RU2222052C2 - Method for modeling solitary hepatic echinococcosis - Google Patents
Method for modeling solitary hepatic echinococcosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2222052C2 RU2222052C2 RU2001116730/14A RU2001116730A RU2222052C2 RU 2222052 C2 RU2222052 C2 RU 2222052C2 RU 2001116730/14 A RU2001116730/14 A RU 2001116730/14A RU 2001116730 A RU2001116730 A RU 2001116730A RU 2222052 C2 RU2222052 C2 RU 2222052C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- liver
- echinococcosis
- modeling
- echinococcal
- solitary
- Prior art date
Links
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 17
- 208000009366 Echinococcosis Diseases 0.000 title claims description 16
- 208000004751 Hepatic Echinococcosis Diseases 0.000 title 1
- 208000031513 cyst Diseases 0.000 claims abstract description 12
- 206010011732 Cyst Diseases 0.000 claims abstract description 11
- 241000700159 Rattus Species 0.000 claims abstract description 4
- 210000004185 liver Anatomy 0.000 claims description 23
- 206010014096 Echinococciasis Diseases 0.000 claims description 14
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 claims description 2
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 6
- 241000244160 Echinococcus Species 0.000 abstract description 5
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 230000002440 hepatic effect Effects 0.000 abstract 1
- 210000005161 hepatic lobe Anatomy 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 239000002775 capsule Substances 0.000 description 9
- RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N Diethyl ether Chemical compound CCOCC RTZKZFJDLAIYFH-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 6
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 description 6
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 4
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 4
- 238000010171 animal model Methods 0.000 description 4
- 229940079593 drug Drugs 0.000 description 4
- 238000002350 laparotomy Methods 0.000 description 4
- 210000005228 liver tissue Anatomy 0.000 description 4
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 3
- 229930182555 Penicillin Natural products 0.000 description 3
- JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N Penicillin G Chemical compound N([C@H]1[C@H]2SC([C@@H](N2C1=O)C(O)=O)(C)C)C(=O)CC1=CC=CC=C1 JGSARLDLIJGVTE-MBNYWOFBSA-N 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 229940053973 novocaine Drugs 0.000 description 3
- 244000045947 parasite Species 0.000 description 3
- 229940049954 penicillin Drugs 0.000 description 3
- MFDFERRIHVXMIY-UHFFFAOYSA-N procaine Chemical compound CCN(CC)CCOC(=O)C1=CC=C(N)C=C1 MFDFERRIHVXMIY-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 3
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 3
- 206010028851 Necrosis Diseases 0.000 description 2
- 210000000683 abdominal cavity Anatomy 0.000 description 2
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 2
- 238000006243 chemical reaction Methods 0.000 description 2
- 238000011161 development Methods 0.000 description 2
- 230000018109 developmental process Effects 0.000 description 2
- 239000012530 fluid Substances 0.000 description 2
- 238000010562 histological examination Methods 0.000 description 2
- 230000009545 invasion Effects 0.000 description 2
- 230000017074 necrotic cell death Effects 0.000 description 2
- 230000008506 pathogenesis Effects 0.000 description 2
- 230000035699 permeability Effects 0.000 description 2
- 238000012216 screening Methods 0.000 description 2
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 1
- 201000003808 Cystic echinococcosis Diseases 0.000 description 1
- YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N Ketamine Chemical compound C=1C=CC=C(Cl)C=1C1(NC)CCCCC1=O YQEZLKZALYSWHR-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 206010067125 Liver injury Diseases 0.000 description 1
- 241000283973 Oryctolagus cuniculus Species 0.000 description 1
- 241001494479 Pecora Species 0.000 description 1
- 241000942597 Scolex Species 0.000 description 1
- 208000027418 Wounds and injury Diseases 0.000 description 1
- 230000019552 anatomical structure morphogenesis Effects 0.000 description 1
- 239000003096 antiparasitic agent Substances 0.000 description 1
- 229940125687 antiparasitic agent Drugs 0.000 description 1
- 238000011888 autopsy Methods 0.000 description 1
- 244000309464 bull Species 0.000 description 1
- 239000002729 catgut Substances 0.000 description 1
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 1
- 239000003795 chemical substances by application Substances 0.000 description 1
- 210000002808 connective tissue Anatomy 0.000 description 1
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 235000013601 eggs Nutrition 0.000 description 1
- 210000001035 gastrointestinal tract Anatomy 0.000 description 1
- 239000003292 glue Substances 0.000 description 1
- 230000002439 hemostatic effect Effects 0.000 description 1
- 231100000753 hepatic injury Toxicity 0.000 description 1
- 230000001744 histochemical effect Effects 0.000 description 1
- 210000004276 hyalin Anatomy 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 208000015181 infectious disease Diseases 0.000 description 1
- 239000002054 inoculum Substances 0.000 description 1
- 230000001418 larval effect Effects 0.000 description 1
- 210000000265 leukocyte Anatomy 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 210000005229 liver cell Anatomy 0.000 description 1
- 208000010125 myocardial infarction Diseases 0.000 description 1
- 238000010899 nucleation Methods 0.000 description 1
- 239000002245 particle Substances 0.000 description 1
- 230000007170 pathology Effects 0.000 description 1
- 210000004303 peritoneum Anatomy 0.000 description 1
- 239000002504 physiological saline solution Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 238000011160 research Methods 0.000 description 1
- 238000004088 simulation Methods 0.000 description 1
- 238000010186 staining Methods 0.000 description 1
- 231100000331 toxic Toxicity 0.000 description 1
- 230000002588 toxic effect Effects 0.000 description 1
- 210000003934 vacuole Anatomy 0.000 description 1
Landscapes
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно хирургии, может быть использовано для изучения патогенеза, морфогенеза эхинококкоза и скрининга противоэхинококковых средств. The invention relates to medicine, namely surgery, can be used to study the pathogenesis, morphogenesis of echinococcosis and screening anti-echinococcal drugs.
По данным литературы существуют два варианта воспроизведения эхинококкоза у экспериментальных животных. Первичное заражение, идентичное естественному, производят путем введения яиц эхинококка в желудочно-кишечный тракт животных (Лукашенко Н.П. Альвеококкоз. М., 1975). Более распространен вариант вторичного воспроизведения эхинококкоза, заключающийся во введении зародышевых элементов внутрибрюшинно (Lubinsky G.A. - Canad J Zool - 1960, vol. 38 - p. 1177-1185) непосредственно в паренхиму печени или в сосуды, приносящие кровь к органу (Рузаков В.А., Павлов В.В., Коваленко Ф.П. Медицинская паразитология - 1987, 5 - с. 17-19; Коваленко Ф.П., Баллад Н.Е., Джабаров В. И. Способ моделирования лаврального альвеококкоза. А.С. 991485. СССР. Бюл. Открытия. Изобретения. 1983. 3, с. 2). According to the literature, there are two options for reproducing echinococcosis in experimental animals. Primary infection, identical to natural, is produced by introducing echinococcus eggs into the gastrointestinal tract of animals (Lukashenko NP Alveokokkoz. M., 1975). A more common variant of the secondary reproduction of echinococcosis is the introduction of germinal elements intraperitoneally (Lubinsky GA - Canad J Zool - 1960, vol. 38 - p. 1177-1185) directly into the liver parenchyma or into vessels that bring blood to the organ (Ruzakov V.A. ., Pavlov V.V., Kovalenko F.P. Medical parasitology - 1987, 5 - pp. 17-19; Kovalenko F.P., Ballad N.E., Dzhabarov V.I. Method for modeling laurel alveococcosis. A. S. 991485. USSR. Bull. Discoveries. Inventions. 1983. 3, p. 2).
Известен еще вариант моделирования эхинококкоза путем имплантации дочерних пузырей в формированную вокруг инородного тела фиброзную полость печени (Омаров М. М., в кн. Вопросы диагностики и хирургического лечения эхинококкоза. 1979, - с. 131-134; Омаров М.М. Дисс. к.м.н., Баку, 1987, с. 67-85). Способ заключается в следующем: экспериментальных животных (собак, овец) оперируют дважды. При первой операции в печень имплантируют надувной резиновый баллон, вокруг которого постепенно формируется фиброзная капсула. Через 40 дней при повторной операции баллон извлекается и в печени обнаруживается моделированная фиброзная полость, в которую опускают с соблюдением асептики соответствующего размера живой дочерний пузырь эхинококка. Для дальнейших исследований животных оперируют третий раз. There is also another option for modeling echinococcosis by implanting daughter blisters in the fibrous cavity of the liver formed around a foreign body (M. Omarov, in the book Diagnostic and surgical treatment of echinococcosis. 1979, p. 131-134; M. M. Omar Diss. Ph.D., Baku, 1987, p. 67-85). The method consists in the following: experimental animals (dogs, sheep) are operated twice. During the first operation, an inflatable rubber balloon is implanted in the liver, around which a fibrous capsule is gradually formed. After 40 days, after repeated surgery, the balloon is removed and a simulated fibrous cavity is found in the liver, into which the living daughter bladder echinococcus is lowered with aseptic compliance. For further research, animals are operated for the third time.
Вышеуказанные аналоги имеют следующие недостатки. The above analogues have the following disadvantages.
Для первичного заряжения экспериментальных животных эхинококкозом необходимо постоянно иметь зараженных дефинитивных хозяев паразита. Эти животные ввиду опасности распространения инвазии должны содержаться в специальных условиях и методика опасна для экспериментатора. Попытки моделирования инвазии, характерной для человека, чаще были безуспешными (Yamashita J., Ohbayashi M., Doi R., Jap. J. vet. pes. - 1963. - vol.11. - P.55-60). For the initial loading of experimental animals with echinococcosis, it is necessary to constantly have infected definitive hosts of the parasite. These animals, due to the danger of the spread of invasion, must be kept in special conditions and the technique is dangerous for the experimenter. Attempts to simulate the invasion characteristic of humans were more often unsuccessful (Yamashita J., Ohbayashi M., Doi R., Jap. J. vet. Pes. - 1963. - vol.11. - P.55-60).
При моделировании эхинококкоза путем введения личиночных форм паразита непосредственно в паренхиму органа или в сосуды, приносящие кровь к органу, возникает множественное, а не очаговое поражение печени. Частички инвазивного материала должны быть достаточно малыми, чтобы они не вызывали обструкцию крупных сосудов и инфарктов органа (Лукашенко Н.П. Альвеококкоз. M., 1975; Ohnishi Kenji J. Parasit. - 1984. - vol. 70. P. 987-988). When modeling echinococcosis by introducing larval forms of the parasite directly into the organ parenchyma or into vessels that bring blood to the organ, a multiple rather than focal liver injury occurs. The particles of invasive material should be small enough so that they do not cause obstruction of large vessels and heart attacks of the organ (Lukashenko N.P. Alveococcosis M., 1975; Ohnishi Kenji J. Parasit. - 1984. - vol. 70. P. 987-988 )
Методика с имплантацией дочерних пузырей эхинококка в фиброзную полость, сформированную вокруг инородного тела в печень, не моделирует патогенез развития эхинококкоза, трудоемка и не удобна для воспроизведения. The technique with the implantation of daughter echinococcus bladders into a fibrous cavity formed around a foreign body in the liver does not model the pathogenesis of echinococcosis, it is laborious and not convenient for reproduction.
Характеристика прототипа. Description of the prototype.
Наиболее близкий нашему изобретению является способ, предложенный Мирходжаевым И. А. , Абдуллаходжаевым М.С., Исрапиловым Р.И. (Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1998, том 125, 4, с. 477-480). Closest to our invention is the method proposed by Mirhodzhaev I.A., Abdullahodzhaev M.S., Israpilov R.I. (Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 1998, Volume 125, 4, pp. 477-480).
Описание прототипа. Description of the prototype.
Кроликам массой 2200-3100 г под калипсоловым наркозом (0,2 мл/100 г), производят верхнесрединную лапаротомию. Предварительно в линию разреза вводят пенициллин (5000 ед. в 0,5% растворе новокаина). For rabbits weighing 2200-3100 g under calypsol anesthesia (0.2 ml / 100 g), a mid-median laparotomy is performed. Previously, penicillin (5000 units in a 0.5% solution of novocaine) is injected into the incision line.
В толщу паренхимы печени между правой и левой долями притупленной иглой с внутренним диаметром 0,5 мм вводят 1,5-2,0 мл инвазивной эхинококковой жидкости, разведенной физиологическим раствором так, чтобы в инокуляте было 100-200 живых протосколексов и сколексов. Into the thickness of the liver parenchyma between the right and left lobes with a blunt needle with an inner diameter of 0.5 mm, 1.5-2.0 ml of invasive echinococcal fluid diluted with physiological saline is injected so that there are 100-200 living protoscolexes and scolexes in the inoculum.
Место пункции заклеивали медицинским клеем МК-2, МК-6 или засыпают гемостатической губкой. Затем в эту зону имплантируют 1-2 живые дочерние эхинококковые кисты, после чего между правой и левыми долями печени накладывают провизорные кетгутовые швы с последующим послойным ушиванием раны наглухо. The puncture site was sealed with MK-2, MK-6 medical glue or covered with a hemostatic sponge. Then 1-2 live daughter echinococcal cysts are implanted into this zone, after which provisional catgut sutures are applied between the right and left lobes of the liver, followed by layer-by-layer suturing of the wound tightly.
Предложенным способом воспроизводится эхинококкоз печени и развитие ее сопровождается реактивными и структурными сдвигами в паренхиме печени. The proposed method reproduces echinococcosis of the liver and its development is accompanied by reactive and structural changes in the liver parenchyma.
Критика прототипа. Criticism of the prototype.
Предложенный метод не позволяет моделировать солитарный гидатидозный эхинококкоз печени и не вполне моделирует соответствующую патологию человека. Возникающее при этом обсеменение эхинококком как брюшной полости, так и самой печени делают модель непригодной для использования в изучении степени воздействия антипаразитарного агента на ткань печени и другие органы. The proposed method does not allow simulating solitary hydatidosis echinococcosis of the liver and does not fully model the corresponding human pathology. The resulting seeding of echinococcus of both the abdominal cavity and the liver itself makes the model unsuitable for use in studying the degree of exposure of the antiparasitic agent to liver tissue and other organs.
Цель предлагаемого в качестве изобретения способа: разработать способ моделирования солитарного эхинококкоза печени для изучения реакции ткани печени, для скрининга противоэхинококковых препаратов. The purpose of the proposed invention as a method: to develop a method for modeling solitary echinococcosis of the liver to study the reaction of liver tissue, for screening anti-echinococcal drugs.
Сущность изобретения: беспородным белым крысам массой 150-250 г под эфирным наркозом производят верхнесрединную лапаротомию. Предварительно в линию разреза вводили пенициллин 2000 ед на 0,5% растворе новокаина). The essence of the invention: outbred white rats weighing 150-250 g under ether anesthesia produce upper middle laparotomy. Previously, penicillin 2000 units in 0.5% novocaine solution was introduced into the cut line).
Берут живую дочернюю эхинококковую кисту размером не более чем 2•2 см (интраоперационный материал) и двумя узловыми швами фиксируют ее на капсуле печени. Атравматичной не рассасывающейся ниткой накладывают на капсулу печени два кисетных шва со сведением всех пяти долек печени, между которыми помещают эхинококковую кисту. При необходимости накладывали на края еще 2-3 узловых шва, создавая герметичность образовавшейся полости. They take a live daughter echinococcal cyst no larger than 2 • 2 cm in size (intraoperative material) and fix it on the liver capsule with two interrupted sutures. Two purse string sutures are placed on the capsule of the liver with an atraumatic non-absorbable thread, reducing all five lobules of the liver, between which an echinococcal cyst is placed. If necessary, another 2-3 nodal sutures were applied to the edges, creating a tightness of the cavity formed.
Для подтверждения развития эхинококкоза и изучения динамики структурных изменений в ткани печени используют гистологические (окраска гематоксилин-эозин по Ван-Гизону) и гистохимические методы (реакции Брашке и Шика) исследования. To confirm the development of echinococcosis and study the dynamics of structural changes in the liver tissue, histological (hematoxylin-eosin staining according to Van Gieson) and histochemical methods (Brashke and Schick reactions) studies are used.
На 30-е сутки при аутопсии в печени между дольками обнаружены нагноившаяся эхинококковая киста, размерами до 1,5 см с содержимым мутного характера. Вокруг плотная фиброзная капсула, цвет и консистенция печени не изменена, на брюшине и на других органах эхинококковых пузырей не обнаружено. On the 30th day with autopsy in the liver between the lobules, a festering echinococcal cyst, up to 1.5 cm in size, with contents of a murky character was found. Around a dense fibrous capsule, the color and texture of the liver has not been changed; no echinococcal vesicles were found on the peritoneum and other organs.
При гистологическом исследовании внутри лейкоцитарный вал, снаружи лимфогистиоцитарный инфильтрат с фибринозным некрозом соединительной ткани. Печеночные клетки при этом находятся в состоянии глубокой вакуольной и гиалиново-капельной дистрофии с фокальным некрозом клеток. When histological examination inside the leukocyte shaft, outside lymphohistiocytic infiltrate with fibrinous necrosis of the connective tissue. In this case, the liver cells are in a state of deep vacuole and hyaline droplet dystrophy with focal cell necrosis.
Предлагаемый способ воспроизводит одиночную эхинококковую кисту у экспериментальных животных в фазе поздних посмертных изменений (по М.Ю.Гилевич). The proposed method reproduces a single echinococcal cyst in experimental animals in the phase of late posthumous changes (according to M.Yu. Gilevich).
Пример конкретного использования. An example of a specific use.
Способ, предложенный в качестве изобретения, применен для изучения проницаемости фиброзной капсулы для противоэхинококковых средств контактного действия и изучения их токсического влияния на организм. The method proposed as an invention is used to study the permeability of a fibrous capsule for anti-echinococcal means of contact action and to study their toxic effects on the body.
Нелинейной белой крысе, массой 230 грамм под эфирным наркозом произвели верхнесрединную лапаротомию. Предварительно в линию разреза вводили пенициллин 2000 ед. на 0,5% растворе новокаина). Предварительно интраоперационно брали живую дочернюю эхинококковую кисту размером 1,5•1,3 см и двумя узловыми швами фиксируют ее на капсуле печени, так, чтобы не повредить целостность кисты. Атравматичной нерассасывающейся ниткой свели все пять долек печени наложением двух кисетных швов, между которыми поместили эхинококковую кисту. A nonlinear white rat weighing 230 grams under ether anesthesia performed a mid-median laparotomy. Previously, penicillin 2000 units was introduced into the incision line. 0.5% novocaine solution). Previously, a live daughter echinococcal cyst measuring 1.5 x 1.3 cm was taken intraoperatively and fixed with two interrupted sutures on the liver capsule, so as not to damage the integrity of the cyst. A non-absorbable non-absorbable thread was reduced to all five lobules of the liver by the application of two purse string sutures, between which an echinococcal cyst was placed.
На 30-е сутки эксперимента произвели лапаротомию под эфирным наркозом. При этом на месте моделирования обнаружилось жидкостное образование с плотной капсулой. Пунктировали и эвакуировали 3-4 мл мутной жидкости. При гистологическом исследовании препарата печени со сформированным кистозным образованием обнаружены изменения, характерные для фиброзной капсулы эхинококковой кисты. On the 30th day of the experiment, a laparotomy was performed under ether anesthesia. At the same time, a fluid formation with a dense capsule was found at the simulation site. Punctured and evacuated 3-4 ml of turbid liquid. Histological examination of a liver preparation with a formed cystic formation revealed changes characteristic of a fibrous capsule of an echinococcal cyst.
Полезность изобретения. The usefulness of the invention.
Предлагаемый способ в отличие от известных позволяет моделировать одиночную эхинококковую кисту печени, удобный для изучения проницаемости фиброзной капсулы для противоэхинококковых средств. При этом моделирование эхинококкоза производится без обсеменения брюшной полости и ткани печени. Способ прост в исполнении, не требует больших материальных затрат. The proposed method, unlike the known ones, allows simulating a single echinococcal liver cyst convenient for studying the permeability of a fibrous capsule for anti-echinococcal agents. Moreover, modeling of echinococcosis is performed without contamination of the abdominal cavity and liver tissue. The method is simple to implement, does not require large material costs.
Литература
Способ, предложенный Мирходжаевым И.А., Абдуллаходжаевым М.С., Исрапиловым Р.И. (Бюллетень экспериментальной биологии и медицины, 1998, том 125, 4, с. 477-480) - прототип.Literature
The method proposed by Mirhodzhaev I.A., Abdullahodzhaev M.S., Israpilov R.I. (Bulletin of Experimental Biology and Medicine, 1998, Volume 125, 4, pp. 477-480) - prototype.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2001116730/14A RU2222052C2 (en) | 2001-06-15 | 2001-06-15 | Method for modeling solitary hepatic echinococcosis |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2001116730/14A RU2222052C2 (en) | 2001-06-15 | 2001-06-15 | Method for modeling solitary hepatic echinococcosis |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2001116730A RU2001116730A (en) | 2003-04-20 |
| RU2222052C2 true RU2222052C2 (en) | 2004-01-20 |
Family
ID=32090247
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2001116730/14A RU2222052C2 (en) | 2001-06-15 | 2001-06-15 | Method for modeling solitary hepatic echinococcosis |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2222052C2 (en) |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2310923C1 (en) * | 2006-02-13 | 2007-11-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) | Method for modeling imaginal alveococcosis |
| RU2734055C1 (en) * | 2019-12-23 | 2020-10-12 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Астраханский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Астраханский ГМУ Минздрава России) | Method for experimental simulation of false cyst of abdominal cavity |
| RU2760855C1 (en) * | 2020-11-30 | 2021-11-30 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Астраханский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Астраханский ГМУ Минздрава России) | Method for experimental modeling of echinococcal cyst |
| RU2816989C1 (en) * | 2024-01-23 | 2024-04-08 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Method for experimental simulation of hepatic echinococcosis |
Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2052219C1 (en) * | 1991-07-15 | 1996-01-10 | Новосибирский медицинский институт | Method of modelling chronic granulomatous inflammation in the liver |
-
2001
- 2001-06-15 RU RU2001116730/14A patent/RU2222052C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2052219C1 (en) * | 1991-07-15 | 1996-01-10 | Новосибирский медицинский институт | Method of modelling chronic granulomatous inflammation in the liver |
Non-Patent Citations (2)
| Title |
|---|
| Реферат из автоматизированной базы данных MEDLINE: LIANCE М. Experimental alveolar echinococcosis. Suitability of a murine model of intrahepatic infection by Echinococcus multilocularis for immunological studies. Experientia 1984 Dec15; 40(12):1436-9. * |
| Реферат из автоматизированной базы данных MEDLINE: SAHIN М. Experimental hydatid disease of the liver. Eur. J.Clin. Invest. 1997 Jun; 27(6):537-8. * |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2310923C1 (en) * | 2006-02-13 | 2007-11-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт гельминтологии им. К.И. Скрябина (ВИГИС) | Method for modeling imaginal alveococcosis |
| RU2734055C1 (en) * | 2019-12-23 | 2020-10-12 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Астраханский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Астраханский ГМУ Минздрава России) | Method for experimental simulation of false cyst of abdominal cavity |
| RU2760855C1 (en) * | 2020-11-30 | 2021-11-30 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Астраханский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения Российской Федерации (ФГБОУ ВО Астраханский ГМУ Минздрава России) | Method for experimental modeling of echinococcal cyst |
| RU2816989C1 (en) * | 2024-01-23 | 2024-04-08 | Федеральное государственное бюджетное военное образовательное учреждение высшего образования "Военно-медицинская академия имени С.М. Кирова" Министерства обороны Российской Федерации (ВМедА) | Method for experimental simulation of hepatic echinococcosis |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| CN1291761C (en) | closed cell culture system | |
| JP7542880B2 (en) | Composition for organoid transplantation | |
| PT2470228T (en) | Methods and devices for cellular transplantation | |
| US20240299614A1 (en) | Kit comprising adhesive hydrogel and impregnating fluid | |
| US11998662B1 (en) | Biologic matrix for a wound site and related methods | |
| Ekrami | Surgical treatment of hydatid disease of the liver | |
| RU2222052C2 (en) | Method for modeling solitary hepatic echinococcosis | |
| CN114903845A (en) | Gel composition for removing residual stone fragments after lithotripsy | |
| Beck et al. | The Significance of the Pericardium in Relation to Surgery of the Heart | |
| Ekim et al. | A modified S10B silicone plastination method for preparation and preservation of scaled reptile specimens | |
| RU2355436C1 (en) | Method of surgical liver echinococcosis treatment | |
| RU2714949C2 (en) | Method for simulating local circumscribed peritonitis in rats | |
| RU2116755C1 (en) | Method of puncture treatment of nonparasitic liver cyst | |
| RU2188456C2 (en) | Method for modelling acute purulent pyelonephritis | |
| RU2713798C1 (en) | Method of orthotopic transplantation of human esophageal cell culture into cervical esophageal segment of immunodeficient mice | |
| RU2816989C1 (en) | Method for experimental simulation of hepatic echinococcosis | |
| RU2610361C2 (en) | Method for experimental modelling of autotransplantation of splenic tissue into liver | |
| US20240105082A1 (en) | Method for producing simulated animal organ, simulated animal organ, simulated animal organ kit, and medical instrument evaluation kit | |
| RU2668201C1 (en) | Method for mimicking acute destructive pancreatitis in pigs | |
| RU2547697C1 (en) | Method for simulating acute destructive infected pancreonecrosis | |
| RU2506955C1 (en) | Method for making dura mater biograft for endoscopic operations in reconstructive surgery | |
| RU2448658C1 (en) | Method for extrapleural pneomolysis surgery | |
| RU2845894C1 (en) | Method for preventing enterointestinal anastomosis inefficiency in infected abdominal cavity | |
| CN119039295B (en) | A prodrug for anti-infection and its application | |
| RU2197819C2 (en) | Method for preparing and keeping valvular aortal and pulmonary- arterial homografts |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20030616 |