[go: up one dir, main page]

RU2604124C1 - Agent for treating osteomyelitis - Google Patents

Agent for treating osteomyelitis Download PDF

Info

Publication number
RU2604124C1
RU2604124C1 RU2015146560/15A RU2015146560A RU2604124C1 RU 2604124 C1 RU2604124 C1 RU 2604124C1 RU 2015146560/15 A RU2015146560/15 A RU 2015146560/15A RU 2015146560 A RU2015146560 A RU 2015146560A RU 2604124 C1 RU2604124 C1 RU 2604124C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone
months
tibia
inoculation
staphylococcus aureus
Prior art date
Application number
RU2015146560/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Генриховна Толстикова
Ирина Васильевна Сорокина
Наталья Анатольевна Жукова
Сергей Александрович Попов
Любовь Павловна Козлова
Эльвира Эдуардовна Шульц
Игорь Павлович Жураковский
Александр Исаевич Аутеншлюс
Игорь Олегович Маринкин
Original Assignee
Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Новосибирский институт органической химии имени Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук (НИОХ СО РАН)
федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Новосибирский институт органической химии имени Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук (НИОХ СО РАН), федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Новосибирский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО НГМУ Минздрава России) filed Critical Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Новосибирский институт органической химии имени Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук (НИОХ СО РАН)
Priority to RU2015146560/15A priority Critical patent/RU2604124C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2604124C1 publication Critical patent/RU2604124C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: pharmaceutics.
SUBSTANCE: invention relates to pharmaceutical industry, namely to an agent for treating osteomyelitis. It is suggested to use β-betulonic acid alanylamide of formula (I):
Figure 00000006
as an agent for treating osteomyelitis.
EFFECT: presented agent effectively prevents generalization of inflammatory process, formation of extensive zones of necrosis and infiltration, osteoclastic bone resorption and formation of sequestra, which in turn prevents the chronic inflammatory process and enables its elimination; promotes earlier and more expressed formation of loose fibrous connective and membrane reticulated bone in comparison to groups without using betamide, which indicates the positive effect of the preparation on the repair processes in bone; causes faster onset of functional adaptation phase, promoting faster completion of endochondral osteohistogenesis to form trabecular bone tissue.
1 cl, 59 dwg, 3 tbl

Description

Изобретение относится к медицине.The invention relates to medicine.

Известно, что для лечения остеомиелита применяются антибиотики (A. Trampuz, W. Zimmerli Diagnosis and treatment of infections associated with fracture-fixation devices // Injury, 37 (2006), pp. S59-S66; A. Trampuz, A.F. Widmer Infections associated with orthopedic implants // Curr Opin Infect Dis, 19 (2006), pp. 349-356; T. Miclau, A.H. Schmidt, J.C. Wenke, et al. Infection // Orthop Trauma, 24 (2010), pp. 583-586; L. Frommelt Principles of systemic antimicrobial therapy in foreign material associated infection in bone tissue, with special focus on periprosthetic infection // Injury, 37 (2006), pp. S87-S94; J.A. Forsberg, B.K. Potter, G Cierny 3rd, L. Webb Diagnosis and management of chronic infection // J Am Acad Orthop Surg, 19 (Suppl. 1) (2011), pp. S8-S19; H.G. Schmidt, A.H. Tiemann, R. Braunschweig, et al. Arbeitsgemeinschaft septische Chirugie der DGOUC10 [Definition of the diagnosis osteomyelitis-osteomyelitis diagnosis score (ODS)] // Z Orthop Unfall, 149 (2011), pp. 449-460; R.O. Darouiche Treatment of infections associated with surgical implants // N Engl J Med, 350 (2004), pp. 1422-1429).It is known that antibiotics are used to treat osteomyelitis (A. Trampuz, W. Zimmerli Diagnosis and treatment of infections associated with fracture-fixation devices // Injury, 37 (2006), pp. S59-S66; A. Trampuz, AF Widmer Infections associated with orthopedic implants // Curr Opin Infect Dis, 19 (2006), pp. 349-356; T. Miclau, AH Schmidt, JC Wenke, et al. Infection // Orthop Trauma, 24 (2010), pp. 583-586 ; L. Frommelt Principles of systemic antimicrobial therapy in foreign material associated infection in bone tissue, with special focus on periprosthetic infection // Injury, 37 (2006), pp. S87-S94; JA Forsberg, BK Potter, G Cierny 3rd, L Webb Diagnosis and management of chronic infection // J Am Acad Orthop Surg, 19 (Suppl. 1) (2011), pp. S8-S19; HG Schmidt, AH Tiemann, R. Braunschweig, et al. Arbeitsgemeinschaft septische Chirugie der DGOUC10 [Definition of the diagnosis osteomyelitis-osteomyelitis diagnosis scor e (ODS)] // Z Orthop Unfall, 149 (2011), pp. 449-460; R.O. Darouiche Treatment of infections associated with surgical implants // N Engl J Med, 350 (2004), pp. 1422-1429).

Так, используют цефазолин, ванкомицин, а также различные комбинации с рифампицином: рифампицин + ципрофлоксацин, рифампицин + левофлоксацин (Korean Society for Chemotherapy; Korean Society of Infectious Diseases; Korean Orthopaedic Association Clinical guidelines for the antimicrobial treatment of bone and joint infections in Korea // Infect Chemother. 2014 Jun; 46 (2): 125-38).So, they use cefazolin, vancomycin, as well as various combinations with rifampicin: rifampicin + ciprofloxacin, rifampicin + levofloxacin (Korean Society for Infectious Diseases; Korean Orthopedic Association Clinical guidelines for the antimicrobial treatment of bone and joint joints in Korea / / Infect Chemother. 2014 Jun; 46 (2): 125-38).

Однако данные препараты обладают побочными эффектами:However, these drugs have side effects:

цефазолин (http://www.tiensmed.ru/news/cefazolin-10x.html) - гепатотоксичностью, он инициациирует псевдомембранозный колит, аллергические реакции, нарушения системы кроветворения, обладает нефротоксичностью, способствует развитию суперинфекции;cefazolin (http://www.tiensmed.ru/news/cefazolin-10x.html) - hepatotoxicity, it initiates pseudomembranous colitis, allergic reactions, disorders of the hematopoiesis system, has nephrotoxicity, promotes the development of superinfection;

ванкомицин (https://health.mail.ru/drug/vancomycin/) - кардиотоксичностью, нефротоксичностью, он вызывает нарушения системы кроветворения, аллергические и дерматологические реакции;vancomycin (https://health.mail.ru/drug/vancomycin/) - cardiotoxicity, nephrotoxicity, it causes disorders of the hematopoiesis system, allergic and dermatological reactions;

рифампицин (https://health.mail.ru/drug/rifampicin/) - гепатотоксичностью, нефротоксичностью, он инициирует псевдомембранозный колит, аллергические реакции, тромбоцитопению, эозинофилию, лейкопению, гемолитическую анемию, нарушение менструального цикла;rifampicin (https://health.mail.ru/drug/rifampicin/) - hepatotoxicity, nephrotoxicity, it initiates pseudomembranous colitis, allergic reactions, thrombocytopenia, eosinophilia, leukopenia, hemolytic anemia, menstrual irregularities;

ципрофлоксацин (https://health.mail.ru/drug/tsiprofloksatsin/) - гепатотоксичностью, нефротоксичностью, кардиотоксичностью, он инициирует псевдомембранозный колит, расстройство сна, галлюцинации, расстройства зрения, нарушения системы кроветворения, флебиты, васкулиты, аллергические реакции;ciprofloxacin (https://health.mail.ru/drug/tsiprofloksatsin/) - hepatotoxicity, nephrotoxicity, cardiotoxicity, it initiates pseudomembranous colitis, sleep disturbances, hallucinations, visual disturbances, disorders of the blood system, phlebitis, vasculitis, allergic reactions;

левофлоксацин (https://health.mail.ru/drug/levofloxacin_2/) - гепатотоксичностью, кардиотоксичностью, нефротоксичностью, вызывает расстройства сна, галлюцинации, спутанность сознания, двигательные расстройства, нарушения зрения, слуха, нарушения системы кроветворения, артралгии, миалгии, разрыв сухожилий, тендинит, аллергические и дерматологические реакции, способствует развитию суперинфекции.levofloxacin (https://health.mail.ru/drug/levofloxacin_2/) - hepatotoxicity, cardiotoxicity, nephrotoxicity, causes sleep disorders, hallucinations, confusion, motor disorders, visual impairment, hearing impairment, hematopoiesis, arthralgia, myalgia, rupture tendons, tendonitis, allergic and dermatological reactions, contributes to the development of superinfection.

Из указанных выше лекарственных средств наиболее близок к заявляемому средству рифампицин, но он обладает значительным негативным действием на организм, кроме того его использование в качестве монотерапии для лечения остеомиелита нецелесообразно (W. Zimmerli, A.F. Widmer, М. Blatter, R. Frei, P.E. Ochsner, Foreign-Body Infection (FBI) Study Group Role of rifampin for treatment of orthopedic implant-related staphylococcal infections: a randomized controlled trial // JAMA, 279 (1998), pp. 1537-1541).Of the above medicines, rifampicin is closest to the claimed drug, but it has a significant negative effect on the body, in addition, its use as a monotherapy for the treatment of osteomyelitis is impractical (W. Zimmerli, AF Widmer, M. Blatter, R. Frei, PE Ochsner , Foreign-Body Infection (FBI) Study Group Role of rifampin for treatment of orthopedic implant-related staphylococcal infections: a randomized controlled trial // JAMA, 279 (1998), pp. 1537-1541).

β-аланиламид бетулоновой кислоты не обладает гепатотоксичностью, нефротоксичностью, не вызывает аллергических реакций и нарушения эндокринных функций, а также может применяться в качестве монотерапии.Betulonic acid β-alanilamide does not have hepatotoxicity, nephrotoxicity, does not cause allergic reactions and endocrine disruption, and can also be used as monotherapy.

Известны амиды и пептиды бетулоновой кислоты, обладающие противоопухолевой активностью. Так, в работе [B.B. Saxena, L. Zhu, М. Нао, E. Kisilis, M. Katdare, O. Oktem, A. Bomshteyn, P. Rathnam, Bioorg. Med. Chem. Lett., 2006, V. 14. 6349-6358.] описан амид бетулоновой кислоты и N-Boc-лизина, обладающий специфической активностью при раке простаты in vitro и in vivo. Амиды бетулоновой кислоты, содержащие фрагменты каприловой, пеларгоновой и ундекановой кислот ингибируют рост опухолевых клеток МТ-4, MOLT-4, СЕМ и Hep G2 [Покровский А.Г., Шинтяпина А.Б., Н.В. Пронкина, В.С.Кожевников, Плясунова О.А., Шульц Э.Э., Толстиков Г.А. Доклады академии наук. 2006. Т. 407. №5. С. 698-701.]. Дипептид бетулоновой кислоты (N′{N-[3-Оксолуп-20(29)-ен-28-оил]-9-аминононаноил}-3-амино-3-фенилпропионовая кислота) запатентован в качестве агента, обладающего противовирусной (антиВИЧ, противогерпесной) и иммуностимулирующей активностью [патент РФ 2211843]. В работе [Шинтяпина А.Б., Шульц Э.Э., Петренко Н.И., Узенкова Н.В., Толстиков Г.А., Пронкина Н.В., Кожевников B.C., Покровский А.Г. Биоорганическая химия. 2007. Т. 33. №6, 620-626.] показано, что это соединение ингибирует рост опухолевых 3 типов клеток - МТ-4, MOLT-4, СЕМ и Hep G2. Дипептид является активным индуктором апоптоза в лейкозных клетках и клетках гепатокарциномы in vitro [Автандилов Г.Г. Медицинская морфометрия: руководство. М.: Медицина, 1990. 384 с.].Amides and peptides of betulonic acid having antitumor activity are known. So, in [B.B. Saxena, L. Zhu, M. Nao, E. Kisilis, M. Katdare, O. Oktem, A. Bomshteyn, P. Rathnam, Bioorg. Med. Chem. Lett., 2006, V. 14. 6349-6358.] Describes an amide of betulonic acid and N-Boc-lysine, which has specific activity in prostate cancer in vitro and in vivo. Amides of betulonic acid containing fragments of caprylic, pelargonic and undecanoic acids inhibit the growth of tumor cells MT-4, MOLT-4, CEM and Hep G2 [Pokrovsky AG, Shintyapina AB, N.V. Pronkina, V.S. Kozhevnikov, Plyasunova O.A., Schulz E.E., Tolstikov G.A. Reports of the Academy of Sciences. 2006.Vol. 407. No. 5. S. 698-701.]. The betulonic acid dipeptide (N ′ {N- [3-Oxolup-20 (29) -en-28-oil] -9-aminononanoyl} -3-amino-3-phenylpropionic acid) is patented as an antiviral agent (anti-HIV, anti-herpes) and immunostimulating activity [RF patent 2211843]. In the work [Shintyapina A.B., Shults E.E., Petrenko N.I., Uzenkova N.V., Tolstikov G.A., Pronkina N.V., Kozhevnikov B.C., Pokrovsky A.G. Bioorganic chemistry. 2007. T. 33. No. 6, 620-626.] It is shown that this compound inhibits the growth of tumor 3 types of cells - MT-4, MOLT-4, CEM and Hep G2. The dipeptide is an active inducer of apoptosis in leukemia cells and in vitro hepatocarcinoma cells [G. Avtandilov Medical morphometry: a guide. M .: Medicine, 1990. 384 p.].

Известно применение β-аланиламид бетулоновой кислоты [3 оксо-20(29)-лупен-28-оил]-3-амино-пропионовая кислота, «бетамид») в качестве корректора цитостатической полихимиотерапии (патент РФ №2353623). Это производное бетулоновой кислоты является малотоксичным веществом (LD50 свыше 5000 мг/кг). Оно оказывает тормозящее влияние на рост опухолей в условиях in vivo, усиливает противоопухолевое действие комплекса химиопрепаратов и оказывает выраженный органопротекторный эффект на состояние печени, почек, сердца, тимуса, крови, проявляя цитопротекторное действие.It is known to use β-alanilamide of betulonic acid [3 oxo-20 (29) -lupen-28-oil] -3-amino-propionic acid, “betamide”) as a corrector for cytostatic polychemotherapy (RF patent No. 2353623). This derivative of betulonic acid is a low-toxic substance (LD 50 over 5000 mg / kg). It has an inhibitory effect on tumor growth in vivo, enhances the antitumor effect of the complex of chemotherapeutic agents and has a pronounced organoprotective effect on the state of the liver, kidneys, heart, thymus, blood, showing a cytoprotective effect.

Цитопротекторные свойства бетамида выявлены в экспериментах на мышах и крысах на фоне воздействия цитотоксических препаратов, моделирующих полихимиотерапию (ПХТ) CHOP (циклофосфан, доксорубицин, винкристин, преднизолон) и монотерапию (циклофосфан, доксорубицин). На фоне ПХТ CHOP курсовое введение бетамида (7 дней в дозе 50 мг/кг) мышам с перевиваемыми злокачественными опухолями снижает тяжесть вызванных полихимиотерапией дистрофических и некробиотических изменений, улучшает состояние микроциркуляторного русла в тканях внутренних органов, повышает пластические резервы клеток. В почках мышей CBA/Lac с лимфомой RLS количество некротизированных нефроцитов снижалось на 77%, в связи с чем число клеток со слабо выраженной гиалиново-капельной дистрофией увеличивалось на 53%, просвет проксимальных канальцев уменьшался на 43% по сравнению с группой ПХТ [Н.А. Жукова, Д.Е. Семенов, И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова, С.В. Позднякова, О.Р. Грек. Влияние производных бетулина на структуру почки при лимфоме RLS/Сибирский научный вестник - IX. Новосибирск, 2006. Стр 49-51]. В печени объемная плотность зон некрозов уменьшалась на 63%, а зон с дистрофически измененными гепатоцитами увеличивалась на 19%, при этом степень дистрофии снижалась до слабо выраженной гиалиново-капельной, повышалась объемная плотность синусоидов (на 28%), уменьшался внутрипеченочный холестаз, увеличивалось количество гликогена во всех гепатоцитах [Н.А. Жукова, Д.Е. Семенов, И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова, С.В. Позднякова, О.Р. Грек. Влияние бетулоновой кислоты и ее производного [3-оксо-20(29)-лупен-28-оил]-3-аминопропионовой кислоты на структуру печени мышей с лимфомой RLS / Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2005. Том 140, №9, стр.348-351].The cytoprotective properties of betamide were detected in experiments on mice and rats against the background of exposure to cytotoxic drugs simulating CHOP polychemotherapy (cyclophosphamide, doxorubicin, vincristine, prednisone) and monotherapy (cyclophosphamide, doxorubicin). Against the background of CHOP PCT, course administration of betamide (7 days at a dose of 50 mg / kg) to mice with transplantable malignant tumors reduces the severity of dystrophic and necrobiotic changes caused by polychemotherapy, improves the state of the microvasculature in the tissues of internal organs, and increases the plastic reserves of cells. In the kidneys of CBA / Lac mice with RLS lymphoma, the number of necrotic nephrocytes decreased by 77%, in connection with which the number of cells with mild hyaline droplet dystrophy increased by 53%, the lumen of the proximal tubule decreased by 43% compared with the PCT group [N. BUT. Zhukova, D.E. Semenov, I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova S.V. Pozdnyakova, O.R. Greek. The effect of betulin derivatives on kidney structure in RLS lymphoma / Siberian Scientific Bulletin - IX. Novosibirsk, 2006. Pages 49-51]. In the liver, the volume density of necrosis zones decreased by 63%, and zones with dystrophically altered hepatocytes increased by 19%, while the degree of dystrophy decreased to a weakly expressed hyaline droplet, the volume density of sinusoids increased (by 28%), the intrahepatic cholestasis decreased, the number increased glycogen in all hepatocytes [N.A. Zhukova, D.E. Semenov, I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova S.V. Pozdnyakova, O.R. Greek. The effect of betulonic acid and its derivative [3-oxo-20 (29) -lupen-28-oyl] -3-aminopropionic acid on the liver structure of mice with RLS lymphoma / Bulletin of experimental biology and medicine. 2005. Volume 140, No. 9, pp. 348-351].

В печени мышей С57B1/6 с карциномой легких Льюиса введение бетамида после ПХТ вызывало снижение моноцеллюлярных некрозов на 53% и уменьшение тяжести дистрофии по сравнению с группой ПХТ. В гепатоцитах практически отсутствовали зоны «опустошения» цитоплазмы и липидная инфильтрация, отмечалась незначительная субплазмалеммальная вакуолизация цитоплазмы. Введение бетамида в сочетании с ПХТ увеличило объемную плотность синусоидов на 33-40%) и снизило в них количество метастазов по сравнению с введением только ПХТ [Н.А. Жукова, И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова, Е.Л. Лушникова, Л.М. Непомнящих, Д.Е. Семенов. Структура печени мышей с перевитой карциномой легких Льюис при полихимиотерапии и коррекции бетулоновой кислотой и ее производными / Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2010. Том 150, №7, стр. 108-112]. В почках этих же мышей под влиянием бетамида уменьшалась на 80-98% объемная плотность эпителиоцитов в состоянии некроза, снижалась на 54-60% доля клеток с гидропической и баллонной дистрофией и увеличивался на 170-180% объем эпителиоцитов с признаками слабо выраженной дегенерации. Уменьшение отека эпителиоцитов и щеточной каймы на фоне введения бетамида сопровождалось увеличением объемной плотности просвета проксимальных канальцев (на 50%-75%) [Н.А. Жукова, И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова, М.П. Долгих, Д.Е. Семенов. Влияние бетулоновой кислоты и ее производных на морфологию почек животных с перевитой карциномой легких Льюис на фоне полихимиотерапии и без ее воздействия / Химия в интересах устойчивого развития. 2010. Том 18, №4, стр. 483-488].In the liver of C57B1 / 6 mice with Lewis lung carcinoma, the administration of betamide after PCT caused a 53% decrease in monocellular necrosis and a decrease in the severity of dystrophy compared with the PCT group. In hepatocytes there were practically no zones of cytoplasm “devastation” and lipid infiltration, insignificant subplasmalemmal cytoplasm vacuolization was noted. The introduction of betamide in combination with PCT increased the bulk density of sinusoids by 33-40%) and reduced the number of metastases in them compared with the introduction of PCT alone [N.A. Zhukova, I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova, E.L. Lushnikova, L.M. Nepomnyashchikh, D.E. Semenov. Liver structure of mice with transplanted Lewis lung carcinoma during polychemotherapy and correction with betulonic acid and its derivatives / Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2010. Volume 150, No. 7, pp. 108-112]. In the kidneys of these mice, under the influence of betamide, the bulk density of epithelial cells in the state of necrosis decreased by 80-98%, the proportion of cells with hydropic and balloon dystrophy decreased by 54-60%, and the volume of epithelial cells with signs of mild degeneration increased by 170-180%. A decrease in edema of epithelial cells and brush border on the background of the introduction of betamide was accompanied by an increase in the bulk density of the lumen of the proximal tubules (by 50% -75%) [N.A. Zhukova, I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova, M.P. Dolgikh D.E. Semenov. The effect of betulonic acid and its derivatives on the kidney morphology of animals with transplanted Lewis lung carcinoma with and without chemotherapy chemotherapy / Chemistry for Sustainable Development. 2010. Volume 18, No. 4, pp. 483-488].

Введение аланиламида бетулоновой кислоты здоровым крысам Wistar в течение 14 дней в дозе 50 мг/кг на фоне однократного введения цитостатиков по схеме ПХТ CHOP снижало на 75-90% количество гепатоцитов с дистрофическими изменениями и уменьшало на 35-45% число некротизированных клеток. Объемная плотность двуядерных гепатоцитов возрастала на 36-58%), что отражает повышение регенераторного потенциала печени. В почках аланиламид бетулоновой кислоты существенно ослаблял воспалительный эффект цитостатиков, уменьшал на 65-72% долю нефроцитов проксимальных канальцев с гидропической дистрофией, снижал на 60% долю некротических изменений. В тимусе отмечен протекторный эффект аланиламида бетулоновой кислоты, проявившийся в повышении корково-мозгового индекса и снижении количества телец Гассаля в мозговой части [И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова, Н.А. Жукова, Н.И. Петренко, Э.Э. Шульц, Н.В. Узенкова, О.Р. Грек, С.В. Позднякова, Г.А. Толстиков. Бетулоновая кислота и ее произвоные - новая группа агентов, снижающих побочное действие цитостатиков // Доклады Академии наук. 2004. Том 399, №2, стр. 274-277; Грек О.Р., Позднякова С.В., Надеев А.П., Пронин B.C., Жукова Н.А., Сорокина И.В., Волкова Е.Б., Толстикова Т.Г. Эффективность бетулоновой кислоты и ее аланинамидных производных при восстановлении паренхимы печени крыс в постцитостатический период // Эксп. и клин, фармакология. 2005, Т. 68, №6, с. 49-51; Позднякова С.В., Грек О.Р., Фунтиков А.С., Жукова Н.А., Сорокина И.В. Толстикова Т.Г. Сравнительное изучение нефропротективной активности бетулоновой кислоты и ее производных при экспериментальной полихимиотерапии // Журн. экспер. клин. мед.2006, №1-2, с. 15-17]. Тимус-протекторное действие аланиламида бетулоновой кислоты отмечено на фоне однократного введения циклофосфана здоровым крысам в токсической дозе 125 мг/кг, вызывающего стойкое угнетение кроветворных органов. Протекторное действие аланиламида бетулоновой кислоты выражалось в поддержании нормальной массы тимуса в течение 14-ти дневного введения данного средства в дозе 50 мг/кг. При сочетанном введении аланиламида бетулоновой кислоты с доксорубицином наблюдалась тенденция к более быстрому восстановлению массы тимуса [И.В. Сорокина. Реф. дисс. докт. биол. наук. 2010].The administration of betulonic acid alanilamide to healthy Wistar rats for 14 days at a dose of 50 mg / kg against a background of a single administration of cytostatics according to the CHOP PCT regimen reduced the number of hepatocytes with dystrophic changes by 75-90% and decreased the number of necrotic cells by 35-45%. The bulk density of binuclear hepatocytes increased by 36-58%), which reflects an increase in the regenerative potential of the liver. In the kidneys, betulonic acid alanilamide significantly weakened the inflammatory effect of cytostatics, reduced the proportion of nephrocytes of proximal tubules with hydropic dystrophy by 65-72%, and reduced the proportion of necrotic changes by 60%. In the thymus, the protective effect of betulonic acid alanilamide was noted, which manifested itself in an increase in the cerebral-cerebral index and a decrease in the number of Gassal bodies in the brain [I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova, N.A. Zhukova, N.I. Petrenko, E.E. Schulz, N.V. Uzenkova, O.R. Greek, S.V. Pozdnyakova, G.A. Tolstikov. Betulonic acid and its derivatives are a new group of agents that reduce the side effects of cytostatics // Doklady Akademii Nauk. 2004. Volume 399, No. 2, pp. 274-277; Grek O.R., Pozdnyakova S.V., Nadeev A.P., Pronin B.C., Zhukova N.A., Sorokina I.V., Volkova E.B., Tolstikova T.G. The effectiveness of betulonic acid and its alaninamide derivatives in the restoration of rat liver parenchyma in the post-cytostatic period // Exp. and wedge, pharmacology. 2005, T. 68, No. 6, p. 49-51; Pozdnyakova S.V., Grek O.R., Funtikov A.S., Zhukova N.A., Sorokina I.V. Tolstikova T.G. A comparative study of the nephroprotective activity of betulonic acid and its derivatives in experimental polychemotherapy // Zh. expert. wedge. honey. 2006, No. 1-2, p. 15-17]. The thymus protective effect of betulonic acid alanilamide was observed against a single dose of cyclophosphamide in healthy rats at a toxic dose of 125 mg / kg, which causes persistent inhibition of the blood-forming organs. The protective effect of betulonic acid alanilamide was expressed in maintaining the normal mass of the thymus during a 14-day administration of this drug at a dose of 50 mg / kg. With the combined introduction of betulonic acid alanilamide with doxorubicin, there was a tendency to more rapid restoration of the mass of the thymus [I.V. Sorokina. Ref. diss. Doct. biol. sciences. 2010].

Курсовое введение аланиламида бетулоновой кислоты на фоне комплекса цитостатиков (циклофосфан, доксорубицин, винкристин, преднизолон в дозах 1/20 от ЛД50) восстанавливало активность цитохрома Р450IIIA4 через 6 дней после воздействия и увеличивало активность P450IIE1 на 26,5 и 24,1% соответственно на 7-е и 14-е сутки наблюдения. [С.В. Позднякова, О.Р. Грек, Р.А. Жоголь, И.В. Шарапов, В.И. Шарапов, И.В. Сорокина, Т.Г. Толстикова. Активность монооксигеназ печени и биологические эффекты бетулоновой кислоты и ее амидных производных // Вестник НГУ. Серия: Биология, клиническая медицина. 2006. Том 4, вып. 3, с. 66-70].The course administration of betulonic acid alanilamide against the background of a complex of cytostatics (cyclophosphamide, doxorubicin, vincristine, prednisone in doses of 1/20 of LD 50 ) restored the activity of cytochrome P450IIIA4 6 days after exposure and increased the activity of P450IIE1 by 26.5 and 24.1%, respectively 7th and 14th day of observation. [S.V. Pozdnyakova, O.R. Greek, R.A. Zhogol, I.V. Sharapov, V.I. Sharapov, I.V. Sorokina, T.G. Tolstikova. Activity of liver monooxygenases and biological effects of betulonic acid and its amide derivatives // Bulletin of Novosibirsk State University. Series: Biology, Clinical Medicine. 2006. Volume 4, no. 3, p. 66-70].

В многочисленных экспериментах in vitro была выявлена противовирусная активность бетулоновой кислоты и ее амида, в том числе против вируса иммунодефицита человека, вирусов гриппа А, герпеса простого типа 1; антибактериальный эффект в отношении Staphylococcus aureus, Bacillus antracoides, Eschericha coli и Salmonella typhimurium и противогрибковая активность в отношении Candida albicans и Aspergillus niger, (Флехтер О.Б., Бореко Е.И., Нигматуллина Л.Р., Третьякова Е.В., Павлова Н.И., Балтина Л.А., Николаева С.Н., Савинова О.В., Еремин В.Ф., Галин Ф.З., Толстиков Г.А. Синтез и противовирусная активность амидов и конъюгатов бетулоновой кислоты с аминокислотами // Биоорганическая химия. - 2004. - Т. 30. - №1. - С. 89-98).In numerous in vitro experiments, the antiviral activity of betulonic acid and its amide has been identified, including against human immunodeficiency virus, influenza A viruses, herpes simplex type 1; antibacterial effect against Staphylococcus aureus, Bacillus antracoides, Eschericha coli and Salmonella typhimurium and antifungal activity against Candida albicans and Aspergillus niger, (Flekhter O.B., Boreko E.I., Nigmatullina L.R., Tretyakova E.V. , Pavlova N.I., Baltina L.A., Nikolaeva S.N., Savinova O.V., Eremin V.F., Galin F.Z., Tolstikov G.A. Synthesis and antiviral activity of amides and betulonic conjugates acids with amino acids // Bioorganic chemistry. - 2004. - T. 30. - No. 1. - S. 89-98).

Применение производных бетулоновой кислоты в качестве средства для лечения остемиелита описано не было.The use of betulonic acid derivatives as a treatment for osteomyelitis has not been described.

Раскрытие изобретенияDisclosure of invention

В качестве средства для лечения остеомиелита предлагается использовать β-аланиламид бетулоновой кислоты (название по номенклатуре IUPAC: N-[3-оксо-20(29)лупен-28-оил]-3-аминопропионовая кислота; предполагаемое коммерческое название - «бетамид») формулы (I):It is proposed to use betulonic acid β-alanylamide (name according to IUPAC nomenclature: N- [3-oxo-20 (29) lupen-28-oyl] -3-aminopropionic acid; the alleged commercial name is “betamide” as an agent for treating osteomyelitis; formula (I):

Figure 00000001
Figure 00000001

Технический результатTechnical result

β-аланиламид бетулоновой кислоты:Betulonic acid β-alanylamide:

1) предотвращает генерализацию воспалительного процесса, формирование обширных зон некроза и инфильтрации, остеокластическую резорбцию кости и формирование секвестров, что в свою очередь предотвращает хронизацию воспалительного процесса и способствует его разрешению;1) prevents the generalization of the inflammatory process, the formation of extensive zones of necrosis and infiltration, osteoclastic bone resorption and the formation of sequesters, which in turn prevents the inflammatory process from being chronic and contributes to its resolution;

2) способствует более раннему и более выраженному образованию рыхлой волокнистой соединительной и грубоволокнистой костной тканей, по сравнению с группами без применения бетамида, что свидетельствует о позитивном влиянии препарата на репаративные процессы в кости;2) contributes to an earlier and more pronounced formation of loose fibrous connective and coarse fibrous bone tissue, compared with groups without the use of betamide, which indicates a positive effect of the drug on reparative processes in the bone;

3) вызывает более быстрое наступление фазы функциональной адаптации, способствуя более быстрому завершению репаративного эндохондрального остеогистогенеза с образованием зрелой костной ткани.3) causes a faster onset of the phase of functional adaptation, contributing to a more rapid completion of reparative endochondral osteohistogenesis with the formation of mature bone tissue.

Способ получения β-аланиламида бетулоновой кислоты описан в патенте РФ №2353623.A method for producing β-alanilamide of betulonic acid is described in RF patent No. 2353623.

Перечень фигурList of figures

Фиг. 1. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Деформация кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 1. The proximal end of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. Bone deformity due to formed callus. Macrodrug.

Фиг. 2. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. В зоне трепанационного отверстия просматриваются введенные хлопчатобумажные нити. Казеозное содержимое трепанационного отверстия, шероховатая структура поверхности большеберцовой кости, отсутствие просвечивания костного мозга сквозь пластинку диафиза свидетельствуют о развитии остемиелита. Макропрепарат.FIG. 2. The proximal end of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. In the area of the trepanation hole, inserted cotton threads are visible. The caseous contents of the trepanation hole, the rough structure of the surface of the tibia, the lack of translucent bone marrow through the plate of the diaphysis indicate the development of osteomyelitis. Macrodrug.

Фиг. 3. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Зона некроза, остеокластическая резорбция большеберцовой кости. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 100.FIG. 3. The site of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. Zone of necrosis, osteoclastic resorption of the tibia. Hematoxylin and eosin stain. SW one hundred.

Фиг. 4. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Гранулоцитарно-лимфоцитарная инфильтрация в области введенных в трепанационное отверстие нитей с Золотистым стафилококком. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 400.FIG. 4. Plot of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. Granulocyte-lymphocytic infiltration in the area of threads inserted into the trepanation hole with Staphylococcus aureus. Hematoxylin and eosin stain. SW 400.

Фиг. 5. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Большое количество макрофагов в зоне, ограничивающей участок некроза. Иммуногистохимическая реакция на ED1 подобный антиген. Ув. 400.FIG. 5. Plot of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. A large number of macrophages in the area bordering the site of necrosis. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen. SW 400.

Фиг. 6. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Неоднородность распределения коллагеновых волокон в относительно сохраненных костных балках, связанная с остеокластической резорбцией участка кости, располагающейся в непосредственной близости к зоне инфильтрации и некроза. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 6. Plot of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. The heterogeneity of the distribution of collagen fibers in relatively preserved bone beams associated with osteoclastic resorption of a portion of the bone located in close proximity to the zone of infiltration and necrosis. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 7. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Образование тонких балок грубоволокнистой костной ткани. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 400.FIG. 7. Plot of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. The formation of thin beams of coarse fibrous bone tissue. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW 400.

Фиг. 8. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Врастание сосудов в подвергающуюся дистрофии и деструкции гиалиновую хрящевую ткань Образование тонких балок грубоволокнистой костной ткани. Окраска альциановым синим и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 8. Plot of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus. Vascular ingrowth in hyaline cartilage tissue undergoing degeneration and destruction. The formation of thin beams of coarse-fibrous bone tissue. Stained with Alcian blue and Mayer karmalum. SW 400.

Фиг. 9. Участок большеберцовой кости крысы через 1 мес после инокуляции Золотистого стафилококка, повышенное содержание адипоцитов и единичные мастоциты в костном мозге. Окраска альциановым синим (pH=1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 9. A section of the tibia of the rat 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus, an increased content of adipocytes and single mast cells in the bone marrow. Stained with Alcian blue (pH = 1.0) and Mayer karmalum. SW 400.

Фиг. 10. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Выраженная деформация кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 10. The proximal end of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Severe bone deformation due to the formed bone marrow. Macrodrug.

Фиг. 11. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Сформированная костная мозоль, в зоне трепанационного отверстия просматриваются введенные хлопчатобумажные нити и желтое казеозное содержимое. Снижение просвечивания костного мозга сквозь пластинку диафиза. Макропрепарат.FIG. 11. The proximal end of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Formed bone callus, inserted cotton threads and yellow caseous contents are visible in the area of the trepanation hole. Decrease in bone marrow transillumination through the diaphysis plate. Macrodrug.

Фиг. 12. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Зона некроза и жирового перерождения костного мозга. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 12. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Zone of necrosis and fatty degeneration of bone marrow. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 13. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Сохранение зоны некроза костного мозга, ограниченной лимфоцитарно-макрофагальных валом, в непосредственной близости к введенным хлопчатобумажным нитям. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 100.FIG. 13. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Preservation of the bone marrow necrosis zone, limited by the lymphocyte-macrophage shaft, in close proximity to the introduced cotton threads. Hematoxylin and eosin stain. SW one hundred.

Фиг. 14. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Формирование макрофагально-фибробластического барьера, ограничивающего зону некроза. Иммуногистохимическая реакция на ED1-подобный антиген с последующей докраской ядер гематоксилином. Ув. 600.FIG. 14. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. The formation of a macrophage-fibroblast barrier that limits the area of necrosis. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen followed by hematoxylin nuclei dubbing. SW 600.

Фиг. 15. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Грануляционная ткань, ограничивающая очаги некроза, остеокластическая резорбция большеберцовой кости. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 400.FIG. 15. A plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Granulation tissue limiting foci of necrosis, osteoclastic resorption of the tibia. Hematoxylin and eosin stain. SW 400.

Фиг. 16. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Деструкция и гибель хондроцитов, врастание кровеносного сосуда, репаративный эндохондральный остеогистогенез. Окраска альциановым синим при pH=1,0 с докраской кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 16. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Chondrocyte destruction and death, blood vessel ingrowth, reparative endochondral osteohistogenesis. Staining with Alcian blue at pH = 1.0 with Mayer karmalum dyeing. SW 400.

Фиг.17. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Активное формирование межклеточного вещества рыхлой соединительной ткани, содержащей сульфатированные (хондроитин-4 сульфат, хондроитин-6-сульфат) гликозаминогликаны, многочисленные кровеносные сосуды. Окраска альциановым синим при pH 1,0 с докраской кармалюмом Майера. Ув. 400.Fig.17. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Active formation of intercellular substance of loose connective tissue containing sulfated (chondroitin-4 sulfate, chondroitin-6-sulfate) glycosaminoglycans, numerous blood vessels. Alcian blue stain at pH 1.0 with Mayer karmalum dyeing. SW 400.

Фиг. 18. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Активное формирование межклеточного вещества рыхлой соединительной ткани, содержащей коллагеновые волокона. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 18. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Active formation of intercellular substance of loose connective tissue containing collagen fibers. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 19. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Наличие костных осколков с погибшими остеоцитами в зоне некроза. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 19. Plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. The presence of bone fragments with dead osteocytes in the area of necrosis. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 20. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Повышенное содержание адипоцитов и отсутствие мастоцитов в костном мозге. Окраска альциановым синим (рН=1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 20. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. The increased content of adipocytes and the absence of mast cells in the bone marrow. Stained with Alcian blue (pH = 1.0) and Mayer karmalum. SW 400.

Фиг. 21. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Деформация кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 21. The proximal end of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Bone deformity due to formed callus. Macrodrug.

Фиг. 22. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Закрытие трепанационного отверстия, формирование костных выступов, окружающих концы введенной нити. Четко заметна граница снижения просвечивания костного мозга сквозь пластинку диафиза. Макропрепарат.FIG. 22. The proximal end of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Closing the trepanation opening, the formation of bone protrusions surrounding the ends of the inserted thread. The boundary of decrease in bone marrow transillumination through the diaphysis plate is clearly visible. Macrodrug.

Фиг. 23. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Сохранение зоны некроза, ограниченной макрофагально-фиброцитарным валом, в непосредственной близости от введенных хлопчатобумажных нитей. Фрагментация костных балок, наличие зон с очаговым просветлением, неравномерное расположение остеоцитов. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 100.FIG. 23. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Preservation of the necrosis zone, limited by macrophage-fibrocytic shaft, in the immediate vicinity of the introduced cotton threads. Fragmentation of bone beams, the presence of zones with focal enlightenment, uneven distribution of osteocytes. Hematoxylin and eosin stain. SW one hundred.

Фиг. 24. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Большое количество макрофагов рядом с введенной нитью. Иммуногистохимическая реакция на ED1-подобный антиген. Ув. 400FIG. 24. The tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. A large number of macrophages next to the introduced thread. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen. SW 400

Фиг.25. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Гигантская многоядерная клетка Пирогова-Лангханса, содержащая многочисленные ядра по периферии цитоплазмы в виде кольца. Окраска гематоксилином и эозином. Ув. 400.Fig.25. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. A giant multi-core Pirogov-Langhans cell containing numerous nuclei at the periphery of the cytoplasm in the form of a ring. Hematoxylin and eosin stain. SW 400.

Фиг. 26. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Заполнение пространств между костными балками фиброзной тканью с большим содержанием коллагеновых волокон, а также повышенное содержание жировых клеток в костном мозге. Иммуногистохимическое выявление коллагена II типа с последующей докраской ядер гематоксилином. Ув. 100.FIG. 26. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Filling the spaces between the bone beams with fibrous tissue with a high content of collagen fibers, as well as an increased content of fat cells in the bone marrow. Immunohistochemical detection of type II collagen, followed by hematoxylin nuclei dyeing. SW one hundred.

Фиг. 27. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Повышенное содержание адипоцитов в пограничной с воспалительным инфильтратом зоне и единичные мастоциты в костном мозге. Окраска альциановым синим (рН=1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 27. Plot of the tibia of a rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. The increased content of adipocytes in the borderline with the inflammatory infiltrate zone and single mast cells in the bone marrow. Stained with Alcian blue (pH = 1.0) and Mayer karmalum. SW 400.

Фиг. 28. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Наличие костных осколков с погибшими остеоцитами в зоне некроза. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 28. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus. The presence of bone fragments with dead osteocytes in the area of necrosis. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 29. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии. Деформация кости за счет сформированной костной мозоли. В области трепанационного отверстия имеется казеозное содержимое желтого цвета. Макропрепарат.FIG. 29. The proximal end of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion. Bone deformity due to formed callus. In the area of the trepanation hole there is a caseous yellow content. Macrodrug.

Фиг. 30. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Участок некроза, зональное распределение иммунокомпетентных клеточных элементов. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 100.FIG. 30. Rat tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. Site of necrosis, zonal distribution of immunocompetent cell elements. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW one hundred.

Фиг. 31. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Зональное распределение иммунокомпетентных клеточных элементов Иммуногистохимическая реакция на ED1-подобный антиген. Ув. 400.FIG. 31. Tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. Zonal distribution of immunocompetent cell elements. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen. SW 400.

Фиг. 32. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Остеокластическая резорбция кости. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 100.FIG. 32. Rat tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. Osteoclastic bone resorption. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW one hundred.

Фиг. 33. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Образование тонких балок грубоволокнистой костной ткани, формирование грубоволокнистой соединительной ткани, жировое перерождение костного мозга. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 400.FIG. 33. Rat tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. The formation of thin beams of coarse fibrous bone tissue, the formation of coarse fibrous connective tissue, fatty degeneration of bone marrow. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW 400.

Фиг. 34. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Наличие костного осколка с погибшими остеоцитами в зоне некроза. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 34. Rat tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. The presence of a bone fragment with dead osteocytes in the area of necrosis. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 35. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Очаги деструкции и гибели хондроцитов и репаративный эндохондральный остеогистогенез. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 100.FIG. 35. Rat tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. Foci of destruction and death of chondrocytes and reparative endochondral osteohistogenesis. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW one hundred.

Фиг. 36. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка. Активное формирование межклеточного вещества рыхлой соединительной ткани, многочисленные кровеносные сосуды. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 400.FIG. 36. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus. Active formation of intercellular substance of loose connective tissue, numerous blood vessels. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW 400.

Фиг. 37. Большеберцовая кость крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Увеличение количества мастоцитов в пограничной с воспалительным инфильтратом зоне костного мозга. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 100.FIG. 37. Tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. An increase in the number of mast cells in the border area of the bone marrow with inflammatory infiltrate. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW one hundred.

Фиг. 38. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии. Сохранение деформации кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 38. The proximal end of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion. Preservation of bone deformation due to the formed bone marrow. Macrodrug.

Фиг. 39. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Участок некроза, зональное распределение иммунокомпетентных клеточных элементов, жировое перерождение костного мозга. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 100.FIG. 39. Tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. A site of necrosis, zonal distribution of immunocompetent cellular elements, fatty degeneration of bone marrow. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW one hundred.

Фиг. 40. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Формирование макрофагально-фибробластического барьера, ограничивающего зону некроза. Иммуногистохимическая реакция на ED1-подобный антиген с последующей докраской ядер гематоксилином. Ув. 600.FIG. 40. Tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. The formation of a macrophage-fibroblast barrier that limits the area of necrosis. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen followed by hematoxylin nuclei dubbing. SW 600.

Фиг. 41. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Фрагментация костных балок, содержащих немногочисленные остеоциты. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 41. Tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. Fragmentation of bone beams containing few osteocytes. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 42. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Неравномерное распределение коллагеновых волокон в костных балках, с образованием участков просветления. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 42. Tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of per os oil emulsion. Uneven distribution of collagen fibers in the bone beams, with the formation of areas of enlightenment. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 43. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Образование фиброзной ткани с большим содержанием коллагеновых волокон. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 400.FIG. 43. Rat tibia 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. The formation of fibrous tissue with a high content of collagen fibers. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW 400.

Фиг. 44. Большеберцовая кость крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии. Образование фиброзной ткани с большим содержанием сульфатированных гликозаминогликанов. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 44. Rat tibia 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of an oil emulsion. The formation of fibrous tissue with a high content of sulfated glycosaminoglycans. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW 400.

Фиг. 45. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии с бетамидом. Уменьшение деформации кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 45. The proximal end of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion with betamide. Reduction of bone deformation due to formed bone callus. Macrodrug.

Фиг. 46. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии с бетамидом. В зоне трепанационного отверстия имеется желтоватое казеозное содержимое. Поверхность большеберцовой кости сохраняет гладкую структуру, отмечается просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза. Макропрепарат.FIG. 46. The proximal end of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion with betamide. In the area of the trepanation hole there is a yellowish caseous content. The surface of the tibia maintains a smooth structure, bone marrow transillumination through the diaphysis plate is noted. Macrodrug.

Фиг. 47. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Отсутствие зон некроза и существенное снижение зон инфильтрации. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 100.FIG. 47. A plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. The absence of zones of necrosis and a significant decrease in zones of infiltration. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW one hundred.

Фиг. 48. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Высокое содержание макрофагов в воспалительном инфильтрате. Иммуногистохимическая реакция на ED1-подобный антиген с последующей докраской ядер гематоксилином. Ув. 600.FIG. 48. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. High macrophage content in inflammatory infiltrate. Immunohistochemical reaction to an ED1-like antigen followed by hematoxylin nuclei dubbing. SW 600.

Фиг. 49. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Отсутствие гранулоцитов в фокусах воспалительных инфильтратов. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 400.FIG. 49. Plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of betamide oil emulsion. The absence of granulocytes in the focus of inflammatory infiltrates. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW 400.

Фиг. 50. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Формирование рыхлой волокнистой соединительной и грубоволокнистой костной тканей в непосредственной близости к введенным в трепанационное отверстие нитям с культурой бактерий. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 400.FIG. 50. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. The formation of loose fibrous connective and coarse fibrous bone tissue in close proximity to the bacterial culture threads introduced into the trepanation opening. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW 400.

Фиг. 51. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Образование рыхлой волокнистой соединительной ткани с большим содержанием сульфатированных гликозаминогликанов. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 51. Plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of betamide oil emulsion. The formation of loose fibrous connective tissue with a high content of sulfated glycosaminoglycans. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW 400.

Фиг. 52. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Остеокластическая резорбция кости. Окраска гематоксилином Эрлиха и эозином. Ув. 400.FIG. 52. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. Osteoclastic bone resorption. Staining with Ehrlich hematoxylin and eosin. SW 400.

Фиг. 53. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Репаративный эндохондральный остеогистогенез, включение в новообразованную костную ткань хлопчатобумажной нити, введенной в трепанационное отверстие. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 53. Plot of the tibia of the rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. Reparative endochondral osteohistogenesis, the inclusion of cotton thread inserted into the trepanation hole in newly formed bone tissue. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW 400.

Фиг. 54. Участок большеберцовой кости крысы через 2 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Жировое перерождение костного мозга, выраженное возрастание количества мастоцитов. Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 400.FIG. 54. Plot of the tibia of a rat 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of betamide oil emulsion. Fatty degeneration of bone marrow, marked increase in the number of mast cells. Stained with Alcian Blue (pH 1.0) and Mayer Karmalum. SW 400.

Фиг. 55. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии с бетамидом. Незначительная деформация кости за счет сформированной костной мозоли. Макропрепарат.FIG. 55. The proximal end of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion with betamide. Slight bone deformation due to the formed callus. Macrodrug.

Фиг. 56. Проксимальный конец большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения масляной эмульсии с бетамидом. В зоне трепанационного отверстия имеется выступающее над поверхностью кости фиброзное образование. Поверхность большеберцовой кости сохраняет гладкую структуру, отмечается просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза. Макропрепарат.FIG. 56. The proximal end of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the introduction of an oil emulsion with betamide. In the area of the trepanation hole there is a fibrous formation protruding above the surface of the bone. The surface of the tibia maintains a smooth structure, bone marrow transillumination through the diaphysis plate is noted. Macrodrug.

Фиг. 57. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Формирование рыхлой волокнистой соединительной и грубоволокнистой костной тканей вокруг введенных в трепанационное отверстие нитей с культурой микроорганизмов. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 57. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. The formation of loose fibrous connective and coarse fibrous bone tissue around the threads inserted into the trepanation hole with a culture of microorganisms. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 58. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Отграничение от окружающего костного мозга новообразованной костной тканью введенных нитей с культурой микроорганизмов. Окраска пикрофуксином по ван Гизону. Ув. 100.FIG. 58. Plot of the tibia of the rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and the per os administration of betamide oil emulsion. Delimitation from the surrounding bone marrow by the newly formed bone tissue of the introduced threads with the culture of microorganisms. Picrofuchsin stain according to van Gieson. SW one hundred.

Фиг. 59. Участок большеберцовой кости крысы через 3 мес после инокуляции Золотистого стафилококка и введения per os масляной эмульсии бетамида. Отграничение от окружающего костного мозга новообразованной костной тканью введенных нитей с культурой микроорганизмов. Жировое перерождение костного мозга, высокое содержание мастоцитов Окраска альциановым синим (pH 1,0) и кармалюмом Майера. Ув. 100.FIG. 59. Plot of the tibia of a rat 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus and per os administration of betamide oil emulsion. Delimitation from the surrounding bone marrow by the newly formed bone tissue of the introduced threads with the culture of microorganisms. Fatty bone marrow degradation, high mast cell count. Stained with Alcian blue (pH 1.0) and Mayer karmalum. SW one hundred.

Обоснование изобретенияJustification of the invention

Было проведено исследование, целью которого являлось изучение влияния бетамида на развитие хронического остеомиелита.A study was conducted, the purpose of which was to study the effect of betamide on the development of chronic osteomyelitis.

Материал и методы исследованияMaterial and research methods

Эксперимент проведен на 48 половозрелых крысах-самцах Wistar с исходной массой 180-220 г. У экспериментальных животных под общим ингаляционным наркозом была проведена трепанация большеберцовой кости с последующим тампонированием отверстия хлопчатобумажной нитью, находившейся 30 минут в смыве суточной культуры Золотистого стафилококка (штамм 209). Предварительное исследование позволило установить, что при подобной обработке нити на ней содержится 1×107 колониеобразующих единиц. В последующем у крыс развивался остеомиелит большеберцовой кости.The experiment was conducted on 48 sexually mature Wistar male rats with an initial weight of 180-220 g. In experimental animals, under a general inhalation anesthesia, tibia was treated, followed by plugging the hole with a cotton thread 30 minutes in the daily wash of Staphylococcus aureus culture (strain 20). A preliminary study made it possible to establish that with such processing of the thread it contains 1 × 10 7 colony forming units. Subsequently, tibial osteomyelitis developed in rats.

Животных выводили из эксперимента через 1, 2 и 3 месяца с момента инокуляции Золотистого стафилококка (группы «В 1 мес»; «В 2 мес»; «В 3 мес», буква «В» обозначает «воспаление»).Animals were removed from the experiment after 1, 2, and 3 months from the moment of inoculation of Staphylococcus aureus (groups “At 1 month”; “At 2 months”; “At 3 months”, the letter “B” means “inflammation”).

В качестве контроля использовали 6 интактных животных (группа инт). В течение 10 дней до истечения 2-месячного срока с момента инокуляции Золотистого стафилококка 12 животным вводили водно-масляную эмульсию (6 животных в группе «ВО 2 мес» и 6 животных в группе «ВО 3 мес»; буквосочетание «ВО» обозначает «воспаление + олеум»). В группе «ВО 3 мес» введение водно-масляной эмульсии продолжали еще в течение 1 месяца до истечения 3-месячного срока с момента инокуляции Золотистого стафилококка.As a control, 6 intact animals were used (int group). Within 10 days before the expiration of a 2-month period after the inoculation of Staphylococcus aureus, 12 animals were injected with an oil-in-water emulsion (6 animals in the 2 months old group and 6 animals in the 3 months old group; the letter “BO” means “inflammation” + oleum "). In the group “IN 3 months”, the introduction of water-in-oil emulsion was continued for another 1 month before the expiration of the 3-month period from the moment of inoculation of Staphylococcus aureus.

В течении 10 дней до истечения 2-месячного срока с момента инокуляции Золотистого стафилококка 12 животным вводили водно-жировую эмульсию с бетамидом (группы «ВОБ 2 мес» - 6 животных; группа «ВОБ 3 мес» - 6 животных; буквосочетание «ВОБ» обозначает «воспаление + олеум + бетамид»). В группе «ВОБ 3 мес» введение водно-масляной эмульсии с бетамидом продолжали еще в течение 1 месяца до истечения 3-месячного срока с момента инокуляции Золотистого стафилококка.Within 10 days before the expiration of a 2-month period after the inoculation of Staphylococcus aureus, 12 animals were injected with a water-fat emulsion with betamide (VOB 2 month group - 6 animals; VOB 3 month group - 6 animals; the letter “VOB” means “Inflammation + oleum + betamide”). In the group "PSA 3 months" the introduction of a water-oil emulsion with betamide continued for 1 month before the expiration of a 3-month period from the moment of inoculation of Staphylococcus aureus.

Всего в эксперименте было 7 групп с воспроизведением остемиелита (по 6 животных) и одна группа интактных животных (также 6 особей).In total, in the experiment there were 7 groups with reproduction of osteomyelitis (6 animals each) and one group of intact animals (also 6 individuals).

Эксперимент выполнялся с соблюдением принципов гуманности, изложенных в директивах Европейского сообщества (86/609/ЕЕС) и Хельсинской декларации по защите позвоночных животных, используемых для лабораторных и иных целей.The experiment was carried out in compliance with the principles of humanity set forth in the directives of the European Community (86/609 / EEC) and the Helsinki Declaration on the Protection of Vertebrate Animals used for laboratory and other purposes.

Большеберцовую кость фиксировали в 12% формалине. Из залитых в парафин объектов делали серийные срезы толщиной 7 мкм. Морфология большеберцовой кости оценивалась при обзорной микроскопии после окраски срезов гематоксилином Эрлиха и эозином. Коллагеновые волокна выявлялись пикрофуксином по ван Гизону, сульфатированные гликозаминогликаны - альциановым синим при pH 1,0, популяцию тучных клеток оценивали после окраски альциановым синим при pH 1,0 с последующей докраской ядер кармалюмом Майера.The tibia was fixed in 12% formalin. From paraffin-embedded objects, serial sections were made with a thickness of 7 μm. The tibial morphology was assessed by panoramic microscopy after staining the sections with Ehrlich hematoxylin and eosin. Collagen fibers were detected by van Gieson picrofuchsin, sulfated glycosaminoglycans were detected with Alcian blue at pH 1.0, mast cell populations were evaluated after staining with Alcian blue at pH 1.0, followed by Mayer karmalum staining with nuclei.

При подготовке гистологических препаратов для иммуногистохимического анализа использовали стандартный метод фиксации тканей в нейтральном формалине с последующей дегидратацией и заливкой в парафин. Иммуногистохимическое исследование по оценке уровня экспрессии маркера клеток макрофагального ряда (ED1-подобный антиген) проводили с помощью непрямого стрептавидин-биотинового пероксидазного метода. В работе использовали систему визуализации Peroxidase Detection System (Novocastra). После процедуры демаскировки иммуногистохимическую окраску препаратов проводили в соответствии с общепринятыми стандартами указанной методики (Ramos-Vara J.А., 2005; Bibeau F. et al., 2006) и в соответствии с рекомендациями фирм-производителей.When preparing histological preparations for immunohistochemical analysis, the standard method of tissue fixation in neutral formalin was used, followed by dehydration and paraffin filling. An immunohistochemical study evaluating the expression level of a macrophage cell marker (ED1-like antigen) was performed using the indirect streptavidin-biotin peroxidase method. We used the Peroxidase Detection System (Novocastra) imaging system. After the unmasking procedure, the immunohistochemical staining of the preparations was carried out in accordance with generally accepted standards of the indicated technique (Ramos-Vara J.A., 2005; Bibeau F. et al., 2006) and in accordance with the recommendations of manufacturers.

Анализ интенсивности окрашивания коллагеновых волокон проводился с помощью светооптического микроскопа и морфометрического комплекса на базе микроскопа Micros МС 300А, цифровой камеры СХ 13 с («Baumer Electric GmbH», Германия) и программного обеспечения ImageJ 1.42g (Национальный институт здоровья, США). Для каждой группы оценивалось по 48 изображений.The analysis of the intensity of staining of collagen fibers was carried out using a light-optical microscope and a morphometric complex based on a Micros MS 300A microscope, a CX 13 s digital camera (Baumer Electric GmbH, Germany) and ImageJ 1.42g software (National Institute of Health, USA). For each group, 48 images were evaluated.

Статистическую обработку результатов исследования проводили с использованием программного пакета для статистической обработки SPSS v 13.0 for Windows. Для сравнения независимых групп использовали критерий Крускала-Уоллиса с последующим межгрупповым сравнением с помощью критерия Манна-Уитни. Различия между значениями сравниваемых параметров расценивали как статистически значимые при p<0,05. Полученные в ходе исследования данные представлены как медиана (Me) и интерквартильный размах (Q1; Q3).Statistical processing of the results of the study was performed using the software package for statistical processing of SPSS v 13.0 for Windows. For comparison of independent groups, the Kruskal-Wallis test was used, followed by intergroup comparison using the Mann-Whitney test. Differences between the values of the compared parameters were regarded as statistically significant at p <0.05. The data obtained during the study are presented as the median (Me) and interquartile range (Q 1 ; Q 3 ).

Результаты исследованияResearch results

При макроскопическом исследовании большеберцовой кости через 1 месяц после инокуляции Золотистого стафилококка отмечалась деформация кости за счет формирующейся костной мозоли (фиг. 1). В зоне трепанационного отверстия отчетливо просматривались введенные хлопчатобумажные нити и казеозное содержимое (фиг. 2). Гладкая в норме поверхность большеберцовой кости в проксимальном отделе приобрела шероховатую структуру. Костный мозг не просвечивался сквозь пластинку диафиза.Macroscopic examination of the tibia 1 month after inoculation of Staphylococcus aureus revealed bone deformation due to the formation of bone callus (Fig. 1). In the area of the trepanation hole, the introduced cotton threads and caseous contents were clearly visible (Fig. 2). The normal surface of the tibia in the proximal region has acquired a rough structure. The bone marrow did not show through the diaphysis plate.

При морфологическом исследовании большеберцовой кости через 1 месяц после трепанации и введения нити с культурой Золотистого стафилококка выявлялись признаки остеомиелита. Так, в месте костного дефекта выявлялись обширные зоны некроза и инфильтрации грануло-, лимфо- и гистиоцитарными элементами (фиг. 3), располагающимися в непосредственной близости к введенным в трепанационное отверстие нитям с Золотистым стафилококком. При этом отмечалось достаточно четкое зонирование клеточных элементов. Как правило, в фокусе таких инфильтратов находились скопления нейтрофилов (рис 4), которые были окружены лимфоцитарно-макрофагальным валом (фиг. 5). Обращало на себя внимание отсутствие на данном сроке признаков васкулогенеза, присущих неинфицированному перелому и появляющихся, по литературным данным, уже на 10 сутки после неинфицированной травмы.Morphological examination of the tibia 1 month after trepanation and the introduction of a thread with a culture of Staphylococcus aureus revealed signs of osteomyelitis. So, in the place of the bone defect, extensive zones of necrosis and infiltration of granulo-, lympho- and histiocytic elements (Fig. 3) were found, which are located in close proximity to the staphylococcus aureus filaments introduced into the trepanation hole. At the same time, a fairly clear zoning of cellular elements was noted. As a rule, the focus of such infiltrates was clusters of neutrophils (Fig. 4), which were surrounded by a lymphocyte-macrophage shaft (Fig. 5). Attention was drawn to the absence at this time of signs of vasculogenesis inherent in an uninfected fracture and appearing, according to published data, already 10 days after an uninfected injury.

Со стороны сохраненных балок наблюдалась остеокластическая резорбция костной ткани (фиг. 6), а также продуктивно-воспалительная реакция эндоста и периоста.From the saved beams, osteoclastic bone resorption was observed (Fig. 6), as well as a productive and inflammatory reaction of the endosteum and periosteum.

Наряду с описанными выше признаками остеомиелита, наблюдались признаки регенерационного остеогистогенеза. Так, у животных данной группы было выявлено образование тонких балок грубоволокнистой костной ткани (фиг. 7) по краю разрыва костных пластинок гаверсовых систем, а также увеличение доли костной ткани за счет ее образования на месте хряща (фиг. 8). В подвергающуюся дистрофии и деструкции гиалиновую хрящевую ткань врастали сосуды, вместе с которыми внедрялись клетки с остеогенными потенциями, обеспечивая формирование ретикулофиброзной костной ткани.Along with the signs of osteomyelitis described above, signs of regenerative osteohistogenesis were observed. So, in animals of this group, the formation of thin beams of coarse-fiber bone tissue (Fig. 7) along the edge of the rupture of bone plates of haversian systems, as well as an increase in the proportion of bone tissue due to its formation at the site of the cartilage (Fig. 8) was revealed. Vessels grew into the hyaline cartilage undergoing dystrophy and destruction, along with which cells with osteogenic potentials were introduced, providing the formation of reticulofibrous bone tissue.

Изучение костного мозга позволило выявить повышенное содержание адипоцитов в зоне, граничащей с воспалительным инфильтратом, и крайне редкие мастоциты (фиг. 9).A study of the bone marrow revealed an increased content of adipocytes in the area bordering the inflammatory infiltrate, and extremely rare mast cells (Fig. 9).

При макроскопическом исследовании большеберцовой кости через 2 месяца после инокуляции Золотистого стафилококка отмечалась выраженная деформация кости за счет сформированной костной мозоли (фиг. 10).A macroscopic examination of the tibia 2 months after inoculation of Staphylococcus aureus showed marked bone deformation due to the formed callus (Fig. 10).

В зоне трепанационного отверстия отчетливо просматривались введенные хлопчатобумажные нити и желтое казеозное содержимое. Просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза было снижено (фиг. 11).Introduced cotton threads and yellow caseous contents were clearly visible in the area of the trepanation hole. Translucent bone marrow through the plate of the diaphysis was reduced (Fig. 11).

В последующем, через 2 месяца после инокуляции Золотистого стафилококка, сохранялись зоны некроза костного мозга (фиг. 12) в непосредственной близости от введенных хлопчатобумажных нитей, ограниченные валом лимфоцитарных и макрофагальных элементов (фиг. 13), переходящим в макрофагально-фибробластический барьер (фиг. 14). Наблюдалась остеокластическая резорбция (фиг. 15) и фрагментация балок губчатой костной ткани (фиг. 13).Subsequently, 2 months after the inoculation of Staphylococcus aureus, zones of bone marrow necrosis (Fig. 12) remained in the immediate vicinity of the inserted cotton threads, bounded by a shaft of lymphocytic and macrophage elements (Fig. 13), passing into the macrophage-fibroblastic barrier (Fig. fourteen). Osteoclastic resorption (Fig. 15) and fragmentation of the spongy bone beams were observed (Fig. 13).

Следует отметить, что на месте дефекта кости происходило формирование сложного тканевого регенерата, в котором отмечалось выраженное наличие гиалиновой хрящевой ткани. Достаточно характерными для данной группы животных являлись очаги обызвествления гиалинового хряща, что приводило к деструкции и гибели хондроцитов. (фиг. 16). Было отмечено, что в данные участки врастали кровеносные сосуды, что способствовало репаративному эндохондральному остеогистогенезу. Кроме того, был отмечен интенсивный ангиогенез, а также активное формирование межклеточного вещества рыхлой соединительной ткани (фиг. 17; фиг. 18).It should be noted that at the site of the bone defect a complex tissue regenerate was formed, in which there was a pronounced presence of hyaline cartilage tissue. Foci of calcification of hyaline cartilage, which led to the destruction and death of chondrocytes, were quite characteristic for this group of animals. (Fig. 16). It was noted that blood vessels grew in these areas, which contributed to reparative endochondral osteohistogenesis. In addition, intense angiogenesis was noted, as well as the active formation of intercellular substance of loose connective tissue (Fig. 17; Fig. 18).

Достаточно часто в зоне некроза встречались костные осколки с остеоцитами, подвергшимися деструкции (фиг. 19), что способствовало хронизации остеомиелита.Quite often, bone fragments with osteocytes that underwent destruction (Fig. 19) were found in the necrosis zone, which contributed to the chronicity of osteomyelitis.

Изучение костного мозга позволило выявить повышенное содержание адипоцитов в зоне, граничащей с воспалительным инфильтратом, и отсутствие мастоцитов (фиг.20).A study of the bone marrow revealed an increased content of adipocytes in the area bordering the inflammatory infiltrate, and the absence of mast cells (Fig. 20).

Морфометрический анализ интенсивности окрашивания коллагеновых волокон, отражающей плотность их распределения в костных балках у животных групп «В 1 мес», «В 2 мес», «В 3 мес» показал, что, несмотря на имеющиеся признаки воспаления и остеокластическую резорбцию костной ткани, процесс репаративного эндохондрального остеогистогенеза, сопровождающийся синтезом остеобластами коллагена, достоверно превышает аналогичный показатель у интактных животных (табл. 1).A morphometric analysis of the intensity of staining of collagen fibers, reflecting the density of their distribution in the bone beams in animals of the groups “At 1 month”, “At 2 months”, “At 3 months” showed that, despite the signs of inflammation and osteoclastic bone resorption, the process reparative endochondral osteohistogenesis, accompanied by synthesis of collagen osteoblasts, significantly exceeds the same indicator in intact animals (Table 1).

Figure 00000002
Figure 00000002

При макроскопическом исследовании большеберцовой кости через 3 месяца после инокуляции Золотистого стафилококка отмечалось сохранение деформации кости за счет сформированной костной мозоли (фиг. 21). В зоне трепанационного отверстия отчетливо просматривались введенные хлопчатобумажные нити и желтое казеозное содержимое. В части случаев было отмечено закрытие трепанационного отверстия, однако при этом формировались костные выступы, окружающие концы введенной нити (фиг. 22). Просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза было снижено.Macroscopic examination of the tibia 3 months after inoculation of Staphylococcus aureus was observed preservation of bone deformation due to the formed bone callus (Fig. 21). Introduced cotton threads and yellow caseous contents were clearly visible in the area of the trepanation hole. In some cases, the closure of the trepanation hole was noted, however, bony protrusions surrounding the ends of the inserted thread were formed (Fig. 22). Translucent bone marrow through the plate of the diaphysis was reduced.

При морфологическом изучении большеберцовой кости через 3 месяца после инокуляции Золотистого стафилококка отмечалось сохранение зон некроза костного мозга, ограниченных макрофагально-фибробластическим барьером (фиг. 23). В зонах расположения введенных хлопчатобумажных нитей располагалось большое количество макрофагов (фиг. 24).In a morphological study of the tibia 3 months after inoculation with Staphylococcus aureus, bone marrow necrosis zones limited by the macrophage-fibroblast barrier were observed (Fig. 23). A large number of macrophages were located in the zones of the introduced cotton threads (Fig. 24).

Кроме того определялись гигантские многоядерные клетки Пирогова-Лангханса, содержащие многочисленные ядра по периферии цитоплазмы в виде кольца (фиг. 25).In addition, giant Pirogov-Langhans multinuclear cells were determined, containing numerous nuclei at the periphery of the cytoplasm in the form of a ring (Fig. 25).

Костные балки были фрагментированы, содержали немногочисленные, неравномерно расположенные остеоциты, участки с очаговым просветлением (фиг. 23). Отмечалось заполнение пространств между костными балками фиброзной тканью с большим содержанием коллагеновых волокон (фиг. 26), а также повышенное содержание жировых клеток в пограничной с инфильтратом зоне и единичные мастоциты в костном мозге (рис 27).Bone beams were fragmented, contained a few, unevenly located osteocytes, areas with focal enlightenment (Fig. 23). It was noted that the spaces between the bone beams were filled with fibrous tissue with a high content of collagen fibers (Fig. 26), as well as an increased content of fat cells in the border with infiltrate zone and single mast cells in the bone marrow (Fig. 27).

Так же, как и в предыдущей группе, достаточно часто, в зоне некроза встречались костные осколки с остеоцитами, подвергшимися деструкции (фиг.28), что определяло хроническое течение остеомиелита.As in the previous group, quite often, in the area of necrosis there were bone fragments with osteocytes that underwent destruction (Fig. 28), which determined the chronic course of osteomyelitis.

Изучение макропрепаратов в группе «ВО 2 мес» не позволило выявить какие-либо существенные отличия с группой «В 2 мес» (фиг. 29).The study of macropreparations in the group "IN 2 months" did not allow to reveal any significant differences with the group "In 2 months" (Fig. 29).

Динамика и характер морфологических изменений в большеберцовой кости в группе «ВО 2 мес» не отличались от группы «В 2 мес». Так, в группе «ВО 2 мес» отмечались обширные зоны некроза и инфильтрации грануло-, лимфо-, макрофагальными элементами при сохраняющейся зональности распределения иммунокомпетентных клеток (фиг. 30; 31); остеокластическая резорбция кости (фиг. 32); жировое перерождение костного мозга (фиг. 33), наличие костных осколков с остеоцитами, подвергшимися деструкции (фиг. 34), наличие очагов деструкции и гибели хондроцитов и репаративный эндохондральный остеогистогенез (фиг. 35); наличие интенсивного ангиогенеза (фиг. 36) и активное формирование межклеточного вещества рыхлой соединительной ткани (фиг. 33; 34). В отличие от групп, в которых масляная эмульсия не вводилась, в данной группе отмечалось некоторое увеличение мастоцитов в пограничной с воспалительным инфильтратом зоне костного мозга (фиг. 37).The dynamics and nature of morphological changes in the tibia in the “2 months” group did not differ from the “2 months” group. So, in the “2 months” group, extensive zones of necrosis and infiltration of granulo-, lympho-, and macrophage elements were noted with a preserved zonality of the distribution of immunocompetent cells (Fig. 30; 31); osteoclastic bone resorption (Fig. 32); fatty degeneration of bone marrow (Fig. 33), the presence of bone fragments with osteocytes that underwent destruction (Fig. 34), the presence of foci of destruction and death of chondrocytes and reparative endochondral osteohistogenesis (Fig. 35); the presence of intense angiogenesis (Fig. 36) and the active formation of intercellular substance of loose connective tissue (Fig. 33; 34). In contrast to the groups in which the oil emulsion was not administered, in this group there was a slight increase in mast cells in the border area of the bone marrow with inflammatory infiltrate (Fig. 37).

Изучение макропрепаратов в группе «ВО 3 мес» не позволило выявить какие-либо существенные отличия с группой «В 3 мес» (фиг. 38).The study of macropreparations in the group "IN 3 months" did not allow to reveal any significant differences with the group "In 3 months" (Fig. 38).

При морфологическом изучении большеберцовой кости в группе «ВО 3 мес» так же, как и у животных группы «В 3 мес», отмечалось сохранение зон некроза костного мозга (фиг. 39), ограниченных макрофагально-фибробластическим барьером (фиг. 40). Костные балки были фрагментированы, содержали немногочисленные, неравномерно расположенные остеоциты (фиг. 41), наблюдалось неравномерное распределение коллагеновых волокон и участки с формированием очаговых просветлений костной ткани (фиг. 42). Отмечалось заполнение пространств между костными балками фиброзной тканью с большим содержанием коллагеновых волокон (фиг. 43) и сульфатированных гликозаминогликанов (фиг. 44), а также повышенное содержание жировых клеток в костном мозге (фиг. 39).In a morphological study of the tibia in the “3 months old” group, as in the animals of the “3 months old” group, the preservation of areas of bone marrow necrosis (Fig. 39), limited by the macrophage-fibroblastic barrier (Fig. 40), was noted. Bone beams were fragmented, contained a few, unevenly located osteocytes (Fig. 41), there was an uneven distribution of collagen fibers and areas with the formation of focal enlightenment of bone tissue (Fig. 42). It was noted that the spaces between the bone beams were filled with fibrous tissue with a high content of collagen fibers (Fig. 43) and sulfated glycosaminoglycans (Fig. 44), as well as an increased content of fat cells in the bone marrow (Fig. 39).

Морфометрический анализ интенсивности окрашивания коллагеновых волокон, отражающей плотность их распределения в костных балках у животных группы «В 2 мес» и группы «ВО 2 мес», животных группы «В 3 мес» и группы «ВО 3 мес», показал, что на аналогичных сроках группы экспериментальных животных с введением масляной эмульсии и без ее введения статистически значимо не различаются (табл. 2).A morphometric analysis of the intensity of staining of collagen fibers, reflecting the density of their distribution in the bone beams in animals of the group "2 months" and group "2 months", animals of the group "3 months" and the group "3 months", showed that on similar the terms of the group of experimental animals with the introduction of an oil emulsion and without its introduction do not differ statistically significantly (Table 2).

Figure 00000003
Figure 00000003

При макроскопическом исследовании большеберцовой кости экспериментальных животных группы «ВОБ 2 мес» в отличие от группы «В 2 мес» отмечалась менее выраженная деформация кости за счет сформированной костной мозоли (фиг.45). В зоне трепанационного отверстия (группа «ВОБ 2 мес») отчетливо просматривалось желтоватое казеозное содержимое; поверхность большеберцовой кости в проксимальном отделе сохраняла гладкую структуру, отмечалось просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза (фиг. 46).A macroscopic examination of the tibia of experimental animals of the “PSA 2 months” group, in contrast to the “2 months” group, showed less pronounced bone deformation due to the formed bone callus (Fig. 45). In the area of the trepanation hole (group "PSA 2 months"), a yellowish caseous content was clearly visible; the surface of the tibia in the proximal section maintained a smooth structure, transmission of bone marrow through the plate of the diaphysis was noted (Fig. 46).

При морфологическом исследовании группы «ВОБ 2 мес» было обращено внимание на отсутствие зон некроза и существенное снижение зон инфильтрации (фиг. 47). Причем, в отличие от группы «В 2 мес», было отмечено, что изменился сам характер воспалительных инфильтратов, которые были представлены лимфоцитарно-макрофагальными элементами с существенным преобладанием последних (фиг. 48), а также практически полное отсутствие гранулоцитов (фиг. 49). Вместе с тем отмечалось выраженное формирование рыхлой волокнистой соединительной и грубоволокнистой костной тканей (фиг. 50). Необходимо отметить, что содержание сульфатированных гликозаминогликанов в рыхлой волокнистой соединительной ткани было выше, чем в группе «В 2 мес» (фиг. 51).During the morphological study of the group "PSA 2 months" attention was drawn to the absence of zones of necrosis and a significant decrease in zones of infiltration (Fig. 47). Moreover, unlike the “2 months” group, it was noted that the very nature of the inflammatory infiltrates, which were represented by lymphocytic macrophage elements with a significant predominance of the latter (Fig. 48), as well as the almost complete absence of granulocytes (Fig. 49), changed . At the same time, marked formation of loose fibrous connective and coarse fibrous bone tissue was noted (Fig. 50). It should be noted that the content of sulfated glycosaminoglycans in the loose fibrous connective tissue was higher than in the “2 months” group (Fig. 51).

Со стороны костных балок отмечалась остеогенная резорбция кости (фиг. 52), которая сочеталась с выраженным репаративным эндохондральным остеогистогенезом. Причем, достаточно часто новообразованная костная ткань включала в себя фрагменты введенной в трепанационное отверстие хлопчатобумажной нити (фиг. 53).From the side of the bone beams, osteogenic bone resorption was observed (Fig. 52), which was combined with pronounced reparative endochondral osteohistogenesis. Moreover, quite often the newly formed bone tissue included fragments of the cotton thread inserted into the trepanation hole (Fig. 53).

В отличие от группы «В 2 мес» у крыс группы «ВОБ 2 мес» отмечались более высокое содержание мастоцитов и более выраженное жировое перерождение костного мозга (фиг. 54), что является реакцией костного мозга на воспаление. Тем не менее, такая отличительная черта при отсутствии очагов некроза и инфильтратов не приводила к генерализации воспалительного процесса, поскольку наличие повышенного количества мастоцитов способствовало более выраженной перестройке костной ткани уже на данном сроке, что можно объяснить стимулирующей ролью мастоцитов в отношении соединительнотканного дифферона (Gruber B.L., 2003; Garbuzenko Е., 2000; 2004).In contrast to the “2 month old” group, rats of the “VOB 2 month old” group showed a higher mast cell count and more pronounced fatty degeneration of the bone marrow (Fig. 54), which is a response of the bone marrow to inflammation. Nevertheless, such a distinguishing feature in the absence of foci of necrosis and infiltrates did not lead to the generalization of the inflammatory process, since the presence of an increased number of mast cells contributed to a more pronounced bone remodeling already at this time, which can be explained by the stimulating role of mast cells in relation to the connective tissue differential (Gruber BL, 2003; Garbuzenko E., 2000; 2004).

При макроскопическом исследовании большеберцовой кости экспериментальных животных группы «ВОБ 3 мес» в отличие от группы «В 3 мес» отмечалась значительно менее выраженная деформация кости за счет сформированной костной мозоли (фиг. 55). В некоторых случаях в зоне трепанационного отверстия сохранялось выступающее над поверхностью кости фиброзное образование. Поверхность большеберцовой кости в проксимальном отделе сохраняла гладкую структуру, отмечалось просвечивание костного мозга сквозь пластинку диафиза (рис 56).In a macroscopic examination of the tibia of experimental animals of the “PSA 3 months” group, in contrast to the “3 months” group, a significantly less pronounced bone deformation was observed due to the formed callus (Fig. 55). In some cases, a fibrous mass protruding above the bone surface remained in the area of the trepanation hole. The surface of the tibia in the proximal region maintained a smooth structure, transmission of bone marrow through the plate of the diaphysis was noted (Fig. 56).

При морфологическом исследовании группы «ВОБ 3 мес» отмечалось отсутствие зон некроза и инфильтрации, не выявлялась воспалительная реакция со стороны эндоста и периоста. Вместе с тем отмечалось выраженное формирование рыхлой волокнистой соединительной и грубоволокнистой костной тканей (фиг. 57). Достаточно интересным являлся тот факт, что в ряде случаев новообразованная костная ткань отграничивала введенные нити от окружающего костного мозга (фиг. 58). Обращало на себя внимание, как и в группе «ВОБ 2 мес», выраженное жировое перерождение костного мозга в зоне, граничащей с введенными нитями, а также более высокое содержание мастоцитов (фиг. 59).During a morphological study of the group “PSA 3 months”, the absence of zones of necrosis and infiltration was noted, the inflammatory reaction from the endosteum and periosteum was not detected. At the same time, pronounced formation of loose fibrous connective and coarse fibrous bone tissue was noted (Fig. 57). Quite interesting was the fact that in some cases, the newly formed bone tissue delimited the introduced filaments from the surrounding bone marrow (Fig. 58). Attention was drawn, as in the “PSA 2 months” group, to pronounced fatty degeneration of the bone marrow in the area bordering the inserted threads, as well as a higher content of mast cells (Fig. 59).

Морфометрический анализ интенсивности окрашивания коллагеновых волокон, отражающей плотность их распределения в костных балках у животных групп «В 2 мес» и «ВОБ 2 мес», показал, что она статистически значимо не различалась (что свидетельствовало об одинаковом уровне выраженности коллагенообразования в костных балках) (табл. 3), но отличалась от группы интактных эивотных. Интенсивность окрашивания коллагеновых волокон в группах «В 3 мес» и «ВОБ 3 мес» статистически значимо различалась. При этом интенсивность окрашивания коллагеновых волокон в группе «ВОБ 3 мес» и в группе интактных животных достоверно не отличалась, что свидетельствовало о практическом завершении эндохондрального остеогистогенеза.A morphometric analysis of the intensity of staining of collagen fibers, reflecting the density of their distribution in bone beams in animals of the “2 months” and “PSA 2 months” groups, showed that it did not differ statistically significantly (which indicated the same level of severity of collagen formation in bone beams) ( Table 3), but differed from the group of intact animals. The intensity of staining of collagen fibers in the “3 months” and “PSA 3 months” groups was statistically significantly different. Moreover, the intensity of staining of collagen fibers in the group "PSA 3 months" and in the group of intact animals did not significantly differ, which indicated the practical completion of endochondral osteohistogenesis.

Figure 00000004
Figure 00000004

Приведенные данные показывают, что β-аланиламид бетулоновой кислоты оказывает лечебный эффект при остеомиелите.The above data show that betulonic acid β-alanilamide has a therapeutic effect in osteomyelitis.

Claims (1)

Средство для лечения остеомиелита, характеризующееся тем, что оно представляет собой β-аланиламид бетулоновой кислоты формулы (I):
Figure 00000005
An agent for treating osteomyelitis, characterized in that it is betulonic acid β-alanilamide of the formula (I):
Figure 00000005
RU2015146560/15A 2015-10-28 2015-10-28 Agent for treating osteomyelitis RU2604124C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015146560/15A RU2604124C1 (en) 2015-10-28 2015-10-28 Agent for treating osteomyelitis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2015146560/15A RU2604124C1 (en) 2015-10-28 2015-10-28 Agent for treating osteomyelitis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2604124C1 true RU2604124C1 (en) 2016-12-10

Family

ID=57776963

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2015146560/15A RU2604124C1 (en) 2015-10-28 2015-10-28 Agent for treating osteomyelitis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2604124C1 (en)

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001113398A (en) * 2001-05-15 2003-02-20 Валерий Алексеевич Привалов METHOD FOR SURGICAL TREATMENT OF CHRONIC OSTEOMYELITIS
RU2425680C1 (en) * 2010-05-19 2011-08-10 Новосибирский институт органической химии им. Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук (НИОХ СО РАН) Agent for correction of cytostatic polychemotherapy with anti-inflammatory activity
CN103720781A (en) * 2012-10-11 2014-04-16 王宪凯 Traditional Chinese medicine decoction for treatment of osteomyelitis

Family Cites Families (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2209595C2 (en) * 2001-05-15 2003-08-10 Привалов Валерий Алексеевич Method for surgical treatment of chronic osteomyelitis

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2001113398A (en) * 2001-05-15 2003-02-20 Валерий Алексеевич Привалов METHOD FOR SURGICAL TREATMENT OF CHRONIC OSTEOMYELITIS
RU2425680C1 (en) * 2010-05-19 2011-08-10 Новосибирский институт органической химии им. Н.Н. Ворожцова Сибирского отделения Российской академии наук (НИОХ СО РАН) Agent for correction of cytostatic polychemotherapy with anti-inflammatory activity
CN103720781A (en) * 2012-10-11 2014-04-16 王宪凯 Traditional Chinese medicine decoction for treatment of osteomyelitis

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
W.ZIMMERLI et all. Foreign-Body infection (FBI) study group role of rifampin for treatment of orthopedic implant-related staphylococcal infection: a randomized controlled trial //JAMA, 279, 1998, pp.1537-1541. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US20200055302A1 (en) In Vivo Live 3D Printing of Regenerative Bone Healing Scaffolds for Rapid Fracture Healing
Jin et al. Simvastatin-incorporated drug delivery systems for bone regeneration
Kose et al. Silver ion doped ceramic nano-powder coated nails prevent infection in open fractures: in vivo study
Wu et al. Controlled release of gentamicin from gelatin/genipin reinforced beta-tricalcium phosphate scaffold for the treatment of osteomyelitis
Hur et al. Bioabsorbable bone plates enabled with local, sustained delivery of alendronate for bone regeneration
AU2012228807B2 (en) Endoprosthesis having an active substance coating
KR20100093516A (en) Surgical hydrogel
WO2018231636A1 (en) Moldable formulations containing an oxysterol in an acellular tissue matrix
JP6899767B2 (en) Compositions and methods for the treatment and prevention of surgical site infections
EP2879620B1 (en) Compositions and methods for the treatment of bone voids and open fractures
Lee et al. Sustained BMP-2 delivery via alginate microbeads and polydopamine-coated 3D-Printed PCL/β-TCP scaffold enhances bone regeneration in long bone segmental defects
Mohamed et al. Histological evaluation of the effect of local application of Punica granatum seed oil on bone healing
Berebichez-Fridman et al. An intramedullary nail coated with antibiotic and growth factor nanoparticles: an individualized state-of-the-art treatment for chronic osteomyelitis with bone defects
Zhang et al. Osteogenic and anti-inflammatory potential of oligochitosan nanoparticles in treating osteomyelitis
Banerjee et al. Comparative effects of controlled release of sodium bicarbonate and doxorubicin on osteoblast and osteosarcoma cell viability
RU2429002C1 (en) Method of stimulating reparative osteogenesis
RU2604124C1 (en) Agent for treating osteomyelitis
Oh et al. Prolonged anti-bacterial activity of ion-complexed doxycycline for the treatment of osteomyelitis
CN1845746A (en) Anti-tumor formulations comprising defibrotide alone or in combination with other anti-tumor agents
Ma et al. Fabrication of gentamicin loaded Col-I/HA multilayers modified titanium coatings for prevention of implant infection
Hassan et al. Application of Aloe vera gel blended polymer-collagen scaffolds for bone tissue engineering
Eshwar et al. Histological Assessment of Fucoidan Gelatine Chitosan Compound Injectable Hydrogel for Bone Regeneration in Wistar Rats.
JP2007507516A (en) Treatment of mammalian disorders by amino sugar administration and use of amino sugar
CN114569798A (en) Porous implant and preparation method and application thereof
DE102009024616A1 (en) Sterilizable coating used for complete or partial treatment of surfaces of implantable materials for use as implants or hard tissue replacement materials in medical and dental field, comprises osteogenic protein and ionic polysaccharide