a narrow physiological range.
  • TREK-1 another external rectifying K + channel, is activated by membrane stretching, polyunsaturated fatty acids, intracellular acidosis and inhaled anesthetics (Maingret et al., 1999 (b); Patel et al., 1999; Patel et al., 1998). All of these two-pore K + channels have extensive tissue distribution.
  • TRAAK the second K + channel activated by cloned polyunsaturated fatty acids, is the only one exclusively expressed in the central nervous system (Fink et al., 1998; Maingret et al., 1999a).
  • the present invention is based on the discovery and the cloning of a new channel designated hTRAAK, member of the family of T channels IK.
  • the gene encoding this channel shares all the functional properties of its murine equivalent (Fink et al., 1998; Maingret et al., 1999a) and also is mainly expressed in neuronal tissues.
  • this new class of potassium channels and the heterologous expression of these channels makes it possible in particular to have new means for screening by screening for drugs capable of modulating the activity of these potassium channels and therefore of preventing or treating diseases involving these channels, such as epilepsy, cardiac (arrhythmias) and vascular pathologies, neurodegenerations, particularly those associated with ischemia and anoxia, endocrine pathologies associated with abnormalities in hormone secretion, muscle pathologies, retinal pathologies.
  • diseases involving these channels such as epilepsy, cardiac (arrhythmias) and vascular pathologies, neurodegenerations, particularly those associated with ischemia and anoxia, endocrine pathologies associated with abnormalities in hormone secretion, muscle pathologies, retinal pathologies.
  • the present invention therefore relates to a purified protein constituting a mechanosensitive human potassium channel activated by polyunsaturated fatty acids, in particular arachidonic acid and by riluzole. More particularly, the invention relates to the protein constituting the human TRAAK channel, the amino acid sequence of which is represented in the sequence list in the appendix under the number SEQ ID No: 2 or a variant, a functionally equivalent derivative of this protein.
  • Such variants are those whose sequence comprises a modification and / or a deletion and / or an addition of one or more amino acid residues, since this modification and / or deletion and / or addition does not modify the properties of the hTRAAK channel.
  • Such variants can be analyzed by a person skilled in the art according to the techniques described in the examples given below which have made it possible to demonstrate the biophysical and pharmacological properties of the hTRAAK channel.
  • Poly or monoclonal antibodies directed against at least one protein constituting an ion channel of the invention can be prepared by the conventional methods described in the literature. These antibodies are useful for searching for the presence of the ion channels of the invention in different human or animal tissues, but they can also find applications in the therapeutic field for inhibiting or activating in vivo, thanks to their specificity, an hTRAAK channel and / or its derivatives.
  • the present invention also relates to a purified nucleic acid molecule comprising or consisting of a nucleic sequence coding for a protein constituting a mechanosensitive human potassium channel activated by polyunsaturated fatty acids, in particular arachidonic acid and by riluzole. More particularly, the invention relates to a nucleic acid molecule comprising at least one sequence coding for the protein constituting the hTRAAK channel, the amino acid sequence of which is represented in the sequence list in the appendix under the number SEQ ID No: 2 or a variant, functionally equivalent derivative of this protein. A DNA molecule comprising the sequence coding for the hTRAAK protein is represented in the sequence list in the appendix under the number SEQ ID NO: 1. The invention also relates to its complementary sequence.
  • the invention also relates to a vector comprising at least one preceding nucleic acid molecule, advantageously associated with suitable control sequences, as well as a process for the production or expression in a cellular host of a protein constituting an ion channel according to the invention.
  • a vector comprising at least one preceding nucleic acid molecule, advantageously associated with suitable control sequences, as well as a process for the production or expression in a cellular host of a protein constituting an ion channel according to the invention.
  • the preparation of these vectors as well as the production or the expression in a host of the channels of the invention can be carried out by the techniques of molecular biology and genetic engineering well known to those skilled in the art.
  • a process for producing a protein constituting a cation channel according to the invention consists:
  • a method of expression of an ion channel according to the invention consists in: transferring a nucleic acid molecule of the invention or a vector containing said molecule in a cellular host,
  • the cell host used in the above methods can be chosen from prokaryotes or eukaryotes and in particular from bacteria, yeasts, mammalian, plant or insect cells.
  • the vector used is chosen according to the host to which it will be transferred; it can be any vector such as a plasmid.
  • the invention also relates to cellular hosts and more particularly to transformed cells expressing potassium channels exhibiting properties and a structure of the type of those of the hTRAAK channel obtained in accordance with the preceding methods. These cells are useful for the screening of substances capable of modulating the currents of the TRAAK channels. This screening is carried out by bringing variable quantities of a substance to be tested into contact with cells expressing the channels of the invention, then by measuring, by any appropriate means, the possible effects of said substance on the potassium currents of said channels. Electrophysiological techniques also allow these studies and are also the subject of the present invention since they use the hTRAAK channels or their variants. This screening method makes it possible to identify drugs capable of modulating the activity of the potassium channels of the invention and therefore capable of preventing or treating diseases involving these channels. These substances and their use as medicaments, isolated and detected by the above methods, are also part of the invention.
  • the invention therefore relates to a chemical or biological substance capable of modifying the currents of a potassium channel according to the invention for the preparation of a medicament useful for preventing or treating diseases of the heart or of the nervous system in a subject human or animal, such as cardiac (arrhythmias) and vascular pathologies, neurodegenerations, particularly those associated with ischemia and anoxia, endocrine pathologies associated with abnormalities in the secretion of hormones, muscular pathologies
  • cardiac arrhythmias
  • vascular pathologies particularly those associated with ischemia and anoxia
  • neurodegenerations particularly those associated with ischemia and anoxia
  • endocrine pathologies associated with abnormalities in the secretion of hormones muscular pathologies
  • a nucleic acid molecule coding for a protein constituting an hTRAAK channel or a derivative thereof, or a vector comprising this nucleic acid molecule or a cell expressing TRAAK channels are also useful for the preparation of animals.
  • transgenic They may be animals overexpressing said channels, but especially animals known as "knock out", that is to say having a deficiency in these channels; these transgenic animals are prepared by methods known to those skilled in the art, and make it possible to have living models for the study of animal pathologies associated with the TRAAK channels.
  • transgenic animals as well as the cellular hosts described above are useful as models for the study of pathologies associated with these mechanosensitive potassium channels activated by polyunsaturated fatty acids, because they over-express the potassium channels of the hTRAAK channel type. , or because they have a deficiency in these potassium channels.
  • the invention also relates to the in vitro diagnosis of pathologies in humans and / or in animals likely to involve said mechanosensitive potassium channel activated by polyunsaturated fatty acids, in particular arachidonic acid and by riluzole.
  • This in vitro diagnosis could be accomplished by any means implementing a method of detection or localization in a biological sample, of said potassium channel or of the gene coding for said potassium channel.
  • detection methods can use either poly or monoclonal antibodies directed against the protein, against a variant thereof or against at least one fragment thereof, constituting said ion channel, or one or more nucleotide probes capable of hybridize with the gene encoding said potassium channel, or with a variant thereof or with at least one fragment thereof.
  • the invention relates to the use of the poly or monoclonal antibodies described above or of their fragments for the detection of pathologies in humans and / or in animals, characterized in that it comprises the detection of the mutation, and / or the deletion and / or addition of at least one amino acid in the protein constituting the potassium channel according to the invention or a variant thereof.
  • the invention also relates to the use of the nucleic acid sequences according to the invention or of oligonucleotides derived therefrom for the detection of pathologies in humans or in the animal characterized in that it comprises the detection of the mutation, and / or of the deletion and / or of the addition of at least one nucleotide in said nucleotide sequences.
  • These in vitro detection methods can be applied to the detection of any pathology involving the potassium channels of the invention, such as cardiac and vascular pathologies of pathologies of the nervous system associated with ischemia and anoxia, pathologies of the spinal cord, endocrine pathologies associated with abnormalities in the secretions of hormones, muscular pathologies, pathologies of the retina in a human or animal subject.
  • a protein constituting an hTRAAK neural ion channel can also be useful for the manufacture of medicaments intended to treat or prevent pathologies involving these channels.
  • the invention therefore also relates to pharmaceutical compositions comprising as active principle at least one of these proteins optionally associated with a physiologically acceptable vehicle.
  • nucleic acid molecules of the invention or the cells transformed by said molecule are therefore capable of being used in gene therapy strategies in order to compensate for a deficiency in the hTRAAK channels in one or more tissues d 'a patient.
  • the invention therefore also relates to a medicament comprising nucleic acid molecules of the invention or cells transformed by said molecules for the treatment of pathology involving the hTRAAK channels and their derivatives.
  • FIG. 1A shows the topology of hTRAAK.
  • FIG. 1B and SEQ ID NO: 1 represent the nucleotide sequence of the hTRAAK cDNA
  • FIG. 1B and SEQ ID NO: 2 represent the amino acid sequence of the coding sequence.
  • - Figure 2 shows the idiogram of the bands
  • FIG. 4 shows the biophysical properties of hTRAAK recorded by the voltage technique imposed on COS cells transfected with a vector expressing hTRAAK.
  • FIG. 4A shows that the current hTRAAK does not have an apparent voltaic activation threshold, is independent of time and cannot be activated.
  • FIG. 4C shows the change in direction of the hTRAAK current in a physiological gradient (5 mM K + ext.
  • FIG. 4D shows the properties of an hTRAAK channel alone.
  • FIG. 5 shows the effect of arachidonic acid (AA) on the hTRAAK channel expressed in transfected COS cells.
  • FIG. 5A shows the activity of human TRAAK potentiated by 10 ⁇ m of arachidonic acid (AA) in the whole cell configuration
  • Figure 5B shows the effect of arachidonic acid (AA) on the hTRAAK channel expressed in transfected COS cells, when the external Na + is replaced by K + '
  • Figure 5C shows the current induced by AA observed in an outside-out configuration.
  • Figure 5D shows the current recorded for a single hTRAAK channel in an inside-out configuration at -
  • FIG. 1B shows TRAAK cDNA sequence and genomic organization in humans.
  • the ORF is made up of six exons.
  • the transmembrane segment Ml is coded by exon 1, M2 by exon 3, M3 by exon 4 and M4 by exon 5.
  • the second exon codes the C-terminal part of the MlP1 interdomain and the sixth the large C-terminal part of the canal (Fig 1A and IB).
  • the introns are short except the first which is more than 3.8 Kb long (Fig IB).
  • a gene encoding another K + channel with two pores of mammals, TWIK-1 has already been characterized (Arrighi et al., 1998).
  • the organizations of TRAAK and TWIK-1 are rather different because TWIK-1 contains only three exons separated by two large introns.
  • a common characteristic between these two genes is the presence of an intron in the first pore PI domain.
  • the intron site is between the first and second nucleotides of the codon for the first glycine residue of the pore signature GYG sequence (Arrighi et al., 1998).
  • telome llq The chromosomal assignment of human TRAAK was carried out by an analysis of hybrid radiation panels. As shown in Fig. 2, the gene encoding hTRAAK is located on chromosome llq and is telomeric at 5.34 cRays from the marker WI-1409 (Logarithm of the score> 21). Although hybrid radiation maps are not linked to cytogenetic maps, the most likely the hTRAAK gene is llql3. KCNK7 which contains a K + channel with two P domains was located on the telomeric chromosome llql3 at 6.4 cRays of WI-1409. This suggests that hTRAAK and KCNK7 are very close to each other (Saunas et al., 1999).
  • hTRAAK The expression of hTRAAK in various human adult tissues was studied by RT-PCR analysis. As shown in Figure 3, TRAAK is expressed at the highest levels in the brain and the placenta. Only very weak signals were obtained in the testes, small intestine, prostate and kidney. hTRAAK has not been detected in the mouse placenta (Fink et al., 1998). The reason for this contradiction is not known. In si t u hybridization (Fink et al., 1998) and immunologically (Reyes et al., 2000) demonstrated that mouse TRAAK is specifically expressed in neuronal cells. The tissue distribution shown in Figure 3 suggests that hTRAAK may have the same restricted pattern of expression in humans.
  • the hTRAAK current does not have an apparent voltaic activation threshold, is time independent and cannot be activated (fig. 4A).
  • the I-V curve is rectifying outward and tumultuous with positive potentials
  • the direction change potential closely follows the equilibrium value of K + (fig. 4C).
  • the pharmacological properties of hTRAAK have been studied in the whole cell configuration.
  • the AA stimulation of hTRAAK remains while the patch is excised (fig 5C).
  • the two-domain P + K + channel sequences have been used to search for homologs in public DNA databases using the BLAST program (Altschul et al., 1990). This allowed the identification of a genomic sequence (Genbank accession number AC005848) which presents significant similarities with the mouse TRAAK.
  • Two oligonucleotides were chosen from this genomic sequence corresponding to the equivalent sequences flanking the first initiation codon and the stop codon of mTRAAK: sense strand: 5 '-AGAATTCGCGCCATGCGCAGCACCACG-3' and anti strand direction: 5 '- TTTCTCGAGGCCCGGCCAGGGATCCTG-3' (SEQ ID NO: 4) introducing EcoRI and Xhol restriction sites respectively.
  • the entire coding sequence was amplified from human brain cDNA by PCR using these primers and low error DNA polymerase and then subcloned into a pIRES-CD8 vector to give pIRES-CD8.
  • hTRAAK Inserts from independent PCR-ligation experiments were sequenced on both strands and found to be identical.
  • antisense primer 5 '-GAGGCCCGGCCAGGGATCCTG-3'
  • the PCR conditions are 39 cycles of 30s at 94 ° C, 30s at 55 ° C and 30s at 72 ° C.
  • the PCR products were separated by agarose electrophoresis and then transferred to charged nylon membranes.
  • the blots were analyzed with a P32 5'-CCAGGCTGCCAGCTGGACTG-3 'oligonucleotide ide (SEQ ID NO: 7). The results were analyzed using the RH-MAPPER program at the Whitehead Institute.
  • the primer sequences were for the sense primer: 5 '-CTCAGTGCTCACCACCATCG-3' (SEQ ID NO: 8).
  • COS-7 cells were maintained in Eagle medium modified by Dulbecco supplemented with 10% fetal bovine serum. Plasmid pIRES-cD8-hTRAAK was transfected using the standard DEAE dextran method. The positive cells were visualized 48 h after transfection using the method of beads covered with the anti-CD8 antibody (Maingret et al., 1999a; Maingret et al., 1999b).
  • the pipette solution contained 150 mM KCl, 3 mM MgCl 2 , 5 mM EGTA and 10 mM HEPES, pH 7.2 adjusted with KOH.
  • the bath solution (EXT) contained 150 mM NaCl, 5 mM KCl, 3 mM MgCl 2 , 1 mM CaCl 2 and 10 mM HEPES, pH 7.4 adjusted with NaOH.
  • the solution in the pipette was EXT and the bath solution was INT.
  • the K + rich EXT solution contained 150 mM KCl instead of 150 mM NaCl.

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Abstract

La présente invention concerne une nouvelle famille de canaux potassium humains mécanosensibles activeés par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole et leur utilisation pour le diagnostic, la prévention et le traitement de pathologies humaines et animales.

Description

NOUVELLE FAMILLE DE CANAUX POTASSIUM HUMAINS MECANOSENSIBLES ET ACTIVES PAR LES ACIDES GRAS POLYINSATURES ET LEUR UTILISATION.
La présente invention concerne une nouvelle classe de canaux potassium mecanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés . L'invention est basée sur la découverte d'un nouveau canal potassium humain, dénommé hTRAAK pour human T ICK-Related AA-Actived K+channel, mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés et également par le riluzole qui est un agent neuroprotecteur. Les propriétés des canaux de la famille TRAAK ainsi que leur distribution tissulaire confèrent à ces canaux un rôle primordial dans le transport de potassium chez un grand nombre de types cellulaires.
Les canaux potassium sont des protéines ubiquitaires et leur exceptionnelle diversité fonctionnelle en fait des candidats idéaux pour un grand nombre de processus biologiques. Ils interviennent notamment dans la régulation de l'excitabilité neuronale et musculaire, sur le rythme cardiaque et sur la sécrétion d'hormone.
Jusqu'à présent, six membres de cette famille ont été clones : T IK-1, T IK-2, TASK-1, TASK-2, TREK-1 et TRAAK (Chavez et al., 1999 ; Duprat et al., 1997 ; Fin et al., 1996 ; Fink et al., 1998 ; Lesage et al., 1996 ; Reyes et al., 1998). Malgré une structure globalement similaire, l'identité de séquence entre ces canaux est faible (moins de 30%) . TWIK-1 et T IK-2 sont de faibles canaux K+ rectifiant intérieurs. TASK-1 et TASK-2 sont des canaux K+ rectifiant extérieurs sensibles à des variations de pH extracellulaire dans une gamme physiologique étroite. TREK- 1, un autre canal K+ rectifiant extérieur, est activé par les étirements membranaires, les acides gras polyinsaturés, l'acidose intracellulaire et les anesthesiques inhalés (Maingret et al., 1999 (b) ; Patel et al., 1999 ; Patel et al., 1998) . Tous ces canaux K+ à deux pores ont une distribution tissulaire étendue. TRAAK, le second canal K+ activé par les acides gras polyinsaturés et mécanosensible clone, est le seul exclusivement exprimé dans le système nerveux central (Fink et al., 1998 ; Maingret et al., 1999a) .
Des applications utilisant les canaux potassium TRAAK de la souris sont divulguées dans la demande de brevet français FR 98/02725.
La présente invention est fondée sur la découverte et le clonage d'un nouveau canal désigné hTRAAK, membre de la famille des canaux T IK. Le gène codant ce canal partage toutes les propriétés fonctionnelles de son équivalent murin (Fink et al., 1998 ; Maingret et al., 1999a) et aussi est principalement exprimé dans les tissus neuronaux.
La mise en évidence de cette nouvelle classe de canaux potassium et l'expression hétérologue de ces canaux permet notamment de disposer de nouveaux moyens pour rechercher par criblage des drogues capables de moduler l'activité de ces canaux potassium et donc de prévenir ou de traiter des maladies impliquant ces canaux, comme l'épilepsie, les pathologies cardiaques (arythmies) et vasculaires, les neurodégénérescences, particulièrement celles qui sont associées aux ischémies et aux anoxies, les pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans la sécrétion d'hormones, les pathologies musculaires, les pathologies rétiniennes .
La présente invention a donc pour objet une protéine purifiée constituant un canal potassium humain mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. Plus particulièrement, l'invention concerne la protéine constituant le canal humain TRAAK dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No : 2 ou un variant, dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine.
De tels variants sont ceux dont la séquence comprend une modification et/ou une suppression et/ou une addition d'un ou plusieurs résidus d'acides aminés, dès lors que cette modification et/ou suppression et/ou addition ne modifie pas les propriétés du canal hTRAAK. De tels variants peuvent être analysés par l'homme du métier selon les techniques décrites dans les exemples donnés ci- après qui ont permis de mettre en évidence les propriétés biophysiques et pharmacologiques du canal hTRAAK.
Des anticorps poly ou monoclonaux dirigés contre au moins une protéine constituant un canal ionique de l'invention peuvent être préparés par les méthodes classiques décrites dans la littérature. Ces anticorps sont utiles pour rechercher la présence des canaux ioniques de l'invention dans différents tissus humains ou animaux, mais ils peuvent aussi trouver des applications dans le domaine thérapeutique pour inhiber ou activer in vivo, grâce à leur spécificité, un canal hTRAAK et/ou ses dérivés.
La présente invention a aussi pour objet une molécule d'acide nucléique purifiée comprenant ou constituée par une séquence nucléique codant pour une protéine constituant un canal potassium humain mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. Plus particulièrement l'invention concerne une molécule d'acide nucléique comprenant au moins une séquence codant pour la protéine constituant le canal hTRAAK dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No : 2 ou un variant, dérivé fonct ionnellement équivalent de cette protéine. Une molécule d'ADN comprenant la séquence codant pour la protéine hTRAAK est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:l. L'invention concerne également sa séquence complémentaire.
L'invention concerne également un vecteur comprenant au moins une molécule d'acide nucléique précédente, avantageusement associée à des séquences de contrôle adaptées, ainsi qu'un procédé de production ou d'expression dans un hôte cellulaire d'une protéine constituant un canal ionique selon l'invention. La préparation de ces vecteurs ainsi que la production ou l'expression dans un hôte des canaux de l'invention peuvent être réalisées par les techniques de biologie moléculaire et de génie génétique bien connues de l'homme du métier.
A titre d ' exemple , un procédé de production d ' une protéine constituant un canal cationique selon l ' invention consiste :
- à transférer une molécule d ' acide nucléique de l ' invention ou un vecteur contenant ladite molécule dans un hôte cellulaire ,
- à cultiver ledit hôte cellulaire dans des condit ions permettant la product ion de la proté ine constituant le canal potassium, - à isoler, par tous moyens appropriés les protéines constituant les canaux potassium de l'invention.
A titre d'exemple, un procédé d'expression d'un canal ionique selon 1 ' invention consiste : - à transférer une molécule d'acide nucléique de l'invention ou un vecteur contenant ladite molécule dans un hôte cellulaire,
- à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant l'expression des canaux potassium de l'invention.
L'hôte cellulaire mis en oeuvre dans les procédés précédents peut être choisi parmi les procaryotes ou les eucaryotes et notamment parmi les bactéries, les levures, les cellules de mammifères, de plantes ou d'insectes.
Le vecteur utilisé est choisi en fonction de l'hôte dans lequel il sera transféré; il peut s'agir de tout vecteur comme un plasmide.
L'invention concerne aussi les hôtes cellulaires et plus particulièrement les cellules transformées exprimant des canaux potassium présentant des propriétés et une structure du type de celles du canal hTRAAK obtenues conformément aux procédés précédents. Ces cellules sont utiles pour le criblage de substances capables de moduler les courants des canaux TRAAK. Ce criblage est effectué en mettant en contact des quantités variables d'une substance à tester avec des cellules exprimant les canaux de l'invention, puis en mesurant, par tous moyens appropriés, les effets éventuels de ladite substance sur les courants potassium desdits canaux. Des techniques électrophysiologiques permettent également ces études et font aussi l'objet de la présente invention dès lors qu'elles mettent en oeuvre les canaux hTRAAK ou leurs variants. Ce procédé de criblage permet d'identifier des drogues capables de moduler l'activité des canaux potassium de l'invention et donc susceptibles de prévenir ou de traiter des maladies impliquant ces canaux. Ces substances et leur utilisation comme médicament, isolés et détectés grâce aux procédés ci-dessus, font également partie de 1 ' invention.
Plus particulièrement, l'invention concerne donc une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon l'invention pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des maladies du coeur ou du système nerveux chez un sujet humain ou animal, comme les pathologies cardiaques (arythmies) et vasculaires, les neurodégénérescences, particulièrement celles qui sont associées aux ischémies et aux anoxies, les pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans la sécrétion d'hormones, les pathologies musculaires
Une molécule d'acide nucléique codant pour une protéine constituant un canal hTRAAK ou un dérivé de celui- ci, ou un vecteur comprenant cette molécule d'acide nucléique ou encore une cellule exprimant des canaux TRAAK, sont aussi utiles pour la préparation d'animaux transgéniques. Il peut s'agir d'animaux sur-exprimant lesdits canaux, mais surtout d'animaux dit "knock out", c'est à dire présentant une déficience en ces canaux; ces animaux transgéniques sont préparés par des méthodes connues de l'homme du métier, et permettent de disposer de modèles vivants pour l'étude de pathologies animales associées aux canaux TRAAK. Ces animaux transgéniques de même que les hôtes cellulaires décrits précédemment sont utiles en tant que modèles pour l'étude de pathologies associées à ces canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés soient parce qu'ils sur-expriment les canaux potassium du type canal hTRAAK, soit parce qu'ils présentent une déficience en ces canaux potassium.
L'invention concerne également le diagnostic in vitro de pathologies chez l'homme et/ou chez l'animal susceptibles d'impliquer ledit canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. Ce diagnostic in vitro pourra être accompli par tous moyens mettant en œuvre un procédé de détection ou de localisation dans un échantillon biologique, dudit canal potassium ou du gène codant pour ledit canal potassium.
Ces procédés de détection peuvent utiliser soit des anticorps poly ou monoclonaux dirigés contre la protéine, contre un variant de celle-ci ou contre au moins un fragment de ceux-ci, constituant ledit canal ionique, soit une ou plusieurs sondes nucléotidiques capables de s'hybrider avec le gène codant pour ledit canal potassium, ou avec un variant de celui-ci ou avec au moins un fragment de ceux-ci. Ainsi, l'invention concerne l'utilisation des anticorps poly ou monoclonaux décrits précédemment ou de leurs fragments pour la détection de pathologies chez l'homme et/ou chez l'animal caractérisée en ce qu'elle comprend la détection de la mutation, et/ou de la suppression et/ou de l'addition d'au moins un acide aminé dans la protéine constituant le canal potassium selon l'invention ou un variant de celle-ci. L'invention concerne également l'utilisation des séquences d'acides nucléiques selon l' invention ou des oligonucléotides issus de celles- ci pour la détection de pathologies chez l'homme ou chez l'animal caractérisée en ce qu'elle comprend la détection de la mutation, et/ou de la suppression et/ou de l'addition' d' au moins un nucléotide dans lesdites séquences nucléotidiques . Ces procédés de détection in vitro peuvent être appliqués à la détection de toute pathologie impliquant les canaux potassium de l'invention, comme des pathologies cardiaques et vasculaires de pathologies du système nerveux associées aux ischémies et aux anoxies, des pathologies de la moelle épinière, des pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans les sécrétions d'hormones, des pathologies musculaires, des pathologies de la rétine chez un sujet humain ou animal.
En outre, une protéine constituant un canal ionique neuronal hTRAAK peut être aussi utile pour la fabrication de médicaments destinés à traiter ou prévenir des pathologies impliquant ces canaux. L'invention concerne donc aussi les compositions pharmaceutiques comprenant comme principe actif au moins une de ces protéines éventuellement associée à un véhicule physiologiquement acceptable .
De même, les molécules d'acide nucléique de l'invention ou les cellules transformées par .ladite molécule sont donc susceptibles d'être utilisées dans des stratégies de thérapie génique afin de compenser une déficience des canaux hTRAAK au niveau de un ou plusieurs tissus d'un patient. L'invention concerne donc aussi un médicament comprenant des molécules d'acide nucléique de l'invention ou de cellules transformées par lesdites molécules pour le traitement de pathologie impliquant les canaux hTRAAK et leurs dérivés. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent rapportant le travail de recherche ayant mené à l'identification et à la caracterisation de ces canaux potassium mecanosensibles activés par les acides gras et où il sera fait référence aux séquences et dessins en annexe dans lesquels :
- La figure 1A montre la topologie de hTRAAK.
La figure IB et SEQ ID NO:l représentent la séquence nucléotidique de l'ADNc de hTRAAK ,1a figure IB et SEQ ID NO: 2 représentent la séquence en acides aminés de la séquence codante. - la figure 2 représente l'idiograme des bandes
G du chromosome llq humain et la localisation du gène hTRAAK par rapport aux marqueurs localisés dans un panel Genebridge 4 RH.
- la figure 3 représente l'analyse par RT-PCR de la distribution de hTRAAK dans les tissus d'humain adulte. la figure 4 montre les propriétés biophysiques de hTRAAK enregistrées par la technique de voltage imposé sur des cellules COS transfectées avec un vecteur exprimant hTRAAK. La figure 4A montre que le courant hTRAAK n'a pas un seuil d'activation voltaïque apparent, est indépendant du temps et non-activable . La figure 4B montre la courbe I-V, la pente de la courbe de restriction est 58,6 ± 0,6 mV par changement d'un facteur 10 dans la concentration extérieure en K+ (n=6) . La figure 4C montre le changement de sens du courant hTRAAK dans un gradient physiologique (5mM K+ ext . La figure 4D montre les propriétés d'un canal hTRAAK seul. La figure 5 montre l'effet de l'acide arachidonique (AA) sur le canal hTRAAK exprimé dans des cellules COS transfectées . La figure 5A, montre l'activité du TRAAK humain potent iali sée par 10 μm d'acide arachidonique (AA) dans la configuration cellules entières
(630 ± 101 % à 0 mV, n=19). La figure 5B montre l'effet l'effet de l'acide arachidonique (AA) sur le canal hTRAAK exprimé dans des cellules COS transfectées , lorsque le Na+ extérieur est substitué par du K+'La figure 5C montre le courant induit par AA observé dans une configuration outside-out. La figure 5D montre le courant enregistré pour un canal hTRAAK seul dans une configuration inside-out à -
50mV et 50mV.
I - Identification, structure primaire et distribution tissulaire de hTRAAK.
Les recherches dans les bases ADN en utilisant le programme d'alignement de séquence BLAST (Altschul et al., 1990) ont permis l'identification de séquences humaines restreintes à un contig génomique simple. L' analyse de ces séquences a suggéré la présence d' introns et d' exons formant un gène codant un canal K+ à deux pores. Les oligonucléotides ont été déduits des séquences exons potentielles et utilisés pour amplifier par PCR un fragment d'ADN contenant la phase ouverte de lecture (ORF) correspondante à partir d'ADNc de cerveau. Cette ORF est longue de 1182 nucléotides et code un polypeptide de 393 acides aminés (Fig IB, SEQ ID NO: 2) . Cette protéine est proche du canal TRAAK de la souris avec 82 % d'identité et 88 % d'homologie. Ce niveau d'homologie, ensemble avec la distribution tissulaire et les propriétés fonctionnelles conservées qui sont montrées après, indique que le nouveau canal est un homologue du TRAAK murin. La figure IB montre la séquence ADNc du TRAAK et l'organisation genomique chez l'homme. L'ORF est composée de six exons. Le segment transmembranaire Ml est codé par l'exon 1, M2 par l'exon 3, M3 par l'exon 4 et M4 par l'exon 5. Le second exon code la partie C-terminale de l' interdomaine MlPl et le sixième la grande partie C-terminale du canal (Fig 1A et IB) .
Les introns sont courts sauf le premier qui est long de plus de 3,8 Kb (Fig IB) . Un gène codant un autre canal K+ à deux pores de Mammifères, TWIK-1 , a déjà été caractérisé (Arrighi et al., 1998) . Les organisations de TRAAK et TWIK-1 sont plutôt différentes parce que TWIK-1 contient seulement trois exons séparés par deux larges introns. Cependant, une caractéristique commune entre ces deux gènes est la présence d'un intron dans le premier domaine pore PI. Le site de l' intron est entre le premier et le second nucléotides du codon pour le premier résidu glycine de la séquence GYG signature du pore (Arrighi et al., 1998) . Un intron dans la même position est trouvé dans 20 gènes parmi les 36 examinés qui code des canaux K+ à deux pores dans le nématode Caenorhabditis elegans (Wang et al., 1999) . La signification de la position conservée de cet intron n'est pas connue, cependant cela vaut la peine de noter que cet intron a été conservé chez les Mammifères où il pourrait éventuellement avoir le même rôle que chez les nématodes .
L' affectation chromosomique du TRAAK humain a été réalisée par une analyse des panels de radiation hybride. Comme montré sur la Fig. 2, le gène codant hTRAAK se trouve sur le chromosome llq et est télomérique à 5,34 cRays du marqueur WI-1409 (Logarithme du score > 21). Bien que les cartes de radiation hybride ne soient pas liées aux cartes cyt ogénét iques , la localisation la plus vraisemblable du gène hTRAAK est llql3. KCNK7 qui contient un canal K+ à deux domaines P a été localisé sur le chromosome llql3 télomérique à 6, 4 cRays de WI-1409. Cela suggère que hTRAAK et KCNK7 sont très proches l'un de l'autre (Saunas et al., 1999).
L'expression de hTRAAK dans différents tissus adultes humains a été étudiée par une analyse RT-PCR. Comme montré sur la figure 3, TRAAK est exprimé à des niveaux les plus élevés dans le cerveau et le placenta. Seulement de très faibles signaux ont été obtenus dans les testicules, le petit intestin, la prostate et le rein. hTRAAK n'a pas été détecté dans le placenta de souris (Fink et al., 1998) . La raison de cette contradiction n'est pas connue. L'hybridation in si t u (Fink et al., 1998) et 1' immunologiquement (Reyes et al., 2000) ont démontré que le TRAAK de souris est spécifiquement exprimé dans les cellules neuronales. La distribution tissulaire montrée dans la figure 3 suggère que hTRAAK pourrait avoir le même pattern restreint d'expression chez les humains.
Des expériences électrophysiologiques ont été réalisées dans des cellules COS transfectées de façon transitoire. Le courant hTRAAK n'a pas un seuil d'activation voltaique apparent, est indépendant du temps et non-activable (fig. 4A) . La courbe I-V est rectifiant vers l'extérieur et tumultueuse aux potentiels positive
(fig. 4A, B) . Dans un gradient physiologique (5mM K+ ext . ) ,
Le courant hTRAAK change de sens à la valeur prédite d'équilibre pour le K+ (-87,1 ± 1,2 mV, n=6) . Quand le Na+ extérieur est substitué par du K+ , le potentiel de changement de sens suit de près la valeur d' équilibre du K+ (fig. 4C) . La pente de la courbe de restriction est 58,6 ± 0,6 mV par changement d'un facteur 10 dans la concentration extérieure en K+ (n=6) ce qui est en accord avec l'équation de Nernst pour un canal sélectif pour le K+ . Dans un gradient symétrique (155 mM K+ extérieur), la courbe I-V est presque linéaire (fig. 4A, B) et change de sens à 0,8 ± 1,1 mV (n=6) . Les propriétés pharmacologiques of hTRAAK ont été étudiées dans la configuration cellules entières. hTRAAK est insensible aux agents bloquants classiques des canaux K+ quinidine (100 μm) , 4AP (3mM), TEA (10 mM) , bariu (1 mM) et glibenclamide (10 μm) . Il a été montré que certains membres de la famille des canaux K+ à deux domaines P (TREK-1 et TASK-1) étaient ouverts par les anesthesiques généraux volatiles (Patel et al., 1999). Aussi nous avons recherché l'effet du chloroforme sur le hTRAAK. L'application de chloroforme (0,8 mM, n=8) n'a pas d'effet sur l'activité du canal. Les propriétés d'un canal seul hTRAAK sont illustrées dans la figure ID. Au niveau microscopique, le courant du hTRAAK reste rectifiant vers l'extérieur et est caractérisé par un comportement oscillant. La figure 5A, B montre que l'activité du TRAAK humain, à l'instar du TRAAK de souris (Fink et al., 1998), est potentialisée par 10 μm d'acide arachidonique (AA) dans la configuration cellules entières (630 ± 101 % à 0 mV, n=19) . Cette activation est complètement réversible grâce à un lavage (fig 5A, cartouche) . Dans des conditions physiologiques, le courant induit par AA est rectifiant vers l'extérieur et change de sens à 80,6 ± 0,9 V, n=7
(fig 5A) . Lorsque le Na+ extérieur est substitué par du K+, le courant devient linéaire et le potentiel de changement de sens est de -0,6 ± 0,8 mV, n=7 (fig 5B) . hTRAAK est également activé par l'acide gras polyinsaturé docosahexaenoate (10 μM, n=3) mais est insensible aux acides gras saturés myristate, palmitate, stéarate, arachinate (10 μM, n=6 à 8). De plus, les dérivés d'AA avec un alcool ou un méthyl ester substitué sur la fonction carboxylique sont inactifs (n=5) . La stimulation par AA de hTRAAK reste alors que le patch est excisé (fig 5C) . Le courant induit par AA observé dans une configuration outside out est rectifiant vers l'extérieur et change de sens au potentiel reverse de K+ (fig 5C, cartouche) . Nous avons démontré que les canaux K+ à deux domaines P activés par les acides gras polyinsaturés (mTREK-1 et MTRAAK) sont des canaux K+ mecanosensibles. En effet, l'ouverture du canal est médiée par une déformation de la membrane (Maingret et al., 1999a ; Patel et al., 1998). La figure 5D illustre la sensibilité mécanique de hTRAAK. Dans la configuration patch à l'envers, l'activité du canal est presque absent à la pression atmosphérique. L'application de pression négative ouvre les canaux de façon dose- dépendante. Pris ensemble, ces résultats démontrent que le TRAAK humain partage les mêmes propriétés biophysiques et pharmacologiques que son homologue de souris (Fink et al ;, 1998 ; Maingret et al., 1999a ; Patel et al., 1999).
II - Clonage de l'ADNc hTRAAK.
Les séquences de canaux K+ à deux domaines P ont été utilisées pour rechercher des homologues dans les bases de données publiques d'ADN en utilisant le programme BLAST (Altschul et al., 1990) . Cela a permis l'identification d'une séquence genomique (numéro d'accession Genbank AC005848) qui présente des similarités significatives avec le TRAAK de souris. Deux oligonucléotides ont été choisis à partir de cette séquence genomique correspondant aux séquences équivalentes flanquant le premier codon d' initiation et le codon stop du mTRAAK : brin sens : 5' -AGAATTCGCGCCATGCGCAGCACCACG-3' (SEQ ID NO: 3) et brin anti-sens : 5 ' - TTTCTCGAGGCCCGGCCAGGGATCCTG-3' (SEQ ID NO: 4) introduisant les sites de restriction EcoRI et Xhol respectivement. La séquence codant entière a été amplifiée à partir d'ADNc de cerveau humain par PCR en utilisant ces amorces et une ADN polymérase à faible taux d'erreur puis sousclonée dans un vecteur pIRES-CD8 pour donner pIRES-CD8. hTRAAK. Des inserts à partir d'expériences de PCR-ligation indépendantes ont été séquences sur les deux brins et trouvés identiques.
III - Cartographie chromosomique Le panel d'ADN 4 RH de Genebridge (Research
Genetics) a été trié par PCR en utilisant des amorces déduits à partir de l' intron 5 (amorce sens : 5'-
ACCCAGTGGAGGAGCCCTTC-3' ) (SEQ ID NO: 5) et de l'exon 6
(amorce antisens : 5' -GAGGCCCGGCCAGGGATCCTG-3' ) (SEQ ID NO: 6) . Les conditions de PCR sont 39 cycles de 30s à 94°C, 30s à 55°C et 30s à 72°C. Les produits de PCR ont été séparés par une électrophorèse sur agarose puis transférés sur des membranes de nylon chargées. Les blots ont été analysés avec un ol i gonucléo t ide marqué au P32 5'- CCAGGCTGCCAGCTGGACTG-3' (SEQ ID NO: 7). Les résultats ont été analysés en utilisant le programme RH-MAPPER à l'Institut Whitehead.
IV - Expériences de RT-PCR. De l'ADNc de plusieurs types tissulaires
(Clontech) ont été utilisés comme patron selon le protocole du fournisseur. Les séquences des amorces étaient pour l'amorce sens : 5' -CTCAGTGCTCACCACCATCG-3' (SEQ ID NO: 8).
(exon 5) et pour l'amorce antisens : 5'- GAGGCCCGGCCAGGGATCCTG-3' (SEQ ID NO: 9) . (exon 6) . Les conditions de PCR sont 34 cycles de 30s à 94°C, 30s à 55°C et 1 min à 72°C. Les produits de PCR ont été séparés, transférés et analysés comme décrit pour la cartographie chromosomique . V - Culture cellulaire et transfection.
Les cellules COS-7 ont été maintenues dans du milieu d' Eagle modifié par Dulbecco complété avec 10 % de sérum fœtal bovin. Le plasmide pIRES-cD8-hTRAAK a été transfecté en utilisant le procédé classique DEAE dextrane. Les cellules positives ont été visualisées 48 h après transfection en utilisant la méthode des billes recouvertes par l'anticorps anti-CD8 (Maingret et al., 1999a ; Maingret et al. , 1999b) .
VI - Electrophysiologie
Pour les expériences sur cellules entières et outside-out, la solution de la pipette (INT) contenait 150 mM KCl, 3 mM MgCl2, 5 mM EGTA et 10 mM HEPES, pH 7,2 ajusté avec KOH . La solution de bain (EXT) contenait 150 mM NaCl, 5 mM KCl, 3 mM MgCl2, 1 mM CaCl2 et 10 mM HEPES, pH 7,4 ajusté avec NaOH. Pour les expériences inside-out, la solution dans la pipette était EXT et la solution de bain était INT. La solution EXT riche en K+ contenait 150 mM KCl au lieu de 150 mM NaCl . Pour étudier la sélectivité des ions, les relations entre le courant et le voltage ont été obtenues à différentes concentrations K+ ext . Pour chaque concentration, NaCl a été substitué dans la solution EXT par du KCl équimolaire.
Tous les produits ont été obtenus de Sigma. Les acides gras ont été dissous dans de l'éthanol à la concentration de 100 mM, mis sous argon et conservés à -20°C pendant une semaine. La stimulation mécanique a été appliquée par un système générant la pression en boucle ouverte et contrôlée au niveau de la pipette durant l'expérience par un senseur de pression calibré. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES
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Claims

REVENDICATIONS
1) Protéine purifiée constituant un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole, ou un dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe SEQ ID. : 2.
2) Anticorps poly ou monoclonaux dirigés contre au moins une protéine constituant un canal ionique selon la revendication 1.
3) Molécule d'acide nucléique purifiée comprenant ou constituée par une séquence nucléique codant pour une protéine selon la revendication 1.
4) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 3 comprenant la séquence comprise entre les nucléotides 1 et 1182 de la séquence représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO: 1 ou sa séquence complémentaire.
5) Vecteur comprenant au moins une molécule d'acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 3 à 4 avantageusement associé à des séquences de contrôle.
6) Procédé de production d'une protéine constituant un canal potassium selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il consiste :
- à transférer une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 3 à 4 ou un vecteur selon la revendication 5 dans un hôte cellulaire, - à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant la production de la protéine constituant ledit canal potassium,
- à isoler, par tous moyens appropriés les protéines constituant lesdits canaux.
7) Procédé d'expression d'un canal potassium selon la revendications 1, caractérisé en ce qu'il consiste
- a transférer une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 3 à 4 ou un vecteur selon la revendication 5 dans un hôte cellulaire,
- à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant la production desdits canaux potassium.
8) Hôte cellulaire obtenu par un procédé selon la revendication 7.
9) Procédé de criblage de substances capables de moduler l'activité de canaux potassium mecanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole selon la revendications 1 ou dont la séquence est représentée dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID. : 1, caractérisé en ce que l'on met en contact des quantités variables d'une substance à tester avec des cellules selon la revendication 8, puis l'on mesure, par tous moyens appropriés, les effets éventuels de ladite substance sur les courants desdits canaux.
10) Procédé selon la revendication 9 appliqué au criblage de substances capables de prévenir ou traiter des pathologies cardiaques et/ou vasculaires chez un sujet humain ou animal 11) Procédé selon la revendication 9 appliqué au criblage de substances capables de prévenir ou traiter des pathologies du système nerveux associées aux ischémies et aux anoxies ou aux pathologies de la moelle épinière chez un sujet humain ou animal.
12) Procédé selon la revendication 9 appliqué au criblage de substances capables de prévenir ou traiter des pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans les sécrétions d'hormones ou des pathologies musculaires chez un sujet humain ou animal.
13) Procédé selon la revendication 9 appliqué au criblage de substances capables de prévenir ou traiter des pathologies de la rétine chez un sujet humain ou animal .
14) Procédé de diagnostic d'une maladie chez l'homme et/ou chez l'animal susceptible d'impliquer un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment 1 ' acide arachidonique et par le riluzole, caractérisé en ce que l'on recherche dans un échantillon biologique d'un patient la présence ou l'absence d'un canal potassium mécanosensible selon la revendication 1 ou du gène codant celui-ci ou d'un variant de ceux-ci.
15) Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'on met en contact ledit échantillon avec un anticorps ou un mélange d'anticorps selon la revendication 2.
16) Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'on met en contact les acides nucléiques contenu dans ledit échantillon ou avec une ou plusieurs sondes nucléotidiques capables de s'hybrider avec une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 3 ou 4 ou un variant de celles-ci.
17) Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'on recherche dans le génome des cellules présentes dans le dit échantillon la localisation du gène codant un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole à l'aide de sondes nucléotidiques capables de s'hybrider avec une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 3 ou 4 ou un variant de celles-ci.
18) Utilisation des anticorps ou de leurs fragments, selon la revendication 2 pour la détection de pathologies chez l'homme et/ou chez l'animal caractérisée en ce qu'elle comprend la détection de la mutation, et/ou la suppression et/ou l'addition d'un moins un acide aminé dans la séquence protéique selon la revendication 1.
19) Utilisation des séquence d'acides nucléiques selon les revendications 3 ou 4, ou des oligonucléot ides issus de celles-ci pour la détection de pathologies chez l'homme ou chez l'animal caractérisée en ce qu'elle comprend la détection de la mutation, et/ou la suppression et/ou l'addition d'un moins un nucléotide dans lesdites séquences nucléotidiques
20) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 18 à 19 pour la détection de pathologies cardiaques et vasculaires chez un sujet humain ou animal.
21) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 18 à 19 pour la détection de pathologies du système nerveux associées aux ischémies et aux anoxies ou aux pathologies de la moelle épinière chez un sujet humain ou animal . 22) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 18 à 19 pour la détection de pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans les sécrétions d'hormones ou des pathologies musculaires chez un sujet humain ou animal.
23) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 18 à 19 pour la détection de pathologies de la rétine chez un sujet humain ou animal.
24) Utilisation d'une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon la revendication 1 ou dont la séquence est représentée dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID. : 1, pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des maladies des systèmes cardiaque et vasculaire chez un sujet humain ou animal.
25) Utilisation d'une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon la revendication 1 ou dont la séquence est représentée dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID. : 1, pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des pathologies du système nerveux, associées aux ischémies et aux anoxies ou des pathologies de la moelle épinière chez un sujet humain ou animal.
26) Utilisation d'une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon la revendication 1 ou dont la séquence est représentée dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID. : 1, pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans les sécrétions d'hormones ou des pathologies musculaires chez un sujet humain ou animal. 27) Utilisation d'une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon la revendication 1 ou dont la séquence est représentée dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID. : 1, pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des pathologies de la rétine chez un sujet humain ou animal.
28) Composition pharmaceutique comprenant comme principe actif au moins une protéine constituant un canal potassium selon la revendication 1 ou un anticorps selon la revendication 2, ou une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 3 et 4 ou un vecteur selon la revendication 5, éventuellement associé à un véhicule physiologiquement acceptable.
PCT/FR2001/000758 2000-03-14 2001-03-14 Famille de canaux potassium humains mecanosensibles et actives par les acides gras polyinsatures et leur utilisation Ceased WO2001068670A2 (fr)

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