RU2432575C2 - Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue - Google Patents
Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue Download PDFInfo
- Publication number
- RU2432575C2 RU2432575C2 RU2009132234/15A RU2009132234A RU2432575C2 RU 2432575 C2 RU2432575 C2 RU 2432575C2 RU 2009132234/15 A RU2009132234/15 A RU 2009132234/15A RU 2009132234 A RU2009132234 A RU 2009132234A RU 2432575 C2 RU2432575 C2 RU 2432575C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sections
- tissue
- frozen
- diagnosis
- cells
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Sampling And Sample Adjustment (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицинской диагностики и может использоваться в диагностике опухолевых заболеваний.The invention relates to the field of medical diagnosis and can be used in the diagnosis of tumor diseases.
Стандартное исследование строения опухолевой ткани в диагностических целях проводится на срезах, полученных из биопсированного материала, зафиксированного раствором формалина, обезвоженного и залитого в парафин или другие синтетические среды (например, парапласт, гистопласт и др.). Процесс обработки ткани, завершающийся изготовлением срезов из парафиновых блоков, длительный и занимает более 42 часов [1].A standard study of the structure of tumor tissue for diagnostic purposes is carried out on sections obtained from biopsy material fixed with a formalin solution, dehydrated and embedded in paraffin or other synthetic media (for example, paraplast, histoplast, etc.). The process of tissue processing, ending with the manufacture of slices from paraffin blocks, is long and takes more than 42 hours [1].
Для ускорения получения срезов используются разные подходы. Один из таких подходов - это обработка ткани в условиях вакуума, позволяющая сократить время обезвоживания и пропитывания материала [2]. Другой подход - микроволновое воздействие на ткань. Оно способно значительно сократить время на этапе фиксации и обезвоживания ткани [3]. Применяется также сочетание двух этих способов [4].Different approaches are used to speed up slicing. One of these approaches is the processing of tissue in a vacuum, which reduces the time of dehydration and impregnation of the material [2]. Another approach is microwave exposure to tissue. It can significantly reduce the time at the stage of tissue fixation and dehydration [3]. A combination of these two methods is also used [4].
На базе описанных способов разработаны установки, позволяющие изготавливать парафиновые блоки и получать из них срезы за 4-5 часов, однако в широкой практике данные методы распространения не получили.On the basis of the described methods, devices have been developed that make it possible to produce paraffin blocks and obtain slices from them in 4-5 hours, but in general practice these methods of distribution have not been obtained.
В патологоанатомической практике наряду с плановыми проводятся срочные гистологические исследования. Это, прежде всего, интраоперационные биопсии, позволяющие в затруднительных случаях решать вопрос об объеме хирургического вмешательства. Время, затрачиваемое на получение заключения в этих случаях, должно составлять не более 20 мин. Парафиновые срезы не удовлетворяют данному требованию. Для быстрого получения гистологического препарата в биопсийной диагностике применяют быстрое замораживание ткани с последующим изготовлением срезов с помощью криостата или замораживающей приставки к микротому. Такие срезы полезны для решения вопроса о наличии или отсутствии опухолевого роста для солидных опухолей (рак), а также позволяют определить природу удаленного хирургом образования (паращитовидная железа, лимфатический узел, жировая клетчатка, метастаз и т.д.) [5]. Эти срезы не применяются для верификации окончательного диагноза по причине большой (>10 мкм) толщины срезов и искаженности тонкой структуры тканей и клеток в результате образования относительно больших кристаллов льда [6, 7].In pathoanatomical practice, urgent histological studies are carried out along with planned ones. This is, first of all, intraoperative biopsies, allowing in difficult cases to decide on the volume of surgical intervention. The time taken to obtain an opinion in these cases should be no more than 20 minutes. Paraffin sections do not meet this requirement. To quickly obtain a histological preparation in biopsy diagnostics, rapid tissue freezing is used, followed by the manufacture of sections using a cryostat or a freezing attachment to the microtome. Such sections are useful for solving the problem of the presence or absence of tumor growth for solid tumors (cancer), and also allow determining the nature of the formation removed by the surgeon (parathyroid gland, lymph node, fatty tissue, metastasis, etc.) [5]. These sections are not used to verify the final diagnosis due to the large (> 10 μm) thickness of the sections and the distortion of the fine structure of tissues and cells as a result of the formation of relatively large ice crystals [6, 7].
О способе.About the way.
Для исследования строения лимфатических узлов пригодны только срезы толщиной менее 7 мкм с максимальной степенью сохранности ткани и структуры отдельных клеток, так как анализ патологического состояния лимфоузла (реактивные изменения, лимфома, метастаз) проводится на уровне деталей клеточного строения.Only sections with a thickness of less than 7 μm with a maximum degree of preservation of the tissue and structure of individual cells are suitable for studying the structure of the lymph nodes, since the analysis of the pathological state of the lymph node (reactive changes, lymphoma, metastasis) is carried out at the level of details of the cellular structure.
Для получения качественного замороженного среза необходимым условием является быстрое замораживание ткани, при котором вода не кристаллизуется, а переходит в состояние аморфного льда [8].To obtain a high-quality frozen slice, a necessary condition is rapid tissue freezing, in which water does not crystallize, but passes into a state of amorphous ice [8].
Скорость замораживания, в первую очередь, ограничивается скоростью теплопереноса. Ткань биопсийного материала сама по себе обладает низкой теплопроводностью. Поэтому быстро и равномерно охладить образец большого объема без повреждений невозможно. Для обеспечения максимальной скорости охлаждения биоптат следует замораживать в жидкой среде. Эта жидкость (хладагент) должна иметь точку плавления ниже температуры инициации кристаллизации воды - 70°С [9]. Этому требованию удовлетворяет ряд алканов - это пентан, 2-метилбутан (изопентан), n-гексан, гептан.The speed of freezing is primarily limited by the rate of heat transfer. The tissue biopsy material itself has low thermal conductivity. Therefore, it is impossible to quickly and uniformly cool a large sample without damage. To ensure maximum cooling rate, the biopsy specimen should be frozen in a liquid medium. This liquid (refrigerant) should have a melting point below the temperature of initiation of crystallization of water - 70 ° C [9]. A number of alkanes satisfies this requirement: pentane, 2-methylbutane (isopentane), n-hexane, heptane.
Как было отмечено выше, наиболее близким техническим решением вопроса о значительном ускорении получения среза является способ замораживания ткани в изопентане [8]. Однако в изопентане замораживают сравнительно небольшие кусочки ткани (менее 1 см3), объем которых может быть недостаточен для диагностических исследований. Использование же замороженного биоптата в форме пластинки, обеспечивающей большую площадь поверхности ткани при минимальном объеме, оказывается недопустимым из-за растрескивания ее в изопентане.As noted above, the closest technical solution to the issue of significant acceleration of the slice is a method of freezing tissue in isopentane [8]. However, relatively small pieces of tissue (less than 1 cm 3 ) are frozen in isopentane, the volume of which may be insufficient for diagnostic studies. The use of a frozen biopsy specimen in the form of a plate, which provides a large surface area of the tissue with a minimum volume, is unacceptable due to cracking in isopentane.
Решение проблемы найдено в замораживании образца биоптата в форме пластинки не более 3 мм и использовании в качестве замораживающей среды n-гексана. В этом случае пластинка не растрескивается. Поэтому при разработке авторами способа была избрана форма биоптата в виде пластинки. В результате были получены срезы тощиной менее 7 мкм высокого качества из быстрозамороженного материала, позволяющие проводить микроскопические исследования биопсийного материала в рамках и плановой, и цитобиопсий. Кроме того, применение описанного способа при плановых биопсиях заметно уменьшает трудозатраты и сокращает время на изготовление гистологических срезов.The solution to the problem was found in freezing a biopsy sample in the form of a plate of not more than 3 mm and using n-hexane as the freezing medium. In this case, the plate does not crack. Therefore, when developing the method, the authors chose the form of a biopsy sample in the form of a plate. As a result, slices with a thickness of less than 7 μm of high quality were obtained from quick-frozen material, which made it possible to carry out microscopic studies of biopsy material in the framework of both planned and cytobiopsies. In addition, the application of the described method with planned biopsies significantly reduces labor costs and reduces the time for the manufacture of histological sections.
Поставленная в работе цель, таким образом, достигается путем замораживания ткани в n-гексане, охлажденном до температуры плавления (-95°С), в форме пластинки толщиной не более 3 мм и изготовлением из нее в криостате срезов толщиной менее 7 мкм по стандартной методике, с последующей быстрой фиксацией и окраской.The goal set in this work is thus achieved by freezing tissue in n-hexane, cooled to a melting point (-95 ° C), in the form of a plate with a thickness of not more than 3 mm and making sections of it with a thickness of less than 7 μm from it in a cryostat according to the standard method , followed by quick fixation and coloring.
Техническое описание способа.Technical description of the method.
Изготовление срезов из свежезамороженной ткани лимфатического узла включает в себя 3 шага:Making slices from freshly frozen lymph node tissue involves 3 steps:
- получение блока замороженной ткани в форме пластинки толщиной не более 3 мм с минимумом кристалликов льда;- obtaining a block of frozen tissue in the form of a plate with a thickness of not more than 3 mm with a minimum of ice crystals;
- получение среза толщиной менее 7 мкм из блока и быструю фиксацию среза на предметном стекле, окрашивание стандартным красителем (гематоксилин-эозин, азур-эозин и т.п.);- obtaining a slice with a thickness of less than 7 μm from the block and quick fixation of the slice on a glass slide, staining with a standard dye (hematoxylin-eosin, azure-eosin, etc.);
- заключение под покровное стекло. В результате получается препарат длительного хранения (постоянный препарат).- conclusion under a coverslip. The result is a long-term storage drug (permanent drug).
Замораживание биоптата. Пластиковый стакан, объемом не менее 50 мл, заполняется n-гексаном, не менее 30 мл, и затем для увеличения теплоизоляции помещается в подставку из пенопласта с толщиной стенки не менее 4 см. В стакан добавляется жидкий азот для доведения n-гексана до кашеобразного состояния (смесь жидкого и твердого вещества). Из биоптата, доставленного из операционной, вырезается пластинка ткани толщиной 2-3 мм, которая быстро погружается в стакан с охлажденным n-гексаном. Далее стакан с материалом переносится в рабочую камеру криостата (температура камеры - 20°С) и через 30 с. замороженный кусочек вынимается из стакана и перемещается на фильтровальную бумагу в рабочей зоне камеры криостата, для удаления излишков n-гексана.Freezing the biopsy sample. A plastic cup, with a volume of at least 50 ml, is filled with n-hexane, at least 30 ml, and then placed in a foam base with a wall thickness of at least 4 cm to increase thermal insulation. Liquid nitrogen is added to the glass to bring n-hexane to a mushy state (mixture of liquid and solid). From a biopsy sample delivered from the operating room, a tissue plate 2-3 mm thick is cut, which is quickly immersed in a glass with chilled n-hexane. Next, the glass with the material is transferred to the working chamber of the cryostat (chamber temperature - 20 ° C) and after 30 s. the frozen piece is removed from the glass and transferred to filter paper in the working area of the cryostat chamber to remove excess n-hexane.
Изготовление среза толщиной менее 7 мкм из замороженной пластинки производится стандартным методом. Срез переносится на предметное стекло и немедленно помещается в спиртоальдегидный раствор при комнатной температуре (20-25°С) на 3 мин, затем отмывается проточной водой от фиксатора в течение 30 с и окрашивается гистологическими красителями обычным образом. Окрашенные срезы заключаются под покровное стекло в водорастворимую среду, либо обезвоживаются в органической среде, и заключаются в синтетическую органическую среду. Готовые срезы просматриваются в световой микроскоп.The production of a slice with a thickness of less than 7 μm from a frozen plate is carried out by the standard method. The slice is transferred onto a glass slide and immediately placed in an alcohol-aldehyde solution at room temperature (20-25 ° C) for 3 minutes, then washed with running water from the fixative for 30 s and stained with histological stains in the usual way. The stained sections are enclosed under a coverslip in a water-soluble medium, or dehydrated in an organic medium, and enclosed in a synthetic organic medium. Finished sections are viewed under a light microscope.
Полученные таким способом срезы позволяют изучать общий рисунок тканей биоптата, а также детали клеточного строения, позволяющие выявлять отдельные опухолевые клетки в составе лимфоидной ткани.Slices obtained in this way allow one to study the general pattern of biopsy tissue, as well as the details of the cellular structure, allowing the identification of individual tumor cells in the lymphoid tissue.
Примеры конкретного выполнения исследований по описанному способу.Examples of specific research on the described method.
Пример 1. Пациент Г.Example 1. Patient G.
В ГНЦ РАМН пациенту была выполнена торакоскопическая цитобиопсия новообразования средостения. Из одного фрагмента биоптата были изготовлены замороженные срезы по описанному выше способу. Целью цитобиопсии являлось установление дифференциального диагноза между лимфомой и опухолью нелимфоидного происхождения.At the SSC RAMS, the patient underwent thoracoscopic cytobiopsy of the mediastinal neoplasm. Frozen sections were made from one biopsy fragment using the method described above. The goal of cytobiopsy was to establish a differential diagnosis between lymphoma and a tumor of non-lymphoid origin.
На замороженном срезе была представлена соединительная ткань, на фоне которой определялись участки лимфоидной ткани, состоящей из малых лимфоцитов, пролимфоцитов, а также крупных клеток атипичного вида. Большинство этих клеток имели большие ядра, в которых присутствовали округлые ядрышки крупного размера (сопоставимые с размером ядра малого лимфоцита). По описанию они полностью соответствовали клеткам Ходжкина и Березовского-Штернберга, наблюдаемым при лимфогранулематозе (лимфоме Ходжкина по классификации ВОЗ) (фиг.1). Таким образом, на замороженном срезе был установлен диагноз лимфогранулематоза.On a frozen section, connective tissue was presented, against which the sites of lymphoid tissue consisting of small lymphocytes, pro-lymphocytes, as well as large cells of an atypical type were determined. Most of these cells had large nuclei in which large round nucleoli were present (comparable to the size of the nucleus of a small lymphocyte). According to the description, they fully corresponded to the Hodgkin and Berezovsky-Sternberg cells observed with lymphogranulomatosis (Hodgkin's lymphoma according to the WHO classification) (Fig. 1). Thus, a diagnosis of lymphogranulomatosis was established on a frozen section.
Время, затраченное на постановку диагноза лимфогрануломатоза по замороженному срезу, составило 20 мин.The time spent on the diagnosis of lymphogranulomatosis by a frozen section was 20 minutes.
Эта же биопсия, но другой фрагмент ткани, поместили в 4% раствор формалина для последующего изготовления парафиновых срезов по стандартной методике.The same biopsy, but another tissue fragment, was placed in a 4% formalin solution for the subsequent manufacture of paraffin sections according to the standard method.
При гистологическом исследовании на парафиновом срезе присутствовала соединительная ткань с участками лимфоидной ткани, представленной малыми лимфоцитами и пролимфоцитами. На фоне определялись типичные клетки Ходжкина и Березовского-Штернберга.In a histological examination, a paraffin section contained connective tissue with areas of lymphoid tissue represented by small lymphocytes and pro-lymphocytes. Against the background, typical Hodgkin and Berezovsky-Sternberg cells were determined.
Время, затраченное на получение диагноза лимфогранулематоза по парафиновому срезу, составило 42 часа.The time taken to obtain a diagnosis of lymphogranulomatosis by paraffin section was 42 hours.
Пример 2. Пациент И.Example 2. Patient I.
У пациента были увеличены шейные и подмышечные лимфатические узлы. В клиническом анализе крови лейкоцитов - 14,5 тыс., лимфоцитов - 71,5%. Для постановки диагноза была выполнена биопсия шейного лимфатического узла.The patient had enlarged cervical and axillary lymph nodes. In the clinical analysis of blood leukocytes - 14.5 thousand, lymphocytes - 71.5%. For the diagnosis, a cervical lymph node biopsy was performed.
Было проведено гистологическое исследование на замороженном срезе, полученном по описанному выше способу. Для замораживания использовалась часть биопсийного материала. Другая его часть направлялась на дополнительные исследования.A histological examination was performed on a frozen slice obtained by the method described above. Part of the biopsy material was used for freezing. Another part was sent for additional research.
По замороженному срезу определяли тип опухоли и предполагаемый диагноз. На малом увеличении рисунок, характерный для нормальной ткани лимфоузла, был стерт (фиг.2). Вместо этого наблюдалось диффузное разрастание лимфоидных клеток с небольшим количеством сосудов. На большем увеличении клетки имели однотипное строение. Все они были мелкие, с узкой цитоплазмой и округлыми темными ядрами. Ядерный хроматин упакован в крупные «глыбки». Ядрышки в большинстве таких ядер не визуализировались. Встречались немногочисленные пролимфоциты.The frozen section was used to determine the type of tumor and the alleged diagnosis. At low magnification, the pattern characteristic of normal lymph node tissue was erased (figure 2). Instead, diffuse proliferation of lymphoid cells with a small number of vessels was observed. At a larger magnification, the cells had the same structure. All of them were small, with a narrow cytoplasm and rounded dark nuclei. Nuclear chromatin is packaged in large lumps. Nucleoli in most of these nuclei were not visualized. There were a few prolymphocytes.
По данному описанию ткани предположили диагноз зрелоклеточной лимфомы с низким пролиферативным потенциалом из возможных форм: В-клеточный хронический лимфолейкоз (В-ХЛЛ), лимфома из клеток мантийной зоны, лимфома из клеток маргинальной зоны. С помощью исследований, уточняющих диагноз, в лимфатическом узле был установлен диагноз В-ХЛЛ.According to this description of the tissue, a diagnosis of mature cell lymphoma with a low proliferative potential of possible forms was suggested: B-cell chronic lymphocytic leukemia (B-CLL), lymphoma from mantle zone cells, lymphoma from marginal zone cells. With the help of studies clarifying the diagnosis, a diagnosis of B-CLL was established in the lymph node.
Время, затраченное на постановку предварительного диагноза по замороженному срезу, составило 30 минут. Для уточнения диагноза суммарное затраченное время составило 24 часа.The time taken to make a preliminary diagnosis of a frozen slice was 30 minutes. To clarify the diagnosis, the total elapsed time was 24 hours.
Из части лимфоузла были изготовлены парафиновые срезы по стандартной методике. На полученном срезе при малом увеличении картина полностью соответствовала наблюдаемой на замороженном срезе (фиг.2). При большом увеличении в структуре лимфоидных клеток не наблюдалось значительных расхождений с замороженным срезом. Отличием являлось наличие промежутков между клетками. На замороженном же срезе клетки плотно прилегали друг к другу. Предварительный диагноз, поставленный по парафиновому срезу, идентичен диагнозу, поставленному по замороженному срезу.Paraffin sections were made from a part of the lymph node using a standard technique. On the obtained slice at low magnification, the picture completely corresponded to that observed on the frozen slice (Fig. 2). With a large increase in the structure of lymphoid cells, there were no significant discrepancies with the frozen slice. The difference was the presence of gaps between the cells. On the frozen section, the cells were tightly adjacent to each other. The preliminary diagnosis, made by paraffin section, is identical to the diagnosis made by frozen section.
При изготовлении парафинового среза предварительный диагноз был установлен через 42 часа после взятия биопсии.When making a paraffin section, a preliminary diagnosis was made 42 hours after taking the biopsy.
Пример 3. Пациент Н.Example 3. Patient N.
У пациента в течение двух месяцев наблюдалась генерализованная лимфаденопатия. Для верификации диагноза была выполнена биопсия лимфатического узла шейной области.The patient had generalized lymphadenopathy for two months. To verify the diagnosis, a biopsy of the cervical lymph node was performed.
Для постановки диагноза было проведено гистологическое исследование на замороженном срезе.For the diagnosis, a histological examination was performed on a frozen section.
Из биопсийного материала были изготовлены замороженные срезы описанным выше способом. По замороженному срезу устанавливали предварительный диагноз. На замороженном срезе при малом увеличении элементы капсулы и краевого синуса не визуализировались (фиг.3). Имела место умеренная сосудистая гиперплазия паренхимы. Структуры, свойственные нормальному лимфатическому узлу, на срезе отсутствовали - вся площадь среза была заполнена диффузным пролифератом из крупных и среднего размера атипичных лимфоидных клеток с довольно широкой цитоплазмой и округлыми светлыми ядрами. В большей части описываемых клеток определялись крупные ядрышки, округлые, представленные в количестве 1-2 на ядро. Одиночные ядрышки были расположены центрально. Хроматин большинства ядер имел гранулярную или зернистую структуру (мелкие гранулы). Присутствовала примесь малых лимфоцитов, лежащих диффузно между патологическими клетками. Встречались единичные макрофаги. Среди крупных клеток выявлялись фигуры митоза и апоптоза. По данным этого исследования предположили диагноз: крупноклеточная лимфоидная опухоль.Frozen sections were made from biopsy material as described above. A frozen section established a preliminary diagnosis. On a frozen slice at low magnification, the elements of the capsule and marginal sinus were not visualized (Fig. 3). There was moderate vascular parenchyma hyperplasia. The structures characteristic of a normal lymph node were absent in the section - the entire section area was filled with diffuse proliferate of large and medium-sized atypical lymphoid cells with a fairly wide cytoplasm and roundish light nuclei. In the majority of the described cells, large nucleoli were determined, round, represented in the amount of 1-2 per nucleus. Single nucleoli were located centrally. The chromatin of most nuclei had a granular or granular structure (small granules). There was an admixture of small lymphocytes lying diffusely between pathological cells. There were single macrophages. Among large cells, figures of mitosis and apoptosis were revealed. According to this study, the diagnosis was suggested: a large cell lymphoid tumor.
По результатам проведенных исследований был установлен окончательный диагноз ДБККЛ (диффузная В-крупноклеточная лимфома).Based on the results of the studies, the final diagnosis of DBCCL (diffuse large B-cell lymphoma) was established.
В этом случае время, затраченное на постановку предварительного диагноза по замороженному срезу, составило 25 мин. Суммарное время, затраченное на постановку диагноза ДБККЛ, составило 24 часа.In this case, the time taken to make a preliminary diagnosis of a frozen section was 25 minutes. The total time spent on the diagnosis of DBKKL was 24 hours.
Часть биоптата была использована для приготовления парафиновых срезов по стандартной методике. На парафиновом срезе при малом увеличении, так же как на замороженном срезе, наблюдалась картина диффузного роста лимфоидной ткани. При большом увеличении были выявлены средние и крупные клетки атипичного вида и малые лимфоциты. По структуре патологические клетки выглядели так же, как на замороженном срезе, но с следующими отличиями:Part of the biopsy specimen was used to prepare paraffin sections using a standard technique. On the paraffin section at low magnification, as well as on the frozen section, a pattern of diffuse growth of lymphoid tissue was observed. With a large increase, medium and large cells of atypical type and small lymphocytes were revealed. The structure of the pathological cells looked the same as on a frozen section, but with the following differences:
(1) Цитоплазма имела более яркую розовую окраску;(1) The cytoplasm had a brighter pink color;
(2) Хроматин этих клеток по структуре отличался большим разнообразием: ядра с одиночными ядрышками содержали хроматин в виде тяжей и гранул;(2) The chromatin of these cells was very diverse in structure: nuclei with single nucleoli contained chromatin in the form of strands and granules;
(3) На замороженном же срезе большинство крупных клеток содержали только гранулы хроматина.(3) On a frozen slice, most large cells contained only chromatin granules.
Указанные различия не оказали влияния на постановку диагноза крупноклеточной лимфомы, т.к. основные признаки данного заболевания, такие как диффузный рост ткани, полиморфизм патологических клеток, особенности строения их ядрышек, наличие большого количества клеток в митозе, оказались достаточными для диагностики на замороженном срезе.These differences did not affect the diagnosis of large cell lymphoma, because the main signs of this disease, such as diffuse tissue growth, polymorphism of pathological cells, structural features of their nucleoli, the presence of a large number of cells in mitosis, were sufficient for diagnosis on a frozen section.
Время, затраченное на получение предварительного диагноза по парафиновому срезу, составило 42 часа. Последующие дополнительные исследования заняли бы еще 8-24 часов.The time taken to obtain a preliminary diagnosis for the paraffin section was 42 hours. Subsequent additional studies would take another 8-24 hours.
Заключение.Conclusion
В период с 2003 по настоящее время выполнены исследования с замороженными срезами более 500 биоптатов (лимфатических узлов).In the period from 2003 to the present, studies have been performed with frozen sections of more than 500 biopsy specimens (lymph nodes).
Время, необходимое на получение точного диагностического заключения, составляет не более 24 часов. В случае парафиновых срезов - от 50 часов до нескольких суток.The time required to obtain an accurate diagnostic report is no more than 24 hours. In the case of paraffin sections - from 50 hours to several days.
Предлагаемый способ сокращает трудозатраты на постановку предварительного диагноза, необходимого для направления поиска точного диагноза, по сравнению со стандартным способом, не ухудшает качество выполняемой работы, увеличивает производительность труда в области диагностики лимфопролиферативных заболеваний, и значительно ускоряет выдачу заключения.The proposed method reduces the labor costs of making a preliminary diagnosis, which is necessary for directing the search for an accurate diagnosis, in comparison with the standard method, does not impair the quality of the work performed, increases labor productivity in the field of diagnosing lymphoproliferative diseases, and significantly speeds up the issuance of an opinion.
Ускоренное (замораживанием) получение среза позволяет уже в цитодиагностике дать точный диагноз в отличие от парафинового среза.Accelerated (by freezing) obtaining a slice allows already in cytodiagnostics to give an accurate diagnosis, in contrast to a paraffin slice.
Список литературы.Bibliography.
1. Ю.А.Криволапов, Е.Е.Леенман. Морфологическая диагностика лимфом, стр.6-9, 2006.1. Yu.A. Krivolapov, E.E. Leenman. Morphological diagnosis of lymphomas, pp. 6-9, 2006.
2. Krivonosov L.K. Simple method of embedding in paraffin under vacuum Arkh Patol.; 40(11):75-76, 1978.2. Krivonosov L.K. Simple method of embedding in paraffin under vacuum Arkh Patol .; 40 (11): 75-76, 1978.
3. Anthony S-Y Leong, M.D, Microwave thechnology for light microscopy and ultrastructural studies, first edition, 2005.3. Anthony S-Y Leong, M.D., Microwave thechnology for light microscopy and ultrastructural studies, first edition, 2005.
4. Kok L.P., Boon ME Nonchemical dehydration of fixed tissue combining microwaves and vacuum, Eur JMorphol; 32(1):86-94, Mar, 1994.4. Kok L.P., Boon ME Nonchemical dehydration of fixed tissue combining microwaves and vacuum, Eur JMorphol; 32 (1): 86-94, Mar, 1994.
5. M.A.Пальцев, И.А.Казанцева, О.В.Зайратьянц, Л.В.Кактурский. Порядок патологоанатомического исследования биопсийного (диагностического и операционного) материала Федеральная служба по надзору в сфере здравоохранения и социального развития. Система добровольной сертификации процессов выполнения патологоанатомических исследований и патологоанатомических услуг в здравоохранении 291-297, Москва, 2006.5. M.A.Paltsev, I.A. Kazantseva, O.V. Zairatyants, L.V. Kaktursky. The procedure for the pathoanatomical study of biopsy (diagnostic and surgical) material Federal Service for Supervision of Health and Social Development. The system of voluntary certification of processes for the implementation of pathological studies and pathological services in healthcare 291-297, Moscow, 2006.
6. Juan Lechago MD. The frozen section Pathology in the trenches. Arch PatholLabMed-Vol 129, Desember, 2005.6. Juan Lechago MD. The frozen section Pathology in the trenches. Arch PatholLabMed-Vol 129, Desember 2005.
7. Edvard B. Desciak, Mary E. Maloney. Artifacts in frozen section preparation J Dermatol Surg 26:5; May, 2000.7. Edvard B. Desciak, Mary E. Maloney. Artifacts in frozen section preparation J Dermatol Surg 26: 5; May 2000.
8. A.H.Зинкин, Н.Г.Зингилевская, Б.Б.Мусельян. Криовоздействие в оториноларингологии (методические рекомендации), механизм действия низких температур на биоткани. Краснодар, 1997.8. A.H. Zinkin, N.G. Zingilevskaya, B. B. Muselyan. Cryotherapy in otorhinolaryngology (guidelines), the mechanism of action of low temperatures on biological tissues. Krasnodar, 1997.
9. D.A.Davis, D.M. Pellowski, and С.William Hanke. Preparation of Frozen Sections Dermatol Surg; 30: 1479-1485, 2004.9. D.A. Davis, D.M. Pellowski, and C.William Hanke. Preparation of Frozen Sections Dermatol Surg; 30: 1479-1485, 2004.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009132234/15A RU2432575C2 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2009132234/15A RU2432575C2 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2009132234A RU2009132234A (en) | 2011-03-10 |
| RU2432575C2 true RU2432575C2 (en) | 2011-10-27 |
Family
ID=44998247
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2009132234/15A RU2432575C2 (en) | 2009-08-27 | 2009-08-27 | Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2432575C2 (en) |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2582275C1 (en) * | 2014-12-15 | 2016-04-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный медицинский исследовательский центр имени П.А. Герцена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ФМИЦ им. П.А. Герцена" Минздрава России) | Urgent fluorescent immunocytochemical diagnosis of metastatic lymph node |
| RU2776567C2 (en) * | 2021-09-14 | 2022-07-22 | Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России) | Method for cryocooling of the sample surface for histological and immunohistochemical studies |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN109374376A (en) * | 2018-11-09 | 2019-02-22 | 上海市农业科学院 | A kind of slice preparation method suitable for morphological observation of mushroom gill basidio cells |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1328731A1 (en) * | 1984-02-17 | 1987-08-07 | Институт Цитологии Ан Ссср | Method of determining calcium ions in muscular fibres |
| SU1390526A1 (en) * | 1986-06-23 | 1988-04-23 | Киевский Научно-Исследовательский Институт Фтизиатрии И Пульмонологии | Method of producing a tissue section for light microscopy |
| RU2193775C2 (en) * | 2000-09-19 | 2002-11-27 | Вахрушев Сергей Геннадьевич | Method for determining sorption properties faucial tonsil lymphoid tissue |
| RU2003124058A (en) * | 2001-01-02 | 2005-01-10 | Сьюпачилл Текнолоджиз Пти. Лтд. (Au) | METHOD AND SYSTEM FOR PREPARING TISSUE SAMPLES FOR HISTOLOGICAL AND PATHOLOGICAL RESEARCH |
-
2009
- 2009-08-27 RU RU2009132234/15A patent/RU2432575C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| SU1328731A1 (en) * | 1984-02-17 | 1987-08-07 | Институт Цитологии Ан Ссср | Method of determining calcium ions in muscular fibres |
| SU1390526A1 (en) * | 1986-06-23 | 1988-04-23 | Киевский Научно-Исследовательский Институт Фтизиатрии И Пульмонологии | Method of producing a tissue section for light microscopy |
| RU2193775C2 (en) * | 2000-09-19 | 2002-11-27 | Вахрушев Сергей Геннадьевич | Method for determining sorption properties faucial tonsil lymphoid tissue |
| RU2003124058A (en) * | 2001-01-02 | 2005-01-10 | Сьюпачилл Текнолоджиз Пти. Лтд. (Au) | METHOD AND SYSTEM FOR PREPARING TISSUE SAMPLES FOR HISTOLOGICAL AND PATHOLOGICAL RESEARCH |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| KAWAMOTO T. USE OF A NEW ADHESIVE FILM FOR THE PREPARATION OF MULTI-PURPOSE FRESH-FROZEN SECTIONS FROM HARD TISSUES, WHOLE-ANIMALS, INSECTS AND PLANTS. ARCH HISTOL CYTOL, 2003, 66(2), P.123-43, REVIEW, PMID: 12846553, НАЙДЕНО В PUBMED, НАЙДЕНО 10.08.2010. * |
| ЗИНКИН А.Н. И ДР. КРИОВОЗДЕЙСТВИЕ В ОТОРИНОЛАРИНГОЛОГИИ (МЕТОДИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ), МЕХАНИЗМ ДЕЙСТВИЯ НИЗКИХ ТЕМПЕРАТУР НА БИОТКАНИ. - КРАСНОДАР, 1997, НАЙДЕНО 10.08.2010, НАЙДЕНО В ИНТЕРНЕТ: HTTP://WWW.KSMA.RU/DOCS/LOR/CVOTH.DOC. * |
Cited By (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2582275C1 (en) * | 2014-12-15 | 2016-04-20 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный медицинский исследовательский центр имени П.А. Герцена" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ "ФМИЦ им. П.А. Герцена" Минздрава России) | Urgent fluorescent immunocytochemical diagnosis of metastatic lymph node |
| RU2776567C2 (en) * | 2021-09-14 | 2022-07-22 | Федеральное государственное бюджетное учреждение «Национальный медицинский исследовательский центр радиологии» Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБУ «НМИЦ радиологии» Минздрава России) | Method for cryocooling of the sample surface for histological and immunohistochemical studies |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2009132234A (en) | 2011-03-10 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Gröbe et al. | Prognostic relevance of circulating tumor cells in blood and disseminated tumor cells in bone marrow of patients with squamous cell carcinoma of the oral cavity | |
| Zhang et al. | Clinicopathological, immunohistochemical, and ultrastructural study of 13 cases of melanotic schwannoma | |
| Popp et al. | Immunofluorescence Microscopy of γH2AX and 53BP1 for Analyzing the Formation and Repair of DNA Double-strand Breaks | |
| Peters et al. | Noninvasive detection of metastases and follicle density in ovarian tissue using full-field optical coherence tomography | |
| Jiang et al. | Establishment of slice cultures as a tool to study the cancer immune microenvironment | |
| Li et al. | Multimodal multiphoton imaging for label-free monitoring of early gastric cancer | |
| Peranzoni et al. | Ex vivo imaging of resident CD8 T lymphocytes in human lung tumor slices using confocal microscopy | |
| CA2570422A1 (en) | Methods for identifying stem cells based on nuclear morphotypes | |
| Glinsmann-Gibson et al. | Recommendations for tissue microarray construction and quality assurance | |
| Åström et al. | Human tumor tissue-based 3D in vitro invasion assays | |
| RU2432575C2 (en) | Method for preparing sections of fresh frozen lymph node tissue | |
| Hacker et al. | Growth and characterization of irradiated organoids from mammary glands | |
| Nie et al. | Differentiating the two main histologic categories of fibroadenoma tissue from normal breast tissue by using multiphoton microscopy | |
| Chen et al. | Epithelial membrane protein 2: a novel biomarker for circulating tumor cell recovery in breast cancer | |
| Cossu et al. | Synchronous interdigitating dendritic cell sarcoma and B-cell small lymphocytic lymphoma in a lymph node | |
| WO2008115517A2 (en) | Methods for identifying stem cells by detecting autofluorescence of cells and syncytia | |
| CN111033238A (en) | Quantitative liquid biopsy diagnostic system and method | |
| Baral et al. | Diagnostic accuracy of tumor imprint cytology for ovarian cancer | |
| AU2016395556B2 (en) | Method for detecting or separating/obtaining circulating tumor cell employing cell proliferation method | |
| US6756194B2 (en) | Control samples for use as standards for evaluating apoptosis in a selected tissue | |
| CN115127880A (en) | Degreasing fluid for macroscopic visualization treatment of surgical pathological examination material and preparation method thereof | |
| Elliott et al. | Successful live cell harvest from bisected sentinel lymph nodes research report | |
| Nielsen et al. | Fluorescence microscopy for ATP internalization mediated by macropinocytosis in human tumor cells and tumor-xenografted mice | |
| CN117470619B (en) | Multiple immunohistochemical staining and digital pathological analysis double-process quality control product | |
| Sung et al. | Contemporary approaches for processing and handling of radical prostactomy specimens |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20140828 |