RU2231790C2 - Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction - Google Patents
Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction Download PDFInfo
- Publication number
- RU2231790C2 RU2231790C2 RU2002125199/15A RU2002125199A RU2231790C2 RU 2231790 C2 RU2231790 C2 RU 2231790C2 RU 2002125199/15 A RU2002125199/15 A RU 2002125199/15A RU 2002125199 A RU2002125199 A RU 2002125199A RU 2231790 C2 RU2231790 C2 RU 2231790C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- blood
- dna
- chain reaction
- polymerase chain
- precipitate
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины, в частности к способу обработки цельной крови для выявления ДНК M.tuberculosis (МВТ) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).The invention relates to medicine, in particular to a method for treating whole blood to detect M. tuberculosis DNA (MBT) by polymerase chain reaction (PCR).
Рост заболеваемости туберкулезом и прямая зависимость эффективности лечения больных от сроков его выявления делают задачу ранней и специфической диагностики этого заболевания одной из наиболее актуальных проблем современной фтизиатрии.The increase in the incidence of tuberculosis and the direct dependence of the effectiveness of treatment of patients on the timing of its detection make the task of early and specific diagnosis of this disease one of the most pressing problems of modern phthisiology.
В последние годы для этих целей наряду с общепринятыми микробиологическими методами во фтизиатрии широкое применение нашел современный молекулярно-генетический метод - полимеразная цепная реакция, который зарекомендовал себя как наиболее быстрый, чувствительный и специфический тест выявления ДНК МБТ. Метод основан на многократном копировании определенного фрагмента ДНК МБТ с помощью специально подобранных праймеров и фермента ДНК-полимеразы. Материалом для выявления ДНК МБТ методом ПЦР являются различные биологические секреты, получаемые от больных с легочной и внелегочной патологией.In recent years, for these purposes, along with generally accepted microbiological methods in phthisiology, the modern molecular genetic method, the polymerase chain reaction, has been widely used, which has established itself as the fastest, most sensitive and specific test for detecting MBT DNA. The method is based on the multiple copying of a specific MBT DNA fragment using specially selected primers and the DNA polymerase enzyme. The material for detecting MBT DNA by PCR is various biological secrets obtained from patients with pulmonary and extrapulmonary pathology.
Особый интерес для выявления ДНК МБТ представляет периферическая кровь, как наиболее реальный секрет для скрининга населения на предмет массового выявления случаев заболевания туберкулезом. Важнейшим фактором, влияющим на выявляемость ДНК МБТ с помощью метода ПЦР в крови, является метод обработки первичного материала, особенно - освобождение от гемоглобина. Для этой цели используют различные варианты пробоподготовки материала для деконтаминации, освобождения от эритроцитов и гемоглобина, а также применяют различные реагенты для дальнейшего разрушения микробной клетки.Of particular interest for the detection of MBT DNA is peripheral blood, as the most real secret for screening the population for the mass detection of cases of tuberculosis. The most important factor affecting the detection of MBT DNA using the PCR method in the blood is the method of processing the primary material, especially the release from hemoglobin. For this purpose, use various options for sample preparation of material for decontamination, release from red blood cells and hemoglobin, and also use various reagents for further destruction of the microbial cell.
Таким образом, аналогом данного изобретения является способ выявления ДНК МБТ методом ПЦР в крови, полученной от больных туберкулезом с внелегочной и легочной локализацией (Fobes В., Hicks К. // J. Clin. Microbiol. - 1993. - v.31. - р.1688-1691; Folgueira L., Delgado R., Palenque E. et al. // Neurology. - 1994. - v.44. p.1336-1338; Gamboa F., Fernandez G., Paolilla E. et al.// J. Clin. Microbiol. - 1998. - v.36. - p.684-689).Thus, an analogue of this invention is a method for detecting MBT DNA by PCR in blood obtained from tuberculosis patients with extrapulmonary and pulmonary localization (Fobes B., Hicks K. // J. Clin. Microbiol. - 1993. - v.31. - p.1688-1691; Folgueira L., Delgado R., Palenque E. et al. // Neurology. - 1994.- v.44. p.1336-1338; Gamboa F., Fernandez G., Paolilla E. et al.// J. Clin. Microbiol. - 1998.- v. 36. - p. 684-689).
Выявляемость ДНК МБТ в периферической крови в этих исследованиях варьировала в достаточно широких пределах от 50% до 85%, в зависимости от способа обработки материала, формы туберкулеза и длительности лечения.The detection of MBT DNA in peripheral blood in these studies varied within a fairly wide range from 50% to 85%, depending on the method of processing the material, the form of tuberculosis and the duration of treatment.
Прототипом данного изобретения является совокупность способов обработки крови и освобождения осадка от гемоглобина, которые можно применять для дальнейшего выявления ДНК МБТ различными ПЦР тест-системами.The prototype of this invention is a set of methods for processing blood and releasing the precipitate from hemoglobin, which can be used for further detection of MBT DNA by various PCR test systems.
1. Как и для любого клинического материала, для крови существуют различные варианты обработки с последующим выделением ДНК МБТ. Для этих целей используются: SDS, дистиллированная Н2О, NaOH/NaLC, NH4Cl, в различных соотношениях с клиническим образцом, на разных этапах обработки образца. Каждый из методов обработки крови имеет как свои достоинства, так и недостатки.1. As with any clinical material, there are various treatment options for blood with subsequent isolation of MBT DNA. For these purposes, the following are used: SDS, distilled H 2 O, NaOH / NaLC, NH 4 Cl, in various proportions with the clinical sample, at different stages of sample processing. Each of the methods of blood processing has both its advantages and disadvantages.
В большинстве работ для выделения ДНК МБТ используют лимфоцитарную фракцию (которую выделяют с помощью фикола), плазма при этом не анализируется, что может приводить к определенной потере микробных клеток, которые могут находиться в крови во внеклеточной среде. Нами было показано, что в случаях, когда у одного и того же больного выделяли ДНК из лимфоцитарной фракции и из цельной крови, выявление МБТ в цельной крови происходит в большем проценте случаев, чем по отдельности: в лимфомоноцитарной фракции и плазме крови.In most studies, the lymphocyte fraction (which is isolated using ficol) is used to isolate the MBT DNA, the plasma is not analyzed, which can lead to a certain loss of microbial cells that may be in the blood in the extracellular medium. We have shown that in cases where DNA was extracted from the lymphocyte fraction and from whole blood in the same patient, the detection of MBT in whole blood occurs in a larger percentage of cases than individually: in the lymphomonocytic fraction and blood plasma.
2. Следующим недостатком методов является забор большого количества венозной крови, до 20 мл (Aguado J.// Lancet 1996. - v.347. - р.1836-1837; Folgueira L., Delgado R., Palenque E. et al.// J. Clinical Microbiology. - 1996. - p.512-515; Gamboa F., Manterola J., Lonca J. // Int. J. Tubercle and Lung Disease.- 1997. - v.1. - p.542-555; Stauffer F., Haber H., Rilger A. et al.// J. Clin. Microbiol.- 1998. - v.36. - p.614-617; Херрингтон С., Макги Д.// Молекулярная клиническая диагностика. Методы. М.: Мир. 1999. с.305-306.)2. The next drawback of the methods is the collection of a large amount of venous blood, up to 20 ml (Aguado J. // Lancet 1996. - v.347. - p. 1836-1837; Folgueira L., Delgado R., Palenque E. et al. // J. Clinical Microbiology. - 1996.- p. 512-515; Gamboa F., Manterola J., Lonca J. // Int. J. Tubercle and Lung Disease. - 1997. - v. 1. - p. 542-555; Stauffer F., Haber H., Rilger A. et al. // J. Clin. Microbiol.- 1998. - v. 36. - p. 614-617; Herrington S., McGee D. // Molecular Clinical Diagnostics. Methods. M.: Mir. 1999. p.305-306.)
Во всех этих работах самые маленькие объемы крови, используемые для выявления ДНК МБТ, составляют 5 мл. Надо отметить, что чем больше объем крови, тем сложнее процесс освобождения от гемоглобина. В наших исследованиях было показано, что в случаях, когда больной является бацилловыделителем, 500-700 мкл крови необходимо и достаточно для выявления ДНК.In all of these studies, the smallest volumes of blood used to detect MBT DNA are 5 ml. It should be noted that the larger the volume of blood, the more difficult the process of release from hemoglobin. In our studies, it was shown that in cases where the patient is a bacillus, 500-700 μl of blood is necessary and sufficient to detect DNA.
3. В качестве систем, лизирующих эритроциты, нами были исследованы три вида реагентов: NH4Cl, NaOH/NaLC, Н2О с добавлением их в образец с кровью в различных концентрациях. Наилучшие показатели (в плане лизирования эритроцитов) были получены со следующими реагентами: 0,085% NH4Cl, (v:v кровь-реагент 1:10 и 2%NaOH/0,125%NaLC 5:1, соответственно). Разрушенные эритроциты с гемоглобином в осадке после обработки данными реагентами присутствуют в меньшей степени, чем при использовании других вариантов обработки. Условия соотношения объемов образца и реагента подобраны впервые, и аналогов в литературе нет. В результате, метод лизирования эритроцитов крови занимает минимальное время (30-40 мин) по сравнению с методами, приводимыми в литературе. К крови добавляется реагент в нужной концентрации, выдерживается 20 мин при комнатной температуре и центрифугируется 10 мин при 5000 об/мин (большее количество оборотов при центрифугировании усложняет процедуру отмывки от гемоглобина).3. As systems that lyse red blood cells, we studied three types of reagents: NH 4 Cl, NaOH / NaLC, Н 2 О with their addition to the sample with blood in various concentrations. The best indicators (in terms of red blood cell lysing) were obtained with the following reagents: 0.085% NH 4 Cl, (v: v blood reagent 1:10 and 2% NaOH / 0.125% NaLC 5: 1, respectively). Destroyed red blood cells with hemoglobin in the sediment after treatment with these reagents are less present than when using other treatment options. The conditions for the ratio of sample and reagent volumes were selected for the first time, and there are no analogues in the literature. As a result, the method of lysing blood erythrocytes takes the minimum time (30-40 min) compared with the methods given in the literature. The reagent is added to the blood at the desired concentration, kept for 20 minutes at room temperature and centrifuged for 10 minutes at 5000 rpm (a higher number of turns during centrifugation complicates the washing procedure from hemoglobin).
4. В качестве систем, отмывающих от гемоглобина, были исследованы различные концентрации SDS, ЭДТА, тритона в 10 мМ Трис НСl и 1 мМ ЭДТА, (рН 7,6) и фосфатно-солевой буфер. Наилучшие результаты отмывания осадка от гемоглобина были получены при использовании 1% тритона в буфере 10 мМ Трис HCl и 1 мМ ЭДТА (рН 7,6). Как правило, двукратное отмывание осадка бывает достаточным для получения чистого осадка клеток.4. As systems washing off hemoglobin, various concentrations of SDS, EDTA, triton in 10 mM Tris Hcl and 1 mM EDTA (pH 7.6) and phosphate-buffered saline were studied. The best results of washing the precipitate from hemoglobin were obtained using 1% Triton in 10 mM Tris HCl buffer and 1 mM EDTA (pH 7.6). As a rule, double washing of the precipitate is sufficient to obtain a clean cell sediment.
Дальнейшее прогревание осадка в этой же буферной системе (рН 8,0) в течение 10 мин при 95°С с последующим охлаждением, является достаточным для разрушения клеток и выделения ДНК. Полученный раствор ДНК можно использовать для ПЦР реакции.Further heating of the precipitate in the same buffer system (pH 8.0) for 10 min at 95 ° C, followed by cooling, is sufficient for cell destruction and DNA isolation. The resulting DNA solution can be used for PCR reaction.
Таким образом, предлагаемая система обработки крови, включающая стадии разрушения эритроцитов, отмывания осадка от гемоглобина и выделения ДНК в совокупности вышеупомянутых условий, предложена впервые, является быстрой (обработка в течение часа) и эффективной для получения ДНК из МБТ.Thus, the proposed blood processing system, which includes the stages of the destruction of red blood cells, washing the precipitate from hemoglobin and DNA extraction in combination of the above conditions, was proposed for the first time, it is fast (processing within an hour) and effective for obtaining DNA from the office.
Отличия предлагаемого нами способа от способов, применяемых другими исследователями, состоят в следующем. Используется меньший объем цельной венозной крови (0,5 мл), что вполне достаточно для детекции ДНК МБТ методом ПЦР. При работе с таким объемом крови упрощается и сокращается время процедуры отмывки от гемоглобина. Для лизиса эритроцитов используются общепринятые реагенты для первичной обработки респираторных и некоторых не респираторных образцов. От гемоглобина освобождаются с помощью реагента, который и в дальнейшем используют для выделения ДНК МБТ и который не препятствует дальнейшему проведению реакции амплификации. В результате, за короткое время, используя один и тот же набор реагентов, в одной пробирке можно провести пробоподготовку образцов крови с последующим выделением ДНК МБТ.The differences of our proposed method from the methods used by other researchers are as follows. A smaller volume of whole venous blood (0.5 ml) is used, which is quite enough to detect MBT DNA by PCR. When working with such a volume of blood, the hemoglobin washing procedure is simplified and reduced. For the erythrocyte lysis, conventional reagents are used for the initial treatment of respiratory and some non-respiratory samples. They are freed from hemoglobin with the help of a reagent, which is further used to isolate MBT DNA and which does not interfere with the further amplification reaction. As a result, in a short time, using the same set of reagents, in one test tube it is possible to conduct sample preparation of blood samples with subsequent isolation of MBT DNA.
С целью определения выявляемости ДНК МБТ в образцах крови методом ПЦР, обработанных с применением данных детергентов, была проведена серия опытов. Первоначально, образцы крови с антикоагулянтом, полученные от больных туберкулезом и здоровых доноров, разливали по пробиркам в количестве 0,5 мл. К ним добавляли культуру M.tuberculosis Н37 RV, которую разводили по стандарту мутности Макфарланда с конечной концентрацией 150×106 кл/мл. После дальнейшего разведения пробы с кровью содержали M.tuberculosis в следующих концентрациях: 150-100; 75-50 и 10-8 клеток в пробе. Далее кровь обрабатывали согласно предлагаемому способу: к 500 мкл крови добавляли 100 мкл NAOH/NaLC используемой концентрации, выдерживали 20 мин при комнатной температуре, цетрифугировали при 5000 об/мин 10 мин, надосадочную жидкость отбрасывали. Затем осадок промывали дважды раствором 1% тритона в 10 мМ ТрисНСl и 1 мМ ЭДТА (рН 7,6), затем добавляли 20 мкл этого же буфера (рН 8,0) и прогревали 10 мин при 95°С. Далее ПЦР проводили с помощью собственной тест-системы “Нестед-ПЦР” (Патент №2163022 от 04.07.2001), хотя на этом этапе можно использовать и другие тест-системы.In order to determine the detectability of MBT DNA in blood samples by PCR, processed using these detergents, a series of experiments was carried out. Initially, blood samples with anticoagulant obtained from tuberculosis patients and healthy donors were poured into 0.5 ml tubes. To them was added a culture of M. tuberculosis H37 RV, which was bred according to the McFarland turbidity standard with a final concentration of 150 × 10 6 cells / ml. After further dilution, blood samples contained M. tuberculosis in the following concentrations: 150-100; 75-50 and 10-8 cells in the sample. Further, the blood was treated according to the proposed method: 100 μl of NAOH / NaLC of the used concentration was added to 500 μl of blood, kept for 20 min at room temperature, centrifuged at 5000 rpm for 10 min, and the supernatant was discarded. Then, the precipitate was washed twice with a solution of 1% Triton in 10 mM TrisHCl and 1 mM EDTA (pH 7.6), then 20 μl of the same buffer (pH 8.0) was added and heated for 10 min at 95 ° C. Further, PCR was performed using the Nested-PCR test system (Patent No. 2163022 dated 07/04/2001), although other test systems can also be used at this stage.
Метод пробоподготовки сохраняет высокую чувствительность, поскольку для анализа из образцов забирается 2 мкл, что по содержанию ДНК эквивалентно единичным клеткам МБТ.The sample preparation method remains highly sensitive, since 2 μl is taken from the samples for analysis, which is equivalent to single MBT cells in terms of DNA content.
Затем проводили исследования по выявлению ДНК МБТ в периферической крови, обработанной данными реагентами, на образцах, полученных от больных с разными формами туберкулеза и находящихся на лечении в МНПЦБТ. Были исследованы образцы крови от 42 больных. Двадцать девять из них находились в активной фазе заболевания (до одного месяца лечения), у 24 (82,7%) из которых была выделена ДНК МБТ из крови.Then, studies were carried out to identify MBT DNA in peripheral blood treated with these reagents on samples obtained from patients with various forms of tuberculosis and being treated in the MNSCT. Blood samples from 42 patients were examined. Twenty-nine of them were in the active phase of the disease (up to one month of treatment), in 24 (82.7%) of which the MBT DNA was isolated from the blood.
Таким образом, исследования показали высокую выявляемость ДНК МБТ в периферической крови методом ПНР у больных в активную фазу заболевания.Thus, studies have shown high detectability of MBT DNA in peripheral blood by the method of NDP in patients in the active phase of the disease.
Преимуществом предложенного метода, по сравнению с имеющимися в литературе, являются следующие позиции:The advantage of the proposed method, compared with those available in the literature, are the following positions:
1. Высокий процент выявляемости (свыше 82% у больных в активную фазу заболевания).1. A high percentage of detection (over 82% in patients in the active phase of the disease).
2. Быстрота и простота подготовки образца (1-1,2 часа и две смеси реагентов), все операции можно проводить в одной пробирке.2. The speed and simplicity of sample preparation (1-1.2 hours and two mixtures of reagents), all operations can be carried out in one test tube.
3. Специфичность, выявляются только микобактерии, поскольку при подготовке проб применяются реагенты, убивающие туберкулезную микрофлору.3. Specificity, only mycobacteria are detected, since in the preparation of samples reagents are used that kill tuberculous microflora.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2002125199/15A RU2231790C2 (en) | 2002-09-23 | 2002-09-23 | Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2002125199/15A RU2231790C2 (en) | 2002-09-23 | 2002-09-23 | Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2002125199A RU2002125199A (en) | 2004-03-27 |
| RU2231790C2 true RU2231790C2 (en) | 2004-06-27 |
Family
ID=32846121
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2002125199/15A RU2231790C2 (en) | 2002-09-23 | 2002-09-23 | Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2231790C2 (en) |
Families Citing this family (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| CN119410628A (en) * | 2024-12-09 | 2025-02-11 | 武汉大学中南医院 | Enhanced red blood cell lysis solution, red blood cell DNA extraction kit and method |
Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2098822C1 (en) * | 1994-07-12 | 1997-12-10 | Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза РАМН | Method for diagnosing tuberculosis |
| RU2145977C1 (en) * | 1994-04-05 | 2000-02-27 | Интигрейтид Рисеч Текнолэджи эЛэЛСи | Method of preparing sample for determination of microorganisms (variants) and set for sample treatment for determination of microorganisms |
| RU2163022C1 (en) * | 1999-05-28 | 2001-02-10 | Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом | Method of diagnosing tuberculosis |
| RU2175015C1 (en) * | 2000-03-01 | 2001-10-20 | Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН | Method of assay of single base exchanges in mycobacterium dna, method of diagnosis of resistance of mycobacterium to rifampicin, biochip for realization of these methods |
-
2002
- 2002-09-23 RU RU2002125199/15A patent/RU2231790C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2145977C1 (en) * | 1994-04-05 | 2000-02-27 | Интигрейтид Рисеч Текнолэджи эЛэЛСи | Method of preparing sample for determination of microorganisms (variants) and set for sample treatment for determination of microorganisms |
| RU2098822C1 (en) * | 1994-07-12 | 1997-12-10 | Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза РАМН | Method for diagnosing tuberculosis |
| RU2163022C1 (en) * | 1999-05-28 | 2001-02-10 | Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом | Method of diagnosing tuberculosis |
| RU2175015C1 (en) * | 2000-03-01 | 2001-10-20 | Институт молекулярной биологии им. В.А. Энгельгардта РАН | Method of assay of single base exchanges in mycobacterium dna, method of diagnosis of resistance of mycobacterium to rifampicin, biochip for realization of these methods |
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| FOBES B., HICKS K., J. Clin. Microbiol, 1993, v.31, р.1688-1691. * |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2002125199A (en) | 2004-03-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN110541022B (en) | Mycobacterium tuberculosis complex detection kit based on CRISPR-Cas12a system | |
| JP5420256B2 (en) | Purification method and kit | |
| US8465966B2 (en) | Post protein hydrolysis removal of a potent ribonuclease inhibitor and the enzymatic capture of DNA | |
| JPH08501208A (en) | Nucleic acid production from blood | |
| CN112831580B (en) | A reaction system, kit and application for detecting Vibrio parahaemolyticus DNA | |
| JPWO2009060847A1 (en) | Preparation method and preparation kit for nucleic acid amplification sample | |
| CN107513575B (en) | A kind of pretreatment kit for detecting Brucella infection and its application | |
| CN109628644A (en) | A kind of primer sets, kit and application for African swine fever virus LAMP detection | |
| US20180016623A1 (en) | Compositions and methods for detecting nucleic acids in sputum | |
| CN101363056A (en) | High-flux microorganism identification method | |
| CN114041188A (en) | Method for detecting helicobacter pylori levels in fecal samples | |
| RU2231790C2 (en) | Method for treatment of whole blood for isolating tuberculosis mycobacterium dna by polymerase chain reaction | |
| CN110157823A (en) | Primed probe group, kit and its application of RAA Fluorometric assay Yersinia pestis | |
| CN118518873B (en) | Application of T cell subsets as diagnostic markers for Helicobacter pylori and diagnostic devices | |
| US7507553B2 (en) | Galleria mellonella derived composition for detecting peptidoglycan, a method for use thereof, and a diagnostic kit containing the same | |
| US20220396787A1 (en) | Method for enhanced direct detection of microbial antigens from biological fluids | |
| CN110272898A (en) | A kind of universal microbial pathogens lysate and its application | |
| Marucci | MECHANISM OF ACTION OF STAPHYLOCOCCAL ALPHA-HEMOLYSIN II: Analysis of the Kinetic Curve and Inhibition by Specific Antibody | |
| AU2022216838A1 (en) | Automatic phagogram | |
| Munir et al. | Diagnosis of tuberculosis: molecular versus conventional method | |
| Drummond et al. | Cryptogenic hepatitis patients have a higher Bartonella sp.-DNA detection in blood and skin samples than patients with non-viral hepatitis of known cause | |
| Weldon et al. | arboricola pv. corylina, the causal agent of bacterial blight | |
| RU2702240C1 (en) | Method and kit for pertussis and pertussislike diseases genodiagnosis | |
| CN111154898A (en) | Technical method for identifying human mycobacterium tuberculosis, bovine mycobacterium and bacillus calmette-guerin | |
| Kałużna et al. | Specific and sensitive detection tools for Xanthomonas arboricola pv. corylina, the causal agent of bacterial blight of hazelnut, developed with comparative genomics |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20040924 |