[go: up one dir, main page]

RU2337964C2 - RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER - Google Patents

RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER Download PDF

Info

Publication number
RU2337964C2
RU2337964C2 RU2006140999/13A RU2006140999A RU2337964C2 RU 2337964 C2 RU2337964 C2 RU 2337964C2 RU 2006140999/13 A RU2006140999/13 A RU 2006140999/13A RU 2006140999 A RU2006140999 A RU 2006140999A RU 2337964 C2 RU2337964 C2 RU 2337964C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
aspart
proinsulin
pas
human
protein
Prior art date
Application number
RU2006140999/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2006140999A (en
Inventor
Лев Иванович Патрушев (RU)
Лев Иванович Патрушев
Алексей Алексеевич Зинченко (RU)
Алексей Алексеевич Зинченко
Тать на Ивановна Костромина (RU)
Татьяна Ивановна Костромина
Тать на Дмитриевна Мелихова (RU)
Татьяна Дмитриевна Мелихова
Наталь Львовна Патрушева (RU)
Наталья Львовна Патрушева
Дмитрий Ильич Баирамашвили (RU)
Дмитрий Ильич Баирамашвили
Анатолий Иванович Мирошников (RU)
Анатолий Иванович Мирошников
Original Assignee
Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук filed Critical Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук
Priority to RU2006140999/13A priority Critical patent/RU2337964C2/en
Publication of RU2006140999A publication Critical patent/RU2006140999A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2337964C2 publication Critical patent/RU2337964C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: chemistry, pharmacology.
SUBSTANCE: plasmid pAS-2 is formed by HindIII/BamHI-fragment of plasmid pPINS07 incorporating a part of artificial gene encoding lgG-binding protein domain A from S. aureus and peptide His6GlySerArg, and HindIII/BamHI-fragment encoding proinsulin Aspart. Plasmid pAS-2 ensures in cells E. coli the biosynthesis of hybrid protein wherein B domain lineage of staphylococcal protein A Staphylococcus aureus is linked via peptide linker His6GlySerArg with amino acid sequence of human being proinsulin Aspart. The human being strain of bacteria Escherichia coli BAS2 produced by transforming the cells of the strain by plasmid pAS-2 produces the said hybrid protein.
EFFECT: production of human being insulin Aspart by simplified process with high yield.
2 cl, 4 dwg, 4 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии, в частности к генной инженерии, конкретно к получению проинсулина Aspart, и может быть использовано для создания лекарственных препаратов нового поколения для лечения инсулинозависимого сахарного диабета.The invention relates to biotechnology, in particular to genetic engineering, specifically to the production of Aspart proinsulin, and can be used to create new-generation drugs for the treatment of insulin-dependent diabetes mellitus.

К инсулинозависимому сахарному диабету (сахарному диабету первого типа, СД1) относят нарушения углеводного обмена, развитие которых обусловлено полной деструкцией или уменьшением числа β-клеток поджелудочной железы (до ~10% от нормы). Обычно это приводит к абсолютной инсулиновой недостаточности. При этом инсулин, гормон поджелудочной железы, до сих пор остается основным лекарственным средством для лечения СД1.To insulin-dependent diabetes mellitus (type 1 diabetes mellitus, type 1 diabetes) are disorders of carbohydrate metabolism, the development of which is due to complete destruction or a decrease in the number of pancreatic β-cells (up to ~ 10% of the norm). Usually this leads to absolute insulin deficiency. At the same time, insulin, a pancreatic hormone, is still the main drug for the treatment of T1DM.

Цель инсулиновой терапии - восстановление обмена глюкозы, предотвращение гипергликемии и глюкозурии после приема пищи, оптимизация диеты и поддержание нормальной массы тела, нормализация жирового обмена, повышение качества жизни больного [Vajo Z., Fawcett J., Duckworth W.C. Endocrine Reviews, 2001, v.22, p.706-717]. Инсулиновая терапия с использованием немодифицированного инсулина человека имеет ряд недостатков:The goal of insulin therapy is to restore glucose metabolism, prevent hyperglycemia and glucosuria after eating, optimize diet and maintain normal body weight, normalize fat metabolism, improve the patient’s quality of life [Vajo Z., Fawcett J., Duckworth W.C. Endocrine Reviews, 2001, v.22, p.706-717]. Insulin therapy using unmodified human insulin has several disadvantages:

1. При подкожном введении препарата инсулина максимальная концентрация устанавливается только через ~1-2 часа, поэтому больным сахарным диабетом необходимо вводить препарат за 30-60 минут перед приемом пищи, чтобы избежать развития различных осложнений.1. With subcutaneous administration of an insulin preparation, the maximum concentration is established only after ~ 1-2 hours, therefore, patients with diabetes need to enter the drug 30-60 minutes before eating to avoid the development of various complications.

2. При подкожном введении препарата действие инсулина сохраняется в течение нескольких часов после приема пищи, что может приводить к развитию гипогликемии.2. With subcutaneous administration of the drug, the action of insulin persists for several hours after a meal, which can lead to the development of hypoglycemia.

3. В местах постоянного введения инсулина, как правило, развивается липодистрофия.3. In places of continuous administration of insulin, lipodystrophy usually develops.

4. Однократное введение препарата инсулина является недостаточным для поддержания нормального уровня глюкозы в крови в течение суток [Vajo Z., Fawcett J., Duckworth W.C. Endocrine Reviews, 2001, v.22, p.706-717].4. A single administration of an insulin preparation is insufficient to maintain normal blood glucose levels during the day [Vajo Z., Fawcett J., Duckworth W.C. Endocrine Reviews, 2001, v.22, p.706-717].

Преодоление недостатков природного инсулина стало возможным после получения его генно-инженерных аналогов [Walsh G. Appl. Microbiol. Biotechnol, 2005, v.67, p.151-159].Overcoming the shortcomings of natural insulin became possible after obtaining its genetic engineering analogues [Walsh G. Appl. Microbiol. Biotechnol, 2005, v. 67, p. 151-159].

Инсулин Lyspro, первый внедренный в широкую клиническую практику быстродействующий аналог инсулина человека, у которого в аминокислотной последовательности В-цепи (фиг.1) инвертированы остатки пролина В28 (РrоВ28) и лизина В29 (LysB29). Эта модификация привела к конформационным изменениям в С-концевой последовательности В-цепи, которые сделали неэффективной димеризацию молекул белка, характерную для нативного инсулина [Wood A.J.J. N. Engl. J. Med., 1997, v.337, p.176-183]. Снижение способности к образованию агрегатов позволило увеличить скорость абсорбции инсулина Lyspro после инъекции, увеличить уровень содержания препарата в плазме и уменьшить продолжительность его действия [Howey D.C., Bowsher R.R., Brunelle R.L., Woodworth J.R. Diabetes, 1994, v.43, p.396-402]. Действие инсулина Lyspro начинается через 15 мин после подкожной инъекции, достигает максимальных значений через ~1 ч и прекращается спустя 2-4 ч [Torlone E., Fanelli С., Rambotti A.M., Kassi G., Modarelli F., Di Vincenzo A., Epifano L., Ciofetta M., Pampanelli S., Brunetti P. Diabetologia, 1994, v.37, p.713-720].Lyspro insulin, the first high-speed analogue of human insulin introduced into widespread clinical practice, in which the residues of proline B28 (ProB28) and lysine B29 (LysB29) are inverted in the amino acid sequence of the B chain (Fig. 1). This modification led to conformational changes in the C-terminal sequence of the B-chain, which rendered ineffective the dimerization of protein molecules characteristic of native insulin [Wood A.J.J. N. Engl. J. Med., 1997, v.337, p.176-183]. The decrease in the ability to form aggregates allowed to increase the rate of absorption of Lyspro insulin after injection, increase the level of the drug in plasma and reduce its duration [Howey D.C., Bowsher R.R., Brunelle R.L., Woodworth J.R. Diabetes, 1994, v. 43, p. 396-402]. The action of Lyspro insulin begins 15 minutes after subcutaneous injection, reaches its maximum value in ~ 1 hour and stops after 2-4 hours [Torlone E., Fanelli C., Rambotti AM, Kassi G., Modarelli F., Di Vincenzo A., Epifano L., Ciofetta M., Pampanelli S., Brunetti P. Diabetologia, 1994, v. 37, p. 713-720].

Инсулин Aspart - еще один используемый в клинической практике генно-инженерный аналог инсулина быстрого действия. В молекуле инсулина Aspart остаток пролина в положении В28 В-цепи заменен остатком аспарагиновой кислоты (фиг.1). Эта замена снизила тенденцию мономерных молекул инсулина к агрегации из-за нарушения взаимодействия между остатками РrоВ28 и GlyB23 [Setter S.M., Corbett C.F., Campbell P.K., White J.R. Ann. Pharmacother., 2000; v.34, p.1423-1431].Inspart Aspart is another genetically engineered analogue of fast acting insulin used in clinical practice. In the Aspart insulin molecule, the proline residue at position B28 of the B chain is replaced by an aspartic acid residue (FIG. 1). This substitution reduced the tendency of insulin monomer molecules to aggregate due to disruption of the interaction between the residues of ProB28 and GlyB23 [Setter S.M., Corbett C.F., Campbell P.K., White J.R. Ann. Pharmacother., 2000; v. 34, p. 1423-1431].

Сродство инсулинов Aspart и Lyspro к рецептору инсулина человека и их влияние на клеточный метаболизм практически одинаковы, однако инсулин Aspart проявляет меньшее, чем инсулин Lyspro, сродство к IGF-1 рецептору. При этом оба аналога обладают меньшей митогенной активностью в сравнении с немодифицированным инсулином человека [Chapman T.M., Noble S., Goa K.L. Drugs, 2002, v.62, p.1945-1981].The affinity of Aspart and Lyspro insulin for the human insulin receptor and their effect on cellular metabolism are almost the same, however, Aspart insulin exhibits less affinity for IGF-1 receptor than Lyspro insulin. In this case, both analogues have less mitogenic activity compared to unmodified human insulin [Chapman T.M., Noble S., Goa K.L. Drugs, 2002, v. 62, p. 1945-1981].

Инсулин Aspart абсорбируется из места инъекции быстрее природного инсулина. При подкожном введении инсулина Aspart максимально достигаемая концентрация препарата в крови выше, чем у природного гормона (138-518 пмоль/л и 59-288 пмоль/л соответственно), и этот уровень достигается за более короткий промежуток времени (31-71 мин по сравнению с 61-145 мин). Восстановление исходного уровня инсулина Aspart в плазме также происходит быстрее [Home P.D., Barriocanal L., Lindholm A. Eur. J. Clin. Pharmacol., 1999; v.55, p.199-203].Aspart insulin is absorbed from the injection site faster than natural insulin. With subcutaneous administration of Aspart insulin, the maximum achieved concentration of the drug in the blood is higher than that of the natural hormone (138-518 pmol / L and 59-288 pmol / L, respectively), and this level is achieved in a shorter period of time (31-71 min compared to from 61-145 minutes). Recovery of baseline plasma Aspart insulin levels is also faster [Home P.D., Barriocanal L., Lindholm A. Eur. J. Clin. Pharmacol., 1999; v.55, p. 199-203].

Известен способ получения инсулина Aspart, в котором ген модифицированного проинсулина человека общей структуры B(1-29)-Ala-Ala-Lys-A(1-21) собирают из 10 предварительно синтезированных олигонуклеотидов и генно-инженерным способом вводят в челночный экспрессирующий вектор под контроль сильного промотора гена триозофосфатизомеразы Saccharomyces cerevisiae вслед за последовательностью нуклеотидов, кодирующей лидерный пептид, обеспечивающий секрецию рекомбинантного белка из дрожжевых клеток. Требуемую мутацию, приводящую к замене аминокислотного остатка РroВ28→AspB28 в молекуле проинсулина, вводили в рекомбинантный ген направленным мутагенезом с использованием соответствующего праймера. Рекомбинантный белок-предшественник, секретируемый клетками дрожжей, содержащими данную плазмиду, подвергали грубой очистке с использованием катионообменной хроматографии с последующей кристаллизацией. Инсулин Aspart получали реакцией транспептидации белка-предшественника с Thr-OMe в присутствии трипсина и последующим гидролизом образовавшегося эфира [US № 5618913, МКИ С07К 014/62, опубл. 1997].There is a known method for producing Aspart insulin, in which a gene of modified human proinsulin of the general structure B (1-29) -Ala-Ala-Lys-A (1-21) is collected from 10 pre-synthesized oligonucleotides and introduced into the shuttle expression vector under the genetic engineering method control of a strong promoter of the Saccharomyces cerevisiae triosophosphatisomerase gene following a nucleotide sequence encoding a leader peptide that secures the secretion of a recombinant protein from yeast cells. The desired mutation leading to the replacement of the amino acid residue ProB28 → AspB28 in the proinsulin molecule was introduced into the recombinant gene by targeted mutagenesis using the appropriate primer. The recombinant precursor protein secreted by yeast cells containing this plasmid was subjected to coarse purification using cation exchange chromatography followed by crystallization. Aspart insulin was prepared by the transpeptidation reaction of the precursor protein with Thr-OMe in the presence of trypsin and subsequent hydrolysis of the resulting ester [US No. 5618913, MKI C07K 014/62, publ. 1997].

Способ имеет ряд недостатков, в частности многоэтапность и связанную с этим высокую трудоемкость получения конечного продукта, необходимость использования стадий химического синтеза пептидов, а также низкий выход требуемого аналога инсулина, что затрудняет использование данного способа в технологических целях.The method has a number of disadvantages, in particular, the multi-stage nature and the associated high laboriousness of obtaining the final product, the necessity of using chemical peptide synthesis stages, and the low yield of the required insulin analogue, which makes it difficult to use this method for technological purposes.

Наиболее близким по технической сущности к предлагаемому изобретению является штамм-продуцент рекомбинантного проинсулина Lyspro человека Escherichia coli pLP-3-1/TG-1, в котором рекомбинантная плазмида, кодирующая гибридный полипептид с последовательностью проинсулина Lyspro человека, соединенный через пептидный линкер с аминокислотной последовательностью домена В стафилококкового белка А, введена в клетки Escherichia coli TG-1 дикого типа. Индукция экспрессии рекомбинантного гена в этом штамме осуществляется с помощью изопропил-β-D-тиогалактопиранозида (ИПТГ) [патент РФ №2235776, МКИ C12N 15/00, опубл. 2004]. Несмотря на то, что для данного штамма-продуцента характерен высокий уровень биосинтеза рекомбинантного белка, последний в процессе синтеза и последующей очистки подвергается быстрой деградации из-за наличия в бактериальных клетках дикого типа ряда протеолитических ферментов. Это затрудняет очистку рекомбинантного проинсулина и уменьшает выход конечного продукта, что повышает стоимость препаратов рекомбинантного белка.Closest to the technical nature of the present invention is a producer strain of recombinant human Linspro proinsulin Escherichia coli pLP-3-1 / TG-1, in which a recombinant plasmid encoding a hybrid polypeptide with a human Lyspro proinsulin sequence connected via a peptide linker to the amino acid sequence of the domain In staphylococcal protein A, introduced into wild-type Escherichia coli TG-1 cells. Induction of expression of the recombinant gene in this strain is carried out using isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside (IPTG) [RF patent No. 2235776, MKI C12N 15/00, publ. 2004]. Despite the fact that this producer strain is characterized by a high level of biosynthesis of the recombinant protein, the latter undergoes rapid degradation during the synthesis and subsequent purification due to the presence of a number of proteolytic enzymes in the wild-type bacterial cells. This makes it difficult to purify recombinant proinsulin and reduces the yield of the final product, which increases the cost of recombinant protein preparations.

Задачей изобретения является конструирование плазмиды, экспрессирующей ген проинсулина Aspart, и создание высокопродуктивного бактериального штамма-продуцента аналога проинсулина, позволяющего получать инсулин Aspart с высоким выходом и по упрощенной технологии.The objective of the invention is the construction of a plasmid expressing the Aspart proinsulin gene, and the creation of a highly productive bacterial strain producer of the proinsulin analogue, allowing to obtain Aspart insulin in high yield and by simplified technology.

Поставленная задача решается за счет конструирования рекомбинантной плазмидной ДНК pAS-2, кодирующей гибридный белок, содержащий аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека, в котором последовательность домена В белка A S. aureus соединена через пептидный линкер His6GlySerArg с аминокислотной последовательностью проинсулина Aspart человека с молекулярной массой 3,3 МДа (5051 п.о.), содержащей HindIII/BamHI-фрагмент плазмиды pPINS07, включающий гибридный tac-промотор, ген β-лактамазы (bla), область начала репликации (ori), терминатор транскрипции рибосомного оперона Е. coli, последовательность нуклеотидов, кодирующую аминокислотную последовательность домена В белка А S. aureus, соединенную с последовательностью нуклеотидов, кодирующей пептид His6GlySerArg, и HindIII/BamHI-фрагмент (271 п.о.), кодирующий проинсулин Aspart человека; уникальные сайты рестрикции со следующими координатами: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, PstI - 342 и 417, HindIII - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792, а также за счет штамма Escherichia coli BAS2 - продуцента рекомбинантного белка, содержащего аминокислотную последовательность проинсулина Aspart.The problem is solved by constructing a recombinant plasmid DNA pAS-2 encoding a hybrid protein containing the amino acid sequence of human Aspart proinsulin, in which the B domain of S. aureus protein A is linked via the His 6 GlySerArg peptide linker to the amino acid sequence of human Aspart proinsulin with a molecular weight 3.3 MDa (5051 bp) containing the HindIII / BamHI fragment of pPINS07 plasmid, including the hybrid tac promoter, β-lactamase gene (bla), the region of origin of replication (ori), ribosome transcription terminator E. coli operon, a nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of S. aureus Protein B domain A linked to a nucleotide sequence encoding His 6 GlySerArg peptide and a HindIII / BamHI fragment (271 bp) encoding human Aspart proinsulin; unique restriction sites with the following coordinates: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, PstI - 342 and 417, HindIII - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792, and also due to the Escherichia coli BAS2 strain - producer of the recombinant protein, containing the amino acid sequence of proinsulin Aspart.

Исходной плазмидой для конструирования является плазмида pPINS07, кодирующая:The initial plasmid for construction is the plasmid pPINS07 encoding:

- гибридный полипептид, состоящий из одного IgG-связывающего домена белка А Staphylococcus aureus, пептидного линкера His6GlySerArg и проинсулина человека,- a hybrid polypeptide consisting of a single IgG-binding domain of protein A of Staphylococcus aureus, peptide linker His 6 GlySerArg and human proinsulin,

- гибридный tac-промотор и- hybrid tac promoter and

- терминатор транскрипции рибосомного оперона Е. coli.- terminator of transcription of the ribosomal operon E. coli.

[Патент РФ №2144957, МКИ C12N 15/00, опубл. 2000].[RF patent No. 2144957, MKI C12N 15/00, publ. 2000].

Как уже отмечалось выше, последовательность инсулина Aspart отличается от природного инсулина структурой аминокислотных остатков в положении В28. Для введения соответствующей мутации в ген проинсулина человека используют полимеразную цепную реакцию (ПЦР) с перекрывающимися праймерами. Для этого вначале на матрице исходной плазмиды синтезируют продукты А и В (ПЦР 1, фиг.2) с помощью пар праймеров 1-4 и 2-3. Праймеры 3 и 4 содержат некомплементарные матрице нуклеотиды, соответствующие последовательностям гена проинсулина Aspart человека (обозначены звездочками). Полученные ПЦР-продукты очищают на ДЭАЭ-мембране и используют в качестве матрицы во второй полимеразной реакции (ПЦР 2) в присутствии праймеров 1 и 2 (фиг.3). Синтезированный фрагмент С очищают на ДЭАЭ-мембране. Полученный в итоге фрагмент С содержат требуемую мутацию, а также уникальные сайты рестрикции BamHI и HindIII на своих концах. Далее этот фрагмент инкубируют с рестриктазами BamHI и HindIII и клонируют в предварительно подготовленном векторе, который представляет собой исходную плазмиду, содержащую рекомбинантный ген гибридного полипептида без последовательности проинсулина человека, удаленной с помощью тех же рестриктаз (фиг.2). Отбор рекомбинантных клонов проводят по элиминации сайта рестрикции Mbo II в продукте ПЦР, полученном в результате амплификации предполагаемой рекомбинантной плазмиды pAS-2 с помощью праймеров 1 и 2 (фиг.2 и 3). Удаление сайта рестрикции является следствием изменения с помощью проведенного направленного мутагенеза последовательности нуклеотидов гена проинсулина исходной плазмиды, приводящего к появлению в В-цепи инсулина измененного аминокислотного остатка AspB28 (фиг.1). Плазмиды отобранных клонов, которые обладают требуемыми свойствами, очищают щелочным методом [Maniatis Т., Fritsch E.F., Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press], и последовательности нуклеотидов клонированного фрагмента ДНК определяют методом Сэнгера с использованием дидезоксирибонуклеотидных производных в качестве терминаторов синтеза ДНК термосеквеназой на автоматическом секвенаторе. Полученную последовательность сравнивают с последовательностью исходной плазмиды, определенную тем же методом. Итогом работы является получение рекомбинантной плазмиды, обладающей требуемыми свойствами.As noted above, the Aspart insulin sequence differs from natural insulin in the structure of amino acid residues at position B28. To introduce the corresponding mutation into the human proinsulin gene, a polymerase chain reaction (PCR) with overlapping primers is used. For this, first products A and B are synthesized on the matrix of the initial plasmid (PCR 1, FIG. 2) using pairs of primers 1-4 and 2-3. Primers 3 and 4 contain non-complementary template nucleotides corresponding to human Aspart proinsulin gene sequences (indicated by asterisks). The obtained PCR products are purified on a DEAE membrane and used as a matrix in the second polymerase reaction (PCR 2) in the presence of primers 1 and 2 (Fig. 3). The synthesized fragment C is purified on a DEAE membrane. The resulting fragment C contains the desired mutation, as well as unique restriction sites BamHI and HindIII at their ends. Next, this fragment is incubated with restriction enzymes BamHI and HindIII and cloned in a pre-prepared vector, which is the original plasmid containing the recombinant gene of the hybrid polypeptide without the human proinsulin sequence deleted using the same restriction enzymes (figure 2). Selection of recombinant clones is carried out by elimination of the Mbo II restriction site in the PCR product obtained by amplification of the putative recombinant plasmid pAS-2 using primers 1 and 2 (FIGS. 2 and 3). Removal of the restriction site is a consequence of a change using the directed mutagenesis of the nucleotide sequence of the proinsulin gene of the original plasmid, which leads to the appearance in the insulin B chain of an altered amino acid residue AspB28 (FIG. 1). Plasmids of selected clones that have the desired properties are purified by the alkaline method [Maniatis T., Fritsch EF, Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press], and the nucleotide sequences of the cloned DNA fragment are determined using the Sanger method using dideoxyribonucleotide derivatives as terminators of DNA synthesis by thermosequenase on an automatic sequencer. The resulting sequence is compared with the sequence of the original plasmid determined by the same method. The result of this work is to obtain a recombinant plasmid with the desired properties.

Плазмиду pAS-2 вводят в компетентные клетки Е. coli BL21 [патент РФ №2267534, МКИ C12N 15/17, опубл. 2006], что приводит к созданию рекомбинантного штамма-продуцента инсулина Aspart (Е. coli BL21/pAS-2). Исследование уровней экспрессии гибридного белка, содержащего последовательность аналога проинсулина Aspart в полученном рекомбинантном штамме, показывает, что содержание рекомбинантного полипептида в бактериальных клетках после завершения индукции с помощью ИПТГ составляет не менее 25% от суммарного клеточного белка.Plasmid pAS-2 is introduced into competent E. coli BL21 cells [RF patent No. 2267534, MKI C12N 15/17, publ. 2006], which leads to the creation of a recombinant insulin producer strain Aspart (E. coli BL21 / pAS-2). A study of the expression levels of a hybrid protein containing the Aspart proinsulin analog sequence in the obtained recombinant strain shows that the content of the recombinant polypeptide in bacterial cells after completion of induction with IPTG is at least 25% of the total cellular protein.

Рекомбинантная плазмидная ДНК pAS-2, кодирующая гибридный полипептид с последовательностью аналога проинсулина Aspart, характеризуется следующими свойствами:Recombinant plasmid DNA pAS-2 encoding a hybrid polypeptide with the Aspart proinsulin analog sequence has the following properties:

- имеет молекулярную массу 3,3 МДа (5051 п.о.);- has a molecular weight of 3.3 MDa (5051 bp);

- кодирует гибридный белок, в котором последовательность домена В стафилококкового белка А с С-концевым гексагистидиновым линкером соединена через трипептид GlySerArg с последовательностью проинсулина Aspart (плазмида pAS-2);- encodes a hybrid protein in which the sequence of domain B of staphylococcal protein A with a C-terminal hexahistidine linker is connected via the GlySerArg tripeptide to the Aspart proinsulin sequence (plasmid pAS-2);

- состоит из HindIII/BamHI-фрагмента плазмиды pPNIS07, содержащего синтетический tac-промотор транскрипции, ген β-лактамазы (bla), определяющий устойчивость клеток бактерий к ампициллину, область инициации репликации плазмидной ДНК (ori), терминатор транскрипции рибосомного оперона Е. coli, а также включающего часть искусственного гена, кодирующую IgG-связывающий домен белка А из S. aureus и гексагистидиновый домен, соединенный с трипептидом GlySerArg, а также HindIII/BamHI-фрагмента, кодирующего проинсулин Aspart (плазмида pAS-2) человека, содержащий в аминокислотной последовательности остаток AspB28; уникальные сайты рестрикции имеют следующие координаты: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, PstI - 342 и 417, HindIII - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792.- consists of the HindIII / BamHI fragment of plasmid pPNIS07 containing a synthetic tac transcription promoter, β-lactamase gene (bla), which determines the resistance of bacterial cells to ampicillin, the region of plasmid DNA replication initiation (ori), the terminator of transcription of the E. coli ribosomal operon, and also comprising a part of the artificial gene encoding the IgG-binding domain of protein A from S. aureus and a hexahistidine domain connected to the GlySerArg tripeptide, as well as the HindIII / BamHI fragment encoding human Aspart pro-insulin (plasmid pAS-2) containing the amino acid sequence atelnosti AspB28 residue; unique restriction sites have the following coordinates: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, PstI - 342 and 417, HindIII - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792.

Преимуществом полученной плазмиды перед известными плазмидами является то, что она кодирует полипептид проинсулина Aspart под контролем синтетического tac-промотора, индуцируемого изопропил-β-D-тиогалактопиранозидом. Это позволяет индуцировать и осуществлять синтез проинсулина при обычной для Е. coli температуре 37°С, что значительно повышает выход рекомбинантного белка и облегчает его дальнейшую очистку. Кроме того, в отличие от известных плазмид, сконструированная плазмида содержит ген β-лактамазы в качестве селектируемого маркера.The advantage of the obtained plasmid over the known plasmids is that it encodes the Aspart proinsulin polypeptide under the control of a synthetic tac promoter induced by isopropyl-β-D-thiogalactopyranoside. This allows you to induce and carry out the synthesis of proinsulin at a usual temperature of E. coli at 37 ° C, which significantly increases the yield of the recombinant protein and facilitates its further purification. In addition, unlike the known plasmids, the constructed plasmid contains the β-lactamase gene as a selectable marker.

Для получения штамма-продуцента гибридного полипептида, содержащего последовательность проинсулина Aspart человека, рекомбинантную плазмиду pAS-2 вводят с помощью электропорации в компетентные клетки Е. coli BL21.To obtain a producer strain of a hybrid polypeptide containing the human Aspart proinsulin sequence, the recombinant plasmid pAS-2 is introduced by electroporation into competent E. coli BL21 cells.

Полученный штамм Е. coli BL21/pAS-2, названный Е. coli BAS2, характеризуется следующими свойствами.The resulting strain of E. coli BL21 / pAS-2, named E. coli BAS2, is characterized by the following properties.

Культурально-морфологические признаки: клетки мелкие, палочковидной формы, грамотрицательные, 1×3,5 мкм, подвижные. Штамм хорошо растет на обычных питательных средах (МПА, МПБ, LB-бульон, LB-агар, минимальная среда с глюкозой). При росте на агаризованной среде LB колонии округлые, гладкие, полупрозрачные, блестящие, серые. Край ровный, диаметр колоний 1-3 мм, консистенция пастообразная. Рост в жидких средах (LB, минимальная среда с глюкозой) характеризуется ровным помутнением, осадок легко седиментирует.Cultural and morphological characters: small, rod-shaped cells, gram-negative, 1 × 3.5 μm, motile. The strain grows well on ordinary nutrient media (MPA, MPB, LB-broth, LB-agar, minimal medium with glucose). When growing on an agarized LB medium, the colonies are rounded, smooth, translucent, shiny, gray. The edge is even, the diameter of the colonies is 1-3 mm, the consistency is pasty. Growth in liquid media (LB, minimal medium with glucose) is characterized by even turbidity, the sediment easily sedimentes.

Физиолого-биохимические признаки: клетки растут при 4-42°С, оптимум рН 6,8-7,6. В качестве источника азота используют как минеральные соли аммония, так и органические соединения: аминокислоты, пептон, триптон, дрожжевой экстракт. В качестве источника углерода при росте на минимальной среде используют глицерин, углеводы, аминокислоты.Physiological and biochemical characteristics: cells grow at 4-42 ° C, optimum pH of 6.8-7.6. As a source of nitrogen, both ammonium mineral salts and organic compounds are used: amino acids, peptone, tryptone, yeast extract. When growing on a minimal medium, glycerin, carbohydrates, amino acids are used as a carbon source.

Генетические признаки: F- ompT hsdSB(rB- mB-) gal dcm. Проявляют устойчивость к ампициллину (до 300 мкг/мл), обусловленную наличием генов устойчивости к антибиотику в ДНК рекомбинантной плазмиды pAS-2.Genetic traits: F - ompT hsdS B (r B - m B - ) gal dcm. Resistance to ampicillin (up to 300 μg / ml) is shown due to the presence of antibiotic resistance genes in the DNA of the recombinant plasmid pAS-2.

Условия хранения: штамм бактерий Е. coli BAS2 хранят на чашках и косяках при 4°С. Пересевы на свежие среды проводят один раз в месяц. Может храниться не менее одного года в среде LB, содержащей 30% глицерина, при -20-70°С.Storage conditions: the bacterial strain E. coli BAS2 is stored on plates and jambs at 4 ° C. Reseeding on fresh media is carried out once a month. It can be stored for at least one year in LB medium containing 30% glycerol at -20-70 ° C.

Устойчивость к антибиотикам: клетки штаммов-продуцентов проявляют устойчивость к ампициллину (до 300 мкг/мл), обусловленную наличием генов устойчивости в ДНК рекомбинантной плазмиды pAS-2.Antibiotic resistance: cells of producer strains show resistance to ampicillin (up to 300 μg / ml), due to the presence of resistance genes in the DNA of the recombinant plasmid pAS-2.

Преимуществом полученного бактериального штамма является обеспечение им высокой внутриклеточной стабильности гибридного полипептида проинсулина Aspart человека как следствие неактивного состояния в этих клетках бактериальных генов lon и ompT, кодирующих соответственно АТР-зависимую протеиназу и протеиназу внешней мембраны. В результате в клетках этого штамма отсутствуют продукты деградации рекомбинантных предшественников инсулина, затрудняющих их очистку, что сопровождается повышением выхода очищенного рекомбинантного белка, содержащего последовательность аналога проинсулина человека.The advantage of the obtained bacterial strain is that it ensures high intracellular stability of the human Aspart proinsulin hybrid polypeptide as a result of the inactive state of the bacterial genes lon and ompT in these cells, encoding, respectively, the ATP-dependent proteinase and outer membrane proteinase. As a result, the cells of this strain lack degradation products of recombinant insulin precursors that impede their purification, which is accompanied by an increase in the yield of purified recombinant protein containing the sequence of the human proinsulin analogue.

Изобретение иллюстрируют примеры.The invention is illustrated by examples.

Пример 1. Получение фрагментов ДНК, кодирующих аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека.Example 1. Obtaining DNA fragments encoding the amino acid sequence of human Aspart proinsulin.

80 нг плазмидной ДНК плазмиды pPINS07, содержащей ген природного проинсулина человека, используют в качестве матрицы для синтеза фрагмента А (фиг.3) в полимеразной цепной реакции (ПЦР), добавляя к 50 мкл реакционной смеси следующего состава: 20 мМ Трис-HCl рН 8,8, 67 мМ (NH4)2SO4, 1,5 мМ MgCl2, по 0,2 мМ dATP, dCTP, TTP и dGTP каждого, 0,5 ед. смеси Taq- и Pfu-ДНК-полимераз (в отношении 50/1 по активности), и для синтеза фрагмента ДНК, кодирующего последовательность проинсулина Aspart, по 1 мкМ каждого из праймеров CAGGATCATCACCATGGATCCCG и CACGACGGGTCTTGTCGGTGTAGAAG (праймеры 1 и 4 соответственно на фиг.3, в последовательностях праймеров подчеркнуты измененные нуклеотиды). В работе используют модифицированную моноклональными антителами (для имитации «горячего старта») термостабильную Taq-ДНК-полимеразу. Амплификацию соответствующего участка плазмиды осуществляют, проводя 20 циклов ПЦР (94°С, 20 с; 59°С, 20 с; 72°С, 20 с) на амплификаторе «Терцик» фирмы «ДНК-технология», Россия. Синтез фрагмента В (фиг.3) проводят в тех же условиях и в той же реакционной смеси, но в присутствии праймеров CCGCCAAGCTTACTAGTTGCAGTAG и ACACCGACAAGACCCGTCGTGAAGC (праймеры 2 и 3, фиг.3). Синтезированные фрагменты А и В очищают электрофоретически в 3% агарозном геле, перенося на кусочки ДЭАЭ-мембраны NA-45 (Schleicher&Schuhle), и элюируют в центрифужных микропробирках на 1,5 мл 200 мкл буфера, содержащего 1,5 М Nad, 10 мМ ЭДТА в течение 40 мин при 65°С. К буферу добавляют тРНК Е. coli до конечной концентрации 100 мкг/мл и синтезированные фрагменты осаждают 2,5 объемами 96% этилового спирта. Осадок собирают центрифугированием на микроцентрифуге «Эппендорф» при максимальных оборотах в течение 15 мин, супернатант отбрасывают, осадки промывают 1 мл холодного 70% этилового спирта, подсушивают при комнатной температуре и растворяют в 50 мкл деионизованной воды. Сборку необходимого фрагмента С (фиг.3) осуществляют с помощью ПЦР 2 в 25 мкл вышеописанной реакционной смеси, однако в отличие от нее содержащей по 1 мкл очищенных перекрывающихся фрагментов А и В в качестве матрицы, а также праймеры 1 и 2 (фиг.3, последовательности см. выше).80 ng of plasmid DNA of plasmid pPINS07 containing the natural human proinsulin gene is used as a template for the synthesis of fragment A (Fig. 3) in the polymerase chain reaction (PCR), adding to 50 μl of the reaction mixture of the following composition: 20 mM Tris-HCl pH 8 , 8, 67 mM (NH 4 ) 2 SO 4 , 1.5 mM MgCl 2 , 0.2 mM dATP, dCTP, TTP and dGTP each, 0.5 units. mixtures of Taq and Pfu DNA polymerases (with a ratio of 50/1 in activity), and for the synthesis of a DNA fragment encoding the Aspart proinsulin sequence, 1 μM of each of the primers CAGGATCATCACCATGGATCCCG and CACGACGGGTCTT GTC GGTGTAGAAG (primers 1 and 4, respectively. 3, altered nucleotides are underlined in primer sequences). The work uses a thermostable Taq DNA polymerase modified by monoclonal antibodies (to simulate a “hot start”). Amplification of the corresponding plasmid region is carried out by performing 20 PCR cycles (94 ° C, 20 s; 59 ° C, 20 s; 72 ° C, 20 s) on a Tertsik thermocycler of DNA technology, Russia. The synthesis of fragment B (FIG. 3) was carried out under the same conditions and in the same reaction mixture, but in the presence of primers CCGCCAAGCTTACTAGTTGCAGTAG and ACACC GAC AAGACCCGTCGTGAAGC (primers 2 and 3, FIG. 3). The synthesized fragments A and B were purified electrophoretically in a 3% agarose gel, transferred to pieces of a NA-45 DEAE membrane (Schleicher & Schuhle), and eluted in 1.5 ml centrifuge microtubes 200 μl of buffer containing 1.5 M Nad, 10 mM EDTA for 40 min at 65 ° C. E. coli tRNA was added to the buffer to a final concentration of 100 μg / ml, and the synthesized fragments were precipitated with 2.5 volumes of 96% ethanol. The precipitate was collected by centrifugation on an Eppendorf microcentrifuge at maximum speed for 15 minutes, the supernatant was discarded, the precipitates were washed with 1 ml of cold 70% ethanol, dried at room temperature and dissolved in 50 μl of deionized water. The necessary fragment C is assembled (Fig. 3) by PCR 2 in 25 μl of the above reaction mixture, however, in contrast to it, containing 1 μl of purified overlapping fragments A and B as a matrix, as well as primers 1 and 2 (Fig. 3) , sequences see above).

Пример 2. Подготовка экспрессирующего вектора для клонирования синтезированного фрагмента С.Example 2. Preparation of an expression vector for cloning a synthesized fragment C.

3 мкг плазмиды pPINS07 инкубируют с эндонуклеазами рестрикции HindIII и BamHI, как описано выше, и образовавшийся большой фрагмент векторной ДНК, взятый для получения экспрессирующей плазмиды, электрофоретически отделяют от малого фрагмента с использованием легкоплавкой агарозы (1,5%) после чего электрофоретически его переносят в лунку, заполненную легкоплавкой агарозой, откуда выделяют фенольным методом [Maniatis Т., Fritsch E.F., Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press]. Перемещение фрагмента в агарозном геле контролируют в УФ-свете при 366 нм. После перехода требуемого фрагмента ДНК в легкоплавкую агарозу ее переносят в пробирку «Эппендорф» на 1,5 мл, содержащую равный объем ТЕ-буфера (10 mM Трис-HCl (рН 8,0), 1 mM ЭДТА), плавят в течение 5-10 мин при температуре 65°С, добавляют равный объем нейтрализованного фенола, перемешивают на вортексе и центрифугируют в течение 7 мин при 14000g. Супернатант переносят в чистую пробирку, содержащую 0,1 объема (от вносимого объема супернатанта) 4М LiCl, выдерживают 2 мин во льду, после чего центрифугируют в течение 3 мин. Векторную ДНК осаждают из верхней фазы 96% этанолом с тРНК в качестве носителя, промывают 70% спиртом и растворяют в 20 мкл деионизованной воды.3 μg of the plasmid pPINS07 is incubated with the restriction endonucleases HindIII and BamHI, as described above, and the resulting large fragment of vector DNA, taken to obtain an expression plasmid, is electrophoretically separated from the small fragment using low-melting agarose (1.5%) and then transferred to electrophoresis in a well filled with low-melting agarose, from which it is isolated by the phenolic method [Maniatis T., Fritsch EF, Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press]. The movement of the fragment in an agarose gel is controlled in UV light at 366 nm. After the desired DNA fragment is transferred to low-melting agarose, it is transferred to an 1.5 ml Eppendorf tube containing an equal volume of TE buffer (10 mM Tris-HCl (pH 8.0), 1 mM EDTA), melted for 5– 10 min at a temperature of 65 ° C, add an equal volume of neutralized phenol, mix on a vortex and centrifuged for 7 min at 14000g. The supernatant is transferred to a clean tube containing 0.1 volumes (of the added volume of the supernatant) 4M LiCl, incubated for 2 minutes in ice, and then centrifuged for 3 minutes. Vector DNA is precipitated from the upper phase with 96% ethanol with tRNA as a carrier, washed with 70% alcohol and dissolved in 20 μl of deionized water.

Пример 3. Получение плазмиды pAS-2, экспрессирующей гены гибридного проинсулина Aspart, и штамма-продуцента гибридного белка, содержащего последовательность проинсулина Aspart.Example 3. Obtaining a plasmid pAS-2 expressing the Aspart hybrid proinsulin genes and a producer strain of the hybrid protein containing the Aspart proinsulin sequence.

10 мкг большого фрагмента плазмиды pPINS07, содержащего липкие концы HindIII/BamHI, лигируют с 50 мкг очищенного С-фрагмента ДНК (фиг.3) с теми же липкими концами [Maniatis Т., Fritsch E.F., Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press]. Продукты реакции осаждают и промывают этиловым спиртом, как описано выше, и растворяют в 10 мкл воды; 5 мкл продуктов лигирования используют для трансформации компетентных клеток Е. coli BL21 методом электропорации в стандартных условиях. Суспензию трансформированных клеток (200 мкл) высевают на LB-агар, содержащий ампициллин (100 мкг/мл) в качестве селектирующего агента. При анализе плазмиды pAS-2 среди выросших колоний бактерий с помощью ПЦР в присутствии праймеров 1 и 2 (фиг.3) (последовательности см. выше) отбирают клоны, содержащие вставку клонируемого фрагмента С. Для этого образовавшиеся продукты ПЦР инкубируют с эндонуклеазой рестрикции MboII (Fermentas, Латвия) в условиях, рекомендуемых фирмой-производителем, и образовавшиеся фрагменты ДНК разделяют электрофорезом в 6% полиакриламидном геле. При наличии в анализируемой плазмидной ДНК мутации Aspart после рестрикции образуется только три фрагмента ДНК длиной 158, 67 и 51 п.о., так как один из трех сайтов рестрикции (центральный, фиг.3) содержащихся в этой части исходной плазмиды pPINS07, элиминируется под действием введенной мутации. Из клонов, содержащих требуемую мутацию, выделяют плазмидную ДНК стандартным фенольным методом [Maniatis Т., Fritsch E.F., Sambrook J. // Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press] и последовательность нуклеотидов гена проинсулина Aspart определяют методом Сэнгера с использованием набора реактивов для секвенирования ThermoSequenase Cycle Sequencing Kit фирмы Amersham BioSciences (США). Электрофоретическое разделение продуктов секвенирования проводят с помощью автоматического секвенатора ALF Express II фирмы Amersham BioSciences (США). Строение плазмиды pAS-2 представлено на фиг.4.10 μg of a large fragment of plasmid pPINS07 containing the sticky ends of HindIII / BamHI is ligated with 50 μg of purified C-DNA fragment (Fig. 3) with the same sticky ends [Maniatis T., Fritsch EF, Sambrook J. Molecular Cloning: a Laboratory Manual 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press]. The reaction products are precipitated and washed with ethyl alcohol, as described above, and dissolved in 10 μl of water; 5 μl of ligation products are used to transform competent E. coli BL21 cells by electroporation under standard conditions. A suspension of transformed cells (200 μl) was plated on LB agar containing ampicillin (100 μg / ml) as a selection agent. When analyzing the plasmid pAS-2 among the grown bacterial colonies by PCR in the presence of primers 1 and 2 (Fig. 3) (sequence see above), clones containing an insert of the cloned fragment C are selected. For this, the resulting PCR products are incubated with the restriction endonuclease MboII ( Fermentas, Latvia) under the conditions recommended by the manufacturer, and the resulting DNA fragments are separated by electrophoresis in 6% polyacrylamide gel. In the presence of the Aspart mutation in the analyzed plasmid DNA after restriction, only three DNA fragments 158, 67 and 51 bp long are formed, since one of the three restriction sites (central, Fig. 3) contained in this part of the original plasmid pPINS07 is eliminated under the effect of the introduced mutation. Plasmid DNA was isolated from clones containing the desired mutation using the standard phenolic method [Maniatis T., Fritsch EF, Sambrook J. // Molecular Cloning: a Laboratory Manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboratory Press] and the Aspart proinsulin gene nucleotide sequence was determined by the Sanger method using a set of reagents for sequencing ThermoSequenase Cycle Sequencing Kit company Amersham BioSciences (USA). Electrophoretic separation of sequencing products is carried out using an ALF Express II automatic sequencer from Amersham BioSciences (USA). The structure of plasmid pAS-2 is presented in figure 4.

Пример 4. Определение продуктивности штамма-продуцента гибридного белка, содержащего аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека.Example 4. The determination of the productivity of the producer strain of a hybrid protein containing the amino acid sequence of human Aspart proinsulin.

В 20 мл жидкой среды LB, содержащей 100 мкг/мл ампициллина, вносят индивидуальную колонию клеток Е. coli BAS2 и выращивают при 37°С на качалке при 180 об/мин в течение 4 ч до мутности 0,8. Затем добавляют индуктор ИПТГ до конечной концентрации 0,5 мМ и продолжают инкубацию в тех же условиях в течение 6 ч. Отбирают пробу 2 мл и центрифугируют 5 мин при 6000 об/мин, после чего клетки суспендируют в 200 мкл буфера, содержащего 125 мМ Трис-HCl, рН 6,8, 20% глицерина, 3% додецилсульфата натрия, 3% меркаптоэтанола и 0,01% бромфенолового синего, нагревают 10 мин на кипящей водяной бане. Отбирают аликвоты объемом 2,5, 5, 7,5, 10 и 15 мкл и анализируют электрофорезом в 13%-ном полиакриламидном геле, содержащем 0,1% додецилсульфат натрия. Гель окрашивают Кумасси R250 и сканируют на лазерном денситометре Ultrascan XL. По данным сканирования содержание соответствующего гибридного белка составляет не менее 25% суммарного клеточного белка бактериальных клеток анализируемого штамма-продуцента.An individual colony of E. coli BAS2 cells is introduced into 20 ml of LB liquid medium containing 100 μg / ml ampicillin and grown at 37 ° C on a shaker at 180 rpm for 4 hours to a turbidity of 0.8. Then, an IPTG inducer was added to a final concentration of 0.5 mM and incubation was continued under the same conditions for 6 h. A 2 ml sample was taken and centrifuged for 5 min at 6000 rpm, after which the cells were suspended in 200 μl of buffer containing 125 mM Tris -HCl, pH 6.8, 20% glycerol, 3% sodium dodecyl sulfate, 3% mercaptoethanol and 0.01% bromophenol blue, heated for 10 min in a boiling water bath. Aliquots of 2.5, 5, 7.5, 10 and 15 μl were selected and analyzed by electrophoresis on a 13% polyacrylamide gel containing 0.1% sodium dodecyl sulfate. The gel is stained with Coomassie R250 and scanned on an Ultrascan XL laser densitometer. According to the scan, the content of the corresponding hybrid protein is at least 25% of the total cellular protein of the bacterial cells of the analyzed producer strain.

Claims (2)

1. Рекомбинантная плазмидная ДНК pAS-2, обеспечивающая в клетках Е. coli биосинтез гибридного белка, содержащего аминокислотную последовательность проинсулина Aspart человека, в котором последовательность домена В стафилококкового белка A Staphylococcus aureus соединена через пептидный линкер His6GlySerArg с аминокислотной последовательностью проинсулина Aspart человека с молекулярной массой 3,3 МДа (5051 п.о.), содержащая HindIII/BamHI-фрагмент плазмиды pPINS07, включающий гибридный tac-промотор, ген β-лактамазы (bla), область начала репликации (ori), терминатор транскрипции рибосомного оперона Е. coli, последовательность нуклеотидов, кодирующую аминокислотную последовательность домена В белка A S. aureus, соединенную с последовательностью нуклеотидов, кодирующей пептид His6GlySerArg, и HindIII/BamHI-фрагмент (271 п.о.), кодирующий проинсулин Aspart; уникальные сайты рестрикции со следующими координатами: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, Hindlll - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792, и сайт рестрикции PstI с координатами 342 и 417.1. Recombinant plasmid DNA pAS-2, which ensures the biosynthesis of a hybrid protein containing the amino acid sequence of human Aspart proinsulin in E. coli cells, in which the staphylococcal protein A domain of Staphylococcus aureus is connected via the His 6 GlySerArg peptide linker to the amino acid sequence of human Aspart proinsulin molecular weight 3.3 MDa (5051 bp) containing the HindIII / BamHI fragment of plasmid pPINS07, including the hybrid tac promoter, β-lactamase gene (bla), the region of origin of replication (ori), ribo transcription terminator E. coli somal operon, a nucleotide sequence encoding the amino acid sequence of domain A of S. aureus protein A linked to a nucleotide sequence encoding His 6 GlySerArg peptide, and a HindIII / BamHI fragment (271 bp) encoding Aspart proinsulin; unique restriction sites with the following coordinates: EcoRI - 1, NcoI - 217, BamHI - 221, Hindlll - 492, SalGI - 4513, ClaI - 4792, and the PstI restriction site with coordinates 342 and 417. 2. Штамм бактерий Escherichia coli BAS2 - продуцент гибридного белка, в котором последовательность домена В стафилококкового белка А соединена через пептидный линкер His6GlySerArg с аминокислотной последовательностью проинсулина Aspart, полученный путем трансформирования клеток штамма бактерий Escherichia coli BL21 рекомбинантной плазмидной ДНК pAS-2 по п.1.2. The bacterial strain Escherichia coli BAS2 is a hybrid protein producer in which the staphylococcal protein A domain B sequence is linked via the His 6 GlySerArg peptide linker to the Aspart proinsulin amino acid sequence obtained by transforming Escherichia coli BL21 bacterial strain cells of recombinant plasmid DNA pAS-2 according to claim .one.
RU2006140999/13A 2006-11-21 2006-11-21 RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER RU2337964C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006140999/13A RU2337964C2 (en) 2006-11-21 2006-11-21 RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006140999/13A RU2337964C2 (en) 2006-11-21 2006-11-21 RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006140999A RU2006140999A (en) 2008-05-27
RU2337964C2 true RU2337964C2 (en) 2008-11-10

Family

ID=39586244

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006140999/13A RU2337964C2 (en) 2006-11-21 2006-11-21 RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2337964C2 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2514578C1 (en) * 2013-04-29 2014-04-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоКлонТек" RECOMBINANT PLASMID DNA pHIASP03, ENCODING HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart, CELL Escherichia coli TRANSFORMED BY RECOMBINANT PLASMID DNA pHIAsp03, AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart
RU2729353C1 (en) * 2019-05-24 2020-08-06 Закрытое акционерное общество "ФАРМ-ХОЛДИНГ" Recombinant plasmid dna pf646 coding hybrid polypeptide containing proinsulin aspart, and strain of bacteria escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing proinsulin aspart

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0288451B1 (en) * 1987-04-23 1994-08-10 Monsanto Company Secretion of insulin-like growth factor 1 in E. coli
RU2144957C1 (en) * 1999-02-26 2000-01-27 Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН Recombinant plasmid dna ppins07 encoding fused polypeptide containing human proinsulin and strain of bacterium escherichia coli - producer of fused polypeptide containing human proinsulin
RU2235776C1 (en) * 2003-03-17 2004-09-10 Институт биоорганической химии им. академиков М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН Recombinant plasmid dna plp-3-1 encoding human polypeptide of proinsulin lyspro and strain of bacterium escherichia coli plp-3-1/tg-1 as producer of recombinant proinsulin lyspro

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
EP0288451B1 (en) * 1987-04-23 1994-08-10 Monsanto Company Secretion of insulin-like growth factor 1 in E. coli
RU2144957C1 (en) * 1999-02-26 2000-01-27 Институт биоорганической химии им.М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН Recombinant plasmid dna ppins07 encoding fused polypeptide containing human proinsulin and strain of bacterium escherichia coli - producer of fused polypeptide containing human proinsulin
RU2235776C1 (en) * 2003-03-17 2004-09-10 Институт биоорганической химии им. академиков М.М.Шемякина и Ю.А.Овчинникова РАН Recombinant plasmid dna plp-3-1 encoding human polypeptide of proinsulin lyspro and strain of bacterium escherichia coli plp-3-1/tg-1 as producer of recombinant proinsulin lyspro

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Ann Pharmacother. 2000 Dec; 34(12):1423-31. TOM STRACHAN, ANDREW P. READ. Human Molecular Genetics 2. Second edition. BIOS Scientific Publishers Ltd, 1999. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2514578C1 (en) * 2013-04-29 2014-04-27 Общество с ограниченной ответственностью "БиоКлонТек" RECOMBINANT PLASMID DNA pHIASP03, ENCODING HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart, CELL Escherichia coli TRANSFORMED BY RECOMBINANT PLASMID DNA pHIAsp03, AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart
RU2729353C1 (en) * 2019-05-24 2020-08-06 Закрытое акционерное общество "ФАРМ-ХОЛДИНГ" Recombinant plasmid dna pf646 coding hybrid polypeptide containing proinsulin aspart, and strain of bacteria escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing proinsulin aspart

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006140999A (en) 2008-05-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP7252280B2 (en) Novel insulin analogue and use thereof
KR940000756B1 (en) Insulin analogues and process for their preparation
KR102698929B1 (en) Insulin analogs with reduced affinity to insulin receptor and use thereof
SK171492A3 (en) Polypeptide, method of its preparation its use and pharmaceutical agent
JPH01501283A (en) Novel type of colony stimulating factor-1
JPH01500483A (en) Expression of G-CSF and its muteins
US6001604A (en) Refolding of proinsulins without addition of reducing agents
RU2144957C1 (en) Recombinant plasmid dna ppins07 encoding fused polypeptide containing human proinsulin and strain of bacterium escherichia coli - producer of fused polypeptide containing human proinsulin
RU2337964C2 (en) RECOMBINANT PLASMID DNA pAS-2 ENCODING HUMAN BEING PROINSULIN POLYPEPTIDE Aspart AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli BAS2-RECOMBINANT PROINSULIN Aspart PRODUCER
JP2000504561A (en) Polypeptides having IL-16 activity, their production and use
RU2235776C1 (en) Recombinant plasmid dna plp-3-1 encoding human polypeptide of proinsulin lyspro and strain of bacterium escherichia coli plp-3-1/tg-1 as producer of recombinant proinsulin lyspro
CN112851791A (en) Novel FGF19 analogue and application thereof
RU2325440C1 (en) RECOMBINANT PLASMID DNA pGG-1 CODING POLYPEPTIDE OF HUMAN PROINSULIN GLARGIN AND STRAIN OF BACTERIA ESCHERICHIA COLI BGG18-PRODUCER OF RECOMBINANT PROINSULIN GLARGIN
RU2729381C1 (en) Recombinant plasmid dna pf644 coding hybrid polypeptide containing proinsulin glargine, and bacterial strain escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing proinsulin glargine
EP3500284A1 (en) Bovine fibroblast growth factor 21 and ketosis in dairy cattle
JPH04502615A (en) Recombinant fish hormone protein
US7785830B2 (en) Expression vectors, transformed host cells and fermentation process for the production of recombinant polypeptides
RU2729353C1 (en) Recombinant plasmid dna pf646 coding hybrid polypeptide containing proinsulin aspart, and strain of bacteria escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing proinsulin aspart
RU2376368C2 (en) STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli JM109/pHINS21 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN AND METHOD FOR PRODUCTION OF HUMAN PROINSULIN
JPH06306100A (en) Fused protein for preparing vip analog, production of vip analog, gene recombination plasmid therefor and transformant microorganism
RU2729737C1 (en) Recombinant plasmid dna of pf882, which codes hybrid polypeptide containing b30-desthreonine-insulin, and strain of bacteria escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing 30-desthreonine-insulin
RU2514578C1 (en) RECOMBINANT PLASMID DNA pHIASP03, ENCODING HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart, CELL Escherichia coli TRANSFORMED BY RECOMBINANT PLASMID DNA pHIAsp03, AND STRAIN OF BACTERIA Escherichia coli JM109/pHIAsp03 - PRODUCER OF HYBRID PROTEIN WITH HUMAN PROINSULIN Aspart
KR102631925B1 (en) Development of novel fgf21 variants, production techniques and uses thereof
RU2729357C1 (en) Recombinant plasmid dna pf267 coding hybrid polypeptide containing proinsulin lisprum, and a strain of bacteria escherichia coli - producer of hybrid polypeptide containing proinsulin lispro
RU2143493C1 (en) Recombinant plasmid dna ppins16 encoding fused polypeptide containing human proinsulin, recombinant plasmid dna ppins25 encoding fused polypeptide containing human proinsulin and strain of bacterium escherichia coli - producer of fused polypeptide containing human proinsulin

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE

Effective date: 20140908