[go: up one dir, main page]

RU2844007C2 - Improved biocatalyst recombinant escherichia coli bacteria strain which synthesises nitrilase enzyme from achromobacter denitrificans - Google Patents

Improved biocatalyst recombinant escherichia coli bacteria strain which synthesises nitrilase enzyme from achromobacter denitrificans

Info

Publication number
RU2844007C2
RU2844007C2 RU2023134245A RU2023134245A RU2844007C2 RU 2844007 C2 RU2844007 C2 RU 2844007C2 RU 2023134245 A RU2023134245 A RU 2023134245A RU 2023134245 A RU2023134245 A RU 2023134245A RU 2844007 C2 RU2844007 C2 RU 2844007C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
escherichia coli
nitrilase
vkpm
insdqualifier
Prior art date
Application number
RU2023134245A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2023134245A (en
Inventor
Андрей Дмитриевич Новиков
Константин Валерьевич Лавров
Александр Степанович Яненко
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт"
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт"
Publication of RU2023134245A publication Critical patent/RU2023134245A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2844007C2 publication Critical patent/RU2844007C2/en

Links

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: disclosed is a recombinant Escherichia coli bacteria strain VKPM V-14588 – a biocatalyst with nitrilase activity, which produces the nitrilase enzyme, obtained by the transformation of the strain Escherichia coli VKPM V-10189 with the plasmid pNit31, shown in the drawing and bearing the nitrilase gene with the sequence SEQ ID 01.
EFFECT: invention provides production of nitrilase with high activity.
1 cl, 1 dwg, 3 ex

Description

Область техникиField of technology

Изобретение относится к биотехнологии и касается рекомбинантного штамма Escherichia coli, являющегося штаммом-биокатализатором, продуцирующим фермент нитрилазу, катализирующую прямой гидролиз нитрилов карбоновых кислот в соответствующие кислоты, в частности в акриловую кислоту в форме акрилата аммония.The invention relates to biotechnology and concerns a recombinant strain of Escherichia coli , which is a biocatalyst strain producing a nitrilase enzyme that catalyzes the direct hydrolysis of carboxylic acid nitriles into corresponding acids, in particular acrylic acid in the form of ammonium acrylate.

Уровень техникиState of the art

В последние годы развитие технологии производства полимеров привело к резкому росту потребности в мономерах, включая акриловую кислоту и ее производные. Известным способом получения акриловой кислоты является парофазное окисление пропилена. К недостаткам этого способа следует отнести жесткие условия проведения процесса (высокая температура и давление), использование взрывоопасного сырья (пропилен), склонность продуктов к спонтанной взрывной полимеризации и, как следствие, высокая стоимость транспортировки в специальных контейнерах, а также необходимость добавления ингибиторов полимеризации к продукту. Концентрированные растворы акриловой кислоты высокотоксичны для человека, а для использования в приготовлении водорастворимых полимеров необходимы дополнительные операции разбавления водой, связанные с опасностью для персонала. Альтернативой такого способа является использование микроорганизмов для приготовления водных растворов акрилата. Один из вариантов - представляет собой производство акрилатов путем ферментации сахара (US 2016017382), а другой - производство акрилатов путем биокатализа (RU 2731289). Преимущество этих способов состоит в мягких условиях процессов, проводимых при околокомнатных температурах, атмосферном давлении, и в водной среде. Недостатком способа ферментации являются низкая концентрация образующихся акрилатных растворов и высокая степень их контаминации продуктами жизнедеятельности микроорганизмов. Биокаталитический способ имеет следующие преимущества: дает возможность получать водные растворы достаточной концентрированности (20-30%) для прямого использования при получении водорастворимых полимеров и обеспечивает чистоту получаемого продукта.In recent years, the development of polymer production technology has led to a sharp increase in the demand for monomers, including acrylic acid and its derivatives. A well-known method for producing acrylic acid is vapor-phase oxidation of propylene. The disadvantages of this method include harsh process conditions (high temperature and pressure), the use of explosive raw materials (propylene), the tendency of products to spontaneous explosive polymerization and, as a result, the high cost of transportation in special containers, as well as the need to add polymerization inhibitors to the product. Concentrated solutions of acrylic acid are highly toxic to humans, and for use in the preparation of water-soluble polymers, additional dilution operations with water are necessary, associated with a hazard to personnel. An alternative to this method is the use of microorganisms to prepare aqueous solutions of acrylate. One option is the production of acrylates by sugar fermentation (US 2016017382), and the other is the production of acrylates by biocatalysis (RU 2731289). The advantage of these methods is the mild conditions of the processes carried out at room temperature, atmospheric pressure, and in an aqueous environment. The disadvantage of the fermentation method is the low concentration of the resulting acrylate solutions and the high degree of their contamination with the products of the vital activity of microorganisms. The biocatalytic method has the following advantages: it makes it possible to obtain aqueous solutions of sufficient concentration (20-30%) for direct use in the production of water-soluble polymers and ensures the purity of the resulting product.

В качестве известного аналога заявляемого штамма можно рассматривать рекомбинантный штамм-биокатализатор Rhodococcus rhodochrous ВКПМ АС-2111, синтезирующий фермент нитрилазу, с активностью нитрилазы 6,5 ед./мг с/в (ед./мг сухого веса) клеток (RU 2731289).As a known analogue of the claimed strain, one can consider the recombinant biocatalyst strain Rhodococcus rhodochrous VKPM AC-2111, which synthesizes the nitrilase enzyme, with a nitrilase activity of 6.5 units/mg d/w (units/mg dry weight) of cells (RU 2731289).

Раскрытие сущности изобретенияDisclosure of the essence of the invention

Техническим результатом заявляемого изобретения является разработка штамма-биокатализатора, продуцирующего нитрилазу, отличающегося повышенной по сравнению с известным аналогом нитрилазной активностью.The technical result of the claimed invention is the development of a biocatalyst strain that produces nitrilase, which is distinguished by increased nitrilase activity compared to the known analogue.

Задача решена путем:The problem is solved by:

- конструирования рекомбинантного штамма бактерий Escherichia coli ВКПМ В-14588, обладающего повышенной по сравнению с известным аналогом нитрилазной активностью, полученного путем введения в штамм Escherichia coli BL21(DE3) В-10189 плазмиды, содержащей ген Nit из Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889 под контролем промотора бактериофага Т7.- construction of a recombinant strain of Escherichia coli bacteria VKPM B-14588, which has increased nitrilase activity compared to the known analogue, obtained by introducing into the Escherichia coli strain BL21(DE3) B-10189 a plasmid containing the Nit gene from Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 under the control of the T7 bacteriophage promoter.

Заявляемый штамм получен путем клонирования гена нитрилазы из штамма Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889 в составе плазмиды pLATE31, под контролем индуцибельного промотора бактериофага Т7; он является штаммом-биокатализатором, обладающим повышенной нитрилазной активностью по сравнению с известным аналогом.The claimed strain was obtained by cloning the nitrilase gene from the Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 strain as part of the pLATE31 plasmid, under the control of the inducible promoter of the T7 bacteriophage; it is a biocatalyst strain with increased nitrilase activity compared to the known analogue.

Заявляемый штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) и имеет регистрационный номер Escherichia coli ВКПМ В-14588.The claimed strain is deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) and has the registration number Escherichia coli VKPM B-14588.

Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189, в который трансформирована плазмида pNit31 с геном нитрилазы из Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889, приобретает нитрилазную активность. При добавлении водных растворов нитрилов к суспензии клеток Escherichia coli ВКПМ В-14588, происходит синтез органических кислот в виде аммонийных солей, в частности, акриловой кислоты в виде акрилата аммония.The strain Escherichia coli VKPM B-10189, into which the plasmid pNit31 with the nitrilase gene from Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 is transformed, acquires nitrilase activity. When aqueous solutions of nitriles are added to the suspension of Escherichia coli VKPM B-14588 cells, organic acids are synthesized in the form of ammonium salts, in particular, acrylic acid in the form of ammonium acrylate.

Краткое описание чертежейBrief description of the drawings

На чертеже показана схема строения плазмиды pNit31, используемой для получения заявляемого штамма. Условные обозначения: Nit - ген нитрилазы Nit; Т7 promoter - промотор фага Т7; Т7 terminator - терминатор транскрипции фага Т7; lad - ген Lac репрессора; ori - репликативные гены плазмиды; AmpR-ген устойчивости к ампициллину.The drawing shows the structure of the pNit31 plasmid used to obtain the claimed strain. Legend: Nit - Nit nitrilase gene; T7 promoter - phage T7 promoter; T7 terminator - phage T7 transcription terminator; lad - Lac repressor gene; ori - plasmid replicative genes; AmpR - ampicillin resistance gene.

Детальные пояснения по получению и применению плазмиды приведены в примерах.Detailed explanations on obtaining and using the plasmid are given in the examples.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Микробиологическая характеристика заявляемого штамма Escherichia coli ВКПМ В-14588 Microbiological characteristics of the claimed strain of Escherichia coli VKPM B-14588

Штамм Escherichia coli ВКПМ В-14588 обладает следующими морфологическими и культуральными свойствами. Культура состоит из грамотрицательных, факультативно анаэробных палочковидных подвижных клеток, размером 0,4-0,8×1-3 мкм. Реакция Фогес-Проскауэра отрицательная, реакция с метиловым красным положительная. Культура не образует H2S и не гидролизует мочевину. Штамм является оксидазоотрицательным и каталазоположительным. Клетки хорошо растут на простых богатых питательных средах, например LB и МПА (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984). Оптимальная температура роста 37°С, оптимальный рН 7,2. На плотных питательных средах, например МПА, LB (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984) образует беловатые блестящие колонии, размером 2-3 мм, края ровные, спор не образует. Штамм Escherichia coli ВКПМ В-14588 содержит маркер устойчивости к ампициллину. The Escherichia coli strain VKPM B-14588 has the following morphological and cultural properties. The culture consists of gram-negative, facultatively anaerobic rod-shaped motile cells, 0.4-0.8 × 1-3 μm in size. The Voges-Proskauer reaction is negative, the reaction with methyl red is positive. The culture does not form H 2 S and does not hydrolyze urea. The strain is oxidase-negative and catalase-positive. The cells grow well on simple rich nutrient media, such as LB and MPA (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984). The optimum growth temperature is 37°C, the optimum pH is 7.2. On dense nutrient media, such as MPA, LB (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984) it forms whitish shiny colonies, 2-3 mm in size, with smooth edges, and does not form spores. The strain Escherichia coli VKPM B-14588 contains a marker of resistance to ampicillin.

Микробиологическая характеристика штамма Escherichia coli ВКПМ В-10189, используемого для получения заявляемого штаммаMicrobiological characteristics of the Escherichia coli strain VKPM B-10189 used to obtain the claimed strain

Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189 обладает следующими морфологическими и культуральными свойствами. Культура состоит из грамотрицательных, факультативно анаэробных палочковидных подвижных клеток, размером 0,4-0,8×1-3 мкм. Реакция Фогес-Проскауэра отрицательная, реакция с метиловым красным положительная. Культура не образует H2S и не гидролизует мочевину. Штамм является оксидазоотрицательным и каталазоположительным. Клетки хорошо растут на простых богатых питательных средах, например LB и МПА (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984). Оптимальная температура роста 37°С, оптимальный рН 7,2. На плотных питательных средах, например МПА, LB (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984) образует беловатые блестящие колонии, размером 2-3 мм, края ровные, спор не образует. Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189 содержит ген РНК полимеразы из бактериофага Т7 под контролем lac промотора. Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189 дефектен по наличию Lon и OmpT протеазам и Dcm метилазе. Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189 является λDE3 лизогеном. Штамм Escherichia coli ВКПМ В-10189 не несет маркеров антибиотикоустойчивости. The Escherichia coli strain VKPM B-10189 has the following morphological and cultural properties. The culture consists of gram-negative, facultatively anaerobic rod-shaped motile cells, 0.4-0.8 × 1-3 μm in size. The Voges-Proskauer reaction is negative, the reaction with methyl red is positive. The culture does not form H 2 S and does not hydrolyze urea. The strain is oxidase-negative and catalase-positive. The cells grow well on simple rich nutrient media, such as LB and MPA (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984). The optimum growth temperature is 37°C, the optimum pH is 7.2. On dense nutrient media, such as MPA, LB (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984) it forms whitish shiny colonies, 2-3 mm in size, with smooth edges, and does not form spores. The strain Escherichia coli VKPM B-10189 contains the gene for RNA polymerase from bacteriophage T7 under the control of the lac promoter. The strain Escherichia coli VKPM B-10189 is defective in the presence of Lon and OmpT proteases and Dcm methylase. The strain Escherichia coli VKPM B-10189 is a λDE3 lysogen. The strain Escherichia coli VKPM B-10189 does not carry markers of antibiotic resistance.

Микробиологическая характеристика штамма Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889, используемого для получения заявляемого штаммаMicrobiological characteristics of the strain Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 used to obtain the claimed strain

Штамм Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889 обладает следующими морфологическими и культуральными свойствами. Культура состоит из одиночных грамотрицательных, строго аэробных палочковидных подвижных клеток, с перитрихиальными жгутиками, размером 0,5-1×1-3 мкм. Индол не образует. Желатину не гидролизует. Штамм является оксидазоположительным и каталазоположительным. Клетки хорошо растут на простых богатых питательных средах, например LB и МПА (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984). Может использовать ацетат как источник углерода для роста. Оптимальная температура роста 30°С, оптимальный рН 7,2. На плотных питательных средах, например МПА, LB (Ф. Герхардт и др. Методы общей бактериологии в 3 т., Мир, 1984) образует беловатые блестящие колонии, размером 2-3 мм, края ровные, спор не образует. Штамм Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ В-13889 не содержит маркеров устойчивости к антибиотикам.The strain Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 has the following morphological and cultural properties. The culture consists of single gram-negative, strictly aerobic rod-shaped motile cells with peritrichous flagella, 0.5-1×1-3 μm in size. Does not form indole. Does not hydrolyze gelatin. The strain is oxidase-positive and catalase-positive. The cells grow well on simple rich nutrient media, such as LB and MPA (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984). Can use acetate as a carbon source for growth. The optimum growth temperature is 30°C, the optimum pH is 7.2. On dense nutrient media, such as MPA, LB (F. Gerhardt et al. Methods of General Bacteriology in 3 volumes, Mir, 1984) it forms whitish shiny colonies, 2-3 mm in size, with smooth edges, and does not form spores. The strain Achromobacter denitrificans C-32 VKPM B-13889 does not contain markers of resistance to antibiotics.

Для получения клеток штамма-биокатализатора Escherichia coli ВКПМ В-14588, содержащего ген нитрилазы, штамм выращивают при 37°С в течение 2-5 часов до оптической плотности ОП600-0,6 на полноценных (LB) либо синтетических средах, содержащих в качестве источника углерода глюкозу или ацетат в концентрациях 0.1-4%, а в качестве источника азота соединения аммония, нитраты или дрожжевой экстракт в концентрациях 0.4-2%. По достижении оптической плотности ОП600 - 0,6 в среду добавляют индуктор ИПТГ (изопропилтиогалактозид) до конечной концентрации 2 мМ и продолжают культивирование при 18-22°С в течение 2-8 часов.To obtain cells of the Escherichia coli VKPM B-14588 biocatalyst strain containing the nitrilase gene, the strain is grown at 37°C for 2-5 hours to an optical density OD 600 of -0.6 on complete (LB) or synthetic media containing glucose or acetate at concentrations of 0.1-4% as a carbon source and ammonium compounds, nitrates, or yeast extract at concentrations of 0.4-2% as a nitrogen source. Upon reaching an optical density OD 600 of -0.6, the inducer IPTG (isopropylthiogalactoside) is added to the medium to a final concentration of 2 mM and cultivation is continued at 18-22°C for 2-8 hours.

Полученные клетки отделяют от культуральной жидкости центрифугированием при 5-16 тыс. об/мин, ресуспендируют в 10 мМ фосфатном буфере рН 7,0-8,0 до концентрации 20-40 г по сухой массе/л и хранят в таком виде при 4°С или отделяют клетки центрифугированием при 4-16 тыс. об/мин, полученный осадок клеток хранят в виде пасты при минус 18°С.The obtained cells are separated from the culture fluid by centrifugation at 5-16 thousand rpm, resuspended in 10 mM phosphate buffer pH 7.0-8.0 to a concentration of 20-40 g dry weight/l and stored in this form at 4°C or the cells are separated by centrifugation at 4-16 thousand rpm, the resulting cell sediment is stored as a paste at minus 18°C.

Ферментативную активность клеток определяют с использованием в качестве субстрата нитрила акриловой кислоты, по следующей методике: 1 мл клеточной суспензии смешивают с акрилонитрилом (до конечной концентрации 20,0 г/л) в герметичных пластиковых пробирках, помещают пробирки в водяную баню с температурой 20°С и термостатируют их в течении 10 мин. Трансформацию проводят при постоянном перемешивании. Реакцию останавливают внесением в реакционную смесь 6 Н HCl в объеме 0,05 мл. Бактериальные клетки отделяют центрифугированием. Концентрацию акриловой кислоты в надосадочной жидкости рассчитывают по количеству образовавшегося аммония, который определяют спектрофотометрическим методом с помощью реагента Несслера. За единицу удельной нитрилазной активности принимают количество фермента, катализирующего образование 1 мкмоль акрилата аммония в минуту.The enzymatic activity of cells is determined using acrylonitrile as a substrate, according to the following procedure: 1 ml of the cell suspension is mixed with acrylonitrile (to a final concentration of 20.0 g/l) in sealed plastic test tubes, the test tubes are placed in a water bath at a temperature of 20°C and thermostatted for 10 min. Transformation is carried out with constant stirring. The reaction is stopped by adding 0.05 ml of 6 N HCl to the reaction mixture. Bacterial cells are separated by centrifugation. The concentration of acrylic acid in the supernatant is calculated based on the amount of formed ammonium, which is determined spectrophotometrically using Nessler's reagent. The amount of enzyme catalyzing the formation of 1 μmol of ammonium acrylate per minute is taken as a unit of specific nitrilase activity.

Изобретение проиллюстрировано следующими примерами.The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. Конструирование плазмиды, содержащей ген нитрилазы из Achromobacter denitrificans С-32 под контролем промотора бактериофагаExample 1. Construction of a plasmid containing the nitrilase gene from Achromobacter denitrificans C-32 under the control of a bacteriophage promoter

Гибридную плазмиду, содержащую ген нитрилазы Nit под контролем промотора бактериофага Т7, получают путем встраивания фрагментов, содержащих ген Nit (1110 п.о.) в правильной ориентации в плазмиду pLATE31, согласно общепринятым методикам (J. Sambrook, E.F. Fritsch, Т. Maniatis, Molecular cloning: A laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Pr., 1989). 1147 п. о. фрагмент, содержащий ген Nit, получен с помощью ПЦР, при использовании в качестве матрицы геномной ДНК штамма Achromobacter denitrificans С-32 ВКПМ АС-13889 и праймеров F-nit (5'-gtggtggtgatggtgatggcc ctactttgctgggaccggttctt-3'), R-nit (5'-aagaaccggtcccagc aaagtagggccatcaccatcaccaccac-3'), структура которых расчитана на основе сиквенса SEQ ID N1.A hybrid plasmid containing the Nit nitrilase gene under the control of the T7 bacteriophage promoter was obtained by inserting fragments containing the Nit gene (1110 bp) in the correct orientation into the pLATE31 plasmid, according to generally accepted methods (J. Sambrook, EF Fritsch, T. Maniatis, Molecular cloning: A laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Pr., 1989). 1147 bp. the fragment containing the Nit gene was obtained by PCR using the genomic DNA of the Achromobacter denitrificans strain C-32 VKPM AC-13889 as a template and primers F-nit (5'-gtggtggtgatggtgatggcc ctactttgctgggaccggttctt-3'), R-nit (5'-aagaaccggtcccagc aaagtagggccatcaccatcaccaccac-3'), the structure of which was calculated based on the sequence SEQ ID N1.

Гибридную плазмиду целевой конструкции отбирают в клетках Е. coli XL 1-Blue среди клонов. Структуру плазмиды подтверждают секвенированием. Один из вариантов гибридной плазмиды, содержащий ген нитрилазы под контролем промотора фага Т7, обозначен как pNit31.The hybrid plasmid of the target construct is selected in E. coli XL 1-Blue cells among clones. The plasmid structure is confirmed by sequencing. One of the hybrid plasmid variants, containing the nitrilase gene under the control of the T7 phage promoter, is designated as pNit31.

Пример 2. Конструирование заявляемого штаммаExample 2. Construction of the claimed strain

Заявляемый штамм Escherichia coli ВКПМ В-14588 получен путем введения ДНК плазмиды р Nit31, изолированной из клеток Е. coli XL 1-Blue (pNit31), в клетки E.coli BL21 (DE3) с помощью электропорации. Среди трансформантов, выросших на среде LB с ампициллином и ИПТГ (изопропилтиогалактозид), обнаружен клон, проявляющий максимальную нитрилазную активность при культивировании в пробирках на среде следующего состава (г/л воды деионизированной): Na2HPO4*12H2O - 15,0; KH2PO4 - 2,0; CH3COONa - 7; Дрожжевой экстракт - 20; MgSO4*7H2O - 0,25; фумарат натрия - 3, рН - 6,5-7,0 (далее среда МФС).The claimed strain of Escherichia coli VKPM B-14588 was obtained by introducing DNA of plasmid p Nit31, isolated from E. coli XL 1-Blue cells (pNit31), into E. coli BL21 (DE3) cells using electroporation. Among the transformants grown on LB medium with ampicillin and IPTG (isopropylthiogalactoside), a clone was found that exhibited maximum nitrilase activity when cultivated in test tubes on a medium of the following composition (g/l deionized water): Na 2 HPO 4 *12H 2 O - 15.0; KH 2 PO 4 - 2.0; CH 3 COONa - 7; Yeast extract - 20; MgSO 4 *7H 2 O - 0.25; sodium fumarate - 3, pH - 6.5-7.0 (hereinafter referred to as the MFS medium).

Этот клон депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) как штамм Escherichia coli ВКПМ В-14588.This clone is deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) as the Escherichia coli strain VKPM B-14588.

Пример 3. Наработка биомассы заявляемого штамма и определение активностиExample 3. Production of biomass of the claimed strain and determination of activity

Наработку биомассы Escherichia coli ВКПМ В-14588 осуществляют в 750 мл колбах, содержащих 100 мл среды МФС, в которые вносят по 2 мл культуры, предварительно выращенной на среде LB, содержащей 100 мг/мл ампициллина, в течение ночи при 37°С. Колбы культивируют при 37°С до оптической плотности культуры равной 0,6, добавляют ИПТГ (изопропилтиогалактозид) до 2 мМ, затем снижают температуру до 22°С и продолжают культивирование в течении 8 часов с постоянным перемешиванием. Затем биомассу штамма Escherichia coli ВКПМ В-14588 отделяют центрифугированием при 5 тыс. об/мин и полученную клеточную суспензию хранят при +4°С.The biomass of Escherichia coli VKPM B-14588 is produced in 750 ml flasks containing 100 ml of MFS medium, into which 2 ml of the culture, previously grown on LB medium containing 100 mg/ml ampicillin, are added overnight at 37°C. The flasks are cultured at 37°C until the optical density of the culture is 0.6, IPTG (isopropylthiogalactoside) is added to 2 mM, then the temperature is reduced to 22°C and the cultivation is continued for 8 hours with constant stirring. Then the biomass of the Escherichia coli VKPM B-14588 strain is separated by centrifugation at 5 thousand rpm and the resulting cell suspension is stored at +4°C.

Ферментативную активность клеток определяют с использованием в качестве субстрата нитрила акриловой кислоты. Один миллилитр клеточной суспензии смешивают с акрилонитрилом (до конечной концентрации акрилонитрила 20,0 г/л) в герметичных пластиковых пробирках, помещают пробирки в водяную баню с температурой 20°С и термостатируют их в течении 10 мин. Трансформацию проводят при постоянном перемешивании. Реакцию останавливают внесением в реакционную смесь 6 Н HCl в объеме 0,05 мл. Бактериальные клетки отделяют центрифугированием. Концентрацию акриловой кислоты в надосадочной жидкости рассчитывают по количеству образовавшегося аммония, который определяют спектрофотометрическим методом с помощью реагента Несслера. За единицу удельной нитрилазной активности принимают количество фермента, катализирующего образование 1 мкмоль акрилата аммония в минуту.The enzymatic activity of cells is determined using acrylonitrile as a substrate. One milliliter of cell suspension is mixed with acrylonitrile (to a final acrylonitrile concentration of 20.0 g/l) in sealed plastic test tubes, the test tubes are placed in a water bath at 20°C and thermostatted for 10 min. Transformation is carried out with constant stirring. The reaction is stopped by adding 0.05 ml of 6 N HCl to the reaction mixture. Bacterial cells are separated by centrifugation. The concentration of acrylic acid in the supernatant is calculated based on the amount of formed ammonium, which is determined spectrophotometrically using Nessler's reagent. The amount of enzyme catalyzing the formation of 1 μmol of ammonium acrylate per minute is taken as a unit of specific nitrilase activity.

Нитрилазная активность клеток Escherichia coli ВКПМ В-14588 составляет 30 ед.The nitrilase activity of Escherichia coli VKPM B-14588 cells is 30 units.

Таким образом, заявляемый улучшенный штамм-биокатализатор, разработанный с использованием заявляемого штамма Escherichia coli ВКПМ В-14588, обеспечивает более эффективное получение карбоновых кислот, в частности акриловой кислоты. Такой результат достигают за счет более высокой нитрилазной активности заявляемого штамма - биокатализатора (30 ед./мг с/в клеток) в отличие от известного штамма (6,5 ед./мг с.в клеток).Thus, the claimed improved biocatalyst strain, developed using the claimed Escherichia coli strain VKPM B-14588, ensures more efficient production of carboxylic acids, in particular acrylic acid. This result is achieved due to the higher nitrilase activity of the claimed biocatalyst strain (30 units/mg d.v. cells) in contrast to the known strain (6.5 units/mg d.v. cells).

--->--->

<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?><?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>

<!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing <!DOCTYPE ST26SequenceListing PUBLIC "-//WIPO//DTD Sequence Listing

1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">1.3//EN" "ST26SequenceListing_V1_3.dtd">

<ST26SequenceListing originalFreeTextLanguageCode="ru" <ST26SequenceListing originalFreeTextLanguageCode="en"

nonEnglishFreeTextLanguageCode="ru" dtdVersion="V1_3" fileName="Nit1 nonEnglishFreeTextLanguageCode="ru" dtdVersion="V1_3" fileName="Nit1

Ecoli.xml" softwareName="WIPO Sequence" softwareVersion="2.3.0" Ecoli.xml" softwareName="WIPO Sequence" softwareVersion="2.3.0"

productionDate="2023-10-12">productionDate="2023-10-12">

<ApplicationIdentification><ApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode> <IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText></ApplicationNumberText> <ApplicationNumberText></ApplicationNumberText>

<FilingDate>2023-10-01</FilingDate> <FilingDate>2023-10-01</FilingDate>

</ApplicationIdentification></ApplicationIdentification>

<ApplicantFileReference>N</ApplicantFileReference> <ApplicantFileReference>N</ApplicantFileReference>

<EarliestPriorityApplicationIdentification> <EarliestPriorityApplicationIdentification>

<IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode> <IPOfficeCode>RU</IPOfficeCode>

<ApplicationNumberText>1</ApplicationNumberText> <ApplicationNumberText>1</ApplicationNumberText>

<FilingDate>2023-10-01</FilingDate> <FilingDate>2023-10-01</FilingDate>

</EarliestPriorityApplicationIdentification> </EarliestPriorityApplicationIdentification>

<ApplicantName languageCode="ru">Федеральное государственное <ApplicantName languageCode="ru">Federal State

бюджетное учреждение &quot;Национальный исследовательский центр budgetary institution "National Research Center"

&quot;Курчатовский институт&quot; (НИЦ «Курчатовский &quot;Kurchatov Institute&quot; (National Research Center "Kurchatovsky

институт»)</ApplicantName>Institute")</ApplicantName>

<ApplicantNameLatin>National Research Center &quot;Kurchatov <ApplicantNameLatin>National Research Center &quot;Kurchatov

Institute&quot; (NRC &quot;Kurchatov Institute&quot; (NRC &quot;Kurchatov

Institute&quot;)</ApplicantNameLatin>Institute&quot;)</ApplicantNameLatin>

<InventionTitle languageCode="ru">Рекомбинантный штамм бактерий <InventionTitle languageCode="en">Recombinant bacterial strain

Escherichia coli – улучшенный биокатализатор, синтезирующий фермент Escherichia coli - an improved enzyme-synthesizing biocatalyst

нитрилазу из Achromobacter denitrificans</InventionTitle>nitrilase from Achromobacter denitrificans</InventionTitle>

<SequenceTotalQuantity>2</SequenceTotalQuantity> <SequenceTotalQuantity>2</SequenceTotalQuantity>

<SequenceData sequenceIDNumber="1"> <SequenceData sequenceIDNumber="1">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>1147</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>1147</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>DNA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..1147</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..1147</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>genomic DNA</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>genomic DNA</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q3"><INSDQualifier id="q3">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Achromobacter <INSDQualifier_value>Achromobacter

denitrificans</INSDQualifier_value>denitrificans</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>CDS</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>CDS</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>17..1126</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>17..1126</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>protein_id</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>protein_id</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>2</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>2</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>translation</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>translation</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>MVSYNSKFLAATVQAEPVWLDADATIDKSIGIIEEAAQKGAS <INSDQualifier_value>MVSYNSKFLAATVQAEPVWLDADATIDKSIGIIEEAAQKGAS

LIAFPEVFIPGFPYWAWLGDVKYSLSFTSRYHENSLELGDDRMRRLQLAARRNKIALVMGYSEREAGSRYLIAFPEVFIPGFPYWAWLGDVKYSLSFTSRYHENSLELGDDRMRRLQLAARRNKIALVMGYSEREAGSRY

MSQVFIDERGEIVANRRKLKPTHVERTIYGEGNGTDFLTHDFAFGRVGGLNCWEHFQPLSKFMMYSLGEQMSQVFIDERGEIVANRRKLKPTHVERTIYGEGNGTDFLTHDFAFGRVGGLNCWEHFQPLSKFMMYSLGEQ

VHVASWPAMFALQPDVFQLSIEANATVTRSYAIEGQTFVLCSTQVIGPSAIETFCLNDEQRALLPQGCGWVHVASWPAMFALQPDVFQLSIEANATVTRSYAIEGQTFVLCSTQVIGPSAIETFCLNDEQRALLPQGCGW

ARIYGPDGSELAKPLAEDAEGILYAEIDLEQILLAKAGADPVGHYSRPDVLSVQFDPRNHTPVHRIGIDGARIYGPDGSELAKPLAEDAEGILYAEIDLEQILLAKAGADPVGHYSRPDVLSVQFDPRNHTPVHRIGIDG

RLDVNTRSRVENFRLRQAAEQERQASKRLGTKLFEQSLLAEEPVPAK</INSDQualifier_value>RLDVNTRSRVENFRLRQAAEQERQASKRLGTKLFEQSLLAEEPVPAK</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>agaaggagatataactatggtttcgtataacagcaagttcctcgcggca <INSDSeq_sequence>agaaggagatataactatggtttcgtataacagcaagttcctcgcggca

accgttcaggcagagccggtatggctcgacgcagacgcaacgatcgacaagtcgatcggcatcatcgaagaccgttcaggcagagccggtatggctcgacgcagacgcaacgatcgacaagtcgatcggcatcatcgaag

aagctgcccaaaagggcgcgagtctgatcgctttcccggaagtattcattccgggcttcccctattgggcaagctgcccaaaagggcgcgagtctgatcgctttcccggaagtattcattccgggcttcccctattgggc

gtggctcggcgacgtgaagtacagcctaagctttacttcacgctatcacgagaattcgttggagctaggtgtggctcggcgacgtgaagtacagcctaagctttacttcacgctatcacgagaattcgttggagctaggt

gacgaccgtatgcgtcgcctccagctggccgcgcgccgcaacaaaatcgcactcgtcatgggctattcgggacgaccgtatgcgtcgcctccagctggccgcgcgccgcaacaaaatcgcactcgtcatgggctattcgg

agcgggaagccggatcgcgctatatgagccaggtgttcatcgacgagcgtggcgagatcgttgccaatcgagcgggaagccggatcgcgctatatgagccaggtgttcatcgacgagcgtggcgagatcgttgccaatcg

gcgcaagctgaagcccacacacgttgagcgtacgatctacggcgaaggcaacggaaccgatttcctcacggcgcaagctgaagcccacacacgttgagcgtacgatctacggcgaaggcaacggaaccgatttcctcacg

cacgacttcgcgttcggacgcgtcggtggattgaactgctgggaacatttccaaccgctcagcaagttcacacgacttcgcgttcggacgcgtcggtggattgaactgctgggaacatttccaaccgctcagcaagttca

tgatgtacagcctcggtgagcaggtccacgttgcatcgtggccggcgatgttcgctcttcagccggatgttgatgtacagcctcggtgagcaggtccacgttgcatcgtggccggcgatgttcgctcttcagccggatgt

tttccaactgagcatcgaagccaacgcgacggtcacccgctcgtacgcaatcgaaggccaaacctttgtgtttccaactgagcatcgaagccaacgcgacggtcacccgctcgtacgcaatcgaaggccaaacctttgtg

ctttgctcgacgcaggtgatcggacctagcgcgatcgaaacgttctgcctcaacgacgaacagcgcgcacctttgctcgacgcaggtgatcggacctagcgcgatcgaaacgttctgcctcaacgacgaacagcgcgcac

tgttgccgcaaggatgtggctgggcgcgcatttacggcccggatggaagcgagcttgcgaagcctctggctgttgccgcaaggatgtggctgggcgcgcatttacggcccggatggaagcgagcttgcgaagcctctggc

ggaagatgctgaggggatcttgtacgcagagatcgatctggagcagattctgctggcgaaggctggagccggaagatgctgaggggatcttgtacgcagagatcgatctggagcagattctctgctggcgaaggctggagcc

gatccggtcgggcactattcgcggcctgacgtgctgtcggtccagttcgacccgcgcaatcatacgccaggatccggtcgggcactattcgcggcctgacgtgctgtcggtccagttcgacccgcgcaatcatacgccag

ttcatcgcatcggcattgacggtcgcttggatgtgaatacccgcagtcgcgtggagaatttccgactgcgttcatcgcatcggcattgacggtcgcttggatgtgaatacccgcagtcgcgtggagaatttccgactgcg

acaagcggctgagcaggagcgtcaggcatccaagcggctcggaacgaaactctttgaacaatcccttctgacaagcggctgagcaggagcgtcaggcatccaagcggctcggaacgaaactcttttgaacaatcccttctg

gctgaagaaccggtcccagcaaagtagggccatcaccatcaccaccac</INSDSeq_sequence>gctgaagaaccggtcccagcaaagtagggccatcaccatcaccaccac</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

<SequenceData sequenceIDNumber="2"> <SequenceData sequenceIDNumber="2">

<INSDSeq><INSDSeq>

<INSDSeq_length>369</INSDSeq_length> <INSDSeq_length>369</INSDSeq_length>

<INSDSeq_moltype>AA</INSDSeq_moltype> <INSDSeq_moltype>AA</INSDSeq_moltype>

<INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division> <INSDSeq_division>PAT</INSDSeq_division>

<INSDSeq_feature-table><INSDSeq_feature-table>

<INSDFeature><INSDFeature>

<INSDFeature_key>source</INSDFeature_key> <INSDFeature_key>source</INSDFeature_key>

<INSDFeature_location>1..369</INSDFeature_location> <INSDFeature_location>1..369</INSDFeature_location>

<INSDFeature_quals><INSDFeature_quals>

<INSDQualifier><INSDQualifier>

<INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>mol_type</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>protein</INSDQualifier_value> <INSDQualifier_value>protein</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

<INSDQualifier id="q5"><INSDQualifier id="q5">

<INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name> <INSDQualifier_name>organism</INSDQualifier_name>

<INSDQualifier_value>Achromobacter <INSDQualifier_value>Achromobacter

denitrificans</INSDQualifier_value>denitrificans</INSDQualifier_value>

</INSDQualifier></INSDQualifier>

</INSDFeature_quals></INSDFeature_quals>

</INSDFeature></INSDFeature>

</INSDSeq_feature-table></INSDSeq_feature-table>

<INSDSeq_sequence>MVSYNSKFLAATVQAEPVWLDADATIDKSIGIIEEAAQKGASLIAFPEV <INSDSeq_sequence>MVSYNSKFLAATVQAEPVWLDADATIDKSIGIIEEAAQKGASLIAFPEV

FIPGFPYWAWLGDVKYSLSFTSRYHENSLELGDDRMRRLQLAARRNKIALVMGYSEREAGSRYMSQVFIDFIPGFPYWAWLGDVKYSLSFTSRYHENSLELGDDRMRRLQLAARRNKIALVMGYSEREAGSRYMSQVFID

ERGEIVANRRKLKPTHVERTIYGEGNGTDFLTHDFAFGRVGGLNCWEHFQPLSKFMMYSLGEQVHVASWPERGEIVANRRKLKPTHVERTIYGEGNGTDFLTHDFAFGRVGGLNCWEHFQPLSKFMMYSLGEQVHVASWP

AMFALQPDVFQLSIEANATVTRSYAIEGQTFVLCSTQVIGPSAIETFCLNDEQRALLPQGCGWARIYGPDAMFALQPDVFQLSIEANATVTRSYAIEGQTFVLCSTQVIGPSAIETFCLNDEQRALLPQGCGWARIYGPD

GSELAKPLAEDAEGILYAEIDLEQILLAKAGADPVGHYSRPDVLSVQFDPRNHTPVHRIGIDGRLDVNTRGSELAKPLAEDAEGILYAEIDLEQILLAKAGADPVGHYSRPDVLSVQFDPRNHTPVHRIGIDGRLDVNTR

SRVENFRLRQAAEQERQASKRLGTKLFEQSLLAEEPVPAK</INSDSeq_sequence>SRVENFRLRQAAEQERQASKRLGTKLFEQSLLAEEPVPAK</INSDSeq_sequence>

</INSDSeq></INSDSeq>

</SequenceData></SequenceData>

</ST26SequenceListing></ST26SequenceListing>

<---<---

Claims (1)

Рекомбинантный штамм бактерий Escherichia coli ВКПМ В-14588 - биокатализатор с нитрилазной активностью, продуцирующий фермент нитрилазу, полученный трансформацией штамма Escherichia coli ВКПМ В-10189 плазмидой pNit31, изображенной на фиг.1 и несущей ген нитрилазы с последовательностью SEQ ID 01.The recombinant strain of Escherichia coli bacteria VKPM B-14588 is a biocatalyst with nitrilase activity, producing the nitrilase enzyme obtained by transforming the strain of Escherichia coli VKPM B-10189 with the plasmid pNit31, shown in Fig. 1 and carrying the nitrilase gene with the sequence SEQ ID 01.
RU2023134245A 2023-12-21 Improved biocatalyst recombinant escherichia coli bacteria strain which synthesises nitrilase enzyme from achromobacter denitrificans RU2844007C2 (en)

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2023134245A RU2023134245A (en) 2025-06-23
RU2844007C2 true RU2844007C2 (en) 2025-07-23

Family

ID=

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2731289C2 (en) * 2018-12-13 2020-09-01 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ГосНИИгенетика) Method for constructing a biocatalyst strain based on bacteria of the genus rhodococcus, having nitrilase activity and high operational stability, recombinant strain of rhodococcus rhodochrous bacteria produced by such method, a method for synthesis of acrylic acid using this strain as a biocatalyst
RU2021101366A (en) * 2021-01-22 2022-07-22 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт") Recombinant bacterial strain of Escherichia coli - a producer of the nitrilase enzyme from Achromobacter denitrificans, a method for the synthesis of acrylic acid using this strain as a biocatalyst

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2731289C2 (en) * 2018-12-13 2020-09-01 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ГосНИИгенетика) Method for constructing a biocatalyst strain based on bacteria of the genus rhodococcus, having nitrilase activity and high operational stability, recombinant strain of rhodococcus rhodochrous bacteria produced by such method, a method for synthesis of acrylic acid using this strain as a biocatalyst
RU2021101366A (en) * 2021-01-22 2022-07-22 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Национальный исследовательский центр "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт") Recombinant bacterial strain of Escherichia coli - a producer of the nitrilase enzyme from Achromobacter denitrificans, a method for the synthesis of acrylic acid using this strain as a biocatalyst

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Achromobacter denitrificans strain C32 aliphatic regioselective nitrilase (nitC1) gene, complete cds. Найдено по адресу: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/nucleotide/KY020432.1?report=genbank&log$=nucltop&blast_rank=1&RID=H9RP5S7R016, Дата обращения 28.05.2024. ГЛИНСКИЙ С.А. и др. Сравнительный анализ штаммов, используемых в процессе получения акрилата аммония. Биотехнология, 2010, N1, с. 17-24. *
НОВИКОВ А.Д. и др. Бактериальный штамм Alcaligenes denitrificans С-32 содержит две нитрилазы с разной субстратной специфичностью. Биотехнология, 2016, т. 32, N6, с. 45-52. База данных GenBank: *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
WO2008143150A1 (en) Gene-disrupted strain, recombinant plasmid, transformant and method of producing 3-carboxymuconolactone
CN115786315A (en) Acylase, coding gene, engineering bacteria, and its application in hydrolysis and synthesis of N-fatty acylglutamic acid surfactant
JP3408737B2 (en) Protein involved in nitrile hydratase activation and gene encoding the same
CN104152500A (en) New method of biologically synthesizing (R)-3-hydroxylglutarate monoester
RU2546239C1 (en) RECOMBINANT STRAIN Escherichia coli, HAVING CONSTITUTIVE ASPARTASE ACTIVITY AND METHOD OF SYNTHESIS OF L-ASPARTIC ACID USING THIS STRAIN AS BIOCATALYST
RU2844007C2 (en) Improved biocatalyst recombinant escherichia coli bacteria strain which synthesises nitrilase enzyme from achromobacter denitrificans
CN100516197C (en) Process for producing d-n-carbamoyl-alpha-amino acids
CN113355299B (en) Ketoacid reductase, genes, engineered bacteria and their application in the synthesis of chiral aromatic 2-hydroxy acids
CN113930376A (en) A kind of engineering bacteria for catalyzing production of D-p-hydroxyphenylglycine, high-density culture method and catalytic production method
Lavrov et al. Optimization of the expression of nitrilase from Alcaligenes denitrificans in Rhodococcus rhodochrous to improve the efficiency of biocatalytic synthesis of ammonium acrylate
CN115851684B (en) Nitrilase and application thereof in methionine synthesis
Wang et al. Screening, cultivation, and biocatalytic performance of Rhodococcus boritolerans FW815 with strong 2, 2-dimethylcyclopropanecarbonitrile hydratase activity
JP7274913B2 (en) Liquid medium for culturing microorganisms and method for culturing microorganisms using liquid medium
RU2731289C2 (en) Method for constructing a biocatalyst strain based on bacteria of the genus rhodococcus, having nitrilase activity and high operational stability, recombinant strain of rhodococcus rhodochrous bacteria produced by such method, a method for synthesis of acrylic acid using this strain as a biocatalyst
RU2304165C1 (en) Method for production of acrylic monomers and bacterium strain rhodococcus rhodochrous producing the same
KR100463966B1 (en) Preparation Of Dicarboxylic Acid Monoesters From Cyanocarboxylic Acid Esters
RU2824556C2 (en) Method of producing mixed solution of acrylic monomers and bacterial strain for implementation thereof
RU2222596C1 (en) Method for preparing l-amino acids, strain escherichia coli as producer of l-amino acid (variants)
RU2824559C2 (en) Method of producing mixed solution of acrylic monomers and bacterial strain for implementation thereof
JP3778496B2 (en) A novel absolute symbiotic thermophilic bacterium Symbiobacterium shrimp SC-1 that produces thermostable L-tyrosine phenol lyase and L-tryptophan indole lyase and a method for searching for the related microorganisms.
CN115786295B (en) L-pantolactone dehydrogenase, encoding gene and application thereof
JP6156442B2 (en) Microorganisms that have replaced the nitrile hydratase gene
Wubbolts et al. How to get the biocatalyst
CN115873880B (en) Recombinant nucleic acid sequence, recombinant expression vector and genetically engineered bacteria
RU2044055C1 (en) Strain of bacterium klebsiella azeanae - a producer of restriction endonuclease kaz 48 ki