RU2250781C2 - Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores - Google Patents
Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores Download PDFInfo
- Publication number
- RU2250781C2 RU2250781C2 RU2003120727/15A RU2003120727A RU2250781C2 RU 2250781 C2 RU2250781 C2 RU 2250781C2 RU 2003120727/15 A RU2003120727/15 A RU 2003120727/15A RU 2003120727 A RU2003120727 A RU 2003120727A RU 2250781 C2 RU2250781 C2 RU 2250781C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- vaccine
- manufacturing
- bait
- oral immunization
- pectin
- Prior art date
Links
- 229960005486 vaccine Drugs 0.000 title claims abstract description 24
- 238000004519 manufacturing process Methods 0.000 title claims abstract description 11
- 230000003053 immunization Effects 0.000 title claims abstract description 9
- 238000002649 immunization Methods 0.000 title claims abstract description 9
- 241001466804 Carnivora Species 0.000 title claims description 7
- 238000000034 method Methods 0.000 title abstract description 9
- 230000003612 virological effect Effects 0.000 title abstract description 6
- 239000004484 Briquette Substances 0.000 claims abstract description 10
- 239000000725 suspension Substances 0.000 claims abstract description 9
- 238000002156 mixing Methods 0.000 claims abstract description 4
- 230000001681 protective effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 230000000087 stabilizing effect Effects 0.000 claims abstract description 4
- 238000004113 cell culture Methods 0.000 claims abstract description 3
- 241000711798 Rabies lyssavirus Species 0.000 claims description 7
- 230000002458 infectious effect Effects 0.000 claims description 7
- 229940124861 Rabies virus vaccine Drugs 0.000 claims description 5
- 239000012530 fluid Substances 0.000 claims description 2
- 239000001814 pectin Substances 0.000 abstract description 10
- 235000010987 pectin Nutrition 0.000 abstract description 10
- 229920001277 pectin Polymers 0.000 abstract description 10
- 239000008101 lactose Substances 0.000 abstract description 9
- GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N Lactose Natural products OC[C@H]1O[C@@H](O[C@H]2[C@H](O)[C@@H](O)C(O)O[C@@H]2CO)[C@H](O)[C@@H](O)[C@H]1O GUBGYTABKSRVRQ-QKKXKWKRSA-N 0.000 abstract description 7
- 239000001888 Peptone Substances 0.000 abstract description 7
- 108010080698 Peptones Proteins 0.000 abstract description 7
- 235000019319 peptone Nutrition 0.000 abstract description 7
- 241000700605 Viruses Species 0.000 abstract description 6
- 230000002163 immunogen Effects 0.000 abstract description 4
- 239000011265 semifinished product Substances 0.000 abstract description 4
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 abstract description 3
- 238000003860 storage Methods 0.000 abstract description 2
- 206010046865 Vaccinia virus infection Diseases 0.000 abstract 1
- 230000003247 decreasing effect Effects 0.000 abstract 1
- 230000000694 effects Effects 0.000 abstract 1
- 230000007613 environmental effect Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 208000007089 vaccinia Diseases 0.000 abstract 1
- 238000004108 freeze drying Methods 0.000 description 7
- 230000005847 immunogenicity Effects 0.000 description 7
- 238000007710 freezing Methods 0.000 description 6
- 230000008014 freezing Effects 0.000 description 6
- 210000004027 cell Anatomy 0.000 description 5
- 239000003381 stabilizer Substances 0.000 description 5
- 241001482576 Saiga Species 0.000 description 4
- 210000003292 kidney cell Anatomy 0.000 description 4
- 206010037742 Rabies Diseases 0.000 description 3
- 235000013312 flour Nutrition 0.000 description 3
- 239000000463 material Substances 0.000 description 3
- 239000002994 raw material Substances 0.000 description 3
- 238000002255 vaccination Methods 0.000 description 3
- 241000282421 Canidae Species 0.000 description 2
- 230000001580 bacterial effect Effects 0.000 description 2
- 238000011109 contamination Methods 0.000 description 2
- 238000011049 filling Methods 0.000 description 2
- 235000021323 fish oil Nutrition 0.000 description 2
- 230000002538 fungal effect Effects 0.000 description 2
- 238000000227 grinding Methods 0.000 description 2
- 244000005706 microflora Species 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- 230000003472 neutralizing effect Effects 0.000 description 2
- 239000000047 product Substances 0.000 description 2
- 230000000644 propagated effect Effects 0.000 description 2
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 description 2
- 210000002966 serum Anatomy 0.000 description 2
- 238000005303 weighing Methods 0.000 description 2
- 102000002322 Egg Proteins Human genes 0.000 description 1
- 108010000912 Egg Proteins Proteins 0.000 description 1
- 241000711841 Rabies virus ERA Species 0.000 description 1
- 241001125046 Sardina pilchardus Species 0.000 description 1
- 239000000654 additive Substances 0.000 description 1
- 238000004220 aggregation Methods 0.000 description 1
- 230000002776 aggregation Effects 0.000 description 1
- 235000015278 beef Nutrition 0.000 description 1
- 230000004071 biological effect Effects 0.000 description 1
- 235000015895 biscuits Nutrition 0.000 description 1
- 238000010411 cooking Methods 0.000 description 1
- 201000010099 disease Diseases 0.000 description 1
- 208000037265 diseases, disorders, signs and symptoms Diseases 0.000 description 1
- 238000001035 drying Methods 0.000 description 1
- 235000013345 egg yolk Nutrition 0.000 description 1
- 210000002969 egg yolk Anatomy 0.000 description 1
- 239000007788 liquid Substances 0.000 description 1
- 235000013372 meat Nutrition 0.000 description 1
- 235000019198 oils Nutrition 0.000 description 1
- 238000004806 packaging method and process Methods 0.000 description 1
- 239000012188 paraffin wax Substances 0.000 description 1
- 229920002635 polyurethane Polymers 0.000 description 1
- 239000004814 polyurethane Substances 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 239000000843 powder Substances 0.000 description 1
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 1
- 229960003127 rabies vaccine Drugs 0.000 description 1
- 235000019512 sardine Nutrition 0.000 description 1
- 239000001993 wax Substances 0.000 description 1
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области биотехнологии, а именно к производству биопрепаратов для оральной иммунизации животных.The invention relates to the field of biotechnology, namely the production of biological products for oral immunization of animals.
Имеется способ изготовления вакцины против бешенства для орального применения (W.Winkler et al., Vaccination of foxes against rabies using ingested bait. - J. Wildlife Disease, 1978, 11, 3, р.382-388), заключающийся во введении в приманку (коммерческий бисквит) суспензии вируса бешенства штамм ERA, выращенный в клетках ВНК-21, и дальнейшем замораживании приманки с вирусом при минус 70°С. Замороженные приманки покрывали жидкой смесью (49% парафина, 49% говяжьего жира и 2% сардинного масла).There is a method of manufacturing a rabies vaccine for oral administration (W. Winkler et al., Vaccination of foxes against rabies using ingested bait. - J. Wildlife Disease, 1978, 11, 3, p. 382-388), which consists in the introduction of the bait (commercial biscuit) suspension of rabies virus strain ERA grown in BHK-21 cells, and further freezing the bait with the virus at minus 70 ° C. Frozen lures were coated with a liquid mixture (49% paraffin, 49% beef fat and 2% sardine oil).
Недостаток этого способа в том, что он позволяет получить приманки, хранящиеся и применяющиеся только при низких отрицательных температурах.The disadvantage of this method is that it allows you to get bait, stored and used only at low freezing temperatures.
Известен также способ изготовления вакцины (K.F.Lawson, R. Hertler, K. M.Carlton, J.B.Campbell and A.J.Rhodes. Safety and Immunogenicity of ERA Strain of Rabies virus Propagated in BHK-21 Cell Line. - Can. J. Vet. Res. 1989, 53, p.438-444) для оральной иммунизации плотоядных против бешенства, состоящий в том, что суспензию штамма ERA вируса бешенства, размноженного в ВНК-21/С 13 клетках, вносят в пористую полиуретановую губку размером 31/31/38 мм, замораживают при минус 70°С, покрывают смесью жира/воска и применяют как при низких отрицательных, так и низких положительных температурах.There is also known a method of manufacturing a vaccine (KFLawson, R. Hertler, KMCarlton, JBCampbell and AJRhodes. Safety and Immunogenicity of ERA Strain of Rabies virus Propagated in BHK-21 Cell Line. - Can. J. Vet. Res. 1989, 53, p.438-444) for oral immunization of carnivores against rabies, consisting in the fact that a suspension of the rabies virus ERA strain propagated in BHC-21 / C 13 cells is introduced into a porous polyurethane sponge of 31/31/38 mm in size, frozen at minus 70 ° C, cover with a mixture of fat / wax and apply both at low negative and low positive temperatures.
Недостаток этого способа состоит в том, что для сохранения устойчивости вакцины применяются дорогостоящие коммерческий стабилизатор и 10% суспензия яичного желтка, а также низкие отрицательные температуры минус 20°С хранения. При применении вакцины в осенне-зимний и весенне-зимний периоды она изменяет агрегатное состояние при суточных колебаниях температуры, что инактивирует ее биологическую активность и тем самым снижает иммуногенность.The disadvantage of this method is that to maintain the stability of the vaccine, an expensive commercial stabilizer and a 10% suspension of egg yolk are used, as well as low negative temperatures minus 20 ° C storage. When using the vaccine in the autumn-winter and spring-winter periods, it changes the state of aggregation during diurnal temperature fluctuations, which inactivates its biological activity and thereby reduces immunogenicity.
Известен способ получения вирусвакцины (Патент РФ 2157700, 10.20.2000) против бешенства для оральной иммунизации диких плотоядных, при котором выращенную в перевиваемой культуре клеток почки сайги суспензию вируса бешенства, штамм ТС-80, смешанную со стабилизирующими компонентами в соотношении 1:1:2, подвергают сублимационному высушиванию в течение 48-72 часов, размалывают в шаровой мельнице и заполняют полученной массой полые брикеты-приманки.There is a method of producing a virus vaccine (RF Patent 2157700, 10.20.2000) against rabies for oral immunization of wild carnivores, in which a rabies virus suspension grown in transplanted saiga kidney cell culture, strain TS-80, mixed with stabilizing components in a ratio of 1: 1: 2 , subjected to freeze-drying for 48-72 hours, grind in a ball mill and fill the resulting mass of hollow briquette bait.
Недостатки этого метода состоят в многостадийности (высушивание, измельчение, заполнение приманок), длительности и трудоемкости процесса, а также высокой себестоимости.The disadvantages of this method are multi-stage (drying, grinding, filling the bait), the duration and complexity of the process, as well as the high cost.
Целью настоящего изобретения является способ изготовления вирусвакцины против бешенства для оральной иммунизации диких плотоядных животных, при котором высушивание вакцины происходит в приманке. Указанная цель достигается тем, что суспензию вакцинного штамма ТС-80 вируса бешенства, выращенную в перевиваемой культуре клеток почки сайги, смешивают с защитными добавками, полученный полуфабрикат наносят на приманку (пористый брикет), замораживают и высушивают сублимацией в течение 24-30 часов.The aim of the present invention is a method of manufacturing a rabies virus vaccine for oral immunization of wild carnivores, in which the vaccine is dried in bait. This goal is achieved by the fact that the suspension of the vaccine strain TS-80 of rabies virus, grown in an inoculated culture of saiga kidney cells, is mixed with protective additives, the resulting semi-finished product is applied to the bait (porous briquette), frozen and freeze-dried for 24-30 hours.
Положительный эффект получают при смешивании суспензии вируса с растворами пептона с лактозой и раствором пектина, замораживании при минус 40°С последующим сублимационном высушивании.A positive effect is obtained by mixing a suspension of the virus with solutions of peptone with lactose and a solution of pectin, freezing at minus 40 ° C, followed by freeze-drying.
Технологическая схема изготовления вирусвакцины против бешенства для оральной иммунизации диких плотоядных животныхTable
Technological scheme for the manufacture of rabies virus vaccine for oral immunization of wild carnivores
Примеры конкретного выполнения.Examples of specific performance.
Пример 1.Example 1
1,4±0,1 дм3 вируссодержащего материала, штамм ТС-80 вируса бешенства с инфекционной активностью 7,2±0,15 lg МЛД50/см3, выращенного в перевиваемой культуре клеток почки сайги, смешивают с 0,5 дм3 стабилизирующей среды, содержащей 40±2% пептона и 8±0,4% лактозы, и с 0,1 дм3 4±0,1% раствора пектина в соотношении 14:5:1 (вирусная суспензия стабилизатор пектин соответственно). Полученный полуфабрикат наносят на пористый брикет-приманку (изготовленный из муки) размером 5,5/3,5/1,5 см, массой 10-12 г с помощью дозатора “Контур”, нанося последовательно 2, а затем 3 см3 материала. Брикеты-приманки замораживают при минус 40°С и высушивают в аппарате для сублимационного высушивания в течение 24-30 часов. Готовые брикеты-приманки оценивают на контаминацию грибной и бактериальной микрофлорой, безвредность, инфекционную активность и иммуногенность. Вакцина была стерильной, безвредной, с инфекционной активностью 6,5±0,3 lg МЛД50/приманку. Для определения иммуногенности вакцину, ароматизированную рыбьим жиром, скармливали 5-месячным щенкам из расчета одна приманка (одна доза) на голову двукратно с интервалом 12 суток. В сыворотках крови вакцинированных щенков титры вируснейтрализующих антител составили от 1:8 до 1:32 через 30 суток после вакцинации, что свидетельствует об иммуногенности вакцины. Вакцина сохраняла иммуногенные свойства не менее 5 суток при температуре окружающей среды до 20°С и при хранении в течение 6 месяцев при температуре 6-8°С.1.4 ± 0.1 dm 3 of virus-containing material, strain TS-80 of rabies virus with infectious activity of 7.2 ± 0.15 lg MLD 50 / cm 3 grown in a transplanted culture of saiga kidney cells, mixed with 0.5 dm 3 stabilizing medium containing 40 ± 2% peptone and 8 ± 0.4% lactose, and with 0.1 dm 3 4 ± 0.1% pectin solution in a ratio of 14: 5: 1 (viral suspension stabilizer pectin, respectively). The resulting semi-finished product is applied to a porous briquette bait (made from flour) measuring 5.5 / 3.5 / 1.5 cm, weighing 10-12 g using a “Contour” batcher, applying successively 2 and then 3 cm 3 of material. Briquettes-bait freeze at minus 40 ° C and dried in the apparatus for freeze-drying for 24-30 hours. Ready briquette baits are evaluated for contamination with fungal and bacterial microflora, harmlessness, infectious activity and immunogenicity. The vaccine was sterile, harmless, with an infectious activity of 6.5 ± 0.3 lg MLD 50 / bait. To determine the immunogenicity, the vaccine flavored with fish oil was fed to 5-month-old puppies at the rate of one bait (one dose) per head twice with an interval of 12 days. In the blood serum of vaccinated puppies, the titers of neutralizing antibodies ranged from 1: 8 to 1:32 30 days after vaccination, which indicates the immunogenicity of the vaccine. The vaccine retained immunogenic properties for at least 5 days at an ambient temperature of up to 20 ° C and when stored for 6 months at a temperature of 6-8 ° C.
Пример 2.Example 2
14±0,2 дм3 вируссодержащего материала, штамм ТС-80 вируса бешенства с инфекционной активностью 7,3±0,10 lg МЛД50/см3, выращенного в перевиваемой культуре клеток почки сайги, смешивают с 5±0,1 дм3 защитной среды, содержащей 40±2% пептона и 8±0,4% лактозы и с 1±0,1 дм3 4±0,5% пектина, сохраняя соотношение, указанное в примере 1.14 ± 0.2 dm 3 of virus-containing material, strain TS-80 of rabies virus with infectious activity of 7.3 ± 0.10 lg MLD 50 / cm 3 grown in a transplanted culture of saiga kidney cells, mixed with 5 ± 0.1 dm 3 a protective medium containing 40 ± 2% peptone and 8 ± 0.4% lactose and with 1 ± 0.1 dm 3 4 ± 0.5% pectin, while maintaining the ratio specified in example 1.
Полученный полуфабрикат наносят на пористый брикет-приманку по 4,0 см3 размером 5,9/3,8/1,8 см, массой 12-14 г с помощью дозатора “Контур”. Брикеты замораживают при минус 40°С и высушивают в аппарате для сублимационной сушки в течение 24-30 часов. Готовые брикеты-приманки оценивают по контаминации грибной и бактериальной микрофлорой, безвредности, инфекционной активности и иммуногенности. Вакцина была стерильной, безвредной, с инфекционной активностью 6,4±0,2 lg МЛД50/приманку. Для использования в полевых условиях брикет-приманку ароматизировали рыбьим жиром и покрывали пищевой пленкой. Готовые приманки из расчета одна доза на голову раскладывали двукратно с интервалом 14 суток в феврале-марте вблизи лисьих нор. Через 3 месяца после вакцинации лис выборочно отстреливали и определяли титры вируснейтрализующих антител в пробах сывороток крови. У 6 из 10 отстреленных животных были обнаружены вируснейтрализующие антитела в титрах от 1:8 до 1:32, что доказывает иммуногенность испытанной вакцины. Вакцина сохраняла иммуногенные свойства не менее 5 суток при температуре окружающей среды до 20°С и при хранении в течение 6 месяцев при температуре 6-8°С.The resulting semi-finished product is applied to a porous briquette bait of 4.0 cm 3 measuring 5.9 / 3.8 / 1.8 cm, weighing 12-14 g using a “Contour” batcher. Briquettes are frozen at minus 40 ° C and dried in the apparatus for freeze-drying for 24-30 hours. Ready briquette baits are evaluated by contamination with fungal and bacterial microflora, harmlessness, infectious activity and immunogenicity. The vaccine was sterile, harmless, with an infectious activity of 6.4 ± 0.2 lg MLD 50 / bait. For use in the field, the briquette bait was flavored with fish oil and covered with cling film. Ready baits at the rate of one dose per head were laid out twice with an interval of 14 days in February-March near the fox holes. 3 months after vaccination, the foxes were selectively shot and virus-neutralizing antibody titers were determined in blood serum samples. In 6 out of 10 animals shot, neutralizing antibodies were detected in titers from 1: 8 to 1:32, which proves the immunogenicity of the tested vaccine. The vaccine retained immunogenic properties for at least 5 days at an ambient temperature of up to 20 ° C and when stored for 6 months at a temperature of 6-8 ° C.
Полученные данные свидетельствуют, что предлагаемый способ включает меньшее число этапов изготовления вакцины, более экономичен и производителен, менее трудоемок и позволяет получить иммунологически эффективную вирусвакцину против бешенства для оральной иммунизации диких плотоядных животных. Колебания температуры окружающей среды от положительных до отрицательных значений не оказывают влияния на иммуногенные характеристики вакцины.The data obtained indicate that the proposed method includes fewer stages of vaccine manufacturing, is more economical and productive, less time consuming and allows to obtain an immunologically effective rabies virus vaccine for oral immunization of wild carnivores. Fluctuations in ambient temperature from positive to negative do not affect the immunogenic characteristics of the vaccine.
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003120727/15A RU2250781C2 (en) | 2003-07-10 | 2003-07-10 | Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2003120727/15A RU2250781C2 (en) | 2003-07-10 | 2003-07-10 | Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores |
Publications (2)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2003120727A RU2003120727A (en) | 2005-02-27 |
| RU2250781C2 true RU2250781C2 (en) | 2005-04-27 |
Family
ID=35285745
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2003120727/15A RU2250781C2 (en) | 2003-07-10 | 2003-07-10 | Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2250781C2 (en) |
Cited By (3)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2311924C2 (en) * | 2005-12-09 | 2007-12-10 | ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии | Virus vaccine against rabies for oral immunization in wild carnivores and method for its manufacturing |
| EA015458B1 (en) * | 2010-11-03 | 2011-08-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Virus vaccine against rabies for oral immunization in wild carnivores and method for its production |
| RU2704970C1 (en) * | 2019-02-18 | 2019-11-01 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности | Bait for oral immunization of wild carnivores against rabies |
Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2134590C1 (en) * | 1997-11-24 | 1999-08-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных | Method of preparing inactivated vaccine against rabies in animals |
| RU2191600C1 (en) * | 2001-12-20 | 2002-10-27 | Скичко Николай Данилович | Method for obtaining antirabic vaccine |
-
2003
- 2003-07-10 RU RU2003120727/15A patent/RU2250781C2/en not_active IP Right Cessation
Patent Citations (2)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2134590C1 (en) * | 1997-11-24 | 1999-08-20 | Всероссийский научно-исследовательский институт защиты животных | Method of preparing inactivated vaccine against rabies in animals |
| RU2191600C1 (en) * | 2001-12-20 | 2002-10-27 | Скичко Николай Данилович | Method for obtaining antirabic vaccine |
Cited By (4)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2311924C2 (en) * | 2005-12-09 | 2007-12-10 | ГНУ ВНИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии | Virus vaccine against rabies for oral immunization in wild carnivores and method for its manufacturing |
| EA015458B1 (en) * | 2010-11-03 | 2011-08-30 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Virus vaccine against rabies for oral immunization in wild carnivores and method for its production |
| RU2440139C1 (en) * | 2010-11-03 | 2012-01-20 | Открытое Акционерное Общество "Институт Биотехнологий Ветеринарной Медицины" | Anti-rabies vaccine for oral immunisation of wild carnivorous animals and method of its obtaining |
| RU2704970C1 (en) * | 2019-02-18 | 2019-11-01 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский и технологический институт биологической промышленности | Bait for oral immunization of wild carnivores against rabies |
Also Published As
| Publication number | Publication date |
|---|---|
| RU2003120727A (en) | 2005-02-27 |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| US4622222A (en) | Process for the preparation of a lyophilized vaccine against duck virus hepatitis | |
| DE60035497T2 (en) | PROCEDURE FOR PRESERVING VIRUSES AND MYCOPLASMA | |
| RU2250781C2 (en) | Method for manufacturing viral antirabic vaccine for oral immunization i wild carnivores | |
| CN109055227A (en) | The protective agent and its method for preserving of genetic engineering bacterium strain freeze-drying preservation | |
| CN109091669A (en) | Swine fever-annulus hybrid antigen preparation method and products thereof, swine fever-annulus bigeminy subunit vaccine and preparation method thereof | |
| CA2097830C (en) | Spray-dried antigenic products and method of preparation | |
| US8298813B2 (en) | Method for preparing an expanded product for fermentation | |
| RU2169574C1 (en) | Method of biopreparation preparing and dry biopreparation | |
| CN113115787A (en) | Compound pesticide for preventing and treating rotifer harm by using chlorella vulgaris and application thereof | |
| RU2440139C1 (en) | Anti-rabies vaccine for oral immunisation of wild carnivorous animals and method of its obtaining | |
| RU2268926C2 (en) | Dry probiotic preparation and method for its preparing | |
| CN113384692A (en) | Duck reovirus and duck circovirus bivalent inactivated vaccine and preparation method thereof | |
| CN103316355A (en) | Pseudorabies live vaccine and preparation method thereof | |
| RU2138291C1 (en) | Method of preparing vaccine against smallpox in sheep | |
| RU2136141C1 (en) | Method of meadow mushroom sowing material growth stimulating | |
| RU2311924C2 (en) | Virus vaccine against rabies for oral immunization in wild carnivores and method for its manufacturing | |
| RU2121000C1 (en) | Nutrient medium for mycobacterium culturing | |
| RU2563542C1 (en) | Rabies vaccine for oral immunisation of wild and stray carnivorous animals and method for producing same | |
| US3843451A (en) | Microorganism production | |
| US3449209A (en) | Method of preparing brucella abortus vaccines | |
| RU2704970C1 (en) | Bait for oral immunization of wild carnivores against rabies | |
| RU2800372C1 (en) | Protective medium for drying of y. pestis ev strain cells | |
| CN108434105A (en) | Vaccine preparation method and preparation based on the accumulation of intracellular glycine betaine | |
| RU2378013C1 (en) | Method for preparation of virus vaccine against bird newcastle disease (for oral application) | |
| RU2138289C1 (en) | Virus-vaccine against aujeszky's disease |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20050711 |