[go: up one dir, main page]

RU2268590C1 - Method for organs and tissues cryoconservation in situ - Google Patents

Method for organs and tissues cryoconservation in situ Download PDF

Info

Publication number
RU2268590C1
RU2268590C1 RU2004117804/15A RU2004117804A RU2268590C1 RU 2268590 C1 RU2268590 C1 RU 2268590C1 RU 2004117804/15 A RU2004117804/15 A RU 2004117804/15A RU 2004117804 A RU2004117804 A RU 2004117804A RU 2268590 C1 RU2268590 C1 RU 2268590C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
pressure chamber
pressure
rat
water
mixture
Prior art date
Application number
RU2004117804/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Павел Васильевич Щербаков (RU)
Павел Васильевич Щербаков
Владимир Иванович Тельпухов (RU)
Владимир Иванович Тельпухов
Анатолий Витальевич Николаев (RU)
Анатолий Витальевич Николаев
Original Assignee
Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова filed Critical Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова
Priority to RU2004117804/15A priority Critical patent/RU2268590C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2268590C1 publication Critical patent/RU2268590C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: biological object (heart, kidney, etc) should be cooled in water up to 0° C at simultaneous saturation with the mixture of xenon, krypton, argon at the ratio of 2.5:47.5:50 rot.%, then one should force out water with gaseous mixture mentioned and at the pressure of 1.5 atm. it is necessary to decrease temperature up to -43° C, then one should decrease the pressure of gaseous medium up to normal level and continue cooling up to -196° C. The innovation enables to achieve reliable and prolonged cryoconservation of animal heart being the constituent of the whole organism (in situ), in a transferred transplant conserved for 6 h against the time of cold cardioplegia and up to the moment of restoring contractile activity. Moreover, it has been possible to achieve restoration of adequate cardiac activity.
EFFECT: higher efficiency.
1 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к медицине, в частности к хирургии, и может найти применение для консервации органов и тканей.The invention relates to medicine, in particular to surgery, and may find application for the preservation of organs and tissues.

Известен способ криоконсервации почки путем охлаждения до -70°С под защитой криопротектора - 15% диметилсульфоксид [1].A known method of cryopreservation of the kidney by cooling to -70 ° C under the protection of a cryoprotectant - 15% dimethyl sulfoxide [1].

Известный способ использования в качестве холодовой защиты криопротектора ДМСО в неполной мере препятствует повреждению клеточных структур в процессе замораживания - отогрева органа из-за неравномерного распределения любых защитных веществ (глицерин, диметилсульфоксид, этиленгликоль, пропиленгликоль и др.) по объему крупного биологического объекта, появления в нем высоких температурных градиентов и ими обусловленных градиентов давления. При этом наступающая кристаллизация воды в органе распространяется от поверхности к центру неравномерно; имеет место "фронт кристаллизации", что ведет к механическому повреждению предварительно замороженных слоев и их растрескиванию.The known method of using DMSO as a cold protection cryoprotectant does not fully prevent damage to cell structures during freezing - heating the organ due to the uneven distribution of any protective substances (glycerin, dimethyl sulfoxide, ethylene glycol, propylene glycol, etc.) by volume of a large biological object, occurring in high temperature gradients and their associated pressure gradients. In this case, the onset crystallization of water in the organ spreads unevenly from the surface to the center; there is a "crystallization front", which leads to mechanical damage to pre-frozen layers and their cracking.

Наиболее близким к предлагаемому способу является способ консервации почки путем сочетания охлаждения при температуре (+2)-(+4)°С и гипербарии аргоном при давлении (1,5-2) атм [2].Closest to the proposed method is a method of preservation of the kidney by combining cooling at a temperature of (+2) - (+ 4) ° C and hyperbarium with argon at a pressure of (1.5-2) atm [2].

Недостатком данного способа является сравнительно невысокая надежность и продолжительность консервации, что можно объяснить недостаточно сниженным клеточным метаболизмом из-за применения температур выше 0°С.The disadvantage of this method is the relatively low reliability and duration of conservation, which can be explained by insufficiently reduced cellular metabolism due to the use of temperatures above 0 ° C.

Задача изобретения - повышение надежности и продолжительности консервации.The objective of the invention is to increase the reliability and duration of conservation.

Поставленная задача достигается способом, заключающимся в том, что биологический объект (сердце, почка и др.) охлаждают в воде до 0°С с одновременным насыщением смесью ксенона, криптона, аргона в соотношении 2,5:47,5:50 об. %, затем вытесняют воду указанной смесью газов и при давлении 1,5 атм понижают температуру до -43°С, далее снижают давление газовой среды до нормального и продолжают охлаждение до -196°С.The problem is achieved by the method consisting in the fact that a biological object (heart, kidney, etc.) is cooled in water to 0 ° C while being saturated with a mixture of xenon, krypton, argon in a ratio of 2.5: 47.5: 50 vol. %, then water is displaced by the indicated mixture of gases and at a pressure of 1.5 atm the temperature is lowered to -43 ° C, then the pressure of the gaseous medium is reduced to normal and cooling is continued to -196 ° C.

Практический способ осуществляют следующим образом: в барокамере, которая опирается на стойки в горизонтальном положении и соединена с запорными вентилями, через которые прокачивается вода, нагнетается смесь инертных газов, осуществляется ее герметизация и разгерметизация, проводится ИВЛ животного.The practical method is as follows: in a pressure chamber, which rests on racks in a horizontal position and is connected to shut-off valves, through which water is pumped, a mixture of inert gases is pumped, it is sealed and depressurized, and the animal is ventilated.

Крыса размещается на съемном перфорированном столике из металла по центру барокамеры, вдоль ее оси.The rat is placed on a removable perforated metal table in the center of the pressure chamber, along its axis.

Поступающая в барокамеру смесь ксенона, криптона, аргона в соотношении 2,5:47,5:50 об. % (смешиваются газы вне барокамеры), изготавливается из готовой стандартной смеси, содержащей 5 об. % ксенона и 95 об. % криптона, при ее разведении в соотношении 1:1 чистым аргоном.A mixture of xenon, krypton, argon entering the pressure chamber in a ratio of 2.5: 47.5: 50 vol. % (gases are mixed outside the pressure chamber), is made from a ready-made standard mixture containing 5 vol. % xenon and 95 vol. % krypton, when diluted in a ratio of 1: 1 with pure argon.

Рабочее давление смеси инертных газов в барокамере, равное 1,5 атм, контролируется манометром и ограничивается предохранительным клапаном, соединенными с барокамерой.The working pressure of the inert gas mixture in the pressure chamber, equal to 1.5 atm, is controlled by a pressure gauge and limited by a safety valve connected to the pressure chamber.

Внутри барокамеры дыхание крысы поддерживается при помощи ИВЛ атмосферным воздухом, разведенным вне барокамеры в соотношении 1:1 с изготовленной смесью инертных газов и содержащим 10 об.% кислорода.Inside the pressure chamber, the rat’s breathing is supported by mechanical ventilation using atmospheric air diluted outside the pressure chamber in a 1: 1 ratio with a manufactured mixture of inert gases and containing 10 vol.% Oxygen.

Для термометрии животного и регистрации ЭКГ барокамера снабжена герметичным электрическим вводом на крышке.For animal thermometry and ECG recording, the pressure chamber is equipped with a sealed electrical input on the lid.

Конструкция барокамеры позволяет охлаждать находящуюся внутри крысу, сначала до 0°С непосредственно в проточной ледяной воде, затем, после выдавливания всей воды смесью инертных газов, ступенчато до -43°С и до -196°С через окружающую животное газовую среду, при погружении барокамеры, соответственно, в пары жидкого азота и в сам жидкий азот.The design of the pressure chamber allows cooling the rat inside, first to 0 ° C directly in running ice water, then, after extruding all the water with a mixture of inert gases, stepwise to -43 ° C and to -196 ° C through the surrounding gas environment, when the pressure chamber is immersed , respectively, in pairs of liquid nitrogen and in liquid nitrogen itself.

ИВЛ крысы, находящейся под водой в барокамере, осуществляется через интубационную трубку по изолированному от воды контуру дыхания, соединенному с двумя запорными вентилями изнутри барокамеры, с выбросом отработанных газов в атмосферу.The ventilator of a rat under water in a pressure chamber is carried out through an endotracheal tube through a breathing circuit isolated from water, connected to two shut-off valves from the inside of the pressure chamber, with the release of exhaust gases into the atmosphere.

Под размеры барокамеры изготовлен металлический короб - криостат с теплоизолированными стенками и неизолированным дном для передачи через дно тепла в криостат.A metal box - a cryostat with heat-insulated walls and an uninsulated bottom for transferring heat through the bottom to the cryostat was manufactured to fit the pressure chamber.

Плотное облако паров азота вокруг барокамеры, приподнятой на стойках в криостате, образуется из тонкого слоя жидкого азота, активно кипящего на неизолированном металлическом дне криостата.A dense cloud of nitrogen vapor around the pressure chamber, raised on racks in the cryostat, is formed from a thin layer of liquid nitrogen actively boiling on the uninsulated metal bottom of the cryostat.

Заполнение криостата доверху жидким азотом и размещение под его дном теплоизоляционной пластины способствует погружению барокамеры с крысой в жидкий азот и продолжительному сохранению биологического объекта при температуре -196°С.Filling the cryostat to the top with liquid nitrogen and placing a heat-insulating plate under its bottom promotes immersion of the pressure chamber with the rat in liquid nitrogen and the long-term preservation of the biological object at a temperature of -196 ° С.

Согревание крысы, находящейся внутри барокамеры, до 0°С осуществляется через окружающую животное газовую среду при нагревании всей поверхности барокамеры теплым воздухом вне криостата.The rat inside the pressure chamber is heated to 0 ° C through the gas surrounding the animal when the entire surface of the pressure chamber is heated with warm air outside the cryostat.

Консервацию органов и тканей крысы в составе всего организма проводят в четыре этапа (см. чертеж).The conservation of rat organs and tissues as a part of the whole organism is carried out in four stages (see drawing).

I Этап.I Stage.

Согласно чертежу, лабораторную крысу, находящуюся внутри барокамеры (1) при нормальном давлении, форсированно охлаждают до 0°С непосредственно в проточной ледяной воде. Воду прокачивают по замкнутому контуру охлаждения, через барокамеру и крошенный лед. На фоне развивающейся гипотермии крысе проводят ИВЛ смесью воздуха и инертных газов. При достижении на 28 минуте охлаждения при +7°С холодовой кардиоплегии ИВЛ смесью воздуха и инертных газов продолжают.According to the drawing, the laboratory rat, located inside the pressure chamber (1) at normal pressure, is forcedly cooled to 0 ° C directly in running ice water. Water is pumped through a closed cooling circuit, through a pressure chamber and crushed ice. Against the background of developing hypothermia, the rat undergoes mechanical ventilation with a mixture of air and inert gases. Upon reaching 28 minutes of cooling at + 7 ° C, cold ventilator cardioplegia with a mixture of air and inert gases is continued.

II Этап.Stage II.

При достижении на 95 минуте охлаждения ректальной температуры 0°С ИВЛ прекращают. Перекрывают контуры водяного охлаждения и дыхания.When the rectal temperature reaches 0 ° C at 95 minutes, the ventilation is stopped. Overlap the contours of water cooling and breathing.

Смесью инертных газов в течение одной минуты выдавливают из барокамеры всю воду. Герметизируют барокамеру и резко повышают давление вокруг животного до 1,5 атм. Барокамеру (1) с крысой под в давлением 1,5 атм при ректальной температуре 0°С помещают в криостат (2) с теплоизоляцией (3) на стенках и неизолированным дном в пары жидкого азота (4) и охлаждают животное в течение 30 минут с 0°С до -43°С.With a mixture of inert gases, all water is squeezed out of the pressure chamber for one minute. The pressure chamber is sealed and the pressure around the animal is sharply increased to 1.5 atm. A pressure chamber (1) with a rat under a pressure of 1.5 atm at a rectal temperature of 0 ° C is placed in a cryostat (2) with thermal insulation (3) on the walls and an uninsulated bottom in liquid nitrogen vapor (4) and the animal is cooled for 30 minutes with 0 ° C to -43 ° C.

III Этап.Stage III.

При достижении ректальной температуры -43°С давление в барокамере путем ее разгерметизации снижают в течение одной минуты с 1,5 атм до нормального. Под дно криостата (2) подводят теплоизоляционную пластину (5). Разгерметизированную барокамеру (1) с крысой полностью заливают жидким азотом (4) и форсированно охлаждают животное с -43°С до -196°С. Замороженный организм с биологическим объектом хранят внутри разгерметизированной барокамеры, погруженной в жидкий азот при -196°С.When the rectal temperature reaches -43 ° C, the pressure in the pressure chamber by depressurization is reduced within one minute from 1.5 atm to normal. Under the bottom of the cryostat (2), a heat-insulating plate (5) is fed. The pressurized pressure chamber (1) with the rat is completely filled with liquid nitrogen (4) and the animal is forcedly cooled from -43 ° C to -196 ° C. A frozen organism with a biological object is stored inside a depressurized pressure chamber immersed in liquid nitrogen at -196 ° C.

IV Этап.Stage IV.

При необходимости проведения трансплантации барокамеру с крысой вынимают из криостата с жидким азотом. Замороженный организм с биологическим объектом постепенно, в течение 60 минут согревают от 196°С до 0°С в разгерметизированной барокамере (1), обдуваемой теплым воздухом из калорифера (6). При достижении ректальной температуры 0°С крысу вынимают из барокамеры и производят забор ее органов.If transplantation is necessary, the pressure chamber with the rat is removed from the cryostat with liquid nitrogen. A frozen organism with a biological object is gradually warmed from 196 ° C to 0 ° C for 60 minutes in a depressurized pressure chamber (1), blown with warm air from a heater (6). When the rectal temperature reaches 0 ° C, the rat is removed from the pressure chamber and its organs are taken.

Пример. Предлагаемый способ испытывали в опытах по криоконсервации сердца крысы-донора с последующей пересадкой его крысе-реципиенту. Всего было поставлено 10 опытов. Донор - белая крыса линии "Wistar", самец, массой 300 г. Наркоз общий эфирный. Реципиент - белая крыса линии "Wistar", самец, массой 300 г. Наркоз комбинированный, гексенал - эфирный.Example. The proposed method was tested in experiments on cryopreservation of the heart of a donor rat, followed by transplantation to its recipient rat. A total of 10 experiments were performed. The donor is a white Wistar rat, male, weighing 300 g. Narcosis is a common ether. The recipient is a white Wistar rat, male, weighing 300 g. Combined narcosis, hexenal - ether.

Крысу интубировали, фиксировали на съемном столике, устанавливали ректальный датчик температуры, электроды ЭКГ и помещали в барокамеру. Интубационную трубку соединяли с контуром дыхания. Барокамеру закрывали крышкой и приступали к охлаждению крысы в соответствии с приведенной последовательностью в три этапа. При этом экспозицию крысы при -196°С ограничивали по времени тремя часами, когда часть жидкого азота испарялась из криостата и барокамера оказывалась не полностью погруженной в хладогент. После чего животное согревали до 0°С в соответствии с четвертым этапом приведенной последовательности.The rat was intubated, fixed on a removable table, a rectal temperature sensor, ECG electrodes were installed and placed in a pressure chamber. The endotracheal tube was connected to the respiratory circuit. The pressure chamber was closed with a lid and the rats were started to cool in accordance with the given sequence in three stages. Moreover, the exposure of the rat at -196 ° C was limited in time to three hours, when part of the liquid nitrogen was evaporated from the cryostat and the pressure chamber turned out to be not completely immersed in the refrigerant. After which the animal was warmed to 0 ° C in accordance with the fourth stage of the sequence.

По окончании согревания у крысы-донора производили забор сердца. Выделенный трансплантат отмывали физиологическим раствором через аорту и выполняли пересадку сердца по методике "Abbott" [3] на брюшные сосуды крысы-реципиента.At the end of warming, a donor rat was sampled for heart. The isolated transplant was washed with saline through the aorta and a heart transplant was performed according to the Abbott method [3] on the abdominal vessels of the recipient rat.

Через 3,5 минуты после начала коронарной перфузии консервированное сердце полностью восстанавливало сократительную активность с пульсом 180 ударов в минуту. От начала полной остановки сердца, вызванной холодовой кардиоплегией, и до восстановления сократительной активности у пересаженного органа временной интервал был в пределах шести часов. За пересаженным сердцем наблюдали три часа, после чего крысу-реципиента выводили из эксперимента.3.5 minutes after the start of coronary perfusion, the canned heart completely restored contractile activity with a pulse of 180 beats per minute. From the beginning of complete cardiac arrest caused by cold cardioplegia to the restoration of contractile activity in the transplanted organ, the time interval was within six hours. A transplanted heart was monitored for three hours, after which the recipient rat was taken out of the experiment.

Возможность осуществления надежной и продолжительной криоконсервации с помощью инертных газов теоретически объясняется образованием в биологическом объекте кристаллогидратов этих газов, которые наиболее эффективны при температурах ниже 0°С.The possibility of reliable and prolonged cryopreservation using inert gases is theoretically explained by the formation in the biological object of crystalline hydrates of these gases, which are most effective at temperatures below 0 ° C.

Источники информацииInformation sources

1. Кирпатовский В.И., Кудрявцев Ю.В., Буров В.Н. - Проблемы криобиологии, 1992, 1, 27-32.1. Kirpatovsky V.I., Kudryavtsev Yu.V., Burov V.N. - Problems of Cryobiology, 1992, 1, 27-32.

2. Шумаков В.И., Штенгольд Е.Ш., Онищенко Н.А. Консервация органов. - М., Медицина, 1975, 127-128.2. Shumakov V.I., Stengold E.Sh., Onishchenko N.A. Preservation of organs. - M., Medicine, 1975, 127-128.

3. Abbott С.P. A technique for heart transplantation in the rat. - Arch. Surg., 1964, 89, 4, 645-652.3. Abbott S.P. A technique for heart transplantation in the rat. - Arch. Surg., 1964, 89, 4, 645-652.

Claims (1)

Способ криоконсервации органов и тканей in situ путем сочетания охлаждения и гипербарии инертными газами, отличающийся тем, что биообъект охлаждают в воде до 0°С с одновременным насыщением смесью ксенона, криптона, аргона в соотношении 2,5:47,5:50 об.%, затем вытесняют воду указанной смесью газов и при давлении 1,5 атм понижают температуру до -43°С, далее снижают давление газовой среды до нормального и продолжают охлаждение до -196°С.The method of cryopreservation of organs and tissues in situ by combining cooling and hyperbaria with inert gases, characterized in that the biological object is cooled in water to 0 ° C with simultaneous saturation with a mixture of xenon, krypton, argon in a ratio of 2.5: 47.5: 50 vol.% then water is displaced by the indicated mixture of gases and at a pressure of 1.5 atm the temperature is lowered to -43 ° C, then the pressure of the gas medium is reduced to normal and cooling is continued to -196 ° C.
RU2004117804/15A 2004-06-15 2004-06-15 Method for organs and tissues cryoconservation in situ RU2268590C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004117804/15A RU2268590C1 (en) 2004-06-15 2004-06-15 Method for organs and tissues cryoconservation in situ

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004117804/15A RU2268590C1 (en) 2004-06-15 2004-06-15 Method for organs and tissues cryoconservation in situ

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2268590C1 true RU2268590C1 (en) 2006-01-27

Family

ID=36047794

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004117804/15A RU2268590C1 (en) 2004-06-15 2004-06-15 Method for organs and tissues cryoconservation in situ

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2268590C1 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2011098698A1 (en) * 2010-02-15 2011-08-18 L'air Liquide, Societe Anonyme Pour L'etude Et L'exploitation Des Procedes Georges Claude Argon-based inhalable gaseous medicament against peripheral organ deficiencies or failures
RU2433173C1 (en) * 2010-06-01 2011-11-10 Олег Германович Макеев Method of cryoconservation of multipotent mesenchymal stromal cells
US8124329B2 (en) 2008-05-14 2012-02-28 Sheleg Sergey V Hypothermic preservation of biological tissues and cells
RU2577996C2 (en) * 2014-07-04 2016-03-20 Общество с ограниченной ответственностью "ИнПрес" Method of biomaterial preservation
RU2748496C1 (en) * 2020-08-13 2021-05-26 Российская Федерация, от имени которой выступает ФОНД ПЕРСПЕКТИВНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Method for preserving organs and tissues as part of integral organism in liquid at temperatures below 0°c under pressure in inert gas

Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2049391C1 (en) * 1981-01-20 1995-12-10 Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Agent for bone marrow cryopreserving
RU2120752C1 (en) * 1997-11-28 1998-10-27 Гладских Лариса Валентиновна Method of hepatic xenogenic cells preserving
RU2178865C2 (en) * 1995-01-30 2002-01-27 Органодженисис Инк. Method for cryopreservation of prepared tissue of mammalia or cultivated equivalent of tissue and device for its realization

Patent Citations (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2049391C1 (en) * 1981-01-20 1995-12-10 Кировский научно-исследовательский институт гематологии и переливания крови Agent for bone marrow cryopreserving
RU2178865C2 (en) * 1995-01-30 2002-01-27 Органодженисис Инк. Method for cryopreservation of prepared tissue of mammalia or cultivated equivalent of tissue and device for its realization
RU2120752C1 (en) * 1997-11-28 1998-10-27 Гладских Лариса Валентиновна Method of hepatic xenogenic cells preserving

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ШУМАКОВ В.И. и др. Консервация органов. - М.: Медицина, 1975, с.127-128. *

Cited By (6)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8124329B2 (en) 2008-05-14 2012-02-28 Sheleg Sergey V Hypothermic preservation of biological tissues and cells
WO2011098698A1 (en) * 2010-02-15 2011-08-18 L'air Liquide, Societe Anonyme Pour L'etude Et L'exploitation Des Procedes Georges Claude Argon-based inhalable gaseous medicament against peripheral organ deficiencies or failures
FR2956323A1 (en) * 2010-02-15 2011-08-19 Air Liquide ARGON-BASED INHALABLE GAS MEDICINE AGAINST PERIPHERAL ORGAN DEFECTS OR MALFUNCTIONS
RU2433173C1 (en) * 2010-06-01 2011-11-10 Олег Германович Макеев Method of cryoconservation of multipotent mesenchymal stromal cells
RU2577996C2 (en) * 2014-07-04 2016-03-20 Общество с ограниченной ответственностью "ИнПрес" Method of biomaterial preservation
RU2748496C1 (en) * 2020-08-13 2021-05-26 Российская Федерация, от имени которой выступает ФОНД ПЕРСПЕКТИВНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ Method for preserving organs and tissues as part of integral organism in liquid at temperatures below 0°c under pressure in inert gas

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JP4693834B2 (en) Ice seeding equipment for cryopreservation system
Hunt et al. Fractures in cryopreserved arteries
US4688387A (en) Method for preservation and storage of viable biological materials at cryogenic temperatures
CN102616472B (en) Integrated device for fumigating, freezing, storing and transporting gametes based on liquid nitrogen
US20120148542A1 (en) Machine perfusion with complement inhibitors
US20100233670A1 (en) Frozen Viable Solid Organs and Method for Freezing Same
Treckmann et al. Retrograde oxygen persufflation preservation of human livers: a pilot study
JP2004503473A (en) Cryopreservation of bioactive materials using high-temperature freezing
KR20040008131A (en) Method of preserving mammalian organ
Sicular et al. The postmortem survival of tissues: the effect of time and temperature on the survival of liver as measured by glucose oxidation rate
RU2268590C1 (en) Method for organs and tissues cryoconservation in situ
CN101250499A (en) A non-toxic cryopreservation solution for stem cells
JP2017186295A (en) Organ preservation method and organ transplantation method
RU2144290C1 (en) Method of bone marrow preservation
RU2741219C1 (en) Device for preservation of donor organs
Mihara et al. MRI, Magnetic resonance influenced, organ freezing method under magnetic field
RU2748496C1 (en) Method for preserving organs and tissues as part of integral organism in liquid at temperatures below 0°c under pressure in inert gas
RU2847325C1 (en) Method for maintaining the viability of a transplantable organ in a preservative gas mixture and kit for its implementation
US3408712A (en) Cryogenic embalming process
Takago et al. Hypothermic preservation of rat hearts using antifreeze glycoprotein
CN117902184A (en) A self-pressurized supercooled storage and transportation device for large-volume biological samples
Shintaro Hypothermic preservation of rat hearts using antifreeze glycoprotein
JP2632531B2 (en) How to preserve organs
Stygles et al. Increased blood pressure in the SHR is not related to a deficit in renomedullary PGE2
JP2024176189A (en) Frozen cell thawing device

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090616