RU2080827C1 - Method for transplanting kidney - Google Patents
Method for transplanting kidney Download PDFInfo
- Publication number
- RU2080827C1 RU2080827C1 SU5054891A RU2080827C1 RU 2080827 C1 RU2080827 C1 RU 2080827C1 SU 5054891 A SU5054891 A SU 5054891A RU 2080827 C1 RU2080827 C1 RU 2080827C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- renal
- recipient
- complex
- vessels
- nerve
- Prior art date
Links
- 210000003734 kidney Anatomy 0.000 title claims abstract description 31
- 238000000034 method Methods 0.000 title claims abstract description 19
- 210000005036 nerve Anatomy 0.000 claims abstract description 32
- 230000000694 effects Effects 0.000 claims abstract description 7
- 210000000056 organ Anatomy 0.000 claims abstract description 6
- 210000001367 artery Anatomy 0.000 claims description 12
- 238000002054 transplantation Methods 0.000 claims description 12
- 210000000626 ureter Anatomy 0.000 claims description 10
- 230000003872 anastomosis Effects 0.000 claims description 7
- 210000004197 pelvis Anatomy 0.000 claims description 7
- 210000003111 iliac vein Anatomy 0.000 claims description 6
- 210000003462 vein Anatomy 0.000 claims description 6
- 230000003881 arterial anastomosis Effects 0.000 claims description 5
- 230000002567 autonomic effect Effects 0.000 claims description 5
- 210000003932 urinary bladder Anatomy 0.000 claims description 4
- 210000003090 iliac artery Anatomy 0.000 claims description 3
- 210000004204 blood vessel Anatomy 0.000 claims description 2
- 230000007832 reinnervation Effects 0.000 abstract description 6
- 239000003814 drug Substances 0.000 abstract description 2
- 230000035899 viability Effects 0.000 abstract description 2
- 230000000717 retained effect Effects 0.000 abstract 1
- 239000000126 substance Substances 0.000 abstract 1
- 210000000609 ganglia Anatomy 0.000 description 7
- 241000282472 Canis lupus familiaris Species 0.000 description 5
- 230000030214 innervation Effects 0.000 description 5
- 210000000194 hypogastric plexus Anatomy 0.000 description 4
- 239000000243 solution Substances 0.000 description 4
- 210000001519 tissue Anatomy 0.000 description 4
- 230000002792 vascular Effects 0.000 description 4
- 206010002091 Anaesthesia Diseases 0.000 description 3
- 230000037005 anaesthesia Effects 0.000 description 3
- 230000015572 biosynthetic process Effects 0.000 description 3
- 239000002858 neurotransmitter agent Substances 0.000 description 3
- 230000000638 stimulation Effects 0.000 description 3
- 238000001356 surgical procedure Methods 0.000 description 3
- SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N (-)-norepinephrine Chemical compound NC[C@H](O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-QMMMGPOBSA-N 0.000 description 2
- 210000000709 aorta Anatomy 0.000 description 2
- 238000001574 biopsy Methods 0.000 description 2
- 239000008280 blood Substances 0.000 description 2
- 210000004369 blood Anatomy 0.000 description 2
- 208000020832 chronic kidney disease Diseases 0.000 description 2
- 208000022831 chronic renal failure syndrome Diseases 0.000 description 2
- 230000002638 denervation Effects 0.000 description 2
- 238000002474 experimental method Methods 0.000 description 2
- 239000000203 mixture Substances 0.000 description 2
- BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N morphine Chemical compound O([C@H]1[C@H](C=C[C@H]23)O)C4=C5[C@@]12CCN(C)[C@@H]3CC5=CC=C4O BQJCRHHNABKAKU-KBQPJGBKSA-N 0.000 description 2
- 238000013059 nephrectomy Methods 0.000 description 2
- 210000000653 nervous system Anatomy 0.000 description 2
- 230000001537 neural effect Effects 0.000 description 2
- 229960002748 norepinephrine Drugs 0.000 description 2
- SFLSHLFXELFNJZ-UHFFFAOYSA-N norepinephrine Natural products NCC(O)C1=CC=C(O)C(O)=C1 SFLSHLFXELFNJZ-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- 210000000505 parietal peritoneum Anatomy 0.000 description 2
- 230000010412 perfusion Effects 0.000 description 2
- 229920001296 polysiloxane Polymers 0.000 description 2
- 238000002360 preparation method Methods 0.000 description 2
- 210000002254 renal artery Anatomy 0.000 description 2
- 210000000574 retroperitoneal space Anatomy 0.000 description 2
- 230000005641 tunneling Effects 0.000 description 2
- 238000005406 washing Methods 0.000 description 2
- UVITTYOJFDLOGI-UHFFFAOYSA-N (1,2,5-trimethyl-4-phenylpiperidin-4-yl) propanoate Chemical compound C=1C=CC=CC=1C1(OC(=O)CC)CC(C)N(C)CC1C UVITTYOJFDLOGI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710179738 6,7-dimethyl-8-ribityllumazine synthase 1 Proteins 0.000 description 1
- 102000009027 Albumins Human genes 0.000 description 1
- 108010088751 Albumins Proteins 0.000 description 1
- 208000007204 Brain death Diseases 0.000 description 1
- 102000008186 Collagen Human genes 0.000 description 1
- 108010035532 Collagen Proteins 0.000 description 1
- 206010015548 Euthanasia Diseases 0.000 description 1
- 208000003098 Ganglion Cysts Diseases 0.000 description 1
- 206010019196 Head injury Diseases 0.000 description 1
- NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N Lidocaine Chemical compound CCN(CC)CC(=O)NC1=C(C)C=CC=C1C NNJVILVZKWQKPM-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 101710186608 Lipoyl synthase 1 Proteins 0.000 description 1
- 101710137584 Lipoyl synthase 1, chloroplastic Proteins 0.000 description 1
- 101710090391 Lipoyl synthase 1, mitochondrial Proteins 0.000 description 1
- 206010066453 Mesangioproliferative glomerulonephritis Diseases 0.000 description 1
- 241001465754 Metazoa Species 0.000 description 1
- 108010025020 Nerve Growth Factor Proteins 0.000 description 1
- 102000007072 Nerve Growth Factors Human genes 0.000 description 1
- 208000004880 Polyuria Diseases 0.000 description 1
- 208000002847 Surgical Wound Diseases 0.000 description 1
- 208000005400 Synovial Cyst Diseases 0.000 description 1
- 210000000683 abdominal cavity Anatomy 0.000 description 1
- 210000003815 abdominal wall Anatomy 0.000 description 1
- 210000003484 anatomy Anatomy 0.000 description 1
- 210000003192 autonomic ganglia Anatomy 0.000 description 1
- 210000000467 autonomic pathway Anatomy 0.000 description 1
- 210000003050 axon Anatomy 0.000 description 1
- 230000002146 bilateral effect Effects 0.000 description 1
- 230000017531 blood circulation Effects 0.000 description 1
- 239000002729 catgut Substances 0.000 description 1
- 230000001684 chronic effect Effects 0.000 description 1
- 229920001436 collagen Polymers 0.000 description 1
- 230000008878 coupling Effects 0.000 description 1
- 238000010168 coupling process Methods 0.000 description 1
- 238000005859 coupling reaction Methods 0.000 description 1
- 230000006378 damage Effects 0.000 description 1
- 238000003745 diagnosis Methods 0.000 description 1
- AAOVKJBEBIDNHE-UHFFFAOYSA-N diazepam Chemical compound N=1CC(=O)N(C)C2=CC=C(Cl)C=C2C=1C1=CC=CC=C1 AAOVKJBEBIDNHE-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 230000008034 disappearance Effects 0.000 description 1
- 238000006073 displacement reaction Methods 0.000 description 1
- 230000035619 diuresis Effects 0.000 description 1
- RMEDXOLNCUSCGS-UHFFFAOYSA-N droperidol Chemical compound C1=CC(F)=CC=C1C(=O)CCCN1CC=C(N2C(NC3=CC=CC=C32)=O)CC1 RMEDXOLNCUSCGS-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960000394 droperidol Drugs 0.000 description 1
- 210000001951 dura mater Anatomy 0.000 description 1
- 238000005516 engineering process Methods 0.000 description 1
- PJMPHNIQZUBGLI-UHFFFAOYSA-N fentanyl Chemical compound C=1C=CC=CC=1N(C(=O)CC)C(CC1)CCN1CCC1=CC=CC=C1 PJMPHNIQZUBGLI-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
- 229960002428 fentanyl Drugs 0.000 description 1
- 239000000835 fiber Substances 0.000 description 1
- 230000005714 functional activity Effects 0.000 description 1
- 230000000574 ganglionic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001951 hemoperfusion Effects 0.000 description 1
- 238000002513 implantation Methods 0.000 description 1
- 239000007924 injection Substances 0.000 description 1
- 238000002347 injection Methods 0.000 description 1
- 238000002955 isolation Methods 0.000 description 1
- 208000017169 kidney disease Diseases 0.000 description 1
- 238000002350 laparotomy Methods 0.000 description 1
- 229960004194 lidocaine Drugs 0.000 description 1
- 210000001165 lymph node Anatomy 0.000 description 1
- 210000004088 microvessel Anatomy 0.000 description 1
- 229960005181 morphine Drugs 0.000 description 1
- 210000002569 neuron Anatomy 0.000 description 1
- 230000000508 neurotrophic effect Effects 0.000 description 1
- 230000001936 parietal effect Effects 0.000 description 1
- 230000000737 periodic effect Effects 0.000 description 1
- 210000004303 peritoneum Anatomy 0.000 description 1
- 230000008092 positive effect Effects 0.000 description 1
- 230000002980 postoperative effect Effects 0.000 description 1
- 238000009101 premedication Methods 0.000 description 1
- 238000004321 preservation Methods 0.000 description 1
- 239000003755 preservative agent Substances 0.000 description 1
- 230000002335 preservative effect Effects 0.000 description 1
- 230000002035 prolonged effect Effects 0.000 description 1
- 210000002796 renal vein Anatomy 0.000 description 1
- 238000000926 separation method Methods 0.000 description 1
- 238000004088 simulation Methods 0.000 description 1
- 230000008719 thickening Effects 0.000 description 1
- 230000002485 urinary effect Effects 0.000 description 1
- 210000001631 vena cava inferior Anatomy 0.000 description 1
Landscapes
- Prostheses (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно в трансплантологии, и может быть использовано для сохранения и восстановления нервных влияний в почечных трансплантатах. The invention relates to medicine, namely to transplantology, and can be used to preserve and restore nerve effects in renal transplants.
Известен способ пересадки почки путем изъятия ее из донорского забрюшинного пространства с отрезками сосудов, мочеточника и постганглионарных ренальных нервов в составе сосудистой ножки, анастомозирования почечных сосудов трансплантата с подвздошными сосудами в тазу реципиента, формирования мочеточниково-мочепузырного соустья и восстановления нервных связей пересаженной почки путем бесшовного соединения центрального отрезка реципиентного подчревного нерва с отрезками постганглионарных нервов трансплантата посредством рассасывающейся коллагеновой муфты (прототип). A known method of kidney transplantation by removing it from the donor retroperitoneal space with segments of blood vessels, the ureter and postganglionic renal nerves as part of the vascular pedicle, anastomosing the renal vessels of the transplant with the iliac vessels in the recipient's pelvis, the formation of the ureter-urinary urinary joint connection and the central segment of the recipient hypogastric nerve with segments of the postganglionic nerves of the transplant through collagen coupling (prototype).
Недостатками прототипа являются:
невозможность при использовании такой методики забора нефротрансплантата хотя бы частично сохранить жизнеспособность его интраорганного нервного аппарата и, следовательно, внутрипочечные нервные влияния на последующих этапах гетеротопической пересадки и в посттрансплантационном периоде из-за отрыва экстраорганно расположенных ганглиозных нейронов почки от ее собственных ренальных аксонов;
низкая эффективность методики хирургической реиннервации пересаженной почки реципиентными нервными источниками, не позволяющая в короткие сроки в достаточном объеме восстановить в трансплантате нервно-трофические влияния.The disadvantages of the prototype are:
the impossibility of using at least partially retaining the viability of its intraorgan nervous system and, therefore, intrarenal neural influences at the subsequent stages of heterotopic transplantation and in the post-transplantation period due to the separation of extraorganized ganglionic neurons of the kidney from its own renal axons;
low efficiency of surgical reinnervation of the transplanted kidney by recipient nerve sources, which does not allow to restore neuro-trophic influences in the transplant in a sufficient amount of time in a short time.
Цель изобретения сохранение и восстановление иннервации почечного трансплантата в процессе его гетеротопической пересадки и в посттрансплантационном периоде. The purpose of the invention is the preservation and restoration of the innervation of the renal transplant during its heterotopic transplantation and in the post-transplant period.
Цель достигается преднамеренным включением в трансплантируемый почечный органокомплекс двух основных параорганных нейроганглиев на сохранных постганглионарных нервных связях почки, "контактной" реэфферентацией пересаженных нервных узлов реципиентными паравазальными сплетениями, а также активной имплантационной реиннервацией самой почки этими сплетениями и концевыми пучками реципиентных подчревных нервов. The goal is achieved by the deliberate inclusion in the transplanted kidney organocomplex of two main paraorgan neuroganglia on the intact postganglionic neural connections of the kidney, “contact” referentiation of the transplanted nerve nodes by recipient paravasal plexuses, and also by active implantation reinnervation of the kidney itself by these plexus and terminal plexuses.
На чертеже проиллюстрирован предлагаемый способ. The drawing illustrates the proposed method.
Способ осуществляют следующим образом. The method is as follows.
Изымают из донорского забрюшинного пространства почку 1 с почечными сосудами 2, 3, отрезком мочеточника 4 и двумя основными околоорганными нервными ганглиями 5, 6 на постганглионарных нервных пучках 7, 8. Сохраняют в оптимальных для нервного аппарата условиях весь нефротрансплантат до момента формирования его донорско-реципиентных анатомических связей, отслаивают в тазу реципиента от стенок подвздошных артерий 9 и вены 10 по лентовидному адвентициальному лоскуту 11, 12, мобилизуют на стороне предстоящей трансплантации дистальные пучки подчревного сплетения 13, формируют сосудистые соустья 14, 15 и мочеточниково-пузырный анастомоз 16, помещают один из вегетативных узлов 5 почечно-нервного комплекса в промежутках между стенкой подвздошной артерии 3 и проксимальной частью выкроенного с ее поверхности лоскута 11 выше уровня артериального анастомоза 14, укладывают аналогично второй нейроганглий 5 трансплантата в угол между началом паравенозного лоскута 12 и стенкой подвздошной вены 10, окутывают и фиксируют оба узла на поверхностях реципиентных сосудов проксимальными частями лоскутов и внедряют в почечную пазуху 17 свободные дистальные концы отмобилизованных подчревных нервов 13 и подготовленных паравазальных лоскутов 11, 12. Kidney 1 is removed from the retroperitoneal space with renal vessels 2, 3, a segment of the ureter 4, and two major organ nerve ganglia 5, 6 on the postganglionic nerve bundles 7, 8. The nephrotransplant is kept under optimal conditions for the nervous apparatus until its donor-recipient formation of anatomical connections, exfoliate in the recipient's pelvis from the walls of the iliac arteries 9 and veins 10 along the ribbon-like advent flap 11, 12, distal bundles are mobilized on the side of the upcoming transplantation plexus 13, form vascular anastomoses 14, 15 and uretero-cystic anastomosis 16, place one of the vegetative nodes 5 of the renal-neural complex in the spaces between the wall of the ileal artery 3 and the proximal part of the flap 11 cut from its surface 11 above the level of arterial anastomosis 14, lay similarly, the second neuroganglion 5 of the graft in the corner between the beginning of the paravenous flap 12 and the wall of the iliac vein 10, envelop and fix both nodes on the surfaces of the recipient vessels with the proximal parts of the flaps and introduce into the renal sinus 17 the free distal ends of the mobilized hypogastric nerves 13 and the prepared paravasal flaps 11, 12.
Способ, его воспроизводимость и эффективность иллюстрируются следующими примерами. The method, its reproducibility and effectiveness are illustrated by the following examples.
Пример 1. В эксперименте на беспородной собаке проводили премедикацию атропиром, реланиумом и морфином за 20 мин до оперативного вмешательства. Ингаляционный наркоз осуществляли аппаратом "Полинаркон" с помощью азеотропной смеси и кратных введений фентанила и дроперидола по схеме нейролептанальгезии. Через микрокатетер, проведенный по игле в пространство позвоночного канала над твердой мозговой оболочкой, дробно вводили лидокаин и промедол для пролонгированной перидуральной анестезии. На III Б стадии наркоза выполняли полную срединную лапаротомию и правостороннюю нефрэктомию, взяв удаленную почку для контрольных исследований интраорганной иннервации и внутритканевой нейромедиации. В правой подвздошной области над общими подвздошными сосудами рассекали париетальную брюшину между артерией и веной до уровня ниже места их деления на наружные и внутренние. Выпрепаровывали и мобилизовали дистальные и концевые пучки нижнего подчревного сплетения. С поверхностей подвздошных сосудов микроинструментами выкраивали два паравазальных фасциально-адвентициальных лоскута лентовидной формы, содержащие элементы вегетативного сплетения и микрососуды. Лоскуты аккуратно отслаивали от стенок артерии и вены до уровня, несколько ниже бифуркации подвздошных сосудов, где отсекали их дистальные концы. Оба отмобилизованных лоскута смещали в стороны на проксимальных "ножках". Затем между клеммами Блелока производили в сосудах артерио- и венотомическое отверстия выше уровня отсечения дистальных концов лоскутов для предстоящего анастомозирования с почечными сосудами трансплантата. Оставшуюся левую почку будущий трансплантат выделяли из задней париетальной брюшины и забрюшинной клетчатки по направлению от выпуклой части и полюсов к почечной ножке. После полной мобилизации органа аккуратно выпрепаровывали почечные сосуды и верхнюю половину мочеточника, стараясь не повреждать элементы околопочечного вегетативного сплетения. Пучок нервов, идущий по верхней стенке артерии, выделяли до места отхождения последней от аорты, где в верхнем углу осторожно выпрепаровывали его булавовидное утолщение верхний аортально-почечный нейроганглий. Аналогичным образом по нижней стенке артерии в проксимальном направлении выделяли пучок нервов, связанный с нижним артально-почечным ганглием. Подготовив таким образом почечно-нервный комплекс для изъятия, поочередно накладывали зажимы на начало почечной артерии, конец почечной вены и на мочеточник, которые пересекали в той же последовательности. Преганглионарные связи подготовленных к изъятию вегетативных узлов отсекали острым лезвием и после "отмывания" почки от крови через ее артерию консервирующим раствором Коллинза, переносили изолированный почечно-нервный комплекс в подготовленную подвздошную область таза. В реципиентной зоне почечные сосуды нефротрансплантата анастомозировали ручным атравматичным швом Морозовой с ранее выполненными ангиостомическими отверстиями в подвздошных сосудах по типу "конец в бок". Культю мочеточника соединяли с мочевым пузырем методом субмукозного тоннелирования. Верхний аортально-почечный нейроганглий трансплантата помещали в промежуток между стенкой подвздошной артерии и проксимальной частью выкроенного с ее поверхности лоскута выше уровня артериального соустья. Аналогично укладывали второй нейроганглий трансплантата в угол между началом паравенозного лоскута и стенкой подвздошной вены, после чего окутывали и фиксировали оба узла на поверхностях реципиентных сосудов проксимальными частями лоскутов с помощью одиночных микрошвов. В завершение процедуры реиннервации почечного комплекса с помощью специального устройства нейроимплантатора внедряли в почечную пазуху свободные дистальные концы отмобилизованных подчревных нервов и обоих паравазальных лоскутов, не повреждая при этом элементов почечной ножки трансплантата. Пересаженную почку фиксировали в реципиентной зоне чрескапсулярными кетгутовыми швами за полюса во избежание натяжений и смещений источников реиннервации. Операционную рану после санации брюшной полости ушивали послойно наглухо. В интересующие сроки производили пункционные биопсии трансплантата через брюшную стенку, а после эвтаназии весь пересаженный почечно-нервный комплекс с реципиентными источниками реиннервации изымали и подвергали детальному нейрогистологическому и нейромедиаторному исследованию в сравнении с нормальной почкой и нефротрансплантатами, реиннервированными по способу-прототипу. Example 1. In an experiment on a mongrel dog, premedication with atropyr, relanium and morphine was performed 20 minutes before surgery. Inhalation anesthesia was performed with the Polynarcon apparatus using an azeotropic mixture and multiple injections of fentanyl and droperidol according to the neuroleptanalgesia scheme. Lidocaine and promedol were injected fractionally for prolonged peridural anesthesia through a microcatheter drawn through a needle into the space of the spinal canal above the dura mater. In stage III B anesthesia, a complete median laparotomy and right-sided nephrectomy were performed, taking the removed kidney for control studies of intraorgan innervation and interstitial neuromediation. In the right iliac region above the common iliac vessels, the parietal peritoneum was cut between the artery and vein to a level below the place of their division into external and internal. The distal and terminal bundles of the inferior hypogastric plexus were prepared and mobilized. Two paravasal fascial-adventitious ribbon-shaped flaps containing elements of the autonomic plexus and microvessels were cut from the surfaces of the iliac vessels with micro-tools. The flaps were carefully peeled from the walls of the artery and veins to a level slightly lower than the bifurcation of the iliac vessels, where their distal ends were cut off. Both mobilized flaps were displaced to the sides on the proximal "legs". Then, arterio- and venotomy openings were made between the Blok terminals in the vessels above the cut-off level of the distal ends of the flaps for the upcoming anastomosis with the renal vessels of the graft. The remaining transplant was isolated from the posterior parietal peritoneum and retroperitoneal fiber in the direction from the convex part and poles to the renal leg. After complete mobilization of the organ, the renal vessels and the upper half of the ureter were carefully prepared, trying not to damage the elements of the perinephric vegetative plexus. A bundle of nerves running along the upper wall of the artery was isolated to the place where it lasted from the aorta, where its club-shaped thickening was carefully dissected in the upper aortic-renal neuroganglion. Similarly, a bundle of nerves associated with the lower articular renal ganglion was isolated along the lower wall of the artery in the proximal direction. Having thus prepared the renal-neural complex for removal, clamps were alternately applied to the beginning of the renal artery, the end of the renal vein and the ureter, which crossed in the same sequence. The preganglionic connections of the vegetative nodes prepared for removal were cut off with a sharp blade and after washing the kidney from the blood through its artery with Collins preservative solution, the isolated renal-neural complex was transferred to the prepared iliac region of the pelvis. In the recipient zone, the renal vessels of the nephrotransplant were anastomosed with a manual atraumatic suture Morozova with previously made angiostomy holes in the iliac vessels of the type "end to side". The ureter stump was connected to the bladder by submucous tunneling. The superior aortic-renal neuroganglion graft was placed between the wall of the ileal artery and the proximal part of the flap cut from its surface above the level of arterial anastomosis. Similarly, the second neuroganglion of the graft was placed in the angle between the beginning of the paravenous flap and the wall of the iliac vein, after which both nodes were wrapped and fixed on the surfaces of the recipient vessels with the proximal parts of the flaps using single microsutures. At the end of the reinnervation of the renal complex using a special device of a neuroimplantator, the free distal ends of the mobilized hypogastric nerves and both paravasal flaps were introduced into the kidney sinus without damaging the elements of the renal leg of the graft. The transplanted kidney was fixed in the recipient area with transcapsular catgut sutures at the poles to avoid tension and displacement of reinnervation sources. The surgical wound after rehabilitation of the abdominal cavity was sutured in layers tightly. Puncture biopsy of the transplant through the abdominal wall was performed at an interesting time, and after euthanasia, the entire transplanted renal-neural complex with recipient sources of reinnervation was removed and subjected to detailed neurohistological and neurotransmitter studies in comparison with a normal kidney and nephrotransplants that were reinnervated by the method.
Пример 2. У беспородной собаки-донора произвели забор почки в комплексе с двумя основными околоорганными нейроганглиями, заканюлировали силиконовыми трубками артерию и вену, которые подсоединили к заполненному кровью перфузионному блоку АИК. Хранение трансплантата осуществляли в контейнере с раствором Гамбро, не прекращая гемоперфузии в течение 6 ч. На протяжении всего периода хранения почечно-нервного комплекса с помощью стационарного электростимулятора ЛС-1 и контактных микроэлектродов изъятые с почкой нейроганглии подвергали периодической электростимуляции импульсами длительностью 0,2 мс амплитудой 30 мВ частотой 60 Гц по 3 с через каждые 30 с стимуляции. Собаке-реципиенту после бинефрэктомии произвели пересадку изолированного донорского почечно-нервного комплекса на подвздошные сосуды, предварительно выкроив с их поверхностей лентовидные адвентициальные лоскуты, отмобилизовав в тазу концевые пучки подчревного нервного сплетения и отсоединив от нейроганглиев электроды стимулятора. После формирования сосудистых соустий и уретероцистоанастомоза помещали один из узлов почечно-нервного комплекса в промежуток между стенкой подвздошной артерии и проксимальной частью выкроенного с ее поверхности лоскута выше уровня артериального анастомоза, укладывали аналогично второй нейроганглий трансплантата в угол между началом паравенозного лоскута и стенкой подвздошной вены, окутывали и фиксировали оба узла на поверхностях реципиентных сосудов проксимальными частями лоскутов и внедряли в почечную пазуху свободные дистальные концы отмобилизованных подчревных нервов и обоих паравазальных лоскутов. Почку фиксировали чрескапсулярными микрошвами. Затем в реципиентную зону к пересаженным с почкой ганглиям дополнительно имплантировали автономный стимулятор с микроэлектродами, генерирующий вышеуказанные каскады импульсов, соответствующие режиму биоэлектрической активности преганглионарных почечных нервов. Нервные узлы трансплантата стимулировали в течение 15 суток посттрансплантационного периода и отключали стимулятор после исчезновения проявлений денервационного феномена Кэннона-Розенблюта. Трансплантат изымали и подвергали комплексному нейрогистологическому и нейромедиаторному исследованию. Example 2. In a mongrel donor dog, a kidney was taken in combination with two main near-organ neuroganglia, silicone arteries and veins were cannulated, which were connected to the blood-filled AIC perfusion unit. The transplant was stored in a container with Gambro solution, without stopping hemoperfusion for 6 hours. Throughout the entire period of storage of the renal-neural complex using a stationary electric stimulator LS-1 and contact microelectrodes, neuroganglia taken from the kidney were subjected to periodic electrical stimulation with pulses of 0.2 ms amplitude 30 mV at 60 Hz for 3 s every 30 s of stimulation. The recipient dog after a binectomy was transplanted with an isolated donor renal-neural complex to the iliac vessels, having previously cut ribbon-like adventitious flaps from their surfaces, having mobilized end bundles of the hypogastric plexus in the pelvis and disconnected the electrodes from the neuroganglia. After the formation of vascular anastomoses and ureterocystoanastomosis, one of the nodes of the renal-neural complex was placed in the gap between the wall of the ileal artery and the proximal part of the flap cut from its surface above the level of the arterial anastomosis, they were placed similarly to the second neuroganglion graft in the corner between the beginning of the paravenous flap and the portal wall and fixed both nodes on the surfaces of the recipient vessels with the proximal parts of the flaps and implanted free distal into the renal sinus ny ends of the mobilized hypogastric nerves and both paravasal flaps. The kidney was fixed with transcapsular microsutures. Then, an autonomous stimulator with microelectrodes was additionally implanted in the recipient zone to the ganglia transplanted with the kidney, generating the above cascades of pulses corresponding to the bioelectrical activity mode of the preganglionic renal nerves. The nerve nodes of the transplant were stimulated for 15 days of the post-transplant period and the stimulator was switched off after the manifestations of the Cannon-Rosenbluth denervation phenomenon disappeared. The graft was removed and subjected to a comprehensive neurohistological and neurotransmitter study.
Пример 3. Забор почечно-нервного комплекса с двумя аортальнопочечными вегетативными узлами осуществляли у собаки-донора с моделированной мозговой смертью. Тотчас после выключения комплекса из кровотока почечные сосуды трансплантата катетеризировали силиконовыми трубками, соединенными противоположными своими концами с бедренными сосудами животного. Затем децентрализовали от нервной системы донорского организма оба нейроганглия и повторно включали уже изолированный почечно-нервный комплекс в "бедренный" кровоток донора, поместив при этом аллотрансплантат в контейнер с раствором Евроколлинз. К нейроганглиям аутоперфузируемого изолированного почечно-нервного комплекса подсоединили микроантенну датчика от дистанционного стимулятора, расположенного за пределами контейнера и генерирующего каскады импульсов длительностью 061 0,3 мс амплитудой 30 мВ и частотой 40 60 Гц. В течение 3 ч изоляции перфузируемого почечно-нервного комплекса в ходе симультанной подготовки реципиента осуществляли периодическую стимуляцию его нейроганглиев в режиме модулируемой биоэлектрической активности преганглионарных почечных нервов. Тем временем у собаки-реципиента производили двустороннюю нефрэктомию и подготовку реципиентной зоны: выкраивали паравазальные лоскуты и мобилизовали концевые части подчревных нервов. Затем осуществляли типичную гетеротопическую трансплантацию донорской почки в таз реципиенту, временно отсоединив антенну датчика от ганглиев. В дополнение к традиционным сосудистым соустьям и мочеточниково-мочепузырному анастомозу согласно разработанной методике помещали один из узлов почечно-нервного комплекса в промежуток между стенкой подвздошной артерии и проксимальной частью выкроенного с ее поверхности лоскута выше уровня артериального анастомоза, укладывали аналогично второй нейроганглий трансплантата в угол между началом паравенозного лоскута и стенкой подвздошной вены, окутывали и фиксировали оба узла на поверхностях реципиентных сосудов проксимальными частями лоскутов и внедряли в почечную пазуху с помощью нейроимплантатора свободные дистальные концы отмобилизованных подчревных нервов и обоих паравазальных лоскутов. Почку фиксировали на месте чрескапсулярными микрошвами за полюса. Затем в реципиентную зону к пересаженным с почкой ганглиям повторно имплантировали антенну датчика и продолжали импульсное воздействие на ганглии дистанционным стимулятором в течение 9 суток посттрансплантационного периода. Полное отключение генератора импульсов производили после исчезновения денервационных феноменов со стороны функциональной деятельности трансплантата. В интересующие сроки осуществляли пункционные биопсии и окончательное изъятие трансплантата для нейрогистологических и нейромедиаторных исследований. Example 3. The fence of the renal-neural complex with two aortic-renal autonomic nodes was carried out in a dog-donor with simulated brain death. Immediately after the complex was turned off from the bloodstream, the renal vessels of the transplant were catheterized with silicone tubes connected at their opposite ends to the femoral vessels of the animal. Then both neuroganglia were decentralized from the nervous system of the donor organism and re-included the already isolated renal-neural complex in the "femoral" blood flow of the donor, while placing the allograft in a container with Eurocollins solution. A sensor micro-antenna from a remote stimulator located outside the container and generating cascades of pulses with a duration of 061 0.3 ms with an amplitude of 30 mV and a frequency of 40-60 Hz was connected to the neuroganglia of an autoperfused isolated renal nerve complex. During 3 hours of isolation of the perfused renal-neural complex during the simultaneous preparation of the recipient, his neuroganglia were periodically stimulated in the modulated bioelectric activity mode of the preganglionic renal nerves. In the meantime, a recipient dog underwent bilateral nephrectomy and preparation of the recipient zone: paravasal flaps were cut out and the terminal parts of the hypogastric nerves were mobilized. Then a typical heterotopic transplantation of a donor kidney into the pelvis of the recipient was carried out, temporarily disconnecting the sensor antenna from the ganglia. In addition to the traditional vascular anastomoses and the ureter-urinary bladder anastomosis, according to the developed method, one of the nodes of the renal-neural complex was placed in the gap between the wall of the ileal artery and the proximal part of the flap cut from its surface above the level of the arterial anastomosis, and similarly placed the second neuroganglia at the beginning of the graft paravenous flap and the wall of the iliac vein, enveloped and fixed both nodes on the surfaces of the recipient vessels with proximal parts E flaps and introduced into the renal sinus via neyroimplantatora free distal ends mobilized and hypogastric nerves paravasal both flaps. The kidney was fixed in place by transcapsular microsutures at the poles. Then, the sensor antenna was re-implanted in the recipient zone to the ganglia transplanted with a kidney and the pulse stimulation of the ganglia with a remote stimulator was continued for 9 days of the post-transplantation period. A complete shutdown of the pulse generator was performed after the disappearance of denervation phenomena from the functional activity of the transplant. At the time of interest, puncture biopsies and final graft removal were performed for neurohistological and neurotransmitter studies.
Пример 4. Имитационный эксперимент гетеротопической пересадки почечно-нервного комплекса человека производили в анатомическом зале на фиксированном учебном женском и мужском трупах с соблюдением всех технических приемов способа. Выпрепаровывали и иссекали "донорскую" почку с отрезками почечной артерии, вены, мочеточника и двумя верхним и нижним аортально-почечными вегетативными ганглиями на постганглионарных нервных связях органа. В правой подвздошной области отслаивали париетальную тазовую брюшину, мобилизовали подвздошные сосуды книзу от бифуркации аорты и концевые пучки нижнего подчревного сплетения в виде двух пластин. С поверхностей общих и внутренних подвздошных артерий и вены отслаивали по лентовидному фасциально-адвентициальному лоскуту с паравазальными сплетениями в их составе, дистальные концы которых отсекали от стенок сосудов. Затем ручным способом имитировали производили типичную "клиническую" трансплантацию трупной почки в таз: сшивали почечные и внутренние подвздошные сосуды по типу "концы в бок", а мочеточник с мочевым пузырем методом субмукозного тоннелирования в заднюю стенку. Нейроганглии трансплантата уложили и зафиксировали под лоскутами, а концы последних и оба пучка подчревного сплетения внедрили с помощью нейроимплантатора в клетчатку почечной пазухи под переднюю и заднюю губы предлоханочных сегментов. Example 4. A simulation experiment of heterotopic transplantation of the renal-neural complex of a person was carried out in the anatomical hall on a fixed training female and male corpses in compliance with all the technical methods of the method. The “donor" kidney was dissected and dissected with segments of the renal artery, vein, ureter and two upper and lower aortic-renal autonomic ganglia on the postganglionic nerve connections of the organ. In the right iliac region, the parietal pelvic peritoneum was exfoliated, the iliac vessels were mobilized downward from aortic bifurcation and the end bundles of the lower hypogastric plexus in the form of two plates. From the surfaces of the common and internal iliac arteries and veins, a fascial-adventitial flap with paravasal plexuses in their composition was exfoliated, the distal ends of which were cut off from the walls of the vessels. Then, a typical “clinical” transplantation of a cadaveric kidney into a basin was simulated manually: the kidneys and internal ileal vessels were of the end-to-side type, and the ureter with the bladder by submucous tunneling into the posterior wall was sutured. The graft neuroganglia were placed and fixed under the flaps, and the ends of the latter and both bundles of the hypogastric plexus were inserted into the renal sinus tissue under the front and back lips of the pre-vesticular segments with a neuroimplant.
Существенных технических препятствий для реализации способа в клинике не отметили. Significant technical obstacles to the implementation of the method in the clinic were not noted.
Пример 5. У донора Я. 20 лет после несовместимой с жизнью черепно-мозговой травмы единым блоком изъяли почки с отрезками аорты, нижней полой вены, мочеточников, околопочечными лимфоузлами и вегетативным нервным околоорганным сплетением. Отмывочную перфузию комплекса осуществили раствором "Гамбро" с 5 -ным альбумином и аккуратно выпрепаровали в параорганной клетчатке медиальнее ворот почки элементы вегетативного сплетения с верхним и нижним аортально-почечными ганглиями. Почечно-нервный комплекс пересадили в таз реципиенту З. 36 лет с диагнозом: хронический мезангиопролиферативный гломерулонефрит, ХПН III a, у которого предварительно в подвздошной области таза отмобилизовали нижние подчревные нервы и подготовили подвздошные паравазальные лоскуты. После включения почки в кровоток ганглии трансплантата зафиксировали под проксимальными частями адвентициальных лент, а концы подчревных нервов и обоих лоскутов поочередно внедрили нейроимплантатором в почечный синус, не повреждая элементов ножки трансплантата. Последний зафиксировали в подвздошной ямке во избежание нарушения новообразованных нервных связей почки. Появление диуреза отметили в первые сутки посттрансплантационного периода. Послеоперационное течение гладкое, проявлений нефропатии отторжения не отмечено. Example 5. From donor Ya. 20 years after a head injury incompatible with life, the kidneys with segments of the aorta, inferior vena cava, ureters, perinephric lymph nodes, and autonomic nerve plexus were removed in a single block. Washing complex perfusion was carried out with Gambro solution with 5-m albumin and elements of the autonomic plexus with the upper and lower aortic-renal ganglia were carefully prepared in the paraorganic tissue medial to the kidney gate. The renal-neural complex was transplanted into the pelvis to recipient Z. 36 years old with a diagnosis of chronic mesangioproliferative glomerulonephritis, chronic renal failure III a, in which the lower hypogastric nerves were previously mobilized and the iliac paravasal flaps were prepared. After the kidney was included in the bloodstream, the graft ganglia were fixed under the proximal parts of the adventitious ribbons, and the ends of the hypogastric nerves and both flaps were alternately inserted by the neuroimplant into the renal sinus without damaging the elements of the graft leg. The latter was fixed in the iliac fossa in order to avoid disturbance of the newly formed nervous connections of the kidney. The appearance of diuresis was noted on the first day of the post-transplant period. The postoperative course is smooth, no manifestations of nephropathy of rejection were noted.
Предлагаемый способ разработан в эксперименте на 19 собаках. Положительный эффект его подтвержден комплексными нейроморфологическими и внутритканевыми медиаторными исследованиями опытных нефротрансплантатов в сравнении с таковыми способа-прототипа (контрольная серия) на 7, 15, 30, 60-е сутки посттрансплантационного периода. Так, к концу второго месяца внутриорганный нервный аппарат контрольных трансплантатов полностью дегенерировал по валлеровскому типу, а новообразованные нервные регенераты врастали через почечные ворота лишь до уровня внутреннего мозгового вещества, не проявляя при этом достаточной медиаторной активности, т. к. внутритканевое содержание норадреналина в кортикомедуллярной зоне к этому времени не превышало 410 пг/мг влажной ткани при структурном иннервационном индексе в центральном блоке почки 0,26 (норма соответственно 1260 и 1,0). Вместе с тем, при использовании предлагаемого способа удается сохранять жизнеспособным более 55 собственного нервного аппарата нефротрансплантата, а к 60-м суткам добиться его "дополнительной" реневротизации примерно на 30 35 что позволяет достичь величин иннервационного индекса до 0,85 0,9, а нейромедиации до 990±170 пг норадреналина на 1 мг влажной ткани. The proposed method was developed in an experiment on 19 dogs. Its positive effect was confirmed by complex neuromorphological and interstitial mediator studies of experimental nephrotransplants in comparison with those of the prototype method (control series) on the 7th, 15th, 30th, 60th days of the post-transplantation period. So, by the end of the second month, the intraorgan nerve apparatus of the control grafts completely degenerated according to the Waller type, and the newly formed nerve regenerates grew through the renal gate only to the level of the internal medulla, without showing sufficient mediator activity, since the interstitial content of norepinephrine in the corticomedullary zone by this time, it did not exceed 410 pg / mg of moist tissue with a structural innervation index in the central kidney block of 0.26 (the norm is 1260 and 1.0, respectively). However, when using the proposed method, it is possible to maintain more than 55 of the nephrotransplant’s own nervous apparatus viable, and by the 60th day to achieve its “additional” reneurotization by about 30 35, which allows reaching the values of the innervation index up to 0.85 0.9, and neuromediation up to 990 ± 170 pg of norepinephrine per 1 mg of wet tissue.
Представленные примеры и выборочные результаты проведенного исследования свидетельствуют о принципиальной новизне и эффективности способа, соответствующих поставленной цели сохранению и эффективному восстановлению иннервации почечного трансплантата. Технология способа проверена на воспроизводимость на 11 трупах взрослых людей обоего поля на кафедре оперативной хирургии с топографической анатомией Донецкого мединститута, а затем успешно апробирована в Донецком областном центре пересадки в ходе 6 клинических нефротрансплантаций. The presented examples and selective results of the study indicate the fundamental novelty and effectiveness of the method, consistent with the goal of preserving and effectively restoring the innervation of the renal transplant. The technology of the method was tested for reproducibility on 11 corpses of adults of both fields at the Department of Surgery with the topographic anatomy of the Donetsk Medical Institute, and then was successfully tested in the Donetsk Regional Transplant Center during 6 clinical nephrotransplantations.
Способ целесообразно использовать в отделениях и центрах пересадки почки для восстановления нервных влияний в почечных трансплантатах при оперативном лечении больных хронической почечной недостаточностью. The method is advisable to use in the departments and centers of kidney transplantation to restore nerve effects in renal transplants during surgical treatment of patients with chronic renal failure.
Claims (2)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5054891 RU2080827C1 (en) | 1992-07-14 | 1992-07-14 | Method for transplanting kidney |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| SU5054891 RU2080827C1 (en) | 1992-07-14 | 1992-07-14 | Method for transplanting kidney |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2080827C1 true RU2080827C1 (en) | 1997-06-10 |
Family
ID=21609664
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| SU5054891 RU2080827C1 (en) | 1992-07-14 | 1992-07-14 | Method for transplanting kidney |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2080827C1 (en) |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2213583C1 (en) * | 2002-01-17 | 2003-10-10 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for repairing reperfusion injury of allokidney |
| RU2226367C1 (en) * | 2002-12-10 | 2004-04-10 | Московский областной научно-исследовательский клинический институт | Method for renal transplantation |
| RU2231304C1 (en) * | 2002-11-26 | 2004-06-27 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for preventing transplant's chronic nephropathy |
| RU2231312C1 (en) * | 2003-04-03 | 2004-06-27 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for correcting intraorganic hemodynamics of allokidney |
| RU2271755C2 (en) * | 2003-10-24 | 2006-03-20 | Научно-Исследовательский Институт Трансплантологии И Искусственных Органов | Method for renal transplantation |
| RU2322946C1 (en) * | 2006-10-18 | 2008-04-27 | Государственное учреждение Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского (МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского) | Method for repairing ureter in transplanting kidney |
-
1992
- 1992-07-14 RU SU5054891 patent/RU2080827C1/en active
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| Авторское свидетельство СССР N 1124943, кл. A 61 B 17/00, 1984. * |
Cited By (6)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU2213583C1 (en) * | 2002-01-17 | 2003-10-10 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for repairing reperfusion injury of allokidney |
| RU2231304C1 (en) * | 2002-11-26 | 2004-06-27 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for preventing transplant's chronic nephropathy |
| RU2226367C1 (en) * | 2002-12-10 | 2004-04-10 | Московский областной научно-исследовательский клинический институт | Method for renal transplantation |
| RU2231312C1 (en) * | 2003-04-03 | 2004-06-27 | Российский научный центр хирургии РАМН | Method for correcting intraorganic hemodynamics of allokidney |
| RU2271755C2 (en) * | 2003-10-24 | 2006-03-20 | Научно-Исследовательский Институт Трансплантологии И Искусственных Органов | Method for renal transplantation |
| RU2322946C1 (en) * | 2006-10-18 | 2008-04-27 | Государственное учреждение Московский областной научно-исследовательский клинический институт им. М.Ф. Владимирского (МОНИКИ им. М.Ф. Владимирского) | Method for repairing ureter in transplanting kidney |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| HARII et al. | Free gracilis muscle transplantation, with microneurovascular anastomoses for the treatment of facial paralysis: A preliminary report | |
| Daniel et al. | Distant transfer of an island flap by microvascular anastomoses | |
| Murray et al. | Homologous aortic-valve-segment transplants as surgical treatment for aortic and mitral insufficiency | |
| Starzl et al. | A flexible procedure for multiple cadaveric organ procurement | |
| Harii et al. | One-stage transfer of the latissimus dorsi muscle for reanimation of a paralyzed face: a new alternative | |
| Ariyan et al. | The anterior chest approach for obtaining free osteocutaneous rib grafts | |
| DE2720544A1 (en) | PROCEDURE FOR CONTROL OF THE THROMBOGENICITY OF AN IMPLANT PROSTHESIS AND THE PRODUCT RECEIVED WITH IT | |
| Ullman | Tissue and organ transplantation | |
| RU2080827C1 (en) | Method for transplanting kidney | |
| Ozek et al. | Arterialization of the venous system in a rat lower limb model | |
| RC et al. | Discussion on reconstructive arterial surgery. | |
| Rosenbloom et al. | Early experimental experience with a surgically created, totally autogenous venous valve: a preliminary report | |
| Byrne et al. | Advantages of surgical arteriovenous fistulas for hemodialysis | |
| RU2074646C1 (en) | Method of organ transplantation | |
| RU2026010C1 (en) | Method for transplantation of kidney | |
| RU2044515C1 (en) | Method for transplantation of renoneural complex | |
| RU1801371C (en) | Method for reinnervation of kidney transplant | |
| RU1779342C (en) | Method for preparing kidney for transplantation | |
| Blades et al. | Development of a porcine VCA model using an external iliac vessel-based vertical rectus abdominus myocutaneous flap | |
| Brodman et al. | Pacemaker implantation through the internal jugular vein | |
| von Richter et al. | Microsurgical reconstruction of the lymphatic and nerve system in small bowel transplantation: the rat model, first results | |
| Morris et al. | The transverse cervical neurovascular free flap | |
| Di Cataldo et al. | Pancreas transplantation in the rat using Lee's technique: a reliable model in experimental Microsurgery | |
| RU2107468C1 (en) | Method for nephrectomy in a donor | |
| SU1127573A1 (en) | Method of recovery of lymph drainage from organ |