[go: up one dir, main page]

PL201770B1 - Struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie - Google Patents

Struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie

Info

Publication number
PL201770B1
PL201770B1 PL345272A PL34527299A PL201770B1 PL 201770 B1 PL201770 B1 PL 201770B1 PL 345272 A PL345272 A PL 345272A PL 34527299 A PL34527299 A PL 34527299A PL 201770 B1 PL201770 B1 PL 201770B1
Authority
PL
Poland
Prior art keywords
cells
substrate
recording
structure according
membrane
Prior art date
Application number
PL345272A
Other languages
English (en)
Other versions
PL345272A1 (en
Inventor
David Geraint Owen
Nicholas Gerard Byrne
Original Assignee
Xention Discovery Ltd
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Xention Discovery Ltd filed Critical Xention Discovery Ltd
Publication of PL345272A1 publication Critical patent/PL345272A1/xx
Publication of PL201770B1 publication Critical patent/PL201770B1/pl

Links

Classifications

    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/5005Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells
    • G01N33/5008Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics
    • G01N33/502Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving human or animal cells for testing or evaluating the effect of chemical or biological compounds, e.g. drugs, cosmetics for testing non-proliferative effects
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/53Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor
    • G01N33/543Immunoassay; Biospecific binding assay; Materials therefor with an insoluble carrier for immobilising immunochemicals
    • G01N33/54366Apparatus specially adapted for solid-phase testing
    • G01N33/54373Apparatus specially adapted for solid-phase testing involving physiochemical end-point determination, e.g. wave-guides, FETS, gratings
    • G01N33/5438Electrodes
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L3/00Containers or dishes for laboratory use, e.g. laboratory glassware; Droppers
    • B01L3/50Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes
    • B01L3/502Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures
    • B01L3/5025Containers for the purpose of retaining a material to be analysed, e.g. test tubes with fluid transport, e.g. in multi-compartment structures for parallel transport of multiple samples
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N27/00Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means
    • G01N27/26Investigating or analysing materials by the use of electric, electrochemical, or magnetic means by investigating electrochemical variables; by using electrolysis or electrophoresis
    • G01N27/28Electrolytic cell components
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/483Physical analysis of biological material
    • G01N33/487Physical analysis of biological material of liquid biological material
    • G01N33/48707Physical analysis of biological material of liquid biological material by electrical means
    • G01N33/48728Investigating individual cells, e.g. by patch clamp, voltage clamp
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N33/00Investigating or analysing materials by specific methods not covered by groups G01N1/00 - G01N31/00
    • G01N33/48Biological material, e.g. blood, urine; Haemocytometers
    • G01N33/50Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing
    • G01N33/68Chemical analysis of biological material, e.g. blood, urine; Testing involving biospecific ligand binding methods; Immunological testing involving proteins, peptides or amino acids
    • G01N33/6872Intracellular protein regulatory factors and their receptors, e.g. including ion channels
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0809Geometry, shape and general structure rectangular shaped
    • B01L2300/0829Multi-well plates; Microtitration plates
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0848Specific forms of parts of containers
    • B01L2300/0851Bottom walls
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/08Geometry, shape and general structure
    • B01L2300/0893Geometry, shape and general structure having a very large number of wells, microfabricated wells
    • BPERFORMING OPERATIONS; TRANSPORTING
    • B01PHYSICAL OR CHEMICAL PROCESSES OR APPARATUS IN GENERAL
    • B01LCHEMICAL OR PHYSICAL LABORATORY APPARATUS FOR GENERAL USE
    • B01L2300/00Additional constructional details
    • B01L2300/16Surface properties and coatings
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value
    • G01N2500/04Screening involving studying the effect of compounds C directly on molecule A (e.g. C are potential ligands for a receptor A, or potential substrates for an enzyme A)
    • GPHYSICS
    • G01MEASURING; TESTING
    • G01NINVESTIGATING OR ANALYSING MATERIALS BY DETERMINING THEIR CHEMICAL OR PHYSICAL PROPERTIES
    • G01N2500/00Screening for compounds of potential therapeutic value
    • G01N2500/10Screening for compounds of potential therapeutic value involving cells
    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y10TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC
    • Y10TTECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER US CLASSIFICATION
    • Y10T29/00Metal working
    • Y10T29/49Method of mechanical manufacture
    • Y10T29/49826Assembling or joining

Landscapes

  • Health & Medical Sciences (AREA)
  • Life Sciences & Earth Sciences (AREA)
  • Engineering & Computer Science (AREA)
  • Chemical & Material Sciences (AREA)
  • Immunology (AREA)
  • Biomedical Technology (AREA)
  • Molecular Biology (AREA)
  • Hematology (AREA)
  • Urology & Nephrology (AREA)
  • Physics & Mathematics (AREA)
  • General Health & Medical Sciences (AREA)
  • Analytical Chemistry (AREA)
  • General Physics & Mathematics (AREA)
  • Pathology (AREA)
  • Biochemistry (AREA)
  • Cell Biology (AREA)
  • Food Science & Technology (AREA)
  • Medicinal Chemistry (AREA)
  • Biotechnology (AREA)
  • Microbiology (AREA)
  • Chemical Kinetics & Catalysis (AREA)
  • Biophysics (AREA)
  • Proteomics, Peptides & Aminoacids (AREA)
  • Bioinformatics & Cheminformatics (AREA)
  • Toxicology (AREA)
  • Tropical Medicine & Parasitology (AREA)
  • Electrochemistry (AREA)
  • Clinical Laboratory Science (AREA)
  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Apparatus Associated With Microorganisms And Enzymes (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
  • Photoreceptors In Electrophotography (AREA)
  • Treatment Of Liquids With Adsorbents In General (AREA)
  • Analysing Materials By The Use Of Radiation (AREA)
  • Maintenance And Management Of Digital Transmission (AREA)
  • Physical Or Chemical Processes And Apparatus (AREA)
  • Transition And Organic Metals Composition Catalysts For Addition Polymerization (AREA)
  • Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
  • Devices For Checking Fares Or Tickets At Control Points (AREA)
  • Superconductors And Manufacturing Methods Therefor (AREA)

Abstract

Wynalazek obecny dotyczy struktury zawie- rajacej b lon e biologiczn a przylegaj ac a scis lym po laczeniem o wysokiej oporno sci do porowa- tego lub perforowanego pod loza, do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych oraz wysokowydajnego urz adzenia do wykry- wania i testowania zwi azków o aktywno sci na bramkowanych napi eciem kana lach jonowych oraz sposobów wytwarzania struktury wed lug wynalazku. PL PL PL PL

Description

Opis wynalazku
Przedmiotem wynalazku jest struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie.
Strukturę i urządzenie wykorzystuje się w badaniach przesiewowych w krótkim czasie dużej liczby związków wpływających na kanały jonowe lub aktywność transporterów. W kontekście niniejszego opisu stosowany wyraz „zawiera” i nie oznacza „jest ograniczony wyłącznie do”.
Kanały jonowe są transbłonowymi białkami, które tworzą pory w błonie, umożliwiające przechodzenie jonów z jednej strony na drugą (Hille, 1992). Kanały te mogą wykazywać swoistość jonową, umożliwiając swoistym jonom dyfuzję bierną przez błonę zgodnie z ich gradientami elektrochemicznymi. Jakkolwiek pewne typy kanałów są średnio otwarte cały czas i przy wszystkich fizjologicznych potencjałach błonowych (tak zwane kanały upływu), to jednak wiele kanałów ma „bramki”, które otwierają się w odpowiedzi na specyficzne zakłócenie błony. Zakłócenia, o których wiadomo, że powodują otwieranie kanałów jonowych, obejmują zmianę w potencjale elektrycznym w poprzek błony (kanały bramkowane napięciem), stymulację mechaniczną (kanały bramkowane mechanicznie) lub wiązanie cząsteczek sygnałowych (kanały bramkowane ligandem).
Transportery są białkami w błonie komórkowej, które katalizują ruch jonów nieorganicznych, takich jak Na+ i K+ jak również cząsteczek organicznych, takich jak neurotransmitery, jak w przypadku tak zwanych pomp wychwytu zwrotnego, np. GABA, dopamina i glicyna. Dwie rozróżniające cechy nośników w zależności od porów stanowią (1) ich kinetyka - ruch jonów przez transportery jest znacznie powolniejszy niż > 106 jonów na sekundę, jak w przypadku kanałów jonowych i (2) kanały jonowe przewodzą zgodnie z gradientami elektrochemicznymi, zaś transportery mogą „pompować” wstępujące, to jest przeciw gradientom stężenia (Hille, 1992). Ten ostatni proces jest zwykle zależny bezpośrednio od energii dostarczanej w sposób stechiometryczny.
Wynalazek ma główne zastosowanie do pomiaru aktywności kanału jonowego ale również transporterów, stanowiących transportery elektrogeniczne, np. Na+/K+; Na+/Ca2+; transporter wychwytu zwrotnego glutaminianu (Brew i Attwell, 1987).
Aktywność kanału jonowego bada się z zastosowaniem techniki określanej jako „technika łatkowa” „ang. patch camping” (Hamill i in., 1981). Według tej techniki zwykle izoluje się małą łatkę błony komórkowej jest zwykle izolowaną na końcówce mikropipety przez przyciskanie końcówki do błony. Sugerowano, że jeżeli między mikropipetą i łatką błony zostanie utworzone ścisłe złączenie, wówczas przez mikropipetę może przepływać prąd elektryczny tylko przez kanały jonowe w łatce błony. Jeżeli uzyska się taki stan, wówczas można monitorować aktywność kanałów jonowych i ich wpływ na potencjał błony, oporność i prąd. Jeżeli potencjał elektryczny w poprzek błony pozostaje stały, to dostarczany do niej prąd jest równy prądowi przepływającemu przez kanały jonowe w błonie. Jeżeli kanały jonowe w błonie zamykają się, wówczas oporność błony wzrasta. Jeżeli prąd przyłożony pozostaje stały, wówczas wzrost oporności jest wprost proporcjonalny do wzrostu potencjału elektrycznego w poprzek bł ony.
O wielu lekach wiadomo, że działają przez modulowanie kanałów jonowych, jednakże rozwój nowych związków oddziaływujących na kanały jest poważnie hamowany przez trudność ich przeszukiwania pod kątem aktywności z dużą wydajnością. Konwencjonalne metody elektrofizjologiczne, takie jak technika łatkowa (ang. patch clamp) lub technika stabilizacji napięcia (ang. voltage-clamp) dostarczają określonej informacji mechanistycznej, jednakże nie są dostosowane do szybkiego przesiewania testowanych związków.
W WO96/13721 opisano urządzenie do przeprowadzania techniki łatkowej wykorzystywanej w badaniach wpł ywu pewnych substancji na kanał y przenoszenia jonów w tkance biologicznej. Ujawniono urządzenie do techniki łatkowej wykorzystujące automat do pobierania próbek, taki jak stosowane z urządzeniem do HPLC, dla uzyskania większej wydajności niż można uzyskać konwencjonalną techniką łatkową. Urządzenie to ma wady polegające na tym, że jedynie częściowo automatyzuje układ dostarczania leku, bez rejestrowania techniki łatkowej. Z tego względu ma ono te same ograniczenia co tradycyjna technika łątkowa w odniesieniu do prędkości badania związków i w żaden sposób nie może być traktowane jako układ o dużej wydajności. Układ taki stale wymaga liniowego przetwarzania (to jest przetwarzania danych otrzymywanych z kolejnych komórek). Wynalazek obecny stanowi wyraźne przeciwieństwo, bowiem zapewnia równoległe przetwarzanie i tym samym umożliwia rzeczywiście wysoką wydajność badania związków.
PL 201 770 B1
Stosowane tu określenie „błona biologiczna” obejmuje sztuczne błony, takie jak lipidowe dwuwarstwy i inne błony znane specjalistom z tej dziedziny.
Wynalazek rozwiązuje problemy towarzyszące znanym metodom przesiewowym i urządzeniom do ich przeprowadzania.
Struktura według wynalazku do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych zawiera błonę biologiczną przylegającą ścisłym połączeniem o wysokiej oporności do podłoża, przy czym błona biologiczna zawiera kanał jonowy lub transporter, a podłoże jest porowate z powodu perforacji tworzącej pory przez podłoże.
Korzystnie w strukturze według wynalazku błona biologiczna zawiera ciągłą warstwę komórek, która ma zdolność przylegania do podłoża ścisłym połączeniem o wysokiej oporności, przy czym każda komórka tworzy ścisłe połączenie z sąsiednimi komórkami i wyraża kanał jonowy lub transporter, który znajduje się w błonie komórkowej.
Korzystnie komórki są wybrane z grupy obejmującej komórki HEK-293, genetycznie zmodyfikowane komórki jajnika chomika chińskiego (CHO), podstawową tkankę neuronową taką jak hipokamp, zwoje nerwowe korzenia grzbietowego, górne zwoje szyjne itd., mięsień szkieletowy, mięsień gładki, mięsień sercowy, komórki odpornościowe, komórki nabłonkowe, komórki śródbłonkowe.
Korzystnie struktura zawiera komórki mające kanał jonowy lub transporter, który naturalnie znajduje się w błonie komórkowej lub może być wprowadzony przez transfekcję cDNA i/lub cRNA kodującego kanał jonowy lub transporter.
Korzystnie struktura zawiera liczne kanały jonowe lub transportery, które głównie są uprzednio wybranymi kanałami jonowymi lub transporterami będącymi przedmiotem zainteresowania.
Korzystnie struktura zawiera wytworzone metodami inżynierii genetycznej komórki, które zostały tak wytworzone, aby głównie wyrażały kanał jonowy lub transporter.
Korzystnie struktura zawiera bramkowane napięciem kanały jonowe.
Korzystnie struktura zawiera kanał jonowy o szybkich kinetykach aktywacji i dezaktywacji.
Korzystnie struktura ma kanał jonowy, który wykazuje swoistość dla jonu wybranego z grupy obejmującej jon sodu, potasu, wapnia i jon chlorkowy.
Korzystnie w strukturze ciągła warstwa komórek ma zdolność przylegania ścisłym połączeniem o wysokiej oporności do podł o ż a wybranego z grupy obejmują cej szkł o, tworzywa sztuczne, gumę , politetrafluoroetylen (PTFE), PTFE/włókno szklane i politereftalan etylenu (PETP).
Korzystnie struktura zawiera pseudonabłonek, w którym jedna powierzchnia ciągłej warstwy komórek jest permeabilizowana tym samym tworząc dostęp do wnętrza komórek.
Korzystnie jedna powierzchnia ciągłej warstwy komórek pseudonabłonka jest permeabilizowana antybiotykiem wybranym z grupy obejmującej amfoterycynę i nystatynę lub detergentem wybranym z grupy obejmującej digitoninę i saponinę, lub fizycznym przerwaniem przy użyciu pola o wysokim napięciu, lub enzymatycznym trawieniem części membrany z zastosowaniem odpowiedniego enzymu.
Korzystnie struktura zawiera perforowane przykrycie, korzystnie mające siatkę porów.
Korzystnie podłoże ma pory o średnicach między 0,5 μm i 10 μm, bardziej korzystnie między 1 μm i 7 μm i najkorzystniej pory mają średnicę 1-2 μm.
Korzystnie struktura zawiera perforowane podłoże, które jest wytworzone z materiału wybranego z grupy obejmującej szkło, tworzywa sztuczne, gumę, politetrafluoroetylen (PTFE), PTFE/włókno szklane i politereftalan etylenu (PETP).
W zakres wynalazku wchodzi też wysoko wydajne w badaniach przesiewowych urządzenie do wykrywania i testowania związków o aktywności na bramkowanych napięciem kanałach jonowych, które zawiera strukturę według wynalazku.
Korzystnie urządzenie to zawiera:
liczne komory, z których każda ma permeabilizowaną powierzchnię obwodową dostarczającą podłoża dla błony biologicznej, liczne studzienki, w każdej z których można umieścić komorę i testowany związek w roztworze fizjologicznym lub roztworze niefizjologicznym zawierającym sulfotlenek dimetylu, liczne elektrody odniesienia, mające kontakt elektryczny z każdą studzienką, ruchomą głowicę rejestrującą z przynajmniej jedną elektrodę rejestrującą, środki do pomiaru oporności elektrycznej lub impedancji między elektrodami rejestrującymi i elektrodami odniesienia, przy czym prąd elektryczny może przepływać między elektrodami rejestrującymi i elektrodami odniesienia przez permeabilizowaną powierzchnię obwodową każdej komory tylko przez kanały jonowe lub transportery w błonie biologicznej.
PL 201 770 B1
Korzystnie studzienki są w płytce wielostudzienkowej.
Korzystnie urządzenie zawiera układ kropelek na porowatym podłożu.
Korzystnie urządzenie zawiera głowicę rejestrującą mającą pojedynczą elektrodę rejestrującą zdolną do przesuwania się kolejno do każdej komory lub zawiera głowicę rejestrującą mającą liczne elektrody rejestrujące ułożone w linii, bądź ułożone w matrycy.
Wynalazek dotyczy również sposobu wytwarzania struktury według wynalazku obejmującego etapy wybierania podłoża, perforowania go, wprowadzania błony biologicznej na podłoże i zamykania każdego poru błoną biologiczną.
Korzystnie sposób obejmuje etapy równoczesnego perforowania podłoża i zamykania porów błoną biologiczną.
Błonę biologiczną dla struktury według wynalazku wytwarza się sposobem obejmującym etapy wyboru typu komórki, oceny jej pod względem zdolności do tworzenia ciągłych warstw komórek ze ścisłymi połączeniami i niskiej do nieznacznej liczby kanałów jonowych bramkowanych napięciem, hodowania komórek na podłożu i zapewnienia wzrostu ciągłej warstwy komórek. Perforowane podłoże dla struktury według wynalazku wytwarza się sposobem obejmującym etapy świecenia laserem o wstę pnie wybranym obszarze ogniskowym, zasilaniu lub czasie ekspozycji przy perforowaniu przykrycia. Sposób ten może również obejmować dodatkowy etap modyfikowania obszaru perforowanego przez wystawienie na oddziaływania plazmy i/lub zlokalizowanego ogrzewania w celu uzyskania odpowiedniego poziomu gładkości perforacji.
Sposób przeszukiwania do wykrywania lub testowania związków o aktywności na kanały jonowe z wykorzystaniem urządzenia według wynalazku, obejmuje etapy umieszczania błony biologicznej, która wyraża kanały jonowe będące przedmiotem zainteresowania, w kontakcie z testowanym związkiem w roztworze fizjologicznym lub roztworze niefizjologicznym zawierającym rozpuszczalnik, taki jak dimetylosulfotlenek i pomiaru oporności lub impedancji błony biologicznej pod wpływem testowanego związku.
Korzystnie, błona biologiczna zawiera komórki mające kanał jonowy lub transporter, który w sposób naturalny wystę puje w ich bł onie komórkowej lub moż e być wprowadzony przez transfekcję cDNA i/lub cRNA kodującym kanał jonowy lub transporter. Wynalazek zatem ma tę zaletę, że umożliwia badania natywnych kanałów lub transporterów o nie znanym dokładnie składzie podjednostkowym lub gdzie rzeczywiście całkowicie nieznana jest tożsamość cząsteczkowa (tj. jeszcze niesklonowana), ale również heterogenicznie wyrażonych sklonowanych kanałów lub transporterów, gdzie znana jest tożsamość kanału natywnego lub transportera lub gdzie potrzebna jest dokładna wiedza odnośnie wzajemnego oddziaływania struktur związku i ugrupowań chemicznych kanału jonowego lub transportera. Z tego względu układ jest zasadniczo znacznie bardziej wszechstronny niż istniejące podejścia, które nie są czułe i wymagają dostarczania wysokich stężeń komórek (co nie zawsze jest możliwe w przypadku neuronów) i wysokich stosunków sygnału do poziomu szumów, które ograniczają ich stosowanie tylko do niektórych typów komórek i kanałów jonowych.
Korzystnie błona biologiczna obejmuje liczne kanały jonowe lub transportery, które są głównie wstępnie wyselekcjonowanymi kanałami jonowymi lub transporterami będącymi przedmiotem zainteresowania. Daje to korzyść umożliwiającą równoległe przeszukiwanie różnych kanałów, zapewniając potencjalnie nawet większą wydajność związków.
Bardziej korzystne wykonanie błony biologicznej obejmuje komórki uzyskane metodami inżynierii genetycznej, które skonstruowano aby głównie wyrażały kanał jonowy lub transporter. Korzystnie kanały jonowe są kanałami jonowymi bramkowanymi napięciem.
Korzystne błona biologiczna obejmuje, modyfikowane genetycznie komórki jajowe chomika chińskiego (CHO). Komórki CHO i subklony CHO, takie jak CHO-K1 i CHO-dhfr (również znane jako Dukx) mają wyjątkowo niskie poziomy ekspresji endogennego kanału jonowego, tym samym wykazującą doskonały sygnał do charakterystyki szumów w obrębie środowiska komórek ssaków. Podobnie, komórki HEK-293 (nerki embrionu ludzkiego) wyrażają niskie poziomy kanałów natywnych i dostarczają „tła” ludzkiej ekspresji. Obydwa te układy ekspresyjne są bezsprzecznie korzystne dla stosowanej częstokroć techniki oocytowej Xenopus, gdzie nie tylko występują kanały natywne i obfite podjednostki, ale środowisko komórek płazów różni się w istotny sposób od komórek ssaków.
W korzystnym wykonaniu błona biologiczna obejmuje kanały jonowe o szybkich kinetykach aktywacji i dezaktywacji, których nie można rozdzielić istniejącymi metodami wysokowydajnych badań przesiewowych. Z tego względu istniejące układy uśredniały nietrwałe sygnały kanałów jonowych częstokroć w okresach wielu sekund. Zatem istniejące układy uśredniają przejściowe kanały jonowe częPL 201 770 B1 sto przez wiele sekund. Kanały inaktywują się w stałych czasowych rzędu milisekund i bez obecności w stanie ustalonym. Jednakż e prezentowany tutaj wynalazek ma zaletę polegają c ą na tym, ż e z ł atwością rozwiązuje problemy związane z tego rodzaju kinetyką, tak jak w przypadku tradycyjnej techniki łątkowej, ale przy dużej wydajności.
W korzystnym wykonaniu biologiczna bł ona zawiera pseudonabł onek, w którym jedna powierzchnia ciągłej warstwy komórek jest permeabilizowana, tym samym tworząc dostęp do wnętrza komórek. Ma to tę zaletę, że dostarcza środków dla prądu i stabilizacji napięcia, co nie jest możliwe w przypadku jakichkolwiek istniejących układów wysokowydajnych badań przesiewowych. Umożliwia to nie tylko rejestrowanie z dużą rozdzielczością czasową, ale również dostarcza środków do stymulowania lub aktywowania bramkowanych napięciem kanałów jonowych w sposób precyzyjny i kontrolowany. Przykładowo, nie jest konieczne aby zmieniać skład jonowy, np. przez podwyższanie K+ w celu depolaryzacji komórek, który samoistnie moż e modulować kinetyki kanał ów jonowych (np. kanałów K+) i również tłumić aktywność nowych ligandów przez konkurencję przy miejscach wiązania kanałów jonowych. Jest to wielka korzyść w stosunku do wszystkich istniejących układów. Permeabilizacja również umożliwia wprowadzenie do cytosolu związków, które inaczej nie mogłyby być wprowadzone z powodu ciężaru cząsteczkowego lub właściwości fizykochemicznych.
W korzystnym wykonaniu błona biologiczna zawiera ciągłą warstwę komórek, która jest permeabilizowana antybiotykiem wybranym z grupy obejmującej amfoterycynę i nystatynę lub też detergentem wybranym z grupy, która obejmuje digitoninę i saponinę, lub przez fizyczne przerwanie przy użyciu pola o wysokim napięciu, lub też enzymatyczne trawienie części błony z zastosowaniem odpowiedniego enzymu.
Korzyść ze stosowania wysokonapięciowych pól do permeabilizacji błony (elektropermeabilizacja) polega na tym, że tego rodzaju techniką można permeabilizować błonę plazmatyczną przy jednoczesnym oszczędzaniu mniejszych struktur wewnątrzkomórkowych, takich jak mitochondria i reticulum endoplazmatyczne. Technika taka może również być bardzo precyzyjnie kontrolowana i nie wymaga wyposażenia do wymiany roztworów w dolnej komorze urządzenia rejestrującego.
W korzystnym wykonaniu podł o ż e zawiera siatkę porów w liczbie wię kszej niż 4, ale mniejszej niż 10. Ma to tę zaletę, że dostarcza dopuszczalnej statystycznie liczby równoległych zapisów (tj. >4) w każdym traktowaniu, jednakże wystarczająco małej aby stosunek porów do komórek mógł być bardzo mały i tym samym prawdopodobieństwo, że por jest zamknięty i tym samym zaokludowany przez komórkę jest bardzo wysokie.
Urządzenie według wynalazku korzystnie zawiera studzienki, które są utworzone przez płytę wielostudzienkową. Zaletą takiego rozwiązania jest to, że można osiągnąć wysoką wydajność stosując standardowe w przemyśle komponenty, które mogą być przetwarzane z zastosowaniem dostępnego na rynku zautomatyzowanego wyposażenia i robotyki. Użytkownicy będą mieli możliwość stosowania istniejącego wyposażenia do obróbki płytek, tym samym utrzymując koszty w obrębie kosztów wytwarzania znanych urządzeń elektrofizjologicznych o wysokiej wydajność.
W następnym korzystnym wykonaniu urządzenie zawiera opisaną powyżej strukturę lub błonę biologiczną, mającą kanały jonowe będące przedmiotem zainteresowania w układzie kropelek na porowatym podłożu. Korzystnie układ miniaturowych komór rejestrujących jest utworzony przez umieszczanie „wieczka” zawierającego elektrody rejestrujące nad matrycą z kropelek, tak że tworzy się menisk roztworu kropelek. Korzystnie testowany związek w elektrycznie przewodzącym roztworze jest umieszczony w przynajmniej jednej z kropelek lub nakładany przez otwory dostępne w „wieczku”, po czym mierzy się oporność/impedancję (w konfiguracji current-clamp) błony biologicznej lub przewodność (w konfiguracji voltage-clamp) pod wpływem testowanego związku. Zaletą takiego podejścia jest to, że arkusze podłoża mogą być zaprojektowane bez potrzeby przenoszenia kawałków podłoża (np. krążków) do wielostudzienkowych płytek i również omija się stosowanie kompleksowego wzoru komory z uszczelkami, typu pierścieni o-ring i tym podobnymi. Wynalazek może wciąż być dostosowany do dodawania roztworów i ma dodatkową zaletę stosowania bardzo niewielkich objętości i tym samym małych ilości reagentów i komórek. Znakomita izolacja jest wynikiem obecności szczelin powietrznych między sąsiednimi kropelkami.
W korzystnym wykonaniu urządzenia głowica rejestrująca obejmuje pojedynczą elektrodę rejestrującą zdolną do przesuwania się kolejno do każdej komory. Bardziej korzystne rozwiązanie głowicy rejestrującej obejmuje liczne elektrody rejestrujące ułożone szeregowo. Jeszcze bardziej korzystnie, głowica rejestrująca zawiera liczne elektrody rejestrujące ułożone w matrycy. Zaletą takiej konfiguracji
PL 201 770 B1 jest to, że możliwe jest równoczesne rejestrowanie ze wszystkich studzienek przez multipleksowy układ gromadzenia danych.
W korzystnym wykonaniu urzą dzenie jest zdolne do multipleksowania do 384 elementów rejestrujących do układu gromadzenia danych wykorzystującego liczne wzmacniacze voltage-clamp. Ma to tę zaletę, że zapewnia nadzwyczaj dużą rozdzielczość czasową i skuteczny równoczesny pomiar ze wszystkich studzienek. Zaletą, dostarczenia układu TERM o potencjale pozwalającym na uzyskanie wielkości wydajności podobnych do najlepszych możliwych dla konwencjonalnych testów wiązania ligand-receptor opartych na fluorescencji (>150000 związków na tydzień).
W korzystnym wykonaniu sposób wytwarzania struktury według wynalazku obejmuje etapy równoczesnego perforowania przykrycia i zamykania porów błoną biologiczną. To wykonanie ma tę zaletę, że eliminuje etapy w ustalaniu końcowej konfiguracji, a mianowicie wymaganych procedury wymagane dla optymalizacji prawdopodobieństwa zamknięcia komórkami porów w perforowanym podłożu. Daje to korzyść uproszczenia produktu finalnego.
W korzystnym wykonaniu sposób wytwarzania podłoża, do którego przylega błona biologiczna zawarta w strukturze według wynalazku obejmuje etapy regulowania laserem profilu, zwężenia lub średnicy poru.
Korzystnie źródło laserowe jest kontrolowane przez zautomatyzowany etap pod kontrolą komputera i mikroskopu odwróconego z kontrastem fazowym, który zapewnia korzyść polegającą na umożliwieniu wizualnego badania cech porów, np. profilu, zwężenia i średnicy.
W korzystnym wykonaniu sposób wytwarzania perforowanego podłoża obejmuje inne, nie laserowe sposoby, takie jak fototrawienie, odlewanie i fizyczne wycinanie otworów w podłożu.
Sposób przesiewania wykorzystujący wysokowydajne urządzenie według wynalazku korzystnie obejmuje etap pomiaru aktywności kanału jonowego przez monitorowanie pomiarów oporności transnabłonkowej (TERM) w poprzek nietkniętej warstwy komórek.
Sposób przesiewania wykorzystujący wysokowydajne urządzenie do badań przesiewowych służy korzystnie do wykrywania lub analizy związków pod względem aktywności na kanałach jonowych będących przedmiotem zainteresowania układzie kropelek na porowatym podłożu.
Korzystnie sposób przesiewania wykorzystujący wysokowydajne urządzenie do badań przesiewowych obejmuje etap dostarczania leku i przemywania wielostudzienkowej płytki.
Korzystny jest też sposób przesiewania wykorzystujący wysokowydajne urządzenie do badań przesiewowych, który obejmuje etap stymulacji komórek, w którym obejmujący stosuje się fotoaktywowalny „zmiatacz jonów” np. jonów takich jak K+. Jednostka aktywna może być uwolniona przez oświetlenie całej płytki naraz ze źródła światła o dużym natężeniu, np. lasera lub lampy ksenonowej. Zaletą takiego układu jest możliwość zmiany potencjału błony przez zmianę rozkładu jonowego w sposób nieinwazyjny i z doskonałą kontrolą czasową.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że błona biologiczna może przylegać ścisłym połączeniem o wysokiej oporności do perforowanego podłoża i że można to wykorzystać w urządzeniu do wysokowydajnych badań przesiewowych do testowanych związków wykazujących aktywność wobec kanałów jonowych. Początkowo nie było to jasne dla specjalistów z tej dziedziny z punktu widzenia faktu, że nie możliwe było uzyskanie złączenia o wysokiej oporności bez nadmiernych kosztów. Ponadto, nie sugerowano do stosowania perforowanych podłoży mających ściśle do nich przylegającą błonę biologiczną w wysokowydajnych badaniach przesiewowych.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że można skonstruować błonę biologiczną zdolną do przylegania ścisłym połączeniem o wysokiej oporności podłoża i wykorzystać w wysokowydajnych badaniach przesiewowych. Nieoczekiwanie stwierdzono, że można skonstruować błonę biologiczną zawierającą kanały jonowe, którymi są głównie kanały będące przedmiotem zainteresowania. Ponadto, nieoczekiwanie stwierdzono, że można skonstruować urządzenie przesiewowe o wysokiej wydajności i stosować je do wykrywania i testowania z wydajnością, która może przekraczać 30000 testowanych związków na tydzień.
Nieoczekiwanie stwierdzono, że urządzenie może być stosowane do uzyskiwania w dobrej wierze danych elektrofizjologicznych odnoszących się do funkcjonalnej aktywności kanału jonowego.
Błona biologiczna zawarta w strukturze według wynalazku była nieoczywista dla specjalistów z tej dziedziny. Konstrukcja błony biologicznej mającej ścisłe połączenie o wysokiej oporności z podłożem, takim jak perforowane szkło nie była opracowana, ani nie była uważana za możliwą do uzyskania bez nadmiernych trudności. Również konstrukcja błony mającej kanały jonowe, którymi są głównie
PL 201 770 B1 kanały będące przedmiotem zainteresowania nie wydawała się być możliwa do uzyskania bez nadmiernych obciążeń.
Wysokowydajne urządzenia i sposób według wynalazku były na początku nieoczywiste dla specjalistów z tej dziedziny ze względu na fakt, że nie wydawało się być możliwe bez nadmiernych obciążeń przeszukiwanie o dużej wydajności związków testowanych, co może być uzyskane dzięki wynalazkowi. Oprócz korzyści, jaką jest wysoka wydajność testowanych związków, urządzenie i sposób według wynalazku mogą dostarczać funkcjonalnych testów (na przykład patrz wiązania ligandu), w których sposób oddział ywania (np. blokowanie lub wzmacnianie) testowanego zwią zku na bramkowanych napięciem kanałach jonowych jest mierzone przez zmiany oporności błony lub przez rejestrowanie prądu przepływającego przez kanały jonowe bezpośrednio w błonie.
Przedmiot wynalazku jest dalej opisany w odniesieniu do przykładów korzystnych wykonań i rysunków.
Figura 1 przedstawia wersję z komórkami nabłonka urządzenia według wynalazku.
Figura 2 przedstawia urządzenie według wynalazku z perforowanym podłożem.
Figura 3 przedstawia dostosowanie dostępnej handlowo wielostudzienkowej płytki do stosowania w urządzeniu według wynalazku. Na figurze pokazano integralną wielozapisową wiązkę głowic elektrodowych.
Figura 4 przedstawia wykonanie wykorzystujące ruchomą głowicę rejestrującą, przy czym pojedyncza głowica rejestrująca odczytuje kolejno pojedyncze studzienki.
Figura 5 przedstawia rozwiązanie układu ciekłej matrycy, w którym szereg miniaturowych komór rejestrujących jest utworzony przez naniesienie kropelek na podłoże rejestrujące według wstępnie określonego wzoru i gęstości. Na figurze 5 (f) pokazano pełną „kanapkę” (konfiguracja rejestrująca) układu. Na figurze 6 pokazano następne rozwiązanie układu ciekłej matrycy, w którym liczne szeregi kropelek są ułożone „kanapkowo” razem.
Na figurze 7 pokazano por uformowany w podłożu według wynalazku. Mikrograf świetlny pokazuje por w cienkim podłożu szklanym. Por, który miał średnicę około 2 μm, był wytworzony przez zastosowanie impulsów zogniskowanej energii laserowej, po których następowała kombinacja polerowania ogniowego i modyfikacji plazmowej. Podziałka skali wynosi 10 μm przez.
P r z y k ł a d y
Wykonanie urządzenia według wynalazku obejmuje wielostudzienkową płytkę ze zintegrowanymi urządzeniami rejestrującymi, za pomocą których można dokonać masywnie równoległego voltage-clamp (MPVC) na licznych studzienkach w płytce w krótkim czasie (około 1-60 sekund). Korzystnie stosuje się dostępne handlowo płytki z 96 lub 384 studzienkami, lub też można przystosować format matrycy o 96 lub 384 pozycjach.
Wykonanie urządzenia według wynalazku korzystnie zapewnia wydajność związków badanych przekraczającą 30000 na tydzień z dobrą wiarą elektrofizjologicznego „odczytu” funkcjonalnej aktywności kanału jonowego. Wykonanie urządzenia może dostarczać dużą rozdzielczość zarówno odnośnie czasu, dla 96 studzienkowej płytki z ustawieniem voltage-clamp 1 ms/punkt. Czułość na modulację aktywności kanału wynosi >1%.
Wykonanie według wynalazku dostarcza sposobu obejmującego etapy pomiaru transnabłonkowej oporności elektrycznej w poprzek ciągłej warstwy komórek wyrażających głownie kanał jonowy będący przedmiotem zainteresowania. Dla specjalistów z tej dziedziny oczywiste jest, że sposób zależy od przylegania komórek do podłoża, które umożliwia formowanie ścisłych połączeń pomiędzy sąsiednimi komórkami tak, że powstaje arkusz o wysokiej oporności. Zmiany w aktywności kanałów jonowych wyrażonych na błonach poszczególnych komórek są odzwierciedlane przez zmiany w oporności w poprzek arkusza jako całości. W uzupełnieniu tego wykonania wynalazku, dostęp do wnętrza komórek stanowiących arkusz uzyskuje się środkami umożliwiającymi dokonywanie rejestracji curent-clamp i voltage-clump populacji komórek.
Pomiary oporności transnabłonkowej przeprowadzono następująco:
a) Komórki typu nabłonkowo/śródbłonkowego
Całkowita oporność transnabłonkowa składa się z dwóch głównych składowych, mianowicie sumy przewodności (pełnokomórkowej) poszczególnych komórek tworzących pseudonabłonek i sumy szlaków przewodności wewnątrzkomórkowych.
Naturalnie występujące komórki nabłonkowe (i śródbłonkowe) tworzą względem siebie ścisłe połączenia. To ścisłe upakowanie zmniejsza upływ jonów/solutów między komórkami, dając stosunkowo niewielkie ilości szlaków przewodności wewnątrzkomórkowych w poprzek błony jako całości.
PL 201 770 B1
Tak więc, gdy warunki umożliwiają formowanie ścisłych połączeń, mierzalne są zmiany w przewodności transbłonowej komórki. Jedynym podejściem przeprowadzenia tego sposobu był wybór komórek gospodarza pod względem odpowiednich własności wzrostu. Jako odpowiednie do ekspresji klonowanych kanałów jonowych uważane są również typy komórek, które wyrażają natywne kanały jonowe na niskich poziomach. Dużą przeszkodą dla specjalistów z tej dziedziny w tym podejściu było otrzymanie komórek, w których występuje to ostatnie zjawisko.
b) Pomiar oporności transnabłonkowej w komórkach nienabłonkowych
Alternatywą podejścia opisanego powyżej jest wykorzystanie komórek nienabłonkowych, o których wiadomo, że wyrażają śladowe ilości kanałów jonowych własnych jako podstawowego układu ekspresyjnego dla komórek klonowanych, które wyrażają kanały jonowe będące przedmiotem zainteresowania. Istnieje kilka typów komórek, które spełniają to kryterium. Jednakże dużą przeszkodą dla specjalistów z tej dziedziny był fakt, że nie tworzą one w hodowli ciągłych warstw komórek ze ścisłymi połączeniami. W wykonaniu według wynalazku otrzymano wysoce oporną warstwę „nabłonkową”, w której ta przeszkoda został a pokonana.
Transbłonkowy pomiar prądu (masywnie równoległy voltage-clamp (MPVC).
Wykonanie według wynalazku otrzymano przez utworzenie dostępu do wnętrza komórek w „nabłonku” przez przerwanie lub permeabilizację jednej powierzchni każdej komórki współuczestniczącej w warstwie komórkowej. Przeprowadzono to metodami chemicznymi, na przykład przez umożliwienie kontaktu niektórych rodzajów antybiotyków (np. amfoterycyny) lub detergentów (digitoniny) z jedną powierzchnią komórki lub przez fizyczne przerwanie, np. przy użyciu pól o wysokim napięciu (elektroporacja/Integral Zapper).
Elektryczne układy rejestrujące
Opracowano liczne układy, które zestawiono poniżej:
Układy do testowania pilotowego. Dla pilotowego testowania integralności warstw pseudonabłonkowych, mierzono oporność transnabłonkową przy użyciu komory, do której wprowadzono permeabilizowane podłoża do hodowli tkankowej (fig. 1). Komórki narastały w hodowli aż do zlania się na tym podłożu. W przypadku podłoży perforowanych, materiał (np. przykrycie) był wkładany do celowo wbudowanego pierścienia testującego, który umożliwiała zmiany ciśnienia w dolnym kompartmencie i/lub górnej komorze i jednocześnie umożliwiał wykonywanie pomiarów oporności (fig. 2). Dla uniknięcia polaryzacji elektrod, przepuszczano oscylujący sygnał napięciowy w poprzek warstwy komórek za pomocą liniowych lub kolistych elektrod umieszczonych powyżej i poniżej przepuszczalnego podłoża, na którym narastała warstwa komórek, i mierzono impedancję warstwy komórek. W przypadku warstw komórek permeabilizowanych (fig. 1b i 2b) przeprowadzono rejestrację voltage i current-clamp z zastosowaniem wzmacniacza voltage-clamp z interfejsem komputerowym w celu kontrolowania wyników eksperymentalnych i dla próbkowania danych.
Powiększanie skali i układy operacyjne
W handlowych urzą dzeniach TERM albo MPVC stosuje się układ pomiarowy z p ł ytką wielostudzienkową (fig. 3) lub ekwiwalentny (np. z wykorzystaniem matrycy kropelkowej wytwarzanej przy użyciu nanolitrowego piezodozownika). Był on oparty w pewnym stopniu na pierścieniu do testowania pilotowego jednakże wymagał wprowadzenia integralnej głowicy rejestrującej, której wykonania według wynalazku obejmują szereg możliwości. Są one opisane poniżej.
a) pojedyncza głowica rejestrująca która kolejno odczytuje pojedyncze studzienki (fig. 4),
b) ruchomy liniowy szereg głowic rejestrujących (np. 12 dla układu płytki z 96 studzienkami), 24 dla układu 384 studzienek (które są przesuwane przez płytkę w 8 (96 studzienek) lub 16 (384 studzienki) etapach,
c) matryca elektrodowa wbudowana do płytki z multipleksowaniem dla systemu rejestrującego i gromadzą cego dane z headstage. Dla pł ytek o wię kszej gęstoś ci zastosowano liczne voltage-clamp w celu utrzymania cz ę stotliwoś ci próbkowania i tym samym rozdzielczoś ci czasowej (fig. 3).
d) układ kropelkowy (fig. 5).
Adaptacja płytki wielostudzienkowej
Wykonania urządzenia według wynalazku korzystnie obejmują integralną pipetę automatyczną w wersjach roboczych TERM i MPVC.
Korzystnie wykonania urządzenia według wynalazku obejmują urządzenie do przemywania głowic rejestrujących między stosowaniem w oddzielnych rzędach.
Zgodnie z wykonaniem według wynalazku sposób wytwarzania błony biologicznej obejmuje etapy otrzymywania ścisłego połączenia o wysokiej oporności z perforowanym podłożem szklanym
PL 201 770 B1 (lub innym podłożem) i/lub etap otrzymywania linii komórkowej o zdolności do tworzenia arkuszy i mającej małe lub śladowe ilości natywnych kanałów jonowych.
Podejście z komórkami nabłonkowymi.
Rozmnożono występujące naturalnie linie komórkowe i linie komórkowe uzyskane metodami inżynierii genetycznej. Są one opisane poniżej:
Występujące naturalnie linie komórkowe
Przytoczone w literaturze linie komórkowe zostały zanalizowane pod względem przydatności „gotowości”. Początkowe kandydatury obejmowały komórki glejaka ECV-304, RBE4 i C6. Kryteria stosowania były następujące:
a) zdolność do tworzenia ciągłych warstw komórek ze ścisłymi połączeniami, oporność transnabłonkowa rzędu >125 i’cm2,
b) małe do śladowych ilości bramkowanych napięciem kanałów jonowych stanowiących tło, jak oceniono dzięki technice łątkowej w obrębie całej błony komórkowej metodami standardowymi. Korzystnie poziom przewodności wynosił <2 nS na komórkę.
Linie komórkowe uzyskane metodą inżynierii genetycznej
Metodami inżynierii genetycznej przygotowano odpowiednią linię komórkową. Jeżeli przewodności tła naturalnie występujących linii komórkowych były powyżej podanego progu w przypadku b) powyżej, to linię komórkową oceniono jako możliwy „knockout” genów dla inżynieryjnego wytworzenia nowej komórki gospodarza.
Sztuczny nabłonek
Perforowane podłoża
Perforowane podłoża wytworzono jak przedstawiono poniżej:
Podłoża wytworzone laserowo a) Prototypy
Perforowano szklane przykrycie w sposób sekwencyjny (1 otwór w danym czasie) przy użyciu źródła energii laserowej w połączeniu z etapem zautomatyzowanym pod kontrolą komputera i mikroskopu o odwróconej optyce. Umożliwiło to skonstruowanie prototypów z dokładną kontrolą parametrów, takich jak obszar ogniskowy, moc lasera i czas ekspozycji. W ten sposób przetestowano zdolność do uzyskiwania ścisłego połączenia o wysokiej oporności między komórkami i podłożem z zastosowaniem wytworzonych tym sposobem przykryć. Wzory kratkowe były wytwarzane powtarzalnie w zmiennych formatach dzięki kontrolowanemu komputerowo etapowi za pomocą połączonego z laserem komputera. Stosowano przykrycia z rozmaitych materiałów łącznie ze szkłem (jak również tworzywami sztucznymi i innymi materiałami biokompatybilnymi). Ich średnice wynosiły 10 mm (płytka 96studzienkowa) lub 5 mm (płytka z 384 studzienkami) i o zmiennej grubości (około 1-20 μm). Wytworzono pory o średnicach zmiennych pomiędzy 0,5 μm i 10 μm. Profil poru, jego zwężenie i wewnętrzną i zewnętrzną średnicę oceniano dla optymalizacji ścisłego połączenia z testowanymi komórkami. Ważne jest ustalenie odpowiedniego poziomu gładkości poru. Gęstość porów optymalizowano dla otrzymania charakterystyki poziomu sygnału do (zakłóceń) szumu, wierności zapisu voltage-clamp i ze względów statystycznych.
Dla potwierdzenia ścisłości połączenia między komórką i porem, przedsięwzięto szereg podejść (fig. 1). Są one podane poniżej:
i) podciśnienie w dolnym przedziale ciekłym np. z zastosowanie efektu Venturiego wywołanego przez roztwór przepływający przez otwór od spodu, i/lub przez doprowadzanie przepływającego roztworu przy zmniejszonym ciśnieniu całkowitym, ii) nadciśnienie w górnym przedziale ciekłym iii) powlekanie przykrycia (coverslip) materiałem utrudniającym przyleganie, który jest wypalany w obszarze poru podczas procesu wytwarzania poru (tj. indukowane laserem wytwarzanie porów) iv) wyposażenie do przesuwu lub wibracji przykrycia (coverslip) dla spowodowania aby komórki „znajdowały” pory przed przylgnięciem do podłoża w położeniach nie odpowiadających porom.
v) zastosowanie karuzeli z przykryciem lub karuzeli płytki wielostudzienkowej dla umożliwienia odwirowania vi) przyłożenie pola napięcia przez pory dla wprowadzenia komórek do wlotu poru.
Okazało się nieoczekiwanie, że indukowane laserem wytwarzanie porów pozwoliło na otrzymanie znaczących rezultatów.
Na fig. 7 pokazano typowy por wytworzony tym sposobem. Po nałożeniu roztworów fizjologicznych na każdą stronę poru, rutynowo zaobserwowano oporność przez podłoże, zwykle w zakresie
PL 201 770 B1
200 kΩ do 400 kΩ. Po dodaniu komórek, obserwowana oporność wyniosła w przybliżeniu dwukrotność tej liczby. Po dodatkowym zastosowaniu jednego lub więcej podejść wskazanych powyżej, zaobserwowano pomiary oporności zbliżone do zakresu gigaomów.
b) Powiększanie skali
Oceniono dużą ilość perforacji i jednocześnie rejestrując (ścisłe przyleganie). Podejście obejmowało „przemiatanie” światłem ze źródła laserowego o dużej energii całej dolnej powierzchni płytki wielostudzienkowej (lub matrycy równoważnej). Przy odpowiedniej strukturze studzienki znane było precyzyjne położenie żądanych porów i przy odpowiednim miareczkowaniu gęstości komórek uzyskano duże prawdopodobieństwo, że komórki znajdą się „na miejscu”. Płytkę perforowano i prawie równocześnie przerwano powierzchnię spodnią komórek. Wymagało to zastosowania znacznie większej energii laserowej niż energia stosowana w prototypach (powyżej).
c) Typy komórek
Jakkolwiek przy dochodzeniu do wynalazku stosowano komórki jajnika chomika chińskiego (CHO), jednakże dla specjalistów z tej dziedziny oczywiste jest, że można zastosować dużą rozmaitość linii komórkowych i pierwotnych komórek, takich jak neurony izolowane z nietkniętych tkanek.
Inne sposoby perforowania
Oceniono alternatywne sposoby perforowania szklanych przykryć i innych materiałów, takie jak trawienie, odlewanie szkła lub arkuszy tworzywa sztucznego.
Porowata guma
Podłoża z porowatej gumy są dostępne handlowo do hodowania komórek w hodowli komórkowej. Porowatość oceniano w kontekście oporności i pomiaru prądu jak tu opisano.
Inne materiały
Dla specjalistów z tej dziedziny będzie oczywiste, że zgodnie z wynalazkiem można zastosować inne materiały, takie jak PTFE, PEPT itd. Mają one tę zaletę, że posiadają duże stałe dielektryczne, jak również są wytwarzane w postaci bardzo cienkich arkuszy. Umożliwia to zmniejszanie minimalnej oporności seryjnej w całym układzie, jak również ułatwia wprowadzanie do cytosolu komórkowego substancji egzogennych.
Urządzenie rejestrujące płytki wielostudzienkowe
Podstawowe urządzenie rejestrujące płytki wielostudzienkowe korzystnie zawiera format lokacyjny z 96 studzienkami. Korzystnie konstruuje się wielokrotności formatu 96-studzienkowego z minimalnym powiększeniem do formatu 384-studzienkowego. Korzyść zwiększania gęstości studzienek polega na tym, że zmniejszana jest ilość stosowanego związku testowanego i stosuje się mniej płytek, czemu towarzyszy obniżka pomocniczych kosztów bieżących na testowany związek. Oceniono następujące dwa podejścia:
a) stanowisko TΩRM zaprojektowane do współpracy z dostępnymi w handlu robotami i procesorami płytkowymi;
b) całkowicie zintegrowany samodzielny układ, który zapewnia obsługę płytki, zmianę roztworu i etapy rejestracji.
Układ ciekłej matrycy
Utworzono układ miniaturowych komór rejestrujących przez naniesienie kropelek zawierających zawiesinę komórek na podłoże rejestrujące według wstępnie określonego wzoru i gęstości (patrz fig. 5). Podłoże może być dowolnego rodzaju opisanego powyżej, np. perforowane szkło, tworzywo sztuczne, guma itd. Całkowita konfiguracja rejestrująca jest zrealizowana przez umieszczenie „wieczka” lub ruchomej głowicy rejestrującej, wprowadzenie elektrod rejestrujących nad matrycę z kropelek tak, że zostaje ustalony menisk roztworu kropelki, jak pokazano przykładowo na fig. 5. Układ kropelek może być również wytworzony na odwrotnej stronie porowatego podłoża w celu dostarczenia szlaku przewodności do przynajmniej jednej elektrody odniesienia jak również środków, za pomocą których substancje mogą być nakładane na dolną powierzchnię podłoża, a tym samym na błony komórkowe. Podobnie, odczynniki mogą być stosowane przez następną matrycę kropelkową naniesioną na „płytkę rejestrującą” jak pokazano na fig. 6. Na rejestrującą płytkę „czołową mogą być naniesione roztwory leków, a następnie płytka może być odwrócona i ta odwrócona płytka może później być zestawiana z matrycą komórkową w celu skontaktowania leku z komórkami. Zaleta tego podejścia polega na tym, że można zaprojektować arkusze podłoża bez potrzeby przenoszenia krążków podłoża do płytek wielostudzienkowych i również można uniknąć konieczności stosowania złożonej komory z uszczelnieniami, o-pierścieniami i tym podobnymi. Wynalazek może być przystosowany do dodawania roztworów i zapewnia dodatkową korzyść polegającą na stosowaniu bardzo niewielkich objętości, a tym samym małych ilości odczynników i komórek.
PL 201 770 B1
Literatura
Brew, H and Attwell, D. (1987). Electrogenic glutamate uptake is a major current carrier in the membrane of axolotl retinal glial cells. Nature, 327, 707-9.
Hamill, O. P., Marty, A., Neher, E., Sakmann, B. & Sigworth, F. J. (1981). Improved patch-clamp techniques for high-resolution current recording from cells and cell-free membrane patches. Pftoger's
Archives, 391, 85-100.
Hille, B. (ed). Ionic channels of excitable membranes. 1992.
Sinauer Associates, Sunderland. Sakmann, B. & Neher, E. (eds). Single-channel recording. 1995. Plenum Press, New York & London.
Margolskee, R. F., McHendry-Rinde, B. And Horn, R. (1993). Panning transfected cells for electrophysiological studies. Biotechniques, 15, 906-911.
Sheng, M. (1996). PDZs and receptor/channel clustering: rounding up the latest suspects. Neuron, 17.
Oznaczenia na rysunku
1 : komórki
2 : permeabilizowana powierzchnia komórek
3 : voltage-clamp
4 : podłoże porowate
5 : elektroda
6 : ściana studzienki
7 : kanał perfuzyjny roztworu
8 : linia komórkowa lub główna komórka
9 : komórka permeabilizowana
10 : płytka wielostudzienkowa (np. 96 studzienek)
11 : integralna rejestrująca wiązka głowicowa
12 : multiplekser
13 : ADC/ komputer
14 : poziom cieczy
15 : por
16 : O-pierścień
17 : zespół rejestrujący
18 : płytka komórkowa
19 : płytka odniesienia
20 : płytka rejestrująca
21 : elektroda odniesienia
22 : elektroda rejestrująca
23 : „pół-kanapka”
24 : pełna „kanapka” (konfiguracja rejestrująca)

Claims (28)

  1. Zastrzeżenia patentowe
    1. Struktura zawierającą błonę biologiczną przylegającą ścisłym połączeniem o wysokiej oporności do podłoża do stosowania w wysoko wydajnych badaniach przesiewowych, w której błona biologiczna zawiera kanał jonowy lub transporter, a podłoże jest porowate z powodu perforacji tworzącej pory przez podłoże.
  2. 2. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że błona biologiczna zawiera ciągłą warstwę komórek, która ma zdolność przylegania do podłoża ścisłym połączeniem o wysokiej oporności, przy czym każda komórka tworzy ścisłe połączenie z sąsiednimi komórkami i wyraża kanał jonowy lub transporter, który znajduje się w błonie komórkowej.
  3. 3. Struktura według zastrz. 1 albo 2, znamienna tym, że zawiera komórki mające kanał jonowy lub transporter, który naturalnie znajduje się w ich błonie komórkowej lub może być wprowadzony przez transfekcję cDNA i/lub cRNA kodującego kanał jonowy lub transporter.
  4. 4. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera liczne kanały jonowe lub transportery, które głównie są uprzednio wybranymi kanałami jonowymi lub transporterami będącymi przedmiotem zainteresowania.
  5. 5. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera wytworzone metodami inżynierii genetycznej komórki, które zostały tak wytworzone, aby głównie wyrażały kanał jonowy lub transporter.
  6. 6. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera bramkowane napięciem kanały jonowe.
  7. 7. Struktura według zastrz. 2, znamienna tym, że komórki są wybrane z grupy obejmującej komórki HEK-293, genetycznie zmodyfikowane komórki jajnika chomika chińskiego (CHO), podstawową tkankę neuronową taką jak hipokamp, zwoje nerwowe korzenia grzbietowego, górne zwoje szyjne itd., mięsień szkieletowy, mięsień gładki, mięsień sercowy, komórki odpornościowe, komórki nabłonkowe, komórki śródbłonkowe.
  8. 8. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera kanał jonowy o szybkich kinetykach aktywacji i dezaktywacji.
  9. 9. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że ma kanał jonowy, który wykazuje swoistość dla jonu wybranego z grupy obejmującej jon sodu, potasu, wapnia i jon chlorkowy.
  10. 10. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że ciągła warstwa komórek ma zdolność przylegania ścisłym połączeniem o wysokiej oporności do podłoża wybranego z grupy obejmującej szkło, tworzywa sztuczne, gumę, politetrafluoroetylen (PTFE), PTFE/włókno szklane i politereftalan etylenu (PETP).
  11. 11. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera pseudonabłonek, w którym jedna powierzchnia ciągłej warstwy komórek jest permeabilizowana tym samym tworząc dostęp do wnętrza komórek.
  12. 12. Struktura według zastrz. 11, znamienna tym, że zawiera pseudonabłonek, w którym jedna powierzchnia ciągłej warstwy komórek jest permeabilizowana antybiotykiem wybranym z grupy obejmującej amfoterycynę i nystatynę lub detergentem wybranym z grupy obejmującej digitoninę i saponinę, lub przez fizyczne przerwanie przy użyciu pola o wysokim napięciu, lub enzymatyczne trawienie części błony z zastosowaniem odpowiedniego enzymu.
  13. 13. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że podłoże jest perforowane.
  14. 14. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera perforowane przykrycie.
  15. 15. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że podłoże ma pory o średnicach między 0,5 μm i 10 μm.
  16. 16. Struktura według zastrz. 15, znamienna tym, że pory mają średnicę między 1 μm i 7 μm.
  17. 17. Struktura według zastrz. 15 albo 16, znamienna tym, że pory mają średnicę 1-2 um.
  18. 18. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera przykrycie mające siatkę porów.
  19. 19. Struktura według zastrz. 1, znamienna tym, że zawiera perforowane podłoże, które jest wytworzone z materiału wybranego z grupy obejmującej szkło, tworzywa sztuczne, gumę, politetrafluoroetylen (PTFE), PTFE/włókno szklane i politereftalan etylenu (PETP).
  20. 20. Wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie do wykrywania i testowania związków o aktywności na bramkowanych napięciem kanałach jonowych, znamienne tym, że zawiera strukturę określoną w zastrz. 1.
  21. 21. Urządzenie według zastrz. 20, znamienne tym, że zawiera:
    liczne komory, z których każda ma permeabilizowaną powierzchnię obwodową dostarczającą podłoża dla błony biologicznej,
    PL 201 770 B1 liczne studzienki, w każdej z których można umieścić komorę i testowany związek w roztworze fizjologicznym lub roztworze niefizjologicznym zawierającym sulfotlenek dimetylu, liczne elektrody odniesienia, mające kontakt elektryczny z każdą studzienką, ruchomą głowicę rejestrującą z przynajmniej jedną elektrodą rejestrującą, środki do pomiaru oporności elektrycznej lub impedancji między elektrodami rejestrującymi i elektrodami odniesienia, przy czym prąd elektryczny może przepływać między elektrodami rejestrującymi i elektrodami odniesienia przez permeabilizowaną powierzchnię obwodową każdej komory tylko przez kanały jonowe lub transportery w błonie biologicznej.
  22. 22. Urządzenie według zastrz. 21, znamienne tym, że studzienki są w płytce wielostudzienkowej.
  23. 23. Urządzenie według zastrz. 20, znamienne tym, że zawiera strukturę z kanałami jonowymi w układzie kropelek na porowatym podłożu.
  24. 24. Urządzenie według zastrz. 22, znamienne tym, że zawiera głowicę rejestrującą mającą pojedynczą elektrodę rejestrującą zdolną do przesuwania się kolejno do każdej komory.
  25. 25. Urządzenie według zastrz. 20, znamienne tym, że zawiera głowicę rejestrującą mającą liczne elektrody rejestrujące ułożone szeregowo.
  26. 26. Urządzenie według zastrz. 20, znamienne tym, że zawiera głowicę rejestrującą mającą liczne elektrody rejestrujące ułożone w matrycy.
  27. 27. Sposób wytwarzania struktury określonej w zastrz. 1, znamienny tym, że obejmuje etapy wybierania podłoża, perforowania go, wprowadzania błony biologicznej na podłoże i zamykania każdego poru błoną biologiczną.
  28. 28. Sposób według zastrz. 27, znamienny tym, że obejmuje etapy równoczesnego perforowania podłoża i zamykania porów błoną biologiczną.
PL345272A 1998-06-12 1999-06-14 Struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie PL201770B1 (pl)

Applications Claiming Priority (2)

Application Number Priority Date Filing Date Title
GBGB9812783.0A GB9812783D0 (en) 1998-06-12 1998-06-12 High throuoghput screen
PCT/GB1999/001871 WO1999066329A1 (en) 1998-06-12 1999-06-14 High throughput screen

Publications (2)

Publication Number Publication Date
PL345272A1 PL345272A1 (en) 2001-12-03
PL201770B1 true PL201770B1 (pl) 2009-05-29

Family

ID=10833717

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
PL345272A PL201770B1 (pl) 1998-06-12 1999-06-14 Struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie

Country Status (17)

Country Link
US (5) US6936462B1 (pl)
EP (2) EP1621888B1 (pl)
JP (1) JP4499284B2 (pl)
AT (2) ATE428115T1 (pl)
AU (1) AU768862B2 (pl)
CA (1) CA2334770C (pl)
DE (2) DE69940707D1 (pl)
DK (2) DK1621888T3 (pl)
ES (1) ES2249041T3 (pl)
GB (1) GB9812783D0 (pl)
HU (1) HUP0102915A3 (pl)
IL (2) IL140199A0 (pl)
MX (1) MXPA00012345A (pl)
NO (1) NO20006295L (pl)
PL (1) PL201770B1 (pl)
WO (1) WO1999066329A1 (pl)
ZA (1) ZA200007296B (pl)

Families Citing this family (125)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US7244349B2 (en) 1997-12-17 2007-07-17 Molecular Devices Corporation Multiaperture sample positioning and analysis system
US20020144905A1 (en) 1997-12-17 2002-10-10 Christian Schmidt Sample positioning and analysis system
GB9812783D0 (en) 1998-06-12 1998-08-12 Cenes Ltd High throuoghput screen
PL348035A1 (en) 1998-12-05 2002-05-06 Cenes Ltd Interface patch clamping
US6488829B1 (en) 1999-08-05 2002-12-03 Essen Instruments Inc High-throughput electrophysiological measurement apparatus
US6682649B1 (en) 1999-10-01 2004-01-27 Sophion Bioscience A/S Substrate and a method for determining and/or monitoring electrophysiological properties of ion channels
GB9930719D0 (en) * 1999-12-24 2000-02-16 Central Research Lab Ltd Apparatus for and method of making electrical measurements on an object in a m edium
CA2411891A1 (en) * 2000-06-08 2001-12-13 1428388 Ontario Limited Spatially addressable electrolysis platform and methods of use
AU7189801A (en) * 2000-07-07 2002-01-21 Bristol Myers Squibb Co Electrophysiology configuration suitable for high throughput screening of compounds for drug discovery
US6758099B2 (en) * 2000-07-14 2004-07-06 Transform Pharmaceuticals, Inc. System and method for optimizing tissue barrier transfer of compounds
EP1178315A1 (de) 2000-07-31 2002-02-06 Albrecht Dr.med. Priv.Doz. Lepple-Wienhues Verfahren und Vorrichtung zur Untersuchung von Zellen mit Hilfe der Patch Clamp-Methode
US7270730B2 (en) 2000-08-04 2007-09-18 Essen Instruments, Inc. High-throughput electrophysiological measurement system
US7067046B2 (en) * 2000-08-04 2006-06-27 Essen Instruments, Inc. System for rapid chemical activation in high-throughput electrophysiological measurements
US6932893B2 (en) 2000-10-02 2005-08-23 Sophion Bioscience A/S System for electrophysiological measurements
EP1225216A1 (de) * 2001-01-08 2002-07-24 Niels Fertig Vorrichtung zur Untersuchung von Ionenkanälen in Membranen
JPWO2002055653A1 (ja) * 2001-01-09 2004-05-20 松下電器産業株式会社 細胞外電位測定用デバイス、それを用いた細胞外電位測定方法およびそれを備えた高速薬品スクリーニング装置
EP1372828A4 (en) 2001-03-24 2008-10-29 Aviva Biosciences Corp BIOCHIPS WITH ION TRANSPORTATION STRUCTURES AND USE METHOD
US20060029955A1 (en) * 2001-03-24 2006-02-09 Antonio Guia High-density ion transport measurement biochip devices and methods
US20050058990A1 (en) * 2001-03-24 2005-03-17 Antonio Guia Biochip devices for ion transport measurement, methods of manufacture, and methods of use
US20050196746A1 (en) * 2001-03-24 2005-09-08 Jia Xu High-density ion transport measurement biochip devices and methods
US20050009004A1 (en) * 2002-05-04 2005-01-13 Jia Xu Apparatus including ion transport detecting structures and methods of use
AU2002354569A1 (en) * 2001-07-12 2003-01-29 Merck And Co., Inc. Electrical field stimulation of eukaryotic cells
JP2003043009A (ja) * 2001-07-30 2003-02-13 Matsushita Electric Ind Co Ltd 生体試料の発する物理化学的変化を検出するデバイスおよび装置
DE10150971B8 (de) * 2001-10-05 2006-11-09 Technische Universität Dresden Verfahren und Vorrichtung zur Messung der Rezeptoraktivität an transfizierten Zellen
US7429316B1 (en) * 2001-10-09 2008-09-30 Yuri Osipchuk Planar patch-clamp cartridge with integrated electrode
JP4192097B2 (ja) * 2001-10-25 2008-12-03 バル−イラン ユニバーシティ 相互作用型透明個別細胞バイオチッププロセッサー
AU2002352989A1 (en) 2001-11-30 2003-06-17 Bristol-Myers Squibb Company Liquid interface configurations for automated patch clamp recording
AU2002352988A1 (en) 2001-11-30 2003-06-17 Bristol-Myers Squibb Company Pipette configurations and arrays thereof for measuring cellular electrical properties
DE10202094B4 (de) * 2002-01-21 2006-09-28 Eppendorf Ag Verfahren und Vorrichtung zur Elektroporation biologischer Zellen
DE10248333A1 (de) 2002-01-25 2003-12-04 Bayer Ag Dynamischer Mischer
DE10202887B4 (de) * 2002-01-25 2004-05-06 Advalytix Ag Zellanalyseverfahren
DE10203686A1 (de) * 2002-01-31 2003-08-07 Bayer Ag Verfahren zur Durchführung von elektrischen Messungen an biologischen Membrankörpern
JP4511189B2 (ja) 2002-02-12 2010-07-28 セレクトリコン アーベー センサーの周囲の溶液環境を迅速に変化させるシステム及び方法
US7470518B2 (en) 2002-02-12 2008-12-30 Cellectricon Ab Systems and method for rapidly changing the solution environment around sensors
CA2480728A1 (en) 2002-04-01 2003-10-16 Fluidigm Corporation Microfluidic particle-analysis systems
CA2485099C (en) 2002-05-04 2017-09-26 Aviva Biosciences Corporation Apparatus including ion transport detecting structures and methods of use
CN100370247C (zh) * 2002-05-13 2008-02-20 松下电器产业株式会社 生物样本的活动信号测量装置和测量方法
EP1411351A4 (en) 2002-06-05 2010-07-07 Panasonic Corp DEVICE FOR MEASURING THE EXTRACELLULAR POTENTIAL AND METHOD FOR PRODUCING THE DEVICE
US8202439B2 (en) 2002-06-05 2012-06-19 Panasonic Corporation Diaphragm and device for measuring cellular potential using the same, manufacturing method of the diaphragm
JP3945317B2 (ja) * 2002-06-05 2007-07-18 松下電器産業株式会社 細胞外電位測定デバイスおよびその製造方法
JP3945338B2 (ja) * 2002-08-01 2007-07-18 松下電器産業株式会社 細胞外電位測定デバイスおよびその製造方法
JP4834335B2 (ja) * 2005-06-29 2011-12-14 パナソニック株式会社 細胞電位測定用容器
WO2007132769A1 (ja) * 2006-05-17 2007-11-22 Panasonic Corporation 細胞電位測定デバイスとそれに用いる基板、細胞電位測定デバイス用基板の製造方法
JP4691407B2 (ja) * 2005-06-29 2011-06-01 パナソニック株式会社 細胞電位測定用容器
US8206903B2 (en) 2002-12-20 2012-06-26 Acea Biosciences Device and method for electroporation-based delivery of molecules into cells and dynamic monitoring of cell responses
CA2493108C (en) 2002-07-20 2011-08-30 Xiaobo Wang Impedance based devices and methods for use in assays
US7468255B2 (en) 2002-12-20 2008-12-23 Acea Biosciences Method for assaying for natural killer, cytotoxic T-lymphocyte and neutrophil-mediated killing of target cells using real-time microelectronic cell sensing technology
US7732127B2 (en) 2002-12-20 2010-06-08 Acea Biosciences, Inc. Dynamic monitoring of cell adhesion and spreading using the RT-CES system
US7560269B2 (en) 2002-12-20 2009-07-14 Acea Biosciences, Inc. Real time electronic cell sensing system and applications for cytotoxicity profiling and compound assays
US8263375B2 (en) 2002-12-20 2012-09-11 Acea Biosciences Dynamic monitoring of activation of G-protein coupled receptor (GPCR) and receptor tyrosine kinase (RTK) in living cells using real-time microelectronic cell sensing technology
US7470533B2 (en) 2002-12-20 2008-12-30 Acea Biosciences Impedance based devices and methods for use in assays
DE10236528A1 (de) * 2002-08-09 2004-02-19 Bayer Ag Vorrichtung und Methoden zur Durchführung von elektrischen Messungen an Membrankörpern
EP1801586B1 (en) * 2002-08-21 2010-10-13 Cellectricon Ab System for obtaining and maintaining high-resistance seals in patch clamp recordings
AU2003269975A1 (en) 2002-08-21 2004-03-11 Cellectricon Ab System and method for obtaining and maintaining high resistance seals in patch clamp recordings
FR2844052B1 (fr) 2002-08-28 2005-07-01 Commissariat Energie Atomique Dispositif de mesure de l'activite electrique d'elements biologiques et ses applications
US8232074B2 (en) 2002-10-16 2012-07-31 Cellectricon Ab Nanoelectrodes and nanotips for recording transmembrane currents in a plurality of cells
DE10251767A1 (de) * 2002-11-07 2004-05-27 Forschungszentrum Jülich GmbH Vorrichtung und Verfahren zur Messung elektrischer Vorgänge an biologischen Membranen
US10551371B2 (en) 2003-11-10 2020-02-04 Acea Biosciences, Inc. System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability and morphology and for screening for pharmacological agents which may induce cardiotoxicity or modulate cardiomyocyte function
US11346797B2 (en) 2002-12-20 2022-05-31 Agilent Technologies, Inc. System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability, morphology and electrophysiological properties
US10539523B2 (en) 2002-12-20 2020-01-21 Acea Biosciences, Inc. System and method for monitoring cardiomyocyte beating, viability, morphology, and electrophysiological properties
US10215748B2 (en) 2002-12-20 2019-02-26 Acea Biosciences, Inc. Using impedance-based cell response profiling to identify putative inhibitors for oncogene addicted targets or pathways
US9200245B2 (en) 2003-06-26 2015-12-01 Seng Enterprises Ltd. Multiwell plate
EP1692258A4 (en) 2003-11-12 2007-03-21 Xiao Xu REAL-TIME ELECTRONIC CELL DETECTION SYSTEMS FOR CELL-BASED TESTS
US8058056B2 (en) * 2004-03-12 2011-11-15 The Regents Of The University Of California Method and apparatus for integrated cell handling and measurements
US7169609B2 (en) * 2004-03-31 2007-01-30 Vertex Pharmaceutcals, Inc. Multiwell plate assembly for use in high throughput assays
CA2565855A1 (en) * 2004-05-06 2005-11-17 National Research Council Canada Patterned cell network substrate interface and methods and uses thereof
US6897069B1 (en) * 2004-06-08 2005-05-24 Ambion, Inc. System and method for electroporating a sample
JP4519915B2 (ja) 2004-06-12 2010-08-04 インビトロゲン シンガポール ピーティーイー.リミテッド. 中空構造を有する電気穿孔装置
DE102004030524A1 (de) * 2004-06-18 2006-01-05 Siemens Ag Reaktorenarray zum Testen von Oberflächenreaktionen
JP4587281B2 (ja) * 2004-06-21 2010-11-24 則男 長尾 癌転移抑制能測定する方法およびその測定器
DE202005022035U1 (de) 2004-09-10 2012-10-15 Molecular Devices, Llc Paralleles Patch-Clamp-System
JP2006184207A (ja) * 2004-12-28 2006-07-13 Matsushita Electric Ind Co Ltd 細胞膜の特性および状態の少なくとも一方の電気的測定方法および電気的測定装置
US7473533B2 (en) * 2004-12-30 2009-01-06 Corning Incorporated Membrane arrays and methods of manufacture
US20100019782A1 (en) * 2005-06-29 2010-01-28 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Cellular potential measurement container
US7608417B2 (en) 2005-11-14 2009-10-27 Panasonic Corporation Cell electro-physiological sensor and method of manufacturing the same
JP4470999B2 (ja) 2005-12-20 2010-06-02 パナソニック株式会社 細胞電気生理センサ
AU2007204777B2 (en) * 2006-01-04 2011-12-01 Novartis Ag Antibody-dependent cellular cytotoxicity assay
JP4858870B2 (ja) * 2006-02-16 2012-01-18 財団法人生産技術研究奨励会 培養細胞の電気シグナル計測デバイスおよび該デバイスを用いる電気シグナル計測方法
US8293524B2 (en) * 2006-03-31 2012-10-23 Fluxion Biosciences Inc. Methods and apparatus for the manipulation of particle suspensions and testing thereof
EP2037258A4 (en) 2006-07-06 2013-12-04 Panasonic Corp APPARATUS FOR CELL ELECTROPHYSIOLOGY SENSOR, CELL ELECTROPHYSIOLOGY SENSOR USING THE DEVICE AND METHOD FOR PRODUCING THE CELL ELECTROPHYSIOLOGY SENSOR DEVICE
US8041515B2 (en) 2006-09-20 2011-10-18 Acea Biosciences, Inc. Use of impedance-based cytological profiling to classify cellular response profiles upon exposure to biologically active agents
JP5233187B2 (ja) 2007-07-11 2013-07-10 パナソニック株式会社 細胞電気生理センサ
WO2009033226A1 (en) * 2007-09-14 2009-03-19 Inphaze Pty Ltd In situ membrane monitoring
US9145540B1 (en) 2007-11-15 2015-09-29 Seng Enterprises Ltd. Device for the study of living cells
JP4973618B2 (ja) 2007-12-20 2012-07-11 パナソニック株式会社 細胞電気生理センサの製造方法および製造装置
EP2237887A2 (en) 2007-12-26 2010-10-13 Seng Enterprises Ltd. Device for the study of living cells
ATE518136T1 (de) * 2008-02-25 2011-08-15 Univ Leipzig Vorrichtung und verfahren zur messung der impedanz in organischem gewebe
KR101084528B1 (ko) 2008-04-15 2011-11-18 인비트로겐 싱가포르 피티이. 엘티디. 전기천공 장치용 파이펫 팁
EP2291645B1 (en) 2008-05-05 2015-09-09 Acea Biosciences, Inc. Label-free monitoring of excitation-contraction coupling and excitable cells using impedance based systems with millisecond time resolution
EP2180040B1 (en) * 2008-08-04 2015-12-23 Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. Chip for cell electrophysiology sensor, cell electrophysiology sensor using same, and production method of chip for cell electrophysiology sensor
US8092739B2 (en) * 2008-11-25 2012-01-10 Wisconsin Alumni Research Foundation Retro-percussive technique for creating nanoscale holes
DE102009035502A1 (de) * 2009-07-30 2011-02-03 Universitätsklinikum Jena Verfahren und Vorrichtung zur Erfassung der Bewegung und Anlagerung von Zellen und Partikeln an Zell-, Gewebe- und Implantatschichten bei der Simulation von Flussbedingungen
US8966960B2 (en) * 2010-04-27 2015-03-03 Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. Measuring device
WO2011146531A1 (en) 2010-05-18 2011-11-24 Acea Biosciences, Inc Data analysis of impedance-based cardiomyocyte-beating signals as detected on real-time cell analysis (rtca) cardio instruments
EP2650678B1 (en) 2011-01-13 2016-09-14 Panasonic Intellectual Property Management Co., Ltd. Sensor chip
EP2681550B1 (en) 2011-03-01 2016-07-06 Sophion Bioscience A/S Handheld device for electrophysiological analysis
WO2013116834A2 (en) 2012-02-03 2013-08-08 The Charles Stark Draper Laboratory, Inc. Microfluidic device for generating neural cells to simulate post-stroke conditions
US9186669B2 (en) 2012-02-10 2015-11-17 Applied Biophysics, Inc. Filter device for facilitating characterizing behavior of cells
US9423234B2 (en) 2012-11-05 2016-08-23 The Regents Of The University Of California Mechanical phenotyping of single cells: high throughput quantitative detection and sorting
US9790465B2 (en) 2013-04-30 2017-10-17 Corning Incorporated Spheroid cell culture well article and methods thereof
DE102014001916B4 (de) * 2014-02-13 2015-12-03 Christoph Methfessel Messkammer zur biophysikalischen Untersuchung von Zellen
DE102014203280B4 (de) * 2014-02-24 2015-12-17 Cytocentrics Bioscience Gmbh Vorrichtung zur Bestimmung von Messgrößen an Membranen
SG11201703493SA (en) 2014-10-29 2017-05-30 Corning Inc Cell culture insert
WO2016069930A1 (en) 2014-10-29 2016-05-06 Corning Incorporated Microwell design and fabrication for generation of cell culture aggregates
KR102470508B1 (ko) 2014-10-29 2022-11-24 코닝 인코포레이티드 관류 생물반응기 플랫폼
US10167502B2 (en) 2015-04-03 2019-01-01 Fluxion Biosciences, Inc. Molecular characterization of single cells and cell populations for non-invasive diagnostics
TWI724028B (zh) * 2015-09-29 2021-04-11 日商東京應化工業股份有限公司 基板、構造體、構造體之製造方法、細胞之選別方法、細胞之製造方法、及分泌物之生產方法
US12066428B2 (en) 2015-11-20 2024-08-20 Agilent Technologies, Inc. Cell-substrate impedance monitoring of cancer cells
EP3411395B1 (en) 2016-02-01 2020-04-15 Bayer Animal Health GmbH Rhipicephalus nicotinic acetylcholine receptor and pest control acting thereon
US11746328B2 (en) 2017-03-03 2023-09-05 Agilent Technologies, Inc. Methods and systems for functional maturation of iPSC and ESC derived cardiomyocytes
US20210156844A1 (en) 2017-05-02 2021-05-27 Bayer Aktiengesellschaft TMEM16A Modulation for Diagnostic or Therapeutic Use in Pulmonary Hypertension (PH)
DE102017004567A1 (de) * 2017-05-11 2018-11-15 Innome Gmbh Gerät zur Analyse von biologischen Proben
JP6931220B2 (ja) * 2017-06-01 2021-09-01 学校法人立命館 液滴処理方法、液滴処理基板、及び液滴接触用治具
CN108020490A (zh) * 2017-06-23 2018-05-11 中国科学院天津工业生物技术研究所 一种使用液滴微流控芯片的高通量筛选设备
JP7245222B2 (ja) 2017-07-14 2023-03-23 コーニング インコーポレイテッド 手動又は自動で培地を交換するための3d細胞培養容器
US11857970B2 (en) 2017-07-14 2024-01-02 Corning Incorporated Cell culture vessel
PL3652291T3 (pl) 2017-07-14 2022-03-28 Corning Incorporated Naczynie do hodowli komórkowej
PL3652292T3 (pl) 2017-07-14 2025-09-01 Corning Incorporated Naczynie do hodowli komórkowej 3d i sposoby hodowli komórkowej 3d
KR102673971B1 (ko) * 2017-07-25 2024-06-12 솔벤텀 인텔렉추얼 프로퍼티즈 캄파니 우레탄 성분 및 반응성 희석제를 포함하는 광중합성 조성물, 물품, 및 방법
CN111032851B (zh) 2018-07-13 2024-03-29 康宁股份有限公司 具有包含液体介质传递表面的侧壁的微腔皿
CN111065725B (zh) 2018-07-13 2024-03-29 康宁股份有限公司 包括具有互联的壁的微板的流体装置
WO2020013845A1 (en) 2018-07-13 2020-01-16 Corning Incorporated Cell culture vessels with stabilizer devices
JP7369417B2 (ja) * 2019-02-26 2023-10-26 国立大学法人東北大学 細胞培養用インサート及び電気刺激用培養装置
US20210301245A1 (en) 2020-03-29 2021-09-30 Agilent Technologies, Inc. Systems and methods for electronically and optically monitoring biological samples
MX2024009152A (es) 2022-01-24 2024-08-06 123 See Inc Autolensometro binocular.

Family Cites Families (139)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US67A (en) * 1836-10-24 robert mayo and robert mills
US3856633A (en) 1971-01-07 1974-12-24 Foxboro Co Concentration measurements utilizing coulometric generation of reagents
US3799743A (en) * 1971-11-22 1974-03-26 Alexander James Stable lysis responsive lipid bilayer
US4062750A (en) 1974-12-18 1977-12-13 James Francis Butler Thin film electrochemical electrode and cell
DE2502621C3 (de) 1975-01-23 1978-09-14 Kernforschungsanlage Juelich Gmbh, 5170 Juelich Messung elastischer und dielektrischer Eigenschaften der Membran lebender Zellen
FR2353856A1 (fr) 1976-06-02 1977-12-30 Chateau Guy Ruban destine a servir de support a une reaction par exemple chimique ou biochimique, et procede d'analyse le mettant en oeuvre
US4111754A (en) 1976-11-29 1978-09-05 Hydow Park Immunological testing devices and methods
US4128456A (en) 1977-10-11 1978-12-05 Lee Kai S Suction electrode for intracellular potential measurement
US4225410A (en) 1978-12-04 1980-09-30 Technicon Instruments Corporation Integrated array of electrochemical sensors
US4456522A (en) 1981-09-23 1984-06-26 Critikon, Inc. Support and anchoring mechanism for membranes in selectively responsive field effect devices
DE3144003C2 (de) 1981-11-04 1984-11-08 Max-Planck-Gesellschaft zur Förderung der Wissenschaften e.V., 3400 Göttingen Meßanordnung für extrem kleine Ströme
US4441507A (en) 1981-11-30 1984-04-10 Morris Steffin High speed single electrode membrane voltage clamp
US5310674A (en) 1982-05-10 1994-05-10 Bar-Ilan University Apertured cell carrier
IL68507A (en) 1982-05-10 1986-01-31 Univ Bar Ilan System and methods for cell selection
US4490216A (en) 1983-02-03 1984-12-25 Molecular Devices Corporation Lipid membrane electroanalytical elements and method of analysis therewith
AU594641B2 (en) 1983-11-08 1990-03-15 Bar-Ilan University Apparatus & methods for cell selection
US4661235A (en) 1984-08-03 1987-04-28 Krull Ulrich J Chemo-receptive lipid based membrane transducers
US4952518A (en) 1984-10-01 1990-08-28 Cetus Corporation Automated assay machine and assay tray
JPS61247965A (ja) 1985-04-25 1986-11-05 Susumu Kogyo Kk 酵素免疫測定法
US4897426A (en) * 1986-03-06 1990-01-30 New York University Method for blocking calcium channels
US5026649A (en) * 1986-03-20 1991-06-25 Costar Corporation Apparatus for growing tissue cultures in vitro
US5110556A (en) 1986-10-28 1992-05-05 Costar Corporation Multi-well test plate
JP2662215B2 (ja) 1986-11-19 1997-10-08 株式会社日立製作所 細胞保持装置
US4911806A (en) 1987-02-27 1990-03-27 Biotronics Method and apparatus for separating particles in liquid suspension utilizing oscillating electric and magnetic fields
US5079600A (en) 1987-03-06 1992-01-07 Schnur Joel M High resolution patterning on solid substrates
US5001048A (en) 1987-06-05 1991-03-19 Aurthur D. Little, Inc. Electrical biosensor containing a biological receptor immobilized and stabilized in a protein film
US4874500A (en) 1987-07-15 1989-10-17 Sri International Microelectrochemical sensor and sensor array
US5169600A (en) 1987-07-15 1992-12-08 Fuji Photo Film Co., Ltd. Biochemical analysis apparatus for incubating and analyzing test sites on a long tape test film
US4812221A (en) 1987-07-15 1989-03-14 Sri International Fast response time microsensors for gaseous and vaporous species
JP2682859B2 (ja) * 1987-07-27 1997-11-26 コモンウェルス サイエンティフィック アンド インダストリアル リサーチ オーガニゼーション レセプター膜
US5111221A (en) 1988-05-13 1992-05-05 United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Receptor-based sensor
US5225374A (en) * 1988-05-13 1993-07-06 The United States Of America As Represented By The Secretary Of The Navy Method of fabricating a receptor-based sensor
US4874499A (en) 1988-05-23 1989-10-17 Massachusetts Institute Of Technology Electrochemical microsensors and method of making such sensors
JP2695024B2 (ja) * 1988-08-18 1997-12-24 オーストラリアン メンブレイン アンド バイオテクノロジィ リサーチ インスティチュート リミテッド イオンチャンネル膜バイオセンサーの感受性およびイオン選択性の改善
WO1990002327A1 (en) 1988-08-18 1990-03-08 AUSTRALIAN MEMBRANE AND BIOTECHNOLOGY RESEARCH INSTITUTE LTD., Commonwealth Scientific and Industrial Research Organization Improvements in sensitivity and selectivity of ion channel membrane biosensors
FR2637687B1 (fr) 1988-10-11 1991-01-11 Inst Textile De France Dispositif a usage unique pour tests biologiques
DE69030811T2 (de) 1989-01-27 1997-10-02 Au Membrane & Biotech Res Inst Rezeptormembranen und selektive steuerung des ionenflusses durch ionophoren
US4912060A (en) 1989-02-17 1990-03-27 World Precision Instruments, Inc. Method and apparatus for electrical testing of membranes
US5262128A (en) 1989-10-23 1993-11-16 The United States Of America As Represented By The Department Of Health And Human Services Array-type multiple cell injector
US5368712A (en) * 1989-11-02 1994-11-29 Synporin Technologies, Inc. Biologically mimetic synthetic ion channel transducers
US5229163A (en) 1989-12-21 1993-07-20 Hoffmann-La Roche Inc. Process for preparing a microtiter tray for immunometric determinations
US5041266A (en) 1989-12-21 1991-08-20 Hoffmann-La Roche Inc. Tray for immunometric determinations
IL93020A (en) 1990-01-09 1995-06-29 Yeda Res & Dev Biosensors comprising a lipid bilayer doped with ion channels anchored to a recording electrode by bridging molecules
US5750015A (en) 1990-02-28 1998-05-12 Soane Biosciences Method and device for moving molecules by the application of a plurality of electrical fields
AU656520B2 (en) 1990-03-12 1995-02-09 Institut National De La Recherche Agronomique Process for the artificial stimulation of cells and cyte culture device
FR2659347B1 (fr) 1990-03-12 1994-09-02 Agronomique Inst Nat Rech Dispositif de culture de cellules assurant leur immobilisation.
FR2660323B1 (fr) * 1990-03-30 1992-07-24 Bertin & Cie Dispositif de culture cellulaire.
US5470743A (en) * 1991-03-06 1995-11-28 Becton, Dickinson And Company Transmembrane cell culture device
JPH04338240A (ja) 1991-05-14 1992-11-25 Kiminori Ito 低温電離プラズマを利用したマイクロピペットポリッシングによるパッチクランプ法の高能率化
US5460945A (en) * 1991-05-30 1995-10-24 Center For Blood Research, Inc. Device and method for analysis of blood components and identifying inhibitors and promoters of the inflammatory response
US5173158A (en) * 1991-07-22 1992-12-22 Schmukler Robert E Apparatus and methods for electroporation and electrofusion
US5187096A (en) 1991-08-08 1993-02-16 Rensselaer Polytechnic Institute Cell substrate electrical impedance sensor with multiple electrode array
JP3095464B2 (ja) * 1991-08-08 2000-10-03 宇宙開発事業団 細胞培養装置
US5632957A (en) 1993-11-01 1997-05-27 Nanogen Molecular biological diagnostic systems including electrodes
US5605662A (en) 1993-11-01 1997-02-25 Nanogen, Inc. Active programmable electronic devices for molecular biological analysis and diagnostics
JP2869246B2 (ja) 1992-03-26 1999-03-10 三洋電機株式会社 神経モデル素子
US5508200A (en) 1992-10-19 1996-04-16 Tiffany; Thomas Method and apparatus for conducting multiple chemical assays
US5810725A (en) 1993-04-16 1998-09-22 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Planar electrode
US6258325B1 (en) * 1993-04-19 2001-07-10 Ashok Ramesh Sanadi Method and apparatus for preventing cross-contamination of multi-well test plates
WO1994025862A1 (en) 1993-05-04 1994-11-10 Washington State University Research Foundation Biosensor substrate for mounting bilayer lipid membrane containing a receptor
US5415747A (en) 1993-08-16 1995-05-16 Hewlett-Packard Company Capillary electrophoresis using zwitterion-coated capillary tubes
US6287517B1 (en) 1993-11-01 2001-09-11 Nanogen, Inc. Laminated assembly for active bioelectronic devices
US6099803A (en) 1994-07-07 2000-08-08 Nanogen, Inc. Advanced active electronic devices for molecular biological analysis and diagnostics
US6068818A (en) 1993-11-01 2000-05-30 Nanogen, Inc. Multicomponent devices for molecular biological analysis and diagnostics
US6225059B1 (en) 1993-11-01 2001-05-01 Nanogen, Inc. Advanced active electronic devices including collection electrodes for molecular biological analysis and diagnostics
DE4400955C2 (de) 1993-12-23 1999-04-01 Fraunhofer Ges Forschung Adhäsionssteuerbare Oberflächenstruktur
US5547833A (en) * 1994-01-04 1996-08-20 Intracel Corporation Radial flow assay, delivering member, test kit, and methods
US5563067A (en) 1994-06-13 1996-10-08 Matsushita Electric Industrial Co., Ltd. Cell potential measurement apparatus having a plurality of microelectrodes
US5521702A (en) * 1994-06-14 1996-05-28 Salamon; Zdzislaw Reusable biocompatible interface for immobilization of materials on a solid support
US6071394A (en) 1996-09-06 2000-06-06 Nanogen, Inc. Channel-less separation of bioparticles on a bioelectronic chip by dielectrophoresis
US6403367B1 (en) 1994-07-07 2002-06-11 Nanogen, Inc. Integrated portable biological detection system
US5585249A (en) 1994-10-03 1996-12-17 Board Of Trustees Operating Michigan State University Polyhydroxybutyrate and polyphosphate membranes with channels
US5643796A (en) 1994-10-14 1997-07-01 University Of Washington System for sensing droplet formation time delay in a flow cytometer
AT402935B (de) 1994-10-19 1997-09-25 Pittner Fritz Biorekognitions-gesteuerter, ionenfluss-modulirender biosensor
DK0788600T3 (da) 1994-10-28 2002-08-05 Sophion Bioscience As Patch-clamp-apparat og -teknik med høj gennemgang og lave fluidvolumenkrav
US5955352A (en) 1994-12-22 1999-09-21 Showa Yakuhin Kako Co., Ltd. Instruments for chemical and microbiological tests
US5795782A (en) 1995-03-17 1998-08-18 President & Fellows Of Harvard College Characterization of individual polymer molecules based on monomer-interface interactions
US5583037A (en) * 1995-03-30 1996-12-10 Becton, Dickinson And Company Trans-membrane co-culture insert and method for using
JPH11511238A (ja) 1995-04-25 1999-09-28 イロリ 遠隔プログラム可能なメモリ付きマトリックス及びその使用
JP3643863B2 (ja) 1995-08-09 2005-04-27 アークレイ株式会社 液体保持具とその製造方法
DE19529371C3 (de) 1995-08-10 2003-05-28 Nmi Univ Tuebingen Mikroelektroden-Anordnung
WO1997017426A1 (en) * 1995-11-08 1997-05-15 Trustees Of Boston University Cellular physiology workstations for automated data acquisition and perfusion control
DE19544127C1 (de) 1995-11-27 1997-03-20 Gimsa Jan Dr Verfahren und Vorrichtung zur Erzeugung von Resonanzerscheinungen in Partikelsuspensionen und ihre Verwendung
WO1997020203A1 (de) * 1995-11-28 1997-06-05 Thomas Schalkhammer Neuartige membranen und membran-dna/rna-sensoren
DE19601054C1 (de) 1996-01-05 1997-04-10 Inst Bioprozess Analysenmesst Verfahren und Vorrichtung zur Bestimmung von Parametern von Partikeln in Elektrolyten
WO1997025616A1 (en) * 1996-01-11 1997-07-17 Australian Membrane And Biotechnology Research Institute Ion channel sensor typing
DE19605830C1 (de) 1996-01-22 1997-02-13 Fraunhofer Ges Forschung Lagestabile Positionierung aktiv beweglicher Einzeller
JPH09211010A (ja) 1996-02-06 1997-08-15 Bunshi Bio Photonics Kenkyusho:Kk 電気生理特性測定装置
US5885470A (en) 1997-04-14 1999-03-23 Caliper Technologies Corporation Controlled fluid transport in microfabricated polymeric substrates
US6103479A (en) 1996-05-30 2000-08-15 Cellomics, Inc. Miniaturized cell array methods and apparatus for cell-based screening
WO1997045730A1 (en) 1996-05-30 1997-12-04 Biodx Miniaturized cell array methods and apparatus for cell-based screening
EP0950184A1 (en) 1996-06-27 1999-10-20 Cellstat Technologies, Inc. High-throughput screening method and apparatus
DE19628928A1 (de) 1996-07-18 1998-01-22 Basf Ag Feste Träger für analytische Meßverfahren, ein Verfahren zu ihrer Herstellung sowie ihre Verwendung
DE19646505A1 (de) 1996-11-12 1998-05-14 Itt Ind Gmbh Deutsche Vorrichtung zur Durchführung von Untersuchungen an Zellproben und dergleichen
DE19712309A1 (de) 1996-11-16 1998-05-20 Nmi Univ Tuebingen Mikroelementenanordnung, Verfahren zum Kontaktieren von in einer flüssigen Umgebung befindlichen Zellen und Verfahren zum Herstellen einer Mikroelementenanordnung
EP0938674B1 (de) 1996-11-16 2005-06-01 NMI Naturwissenschaftliches und Medizinisches Institut an der Universität Tübingen in Reutlingen Stiftung Bürgerlichen Rechts Mikroelementenanordnung, verfahren zum kontaktieren von in einer flüssigen umgebung befindlichen zellen und verfahren zum herstellen einer mikroelementenanordnung
WO1998023948A1 (en) * 1996-11-29 1998-06-04 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Arrays of independently-addressable supported fluid bilayer membranes and methods of use thereof
US5904824A (en) 1997-03-07 1999-05-18 Beckman Instruments, Inc. Microfluidic electrophoresis device
US5958345A (en) 1997-03-14 1999-09-28 Moxtek, Inc. Thin film sample support
US6143496A (en) 1997-04-17 2000-11-07 Cytonix Corporation Method of sampling, amplifying and quantifying segment of nucleic acid, polymerase chain reaction assembly having nanoliter-sized sample chambers, and method of filling assembly
CA2285279A1 (en) 1997-05-01 1998-11-12 Neurosearch A/S An automatic electrode positioning apparatus
US5981268A (en) * 1997-05-30 1999-11-09 Board Of Trustees, Leland Stanford, Jr. University Hybrid biosensors
SE9702112D0 (sv) 1997-06-04 1997-06-04 Holdingbolaget Vid Goeteborgs Method and apparatus for detection of a receptor antagonist
GB9712386D0 (en) 1997-06-14 1997-08-13 Univ Coventry Biosensor
US6163719A (en) 1997-09-09 2000-12-19 Sherman; Adam Jacob Biological membrane voltage estimator
US6207031B1 (en) 1997-09-15 2001-03-27 Whitehead Institute For Biomedical Research Methods and apparatus for processing a sample of biomolecular analyte using a microfabricated device
US6284113B1 (en) 1997-09-19 2001-09-04 Aclara Biosciences, Inc. Apparatus and method for transferring liquids
US6070004A (en) 1997-09-25 2000-05-30 Siemens Aktiengesellschaft Method of maximizing chip yield for semiconductor wafers
DE19744649C2 (de) 1997-10-09 2003-03-27 Fraunhofer Ges Forschung Verfahren zur Messung bioelektrischer Signale von Zellen nach der Patch-Clamp-Methode sowie Verwendung einer Vorrichtung hierzu
DE19753598C1 (de) 1997-12-03 1999-07-01 Micronas Intermetall Gmbh Vorrichtung zum Messen physiologischer Parameter
CA2316966C (en) 1997-12-17 2008-04-08 Horst Vogel Positioning and electrophysiological characterization of individual cells and reconstituted membrane systems on microstructured carriers
DE19841337C1 (de) 1998-05-27 1999-09-23 Micronas Intermetall Gmbh Verfahren und Vorrichtung zur intrazellulären Manipulation einer biologischen Zelle
EP0962524B1 (de) 1998-05-27 2004-11-03 Micronas GmbH Verfahren und Vorrichtung zur intrazellulären Manipulation einer biologischen Zelle
GB9812783D0 (en) 1998-06-12 1998-08-12 Cenes Ltd High throuoghput screen
US6787111B2 (en) 1998-07-02 2004-09-07 Amersham Biosciences (Sv) Corp. Apparatus and method for filling and cleaning channels and inlet ports in microchips used for biological analysis
US6406921B1 (en) 1998-07-14 2002-06-18 Zyomyx, Incorporated Protein arrays for high-throughput screening
US20020119579A1 (en) 1998-07-14 2002-08-29 Peter Wagner Arrays devices and methods of use thereof
US6132582A (en) 1998-09-14 2000-10-17 The Perkin-Elmer Corporation Sample handling system for a multi-channel capillary electrophoresis device
CA2348002A1 (en) 1998-10-27 2000-05-04 Malcolm W. Mcgeoch Biological ion channels in nanofabricated detectors
US6267872B1 (en) 1998-11-06 2001-07-31 The Regents Of The University Of California Miniature support for thin films containing single channels or nanopores and methods for using same
US6064260A (en) 1998-12-04 2000-05-16 Lucent Technologies, Inc. RF amplifier network with a redundant power supply
PL348035A1 (en) 1998-12-05 2002-05-06 Cenes Ltd Interface patch clamping
US6377057B1 (en) 1999-02-18 2002-04-23 The Board Of Trustees Of The Leland Stanford Junior University Classification of biological agents according to the spectral density signature of evoked changes in cellular electric potential
CN1185492C (zh) 1999-03-15 2005-01-19 清华大学 可单点选通式微电磁单元阵列芯片、电磁生物芯片及应用
US6927049B2 (en) 1999-07-21 2005-08-09 The Regents Of The University Of California Cell viability detection using electrical measurements
US6488829B1 (en) 1999-08-05 2002-12-03 Essen Instruments Inc High-throughput electrophysiological measurement apparatus
US6682649B1 (en) 1999-10-01 2004-01-27 Sophion Bioscience A/S Substrate and a method for determining and/or monitoring electrophysiological properties of ion channels
JP3525837B2 (ja) 1999-12-24 2004-05-10 株式会社日立製作所 電気生理自動計測装置及び電気生理自動計測方法
GB0006748D0 (en) 2000-03-21 2000-05-10 Cenes Ltd Improved interface patch clamping
GB0013584D0 (en) 2000-06-06 2000-07-26 Cenes Ltd Automated flow patch-clamp system
US6455007B1 (en) 2000-06-13 2002-09-24 Symyx Technologies, Inc. Apparatus and method for testing compositions in contact with a porous medium
US7399599B2 (en) 2000-07-10 2008-07-15 Vertex Pharmaceuticals (San Diego) Llc Ion channel assay methods
US6699665B1 (en) 2000-11-08 2004-03-02 Surface Logix, Inc. Multiple array system for integrating bioarrays
US6815197B2 (en) 2001-02-16 2004-11-09 Multi Channel System Mcs Gmbh Apparatus for conducting electrophysiological measurements on cells
CN100418632C (zh) 2001-05-30 2008-09-17 比奥莱克斯公司 高吞吐量筛选的板和方法
WO2003022421A2 (en) 2001-09-07 2003-03-20 Corning Incorporated Microcolumn-platform based array for high-throughput analysis
US20040191621A1 (en) 2003-03-24 2004-09-30 Medtronic, Inc. Polyimide protected battery feedthrough
US20050148064A1 (en) 2003-12-29 2005-07-07 Intel Corporation Microfluid molecular-flow fractionator and bioreactor with integrated active/passive diffusion barrier
US7297552B2 (en) 2004-04-08 2007-11-20 Sysmex Corporation Instruments for forming an immobilized sample on a porous membrane, and methods for quantifying target substances in immobilized samples

Also Published As

Publication number Publication date
ES2249041T3 (es) 2006-03-16
US6936462B1 (en) 2005-08-30
DK1621888T3 (da) 2009-07-20
US8449825B2 (en) 2013-05-28
CA2334770C (en) 2011-04-12
US7846389B2 (en) 2010-12-07
NO20006295D0 (no) 2000-12-11
AU4283599A (en) 2000-01-05
EP1621888A1 (en) 2006-02-01
US20130288289A1 (en) 2013-10-31
IL140199A (en) 2007-02-11
US20050221282A1 (en) 2005-10-06
EP1084410B3 (en) 2009-08-12
EP1621888B1 (en) 2009-04-08
HUP0102915A2 (hu) 2001-12-28
ATE302951T1 (de) 2005-09-15
MXPA00012345A (es) 2002-04-24
ZA200007296B (en) 2001-06-19
EP1084410A1 (en) 2001-03-21
US20160054298A9 (en) 2016-02-25
IL140199A0 (en) 2002-02-10
HUP0102915A3 (en) 2006-02-28
US20150068925A1 (en) 2015-03-12
WO1999066329A1 (en) 1999-12-23
CA2334770A1 (en) 1999-12-23
DE69940707D1 (de) 2009-05-20
US20110048939A1 (en) 2011-03-03
NO20006295L (no) 2001-02-12
DE69926883D1 (de) 2005-09-29
PL345272A1 (en) 2001-12-03
US8759017B2 (en) 2014-06-24
DE69926883T2 (de) 2006-06-01
AU768862B2 (en) 2004-01-08
ATE428115T1 (de) 2009-04-15
DK1084410T5 (da) 2009-12-21
EP1084410B1 (en) 2005-08-24
JP2002518678A (ja) 2002-06-25
JP4499284B2 (ja) 2010-07-07
DK1084410T3 (da) 2006-01-02
DE69926883T3 (de) 2010-03-11
US10006902B2 (en) 2018-06-26
GB9812783D0 (en) 1998-08-12

Similar Documents

Publication Publication Date Title
PL201770B1 (pl) Struktura do stosowania w wysokowydajnych badaniach przesiewowych, sposób jej wytwarzania i wysokowydajne w badaniach przesiewowych urządzenie
AU2001271898B2 (en) Electrophysiology configuration suitable for high throughput screening of compounds for drug discovery
AU2001271898A1 (en) Electrophysiology configuration suitable for high throughput screening of compounds for drug discovery
CA2385482C (en) A substrate and a method for determining and/or monitoring electrophysiological properties of ion channels
JP4498139B2 (ja) 膜体上で電気的測定を実行するための装置および方法
US7807042B2 (en) System for and method of patch clamp analysis
CA3082938C (en) Microfluidic chip and method for making the same
Zheng et al. Retracted Article: Microelectrochemical cell arrays for whole-cell currents recording through ion channel proteins based on trans-electroporation approach
Py et al. A multiple recording patch clamp chip with integrated subterranean microfluidic channels for cultured neuronal networks
Wilson Automated patch clamping systems design using novel materials
Wittenberg et al. Electrochemistry at the cell membrane/solution interface

Legal Events

Date Code Title Description
LAPS Decisions on the lapse of the protection rights

Effective date: 20110614