[go: up one dir, main page]

RU2647571C1 - Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal - Google Patents

Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal Download PDF

Info

Publication number
RU2647571C1
RU2647571C1 RU2017130132A RU2017130132A RU2647571C1 RU 2647571 C1 RU2647571 C1 RU 2647571C1 RU 2017130132 A RU2017130132 A RU 2017130132A RU 2017130132 A RU2017130132 A RU 2017130132A RU 2647571 C1 RU2647571 C1 RU 2647571C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
sclerostin
protein
target
bone
vertebrate
Prior art date
Application number
RU2017130132A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Владимир Глебович Лунин
Ольга Васильевна Сергиенко
Александр Викторович Громов
Original Assignee
Владимир Глебович Лунин
Ольга Васильевна Сергиенко
Александр Викторович Громов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Владимир Глебович Лунин, Ольга Васильевна Сергиенко, Александр Викторович Громов filed Critical Владимир Глебович Лунин
Priority to RU2017130132A priority Critical patent/RU2647571C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2647571C1 publication Critical patent/RU2647571C1/en

Links

Images

Classifications

    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/11DNA or RNA fragments; Modified forms thereof; Non-coding nucleic acids having a biological activity
    • C12N15/62DNA sequences coding for fusion proteins
    • CCHEMISTRY; METALLURGY
    • C12BIOCHEMISTRY; BEER; SPIRITS; WINE; VINEGAR; MICROBIOLOGY; ENZYMOLOGY; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING
    • C12NMICROORGANISMS OR ENZYMES; COMPOSITIONS THEREOF; PROPAGATING, PRESERVING, OR MAINTAINING MICROORGANISMS; MUTATION OR GENETIC ENGINEERING; CULTURE MEDIA
    • C12N15/00Mutation or genetic engineering; DNA or RNA concerning genetic engineering, vectors, e.g. plasmids, or their isolation, preparation or purification; Use of hosts therefor
    • C12N15/09Recombinant DNA-technology
    • C12N15/63Introduction of foreign genetic material using vectors; Vectors; Use of hosts therefor; Regulation of expression

Landscapes

  • Genetics & Genomics (AREA)
  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Wood Science & Technology (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • General Engineering & Computer Science (AREA)
  • Organic Chemistry (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Zoology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Plant Pathology (AREA)
  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology; immunobiology.
SUBSTANCE: invention relates to genetic engineering, biotechnology and immunobiology. Method for producing a recombinant sclerostin protein of a vertebrate is described. Vector construct is constructed to ensure stable replication and expression of the target gene in E. coli cells. Cells of the E. coli strain expressing the sclerostin gene are grown. Sclerostin protein from cell extracts of the E. coli strain using metal-chelate affinity chromatography using a nickel-containing sorbent is purified. Then the product is washed and isolated. In order to construct the vector structure, the target sclerostin gene is first obtained and cloned. To this end, a planned oligonucleotide duplex is inserted into the target gene at the BamHI and Kpn2I sites to obtain a construct comprising a sequence encoding the fusion protein of the target sclerostin and six histidins. Method for increasing the bone mass of a vertebrate, a particular mammal and a human is also described. Twice, at an interval of 20 days, immunization with the target recombinant protein sclerostin at a dose of 0.1–100 mcg sclerostin per one kilogram body weight of the vertebrate is carried out. In this case, the target sclerostin protein of the same species of vertebrate is used, which needs to increase the density of bone tissue. Invention can be used in veterinary medicine and medicine for the treatment of osteoporosis of vertebrates and humans.
EFFECT: thus, the claimed group of inventions expands the arsenal of tools used for the study and treatment of osteoporosis.
3 cl, 5 ex, 2 dwg

Description

Область примененияApplication area

Изобретение относится к биотехнологии и иммунологии, а конкретно к рекомбинантному белку склеростина, способу его получения, а также способу повышения костной массы позвоночного животного, особенно млекопитающего. Изобретение может быть использовано в ветеринарии и медицине для лечения остепороза у позвоночных животных, в том числе млекопитающих и человека. Таким образом, заявленная группа изобретений расширяет арсенал средств, используемых для исследования и лечения остеопороза.The invention relates to biotechnology and immunology, and in particular to a recombinant sclerostin protein, a method for its production, and also a method for increasing the bone mass of a vertebrate animal, especially a mammal. The invention can be used in veterinary medicine and for the treatment of osteoporosis in vertebrates, including mammals and humans. Thus, the claimed group of inventions expands the arsenal of tools used for the study and treatment of osteoporosis.

Известный уровеньKnown level

Среди костных заболеваний наиболее распространенным и драматичным по последствиям остается остеопороз (ОП). С клинических позиций развитие ОП определяется многочисленными факторами: возрастом, массой тела, наступлением менопаузы, приемом глюкокортикоидов и других препаратов, влияющих на костный метаболизм, сопутствующими заболеваниями, и др. На тканевом уровне эти факторы приводят к дисбалансу остеокласт-опосредованной костной резорбции и остеобласт-опосредованного формирования костной ткани с нарушением нормального гомеостаза костной системы и как следствие - к потерям костной массы. Современные концепции фармакологического лечения ОП направлены на ограничение остеокласт-опосредованной костной резорбции. Наиболее изученными и распространенными препаратами являются азотсодержащие бисфосфонаты, которые индуцируют апоптоз остеокластов. Активность остеокластов ограничивают также кальцитонин, эстрогены, селективные модуляторы эстрогеновых рецепторов, а также новый утвержденный антирезорбтивный препарат деносумаб, представляющий собой гуманизированное антитело против рецептора активатора нуклеарного фактора κB (NF-κB), который функционирует как ингибитор образования остеокластов. В США, Канаде, России и некоторых странах Европы разрешен к применению анаболический препарат - паратироидный гормон - терипаратид, который пока в единственном числе выступает в качестве противовеса многочисленным антирезорбтивным препаратам. Однако последние экспериментальные и клинические исследования указывают на то, что данная ситуация должна коренным образом измениться в ближайшем будущем. Это связано в первую очень с открытием белков-ингибиторов, регулирующих костный гомеостаз. Среди таких белков наибольшее внимание привлекает склеростин [Дыдыкина И.С., Веткова Е.С. Склеростин и его роль в регуляции метаболизма костной ткани. Науч.-практич. ревматол. 2013;3(51): 296-301]. Склеростин является эндогенным ингибитором канонического Wnt/β-катенин-сигнального пути. В его присутствии предшественники остеобластов не подвергаются воздействию Wnt-сигнала, в результате процесс дифференциации остеобластов приостанавливается. Wnt-сигнальный путь прямо влияет на процессы формирования и регенерации костной ткани, а модуляция этого пути может оказаться полезной для лечения ОП и других костных заболеваний [Drake М., Farr J.N. Inhibitors of sclerostin; emerging concepts. Curr. Opin. Rheumatol. 2014;26(40):45-52, Lewieski E.M. Role of sclerostin in bone and cartilage and its potential as a therapeutic target in bone diseases. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis. 2014;2(6):48-57]. Изучение ряда редких генетических заболеваний, в частности остеосклерозирующих, позволило выявить участие Wnt-сигнального пути в регуляции формирования костной ткани [Дыдыкина И.С., Веткова Е.С. Склеростин и его роль в регуляции метаболизма костной ткани. Науч.-практич. ревматол. 2013;3(51):296-301]. С другой стороны, склеростин, который продуцируется остеоцитами, ограничивает процесс формирования костной ткани во избежание избыточного окостенения. Например, при генетически детерминированных заболеваниях костной ткани, проявляющихся избыточным окостенением (остеосклероз, болезнь ван Бухема), установлен дефект гена SOST, локализующегося в хромосоме 17q12-21 и отвечающего за экспрессию склеростина [Garnero P. Sclerostin - a specific biochemical marker of osteocyte function. Lyon, 2011. 20 р.]. В соответствии с современной концепцией лечения ОП антирезорбтивные агенты служат препаратами первой линии для уменьшения риска переломов костей у пациентов с ОП, а препараты анаболического действия обычно рекомендуются только при выраженном/тяжелом ОП. Однако при потере костной массы микроструктура кости (микроархитектоника) не может быть восстановлена только за счет влияния на функцию остеокластов. Таким образом, будущая технология лечения ОП будет направлена на реверсию ОП за счет максимального увеличения плотности костной ткани и сохранения микроархитектоники на начальной стадии, а достигнутые результаты будут поддерживаться за счет антирезорбтивной терапии, применяемой на второй стадии.Among bone diseases, osteoporosis (OP) remains the most common and dramatic in its consequences. From a clinical point of view, the development of OP is determined by numerous factors: age, body weight, the onset of menopause, taking glucocorticoids and other drugs that affect bone metabolism, concomitant diseases, etc. At the tissue level, these factors lead to an imbalance of osteoclast-mediated bone resorption and osteoblast- indirect formation of bone tissue with a violation of normal homeostasis of the skeletal system and, as a result, loss of bone mass. Modern concepts of pharmacological treatment of OP are aimed at limiting osteoclast-mediated bone resorption. The most studied and common drugs are nitrogen-containing bisphosphonates, which induce apoptosis of osteoclasts. The activity of osteoclasts is also limited by calcitonin, estrogens, selective modulators of estrogen receptors, as well as the new approved antiresorptive drug denosumab, which is a humanized antibody against the κB nuclear factor activator receptor (NF-κB), which functions as an inhibitor of osteoclastic formation. In the USA, Canada, Russia and some countries of Europe, an anabolic drug - parathyroid hormone - teriparatide, which so far in the singular acts as a counterweight to numerous antiresorptive drugs, is approved for use. However, recent experimental and clinical studies indicate that this situation should fundamentally change in the near future. This is primarily connected with the discovery of inhibitor proteins that regulate bone homeostasis. Among these proteins, sclerostin attracts the most attention [Dydykina IS, Vetkova ES Sclerostin and its role in the regulation of bone metabolism. Scientific and practical rheumatol. 2013; 3 (51): 296-301]. Sclerostin is an endogenous inhibitor of the canonical Wnt / β-catenin signaling pathway. In his presence, the precursors of osteoblasts are not exposed to the Wnt signal; as a result, the process of differentiation of osteoblasts is suspended. Wnt-signaling pathway directly affects the processes of formation and regeneration of bone tissue, and modulation of this pathway may be useful for the treatment of OP and other bone diseases [Drake M., Farr J.N. Inhibitors of sclerostin; emerging concepts. Curr. Opin. Rheumatol. 2014; 26 (40): 45-52, Lewieski E.M. Role of sclerostin in bone and cartilage and its potential as a therapeutic target in bone diseases. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis. 2014; 2 (6): 48-57]. The study of a number of rare genetic diseases, in particular osteosclerosing, made it possible to identify the participation of the Wnt signaling pathway in the regulation of bone tissue formation [Dydykina IS, Vetkova ES Sclerostin and its role in the regulation of bone metabolism. Scientific and practical rheumatol. 2013; 3 (51): 296-301]. On the other hand, sclerostin, which is produced by osteocytes, limits the process of bone formation in order to avoid excessive ossification. For example, in genetically determined diseases of bone tissue, which are manifested by excessive ossification (osteosclerosis, Van Buchem disease), a defect in the SOST gene located on chromosome 17q12-21 and responsible for the expression of sclerosis has been established [Garnero P. Sclerostin - a specific biochemical marker of osteocyte function. Lyon, 2011. 20 p.]. In accordance with the modern concept of treatment of OP, antiresorptive agents serve as first-line drugs to reduce the risk of bone fractures in patients with OP, and anabolic drugs are usually recommended only for severe / severe OP. However, with bone loss, the microstructure of the bone (microarchitectonics) cannot be restored only due to the influence on the function of osteoclasts. Thus, the future technology of treatment of OP will be aimed at reversing the OP by maximizing bone density and preserving microarchitectonics at the initial stage, and the achieved results will be supported by antiresorptive therapy used in the second stage.

Сегодня известно, что склеростин представляет собой циркулирующий ингибитор сигнального пути Wnt, который продуцируется остеоцитами и подавляет функцию рецептор - связывающего протеина LPR5. Антитела, направленные против склеростина, обладают анаболическими свойствами. Склеростин-нейтрализующие моноклональные антитела блокируют остеоцит-продуцированный склеростин, который является антагонистом Wnt-сигнального пути и предотвращает связывание Wnt и корецептора LRP5/6. Связанный/блокированный склеростин позволяет связаться Wnt с комплексом LRP5/6, тем самым стимулируя активность Wnt/β-катенин сигнального пути в остеобластах, что приводит в конечном итоге к увеличению их остеосинтетической активности и повышению костеобразования.Today it is known that sclerostin is a circulating inhibitor of the Wnt signaling pathway, which is produced by osteocytes and inhibits the function of the receptor-binding protein LPR5. Antibodies against sclerostin have anabolic properties. Sclerostin-neutralizing monoclonal antibodies block osteocyte-produced sclerostin, which is an antagonist of the Wnt signaling pathway and prevents the binding of Wnt and the LRP5 / 6 coreceptor. Bound / blocked sclerostin allows Wnt to bind to the LRP5 / 6 complex, thereby stimulating the activity of the Wnt / β-catenin signaling pathway in osteoblasts, which ultimately leads to an increase in their osteosynthetic activity and an increase in bone formation.

За последние годы появилось огромное количество работ о ведущей роли Wnt/β-катенин-сигнального пути в дифференциации остеобластов, пролиферации, и, в конечном счете, в формировании новой костной ткани [Ke H.Z., Richards W.G., Li X., et al.Sclerostin and Dickkopf-1 as therapeutic targets in bone diseases. Endocr Rev. 2012;5(33):747-83, Kim J.H., Liu X., Wang J., et al. Wnt signaling in bone formation and its therapeutic potential for bone diseases. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis. 2013;1(5):13-31, Moester M.J., Papapoulos S.E.,

Figure 00000001
C.W., et al. Sclerostin: current knowledge and future perspectives. Calcif. Tissue Int. 2010;2(87):99-107]. Как множество подобных регулирующих сетей, Wnt-регуляция модулируется комплексом агонистов и антагонистов, соотносительное действие которых определяет, будет ли Wnt-сигнальный путь стимулироваться или же ингибироваться. Склеростин идентифицирован только десять лет назад как гликопротеин, продуцирующийся остеоцитами, способный блокировать связывание Wnt и корецептора LRP5/6. У людей с гетерозиготной мутацией, приводящей к инактивации одной копии гена склеростина, сывороточные уровни склеростина приблизительно наполовину ниже нормы, но темпы формирования костной ткани значительно увеличены. Эти результаты позволили предположить, что снижение уровня склеростина может быть новым направлением в регуляции костной массы, что послужило активизации исследований по созданию и апробированию новых анаболических агентов. Открытие склеростина и установление его биологической роли как негативного регулятора остеобластогенеза вызвало большой интерес к склеростину как к перспективной мишени для разработки нового терапевтического подхода к лечению ОП [Willams В. Insights into the mechanism od sclerostin action in regulating bone mass accrual. J. Bone Miner. Res. 2014;1(29):24-8]. Ha сегодняшний день уже созданы гуманизированные моноклональные антитела к склеростину, действие которых было апробировано на грызунах и обезьянах [ЕА 201491286, ЕА 201000559, ЕА 200702402, ЕА 200600037]. При этом был получен убедительный положительный эффект, и в настоящее время их изучение активно продолжается [Drake М., Farr J.N. Inhibitors of sclerostin; emerging concepts. Curr. Opin. Rheumatol. 2014;26(40):45-52].In recent years, a huge number of works have appeared on the leading role of the Wnt / β-catenin-signaling pathway in the differentiation of osteoblasts, proliferation, and, ultimately, in the formation of new bone tissue [Ke HZ, Richards WG, Li X., et al.Sclerostin and Dickkopf-1 as therapeutic targets in bone diseases. Endocr rev. 2012; 5 (33): 747-83, Kim JH, Liu X., Wang J., et al. Wnt signaling in bone formation and its therapeutic potential for bone diseases. Ther. Adv. Musculoskelet. Dis. 2013; 1 (5): 13-31, Moester MJ, Papapoulos SE,
Figure 00000001
CW, et al. Sclerostin: current knowledge and future perspectives. Calcif. Tissue Int. 2010; 2 (87): 99-107]. Like many such regulatory networks, Wnt regulation is modulated by a complex of agonists and antagonists, the relative action of which determines whether the Wnt signaling pathway is stimulated or inhibited. Sclerostin was identified only ten years ago as a glycoprotein produced by osteocytes, capable of blocking the binding of Wnt and the LRP5 / 6 coreceptor. In people with a heterozygous mutation leading to the inactivation of one copy of the sclerostin gene, serum sclerostin levels are approximately half normal, but the rate of bone formation is significantly increased. These results suggested that lowering sclerostin levels may be a new direction in bone mass regulation, which served as an intensification of research on the creation and testing of new anabolic agents. The discovery of sclerostin and the establishment of its biological role as a negative regulator of osteoblastogenesis aroused great interest in sclerostin as a promising target for the development of a new therapeutic approach to the treatment of OP [Willams B. Insights into the mechanism od sclerostin action in regulating bone mass accrual. J. Bone Miner. Res. 2014; 1 (29): 24-8]. Today, humanized monoclonal antibodies to sclerostin have already been created, the effect of which has been tested on rodents and monkeys [EA 201491286, EA 201000559, EA 200702402, EA 200600037]. In this case, a convincing positive effect was obtained, and at present their study is actively ongoing [Drake M., Farr JN Inhibitors of sclerostin; emerging concepts. Curr. Opin. Rheumatol. 2014; 26 (40): 45-52].

Многочисленные экспериментальные исследования, проведенные буквально за последние 10 лет с использованием различных моделей заболеваний костной ткани, убедительно демонстрируют, что ингибирование склеростина с помощью моноклональных антител положительно влияет на структуру костной ткани, повышает ее плотность, а также улучшает сращение переломов на моделях мышей и крыс [Agholme F., Macias В., Hamang М., et al.Efficacy of a sclerostin antibody compared to a low dose of PTH on metaphyseal bone healing. Orthop. Res. 2014;3(32):471-76, Hamann C., Rauner M.,

Figure 00000002
Y., et al. Sclerostin antibody treatment improves bone mass, bone strength, and bone defect regeneration in rats with type 2 diabetes mellitus. J. Bone Miner. Res. 2013;3(28):627-38, Li C.Y., Tan H.L., Barrero M., et al. Sclerostin antibody treatment enhances fracture healing and increases bone mass and strength in non-fractured bones in an adult rat closed femoral fracture model. J. Bone Miner. Res. 2010;1(25):S129]. Кроме того, с помощью томографического и гистоморфометрического исследований продемонстрировано дозозависимое анаболическое действие на костную ткань склеростин-нейтрализирующих моноклональных антител при подкожном введении овариэктомированным макакам с повышением образования плотности костной ткани в трабекулярной, эндо-интракортикальной и периостальной тканях без негативного влияния на качество костного матрикса [Ominsky M.S., Vlasseros F., Jolette J., et al. Two doses of sclerostin antibody in cynomolgus monkeys increases bone formation, bone mineral density, and bone strength. J. Bone Miner. Res. 2010;5(25):948-59, Ross R.D., Edwards L.H., Acerbo A.S., et al. Bone Matrix Quality After Sclerostin Antibody Treatment. J. Bone Miner. Res. 2014;7(29):1597-607]. При этом прочность костей оценивают с помощью тестов на компрессию тел III и IV поясничных позвонков. Интересно также, что гистоморфометрические исследования у грызунов и обезьян демонстрируют, что лечение ингибиторами склеростина повышает моделирование костеобразования, а не собственно ремоделирование (в ответ на костную резорбцию) [Ominsky M.S., Niu Q.-T., Li Ch., et al. Tissue Level Mechanisms Responsible for the Increase in Bone Formation and Bone Volume by Sclerostin Antibody. J. Bone Miner. Res. 2014;6(29):1424-30]. Следует отметить, что данный механизм отличается от эффектов гормона терипаратида, при котором оба процесса - формирование и резорбция - возрастают. Антисклеростин-терапия также продемонстрировала благотворное влияние на процесс сращения костей у грызунов с ускорением репарации, повышением прочности кости и увеличением плотности костной мозоли [Agholme F., Macias В., Hamang М., et al.Efficacy of a sclerostin antibody compared to a low dose of PTH on metaphyseal bone healing. Orthop. Res. 2014;3(32):471-76,18]. Следует подчеркнуть, что терапия антителами к склеростину повышает плотность и прочность новообразованной костной ткани, [Ominsky M., Samadfan R., Jolette J., et al.Sclerostin monoclonal antibody stimulates bone formation and improves the strength and density of the fracture callus and lumbar spine in a primate fibular osteotomy model. J. Bone Miner. Res. 2009;1(25):S.89-S90].Numerous experimental studies conducted literally over the past 10 years using various models of bone tissue diseases convincingly demonstrate that inhibition of sclerosis with monoclonal antibodies positively affects the structure of bone tissue, increases its density, and also improves the healing of fractures in mouse and rat models [ Agholme F., Macias B., Hamang M., et al. Efficacy of a sclerostin antibody compared to a low dose of PTH on metaphyseal bone healing. Orthop. Res. 2014; 3 (32): 471-76, Hamann C., Rauner M.,
Figure 00000002
Y., et al. Sclerostin antibody treatment improves bone mass, bone strength, and bone defect regeneration in rats with type 2 diabetes mellitus. J. Bone Miner. Res. 2013; 3 (28): 627-38, Li CY, Tan HL, Barrero M., et al. Sclerostin antibody treatment enhances fracture healing and increases bone mass and strength in non-fractured bones in an adult rat closed femoral fracture model. J. Bone Miner. Res. 2010; 1 (25): S129]. In addition, with the help of tomographic and histomorphometric studies, a dose-dependent anabolic effect on bone tissue of sclerostin-neutralizing monoclonal antibodies was demonstrated by subcutaneous administration to ovariectomated macaques with an increase in bone density in trabecular, endo-intracortical and periosteal tissues without negatively affecting the quality of the bone matrix [ MS, Vlasseros F., Jolette J., et al. Two doses of sclerostin antibody in cynomolgus monkeys increases bone formation, bone mineral density, and bone strength. J. Bone Miner. Res. 2010; 5 (25): 948-59, Ross RD, Edwards LH, Acerbo AS, et al. Bone Matrix Quality After Sclerostin Antibody Treatment. J. Bone Miner. Res. 2014; 7 (29): 1597-607]. In this case, bone strength is assessed using compression tests of bodies of the III and IV lumbar vertebrae. It is also interesting that histomorphometric studies in rodents and monkeys show that treatment with sclerostin inhibitors improves bone formation and not remodeling itself (in response to bone resorption) [Ominsky MS, Niu Q.-T., Li Ch., Et al. Tissue Level Mechanisms Responsible for the Increase in Bone Formation and Bone Volume by Sclerostin Antibody. J. Bone Miner. Res. 2014; 6 (29): 1424-30]. It should be noted that this mechanism differs from the effects of the hormone teriparatide, in which both processes - formation and resorption - increase. Antisclerostin therapy has also shown beneficial effects on the process of bone fusion in rodents with accelerated repair, increased bone strength and increased bone density [Agholme F., Macias B., Hamang M., et al. Efficacy of a sclerostin antibody compared to a low dose of PTH on metaphyseal bone healing. Orthop. Res. 2014; 3 (32): 471-76.18]. It should be emphasized that anti-sclerostin antibody therapy increases the density and strength of newly formed bone tissue, [Ominsky M., Samadfan R., Jolette J., et al .clerostin monoclonal antibody stimulates bone formation and improves the strength and density of the fracture callus and lumbar spine in a primate fibular osteotomy model. J. Bone Miner. Res. 2009; 1 (25): S.89-S90].

С декабря 2006 по июль 2007 г. в США проведено рандомизированное контролируемое двойное слепое исследование моноклональных антител к склеростину («ромосозумаб», Амген), которые вводились однократно, при этом участники были разделены на когорты, получающие различные дозы исследуемого препарата [Padhi D., Jang G., Stouch В., et al.Single-dose, placebo-controlled, randomized study of AMG 785, a sclerostin monoclonal antibody. J. Bone Miner. Res. 2011;1(26):19-26]. Участники получали терапевтическое антитело или плацебо - подкожно или внутривенно. По сравнению с плацебо однократное подкожное введение антитела повысило минеральную плотность костной ткани (МПКТ) в поясничных позвонках и бедренной кости во всех опытных группах. Повышение МПКТ было дозозависимым. Большинство побочных эффектов, по мнению исследователей, были умеренными [Padhi D., Jang G., Stouch В., et al.Single-dose, placebo-controlled, randomized study of AMG 785, a sclerostin monoclonal antibody. J. Bone Miner. Res. 2011;1(26):19-26].From December 2006 to July 2007, a randomized double-blind study of monoclonal antibodies to sclerostin (Romososumab, Amgen), which was administered once, was conducted in the USA, and the participants were divided into cohorts receiving different doses of the study drug [Padhi D., Jang G., Stouch B., et al. Single-dose, placebo-controlled, randomized study of AMG 785, a sclerostin monoclonal antibody. J. Bone Miner. Res. 2011; 1 (26): 19-26]. Participants received a therapeutic antibody or placebo subcutaneously or intravenously. Compared with placebo, a single subcutaneous administration of an antibody increased bone mineral density (BMD) in the lumbar vertebrae and femur in all experimental groups. An increase in BMD was dose dependent. Most of the side effects, according to the researchers, were mild [Padhi D., Jang G., Stouch B., et al. Single-dose, placebo-controlled, randomized study of AMG 785, a sclerostin monoclonal antibody. J. Bone Miner. Res. 2011; 1 (26): 19-26].

Однако применение антительной терапии против ОП имеет проблему введения в организм больших количеств эндогенного рекомбинантного антитела от 3-х (ромосозумаб, «Амген», США) до 6-ти (блосозумаб, «Эли Лилли», США) граммов в год, и сопутствующие осложнения, характерные для препаратов терапевтических моноклональных антител.However, the use of antibody therapy against OP has the problem of introducing large amounts of an endogenous recombinant antibody into the body from 3 grams (romososumab, Amgen, USA) to 6 grams (blososumab, Eli Lilly, USA) grams per year, and related complications specific for therapeutic monoclonal antibody preparations.

Таким образом, несомненна необходимость разработки альтернативного подхода, основанного на синтезе аутоантител против белка-мишени, в создании безопасной в применении профилактической вакцины против остеопороза, лечебные свойства которой будут равноценны по свойствам уже имеющимся препаратам на основе экзогенных антител, а сопутствующие побочные эффекты существенно снижены.Thus, there is no doubt the need to develop an alternative approach based on the synthesis of autoantibodies against the target protein in creating a safe prophylactic vaccine against osteoporosis, the therapeutic properties of which will be equivalent in properties to existing drugs based on exogenous antibodies, and the accompanying side effects are significantly reduced.

В уровне техники не были выявлены решения, аналогичные заявляемому. Однако использование фрагмента склеростина в качестве иммуногена известно из ЕА 200600038. Данное решение является ближайшим аналогом заявляемой группы изобретений.In the prior art have not been identified solutions similar to the claimed. However, the use of a sclerostin fragment as an immunogen is known from EA 200600038. This solution is the closest analogue of the claimed group of inventions.

Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION

Задача настоящего изобретения заключается в создании рекомбинантного иммунологически активного склеростина, обладающего достаточной иммуногенностью для образования антител к склеростину, который может быть использован для терапии, в том числе смоделированного ОП. Другая задача изобретения заключается в создании инъекционной формы иммуногенной композиции на основе указанного белка и в разработке способа повышения плотности костной ткани.The objective of the present invention is to provide a recombinant immunologically active sclerostin with sufficient immunogenicity to produce antibodies to sclerostin, which can be used for therapy, including simulated OP. Another object of the invention is to provide an injectable form of an immunogenic composition based on said protein and to develop a method for increasing bone density.

Изобретение относится к способу получения целевого рекомбинантного белка склеротина позвоночного животного, в том числе млекопитающего, включающему конструирование векторной конструкции, обеспечивающей стабильную репликацию и экспрессию целевого гена в клетках Е. coli, выращивание клеток штамма Е. coli, экспрессирующих ген склеростина, очистку белка склеростина из клеточных экстрактов штамма Е. coli с помощью металл-хелатной аффинной хроматографии при использовании никельсодержащего сорбента, последующую отмывку и выделение целевого продукта, при этом для конструирования векторной конструкции вначале получают целевой ген склеростина и осуществляют его клонирование, в целевой ген по сайтам BamHI и Kpn2I вставляют спланированный олигонуклеотидный дуплекс, в результате чего получают конструкцию, содержащую последовательности, кодирующие целевой ген склеростина и последовательность из шести гистидинов в виде слитного белка.The invention relates to a method for producing the target recombinant sclerotin protein of a vertebrate animal, including a mammal, comprising constructing a vector construct that provides stable replication and expression of the target gene in E. coli cells, growing E. coli strain cells expressing the sclerostin gene, purification of sclerostin protein from cell extracts of E. coli strain using metal-chelate affinity chromatography using a nickel-containing sorbent, subsequent washing and isolation of the target product, and in order to construct the vector construct, the target sclerostin gene is first obtained and cloned, the planned oligonucleotide duplex is inserted into the target gene at the BamHI and Kpn2I sites, whereby a construct containing sequences encoding the target sclerostin gene and a sequence of six histidines in as a fusion protein.

Также изобретение относится к способу повышения костной массы позвоночного животного, в том числе млекопитающего и человека, включающему двукратное, с интервалом в 14 суток, проведение подкожных инъекций целевым рекомбинантным белком склеростином, полученным вышеуказанным способом, в дозе 0,1-100 мкг рекомбинантного белка на один килограмм массы тела позвоночного животного и человека, при этом используют целевой белок склеростина того же вида позвоночного животного, которому необходимо повысить костную массу.The invention also relates to a method for increasing the bone mass of a vertebrate animal, including a mammal and a human, including double, with an interval of 14 days, subcutaneous injection of the target recombinant sclerostin protein obtained by the above method in a dose of 0.1-100 μg of recombinant protein per one kilogram of the body weight of a vertebrate animal and a person, using the target sclerosin protein of the same type of vertebrate animal that needs to increase bone mass.

Техническим результатом, достигаемым при реализации заявленных изобретений, помимо расширения арсенала средств, применяемых для изучения и лечения остеопороза, является снижение побочных эффектов сопутствующих применению препаратов экзогенных антител при сохранении уровня лечебных свойств.The technical result achieved by the implementation of the claimed invention, in addition to expanding the arsenal of tools used to study and treat osteoporosis, is to reduce the side effects associated with the use of exogenous antibody preparations while maintaining the level of therapeutic properties.

ПримерыExamples

Пример 1. Получение рекомбинантного склеростина мышиExample 1. Obtaining recombinant mouse sclerosis

Аминокислотная последовательность белка склеростина видоспецифична, поэтому для каждого вида должен быть синтезирован и модифицирован соответствующий ген с уникальной последовательностью.The amino acid sequence of the sclerostin protein is species-specific, therefore, for each species, the corresponding gene with a unique sequence must be synthesized and modified.

Вначале осуществляют получение гена склеростина мыши с последующим его клонированием. Ген склеростина мыши получали химико-ферментативным методом. Был спланирован олигонуклеотидный дуплекс, кодирующий соответствующий ген, фланкированный сайтами BamHI и Kpn2I, оптимизированный для экспрессии в E. coli. Затем осуществляли получение плазмиды рССТ - в вектор pQE13 (QIAGEN, США) по сайтам BamHI и Kpn2I был вставлен спланированный олигонуклеотидный дуплекс, в результате чего была получена конструкция, содержащая последовательности, кодирующие ген склеростина мыши и последовательность из шести гистидинов для аффинной очистки целевого белка SEQ ID NO 1 в виде слитного белка.First, the mouse sclerostin gene is obtained, followed by its cloning. The mouse sclerostin gene was obtained by the chemical-enzymatic method. An oligonucleotide duplex was designed that encodes the corresponding gene flanked by the BamHI and Kpn2I sites, optimized for expression in E. coli. Then, plasmid pCST was obtained — a planned oligonucleotide duplex was inserted into the pQE13 vector (QIAGEN, USA) at the BamHI and Kpn2I sites; as a result, a construct containing sequences encoding the mouse sclerostin gene and a sequence of six histidines for affinity purification of the target SEQ protein was obtained ID NO 1 as a fusion protein.

Пример 2. Получение штамма E. Coli - продуцента рекомбинантного антигена склеростина мышиExample 2. Obtaining a strain of E. Coli - producer of recombinant mouse sclerostin antigen

Для получения штамма E. coli - продуцента рекомбинантного белка склеростина мыши клетки E. coli M15 трансформировали плазмидой рССТ. Для наработки целевого белка клетках E. coli M15 в культуру добавляли 3 мкл 0,1 М раствора изопропил-бета-D-тиогалактопиранозида (ИПТГ) и выращивали в течение 3 часов. При сравнении спектра белков, синтезированных клетками штамма E. coli M15 [рССТ], обнаруживали появление дополнительной белковой полосы. Молекулярная масса дополнительной полосы соответствовала ожидаемой массе для рекомбинантного белка склеростина мыши 13,9 кДа. Уровень синтеза белков в E. coli определяли, сравнивая интенсивность окрашивания полосы рекомбинантного белка с полосой соответствующего белка - стандарта молекулярной массы. Было показано, что рекомбинантный белок склеростина мыши синтезируется в клетках E.coli в нерастворимой форме в виде телец включения.To obtain a strain of E. coli, a producer of the recombinant mouse sclerostin protein, E. coli M15 cells were transformed with the plasmid pCST. To produce the target protein, E. coli M15 cells added 3 μl of a 0.1 M solution of isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside (IPTG) to the culture and grown for 3 hours. When comparing the spectrum of proteins synthesized by cells of the E. coli M15 strain [pCST], the appearance of an additional protein band was detected. The molecular weight of the additional band corresponded to the expected mass for the recombinant mouse sclerostin protein of 13.9 kDa. The level of protein synthesis in E. coli was determined by comparing the staining intensity of the band of the recombinant protein with the band of the corresponding protein, the molecular weight standard. It was shown that the recombinant mouse sclerostin protein is synthesized in E. coli cells in an insoluble form in the form of inclusion bodies.

Пример 3. Очистка рекомбинантного белка склеростина мышиExample 3. Purification of Recombinant Mouse Sclerostin Protein

Для получения рекомбинантного белка склеростина клеточную культуру штамма E. coli М15 [рССТ] выращивали в 1000 мл среды LB с ампициллином (100 мкг/мл) при 37°С до оптической плотности, соответствующей 1 ед. поглощения при длине волны 550 нм. В среду добавляли 15 мкл 0,1 М раствора ИПТГ и выращивали в течение 3 часов. Клетки осаждали центрифугированием при 5500g в течение 15 минут.To obtain a recombinant sclerostin protein, the cell culture of E. coli strain M15 [pCST] was grown in 1000 ml of LB medium with ampicillin (100 μg / ml) at 37 ° C to an optical density corresponding to 1 unit. absorption at a wavelength of 550 nm. 15 μl of a 0.1 M IPTG solution was added to the medium and grown for 3 hours. Cells were besieged by centrifugation at 5500g for 15 minutes.

Биомассу с рекомбинантным склеростином ресуспендировали в буфере 20 м MTris-HCl рН 8.0+50 мМ NaCl в соотношении 1:10. Добавляли к суспензии клеток лизоцим до концентрации 25 мкг/мл, инкубировали 30 мин при комнатной температуре и разрушали с помощью ультразвукового дезинтегратора во льду в течение 2 мин. Осаждали нерастворимую фракцию телец включения центрифугированием 15000g 15 мин 4°С. Осадок ресуспендировали в буфере 20 мM Tris 8.0+50 мМ NaCl+0.1% Тритон Х-100 в соотношении 1:10 для отмывки мембранных белков и липидных компонентов клетки от тел включения (ТВ). Осаждали нерастворимую фракцию 15000g 15 мин 4°С. Повторяли отмывку ТВ дважды. Затем таким же образом дважды отмывали осадок в буфере 20 мM Tris-HCl pH 8.0+50 мМ NaCl либо в воде, чтобы отмыть Тритон Х-100. Отмытые ТВ ресуспендировали 1:4 в буфере 20 мM Tris-HCl pH 8.0+50 мМ NaCl. Солюбилизировали в буфере 20 мM Tris-HCl pH 8.0+8М мочевины + 250 мМ NaCl+5 мМ Iz в соотношении 1:10. Нерастворившиеся компоненты отделяли ЦФ 15000g 15 мин 4°С. Далее проводили хроматографическую очистку на сорбенте WB40Ni (Bio Works, Sweden). Колонку с сорбентом WB40Ni (BioWorks, Sweden) объемом 7 мл уравновешивали буфером 20 мМ Tris8.0+8М мочевины + 250 мМ NaCl+5 мМ Iz. Лизат ТВ наносили на скорости потока 1 мл/мин. После нанесения проводили отмывку сорбента от неспецифики буфером 20 мМ Tris8.0+8М мочевины + 250 мМ NaCl+5 мМ Iz, затем буфером 20 мМ Tris8.0+8М мочевины + 250 мМ NaCl+25 мМ Iz. Элюцию целевого белка проводили буфером 20 мМ Tris8.0+8М мочевины +250 мМ NaCl+400 мМ Iz. Пик, соответствующий целевому белку, собирали и анализировали с помощью ПААГ электрофореза в денатурирующих условиях. Степень чистоты препарата составляла не менее 95%. Полученные фракции белка диализовали против физраствора.Recombinant sclerostin biomass was resuspended in 20 m MTris-HCl buffer pH 8.0 + 50 mM NaCl in a ratio of 1:10. Lysozyme was added to the cell suspension to a concentration of 25 μg / ml, incubated for 30 min at room temperature and destroyed using an ultrasonic disintegrator in ice for 2 min. An insoluble fraction of inclusion bodies was precipitated by centrifugation at 15,000 g for 15 min 4 ° C. The pellet was resuspended in 20 mM Tris 8.0 + 50 mM NaCl + 0.1% Triton X-100 buffer at a ratio of 1:10 to wash membrane proteins and lipid components of the cell from inclusion bodies (TB). Precipitated insoluble fraction 15000g 15 min 4 ° C. Repeated washing the TV twice. Then, in the same way, the precipitate was washed twice in a buffer of 20 mM Tris-HCl pH 8.0 + 50 mM NaCl or in water to wash Triton X-100. The washed TBs were resuspended 1: 4 in 20 mM Tris-HCl buffer pH 8.0 + 50 mM NaCl. Solubilized in a buffer of 20 mm Tris-HCl pH 8.0 + 8M urea + 250 mm NaCl + 5 mm Iz in a ratio of 1:10. Insoluble components separated CF 15000g 15 min 4 ° С. Next, chromatographic purification was performed on a WB40Ni sorbent (Bio Works, Sweden). A 7 ml WB40Ni sorbent column (BioWorks, Sweden) was equilibrated with 20 mM Tris8.0 + 8 M urea buffer + 250 mM NaCl + 5 mM Iz. Lysate TB was applied at a flow rate of 1 ml / min. After application, the sorbent was washed from nonspecific with 20 mM Tris8.0 + 8M urea buffer + 250 mM NaCl + 5 mM Iz, then 20 mM Tris8.0 + 8M urea buffer + 250 mM NaCl + 25 mM Iz. The target protein was eluted with 20 mM Tris8.0 + 8 M urea buffer + 250 mM NaCl + 400 mM Iz. The peak corresponding to the target protein was collected and analyzed by PAGE electrophoresis under denaturing conditions. The purity of the drug was at least 95%. The resulting protein fractions were dialyzed against saline.

Пример 4. Приготовление иммуногенной композиции белка склеростина мыши и гидроокиси алюминияExample 4. Preparation of an immunogenic composition of mouse sclerostin protein and aluminum hydroxide

В предпочтительном варианте осуществления изобретения препарат, содержащий рекомбинантный белок склеростина мыши, суспендировали в растворе гидроокиси алюминия в равном объеме.In a preferred embodiment of the invention, the preparation containing the recombinant mouse sclerostin protein is suspended in an equal volume of aluminum hydroxide solution.

Пример 5. Влияние иммунизации склеростином на увеличение плотности костной ткани мышей.Example 5. The effect of immunization with sclerostin on an increase in bone density of mice.

Биологическая активность полученной иммуногенной композиции была исследована путем подкожных инъекций дважды с интервалом 20 суток в дозе 0,1-100 мкг рекомбинантного белка на один килограмм массы тела мыши.The biological activity of the obtained immunogenic composition was studied by subcutaneous injection twice with an interval of 20 days at a dose of 0.1-100 μg of recombinant protein per kilogram of mouse body weight.

Механизм действия препарата основан на временном блокировании активности эндогенного склеростина мыши с помощью нарабатываемых аутоантител.The mechanism of action of the drug is based on the temporary blocking of the activity of endogenous sclerosis of the mouse using the generated autoantibodies.

Исследование влияния иммунизации склеростином на увеличение плотности костной ткани самок мышей проводили на модели ОП, вызванного овариоэктомией. В эксперименте 8-месячные самки мышей линии Balb/c(21 голова) были случайным образом распределены на 3 группы (по 7 голов): ложнооперированные (группа №1), овариоэктомированные мыши с инъекциями физ.раствора (группа №2), овариоэктомированные мыши с инъекциями склеростином (дважды по 5 мкг подкожно с интервалом 14 суток) (группа №3).A study of the effect of immunization with sclerostin on an increase in bone density of female mice was performed on a model of OP caused by ovariectomy. In the experiment, 8-month-old female Balb / c mice (21 heads) were randomly divided into 3 groups (7 goals each): mock operated (group No. 1), ovariectomized mice with injections of saline solution (group No. 2), ovariectomized mice with sclerostin injections (twice 5 μg subcutaneously with an interval of 14 days) (group No. 3).

Перед проведением хирургических процедур животных выдерживали на голодной диете для облегчения перенесения наркоза. Для введения животных в общий наркоз проводили интраперитониальную инъекцию смеси анестетиков «Золетил 100» (Virbac С.А., Франция) в дозировке 30 мг/кг веса и «Рометар» (Bioveta, Чехия) в дозировке 10 мг/кг веса. Для предотвращения иссушения роговицы глаз на них наносили «Normlgel» (

Figure 00000003
Health Care AB, Швеция). Все хирургические процедуры проводили в ламинарном боксе с соблюдением правил асептики и антисептики. Животных фиксировали в лежачем положении на спине на хирургическом столике для грызунов, оборудованном нагревательным элементом для обеспечения поддержания во время операции постоянной температуры тела на уровне 36°С (Rigalli et al., 2009). Хирургическое поле освобождали от шерсти, обрабатывали кожным антисептиком, после чего в нижней части живота проводили лапаротомию длиной 2-3 см, открывая доступ к матке. Далее матку сдвигали в сторону и накладывали 2 лигатуры - между яичниками и маткой и на артерии яичника. Затем яичники удаляли, ткани послойно ушивали атравматическим шовным материалом. Опыты по иммунизации животных проводили через месяц после операции. В группе №1 (ложнооперированные животные) осуществляли только хирургический доступ к яичникам без их последующего удаления и иммунизации препаратом. Инъекции физ.раствора либо иммуногенной композицией склеростина (группы №2 и 3) проводили дважды: через 30 и 45 суток после овариоэктомии. Компьютерную томографию осуществляли in vivo на томографе SkyScan 1176 (Bruker, США) сразу после проведения операции, через 60 суток после операции и перед эвтаназией (120 дней после операции).Before surgical procedures, the animals were kept on a starvation diet to facilitate the transfer of anesthesia. For the introduction of animals into general anesthesia, an intraperitoneal injection of a mixture of anesthetics “Zoetil 100” (Virbac S. A., France) at a dose of 30 mg / kg body weight and “Rometar” (Bioveta, Czech Republic) at a dose of 10 mg / kg body weight was performed. In order to prevent the cornea from drying out, Normlgel (
Figure 00000003
Health Care AB, Sweden). All surgical procedures were carried out in a laminar box in compliance with the rules of asepsis and antiseptics. The animals were fixed in a supine position on a rodent surgical table equipped with a heating element to ensure a constant body temperature during surgery at 36 ° C (Rigalli et al., 2009). The surgical field was freed from hair, treated with a skin antiseptic, after which a 2-3 cm length laparotomy was performed in the lower abdomen, allowing access to the uterus. Then the uterus was shifted to the side and 2 ligatures were applied - between the ovaries and the uterus and on the arteries of the ovary. Then the ovaries were removed, the tissues were sutured in layers with atraumatic suture material. Experiments on the immunization of animals was carried out one month after the operation. In group No. 1 (false-operated animals), only surgical access to the ovaries was performed without their subsequent removal and immunization with the drug. Injections of saline or with an immunogenic composition of sclerostin (groups 2 and 3) were performed twice: 30 and 45 days after ovariectomy. Computed tomography was performed in vivo on a SkyScan 1176 tomograph (Bruker, USA) immediately after the operation, 60 days after the operation and before euthanasia (120 days after the operation).

Исследование плотности костной ткани диафизарной части бедренных костей обеих задних лап животных проводили с помощью микрокомпьютерной томографии. Сканирование осуществляли с алюминиевым фильтром 0,5 мм, напряжением 60 кВ, силой тока 575 мА и разрешением 35 мкм с последующим анализом плотности костной ткани (BMD, bonemineraldensity). Реконструкция полученных изображений проводилась в программе NRecon (v.1.6.9.8). В качестве настроек реконструкции были выбраны: Postalignment - «300», Smoothing - «3», Ringartefactcorrection - «14», Beam-hardening - «18%». После проведения реконструкции полученные 3D-модели бедренных костей были исследованы с помощью программного обеспечения CTAn (v.1.16) (Bruker, США). Анализу подвергался губчатый матрикс диафизарной части бедренной кости, при этом кортикальный матрикс был удален программно. Плотность костной ткани определялась с помощью калибровочных фантомов с плотностью 0,25 и 0,75 г/мм2.The study of bone density of the diaphyseal part of the femurs of both hind legs of animals was performed using microcomputer tomography. Scanning was carried out with a 0.5 mm aluminum filter, a voltage of 60 kV, a current of 575 mA and a resolution of 35 μm, followed by analysis of bone density (BMD, bonemineraldensity). Reconstruction of the obtained images was carried out in the NRecon program (v.1.6.9.8). The reconstruction settings were: Postalignment - “300”, Smoothing - “3”, Ringartefactcorrection - “14”, Beam-hardening - “18%”. After the reconstruction, the obtained 3D models of the femur were examined using CTAn software (v.1.16) (Bruker, USA). The spongy matrix of the diaphyseal part of the femur was analyzed, while the cortical matrix was removed programmatically. The bone density was determined using calibration phantoms with a density of 0.25 and 0.75 g / mm 2 .

Статистический анализ результатов исследования проводился на программе Statistica 12.0 (Statsoft, США) с помощью непараметрических критериев Краскела-Уоллиса и Фридмана (р<0,01).Statistical analysis of the results of the study was carried out using the Statistica 12.0 program (Statsoft, USA) using the nonparametric Kruskal-Wallis and Friedman criteria (p <0.01).

Результаты исследования влияния инъекций склеростина на плотность костной ткани мышей приведены на фиг. 1. При исследовании динамики изменений плотности костной ткани бедренных костей ложнооперированных животных (группа №1) не наблюдалось достоверных изменений плотности костной ткани на протяжении всего периода наблюдения. В группе №2 на сроке 2 и 3 (60 и 120 дней после операции) наблюдалась отрицательная динамика изменения плотности костной ткани (р<0,01). В группе №3 на сроке 2 было установлено снижение плотности костной ткани, при этом к 60 суткам после операции (срок 3) проходило возращение значений плотности костной ткани к первоначальному уровню. При сравнении групп между собой наблюдалось достоверное отличие между группами №2 и 3 по сравнению с группой №1 на сроке 2, а также отличие у групп №1 и 2 между собой на сроке 3. Достоверных отличий на сроке 3 между группой №1 ложнооперированных мышей и опытной группой №3 с овариоэктимированными мышами, которым проводили инъекции склеростина, не было выявлено, что свидетельствует о положительном влиянии инъекций склеростина на восстановление плотности костной ткани при остеопорозе.The results of a study of the effect of sclerostin injections on the bone density of mice are shown in FIG. 1. In the study of the dynamics of changes in bone density of the femurs of false-operated animals (group No. 1), no significant changes in bone density were observed throughout the entire observation period. In group No. 2, at a period of 2 and 3 (60 and 120 days after surgery), a negative dynamics in changes in bone density was observed (p <0.01). In group No. 3 at the age of 2, a decrease in bone density was found, and by 60 days after the operation (term 3), the values of bone density returned to the initial level. When comparing the groups among themselves, there was a significant difference between groups No. 2 and 3 compared with group No. 1 at term 2, as well as a difference between groups No. 1 and 2 among themselves at term 3. Significant differences at term 3 between group No. 1 of mock operated mice and experimental group No. 3 with ovariectimized mice that received sclerostin injections were not detected, which indicates a positive effect of sclerostin injections on the restoration of bone density in osteoporosis.

Другим важным количественным параметром, характеризующим степень развития остеопороза, является толщина трабекул губчатой кости. Определение этого параметра проводится также на участке кости, лишенном кортикальной части, с помощью 3D-анализа бинаризованных изображений. При этом бинаризация проводится таким образом, чтобы получаемые 3D-изображения, соответствующие микроархитектуре исследуемого участка, были лишены нежелательных программных шумов и артефактов. Результатом анализа является усредненное значение толщины трабекул исследуемого участка, которое может быть использовано при количественном сравнении степени развития остеопороза в разных экспериментальных группах.Another important quantitative parameter characterizing the degree of development of osteoporosis is the thickness of the trabeculae of the trabecular bone. The determination of this parameter is also carried out on the bone site, deprived of the cortical part, using 3D analysis of binarized images. In this case, binarization is carried out in such a way that the resulting 3D images corresponding to the microarchitecture of the studied area are free from unwanted software noise and artifacts. The result of the analysis is the average value of the thickness of the trabeculae of the studied area, which can be used in a quantitative comparison of the degree of development of osteoporosis in different experimental groups.

При исследовании динамики изменений структуры губчатой части бедренных костей ложнооперированных животных (группа №1) не наблюдалось достоверных изменений толщины трабекул губчатой кости (фиг. 2) и плотности костной ткани на протяжении всего периода наблюдения (фиг. 1).In the study of the dynamics of changes in the structure of the cancellous bones of the femoral false-operated animals (group No. 1), there were no significant changes in the thickness of the trabeculae of the cancellous bone (Fig. 2) and bone density throughout the observation period (Fig. 1).

В группе №2 на сроке 2 и 3 (30 и 60 недель после операции) наблюдалось уменьшение толщины трабекул губчатой кости и плотности костной ткани (р<0,01). При этом в группе №3 значения показателей толщины трабекул губчатой кости и плотности костной ткани, сниженные на сроке 2, возвращались к первоначальному уровню к 60 суткам после операции (срок 3).In group No. 2, at a period of 2 and 3 (30 and 60 weeks after surgery), a decrease in the thickness of the trabeculae of the trabecular bone and bone density was observed (p <0.01). At the same time, in group No. 3, the values of the trabeculae of the trabecular bone thickness and bone density, reduced at 2, returned to their original level by 60 days after the operation (term 3).

Для увеличения плотности костной ткани возможно проведение третьей и последующих иммунизаций через каждые 3 месяца после повторной инъекции.To increase bone density, a third and subsequent immunizations are possible every 3 months after re-injection.

Краткое описание чертежей.A brief description of the drawings.

Фиг. 1. Результаты исследования влияния инъекций склеростина на плотность костной ткани мышей.FIG. 1. Results of a study on the effect of sclerostin injections on the bone density of mice.

Фиг. 2. Результаты исследования влияния инъекций иммуногенной композиции на основе склеростина на толщину трабекул губчатой костной ткани.FIG. 2. Results of a study of the effect of injections of an immunogenic composition based on sclerostin on the thickness of trabeculae of cancellous bone tissue.

* - достоверные отличия по сравнению с контрольной группой №1 (р<0,01)* - significant differences compared with control group No. 1 (p <0.01)

Claims (3)

1. Способ получения целевого рекомбинантного белка склеростина позвоночного животного, в том числе млекопитающего, включающий конструирование векторной конструкции, обеспечивающей стабильную репликацию и экспрессию целевого гена в клетках Е. coli, выращивание клеток штамма Е. coli, экспрессирующих ген склеростина, очистку белка склеростина из клеточных экстрактов штамма Е. coli с помощью металл-хелатной аффинной хроматографии при использовании никельсодержащего сорбента, последующую отмывку и выделение целевого продукта, при этом для конструирования векторной конструкции вначале получают целевой ген склеростина и осуществляют его клонирование, в целевой ген по сайтам BamHI и Kpn2I вставляют спланированный олигонуклеотидный дуплекс с получением конструкции, содержащей последовательность, кодирующую слитый белок целевоого склеростина и шести гистидинов.1. A method of obtaining the target recombinant sclerostin protein of a vertebrate animal, including a mammal, comprising constructing a vector construct that provides stable replication and expression of the target gene in E. coli cells, growing E. coli strain cells expressing the sclerostin gene, purification of sclerostin protein from cellular extracts of E. coli strain using metal-chelate affinity chromatography using a nickel-containing sorbent, subsequent washing and isolation of the target product, while for ruirovaniya vector construct is first prepared sklerostina target gene and carry its cloning into the target gene by site BamHI and inserted Kpn2I planned oligonucleotide duplex to obtain a construct comprising a sequence encoding a fusion protein tselevoogo sklerostina and six histidines. 2. Способ повышения костной массы позвоночного животного, в том числе млекопитающего, включающий двукратное, с интервалом в 20 суток, проведение иммунизации целевым рекомбинантным белком склеростином, полученным способом по п. 1, в дозе 0,1-100 мкг склеростина на один килограмм массы тела позвоночного животного, при этом используют целевой белок склеростина того же вида позвоночного животного, которому необходимо повысить плотность костной ткани.2. A method of increasing the bone mass of a vertebrate animal, including a mammal, including double, with an interval of 20 days, conducting immunization with the target recombinant sclerostin protein, obtained by the method according to claim 1, at a dose of 0.1-100 μg sclerostin per kilogram of weight the body of a vertebrate, using the target sclerosin protein of the same type of vertebrate that needs to increase bone density. 3. Способ по п. 2, включающий проведение третьей и последующих иммунизаций через каждые 3 месяца после повторной инъекции.3. The method according to p. 2, including the third and subsequent immunizations every 3 months after re-injection.
RU2017130132A 2017-08-25 2017-08-25 Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal RU2647571C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017130132A RU2647571C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2017130132A RU2647571C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2647571C1 true RU2647571C1 (en) 2018-03-16

Family

ID=61629354

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2017130132A RU2647571C1 (en) 2017-08-25 2017-08-25 Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2647571C1 (en)

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA200600038A1 (en) * 2003-06-16 2006-06-30 Селлтек Ар Энд Ди, Инк. ANTIBODIES SPECIFIC FOR SKLEROSTIN, AND METHODS OF INCREASING BONE MINERALIZATION

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EA200600038A1 (en) * 2003-06-16 2006-06-30 Селлтек Ар Энд Ди, Инк. ANTIBODIES SPECIFIC FOR SKLEROSTIN, AND METHODS OF INCREASING BONE MINERALIZATION

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
UZ 4548 C (ЮСБ ФАРМА С.А. (BE) ЭМДЖЕН ИНК. (US)), 31.08.2012. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Hu et al. The roles of vascular endothelial growth factor in bone repair and regeneration
US20230322878A1 (en) Compounds for inducing tissue formation and uses thereof
Feng et al. Systemic administration of sclerostin monoclonal antibody accelerates fracture healing in the femoral osteotomy model of young rats
JPH09509825A (en) Methods and compositions for stimulating bone cells
JP2022031954A (en) Compounds for inducing tissue formation and uses thereof
JP2022046727A (en) Compounds for inducing histogenesis and their use
JP2018531281A6 (en) Tissue formation inducing compound and use thereof
US20220267394A1 (en) Compounds for inducing tissue formation and uses thereof
Nozaki et al. Timing of the administration of suramin treatment after muscle injury
Schumacher et al. Periosteal insulin-like growth factor I and bone formation Changes during tibial lengthening in rabbits
JP7145503B2 (en) Pharmaceutical conjugation and use thereof for converting tumor cells to non-tumor cells
JP2021138720A (en) Pharmaceutical associations and their use for converting tumor cells to non-tumor cells
JP2018536623A (en) Pharmaceutical association and use thereof for converting tumor cells to non-tumor cells
RU2647571C1 (en) Recombinant white scelestine, method for producing recombinant protein of screrostin, method of increasing bone mass of vertebrate animal
Ren et al. Effects of rhBMP-2/7 heterodimer and RADA16 hydrogel scaffold on bone formation during rabbit mandibular distraction
US20250388633A1 (en) Pharmaceutical association of growth factor receptor agonist and adhesion protein inhibitor for converting a neoplastic cell into a non-neoplastic cell and uses thereof
Uslu et al. The effect of femoral nerve block on fracture healing via expressions of growth factors and β-catenin
IL286670B2 (en) Compounds for inducing tissue formation and uses thereof
Reid Plenary Talk Abstracts
Hamade Enhanced bone formation during distraction osteogenesis in FGFR3 deficient mice
Muratli et al. Bosentan, a non-specific endothelin antagonist, stimulates fracture healing
Albishi Inhibition of Fibroblast Growth Factor Receptor 3 (FGFR3) signalling to accelerate bone formation during distraction osteogenesis of mice tibiae