[go: up one dir, main page]

RU2737487C1 - Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation - Google Patents

Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation Download PDF

Info

Publication number
RU2737487C1
RU2737487C1 RU2019135603A RU2019135603A RU2737487C1 RU 2737487 C1 RU2737487 C1 RU 2737487C1 RU 2019135603 A RU2019135603 A RU 2019135603A RU 2019135603 A RU2019135603 A RU 2019135603A RU 2737487 C1 RU2737487 C1 RU 2737487C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
gene
hhgfopt
dna
seq
oligonucleotide
Prior art date
Application number
RU2019135603A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Екатерина Александровна Слободкина
Максим Николаевич Карагяур
Вадим Юрьевич Балабаньян
Елена Викторовна Парфенова
Павел Игоревич Макаревич
Жанна Алексеевна Акопян
Всеволод Арсеньевич Ткачук
Original Assignee
Общество С Ограниченной Ответственностью "Генная И Клеточная Терапия" (Ооо "Генная И Клеточная Терапия")
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Общество С Ограниченной Ответственностью "Генная И Клеточная Терапия" (Ооо "Генная И Клеточная Терапия") filed Critical Общество С Ограниченной Ответственностью "Генная И Клеточная Терапия" (Ооо "Генная И Клеточная Терапия")
Priority to RU2019135603A priority Critical patent/RU2737487C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2737487C1 publication Critical patent/RU2737487C1/en
Priority to PCT/RU2021/050002 priority patent/WO2021091434A2/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/515Angiogenesic factors; Angiogenin
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61KPREPARATIONS FOR MEDICAL, DENTAL OR TOILETRY PURPOSES
    • A61K48/00Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy
    • A61K48/005Medicinal preparations containing genetic material which is inserted into cells of the living body to treat genetic diseases; Gene therapy characterised by an aspect of the 'active' part of the composition delivered, i.e. the nucleic acid delivered
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61PSPECIFIC THERAPEUTIC ACTIVITY OF CHEMICAL COMPOUNDS OR MEDICINAL PREPARATIONS
    • A61P9/00Drugs for disorders of the cardiovascular system
    • A61P9/10Drugs for disorders of the cardiovascular system for treating ischaemic or atherosclerotic diseases, e.g. antianginal drugs, coronary vasodilators, drugs for myocardial infarction, retinopathy, cerebrovascula insufficiency, renal arteriosclerosis
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C07ORGANIC CHEMISTRY
    • C07KPEPTIDES
    • C07K14/00Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof
    • C07K14/435Peptides having more than 20 amino acids; Gastrins; Somatostatins; Melanotropins; Derivatives thereof from animals; from humans
    • C07K14/475Growth factors; Growth regulators
    • C07K14/4753Hepatocyte growth factor; Scatter factor; Tumor cytotoxic factor II
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression
    • C12N15/79Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts
    • C12N15/85Vectors or expression systems specially adapted for eukaryotic hosts for animal cells

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Pharmacology & Pharmacy (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Gastroenterology & Hepatology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Vascular Medicine (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • General Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Cardiology (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology.
SUBSTANCE: invention relates to biotechnology, specifically to gene engineering structures for angiogenesis stimulation, and can be used in medicine for treating diseases caused by blood tissue disorders. Disclosed is a plasmid bicistronic construct carrying the human hepatocyte growth factor hHGF gene and the vascular endothelial growth factor hVEGF165 gene with two separate promoters for each of the genes: cytomegalovirus promoter - pCMV for HGF gene and gene promoter chicken β-actin - pCAG for VEGF165 gene. Bicistronic structure can be used as a medicinal agent for stimulating angiogenesis, growth and remodeling of vessels, as well as restoration of blood supply in ischemic tissues.
EFFECT: invention enables achieving optimal concentrations and ratio of angiogenic growth factors (AGF).
6 cl, 7 tbl, 1 ex, 6 dwg

Description

Область техники, к которой относится изобретениеThe technical field to which the invention relates

Изобретение относится к области фармацевтики и биотехнологии, и может быть использовано для усиления роста новых сосудов в ишемизированных тканях. Изобретение представляет собой плазмидную бицистронную конструкцию, несущую ген hHGF фактора роста гепатоцитов человека и ген hVEGF165 фактора роста эндотелия сосудов. Заявляемая бицистронная конструкция может быть использована как лекарственное средство в медицинских целях для обеспечения стимуляции ангиогенеза, роста и ремоделирования сосудов, а также восстановления кровоснабжения в ишемизированных тканях, для лечения ряда заболеваний человека, обусловленных нарушением кровоснабжения тканей.The invention relates to the field of pharmaceuticals and biotechnology, and can be used to enhance the growth of new vessels in ischemic tissues. The invention is a plasmid bicistronic construct carrying the hHGF gene of human hepatocyte growth factor and the hVEGF165 gene of vascular endothelial growth factor. The claimed bicistronic construction can be used as a drug for medical purposes to stimulate angiogenesis, vascular growth and remodeling, as well as restore blood supply in ischemic tissues, for the treatment of a number of human diseases caused by impaired blood supply to tissues.

Уровень техникиState of the art

Ишемическая болезнь сердца (ИБС) и критическая ишемия нижних конечностей (КИНК), наряду с ишемическими нарушениями мозгового кровообращения, в настоящее время относят к основным причинам инвалидизации и смертности населения.Ischemic heart disease (CHD) and critical lower limb ischemia (CLI), along with ischemic cerebrovascular accidents, are currently considered the main causes of disability and mortality.

Одним из перспективных способов лечения КИНК является «терапевтический ангиогенез» - стимуляция роста новых кровеносных сосудов с помощью генной терапии. Для индукции ангиогенеза в ишемизированной скелетной мускулатуре было предложено использовать плазмидные конструкции, несущие кДНК генов b-FGF, VEGF165, HGF и других факторов роста. Безопасность таких конструкций была показана во многих исследованиях [Pavel Igorevich Makarevich and Yelena Viktorovna Parfyonova (April 5th 2017). Therapeutic Angiogenesis: Foundations and Practical Application, Physiologic and Pathologic Angiogenesis, Dan Simionescu and Agneta Simionescu, IntechOpen, DOI: 10.5772/66411].One of the promising methods of treating CLI is "therapeutic angiogenesis" - stimulation of the growth of new blood vessels using gene therapy. For the induction of angiogenesis in ischemic skeletal muscles, it was proposed to use plasmid constructs carrying cDNA of genes b-FGF, VEGF165, HGF and other growth factors. The safety of such structures has been shown in many studies [Pavel Igorevich Makarevich and Yelena Viktorovna Parfyonova (April 5 th 2017). Therapeutic Angiogenesis: Foundations and Practical Application, Physiologic and Pathologic Angiogenesis, Dan Simionescu and Agneta Simionescu, IntechOpen, DOI: 10.5772 / 66411].

В 2011 году на территории РФ был зарегистрирован препарат "Неоваскулген", представляющий собой плазмиду, кодирующую фактор роста эндотелия сосудов (pCMV-VEGF165), его эффективность и безопасность в комплексной терапии пациентов с хронической ишемией нижних конечностей была доказана в ходе клинических исследований. Результат клинического исследования 2б-3 фазы с участием 100 пациентов показал значительное улучшение их функционального состояния, что выражалось достоверным увеличением дистанции безболевой ходьбы на 110%. Отсроченное наблюдение не выявило каких-либо побочных эффектов, связанных с применением препарата и показало, что терапевтический эффект после стандартного курса терапии сохраняется на протяжении трех лет. Селективный анализ эффективности терапевтического ангиогенеза у пациентов с фоновым СД (n=15), которые участвовали в исследовании, показал достоверное увеличении дистанции безболевой ходьбы на 202% через 6 месяцев после стандартного курса терапии.In 2011, the drug "Neovasculgen" was registered on the territory of the Russian Federation, which is a plasmid encoding vascular endothelial growth factor (pCMV-VEGF165), its efficacy and safety in the complex therapy of patients with chronic lower limb ischemia has been proven in clinical trials. The result of a clinical study of phases 2b-3 with the participation of 100 patients showed a significant improvement in their functional state, which was expressed by a significant increase in the distance of painless walking by 110%. Delayed follow-up did not reveal any side effects associated with the use of the drug and showed that the therapeutic effect after a standard course of therapy persists for three years. A selective analysis of the effectiveness of therapeutic angiogenesis in patients with background diabetes (n = 15) who participated in the study showed a significant increase in painless walking distance by 202% 6 months after the standard course of therapy.

Весной 2019 года Министерство здравоохранения, труда и социального обеспечения Японии (MHLW) разрешило применение генотерапевтического препарата Collatagene компании AnGes, основываясь на результатах успешно завершившихся клинических исследований. Активным компонентом препарата является плазмида с геном фактора роста гепатоцитов - HGF, который обладает ангиогенными свойствами, препарат переназначен для лечения критической ишемии нижних конечностей (КИНК). В ходе предыдущего плацебо-контролируемого рандомизированного исследования 2 фазы было показано, что его применение обеспечивает достоверное улучшение функционального состояния пациентов с КИНК, что выражается в снижении выраженности болевого синдрома и увеличении частоты заживления язвенных дефектов (Shigematsu Н., Yasuda К., Iwai Т., Sasajima Т., Ishimaru S., Ohashi Y., Yamaguchi Т., Ogihara Т., Morishita R. Randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial of hepatocyte growth factor plasmid for critical limb ischemia // Gene Ther. 2010. T. 17. №9. - С. 1152-1161). Китайскими учеными в ходе 1 фазы открытого клинического исследования с участием 21 пациента с КИНК на фоне облитерирующего атеросклероза была доказана безопасность плазмиды с генами двух изоформ HGF. Также были получены предварительные данные об эффективности, которые выражались в увеличение показателей транскутанного напряжения кислорода и лодыжечно-плечевого индекса (A phase I clinical study of naked DNA expressing two isoforms of hepatocyte growth factor to treat patients with critical limb ischemia / Y. Gu, J. Zhang, L. Guo, S. Cui // J. Gene Medicine. - 2011. - Vol. 13. P. 602-610).In the spring of 2019, the Japanese Ministry of Health, Labor and Welfare (MHLW) approved AnGes' Collatagene gene therapy based on the results of successful clinical trials. The active component of the drug is a plasmid with the hepatocyte growth factor gene - HGF, which has angiogenic properties, the drug has been reassigned for the treatment of critical ischemia of the lower extremities (CLLI). In the course of a previous placebo-controlled, randomized phase 2 trial, it was shown that its use provides a significant improvement in the functional state of patients with CLLI, which is expressed in a decrease in the severity of pain syndrome and an increase in the frequency of healing of ulcerative defects (Shigematsu N., Yasuda K., Iwai T. , Sasajima T., Ishimaru S., Ohashi Y., Yamaguchi T., Ogihara T., Morishita R. Randomized, double-blind, placebo-controlled clinical trial of hepatocyte growth factor plasmid for critical limb ischemia // Gene Ther. 2010 T. 17. No. 9. - S. 1152-1161). During the 1st phase of an open clinical study involving 21 patients with CLI against the background of obliterating atherosclerosis, Chinese scientists proved the safety of a plasmid with genes of two HGF isoforms. Preliminary data on efficacy were also obtained, which were expressed in an increase in transcutaneous oxygen tension and ankle-brachial index (A phase I clinical study of naked DNA expressing two isoforms of hepatocyte growth factor to treat patients with critical limb ischemia / Y. Gu, J Zhang, L. Guo, S. Cui // J. Gene Medicine. - 2011. - Vol. 13. P. 602-610).

Стоит учитывать, что ангиогенез - это многоэтапный процесс, и каждый этап находится под контролем различных цитокинов и факторов роста, поэтому применение только одного ангиогенного фактора (как в виде рекомбинантного белка, так и виде генетической конструкции) не позволяет добиться значительных результатов.It should be borne in mind that angiogenesis is a multi-stage process, and each stage is under the control of various cytokines and growth factors; therefore, the use of only one angiogenic factor (both in the form of a recombinant protein and in the form of a genetic construct) does not allow achieving significant results.

Известно использование в терапевтическом ангиогенезе комплексного введения нескольких плазмид, кодирующих разные ангиогенные факторы роста (АФР), в комбинации друг с другом.It is known to use in therapeutic angiogenesis the complex introduction of several plasmids encoding different angiogenic growth factors (PRGs) in combination with each other.

Из уровня техники известно средство для стимуляции ангиогенеза в ишемизиро-ванной ткани, содержащее смесь в растворе 0,9%-ного NaCl плазмидных конструкций pC4W-hVEGFopt, несущую оптимизированный ген hVEGFopt фактора роста эндотелия сосудов, и pC4W-hHGFopt, несущую оптимизированный ген hHGFopt фактора роста гепатоцитов (патент РФ №2449799, 10.05.2012). Эффективный ангиогенез в ишемизированной ткани, достигается при использовании данного средства в массовом соотношении плазмидных конструкций pC4W-hVEGFopt и pC4W-hHGFopt от 1:3 до 3:1. Лучшие результаты достигались при их массовом соотношении 1:1.An agent for stimulating angiogenesis in ischemic tissue is known from the prior art, containing a mixture in a solution of 0.9% NaCl of plasmid constructs pC4W-hVEGFopt, carrying the optimized gene hVEGFopt of vascular endothelial growth factor, and pC4W-hHGFopt, carrying the optimized gene of the factor hHGFopt growth of hepatocytes (RF patent No. 2449799, 05/10/2012). Effective angiogenesis in ischemic tissue is achieved when using this agent in a mass ratio of the plasmid constructs pC4W-hVEGFopt and pC4W-hHGFopt from 1: 3 to 3: 1. The best results were achieved with a 1: 1 weight ratio.

Существенными недостатками введения смеси векторов является низкая вероятность котрансфекции клеток двумя плазмидами, различия экспрессии вводимых генов и снижение эффективности их совместного действия. Кроме того, при введении смеси плазмид не представляется возможным предсказать эффективность трансфекции клеток каждым из векторов, описать их фармакокинетику и конечную концентрацию кодируемых АФР, что значительно затрудняет фармацевтическую разработку лекарственных средств на основе комбинации двух и более генетических конструкций. Для ко-экспрессии двух и более генов разрабатываются мультицистронные конструкции, например, векторы, включающие внутренние сайты посадки рибосом (IRES). Плазмиды, несущие IRES, позволяют осуществлять одновременную экспрессию нескольких генов, однако, эффективность трансляции, обеспечиваемой IRES, обычно существенно уступает кэп-зависимой инициации, а конечное соотношение концентраций синтезируемых белков варьирует в зависимости от выбранного IRES. Группой польских ученых было проведено клиническое исследование плазмидной конструкции, несущей гены VEGFA и FGF2, разделенные последовательностью IRES вируса EMCV, для лечения ишемической болезни сердца [Kukula К, Chojnowska L, Dabrowski М, Witkowski A, Chmielak Z, Skwarek M, Kadziela J, Teresinska A, Malecki M, Janik P, et al. Intramyocardial plasmid-encoding human vascular endothelial growth factor A165/basic fibroblast growth factor therapy using percutaneous transcatheter approach in patients with refractory coronary artery disease (VIF-CAD) Am Heart J. 2011;161:581-589]. Введение плазмиды не привело к улучшению перфузии миокарда, однако, улучшились переносимость физической нагрузки и клинические проявления болезни.Significant disadvantages of introducing a mixture of vectors are the low probability of cotransfection of cells with two plasmids, differences in the expression of the introduced genes, and a decrease in the efficiency of their combined action. In addition, when a mixture of plasmids is introduced, it is not possible to predict the efficiency of cell transfection with each of the vectors, to describe their pharmacokinetics and the final concentration of encoded AFRs, which significantly complicates the pharmaceutical development of drugs based on a combination of two or more genetic constructs. For the co-expression of two or more genes, multicistronic constructs are being developed, for example, vectors that include internal ribosome entry sites (IRES). Plasmids carrying IRES allow simultaneous expression of several genes; however, the translation efficiency provided by IRES is usually significantly inferior to cap-dependent initiation, and the final ratio of the concentrations of synthesized proteins varies depending on the selected IRES. A group of Polish scientists conducted a clinical study of a plasmid construct carrying the VEGFA and FGF2 genes, separated by the IRES sequence of the EMCV virus, for the treatment of coronary artery disease [Kukula K, Chojnowska L, Dabrowski M, Witkowski A, Chmielak Z, Skwarek M, Kadzinskaa J, Te A, Malecki M, Janik P, et al. Intramyocardial plasmid-encoding human vascular endothelial growth factor A165 / basic fibroblast growth factor therapy using percutaneous transcatheter approach in patients with refractory coronary artery disease (VIF-CAD) Am Heart J. 2011; 161: 581-589]. Plasmid administration did not improve myocardial perfusion, however, exercise tolerance and clinical manifestations of the disease improved.

Наиболее близким к заявляемому решению является плазмидная конструкция, в которых гены факторов роста HGF и VEGF165 разделены сайтом внутренней посадки рибосом - IRES [Слободкина Е.А., Нимирицкий П.П., Долинкин А.О., Макаревич П.И., Парфенова Е.В. Разработка генотерапевтической плазмидной конструкции, кодирующей фактор роста гепатоцитов (HGF) и фактор роста эндотелия сосудов (VEGF165), Гены и Клетки - Материалы III Национального Конгресса по Регенеративной Медицине. Москва, 15-18 ноября 2017 года, серия 3, место издания Институт Стволовых Клеток Человека, Москва, Россия Москва, том 12, тезисы]. Общая схема данной плазмиды представлена на фиг. 1. Генно-инженерная конструкция, представляет собой экспрессионную векторную плазмиду, в которую клонированы вставки кДНК, кодирующие фактор роста эндотелия сосудов и фактор роста гепатоцитов, и содержит:The closest to the claimed solution is a plasmid construct, in which the genes of growth factors HGF and VEGF165 are separated by the site of internal ribosome entry - IRES [Slobodkina E.A., Nimiritsky P.P., Dolinkin A.O., Makarevich P.I., Parfenova E.V. Development of a gene therapy plasmid construct encoding hepatocyte growth factor (HGF) and vascular endothelial growth factor (VEGF165), Genes and Cells - Proceedings of the III National Congress on Regenerative Medicine. Moscow, November 15-18, 2017, series 3, place of publication Human Stem Cell Institute, Moscow, Russia Moscow, volume 12, abstracts]. The general scheme of this plasmid is shown in FIG. 1. Genetically engineered construct, is an expression vector plasmid into which cDNA inserts encoding vascular endothelial growth factor and hepatocyte growth factor are cloned, and contains:

Основные элементы конструкции:Main structural elements:

последовательность гена HGFHGF gene sequence

последовательность гена VEGF165VEGF165 gene sequence

последовательность IRES (различные варианты)IRES sequence (various options)

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции:Regulatory elements of expression and translation of the construct:

Энхансер 1 - CMV enhancerEnhancer 1 - CMV enhancer

Промотор pCMV (промотор цитомегаловируса)PCMV promoter (cytomegalovirus promoter)

Терминатор - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста)Terminator - bGH poly A (bovine growth hormone gene polyadenylation site)

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции в бактерии Е. coli:Regulatory elements of the expression and translation of the construct in E. coli bacteria:

Точка начала репликации (ori)Replication origin (ori)

Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий: - ген устойчивости к канамицину.Selective marker for the selection of transformed bacteria: - kanamycin resistance gene.

Однако данная плазмида не обеспечивает синтез достаточных количеств ангиогенных факторов роста ни in vitro, так, например, концентрации HGF и VEGF165 in vitro (в среде культивирования клеток линии НЕК293Т после их трансфекции) составляют не более 2,72 нМ и 1,6 нМ для HGF и VEGF165 соответственно. При этом соотношение концентраций HGF и VEGF165 непредсказуемо и в среднем составляет от 1:12 до 1:5 в зависимости от используемого IRES. Также данная плазмида не обеспечивает синтез достаточных количеств ангиогенных факторов роста ни in vitro ни при введении мышам – не более 0,72 нг/мл и вплоть до полного отсутствия. Следовательно, данный вектор не обладает параметрами, необходимыми для его использования в качестве экспрессионной конструкции для одновременной экспрессии генов фактора роста гепатоцитов и фактора роста эндотелия сосудов.However, this plasmid does not provide the synthesis of sufficient amounts of angiogenic growth factors either in vitro, for example, the concentrations of HGF and VEGF165 in vitro (in the culture medium of HEK293T cells after their transfection) are no more than 2.72 nM and 1.6 nM for HGF and VEGF165, respectively. At the same time, the concentration ratio of HGF and VEGF165 is unpredictable and on average ranges from 1:12 to 1: 5, depending on the IRES used. Also, this plasmid does not provide the synthesis of sufficient amounts of angiogenic growth factors either in vitro or when administered to mice - no more than 0.72 ng / ml and up to complete absence. Therefore, this vector does not have the parameters necessary for its use as an expression construct for the simultaneous expression of genes for hepatocyte growth factor and vascular endothelial growth factor.

Технической проблемой является синтез двух генов в заданном соотношении, обеспечивающем эффективную стимуляцию ангиогенеза.A technical problem is the synthesis of two genes in a predetermined ratio, which provides effective stimulation of angiogenesis.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

Техническая проблема решается заявляемым плазмидным вектором, несущим гены ангиогенных факторов роста человека, и обеспечивающего синтез данных АФР in vivo в близком к эквимолярному соотношению.The technical problem is solved by the inventive plasmid vector carrying the genes of human angiogenic growth factors, and providing the synthesis of these AFR in vivo in a close to equimolar ratio.

Техническим результатом является создание плазмидной генетической конструкции, кодирующей кДНК фактора роста гепатоцитов (hHGF) и кДНК фактора роста эндотелия сосудов (hVEGF165) под независимыми промоторами, позволяющей осуществлять синтез данных АФР in vivo в соотношении молярных концентраций HGF/VEGF165 отThe technical result is the creation of a plasmid genetic construct encoding hepatocyte growth factor (hHGF) cDNA and vascular endothelial growth factor (hVEGF165) cDNA under independent promoters, which makes it possible to synthesize these AFR in vivo in the ratio of HGF / VEGF165 molar concentrations from

0,24:1 до 0,32:1 при обеспечении стабильного выхода белков. Полученный вектор оказался эффективен, и может быть использован для создания генотерапевтического препарата.0.24: 1 to 0.32: 1 while ensuring a stable protein yield. The resulting vector turned out to be effective and can be used to create a gene therapy drug.

Для заявляемой генетической конструкции характерны следующие преимущества:The claimed genetic construct has the following advantages:

обеспечивает продукцию значительных количеств АФР: от 50 до 53 нМ и от 14 до 17 нМ для VEGF165 и HGF соответственно;provides the production of significant amounts of PRA: from 50 to 53 nM and from 14 to 17 nM for VEGF165 and HGF, respectively;

поскольку оба гена (VEGF165 и HGF) имеют собственные промоторы, энхансеры и терминаторы транскрипции, то экспрессия каждого из них происходит независимо и не влияет друг на друга.since both genes (VEGF165 and HGF) have their own promoters, enhancers, and transcription terminators, the expression of each of them occurs independently and does not affect each other.

Технический результат достигается созданием вектора, схема которого представлена на фиг.2, а именно генно-инженерной конструкцией для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающей:The technical result is achieved by creating a vector, the diagram of which is shown in figure 2, namely, a genetically engineered construct to stimulate angiogenesis in ischemic tissues, including:

последовательность, кодирующую ген фактора роста гепатоцитов, находящуюся под контролем промотора цитомегаловируса - pCMV-HGF;the sequence encoding the hepatocyte growth factor gene under the control of the cytomegalovirus promoter - pCMV-HGF;

последовательность, кодирующую ген фактора роста эндотелия сосудов, находящуюся под контролем промотора гена β-актина цыпленка - pCAG-VEGF165.the sequence encoding the vascular endothelial growth factor gene under the control of the chicken β-actin gene promoter - pCAG-VEGF165.

При этом, в качестве последовательности, кодирующей ген фактора роста гепатоцитов, используют последовательность SEQ ID N0:1, а в качестве последовательности, кодирующей ген фактора роста эндотелия сосудов используют последовательность SEQ ID NО:2.In this case, SEQ ID NO: 1 is used as the sequence encoding the hepatocyte growth factor gene, and SEQ ID NO: 2 is used as the sequence encoding the vascular endothelial growth factor gene.

Генно-инженерная конструкция включает следующие последовательно расположенные элементы:The genetic engineering design includes the following sequentially located elements:

Энхансер 1 - CMV enhancer - 36 - 415 п.о.Enhancer 1 - CMV enhancer - 36 - 415 bp

Промотор 1 - pCMV (промотор цитомегаловируса)-488-691 п.о.Promoter 1 - pCMV (cytomegalovirus promoter) -488-691 bp

Ген hHGF - 784-2970 п.о.HHGF gene - 784-2970 bp.

Терминатор 1 - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста) - 3044-3268 п.о.Terminator 1 - bGH poly A (bovine growth hormone polyadenylation site) - 3044-3268 bp

Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий - ген устойчивости к антибиотику - 3441-4253 п.о.Selective marker for the selection of transformed bacteria - antibiotic resistance gene - 3441-4253 bp.

Энхансер 2 - CMV enhancer - 4455-4740 п.о.Enhancer 2 - CMV enhancer - 4455-4740 bp

Промотор 2 - pCAG (промотор гена β-актина цыпленка) - 4742-5019 п.о.Promoter 2 - pCAG (chicken β-actin gene promoter) - 4742-5019 bp

Гибридный интрон - 5019-5248 п.о.Hybrid intron - 5019-5248 bp

Ген hVEGF165 - 5278-5853 п.о.HVEGF165 gene - 5278-5853 bp

Терминатор 2 - SV40 poly А (участок полиаденилирования вируса SV40) - 5908-6029 п.о.Terminator 2 - SV40 poly A (polyadenylation site of the SV40 virus) - 5908-6029 bp

Точка начала репликации (ori) - 6235-6823 п.о.The origin of replication (ori) is 6235-6823 bp.

Техническая проблема также решается применением заявляемой генно-инженерной конструкции в качестве действующего вещества генотерапевтического средства для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях.The technical problem is also solved by using the inventive genetically engineered construct as an active substance of a gene therapeutic agent to stimulate angiogenesis in ischemic tissues.

Также техническая проблема решается средством для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающее заявляемую плазмидную конструкцию и вспомогательные вещества для внутримышечного введения. При этом в качестве вспомогательных веществ использованы натрия хлорид или вода для инъекций.Also, the technical problem is solved by a means for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, including the claimed plasmid structure and auxiliary substances for intramuscular administration. In this case, sodium chloride or water for injection were used as auxiliary substances.

Техническая проблема также решается способом стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающим внутримышечное введение лекарственного средства для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающего заявляемую плазмидную конструкцию, в терапевтически эффективном количестве.The technical problem is also solved by a method for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, including intramuscular administration of a drug for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, including the claimed plasmid construct, in a therapeutically effective amount.

Краткое описание чертежейBrief Description of Drawings

Изобретение поясняется следующими чертежами.The invention is illustrated by the following drawings.

На фиг. 1 представлена «карта» прототипа плазмидной генетической конструкции, кодирующей ген hHGF фактора роста гепатоцитов человека и ген hVEGF165 фактора роста эндотелия сосудов, разделенные последовательностью IRES.FIG. 1 shows a "map" of a prototype plasmid genetic construct encoding the hHGF gene of human hepatocyte growth factor and the hVEGF165 gene of vascular endothelial growth factor separated by the IRES sequence.

На фиг. 2 представлена «карта» плазмидной генетической конструкции, кодирующей ген hHGF фактора роста гепатоцитов человека и ген hVEGF165 фактора роста эндотелия сосудов под двумя независимыми промоторами.FIG. 2 shows a "map" of the plasmid genetic construct encoding the hHGF gene of the human hepatocyte growth factor and the hVEGF165 gene of the vascular endothelial growth factor under two independent promoters.

На фиг. 3. представлена диаграмма, демонстрирующая содержание HGF и VEGF165 в среде культивирования HEK293T после трансфекции кальций-фосфатным способом.FIG. 3. is a diagram showing the content of HGF and VEGF165 in the HEK293T culture medium after calcium phosphate transfection.

На фиг. 4. представлены фотографии, на которых показано формирование капилляроподобных структур клетками HUVEC на матригеле после их обработки экспериментальной и контрольными средами.FIG. 4. are photographs showing the formation of capillary-like structures by HUVEC cells on Matrigel after their treatment with experimental and control media.

На фиг. 5 представлены графики, демонстрирующие общую длину капилляроподобных структур, сформированных клетками HUVEC на матригеле через 15 ч после обработки экспериментальной и контрольными средами.FIG. 5 shows graphs showing the total length of capillary-like structures formed by HUVEC cells on Matrigel 15 h after treatment with experimental and control media.

На фиг. 6 представлены графики, демонстрирующие количество точек ветвления капилляроподобных структур, сформированных клетками HUVEC на матригеле через 15 ч после обработки экспериментальной и контрольными средами.FIG. 6 shows graphs showing the number of branch points of capillary-like structures formed by HUVEC cells on Matrigel 15 h after treatment with experimental and control media.

Осуществление изобретенияImplementation of the invention

Заявляемая генно-инженерная конструкция представляет собой экспрессионную векторную плазмиду, в которую клонированы вставки кДНК, кодирующие фактор роста эндотелия сосудов и фактор роста гепатоцитов человека, а именно кольцевую ДНК длиной 6888 нуклеотидных пар.The inventive genetically engineered construct is an expression vector plasmid into which cDNA inserts encoding vascular endothelial growth factor and human hepatocyte growth factor are cloned, namely, circular DNA with a length of 6888 nucleotide pairs.

Основные элементы конструкции:Main structural elements:

участок pCMV-HGFpCMV-HGF plot

участок pCAG-VEGF 165pCAG-VEGF 165 region

Расположение кДНК, кодирующих фактор роста эндотелия сосудов и фактор роста гепатоцитов человека, под независимыми промоторами, позволяет осуществлять синтез данных АФР in vivo в соотношении концентраций HGF/VEGF165 от 0,24:1 до 0,32:1 при обеспечении стабильного выхода белков.The location of cDNAs encoding vascular endothelial growth factor and human hepatocyte growth factor under independent promoters allows the synthesis of these AFRs in vivo in a concentration ratio of HGF / VEGF165 from 0.24: 1 to 0.32: 1 while ensuring a stable yield of proteins.

Плазмидная конструкция несет оптимизированные гены VEGF165 (фактора роста эндотелия сосудов) и HGF (фактора роста гепатоцитов) человека, которые могут быть заменены на другие (например, нативные) последовательности данных генов.The plasmid construct carries the optimized human VEGF165 (vascular endothelial growth factor) and HGF (hepatocyte growth factor) genes, which can be substituted for other (eg, native) sequences of these genes.

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции:Regulatory elements of expression and translation of the construct:

Энхансер 1 - CMV enhancer - 380 п.о.Enhancer 1 - CMV enhancer - 380 bp

Промотор 1 - pCMV (промотор цитомегаловируса) - 204 п.о.Promoter 1 - pCMV (cytomegalovirus promoter) - 204 bp

Терминатор 1 - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста) - 225 п.о.Terminator 1 - bGH poly А (bovine growth hormone gene polyadenylation site) - 225 bp

Энхансер 2 - CMV enhancer - 286 п.о.Enhancer 2 - CMV enhancer - 286 bp

Промотор 2 - pCAG (промотор гена (β-актина цыпленка) - 278 п.о.Promoter 2 - pCAG (gene promoter (chicken β-actin) - 278 bp

Г ибридный (химерный) интрон - 229 п.о.Hybrid (chimeric) intron - 229 bp

Терминатор 2 - SV40 poly А (участок полиаденилирования вируса SV40) - 122 п.о.Terminator 2 - SV40 poly A (polyadenylation site of the SV40 virus) - 122 bp

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции в бактерии Е. coli:Regulatory elements of the expression and translation of the construct in E. coli bacteria:

Точка начала репликации (ori) - 589 п.о.The origin of replication (ori) is 589 bp.

Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий: - ген устойчивости к канамицину - 813 п.о. (может быть заменен на другой ген устойчивости к антибиотикам или селективный маркер).Selective marker for the selection of transformed bacteria: - kanamycin resistance gene - 813 bp. (can be replaced with another antibiotic resistance gene or selectable marker).

Синтез плазмиды осуществляли с помощью стандартной технологии и оборудования, применяемых для решения подобных задач в генной инженерии (Watson J.D., Gilman М, Witkowski J., Zoller M. - Recombinant DNA, Scientific American Books, New York, 1992). В качестве вектора для синтеза заявляемой плазмиды могут быть использованы любые коммерческие векторы, для которых характерна высококопийная репликация в Е. coli (болееPlasmid synthesis was carried out using standard technology and equipment used to solve similar problems in genetic engineering (Watson J.D., Gilman M, Witkowski J., Zoller M. - Recombinant DNA, Scientific American Books, New York, 1992). As a vector for the synthesis of the claimed plasmid, any commercial vectors can be used, which are characterized by high-copy replication in E. coli (more

150 копий на клетку), относительно небольшой размер (3-6 тыс. п.о.) и высокий уровень экспрессии клонируемого гена в клетках млекопитающих. 150 copies per cell), relatively small size (3-6 thousand bp), and a high level of expression of the cloned gene in mammalian cells.

В качестве генов, кодирующих VEGF165 и HGF могут быть использованы как ко-дон-оптимизированные последовательности генов данных АФР с последовательностями SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO: 2, так и нативные гены.As genes encoding VEGF165 and HGF can be used as co-don-optimized gene sequences of these PRA with the sequences SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2, and native genes.

Для трансформации и наработки плазмидной ДНК могут быть использованы компетентные штаммы Escherichia coli, например, Е. coli DH-5α.For transformation and production of plasmid DNA can be used competent strains of Escherichia coli, for example, E. coli DH-5α.

Основные элементы конструкции:Main structural elements:

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции и гены VEGF165 (фактора роста эндотелия сосудов) и HGF (фактора роста гепатоцитов) человека:Regulatory elements of expression and translation of the construct and genes VEGF165 (vascular endothelial growth factor) and HGF (hepatocyte growth factor) human:

Figure 00000001
Энхансер 1 - CMV enhancer
Figure 00000001
Enhancer 1 - CMV enhancer

Figure 00000001
Промотор 1 - pCMV (промотор цитомегаловируса)
Figure 00000001
Promoter 1 - pCMV (cytomegalovirus promoter)

Figure 00000001
Последовательность гена HGF
Figure 00000001
HGF gene sequence

Figure 00000001
Терминатор 1 - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста)
Figure 00000001
Terminator 1 - bGH poly A (bovine growth hormone polyadenylation site)

Figure 00000001
Энхансер 2 - CMV enhancer
Figure 00000001
Enhancer 2 - CMV enhancer

Figure 00000001
Промотор 2 - pCAG (промотор гена β-актина цыпленка)
Figure 00000001
Promoter 2 - pCAG (chicken β-actin gene promoter)

Figure 00000001
Последовательность гена VEGF165
Figure 00000001
VEGF165 gene sequence

Figure 00000001
Гибридный (химерный) интрон
Figure 00000001
Hybrid (chimeric) intron

Figure 00000001
Терминатор 2 - SV40 poly А (участок полиаденилирования вируса SV40)
Figure 00000001
Terminator 2 - SV40 poly A (polyadenylation site of the SV40 virus)

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции в бактерии Е. coli:Regulatory elements of the expression and translation of the construct in E. coli bacteria:

Figure 00000001
Точка начала репликации (ori)
Figure 00000001
Replication origin (ori)

Figure 00000001
Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий, выбранный из группы, включающей, но, не ограничиваясь ими, устойчивые к антибиотикам маркеры, такие как ампициллин, канамицин, неомицин и тому подобное.
Figure 00000001
A selectable marker for selecting transformed bacteria, selected from the group including, but not limited to, antibiotic resistant markers such as ampicillin, kanamycin, neomycin, and the like.

Ниже представлено более подробное описание заявляемого изобретения. Настоящее изобретение может подвергаться различным изменениям и модификациям, понятным специалисту на основе прочтения данного описания. Такие изменения не ограничивают объем притязаний. Например, могут изменяться стратегия сборки генетической конструкции (используемые праймеры, сайты клонирования и т.д.), методы наращивания, выделения и очистки плазмид, способ трансфекции, методы оценки концентраций АФР и др.Below is a more detailed description of the claimed invention. The present invention can be subject to various changes and modifications, which will be understood by a person skilled in the art based on reading this description. Such changes do not limit the scope of the claim. For example, the strategy for assembling the genetic construct (used primers, cloning sites, etc.), methods for growing, isolating and purifying plasmids, the method of transfection, methods for assessing the concentration of PRA, etc. can be changed.

Все используемые реагенты являются коммерчески доступными, все процедуры, если не оговорено особо, осуществляли при комнатной температуре или температуре окружающей среды, то есть в диапазоне от 18 до 25°С.All reagents used are commercially available, all procedures, unless otherwise stated, were carried out at room temperature or ambient temperature, that is, in the range from 18 to 25 ° C.

Фармацевтическая композиция на основе изобретения может вводиться парентерально, внутримышечно или любым другим способом, обеспечивающим возможность доставки соединения и/или композиции к клеткам/тканям. Например, фармацевтическую композицию можно вводить субъекту в виде внутримышечных инъекций. Для этих целей необходимо использовать стерильные растворы заявляемой композиции в фармацевтически приемлемом растворителе (см. ниже). Стерильность полученных композиций обеспечивается технологией и процессом их производства или получения в эксперименте.The pharmaceutical composition based on the invention can be administered parenterally, intramuscularly, or in any other way that allows the compound and / or composition to be delivered to cells / tissues. For example, the pharmaceutical composition can be administered to a subject by intramuscular injection. For these purposes, it is necessary to use sterile solutions of the claimed composition in a pharmaceutically acceptable solvent (see below). The sterility of the obtained compositions is ensured by the technology and process of their production or obtaining in experiment.

Термин «фармацевтически приемлемый» относится к нетоксическому материалу, который не взаимодействует с действием активного компонента фармацевтической композиции. "Фармацевтически приемлемый носитель" относится к биосовместимому раствору, который в достаточной степени имеет такие характеристики, как стерильность, рН, изотоничность, стабильность и подобные, и может включать любые растворители, разбавители, включая стерильный физиологический раствор, раствор хлорида натрия для инъекций, раствор Рингера для инъекций, раствор декстрозы для инъекций, раствор декстрозы и хлорида натрия для инъекций, содержащий лактат раствор Рингера для инъекций и другие водные буферные растворы, дисперсионные среды, покрытия, антибактериальные и противогрибковые средства, изотонические вещества и подобные. Фармацевтически приемлемый носитель также может содержать стабилизаторы, консерванты, антиоксиданты или другие добавки, которые хорошо известны специалистам в данной области, или другой наполнитель, известный из уровня техники.The term "pharmaceutically acceptable" refers to a non-toxic material that does not interact with the active ingredient of the pharmaceutical composition. "Pharmaceutically acceptable carrier" refers to a biocompatible solution that is sufficiently sterile, pH, isotonic, stability, and the like, and may include any solvents, diluents, including sterile saline, sodium chloride injection, Ringer's solution for injection, dextrose solution for injection, dextrose and sodium chloride solution for injection, lactated Ringer's solution for injection and other aqueous buffers, dispersion media, coatings, antibacterial and antifungal agents, isotonic agents and the like. The pharmaceutically acceptable carrier may also contain stabilizers, preservatives, antioxidants, or other additives that are well known to those skilled in the art, or other excipient known in the art.

Концентрация плазмидного вектора для высокоэффективной экспрессии генов VEGF165 и HGF человека в носителе должна быть достаточной для обеспечения терапевтического ангиогенеза. Например, при применении раствора на основе 0,9% хлорида натрия терапевтическая доза может составлять приблизительно от 25 до 1000 мкг на кг веса пациента.The concentration of the plasmid vector for highly efficient expression of the human VEGF165 and HGF genes in the carrier should be sufficient to provide therapeutic angiogenesis. For example, when using a solution based on 0.9% sodium chloride, the therapeutic dose may be from about 25 to 1000 μg per kg of patient weight.

Введение рекомендуется осуществлять путем внутримышечной инъекции в место, максимально близкое к ишемизированному участку. Введение производится после стандартной обработки кожи, с соблюдением правил асептики, дробно через несколько вколов так, чтобы весь массив мышц пораженного сегмента был инфильтрирован раствором. Введение может осуществляться как однократно (разово), так и несколько раз в зависимости от показаний, который оценивает лечащий врач на основании специфических параметров пациента, таких как возраст, масса тела, пол, степень повреждения ткани и т.п.The introduction is recommended by intramuscular injection in a place as close as possible to the ischemic area. The introduction is performed after standard skin treatment, in compliance with the rules of asepsis, fractionally after several injections so that the entire muscle mass of the affected segment is infiltrated with a solution. The introduction can be carried out both once (once) or several times, depending on the indications, which is assessed by the attending physician based on the specific parameters of the patient, such as age, body weight, gender, degree of tissue damage, etc.

1. Создание плазмидного вектора для высокоэффективной экспрессии генов VEGF165 и HGF человека.1. Creation of a plasmid vector for highly efficient expression of the human VEGF165 and HGF genes.

Синтез генов и плазмид осуществляли с помощью стандартной технологии и оборудования, применяемых для решения подобных задач в генной инженерии [Sambrook J et al., Molecular Cloning - A laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, (1989)], [Watson, J.D., Oilman, M., Witkowski, J., Zoller, M. Recombinant DNA, Scientific American Books, New York, 1992].The synthesis of genes and plasmids was carried out using standard technology and equipment used to solve similar problems in genetic engineering [Sambrook J et al., Molecular Cloning - A laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York, (1989)], [Watson , JD, Oilman, M., Witkowski, J., Zoller, M. Recombinant DNA, Scientific American Books, New York, 1992].

Синтез плазмиды осуществляли на основе видоизмененной системы pVAX, преимуществом которой является факт разрешения ее к использованию FDA США, т.е. данные о безопасности входящих в ее состав компонентов. В качестве генов, кодирующих VEGF165 и HGF использовали последовательности SEQ ID NO: 1 и SEQ ID NO: 2. Для повышения уровня продукции HGF и VEGF165 в трансфицированных клетках была оптимизирована природная последовательность кДНК этих генов. Среди триплетов нуклеотидов, кодирующих аминокислоты белковых последовательностей природных генов HGF и VEGF165, были выявлены наиболее редко встречаемые последовательности в генах человека. Выявленные редкие триплеты, а также соседние с ними триплеты были заменены на триплеты, кодирующие ту же аминокислоту, но при этом наиболее часто встречающиеся в генах человека. После модификации все аминокислоты природных генов HGF и VEGF165 остались неизмененными.The synthesis of the plasmid was carried out on the basis of the modified pVAX system, the advantage of which is the fact that it was approved for use by the US FDA, i.e. data on the safety of its constituent components. The sequences of SEQ ID NO: 1 and SEQ ID NO: 2 were used as genes encoding VEGF165 and HGF. To increase the level of production of HGF and VEGF165 in transfected cells, the natural cDNA sequence of these genes was optimized. Among the triplets of nucleotides encoding amino acids of the protein sequences of the natural genes HGF and VEGF165, the most rare sequences in human genes were identified. The revealed rare triplets, as well as their neighboring triplets, were replaced by triplets encoding the same amino acid, but most often found in human genes. After modification, all amino acids of the natural genes HGF and VEGF165 remained unchanged.

Использованный дизайн плазмидного вектора, с одной стороны, позволил без существенного увеличения размера плазмиды вместить в нее кДНК двух факторов роста, а с другой, позволил обеспечить близкое к оптимальному соотношение продуцируемых белков, т.е. высокую продукцию рекомбинантного human-BDNF и умеренную продукцию human-uPA, различающуюся в среднем на порядок.The design of the plasmid vector used, on the one hand, made it possible to accommodate cDNA of two growth factors in it without a significant increase in the size of the plasmid, and, on the other hand, made it possible to provide a close to optimal ratio of produced proteins, i.e. high production of recombinant human-BDNF and moderate production of human-uPA, differing on average by an order of magnitude.

Ниже представлен пример реализации изобретения, который не ограничивает настоящее изобретение, а лишь демонстрирует возможность его осуществления с достижением технического результата.Below is an example of implementation of the invention, which does not limit the present invention, but only demonstrates the possibility of its implementation with the achievement of a technical result.

ПримерExample

Используемый экспрессионный вектор pVax2 был создан из коммерческого вектора pVax1 (ThermoFisher) и был взят как основной каркасный вектор для конструирования заявляемого изобретения. Модификация заключалась во вставке SV40 энхансера между CMV промотором и CMV энхансером pVax1 и замене гена устойчивости к канамицину KanR.The expression vector pVax2 used was generated from the commercial vector pVax1 (ThermoFisher) and was taken as the main framework vector for the construction of the claimed invention. The modification consisted of inserting an SV40 enhancer between the CMV promoter and the CMV enhancer pVax1 and replacing the kanamycin resistance gene KanR.

1. На первом этапе была проведена рестирикция pVax2 CeiI (в буфере W+BSA) и вставка фосфорилированного дуплекса с получением конструкции pVax2-VEGFIns.1. At the first stage, pVax2 CeiI (in buffer W + BSA) was restrained and the phosphorylated duplex was inserted to obtain the pVax2-VEGFIns construct.

Figure 00000002
Figure 00000002

Figure 00000003
Figure 00000003

2. На втором этапе конструкция pVax2-VEGFIns подвергалась рестрикция AsuNHI+Pmel (CutSmart) с последующей вставкой оптимизированного hHGF, собранного из синтетических олигонуклеотидов и рестрицированного AsuNHI (CutSmart), с получением конструкции pVax2-CMV_hHGF-VEGFIns. Олигонуклеотиды для сборки hHGFopt приведены в таблице 2 и 3.2. In the second step, the pVax2-VEGFIns construct was subjected to restriction with AsuNHI + Pmel (CutSmart) followed by the insertion of optimized hHGF assembled from synthetic oligonucleotides and AsuNHI-restricted (CutSmart) to obtain the pVax2-CMV_hHGF-VEGFIns construct. Oligonucleotides for assembly of hHGFopt are shown in Tables 2 and 3.

Figure 00000004
Figure 00000004

Figure 00000005
Figure 00000005

Figure 00000006
Figure 00000006

Figure 00000007
Figure 00000007

Figure 00000008
Figure 00000008

Figure 00000009
Figure 00000009

3. На третьем этапе была осуществлена последовательная рестрикция конструкции pVax2-hHGF-VEGFIns рестриктазами XbaI (CutSmart) и Bsp13I (2K), а затем вставка CAG-промотора, амплифицированного из вектора рХ458 с помощью праймеров, приведенных в таблице 4, и последовательно рестрицированного Xba1 (CutSmart) и Bsp13I (2K). В итоге была получена конструкция pVax2-CMV_hHGF-CAG_VEGFIns.3. At the third stage, sequential restriction of the pVax2-hHGF-VEGFIns construct with restriction enzymes XbaI (CutSmart) and Bsp13I (2K) was carried out, followed by insertion of the CAG promoter amplified from the pX458 vector using the primers shown in Table 4 and sequentially restricting Xba1 (CutSmart) and Bsp13I (2K). As a result, the pVax2-CMV_hHGF-CAG_VEGFIns construct was obtained.

Figure 00000010
Figure 00000010

Затем, на четвертом этапе, была проведена рестрикция вектора pVax2-CMV_hHGF-CAG VEGFIns PciSI (В), и осуществлена вставка hVEGF165, собранного из синтетических олигонуклеотидов и рестрицированного PciSI (В) с получением заявляемой плазмиды pVax2-CMV_hHGF-CAG_hVEGF165. Олигонуклеотиды для сборки hVEGF165 приведены в таблицах 5 и 6.Then, in the fourth step, the vector pVax2-CMV_hHGF-CAG VEGFIns PciSI (B) was restricted, and the hVEGF165 assembled from synthetic oligonucleotides and PciSI-restricted (B) was inserted to obtain the claimed plasmid pVax2-CMV_hhHGF-CAG165. Oligonucleotides for assembly of hVEGF165 are shown in Tables 5 and 6.

Figure 00000011
Figure 00000011

Figure 00000012
Figure 00000012

Figure 00000013
Figure 00000013

Затем полученный продукт трансформировали в Е. coli DH5a и трансформанты отбирали на основании устойчивости к канамицину. Плазмидную ДНК, выделенную приблизительно из 10 таких колоний, анализировали на наличие кДНК HGF и VEGF165 ре-стрикционным расщеплением, используя различные ферменты рестрикции. Одну такую плазмиду секвенировали, используя автоматический ДНК секвенатор (ABI), и она была определена, как имеющая правильную интеграцию и последовательность кДНК HGF и VEGF165 в векторе pVax2.The resulting product was then transformed into E. coli DH5a and transformants were selected based on kanamycin resistance. Plasmid DNA isolated from about 10 of these colonies was analyzed for the presence of HGF and VEGF165 cDNA by restriction digestion using various restriction enzymes. One such plasmid was sequenced using an automated DNA sequencer (ABI) and was determined to have the correct integration and sequence of the HGF and VEGF165 cDNA in the pVax2 vector.

Схема полученной плазмиды представлена на фиг. 2.The resulting plasmid is schematically shown in FIG. 2.

Таким образом, генно-инженерная конструкция, представляющая собой экспрессионную векторную плазмиду (кольцевую ДНК длиной 6888 нуклеотидных пар), в которую клонированы вставки кДНК, кодирующие фактор роста эндотелия сосудов и фактор роста гепатоцитов человека (несет оптимизированные гены VEGF165 (фактора роста эндотелия сосудов) и HGF (фактора роста гепатоцитов) человека), содержит основные элементы конструкции:Thus, a genetically engineered construct, which is an expression vector plasmid (circular DNA with a length of 6888 nucleotide pairs), into which cDNA inserts encoding vascular endothelial growth factor and human hepatocyte growth factor are cloned (carries optimized genes VEGF165 (vascular endothelial growth factor) and HGF (human hepatocyte growth factor)), contains the main structural elements:

Figure 00000014
участок pCMV-HGF 488-2970 п.о.
Figure 00000014
pCMV-HGF region 488-2970 bp

Figure 00000014
участок pCAG-VEGF165 4742-5853 п.о.
Figure 00000014
pCAG-VEGF165 region 4742-5853 bp

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции:Regulatory elements of expression and translation of the construct:

Figure 00000001
Энхансер 1 - CMV enhancer - 36-415 п.о.
Figure 00000001
Enhancer 1 - CMV enhancer - 36-415 bp

Figure 00000001
Промотор 1 - pCMV (промотор цитомегаловируса) - 488-691 п.о.
Figure 00000001
Promoter 1 - pCMV (cytomegalovirus promoter) - 488-691 bp

Figure 00000001
Терминатор 1 - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста) - 3044-3268 п.о.
Figure 00000001
Terminator 1 - bGH poly А (polyadenylation site of the bovine growth hormone gene) - 3044-3268 bp

Figure 00000001
Энхансер 2 - CMV enhancer - 4455-4720 п.о.
Figure 00000001
Enhancer 2 - CMV enhancer - 4455-4720 bp

Figure 00000001
Промотор 2 - pCAG (промотор гена β-актина цыпленка) - 4742-5019 п.о.
Figure 00000001
Promoter 2 - pCAG (chicken β-actin gene promoter) - 4742-5019 bp

Figure 00000001
Гибридный интрон - 5020-5248 п.о.
Figure 00000001
Hybrid intron - 5020-5248 bp

Figure 00000001
Терминатор 2 - SV40 poly А (участок полиаденилирования вируса SV40) -5908-6029 п.о.
Figure 00000001
Terminator 2 - SV40 poly A (polyadenylation site of the SV40 virus) -5908-6029 bp

Регуляторные элементы экспрессии и трансляции конструкции в бактерии Е. coli:Regulatory elements of the expression and translation of the construct in E. coli bacteria:

Точка начала репликации (ori) - 6235-6823 п.о.The origin of replication (ori) is 6235-6823 bp.

Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий: - ген устойчивости к канамицину - 3441-4253 п.о. (может быть заменен на другой ген устойчивости к антибиотикам или селективный маркер).Selective marker for the selection of transformed bacteria: - kanamycin resistance gene - 3441-4253 bp. (can be replaced with another antibiotic resistance gene or selectable marker).

Для амплификации всех полученных плазмидных ДНК использовались бактерии Е. coli штамма DH-5α. После трансформации бактерии культивировались в течение ночи в селективной среде LB с канамицином в концентрации 100 мкг/мл. После окончания инкубации бактерии осаждали центрифугированием и использовали для выделения плазмидной ДНК на колонке (Qiagen, США).For amplification of all obtained plasmid DNAs, E. coli bacteria strain DH-5α was used. After transformation, bacteria were cultured overnight in LB selective medium with kanamycin at a concentration of 100 μg / ml. After the end of incubation, bacteria were precipitated by centrifugation and used to isolate plasmid DNA on a column (Qiagen, USA).

1. Приготовление заявляемой генетической конструкции1. Preparation of the claimed genetic construct

Для трансформации и наработки плазмидной ДНК (пДНК) использовали штамм Е. coli DH-5α. Исходный штамм Е. coli DH-5α является музейным и хранится во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов. Трансформированный штамм Е. coli DH-5α-CMV-HGF_CAG-VEGF165 отличается от исходного штамма Е. coli DH-5α устойчивостью к антибиотику канамицину, обеспечиваемой введенной в состав штамма плазмиды «CMV-HGF_CAG-VEGF165». Штамм-продуцент DH-5α-CMV-HGF_CAG-VEGF165 для наработки плазмидной ДНК получали трансформацией исходного компетентного штамма Е. coli DH-5α соответствующей плазмидой, с последующим отбором рекомбинантных клонов на среде LB с канамицином при 37°С. Трансформацию компетентных клеток Е. coli штамма DH5α проводили следующим образом. В эппендорф, содержащий 1 нг пДНК добавляли суспензию размороженных на льду бактерий (объем культуры 30 мкл), после чего проводили трансформацию методом «теплового шока». Для этого пробирку помещали в термостат, нагретый до 42°С на 45 сек, после чего на 5 мин переносили в лед. После этого к полученной культуре добавляли стерильную среду LB (500 мкл) и инкубировали на термошейкере в течение 60 мин (500 об/мин, 37°С). После этого 150 мкл полученной суспензии переносили в ламинарном бактериологическом боксе на заранее подготовленные чашки Петри диаметром 100 мм залитые LB-агаром, содержащим селектирующий агент - канамицин (100 мкг/мл). Контролем трансформации служила проба без внесения пДНК, в которой адекватным считалось отсутствие бактериального роста в LB-агаре с канамицином. После этого суспензию распределяли по поверхности LB-arapa с помощью прожженной проволочной петли и полученную культуру переносили в инкубатор на 15-17 ч при температуре 37°С. По окончании инкубации одну колонию бактерий с помощью стерильного шпателя переносили в жидкую культуру малого объема (15-20 мл, соотношение объема жидкости и воздуха не менее 1:4-1:5) на среде LB, содержащей 100 мкг/мл канамицина. После этого колбу с инокулированной средой помещали в термошейкер на 18 часов (250 об/мин, 37°С). Далее полученную культуру переносили в жидкую среду LB со 100 мкг/мл канамицина объемом 500 мл в соотношении 1:500, после чего ее инкубировали в аналогичных условиях в течение 15-18 ч для получения большого объема бактериальных клеток, содержащих пДНК. Полученную культуру бактерий в среде LB (объемом от 500 мл до 3 л в зависимости от количества пДНК) осаждали центрифугированием (12000 g, 15 мин), после чего жидкую фазу удаляли, а осадок использовали для выделения пДНК. Лизис, очистку от эндотоксинов и выделение плазмиды проводили с использованием наборов компании Qiagen (Midi или Maxi EndoFree kit) согласно протоколу производителяFor transformation and production of plasmid DNA (pDNA) used strain E. coli DH-5α. The original E. coli DH-5α strain is a museum and is kept in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms. The transformed strain of E. coli DH-5α-CMV-HGF_CAG-VEGF165 differs from the original strain of E. coli DH-5α in resistance to the antibiotic kanamycin, provided by the plasmid "CMV-HGF_CAG-VEGF165" introduced into the strain. Producer strain DH-5α-CMV-HGF_CAG-VEGF165 for the production of plasmid DNA was obtained by transformation of the original competent E. coli strain DH-5α with the corresponding plasmid, followed by selection of recombinant clones on LB medium with kanamycin at 37 ° C. The transformation of competent cells of E. coli strain DH5α was carried out as follows. A suspension of bacteria thawed on ice (culture volume 30 μL) was added to an Eppendorf containing 1 ng of pDNA, after which the transformation was carried out by the "heat shock" method. For this, the test tube was placed in a thermostat heated to 42 ° C for 45 sec, after which it was transferred to ice for 5 min. After that, sterile LB medium (500 μl) was added to the resulting culture and incubated on a thermal shaker for 60 min (500 rpm, 37 ° C). Thereafter, 150 μL of the resulting suspension was transferred in a laminar bacteriological box onto pre-prepared Petri dishes 100 mm in diameter filled with LB agar containing the selection agent, kanamycin (100 μg / ml). The transformation was controlled by a sample without pDNA addition, in which the absence of bacterial growth in LB-agar with kanamycin was considered adequate. After that, the suspension was spread over the LB-arapa surface using a burnt wire loop, and the resulting culture was transferred to an incubator for 15-17 hours at 37 ° C. At the end of incubation, one colony of bacteria was transferred using a sterile spatula into a liquid culture of small volume (15-20 ml, the ratio of the volume of liquid to air not less than 1: 4-1: 5) on LB medium containing 100 μg / ml of kanamycin. After that, the flask with the inoculated medium was placed in a thermo shaker for 18 hours (250 rpm, 37 ° C). Then the resulting culture was transferred into a liquid LB medium with 100 μg / ml kanamycin in a volume of 500 ml in a ratio of 1: 500, after which it was incubated under similar conditions for 15-18 h to obtain a large volume of bacterial cells containing pDNA. The resulting bacterial culture in LB medium (volume from 500 ml to 3 L, depending on the amount of pDNA) was precipitated by centrifugation (12000 g, 15 min), after which the liquid phase was removed, and the precipitate was used to isolate pDNA. Lysis, endotoxin purification and plasmid isolation were performed using Qiagen kits (Midi or Maxi EndoFree kit) according to the manufacturer's protocol

2. Трансфекция клеток линии HEK293T2. Transfection of HEK293T cells

Трансфекция клеток линии HEK293T проводилась кальций-фосфатным методом, однако, возможно использование и другого метода (например, протокол трансфекции с помощью Lipofectamine 2000). Трансфекция проводилась в 6-луночном планшете по достижении клетками 80-90% конфлюэнтного монослоя. Для этого 2 мкг пДНК смешивали с раствором 0,3 М CaCl2 и по каплям добавляли к 2xHBS (рН=7,10), состоящему из 280 мМ NaCl; 50 мМ HEPES; 1,5 мМ Na2HPO4. После этого полученную смесь инкубировали 1 мин и по каплям добавляли к среде культивирования HEK293T (DMEM/10% ФБС, объем 2 мл/лунке). Через 15-16 часов клетки отмывали и к ним добавляли бессывороточную DMEM, которую через 48 ч собирали, откручивали от клеточного дебриса и использовали для оценки продукции VEGF165 и HGF. Концентрации VEGF165 и HGF в среде культивирования клеток HEK293T через 48 ч после трансфекции составили 51,50 и 15,48 нМ соответственно.The HEK293T cells were transfected using the calcium phosphate method; however, another method is also possible (for example, the transfection protocol with Lipofectamine 2000). Transfection was performed in a 6-well plate when the cells reached 80-90% of the confluent monolayer. For this, 2 μg of pDNA was mixed with a solution of 0.3 M CaCl 2 and added dropwise to 2xHBS (pH = 7.10), consisting of 280 mM NaCl; 50 mM HEPES; 1.5 mM Na 2 HPO 4 . After that, the resulting mixture was incubated for 1 min and added dropwise to the HEK293T culture medium (DMEM / 10% PBS, volume 2 ml / well). After 15-16 hours, the cells were washed and serum-free DMEM was added to them, which was harvested after 48 hours, unscrewed from the cell debris and used to assess the production of VEGF165 and HGF. The VEGF165 and HGF concentrations in the HEK293T cell culture medium 48 h after transfection were 51.50 and 15.48 nM, respectively.

Соотношение молярных концентраций HGF7VEGF165 равнялось 0,3. Полученные данные представлены на фиг. 3The molar concentration ratio of HGF7VEGF165 was 0.3. The data obtained are shown in FIG. 3

3. Тестирование биологической активности плазмид путем оценки формирования капилляроподобных структур клетками HUVEC на матригеле (tube assay) - модель ангиогенеза in vitro3. Testing the biological activity of plasmids by evaluating the formation of capillary-like structures by HUVEC cells on Matrigel (tube assay) - in vitro model of angiogenesis

Клетки HUVEC 3-4 пассажа высаживали на 48-луночный планшет, покрытый слоем Матригеля (BD Biosciences). Перед началом эксперимента клетки депривировали в бессывороточной среде для культивирования клеток эндотелия (М200) в течение 4 ч. Затем на клетки наносили среду, собранную с трансфицированных клеток HEK293T (общий объем среды 2000 мкл). В качестве положительного контроля использовали клетки, к которым добавлялась полная среда культивирования (M200+supl). Планшет с клетками помещали в систему прижизненного анализа клеток - IncuCyte®, клетки фотографировали, в режиме фазового контраста со 100х увеличением каждые 2 часа. Длину трубочек и число точек ветвления оценивали с использованием программного пакета ImageJ. Результат представлен на фиг. 4-6.Passage 3-4 HUVEC cells were seeded onto a 48-well Matrigel-coated plate (BD Biosciences). Before the start of the experiment, the cells were deprived in serum-free endothelial cell culture medium (M200) for 4 h. Then, the medium collected from the transfected HEK293T cells (total medium volume 2000 μl) was applied to the cells. Cells to which complete culture medium (M200 + supl) was added were used as a positive control. The plate with the cells was placed in the system of in vivo analysis of cells - IncuCyte®, the cells were photographed in phase contrast mode with 100x magnification every 2 hours. The length of the tubules and the number of branch points were estimated using the ImageJ software package. The result is shown in FIG. 4-6.

4. Инъекция плазмид в скелетные мышцы мышей с последующей низковольтовой электропорацией4. Injection of plasmids into skeletal muscle of mice followed by low-voltage electroporation

Для внутримышечного введения плазмид использовался стерильный раствор пДНК в 0,9% NaCl, который вводился в m. tibialis anterior однократно. Животным вводилось по 100 мкг пДНК, растворенной в 30-50 мкл физиологического раствора (2-3 мг/мл). Чрескожно игла инсулинового шприца вводилась параллельно продольной оси мышцы, после чего раствор медленно вводился в толщу мышцы во избежание разрыва перимизия. Для повышения эффективности трансфекции был использован метод низковольтовой электропорации, описанный Schertzer и Lynch, с минимальной модификацией: было опущено введение гиалуронидазы, описанное в оригинальном методе. Непосредственно после инъекции плазмид на кожу, прилегающую к m. tibialis anterior, накладывались пластинчатые электроды, смазанные проводящим гелем. Затем с использованием генератора импульсных токов постоянной фор мы марки BTX-Harvard apparatus ЕСМ 830 (Harvard apparatus, США) проводилась электропорация тремя импульсами с напряжением 80 В/см расстояния между электродами, частотой 1 Гц и продолжительностью 20 мсек. Затем полярность электродов менялась и подавалось еще 3 импульса с аналогичными приведенным характеристиками. Поле проведения электропорации поверхность кожи очищалась 70% этиловым спиртом.For intramuscular injection of plasmids, a sterile solution of pDNA in 0.9% NaCl was used, which was injected into m. tibialis anterior once. The animals were injected with 100 μg of pDNA dissolved in 30-50 μl of saline (2-3 mg / ml). Percutaneously, the needle of the insulin syringe was inserted parallel to the longitudinal axis of the muscle, after which the solution was slowly injected into the thickness of the muscle to avoid rupture of perimisia. To increase the efficiency of transfection, the low-voltage electroporation method described by Schertzer and Lynch was used, with minimal modification: the introduction of hyaluronidase described in the original method was omitted. Immediately after the injection of plasmids into the skin adjacent to m. tibialis anterior, plate electrodes were applied, smeared with a conductive gel. Then, using a constant shape pulse current generator of the BTX Harvard apparatus ECM 830 (Harvard apparatus, United States), electroporation was performed with three pulses with a voltage of 80 V / cm distance between electrodes, a frequency of 1 Hz and a duration of 20 ms. Then the polarity of the electrodes was changed, and 3 more pulses were supplied with similar characteristics. After electroporation, the skin surface was cleaned with 70% ethyl alcohol.

5. Опыты ex vivo на модели эксплантной культуры скелетной мышцы5. Experiments ex vivo on a skeletal muscle explant culture model

Образцы т. tibialis anterior мыши были выделены на 2 день после введения пДНК. Подготовку эксплантной культуры на матригеле выполняли по методу Jang et al. (Jang HS, Kim HJ, Kim JM, Lee YS, Kim KL, et al. (2004) A novel ex vivo angiogenesis assay based on electroporation-mediated delivery of naked plasmid DNA to skeletal muscle. Mol Ther 9: 464-474.). Образцы скелетной мышцы высаживали на матригель и затем культивировали в полной среде DMEM с 4,5 г/л D-глюкозы (Life Technologies, США) и 2% ФБС (Gibco, США) при стандартных условиях. На 3 и 7 сутки культивирования эксплантов отбирали образцы культуральной среды для оценки содержания VEGF165 и HGF человека методом ИФА. Концентрации VEGF165 и HGF, продуцированных мышиными мышечными эксплантами после инъекции, составили 0,81 и 0,35 нг/мл соответственно на 3 день и 0,82 и 0,49 нг/мл на 7 день. Соотношение молярных концентраций HGF/VEGF165 равнялось 0,24 на 3 день и 0,32 на 7 день.Samples of t. Tibialis anterior mice were isolated 2 days after pDNA injection. The preparation of the explant culture on Matrigel was performed according to the method of Jang et al. (Jang HS, Kim HJ, Kim JM, Lee YS, Kim KL, et al. (2004) A novel ex vivo angiogenesis assay based on electroporation-mediated delivery of naked plasmid DNA to skeletal muscle. Mol Ther 9: 464-474. ). Skeletal muscle samples were planted on Matrigel and then cultured in complete DMEM medium with 4.5 g / L D-glucose (Life Technologies, USA) and 2% PBS (Gibco, USA) under standard conditions. On the 3rd and 7th days of culturing the explants, samples of the culture medium were taken to assess the content of human VEGF165 and HGF by ELISA. The concentrations of VEGF165 and HGF produced by murine muscle explants after injection were 0.81 and 0.35 ng / ml, respectively, on day 3 and 0.82 and 0.49 ng / ml on day 7. The HGF / VEGF165 molar concentration ratio was 0.24 on day 3 and 0.32 on day 7.

6. Сравнительная оценка продукции VEGF165 и HGF клетки НЕК29 разными плазмидами6. Comparative evaluation of VEGF165 and HGF production in HEK29 cells by different plasmids

На первом этапе на основе вектора pVAX нами были созданы прототипы заявляемой генетической конструкции, а именно плазмиды, несущие различные варианты IRES для осуществления одновременной экспрессии генов факторов роста HGF и VEGF165, характеризующиеся общей схемой строения: HGF-IRES -VEGF165. Для оценки продукции VEGF165 и HGF клетки НЕК293Т трансфицировали кальций фосфатным способом, концентрации VEGF165 и HGF в клеточной среде оценивались методом ИФА (результаты представлены в таблице 7).At the first stage, based on the pVAX vector, we created prototypes of the claimed genetic construct, namely plasmids carrying various IRES variants for simultaneous expression of the genes of the growth factors HGF and VEGF165, characterized by the general structure scheme: HGF-IRES-VEGF165. To assess the production of VEGF165 and HGF, HEK293T cells were transfected with calcium phosphate, the concentrations of VEGF165 and HGF in the cell medium were evaluated by ELISA (the results are shown in Table 7).

Figure 00000015
Figure 00000015

Плазмида №3 - конструкция HGF-IRES_FGF1-VEGF165 отличается от конструкции №1 тем, что включает последовательность IRES эукариотического белка FGF1. Молярные концентрации HGF и VEGF165 составили 0,08 и 1,59 нМ соответственно. Соотношение HGF/VEGF165 равнялось 11,38.Plasmid # 3 - construct HGF-IRES_FGF1-VEGF165 differs from construct # 1 in that it includes the IRES sequence of the eukaryotic protein FGF1. The molar concentrations of HGF and VEGF165 were 0.08 and 1.59 nM, respectively. The HGF / VEGF165 ratio was 11.38.

In vivo продукция белков VEGF165 и HGF оценивалась на модели эксплантной культуры скелетных мышц, выделенных после инъекции с электропорации векторов по пункту 1 (100 нг/мл) мышам. Образцы культуральной среды для оценки содержания VEGF165 и HGF методом ИФА отбирались на 3 и 7 сутки культивирования эксплантов.In vivo production of VEGF165 and HGF proteins was assessed in a skeletal muscle explant culture model isolated after electroporation injection of vectors according to step 1 (100 ng / ml) in mice. Samples of the culture medium for assessing the content of VEGF165 and HGF by ELISA were taken on the 3rd and 7th days of cultivation of the explants.

Для плазмиды №1 концентрации HGF и VEGF165, продуцированных мышиными мышечными эксплантами, не детектировались методом ИФА.For plasmid # 1, the concentrations of HGF and VEGF165 produced by murine muscle explants were not detected by ELISA.

Для плазмиды №2 концентрации HGF в среде культивирования мышечных эксплантов составили 0,72 нг/мл и 0,48 нг/мл на 3 и 7 дни соответственно. Концентрация белка VEGF165 была ниже порога чувствительности используемого метода детекции.For plasmid No. 2, the concentration of HGF in the culture medium of muscle explants was 0.72 ng / ml and 0.48 ng / ml on days 3 and 7, respectively. The VEGF165 protein concentration was below the sensitivity threshold of the used detection method.

Для плазмиды №3 концентрации HGF и VEGF165 также не детектировались методом ИФА.For plasmid No. 3, the concentrations of HGF and VEGF165 were also not detected by ELISA.

Таким образом, векторы №№1, 2, 3 не дали достаточной для оценки методом ИФА продукции АФР. Из полученных данных можно сделать вывод о том, что синтезируемые количества белков VEGF165 и HGF ниже констант диссоциации данных АФР с их рецепторами и недостаточны для проявления их биологического действия.Thus, vectors Nos. 1, 2, 3 did not give sufficient AFR production for the ELISA method. From the data obtained, it can be concluded that the synthesized amounts of VEGF165 and HGF proteins are lower than the dissociation constants of these AFRs with their receptors and are insufficient for the manifestation of their biological action.

В качестве альтернативного варианта мультицистронного вектора была создана и протестирована следующая генетическая конструкция:As an alternative variant of the multicistronic vector, the following genetic construct was created and tested:

№4 - вектор, в котором гены белков VEGF165 и HGF имеют собственные независимые промоторы: цитомегаловируса (CMV) и куриного бета-актина (CAG) для генов HGF и VEGF165 соответственно - «CMV_CAG». Молярные концентрации HGF и VEGF165 составили 6,05 и 5,92 нМ соответственно. Соотношение HGF/VEGF165 равнялось 1,38.No. 4 - a vector in which the genes of the VEGF165 and HGF proteins have their own independent promoters: cytomegalovirus (CMV) and chicken beta-actin (CAG) for the HGF and VEGF165 genes, respectively - "CMV_CAG". The molar concentrations of HGF and VEGF165 were 6.05 and 5.92 nM, respectively. The HGF / VEGF165 ratio was 1.38.

Конструкция №4 была протестирована in vivo на модели эксплантной культуры скелетных мышц мышей, описанной в пункте 2. Продукция белков VEGF165 и HGF оценивалась методом ИФА.Construct # 4 was tested in vivo on the mouse skeletal muscle explant culture model described in step 2. The production of VEGF165 and HGF proteins was evaluated by ELISA.

После инъекции и электропорации мышам вектора №4 концентрации HGF в среде культивирования мышечных эксплантов составили 1,14 нг/мл и 1,3 нг/мл на 3 и 7 дни соответственно. Концентрации VEGF165 составили 0,5 нг/мл и 0,2 нг/мл на 3 и 7 дни соответственно. Соотношение HGF/VEGF165 равнялось 2,28 на 3 день и 6,67 на 7 день культивирования эксплантов.After injection and electroporation of vector No. 4 to mice, the concentration of HGF in the culture medium for muscle explants was 1.14 ng / ml and 1.3 ng / ml on days 3 and 7, respectively. VEGF165 concentrations were 0.5 ng / ml and 0.2 ng / ml on days 3 and 7, respectively. The HGF / VEGF165 ratio was 2.28 on day 3 and 6.67 on day 7 of explant culture.

Таким образом, только вектор, включающий два отдельных промотора для независимой экспрессии обоих АФР дает продукцию белков HGF и VEGF165 in vitro и in vivo.Thus, only a vector containing two separate promoters for independent expression of both PRA produces the HGF and VEGF165 proteins in vitro and in vivo.

На основе вектора №4, сконструирована заявляемая генетическая конструкция. Вектор представляет собой аналогичную плазмиде №4 конструкцию, отличающуюся тем, что в ней последовательностью гена HGF заменена на оптимизированную. Концентрации белков HGF и VEGF165 в среде культивирования трансфицированных плазмидой клеток HEK293T составили 15,48 и 51,5 нМ соответственно. Соотношение HGF/VEGF165 равнялось 0,3.On the basis of vector No. 4, the claimed genetic construct is constructed. The vector is a construct similar to plasmid No. 4, characterized in that the HGF gene sequence is replaced with an optimized one. The concentrations of HGF and VEGF165 proteins in the culture medium transfected with the plasmid HEK293T cells were 15.48 and 51.5 nM, respectively. The HGF / VEGF165 ratio was 0.3.

Как следует из описанного выше, единственным вектором, позволяющим достигать оптимальных концентраций и соотношения АФР является заявляемая конструкция с двумя отдельными промоторами для каждого из генов: CMV для гена HGF и CAG для гена VEGF165. Использование двух отдельных кассет с собственными энхансерами, промоторами и терминаторами транскрипции для каждого из генов обеспечивает независимую экспрессию каждого из них. Результаты экспериментов с вектором, выбранном в качестве прототипа - плазмидой №4, а также с заявляемой конструкцией показали активность обоих промоторов как in vitro в клетках человека, так и in vivo в эксплантной культуре мышц, полученной после инъекции плазмиды мышам. Однако только использование заявляемого вектора обеспечивает продукцию белков HGF и VEGF165 в близком к эквимолярному соотношению с небольшим преобладанием «активатора ангиогенеза» - фактора роста эндотелия сосудов. Все варианты векторов, основанные на отличных способах реализации, не позволяют достичь технического результата и не могут быть использованы для одновременной экспрессии in vivo двух ангиогенных факторов роста (АФР) с одной генетической конструкции в достаточных количествах и в оптимальном соотношении.As follows from the above, the only vector that allows you to achieve optimal concentrations and ratios of PRA is the claimed construct with two separate promoters for each of the genes: CMV for the HGF gene and CAG for the VEGF165 gene. The use of two separate cassettes with their own enhancers, promoters, and transcription terminators for each of the genes allows for independent expression of each of them. The results of experiments with the vector selected as a prototype - plasmid No. 4, as well as with the claimed design, showed the activity of both promoters both in vitro in human cells and in vivo in explant muscle culture obtained after plasmid injection into mice. However, only the use of the inventive vector ensures the production of HGF and VEGF165 proteins in a close to equimolar ratio with a slight predominance of the "angiogenesis activator" - vascular endothelial growth factor. All variants of vectors based on excellent implementation methods do not allow achieving a technical result and cannot be used for the simultaneous in vivo expression of two angiogenic growth factors (AFRs) from one genetic construct in sufficient quantities and in an optimal ratio.

--->--->

ПЕРЕЧЕНЬ ПОСЛЕДОВАТЕЛЬНОСТЕЙLIST OF SEQUENCES

<110> Открытое общество с ограниченной ответственностью «Генная и клеточная терапия» (ООО «Генная и клеточная терапия»)<110> Open Limited Liability Company "Gene and Cell Therapy" (LLC "Gene and Cell Therapy")

<120> ГЕННО-ИНЖЕНЕРНАЯ КОНСТРУКЦИЯ ДЛЯ СТИМУЛЯЦИИ АНГИОГЕНЕЗА<120> GENETIC ENGINEERING STRUCTURE FOR STIMULATION OF ANGIOGENESIS

<160> SEQ ID NО:1<160> SEQ ID NO: 1

<210> 1<210> 1

<211> 2187<211> 2187

<212> ДНК <212> DNA

<213> Кодон-оптимизированная последовательность Homo sapiens (human) <213> Codon-optimized sequence Homo sapiens (human)

<223> Нуклеотидная последовательность гена фактор роста гепатоцитов (hHGF) <223> Nucleotide sequence of the hepatocyte growth factor (hHGF) gene

<400> 1<400> 1

1 ATGTGGGTGA CCAAGCTGCT GCCAGCCCTG CTGCTGCAGC ATGTCCTCCT1 ATGTGGGTGA CCAAGCTGCT GCCAGCCCTG CTGCTGCAGC ATGTCCTCCT

51 GCATCTCCTC CTGCTCCCCA TCGCCATCCC CTATGCAGAG GGACAAAGGA51 GCATCTCCTC CTGCTCCCCA TCGCCATCCC CTATGCAGAG GGACAAAGGA

101 AAAGAAGAAA TACAATTCAT GAATTCAAAA AATCAGCAAA GACCACCCTG101 AAAGAAGAAA TACAATTCAT GAATTCAAAA AATCAGCAAA GACCACCCTG

151 ATCAAGATCG ACCCCGCCCT GAAGATCAAG ACCAAAAAAG TGAATACTGC151 ATCAAGATCG ACCCCGCCCT GAAGATCAAG ACCAAAAAAG TGAATACTGC

201 AGACCAGTGT GCCAATAGAT GTACCAGGAA CAAGGGCCTG CCATTCACTT201 AGACCAGTGT GCCAATAGAT GTACCAGGAA CAAGGGCCTG CCATTCACTT

251 GCAAGGCTTT TGTTTTTGAT AAAGCAAGAA AACAATGCCT CTGGTTCCCC251 GCAAGGCTTT TGTTTTTGAT AAAGCAAGAA AACAATGCCT CTGGTTCCCC

301 TTCAATAGCA TGTCAAGTGG AGTGAAAAAA GAATTTGGCC ATGAATTTGA301 TTCAATAGCA TGTCAAGTGG AGTGAAAAAA GAATTTGGCC ATGAATTTGA

351 CCTCTATGAA AACAAAGACT ACATTAGAAA CTGCATCATT GGTAAAGGAC351 CCTCTATGAA AACAAAGACT ACATTAGAAA CTGCATCATT GGTAAAGGAC

401 GCAGCTACAA GGGAACAGTA TCTATCACTA AGAGTGGCAT CAAATGTCAG401 GCAGCTACAA GGGAACAGTA TCTATCACTA AGAGTGGCAT CAAATGTCAG

451 CCCTGGAGTT CCATGATACC ACACGAACAC AGCTTTCTGC CTTCCAGCTA451 CCCTGGAGTT CCATGATACC ACACGAACAC AGCTTTCTGC CTTCCAGCTA

501 CCGGGGCAAG GACCTGCAGG AGAACTACTG CCGGAACCCT CGAGGGGAAG501 CCGGGGCAAG GACCTGCAGG AGAACTACTG CCGGAACCCT CGAGGGGAAG

551 AAGGGGGACC CTGGTGTTTC ACAAGCAATC CAGAGGTACG CTACGAAGTC551 AAGGGGGACC CTGGTGTTTC ACAAGCAATC CAGAGGTACG CTACGAAGTC

601 TGTGACATTC CTCAGTGTTC AGAAGTTGAA TGCATGACCT GCAATGGGGA601 TGTGACATTC CTCAGTGTTC AGAAGTTGAA TGCATGACCT GCAATGGGGA

651 GAGTTATCGA GGTCTCATGG ATCATACAGA ATCAGGCAAG ATTTGTCAGC651 GAGTTATCGA GGTCTCATGG ATCATACAGA ATCAGGCAAG ATTTGTCAGC

701 GCTGGGATCA TCAGACACCA CACCGGCACA AATTCTTGCC TGAAAGATAT701 GCTGGGATCA TCAGACACCA CACCGGCACA AATTCTTGCC TGAAAGATAT

751 CCCGACAAGG GCTTTGATGA TAATTATTGC CGCAATCCCG ATGGCCAGCC751 CCCGACAAGG GCTTTGATGA TAATTATTGC CGCAATCCCG ATGGCCAGCC

801 GAGGCCATGG TGCTATACTC TTGACCCTCA CACCCGCTGG GAGTACTGTG801 GAGGCCATGG TGCTATACTC TTGACCCTCA CACCCGCTGG GAGTACTGTG

851 CAATTAAAAC ATGCGCTGAC AATACTATGA ATGACACTGA TGTTCCTTTG851 CAATTAAAAC ATGCGCTGAC AATACTATGA ATGACACTGA TGTTCCTTTG

901 GAAACAACTG AATGCATCCA AGGTCAAGGA GAAGGCTACA GGGGCACTGT901 GAAACAACTG AATGCATCCA AGGTCAAGGA GAAGGCTACA GGGGCACTGT

951 CAATACCATT TGGAATGGAA TTCCATGTCA GCGTTGGGAT TCTCAGTATC951 CAATACCATT TGGAATGGAA TTCCATGTCA GCGTTGGGAT TCTCAGTATC

1001 CTCACGAGCA TGACATGACT CCTGAAAATT TCAAGTGCAA GGACCTACGA1001 CTCACGAGCA TGACATGACT CCTGAAAATT TCAAGTGCAA GGACCTACGA

1051 GAAAATTACT GCCGAAATCC AGATGGGTCT GAATCACCCT GGTGTTTTAC1051 GAAAATTACT GCCGAAATCC AGATGGGTCT GAATCACCCT GGTGTTTTAC

1101 CACTGATCCA AACATCCGAG TTGGCTACTG CTCCCAAATT CCAAACTGTG1101 CACTGATCCA AACATCCGAG TTGGCTACTG CTCCCAAATT CCAAACTGTG

1151 ATATGTCACA TGGACAAGAT TGTTATCGTG GGAATGGCAA AAATTATATG1151 ATATGTCACA TGGACAAGAT TGTTATCGTG GGAATGGCAA AAATTATATG

1201 GGCAACTTAT CCCAAACAAG ATCTGGACTA ACATGTTCAA TGTGGGACAA1201 GGCAACTTAT CCCAAACAAG ATCTGGACTA ACATGTTCAA TGTGGGACAA

1251 GAACATGGAA GACTTACATC GTCATATCTT CTGGGAACCA GATGCAAGTA1251 GAACATGGAA GACTTACATC GTCATATCTT CTGGGAACCA GATGCAAGTA

1301 AGCTGAATGA GAATTACTGC CGAAATCCAG ATGATGATGC TCATGGACCC1301 AGCTGAATGA GAATTACTGC CGAAATCCAG ATGATGATGC TCATGGACCC

1351 TGGTGCTACA CGGGAAATCC ACTCATTCCT TGGGATTATT GCCCTATTTC1351 TGGTGCTACA CGGGAAATCC ACTCATTCCT TGGGATTATT GCCCTATTTC

1401 TCGTTGTGAA GGTGATACCA CACCTACAAT AGTCAATTTA GACCATCCCG1401 TCGTTGTGAA GGTGATACCA CACCTACAAT AGTCAATTTA GACCATCCCG

1451 TAATATCTTG TGCCAAAACG AAACAATTGC GAGTTGTAAA TGGGATTCCA1451 TAATATCTTG TGCCAAAACG AAACAATTGC GAGTTGTAAA TGGGATTCCA

1501 ACACGAACAA ACATAGGATG GATGGTTAGT TTGAGATACA GAAATAAACA1501 ACACGAACAA ACATAGGATG GATGGTTAGT TTGAGATACA GAAATAAACA

1551 TATCTGCGGA GGATCATTGA TAAAGGAGAG TTGGGTTCTT ACTGCACGAC1551 TATCTGCGGA GGATCATTGA TAAAGGAGAG TTGGGTTCTT ACTGCACGAC

1601 AGTGTTTCCC TTCTCGAGAC TTGAAAGATT ATGAAGCTTG GCTTGGAATT1601 AGTGTTTCCC TTCTCGAGAC TTGAAAGATT ATGAAGCTTG GCTTGGAATT

1651 CATGATGTCC ACGGAAGAGG AGATGAGAAA TGCAAACAGG TTCTCAATGT1651 CATGATGTCC ACGGAAGAGG AGATGAGAAA TGCAAACAGG TTCTCAATGT

1701 TTCCCAGCTG GTATATGGCC CTGAAGGATC AGATCTGGTT TTAATGAAGC1701 TTCCCAGCTG GTATATGGCC CTGAAGGATC AGATCTGGTT TTAATGAAGC

1751 TTGCCAGGCC TGCTGTCCTG GATGATTTTG TTAGTACGAT TGATTTACCT1751 TTGCCAGGCC TGCTGTCCTG GATGATTTTG TTAGTACGAT TGATTTACCT

1801 AATTATGGAT GCACAATTCC TGAAAAGACC AGTTGCAGTG TTTATGGCTG1801 AATTATGGAT GCACAATTCC TGAAAAGACC AGTTGCAGTG TTTATGGCTG

1851 GGGCTACACT GGACTGATCA ACTACGACGG CCTGCTGCGG GTGGCCCACC1851 GGGCTACACT GGACTGATCA ACTACGACGG CCTGCTGCGG GTGGCCCACC

1901 TGTACATCAT GGGAAATGAG AAATGCAGCC AGCATCATCG AGGGAAGGTG1901 TGTACATCAT GGGAAATGAG AAATGCAGCC AGCATCATCG AGGGAAGGTG

1951 ACTCTGAATG AGTCTGAAAT ATGTGCTGGG GCTGAAAAGA TTGGATCAGG1951 ACTCTGAATG AGTCTGAAAT ATGTGCTGGG GCTGAAAAGA TTGGATCAGG

2001 ACCATGTGAG GGGGATTATG GTGGCCCACT TGTTTGTGAG CAACATAAAA2001 ACCATGTGAG GGGGATTATG GTGGCCCACT TGTTTGTGAG CAACATAAAA

2051 TGAGAATGGT TCTTGGTGTC ATTGTTCCTG GTCGTGGATG TGCCATTCCA2051 TGAGAATGGT TCTTGGTGTC ATTGTTCCTG GTCGTGGATG TGCCATTCCA

2101 AATCGTCCTG GTATTTTTGT CCGAGTAGCA TATTATGCAA AATGGATCCA2101 AATCGTCCTG GTATTTTTGT CCGAGTAGCA TATTATGCAA AATGGATCCA

2151 CAAGATCATC CTGACCTACA AGGTGCCACA GTCCTGA2151 CAAGATCATC CTGACCTACA AGGTGCCACA GTCCTGA

<160> SEQ ID NО:2<160> SEQ ID NO: 2

<210> 2<210> 2

<211> 576<211> 576

<212> ДНК <212> DNA

<213> Кодон-оптимизированная последовательность Homo sapiens (human) <213> Codon-optimized sequence Homo sapiens (human)

<223> Нуклеотидная последовательность гена фактора роста эндотелия сосудов (hVEGF165)<223> Nucleotide Sequence of Vascular Endothelial Growth Factor Gene (hVEGF165)

<400> 2<400> 2

1 ATGAACTTTC TGCTGAGCTG GGTCCACTGG TCACTGGCAC TGCTGCTGTA1 ATGAACTTTC TGCTGAGCTG GGTCCACTGG TCACTGGCAC TGCTGCTGTA

51 TCTGCATCAC GCAAAATGGT CACAGGCCGC ACCTATGGCC GAGGGCGGAG51 TCTGCATCAC GCAAAATGGT CACAGGCCGC ACCTATGGCC GAGGGCGGAG

101 GGCAGAACCA CCATGAAGTG GTCAAGTTCA TGGACGTGTA CCAGAGATCA101 GGCAGAACCA CCATGAAGTG GTCAAGTTCA TGGACGTGTA CCAGAGATCA

151 TATTGTCACC CTATCGAGAC ACTGGTCGAC ATTTTCCAGG AATACCCAGA151 TATTGTCACC CTATCGAGAC ACTGGTCGAC ATTTTCCAGG AATACCCAGA

201 TGAGATCGAA TATATCTTCA AGCCAAGCTG CGTGCCACTG ATGCGGTGCG201 TGAGATCGAA TATATCTTCA AGCCAAGCTG CGTGCCACTG ATGCGGTGCG

251 GCGGATGCTG TAACGATGAG GGACTGGAAT GCGTCCCCAC CGAGGAATCT251 GCGGATGCTG TAACGATGAG GGACTGGAAT GCGTCCCCAC CGAGGAATCT

301 AATATCACAA TGCAGATCAT GCGAATTAAG CCTCACCAGG GGCAGCATAT301 AATATCACAA TGCAGATCAT GCGAATTAAG CCTCACCAGG GGCAGCATAT

351 TGGCGAGATG AGTTTCCTGC AGCACAACAA ATGCGAGTGT AGGCCAAAGA351 TGGCGAGATG AGTTTCCTGC AGCACAACAA ATGCGAGTGT AGGCCAAAGA

401 AAGACCGAGC TCGACAGGAG AATCCATGTG GACCTTGCTC TGAAAGGAGA401 AAGACCGAGC TCGACAGGAG AATCCATGTG GACCTTGCTC TGAAAGGAGA

451 AAGCATCTGT TTGTGCAGGA CCCCCAGACT TGCAAGTGTA GCTGCAAAAA451 AAGCATCTGT TTGTGCAGGA CCCCCAGACT TGCAAGTGTA GCTGCAAAAA

501 TACCGATTCC AGGTGTAAGG CACGGCAGCT GGAACTGAAT GAGCGGACCT501 TACCGATTCC AGGTGTAAGG CACGGCAGCT GGAACTGAAT GAGCGGACCT

551 GTCGGTGTGA TAAGCCAAGA AGATAA551 GTCGGTGTGA TAAGCCAAGA AGATAA

<160> SEQ ID NО:3<160> SEQ ID NO: 3

<210> 3<210> 3

<211> 229<211> 229

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность: hybrid between chicken β-actin (CBA) and minute virus of mice (MMV) introns <213> artificial sequence: hybrid between chicken β-actin (CBA) and minute virus of mice (MMV) introns

<223> Нуклеотидная последовательность гибридного (химерного) интрона<223> Nucleotide sequence of hybrid (chimeric) intron

<400> 3<400> 3

1 ggagtcgctg cgacgctgcc ttcgccccgt gccccgctcc gccgccgcct1 ggagtcgctg cgacgctgcc ttcgccccgt gccccgctcc gccgccgcct

51 cgcgccgccc gccccggctc tgactgaccg cgttactccc acaggtgagc51 cgcgccgccc gccccggctc tgactgaccg cgttactccc acaggtgagc

101 gggcgggacg gcccttctcc tccgggctgt aattagctga gcaagaggta101 gggcgggacg gcccttctcc tccgggctgt aattagctga gcaagaggta

151 agggtttaag ggatggttgg ttggtggggt attaatgttt aattacctgg151 agggtttaag ggatggttgg ttggtggggt attaatgttt aattacctgg

201 agcacctgcc tgaaatcact ttttttcag201 agcacctgcc tgaaatcact ttttttcag

<160> SEQ ID NО:4<160> SEQ ID NO: 4

<210> 4<210> 4

<211> 82<211> 82

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность insVEGF-f<213> artificial sequence insVEGF-f

<223> Олигонуклеотид для вставки фосфорилированного дуплекса<223> Oligonucleotide for insertion of phosphorylated duplex

<400> 4<400> 4

1 CATGAGACAA TAACCCTGAT AAATGCTTCA ATaatcTCTA GAcacacaTC1 CATGAGACAA TAACCCTGAT AAATGCTTCA ATaatcTCTA GAcacacaTC

51 CGGAGAAGAG CacacacacG CTCTTCAAAT CT51 CGGAGAAGAG CacacacacG CTCTTCAAAT CT

<160> SEQ ID NО:5<160> SEQ ID NO: 5

<210> 5<210> 5

<211> 82<211> 82

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность insVEGF-r<213> artificial sequence insVEGF-r

<223> Олигонуклеотид для вставки фосфорилированного дуплекса<223> Oligonucleotide for insertion of phosphorylated duplex

<400> 5<400> 5

1 CATGAGATTT GAAGAGCgtg tgtgtGCTCT TCTCCGGAtg tgtgTCTAGA1 CATGAGATTT GAAGAGCgtg tgtgtGCTCT TCTCCGGAtg tgtgTCTAGA

51 gattATTGAA GCATTTATCA GGGTTATTGT CT51 gattATTGAA GCATTTATCA GGGTTATTGT CT

<160> SEQ ID NО:6<160> SEQ ID NO: 6

<210> 6<210> 6

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f1<213> artificial sequence hHGFopt-f1

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 6<400> 6

1 CCCAAGCTGG CTAGCGGCAT TCCGGTACTG TTGGTAAAGC CACCATGTGG1 CCCAAGCTGG CTAGCGGCAT TCCGGTACTG TTGGTAAAGC CACCATGTGG

51 GTGACCAAGC TGCTGCCAGC CCTGCTGCT51 GTGACCAAGC TGCTGCCAGC CCTGCTGCT

<160> SEQ ID NО:7<160> SEQ ID NO: 7

<210> 7<210> 7

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f2<213> artificial sequence hHGFopt-f2

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 7<400> 7

1 GCAGCATGTC CTCCTGCATC TCCTCCTGCT CCCCATCGCC ATCCCCTATG1 GCAGCATGTC CTCCTGCATC TCCTCCTGCT CCCCATCGCC ATCCCCTATG

51 CAGAGGGACA AAGGAAAAGA AGAAATACA51 CAGAGGGACA AAGGAAAAGA AGAAATACA

<160> SEQ ID NО:8<160> SEQ ID NO: 8

<210> 8<210> 8

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f3<213> artificial sequence hHGFopt-f3

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 8<400> 8

1 ATTCATGAAT TCAAAAAATC AGCAAAGACC ACCCTGATCA AGATCGACCC1 ATTCATGAAT TCAAAAAATC AGCAAAGACC ACCCTGATCA AGATCGACCC

51 CGCCCTGAAG ATCAAGACCA AAAAAGTGA51 CGCCCTGAAG ATCAAGACCA AAAAAGTGA

<160> SEQ ID NО:9<160> SEQ ID NO: 9

<210> 9<210> 9

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f4<213> artificial sequence hHGFopt-f4

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 9<400> 9

1 ATACTGCAGA CCAGTGTGCC AATAGATGTA CCAGGAACAA GGGCCTGCCA1 ATACTGCAGA CCAGTGTGCC AATAGATGTA CCAGGAACAA GGGCCTGCCA

51 TTCACTTGCA AGGCTTTTGT TTTTGATAA51 TTCACTTGCA AGGCTTTTGT TTTTGATAA

<160> SEQ ID NО:10<160> SEQ ID NO: 10

<210> 10<210> 10

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f5<213> artificial sequence hHGFopt-f5

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 10<400> 10

1 AGCAAGAAAA CAATGCCTCT GGTTCCCCTT CAATAGCATG TCAAGTGGAG1 AGCAAGAAAA CAATGCCTCT GGTTCCCCTT CAATAGCATG TCAAGTGGAG

51 TGAAAAAAGA ATTTGGCCAT GAATTTGAC51 TGAAAAAAGA ATTTGGCCAT GAATTTGAC

<160> SEQ ID NО:11<160> SEQ ID NO: 11

<210> 11<210> 11

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f6<213> artificial sequence hHGFopt-f6

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 11<400> 11

1 CTCTATGAAA ACAAAGACTA CATTAGAAAC TGCATCATTG GTAAAGGACG1 CTCTATGAAA ACAAAGACTA CATTAGAAAC TGCATCATTG GTAAAGGACG

51 CAGCTACAAG GGAACAGTAT CTATCACTA51 CAGCTACAAG GGAACAGTAT CTATCACTA

<160> SEQ ID NО:12<160> SEQ ID NO: 12

<210> 12<210> 12

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f7<213> artificial sequence hHGFopt-f7

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 12<400> 12

1 AGAGTGGCAT CAAATGTCAG CCCTGGAGTT CCATGATACC ACACGAACAC1 AGAGTGGCAT CAAATGTCAG CCCTGGAGTT CCATGATACC ACACGAACAC

51 AGCTTTCTGC CTTCCAGCTA CCGGGGCAA51 AGCTTTCTGC CTTCCAGCTA CCGGGGCAA

<160> SEQ ID NО:13<160> SEQ ID NO: 13

<210> 13<210> 13

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f8<213> artificial sequence hHGFopt-f8

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 13<400> 13

1 GGACCTGCAG GAGAACTACT GCCGGAACCC TCGAGGGGAA GAAGGGGGAC1 GGACCTGCAG GAGAACTACT GCCGGAACCC TCGAGGGGAA GAAGGGGGAC

51 CCTGGTGTTT CACAAGCAAT CCAGAGGTA51 CCTGGTGTTT CACAAGCAAT CCAGAGGTA

<160> SEQ ID NО:14<160> SEQ ID NO: 14

<210> 14<210> 14

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f9<213> artificial sequence hHGFopt-f9

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 14<400> 14

1 CGCTACGAAG TCTGTGACAT TCCTCAGTGT TCAGAAGTTG AATGCATGAC1 CGCTACGAAG TCTGTGACAT TCCTCAGTGT TCAGAAGTTG AATGCATGAC

51 CTGCAATGGG GAGAGTTATC GAGGTCTCA51 CTGCAATGGG GAGAGTTATC GAGGTCTCA

<160> SEQ ID NО:15<160> SEQ ID NO: 15

<210> 15<210> 15

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f10<213> artificial sequence hHGFopt-f10

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 15<400> 15

1 TGGATCATAC AGAATCAGGC AAGATTTGTC AGCGCTGGGA TCATCAGACA1 TGGATCATAC AGAATCAGGC AAGATTTGTC AGCGCTGGGA TCATCAGACA

51 CCACACCGGC ACAAATTCTT GCCTGAAAG51 CCACACCGGC ACAAATTCTT GCCTGAAAG

<160> SEQ ID NО:16<160> SEQ ID NO: 16

<210> 16<210> 16

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f11<213> artificial sequence hHGFopt-f11

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 16<400> 16

1 ATATCCCGAC AAGGGCTTTG ATGATAATTA TTGCCGCAAT CCCGATGGCC1 ATATCCCGAC AAGGGCTTTG ATGATAATTA TTGCCGCAAT CCCGATGGCC

51 AGCCGAGGCC ATGGTGCTAT ACTCTTGAC51 AGCCGAGGCC ATGGTGCTAT ACTCTTGAC

<160> SEQ ID NО:17<160> SEQ ID NO: 17

<210> 17<210> 17

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f12<213> artificial sequence hHGFopt-f12

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 17<400> 17

1 CCTCACACCC GCTGGGAGTA CTGTGCAATT AAAACATGCG CTGACAATAC1 CCTCACACCC GCTGGGAGTA CTGTGCAATT AAAACATGCG CTGACAATAC

51 TATGAATGAC ACTGATGTTC CTTTGGAAA51 TATGAATGAC ACTGATGTTC CTTTGGAAA

<160> SEQ ID NО:18<160> SEQ ID NO: 18

<210> 18<210> 18

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f13<213> artificial sequence hHGFopt-f13

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 18<400> 18

1 CAACTGAATG CATCCAAGGT CAAGGAGAAG GCTACAGGGG CACTGTCAAT1 CAACTGAATG CATCCAAGGT CAAGGAGAAG GCTACAGGGG CACTGTCAAT

51 ACCATTTGGA ATGGAATTCC ATGTCAGCG51 ACCATTTGGA ATGGAATTCC ATGTCAGCG

<160> SEQ ID NО:19<160> SEQ ID NO: 19

<210> 19<210> 19

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f14<213> artificial sequence hHGFopt-f14

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 19<400> 19

1 TTGGGATTCT CAGTATCCTC ACGAGCATGA CATGACTCCT GAAAATTTCA1 TTGGGATTCT CAGTATCCTC ACGAGCATGA CATGACTCCT GAAAATTTCA

51 AGTGCAAGGA CCTACGAGAA AATTACTGC51 AGTGCAAGGA CCTACGAGAA AATTACTGC

<160> SEQ ID NО:20<160> SEQ ID NO: 20

<210> 20<210> 20

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f15<213> artificial sequence hHGFopt-f15

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 20<400> 20

1 CGAAATCCAG ATGGGTCTGA ATCACCCTGG TGTTTTACCA CTGATCCAAA1 CGAAATCCAG ATGGGTCTGA ATCACCCTGG TGTTTTACCA CTGATCCAAA

51 CATCCGAGTT GGCTACTGCT CCCAAATTC51 CATCCGAGTT GGCTACTGCT CCCAAATTC

<160> SEQ ID NО:21<160> SEQ ID NO: 21

<210> 21<210> 21

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f16<213> artificial sequence hHGFopt-f16

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 21<400> 21

1 CAAACTGTGA TATGTCACAT GGACAAGATT GTTATCGTGG GAATGGCAAA1 CAAACTGTGA TATGTCACAT GGACAAGATT GTTATCGTGG GAATGGCAAA

51 AATTATATGG GCAACTTATC CCAAACAAG51 AATTATATGG GCAACTTATC CCAAACAAG

<160> SEQ ID NО:22<160> SEQ ID NO: 22

<210> 22<210> 22

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f17<213> artificial sequence hHGFopt-f17

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 22<400> 22

1 ATCTGGACTA ACATGTTCAA TGTGGGACAA GAACATGGAA GACTTACATC1 ATCTGGACTA ACATGTTCAA TGTGGGACAA GAACATGGAA GACTTACATC

51 GTCATATCTT CTGGGAACCA GATGCAAGT51 GTCATATCTT CTGGGAACCA GATGCAAGT

<160> SEQ ID NО:23<160> SEQ ID NO: 23

<210> 23<210> 23

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f18<213> artificial sequence hHGFopt-f18

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 23<400> 23

1 AAGCTGAATG AGAATTACTG CCGAAATCCA GATGATGATG CTCATGGACC1 AAGCTGAATG AGAATTACTG CCGAAATCCA GATGATGATG CTCATGGACC

51 CTGGTGCTAC ACGGGAAATC CACTCATTC51 CTGGTGCTAC ACGGGAAATC CACTCATTC

<160> SEQ ID NО:24<160> SEQ ID NO: 24

<210> 24<210> 24

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f19<213> artificial sequence hHGFopt-f19

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 24<400> 24

1 CTTGGGATTA TTGCCCTATT TCTCGTTGTG AAGGTGATAC CACACCTACA1 CTTGGGATTA TTGCCCTATT TCTCGTTGTG AAGGTGATAC CACACCTACA

51 ATAGTCAATT TAGACCATCC CGTAATATC51 ATAGTCAATT TAGACCATCC CGTAATATC

<160> SEQ ID NО:25<160> SEQ ID NO: 25

<210> 25<210> 25

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f20<213> artificial sequence hHGFopt-f20

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 25<400> 25

1 TTGTGCCAAA ACGAAACAAT TGCGAGTTGT AAATGGGATT CCAACACGAA1 TTGTGCCAAA ACGAAACAAT TGCGAGTTGT AAATGGGATT CCAACACGAA

51 CAAACATAGG ATGGATGGTT AGTTTGAGA51 CAAACATAGG ATGGATGGTT AGTTTGAGA

<160> SEQ ID NО:26<160> SEQ ID NO: 26

<210> 26<210> 26

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f21<213> artificial sequence hHGFopt-f21

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 26<400> 26

1 TACAGAAATA AACATATCTG CGGAGGATCA TTGATAAAGG AGAGTTGGGT1 TACAGAAATA AACATATCTG CGGAGGATCA TTGATAAAGG AGAGTTGGGT

51 TCTTACTGCA CGACAGTGTT TCCCTTCTC51 TCTTACTGCA CGACAGTGTT TCCCTTCTC

<160> SEQ ID NО:27<160> SEQ ID NO: 27

<210> 27<210> 27

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f22<213> artificial sequence hHGFopt-f22

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 27<400> 27

1 GAGACTTGAA AGATTATGAA GCTTGGCTTG GAATTCATGA TGTCCACGGA1 GAGACTTGAA AGATTATGAA GCTTGGCTTG GAATTCATGA TGTCCACGGA

51 AGAGGAGATG AGAAATGCAA ACAGGTTC51 AGAGGAGATG AGAAATGCAA ACAGGTTC

<160> SEQ ID NО:28<160> SEQ ID NO: 28

<210> 28<210> 28

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f23<213> artificial sequence hHGFopt-f23

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 28<400> 28

1 TCAATGTTTC CCAGCTGGTA TATGGCCCTG AAGGATCAGA TCTGGTTTTA1 TCAATGTTTC CCAGCTGGTA TATGGCCCTG AAGGATCAGA TCTGGTTTTA

51 ATGAAGCTTG CCAGGCCTGC TGTCCTGG51 ATGAAGCTTG CCAGGCCTGC TGTCCTGG

<160> SEQ ID NО:29<160> SEQ ID NO: 29

<210> 29<210> 29

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f24<213> artificial sequence hHGFopt-f24

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 29<400> 29

1 ATGATTTTGT TAGTACGATT GATTTACCTA ATTATGGATG CACAATTCCT1 ATGATTTTGT TAGTACGATT GATTTACCTA ATTATGGATG CACAATTCCT

51 GAAAAGACCA GTTGCAGTGT TTATGGCT51 GAAAAGACCA GTTGCAGTGT TTATGGCT

<160> SEQ ID NО:30<160> SEQ ID NO: 30

<210> 30<210> 30

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f25<213> artificial sequence hHGFopt-f25

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 30<400> 30

1 GGGGCTACAC TGGACTGATC AACTACGACG GCCTGCTGCG GGTGGCCCAC1 GGGGCTACAC TGGACTGATC AACTACGACG GCCTGCTGCG GGTGGCCCAC

51 CTGTACATCA TGGGAAATGA GAAATGCA51 CTGTACATCA TGGGAAATGA GAAATGCA

<160> SEQ ID NО:31<160> SEQ ID NO: 31

<210> 31<210> 31

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f26<213> artificial sequence hHGFopt-f26

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 31<400> 31

1 GCCAGCATCA TCGAGGGAAG GTGACTCTGA ATGAGTCTGA AATATGTGCT1 GCCAGCATCA TCGAGGGAAG GTGACTCTGA ATGAGTCTGA AATATGTGCT

51 GGGGCTGAAA AGATTGGATC AGGACCAT51 GGGGCTGAAA AGATTGGATC AGGACCAT

<160> SEQ ID NО:32<160> SEQ ID NO: 32

<210> 32<210> 32

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f27<213> artificial sequence hHGFopt-f27

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 32<400> 32

1 GTGAGGGGGA TTATGGTGGC CCACTTGTTT GTGAGCAACA TAAAATGAGA1 GTGAGGGGGA TTATGGTGGC CCACTTGTTT GTGAGCAACA TAAAATGAGA

51 ATGGTTCTTG GTGTCATTGT TCCTGGTC51 ATGGTTCTTG GTGTCATTGT TCCTGGTC

<160> SEQ ID NО:33<160> SEQ ID NO: 33

<210> 33<210> 33

<211> 80<211> 80

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f28<213> artificial sequence hHGFopt-f28

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 33<400> 33

1 GTGGATGTGC CATTCCAAAT CGTCCTGG TATTTTTGTC CGAGTAGCAT1 GTGGATGTGC CATTCCAAAT CGTCCTGG TATTTTTGTC CGAGTAGCAT

51 ATTATGCAAA ATGGATCCAC AAGATCATCC51 ATTATGCAAA ATGGATCCAC AAGATCATCC

<160> SEQ ID NО:34<160> SEQ ID NO: 34

<210> 34<210> 34

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-f29<213> artificial sequence hHGFopt-f29

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 34<400> 34

1 TGACCTACAA GGTGCCACAG TCCTGACTTA AGCTTGGTAC CGAGCTCGGA1 TGACCTACAA GGTGCCACAG TCCTGACTTA AGCTTGGTAC CGAGCTCGGA

51 TCCGCCCCTC TCCCTCCCCC CCCCTAA51 TCCGCCCCTC TCCCTCCCCC CCCCTAA

<160> SEQ ID NО:35<160> SEQ ID NO: 35

<210> 35<210> 35

<211> 39<211> 39

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r1<213> artificial sequence hHGFopt-r1

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 35<400> 35

1 TTAGGGGGGG GGGAGGGAGA GGGGCGGATC CGAGCTCGG1 TTAGGGGGGG GGGAGGGAGA GGGGCGGATC CGAGCTCGG

<160> SEQ ID NО:36<160> SEQ ID NO: 36

<210> 36<210> 36

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r2<213> artificial sequence hHGFopt-r2

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 36<400> 36

1 TACCAAGCTT AAGTCAGGAC TGTGGCACCT TGTAGGTCAG GATGATCTTG1 TACCAAGCTT AAGTCAGGAC TGTGGCACCT TGTAGGTCAG GATGATCTTG

51 TGGATCCATT TTGCATAATA TGCTACTCG51 TGGATCCATT TTGCATAATA TGCTACTCG

<160> SEQ ID NО:37<160> SEQ ID NO: 37

<210> 37<210> 37

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r3<213> artificial sequence hHGFopt-r3

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 37<400> 37

1 GACAAAAATA CCAGGACGAT TTGGAATGGC ACATCCACGA CCAGGAACAA1 GACAAAAATA CCAGGACGAT TTGGAATGGC ACATCCACGA CCAGGAACAA

51 TGACACCAAG AACCATTCTC ATTTTATGT51 TGACACCAAG AACCATTCTC ATTTTATGT

<160> SEQ ID NО:38<160> SEQ ID NO: 38

<210> 38<210> 38

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r4<213> artificial sequence hHGFopt-r4

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 38<400> 38

1 TGCTCACAAA CAAGTGGGCC ACCATAATCC CCCTCACATG GTCCTGATCC1 TGCTCACAAA CAAGTGGGCC ACCATAATCC CCCTCACATG GTCCTGATCC

51 AATCTTTTCA GCCCCAGCAC ATATTTCAG51 AATCTTTTCA GCCCCAGCAC ATATTTCAG

<160> SEQ ID NО:39<160> SEQ ID NO: 39

<210> 39<210> 39

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r5<213> artificial sequence hHGFopt-r5

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 39<400> 39

1 ACTCATTCAG AGTCACCTTC CCTCGATGAT GCTGGCTGCA TTTCTCATTT1 ACTCATTCAG AGTCACCTTC CCTCGATGAT GCTGGCTGCA TTTCTCATTT

51 CCCATGATGT ACAGGTGGGC CACCCGCAG51 CCCATGATGT ACAGGTGGGC CACCCGCAG

<160> SEQ ID NО:40<160> SEQ ID NO: 40

<210> 40<210> 40

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r6<213> artificial sequence hHGFopt-r6

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 40<400> 40

1 CAGGCCGTCG TAGTTGATCA GTCCAGTGTA GCCCCAGCCA TAAACACTGC1 CAGGCCGTCG TAGTTGATCA GTCCAGTGTA GCCCCAGCCA TAAACACTGC

51 AACTGGTCTT TTCAGGAATT GTGCATCCA51 AACTGGTCTT TTCAGGAATT GTGCATCCA

<160> SEQ ID NО:41<160> SEQ ID NO: 41

<210> 41<210> 41

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r7<213> artificial sequence hHGFopt-r7

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 41<400> 41

1 TAATTAGGTA AATCAATCGT ACTAACAAAA TCATCCAGGA CAGCAGGCCT1 TAATTAGGTA AATCAATCGT ACTAACAAAA TCATCCAGGA CAGCAGGCCT

51 GGCAAGCTTC ATTAAAACCA GATCTGATC51 GGCAAGCTTC ATTAAAACCA GATCTGATC

<160> SEQ ID NО:42<160> SEQ ID NO: 42

<210> 42<210> 42

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r8<213> artificial sequence hHGFopt-r8

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 42<400> 42

1 CTTCAGGGCC ATATACCAGC TGGGAAACAT TGAGAACCTG TTTGCATTTC1 CTTCAGGGCC ATATACCAGC TGGGAAACAT TGAGAACCTG TTTGCATTTC

51 TCATCTCCTC TTCCGTGGAC ATCATGAAT51 TCATCTCCTC TTCCGTGGAC ATCATGAAT

<160> SEQ ID NО:43<160> SEQ ID NO: 43

<210> 43<210> 43

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r9<213> artificial sequence hHGFopt-r9

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 43<400> 43

1 TCCAAGCCAA GCTTCATAAT CTTTCAAGTC TCGAGAAGGG AAACACTGTC1 TCCAAGCCAA GCTTCATAAT CTTTCAAGTC TCGAGAAGGG AAACACTGTC

51 GTGCAGTAAG AACCCAACTC TCCTTTATC51 GTGCAGTAAG AACCCAACTC TCCTTTATC

<160> SEQ ID NО:44<160> SEQ ID NO: 44

<210> 44<210> 44

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r10<213> artificial sequence hHGFopt-r10

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 44<400> 44

1 AATGATCCTC CGCAGATATG TTTATTTCTG TATCTCAAAC TAACCATCCA1 AATGATCCTC CGCAGATATG TTTATTTCTG TATCTCAAAC TAACCATCCA

51 TCCTATGTTT GTTCGTGTTG GAATCCCAT51 TCCTATGTTT GTTCGTGTTG GAATCCCAT

<160> SEQ ID NО:45<160> SEQ ID NO: 45

<210> 45<210> 45

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r11<213> artificial sequence hHGFopt-r11

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 45<400> 45

1 TTACAACTCG CAATTGTTTC GTTTTGGCAC AAGATATTAC GGGATGGTCT1 TTACAACTCG CAATTGTTTC GTTTTGGCAC AAGATATTAC GGGATGGTCT

51 AAATTGACTA TTGTAGGTGT GGTATCACC51 AAATTGACTA TTGTAGGTGT GGTATCACC

<160> SEQ ID NО:46<160> SEQ ID NO: 46

<210> 46<210> 46

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r12<213> artificial sequence hHGFopt-r12

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 46<400> 46

1 TTCACAACGA GAAATAGGGC AATAATCCCA AGGAATGAGT GGATTTCCCG1 TTCACAACGA GAAATAGGGC AATAATCCCA AGGAATGAGT GGATTTCCCG

51 TGTAGCACCA GGGTCCATGA GCATCATCA51 TGTAGCACCA GGGTCCATGA GCATCATCA

<160> SEQ ID NО:47<160> SEQ ID NO: 47

<210> 47<210> 47

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r13<213> artificial sequence hHGFopt-r13

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 47<400> 47

1 TCTGGATTTC GGCAGTAATT CTCATTCAGC TTACTTGCAT CTGGTTCCCA1 TCTGGATTTC GGCAGTAATT CTCATTCAGC TTACTTGCAT CTGGTTCCCA

51 GAAGATATGA CGATGTAAGT CTTCCATGT51 GAAGATATGA CGATGTAAGT CTTCCATGT

<160> SEQ ID NО:48<160> SEQ ID NO: 48

<210> 48<210> 48

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r14<213> artificial sequence hHGFopt-r14

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 48<400> 48

1 TCTTGTCCCA CATTGAACAT GTTAGTCCAG ATCTTGTTTG GGATAAGTTG1 TCTTGTCCCA CATTGAACAT GTTAGTCCAG ATCTTGTTTG GGATAAGTTG

51 CCCATATAAT TTTTGCCATT CCCACGATA51 CCCATATAAT TTTTGCCATT CCCACGATA

<160> SEQ ID NО:49<160> SEQ ID NO: 49

<210> 49<210> 49

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r15<213> artificial sequence hHGFopt-r15

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 49<400> 49

1 ACAATCTTGT CCATGTGACA TATCACAGTT TGGAATTTGG GAGCAGTAGC1 ACAATCTTGT CCATGTGACA TATCACAGTT TGGAATTTGG GAGCAGTAGC

51 CAACTCGGAT GTTTGGATCA GTGGTAAAA51 CAACTCGGAT GTTTGGATCA GTGGTAAAA

<160> SEQ ID NО:50<160> SEQ ID NO: 50

<210> 50<210> 50

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r16<213> artificial sequence hHGFopt-r16

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 50<400> 50

1 CACCAGGGTG ATTCAGACCC ATCTGGATTT CGGCAGTAAT TTTCTCGTAG1 CACCAGGGTG ATTCAGACCC ATCTGGATTT CGGCAGTAAT TTTCTCGTAG

51 GTCCTTGCAC TTGAAATTTT CAGGAGTCA51 GTCCTTGCAC TTGAAATTTT CAGGAGTCA

<160> SEQ ID NО:51<160> SEQ ID NO: 51

<210> 51<210> 51

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r17<213> artificial sequence hHGFopt-r17

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 51<400> 51

1 TGTCATGCTC GTGAGGATAC TGAGAATCCC AACGCTGACA TGGAATTCCA1 TGTCATGCTC GTGAGGATAC TGAGAATCCC AACGCTGACA TGGAATTCCA

51 TTCCAAATGG TATTGACAGT GCCCCTGTA51 TTCCAAATGG TATTGACAGT GCCCCTGTA

<160> SEQ ID NО:52<160> SEQ ID NO: 52

<210> 52<210> 52

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r18<213> artificial sequence hHGFopt-r18

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 52<400> 52

1 GCCTTCTCCT TGACCTTGGA TGCATTCAGT TGTTTCCAAA GGAACATCAG1 GCCTTCTCCT TGACCTTGGA TGCATTCAGT TGTTTCCAAA GGAACATCAG

51 TGTCATTCAT AGTATTGTCA GCGCATGTT51 TGTCATTCAT AGTATTGTCA GCGCATGTT

<160> SEQ ID NО:53<160> SEQ ID NO: 53

<210> 53<210> 53

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r19<213> artificial sequence hHGFopt-r19

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 53<400> 53

1 TTAATTGCAC AGTACTCCCA GCGGGTGTGA GGGTCAAGAG TATAGCACCA1 TTAATTGCAC AGTACTCCCA GCGGGTGTGA GGGTCAAGAG TATAGCACCA

51 TGGCCTCGGC TGGCCATCGG GATTGCGGC51 TGGCCTCGGC TGGCCATCGG GATTGCGGC

<160> SEQ ID NО:54<160> SEQ ID NO: 54

<210> 54<210> 54

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r20<213> artificial sequence hHGFopt-r20

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 54<400> 54

1 AATAATTATC ATCAAAGCCC TTGTCGGGAT ATCTTTCAGG CAAGAATTTG1 AATAATTATC ATCAAAGCCC TTGTCGGGAT ATCTTTCAGG CAAGAATTTG

51 TGCCGGTGTG GTGTCTGATG ATCCCAGCG51 TGCCGGTGTG GTGTCTGATG ATCCCAGCG

<160> SEQ ID NО:55<160> SEQ ID NO: 55

<210> 55<210> 55

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r21<213> artificial sequence hHGFopt-r21

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 55<400> 55

1 CTGACAAATC TTGCCTGATT CTGTATGATC CATGAGACCT CGATAACTCT1 CTGACAAATC TTGCCTGATT CTGTATGATC CATGAGACCT CGATAACTCT

51 CCCCATTGCA GGTCATGCAT TCAACTTCT51 CCCCATTGCA GGTCATGCAT TCAACTTCT

<160> SEQ ID NО:56<160> SEQ ID NO: 56

<210> 56<210> 56

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r22<213> artificial sequence hHGFopt-r22

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 56<400> 56

1 GAACACTGAG GAATGTCACA GACTTCGTAG CGTACCTCTG GATTGCTTGT1 GAACACTGAG GAATGTCACA GACTTCGTAG CGTACCTCTG GATTGCTTGT

51 GAAACACCAG GGTCCCCCTT CTTCCCCTC51 GAAACACCAG GGTCCCCCTT CTTCCCCTC

<160> SEQ ID NО:57<160> SEQ ID NO: 57

<210> 57<210> 57

<211> 79<211> 79

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r23<213> artificial sequence hHGFopt-r23

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 57<400> 57

1 GAGGGTTCCG GCAGTAGTTC TCCTGCAGGT CCTTGCCCCG GTAGCTGGAA1 GAGGGTTCCG GCAGTAGTTC TCCTGCAGGT CCTTGCCCCG GTAGCTGGAA

51 GGCAGAAAGC TGTGTTCGTG TGGTATCAT51 GGCAGAAAGC TGTGTTCGTG TGGTATCAT

<160> SEQ ID NО:58<160> SEQ ID NO: 58

<210> 58<210> 58

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r24<213> artificial sequence hHGFopt-r24

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 58<400> 58

1 GGAACTCCAG GGCTGACATT TGATGCCACT CTTAGTGATA GATACTGTTC1 GGAACTCCAG GGCTGACATT TGATGCCACT CTTAGTGATA GATACTGTTC

51 CCTTGTAGCT GCGTCCTTTA CCAATGAT51 CCTTGTAGCT GCGTCCTTTA CCAATGAT

<160> SEQ ID NО:59<160> SEQ ID NO: 59

<210> 59<210> 59

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r25<213> artificial sequence hHGFopt-r25

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 59<400> 59

1 GCAGTTTCTA ATGTAGTCTT TGTTTTCATA GAGGTCAAAT TCATGGCCAA1 GCAGTTTCTA ATGTAGTCTT TGTTTTCATA GAGGTCAAAT TCATGGCCAA

51 ATTCTTTTTT CACTCCACTT GACATGCT51 ATTCTTTTTT CACTCCACTT GACATGCT

<160> SEQ ID NО:60<160> SEQ ID NO: 60

<210> 60<210> 60

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r26<213> artificial sequence hHGFopt-r26

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 60<400> 60

1 ATTGAAGGGG AACCAGAGGC ATTGTTTTCT TGCTTTATCA AAAACAAAAG1 ATTGAAGGGG AACCAGAGGC ATTGTTTTCT TGCTTTATCA AAAACAAAAG

51 CCTTGCAAGT GAATGGCAGG CCCTTGTT51 CCTTGCAAGT GAATGGCAGG CCCTTGTT

<160> SEQ ID NО:61<160> SEQ ID NO: 61

<210> 61<210> 61

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r27<213> artificial sequence hHGFopt-r27

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 61<400> 61

1 CCTGGTACAT CTATTGGCAC ACTGGTCTGC AGTATTCACT TTTTTGGTCT1 CCTGGTACAT CTATTGGCAC ACTGGTCTGC AGTATTCACT TTTTTGGTCT

51 TGATCTTCAG GGCGGGGTCG ATCTTGAT51 TGATCTTCAG GGCGGGGTCG ATCTTGAT

<160> SEQ ID NО:62<160> SEQ ID NO: 62

<210> 62<210> 62

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r28<213> artificial sequence hHGFopt-r28

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 62<400> 62

1 CAGGGTGGTC TTTGCTGATT TTTTGAATTC ATGAATTGTA TTTCTTCTTT1 CAGGGTGGTC TTTGCTGATT TTTTGAATTC ATGAATTGTA TTTCTTCTTT

51 TCCTTTGTCC CTCTGCATAG GGGATGGC51 TCCTTTGTCC CTCTGCATAG GGGATGGC

<160> SEQ ID NО:63<160> SEQ ID NO: 63

<210> 63<210> 63

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r29<213> artificial sequence hHGFopt-r29

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 63<400> 63

1 GATGGGGAGC AGGAGGAGAT GCAGGAGGAC ATGCTGCAGC AGCAGGGCTG1 GATGGGGAGC AGGAGGAGAT GCAGGAGGAC ATGCTGCAGC AGCAGGGCTG

51 GCAGCAGCTT GGTCACCCAC ATGGTGG51 GCAGCAGCTT GGTCACCCAC ATGGTGG

<160> SEQ ID NО:64<160> SEQ ID NO: 64

<210> 64<210> 64

<211> 39<211> 39

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hHGFopt-r30<213> artificial sequence hHGFopt-r30

<223> Олигонуклеотид для сборки hHGFopt<223> Oligonucleotide for assembly of hHGFopt

<400> 64<400> 64

1 CTTTACCAAC AGTACCGGAA TGCCGCTAGC CAGCTTGGG1 CTTTACCAAC AGTACCGGAA TGCCGCTAGC CAGCTTGGG

<160> SEQ ID NО:65<160> SEQ ID NO: 65

<210> 65<210> 65

<211> 55<211> 55

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность <213> artificial sequence

<223> Праймер для амплификации CAG-промотора<223> Primer for amplification of the CAG promoter

<400> 65<400> 65

1 CCACCGtcta gaggtacccg ttacataact tacggtaaat ggcccgcctg1 CCACCGtcta gaggtacccg ttacataact tacggtaaat ggcccgcctg

51 gctga51 gctga

<160> SEQ ID NО:66<160> SEQ ID NO: 66

<210> 66<210> 66

<211> 74<211> 74

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность <213> artificial sequence

<223> Праймер для амплификации CAG-промотора<223> Primer for amplification of the CAG promoter

<400> 66<400> 66

1 CCACCGTCCG GAATGCCctg aaaaaaagtg atttcaggca ggtgctccag1 CCACCGTCCG GAATGCCctg aaaaaaagtg atttcaggca ggtgctccag

51 gtaattaaac attaataccc cacc51 gtaattaaac attaataccc cacc

<160> SEQ ID NО:67<160> SEQ ID NO: 67

<210> 67<210> 67

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f1<213> hVEGF165-f1 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 67<400> 67

1 CCACCAGCTC TTCCCGGTAC TGTTGGTAAA GCCACCATGA ACTTTCTGCT1 CCACCAGCTC TTCCCGGTAC TGTTGGTAAA GCCACCATGA ACTTTCTGCT

51 GAGCTGGGTC CACTGGTCAC TGGCACTG51 GAGCTGGGTC CACTGGTCAC TGGCACTG

<160> SEQ ID NО:68<160> SEQ ID NO: 68

<210> 68<210> 68

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f2<213> artificial sequence hVEGF165-f2

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 68<400> 68

1 CTGCTGTATC TGCATCACGC AAAATGGTCA CAGGCCGCAC CTATGGCCGA1 CTGCTGTATC TGCATCACGC AAAATGGTCA CAGGCCGCAC CTATGGCCGA

51 GGGCGGAGGG CAGAACCACC ATGAAGTG51 GGGCGGAGGG CAGAACCACC ATGAAGTG

<160> SEQ ID NО:69<160> SEQ ID NO: 69

<210> 69<210> 69

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f3<213> artificial sequence hVEGF165-f3

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 69<400> 69

1 GTCAAGTTCA TGGACGTGTA CCAGAGATCA TATTGTCACC CTATCGAGAC1 GTCAAGTTCA TGGACGTGTA CCAGAGATCA TATTGTCACC CTATCGAGAC

51 ACTGGTCGAC ATTTTCCAGG AATACCCA51 ACTGGTCGAC ATTTTCCAGG AATACCCA

<160> SEQ ID NО:70<160> SEQ ID NO: 70

<210> 70<210> 70

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f4<213> artificial sequence hVEGF165-f4

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 70<400> 70

1 GATGAGATCG AATATATCTT CAAGCCAAGC TGCGTGCCAC TGATGCGGTG1 GATGAGATCG AATATATCTT CAAGCCAAGC TGCGTGCCAC TGATGCGGTG

51 CGGCGGATGC TGTAACGATG AGGGACTG51 CGGCGGATGC TGTAACGATG AGGGACTG

<160> SEQ ID NО:71<160> SEQ ID NO: 71

<210> 71<210> 71

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f5<213> artificial sequence hVEGF165-f5

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 71<400> 71

1 GAATGCGTCC CCACCGAGGA ATCTAATATC ACAATGCAGA TCATGCGAAT1 GAATGCGTCC CCACCGAGGA ATCTAATATC ACAATGCAGA TCATGCGAAT

51 TAAGCCTCAC CAGGGGCAGC ATATTGGC51 TAAGCCTCAC CAGGGGCAGC ATATTGGC

<160> SEQ ID NО:72<160> SEQ ID NO: 72

<210> 72<210> 72

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f6<213> artificial sequence hVEGF165-f6

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 72<400> 72

1 GAGATGAGTT TCCTGCAGCA CAACAAATGC GAGTGTAGGC CAAAGAAAGA1 GAGATGAGTT TCCTGCAGCA CAACAAATGC GAGTGTAGGC CAAAGAAAGA

51 CCGAGCTCGA CAGGAGAATC CATGTGGA51 CCGAGCTCGA CAGGAGAATC CATGTGGA

<160> SEQ ID NО:73<160> SEQ ID NO: 73

<210> 73<210> 73

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f7<213> artificial sequence hVEGF165-f7

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 73<400> 73

1 CCTTGCTCTG AAAGGAGAAA GCATCTGTTT GTGCAGGACC CCCAGACTTG1 CCTTGCTCTG AAAGGAGAAA GCATCTGTTT GTGCAGGACC CCCAGACTTG

51 CAAGTGTAGC TGCAAAAATA CCGATTCC51 CAAGTGTAGC TGCAAAAATA CCGATTCC

<160> SEQ ID NО:74<160> SEQ ID NO: 74

<210> 74<210> 74

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f8<213> artificial sequence hVEGF165-f8

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 74<400> 74

1 AGGTGTAAGG CACGGCAGCT GGAACTGAAT GAGCGGACCT GTCGGTGTGA1 AGGTGTAAGG CACGGCAGCT GGAACTGAAT GAGCGGACCT GTCGGTGTGA

51 TAAGCCAAGA AGATAAGTTT AAACCCG51 TAAGCCAAGA AGATAAGTTT AAACCCG

<160> SEQ ID NО:75<160> SEQ ID NO: 75

<210> 75<210> 75

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f9<213> artificial sequence hVEGF165-f9

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 75<400> 75

1 CTGATCAGCC TCGACTTCGA GCAGACGCTT CGAGCAGACA TGATAAGATA1 CTGATCAGCC TCGACTTCGA GCAGACGCTT CGAGCAGACA TGATAAGATA

51 CATTGATGAG TTTGGACAAA CCACAAC51 CATTGATGAG TTTGGACAAA CCACAAC

<160> SEQ ID NО:76<160> SEQ ID NO: 76

<210> 76<210> 76

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f10<213> artificial sequence hVEGF165-f10

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 76<400> 76

1 TAGAATGCAG TGAAAAAAAT GCTTTATTTG TGAAATTTGT GATGCTATTG1 TAGAATGCAG TGAAAAAAAT GCTTTATTTG TGAAATTTGT GATGCTATTG

51 CTTTATTTGT AACCATTATA AGCTGCA51 CTTTATTTGT AACCATTATA AGCTGCA

<160> SEQ ID NО:77<160> SEQ ID NO: 77

<210> 77<210> 77

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f11<213> artificial sequence hVEGF165-f11

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 77<400> 77

1 ATAAACAAGT TAACAACAAC AATTGCATTC ATTTTATGTT TCAGGTTCAG1 ATAAACAAGT TAACAACAAC AATTGCATTC ATTTTATGTT TCAGGTTCAG

51 GGGGAGATGT GGGAGGTTTT TTAAAGC51 GGGGAGATGT GGGAGGTTTT TTAAAGC

<160> SEQ ID NО:78<160> SEQ ID NO: 78

<210> 78<210> 78

<211> 76<211> 76

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-f12<213> artificial sequence hVEGF165-f12

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 78<400> 78

1 AACACGTGCT AAAACTTCAT TTTTAATTTA AAAGGATCTA GGTGAAGATC1 AACACGTGCT AAAACTTCAT TTTTAATTTA AAAGGATCTA GGTGAAGATC

51 CTTTTTGATA ATAGAAGAGC TGGTGG51 CTTTTTGATA ATAGAAGAGC TGGTGG

<160> SEQ ID NО:79<160> SEQ ID NO: 79

<210> 79<210> 79

<211> 39<211> 39

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r1<213> artificial sequence hVEGF165-r1

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 79<400> 79

1 CCACCAGCTC TTCTATTATC AAAAAGGATC TTCACCTAG1 CCACCAGCTC TTCTATTATC AAAAAGGATC TTCACCTAG

<160> SEQ ID NО:80<160> SEQ ID NO: 80

<210> 80<210> 80

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r2<213> artificial sequence hVEGF165-r2

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 80<400> 80

1 ATCCTTTTAA ATTAAAAATG AAGTTTTAGC ACGTGTTGCT TTAAAAAACC1 ATCCTTTTAA ATTAAAAATG AAGTTTTAGC ACGTGTTGCT TTAAAAAACC

51 TCCCACATCT CCCCCTGAAC CTGAAACA51 TCCCACATCT CCCCCTGAAC CTGAAACA

<160> SEQ ID NО:81<160> SEQ ID NO: 81

<210> 81<210> 81

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r3<213> artificial sequence hVEGF165-r3

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 81<400> 81

1 TAAAATGAAT GCAATTGTTG TTGTTAACTT GTTTATTGCA GCTTATAATG1 TAAAATGAAT GCAATTGTTG TTGTTAACTT GTTTATTGCA GCTTATAATG

51 GTTACAAATA AAGCAATAGC ATCACAAA51 GTTACAAATA AAGCAATAGC ATCACAAA

<160> SEQ ID NО:82<160> SEQ ID NO: 82

<210> 82<210> 82

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r4<213> hVEGF165-r4 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 82<400> 82

1 TTTCACAAAT AAAGCATTTT TTTCACTGCA TTCTAGTTGT GGTTTGTCCA1 TTTCACAAAT AAAGCATTTT TTTCACTGCA TTCTAGTTGT GGTTTGTCCA

51 AACTCATCAA TGTATCTTAT CATGTCTG51 AACTCATCAA TGTATCTTAT CATGTCTG

<160> SEQ ID NО:830<160> SEQ ID NO: 830

<210> 83<210> 83

<211> 78<211> 78

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r5<213> hVEGF165-r5 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 83<400> 83

1 CTCGAAGCGT CTGCTCGAAG TCGAGGCTGA TCAGCGGGTT TAAACTTATC1 CTCGAAGCGT CTGCTCGAAG TCGAGGCTGA TCAGCGGGTT TAAACTTATC

51 TTCTTGGCTT ATCACACCGA CAGGTCCG51 TTCTTGGCTT ATCACACCGA CAGGTCCG

<160> SEQ ID NО:84<160> SEQ ID NO: 84

<210> 84<210> 84

<211> 76<211> 76

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r6<213> hVEGF165-r6 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 84<400> 84

1 CTCATTCAGTTC CAGCTGCCGT GCCTTACACC TGGAATCGGT ATTTTTGCAG1 CTCATTCAGTTC CAGCTGCCGT GCCTTACACC TGGAATCGGT ATTTTTGCAG

51 CTACACTTGC AAGTCTGGGG GTCCTG51 CTACACTTGC AAGTCTGGGG GTCCTG

<160> SEQ ID NО:85<160> SEQ ID NO: 85

<210> 85<210> 85

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r7<213> hVEGF165-r7 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 85<400> 85

1 CACAAACAGA TGCTTTCTCC TTTCAGAGCA AGGTCCACAT GGATTCTCCT1 CACAAACAGA TGCTTTCTCC TTTCAGAGCA AGGTCCACAT GGATTCTCCT

51 GTCGAGCTCG GTCTTTCTTT GGCCTAC51 GTCGAGCTCG GTCTTTCTTT GGCCTAC

<160> SEQ ID NО:86<160> SEQ ID NO: 86

<210> 86<210> 86

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r8<213> hVEGF165-r8 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 86<400> 86

1 ACTCGCATTT GTTGTGCTGC AGGAAACTCA TCTCGCCAAT ATGCTGCCCC1 ACTCGCATTT GTTGTGCTGC AGGAAACTCA TCTCGCCAAT ATGCTGCCCC

51 TGGTGAGGCT TAATTCGCAT GATCTGC51 TGGTGAGGCT TAATTCGCAT GATCTGC

<160> SEQ ID NО:87<160> SEQ ID NO: 87

<210> 87<210> 87

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r9<213> artificial sequence hVEGF165-r9

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 87<400> 87

1 ATTGTGATAT TAGATTCCTC GGTGGGGACG CATTCCAGTC CCTCATCGTT1 ATTGTGATAT TAGATTCCTC GGTGGGGACG CATTCCAGTC CCTCATCGTT

51 ACAGCATCCG CCGCACCGCA TCAGTGG51 ACAGCATCCG CCGCACCGCA TCAGTGG

<160> SEQ ID NО:88<160> SEQ ID NO: 88

<210> 88<210> 88

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r10<213> artificial sequence hVEGF165-r10

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 88<400> 88

1 CACGCAGCTT GGCTTGAAGA TATATTCGAT CTCATCTGGG TATTCCTGGA1 CACGCAGCTT GGCTTGAAGA TATATTCGAT CTCATCTGGG TATTCCTGGA

51 AAATGTCGAC CAGTGTCTCG ATAGGGT51 AAATGTCGAC CAGTGTCTCG ATAGGGT

<160> SEQ ID NО:89<160> SEQ ID NO: 89

<210> 89<210> 89

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r11<213> hVEGF165-r11 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 89<400> 89

1 GACAATATGA TCTCTGGTAC ACGTCCATGA ACTTGACCAC TTCATGGTGG1 GACAATATGA TCTCTGGTAC ACGTCCATGA ACTTGACCAC TTCATGGTGG

51 TTCTGCCCTC CGCCCTCGGC CATAGGT51 TTCTGCCCTC CGCCCTCGGC CATAGGT

<160> SEQ ID NО:90<160> SEQ ID NO: 90

<210> 90<210> 90

<211> 77<211> 77

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r12<213> artificial sequence hVEGF165-r12

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 90<400> 90

1 GCGGCCTGTG ACCATTTTGC GTGATGCAGA TACAGCAGCA GTGCCAGTGA1 GCGGCCTGTG ACCATTTTGC GTGATGCAGA TACAGCAGCA GTGCCAGTGA

51 CCAGTGGACC CAGCTCAGCA GAAAGTT51 CCAGTGGACC CAGCTCAGCA GAAAGTT

<160> SEQ ID NО:91<160> SEQ ID NO: 91

<210> 91<210> 91

<211> 39<211> 39

<212> ДНК <212> DNA

<213> искусственная последовательность hVEGF165-r13<213> hVEGF165-r13 artificial sequence

<223> Олигонуклеотид для сборки hVEGF165<223> Oligonucleotide for assembly of hVEGF165

<400> 91<400> 91

1 CATGGTGGCT TTACCAACAG TACCGGGAAG AGCTGGTGG1 CATGGTGGCT TTACCAACAG TACCGGGAAG AGCTGGTGG

<---<---

Claims (19)

1. Генно-инженерная конструкция для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающая:1. Genetically engineered construct for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, including: - последовательность нуклеотидов SEQ ID NO: 1, кодирующую ген фактора роста гепатоцитов, находящуюся под контролем промотора цитомегаловируса - pCMV-HGF;- the nucleotide sequence SEQ ID NO: 1, encoding the hepatocyte growth factor gene, which is under the control of the cytomegalovirus promoter - pCMV-HGF; - последовательность нуклеотдов SEQ ID NO: 2, кодирующую ген фактора роста эндотелия сосудов, находящуюся под контролем промотора гена β-актина цыпленка - pCAG-VEGF165.- the nucleotide sequence SEQ ID NO: 2, encoding the vascular endothelial growth factor gene under the control of the chicken β-actin gene promoter - pCAG-VEGF165. 2. Генно-инженерная конструкция по п. 1, характеризующаяся тем, что ее конструкция включает следующие последовательно расположенные элементы:2. Genetic engineering design according to claim 1, characterized in that its design includes the following sequentially located elements: Энхансер 1 - CMV enhancer- 36-415 п.о.,Enhancer 1 - CMV enhancer - 36-415 bp, Промотор 1 - pCMV (промотор цитомегаловируса) - 488-691 п.о.,Promoter 1 - pCMV (cytomegalovirus promoter) - 488-691 bp, Ген hHGF - 784-2970 п.о.,HHGF gene - 784-2970 bp, Терминатор 1 - bGH poly А (участок полиаденилирования гена бычьего гормона роста) - 3044-3268 п.о.,Terminator 1 - bGH poly А (polyadenylation site of the bovine growth hormone gene) - 3044-3268 bp, Селективный маркер для отбора трансформированных бактерий - ген устойчивости к антибиотику - 3441-4253 п.о.,Selective marker for the selection of transformed bacteria - antibiotic resistance gene - 3441-4253 bp, Энхансер 2 - CMV enhancer - 4455-4740 п.о.,Enhancer 2 - CMV enhancer - 4455-4740 bp, Промотор 2 - pCAG (промотор гена β-актина цыпленка) - 4742-5019 п.о.,Promoter 2 - pCAG (chicken β-actin gene promoter) - 4742-5019 bp, Гибридный интрон - 5019-5248 п.о.,Hybrid intron - 5019-5248 bp, Ген hVEGF165 - 5278-5853 п.о.,HVEGF165 gene - 5278-5853 bp, Терминатор 2 - SV40 poly А (участок полиаденилирования вируса SV40) - 5908-6029 п.о.,Terminator 2 - SV40 poly A (polyadenylation site of the SV40 virus) - 5908-6029 bp, Точка начала репликации (ori) - 6235-6823 п.о.The origin of replication (ori) is 6235-6823 bp. 3. Применение генно-инженерной конструкции по п. 1 в качестве действующего вещества генотерапевтического средства для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях.3. The use of a genetically engineered construct according to claim 1 as an active substance of a gene therapeutic agent for stimulating angiogenesis in ischemic tissues. 4. Средство для стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающее плазмидную конструкцию по п. 1 и вспомогательные вещества для внутримышечного введения.4. An agent for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, comprising a plasmid construct according to claim 1 and auxiliary substances for intramuscular administration. 5. Средство по п. 4, характеризующееся тем, что в качестве вспомогательных веществ использованы натрия хлорид или вода для инъекций.5. The agent according to claim 4, characterized in that sodium chloride or water for injection are used as auxiliary substances. 6. Способ стимуляции ангиогенеза в ишемизированных тканях, включающий внутримышечное введение лекарственного средства по п. 4 в терапевтически эффективном количестве.6. A method for stimulating angiogenesis in ischemic tissues, comprising intramuscular administration of a drug according to claim 4 in a therapeutically effective amount.
RU2019135603A 2019-11-06 2019-11-06 Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation RU2737487C1 (en)

Priority Applications (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019135603A RU2737487C1 (en) 2019-11-06 2019-11-06 Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation
PCT/RU2021/050002 WO2021091434A2 (en) 2019-11-06 2021-01-05 Genetic engineering construct for stimulating angiogenesis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2019135603A RU2737487C1 (en) 2019-11-06 2019-11-06 Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2737487C1 true RU2737487C1 (en) 2020-12-01

Family

ID=73792491

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2019135603A RU2737487C1 (en) 2019-11-06 2019-11-06 Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation

Country Status (2)

Country Link
RU (1) RU2737487C1 (en)
WO (1) WO2021091434A2 (en)

Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1204247C (en) * 2001-06-15 2005-06-01 中国人民解放军军事医学科学院百环生物医学研究中心 Recombined adenovirus and its use in curing myocardial ischemia
RU2449799C2 (en) * 2009-10-30 2012-05-10 Федеральное Государственное Учреждение "Российский кардиологический научно-производственный комплекс Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Agent promoting therapeutic angiogenesis and method for implementation thereof

Family Cites Families (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US6753321B2 (en) * 2000-09-15 2004-06-22 Genvec, Inc. Method of modulating neovascularization
CN102242148A (en) * 2010-10-09 2011-11-16 苏州大学 Recombinant vector, fibroin film modified by transgenic marrow stromal cells and application thereof

Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN1204247C (en) * 2001-06-15 2005-06-01 中国人民解放军军事医学科学院百环生物医学研究中心 Recombined adenovirus and its use in curing myocardial ischemia
RU2449799C2 (en) * 2009-10-30 2012-05-10 Федеральное Государственное Учреждение "Российский кардиологический научно-производственный комплекс Федерального агентства по высокотехнологичной медицинской помощи" Agent promoting therapeutic angiogenesis and method for implementation thereof

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MAKAREVICH P.I. et al., Angiogenic and pleiotropic effects of VEGF165 and HGF combined gene therapy in a rat model of myocardial infarction, 2018, PLoS ONE, v.13, n.5, e0197566. *
СЛОБОДКИНА Е.А. и др., Разработка генотерапевтической плазмидной конструкции, кодирующей фактор роста гепатоцитов (HGF) и фактор роста эндотелия сосудов (VEGF165), Материалы III Национального конгресса по регенеративной медицине, Москва, 15-18 ноября 2017 г., Гены и Клетки, 2017, т.XII, н.3, с.227. MASAKII.et al., Angiogenic gene therapy for experimental critical limb ischemia: acceleration of limb loss by overexpression of vascular endothelial growth factor 165 but not of fibroblast growth factor-2,Circ. Res., 2002,v.90, n.9, p.966-973. *

Also Published As

Publication number Publication date
WO2021091434A3 (en) 2021-09-23
WO2021091434A8 (en) 2021-06-10
WO2021091434A2 (en) 2021-05-14
WO2021091434A9 (en) 2021-07-08

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP2023089132A (en) Non-Integrating DNA Vectors for Genetic Modification of Cells
EA027315B1 (en) Nucleic acid molecule and protein for inducing immune response against prostate cancer antigen, plasmid, expression vector, method of treatment and pharmaceutical composition
KR102248420B1 (en) Recombinant vector containing target sequence for miR-142-3p
CN113613668A (en) Miniaturized dystrophin protein and uses thereof
KR20210025122A (en) Neuropathy treatment with IGF-1-encoding DNA constructs and HGF-encoding DNA constructs
KR20160005333A (en) The use of sdf-1 to mitigate scar formation
CN113302202B (en) Treatment of neuropathy with DNA constructs expressing insulin-like growth factor 1 isoforms
WO2008039909A1 (en) Genetic modification of targeted regions of the cardiac conduction system
RU2737487C1 (en) Genetic engineering structure for angiogenesis stimulation
HUE032520T2 (en) A pharmaceutical composition comprising pcmv-vegf165 for stimulation of angiogenesis
AU2007212260A1 (en) Method for treating peripheral arterial disease with zinc finger proteins
JP2019031511A (en) Composition having hypoxia-inducible factor-1 alpha and method of using the composition
EP3889263A1 (en) Mutated human 2ig-b7-h3 protein coding gene, recombinant vector, host cell containing same, pharmaceutical composition and application thereof
US8734780B2 (en) Methods for treating cardiac pacing conditions
CN115335525B (en) Modified channel rhodopsin
F. Rossiter et al. Report of the MDA gene therapy conference, Tucson, Arizona, September 27–28, 1991
RU2781980C2 (en) Treatment of neuropathy with dna structures encoding igf-1 and dna structures encoding hgf
AU783059C (en) Recombinant sequence, its preparation and use
CN100372572C (en) Recombinant plasmid carrying human thymosin β4 gene
KR20210070221A (en) Pharmaceutical Composition for Treating Macular Degeneration Containing AAV Including cDNA of Soluble VEGFR-1 Variant
EP1556494A2 (en) Bicistronic vector encoding a vegf and an fgf, use thereof
US20050186632A1 (en) Transcription activator
TR201613791A2 (en) Combination of inducible promoters and therapeutic genes for the prevention and treatment of inflammatory, autoimmune and allergic diseases and prevention of organ rejection in organ transplants
KR20030068337A (en) Eukaryotic expression vector for human gene therapy