RU2847711C1 - Method for diagnosing bacterial and fungal infections of the bloodstream - Google Patents
Method for diagnosing bacterial and fungal infections of the bloodstreamInfo
- Publication number
- RU2847711C1 RU2847711C1 RU2024135417A RU2024135417A RU2847711C1 RU 2847711 C1 RU2847711 C1 RU 2847711C1 RU 2024135417 A RU2024135417 A RU 2024135417A RU 2024135417 A RU2024135417 A RU 2024135417A RU 2847711 C1 RU2847711 C1 RU 2847711C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- blood
- positive
- glucan
- negative
- procalcitonin
- Prior art date
Links
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к медицинской микробиологии, и может быть использовано в клинической практике для диагностики бактериальных и грибковых инфекций кровотока.The invention relates to medicine, namely to medical microbiology, and can be used in clinical practice for the diagnosis of bacterial and fungal infections of the bloodstream.
В этиологии жизнеугрожающих инфекционных осложнений наиболее часто встречаются грамотрицательные и грамположительные бактерии, однако немалую роль играют дрожжевые грибы, в том числе рода Candida (см. Barros N., Rosenblatt R.E., Phipps M.M., Fomin V., Mansour M.K. Invasive fungal infections in liver diseases. Hepatol Commun. 2023; 7(9): e0216. DOI: 10.1097/HC9.0000000000000216; см. Клясова Г.А., Федорова А.В., Фролова И.Н., Хрульнова С.А., Ветохина А.В., Капорская Т.С., и соавт. Антибиотикорезистентность госпитальных штаммов Enterococcus spp., выделенных из гемокультуры больных опухолями системы крови: результаты многоцентрового исследования. Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 2018; 20 (2): 142-149; см. Klyasova G.A., Malchikova A., Maschan M., Molchanova I., Kutsevalova O., Chernenkaya T., et al. In vitro activity of echinocandins and azoles against Candida spp. isolated from hematological (hem) and non-hematological (non-hem) pacient in 11 center of Russia. Mycoses. 2017; 60; см. Куцевалова О.Ю., Покудина И.О., Розенко Д.А., Мартынов Д.В., Каминский М.Ю. Современные проблемы антибиотикорезистентности грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в Ростовской области. Медицинский вестник Юга России. 2019. Т. 10. № 3. С. 91-96; см. Куцевалова О.Ю., Кит О.И., Панова Н.И., Розенко Д.А., Якубенко С.В. и др. Современные тенденции антибиотикотерапии грамотрицательных возбудителей нозокомиальных инфекций в Ростовской области. Антибиотики и химиотерапия. 2018. Т. 63. № 11-12. С. 24-30). In the etiology of life-threatening infectious complications, gram-negative and gram-positive bacteria are most often encountered, but yeast fungi, including those of the genus Candida, play a significant role (see Barros N., Rosenblatt R.E., Phipps M.M., Fomin V., Mansour M.K. Invasive fungal infections in liver diseases. Hepatol Commun. 2023; 7(9): e0216. DOI: 10.1097/HC9.00000000000000216; see Klyasova G.A., Fedorova A.V., Frolova I.N., Khrulnova S.A., Vetokhina A.V., Kaporskaya T.S., et al. Antibiotic resistance of hospital strains of Enterococcus spp. isolated from blood cultures of patients with tumors of the system blood: results of a multicenter study. Clinical Microbiology and Antimicrobial Chemotherapy. 2018; 20 (2): 142–149; see Klyasova G. A., Malchikova A., Maschan M., Molchanova I., Kutsevalova O., Chernenkaya T., et al. In vitro activity of echinocandins and azoles against Candida spp. isolated from hematological (hem) and non-hematological (non-hem) patients in 11 centers of Russia. Mycoses. 2017; 60; see Kutsevalova O. Yu., Pokudina I. O., Rozenko D. A., Martynov D. V., Kaminsky M. Yu. Current problems of antibiotic resistance in gram-negative pathogens of nosocomial infections in the Rostov Region. Medical Bulletin of the South of Russia. 2019. Vol. 10. No. 3. P. 91-96; see Kutsevalova O. Yu., Kit O. I., Panova N. I., Rozenko D. A., Yakubenko S. V. et al. Current trends in antibiotic therapy of gram-negative pathogens of nosocomial infections in the Rostov region. Antibiotics and chemotherapy. 2018. Vol. 63. No. 11-12. P. 24-30).
По-прежнему сложной задачей остается диагностика грибов из-за медленного роста и необходимости специальных знаний. Бактериально- грибковые микст инфекции еще больше усложняют диагностику и продлевают время выдачи результата, что имеет жизненно важное значение для эффективного лечения (см. Ferngren G, Yu D, Unalan-Altintop T, Dinnétz P, Özenci V. Epidemiological patterns of candidaemia: A comprehensive analysis over a decade. Mycoses. 2024 May;67(5):e13729. doi: 10.1111/myc.13729. PMID: 38682399). Fungal diagnosis remains challenging due to their slow growth and the need for specialized knowledge. Mixed bacterial-fungal infections further complicate diagnosis and prolong the time to result, which is vital for effective treatment (see Ferngren G, Yu D, Unalan-Altintop T, Dinnétz P, Özenci V. Epidemiological patterns of candidaemia: A comprehensive analysis over a decade. Mycoses. 2024 May;67(5):e13729. doi: 10.1111/myc.13729. PMID: 38682399).
Клинические признаки кандидемии неспецифичны и не отличаются от симптомов бактериального сепсиса (см. McCarty TP, White CM, Pappas PG. Candidemia and Invasive Candidiasis. Infect Dis Clin North Am. 2021 Jun;35(2):389-413. doi: 10.1016/j.idc.2021.03.007. PMID: 34016283).The clinical features of candidemia are nonspecific and indistinguishable from those of bacterial sepsis (see McCarty TP, White CM, Pappas PG. Candidemia and Invasive Candidiasis. Infect Dis Clin North Am. 2021 Jun;35(2):389-413. doi: 10.1016/j.idc.2021.03.007. PMID: 34016283).
Культуральное исследование крови остается золотым стандартом диагностики, однако сложности культивирования, делают этот метод недостаточно надежным (см. Куцевалова О.Ю., Янковская Г.В., Аствацатурьян Е.И. Характеристика возбудителей инвазивного кандидоза. Проблемы медицинской микологии. 2014. Т. 16. № 2. С. 97; см. Krylov V. B., Solovev, A. S., Puchkin, I. A., Yashunsky, D. V., Antonets, A. V. et. al. Reinvestigation of Carbohydrate Specificity of EBCA-1 Monoclonal Antibody Used for the Detection of Candida Mannan. Journal of Fungi. 2021. Т. 7. №. 7. С. 504-512. DOI: 10.3390/jof7070504; см. Куцевалова О.Ю., Козель Ю.Ю., Алавердян А.И., Гусак Д.А. Анализ этиологической структуры инфекций кровотока с использованием автоматического бактериологического анализатора ЮНОНА® LABSTAR 100. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 67 (2): 101-105. DOI: 10.37489/0235-2990-2022-67-5-6-30-38).Blood culture remains the gold standard for diagnosis; however, the difficulties of cultivation make this method insufficiently reliable (see Kutsevalova O.Yu., Yankovskaya G.V., Astvatsaturyan E.I. Characteristics of invasive candidiasis pathogens. Problems of Medical Mycology. 2014. Vol. 16. No. 2. P. 97; see Krylov V.B., Solovev, A.S., Puchkin, I.A., Yashunsky, D.V., Antonets, A.V. et. al. Reinvestigation of Carbohydrate Specificity of EBCA-1 Monoclonal Antibody Used for the Detection of Candida Mannan. Journal of Fungi. 2021. Vol. 7. No. 7. P. 504-512. DOI: 10.3390/jof7070504; see Kutsevalova O. Yu., Kozel Yu. Yu., Alaverdyan A. I., Gusak D. A. Analysis of the etiological structure of bloodstream infections using the automatic bacteriological analyzer JUNONA® LABSTAR 100. Clinical laboratory diagnostics. 2022; 67 (2): 101-105. DOI: 10.37489/0235-2990-2022-67-5-6-30-38).
Частота положительных результатов при микробиологическом исследовании крови составляет 21–71% и зависит от профиля пациентов, частоты отбора проб и объема взятой крови (см. Haydour Q., Hage C.A., Carmona E.M., Epelbaum O., Evans S.E., Gabe L.M., et al. Diagnosis of Fungal Infections. A Systematic Review and Meta-Analysis Supporting American Thoracic Society Practice Guideline. Ann Am Thorac Soc. 2019; 16(9):1179-1188. DOI:10.1513/AnnalsATS.201811-766OC). The rate of positive results in microbiological blood testing is 21–71% and depends on the patient profile, sampling frequency, and the volume of blood collected (see Haydour Q, Hage CA, Carmona EM, Epelbaum O, Evans SE, Gabe LM, et al. Diagnosis of Fungal Infections. A Systematic Review and Meta-Analysis Supporting the American Thoracic Society Practice Guideline. Ann Am Thorac Soc. 2019; 16(9):1179–1188. DOI:10.1513/AnnalsATS.201811-766OC).
Необходимы новые методы диагностики, дополняющие традиционные культуральные исследования, в частности, для выявления «недостающих процентов» пациентов с отрицательными результатами посева крови (см. Clancy C.J., Nguyen M.H. Finding the "missing 50%" of invasive candidiasis: how nonculture diagnostics will improve understanding of disease spectrum and transform patient care. Clin Infect Dis. 2013; 56(9):1284-92. DOI:10.1093/cid/cit006). New diagnostic methods are needed to complement traditional culture tests, particularly to identify the “missing percentage” of patients with negative blood cultures (see Clancy CJ, Nguyen MH. Finding the “missing 50%” of invasive candidiasis: how nonculture diagnostics will improve understanding of the disease spectrum and transform patient care. Clin Infect Dis. 2013; 56(9):1284-92. DOI:10.1093/cid/cit006).
Использование биомаркеров, оценивающих риск развития инвазии дрожжевых грибов, может способствовать выработке стартовой противогрибковой стратегии. Отрицательные значения биомаркеров также могут быть полезны для исключения инвазивного процесса и прекращения ненужной противогрибковой терапии (см. Lass-Flörl C., Kanj S.S., Govender N.P., Thompson G.R. 3rd, Ostrosky-Zeichner L., Govrins M.A. Invasive candidiasis. Nat Rev Dis Primers. 2024; 10(1):20. DOI: 10.1038/s41572-024-00503-3; см. Fabre V., Sharara S.L., Salinas A.B., Carroll K.C., Desai S., Cosgrove S.E. Does This Patient Need Blood Cultures? A Scoping Review of Indications for Blood Cultures in Adult Nonneutropenic Inpatients. Clin Infect Dis. 2020; 71(5):1339-1347. DOI:10.1093/cid/ciaa039). The use of biomarkers that assess the risk of developing yeast invasion may facilitate the development of an initial antifungal strategy. Negative biomarker values may also be useful to exclude an invasive process and discontinue unnecessary antifungal therapy (see Lass-Flörl C, Kanj S.S., Govender N.P., Thompson G.R. 3rd, Ostrosky-Zeichner L., Govrins M.A. Invasive candidiasis. Nat Rev Dis Primers. 2024; 10(1):20. DOI: 10.1038/s41572-024-00503-3; see Fabre V., Sharara S.L., Salinas A.B., Carroll K.C., Desai S., Cosgrove S.E. Does This Patient Need Blood Cultures? A Scoping Review of Indications for Blood Cultures in Adult Nonneutropenic Inpatients. Clin Infect Dis. 2020; 71(5):1339-1347. DOI:10.1093/cid/ciaa039).
В каждом конкретном случае при подозрении на генерализованный инфекционный процесс должен быть выработан индивидуальный алгоритм диагностического поиска, предусматривающий целенаправленное обследование с использованием наиболее информативных в данной ситуации методов (см. Кит О.И., Куцевалова О.Ю., Лысенко И.Б., Дмитриева В.В., Шалашная Е.В., Панова Н.И. Способ определения этиологии лихорадки неясного генеза у онкологических больных. Патент на изобретение RU 2647456 C1, 15.03.2018. Заявка № 2017112212 от 10.04.2017).In each specific case, if a generalized infectious process is suspected, an individual diagnostic search algorithm should be developed, which includes a targeted examination using the most informative methods in a given situation (see Kit O.I., Kutsevalova O.Yu., Lysenko I.B., Dmitrieva V.V., Shalashnaya E.V., Panova N.I. Method for determining the etiology of fever of unknown genesis in cancer patients. Patent for invention RU 2647456 C1, 15.03.2018. Application No. 2017112212 dated 10.04.2017).
Техническим результатом предлагаемого способа является разработка способа, позволяющего диагностировать бактериальные и грибковые инфекци кровотока.The technical result of the proposed method is the development of a method that allows for the diagnosis of bacterial and fungal bloodstream infections.
Технический результат достигается тем, что у пациента при подозрении на инфекцию кровотока производят забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека, параллельно производят забор крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые помещают в анализатор до ожидания сигнала роста, и при наличии сигнала роста осуществляют высев для идентификации возбудителя и определения его антибиотикочувствительности, а при отсутствии сигнала осуществляют повторный забор крови каждые 24 часа, а в сыворотке крови определяют концентрацию прокальцитонина и (1-3)-β-D-глюкана, и при положительном результате прокальцитонина и отрицательном (1-3)-β-D-глюкане дополнительно определяют бактериальный эндотоксин в сыворотке крови и при его положительном результате констатируют наличие грамотрицательной бактериальной инфекции, а при его отрицательном результате констатируют наличие грамположительной бактериальной инфекции; при отрицательном результате прокальцитонина и положительном (1-3)-β-D-глюкане дополнительно определяют маннановый антиген Candida в сыворотке крови и при его положительном результате констатируют наличие дрожжевой инфекции, а при его отрицательном результате назначают дополнительное исследование на наличие иной грибковой инфекции; при положительных результатах прокальцитонина, (1-3)-β-D-глюкане, эндотоксина и маннанового антигена Candida дополнительно осуществляют забор венозной крови во флакон с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов и помещают его в анализатор до ожидания сигнала роста и при наличии сигнала роста осуществляют высев из этого флакона для идентификации возбудителя и определения его антибиотико- и антимикотикочувствительности; а при отсутствии роста гемокультуры осуществляют повторный забор крови каждые 24 часа; при положительных результатах прокальцитонина, (1-3)-β-D-глюкане, маннанового антигена Candida и отрицательном эндотоксине констатируют наличие грам-положительной бактериальной и дрожжевой инфекции; при отрицательных результатах прокальцитонина и (1-3)-β-D-глюкана проводят повторные иследования в динамике каждые 24 часа, при отсутствии роста гемокультуры, но при положительных результатах прокальцитонина и (1-3)-β-D-глюкана, и маннанового антигена Candida рекомендуют повторный посев крови каждые 24 часов, до получения роста культуры.The technical result is achieved in that, if a bloodstream infection is suspected, blood is collected from the patient's cubital vein into one test tube to obtain human blood serum, and in parallel, blood is collected into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which are placed in the analyzer until a growth signal is expected, and if a growth signal is present, seeding is performed to identify the pathogen and determine its antibiotic sensitivity, and if there is no signal, repeated blood sampling is performed every 24 hours, and the concentration of procalcitonin and (1-3)-β-D-glucan is determined in the blood serum, and if the result for procalcitonin is positive and (1-3)-β-D-glucan is negative, bacterial endotoxin is additionally determined in the blood serum, and if its result is positive, the presence of a gram-negative bacterial infection is ascertained, and if its result is negative, the presence of a gram-positive bacterial infection is ascertained; If the procalcitonin result is negative and (1-3)-β-D-glucan is positive, the mannan antigen is additionally determined.Candidain the blood serum and if its result is positive, the presence of a yeast infection is confirmed, and if its result is negative, an additional study is prescribed for the presence of another fungal infection; if the results are positive, procalcitonin, (1-3)-β-D-glucan, endotoxin and mannan antigenCandidaAdditionally, venous blood is collected in a vial with a bacterial growth inhibitor for hemoculture of yeast fungi and placed in the analyzer until a growth signal is detected, and if a growth signal is detected, cultures are taken from this vial to identify the pathogen and determine its antibiotic and antifungal sensitivity; and if there is no growth in the hemoculture, repeat blood sampling is performed every 24 hours; if procalcitonin, (1-3)-β-D-glucan, and mannan antigen results are positiveCandidaand negative endotoxin indicates the presence of a gram-positive bacterial and yeast infection; if procalcitonin and (1-3)-β-D-glucan results are negative, repeated studies are carried out dynamically every 24 hours, in the absence of blood culture growth, but if procalcitonin and (1-3)-β-D-glucan and mannan antigen results are positiveCandidaIt is recommended to repeat blood cultures every 24 hours until culture growth is obtained.
Новизной способа является то, что применение в определенной последовательности комплекса биомаркеров: прокальцитонина, (1-3)-β-D-глюкана, маннанового антигена Candida и бактериального эндотоксина и флакона с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов позволяет осуществить диагностику бактериальных и грибковых инфекций кровотока в короткие сроки, не дожидаясь стандартных 5 дней культивирования, тем самым назначить раннюю адекватную эмпирическую терапию.The novelty of the method is that the use of a certain sequence of a complex of biomarkers: procalcitonin, (1-3)-β-D-glucan, Candida mannan antigen and bacterial endotoxin and a vial with a bacterial growth inhibitor for hemoculture of yeast fungi allows for the diagnosis of bacterial and fungal infections of the bloodstream in a short time, without waiting for the standard 5 days of cultivation, thereby prescribing early adequate empirical therapy.
Способ выполнялся на базе лаборатории клинической микробиологии «Национального медицинского исследовательского центра онкологии» Минздрава России, г. Ростов-на-Дону в период с 01.01.2022 по 30.06.2024.The method was carried out at the clinical microbiology laboratory of the National Medical Research Center of Oncology of the Ministry of Health of the Russian Federation, Rostov-on-Don, from 01.01.2022 to 30.06.2024.
Материалом для исследования послужили образцы венозной крови.Venous blood samples served as the material for the study.
Исследовали кровь пациентов с подозрением на генерализованную инфекцию с помощью автоматического анализатора гемокультур ЮНОНА® Labstar 100 (SCENKER Biological Technology Co., Ltd., Китай).The blood of patients with suspected generalized infection was examined using the JUNONA® Labstar 100 automatic blood culture analyzer (SCENKER Biological Technology Co., Ltd., China).
Изучение биомаркеров проводили на наборах реагентов для определения уровня прокальцитонина (ПКТ) (Вектор-Бест, Россия), мананнового антигена Candida на наборах PLATELIA™ Candida Ag PLUS (Bio-Rad Laboratories, Франция), тест на бактериальный эндотоксин и определение (1-3)-β-D-глюкана (Era Biology Group, Китай). The study of biomarkers was carried out using reagent kits for determining the level of procalcitonin (PCT) (Vector-Best, Russia), Candida mannan antigen using PLATELIA™ Candida Ag PLUS kits (Bio-Rad Laboratories, France), a test for bacterial endotoxin and determination of (1-3)-β-D-glucan (Era Biology Group, China).
Способ выполняется следующим образом. The method is performed as follows.
У пациента при подозрении на инфекцию кровотока производят забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека, параллельно проводят посев крови, согласно действующим Методическим указаниям МУ 4.2.2039-05 "Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории" (см. Методические указания МУ 4.2.2039-05 "Техника сбора и транспортирования биоматериалов в микробиологические лаборатории" (утв. и введены в действие Главным государственным санитарным врачом РФ 23 декабря 2005 г.) во флаконы с питательной средой с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов и анаэробов ЮНОНА®, которые помещают в анализатор до ожидания сигнала роста и при наличии сигнала роста осуществляют высев для идентификации возбудителя и определения его антибиотикочувствительности, а при отсутствии сигнала осуществляют повторный забор крови каждые 24 часа, а в сыворотке крови определяют концентрацию ПКТ и (1-3)-β-D-глюкана. If a bloodstream infection is suspected, blood is drawn from the patient's cubital vein into one test tube to obtain human blood serum, and blood is cultured in parallel, according to the current Methodological Guidelines MU 4.2.2039-05 "Technique for collecting and transporting biomaterials to microbiological laboratories" (see Methodological Guidelines MU 4.2.2039-05 "Technique for collecting and transporting biomaterials to microbiological laboratories" (approved and put into effect by the Chief State Sanitary Doctor of the Russian Federation on December 23, 2005) into vials with a nutrient medium with antibiotic neutralizers for cultivating aerobes and anaerobes JUNONA®, which are placed in the analyzer until a growth signal is expected, and if a growth signal is present, culture is performed to identify the pathogen and determine its antibiotic sensitivity, and if there is no signal, blood is re-drawn every 24 hours, and the concentration of PCT and (1-3)-β-D-glucan.
При положительном результате ПКТ и отрицательном (1-3)-β-D-глюкане дополнительно определяют бактериальный эндотоксин в сыворотке крови и при его положительном результате констатируют наличие грамотрицательной бактериальной инфекции, а при его отрицательном результате констатируют наличие грамположительной бактериальной инфекции; при отрицательном результате ПКТ и положительном (1-3)-β-D-глюкане дополнительно определяют маннановый антиген Candida в сыворотке крови и при его положительном результате констатируют наличие дрожжевой инфекции, а при его отрицательном результате назначают дополнительное исследование на наличие иной грибковой инфекции.If the PCT result is positive and (1-3)-β-D-glucan is negative, bacterial endotoxin is additionally determined in the blood serum, and if it is positive, the presence of a gram-negative bacterial infection is confirmed, and if it is negative, the presence of a gram-positive bacterial infection is confirmed; if the PCT result is negative and (1-3)-β-D-glucan is positive, Candida mannan antigen is additionally determined in the blood serum, and if it is positive, the presence of a yeast infection is confirmed, and if it is negative, an additional study is prescribed for the presence of another fungal infection.
При положительных результатах ПКТ, (1-3)-β-D-глюкане, эндотоксина и маннанового антигена Candida дополнительно осуществляют забор венозной крови во флакон с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов и помещают его в анализатор до ожидания сигнала роста и при наличии сигнала роста осуществляют высев из этого флакона для идентификации возбудителя и определения его антибиотико- и антимикотикочувствительности; а при отсутствии роста гемокультуры осуществляют повторный забор крови каждые 24 часа.If the results of PCT, (1-3)-β-D-glucan, endotoxin and Candida mannan antigen are positive, venous blood is additionally collected into a vial with a bacterial growth inhibitor for hemoculture of yeast fungi and placed in the analyzer until a growth signal is detected. If a growth signal is detected, culture from this vial is performed to identify the pathogen and determine its antibiotic and antifungal sensitivity; if there is no growth in the hemoculture, repeat blood sampling is performed every 24 hours.
При положительных результатах ПКТ, (1-3)-β-D-глюкане, маннанового антигена Candida и отрицательном эндотоксине констатируют наличие грамположительной бактериальной и дрожжевой инфекции; при отрицательных результатах ПКТ и (1-3)-β-D-глюкана проводят повторные исследования в динамике каждые 24 часа. With positive results of PCT, (1-3)-β-D-glucan, mannan antigenCandidaand negative endotoxin is used to confirm the presence of gram-positive bacterial and yeast infections; if the results of PCT and (1-3)-β-D-glucan are negative, repeated studies are carried out dynamically every 24 hours.
При отсутствии роста гемокультуры, но при положительных результатах ПКТ и (1-3)-β-D-глюкана, и маннанового антигена Candida рекомендуют повторный посев крови каждые 24 часов, до получения роста культуры.If there is no blood culture growth, but the results of PCT and (1-3)-β-D-glucan and Candida mannan antigen are positive, repeat blood cultures are recommended every 24 hours until culture growth is obtained.
Приготовление раствора хлорамфеникола (Sigma-Aldrich) для гемокультивирования дрожжевых грибов. Preparation of chloramphenicol solution (Sigma-Aldrich) for hemoculture of yeast fungi .
50 мг хлорамфеникола растворить в 2 мл этилового спирта. Тщательно перемешать и асептически разлить по 150 мкл в стерильные конические эппендорфы. Далее, из каждого эппендорфа с помощью шприца перенести (через прокол резиновой пробки) во флакон с питательной средой для культивирования аэробов Юнона®. Приготовленные флаконы с ингибитором проверяют на отсутствие контаминации микроорганизмами путем инкубирования в аэробной атмосфере при 35°C в течение 72 часов (см. Меньшиков В.В., Козлов Р.С., Поляк М.С., Михайлова В.С., Иноземцева Л.О., Шуляк Б.Ф. и соавт. Клинические рекомендации Внутрилабораторный контроль качества питательных сред для клинических микробиологических исследований. 2014. URL: https://fedlab.ru/upload/medialibrary/3ca/kochetov-ag.-klin.-rek._-kld_-2014_-vlkk-pitatelnykh-sred.pdf). Оптический датчик на дне флакона позволит судить о стерильности флакона.Dissolve 50 mg of chloramphenicol in 2 ml of ethyl alcohol. Mix thoroughly and aseptically dispense 150 µl into sterile conical eppendorf tubes. Next, transfer the contents of each eppendorf tube (through a puncture in the rubber stopper) using a syringe into a vial containing Juno® aerobic culture medium. Prepared vials with the inhibitor are tested for the absence of contamination by microorganisms by incubation in an aerobic atmosphere at 35°C for 72 hours (see Menshikov V.V., Kozlov R.S., Polyak M.S., Mikhailova V.S., Inozemtseva L.O., Shulyak B.F. et al. Clinical guidelines Intralaboratory quality control of nutrient media for clinical microbiological studies. 2014. URL: https://fedlab.ru/upload/medialibrary/3ca/kochetov-ag.-klin.-rek._-kld_-2014_-vlkk-pitatelnykh-sred.pdf). An optical sensor at the bottom of the vial will allow one to judge its sterility.
Приводим примеры применения способа.We provide examples of the method's application.
Пример 1. Пациент А., 48 лет, поступила в абдоминальное отделение «НМИЦ онкологии» с диагнозом «Злокачественное новообразование желудка» 3 стадии. После повторной операции по поводу несостоятельность анастомоза переведена в отделение анестезиологии и реанимации. ЧСС >90/мин, ЧД >20/мин, пульс 95 ударов в минуту, артериальное давление пониженное (80/65 мм рт.ст.). Общая слабость, спутанное состояния, лихорадка, температура 38.9°С. Лабораторные показатели общего анализа крови (ОАК): Hb – 76 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 2,89×1012/л, лейкоциты 25×109/л, СОЭ 50 мм/ч.Example 1. Patient A., 48 years old, was admitted to the abdominal department of the National Medical Research Center of Oncology with a diagnosis of stage 3 gastric malignancy. After a repeat operation for anastomotic leak, she was transferred to the anesthesiology and intensive care department. Heart rate >90/min, respiratory rate >20/min, pulse 95 beats per minute, low blood pressure (80/65 mmHg). General weakness, confusion, fever, temperature 38.9°C. Laboratory parameters of a complete blood count (CBC): Hb - 76 g/l, c.p - 0.80, erythrocytes 2.89×1012/l, leukocytes 25×10 9 /l, ESR 50 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови прокальцитонин (ПКТ) - концентрация 12,8 нг/мл и (1-3)-β-D-глюкан - концентрация 50,9 пг/мл. Дополнительно, так как положительный ПКТ, выполнен тест на эндотоксин - концентрация 0,62.In parallel, procalcitonin (PCT) was determined in the blood serum - a concentration of 12.8 ng/ml and (1-3)-β-D-glucan - a concentration of 50.9 pg/ml. Additionally, since PCT was positive, an endotoxin test was performed - a concentration of 0.62.
Констатировали наличие грамотрицательной инфекции. По результатам концентрации ПКТ и бактериального эндотоксина назначена эмпирическая противобактериальная терапия с учетом грамотрицательного возбудителя. A gram-negative infection was diagnosed. Based on PCT and bacterial endotoxin concentrations, empirical antibacterial therapy was prescribed, taking into account the gram-negative pathogen.
Через 19 часов получили сигнал роста во флаконе со средой питательной с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов ЮНОНА® (см. Фиг. 1).After 19 hours, a growth signal was obtained in a flask with a nutrient medium with antibiotic neutralizers for cultivating JUNO® aerobes (see Fig. 1).
Еще через 38 часов получен результат идентификации и антибиотикограмма – полирезистентная P. aeruginosa с продукцией карбапенемаз. Проведена целевая корректировка в антибактериальной терапии.After another 38 hours, the identification results and antibiogram were obtained: multidrug-resistant P. aeruginosa producing carbapenemases. Targeted adjustments to antibacterial therapy were made.
Было сделано заключение о том, что у больного подтвердилсь грамотрицательный возбудитель инфекции кровотока. Результаты биомаркеров позволили начать незамедлительно адекватную терапию, результат антибиотикограммы скорректировать результат. It was concluded that the patient had a confirmed Gram-negative bloodstream infection. Biomarker results allowed for immediate initiation of appropriate therapy, and the antibiogram results were adjusted.
Пример 2. Пациент П., 56 лет, поступил в отделение терапии РОКБ 1 с предварительным диагноз «Пневмония, сепсис». При поступлении: ЧСС 96/мин, ЧД 25/мин, пульс 112 ударов в минуту, артериальное давление 75/60 мм рт. ст. Общая слабость, лихорадка, температура тела в пределах 37.8-38.2°С. Одышка и потливость при минимальной физической нагрузке. Лабораторные показатели ОАК: Hb – 110 г/л, ц.п – 0, 82, эритроциты 3,0×1012/л, лейкоциты 12×109/л, СОЭ 30 мм/ч.Example 2. Patient P., 56 years old, was admitted to the therapy department of Regional Clinical Hospital No. 1 with a preliminary diagnosis of pneumonia and sepsis. On admission: heart rate 96 beats per minute, respiratory rate 25 beats per minute, pulse 112 beats per minute, blood pressure 75/60 mmHg. General weakness, fever, body temperature within 37.8-38.2°C. Shortness of breath and sweating with minimal physical exertion. Laboratory parameters of the complete blood count: Hb - 110 g/l, c.p - 0.82, erythrocytes 3.0×10 12 /l, leukocytes 12×10 9 /l, ESR 30 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови ПКТ - концентрация 8 нг/мл, тест на бактериальный эндотоксин - концентрация 0,30, концентрация (1-3)-β-D-глюкана - 45,5 пг/мл. In parallel, PCT was determined in the blood serum - a concentration of 8 ng/ml, a test for bacterial endotoxin - a concentration of 0.30, and the concentration of (1-3)-β-D-glucan - 45.5 pg/ml.
Констатировали наличие грамположительной инфекции. По результатам положительных ПКТ и отрицательного теста на бактериальный эндотоксин назначена эмпирическая противобактериальная терапия с учетом грамположительного возбудителя. A gram-positive infection was diagnosed. Based on positive PCT and negative bacterial endotoxin tests, empirical antibacterial therapy was prescribed, taking into account the gram-positive pathogen.
Через 23 часа получили сигнал роста во флаконе со средой питательной с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов ЮНОНА®. При микроскопии – грамположительные цепочки кокков.After 23 hours, a growth signal was detected in a vial of JUNONA® aerobic culture medium containing antibiotic neutralizers. Microscopic examination revealed gram-positive cocci.
Еще через 38 часов получен окончательный результат S. pneumoniae. Проведена идентификации возбудителя и определение его антибиотикочувствительности. К моменту роста культуры наблюдалась положительная динамика. Результат посева и антибиотикограмма позволили скорректировать терапию.After another 38 hours, the final S. pneumoniae result was obtained. The pathogen was identified and its antibiotic susceptibility was determined. By the time the culture grew, positive dynamics were observed. The culture results and antibiogram allowed for adjustment of therapy.
Пример 3. Пациент М, 21 год. Поступил в хирургическое отделение РОКБ 1 с диагнозом «Острый аппендицит». Через 5 дней после удаления аппендицита пациент пожаловался на боль в животе и тошноту. При осмотре: функциональная кишечная непроходимость, напряжение брюшных мышц, выраженная интоксикация. Состояние тяжелое. ЧСС 95/мин, ЧД 25/мин, пульс 110 ударов в минуту, артериальное давление пониженное (75/60 мм рт.ст.). Лабораторные показатели ОАК: Hb – 95 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 2,80×1012/л, лейкоциты 25×109/л, СОЭ 35 мм/ч. Общая слабость, лихорадка, повышенная температура (37.8-38.5°С). Example 3. Patient M., 21 years old. Admitted to the surgical department of Regional Clinical Hospital No. 1 with a diagnosis of acute appendicitis. Five days after appendectomy, the patient complained of abdominal pain and nausea. On examination: functional intestinal obstruction, abdominal muscle tension, severe intoxication. The condition is severe. HR 95/min, RR 25/min, pulse 110 beats per minute, low blood pressure (75/60 mmHg). Laboratory parameters of the complete blood count: Hb - 95 g / l, c.p - 0.80, erythrocytes 2.80 × 10 12 / l, leukocytes 25 × 10 9 / l, ESR 35 mm / h. General weakness, fever, elevated temperature (37.8-38.5 ° C).
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови: концентрацию ПКТ - 0,2 нг/мл, (1-3)-β-D-глюкана - 80 пг/мл. Концентрация маннанового антигена Candida spp. - 350 пг/мл.In parallel, the following were determined in the blood serum: PCT concentration - 0.2 ng/ml, (1-3)-β-D-glucan - 80 pg/ml. Concentration of Candida spp. mannan antigen - 350 pg/ml.
Констатировали наличие дрожжевой инфекции. По результатам концентрации ПКТ и (1-3)-β-D-глюкана и маннанового антигена Candida spp. Назначена эмпирическая противогрибковая терапия. A yeast infection was diagnosed. Based on the results of PCT and (1-3)-β-D-glucan concentrations and Candida spp. mannan antigen, empirical antifungal therapy was prescribed.
Через 41 час получили сигнал роста во флаконе со средой питательной с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов ЮНОНА®. При микроскопии клетки дрожжевых грибов. Еще через 2 суток рост Candida glabrata. Проведена идентификации возбудителя и определение его антимикотикочувствительности (см. Фиг. 2).After 41 hours, a growth signal was detected in a vial of JUNONA® aerobic nutrient medium containing antibiotic neutralizers. Microscopic examination revealed yeast cells. After another 2 days, Candida glabrata growth was observed. The pathogen was identified and its antifungal susceptibility was determined (see Fig. 2).
Таким образом, с помощью заявленного способа получили адекватный результат для стартовой терапии раньше более чем на 40 часов. Окончательная терапия была скорректирована с учетом результата микробиологического исследования.Thus, using the proposed method, an adequate initial therapy result was achieved more than 40 hours earlier. The final therapy was adjusted based on the microbiological test results.
Пример 4. Пациент Ф, 59 лет поступила в абдоминальное отделение «НМИЦ онкологии» с диагнозом «Злокачественное образование толстой кишки». После повторной операции по поводу несостоятельности кишечного анастомоза, переведена в состоянии средней тяжести в отделении анестезиологии и реанимации. ЧСС 92/мин, ЧД 28/мин, пульс 95 ударов в минуту, артериальное давление 70/90 мм рт. ст. Общая слабость, спутанное состояния, лихорадка, температура до 39.2°С. Лабораторные показатели ОАК: Hb – 75 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 2,67×1012/л, лейкоциты 19×109/л, СОЭ 32 мм/ч.Example 4. Patient F., 59, was admitted to the abdominal department of the National Medical Research Center of Oncology with a diagnosis of colon malignancy. After a repeat operation for intestinal anastomotic leak, she was transferred in a moderate condition to the anesthesiology and intensive care department. Heart rate 92 bpm, respiratory rate 28 bpm, pulse 95 bpm, blood pressure 70/90 mmHg. General weakness, confusion, fever, temperature up to 39.2°C. Laboratory parameters of the complete blood count: Hb - 75 g/l, c.p - 0.80, erythrocytes 2.67×10 12 /l, leukocytes 19×10 9 /l, ESR 32 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови: концентрация ПКТ - 12,8 нг/мл, тест на эндотоксин - концентрация 0,65, концентрация (1-3)-β-D-глюкана - 83 пг/мл. Концентрация маннанового антигена Candida spp. - 500 пг/мл. In parallel, the following were determined in the blood serum: PCT concentration - 12.8 ng/ml, endotoxin test - concentration 0.65, (1-3)-β-D-glucan concentration - 83 pg/ml. Concentration of Candida spp. mannan antigen - 500 pg/ml.
Констатировали наличие бактериально-грибковой инфекции. Дополнительно осуществили забор венозной крови во флакон с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов и поместили его в анализатор до ожидания сигнала роста.A bacterial and fungal infection was diagnosed. Additionally, venous blood was collected into a vial containing a bacterial growth inhibitor for blood culture of yeast fungi and placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Назначена эмпирическая терапия с учетом микст инфекции (возможного грамотрицательного возбудителя и дрожжевых грибов). Empirical therapy was prescribed taking into account mixed infection (possible gram-negative pathogen and yeast fungi).
Через 12 часов получили сигнал роста во флаконе со средой питательной с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов ЮНОНА®. При микроскопии – грамотрицательные бактерии. Результат идентификации - K.pneumoniae (см. Фиг. 3).After 12 hours, a growth signal was obtained in a vial of JUNONA® aerobic nutrient medium containing antibiotic neutralizers. Microscopy revealed gram-negative bacteria. The identification result was K. pneumoniae (see Fig. 3).
Проведена идентификации возбудителя и определение его антибиотикочувствительности.The pathogen was identified and its antibiotic sensitivity was determined.
Еще через 50 часов во флаконе со средой питательной с нейтрализаторами антибиотиков для культивирования аэробов ЮНОНА® с ингибитором бактериального ростав сигнал роста. Результат идентификации Candida glabrata (см. Фиг. 4).After another 50 hours, a growth signal was detected in a vial of JUNONA® aerobic nutrient medium with antibiotic neutralizers and a bacterial growth inhibitor. The identification result was Candida glabrata (see Fig. 4).
Проведена идентификации возбудителя и определение его антимикотикочувствительности.The pathogen was identified and its antifungal sensitivity was determined.
Заявленный алгоритм позволил выявить наиболее проблемную в лечении бактериально-кандидозную ассоциацию и безпромедления по результатам биомаркеров начать своевременную адекватную эмперическую терапию бактериально-грибковой микст инфекции. Дополнительный флагон для грибов в свою очередь позволил получить рост C. glabrata в ассоциации с K.pneumoniae. The proposed algorithm allowed us to identify the most problematic bacterial-candidal association and promptly initiate appropriate empirical therapy for the bacterial-fungal mixed infection based on biomarker results. An additional fungal flagellant, in turn, enabled the growth of C. glabrata in association with K. pneumoniae .
Следует учесть, что K.pneumoniae плохо поддается эмперической терапии с учетом высокого уровня резистентности. Грибы C. glabrata так же плохо поддаются лечению, так как обладают природной резистентностью к основным антимикотикам. Дополнительный флакон с ингибитором бактериального роста позволил получить возбудителей при ассоциации, подтвердить кандидозную инфекцию и провестиIt should be noted that K. pneumoniae is poorly responsive to empirical therapy due to its high resistance rate. C. glabrata fungi are also difficult to treat, as they are naturally resistant to major antifungal agents. An additional vial of bacterial growth inhibitor allowed us to isolate the pathogens by association, confirm candidal infection, and conduct a test.
Пример 5. Пациент М. 30 лет, поступила в хирургическое отделение РостГМУ с диагнозом «Панкреонекроз». При осмотре: жалобы на сильную боль опоясывающего характера, в левую часть живота, поясницу. Температура тела 38.0°С и выше. Интоксакация. Проведена экстренная операция. Через несколько дней повторное оперативное вмешательств на поджелудочной железе по поводу несостоятельности анастомозов и швов. Пациентка переведена в отделение реанимации, состояние средней тяжести. ЧСС 90/мин, ЧД 22/мин, число лейкоцитов в крови 12×109/л. Общая слабость, лихорадка, температура больше 38.0°С. Лабораторные показатели ОАК: Hb – 90 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 2,6×1012/л, лейкоциты 15×109/л, СОЭ 35 мм/ч. Example 5. Patient M., 30, was admitted to the surgical department of Rostov State Medical University with a diagnosis of pancreatic necrosis. On examination, she complained of severe girdle-like pain in the left abdomen and lower back. Body temperature was 38.0°C and higher. Intoxication. An emergency operation was performed. A few days later, a repeat pancreatic surgery was performed due to anastomotic and suture leakage. The patient was transferred to the intensive care unit in a moderate condition. Heart rate was 90/min, respiratory rate 22/min, white blood cell count was 12×10 9 /L. General weakness, fever, temperature above 38.0°C. Laboratory parameters of the complete blood count: Hb – 90 g/l, c.p – 0.80, erythrocytes 2.6×1012/l, leukocytes 15×10 9 /l, ESR 35 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови: концентрация ПКТ - 12,8 нг/мл, тест на эндотоксин - 0,28, (1-3)-β-D-глюкана - 116,8 пг/мл. Концентрация маннанового антигена Candida spp. - 250 пг/мл.In parallel, the following were determined in the blood serum: PCT concentration - 12.8 ng/ml, endotoxin test - 0.28, (1-3)-β-D-glucan - 116.8 pg/ml. Concentration of Candida spp. mannan antigen - 250 pg/ml.
Согласно результатам предложенного алгоритма назначена терапия антибактериальная (с учетом грамположительного возбудителя) и противогрибковая.Based on the results of the proposed algorithm, antibacterial (taking into account the gram-positive pathogen) and antifungal therapy were prescribed.
Через 14 часов сигнал роста, при микроскопии – грамположительные цепочки кокков (см. Фиг. 5). After 14 hours, a growth signal was observed; microscopic examination revealed gram-positive chains of cocci (see Fig. 5).
Проведена идентификации возбудителя - рост E. faecium, и определение его антибиотикочувствительности. При окончательной идентификации, через 25 часов во флаконе со средой питательной для культивирования аэробов ЮНОНА® с ингибитором бактериального ростав сигнал. При микроскопии клетки дрожжевых грибов. Еще через двое суток окончательный результат - C. albicans (см. Фиг. 6).The pathogen was identified by growth of E. faecium , and its antibiotic susceptibility was determined. A signal was detected in a vial of JUNONA® aerobic culture medium with a bacterial growth inhibitor after 25 hours of final identification. Microscopic examination revealed yeast cells. Two days later, the final result was C. albicans (see Fig. 6).
Проведена идентификации возбудителя - рост C. albicans, и определение его антимикотикочувствительности.The pathogen was identified - the growth of C. albicans - and its antifungal sensitivity was determined.
Констатировали наличие бактериально-грибковой инфекции. Дополнительно осуществили забор венозной крови во флакон с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов и поместили его в анализатор до ожидания сигнала роста.A bacterial and fungal infection was diagnosed. Additionally, venous blood was collected into a vial containing a bacterial growth inhibitor for blood culture of yeast fungi and placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Результаты биомаркеров позволили начать своевременную адекватную эмперическую терапию бактериально-грибковой микст инфекции. Результат (1-3)-β-D-глюкана и мананновый антиген позволил не пропустить инфекцию, вызванную дрожжевыми грибами и начать раннюю противогрибковую терапию.Biomarker results enabled timely and adequate empirical therapy for the bacterial-fungal mixed infection. The (1-3)-β-D-glucan and mannan antigen results allowed for the detection of a yeast infection and early initiation of antifungal therapy.
С помощью флакона с ингибитором бактериального роста для культивирования дрожжевых грибов была получена культура C. albicans. Проведена идентификация и определение антимикотикограммы. И подтверждена причастность дрожжевых грибов к этиологии инфекционного процесса.Using a bottle with a bacterial growth inhibitor for culturing yeast fungi, a culture was obtainedC. albicans.Identification has been carried out and determination of the antimycoticogram. The involvement of yeast fungi in the etiology of the infectious process was confirmed.
Пример 6. Пациент Е., 47 лет поступил в онкогематологическое отделение «НМИЦ онкологии» с диагнозом «Острый лимфобластный лейкоз». При осмотре пациент жаловался на общую слабость, повышение температуры тела до 37.8°С. ЧСС 92/мин, ЧД -22/мин. Лабораторные показатели ОАК: Hb – 45 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 0,9х1012/л, лимфоциты 73,7%, моноциты 15,9%, лейкоциты 20,9×109/л, тромбоциты - 84 тыс., СОЭ 66 мм/ч. Example 6. Patient E., 47 years old, was admitted to the oncohematology department of the National Medical Research Center of Oncology with a diagnosis of acute lymphoblastic leukemia. Upon examination, the patient complained of general weakness and an increase in body temperature to 37.8°C. Heart rate was 92/min, respiratory rate was 22/min. Laboratory parameters of the complete blood count: Hb - 45 g/l, c.p - 0.80, erythrocytes 0.9x10 12 /l, lymphocytes 73.7%, monocytes 15.9%, leukocytes 20.9x10 9 /l, platelets - 84 thousand, ESR 66 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови: концентрация ПКТ - 1,8 нг/мл, концентрация (1-3)-β-D-глюкана - 48,5 пг/мл. In parallel, the following were determined in the blood serum: PCT concentration - 1.8 ng/ml, (1-3)-β-D-glucan concentration - 48.5 pg/ml.
Через 24 – отсутствие роста гемокультуры, учитывая тяжесть состояния, назначены повторные исследования по алгоритму в динамике через 24 часа.After 24 hours, there was no growth in blood culture; given the severity of the condition, repeat studies were prescribed according to the algorithm in dynamics after 24 hours.
Пример 7. Пациент Е, 17 лет поступила в детское отделение «НМИЦ онкологии» с диагнозом диагнозом острый лимфобластный лейкоз, В-II иммуновариант на плановую химиотерапию на плановую химиотерапию. После очередного этапа химиотерапии пациентка пожаловалась на общую слабость, быструю утомляемость, повышение температуры тела до 37.5-37.8°С.Example 7. Patient E., 17, was admitted to the pediatric department of the National Medical Research Center of Oncology with a diagnosis of acute lymphoblastic leukemia, type B-II, for planned chemotherapy. After the next round of chemotherapy, the patient complained of general weakness, fatigue, and a fever of 37.5-37.8°C.
ЧСС -94/мин, ЧД 26 в мин. Лабораторные показатели ОАК: Hb – 27 г/л, ц.п – 0,80, эритроциты 0,9×1012/л, лимфоциты 73,7%, моноциты 15,9%, лейкоциты 20,9×109/л, тромбоциты - 84 тыс., СОЭ 80 мм/ч. Heart rate - 94/min, respiratory rate 26/min. Laboratory parameters of the complete blood count: Hb - 27 g/l, c.p - 0.80, erythrocytes 0.9×10 12 /l, lymphocytes 73.7%, monocytes 15.9%, leukocytes 20.9×10 9 /l, platelets - 84 thousand, ESR 80 mm/h.
Пациенту был осуществлен забор крови из локтевой вены в одну пробирку для получения сыворотки крови человека и параллельно для посева крови в два флакона для гемокультивирования аэробной и анаэробной микрофлоры, которые поместили в анализатор до ожидания сигнала роста.The patient's blood was collected from the cubital vein into one test tube to obtain human blood serum and, in parallel, for blood seeding into two vials for hemoculture of aerobic and anaerobic microflora, which were placed in the analyzer until a growth signal was detected.
Параллельно определили в сыворотке крови: концентрацию ПКТ - 38,4 нг/мл, тест на эндотоксин - концентрация 0,28, концентрация (1-3)-β-D-глюкана - 186,3 пг/мл, концентрация маннанового антигена Candida spp. - 250 пг/мл.In parallel, the following were determined in the blood serum: PCT concentration - 38.4 ng/ml, endotoxin test - concentration 0.28, (1-3)-β-D-glucan concentration - 186.3 pg/ml, Candida spp. mannan antigen concentration - 250 pg/ml.
Констатировали наличие бактериально-грибковой инфекции. The presence of a bacterial-fungal infection was confirmed.
Дополнительно осуществили забор венозной крови во флакон с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов и поместили его в анализатор до ожидания сигнала роста.Additionally, venous blood was collected into a vial with a bacterial growth inhibitor for hemoculture of yeast fungi and placed in the analyzer until a growth signal was received.
Результат посева крови через 24 часа – отсутствие роста. Были назначены повторные посевы крови каждые 24 часа с целью получить гемокультуру. На эмперической терапии через 3 суток была отмечена положительная динамика. На 5 сутки концентрация ПКТ - 5,8 нг/мл, концентрация (1-3)-β-D-глюкана - 59 пг/мл.Blood culture results after 24 hours showed no growth. Repeat blood cultures were ordered every 24 hours to obtain a blood culture. Empirical therapy showed improvement after 3 days. On day 5, PCT levels were 5.8 ng/ml, and (1-3)-β-D-glucan levels were 59 pg/ml.
Данны способом был расчитан прогноз 120 пациентам.Using this method, the prognosis for 120 patients was calculated.
Технико-экономическая эффективность способа заключается в том, что применение в определенной последовательности комплекса биомаркеров: прокальцитонина, (1-3) - β-D-глюкана, маннанового антигена Candida и бактериального эндотоксина и флакона с ингибитором бактериального роста для гемокультивирования дрожжевых грибов позволяет диагностировать бактериальные и грибковые инфекции кровотока.The technical and economic efficiency of the method lies in the fact that the use of a complex of biomarkers in a certain sequence: procalcitonin, (1-3) - β-D-glucan, Candida mannan antigen and bacterial endotoxin and a vial with a bacterial growth inhibitor for hemoculture of yeast fungi allows for the diagnosis of bacterial and fungal infections of the bloodstream.
Claims (1)
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2847711C1 true RU2847711C1 (en) | 2025-10-15 |
Family
ID=
Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2647456C1 (en) * | 2017-04-10 | 2018-03-15 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for determination of etiology of fever of unknown origin cancer patients |
| WO2018141840A1 (en) * | 2017-02-02 | 2018-08-09 | B.R.A.H.M.S Gmbh | Proadm as marker indicating an adverse event |
| WO2019148206A1 (en) * | 2018-01-29 | 2019-08-01 | The Broad Institute, Inc. | Crispr effector system based diagnostics |
Patent Citations (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| WO2018141840A1 (en) * | 2017-02-02 | 2018-08-09 | B.R.A.H.M.S Gmbh | Proadm as marker indicating an adverse event |
| RU2647456C1 (en) * | 2017-04-10 | 2018-03-15 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Ростовский научно-исследовательский онкологический институт" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Method for determination of etiology of fever of unknown origin cancer patients |
| WO2019148206A1 (en) * | 2018-01-29 | 2019-08-01 | The Broad Institute, Inc. | Crispr effector system based diagnostics |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Кунцевалова О.Ю. и др. Комплексный подход к диагностике бактериальных и грибковых инфекций кровотока у пациентов онкологического профиля. Южно-российский онкологический журнал. 2020, 1(4), стр.15-21. Блохина Е.В. Кандидемии при гемобластозах. Диссертация. Москва 2015, стр.1-130. MARTINI A. et al. Procalcitonin levels in surgical patients at risk of candidemia. J Infect. 2010, 60(6), p.425-430. DOBIAS R. et al. Combined use of presepsin and (1,3)-β-D-glucan as biomarkers for diagnosing Candida sepsis and monitoring the effectiveness of treatment in critically ill patients. J Fungi (Basel). 2022, 8(3):308. WHITE S.K. et al. (1-3)-β-D-glucan testing for the detection of invasive fungal infections in immunocompromised or critically ill people. Cochrane Database Syst Rev. 2020, 7(7):CD009833. CORTEGIANI A. et al. Procalcitonin levels in candidemia versus bacteremia: a systematic review. Crit Care. 2019, 23(1):190. * |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Kayalp et al. | Can routine automated urinalysis reduce culture requests? | |
| Rohner et al. | Etiological agents of infectious diarrhea: implications for requests for microbial culture | |
| Barrett | Intestinal spirochaetes in a Gulf Arab population | |
| US20110151503A1 (en) | Device and method for bacteriological testing on plasma | |
| Watkin et al. | The microbial diagnosis of infective endocarditis | |
| WO1996028570A1 (en) | A rapid method of and diagnostic kit for the detection of microorganisms | |
| RU2847711C1 (en) | Method for diagnosing bacterial and fungal infections of the bloodstream | |
| Al-Daghistani et al. | Diagnostic value of various urine tests in the Jordanian population with urinary tract infection | |
| FI91888C (en) | Method for the enumeration and detection of mycoplasma bacteria | |
| Jha et al. | Multistix 10 SG leukocyte esterage dipstick testing in rapid bedside diagnosis of spontaneous bacterial peritonitis: A prospective study | |
| Peretz et al. | BACTEC™ FX system as a tool for culturing gastric biopsies and Helicobacter pylori diagnosis | |
| Rub et al. | Role of microbiological tests and biomarkers in antibiotic stewardship | |
| CN103196906B (en) | Method for detecting specificity of candida albicans in clinical specimen | |
| Yatoo et al. | Diagnostic Techniques in Goats | |
| RU2840800C1 (en) | Method for quantitative assessment of lytic activity of bacteriophages | |
| Yar et al. | Diagnosis of trichomoniasis in male patients on performing nested polymerase chain reaction | |
| JPH0961428A (en) | Method for judging removal of helicobacter pylori based on change rate of pepsinogen i/ii ratio | |
| RU2823995C1 (en) | Diagnostic technique for bacterial abdominal surgical infection in appendicitis | |
| RU2288274C1 (en) | Method for assay of sugar inhibitory capacity degree on adhesion process of cholera vibrio | |
| RU2821994C1 (en) | Method for determining antibiotic resistance index of bacteria of genus desulfovibrio species | |
| RU2117295C1 (en) | Method of diagnosis of septic states | |
| Kansak et al. | Comparison of intra-assay and inter-assay reproducibility and positive detection times of two different (BacT/Alert 3D and Autobio BC) commercial blood culture systems | |
| RU2602697C1 (en) | Method of digestive tract microbiota condition evaluating in adolescents of 14-18 years old by oral fluid microflora | |
| RU2332671C2 (en) | Method of chronic urogenital gonococcal infection course forecast | |
| RU2666257C1 (en) | Method for determining sensitivity of bacterial hemocultures to antibiotics |