[go: up one dir, main page]

RU2768156C1 - Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment - Google Patents

Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment Download PDF

Info

Publication number
RU2768156C1
RU2768156C1 RU2021115743A RU2021115743A RU2768156C1 RU 2768156 C1 RU2768156 C1 RU 2768156C1 RU 2021115743 A RU2021115743 A RU 2021115743A RU 2021115743 A RU2021115743 A RU 2021115743A RU 2768156 C1 RU2768156 C1 RU 2768156C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
flap
skin
thickness
dermis
matrix
Prior art date
Application number
RU2021115743A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Карина Игоревна Мелконян
Александр Сергеевич Сотниченко
Александр Александрович Веревкин
Татьяна Викторовна Русинова
Алевтина Сергеевна Асякина
Яна Андреевна Козмай
Original Assignee
Карина Игоревна Мелконян
Александр Сергеевич Сотниченко
Татьяна Викторовна Русинова
Яна Андреевна Козмай
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Карина Игоревна Мелконян, Александр Сергеевич Сотниченко, Татьяна Викторовна Русинова, Яна Андреевна Козмай filed Critical Карина Игоревна Мелконян
Priority to RU2021115743A priority Critical patent/RU2768156C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2768156C1 publication Critical patent/RU2768156C1/en

Links

Classifications

    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61BDIAGNOSIS; SURGERY; IDENTIFICATION
    • A61B17/00Surgical instruments, devices or methods
    • A61B17/32Surgical cutting instruments
    • A61B17/322Skin grafting apparatus
    • AHUMAN NECESSITIES
    • A61MEDICAL OR VETERINARY SCIENCE; HYGIENE
    • A61LMETHODS OR APPARATUS FOR STERILISING MATERIALS OR OBJECTS IN GENERAL; DISINFECTION, STERILISATION OR DEODORISATION OF AIR; CHEMICAL ASPECTS OF BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES; MATERIALS FOR BANDAGES, DRESSINGS, ABSORBENT PADS OR SURGICAL ARTICLES
    • A61L27/00Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses
    • A61L27/36Materials for grafts or prostheses or for coating grafts or prostheses containing ingredients of undetermined constitution or reaction products thereof, e.g. transplant tissue, natural bone, extracellular matrix
    • GPHYSICS
    • G09EDUCATION; CRYPTOGRAPHY; DISPLAY; ADVERTISING; SEALS
    • G09BEDUCATIONAL OR DEMONSTRATION APPLIANCES; APPLIANCES FOR TEACHING, OR COMMUNICATING WITH, THE BLIND, DEAF OR MUTE; MODELS; PLANETARIA; GLOBES; MAPS; DIAGRAMS
    • G09B23/00Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes
    • G09B23/28Models for scientific, medical, or mathematical purposes, e.g. full-sized devices for demonstration purposes for medicine

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Surgery (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Animal Behavior & Ethology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Veterinary Medicine (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Public Health (AREA)
  • Medical Informatics (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Heart & Thoracic Surgery (AREA)
  • Nuclear Medicine, Radiotherapy & Molecular Imaging (AREA)
  • Transplantation (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Mathematical Optimization (AREA)
  • Educational Technology (AREA)
  • Algebra (AREA)
  • Mathematical Analysis (AREA)
  • Plastic & Reconstructive Surgery (AREA)
  • Mathematical Physics (AREA)
  • Pure & Applied Mathematics (AREA)
  • Business, Economics & Management (AREA)
  • Educational Administration (AREA)
  • Computational Mathematics (AREA)
  • Theoretical Computer Science (AREA)
  • Botany (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Dermatology (AREA)
  • Oral & Maxillofacial Surgery (AREA)
  • Epidemiology (AREA)
  • Materials For Medical Uses (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: invention refers to experimental medicine, namely to regenerative medicine, plastic surgery. On the side surface of a pig at age of 3.5–6 months, section of 20–25 × 60–70 cm is marked. Single sample of a full-thickness skin flap is cut. Sample is uniformly placed on the roller; the flap is stretched with Kocher clamps. Epidermal layer is removed using a dermatome. Then, using a disk knife with diameter of 100 mm with the condition of its perpendicular position relative to the flap surface, 1–3 derma samples are cut out for a matrix with size of 10±0.5 × 20 cm and thickness of 0.7 mm.
EFFECT: method enables to obtain samples without epidermis, with precisely specified thickness and dimensions, which provides further production of high-quality acellular dermal matrix (ADM) with optimal characteristics for use as a fixing material in reconstructive plastic surgery.
1 cl, 4 ex

Description

Предлагаемое изобретение относится к экспериментальной медицине, а именно к регенеративной медицине и может быть использовано при создании свиного ацеллюлярного дермального матрикса (АДМ) в качестве фиксирующего материала в реконструктивной пластической хирургии при онкологических заболеваниях молочной железы.The present invention relates to experimental medicine, namely to regenerative medicine, and can be used to create a porcine acellular dermal matrix (ADM) as a fixing material in reconstructive plastic surgery for breast cancer.

Рак молочной железы является одним из часто встречающимся онкологическим заболеванием женского населения, занимая в структуре заболеваемости злокачественными новообразованиями в России 20,7% [Каприн А.Д., Старинский В.В., Петрова Г.В. Злокачественные новообразования в России в 2013 г. (Заболеваемость и смертность) М.: МНИОИ им. П.А. Герцена филиал ФГБУ «НМИРЦ» Минздрава России, 2015. С. 250].Breast cancer is one of the most common oncological diseases of the female population, occupying 20.7% in the structure of the incidence of malignant neoplasms in Russia [Kaprin A.D., Starinsky V.V., Petrova G.V. Malignant neoplasms in Russia in 2013 (morbidity and mortality) M.: MNIOI im. P.A. Herzen branch of the Federal State Budgetary Institution "NMIRC" of the Ministry of Health of Russia, 2015. P. 250].

Реконструктивная пластическая хирургия с использованием бесклеточного фиксирующего биоматрикса позволит решить проблему дефицита мягких тканей после мастэктомии. Применение инновационных биоматриксов с невысокой себестоимостью сделает возможным сохранение большой грудной мышцы и ее функции, что позволит улучшить качество жизни пациенток и ускорить социальную реабилитацию [Ермощенкова М.В. и др. Применение биологических и синтетических материалов при реконструктивно-пластических операциях у больных раком молочной железы //Research'n Practical Medicine Journal. - 2017. - Т. 4. - №. 1].Reconstructive plastic surgery using a cell-free fixing biomatrix will solve the problem of soft tissue deficiency after mastectomy. The use of innovative low-cost biomatrices will make it possible to preserve the pectoralis major muscle and its function, which will improve the quality of life of patients and accelerate social rehabilitation [Ermoshchenkova M.V. et al. The use of biological and synthetic materials in reconstructive plastic surgery in patients with breast cancer //Research'n Practical Medicine Journal. - 2017. - Vol. 4. - No. one].

Для проведения маммопластики только одной молочной железы необходимый размер матрикса составляет 10 × 20 см, поэтому в хирургической практике приходится сшивать имеющиеся в продаже матриксы, что снижает их механическую прочность и, соответственно, клиническую эффективность их применения [Lanier S.Т. et al. The effect of acellular dermal matrix use on complication rates in tissue expander/implant breast reconstruction //Annals of plastic surgery. - 2010. - T. 64. - №. 5. - C. 674-678]. Кроме того, предоперационная подготовка матрикса требуемого размера может привести к бактериальной контаминации материалов.To perform mammoplasty of only one breast, the required matrix size is 10 × 20 cm, therefore, in surgical practice, commercially available matrices have to be stitched together, which reduces their mechanical strength and, accordingly, the clinical effectiveness of their use [Lanier S.T. et al. The effect of acellular dermal matrix use on complication rates in tissue expander/implant breast reconstruction //Annals of plastic surgery. - 2010. - T. 64. - no. 5. - C. 674-678]. In addition, preoperative preparation of a matrix of the required size can lead to bacterial contamination of materials.

Результатом проекта будет бесклеточный биоматрикс необходимого размера, представляющий собой перфорированный лоскут обработанной детергенто-энзиматическим способом свиной дермы, пригодный для имплантации в ходе экспериментальной восстановительной пластики с целью прочной фиксации модельного протеза. Таким образом, для реализации поставленной цели необходимо разработать методику забора дермы лоскутом размером не менее 10 × 20 см и толщиной 0,7 мм.The result of the project will be a cell-free biomatrix of the required size, which is a perforated flap of porcine dermis treated with a detergent-enzymatic method, suitable for implantation during experimental restorative plasty in order to firmly fix the model prosthesis. Thus, to achieve this goal, it is necessary to develop a technique for sampling the dermis with a flap of at least 10 × 20 cm in size and 0.7 mm thick.

В настоящее время разработаны протоколы забора донорской кожи только ограниченными по размеру лоскутами. Для создания дермального матрикса, необходимого для использования в реконструктивной пластической хирургии необходим больший размер дермального матрикса [Glasberg S.В., Light D. AlloDerm and Strattice in breast reconstruction: a comparison and techniques for optimizing outcomes //Plastic and reconstructive surgery. - 2012. - T. 129. - №. 6. - C. 1223-1233.; Macadam S.A., Lennox P.A. Acellular dermal matrices: economic considerations in reconstructive and aesthetic breast surgery //Clinics in plastic surgery. - 2012. - T. 39. - №. 2. - C. 187-216]Currently, protocols have been developed for taking donor skin using only flaps limited in size. To create a dermal matrix necessary for use in reconstructive plastic surgery, a larger size of the dermal matrix is required [Glasberg S.V., Light D. AlloDerm and Strattice in breast reconstruction: a comparison and techniques for optimizing outcomes //Plastic and reconstructive surgery. - 2012. - T. 129. - No. 6. - C. 1223-1233.; Macadam S.A., Lennox P.A. Acellular dermal matrices: economic considerations in reconstructive and aesthetic breast surgery //Clinics in plastic surgery. - 2012. - T. 39. - no. 2. - C. 187-216]

В частности, известен способ забора расщепленного кожного аутотрансплантата (РКА). РКА представляет собой часть ткани, состоящей из эпидермиса и дермы. Они могут различаться толщиной - от 0,02 см до 0,5 см. Метод заключается в том, что надсекают кожу по периметру формы аутотрансплантата требуемого размера, переводят плоскость надсечения в плоскость рассечения параллельной поверхности кожи, направляя острие рассекающего инструмента в сторону забираемого участка кожи на требуемой глубине до образования свободного края забираемого участка кожи, после чего этот край заворачивают внутренней поверхностью наружу и сдвигают по поверхности кожи с образованием натяжения между забираемым участком кожи и глубокими слоями кожи, затем поэтапно надсекают натянутые слои, регулируя толщину забираемого расщепленного кожного аутотрансплантата уровнем надсечения, и сдвигают свободный его край до получения аутотрансплантата требуемых формы и размера [Адамян Р.Т. и соавт. Патент РФ на изобретение №2234261 С1 от 20.08.2004 г. «Способ забора расщепленного кожного аутотрансплантата»].In particular, a split skin autograft (RCA) sampling method is known. RCA is a part of the tissue consisting of the epidermis and dermis. They can vary in thickness - from 0.02 cm to 0.5 cm. The method consists in incising the skin along the perimeter of the autograft form of the required size, transferring the incision plane to the plane of dissection parallel to the skin surface, directing the tip of the dissecting instrument towards the skin area to be taken at the required depth until the formation of the free edge of the skin area to be taken, after which this edge is wrapped with the inner surface outward and shifted over the skin surface with the formation of tension between the skin area to be taken and the deep layers of the skin, then the stretched layers are gradually incised, adjusting the thickness of the taken split skin autograft by the level of incision , and shift its free edge to obtain an autograft of the required shape and size [Adamyan R.T. et al. RF patent for the invention No. 2234261 C1 dated 20.08.2004 "Method of harvesting a split skin autograft"].

Недостатками данного способа является источник исходного сырья - кожа человека, что требует проведения тщательных исследований с целью исключения потенциальных инфекций у доноров. Такой источник сырья ограничивает возможность получения больших по площади лоскутов. Также недостатком является забор дермы одновременно с эпидермисом, удаление которого из материала с целью создания дермального ацеллюлярного матрикса является достаточно трудоемкой процедурой.The disadvantages of this method is the source of raw materials - human skin, which requires careful research to exclude potential infections in donors. Such a source of raw materials limits the possibility of obtaining large flaps. Also, the disadvantage is the sampling of the dermis simultaneously with the epidermis, the removal of which from the material in order to create a dermal acellular matrix is a rather laborious procedure.

В качестве ближайшего аналога был взят способ кожной пластики комбинированными кожными аутотрансплантатами при глубоких ожогах кожи, где срезают с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермальный лоскут толщиной 0,3 мм. Формируют комбинированные трансплантаты путем установки диска электродерматома таким образом, что половина его диаметра располагается над предыдущей донорской раной, а другая половина над здоровой кожей, прилежащей к донорской ране, тем самым получают комбинированный трансплантат, состоящий из 2 частей: половина ширины представлена дермальным компонентом, а другая половина - эпидермальный, причем соотношение ширины эпидермальной и дермальной частей составляет 1:1 [Логинов Л.П. и соавт. Патент РФ на изобретение №2434595 C1 от 27.11.2011 г. «Способ кожной пластики комбинированными кожными аутотрансплантатами при глубоких ожогах кожи»].As the closest analogue, the method of skin grafting with combined skin autografts for deep skin burns was taken, where an epidermal flap 0.3 mm thick is cut from the donor site with a disk electrodermatome. Combined grafts are formed by placing an electrodermatome disk in such a way that half of its diameter is located above the previous donor wound, and the other half is above the healthy skin adjacent to the donor wound, thereby obtaining a combined graft consisting of 2 parts: half of the width is represented by the dermal component, and the other half is epidermal, and the ratio of the width of the epidermal and dermal parts is 1:1 [Loginov L.P. et al. RF patent for the invention No. 2434595 C1 dated November 27, 2011 “Method of skin grafting with combined skin autografts for deep skin burns”].

Основными недостатками данного способа является адаптация метода к забору лоскутов шириной не более 4-5 см, взятие образцов разного гистологического состава: половина ширины представлена дермальным компонентом (лишенным эпидермиса), а другая половина - эпидермальным (покрыта эпидермисом).The main disadvantages of this method are the adaptation of the method to the collection of flaps with a width of no more than 4-5 cm, taking samples of different histological composition: half of the width is represented by the dermal component (devoid of the epidermis), and the other half is epidermal (covered with the epidermis).

Задачи:Tasks:

- исключить использование кожи человека;- exclude the use of human skin;

- исключить наличие эпидермиса в получаемом образце дермы, за счет чего сократить стоимость получения дермального матрикса;- exclude the presence of the epidermis in the resulting dermis sample, thereby reducing the cost of obtaining the dermal matrix;

- повысить качество образца для эксперимента;- improve the quality of the sample for the experiment;

- обеспечить равномерную толщину образца (0,7 мм) на всем протяжении;- ensure uniform sample thickness (0.7 mm) throughout;

- получить образец дермы свиньи размерами не менее чем 10±0,5 × 20 см;- obtain a sample of the porcine dermis with dimensions not less than 10±0.5 × 20 cm;

- расширить возможности получения дермы для создания АДМ с оптимальными характеристиками для использования его в качестве фиксирующего материала в реконструктивной пластической хирургии.- expand the possibilities of obtaining the dermis to create an ADM with optimal characteristics for use as a fixing material in reconstructive plastic surgery.

Сущностью предложенного изобретения является то, что для создания ацеллюлярного дермального матрикса (АДМ) предварительно намечают на боковой поверхности свиньи участок размером 20-25 × 60-70 см, вырезают единый образец полнослойного кожного лоскута, образец равномерно размещают на валик, лоскут растягивают зажимами Кохера, после чего удаляют эпидермальный слой с помощью дерматома; затем дисковым ножом диаметром 100 мм с условием его перпендикулярного расположения относительно поверхности лоскута вырезают 1-3 образца дермы для матрикса размерами 10±0,5 × 20 см и толщиной 0,7 мм.The essence of the proposed invention is that in order to create an acellular dermal matrix (ADM), a section of 20-25 × 60-70 cm in size is preliminarily marked on the lateral surface of the pig, a single sample of a full-thickness skin flap is cut out, the sample is evenly placed on a roller, the flap is stretched with Kocher clamps, after which the epidermal layer is removed using a dermatome; then, using a circular knife with a diameter of 100 mm, with the condition of its perpendicular position relative to the surface of the flap, 1-3 samples of the dermis for the matrix are cut out with dimensions of 10 ± 0.5 × 20 cm and a thickness of 0.7 mm.

Техническим результатом является получение 1-3 образцов дермы размерами не менее чем 10±0,5 × 20 см и толщиной 0,7 мм. Использование предварительно снятого кожного лоскута вместо забора образцов дермы непосредственно с боковой поверхности тела животного позволяет получать образцы без эпидермиса, с точно заданной толщиной и размерами, что обеспечивает дальнейшее получение АДМ с оптимальными характеристиками, а также с более низкой себестоимостью для использования его в качестве фиксирующего материала в реконструктивной пластической хирургии.The technical result is to obtain 1-3 samples of the dermis with dimensions not less than 10 ± 0.5 × 20 cm and a thickness of 0.7 mm. The use of a previously removed skin flap instead of sampling the dermis directly from the lateral surface of the animal's body makes it possible to obtain samples without epidermis, with precisely specified thickness and dimensions, which ensures further obtaining of ADM with optimal characteristics, as well as at a lower cost for using it as a fixing material in reconstructive plastic surgery.

Способ апробирован в лабораторных условиях в течение 1,5 лет на биологическом материале (дерма) экспериментальных животных (свиньи породы Ландрас). Результаты полностью подтвердили решаемые задачи. Получены образцы дермы, не содержащие эпидермиса, с равномерной толщиной образца 0,7 мм на всем протяжении, размерами не менее чем 10±0,5 × 20 см.The method has been tested in laboratory conditions for 1.5 years on biological material (dermis) of experimental animals (Landrace pigs). The results fully confirmed the tasks to be solved. Dermis samples were obtained that did not contain epidermis, with a uniform sample thickness of 0.7 mm throughout, dimensions of at least 10 ± 0.5 × 20 cm.

Способ осуществляют следующим образом: в условиях операционной животное в состоянии наркоза укладывают на бок, производится разметка донорского участка размером 20-25 × 60-70 см, включающего области ягодиц, спины, боковой поверхности живота и шеи. При помощи шприца выполняют инъекционное пропитывание подкожной жировой клетчатки физиологическим раствором. Затем производят одномоментный разрез кожи по намеченному контуру и равномерными пилящими движениями скальпеля по плоскости получают полнослойный кожный лоскут на всей площади забора единым образцом, включающим эпидермис, дерму, мозаичные участки жировой ткани. Далее забранный кожный лоскут помещают на валик, растягивают зажимами Кохера, создавая равномерное натяжение на всей площади, обрабатывают вазелиновым маслом и срезают с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермис, на котором предварительно установлена величина зазора 0,7 мм, подготавливая лоскут к забору дермы. Далее электродерматомом с диметром дискового ножа 100 мм производят забор образцов дермы толщиной 0,7 мм в направлении, перпендикулярном направлению лоскута.The method is carried out as follows: under operating conditions, the animal in a state of anesthesia is laid on its side, the donor site is marked with a size of 20-25 × 60-70 cm, including the areas of the buttocks, back, lateral surface of the abdomen and neck. With the help of a syringe, injection impregnation of subcutaneous adipose tissue with saline is performed. Then, a single skin incision is made along the intended contour and with uniform sawing movements of the scalpel along the plane, a full-thickness skin flap is obtained over the entire sampling area with a single sample, including the epidermis, dermis, and mosaic areas of adipose tissue. Next, the collected skin flap is placed on a roller, stretched with Kocher clamps, creating a uniform tension over the entire area, treated with vaseline oil, and the epidermis is cut off from the donor site with a disk electrodermatome, on which a gap of 0.7 mm is preliminarily set, preparing the flap for dermal sampling. Next, using an electrodermatome with a disk knife diameter of 100 mm, dermal samples 0.7 mm thick are taken in a direction perpendicular to the direction of the flap.

Пример 1. В условиях операционной животное возрастом 3,5 месяца в состоянии наркоза уложили на бок, произвели разметку донорского участка размером 25 × 60 см, включающего области ягодиц, спины, боковой поверхности живота и шеи. При помощи шприца выполнили инъекционное пропитывание подкожной жировой клетчатки физиологическим раствором. Затем произвели одномоментный разрез кожи по намеченному контуру и равномерными пилящими движениями скальпеля по плоскости получили полнослойный кожный лоскут на всей площади забора единым образцом, включающим эпидермис, дерму, мозаичные участки жировой ткани. Далее забранный кожный лоскут поместили на валик, растянули зажимами Кохера, создавая равномерное натяжение на всей площади, обработали вазелиновым маслом и срезали с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермис, подготавливая лоскут к забору дермы. Далее электродерматомом с диметром дискового ножа 100 мм произвели забор 3 образцов дермы толщиной 0,7 мм в направлении, перпендикулярном направлению лоскута, размером 10,5 × 20 см.Example 1. Under operating conditions, an animal aged 3.5 months in a state of anesthesia was laid on its side, a donor area 25 × 60 cm in size was marked, including the buttocks, back, lateral surface of the abdomen and neck. Using a syringe, the subcutaneous adipose tissue was impregnated with physiological saline. Then, a single skin incision was made along the intended contour and with uniform sawing movements of the scalpel along the plane, a full-thickness skin flap was obtained over the entire sampling area in a single sample, including the epidermis, dermis, and mosaic areas of adipose tissue. Next, the collected skin flap was placed on a roller, stretched with Kocher clamps, creating a uniform tension over the entire area, treated with vaseline oil, and the epidermis was cut from the donor site with a disc electrodermatome, preparing the flap for dermis sampling. Then, using an electrodermatome with a disk knife diameter of 100 mm, 3 dermal samples 0.7 mm thick were taken in the direction perpendicular to the direction of the flap, 10.5 × 20 cm in size.

Пример 2. В условиях операционной животное возрастом 4 месяца в состоянии наркоза уложили на бок, произвели разметку донорского участка размером 20 × 70 см, включающего области ягодиц, спины, боковой поверхности живота и шеи. При помощи шприца выполнили инъекционное пропитывание подкожной жировой клетчатки физиологическим раствором. Затем произвели одномоментный разрез кожи по намеченному контуру и равномерными пилящими движениями скальпеля по плоскости получили полнослойный кожный лоскут на всей площади забора единым образцом, включающим эпидермис, дерму, мозаичные участки жировой ткани. Далее забранный кожный лоскут поместили на валик, лоскут растянули зажимами Кохера, создавая равномерное натяжение на всей площади, обработали вазелиновым маслом и срезали с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермис, подготавливая лоскут к забору дермы. Далее электродерматомом с диметром дискового ножа 100 мм произвели забор 3 образцов дермы толщиной 0,7 мм в направлении, перпендикулярном направлению лоскута размером 9,5 × 20 см.Example 2. Under the conditions of the operating room, a 4-month-old animal in a state of anesthesia was laid on its side, a donor site 20 × 70 cm in size was marked, including the buttocks, back, lateral surface of the abdomen and neck. Using a syringe, the subcutaneous adipose tissue was impregnated with physiological saline. Then, a single skin incision was made along the intended contour and with uniform sawing movements of the scalpel along the plane, a full-thickness skin flap was obtained over the entire sampling area in a single sample, including the epidermis, dermis, and mosaic areas of adipose tissue. Next, the collected skin flap was placed on a roller, the flap was stretched with Kocher clamps, creating a uniform tension over the entire area, treated with vaseline oil, and the epidermis was cut from the donor site with a disk electrodedermatome, preparing the flap for dermal sampling. Then, using an electrodermatome with a disk knife diameter of 100 mm, 3 dermal samples 0.7 mm thick were taken in the direction perpendicular to the direction of the 9.5 × 20 cm flap.

Пример 3. В условиях операционной животное возрастом 5 месяцев в состоянии наркоза уложили на бок, произвели разметку донорского участка размером 24 × 65 см, включающего области ягодиц, спины, боковой поверхности живота и шеи. При помощи шприца выполнили инъекционное пропитывание подкожной жировой клетчатки физиологическим раствором. Затем произвели одномоментный разрез кожи по намеченному контуру и равномерными пилящими движениями скальпеля по плоскости получили полнослойный кожный лоскут на всей площади забора единым образцом, включающим эпидермис, дерму, мозаичные участки жировой ткани. Далее забранный кожный лоскут поместили на валик, лоскут растянули зажимами Кохера, создавая равномерное натяжение на всей площади, обработали вазелиновым маслом и срезали с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермис, подготавливая лоскут к забору дермы. После этого электродерматомом с диметром дискового ножа 100 мм произвели забор 3 образцов дермы толщиной 0,7 мм в направлении, перпендикулярном направлению лоскута размером 10,2 × 20 см.Example 3. Under the conditions of the operating room, a 5-month-old animal in a state of anesthesia was laid on its side, a donor site measuring 24 × 65 cm was marked, including the buttocks, back, lateral surface of the abdomen and neck. Using a syringe, the subcutaneous adipose tissue was impregnated with physiological saline. Then, a single skin incision was made along the intended contour and with uniform sawing movements of the scalpel along the plane, a full-thickness skin flap was obtained over the entire sampling area in a single sample, including the epidermis, dermis, and mosaic areas of adipose tissue. Next, the collected skin flap was placed on a roller, the flap was stretched with Kocher clamps, creating a uniform tension over the entire area, treated with vaseline oil, and the epidermis was cut from the donor site with a disk electrodedermatome, preparing the flap for dermal sampling. After that, 3 dermal samples 0.7 mm thick were taken with an electrodermatome with a disc knife diameter of 100 mm in the direction perpendicular to the direction of the 10.2 × 20 cm flap.

Пример 4. В условиях операционной животное возрастом 4,5 месяца в состоянии наркоза уложили на бок, произвели разметку донорского участка размером 25 × 70 см, включающего области ягодиц, спины, боковой поверхности живота и шеи. При помощи шприца выполнили инъекционное пропитывание подкожной жировой клетчатки физиологическим раствором. Затем произвели одномоментный разрез кожи по намеченному контуру и равномерными пилящими движениями скальпеля по плоскости получили полнослойный кожный лоскут на всей площади забора единым образцом, включающим эпидермис, дерму, мозаичные участки жировой ткани. Далее забранный кожный лоскут поместили на валик, лоскут растянули зажимами Кохера, создавая равномерное натяжение на всей площади, обработали вазелиновым маслом и срезали с донорского участка дисковым электродерматомом эпидермис, подготавливая лоскут к забору дермы. После этого электродерматомом с диметром дискового ножа 100 мм произвели забор 3 образцов дермы толщиной 0,7 мм в направлении, перпендикулярном направлению лоскута размером 10 × 20 см.Example 4. Under the conditions of the operating room, a 4.5-month-old animal in a state of anesthesia was laid on its side, a donor area 25 × 70 cm in size was marked, including the buttocks, back, lateral surface of the abdomen and neck. Using a syringe, the subcutaneous adipose tissue was impregnated with physiological saline. Then, a single skin incision was made along the intended contour and with uniform sawing movements of the scalpel along the plane, a full-thickness skin flap was obtained over the entire sampling area in a single sample, including the epidermis, dermis, and mosaic areas of adipose tissue. Next, the collected skin flap was placed on a roller, the flap was stretched with Kocher clamps, creating a uniform tension over the entire area, treated with vaseline oil, and the epidermis was cut from the donor site with a disk electrodedermatome, preparing the flap for dermal sampling. After that, 3 dermal samples 0.7 mm thick were taken with an electrodermatome with a disk knife diameter of 100 mm in the direction perpendicular to the direction of the 10 × 20 cm flap.

Claims (1)

Способ подготовки дермы свиньи для создания ацеллюлярного дермального матрикса (АДМ) в эксперименте, заключающийся в том, что предварительно на боковой поверхности свиньи, в возрасте 3,5-6 месяцев, намечают участок размером 20-25 × 60-70 см, вырезают единый образец полнослойного кожного лоскута, образец равномерно размещают на валик, лоскут растягивают зажимами Кохера, после чего удаляют эпидермальный слой с помощью дерматома; затем дисковым ножом диаметром 100 мм с условием его перпендикулярного расположения относительно поверхности лоскута вырезают 1-3 образцов дермы для матрикса размерами 10±0,5 × 20 см и толщиной 0,7 мм.A method for preparing the dermis of a pig for creating an acellular dermal matrix (ADM) in an experiment, which consists in preliminarily marking an area of 20-25 × 60-70 cm in size on the lateral surface of a pig, at the age of 3.5-6 months, and cutting out a single sample a full-thickness skin flap, the sample is evenly placed on the roller, the flap is stretched with Kocher clamps, after which the epidermal layer is removed using a dermatome; then, using a disc knife with a diameter of 100 mm, with the condition of its perpendicular position relative to the surface of the flap, 1-3 samples of the dermis for the matrix are cut out with dimensions of 10 ± 0.5 × 20 cm and a thickness of 0.7 mm.
RU2021115743A 2021-05-31 2021-05-31 Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment RU2768156C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021115743A RU2768156C1 (en) 2021-05-31 2021-05-31 Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2021115743A RU2768156C1 (en) 2021-05-31 2021-05-31 Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2768156C1 true RU2768156C1 (en) 2022-03-23

Family

ID=80819315

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2021115743A RU2768156C1 (en) 2021-05-31 2021-05-31 Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2768156C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2234261C1 (en) * 2003-05-28 2004-08-20 Российский научный центр хирургии РАМН Method for sampling split cutaneous autotransplant
WO2012019094A2 (en) * 2010-08-06 2012-02-09 MoMelan Technologies, Inc. Methods for preparing a skin graft
RU2704489C1 (en) * 2018-12-10 2019-10-29 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр Российской Федерации - Федеральный Медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна Федерального Медико-биологического агентства" (ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна ФМБА России) Method for production of cell-free matrix of derma for further reconstruction of extensive defects of soft tissues

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2234261C1 (en) * 2003-05-28 2004-08-20 Российский научный центр хирургии РАМН Method for sampling split cutaneous autotransplant
WO2012019094A2 (en) * 2010-08-06 2012-02-09 MoMelan Technologies, Inc. Methods for preparing a skin graft
RU2704489C1 (en) * 2018-12-10 2019-10-29 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр Российской Федерации - Федеральный Медицинский биофизический центр имени А.И. Бурназяна Федерального Медико-биологического агентства" (ФГБУ ГНЦ ФМБЦ им. А.И. Бурназяна ФМБА России) Method for production of cell-free matrix of derma for further reconstruction of extensive defects of soft tissues

Non-Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
KIM JOHN Y. S. et al. What’s New in Acellular Dermal Matrix and Soft-Tissue Support for Prosthetic Breast Reconstruction. Plastic and Reconstructive Surgery, 2017, 140, 30S-43S. *
СОТНИЧЕНКО А.С. и др. Разработка методики получения дермального внеклеточного матрикса, Вестник трансплантологии и искусственных органов, 2019. т. 21, no. 4, с. 81-87. *
СОТНИЧЕНКО А.С. и др. Разработка методики получения дермального внеклеточного матрикса, Вестник трансплантологии и искусственных органов, 2019. т. 21, no. 4, с. 81-87. KIM JOHN Y. S. et al. What’s New in Acellular Dermal Matrix and Soft-Tissue Support for Prosthetic Breast Reconstruction. Plastic and Reconstructive Surgery, 2017, 140, 30S-43S. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7642523B2 (en) Methods and devices for tissue transplantation and replication
Kirsner The use of Apligraf in acute wounds
JP2024088734A (en) Method and device for tissue transplantation
Valencia et al. Skin grafting
JPH0747043B2 (en) Synthetic living skin equivalent
JPH0636815B2 (en) Method for producing cellulose film as a substitute for artificial film
JPS62246508A (en) Method of stimulating hair sprout
JP2002504412A (en) Live chimera skin replacement
RU2768156C1 (en) Method for preparing porcine dermis for creating acellular dermal matrix in experiment
Blaise et al. A murine model of a burn wound reconstructed with an allogeneic skin graft
CA1294875C (en) Epidermal cell extracts and method to enhance wound healing and regenerate epidermis
Davis The small deep graft: relationship to the true reverdin graft
Cahn et al. Cellular-and acellular-based therapies: skin substitutes and matrices
Koller et al. The use of allogeneic cultivated keratinocytes for the early coverage of deep dermal burns–indications, results and problems
CN1062441C (en) composite living skin equivalents
RU2375017C1 (en) Method of through subtotal defect of inferior eyelid plastics
Lofêgo Filho et al. Skin grafts in cutaneous oncology
RU2632776C1 (en) Method for surgical treatment of deep total burns of face
Savant Skin Grafting
RU2234261C1 (en) Method for sampling split cutaneous autotransplant
RU2692637C1 (en) Method for eliminating atrophic soft tissue scars
Majid Thin and Ultra‐Thin Skin Grafts for Vitiligo
RU2178994C1 (en) Method to conduct plasty of extensive defects of soft tissues in children
Ehab Non-cultured epidermal cells suspended in either platelet-rich plasma or ringer lactate for stable vitiligo: A prospective comparative study