RU2848890C1

RU2848890C1 - Method for restoring the mucosa of the nasal cavity after rhinosurgical interventions

Info

Publication number: RU2848890C1
Application number: RU2025105353A
Authority: RU
Inventors: Андрей Иванович Крюков; Анна Семеновна Товмасян; Владислав Витальевич Мосин; Наталья Валерьевна Боровкова; Иван Николаевич Пономарев
Filing date: 2025-03-07
Publication date: 2025-10-21

Abstract

FIELD: medicine, in particular otorhinolaryngology.

SUBSTANCE: intraoperatively, after forming a flap of the nasal cavity mucosa, a type I collagen-based dressing corresponding to the area of the exposed donor site of the mucosa is placed on the exposed donor site. The dressing is impregnated with autologous platelet-rich plasma lysate containing at least 1000×10⁹/l platelets, of which at least 30% have alpha granules. The dressing is used to cover the bone walls along their entire length and is tucked under the preserved areas of the nasal cavity mucosa. In the long-term postoperative period, if scarred mucosa is detected in the donor site after endonasal reconstructive surgery with mucosal flap formation, injections of autologous platelet-rich plasma lysate are performed, containing at least 1000×10⁹/l of platelets, of which at least 30% have alpha granules, into the scar area in a volume of at least 1 ml per 1 cm² of scar tissue^, with repeated administration of the preparation after 7 days.

EFFECT: method allows to accelerate the recovery of the donor site of the nasal mucosa after endonasal reconstructive surgery on the nasal septum requiring the removal of donor mucosa.

3 cl, 6 dwg, 2 tbl, 3 ex

Description

Область техникиField of technology

Группа изобретений относится к области медицины, в частности к оториноларингологии и может быть использована для восстановления слизистой оболочки полости носа после ринохирургических вмешательств, при проведении реконструктивных операций на перегородке носа (пластики перфорации перегородки носа), требующих забора донорской слизистой оболочки.The group of inventions relates to the field of medicine, in particular to otolaryngology, and can be used to restore the mucous membrane of the nasal cavity after rhinosurgical interventions, during reconstructive operations on the nasal septum (plastic surgery of the perforation of the nasal septum), requiring the collection of donor mucous membrane.

Уровень техникиState of the art

По данным литературы, ежегодное увеличение числа операций по поводу искривления перегородки носа сопровождается пропорциональным ростом числа осложнений, в том числе, развитием перфорации перегородки носа. Частота встречаемости перфорации перегородки носа разнится от 0,5 до 8%, в 60% случаев определяется как ятрогенная и является исходом хирургического лечения или травмы носа [1]. Лечение перфорации перегородки носа - хирургическое. Предложено множество способов формирования лоскутов слизистой оболочки полости носа. В настоящее время эффективность пластики перфорации перегородки носа составляет от 72 до 90%, требует большого опыта хирурга и сопровождается длительным реабилитационным периодом. Это связано с продолжительностью восстановления донорского участка слизистой оболочки полости носа, образованием корочек, длительным проведением ирригационной и увлажняющей терапии, образованием грубых рубцов, так как все предложенные способы пластики перфорации перегородки носа предполагают заживление донорского участка слизистой оболочки вторичным натяжением [2-10]. По данным литературы, применение технологий регенеративной медицины в хирургии способно ускорить регенерацию органов и тканей, что возможно осуществить за счет стимуляции репаративной регенерации. Ускорение регенерации возможно двумя основными способами: заместительным - за счет трансплантации столовых клеток или их ассоциатов с соматическими клетками, стимуляторным - за счет активации деления резидентной прогенеторной клетки путем введения в область поражения факторов роста или биоактивных молекул в окружающие ткани, или трансплантации биокомпозитных конструкций, включающих и биоактивные молекулы, и биодеградируемый носитель, являющийся основой конструкции. Второй вариант предполагает, что в области повреждения используется аутологичное депо клеток, содержащее юные низко дифференцированные клетки, например, мультипотентные мезенхимальные стволовые клетки, зрелые специализированные клетки из тех же тканей, но из других областей. Для упрощения реализации данного подхода к регенерации тканей, предложено применять стимуляторы регенеративного процесса: аутологичная богатая тромбоцитами плазма, лизат богатой тромбоцитами плазмы, стромально-васкулярная фракция и др. Данное направление является интересным и перспективным [11,12].According to the literature, the annual increase in the number of surgeries for deviated septum is accompanied by a proportional increase in complications, including the development of nasal septal perforation. The incidence of nasal septal perforation ranges from 0.5 to 8%, with 60% of cases being iatrogenic and resulting from surgical treatment or nasal trauma [1]. Treatment for nasal septal perforation is surgical. Numerous methods for creating nasal mucosal flaps have been proposed. Currently, the effectiveness of nasal septal perforation repair ranges from 72 to 90%, requires extensive surgical experience, and is accompanied by a lengthy rehabilitation period. This is due to the duration of restoration of the donor site of the nasal mucosa, the formation of crusts, long-term irrigation and moisturizing therapy, the formation of coarse scars, since all the proposed methods of plastic surgery of the nasal septum perforation assume healing of the donor site of the mucous membrane by secondary intention [2-10]. According to the literature, the use of regenerative medicine technologies in surgery can accelerate the regeneration of organs and tissues, which can be achieved by stimulating reparative regeneration. Acceleration of regeneration is possible in two main ways: substitution - through the transplantation of stem cells or their associates with somatic cells, stimulatory - through the activation of division of the resident progenitor cell by introducing growth factors or bioactive molecules into the affected area into the surrounding tissues, or transplantation of biocomposite structures including both bioactive molecules and a biodegradable carrier, which is the basis of the structure. The second option involves using an autologous cell depot in the damaged area, containing young, poorly differentiated cells, such as multipotent mesenchymal stem cells or mature, specialized cells from the same tissues but in other areas. To simplify the implementation of this approach to tissue regeneration, it has been proposed to use regenerative process stimulants: autologous platelet-rich plasma, platelet-rich plasma lysate, stromal-vascular fraction, etc. This approach is interesting and promising [11, 12].

Лизат богатой тромбоцитами плазмы представляет собой суспензию, насыщенную факторами роста из тромбоцитов, способных через взаимодействие с рецепторами клеточных мембран стромальных прогенеторных клеток, вызывать их активацию. Применение лизата богатой тромбоцитами плазмы в качестве активатора репаративных процессов в области повреждения показано в различных исследованиях и зарекомендовало себя как эффективное в разных областях практической медицины [13,14].Platelet-rich plasma lysate is a suspension saturated with growth factors from platelets, which can activate stromal progenitor cells through interaction with receptors on their membranes. The use of platelet-rich plasma lysate as an activator of reparative processes at the site of injury has been demonstrated in various studies and has proven effective in various areas of practical medicine [13,14].

За прототип принят стандартный способ лечения, подразумевающий применение ирригационной и увлажняющей терапии. Недостатком настоящего способа лечения является длительность восстановления слизистой оболочки, достигающая 8-10 недель, а, по данным некоторых исследований, 3 месяца и более [15,16]. Помимо этого, ранний и поздний послеоперационные периоды сопровождаются возникновением у пациентов ряда осложнений: онемения в области зубов 1.1., 1.2, твердого неба в проекции указаных зубов и со стороны донорского участка дна полости носа, образованием массивных корочек, фибрина, а также формированием грубых рубцов в области переднего конца нижней носовой раковины со стороны забора донорской слизистой, что, в свою очередь влияет на функцию носового дыхания и снижает качество жизни пациента. Исходя из вышесказанного актуальным является поиск способа восстановления области донорского участка слизистой оболочки полости носа, не имеющего указанных недостатков.The standard treatment method, which involves the use of irrigation and moisturizing therapy, was adopted as a prototype. A disadvantage of the present treatment method is the duration of the mucous membrane recovery, which reaches 8-10 weeks, and, according to some studies, 3 months or more [15,16]. In addition, the early and late postoperative periods are accompanied by the occurrence of a number of complications in patients: numbness in the area of teeth 1.1, 1.2, the hard palate in the projection of the said teeth and on the side of the donor site of the floor of the nasal cavity, the formation of massive crusts, fibrin, as well as the formation of coarse scars in the area of the anterior end of the inferior turbinate on the side of the collection of the donor mucosa, which, in turn, affects the function of nasal breathing and reduces the patient's quality of life. Based on the above, it is relevant to search for a method for restoring the donor site area of the nasal mucosa that does not have the above-mentioned disadvantages.

Задачей группы изобретений является устранение недостатков ранее известных способов лечения, ускорение регенерации слизистой оболочки полости носа в области донорского участка, улучшение качества жизни пациентов в раннем и позднем послеоперационных периодах. Предложенный способ позволяет изолировать участки оголенной кости латеральной стенки полости носа и перегородки носа за счет применения в области донорского участка биокомпозитной конструкции на основе коллагена I типа и лизата богатой тромбоцитами плазмы, изолируя выше описанную область от иссушающего воздействия воздушных потоков, а также активизируя регенераторные процессы за счет локального и системного воздействия цитокинов и факторов роста, содержащихся в тромбоцитах. Лизат богатой тромбоцитами плазмы в предложенном способе может быть также использован в качестве инъекционного препарата, в случаях, когда биокомпозитные конструкции не применяются, а восстановление донорского участка осуществляется вторичным натяжением с образованием рубцов в позднем послеоперационном периоде. Предложенный способ позволяет добиться ускорения восстановления слизистой оболочки донорского участка слизистой оболочки полости носа, облегчить течение раннего и позднего послеоперационных периодов, сократить реабилитационный период. Использование лизата богатой тромбоцитами плазмы в качестве инъекционного препарата позволяет размягчить рубцы в позднем послеоперационном периоде и уменьшить явления парастезии в проекции зубов 1.1-1.2 и твердого неба.The objective of this group of inventions is to eliminate the shortcomings of previously known treatment methods, accelerate the regeneration of the nasal mucosa at the donor site, and improve patients' quality of life in the early and late postoperative periods. The proposed method isolates areas of exposed bone in the lateral nasal wall and nasal septum by applying a biocomposite structure based on type I collagen and platelet-rich plasma lysate to the donor site. This isolates the area from the drying effects of air currents and activates regenerative processes through the local and systemic action of cytokines and growth factors contained in platelets. The platelet-rich plasma lysate in the proposed method can also be used as an injectable agent in cases where biocomposite structures are not used and donor site restoration occurs by secondary intention, resulting in scar formation in the late postoperative period. The proposed method accelerates mucosal regeneration at the donor site, alleviates the early and late postoperative periods, and shortens the rehabilitation period. The use of platelet-rich plasma lysate as an injectable agent softens scars in the late postoperative period and reduces paresthesia in the projection of teeth 11-12 and the hard palate.

Раскрытие группы изобретений.Disclosure of a group of inventions.

Цель - повысить эффективность лечения пациентов после эндоназальных реконструктивных операций, подразумевающих формирование лоскутов слизистой оболочки полости носа.The goal is to improve the effectiveness of treatment for patients after endonasal reconstructive surgeries, which involve the formation of flaps of the nasal mucosa.

Техническим результатом заявленной группы изобретений является ускорение восстановления области донорского участка слизистой оболочки полости носа после эндоназальной реконструктивной операции.The technical result of the claimed group of inventions is the acceleration of the restoration of the donor site of the nasal mucosa after endonasal reconstructive surgery.

Заявленный технический результат реализуется за счет следующих приемов.The stated technical result is achieved through the following techniques.

После выкраивания лоскута слизистой оболочки происходит обнажение костных стенок донорского участка полости носа.After cutting out the mucous membrane flap, the bony walls of the donor site of the nasal cavity are exposed.

Из аллогенной коллагеновой повязки на основе коллагена I типа (например РУ № ФСР 2009/06370 от 8 декабря 2014, изготовленной в соответствии с ТУ № 9393-002-019670812008) выкраивается матрица для биокомпозитной конструкции, соответствующая по площади области обнаженного донорского участка слизистой оболочки.A matrix for a biocomposite structure corresponding in area to the exposed donor site of the mucous membrane is cut out from an allogeneic collagen dressing based on type I collagen (for example, RU No. FSR 2009/06370 dated December 8, 2014, manufactured in accordance with TU No. 9393-002-019670812008).

Коллагеновая основа насыщается аутологичным лизатом богатой тромбоцитами плазмы из расчета не менее 1 мл лизата на 1 см² коллагеновой повязки - получена биокомпозитная конструкция.The collagen base is saturated with autologous platelet-rich plasma lysate at a rate of at least 1 ml of lysate per 1 ^cm2 of collagen dressing - a biocomposite structure is obtained.

После завершения реконструктивного этапа операции биокомпозитная конструкция на основе коллагена I типа и лизата богатой тромбоцитами плазмы укладывается в область обнаженного донорского участка так, чтобы костные стенки были закрыты на всем протяжении, а также заправляется под сохраненные участки слизистой оболочки.After completion of the reconstructive stage of the surgery, a biocomposite structure based on type I collagen and platelet-rich plasma lysate is placed in the area of the exposed donor site so that the bone walls are covered along their entire length, and is also tucked under the preserved areas of the mucous membrane.

При выявлении формирования рубцово-измененной слизистой оболочки в области донорского участка в позднем послеоперационном периоде, при затруднении носового дыхания и усиливающемся явлении парастезии в проекции зубов 1.1-1.2 и твердого неба, осуществляются инъекции аутологичного лизата богатой тромбоцитами плазмы в область рубцово-измененной слизистой оболочки в объеме 1 мл на 1 см²с повторным введением препарата через 7 дней.If the formation of cicatricial mucosa is detected in the donor site area in the late postoperative period, with difficulty in nasal breathing and increasing paresthesia in the projection of teeth 1.1-1.2 and the hard palate, injections of autologous platelet-rich plasma lysate are performed into the area of cicatricial mucosa in a volume of 1 ml per 1 ^cm2 with repeated administration of the drug after 7 days.

Группа изобретений поясняется иллюстрациями.The group of inventions is explained with illustrations.

Фигура 1. Размещение биокомпозитной конструкции в донорском участке слизистой оболочки полости носа.Figure 1. Placement of the biocomposite structure in the donor area of the nasal mucosa.

Фигура 2. Донорский участок слизистой оболочки через 4 недели после проведенного хирургического лечения. Лечение проводилось с применением биокмопозитной конструкции.Figure 2. Donor site mucosa 4 weeks after surgical treatment. The treatment was performed using a biocomposite construct.

Фигура 3. Донорский участок слизистой оболочки через 8 недель после проведенного хирургического лечения. Лечение проводилось с применением биокмопозитной конструкции.Figure 3. Donor site mucosa 8 weeks after surgical treatment. The treatment was performed using a biocomposite construct.

Фигура 4. Донорский участок слизистой оболочки через 4 недели после проведенного хирургического лечения. Лечение проводилось по общепринятой методике.Figure 4. Donor site mucosa 4 weeks after surgical treatment. Treatment was performed using the standard technique.

Фигура 5. Донорский участок слизистой оболочки через 8 недель после проведенного хирургического лечения. Лечение проводилось по общепринятой методике.Figure 5. Donor site mucosa 8 weeks after surgical treatment. Treatment was performed using the standard technique.

Фигура 6. Оценка сроков регенерации слизистой оболочки по визуально-аналоговой шкале.
Группа А- восстановление слизистой оболочки по общепринятой методике. Группа Б- восстановление слизистой оболочки с применением биокомпозитной конструкции.Figure 6. Evaluation of the timing of mucosal regeneration using a visual analogue scale.
Group A – mucosal restoration using a conventional technique. Group B – mucosal restoration using a biocomposite structure.

Способы осуществляются следующим образом.The methods are carried out as follows.

В рамках лабораторного госпитального скрининга за 7-14 дней до операции пациенту из кубитальной вены осуществляют забор 10 мл крови в стерильную пробирку ЭДТА. Собранный материал транспортирую в лабораторию, где его подвергают двухэтапному центрифугированию по общепризнанной методике. Первым этапом пробирки центрифугируют 5 минут с ускорением 300 g после чего отбирают всю супернатантную плазму с тромбоцитами в отдельную стерильную пробирку. Вторым этапом отобранную плазму центрифугируют 17 минут с ускорением 700 g с целью осаждения тромбоцитов. Третьим этапом в стерильных условиях из пробирки отбирают надосадочную жидкость, бедную тромбоцитами, затем ресуспендируют осадок тромбоцитов в оставшемся объеме плазмы. Полученный материал подвергают криодеструкции. После разморозки полученный лизат доставляют в операционную.As part of the hospital laboratory screening, 7-14 days before surgery, 10 ml of blood is collected from the patient's cubital vein into a sterile EDTA tube. The collected sample is transported to the laboratory, where it undergoes a two-stage centrifugation process using a generally accepted method. First, the tubes are centrifuged for 5 minutes at 300 g, after which all supernatant plasma containing platelets is collected in a separate sterile tube. Second, the collected plasma is centrifuged for 17 minutes at 700 g to sediment the platelets. Third, under sterile conditions, the supernatant fluid, poor in platelets, is removed from the tube, and the platelet pellet is then resuspended in the remaining plasma. The resulting sample is cryodestructed. After thawing, the resulting lysate is delivered to the operating room.

На завершающем этапе реконструктивной эндоназальной операции после формирования лоскута слизистой оболочки донорского участка, выкраивают повязку на основе коллагена I типа в соответствии с площадью обнаженного донорского участка слизистой оболочки полости носа. На повязку наносят аутологичный лизат богатый тромбоцитами плазмы в объеме не менее 1 мл лизата на 1 см² повязки. Признаком полного насыщения коллагеновой повязки является изменение ее цвета со стандартного белого на желтый. Подготовленная таким образом биокомпозитная конструкция - повязка на основе коллагена I типа, пропитанная лизатом богатый тромбоцитами плазмы - укладывается в область донорского участка слизистой оболочки так, чтобы костные стенки были закрыты на всем протяжении, а также заправляется под сохраненные участки слизистой оболочки (фиг. 1). В послеоперационном периоде допустимо введение препарата в сохраненные участки слизистой оболочки для повышения эффективности лечения.At the final stage of reconstructive endonasal surgery, after the donor-site mucosal flap has been formed, a type I collagen dressing is cut to fit the exposed donor-site nasal mucosa. Autologous platelet-rich plasma lysate is applied to the dressing at a minimum rate of 1 ml per 1 ^cm² of dressing. Complete saturation of the collagen dressing is indicated by a change in color from the standard white to yellow. The resulting biocomposite structure—a type I collagen dressing soaked in platelet-rich plasma lysate—is placed over the donor-site mucosa so that the bony walls are covered along their entire length and tucked under the preserved mucosal areas (Fig. 1). Postoperatively, injection of the preparation into the preserved mucosal areas is permissible to enhance treatment effectiveness.

В другом варианте исполнения аутологичный лизат богатой тромбоцитами плазмы используют после реконструктивной операции в позднем послеоперационном периоде, при выявлении формирования рубцово-измененной слизистой оболочки в области донорского участка, затрудняющей носовое дыхание и усиливающей явления парастезии в проекции зубов 1.1-1.2 и твердого неба. Осуществляют инъекции аутологичного лизата богатой тромбоцитами плазмы в область рубцово-измененной слизистой оболочки в объеме не менее 1 мл лизата на 1 см² рубца. Иньекции осуществляют повторно через 7 дней.In another embodiment, autologous platelet-rich plasma lysate is used after reconstructive surgery in the late postoperative period when scar tissue formation in the donor site is detected, impeding nasal breathing and increasing paresthesia in the projection of teeth 11-12 and the hard palate. Autologous platelet-rich plasma lysate is injected into the scarred mucosa at a volume of at least 1 ml of lysate per 1 ^cm² of scar. Repeat injections are administered after 7 days.

Вариант исполнения способа выбирают в зависимости от клинической ситуации.The method implementation option is selected depending on the clinical situation.

Совокупность существенных признаков группы изобретений.A set of essential features of a group of inventions.

Способ восстановления слизистой оболочки полости носа после ринохирургических вмешательств, отличающийся тем, что интраоперационно после формирования лоскута слизистой оболочки полости носа в область обнаженного донорского участка укладывают повязку на основе коллагена I типа соответствующую по площади области обнаженного донорского участка слизистой оболочки, пропитанную аутологичным лизатом богатой тромбоцитами плазмы, содержащую не менее 1000 х 10⁹/л тромбоцитов, из которых не менее 30% имеют альфа-гранулы, причем повязкой закрывают костные стенки на всем протяжении и заправляют под сохраненные участки слизистой оболочки полости носа.A method for restoring the mucous membrane of the nasal cavity after rhinosurgical interventions, characterized in that intraoperatively, after forming a flap of the mucous membrane of the nasal cavity, a bandage based on type I collagen corresponding in area to the area of the exposed donor site of the mucous membrane is placed in the area of the exposed donor site, impregnated with an autologous lysate of platelet-rich plasma containing at least 1000 x 10 ⁹ /l of platelets, of which at least 30% have alpha granules, and the bandage covers the bony walls along the entire length and is tucked under the preserved areas of the mucous membrane of the nasal cavity.

Способ восстановления слизистой оболочки полости носа после ринохирургических вмешательств, отличающийся тем, что в отдаленном послеоперационном периоде при выявлении формирования рубцово-измененной слизистой оболочки донорского участка после эндоназальной реконструктивной операции с формированием лоскута слизистой оболочки, осуществляют инъекции аутологичного лизата богатой тромбоцитами плазмы, содержащей не менее 1000 х 109/л тромбоцитов, из которых не менее 30% имеют альфа-гранулы, в область рубца в объеме не менее 1 мл на 1 см2 рубца с повторным введением препарата через 7 дней.A method for restoring the mucous membrane of the nasal cavity after rhinosurgical interventions, characterized in that in the late postoperative period, upon detection of the formation of a cicatricially altered mucous membrane of the donor site after endonasal reconstructive surgery with the formation of a mucous membrane flap, injections of autologous platelet-rich plasma lysate containing at least 1000 x 109/l platelets, of which at least 30% have alpha granules, are carried out into the scar area in a volume of at least 1 ml per 1 cm2 of scar with repeated administration of the drug after 7 days.

В период 2022-2023 гг. 40 пациентам с диагнозом «Перфорация перегородки носа» в научно-исследовательском отделе «Патологии верхних дыхательных путей и ринофациальной хирургии» ГБУЗ НИКИО имени Л.И. Свержевского было проведено пластическое закрытие дефекта перегородки носа перемещенными лоскутами слизистой оболочки костного отдела перегородки носа и дна полости носа. В исследование были включены 40 пациентов в возрасте от 19 до 60 лет. Медиана возраста составила 34. Среди них 22 мужчины (55%), 18 женщин (45%). Время послеоперационного наблюдения составило от 1 до 2-х лет. Оценка эпителизации слизистой оболочки полости носа проводилось в послеоперационном периоде с 1 по 10 неделю. Каждый послеоперационный осмотр включал эндоскопический осмотр с оценкой эпителизации слизистой оболочки донорского участка по визуально-аналоговой шкале (табл. 1). Были определены наиболее значимые клинически параметры: «Покрытие эпителием», «Наличие геморрагического отделяемого», «Наличие корок», «Локальное воспаление», «Интеграция с окружающими тканями». Каждый параметр оценивался от 0 до 2 баллов. Интерпретация суммарного балла осуществлялась следующим образом: от 10 до 8 баллов - выраженное воспаление, от 7 до 4 баллов - умеренное заживление, от 3 до 0 баллов- удовлетворительная регенерация. Пациенты были разделены на 2 группы. Группа А (20 пациентов) - донорский участок слизистой оболочки заживал вторичным натяжением, лечение проводилось с применением общепризнанной методики (ирригационная и увлажняющая терапия) (фиг. 4, 5), Группа Б (20 человек) - лечение проводилась с применением биокомпозитной конструкции - по заявленному способу (фиг. 2, 3). В область донорского участка устанавливали биокомпозитную конструкцию на основе коллагена I типа, пропитанного лизатом богатой тромбоцитами плазмы. Контроль лечения осуществлялся с 1 по 10 неделю. Пациенты с нежелательными эффектами (гиперемия, отек, гипертермия, гнойное отделяемое, нарушения общего самочувствия) после установки биокомпозитной конструкции отсутствовали.Between 2022 and 2023, 40 patients diagnosed with nasal septal perforation underwent plastic closure of the nasal septum defect using transferred mucosal flaps from the bony portion of the nasal septum and nasal floor at the Upper Respiratory Tract and Rhinofacial Surgery Research Department of the L.I. Sverzhevsky State Budgetary Healthcare Institution Research Institute of Oncology and Orthopedics. The study included 40 patients aged 19 to 60 years. The median age was 34. There were 22 men (55%) and 18 women (45%). The postoperative follow-up period ranged from 1 to 2 years. Nasal mucosal epithelialization was assessed in the postoperative period from 1 to 10 weeks. Each postoperative examination included an endoscopic examination with an assessment of the epithelialization of the donor site mucosa using a visual analogue scale (Table 1). The most clinically significant parameters were determined: "Epithelial coverage," "Presence of hemorrhagic discharge," "Presence of crusts," "Local inflammation," and "Integration with surrounding tissues." Each parameter was assessed on a scale of 0 to 2 points. The total score was interpreted as follows: 10 to 8 points—severe inflammation, 7 to 4 points—moderate healing, and 3 to 0 points—satisfactory regeneration. Patients were divided into 2 groups. Group A (20 patients) - the donor site of the mucous membrane healed by secondary intention, the treatment was carried out using the generally accepted technique (irrigation and moisturizing therapy) (Fig. 4, 5), Group B (20 people) - treatment was carried out using a biocomposite structure - according to the declared method (Fig. 2, 3). A biocomposite structure based on type I collagen soaked in lysate of platelet-rich plasma was installed in the donor site. Treatment monitoring was carried out from 1 to 10 weeks. There were no patients with undesirable effects (hyperemia, edema, hyperthermia, purulent discharge, general malaise) after the installation of the biocomposite structure.

Таблица 1. Визуально-аналоговая шкала эндоскопической оценки эпителизации дна полости носа.Table 1. Visual analogue scale for endoscopic assessment of nasal cavity floor epithelialization.

Характеристика Characteristics БаллScore ХарактеристикаCharacteristic Балл Score Характеристика Characteristics БаллScore Покрытие эпителием Epithelial covering Полное покрытие (ровный слой)Full coverage (even layer) 0 баллов0 points Частичная эпителизация (островка эпителия менее 50%)Partial epithelialization (island epithelium less than 50%) 1 балл 1 point Полное отсутствие эпителия (обнаженная подслизистая основа/кость)Complete absence of epithelium (exposed submucosa/bone) 2 балла2 points Наличие геморрагического отделяемого Presence of hemorrhagic discharge Отсутствие геморрагического отделяемогоAbsence of hemorrhagic discharge 0 баллов0 points Единичные следы крови в отделяемомSingle traces of blood in the discharge 1 балл 1 point Обильное геморрагическое отделяемое, активное кровотечение Profuse hemorrhagic discharge, active bleeding 2 балла 2 points Наличие корокPresence of crusts Полное отсутствие корок Complete absence of crusts 0 баллов 0 points Единичные корочки, легко удаляемыеSingle crusts, easily removed 1 балл 1 point Плотные множественные корочкиDense multiple crusts 2 балла2 points Локальное воспалениеLocal inflammation Гиперемия отсутствует.
Отека нет.
Экссудат отсутствует. There is no hyperemia.
There is no swelling.
There is no exudate. 0 баллов0 points Гиперемия: умеренная (розовый с красными участками).
Отек:легкий, без обструкции.
Экссудат: минимальный серозный. Hyperemia: moderate (pink with red areas).
Edema: mild, without obstruction.
Exudate: minimal serous. 1 балл 1 point Гиперемия: ярко-красный/багровый цвет
Отек: выраженный, деформирует анатомические структуры
Экссудат: обильный серозный/гнойный Hyperemia: bright red/purple color
Edema: pronounced, deforms anatomical structures
Exudate: abundant serous/purulent 2 балла 2 points Интеграция с окружающими тканямиIntegration with surrounding tissues Полная интеграция, незаметный переходFull integration, seamless transition 0 баллов0 points Частичное слияние, слабо выраженная границаPartial fusion, poorly defined border 1 балл 1 point Четкая граница между регенерирующим и здоровым участкомA clear boundary between the regenerating and healthy areas 2 балла2 points

Статистический анализ данных показал, что средний срок эпителизации донорского участка слизистой оболочки в группе А составил 7.5±1.79 недель, в группе Б- 5.5±0.946 недель. Геморрагическое отделяемое в группе А сохранялось в течение 8.1±2,075 недели, в группе Б 6.1± 1,07 недели. В группе А корки отмечались до 8.4±1.39 недель, в группе Б до 7.1±1.41 недели. Локальное воспаление: в группе А 9.9±0.3 недель, в группе Б 8.2±1.5 недели. Интеграция с окружающими тканями в группе А 7.0±0.3 недель в Группе Б- 5.0±1.78 недель. По результатам t-теста с неравными дисперсиями (тест Уэлча), проведен расчет эффекта Коэна для оценки размера эффекта:Statistical analysis of the data showed that the average period of epithelialization of the donor site of the mucous membrane in group A was 7.5±1.79 weeks, in group B - 5.5±0.946 weeks. Hemorrhagic discharge in group A persisted for 8.1±2.075 weeks, in group B - 6.1±1.07 weeks. In group A, crusts were noted up to 8.4±1.39 weeks, in group B - up to 7.1±1.41 weeks. Local inflammation: in group A 9.9±0.3 weeks, in group B 8.2±1.5 weeks. Integration with surrounding tissues in group A 7.0±0.3 weeks, in Group B - 5.0±1.78 weeks. Based on the results of the t-test with unequal variances (Welch's test), Cohen's effect was calculated to estimate the effect size:

Статистический анализ показал, что эпителизация в группе Б проходит на 2 недели быстрее (p<0.001), эффект очень значимый (d=1.47) (табл. 2). Геморрагическое отделяемое в группе Б прекращается на 2 недели раньше (p<0.001). В группе Б корки исчезают на 1.3 недели быстрее (p=0.003), локальное воспаление купируется на 1.7 недель быстрее (p<0.001), что подтверждает наличие противовоспалительного эффекта лизата богатой тромбоцитами плазмы. Также в группе Б отмечается более быстрая (на 2 недели) и качественная интеграция (d=1.71, p<0.001) области регенерации в окружающие ткани. Таким образом применением биокомпозитной конструкции статистически значимо эффективнее общепризнанных методик по всем параметрам: сокращает срок заживления на 20-35%, уменьшает длительность воспаления, обеспечивает более стабильные результаты.Statistical analysis showed that epithelialization in group B was 2 weeks faster (p<0.001), a highly significant effect (d=1.47) (Table 2). Hemorrhagic discharge in group B ceased 2 weeks earlier (p<0.001). In group B, crusts disappeared 1.3 weeks faster (p=0.003), and local inflammation subsided 1.7 weeks faster (p<0.001), confirming the anti-inflammatory effect of platelet-rich plasma lysate. Group B also demonstrated faster (by 2 weeks) and higher-quality integration (d=1.71, p<0.001) of the regenerated area into the surrounding tissues. Thus, the use of the biocomposite structure is statistically significantly more effective than generally accepted methods in all respects: it reduces the healing time by 20-35%, decreases the duration of inflammation, and ensures more stable results.

Таблица 2. Статистический анализ.Table 2. Statistical analysis.

Эффективность предлагаемых способов лечения подтверждается клиническими примерами.The effectiveness of the proposed treatment methods is confirmed by clinical examples.

Пример №1. Приготовление лизата богатой тромбоцитами плазмы.Example No. 1. Preparation of platelet-rich plasma lysate.

В предоперационном периоде с сохранением стерильности осуществляют забор венозной крови пациента. Затем из неё сначала выделяют, а затем концентрируют тромбоциты посредством двухэтапного цетрифугирования -получают богатую тромбоцитами плазму. В образце определяют концентрацию тромбоцитов. Целевой концентрацией является 1000-1200*10⁹/л. В случае если результат исследования превышает целевой показатель, то исходя из объема богатой тромбоцитами плазмы рассчитывают степень её разведения и осуществляют это путем внесения требуемого количества аутологичной, ранее отобранной, плазмы. В случае если результат исследования меньше целевого показателя, то препарат дополнительно концентрируют центрифугированием 700g 17 минут и отбором излишка супернатантной плазмы. С помощью морфофункционального анализа, проводимого по методике, описанной в патенте RU 2739515, 25.12.2020 [17], оценивают количественные и качественные характеристики тромбоцитов в обогащенной тромбоцитами аутоплазмы. Используемая в заявленном способе обогащенная тромбоцитами аутоплазма содержит не менее 1000х10*9/л тромбоцитов и из них не менее 30% функционально полноценные тромбоциты с α-гранулами. Лизис клеток достигают путем стремительного замораживания препарата до -40°С. Завершение изготовления лизата аутологичной богатой тромбоцитами плазмы осуществляют в день операции. За 4-6 часов до операции препарат перемещают из морозильной камеры в камеру с температурой +4°С. После разморозки препарат центрифугируют с ускорением 3000g 20 минут для осаждения разрушенных клеток. Всю полученную супернатантную бесклеточную, но насыщенную факторами роста из тромбоцитов плазму, переносят в новые пробирки и транспортируют с соблюдением холодовой цепи при температуре +4-8°С.Preoperatively, the patient's venous blood is collected under sterile conditions. Platelets are then isolated and then concentrated using a two-stage centrifugation to obtain platelet-rich plasma. The platelet concentration in the sample is determined. The target concentration is 1000-1200* ¹⁰⁹ /L. If the test result exceeds the target, the dilution rate is calculated based on the volume of platelet-rich plasma and is achieved by adding the required amount of previously collected autologous plasma. If the test result is less than the target, the sample is further concentrated by centrifugation at 700g for 17 minutes and the excess supernatant plasma is collected. Using morphofunctional analysis, carried out according to the method described in patent RU 2739515, 25.12.2020 [17], the quantitative and qualitative characteristics of platelets in platelet-rich autoplasma are assessed. The platelet-rich autoplasma used in the claimed method contains at least 1000x10*9/l platelets, of which at least 30% are functionally complete platelets with α-granules. Cell lysis is achieved by rapid freezing of the preparation to -40°C. Completion of the preparation of the autologous platelet-rich plasma lysate is carried out on the day of surgery. 4-6 hours before surgery, the preparation is transferred from the freezer to a chamber with a temperature of +4°C. After defrosting, the preparation is centrifuged at 3000g for 20 minutes to sediment the destroyed cells. All the obtained supernatant cell-free plasma, saturated with growth factors from platelets, is transferred into new tubes and transported in compliance with the cold chain at a temperature of +4-8°C.

Пример №2. Клинический пример.Example No. 2. Clinical example.

В ГБУЗ «НИКИО имени Л.И. Свержевского» ДЗМ обратилась пациентка Р, 19 лет с жалобами на затруднение носового дыхания, образование корочек в носу, периодическими эпизодами кровотечения. Из анамнеза известно, что хирургические манипуляции в полости носа не проводились. Травмы носа в анамнез отрицает. Около 1 года назад отметила появление сухости в полости носа, образование корочек в носу, которые удаляла самостоятельно. При проведении лабораторного исследования: P,C-Anca - отрицательные. При передней риноскопия и эндоскопическом исследовании полости носа: перегородка носа искривлена вправо с формированием костно-хрящевого гребня справа. В передней 1/3 четырехугольного хряща перфорация перегородки носа, длинной 12 мм, высотой 9 мм. Слизистая оболочка в области перфорации сухая, истонченная, покрыта единичными корочками. На догоспитальном этапе проведен курс ирригационной и увлажняющей терапии, без выраженного положительного эффекта. Пациентке проведено шинирование перегородки носа, рекомендовано хирургическое лечение в объеме: септопластика, пластика перфорации перегородки носа. На догоспитальном этапе выполнен забор венозной крови. В лаборатории отделения биотехнологий и трансфузиологии НИИ СП им Н.В. Склифосовского приготовлен лизат богатой тромбоцитами плазмы (не менее 1000 х 10⁹/л тромбоцитов, из которых не менее 30% имеют альфа-гранулы). Пациентка госпитализирована в Оториноларингологическое отделение №2 ГБУЗ «НИКИО имени О.И. Свержевского» ДЗМ для проведения хирургического лечения. Лизат богатой тромбоцитами плазмы доставлен в операционную. Под КЭТА, после предварительной гидроотсепаровки слизистой оболочки перегородки носа, и дна полости носа слева, выполнен круговой разрез скальпелем слизистой оболочки и надхрящница вокруг перфорации, отступив от зоны дефекта перегородки носа 6-7 мм. Распатором выполнена отсепаровка слизистой оболочки с надхрящницей, а также фиброзное кольцо перфорации. Сформированный лоскут перенесен через просвет перфорации, ушит узловыми швами конец-в-конец. Область перфорации закрыта в полном объеме. Далее под контролем ригидного эндоскопа 0 градусов, отсепарована слизистая оболочка с надхрящницей перегородки носа с двух сторон с переходом на дно полости носа слева. При помощи распаторя и инструмента Блекли выполнена коррекция перегородки носа. Костно-хрящевой гребень справа удален. Перегородка носа в срединном положении. При помощи круглого ножа выполнен вертикальный разрез слизистой оболочки перегородки носа в костном отделе в проекции средний 1/3 средней носовой раковины слева с переходом на дно полости носа, а также латеральную стенку полости носа в области заднего конца нижней носовой раковины слева. Далее выполнен разрез слизистой оболочки перегородки носа в проекции переднего края перфорации с переходом на дно полости носа в проекции апертуры грушевидного отверстия с переходом на латеральную стенку полости носа в области переднего конца нижней носовой раковины. Передний и задний разрезы объединены продольным разрезом вдоль нижней носовой раковины по латеральной стенке полости носа в области ее прикрепления. Сформирован лоскут слизистой оболочки на решетчатой артерии. Лоскут уложен в область перфорации, ушит конец-в-конец по краям ранее выполненного кругового разреза. При контрольном осмотре, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, отмечается наличие участков оголенной кости в области дна полости носа, костной части перегородки носа, а также латеральной стенки полости носа. Стерильная коллагеновая повязка на основе Коллагена I типа сформирована и уложена в область донорских участков слизистой оболочки дна полости носа, перегородки носа и латеральной стенки полости носа. Коллагеновая повязка заправлена под слизистую оболочку, сохраненную в областях разрезов. Ранее приготовленный аутологичный лизат богатой тромбоцитами плазмы нанесен на повязку - на 1 см² повязки наносят лизат богатый тромбоцитами плазмы в объеме 1 мл. Перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами. Тампонада полости носа не выполнялась. Пациентка выписана на 2 сутки после проведенного хирургического лечения в удовлетворительном состоянии. Контрольный осмотр осуществлялся через 2,3,4,5,6,7,8 недель после проведенного хирургического лечения, а также через 3,6,12 месяцев. При эндоскопическом осмотре через 2 недели, перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами, в области донорского участка визуализировала биокомпозитная конструкция. Отмечаются явления реактивного отека в области забора слизистой оболочки. Биокомпозитная конструкция покрыта тонким налетом фибрина. Через 3 недели проведено удаление силиконовых септальных шин. Лоскуты состоятельны, признаков отторжения трансплантатов нет, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, перегородка носа в срединном положении, носовое дыхание удовлетворительное. В области дна полости носа сохраняется бикомпозитная конструкция, покрытая тонким фибриновый налетом. По краям биокомпозитной конструкции визуализирована нео-слизистая оболочка с участками неоангиогенеза. Через 4 недели область донорского участка слизистой оболочки в полном объеме покрыта тонкой слизистой оболочкой. Участки оголенной костной стенки не визуализированы. Явления послеоперационного воспаления минимальны за счет избыточного количества слизи в области дна полости носа. Отмечается наличие единичных корочек по краям ушитого лоскута на решетчатой артерии слева. При последующих контрольных осмотрах через 5,6,7,8 недель после операции, а также через 6, 12 месяцев- признаков реперфорации нет, лоскуты состоятельны, бледно-розового цвета. В области дна полости носа слизистая оболочка без признаков образования грубых рубцов, спаек с нижней носовой раковиной, патологического отделяемого нет.Patient R., 19, presented to the L.I. Sverzhevsky Research Institute of Oncology and Orthopedics of the Moscow Health Department with complaints of difficulty breathing through the nose, crusting in the nose, and intermittent bleeding. Her medical history revealed no previous surgical procedures in the nasal cavity. She denies any history of nasal trauma. Approximately one year ago, she noted dryness in the nasal cavity and crusting in the nose, which she removed herself. Laboratory tests revealed negative P and C-Anca. Anterior rhinoscopy and endoscopic examination of the nasal cavity revealed a deviated nasal septum to the right with the formation of an osteochondral ridge on the right. A perforation of the nasal septum, 12 mm long and 9 mm high, was found in the anterior one-third of the quadrangular cartilage. The mucous membrane in the perforation area was dry, thinned, and covered with isolated crusts. Pre-hospital, a course of irrigation and moisturizing therapy was administered without significant positive effect. The patient underwent nasal septum splinting, and surgical treatment was recommended, including septoplasty and septal perforation repair. Venous blood was collected pre-hospital. A platelet-rich plasma lysate (at least 1000 x 10 ⁹ /L platelets, of which at least 30% contain alpha granules) was prepared in the laboratory of the Biotechnology and Transfusiology Department of the N.V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Medicine. The patient was hospitalized in the Otorhinolaryngology Department No. 2 of the O.I. Sverzhevsky Research Institute of Oncology and Orthopedics of the Moscow Health Department for surgical treatment. The platelet-rich plasma lysate was delivered to the operating room. Under CET, after preliminary hydroseparation of the nasal septum mucosa and the left nasal floor, a circular incision was made with a scalpel through the mucosa and perichondrium around the perforation, 6-7 mm from the nasal septum defect area. A raspatory was used to separate the mucosa and perichondrium, as well as the fibrous ring of the perforation. The formed flap was transferred through the perforation lumen and sutured with interrupted end-to-end sutures. The perforation area was completely closed. Next, under the control of a 0-degree rigid endoscope, the mucosa and perichondrium of the nasal septum were separated on both sides, extending to the left nasal floor. A raspatory and Blakely instrument were used to correct the nasal septum. The osteochondral ridge on the right was removed. The nasal septum is in a medial position. Using a round knife, a vertical incision was made in the bony mucosa of the nasal septum in the projection of the middle 1/3 of the middle turbinate on the left, extending to the floor of the nasal cavity, as well as the lateral wall of the nasal cavity in the area of the posterior end of the inferior turbinate on the left. Next, an incision was made in the mucosa of the nasal septum in the projection of the anterior edge of the perforation, extending to the floor of the nasal cavity in the projection of the pyriform aperture, extending to the lateral wall of the nasal cavity in the area of the anterior end of the inferior turbinate. The anterior and posterior incisions are connected by a longitudinal incision along the inferior turbinate along the lateral wall of the nasal cavity in the area of its attachment. A mucosal flap was formed on the ethmoid artery. The flap was placed in the area of the perforation and sutured end-to-end along the edges of the previously made circular incision. Upon follow-up examination, the nasal septum perforation was completely closed. Areas of exposed bone were noted in the nasal floor, bony portion of the nasal septum, and lateral nasal wall. A sterile collagen dressing based on type I collagen was formed and placed over the donor sites of the nasal floor, septum, and lateral nasal wall mucosa. The collagen dressing was tucked under the mucosa preserved in the incision areas. Previously prepared autologous platelet-rich plasma lysate was applied to the dressing: 1 ml of platelet-rich plasma lysate was applied per 1 cm² of ^dressing . The nasal septum was splinted with intranasal silicone splints. Nasal packing was not performed. The patient was discharged on the second day after surgery in satisfactory condition. Follow-up examinations were performed at 2, 3, 4, 5, 6, 7, and 8 weeks after surgery, as well as at 3, 6, and 12 months. During an endoscopic examination after 2 weeks, the nasal septum was splinted with intranasal silicone splints, and a biocomposite structure was visualized in the donor site. Reactive edema was noted in the area of mucosal retrieval. The biocomposite structure was covered with a thin fibrin coating. After 3 weeks, the silicone septal splints were removed. The flaps were consistent, with no signs of graft rejection. The nasal septum perforation was completely closed, the nasal septum was in a median position, and nasal breathing was satisfactory. A bicomposite structure, covered with a thin fibrin coating, was preserved in the nasal floor. Neomucosal tissue with areas of neoangiogenesis was visualized along the edges of the biocomposite structure. After 4 weeks, the donor site mucosa is completely covered with a thin mucosa. Areas of exposed bony wall are not visible. Postoperative inflammation is minimal due to excess mucus in the nasal floor. Isolated crusts are noted along the edges of the sutured flap on the left ethmoid artery. At follow-up examinations at 5, 6, 7, and 8 weeks postoperatively, as well as at 6 and 12 months, there are no signs of reperforation, the flaps are consistent and pale pink. In the nasal floor, the mucosa shows no signs of coarse scarring, adhesions to the inferior turbinate, and there is no pathological discharge.

В ГБУЗ «НИКИО имени Л.И. Свержевского» ДЗМ обратилась пациент Щ, 34 года лет с жалобами на образование корочек в носу, свист при дыхании через нос, периодическими эпизодами кровотечения. Из анамнеза известно, что 1 год назад проведено хирургическое лечение в объеме септопластика, двусторонняя нижняя щадящая конхотомия. Травмы носа в анамнез отрицает. При проведении лабораторного исследования: P,C-Anca - отрицательные. При передней риноскопия и эндоскопическом исследовании полости носа: перегородка носа практически по средней линии. В передней 1/3 четырехугольного хряща перфорация перегородки носа, длинной 22 мм, высотой 12 мм, разделенная рубцовой перемычкой. Слизистая оболочка в области перфорации сухая, истонченная, покрыта единичными корочками. На догоспитальном этапе проведен курс ирригационной и увлажняющей терапии, без выраженного положительного эффекта. Пациенту проведено шинирование перегородки носа, рекомендовано хирургическое лечение в объеме: пластика перфорации перегородки носа. На догоспитальном этапе выполнен забор венозной крови. В лаборатории отделения биотехнологий и трансфузиологии НИИ СП им Н.В. Склифосовского приготовлен лизат богатой тромбоцитами плазмы (не менее 1000 х 10⁹/л тромбоцитов, из которых не менее 30% имеют альфа-гранулы). Пациентка госпитализирован в Оториноларингологическое отделение №2 ГБУЗ «НИКИО имени О.И. Свержевского» ДЗМ для проведения хирургического лечения. Лизат богатой тромбоцитами плазмы доставлен в операционную. Под КЭТА, после предварительной гидроотсепаровки слизистой оболочки перегородки носа, и дна полости носа слева, выполнен круговой разрез скальпелем слизистой оболочки и надхрящница вокруг перфорации, отступив от зоны дефекта перегородки носа 7-8 мм. Распатором выполнена отсепаровка слизистой оболочки с надхрящницей, а также фиброзное кольцо перфорации. Сформированный лоскут перенесен через просвет перфорации, ушит узловыми швами конец-в-конец. Область перфорации закрыта в полном объеме. Далее под контролем ригидного эндоскопа 0 градусов, отсепарована слизистая оболочка с надхрящницей перегородки носа с двух сторон с переходом на дно полости носа слева. При помощи круглого ножа выполнен вертикальный разрез слизистой оболочки перегородки носа в костном отделе в проекции средний 1/3 средней носовой раковины слева с переходом на дно полости носа, а также латеральную стенку полости носа в области заднего конца нижней носовой раковины слева. Далее выполнен разрез слизистой оболочки перегородки носа в проекции переднего края перфорации с переходом на дно полости носа в проекции апертуры грушевидного отверстия с переходом на латеральную стенку полости носа в области переднего конца нижней носовой раковины. Передний и задний разрезы объединены продольным разрезом вдоль нижней носовой раковины по латеральной стенке полости носа в области ее прикрепления. Сформирован лоскут слизистой оболочки на решетчатой артерии. Лоскут уложен в область перфорации, ушит конец-в-конец по краям ранее выполненного кругового разреза. При контрольном осмотре, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, отмечается наличие участков оголенной кости в области дна полости носа, костной части перегородки носа, а также латеральной стенки полости носа. Стерильная коллагеновая повязка на основе Коллагена I типа выкроена в соответствии с площадью обнаженного донорского участка и уложена в область обнаженных донорских участков слизистой оболочки дна полости носа, перегородки носа и латеральной стенки полости носа. Коллагеновая повязка заправлена под слизистую оболочку, сохраненную в областях разрезов. Ранее приготовленный аутологичный лизат богатой тромбоцитами плазмы нанесен на коллаген I типа - 1 см² повязки наносят лизат богатый тромбоцитами плазмы в объеме 1 мл. Перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами. Тампонада полости носа не выполнялась. Пациентка выписана на 2 сутки после проведенного хирургического лечения в удовлетворительном состоянии. Контрольный осмотр осуществлялся через 2,3,4,5,6,7,8 недель после проведенного хирургического лечения, а также через 3,6,12 месяцев. При эндоскопическом осмотре через 2 недели, перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами, в области донорского участка визуализировала биокомпозитная конструкция, покрытая слизистой оболочкой на 2/3. Видимая часть биокомпозитной конструкции покрыта тонким налетом фибрина. Через 3 недели проведено удаление силиконовых септальных шин. Лоскуты состоятельны, признаки отторжения трансплантатов отсутствуют, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, перегородка носа в срединном положении, носовое дыхание удовлетворительное. В области дна полости носа бикомпозитная конструкция не визуализируется. Область забора донорской слизистой оболочки покрыта нео-слизистой оболочкой. Через 4 недели область донорского участка слизистой оболочки в полном объеме покрыта тонкой слизистой оболочкой. Участки оголенной костной стенки не визуализированы. Явления послеоперационного воспаления минимальны за счет избыточного количества слизи в области дна полости носа. Отмечается наличие единичных корочек по краям ушитого лоскута на решетчатой артерии слева. При последующих контрольных осмотрах через 5,6,7,8 недель после операции, а также через 6, 12 месяцев- признаков реперфорации нет, лоскуты состоятельны, розового цвета. В области дна полости носа слизистая оболочка без признаков образования грубых рубцов, спаек с нижней носовой раковиной, патологического отделяемого нет.Patient Shch, 34, presented to the L.I. Sverzhevsky Research Institute of Nasal Oncology and Orthopedics of the Moscow Health Department with complaints of crusting in the nose, wheezing, and intermittent bleeding. Her medical history revealed that septoplasty and bilateral inferior conchotomy were performed 1 year ago. She denies a history of nasal trauma. Laboratory tests revealed negative P and C-Anca results. Anterior rhinoscopy and endoscopic examination of the nasal cavity revealed the nasal septum to be almost in the midline. A perforation of the nasal septum, 22 mm long and 12 mm high, separated by a cicatricial bridge, was found in the anterior 1/3 of the quadrangular cartilage. The mucous membrane in the perforation area was dry, thinned, and covered with isolated crusts. Pre-hospital, a course of irrigation and moisturizing therapy was administered without significant positive effect. The patient underwent nasal septum splinting, and surgical treatment was recommended, including septal perforation repair. Venous blood was collected pre-hospital. A platelet-rich plasma lysate (at least 1000 x ¹⁰⁹ /L platelets, of which at least 30% contain alpha granules) was prepared in the laboratory of the Biotechnology and Transfusiology Department of the N.V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Medicine. The patient was hospitalized in the Otorhinolaryngology Department No. 2 of the O.I. Sverzhevsky Research Institute of Oncology and Orthopedics of the Moscow Health Department for surgical treatment. The platelet-rich plasma lysate was delivered to the operating room. Under CET, after preliminary hydroseparation of the nasal septum mucosa and the left nasal floor, a circular incision was made with a scalpel through the mucosa and perichondrium around the perforation, 7-8 mm from the septal defect area. A raspatory was used to separate the mucosa and perichondrium, as well as the fibrous ring of the perforation. The formed flap was transferred through the perforation lumen and sutured with interrupted end-to-end sutures. The perforation area was completely closed. Next, under the control of a rigid 0-degree endoscope, the mucosa and perichondrium of the nasal septum were separated on both sides, extending to the left nasal floor. Using a round knife, a vertical incision was made in the bony mucosa of the nasal septum in the projection of the middle 1/3 of the middle turbinate on the left, extending to the floor of the nasal cavity, as well as the lateral wall of the nasal cavity in the area of the posterior end of the inferior turbinate on the left. Next, an incision was made in the mucosa of the nasal septum in the projection of the anterior edge of the perforation, extending to the floor of the nasal cavity in the projection of the pyriform aperture, extending to the lateral wall of the nasal cavity in the area of the anterior end of the inferior turbinate. The anterior and posterior incisions are connected by a longitudinal incision along the inferior turbinate along the lateral wall of the nasal cavity in the area of its attachment. A mucosal flap was formed on the ethmoid artery. The flap was placed in the area of the perforation and sutured end-to-end along the edges of the previously made circular incision. Upon follow-up examination, the nasal septum perforation was completely closed. Areas of exposed bone were noted in the nasal floor, bony portion of the nasal septum, and lateral nasal wall. A sterile collagen dressing based on type I collagen was cut to fit the exposed donor site and placed over the exposed donor sites of the mucous membrane of the nasal floor, nasal septum, and lateral nasal wall. The collagen dressing was tucked under the mucous membrane preserved in the incision areas. Previously prepared autologous platelet-rich plasma lysate was applied to type I collagen (1 cm ^). 1 ml of platelet-rich plasma lysate was applied to the dressing. The nasal septum was splinted with intranasal silicone splints. Nasal packing was not performed. The patient was discharged on the second day after surgery in satisfactory condition. Follow-up examinations were performed at 2, 3, 4, 5, 6, 7, and 8 weeks after surgery, as well as at 3, 6, and 12 months. During an endoscopic examination after 2 weeks, the nasal septum was splinted with intranasal silicone splints. A biocomposite structure, covered by mucosa by 2/3, was visible in the donor site. The visible portion of the biocomposite structure was covered with a thin fibrin coating. After 3 weeks, the silicone septal splints were removed. The flaps were adequate, there were no signs of graft rejection, the nasal septum perforation was completely closed, the nasal septum was in a midline position, and nasal breathing was satisfactory. The bicomposite structure was not visualized in the nasal floor. The area where the donor mucosa was collected was covered by neomucosa. After 4 weeks, the donor site mucosa is completely covered with a thin mucosa. Areas of exposed bony wall are not visible. Postoperative inflammation is minimal due to excess mucus in the nasal floor. Isolated crusts are noted along the edges of the sutured flap on the left ethmoid artery. At follow-up examinations at 5, 6, 7, and 8 weeks postoperatively, as well as at 6 and 12 months, there are no signs of reperforation, and the flaps are healthy and pink. The nasal floor mucosa shows no signs of coarse scarring, adhesions to the inferior turbinate, or pathological discharge.

Пример №3. Клинический пример.Example No. 3. Clinical example.

В ГБУЗ «НИКИО имени Л.И. Свержевского» ДЗМ обратилась пациентка К, 33 года с жалобами на затруднение носового дыхания, образование корочек в носу, свист в носу, периодические эпизоды носового кровотечения. Из анамнеза известно, что хирургические манипуляции в полости носа не проводились. В анамнезе травмы носа отрицает. В течение последних 6-ти месяцев отметила появление сухости в полости носа, образование корочек в носу, которые удаляла самостоятельно, что сопровождалось носовыми кровотечениями образованием геморрагических корочек, свистом при дыхании через нос. При проведении лабораторного исследования: P,C-Anca - отрицательные. При передней риноскопия и эндоскопическом исследовании полости носа: перегородка носа практически по средней линии с формированием костно-хрящевого гребня справа. В передней 1/3 четырехугольного хряща перфорация перегородки носа, длинной 15 мм, высотой 10 мм. Слизистая оболочка в области перфорации сухая, истонченная, покрыта единичными геморрагическими корочками в области заднего края перфорации. На догоспитальном этапе проведен курс ирригационной и увлажняющей терапии, без выраженного положительного эффекта. Пациентке проведено шинирование перегородки носа, рекомендовано хирургическое лечение в объеме: пластика перфорации перегородки носа. Через 7 дней пациентка госпитализирован в Оториноларингологическое отделение №2 ГБУЗ «НИКИО имени Л.И. Свержевского» ДЗМ для проведения хирургического лечения. Под КЭТА, после предварительной гидроотсепаровки слизистой оболочки перегородки носа, и дна полости носа слева, выполнен круговой разрез скальпелем слизистой оболочки и надхрящница вокруг перфорации, отступив от зоны дефекта перегородки носа 5-6 мм. Распатором выполнена отсепаровка слизистой оболочки с надхрящницей, а также фиброзное кольцо перфорации. Сформированный лоскут перенесен через просвет перфорации, ушит узловыми швами конец-в-конец. Область перфорации закрыта в полном объеме. Далее под контролем ригидного эндоскопа 0 градусов, отсепарована слизистая оболочка с надхрящницей перегородки носа с двух сторон с переходом на дно полости носа слева. При помощи круглого ножа выполнен вертикальный разрез слизистой оболочки перегородки носа в костном отделе в проекции средний 1/3 средней носовой раковины слева с переходом на дно полости носа, а также латеральную стенку полости носа в области заднего конца нижней носовой раковины слева. Далее выполнен разрез слизистой оболочки перегородки носа в проекции переднего края перфорации с переходом на дно полости носа в проекции апертуры грушевидного отверстия с переходом на латеральную стенку полости носа в области переднего конца нижней носовой раковины. Передний и задний разрезы объединены продольным разрезом вдоль нижней носовой раковины по латеральной стенке полости носа в области ее прикрепления. Сформирован лоскут слизистой оболочки на решетчатой артерии. Лоскут уложен в область перфорации, ушит конец-в-конец по краям ранее выполненного кругового разреза. При контрольном осмотре, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, отмечается наличие участков оголенной кости в области дна полости носа, костной части перегородки носа, а также латеральной стенки полости носа. Перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами. Тампонада полости носа не выполнялась. Пациентка выписана на 2 сутки после проведенного хирургического лечения в удовлетворительном состоянии с рекомендациями о проведении стандартной ирригационной и увлажняющей терапии. Контрольный осмотр осуществлялся через 2,3,4,5,6,7,8 недель после проведенного хирургического лечения, а также через 3,6,12 месяцев. При эндоскопическом осмотре через 2 недели, перегородка носа шинирована внутриносовыми силиконовыми сплинтами, донорский участок слизистой оболочки дна полости носа покрыт коркой, при удалении которой отмечается кровотечение. В общем носовом ходе слева избыточное количество густого слизистого отделяемого. Отмечаются явления реактивного отека в области забора слизистой оболочки. Пациентка предъявила жалобы на наличие ощущения онемения области зубов 1.1., 1.2., а также твердого неба слева- со стороны забора лоскута слизистой оболочки. Через 3 недели, проведено удаление силиконовых септальных шин. Лоскуты состоятельны, признаков отторжения трансплантатов нет, перфорация перегородки носа закрыта в полном объеме, перегородка носа в срединном положении, носовое дыхание удовлетворительное. Область донорского участка покрыта корочкой, при удалении которой отмечается кровотечение. Жалобы на наличие ощущения онемения области зубов 1.1., 1.2., а также твердого неба слева- со стороны забора лоскута слизистой оболочки сохраняются. Через 4 недели область донорского участка слизистой оболочки покрыта корочкой, при удалении которой отмечается образование слизистой оболочки по краям донорского участка, визуализированы участки оголенной кости в области костной части перегородки носа и дна полости носа. В общем носовом ходе слева - избыточное количество слизи. Сохраняются жалобы на наличие ощущения онемения области зубов 1.1., 1.2., а также твердого неба слева- со стороны забора лоскута слизистой оболочки. Через 5 недель область донорского участка слизистой оболочки покрыта корочкой, при удалении которой отмечается образование слизистой оболочки по краям донорского участка, визуализированы участки оголенной кости в области костной части перегородки носа и дна полости носа меньшего размера. Жалобы на наличие ощущения онемения области зубов 1.1., 1.2., а также твердого неба слева- со стороны забора лоскута слизистой оболочки сохраняются, пациентка отмечает улучшение. Через 6 недель область донорского участка слизистой оболочки покрыта корочкой, при удалении которой отмечается образование слизистой оболочки, закрывающей область донорского участка более чем на 2/3, визуализированы участки оголенной кости в области дна полости носа меньшего размера. В области переднего конца нижней носовой раковины и по краю апертуры грушевидного отверстия визуализируются признаки образования рубца, сужающего область нижнего носового хода, площадь рубцово-измененной слизистой оболочки составила 2 см². Жалобы на наличие ощущения онемения области зубов 1.1., 1.2., а также твердого неба слева- со стороны забора лоскута слизистой оболочки сохраняются с тенденцией к улучшению. Пациентка отмечает появление усиление онемения при выполнении физических нагрузок, наклоне головы, распространяющееся в проекции передней стенки верхнечелюстной пазухи. Учитывая сохраняющиеся жалобы, принято решение о проведении инъекцинной терапии аутологичным лизатом богатой тромбоцтами плазмы. Отмечается наличие единичных корочек по краям ушитого лоскута на решетчатой артерии слева. Выполнен забор венозной крови. В лаборатории отделения биотехнологий и трансфузиологии НИИ СП им Н.В. Склифосовского приготовлен лизат богатой тромбоцитами плазмы (не менее 1000 х 10⁹/л тромбоцитов, из которых не менее 30% имеют альфа-гранулы). Инсулиновым шприцем выполнено введение препарата в объеме 2 мл в область рубца площадью 2 см². Повторное введение препарата выполнено через 7 дней. Через 8 недель после операции отмечено размягчение рубцово-измененной слизистой оболочки в области переднего конца нижней носовой раковины слева. Жалобы на онемение в проекции зубов 1.1., 1.2 не предъявляет. Область донорского участка слизистой оболочки костного отдела перегородки носа и дна полости носа в полном объеме закрыт слизистой оболочкой. Участки оголенной кости не визуализируются. При последующих контрольных осмотрах через через 6, 12 месяцев- признаков реперфорации нет, лоскуты состоятельны, бледно-розового цвета. В области дна полости носа слизистая оболочка без признаков образования грубых рубцов, спаек с нижней носовой раковиной, патологического отделяемого нет.Patient K., 33, presented to the L.I. Sverzhevsky Research Institute of Nasal Oncology and Orthopedics of the Moscow Health Department with complaints of difficulty breathing through the nose, crusting, whistling, and intermittent nosebleeds. Her medical history revealed no previous surgical procedures in the nasal cavity. She denies any history of nasal trauma. Over the past 6 months, she has noted dryness in the nasal cavity and crusting, which she removed herself. This was accompanied by nosebleeds, hemorrhagic crusting, and whistling when breathing through the nose. Laboratory tests revealed negative P and C-Anca. Anterior rhinoscopy and endoscopic examination of the nasal cavity revealed a nasal septum almost in the midline with the formation of an osteochondral ridge on the right. A perforation of the nasal septum, 15 mm long and 10 mm high, is present in the anterior 1/3 of the quadrangular cartilage. The mucous membrane in the perforation area was dry, thinned, and covered with isolated hemorrhagic crusts at the posterior edge of the perforation. A course of irrigation and moisturizing therapy was administered prehospital, without significant positive effect. The patient underwent splinting of the nasal septum, and surgical treatment was recommended: septal perforation repair. Seven days later, the patient was hospitalized in the Otolaryngology Department No. 2 of the L.I. Sverzhevsky Research Institute of Oncology and Orthopedics of the Health Department of Moscow for surgical treatment. Under CETA, after preliminary hydroseparation of the mucous membrane of the nasal septum and the left nasal floor, a circular incision was made with a scalpel in the mucous membrane and perichondrium around the perforation, 5-6 mm from the nasal septal defect area. A raspatory was used to separate the mucous membrane and perichondrium, as well as the fibrous ring of the perforation. The formed flap was transferred through the perforation lumen and sutured with interrupted end-to-end sutures. The perforation area was completely closed. Next, under the control of a 0-degree rigid endoscope, the mucous membrane and perichondrium of the nasal septum were separated on both sides, extending to the floor of the nasal cavity on the left. Using a round knife, a vertical incision was made in the bony mucous membrane of the nasal septum in the projection of the middle 1/3 of the middle turbinate on the left, extending to the floor of the nasal cavity, and the lateral wall of the nasal cavity in the area of the posterior end of the inferior turbinate on the left. Next, an incision was made in the mucous membrane of the nasal septum in the projection of the anterior edge of the perforation, extending to the floor of the nasal cavity in the projection of the pyriform aperture, extending to the lateral wall of the nasal cavity in the area of the anterior end of the inferior turbinate. The anterior and posterior incisions are connected by a longitudinal incision along the inferior turbinate along the lateral wall of the nasal cavity in the area of its attachment. A mucosal flap is formed on the ethmoid artery. The flap is placed in the perforation area and sutured end-to-end along the edges of the previously made circular incision. At follow-up examination, the nasal septum perforation is completely closed. Areas of exposed bone are noted in the area of the nasal floor, the bony portion of the nasal septum, and the lateral wall of the nasal cavity. The nasal septum is splinted with intranasal silicone splints. Nasal packing was not performed. The patient was discharged on the 2nd day after surgery in a satisfactory condition with recommendations for standard irrigation and moisturizing therapy. Follow-up examinations were performed at 2, 3, 4, 5, 6, 7, and 8 weeks after surgery, as well as at 3, 6, and 12 months. At endoscopic examination two weeks later, the nasal septum was splinted with intranasal silicone splints. The donor site of the nasal floor mucosa was crusted, with bleeding noted upon removal. The left common nasal meatus exhibited excessive thick mucous discharge. Reactive edema was noted in the area where the mucosa was harvested. The patient complained of numbness in the area of teeth number 1 and 12, as well as in the left hard palate, on the side where the mucosa flap was harvested. Three weeks later, the silicone septal splints were removed. The flaps were adequate, with no signs of graft rejection, the nasal septum perforation was completely closed, the nasal septum was in a midline position, and nasal breathing was satisfactory. The donor site was crusted, with bleeding noted upon removal. Complaints of numbness in the area of teeth 11, 12, and the left hard palate, on the side where the mucous membrane flap was collected, persist. After 4 weeks, the area of the donor site of the mucous membrane is covered with a crust. When removed, mucous membrane formation is noted along the edges of the donor site. Areas of exposed bone are visualized in the area of the bony part of the nasal septum and the floor of the nasal cavity. There is an excess amount of mucus in the common nasal meatus on the left. Complaints of numbness in the area of teeth 11, 12, and the left hard palate, on the side where the mucous membrane flap was collected, persist. After 5 weeks, the area of the donor site of the mucous membrane is covered with a crust. When removed, mucous membrane formation is noted along the edges of the donor site. Areas of exposed bone are visualized in the area of the bony part of the nasal septum and smaller floor of the nasal cavity. Complaints of numbness in the area of teeth 11, 12, and the hard palate on the left side on the side where the mucosal flap was collected persist, with improvement noted. After 6 weeks, the donor site area of the mucosa is covered with a crust, upon removal of which the formation of a mucosa is noted, covering the donor site area by more than 2/3, smaller areas of exposed bone are visualized in the area of the nasal cavity floor. Signs of scar formation narrowing the area of the inferior nasal meatus are visualized in the area of the anterior end of the inferior turbinate and along the edge of the pyriform aperture; the area of cicatricially altered mucosa is 2 ^cm2 . Complaints of numbness in the area of teeth 11, 12, and the hard palate on the left side on the side where the mucosal flap was collected persist with a tendency to improve. The patient reports increased numbness during physical activity and head tilt, spreading to the projection of the anterior wall of the maxillary sinus. Given the persistent complaints, a decision was made to perform injection therapy with autologous platelet-rich plasma lysate. Single crusts are noted along the edges of the sutured flap on the left ethmoid artery. Venous blood was collected. Platelet-rich plasma lysate (at least 1000 x 10 ⁹ /l platelets, of which at least 30% have alpha granules) was prepared in the laboratory of the Biotechnology and Transfusiology Department of the N.V. Sklifosovsky Research Institute of Emergency Medicine. Using an insulin syringe, 2 ml of the drug was injected into a scar area of 2 cm ² . Repeated administration of the drug was performed after 7 days. Eight weeks after the surgery, softening of the cicatricial mucosa was noted in the area of the anterior end of the inferior turbinate on the left. The patient has no complaints of numbness in the projection of teeth 1.1 and 1.2. The donor site mucosa of the bony portion of the nasal septum and nasal floor is completely covered by mucosa. No exposed bone is visible. Follow-up examinations at 6 and 12 months revealed no signs of reperforation, and the flaps are healthy and pale pink. The nasal floor mucosa shows no signs of coarse scarring, adhesions to the inferior turbinate, or pathological discharge.

Список использованной литературы:List of references:

Пискунов Г.З., Пискунов С.З., Козлов В.С., Лопатин А.С. Заболевания носа и околоносовых пазух. Эндомикрохирургия. М.; 2003:208Piskunov G.Z., Piskunov S.Z., Kozlov V.S., Lopatin A.S. Diseases of the nose and paranasal sinuses. Endomicrosurgery. M.; 2003:208

Quinn JG, Bonaparte JP, Kilty SJ. Postoperative management in the prevention of complications after septoplasty: a systematic review. Laryngoscope. 2013;123(6):1328-1333. doi:10.1002/lary.23848Quinn JG, Bonaparte JP, Kilty SJ. Postoperative management in the prevention of complications after septoplasty: a systematic review. Laryngoscope. 2013;123(6):1328-1333. doi:10.1002/lary.23848

Крюков А.И., Кунельская Н.Л., Царапкин Г.Ю., Товмасян А.С., Панасов С.А. Перфорация перегородки носа: современное состояние проблемы. Российская ринология. 2016;24(1):4‑9.Krukov AI, Kunel’skaya NL, Tsarapkin GYu, Tovmasian AS, Panasov SA. Nasal septal perforation: State-of-the-art. Russian Rhinology. 2016;24(1):4‑9. (In Russ.) https://doi.org/10.17116/rosrino20162414-9Kryukov A.I., Kunelskaya N.L., Tsarapkin G.Yu., Tovmasyan A.S., Panasov S.A. Perforation of the nasal septum: current state of the problem. Russian rhinology. 2016;24(1):4‑9.Krukov AI, Kunel’skaya NL, Tsarapkin GYu, Tovmasian AS, Panasov SA. Nasal septal perforation: State-of-the-art. Russian Rhinology. 2016;24(1):4‑9. (In Russ.) https://doi.org/10.17116/rosrino20162414-9

Туровский А.Б., Чумаков П.Л. Перфорация перегородки носа: вопросы этиологии, патогенеза и лечения. Вестник оториноларингологии. 2009;(1):54-57.Turovsky A.B., Chumakov P.L. Nasal septum perforation: issues of etiology, pathogenesis and treatment. Bulletin of Otolaryngology. 2009;(1):54-57.

Meyer R. Nasal septal perforations must and can be closed. Aesthetic Plast Surg. 1994;18(4):345-355. doi:10.1007/BF00451339Meyer R. Nasal septal perforations must and can be closed. Aesthetic Plast Surg. 1994;18(4):345-355. doi:10.1007/BF00451339

Alobid I. Endoscopic closure of septal perforations. Cierre endoscópico de las perforaciones septales. Acta Otorrinolaringol Esp (Engl Ed). 2018;69(3):165-174. doi:10.1016/j.otorri.2017.02.001Alobid I. Endoscopic closure of septal perforations. Cierre endoscópico de las perforaciones septales. Acta Otorrinolaringol Esp (Engl Ed). 2018;69(3):165-174. doi:10.1016/j.otorri.2017.02.001

Gravina A, Pai KK, Shave S, Eloy JA, Fang CH. Endoscopic Techniques for Nasal Septal Perforation Repair: A Systematic Review. Ann Otol Rhinol Laryngol. 2023 May;132(5):527-535. doi: 10.1177/00034894221098704. Epub 2022 Jun 8. PMID: 35676865.Gravina A, Pai KK, Shave S, Eloy JA, Fang CH. Endoscopic Techniques for Nasal Septal Perforation Repair: A Systematic Review. Ann Otol Rhinol Laryngol. 2023 May;132(5):527-535. doi: 10.1177/00034894221098704. Epub 2022 Jun 8. PMID: 35676865.

Лопатин, А. С. Особенности хирургического лечения перфораций перегородки носа / А. С. Лопатин, Е. В. Овчинникова // Вестник оториноларингологии. - 2012. - № 2. - С. 13-17. - EDN PDXBFR.Lopatin, A. S. Features of surgical treatment of nasal septum perforations / A. S. Lopatin, E. V. Ovchinnikova // Bulletin of Otolaryngology. - 2012. - No. 2. - P. 13-17. - EDN PDXBFR.

Rusetsky Y, Mokoyan Z, Elumeeva A. Repair of postoperative and recurrent nasal septal perforations using L-strut overlay flap. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2022 May;279(5):2701-2705. doi: 10.1007/s00405-022-07332-8. Epub 2022 Mar 13. PMID: 35279737.Rusetsky Y, Mokoyan Z, Elumeeva A. Repair of postoperative and recurrent nasal septal perforations using L-strut overlay flap. Eur Arch Otorhinolaryngol. 2022 May;279(5):2701-2705. doi:10.1007/s00405-022-07332-8. Epub 2022 Mar 13. PMID: 35279737.

Gras-Cabrerizo JR, García-Garrigós E, Ademá-Alcover JM, et al. A unilateral septal flap based on the anterior ethmoidal artery (Castelnuovo's flap): CT cadaver study. Surg Radiol Anat. 2016;38(6):723-728. doi:10.1007/s00276-015-1610-9 2.Alobid I, Langdon C, Santamaría A. Technique to Repair Total Septal Perforation With a Pericranial Flap: The Money Box Approach. JAMA Facial Plast Surg. 2018;20(4):324-325. doi:10.1001/jamafacial.2017.2413 Gras-Cabrerizo JR, García-Garrigós E, Ademá-Alcover JM, et al. A unilateral septal flap based on the anterior ethmoidal artery (Castelnuovo's flap): CT cadaver study. Surg Radiol Anat . 2016;38(6):723-728. doi:10.1007/s00276-015-1610-9 2.Alobid I, Langdon C, Santamaría A. Technique to Repair Total Septal Perforation With a Pericranial Flap: The Money Box Approach. JAMA Facial Plast Surg . 2018;20(4):324-325. doi:10.1001/jamafacial.2017.2413

Borovkova N.V., Filatova I.A., Chentsova E.V., Fedoseeva E.V., Pavlenko Yu.A., Ponomarev I.N., Shemetov S.A., Petrova A.O. Efficacy of platelet-rich plasma lysate in patients with corneal erosion or post-traumatic scarring of the tissues of the eyelids. Russian Ophthalmological Journal. 2020;13(3):8-14. (In Russ.) https://doi.org/10.21516/2072-0076-2020-13-3-8-14Borovkova N.V., Filatova I.A., Chentsova E.V., Fedoseeva E.V., Pavlenko Yu.A., Ponomarev I.N., Shemetov S.A., Petrova A.O. Efficacy of platelet-rich plasma lysate in patients with corneal erosion or post-traumatic scarring of the tissues of the eyelids. Russian Ophthalmological Journal. 2020;13(3):8-14. (In Russ.) https://doi.org/10.21516/2072-0076-2020-13-3-8-14

Титов Р.С., Файн А.М., Пономарёв И.Н., Борокова Н.В., Мажорова И.И., Хамидова Л.Т., Евграфов П.Г., Ваза А.Ю., Скуратовская К.И. Эффективность применения лизата богатой тромбоцитами плазмы (БоТП) у пациентов с переломами проксимального отдела плечевой кости. Вестник медицинского института «РЕАВИЗ». Реабилитация, Врач и Здоровье. 2024;14(2):52-59. https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2024.2.CLIN.Titov R.S., Fain A.M., Ponomarev I.N., Borokova N.V., Mazhorova I.I., Khamidova L.T., Evgrafov P.G., Vaza A.Yu., Skuratovskaya K.I. Efficiency of platelet-rich plasma (PRP) lysate in patients with proximal humerus fractures. Bulletin of the REAVIZ Medical Institute. Rehabilitation, Doctor and Health. 2024;14(2):52-59. https://doi.org/10.20340/vmi-rvz.2024.2.CLIN.

Выбор и изготовление тромбоцитарных препаратов для использования в регенеративной медицине. / Методические рекомендации № 23. - Боровкова Н.В., Макаров М.С., Пономарев И.Н., Андреев Ю.В., Сторожева М.В. - Москва. - 2022. - 27с.Selection and manufacture of platelet preparations for use in regenerative medicine. / Guidelines No. 23. - Borovkova N.V., Makarov M.S., Ponomarev I.N., Andreev Yu.V., Storozheva M.V. - Moscow. - 2022. - 27 p.

Патент № 2485502 С1 МПК G01N 33/48 «Способ оценки морфофункционального статуса тромбоцитов человека», авторы Хубутия М.Ш., Макаров М.С., Хватов В.Б., Высочин И.В., Кобзева Е.Н., Боровкова Н.В., Конюшко О.И., 20.06.2013Patent No. 2485502 C1 IPC G01N 33/48 “Method for assessing the morphofunctional status of human platelets”, authors Khubutia M.Sh., Makarov M.S., Khvatov V.B., Vysochin I.V., Kobzeva E.N., Borovkova N.V., Konyushko O.I., 20.06.2013

Moon IJ, Kim SW, Han DH, Kim ST, Min YG, Lee CH, Rhee CS. Predictive factors for the outcome of nasal septal perforation repair. Auris Nasus Larynx. 2011 Feb;38(1):52-7. doi: 10.1016/j.anl.2010.05.006. Epub 2010 Jun 23. PMID: 20576372.Moon IJ, Kim SW, Han DH, Kim ST, Min YG, Lee CH, Rhee CS. Predictive factors for the outcome of nasal septal perforation repair. Auris Nasus Larynx. 2011 Feb;38(1):52-7. doi: 10.1016/j.anl.2010.05.006. Epub 2010 Jun 23. PMID: 20576372.

Fermin JM, Bui R, McCoul E, Alt J, Avila-Quintero VJ, Chang BA, Yim MT. Surgical repair of nasal septal perforations: A systematic review and meta-analysis. Int Forum Allergy Rhinol. 2022 Sep;12(9):1104-1119. doi: 10.1002/alr.22965. Epub 2022 Jan 18. PMID: 34978162.Fermin JM, Bui R, McCoul E, Alt J, Avila-Quintero VJ, Chang BA, Yim MT. Surgical repair of nasal septal perforations: A systematic review and meta-analysis. Int Forum Allergy Rhinol. 2022 Sep;12(9):1104-1119. doi:10.1002/alr.22965. Epub 2022 Jan 18. PMID: 34978162.

Патент № 2739515 С1 МПК G01N 33/48 «Способ приготовления лизата тромбоцитов с высоким содержанием факторов роста», авторы Боровкова Н.В., Макаров М.С., Сторожева М.В., Пономарев И.Н. 25.12.2020.Patent No. 2739515 C1 IPC G01N 33/48 "Method for preparing a platelet lysate with a high content of growth factors", authors Borovkova N.V., Makarov M.S., Storozheva M.V., Ponomarev I.N. 12/25/2020.

Claims

1. A method for restoring the mucous membrane of the nasal cavity after rhinosurgical interventions, characterized in that, intraoperatively, after forming a flap of the mucous membrane of the nasal cavity, a dressing based on type I collagen is placed in the area of the exposed donor site, corresponding in area to the area of the exposed donor site of the mucous membrane, impregnated with an autologous lysate of platelet-rich plasma containing at least 1000 × 10 ⁹ /l of platelets, of which at least 30% have alpha granules, and the dressing covers the bony walls along the entire length and is tucked under the preserved areas of the mucous membrane of the nasal cavity.

2. The method according to paragraph 1, characterized in that the dressing based on type I collagen is impregnated with a lysate of platelet-rich plasma in a volume of at least 1 ml of lysate per 1 ^cm2 .

3. A method for restoring the mucous membrane of the nasal cavity after rhinosurgical interventions, characterized in that in the late postoperative period, upon detection of the formation of a cicatricially altered mucous membrane of the donor site after endonasal reconstructive surgery with the formation of a mucous membrane flap, injections of autologous platelet-rich plasma lysate containing at least 1000 × 10 ⁹ /l platelets, of which at least 30% have alpha granules, are carried out into the scar area in a volume of at least 1 ml per 1 cm ² of scar with repeated administration of the drug after 7 days.