JP4470999B2 - 細胞電気生理センサ - Google Patents

Description

本発明は、細胞の活動によって発生する物理化学的変化を測定するために用いられる細胞内電位あるいは細胞外電位等の細胞電気生理現象を測定するための細胞電気生理センサに関する。

従来、電気生理学におけるパッチクランプ法は、細胞膜に存在するイオンチャンネル機能を測定する方法として知られており、このパッチクランプ法によってイオンチャンネルの様々な機能が解明されてきた。そして、イオンチャンネルの働きは細胞学において重要な関心ごとであり、これは薬剤の開発にも応用されている。

しかし、一方でパッチクランプ法は測定技術に微細なマイクロピペットを１個の細胞に高い精度で挿入するという極めて高い技能を必要としているため、熟練作業者が必要である。したがって、高いスループットで測定を必要とする場合には適切な方法でない。

このため、微細加工技術を利用した平板型プローブの開発がなされており、これらは個々の細胞についてマイクロピペットの挿入を必要としない自動化システムに適している。例えば、２つの領域を分離するキャリアに穴を有し、このキャリアの上下に設置した電極によって電界を発生させることで細胞に穴を接触させた状態を効率よく保持し、上下の電極間で電気的測定を行うことで細胞の電気生理的測定を可能にする技術が開示されている（特許文献１参照）。また、平板のデバイスに複数の貫通孔を設け、ここに接着した細胞の連続層を含み、電極で電位依存性のイオンチャンネル活性を測定する技術が開示されている（特許文献２参照）。

また、基板に複数設けたキャビティの内部にそれぞれ設けたマイクロエレメントと、このマイクロエレメントにつながる流路を減圧することにより細胞をマイクロエレメントに引きつけて、細胞の電気生理現象を測定する技術が開示されている（特許文献３参照）。さらに、基板の平板部に穴を設け、基板に基準電極および測定電極を一体化することにより、細胞の電気生理現象を測定する技術も開示されている（特許文献４参照）。また、１つのチャンネルが貫通している表面に、細胞の下面から吸引して位置決めした後、圧力差を増大させて細胞の下面一部を破裂させることにより、液体中に含まれる細胞の測定を行う方法が開示されている（特許文献５参照）。

さらに、使用時に物体がオリフィスをシールし、これによって電気的に絶縁された第一および第二の空洞部が形成されるように構成し、第一および第二の空洞部にそれぞれ設置された電極間のインピーダンスの変化によって、媒体中の物体の電気的測定を行う装置が開示されている（特許文献６参照）。

また、基板の上に設けられた細胞保持手段を備えたウエルと、このウエルの電気信号を検出する測定用電極と、基準電極とを備えた細胞外電位測定用デバイスによって細胞外電位を測定する技術が開示されている（特許文献７参照）。

また、オリフィスに物体をシールさせて、これによって電気的に絶縁された空洞間の電極インピーダンスを測定することによって、物体の状態変化を検出する装置が開示されており、物体が置かれている液体環境を迅速に除去・交換するために液体供給毛細管と液体吸引毛細管を備えた液体供給手段についても開示されている（特許文献６参照）。

その他、ＳｉＯ_２などの平板に、直径数μｍの貫通孔を形成したデバイスも知られている。この貫通孔は、パッチクランプ法におけるガラスピペットの先端穴と同様の役割を果たす。そして、平板の裏面側から細胞を吸引等すれば、細胞を貫通孔に自動的に引きつけ、密着させることができ、容易に細胞外電位を測定することができる。

しかしながら、上述したような従来における細胞電気生理センサの主な目的は細胞の電気生理現象を従来のパッチクランプ法で使われる微細プローブを用いることなく簡便に計測することである。特に特許文献６で開示された液体供給手段は細胞周辺の液体環境を迅速に除去・交換するために有効な手段である。しかしながら、液体供給手段である極めて細い管を細胞の周辺に精度良く配置することは重要であると考えられるが、液体中への管の挿入を高精度に行うには液体中では管への表面張力の影響が無視できないために困難さが伴う。また、細胞の周辺に液体を供給する際に細胞へ向かって直接流れを発生させると、液体を迅速に供給させるために流れを強くしすぎると流れが不安定になることがある。
特表２００２−５０８５１６号公報 特表２００２−５１８６７８号公報 米国特許第６３１５９４０号明細書 特表２００３−５１１６６８号公報 特表２００３−５１１６９９号公報 特表２００３−５２７５８１号公報 国際公開第０２／０５５６５３号

本発明の細胞電気生理センサは、少なくとも１つの曲面からなる第一の壁面を設けるとともに第一の壁面の両端に第一の開口部と第二の開口部とを有したウエルと、第二の開口部に当接する第三の開口部と第四の開口部とを有した第一の貫通孔を設けた枠体基板と、少なくとも１つの第二の貫通孔を有した薄板を設けるとともに第一の貫通孔の内部に埋め込まれた細胞電気生理センサチップと、第四の開口部に当接するように空洞を設けた空洞基板とを備え、第三の開口部の端部より下方に細胞電気生理センサチップの薄板が設置されたものである。

このような構成により、使用に際して、液体中の特定位置に配置された細胞の周辺に確実に、そして安定的に、薬剤その他の液体を供給・吸引できるようにすることによって、細胞電気生理現象の効率的な測定を実現するものである。

以下、本発明の実施の形態における細胞電気生理センサについて、図面を参照しながら説明する。

（実施の形態１）
図１は本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの断面図であり、図２は図１の要部拡大断面図、図３は要部拡大上面図である。図１〜図３に示すように、樹脂よりなるウエル１は少なくとも１つの曲面からなる第一の壁面１３とこの両端に第一の開口部６、第二の開口部７を有している。第一の開口部６は、図１の矢印に示すようにウエル１の上部に開口した部分である。同様に第二の開口部７は、図１の矢印に示すようにウエル１の下部に開口した部分である。そして、図３に示すように、第一の開口部６と第二の開口部７とは実質的に円形の開口部として形成されている。なお、本実施の形態では第一の開口部６と第二の開口部７とは実質的に円形の開口部として形成されているが、円形に限るものではなく、実質的に楕円状でも矩形状でもよい。また、ウエル１の第一の壁面１３は、第一の開口部６の開口径が第二の開口部７より大きく、その壁面はテーパ形状に形成されている。

そして、第二の開口部７には樹脂よりなる枠体基板２が当接されている。枠体基板２には両端に第三の開口部９、第四の開口部１０を有した第一の貫通孔５が形成されている。第三の開口部９は、枠体基板２の上面に開口した部分である。同様に第四の開口部１０は、枠体基板２の下面に開口した部分である。そして、第一の貫通孔５は、第三の開口部９が第四の開口部１０より大きい開口径を有するテーパ形状であり、図２に示すようにすり鉢状に形成されている。

さらに、第四の開口部１０には樹脂よりなる空洞基板３が当接されており、空洞基板３は第四の開口部１０の下方に位置する部分に空洞１５を有している。それぞれの空洞１５はお互いに接続されて薬剤などの流路１１として利用されるものである。

さらに、枠体基板２の第一の貫通孔５の内部には保持部４Ａ（側壁部分）と薄板１７とが設けられた細胞電気生理センサチップ４が埋め込まれるとともにシール剤２８によって封止されている。そして、薄板１７には少なくとも１つの第二の貫通孔１６が設けられている。なお、第二の貫通孔１６は、図２では表示されないほど微小な径を有する貫通孔である。また、枠体基板２の厚みは細胞電気生理センサチップ４の厚みより大きく形成されている。このとき、センサチップ４の薄板１７は、第１の貫通孔５の上側の開口部である第三の開口部９より下方に位置している。また、第一の貫通孔５は、図２に示すように第三の開口部９が徐々に小さくなるように構成されている。そして、第一の貫通孔５は、細胞電気生理センサチップ４の外形とほぼ同じになったところで、枠体基板２に対して垂直な穴となり、第四の開口部１０へと通じるように構成されている。すなわち、実施の形態１における細胞電気生理センサは、第三の開口部９の大きさを第二の開口部７と同じあるいは小さくし、且つ細胞電気生理センサチップ４の上面における大きさまで徐々に小さくしたテーパ状の第二の壁面１４を有している。このように構成とすることによって、後の動作の説明でも述べるが、ウエル１に細胞、薬剤、培養液、細胞外液等を投入する際に、細胞電気生理センサチップ４の第二の貫通孔１６が形成された薄板１７の近傍へ確実にこれらを到達させることができる。したがって、効率的な測定を可能にする細胞電気生理センサを実現することができる。

ウエル１、枠体基板２および空洞基板３はすべて樹脂で構成されており、樹脂としては熱可塑性樹脂がより好ましい。これにより、これら材料は熱溶着などの手段を用いることで特に接着剤を使うことなく、互いに強固に接合することができる。また、ウエル１、枠体基板２および空洞基板３は、ポリカーボネート樹脂、ポリエチレン樹脂、オレフィンポリマ樹脂、ポリメタクリル酸メチルアセテート樹脂の少なくともいずれか１つを含む熱可塑性樹脂を用いることが好ましい。これらの材料は、特に熱溶着によって接合を行いやすい。さらに、ウエル１、枠体基板２および空洞基板３は、環状オレフィンポリマ、線状オレフィンポリマ、またはこれらが共重合した環状オレフィンコポリマ、またはポリエチレンの少なくともいずれか１つから選択することがより好ましい。特に、環状オレフィンコポリマは透明性、アルカリ・酸などの無機系薬剤に対する耐性が強く、本発明の製造工程もしくは使用環境に最も適している。

なお、図１には細胞電気生理センサチップ４を複数形成した構成を示しているが、このことは本発明の範囲を限定するものではない。また、図１は第一の電極２３、第二の電極２４および第三の電極２５が枠体基板２に設けられた様子を示している。これら電極はセンサ部で発生する電気的指標、たとえば電位、電流などを測定するためのものであるが、これらの形状、材質などは本発明の範囲を限定するものではない。また、これらの電極は予め細胞電気生理センサと一体化されていてもよく、あるいは測定時に細胞電気生理センサ内に差し込まれるように設計してもよい。

なお、配線電極３０は細胞電気生理センサチップ４をマトリックス状に複数配置した構成としたときの電極パターンを示している。

次に、本発明の細胞電気生理センサを用いて細胞の電気生理活動を測定する方法について述べる。図４〜図１１は本発明の細胞電気生理センサを用いた測定方法を説明するための断面図である。

まず、図４に示すように、細胞内液２７がウエル１Ｂからウエル１Ｃにかけて吸引されて空洞１５に充填され、また、ウエル１Ａに細胞外液２６が充填される。ここで細胞内液２７とは、例えば、ほ乳類筋細胞の場合、代表的には、Ｋ^＋イオンが１５５ｍＭ、Ｎａ^＋イオンが１２ｍＭ程度、Ｃ１⁻イオンが４．２ｍＭ程度添加された電解液であり、細胞外液２６とは、Ｋ^＋イオンが４ｍＭ程度、Ｎａ^＋イオンが１４５ｍＭ程度、Ｃ１⁻イオンが１２３ｍＭ程度添加された電解液である。この状態で、ウエル１の内部に設置された第一の電極２３と空洞１５の内部に設置された塩化銀などからなる第三の電極２５との間で、１００ｋΩ〜１０ＭΩ程度の抵抗値を測定することができる。この第三の電極２５は、枠体基板２の上下をシールして流路１１内の細胞内液２７がウエル側に漏れ出さないようにするとともに、参照用の電極としての役割をはたしている。すなわち、細胞電気生理センサチップ４の薄板１７の内部に設けられた第二の貫通孔１６に電解液である細胞内液２７あるいは細胞外液２６が浸透することにより、第一の電極２３と第三の電極２５の電極間に電気回路が形成されている。

次に、図５および図６に示すように、マイクロピペット１８を用いて、細胞１９を投入する。なお、図６は本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大断面図であり、図５に示した破線の円形部分を拡大して示している。図６に示すように、第三の開口部９の開口径を第四の開口部１０の開口径より大きくして、テーパ形状の第一の貫通孔５が枠体基板２に形成されている。したがって、投入された細胞１９が細胞電気生理センサチップ４の薄板１７の近傍まで到達しやすい構造が実現されている。

なお、枠体基板２の第一の貫通孔５の形状は、図７に示すように、垂直な穴にすることもできるが、この場合は前述のようにテーパ形状にするときよりも細胞、薬剤、培養液、細胞外液等を投入した際に薄板１７の近傍へ到達しにくくなることが考えられる。したがって、これらを投入する際に上部から挿入するマイクロピペット１８の位置を、図８に示すように、第一の貫通孔５の中心より若干、好ましくは１００〜５００um程度水平方向にずらして溶液の投入を行うことが望ましい。このようにすれば、溶液の流れが第一の貫通孔５内で発生して、確実に溶液が薄板１７の近傍へ到達することができるようになる。

そして、本実施の形態によれば、薄板１７が第一の貫通孔５の上側の開口部である第三の開口部９より下方に位置していることにより、細胞、薬剤、等を上部より投入する際に薄板１７の近傍へ向かって直接流れが発生するのではなく、第一の貫通孔５の壁面に沿って流れが発生する。したがって、より穏やかな流れが発生する。

なお、本発明における細胞電気生理センサチップ４は、薄板１７が保持部４Ａに保持された形状である。保持部４Ａに薄板１７を保持させて細胞電気生理センサチップ４が形成されている理由は、薄板１７の厚みが１００ｕｍ以下と極めて薄いため単独では扱いが困難であるためである。また、図９および図１０に示すように、細胞電気生理センサチップ４を第一の貫通孔５に配置する際に、薄板１７がより第三の開口部９へ近くなるようにしても良い。この選択は投入する細胞、薬剤等の流れをどのような条件（流速、流れ方向）で発生させたいか、あるいは測定する細胞１９の性質（たとえば浮遊性か粘着性か、大きさ、密度等）によって最適に決定されるべきである。例えば、細胞密度が小さい場合、薄板１７を下にして薄板１７と第三の開口部９との段差を大きくすると、薄板１７付近における細胞外液の流動抵抗が大きくなる。したがって、細胞外液の流れが穏やかになって、細胞のトラップ率を高くできる。一方、細胞密度が大きい場合、薄板１７を上にして薄板１７を第三の開口部９に近づけると、細胞外液の流れが速くなる。したがって、細胞をより迅速にトラップできる。

次に、図１１に示すように空洞１５に充填された細胞内液２７が吸引されると、細胞１９は第二の貫通孔１６へ引きつけられ、ついにはこの第二の貫通孔１６をふさぎ、ウエル１と空洞１５との間の電気抵抗は十分に高くなる。この状態においては、細胞１９の電気生理活動によって細胞１９の内外の電位が変化した場合に、わずかな電位差あるいは電流であっても高精度な測定を実現できる。

さらに、本実施の形態１の別の例として、図１２に示すように枠体基板２の第三の開口部９につながる第二の壁面１４には、第一の貫通孔５へ向かって放射状に少なくとも１つの溝１２が形成されている。そして、溝１２は、直線状に形成されることが好ましい。この形状によれば、図１３に示すように、マイクロピペット１８をウエル１から挿入したとき、マイクロピペット１８がウエル１の溶液の表面張力等によって応力を受けて高精度な位置決めが難しい場合でも、第二の壁面１４へ設けられた溝１２がガイドとなり、マイクロピペット１８は望む方向に先端を向けることとなり、より確実に細胞電気生理センサチップ４の近傍へ細胞１９、薬液、等を投入できる。

さらに本実施の形態１の他の例として、図１４に示すように枠体基板２の第二の壁面１４に、第一の貫通孔５の中心部へ向かって少なくとも１つのらせん状の溝２０が形成されてもよい。このようにらせん状の溝２０が第二の壁面１４に形成されることにより、マイクロピペット１８によって投入される液体がらせん状の溝２０に沿って流れることとなり、ウエル１の容器内における薬液の混合を容易にすることができる。

さらに、本実施の形態１の別の構成として、図１５に示すように、第一の貫通孔５の第三の開口部９は第二の開口部７と同じあるいは小さくし、且つ第四の開口部１０より大きくし、第三の開口部９側の内壁面は第四の開口部１０に向かって垂直となるように形成し、第一の貫通孔５をいわゆる座繰り穴形状として形成してもよい。すなわち、細胞電気生理センサチップ４の上面の高さまで実質的に同じ大きさになるように座繰り抜くとともに、細胞電気生理センサチップ４の上面と同一面上に平面である底面が形成されている。このように座繰り穴形状に形成する場合は、先に述べたテーパ形状よりも加工が行いやすいという利点を有している。なお、枠体基板２の第一の貫通孔５の内部には細胞電気生理センサチップ４が埋め込まれているが、この細胞電気生理センサチップ４の厚みは枠体基板２の厚みより小さい。そして、図１６Ａに示すように、座繰り抜いた第三の開口部９の底面部に、第一の貫通孔５の中心部に向かって少なくとも１つの溝１２が形成されていてもよい。なお、図１６Ａには、溝１２の数は１２個の場合について示したが、この数に限るものではない。この溝１２によって座繰り穴形状の底面付近にある液体の流れを安定化させることができる。

そして、さらに図１６Ｂに示すように、座繰り抜いた第三の開口部９の底面部に、第一の貫通孔５の中心部に向かって少なくとも１つのらせん形状の溝２０が形成されてもよい。このような構成により、第一の貫通孔５の内部に液体が進入した際に、液体の流れがらせん形状の溝２０によってらせん状に生じるようになる。したがって、このような構成は異なる液体の混合がスムーズに行われる利点を有している。なお、図１６Ｂには、溝２０の数は１２個の場合について示したが、この数に限るものではない。

また、図１６Ｃに示すように、第一の貫通孔５の第三の開口部９の底面部に、複数の鋭角な先端部を有する星形形状の凹部２９が形成されてもよい。これによって、凹部２９の鋭角な先端部では液体が濡れにくくなる。したがって、第一の貫通孔５の内部へ液体が進入する際に、気泡が凹部２９の中央部に集中することから第三の開口部９側に伝わって気泡が除去されやすくなる。これによって、第一の貫通孔５の内部へ液体が進入する際の流路抵抗を下げることができ、確実な送液を可能にすることができる。なお、図１６Ｃには、星形形状の凹部２９をその鋭角な先端部が５個の場合について示したが、この数に限るものではない。

なお、上記したように第三の開口部９側の内壁面は第四の開口部１０に向かって垂直となった、いわゆる座繰り穴形状の細胞電気生理センサチップ４を第一の貫通孔５に配置する際に、図１７に示すように薄板１７がより第三の開口部９側へ近くなるようにしても良い。この選択は測定する細胞の性質（例えば浮遊性、吸着性、大きさ、質量等）によって適宜選択することができる。

（実施の形態２）
以下、本発明の実施の形態２における細胞電気生理センサについて、図面を参照しながら説明する。なお、図面において実施の形態１と同じ機能を持つ構成部材については同番号を付与する。

図１８は本実施の形態２における細胞電気生理センサのチップ部分の拡大断面図である。ウエル１と枠体基板２と空洞基板３と細胞電気生理センサチップ４から構成される点は実施の形態１と同じ構成であるが、特に異なっている点は枠体基板２と細胞電気生理センサチップ４の形状である。

すなわち、図１８に示すように枠体基板２は、第三の開口部９が第四の開口部１０より大きく形成され、この第四の開口部１０の周縁部に沿って、凹部２１が形成されている。一方、細胞電気生理センサチップ４には薄板１７の周囲に凸部２２が設けられている。そして、凸部２２は枠体基板２の凹部２１に嵌合して内部に埋め込まれている。また、ウエル１と空洞基板３については基本的な構造は変わらないので詳細な説明を省く。

このような構成とすることによって、枠体基板２に設けられた第一の貫通孔５の第四の開口部１０が細胞電気生理センサチップ４の薄板１７付近にまで接近しているので、ウエル１から極めて効率的に薬液の交換、細胞１９の投入などが行えるようになり、測定を効率化することができる。

さらに、このような構成によれば、凸部２２と凹部２１を嵌合することで枠体基板２と細胞電気生理センサチップ４の組み立てが完了する。したがって、組み立て時に、特にアライメントを必要としないという構造上の利点も有する。

さらに、実施の形態１で示したのと同様にウエル１、枠体基板２および空洞基板３はすべて樹脂で構成されており、特に熱可塑性樹脂で構成することが好ましい。これにより、これら材料は熱溶着などの手段を用いることで特に接着剤を使うことなく、互いに強固に接合できる。また、ウエル１、枠体基板２および空洞基板３は、ポリカーボネート樹脂、ポリエチレン樹脂、オレフィンポリマ樹脂、ポリメタクリル酸メチルアセテート樹脂の少なくともいずれか１つを含むことが好ましい。これらの材料は、特に熱溶着によって接合を行いやすい。さらに、ウエル１、枠体基板２および空洞基板３が、環状オレフィンポリマ、線状オレフィンポリマ、またはこれらが共重合した環状オレフィンコポリマ、またはポリエチレンの少なくともいずれか１つから選択することがより好ましい。特に、環状オレフィンコポリマは透明性、アルカリ・酸などの無機系薬剤に対する耐性が強く、本発明の製造工程もしくは使用環境に適している。

さらに、図１９に示すように実施の形態１で示したのと同様に、枠体基板２の第三の開口部９につながる第二の壁面１４には、第一の貫通孔５の中心部へ向かって放射状に少なくとも一つの直線状の溝１２が形成されることが好ましい。この形状とすることによって、マイクロピペット１８をウエル１から挿入したときに、マイクロピペット１８がウエル１の溶液の表面張力等によって応力を受けて高精度な位置決めが難しい場合でも、第二の壁面１４へマイクロピペット１８を突き当てれば、溝１２がガイドとなり、より確実に第一の貫通孔５へ設置した細胞電気生理センサチップ４の近傍へ細胞１９、薬液等を投入することができる。

なお、枠体基板２の第二の壁面１４には、実施の形態１で示したのと同様、少なくとも一つのらせん状の溝２０が形成されても良い。このような構成により、マイクロピペット１８によって投入する液体がらせん状の溝２０に沿って流れることとなり、ウエル１の容器内における薬液の混合を容易にする。

（実施の形態３）
次に実施の形態３について説明する。図２０は実施の形態３における細胞電気生理センサの断面図である。図２０に示すように、第一の貫通孔５が設けられた枠体基板２内に空洞構造体３１が挿入されており、この空洞構造体３１内に細胞電気生理センサチップ４が設置されている。このとき、細胞電気生理センサチップ４は空洞構造体３１の上側の開口部より下方に薄板１７が位置するように設置されている。

このような構成により、薄板１７が空洞構造体３１の上側の開口部より下方に位置することで、薬剤、細胞を上部より投入する際に、より穏やかな流れを発生させることができるという実施の形態１と同様の利点を有している。なお、図２１に示すように、細胞電気生理センサチップ４は保持板４Ａと薄板１７の位置関係が反対になるように設置してもよく、この選択は投入する細胞、薬剤等の流れをどのような条件（流速、流れ方向）で発生させたいか、あるいは測定する細胞の性質（たとえば浮遊性か粘着性か、大きさ、密度等）によって最適に決定されるべきである。

以上のように本発明にかかる細胞電気生理センサは、液体中の特定位置に配置された細胞の周辺に確実に薬剤その他の液体を供給・吸引できるようにすることによって、細胞電気生理現象の効率的な測定を可能にするので、高速で薬理判定を行う、薬品スクリーニング等の測定器に有用である。

本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大上面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの測定方法を説明するための断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における別の構造の細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における別の構造の細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における細胞電気生理センサの要部拡大断面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの上面図 本発明の実施の形態１における要部拡大断面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの上面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの上面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの上面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの上面図 本発明の実施の形態１における他の構造の細胞電気生理センサの断面図 本発明の実施の形態２における細胞電気生理センサのチップ部分の拡大断面図 本発明の実施の形態２における細胞電気生理センサのチップ部分の断面図 本発明の実施の形態３における細胞電気生理センサのチップ部分の拡大断面図 本発明の実施の形態３における細胞電気生理センサのチップ部分の断面図

符号の説明

１，１Ａ，１Ｂ，１Ｃ ウエル
２ 枠体基板
３ 空洞基板
４ 細胞電気生理センサチップ
５ 第一の貫通孔
６ 第一の開口部
７ 第二の開口部
９ 第三の開口部
１０ 第四の開口部
１１ 流路
１２ 溝
１３ 第一の壁面
１４ 第二の壁面
１５ 空洞
１６ 第二の貫通孔
１７ 薄板
１８ マイクロピペット
１９ 細胞
２０ 溝
２１ 凹部
２２ 凸部
２３ 第一の電極
２４ 第二の電極
２５ 第三の電極
２６ 細胞外液
２７ 細胞内液
２８ シール剤
３０ 配線電極
３１ 空洞構造体

Claims (22)

1. 第一の開口部とその第一の開口部に背中合わせに対向する第二の開口部との間を連結する連結孔を設け、その連結孔を第一の開口部側へ拡開するテーパ形状としたウエルと、
   前記ウエルの第二の開口部に対向する第三の開口部とその第三の開口部に背中合わせに対向する第四の開口部との間を貫通する第一の貫通孔を設け、前記ウエルに当接する枠体基板と、
   少なくとも１つの第二の貫通孔を有した薄板と、この薄板の周囲に設けられた保持部とからなり、前記第一の貫通孔の内部に埋め込まれている細胞電気生理チップとを備え、
   空洞を設けた空洞基板を前記第四の開口部に当接し、
   前記第二の貫通孔に保持した細胞の細胞電位を検出する電極により測定するための細胞電気生理センサであって、
   前記第三の開口部の端部より下方に前記細胞電気生理センサチップの前記薄板が設置される細胞電気生理センサ。
2. 前記枠体基板の厚みを前記細胞電気生理センサチップの厚みより大きくし、前記第三の開口部の開口径を前記第四の開口部の開口径より大きくした請求項１記載の細胞電気生理センサ。
3. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板を熱可塑性樹脂により形成した請求項１に記載の細胞電気生理センサ。
4. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板をポリカーボネート樹脂、ポリエチレン樹脂、オレフィンポリマ樹脂、ポリメタクリル酸メチルアセテート樹脂の少なくともいずれか１つを含む熱可塑性樹脂とした請求項１に記載の細胞電気生理センサ。
5. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板を環状オレフィンポリマまたは線状オレフィンポリマおよびこれらが共重合した環状オレフィンコポリマ、またはポリエチレンポリマの少なくともいずれか１つから選択した請求項１に記載の細胞電気生理センサ。
6. 前記第三の開口部の大きさを前記第二の開口部と同じあるいは小さくし、且つ前記細胞電気生理センサチップの上面における大きさまで徐々に小さくしたテーパ状の第二の壁面を有した請求項１に記載の細胞電気生理センサ。
7. 前記第一の貫通孔のテーパ状の前記第二の壁面に、前記第一の貫通孔の中心部に向かって少なくとも１つの溝を有した請求項６に記載の細胞電気生理センサ。
8. 前記溝は、直線状に形成された請求項７に記載の細胞電気生理センサ。
9. 前記溝は、らせん状に形成された請求項７に記載の細胞電気生理センサ。
10. 前記第三の開口部の大きさを前記第二の開口部と同じあるいは小さくし、且つ前記細胞電気生理センサチップの上面の高さまで実質的に同じ大きさになるように座繰り抜くとともに、前記細胞電気生理センサチップの上面と同一面上に平面である底面を有した請求項１に記載の細胞電気生理センサ。
11. 前記第三の開口部の底面部に、前記第一の貫通孔の中心部に向かって少なくとも１つの直線状の溝を形成した請求項１０に記載の細胞電気生理センサ。
12. 前記第三の開口部の底面部に、前記第一の貫通孔の中心部に向かって少なくとも１つのらせん形状の溝を形成した請求項１０に記載の細胞電気生理センサ。
13. 前記第三の開口部の底面部に、複数の先端部を有する星形形状の凹部を形成した請求項１０に記載の細胞電気生理センサ。
14. 第一の開口部とその第一の開口部に背中合わせに対向する第二の開口部との間を連結する連結孔を設け、その連結孔を第一の開口部側へ拡開するテーパ形状としたウエルと、
    前記ウエルの第二の開口部に対向する第三の開口部とその第三の開口部に背中合わせに対向する第四の開口部との間を貫通する第一の貫通孔を設け、前記ウエルに当接する枠体基板と、
    空洞を有するとともに前記第一の貫通孔の内部に埋め込まれた空洞構造体と、
    少なくとも１つの第二の貫通孔を有した薄板と、この薄板の周囲に設けられた保持部とからなり、前記空洞構造体の内部に設けられた細胞電気生理チップとを備え、
    前記第二の貫通孔に保持した細胞の細胞電位を検出する電極により測定するための細胞電気生理センサであって、
    前記空洞構造体の上側の開口部より下方に前記細胞電気生理センサチップの前記薄板が設置される細胞電気生理センサ。
15. 第一の開口部とその第一の開口部に背中合わせに対向する第二の開口部との間を連結する連結孔を設け、その連結孔を第一の開口部側へ拡開するテーパ形状としたウエルと、
    前記ウエルの第二の開口部に対向する第三の開口部とその第三の開口部に背中合わせに対向する第四の開口部との間を貫通する第一の貫通孔を設け、この第一の貫通孔の外周に設けられた凹状の保持穴を有し、前記ウエルに当接する枠体基板と、
    少なくとも１つの第二の貫通孔を有した薄板と、この薄板の周囲に設けられた凸状の保持部とからなり、この保持部は前記枠体基板の凹状の保持穴に嵌合して埋め込まれている細胞電気生理チップとを備え、
    空洞を設けた空洞基板を前記第四の開口部に当接し、
    前記第二の貫通孔に保持した細胞の細胞電位を検出する電極により測定するための細胞電気生理センサであって、
    前記枠体基板の厚みを前記細胞電気生理センサチップの厚みより大きくした細胞電気生理センサ。
16. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板を熱可塑性樹脂により形成した請求項１５に記載の細胞電気生理センサ。
17. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板は、ポリカーボネート樹脂、ポリエチレン樹脂、オレフィンポリマ樹脂、ポリメタクリル酸メチルアセテート樹脂の少なくともいずれか１つを含む請求項１５に記載の細胞電気生理センサ。
18. 前記ウエル、前記枠体基板および前記空洞基板は、環状オレフィンポリマまたは線状オレフィンポリマおよびこれらが共重合した環状オレフィンコポリマ、またはポリエチレンポリマの少なくともいずれか１つから選択した請求項１５に記載の細胞電気生理センサ。
19. 前記第三の開口部の大きさを前記第二の開口部と同じあるいは小さくし、且つ前記細胞電気生理センサチップの上面における大きさまで徐々に小さくしたテーパ状の第二の壁面を有した請求項１５に記載の細胞電気生理センサ。
20. 前記第一の貫通孔の前記テーパ状の第二の壁面に、前記第一の貫通孔の中心部に向かって少なくとも１つの溝を有した請求項１９に記載の細胞電気生理センサ。
21. 前記溝は、直線状に形成された請求項１９に記載の細胞電気生理センサ。
22. 前記溝は、らせん状に形成された請求項１９に記載の細胞電気生理センサ。

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