JP7588590B2 - 脳腫瘍および脳転移の治療剤としての2h-インダゾール誘導体 - Google Patents
脳腫瘍および脳転移の治療剤としての2h-インダゾール誘導体 Download PDFInfo
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Description
本出願は、米国特許法119条(e)の下に、2019年1月29日出願の米国仮出願第62/798,220号に対する優先権を主張し、該出願の開示の全体は、参照することにより本出願に組み込まれる。
技術分野
本出願は、2H-インダゾール誘導体およびその組成物を使用して脳腫瘍および脳転移を治療する方法に関する。
本発明は、式(I)のインダゾール化合物が、良好な血液脳関門(BBB)透過性を有する強力で選択的なCDK4/6阻害剤であるという驚くべき発見に基づいている。したがって、これらの化合物は、脳腫瘍および他のさまざまながんからの脳転移の治療または予防のための有用な治療薬である。
[式中、
R1は、水素、C1-C8アルキル、C3-C7シクロアルキル、R6C(O)-、またはR7O(CO)-であり;
R2およびR3はそれぞれ独立して、水素、C1-C8アルキル、C3-C7シクロアルキル、またはC3-C7シクロアルキルメチルであり;
R4は、水素、ハロゲン、C1-C8アルキル、またはC3-C7シクロアルキルであり;
R5は、水素またはハロゲンであり;
R6は、水素、C1-C8アルキルまたはC3-C7シクロアルキルであり;および
R7は、C1-C8アルキルまたはC3-C7シクロアルキルであり;
ここで、任意の前記アルキルまたはシクロアルキルは、任意に置換される]
で示される化合物またはその薬学的に許容される塩、溶媒和物もしくはプロドラッグの投与を含む方法を提供する。
本発明の1つの態様は、脳腫瘍または他のがんからの脳転移を治療する方法であって、それを必要とする対象に治療有効量の式(I):
[式中、
R1は、水素、C1-C8アルキル、C3-C7シクロアルキル、R6C(O)-、またはR7O(CO)-であり;
R2およびR3はそれぞれ独立して、水素、C1-C8アルキル、C3-C7シクロアルキル、またはC3-C7シクロアルキルメチルであり;
R4は、水素、ハロゲン、C1-C8アルキル、またはC3-C7シクロアルキルであり;
R5は、水素またはハロゲンであり;R1は、C1-C8アルキルでありえ;
R6は、水素、C1-C8アルキルまたはC3-C7シクロアルキルであり;および
R7は、C1-C8アルキルまたはC3-C7シクロアルキルであり;
ここで、任意の前記アルキルまたはシクロアルキルは、任意に置換される]
で示される化合物またはその薬学的に許容される塩、溶媒和物もしくはプロドラッグを含む組成物を投与することを含む、方法に関する。
[式中、
R1は、水素、C1-C8アルキル、またはC3-C7シクロアルキルであり;
R2およびR3はそれぞれ独立して、水素、C1-C8アルキル、C3-C7シクロアルキル、またはC3-C7シクロアルキルメチルであり;
R4は、水素、ハロゲン、C1-C8アルキル、またはC3-C7シクロアルキルであり;および
R5は、水素またはハロゲンである]
で示される化合物またはその薬学的に許容される塩、溶媒和物もしくはプロドラッグの使用に関する。
式:
[式中、
R6は、アシル基(たとえば、アセチル、プロピオニル、ホルミルなど)またはホスホリル[たとえば、-P(=O)(OH)2]基である;または代わりに、活性アミノ化合物中のR3が水素である場合、対応するアミドまたはホスホルアミド化合物はプロドラッグとして役立ちうる]
の化合物が含まれるが、これらに限定されない。そのようなアミドまたはホスホルアミドプロドラッグ化合物は、当技術分野で知られている従来の方法に従って調製することができる。
材料および方法
D-ルシフェリン(ロット番号0000204125)を、プロメガから白色粉末として入手し、露光を最小限に抑えるために蓋付きの箱に入れて-80℃で保管した。生理食塩水をD-ルシフェリン粉末に添加して、インビボイメージング用の透明な黄色の15 mg/ml溶液を作成した。D-ルシフェリンは、各生物発光イメージングセッションの直前に調製し、使用中は湿った氷上で光から保護して保管した。
この研究では、雌性Envigoヌードマウス(Hsd:Athymic Nude-Foxn1nu)を使用した。実験1日目は6~7週齢であった。動物は、照射されたハーラン2918.15齧歯動物用餌と水を自由に与えられた。動物は、バブル環境にH.E.P.Aでろ過された空気を1時間あたり100回の完全な空気交換で供給する、BIOBUBBLE(登録商標)クリーンルーム内のトウモロコシの穂軸の寝具を備えたINNOVIVE(登録商標)使い捨て換気ケージに収容された。すべての治療、体重測定、および腫瘍測定は、バブル環境で実施された。環境は、70°±2°Fの温度範囲および30~70%の湿度範囲に制御された。
MG-Luc細胞をATCCから入手した。それらを、1% 100mMピルビン酸ナトリウム、1% 100X NEAA(非必須アミノ酸)、200 μg/mL G418で修飾され、10%非熱不活化ウシ胎児血清(FBS)および1% 100Xペニシリン/ストレプトマイシン/L-グルタミン(PSG)が補充されたアールズ塩(Earle's Salt)を含む最小必須培地(MEM)で培養した。増殖環境を、37℃、5%CO2雰囲気のインキュベーター内で維持した。増殖が完了したとき、0.25%トリプシン-EDTA溶液を使用して細胞をトリプシン処理した。細胞剥離後、完全増殖培地で希釈することによりトリプシンを不活化し、細胞の塊をピペッティングにより分離した。細胞を200rcfで4℃にて8分間遠心分離し、上清を吸引し、ペレットをピペッティングにより冷ダルベッコリン酸緩衝生理食塩水(DPBS)に再懸濁させた。均一な細胞懸濁液のアリコートをトリパンブルー溶液で希釈し、Luna自動セルカウンターを使用してカウントした。細胞懸濁液を200rcfで8分間4℃にて遠心分離した。上清を吸引し、細胞ペレットを冷無血清培地に再懸濁させて、1.0E+08トリパン排除細胞/mlの最終濃度を生成した。移植中、細胞懸濁液を湿った氷上に維持した。移植後、残りの細胞のアリコートをトリパンブルー溶液で希釈し、カウントして、移植後の細胞生存率を決定した。
試験マウスは、0、1、および2日目に頭蓋内に10μlあたり1.0E+06個の細胞を移植された。無菌外科的移植のために、マウスに0.2mg/kgのブプレノルフィンを注射し、空気中の2%イソフルランを使用して麻酔した。次に、マウスを、ノンラプチャー・イヤーバーを使用して定位固定フレーム(ASI instruments, Inc.)に固定した。手術中の乾燥を防ぐために、マウスの眼に眼軟膏を塗布した。再循環37℃水加熱パッドを使用して、移植手順中の動物の体温を維持した。
すべてのマウスを、腫瘍組織量の生物発光イメージング(BLI)推定に基づいて研究グループに分類した。すべてのグループの平均腫瘍組織量が研究集団の全体の平均腫瘍組織量の10%以内になるようにマウスを割りふった。移植は3日間にわたって行われたため、0日目を移植の中間日(2017年2月21日)と定義した。処置は、最初の移植日に関係なく、すべてのグループについて、21日目に開始された。
グループ2:テモゾロミド、6 mg/kg、PO、QDx5 (21-25日目)
グループ3:化合物1、100 mg/kg、PO、QDx21 (21-41日目)
グループ4:アベマシクリブ、100 mg/kg、PO、QDx21 (21-41日目)
グループ5:テモゾロミド、6 mg/kg、PO、QDx5 (21-25日目)+化合物1、100 mg/kg、PO、QDx21 (21-41日目)
グループ6:テモゾロミド、6 mg/kg、PO、QDx5 (21-25日目)+アベマシクリブ、100 mg/kg、PO、QDx21 (21-41日目)
インビボ生物発光イメージング(BLI)は、IVISスペクトル(Caliper Life Sciences, Hopkinton、MA)を使用して行った。動物を、約1~2%イソフルランガス麻酔下で、一度に最大5匹まで画像化した。各マウスに、150 mg/kg (15 mg/ml)のD-ルシフェリンを皮下注射し、注射の10分後にうつ伏せで画像化した。CCDチップの大きなビニングを使用し、露光時間を調整して(2秒から2分)、画像ごとに少なくとも数百カウントを取得し、CCDチップの飽和を回避した。BLI画像を21、28、35、42、49、56、および64日目に収集した。
すべての動物を、少なくとも1日1回臨床徴候について観察した。処置の各日に動物の体重を測定した。個々の体重を週に3回記録した。
この研究の目的は、MDR1-MDCK単層を使用して1つの試験品のP-gp基質電位を決定することであった。
MDR1-MDCK細胞単層を、12ウェルアッセイプレートのコラーゲンコーティングされた微多孔膜上でコンフルエントになるまで増殖させた。プレートの詳細とその認定を以下に示す。透過性アッセイ緩衝液は、10 mM HEPESと15mMグルコースを含むpH7.4のハンクス平衡塩類溶液(HBSS)であった。レシーバー室内の緩衝液には、1%のウシ血清アルブミンも含まれていまれた。投与溶液の濃度は、アッセイ緩衝液中の5μMの試験品+/-1μMのバルスポダールであった。細胞は、最初に、+/-1μMのバルスポダールを含むHBSSとともに30分間プレインキュベートされた。細胞単層を頂端側(A-to-B)または基底外側(B-to-A)に投与し、加湿インキュベーター内で5%CO2、37℃でインキュベートした。サンプルを、120分で、ドナーおよびレシーバー室から採取した。各測定は、2回行った。ルシファーイエローのフラックスを、各単層について、フラックス期間中に細胞単層に損傷が与えられていないことを確認するために、実験後にも測定した。すべてのサンプルを、エレクトロスプレーイオン化を使用したLC-MS MSによって分析した。分析条件は別表1に概説する。見かけの膜透過性(Papp)および回収%を以下の通り計算した:
Papp=(dCr/dt)×Vr/(A×CA) (1)
回収%=100×((Vr×Cr final)+(Vd×Cd final))/(Vd×CN) (2)
ここで、
dCr/dtは、レシーバー区画内の累積濃度 対 時間の傾きである(μM s-1);
Vrは、レシーバー区画の容積(cm3)である;
Vdは、ドナー区画の体積(cm3)である;
Aは、インサートの面積(12ウェルの場合は1.13 cm2)である;
CAは、公称投与濃度と測定された120分のドナー濃度の平均(μM)である;
CNは、投与溶液の公称濃度(μM)である;
Cr finalは、インキュベーション期間の終了時の累積レシーバー濃度(μM)である;
Cd finalは、インキュベーション期間の終了時のドナーの濃度(μM)である。
ER ≧ 2.0 バルスポダールなし、およびバルスポダールありで50%以上減少:陽性
ER ≧ 2.0 バルスポダールなし、およびバルスポダールありで50%未満の減少:陰性
ER < 2.0 バルスポダールの有無にかかわらず:陰性
上記の結果に基づいて、化合物1はP-gpの基質ではない。
液体クロマトグラフィー
カラム:Waters ACQUITY UPLC(登録商標) BEH フェニル 30×2.1 mm、1.7 μm
M.P.緩衝液:25 mMギ酸アンモニウム緩衝液、pH 3.5
水性リザーバー(A):90%水、10%緩衝液
有機リザーバー(B):90%アセトニトリル、10%緩衝液
流速:0.7 mL/分
勾配プログラム:
オートサンプラー:注入体積5 μL
洗浄1:水/メタノール/2-プロパノール:1/1/1;0.2%ギ酸を含む
洗浄2:0.1%ギ酸水溶液
装置:PE SCIEX API 4000
インターフェイス:ターボ・イオンスプレー
モード:多重反応モニタリング
方法:1.0分の持続時間
設定:
マウスに10mg/kgをp.o.投与した。表1および表2に示すように、化合物1の脳内濃度は、アベマシクリブの脳内濃度の約3倍であり、化合物1の脳/血漿(B/P)比は、1.43であったのに対し、アベマシクリブではわずか0.43であった。
Claims (6)
- 化合物またはその薬学的に許容される塩が、薬剤の製造において第2の治療剤と併せて使用される、請求項1または2に記載の使用。
- 第2の治療剤が、別のCDK阻害剤、HER2阻害剤、mTOR阻害剤、またはEGFR阻害剤である、請求項3に記載の使用。
- もう1つのがんが、乳がん、肺がん、結腸直腸がん、前立腺がん、腎臓がん、メラノーマ、マントル細胞リンパ腫(MCL)、慢性骨髄性白血病(CML)、および急性骨髄性白血病(AML)からなる群から選択される、請求項1~4のいずれか1つに記載の使用。
- 肺がんが、非小細胞肺がん(NSCLC)である、請求項5に記載の使用。
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