JP7160690B2 - 血液細胞の人工多能性幹細胞へのリプログラミングのための新規及び効率的な方法 - Google Patents

Description

発明の分野
本明細書に記載されるのは、全血及び末梢血に由来する人工多能性幹細胞（ｉＰＳＣ）の誘導を含む再生医療に関する方法及び組成物であり、そのような方法及び組成物は再生可能な移植材料を提供する。

背景
多能性幹細胞（「ｐＳＣ」）は、再生医療に使用するための治療物質を生成する幅広い機会を提供すると同時に、疾患の開始及び進行を研究するための貴重なインビトロモデルを提供する。ｐＳＣの１つのカテゴリーである人工多能性幹細胞（「ｉＰＳＣ」）は、特徴的な幹細胞特性である、自己複製（すなわち、不死）及び３つの胚性胚葉全てに由来する細胞への分化能（すなわち、多能性）を有する。これらの細胞は、成体の体細胞などの非胚性起源からの細胞の脱分化を含む「リプログラミング」によって得ることができる。リプログラミングプロセスにより、胚性幹細胞（「ＥＳＣ」）などｐＳＣのような他のタイプの胚性原料物質に対する潜在的な倫理的懸念を取り除きつつ、潜在的な患者特異的免疫学的不適合性を可能にするさらなる利点を提供する。

堅牢なリプログラミング技術の確立に加えて、幹細胞再生医療の治療目標の完全実現には、再生可能な再生材料のための供給源として機能することができる宿主細胞のタイプをさらに検討する必要がある。理想的には、細胞は安定したリプログラミングのために必要な可塑性及びその後の増殖における安定性を保有するだけでなく、分離、保存、安定性及び維持の容易さなどの臨床的側面における利点ももたらすであろう。これに関して、それらの広く利用される医学的診断及び細胞リプログラミングのための非常に入手しやすい供給源として考えると、血液細胞はそのような用途のための魅力的な選択肢を代表する。線維芽細胞は、過去１０年間に行われた多くのリプログラミング実験のために広く使用されている細胞供給源であるが、この原料物質は、定方向のリプログラミングにとって最良の選択でない可能性がある。線維芽細胞を得るための皮膚生検は、侵襲的で非無菌的な処置であり、実験の前に回収された細胞の増殖を必要とする。最も重要なことに、皮膚細胞は、血液などの体内からの細胞よりもＵＶ照射などの環境的な傷害により、より多くの変異を有する。

患者固有の免疫適合性の生物学的物質を生成するという最終的な治療目標を考慮すると、最終的な臨床応用に適した治療物質の原料を同定するとともに、リプログラミング細胞のための堅牢で再現性のある手段を確立することが、当技術分野において、非常に必要とされている。このような改良された方法は、高いリプログラム効率、一貫性のある複製を有すること、ゲノム安定性を有する細胞を生成すること、及び様々な細胞種に容易に広げることができることが必要であろう。

本明細書には、血液試料中の非Ｔ細胞、非Ｂ細胞成分からのｉＰＳＣの生成を含む、非組込み型エピソーマルプラスミドベクターを使用する高効率で再現性のあるリプログラミングを確立するための改良された技術が記載される。これらの記載アプローチにより、ゲノム安定性及び核型安定性において優れた特性を有する細胞リプログラミング用の容易に入手可能な供給源としての、血液の使用が可能になる。

本明細書に記載されるのは、ある量の血液細胞を用意すること、ある量のリプログラミング因子を血液細胞に送達すること、及びその血液細胞をリプログラミング培地中で少なくとも４日間培養することを含む、血液細胞由来の人工多能性幹細胞を生成する方法であり、ここで、リプログラミング因子を送達すること、及びリプログラミング培地中で培養することにより、血液細胞由来の人工多能性幹細胞が生成される。他の実施形態において、ある量のリプログラミング因子の送達には、ヌクレオフェクションが含まれる。他の実施形態において、リプログラミング因子には、Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）、及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）からなる群から選択される１つ以上の因子が含まれる。他の実施形態において、リプログラミング因子は、１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターにコードされる。他の実施形態において、１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターには、ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１が含まれる。他の実施形態において、リプログラミング因子を血液細胞に送達した後で、処理した細胞培養表面に血液細胞を播種し、リプログラミング培地中、処理した細胞培養表面上で血液細胞を培養する。他の実施形態において、処理した細胞培養表面は、マウス胚性フィーダー細胞（ＭＥＦ）の播種を含む。他の実施形態において、処理した細胞培養表面には、細胞外基質タンパク質を含む。他の実施形態において、細胞外基質タンパク質はラミニンを含む。他の実施形態において、ラミニンはＬ－５２１を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地は胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む。他の実施形態において、ＥＳＣ培地は塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地はＥ７培地を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地は、Ｌ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含有するＥ７培地を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、少なくとも４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、または１６日間である。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、少なくとも１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０または３１日間である。本明細書にさらに記載されるのは、前述の方法によって生成される血液細胞由来の人工多能性幹細胞を含む細胞株である。他の実施形態において、血液細胞は疾患変異を有する対象から単離される。他の実施形態において、疾患変異は、神経変性疾患、障害、及び／または状態と関連する。他の実施形態において、疾患変異は炎症性腸疾患、障害、及び／または状態と関連する。他の実施形態において、血液細胞は、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞である。他の実施形態において、血液細胞は、ヒト対象から得た試料である。他の実施形態において、試料は全血である。他の実施形態において、試料は末梢血である。他の実施形態において、試料は、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞の単離成分を含む。本明細書にさらに記載されるのは、血液細胞由来の人工多能性幹細胞株である。

本明細書においてさらに記載されるのは、ある量の血液細胞を用意すること、その血液細胞にある量のリプログラミング因子を送達すること、処理した細胞培養表面に血液細胞を播種すること、及びその血液細胞をリプログラミング培地中で少なくとも４日間培養することを含む、人工多能性幹細胞を生成する方法であり、ここで、リプログラミング因子を送達すること、及びリプログラミング培地中で培養することにより、血液細胞由来人工多能性幹細胞が生成される。他の実施形態において、ある量のリプログラミング因子を送達には、ヌクレオフェクションが含まれ、リプログラミング因子は、１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターにコードされるＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）、及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）からなる群から選択される１つ以上の因子を含む。他の実施形態において、１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターにはｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ、及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１が含まれる。他の実施形態において、処理した細胞培養表面には、マウス胚性フィーダー細胞（ＭＥＦ）の播種が含まれる。他の実施形態において、処理した細胞培養表面には、細胞外基質タンパク質が含まれる。他の実施形態において、細胞外基質タンパク質はラミニンを含む。他の実施形態において、ラミニンはＬ－５２１を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地は塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含有する胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地は、Ｌ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含有するＥ７培地を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、少なくとも４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、または１６日間である。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、少なくとも１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０または３１日間である。他の実施形態において、血液細胞は、ヒト対象から得た試料である。他の実施形態において、試料は全血である。他の実施形態において、試料は末梢血である。他の実施形態において、試料は、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞の単離成分を含む。本明細書にさらに記載されるのは、血液細胞由来の人工多能性幹細胞株である。
[本発明1001]
ある量の血液細胞を用意すること、
ある量のリプログラミング因子を前記血液細胞に送達すること、及び
前記血液細胞をリプログラミング培地中で少なくとも4日間培養すること
を含む、血液細胞由来の人工多能性幹細胞を生成する方法であって、
前記リプログラミング因子を送達すること及びリプログラミング培地で培養することにより、血液細胞由来の人工多能性幹細胞が生成される、前記方法。
[本発明1002]
ある量のリプログラミング因子を送達することが、ヌクレオフェクションを含む、本発明1001の方法。
[本発明1003]
前記リプログラミング因子が、Ｏｃｔ－4、Ｓｏｘ－2、Ｋｌｆ－4、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－28、ＳＶ40ラージＴ抗原（「ＳＶ40ＬＴ」）、及びｐ53を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ53」）からなる群から選択される1つ以上の因子を含む、本発明1001の方法。
[本発明1004]
前記リプログラミング因子が、1つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ1由来ベクターにコードされる、本発明1003の方法。
[本発明1005]
前記1つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ1由来ベクターが、ｐＥＰ4 Ｅ02Ｓ ＥＴ2Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ3／4－ｓｈｐ53－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ、及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ1を含む、本発明1004の方法。
[本発明1006]
リプログラミング因子を前記血液細胞に送達した後で、処理した細胞培養表面上に前記血液細胞を播種すること、及び、リプログラミング培地中、前記処理した細胞培養表面上で前記血液細胞を培養することを含む、本発明1001の方法。
[本発明1007]
前記処理した細胞培養表面が、マウス胚性フィーダー細胞（ＭＥＦ）の播種を含む、本発明1006の方法。
[本発明1008]
前記処理した細胞培養表面が、細胞外基質タンパク質を含む、本発明1006の方法。
[本発明1009]
前記細胞外基質タンパク質がラミニンを含む、本発明1008の方法。
[本発明1010]
ラミニンがＬ－521を含む、本発明1009の方法。
[本発明1011]
前記リプログラミング培地が胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む、本発明1001の方法。
[本発明1012]
前記ＥＳＣ培地が塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含む、本発明1011の方法。
[本発明1013]
前記リプログラミング培地がＥ7培地を含む、本発明1001の方法。
[本発明1014]
前記リプログラミング培地がＬ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含有するＥ7培地を含む、本発明1013の方法。
[本発明1015]
リプログラミング培地中で前記血液細胞を培養することが、少なくとも4、5、6、7、8、9、10、11、12、13、14、15、または16日間である、本発明1001の方法。
[本発明1016]
リプログラミング培地中で前記血液細胞を培養することが、少なくとも17、18、19、20、21、22、23、24、25、26、27、28、29、30または31日間である、本発明1001の方法。
[本発明1017]
本発明1001の方法によって生成される、血液細胞由来の人工多能性幹細胞を含む細胞株。
[本発明1018]
血液細胞が、疾患変異を有する対象から単離される、本発明1001の方法。
[本発明1019]
前記疾患変異が、神経変性疾患、障害、及び／または状態と関連する、本発明1018の方法。
[本発明1020]
前記疾患変異が、炎症性腸疾患、障害、及び／または状態と関連する、本発明1018の方法。
[本発明1021]
血液細胞が、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞である、本発明1001の方法。
[本発明1022]
血液細胞がヒト対象から採血された試料である、本発明1001の方法。
[本発明1023]
前記試料が全血である、本発明1022の方法。
[本発明1024]
前記試料が末梢血である、本発明1022の方法。
[本発明1025]
前記試料が、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞の単離成分である、本発明1022の方法。
[本発明1026]
血液細胞由来の人工多能性幹細胞株。

図１Ａ～１Ｂ 血液成分の分離。図１Ａは分離した成分を示す概略図である。図１Ｂは分離した成分の画像を示す。 図２Ａ～２Ｅ 品質管理：ｉＰＳ細胞。生成された細胞の品質管理の様々な測定法が示されており、それらは以下を含む：図２Ａ 顕微鏡検査、及び多能性幹細胞マーカーの染色。図２Ｂ 幹細胞の多能性の描写。図２Ｃ 核型分析。図２Ｄ 異なる細胞株に対する、多能性及び系統特異的マーカーのＲＴ－ＰＣＲ。図２Ｅ ３つの胚系統全てに分化することができる多能性幹細胞。 図２Ａの説明を参照のこと。 図２Ａの説明を参照のこと。 図２Ａの説明を参照のこと。 図２Ａの説明を参照のこと。 ＰＢＭＣ単離及び凍結保存プロセス。リプログラミング及びｉＰＳＣの生成のための原料として利用される血球細胞を得るためのプロセスを示す。 末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）。ＰＢＭＣの集団及び相対的な集団の存在比を含む、血液の様々な成分の描写を示す。 血液由来のｉＰＳＣのＴ細胞受容体クロナリティアッセイを示す。 図６Ａ～６Ｂ ｉＰＳＣ株で観察された染色体変化を示すイデオグラムは、Ｃｅｄａｒｓ－ＳｉｎａｉのｉＰＳＣ Ｃｏｒｅである。各色のバーは、１つの細胞株における１つの染色体変化の発生を示す。細胞遺伝学的変化は（Ｍａｒｏｏｏｎ、モノソミー、全染色体の喪失）のように色分けされる。ＢＣ－ｉＰＳＣは線維芽細胞由来のｉＰＳＣより安定した核型を維持する点で優れている。本発明者らの研究室における線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（図６Ａ）及びＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ（図６Ｂ）に由来する異常核型の個々の染色体レベルのイデオグラム表示。イデオグラムで表される異常ｉＰＳＣ核型は、（図６Ａ）ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ：５９）／全２５８のｆｉｂ－ｉＰＳＣ培養物の核型、及び（図６Ｂ）ＢＣ－ｉＰＳＣ（ｎ：４）／全てのＢＣ－ｉＰＳＣｓｓ核型（ｎ＝１０６）である。 図６Ａの説明を参照のこと。 図７Ａ～７Ｂ 核型。図７Ａは、継代数に関連した異常核型の分布を示す。図７Ｂは組織提供者の年齢に関連した異常核型の分布（Ｍａｒｏｏｏｎ、モノソミー、全染色体の喪失）を示す。 図７Ａの説明を参照のこと。 図８Ａ～８Ｆ ＰＢＭＣのｉＰＳＣへの確実なエピソーマルリプログラミング。図８Ａ：エピソーマルリプログラミングプロセス及びＰＢＭＣからのｉＰＳＣ生成の時間軸を示す概略図。図８Ｂ：ＰＢＭＣ由来のリプログラミングされたｉＰＳＣコロニーの明視野画像は、２例の健康なボランティアの一方には非Ｔ細胞（０３ｉＣＴＲ－ＮＴｎ１）リプログラミング法を用い、もう一方にはＴ細胞（８０ｉＣＴＲ－Ｔｎ１）リプログラミング方法を用いて得た。これらは高い核：細胞質比を示し、アルカリホスファターゼ陽性ならびに表面抗原のＳＳＥＡ４、ＴＲＡ－１－６０、ＴＲＡ－１－８１、かつ核多能性マーカーのＯＣＴ３／４、ＳＯＸ２、及びＮＡＮＯＧについて免疫陽性である。スケールバー：７５μｍ。図８Ｃ：Ｉｌｌｕｍｉｎａマイクロアレイ遺伝子チップとバイオインフォマティクスに基づくＰｌｕｒｉＴｅｓｔにより、ＢＣ－ｉＰＳＣの多能性レベルを確認する。図８Ｄ：ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株は、２つの代表的な系統で示されるように、正常なＧバンド核型を維持した。図８Ｅ：非Ｔ細胞またはＴ細胞のクロナリティアッセイ。図８Ｆ：Ｈ９ ｈＥＳＣと比較した４９ｉＣＴＲ及び８４ｉＳＭＡ ＬＣＬ－ｉｉＰＳＣにおけるＰＯＵ５Ｆ１（ＯＣＴ４）、ＳＯＸ２、ＬＩＮ２８、Ｌ－ＭＹＣ、及びＫＬＦ４発現の定量ＲＴ－ＰＣＲ分析。図８Ｇ：Ｔ細胞受容体遺伝子再編成アッセイによって、異なるセットのＰＣＲプライマーを使用してＴ細胞法に由来するＢＣ－ｉＰＳＣで生じるＴＣＲＧ遺伝子再編成が検出された一方で、１４５～２５５ｂｐの範囲のＰＣＲ産物は非Ｔ細胞ｉＰＳＣクローンで検出されなかったことを示す。クローン陽性対照が含まれる。図８Ｆ：ＴａｑＭａｎ ｈＰＳＣ Ｓｃｏｒｅｃａｒｄ表は、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株に由来するＥＢの自発的なインビトロでのＥＢ分化と比較した場合の４つの遺伝子群（自己複製／多能性、外胚葉、内胚葉、及び中胚葉）の中から選択された遺伝子による代表的なＢＣ－ｉＰＳＣの三系列の分化能を示す。図８Ｇ：同等数の外胚葉（Ｎｋｘ６．１＋／β_３チューブリン＋神経細胞）を示す、代表的な線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（ｎ：２６）及びＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ（ｎ：１２）の神経細胞分化指向性。スケールバー：７５μｍ。図８Ｈ：公表された４ｐ法（Ｔ細胞及び非Ｔ細胞の両方についてｎ＝７）と比較した場合、５ｐ法（Ｔ細胞についてはｎ＝２８、非Ｔ細胞についてはｎ＝１３）による凍結保存ＰＢＭＣのｉＰＳＣリプログラミング効率が高い。リプログラミング成功率は、ＰＢＭＣのリプログラミングの１０の全試行（成功または失敗）回数のうちの割合として計算される。［「Ｔ細胞、５ｐ対４ｐ（＊＊＊）：ｚ値＝３．７４、両側ｐ値＝０．０００１８、２比率のｚ－試験」、「非Ｔ細胞、４ｐ対５ｐ（＊＊＊＊）：ｚ値＝７．１８、両側ｐ値＜０．０００１、２比率のｚ検定」］。ＮＤ：未検出。さらに、４ｐ法と比較した場合、Ｔ細胞集団及び非Ｔ細胞集団の両方について５ｐ法のリプログラミング効率がより高いことが観察された。リプログラミング効率は、確認された個々のｉＰＳＣコロニーに基づいており、解凍後のヌクレオフェクションされたＰＢＭＣの総数に対して正規化した。［「Ｔ細胞、４ｐ対５ｐ（＊＊＊）：両側ｐ値＝０．０００４、ウェルチの補正を伴う対応のないｔ検定」、「非Ｔ細胞、４ｐ対５ｐ（＊＊＊）：両側ｐ値＜０．０００１、ウェルチの補正を伴う対応のないｔ検定」］。ＮＤ：未検出。図８Ｉ及び図８Ｊ：本発明者らの研究室の線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（上側）及びＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ（下側）に由来する異常核型の個々の染色体レベルのイデオグラム表示。イデオグラムで表される異常ｉＰＳＣ核型は、（上側）核型分析した全ｎ＝２６０のｆｉｂ－ｉＰＳＣ培養のうちｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝６１）、及び（下側）核型分析した全ｎ＝２０６のＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株のうちＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝４）である。分析には、培養あたり最低２０細胞の染色体検査が含まれる。本明細書のデータセットには、ＩＳＣＮ２０１３のクローン性の定義に合致する異常のみが含まれる。転座（濃紺色のバー）カテゴリーの上の文字は、各転座異常が生じた染色体位置間で対応するように符合される。各染色体のイデオグラムにおけるバーの幅は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣについて検討した試料数に応じて拡大した。したがって、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株で見いだされた異常を示すバーは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ株で見いだされた異常を示すバーの幅の１．２６倍（２６０／２０６）である。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図８Ａの説明を参照のこと。 図９Ａ～図９Ｄ：ｆｉｂ－ｉＰＳＣと比較して、ＢＣ－ｉＰＳＣは、長期培養に対してより安定である。図９Ａ：線維芽細胞及びＰＢＭＣのドナー年齢に対する対比における、ｉＰＳＣ株で観察された異常なＧバンド核型率。図９Ｂ：リプログラミング後の初回の核型分析及び長期細胞培養で評価されたｉＰＳＣ株の繰り返し核型分析における異常なＧバンド核型率。点線は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（オレンジ色）及びＢＣ－ｉＰＳＣ（青色）の全体の平均核型異常率を表す。図９Ｃ：ｉＰＳＣの継代数に関して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣクローン株及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローン株について評価された初回のＧバンド核型分析での異常率。図９Ｄ：ｉＰＳＣの継代数に関して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣクローン株及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローン株について評価された２～４回目（繰り返し）のＧバンド核型分析での異常率。 図１０Ａ～図１０Ｅ：比較ゲノムハイブリダイゼーションにより、ＢＣ－ｉＰＳＣが、ｆｉｂ－ｉＰＳＣと比較して、比較的小さく、少数の極微小な細胞遺伝学的異常を有することを確認。（図１０Ａ～図１０Ｂ）各ｉＰＳＣ株の親細胞を比較した場合の、ａＣＧＨによって検出されたｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ：６）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ：７）のＭｂにおける新たな獲得増幅及び欠失の平均サイズ。ａＣＧＨで使用したｉＰＳＣ株は、異常Ｇバンド核型及び正常なＧバンド核型を有していた。異常：ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ：３）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ：２）。正常：ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ：３）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ：５）。（図１０Ｃ～図１０Ｄ）各ｉＰＳＣ株の親細胞と比較した場合の、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ：６）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ：７）のＭｂにおける、ａＣＧＨによって検出された新たな獲得増幅及び欠失の平均数。図１０Ｅ：本発明者の研究室で観察されたｆｉｂ－ｉＰＳＣ株またはＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株において確認された、最も再発性の高い極微小な増幅／欠失のリスト。図１０Ｆ：ここに示されている全てのデータは、Ｃｅｄａｒｓ－Ｓｉｎａｉにある本発明者らの研究室で誘導したｉＰＳＣ株に基づく。ｆｉｂ－ｉＰＳＣは３ｐ法でリプログラミングし、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは５ｐ法によりリプログラミングした。線維芽細胞及びＰＢＭＣのドナー年齢に対する対比における、ｉＰＳＣ株で観察された異常なＧバンド核型率。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣのドナー年齢２１～４０対０～２０または５１～６０または４１～５０または６１～９０は有意ではない（ｎｓ）、２つの比率のｚ検定」］。ｆｉｂ－ｉＰＳＣ：ｎ＝１０／６３（０～２０）、ｎ＝１７／５０（２１～４０）、ｎ＝４／２８（４１～５０）、ｎ＝１０／４１（５１～６０）、ｎ＝７／２９（６１～９０）。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの年齢群０～２０：ｎｓ、年齢群２１～４０（＊＊）：ｚ値＝２．９、両側ｐ値＝０．００３、年齢群４１～５０（＊）：ｚ値＝２．４、両側ｐ値＝０．０１５、年齢群５１～６０（＊＊＊）：ｚ値＝３．５、両側ｐ３０値＝０．０００５、年齢群６１～９０（＊＊＊＊）：ｚ値＝４．０２、両側ｐ値＜０．０００１、２比率のｚ検定｝］。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ：ｎ＝２／３４（０～２０）、ｎ＝０／１９（２１～４０）、ｎ＝０／３９（４１～５０）、ｎ＝１／５６（５１～６０）、ｎ＝０／６２（６１～９０）。ＮＤ：未検出。リプログラミング後初回の核型及び長期細胞培養で評価されたｉＰＳＣ株の繰り返しでの核型における異常Ｇバンド核型率。点線は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（黒色）及びＰＢＭＣ－１ ｉＰＳＣ（灰色）の全体の平均核型異常率を表す。［「初回の核型、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（＊＊＊＊）：ｚ値＝５．５９、両側ｐ値＜０．０００１、２比率ｚ検定」、「繰り返し（２～４回目）の核型、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（＊＊＊）：ｚ値＝３．７２、両側ｐ値＝０．０００２、２比率ｚ検定」、「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ、初回核型対繰り返し核型は２比率ｚ検定によって有意でないと試験された」）。ｆｉｂ－ｉＰＳＣ：ｎ＝４６／２０５（初回の核型）及びｎ＝１５／５５（繰り返しでの核型）。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ：ｎ＝２／１４３（初回の核型）及びｎ＝２／６３（繰り返しでの核型）。ｉＰＳＣの継代数に関して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣクローン株及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローン株について評価された初回のＧバンド核型での異常率。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ－継代数１～８（＊＊＊＊）：ｚ値＝４．３１、両側ｐ値＜０．０００１、継代数９～２３（＊＊＊）：ｚ値＝３．２１、両側ｐ値＝０．００１、２比率ｚ検定」］。ｆｉｂ－ｉＰＳＣ：ｎ＝２０／１０２（継代数１～８）及びｎ＝１２ ２６／１０３（継代数９～２３）。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ：ｎ＝１／９９（継代１～８）及びｎ＝１／４２（継代９～２３）。ｉＰＳＣの継代数に関して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣクローン株及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローン株について評価された２～４回目（繰り返し）のＧバンド核型での異常率。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの低継代数１～１４：ｎｓ、ｚ値＝１．５３、両側ｐ値＝０．１２、２比率のｚ検定｝］。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの高継代数≧１５（＊＊）：ｚ値＝２．６１、両側ｐ１７値＝０．００９、２比率のｚ検定」］。ｆｉｂ－ｉＰＳＣ：ｎ＝７／１２（低継代数１～１４）及びｎ＝８／４３（高継代数≧１５）。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ：ｎ＝０／２（低継代数１～１４）及びｎ＝２／６１（高継代数≧１５）。ＮＤ：未検出。図１０Ｇ：各ｉＰＳＣ株の親細胞を比較した場合の、ａＣＧＨによって検出されたｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝６）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝８）のＭｂにおける新たな獲得増幅及び欠失の平均サイズ。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（＊＊）：両側ｐ値＝０．００１５、対応のないｔ検定」］。ａＣＧＨの増幅／欠失解析に使用したｉＰＳＣ株は、異常Ｇバンド核型及び正常なＧバンド核型を有していた。異常：ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝３）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝２）。正常：ｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝３）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝６）。各ｉＰＳＣ株の親細胞を比較した場合の、ａＣＧＨによって検出されたｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝６）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝８）のＭｂにおける新たな獲得増幅及び欠失の平均数。［「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ対ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（＊）：両側ｐ値＝０．０３６９、対応のないｔ検定」］。ｉＰＳＣ株は、１つの異常な核型のｆｉｂ２ ｉＰＳＣ（ｎ＝３）及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｎ＝２）ならびに正常な核型のｆｉｂ－ｉＰＳＣ（ｎ＝３）及びＰＢＭＣ３ ｉＰＳＣ（ｎ＝６）を用いて新たな重複／欠失の数の分析に使用した。本発明者の研究室で観察されたｉＰＳＣ株において確認された、最も再発性の高い極微小な増幅／欠失のリスト。図１０Ｈ：Ｇバンド核型分析によって観察された線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（ｆｉｂ－ｉＰＳＣ）における個々の染色体レベルでの種々の核型異常の頻度。再編成－転座、逆位及び誘導体を含む構造再編成。灰色で網掛けされたセルは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ培養物の核型異常が全く観察されなかった染色体を示す。オレンジ色で示されたセルは、染色体の欠損または構造的再編成を含む全体での染色体異常のカテゴリーのそれぞれについて、最高順位（上位３）の核型異常を示す。 図１０－１の説明を参照のこと。 図１０－１の説明を参照のこと。 図１０－１の説明を参照のこと。 図１０－１の説明を参照のこと。 図１１Ａ～図１１Ｃ：導入遺伝子フリーな状態のＢＣ－ｉＰＳＣ。図１１Ａ：ＢＣ－ｉＰＳＣのゲノムＤＮＡにおける、アッセイを用いたプラスミドベースのＥＢＮＡ遺伝子発現の欠如。図１１Ｂ：内因性のＰＯＵ５Ｆ１（ＯＣＴ４）、ＳＯＸ２、ＬＩＮ２８、Ｌ－ＭＹＣ、及びＫＬＦ４発現（コーディングＤＮＡ配列、ＣＤＳ）を検出するプライマーを用いた定量的ＲＴ－ＰＣＲ分析によって測定した相対的な正規化された遺伝子発現。図１１Ｃ：同様にｉＰＳＣ株では検出されないプラスミド由来の発現（Ｐｌａ）。 図１１Ａの説明を参照のこと。 図１１Ａの説明を参照のこと。 図１２Ａ～図１２Ｂ：リンパ芽球様細胞株（ＬＣＬ）－ｉＰＳＣ及び上皮細胞由来ｉＰＳＣの染色体イデオグラム。本発明者らの研究室におけるＬＣＬ由来ｉＰＳＣ（図１２Ａ）及び上皮由来ｉＰＳＣ（図１２Ｂ）に由来する異常核型の個々の染色体レベルのイデオグラム表示。イデオグラムで表される異常ｉＰＳＣ核型は、（図１２Ａ）ＬＣＬ－ｉＰＳＣ（ｎ：１５）／全６０のＬＣＬ－ｉＰＳＣ培養物核型、及び（図１２Ｂ）上皮－ｉＰＳＣ（ｎ：７）／全てのＢＣ－ｉＰＳＣ核型（ｎ：２６）である。 図１２Ａの説明を参照のこと。 図１３Ａ～図１３Ｂ：ＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣの３系列分化能。本発明者らの研究室で生成された代表的なＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣの３系列分化能を示すＴａｑＭａｎ ｈＰＳＣ Ｓｃｏｒｅｃａｒｄ表。図１３Ａ：４つの群（自己複製／多能性、外胚葉、内胚葉、及び中胚葉）における選択遺伝子の発現は、図１３Ｂ：ｉＰＳＣ段階の１４～１８日後のＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株のそれぞれに由来する自発的な胚様体（ＥＢ）のインビトロでの分化と比較される。自己複製の陰性スコアは、ＥＢの分化状態を反映し、一方、３胚葉のそれぞれの陽性スコアは、定方向分化なしで外胚葉、中胚葉及び内胚葉を生成するためのＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ株の比較的同等な傾向を示す。 図１３Ａの説明を参照のこと。 図１４Ａ～図１４Ｃ：エピソーマルプラスミドでリプログラミングされたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣには、導入遺伝子が存在しない。図１４Ａ：ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣのゲノムＤＮＡに存在するプラスミドベースのＥＢＮＡ１遺伝子の欠如。図１４Ｂ及び図１４Ｃ：内因性のＰＯＵ５Ｆ１（ＯＣＴ４）、ＳＯＸ２、ＬＩＮ２８、Ｌ－ＭＹＣ、及びＫＬＦ４発現（コードＤＮＡ配列、ＣＤＳ）ならびにＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ系では検出不可能であるプラスミド由来発現（Ｐｌａ）を検出するプライマーを用いた定量的ＲＴ－ＰＣＲ分析によって測定した相対的な正規化された遺伝子発現。 図１４Ａの説明を参照のこと。 図１４Ａの説明を参照のこと。 図１５Ａ～図１５Ｂ：５ｐ法でリプログラミングされたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、ＳＶ４０ＬＴ遺伝子の組込み及び発現がない。図１５Ａは、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ、Ｈ９－ｈＥＳＣ、組込み型ｉＰＳＣ対照株及び陽性対照（３０日間ＰＢＭＣＳ中で５ｐを使用してヌクレオフェクトした）から単離されたゲノム及びエピソームＤＮＡにおけるプラスミドベースのＥＢＮＡ１及びＳＶ４０ＬＴ遺伝子存在の欠如。図１５Ｂ：ＥＢＮＡ１、ＳＶ４０ＬＴ及びＧＡＰＤＨの発現を検出するプライマーを用いて、同じ細胞株における定量的ＲＴ－ＰＣＲ分析によって測定した遺伝子発現。ヌクレオフェクションした陽性対照と比較した場合、ＳＶ４０ＬＴ遺伝子発現は、リプログラムされたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株では検出されない。３２ＰＣＲサイクルを全てのプライマーセットに使用した。 図１６Ａ～図１６Ｂ：リンパ芽球様細胞株（ＬＣＬ）－ｉＰＳＣ及び上皮細胞由来ｉＰＳＣの染色体イデオグラム。本発明者らの研究室の図１６ＡのＬＣＬ由来ｉＰＳＣ（上側）及び図１６Ｂの上皮由来ｉＰＳＣ（下側）に由来する異常核型の個々の染色体レベルのイデオグラム表示。イデオグラムで表される異常ｉＰＳＣ核型は、（上側）ＬＣＬ－ｉＰＳＣ（ｎ＝１５）／全６０のＬＣＬ－ｉＰＳＣ培養物核型、及び（下側）上皮－ｉＰＳＣ（ｎ＝７）／全てのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ核型（ｎ＝２６）である。 図１６Ａの説明を参照のこと。 ｐ５３分析。体細胞のバリアント（ｉＰＳＣクローンのみに出現するものは、ＧＡＴＫツールキット及びＭｕＴｅｃｔパッケージで生成された再配列及び再較正された配列ファイル（．ｂａｍ）を用いて同定される。このパッケージは、対になった正常試料（この場合血液由来のＤＮＡ）及び体細胞試料（この場合はｉＰＳＣクローンＤＮＡ）から処理されたシーケンスリードを受け取り、その後、Ｂａｙｅｓｉａｎ分類器を適用して体細胞試料のみに生じるバリアントを同定してから追加の品質管理ステップでバリアントを生殖系列または体細胞として同定する。次いで、同定されたバリアントは、母集団（ｄｂＳＮＰ）で同定された共通変異の大きなＳＮＰデータベースでアノテートされる。 図１８Ａ～図１８Ｂ：３Ｐ、５Ｐ法を用いた線維芽細胞におけるリプログラミング技術の追加的な特徴づけ。図１８Ａ：ヌクレオフェクション後２２日目。図１８Ｂ：ヌクレオフェクション後２８日目。 図１８Ａの説明を参照のこと。 図１９Ａ～図１９Ｂ：３Ｐ、５Ｐ法を用いた線維芽細胞におけるリプログラミング技術の追加的な特徴づけ。図１９Ａ：ＡＰ染色－３プラスミド条件。図１９Ｂ：ＡＰ染色－５プラスミド条件。 図１９Ａの説明を参照のこと。 Ｇバンド核型分析によって観察された線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（ｆｉｂ－ｉＰＳＣ）における個々の染色体レベルでの種々の核型異常の頻度。転座、逆位及び誘導体を含む構造再編成。灰色で網掛けされたセルは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ培養物の核型異常が全く観察されなかった染色体を示す。オレンジ色で示されたセルは、染色体の増加、減少または構造的再編成を含む全体での染色体異常のカテゴリーのそれぞれについて、最高順位（上位３）の核型異常を示す。

詳細な説明
本明細書に引用される全ての参考文献は、全体が記載されているかのようにその全体が参照により組み込まれる。別様に定義されない限り、本明細書で使用される技術用語及び科学用語は、本発明が属する技術分野の当業者によって一般に理解されるような同じ意味を有する。Ａｌｌｅｎ ｅｔ ａｌ．，Ｒｅｍｉｎｇｔｏｎ：Ｔｈｅ Ｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｐｒａｃｔｉｃｅ ｏｆ Ｐｈａｒｍａｃｙ ２２^ｎｄ ｅｄ．，Ｐｈａｒｍａｃｅｕｔｉｃａｌ Ｐｒｅｓｓ（Ｓｅｐｔｅｍｂｅｒ １５，２０１２）、Ｈｏｒｎｙａｋ ｅｔ ａｌ．，Ｉｎｔｒｏｄｕｃｔｉｏｎ ｔｏ Ｎａｎｏｓｃｉｅｎｃｅ ａｎｄ Ｎａｎｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ（２００８）、Ｓｉｎｇｌｅｔｏｎ ａｎｄ Ｓａｉｎｓｂｕｒｙ，Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙ ａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ ３^ｒｄ ｅｄ．，ｒｅｖｉｓｅｄ ｅｄ．，Ｊ．Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ（Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ＮＹ ２００６）、Ｓｍｉｔｈ，Ｍａｒｃｈ’ｓ Ａｄｖａｎｃｅｄ Ｏｒｇａｎｉｃ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ Ｒｅａｃｔｉｏｎｓ，Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ ａｎｄ Ｓｔｒｕｃｔｕｒｅ ７^ｔｈ ｅｄ．，Ｊ．Ｗｉｌｅｙ＆Ｓｏｎｓ（Ｎｅｗ Ｙｏｒｋ，ＮＹ ２０１３）、Ｓｉｎｇｌｅｔｏｎ，Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙ ｏｆ ＤＮＡ ａｎｄ Ｇｅｎｏｍｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｙ ３^ｒｄ ｅｄ．，Ｗｉｌｅｙ－Ｂｌａｃｋｗｅｌｌ（Ｎｏｖｅｍｂｅｒ ２８，２０１２）、及びＧｒｅｅｎ ａｎｄ Ｓａｍｂｒｏｏｋ，Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｃｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ４ｔｈ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｐｒｅｓｓ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ ２０１２）は、本出願で使用される用語の大部分の一般的な説明を当業者に提供する。抗体の調製方法についての参考文献については、Ｇｒｅｅｎｆｉｅｌｄ，Ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ ２^ｎｄ ｅｄ．，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ（Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ ＮＹ，２０１３）、Ｋｏｈｌｅｒ ａｎｄ Ｍｉｌｓｔｅｉｎ，Ｄｅｒｉｖａｔｉｏｎ ｏｆ ｓｐｅｃｉｆｉｃ ａｎｔｉｂｏｄｙ－ｐｒｏｄｕｃｉｎｇ ｔｉｓｓｕｅ ｃｕｌｔｕｒｅ ａｎｄ ｔｕｍｏｒ ｌｉｎｅｓ ｂｙ ｃｅｌｌ ｆｕｓｉｏｎ，Ｅｕｒ．Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．１９７６ Ｊｕｌ，６（７）：５１１－９、Ｑｕｅｅｎ ａｎｄ Ｓｅｌｉｃｋ，Ｈｕｍａｎｉｚｅｄ ｉｍｍｕｎｏｇｌｏｂｕｌｉｎｓ，Ｕ．Ｓ．Ｐａｔｅｎｔ Ｎｏ．５，５８５，０８９（１９９６ Ｄｅｃ）、及びＲｉｅｃｈｍａｎｎ ｅｔ ａｌ．，Ｒｅｓｈａｐｉｎｇ ｈｕｍａｎ ａｎｔｉｂｏｄｉｅｓ ｆｏｒ ｔｈｅｒａｐｙ，Ｎａｔｕｒｅ１９８８ Ｍａｒ ２４，３３２（６１６２）：３２３－７を参照されたい。

当業者は、本発明の実施において使用することができる、本明細書に記載された多くの方法及び材料またはそれらの等価物を理解するであろう。実際、本発明は、記載された方法及び材料に決して限定されない。本発明の目的のために、以下の用語を以下に定義する。

本明細書及び添付の特許請求の範囲を通して使用される場合、「１つの（ａ）」、「１つの（ａｎ）」及び「その（ｔｈｅ）」の意味は、文脈上明確に別様に指示されない限り、複数の言及を含む。また、文脈上別様に明確に指示されない限り、「～の中（ｉｎ）」の意味は「～の中（ｉｎ）」及び「～の上（ｏｎ）」を含むものとする。

記載されるように、患者固有の人工多能性幹細胞（「ｉＰＳＣ」）は、疾患の原因、薬物スクリーニング、及び最終的には再生医療の治療に関与するメカニズムを解明するための疾患モデリングを含む、多くの用途に期待されている。ヒトｉＰＳＣの実用は、品質、ゲノムの完全性及び安定性が維持されていることが条件である。複数の研究室では、様々な組織源に由来する核型異常が約１０～２５％の割合で、長期培養時にヒトｉＰＳＣ株において再発性のゲノム異常が示されている。

ｈｉＰＳＣ株のゲノムの完全性及び安定性を維持することは、信頼できる疾患モデリング及び再生医療などの幹細胞の安全な臨床適用にとって不可欠である。体細胞のリプログラミング中及び／またはｈｉＰＳＣの維持、拡大培養及び長期培養中に起こる異常な細胞遺伝学的エラーは、インビトロ疾患モデリングの精度、またはｉＰＳＣの再生医療に対するインビボでの実用性に影響する。いくつかの研究がｉＰＳＣにおける染色体の異数性、転座、重複及び欠失、及び点突然変異を報告していることを考えると、臨床用途におけるｉＰＳＣはがんと関連するゲノム異常がないことが重要である。正常なｈＥＳＣの悪性類似体である、高度に異数性のヒト胚性がん腫（ＥＣ）幹細胞は、典型的に１２番染色体の短腕の増幅領域ならびに１番染色体、１７番染色体及びＸ染色体の増加を含む。

初期、中期または後期の継代数の違いによるサブ染色体（ｓｕｂ－ｃｈｒｏｍｏｓｏｍａｌ）のコピー数多型（ＣＮＶ）の増加、腫瘍抑制遺伝子に関連する欠失、及びがん遺伝子の重複は、全てｉＰＳＣにおいて報告されている。これらの研究の大部分において、ｉＰＳＣ株におけるゲノム異常は、組込み型リプログラミング方法から生じている。しかし、今日まで、多数の線維芽細胞由来ｈｉＰＳＣ株または血液由来ｈｉＰＳＣ株に固有の再発性のサブ染色体異常を体系的かつ十分に制御した（同様のリプログラミング及び幹細胞培養法）報告はない。本発明者らは、ヒトｉＰＳＣ株の生産、特徴づけ、及び分化の経験が豊富なｉＰＳＣ ｃｏｒｅ施設を開発した。このバイオ貯蔵所では、現在、細胞株ごとに複数のクローン（２～６）を有する、十分に特徴づけされた１６０種類を超える個々のドナーのヒトｉＰＳＣ株を保有する。ｉＰＳＣ Ｃｏｒｅは、該Ｃｏｒｅに由来する、線維芽細胞、末梢血単核細胞、不死化リンパ芽球様細胞株、及び初代上皮細胞に由来する複数の継代にわたる４５０の独立したｉＰＳＣ培養物からのｈｉＰＳＣのゲノム安定性を体系的にモニターしている。

リプログラムのために頻繁に使用される細胞の出発原料は、皮膚生検により単離された真皮線維芽細胞であった。しかし、記載されているように、皮膚パンチ生検由来のｉＰＳＣはより侵襲的であり、リプログラミングする前に培養における増殖の期間を２～３週間延長する必要がある。最も重要なことは、ＵＶ光への表皮曝露に関連する変異がより多く存在し、皮膚由来のｉＰＳＣ細胞の安全性に対する懸念が高まることである。一般的な線維芽細胞原料に付随する問題は、リプログラミングのために容易に入手できる患者組織源として利用可能な末梢血により回避されるであろう。末梢血は最も入手可能な成人の組織であり、既に血液バンクに保存されている多数の凍結試料の入手が可能になる。さらに、多くの貯蔵所は、特定の遺伝子型で末梢血またはリンパ芽球の血液を保存している。

血液は、臨床診断で広く使用されており、標準化されかつ皮膚生検よりも外傷が少ない、より非侵襲性の採取法を含むことから、ｉＰＳＣ誘導のための有利な代替物のように思われる。末梢血（ＰＢ）の主要成分は赤血球及び血小板である。白血球は、３．６～１１×１０^６／ｍｌの濃度のＰＢ中の有核細胞である。ＰＢ中の成熟Ｔ細胞及び一次前駆細胞は、確立された方法を用いて容易に増殖させることができ、これらは最も良好に使用されるリプログラミングのための供給源の１つである。Ｔ細胞はＰＢ中の顆粒球に続いて最も豊富な細胞であり（２０～３０％）、Ｔ細胞はＩＬ－２及び抗ＣＤ３／ＣＤ２８マイクロビーズで容易に増殖することができる。多能性へのＴ細胞のリプログラミングは、免疫療法のために老化したＴ細胞に対する代替物を開発するための異なるアプローチを使用する多くの研究室によって報告されている。しかしながら、成熟Ｔ細胞は、体細胞組換え後に単一のＴ細胞受容体（ＴＣＲ）を保持し、無限の可能性でＴ細胞レパートリーを生成する能力を失っている。

ここで、本発明者らは、末梢単核血液細胞（ＰＢＭＣ）を含む血液細胞（ＢＣ）をｉＰＳＣ（ＢＣ－ｉＰＳＣ）に効率的にリプログラミングするための確実なプロトコルを開発し、そしてこれらのｉＰＳＣ株は、公的な貯蔵所または地元の診療所から得られたそれらの線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（Ｆｉｂ－ｉＰＳＣ）株と比較して細胞遺伝学的安定性に関して優れていることを示す。本発明者らは、リンパ系Ｔ細胞及び骨髄性非Ｔ細胞集団の両方からＢＣ－ｉＰＳＣを誘導するための方法及び細胞遺伝学的安定性を記載する。本発明者らは、非組込み法を使用してＰＢＭＣから生成されたｈｉＰＳＣ株は、組込み法で生成されるｈｉＰＳＣ株よりも、ゲノム異常の発生が非常に低いことを発見した。同じ体細胞由来のｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＢＣ－ｉＰＳＣの両方に、同等数の新たなＣＮＶが含まれていた。本発明者らの結果は、単離されたばかりのヒトＰＢＭＣが、エピソーマルプラスミドを用いて、より大きな細胞遺伝学的安定性を有する多能性へと忠実にリプログラミングされ得ることを示す。このように、ＰＢＭＣは、獲得したゲノム異常の任意の影響を最小限に抑えるｉＰＳＣリプログラミングのための好ましい体細胞源であり、さらに再生医療の理想的な細胞源とみなされるであろう。

成熟Ｔ細胞またはＢ細胞と対照的に、血液前駆細胞の代替供給源にはインタクトなゲノムが含まれる。さらに、それらは、骨髄性細胞または赤血球細胞の増殖に有利な培養条件で増殖させることができる。血液幹細胞／前駆細胞は、表面マーカーＣＤ３４を発現し、幹細胞ニッチに存在する。しかしながら、毎日約１％の幹細胞／前駆細胞しか循環に入らず、そして結果としてＰＢ中０．０１～０．１％の細胞のみがＣＤ３４＋細胞である。この集団は、磁気活性化細胞選別法（ＭＡＣＳ）によって濃縮され得るか、または数日間ＭＮＣを培養することによりＣＤ３４＋細胞を５～２０％の純度にまで増殖され得、これによりさらに精製せずにリプログラミングに使用することができる。

他の有核末梢血細胞には、顆粒球（主に好中球）、単球、Ｔリンパ球、Ｂリンパ球及び少数の前駆細胞が含まれる。これらの血液構成の収束は、溶解緩衝液に続いて複数の遠心分離を用いて赤血球及び血小板を枯渇させることで達成され得る。Ｆｉｃｏｌｌ勾配遠心分離を使用して赤血球及び顆粒球の両方を枯渇させ、単核細胞（ＭＮＣ）を濃縮させることもできる。この背景について、外因的に発現された因子によるリプログラミングは周知のように非効率的であり、多能性を達成するためには複数の細胞周期が必要である。このように、初代顆粒球、単球及びＢリンパ球は、これらの細胞を増殖させるための確実なプロトコルが無いため、リプログラミングすることが最も難しい細胞の１つである。この分野における主な成功には、エプスタイン－バーウイルス不死化リンパ芽球Ｂ細胞がエクスビボ培養で容易に増殖されることで、多能性へとリプログラミングされることが含まれる。

上記を考慮すると、非常に重要なのは、血液の非Ｔ細胞成分のリプログラミングである。既存の技術では、単離した末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）からこの集団をリプログラムすることはほとんど不可能である。より具体的には、ＰＢＭＣは、丸い核を有する任意の末梢血細胞である。これにはリンパ球（Ｔ細胞、Ｂ細胞、ＮＫ細胞）、単球、樹状細胞が含まれる。リンパ球は、小サイズ（５～１０μｍ）及び中サイズ（１０～１８μｍ）であり、ＰＢＭＣの７０～９０％を構成する。これらの細胞に含まれるのは、７０～８５％のＣＤ３＋Ｔ細胞（ＰＢＭＣの４０～７０％）、典型的にはＣＤ４対ＣＤ８比が２：１であるＣＤ４ヘルパーＴ細胞（ＰＢＭＣの２５～６０％）、ＣＤ８「細胞傷害性」区分のＴ細胞（ＰＢＭＣの５～３０％）である。残りの区分には、５～２０％のＢ細胞（ＰＢＭＣの１５％まで）及び５～２０％のＮＫ細胞（ＰＢＭＣの１５％まで）が含まれる。単球は１６～２５μｍであり、ＰＢＭＣ（マクロファージ）の１０～３０％である。樹状細胞：ＰＢＭＣの１～２％。

ここで、本発明者は、新鮮な（増殖していない）末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）のｉＰＳＣ（ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ）への新規かつ確実な非組込み型エピソーマルプラスミドリプログラミング方法を記載する。本発明者らは、この方法を使用して生成したＰＢＭＣ－ｉＰＳＣが、異常率がわずか１．９％である優れた染色体レベルの核型安定性を有し、サブ染色体で新たなコピー数多型がほとんどないことを示す。対照的に、予め増殖させた真皮線維芽細胞、リンパ芽球細胞株または上皮細胞からエピソーマルリプログラミングされたｉＰＳＣ株（それぞれ、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ、ＬＣＬ－ｉＰＳＣ、またはｅｐｉ－ｉＰＳＣ）は、１０倍超の核型不安定性（２３～２７％）を示す。これらの知見は、本明細書に記載されている方法を用いて非増殖ＰＢＭＣからリプログラミングされ、維持されたｉＰＳＣが優れた細胞遺伝学的安定性及び最小限のゲノム異常を有することを示しており、このことは、これが研究及び治療的臨床応用においてｉＰＳＣの好ましい方法であることを示唆している。

これらの記載されたアプローチにより、そうでなければ末梢血に由来する治療材料に存在するであろう突然変異または他の形態の構造変化の原因となる環境侵害を回避しながら、ゲノム及び核型の安定性に優れた特性を有する細胞リプログラミングのための容易に入手可能な資源としての末梢血の使用が可能となる。

記載されるように、本発明者らは本明細書中で「ＢＣ－ｉＰＳＣ」と記載されるリプログラミングされた多能性細胞をもたらす、全血及び末梢血を含む血液細胞からのｉＰＳＣの生成を含む、非組込み型エピソーマルプラスミドベクターを使用する高効率で再現性のあるリプログラミングのための改良された技術を確立した。

一般に、非組込み型リプログラミングのための異なるアプローチは、少なくとも（１）組込み欠損ウイルス送達、（２）エピソーマル送達、（３）直接的なＲＮＡ送達、（４）直接的なタンパク質送達及び（５）化学的な誘導にわたる。本明細書にさらに記載されるように、エピソーマルベクターの採用により、それらの産生に使用されるベクターを実質的に含まないのは、ｉＰＳＣの生成を可能にするエピソーマルベクターまたは類似のベクターが感染または複製コンピテントウイルスを生じるのに十分なウイルスゲノムをコードしないためである。同時に、これらのベクターは、開始時の体細胞宿主細胞において、ある程度の自己複製能を実際に有する。この自己複製能により、標的宿主細胞内に定着開始するための脱分化プロセスを可能にする上で有益であると理解されている、ある程度の持続的発現が提供される。

これらの基準を満たすプラスミドベクターの１つの例には、自己複製を制限することができ、哺乳類細胞で機能することが知られているＥｐｓｔｅｉｎ Ｂａｒｒ ｏｒｉＰ／Ｎｕｃｌｅａｒ Ａｎｔｉｇｅｎ－１（「ＥＢＮＡ１」）の組み合わせが含まれる。エプステインバーウイルス由来の２つの要素であるｏｒｉＰ及びＥＢＮＡ１を含むため、ウイルスレプリコン領域ｏｒｉＰへのＥＢＮＡ１タンパク質の結合により、哺乳動物細胞内においてプラスミドのエピソームとしての存在が比較的長期間維持される。ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１ベクターのこの特長は、組込みのないｉＰＳＣの生成に理想的である。

より具体的には、ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１ベクターにコードされたリプログラミング因子の持続的発現は、複数の細胞分割周期にわたって生じる。いくつかの細胞分裂にわたる十分に高いレベルのリプログラミング因子により、１回のみの感染後であっても良好なリプログラミングが可能となる。リプログラミング因子の持続的発現は、初期プログラミング段階の間有益であると理解されるが、無制限の常時発現は、リプログラミングプロセスの後続段階を妨害するだろう。例えば、衰えないリプログラミング因子の発現は、その後の宿主細胞の増殖、発生及び運命の指定を妨害するであろう。

同時に、エピソームのごく一部が細胞周期ごとに失われるため、さらなる利点は、最終的なリプログラミング因子導入遺伝子の除去である。これは、宿主細胞ゲノム及びエピソーム自己複製の非対称複製能力に起因し、１世代あたり約０．５％のベクターが失われると推定される。各細胞分裂中のプラスミドの漸進的な枯渇は、組込みのないｉＰＳＣの集団に至る増殖に続くならば、避けられない。ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１上の永続的ではあるが最終的には停止されるリプログラミング因子発現は、トランスポゾン及び切除可能なポリシストロニックレンチウイルスベクターエレメントの使用を通して試みられたように、リプログラミングプロセスの様々な段階に対する必要性と非常に一致しており、そしてリプログラミング因子を除去するためのさらなる操作ステップが必要ない。ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１は、リプログラミング研究において他者によって適用されているが、報告されている効率は非常に低く（ヌクレオフェクトした百万細胞あたりわずか３～６個のコロニー）、これは、１つにはトランスフェクション効率に負の影響を及ぼす、複数のリプログラミング因子をコードする大きなプラスミド（例えば、１２ｋｂ超）によるものであり得る。

ベクター設計におけるこれらの選択に加えて、文献で実施されているリプログラミング因子の特定の組み合わせは様々であった。前述したように、使用されたリプログラミング因子には、多能性関連遺伝子Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｌｉｎ－２８、Ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、Ｆｂｘ－１５及びＵｔｆ－１が含まれる。元来、これらの因子は通常、発生の初期に発現し、着床前胚及び着床後の固有胚の内部細胞塊を構成する細胞のサブセットの多能性潜在力の維持に関与すると理解されている。それらの異所性発現により、宿主細胞内の別の休止状態の内在性核内多能性プログラムを開始及び伝播させる、胚様の転写カスケードの確立が可能になると考えられている。Ｔｅｒｔ、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）など、ある特定の他のリプログラミング決定因子が適用されている。これらの決定因子は、それ自体が潜在能力決定因子ではないかもしれないが、リプログラミングにおいて有益であると報告されている。例えば、ＴＥＲＴ及びＳＶ４０ＬＴは、リプログラミング中の生存を促進するために細胞増殖を増強すると考えられているが、ｐ５３のショートヘアピンターゲティングなどの他のものは、老化及びアポトーシス機構などのリプログラミングの障壁を抑制または排除する。それぞれの場合において、リプログラミングの速度及び効率の両方の増加が観察される。さらに、マイクロＲＮＡ（「ｍｉＲＮＡ」）も多能性及びリプログラミングに影響することが知られており、ｍｉＲ□２９０クラスター由来の一部のｍｉＲＮＡがリプログラミング研究に適用されている。例えば、多分化能関連遺伝子に加えて、線維芽細胞へのｍｉＲ ２９１ ３ｐ、ｍｉＲ ２９４またはｍｉＲ ２９５の導入により、リプログラミング効率が高まることも報告されている。

当分野における種々のベクター及びリプログラミング因子は、細胞内でリプログラミングを確立することができる複数の成分を提示するようであるが、良好なリプログラミングを保持するのに必要な化学量論的発現レベルを考慮に入れる場合、高度の複雑さが生じる。例えばＯｃｔ－４及びＳｏｘ２が単一のベクター上で１：１の比率でコードされる場合、別々のベクターで２つの因子を送達するのとは対照的に、体細胞リプログラム効率は４倍高いと報告されている。後者の場合、２つの因子の取り込み率が制御されにくくなり、リプログラミング効率に悪影響を与える。これらの障壁に対処するための１つのアプローチは、転写プロモーターの遠位にある導入遺伝子（複数可）の上流に提供される、内部リボソーム導入部位（「ＩＲＥＳ」）の包含などのポリシストロニックベクターの使用である。この機構により、１つまたは複数の導入遺伝子が単一のリプログラミングベクターで提供され、様々な誘導性プロモーターまたは構成的プロモーターを発現カセットとして一緒に組み合わせて、複数の導入遺伝子に対する転写制御をより顆粒レベルで伝達することができる。これらのより特異的な制御レベルにより、リプログラミングプロセスに相当な利益がもたらされ、ベクター上の別々の発現カセットは別々のプロモーターの制御下でそれに応じて設計され得る。

単一または少数のベクターを介してこのような因子を提供することには利点があるが、最終的なベクターサイズに対する上限サイズの制限が存在し、それは宿主標的細胞にそれらの送達を促進させる試みを妨げる可能性がある。例えば、ポリシストロニックベクターの使用についての初期の報告では、細胞の１％未満、より典型的には０．１％未満で時々生じる非常に低いリプログラミング効率が注目された。これらの障壁の一部は、大きな構築物（例えば、線維芽細胞）に対する低い寛容性、または宿主細胞によるＩＲＥＳ部位の不十分なプロセシングを有する、ある特定の標的宿主細胞によるものである。さらに、ベクター発現カセットにおける因子の配置は、その化学量論的及び時間的発現の両方に影響し、リプログラミング効率に影響を及ぼすさらなる変化をもたらす。したがって、いくつかの改良された技術は、様々な発現カセット中の１つ以上のリプログラミング因子をそれぞれコードする複数のベクターに依存することができる。これらの設計の下、送達のための特定のベクターの量を変更することにより、標的細胞における発現レベルを調節するための洗練されていないが比較的直接的な経路が提供される。

本明細書に記載される技術のさらなる利点は、ＥＳＣ培地及び／またはＥ７培地の使用を含むリプログラミングプロセスのための規定された培地条件の使用である。ある特定の添加物はリプログラミングプロセスを刺激するためにあっても良いが、（例えば、Ｌ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦ）血清または動物成分は使用しない。場合によって、それらはリプログラミングが行われる化学的条件及び／または大気条件を変えることでさらなる利点があり得る。例えば、着床前の胚は血管新生されておらず、そして低酸素であるため（骨髄幹細胞のニッチと同様）、大気の２１％のＯ_２の代わりに５％Ｏ_２の低酸素条件下でリプログラミングすることにより、リプログラミング効率を高める機会がさらに提供され得る。同様に、化学的誘導技術は、異なるリプログラミング研究で幅広く使用されているリプログラミング、特にヒストンデアセチラーゼ（ＨＤＡＣ）阻害剤分子、バルプロ酸（ＶＰＡ）と組み合わせて使用されている。同時に、ＭＡＰＫキナーゼ（ＭＥＫ）－ＥＲＫ（「ＭＥＫ」）阻害剤ＰＤ０３２５９０１、トランスフォーミング増殖因子β（「ＴＧＦ－β」）Ｉ型受容体ＡＬＫ４、ＡＬＫ５及びＡＬＫ７阻害剤ＳＢ４３１５４２などの他の小分子ならびにグリコーゲンシンターゼキナーゼ－３（「ＧＳＫ３」）阻害剤ＣＨＩＲ９９０２１は、自己複製を持続させるために他の経路（例えば、ＭＡＰＫキナーゼ（ＭＥＫ）－ＥＲＫ経路の阻害）の調節と組み合わせて分化誘導経路（例えば、ＢＭＰシグナル伝達）の活性化のために適用される。Ｙ－２７６３２及びチアゾビビン（「Ｔｚｖ」）などのＲｈｏ関連コイルドコイル含有タンパク質キナーゼ（「ＲＯＣＫ」）阻害剤などの他の小分子には、生存を促進し、特に単一細胞の解離において細胞死に対するｐＳＣの脆弱性を低減させるために適用されている。

送達ベクターの選択、リプログラミング因子の組み合わせ、及びリプログラミングの条件に加えて、さらなる変形には、リプログラミングのための宿主標的細胞の性質を考慮しなければならない。今日まで、線維芽細胞、胃細胞及び肝臓細胞の培養物、ヒトケラチノサイト、脂肪細胞、ならびに凍結ヒト単球を含む、幅広い細胞がリプログラミングのための供給源として役立っている。明らかに、多くの組織源にわたって、広く堅牢な脱分化の可能性がある。それにもかかわらず、ドナー細胞種に応じて、異なる効率及び動態でリプログラミングが達成されることが広く理解されている。例えば、線維芽細胞はリプログラミング研究にとって最も一般的なドナー細胞種であるが、Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４及びｃ－Ｍｙｃで形質導入されたヒト初代ケラチノサイトなどの他の細胞種は、１００倍超の効率かつ２倍の速さでリプログラミングすると報告されている。さらに、臍帯血細胞などのいくつかの他の細胞種は、着床するための脱分化にＯｃｔ－４及びＳｏｘ－２などのリプログラミング因子のサブセットのみを必要し得るが、神経前駆細胞はＯｃｔ－４のみを必要とし得る。いずれの特定の理論にも拘束されるものではないが、特定の宿主細胞のリプログラミング効率及び／または必要なリプログラミング因子の相違は、リプログラミングにより適している高い内因性レベルのある特定のリプログラミング因子及び／または内因性エピジェネティック状態に起因すると考えられる。

これらの多くの他の原料がｉＰＳＣの生成のための研究を通じて使用されてきたが、末梢血（ＰＢ）由来の単核細胞（ＭＮＣ）は、利便性と細胞リプログラミングのためのほぼ無限の原料としての特徴のために、非常に魅力的な宿主細胞候補である。特にＰＢ細胞は、線維芽細胞（例えば、皮膚生検）などの他の原料からの単離と比較して、比較的単離（例えば、採血）が容易である。これらの細胞は、リプログラミングする前に面倒な培養及び増殖を必要とせず、それによってリプログラミングｉＰＳＣを得られる全体の時間が短縮される。

良好なリプログラミングの後、クローン選択により多能性幹細胞株の生成が可能になる。理想的には、そのような細胞は、必要な形態（すなわち、密集したコロニー、高い核対細胞質比及び顕著な核小体）、培養における無限増殖（すなわち不死）のための自己複製能力、及び３つの胚葉全てに分化する能力（例えば、内胚葉、中胚葉及び外胚葉）を有する。所与の細胞集団の多能性を特徴づけるさらなる技術には、３つの胚葉全ての細胞または組織に特徴的な奇形腫の形成のための重症複合免疫不全（「ＳＣＩＤ」）マウスなどの免疫不全状態の動物への注射が含まれる。

上記の例として、ヌクレオフェクションあたり約５×１０^６細胞のＰＢＭＣをＡｍａｘａ Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ ２Ｄ Ｄｅｖｉｃｅ ｗｉｔｈ ｔｈｅ Ａｍａｘａ Ｈｕｍａｎ Ｔ－ｃｅｌｌ Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ（登録商標）ＫｉｔにおいてプログラムＶ－０２４を用いてプラスミド混合物４ｐまたはプラスミド混合物５ｐのいずれかでヌクレオフェクトした。次いで、約１×１０^６個の細胞を、マイトマイシン処理マウス胚性フィーダー（ＭＥＦ）層で覆われるか、または１０μｇ／ｍｌのＬａｍｉｎｉｎ－５２１（Ｌ－５２１、ＢｉｏＬａｍｉｎａ）でコーティングした６ウェルプレートのウェルに播種した。各エピソーマルプラスミド（ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥｈＵＬ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、及びｐＣＸＬＥ－ＥＢＮＡ１）、（Ａｄｄｇｅｎｅ）は７つの因子（ＯＣＴ４、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４、ＬＭＹＣ、ＬＩＮ２８、ＳＶ４０ＬＴ及びｐ５３ｓｈＲＮＡ）を発現する。外因的に導入された遺伝子は組み込まれず、その代わりエピソームにより一時的に発現されるため、この方法は、ウイルス形質導入に優る大きな利点を有する。細胞は、αβ Ｔ細胞培地（３０Ｕ／ｍｌのＩＬ－２及び５ｕｌ／ウェルのＤｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８を添加したＸ－ｖｉｖｏ１０）または非Ｔ細胞培地（１０％ＦＢＳ、１０ｎｇ／ｍｌのＩＬ－３、１０ｎｇ／ｍｌのＩＬ－６、１０ｎｇ／ｍｌのＧ－ＣＳＦ及び１０ｎｇ／ｍｌのＧＭ－ＣＳＦを添加したαＭＥＭ）のいずれか２ｍｌに播種した。ヌクレオフェクションの２日後に、５ｎｇ／ｍｌのｂＦＧＦ（ＭＥＦ条件用）またはＥ７培地（Ｌ－５２１条件用）を含む等量の霊長類ＥＳＣ培地（ＲｅｐｒｏＣｅｌｌ）を、古い培地を吸引することなくウェルに添加した。４日目からは、各ウェルから培地を穏やかに吸引し、２ｍｌの適切な新鮮なリプログラミング培地を各ウェルに加えた。培地は１日おきに交換した。ヌクレオフェクション後約１８日目に、各条件の全てのウェルにおける個々のコロニーを観察した。ヌクレオフェクション後約２５日目に、個々のコロニーを単離し、適切な基質及び培地を含む１２ウェルプレートのうち１ウェルにサブクローニングした。これらのヌクレオフェクションした細胞を、フィーダー非依存性のＢＤ Ｍａｔｒｉｇｅｌ（商標）増殖因子減少型マトリックス（Ｃｏｒｎｉｎｇ／ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ，＃３５４２３０）に播種した。全ての培養物は、リプログラミングプロセスの間、２０％のＯ２で維持した。ＥＳ／ｉＰＳＣ様形態を有する個々のＰＢＭＣ－ｉＰＳＣコロニーは２５～３２日の間に現れ、そして最良の形態を有するものは機械的に単離し、新鮮なＭａｔｒｉｇｅｌ（商標）マトリックスと共に１２ウェルプレートに移し、ｍＴｅＳＲ（登録商標）１培地で維持した。さらなる解析のために、ｉＰＳＣクローンをさらに増殖させてスケールアップした。全ての線維芽細胞は、記載したように３ｐリプログラミングプラスミド混合物を使用してリプログラムした。

本明細書には、血液細胞由来の人工多能性幹細胞（「ＢＣ－ｉＰＳＣ」）の組成物が記載される。特定の実施形態において、血液細胞由来の人工多能性幹細胞の組成物は、ある量の血液細胞を用意すること、ある量のリプログラミング因子を血液細胞に送達すること、血液細胞をリプログラミング培地中で少なくとも４日間培養することによって生成される細胞を含み、ここでリプログラミング因子を送達すること及び培養することにより、血液細胞由来の人工多能性幹細胞が生成される。ある特定の実施形態において、血液細胞はＴ細胞である。他の実施形態において、血液細胞は非Ｔ細胞である。他の実施形態において、血液細胞は、例えば末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を含む単核細胞（ＭＮＣ）である。他の実施形態において、細胞は、一次顆粒球、単球及びＢリンパ球である。

ある特定の実施形態において、リプログラミング因子はＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）、及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）である。他の実施形態において、これらのリプログラミング因子はｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１を含むベクターの組み合わせにコードされている。これには、例えば、約０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３、０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ＵＬ、約０．２５～０．７５ｕｇのｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１及び０．５～１．０ｕｇのｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋの使用が含まれる。これには例えば、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ＵＬ、０．５ｕｇのｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１及び０．８３ｕｇのｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋの使用が含まれ、ここでＳＶ４０ＬＴ（ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋにコードされる）とＥＢＮＡ－１（ｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１にコードされる）の化学量論比は、末梢血単核細胞を含む血液の非Ｔ細胞成分のリプログラミングを支持する。ある特定の他の実施形態において、リプログラミング培地はＰＤ０３２５９０１、ＣＨＩＲ９９０２１、ＨＡ－１００、及びＡ－８３－０１を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、４～３０日間である。様々な実施形態において、血液細胞は、ある量のリプログラミング因子を送達した後で、処理した細胞培養表面上に播種される。種々の実施形態において、処理には、マウス胚線維芽細胞などのフィーダー細胞の播種が含まれる。他の実施形態において、処理には、細胞外基質タンパク質によるコーティングが含まれる。様々な実施形態において、細胞外基質タンパク質はラミニンを含む。

様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、細胞株として連続的に継代することができる。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣはゲノム安定性を有する。ゲノム安定性は、当分野で公知の様々な技術によって確認することができる。例えば、Ｇバンド核型分析は、ゲノム安定性を欠く異常細胞を同定することができ、ここで異常細胞は約１０％以上のモザイクを有するか、または約５、６、７、８、９、１０もしくはそれ以上のＭｂよりも大きい１つ以上の均衡転座を有する。あるいは、ゲノム安定性は、比較ゲノムハイブリダイゼーション（ａＣＧＨ）マイクロアレイを用いて測定することができ、例えばＢＣ－ｉＰＳＣを線維芽細胞などの非血液細胞源由来のｉＰＳＣと比較する。ゲノム安定性には、コピー数多型（ＣＮＶ）、重複／欠失、及び不均衡転座が含まれ得る。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１５、１６、１７、１８、１９、または２０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を含む。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約２０～３０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示さない。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約３０～４０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示さない。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約４０～５０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示す。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣで獲得された新たな増幅及び欠失の平均数は、約５、４、３、２または１未満である。例えば、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける新たな増幅及び欠失は、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣよりも少なくとも２倍大きい。

異なる実施形態において、リプログラミング因子は、以下のうちの１つ以上をも含み得る：Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ＬＴ、ｓｈＲＮＡ－ｐ５３、ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、Ｆｂｘ－１５、Ｕｔｆ－１、Ｔｅｒｔ、またはｍｉＲ□２９１□３ｐ、ｍｉＲ□２９４もしくはｍｉＲ□２９５などのＭｉｒ－２９０クラスターマイクロＲＮＡ。異なる実施形態において、リプログラミング因子はベクターによりコードされる。異なる実施形態において、ベクターは例えば、非組込み型エピソーマルベクター、ミニサークルベクター、プラスミド、レトロウイルス（組込み型及び非組込み型）及び／または当業者に公知の他の遺伝要素であり得る。異なる実施形態において、リプログラミング因子は１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターによってコードされる。異なる実施形態において、ベクターは１つ以上のリプログラミング因子をコードし、そしてＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ＬＴ、ｓｈＲＮＡ－ｐ５３、ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、Ｆｂｘ－１５、Ｕｔｆ－１、Ｔｅｒｔ、またはｍｉＲ□２９１□３ｐ、ｍｉＲ□２９４もしくはｍｉＲ□２９５などのＭｉｒ－２９０クラスターマイクロＲＮＡのうちの１つ以上を送達させるために、ベクターの組み合わせを同時に使用することができる。例えば、ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１は、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＥＰ４ ＥＯ２Ｓ Ｔ２Ｋ及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１などの複数のリプログラミング因子のベクター組み合わせをコードすることができるエピソーマルベクターである。

他の実施形態において、リプログラミング因子は、とりわけ、ヌクレオフェクション、トランスフェクション、形質導入、電気融合、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、細胞融合などの当分野で公知の技術によって送達される。他の実施形態において、リプログラミング因子は、ＲＮＡ、線状ＤＮＡ、ペプチドもしくはタンパク質、または多能性幹細胞の細胞抽出物として提供される。

様々な実施形態において、リプログラミング培地は胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はｂＦＧＦを含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はＥ７培地である。様々な実施形態において、リプログラミングＥ７培地は、Ｌ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含む。異なる実施形態において、リプログラミング培地は少なくとも１つの化学的誘導小分子を含む。異なる実施形態において、少なくとも１つの化学的誘導小分子には、ＰＤ０３２５９０１、ＣＨＩＲ９９０２１、ＨＡ－１００、Ａ－８３－０１、バルプロ酸（ＶＰＡ）、ＳＢ４３１５４２、Ｙ－２７６３２またはチアゾビビン（「Ｔｚｖ」）が含まれる。異なる実施形態において、リプログラミング培地中でのＢＣ培養は、少なくとも４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、または３０日間である。

ある特定の実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、例えば対象から血液試料を採取することによる、対象から過去に単離された血液細胞に由来する。他の実施形態において、血液細胞は疾患変異を有する対象から単離される。例えば、常染色体優性、劣性、伴性などの任意の数の突然変異を有する対象は、上記の突然変異を有するＢＣ－ｉＰＳＣを生成するための血液細胞の供給源として役立ち得る。他の実施形態において、疾患変異は、神経変性疾患、障害、及び／または状態と関連する。他の実施形態において、疾患変異は炎症性腸疾患、障害、及び／または状態と関連する。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、多能性幹細胞の特徴を有する。多能性幹細胞のいくつかの例示的な特徴には、当業者によって理解及び認識されているその他の特徴の中でも、インビトロまたは免疫不全動物に注入された場合インビボのいずれかでの３つの胚葉（外胚葉、内胚葉、中胚葉）の細胞への分化、Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、ｎａｎｏｇ、ＴＲＡ－１－６０、ＴＲＡ－１－８１、ＳＳＥＡ４などの多能性マーカーの発現、高レベルのアルカリホスファターゼ（「ＡＰ」）発現、培養における無限増殖が含まれる。

他の実施形態には、上記の方法によって生成されたある量の血液細胞由来の人工多能性幹細胞及び薬学的に許容される担体を含む医薬組成物が含まれる。

また、本明細書には、ある量の細胞を用意すること、細胞にある量のリプログラミング因子を送達すること、細胞をリプログラミング培地中で少なくとも４日間培養することを含む、人工多能性幹細胞を生成するための効率的な方法が記載されており、ここで、リプログラミング因子を送達すること及び培養することにより、人工多能性幹細胞が生成される。ある特定の実施形態において、細胞は初代培養細胞である。他の実施形態において、細胞は血液細胞（ＢＣ）である。ある特定の実施形態において、血液細胞はＴ細胞である。他の実施形態において、血液細胞は非Ｔ細胞である。他の実施形態において、細胞は例えば末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）を含む単核細胞（ＭＮＣ）である。他の実施形態において、細胞は、一次顆粒球、単球及びＢリンパ球である。

ある特定の実施形態において、リプログラミング因子はＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）、及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）である。他の実施形態において、これらのリプログラミング因子はｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１を含むベクターの組み合わせにコードされている。これには、例えば、約０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３、０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、０．５～１．０ｕｇのｐＣＸＬＥ－ＵＬ、約０．２５～０．７５ｕｇのｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１及び０．５～１．０ｕｇのｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋの使用が含まれる。これには例えば、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、０．８３ｕｇのｐＣＸＬＥ－ＵＬ、０．５ｕｇのｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１及び０．８３ｕｇのｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋの使用が含まれ、ここでＳＶ４０ＬＴ（ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋにコードされる）とＥＢＮＡ－１（ｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１にコードされる）の化学量論比は、末梢血単核細胞を含む血液の非Ｔ細胞成分のリプログラミングを支持する。様々な実施形態において、リプログラミング培地は胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はｂＦＧＦを含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はＥ７培地である。様々な実施形態において、リプログラミングＥ７培地はＬ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含む。異なる実施形態において、リプログラミング培地は少なくとも１つの化学的誘導小分子を含む。ある特定の他の実施形態において、リプログラミング培地はＰＤ０３２５９０１、ＣＨＩＲ９９０２１、ＨＡ－１００、及びＡ－８３－０１を含む。他の実施形態において、リプログラミング培地での血液細胞の培養は、４～３０日間である。

様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、細胞系として連続的に継代することができる。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣはゲノム安定性を有する。ゲノム安定性は、当分野で公知の様々な技術によって確認することができる。例えば、Ｇバンド核型分析は、ゲノム安定性を欠く異常細胞を同定することができ、ここで異常細胞は約１０％以上のモザイクを有するか、または約５、６、７、８、９、１０もしくはそれ以上のＭｂよりも大きい１つ以上の均衡転座を有する。あるいは、ゲノム安定性は、比較ゲノムハイブリダイゼーション（ａＣＧＨ）マイクロアレイを用いて測定することができ、例えばＢＣ－ｉＰＳＣを線維芽細胞などの非血液細胞源由来のｉＰＳＣと比較する。ゲノム安定性には、コピー数多型（ＣＮＶ）、重複／欠失、及び不均衡転座が含まれ得る。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約３、４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１５、１６、１７、１８、１９、または２０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を含む。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約２０～３０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示す。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約３０～４０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示す。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣは、約４０～５０Ｍｂ以下の平均サイズの増幅及び欠失を示す。様々な実施形態において、ＢＣ－ｉＰＳＣで獲得された新たな増幅及び欠失の平均数は、約５、４、３、２または１未満である。例えば、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける新たな増幅及び欠失は、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣよりも少なくとも２倍大きい。様々な実施形態において、本方法は、細胞株として連続的に継代される場合、４～８、９～１３、１３～１７、１７～２１、２１～２５または２９以上の継代数に対して、全体で約２０％、１５％、１０％、５％以下の異常核型を示すｉＰＳＣ細胞株を生成する。

異なる実施形態において、リプログラミング因子は、以下のうちの１つ以上をも含み得る：Ｏｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ＬＴ、ｓｈＲＮＡ－ｐ５３、ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、Ｆｂｘ－１５、Ｕｔｆ－１、Ｔｅｒｔ、またはｍｉＲ□２９１□３ｐ、ｍｉＲ□２９４もしくはｍｉＲ□２９５などのＭｉｒ－２９０クラスターマイクロＲＮＡ。異なる実施形態において、リプログラミング因子はベクターによりコードされる。異なる実施形態において、ベクターは例えば、非組込み型エピソーマルベクター、ミニサークルベクター、プラスミド、レトロウイルス（組込み型及び非組込み型）及び／または当業者に公知の他の遺伝要素であり得る。異なる実施形態において、リプログラミング因子は１つ以上のｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターによってコードされる。異なる実施形態において、ベクターは１つ以上のリプログラミング因子をコードし、そしてＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｃ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ＬＴ、ｓｈＲＮＡ－ｐ５３、ｎａｎｏｇ、Ｓａｌｌ４、Ｆｂｘ－１５、Ｕｔｆ－１、Ｔｅｒｔ、またはｍｉＲ□２９１□３ｐ、ｍｉＲ□２９４もしくはｍｉＲ□２９５などのＭｉｒ－２９０クラスターマイクロＲＮＡのうちの１つ以上を送達させるために、ベクターの組み合わせを同時に使用することができる。例えば、ｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１は、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＥＰ４ ＥＯ２Ｓ Ｔ２Ｋ及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１などの複数のリプログラミング因子のベクター組み合わせをコードすることができるエピソーマルベクターである。

他の実施形態において、リプログラミング因子は、とりわけ、ヌクレオフェクション、トランスフェクション、形質導入、電気融合、エレクトロポレーション、マイクロインジェクション、細胞融合などの当分野で公知の技術によって送達される。他の実施形態において、リプログラミング因子は、ＲＮＡ、線状ＤＮＡ、ペプチドもしくはタンパク質、または多能性幹細胞の細胞抽出物として提供される。特定の実施形態において、細胞は、リプログラミング因子の送達の前に酪酸ナトリウムで処理される。他の実施形態において、細胞は、さらなる培養の前に、組織培養表面上で１、２、３、４日以上インキュベートされる。これには、例えば、マトリゲルコーティングされた組織培養表面上でのインキュベーションが含まれ得る。他の実施形態において、リプログラミング条件には、大気２１％のＯ_２より少ない５％Ｏ_２などの通常の酸素条件の適用が含まれる。

様々な実施形態において、リプログラミング培地は胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はｂＦＧＦを含む。様々な実施形態において、リプログラミング培地はＥ７培地である。様々な実施形態において、リプログラミングＥ７培地はＬ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及び／またはｂＦＧＦを含む。異なる実施形態において、リプログラミング培地は少なくとも１つの化学的誘導小分子を含む。異なる実施形態において、少なくとも１つの化学的誘導小分子には、ＰＤ０３２５９０１、ＣＨＩＲ９９０２１、ＨＡ－１００、Ａ－８３－０１、バルプロ酸（ＶＰＡ）、ＳＢ４３１５４２、Ｙ－２７６３２またはチアゾビビン（「Ｔｚｖ」）が含まれる。異なる実施形態において、リプログラミング培地中でのＢＣ培養は、少なくとも４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、１６、１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、または３０日間である。

リプログラミングの効率は、当業者によって容易に理解される多くの技術のうちの１つによって容易に確認される。例えば、効率は、一式のリプログラミング因子を受け取ったドナー細胞の数と、生成したリプログラミングコロニーの数の間の比率によって説明され得る。リプログラミング因子を受け取ったドナー細胞の数の測定は、リプログラミング因子をコードするベクターにＧＦＰなどのレポーター遺伝子が含まれる場合に、直接的に測定することができる。あるいは送達効率の間接的な測定は、リプログラミング因子ベクターを送達する、ペアとなる試料における送達効率を評価するための代用物として、レポーター遺伝子をコードするベクターをトランスフェクトすることによって得ることができる。さらに、生成されたリプログラミングコロニーの数は、例えば、アルカリホスファターゼ（ＡＰ）陽性クローン、転写因子ＯｃｔまたはＮａｎｏｇの内因性発現を伴うコロニー、またはＴｒａ－１－６０のような表面マーカーの抗体染色など、１以上の胚性幹細胞様多能性特性の出現を観察することによって測定することができる。別の例において、効率は、人工多能性幹細胞生成のキネティクスによって記述することができる。例えば、効率には、細胞系として連続的に継代される場合、４～８、９～１３、１３～１７、１７～２１、２１～２５または２９以上の継代数に対して、全体で約２０％、１５％、１０％、５％以下の異常核型を示すｉＰＳＣ細胞株を産生する方法を含む、正常核型の細胞株の産生を含めることができる。

実施例１
血液用の一般的なｉＰＳＣリプログラミングプロトコル
一般的に、リプログラミング方法には以下のステップが含まれる。凍結した末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）または単離したばかりのＰＢＭＣを使用することができる。解凍または単離したばかりのＰＢＭＳを播種するために、処理した細胞培養表面を使用することができる。これには、例えばマウス胚性フィーダー細胞（ＭＥＦ）または細胞外基質ラミニンＬ－５２１Ａで処理した細胞培地表面が含まれる。多能性因子の組み合わせをコードするプラスミド混合物を有する発現プラスミド混合物が提供される。例えばヌクレオフェクションを用いてプラスミドをＰＢＭＣに導入してから、処理した細胞培養表面上に配置する。培養２日後、リプログラミング培地を導入し、コロニーが形成されるまで補充する。

実施例２
リプログラミングのための末梢血採取及び最小限の処理
本発明者らは、採取したばかりの、または市販のヒトまたは哺乳動物の末梢血（ＰＢ）からリンパ球を単離するためのプロセスを確立した。そのような試料の採取及び輸送のための好ましい形態は、ＣＰＴチューブである。この形態により、供給元が輸送前にバキュテイナ（複数可）を遠心して血漿成分から赤血球を単離することが可能になる。本プロトコルは、ＣＰＴチューブの血漿の層からのＰＢＭＣの単離を提供する。

任意選択の検査：バキュテイナを開ける前に、ＨＩＶ、Ｂ型及びＣ型肝炎及び梅毒に関する検査を含むいくつかの病態の検査を行うことができる。後者の試験結果は、採取日から１～３営業日内に入手しなければならない。陽性結果であった場合、試料（複数可）は適切に廃棄され、試料を処理するために使用された全ての実験設備は除染される。

実施例３
採取手順
（１）赤血球及び血小板は容器を用いて減らす。クエン酸ナトリウムを含むＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）チューブを室温（１８～２５℃）にし、患者識別のため適切にラベルをしなければならない。ＣＰＴバキュテイナに７０％イソプロパノール／エタノールをスプレーし、アルコールを拭き取る。
（２）採血はＢＤバキュテイナ（登録商標）真空採血管の標準的な方法を使用して１試料あたり３本の８ｍｌ ＣＰＴチューブ内へ行う。採血後、遠心するまでチューブを立てて室温で保存した。血液試料は良好な結果のために採血から２時間以内に遠心しなければならない。
（３）チューブ／血液試料は水平ローター（スイングアウトヘッド）の中で室温（１８～２５℃）にて最低２０分間（最大３０分間）、１５００～１８００ＲＣＦ（相対遠心力）で遠心分離する。
（４）ＣＰＴチューブで輸送される血液については、２４時間以内にリプログラミングを行う。遠心後、単核細胞及び血小板は、血漿層の直下の白っぽい層に存在する（図１参照）。分離された単核細胞を回収するための別の手順は、未開封のＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）チューブを静かに５～１０回反転させることによって細胞を血漿中に再懸濁することである。これは、遠心分離後２４時間までの分離試料を保存または輸送するのに好ましい方法である。

実施例４
重要なパラメータ
温度：分離の原理は密度勾配に依存し、成分の密度は温度によって変化するため、システムの温度は分離の間１８～２５℃に制御しなければならない。
遠心分離：分離の原理は、分離媒体を通過する血液中の有形成分の動きに依存するため、「ＲＣＦ」は１５００ＲＣＦ～１８００ＲＣＦで制御すべきである。遠心分離の時間は、最低でも２０分にすべきである。（トラブルシューティングの項で説明したように、一部の試料は、最適な分離に最大３０分かかることがある。）最大３０分までのＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）の遠心分離は、単核細胞画分の赤血球混入を低減する効果を有する。３０分を超える遠心分離には、ほとんど追加の効果がない。ＢＤバキュテイナ（登録商標）ＣＰＴ（商標）チューブは、単核細胞の「バンド」または層が乱されていなければ、再遠心分離しても良い。
時間：血液試料は採血２時間以内に遠心分離または分離しなければならない。分離した単核細胞画分の赤血球混入は、試料の分離の遅れが長いほど増加する。単核細胞の回収率は、遠心分離前の時間遅延の増加と共に低下し、２４時間で約４０％の単核細胞回収率まで低下する。内容物（血漿層）を、適切にラベルした５０ｍｌチューブに注ぐ。

実施例５
リプログラミング手順の材料及び供給元
ｉＰＳＣ産生のための、分離全血試料（末梢血単核細胞、ＰＢＭＣ）をリプログラミングするための手順が、本明細書に記載される。使用する材料には、滅菌済１．５ｍｌエッペンドルフチューブ、滅菌済ピペットチップ（１０００ｕｌ、２００ｕｌ、１０ｕｌ）、Ａｍａｘａ Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒ（商標）２ｂ装置（Ｌｏｎｚａ）、ヒトＴ細胞用Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒキット（Ｌｏｎｚａ、カタログ番号ＶＰＡ－１００２）、ＭＥＦ ６ウェルＴＣ処理済プレートまたはＬ－５２１コーティングプレート、０．２２ｕｍ ＳｔｅｒｉＦｌｉｐ（任意選択）、霊長類ＥＳＣ培地またはＥ７培地が含まれ、下記の表１～４に記載される。

使用されるリプログラミングプラスミドには、（１）ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３、（２）ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、（３）ｐＣＸＬＥ－ＵＬ、（４）ｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１、（５）ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋが含まれる。

（表１）αβ Ｔ細胞培地

（表２）非Ｔ細胞培地

（表３）ＭＥＦ培地（任意選択）

（表４）調製された霊長類ＥＳＣ培地（任意選択）

（表５）調製したＥ７培地（任意選択）

実施例６
リプログラミング手順
［１日目－プレートの調製］
［ＭＥＦプレート］
１．６ウェルプレートの各ウェルを１ｍｌの０．１％ゼラチンでコーティングする。
２．プレートを３７^ｏＣで最低でも１時間インキュベートする。
３．ＬＮ２タンクから凍結ＭＥＦのバイアルを調達する。
４．８の字の動きで凍結バイアルを水中でゆっくり動かすことにより、バイアルを水浴で解凍させる。
５．１５ｍｌのコニカルチューブに解凍した細胞を採取する。
６．ＭＥＦ培地を容量１０ｍｌになるまでゆっくりと加える。
７．チューブ／ＭＥＦを室温（１８～２５℃）、１０００～１２００ＲＰＭ（相対遠心力）で５分間遠心する。
８．細胞を回転させている間に６ウェルプレートのゼラチンを吸引し、各ウェルに１ｍｌのＭＥＦ培地を添加する。
９．遠心分離が停止した後、コニカルチューブを取り出し、細胞ペレットを乱すことなく上清を吸引する。
１０．細胞ペレットを十分なＭＥＦ培地に再懸濁して約５０，０００細胞／ｍｌにする。
１１．１ｍｌの細胞／ＭＥＦ培地混合物を各ウェルに加える。
１２．プレートを回してＭＥＦを均一に分布させ、インキュベーターに一晩置く。
１３．１００ｕｇ／ｍｌのＬ－５２１の１ｍｌバイアル１本を解凍し、その内容物を９ｍｌの滅菌ＰＢＳに加えて、１０ｕｇ／ｍｌのＬ－５２１を調製する。
１４．混合物を０．２２ｕｍフィルターまたはＳｔｅｒｉＦｌｉｐでろ過する。
１５．６ウェルプレートの各ウェルに１０ｕｇ／ｍｌのＬ－５２１混合物１ｍｌを加える。
１６．パラフィルムでプレートを包み、３７℃のインキュベーターに２時間入れる。
１７．インキュベーターからプレートを取り出し、４℃の冷蔵庫に入れる。

［０日目－凍結ＰＢＭＣの細胞調製］
１８．それぞれ５ｅ６細胞を含むＰＢＭＣの凍結バイアル２本を、小さな氷塊が残るまで「８の字」に動かして水槽中で解凍させる。
１９．各チューブの内容物を２つの別々の無菌１５ｍｌコニカルチューブに集め、チューブ１及び２にラベルする。
２０．各チューブに滅菌ＰＢＳを加えて容量を１０ｍｌにする。チューブを５回反転させて細胞を混合する。
２１．１０００ＲＰＭで１５分間遠心分離する。
２２．ステップ２５に進む。

［新たに単離したＰＢＭＣの細胞調製］
２３．単離したばかりの３ｅ６のＰＢＭＣを、２本の滅菌１５ｍｌコニカルチューブにそれぞれ入れる。
２４．ステップ１９～２２を実施する。

［リプログラミング］
［Ｌ－５２１コーティングプレートを使用する場合、プレートを室温に少なくとも１時間平衡させる。］
２５．プロトコル（Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｉｏｎ溶液８２ｕｌ＋反応１回あたり補充１８ｕｌ）に従って、Ｌｏｎｚａ Ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｉｏｎ溶液の１．５ｍｌエッペンドルフチューブを調製する。チューブをＮＳとラベルする。

［注意：各反応は２回、すなわち１回はＴ細胞条件で、もう１回は非Ｔ細胞条件で実施する。全ての反応に対するＮＳのマスターミックスを調製しても良い。］
２６．１．５ｍｌのエッペンチューブで以下のように各反応に対する発現プラスミド混合物を３．８３ｕｇ調製する。
ｉ．ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３：０．８３ｕｇ
ｉｉ．ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ：０．８３ｕｇ
ｉｉｉ．ｐＣＸＬＥ－ＵＬ：０．８３ｕｇ
ｉｖ．ｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１：０．５ｕｇ
ｖ．ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ：０．８３ｕｇ
２７．６ｍｌのＴ細胞培地を含む１５ｍｌコニカルチューブを調製する。
２８．６ｍｌの非Ｔ細胞培地を含む１５ｍｌコニカルチューブを調製する。
２９．細胞を含む１５ｍｌのコニカルチューブの１つから上清を吸引する。
３０．チューブを静かに軽くたたき、細胞ペレットをほぐす。
３１．細胞ペレットに１００ｕｌのＮＳ混合物を加えて、静かに３～４回ピペッティングする。
３２．ＮＳ／細胞混合物の全容量は、プラスミド混合物を含有する１．５ｍｌエッペンドルフチューブに移して、静かに３～４回ピペッティングすることにより混合する。
３３．ＮＳ／細胞／プラスミド混合物の全容量を、ＬｏｎｚａのＴ細胞用キットで提供されるガラスキュベットに移す。
３４．キュベットをＡｍａｘａ ｎｕｃｌｅｏｆｅｃｔｏｒに入れてプログラムＶ－０２４を実行する。
３５．Ｌｏｎｚａ Ｔ細胞キット付属のプラスチックピペットチップを使用して、少量のＴ細胞培地をガラスキュベットに移してからキュベットの全内容物を６ｍｌのＴ細胞培地を含む１５ｍｌコニカルチューブに移す。
３６．細胞を含有する第２の１５ｍｌコニカルチューブについて、ステップ２９～３４を繰り返しステップ３７に進む。
３７．Ｌｏｎｚａ Ｔ細胞キット付属のプラスチックピペットチップを使用して、少量の非Ｔ細胞培地をガラスキュベットに移してからキュベットの全内容物を６ｍｌの非Ｔ細胞培地を含む１５ｍｌコニカルチューブに移す。

［播種］
［ＭＥＦ／霊長類のＥＳＣ条件］
３８．各ウェルからＭＥＦ培地を除去する。
３９．各ウェルを１ｍｌの滅菌ＰＢＳですすぐ。
４０．ステップ３５の１５ｍｌコニカルチューブの全内容物を、上部の３ウェルのそれぞれのウェルに２ｍｌ加えることによって移す。
４１．各ウェルに５ｕｌのＤｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８を添加する。
４２．ステップ３７の１５ｍｌコニカルチューブの全内容物を、下部の３ウェルのそれぞれのウェルに２ｍｌ加えることによって移す。
４３．プレートを３７^ｏＣのインキュベーターに入れる。

［Ｌ－５２１／Ｅ７条件］
４４．各ウェルのＬ－５２１を吸引する。
４５．ステップ５．３５の１５ｍｌコニカルチューブの全内容物を、上部の３ウェルのそれぞれのウェルに２ｍｌ加えることによって移す。
４６．各ウェルに５ｕｌのＤｙｎａｂｅａｄｓ Ｈｕｍａｎ Ｔ－ａｃｔｉｖａｔｏｒ ＣＤ３／ＣＤ２８を添加する。
４７．ステップ３７の１５ｍｌコニカルチューブの全内容物を、下部の３ウェルのそれぞれのウェルに２ｍｌ加えることによって移す。
４８．プレートを３７^ｏＣのインキュベーターに入れる。

［２日目］
４９．ヌクレオフェクション後２日目に、２ｍｌの適切なリプログラミング培地（Ｐｒｉｍａｔｅ ＥＳＣ＋ｂＦＧＦまたはＥ７）を各ウェルに加える。ウェルからは何も吸引しない。

［４～２５＋日目］
５０．４日目からは、各ウェルから培地を静かに吸引し、２ｍｌの新鮮なリプラグラム培地を各ウェルに加える。これを一日おきに行う。

［２５＋日目］
５１．引き伸ばしたガラスピペットを使用して個々のコロニーを単離し、適切な培養基を含む１２ウェルディッシュの１ウェルに単一のコロニーを移す。

実施例７
多能性幹細胞の適切な生成を確認するために、様々な品質管理アッセイを実施することができる。ｐＳＣ生成の望ましい特性を例示するこのような試験の例を表１に示す。

（表１）ｉＰＳＣ ＱＣアッセイ

実施例８
アルカリホスファターゼ
ＢＣ－ｉＰＳＣの特徴づけのために、アルカリホスファターゼ染色を、Ａｌｋａｌｉｎｅ Ｐｈｏｓｐｈａｔａｓｅ Ｓｔａｉｎｉｎｇ Ｋｉｔ ＩＩ（Ｓｔｅｍｇｅｎｔ、カタログ番号００－００５５）を製造者の指示に従って使用して実施することができる。

実施例９
免疫組織／細胞化学
ＢＣ－ｉＰＳＣのさらなる特徴づけのために、ＢＣ－ｉＰＳＣまたは分化細胞をカバーガラスまたはオプティカルボトム９６ウェルプレート（Ｔｈｅｒｍｏ、＃１６５３０５）上に載せ、続いて４％パラホルムアルデヒドで固定することができる。腸管オルガノイドは、４％パラホルムアルデヒドで固定し、３０％スクロースに移し、ＨｉｓｔｏＰｒｅｐ（Ｔｈｅｒｍｏ Ｆｉｓｈｅｒ Ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ）に包埋し、２０μｍ切片に切断することができる。全ての細胞を０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ－１００を含む５１０％ヤギまたはロバ血清でブロッキングし、室温で３時間または４℃で一晩のいずれかで一次抗体とインキュベートする。次いで細胞をすすぎ、種特異的ＡＦ４８８またはＡＦ５９４コンジュゲート二次抗体、続いて核を対比染色するためのＨｏｅｃｈｓｔ ３３２５８（０．５μｇ／ｍｌ、Ｓｉｇｍａ）でインキュベートする。

免疫細胞化学及びイムノブロッティングに適した抗体には、（抗原、希釈、カタログ番号、アイソタイプ、及び製造業者として記載される）ＳＳＥＡ４、１：２５０、ＭＡＢ４３０４、ｍＩｇＧ３、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；ＴＲＡ－１－６０、１：２５０、０９－００１０、ＩｇＭ、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ；ＴＲＡ－１－８１、１：２５０、０９－００１１、ｍＩｇＭ、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ；ＯＣＴ４、１：２５０、０９－００２３、ウサギＩｇＧ、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ；ＮＡＮＯＧ、１：２５０、０９－００２０、ウサギＩｇＧ、Ｓｔｅｍｇｅｎｔ；ＳＯＸ２、１：５００、ＡＢ５６０３、ウサギＩｇＧ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；ＴｕＪ１（β３－チューブリン）、１：１０００、Ｔ８５３５、ｍＩｇＧ２ｂ、Ｓｉｇｍａ；ＣＤＸ２、１：５００、ＮＢＰ１－４０５５３、ＩｇＧ、Ｎｏｖｕｓ；ＦＡＢＰ２、１：５００、ＡＦ３０７８、ＩｇＧ、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ；Ｉ型コラーゲン、１：５００、６００－４０１－１０３－０．１、Ｒａｂｂｉｔ Ｒｏｃｋｌａｎｄ；ＣＤ７３、１：５００、５５０２５７、ｍＩｇＧ１、ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ；ＮＫＸ６．１、１：１００ Ｆ５５Ａ１０、ｍＩｇＧ１、ＤＳＨＢ Ｉｏｗａ；ＨＢ９、１：２５、８１．５Ｃ１０、ｍＩｇＧ１、ＤＳＨＢ Ｉｏｗａ；ＩＳＥＬＴ１、１：２５０、ＡＦ１８３７、ヤギＩｇＧ、Ｒ＆Ｄ ｓｙｓｔｅｍｓ；ＳＭＩ３２、１：１０００、ＳＭＩ－３２Ｒ、ｍＩｇＧ１、Ｃｏｖａｎｃｅ；ＣＨＡＴ、１：２５０、ＡＢ１４４Ｐ、ヤギＩｇＧ、Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ；ＳＭＮ、１：２５０、６１０６４７、ｍＩｇＧ１、ＢＤ Ｂｉｏｓｃｉｅｎｃｅｓ；Ｃｏｘ－ＩＶ、１：１０００、４８５０ｓ、Ｒａｂｂｉｔ Ｃｅｌｌ ｓｉｇｎａｌｉｎｇ；ＧＡＰＤＨ、１：１０００、ａｂ９４８４、ｍＩｇＧ２ｂ、Ａｂｃａｍが含まれる。

実施例１０
フローサイトメトリー
さらなる特徴づけには、フローサイトメトリーが含まれ得る。具体的には、ＢＣ－ｉＰＳＣをＡｃｃｕｔａｓｅ（Ｍｉｌｌｉｐｏｒｅ、＃ＳＣＲ００５）を用いて単一の細胞懸濁液に解離させる。ＩＰＳＣの表面染色はＳＳＥＡ４（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ＦＡＢ１４３５Ａ）を用いて行う。

次に細胞を固定、透過処理して、Ｏｃｔ３／４（ＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、５６０１８６）について細胞内染色した。推奨されるアイソタイプは、抗体の推奨（Ｒ＆Ｄ Ｓｙｓｔｅｍｓ、ＦＡＢＩＣ００７及びＢＤ Ｐｈａｒｍｉｎｇｅｎ、５６２５４７）に従って使用される。ＢＤ ＦＡＣＳＤｉｖａソフトウェアを使用して、ＢＤ ＬＳＲＦｏｒｔｅｓｓａフローサイトメーターを使用して、全てのサンプルを分析する。全ての画像は、ＦｌｏＪｏソフトウェアを使用して生成される。

実施例１１
核型
核型分析は以下のように実施することができる。ヒトＢＣ－ｉＰＳＣをコルセミド（１００ｎｇ／ｍＬ、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）で、３７℃にて３０分間インキュベートし、ＴｒｙｐＬＥを用いて１０分間解離させる。これらをリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄し、５ｍＬの低張溶液（１ｇのＫＣｌ、４００ｍＬの水中１ｇのクエン酸ナトリウム）で３７℃にて３０分間インキュベートすることができる。細胞を１５００ＲＰＭで２．５分間遠心分離し、固定液（メタノール：酢酸が３：１）に室温で５分間再懸濁する。これを２回繰り返し、最終的に細胞を５００μｌの固定液に再懸濁し、Ｇバンド核型分析のためにＣｅｄａｒｓ－Ｓｉｎａｉ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｒｅに提出する。

実施例１２
ＰｌｕｒｉＴｅｓｔ
Ｐｌｕｒｉｔｅｓｔは、堅牢な多能性測定を提供する。全ＲＮＡは、ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて単離し、続いてＨｕｍａｎ ＨＴ－１２ ｖ４ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ ＢｅａｄＣｈｉｐ Ｋｉｔ（Ｉｌｌｕｍｉｎａ）で測定することができる。生データファイル（ｉｄａｔファイル）はその後、Ｐｌｕｒｉｔｅｓｔウィジェットオンライン（ｗｗｗ．ｐｌｕｒｉｔｅｓｔ．ｏｒｇ）にアップロードされた。

実施例１３
定量ＲＴ－ＰＣＲ
ＲＮｅａｓｙ Ｍｉｎｉ Ｋｉｔ（Ｑｉａｇｅｎ）を用いて全ＲＮＡを単離し、そして１ｕｇのＲＮＡを用いて、転写システム（Ｐｒｏｍｅｇａ）を使用することによりｃＤＮＡを作製した。ｑＲＴ－ＰＣＲは標準的な条件下で、特異的プライマー配列（表２）を用いて行った。「ＣＤＳ」は、全体での内因性遺伝子発現のみの発現を測定するための、コード配列として設計したプライマーを指し、「Ｐｌａ」はプラスミド導入遺伝子発現のみの発現を測定するために設計したプライマーを示す。データは平均値±ＳＥＭとして示す。

（表２）ｑＲＴ－ＰＣＲプライマー配列

実施例１４
ＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ株 対 線維芽細胞由来ｉＰＳＣ株の細胞遺伝学的安定性

（表３Ａ）ＰＢＭＣの細胞遺伝学的安定性

（表３Ｂ）ＰＢＭＣの細胞遺伝学的安定性

実施例１５
ＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣ株 対 線維芽細胞由来ｉＰＳＣ株のアレイＣＧＨの細胞遺伝学的安定性

（表４Ａ）ＰＢＭＣの細胞遺伝学的安定性

（表４Ｂ）ＰＢＭＣの細胞遺伝学的安定性

^＊新規または欠失は、親ドナー組織のａＣＧＨプロファイルと比較した場合、リプログラミング中及び／またはそれぞれのｉＰＳＣ株の増殖で新たに獲得された増幅または欠失である。

特定の細胞株を含む、ＢＣ－ｉＰＳＣの優れた特性を示す様々な結果が示されている。ＭＥＦにおける末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）ベースのエピソーマルリプログラミングの高い成功率を表５に示す。個体での異なる種類の核型異常の染色体レベルの頻度は、線維芽細胞由来ｉＰＳＣにおけるＧバンド核型分析によって観察される。「再編成」、「逆位」、「派生」を表６に示す。規定のＥ７リプログラミング培地中のヒト組換えラミニン５２１における血液ベースのリプログラミングの成功率を表７に示す。マトリゲル基質及び限定Ｅ７リプログラミング培地上での血液ベースのエピソーマルリプログラミングの成功の欠如を表８に示す。

（表５）ＭＥＦ上での末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）をベースとしたエピソーマルリプログラミングの高い成功率

ＮＰ：実施せず
Ｔ：Ｔ細胞リプログラミング法
ＮＴ：非Ｔ細胞リプログラミング法
４Ｐ／５Ｐ：４つまたは５つのプラスミド上のリプログラミング因子

（表６）異なる種類の核型異常の頻度

（表７）ヒト組換えラミニン５２１における血液ベースのリプログラミングの成功率

ＮＰ：実施せず
Ｔ：Ｔ細胞リプログラミング法
ＮＴ：非Ｔ細胞リプログラミング法
４Ｐ／５Ｐ：４つまたは５つのプラスミド上のリプログラミング因子

（表８）マトリゲル基質上での血液ベースのエピソーマルリプログラミングの成功の相対的欠如

ＮＰ：実施せず
Ｔ：Ｔ細胞リプログラミング法
ＮＴ：非Ｔ細胞リプログラミング法
４Ｐ／５Ｐ：４つまたは５つのプラスミド上のリプログラミング因子

実施例１６
採血により単離されたＰＢＭＣは確実にｉＰＳＣにリプログラムされる
皮膚生検から得られる真皮線維芽細胞は、その安価で比較的容易な取り扱いにより、ｉＰＳＣリプログラミング材料の最も一般的な供給源であった。しかしながら、採血と比較して皮膚パンチ生検は３～４ｍｍのサイズとなり得、多くの場合、有痛性の処置であることから、局所麻酔が必要となる。皮膚生検由来の線維芽細胞と比較して、血液はより入手可能な通院患者の組織供給源であり、したがって患者と臨床医の両方によるｉＰＳＣリプログラミングのための、供給源組織の好ましい選択である。様々なヒト血液リプログラミング方法は、末梢血から動員されたＣＤ３４^＋細胞を含む、混在性の効率と共に報告されている（参照）。臍帯血から単離されない限り、ＣＤ３４^＋細胞は、通常、数日間Ｇ－ＣＳＦ動員を受けている患者の末梢血または骨髄から単離される。リプログラミングのための十分な細胞数を生じさせるために、単離されたＣＤ３４^＋前駆細胞を複雑で高価なプロトコルを用いて培養で濃縮及び増殖させる必要がある。本発明者らは、エピソーマルリプログラミングプラスミドを用いた事前の細胞増殖またはＣＤ３４^＋細胞単離を伴わずに、採取した末梢血から単離されたばかりのＰＢＭＣをリプログラミングすることに成功した。このようなアプローチは、患者の生体試料を採取する時から厳密に特徴づけされたｉＰＳＣを生成するまでの、患者のリプログラミングされたｉＰＳＣを得るための最も迅速で最も費用効果の高い手順を提供する。

同時に複数の対象からの大きなコホートのＰＢＭＣのリプログラミングと、患者の採血後かなり日にちが経過した後でのｉＰＳＣ株の生成により、ｉＰＳＣが「将来も使用できる」ことが可能となり、これには生存細胞を確実に回収するためのＰＢＭＣ凍結保存ステップが必要となる。さらに、より多くの患者の遺伝子型－表現型情報が利用可能である場合、代表的な対象からの選択的なコホートの良好な凍結保存ＰＢＭＣはｉＰＳＣに変換され得ることから、このプロセスには柔軟性がある。しかし、複数の個体由来の凍結保存ＰＢＭＣがＰＯＵ５Ｆ１、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４、ＬＩＮ２８、Ｌ－ＭＹＣ、ｐ５３ｓｈＲＮＡを発現するエピソーマルプラスミドによりｉＰＳＣにリプログラムされる場合、本発明者らは、ＰＢＭＣ細胞種、ＥＣＭ基層及び培地にかかわらず、３５～４０日後であっても同定可能なｉＰＳＣクローンを単離する際に有意な変動性を観察した。凍結保存ＰＢＭＣにおける非Ｔ細胞法では、いかなるクローンｉＰＳＣ株も得られなかったが、Ｔ細胞リプログラミング法ではＰＢＭＣ試料のわずか３３％で成功した（データは示さず）。

決定的なことに、本発明者らの手技におけるＰＢＭＣリプログラミングの確実性は、本発明者らが以下を利用した場合に、顕著に向上した：（ａ）ＰＢＭＣ細胞死を最小限に抑えかつリプログラミング因子プラスミド発現を維持するために、ＳＶ４０ラージＴ抗原（ＳＶ４０ＬＴ）とＥＢＮＡ－１とを特定の化学量論的に含む、２つの追加のエピソーマルプラスミド、ならびに（ｂ）ヌクレオフェクションしたＰＢＭＣの高い表面接着を促進するための、規定されたリプログラミング培地（図８Ａ）。この新規プロトコルにより、ヌクレオフェクションから２５～３５日後の増殖のために機械的に単離及びスケールアップすることができる複数の接着性のＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローンの好結果の効率的な生成が得られた（図８Ａ）。重要なことに、非疾患の対照または疾患患者からの複数の個々の凍結保存ＰＢＭＣのリプログラミングにおける成功率は、Ｔ細胞法では９０％、マウス胚線維芽細胞（ＭＥＦ）における非Ｔ細胞法（表５）では８３％であった。Ｔ細胞－ｉＰＳＣにより負わされる制限、及びＰＢＭＣ由来の非Ｔ細胞リプログラミングの低い効率を考慮すると、本方法では非Ｔ細胞由来のＢＣ－ｉＰＳＣの信頼できるリプログラミングが得られた。

本発明者らは、臨床的により適合性のあるリプログラミング方法を使用する場合、この新規プロトコルが尚、対応可能であるかどうかを試験した。組換えヒトラミニン５２１基質及び化学的に規定されたリプログラミング培地を使用すると、それぞれ７５％及び５８％とわずかに低い成功率であったにもかかわらず、好結果のＰＢＭＣリプログラミングが得られた。Ｔ細胞及び非Ｔ細胞の平均リプログラミング効率は、それぞれ２．２×１０^－４％及び１．６×１０^－６％であった。（表５）。全てのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株は、緊密に充填されたコロニー、高い細胞核対細胞質比、堅牢なアルカリホスファターゼ活性、及び多能性抗原の発現を含む典型的なＰＳＣ特性を示した（図８Ｂ）。ＢＣ－ｉＰＳＣは、ＰｌｕｒｉＴｅｓｔアッセイによって決定される多能性品質管理測定基準に合格し、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ転写プロファイルは十分に確立されたｈＥＳＣ及びｆｉｂ－ｉＰＳＣに類似しているが、分化した線維芽細胞及び神経前駆細胞には類似していないことが証明される（図８Ｃ）。ＢＣ－ｉＰＳＣは正常なＧバンド核型を維持し（図８Ｄ）、Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）－β及び－γ、遺伝子再編成／クロナリティアッセイを用いてＰＢＭＣからのＴ細胞または非Ｔ細胞のいずれかのクローン誘導体であることが確認された（図８Ｅ）。ＢＣ－ｉＰＳＣの三系列分化能は、自然発生的な胚様体形成及びＴａｑＭａｎ Ｓｃｏｒｅｃａｒｄアッセイによる胚葉特異的遺伝子発現プロファイルの測定によって実証された（図８Ｆ）。ＢＣ－ｉＰＳＣの「痕跡の無い」状態は、内因性多能性遺伝子発現の実証及びＲＴ－ｑＰＣＲを用いた外因性リプログラミング導入遺伝子の不在により確認された（図１１Ａ）。ＥＢＮＡプラスミド関連の潜伏感染要素は、最終的に確立されたＢＣ－ｉＰＳＣから排除された（図１１Ｂ）。

実施例１７
ＢＣ－ｉＰＳＣは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣと同等の神経細胞分化を有する
ｉＰＳＣは、供給源組織にかかわらず、最終的に、元の細胞供給源に関連する遺伝子発現及びエピジェネティックなプロファイルの大部分を失うことが報告されている。しかし、血液由来のｉＰＳＣが線維芽細胞由来のｉＰＳＣのような効率で他の様々な細胞種に分化することができるかどうかは、おそらく血液由来のｉＰＳＣのエピジェネティックな記憶が強く保持されるため、依然として不明である。本発明者らは、中胚葉由来の血液または線維芽細胞由来のｉＰＳＣを、外胚葉のような異なる胚葉に配向することによってこれに対処した。具体的に、本発明者らは、健康なボランティア及び疾患患者の両方に由来する、多数の線維芽細胞（ｎ＝２６）及びＰＢＭＣ株（ｎ＝８）から神経外胚葉分化を行った。ＴＵＢＢ３（β_３－チューブリン）及びＮＫＸ６．１の神経外胚葉マーカーに対する免疫細胞化学及びその後の細胞数に基づいて、神経細胞分化は線維芽細胞－ｉＰＳＣとＢＣ－ｉＰＳＣの間で同様の効率で起こることが示され（図８Ｇ）、ＢＣ－ｉＰＳＣの有用性がさらに実証された。

実施例１８
ＢＣ－ｉＰＳＣは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣと比較して、非常により安定した核型を維持する
再発性の染色体異常が、過剰な数のｈＥＳＣ株について前述されている。いくつかの報告では、ｈｉＰＳＣ株についての共通の染色体異常が記録されているが、これらは供給源組織、リプログラミング方法及び細胞培養法における変動性を体系的に説明していない。本発明者らの知る限りでは、線維芽細胞及び血液に由来するｉＰＳＣ間の頻度を比較する細胞遺伝学的分析を説明する系統的研究はなかった。過去６年にわたり、本発明者らは、３３９の独立したクローンｉＰＳＣ株を含む１０４の固有線維芽細胞またはＰＢＭＣドナーに由来するｉＰＳＣ株に対して、慣例的な細胞遺伝学的分析を行った。評価された全ての線維芽細胞及び血液由来ｉＰＳＣは、同様の非組込みエピソーマルリプログラミング及び標準的なフィーダーフリーのマトリゲル／ｍＴｅＳＲ細胞培養法を用いてリプログラミングされた。

ｉＰＳＣ Ｃｏｒｅに由来するｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＢＣ－ｉＰＳＣは、それらのリプログラミング法、多能性及び分化に関して互いに類似しているが、２つの供給源細胞種間の細胞遺伝学的安定性における著しい差の早期の観察により、大規模比較分析の必要性を促された。多くの研究所及び幹細胞貯蔵所では、染色体の細胞中期で得られるＧバンド核型分析及びギムザ染色を用いてＰＳＣにおける細胞遺伝学的変化の品質管理アッセイを日常的に行う。５％の異常細胞の確実な同定が容易に達成される本方法により、異常細胞の小さな亜集団を容易に同定することができるため、低解像度（＞５～１０Ｍｂ）でのモザイク現象（＞１０％）及び均衡転座の検出が可能になる。

本発明者らは、供給源の線維芽細胞及びＰＢＭＣが複数の研究室または公的な貯蔵所から集められた、３６４個のヒトｉＰＳＣ培養物について、核型分析を行った。本発明者らのデータは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＢＣ－ｉＰＳＣにおける染色体異常の発生率における顕著な差異を明らかにする。７８例の固有のドナーに由来するクローン的に独立したヒトｆｉｂ－ｉＰＳＣ株由来の２５８個の培養物のうち５９個（２２．９％）にクローン異常を伴う異常核型が観察された（図６）。全く対照的に、３２例の固有のドナーに由来するクローンのヒトＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株の１０６個の培養物のうち４個（３．８％）だけが、低頻度の異常を示した。ＢＣ－ｉＰＳＣと比較して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおいて再発性の異常がより顕著な程度で表われることは、イデオグラムの染色体の模式図から明らかである（図６）。実際に、この顕著な細胞遺伝学的安定性がＰＢＭＣに特有であるのは、リンパ芽球様細胞系列（２５％）及び初代上皮細胞（２７％）を含む他の細胞起源からリプログラミングされたｉＰＳＣが、同様の高い核型異常率を有するためである、（図１２）。

ｆｉｂ－ｉＰＳＣで最も頻度の高い核型異常は、１３番染色体（１３．２％）、１番染色体（１１．８％）、１２番染色体（１１．１％）、及びＸ染色体（１０．４％）で観察された（表６）。より少ない程度の核型変化が、頻度の高い順に２１番染色体、１１番染色体及び６番染色体においても観察された。異数体のうち、染色体増加（トリソミーまたは重複）は、１２番染色体（２１．１％）、１番染色体（１５．８％）、１１番染色体（１３．２％）、及び６番染色体（１０．５％）で最も一般的に観察され、染色体減少はＸ染色体（３８．５％）及び２１番染色体（２３．１％）で繰り返し確認された。ｆｉｂ－ｉＰＳＣの１番染色体及び１３番染色体（１３．９％）及び１４番染色体（１１．１％）において、転座の再編成が観察された。ＢＣ－ｉＰＳＣは１４番染色体（トリソミー）または１８番染色体（重複）でそれぞれ染色体増加を示す１つの株を有した。他の２つのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株は、珍しい異常（１９％の細胞で転座４６、ＸＹ、ｔ（７；１４）（ｑ３４；ｑ１１．２）及びモザイク欠失４６、Ｘ、ｄｅｌ（Ｘ）（ｑ２２ｑ２６）を示した（表６）。

実施例１９
Ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＢＣ－ｉＰＳＣの核型分布は、ドナーの年齢ではなく、継代数に関係する
血液と異なり、皮膚は日焼けの可能性などの外環境要素に日常的に曝されており、生検由来の線維芽細胞はリプログラミングの前にある特定のレベルの増殖が必要である。このことは、培養においてさらなる老化と同様である。これを考慮して、本発明者らは、ドナーの年齢がｆｉｂ－ｉＰＳＣの細胞遺伝学的不安定性に影響を及ぼす寄与因子であり得ると仮定した。しかし、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける細胞遺伝学的異常の頻度に関して、本発明者は、ドナーの年齢と有意な傾向または相関を認めなかった（図９Ａ）。実際には、Ｇバンド核型分析に基づいて、２１～４０才の群の線維芽細胞－ｉＰＳＣにおいて、最も高い割合の核型異常（３１．９％）が観察された。

多能性幹細胞は、高い増殖性の性質を有する。したがって、本発明者らは次に、細胞培養においてｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＢＣ－ｉＰＳＣが経時的にどのように変化したか、及び継代数の増加により細胞遺伝学的異常蓄積の傾向が高くなるかどうかを分析しようと試みた。線維芽細胞由来ｉＰＳＣの約２１．６％が、ｉＰＳＣ生成後の初回のＧバンド核型評価において異常核型（クローン異常を伴う１／２０超の細胞）を有することが観察されたが、これは典型的には継代数４～２３の間であった。全く対照的に、初回の評価において２．８％のみのＢＣ－ｉＰＳＣが異常核型を有していた。異常核型を有すると判定されたｉＰＳＣ株は、それ以上培養も評価もされなかった。したがって、２～４回目の繰り返しでの核型は、それらの初回の核型において最初に細胞遺伝学的に正常であると同定されたｉＰＳＣ株についてのみ評価した。この解析により、正常なｉＰＳＣ生成後（初回のＧバンド核型評価時）に確立された後であっても、培養及び継代中の継続期間にｆｉｂ－ｉＰＳＣがＢＣ－ｉＰＳＣに対して固有のレベルの細胞遺伝学的不安定性を有するかどうかを判定することができた。Ｇバンド核型分析では、初回の核型での割合と比較して、繰り返しの核型分析の際に、より大きな割合のｆｉｂ－ｉＰＳＣ（２７．８％）が培養において異常核型を獲得し（Ｐ＜０．００１、Ｂｏｎｆｅｒｒｏｎｉ事後検定を用いた二元配置ＡＮＯＶＡ）、ＢＣ－ｉＰＳＣにおける異常核型の割合は、初回及び繰り返しでの核型間に有意差を示さなかった（図９Ｂ）。ｆｉｂ－ｉＰＳＣの細胞遺伝学的不安定性の起源を分析する上で、異常核型（初回または繰り返し）の最も高い割合は、ｉＰＳＣ株の生存期間の１０～２３継代の間に生じるようであり（図９Ｃ～Ｄ）、これは典型的に、任意の所与の細胞株について最大量のｉＰＳＣ増殖が生じる時である。ｉＰＳＣの増殖が継代数１０～２３で大きく増加するのは、これらの継代数の辺りで同時に起こる性質決定と細胞バンキングによるところが大きい。それにもかかわらず、これは、ｆｉｂ－ｉＰＳまたはＢＣ－ｉＰＳＣの両方について同様のプロセスであるが、ＰＢＭＣ由来細胞は、長期の培養または増殖時に異常核型に対する増加傾向を示さない。

実施例２０
ＢＣ－ｉＰＳＣは微小な増幅及び欠損をほとんど獲得しない
Ｇバンド核型は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ培養物において一般的に観察される均衡転座、逆位、２０％未満の培養モザイク、ゲノム増加または減少の染色体位置を検出できるという利点を有する（図６及び表５）。しかし、Ｇバンド核型は極微小なゲノム異常（＜５Ｍｂ）を検出することができないので、本発明者らは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株のサブセットで比較ゲノムハイブリダイゼーション（ａＣＧＨ）マイクロアレイを行うことに決めた。ａＣＧＨは均衡転座、逆位及び２０％未満の培養モザイクを検出することができないが、ｉＰＳＣ株のより小さなサイズのゲノムの増加及び減少、コピー数多型（ＣＮＶ）、重複／欠失及び不均衡転座を検出するのに優れた補助的な方法である。本発明者らは、親線維芽細胞またはＰＢＭＣ供給源の生体試料との比較について、ｉＰＳＣで獲得された新たな増幅または欠失を分析及び記録した。この分析では、それらが健康な個体で観察されたゲノム変異を含むＤａｔａｂａｓｅ ｏｆ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｖａｒｉａｎｔｓ（ＤＧＶ）に対する相互参照において正常なＣＮＶではない場合、ｉＰＳＣで新たに獲得されたそれらの増幅及び欠失のみを考慮した。

異常及び正常なＧバンド核型を有するｉＰＳＣ株を含めて、ａＣＧＨによって検出された増幅及び欠失の平均サイズは、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株における２．１Ｍｂと比較して、４４Ｍｂであるｆｉｂ－ｉＰＳＣ株において有意に大きく（図１０Ａ）、その優勢は、異常核型を有するｆｉｂ－ｉＰＳＣ株によるものであった（図１０Ｂ）。正常な核型を有するｉＰＳＣ株間のサイズ分析比較を分離させた場合、新たな増幅／欠失はｆｉｂ－ｉＰＳＣ株では平均２．３１Ｍｂ、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株では２Ｍｂであった。このデータを裏付けるように、ｆｉｂ－ｉＰＳＣで獲得された全体での新たな増幅／欠失の平均数（３．７）は、ＢＣ－ｉＰＳＣ（１．８）より少なくとも２倍多かった。正常なＧバンド核型を有すると決定されたｉＰＳＣ株でも、新たな増幅／欠失の数は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける３．３に対してＢＣ－ｉＰＳＣで１．８であった。ａＣＧＨで検出された、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ株またはＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株で最も一般的に獲得される極微小（０．８～１．５Ｍｂ）の新たな増幅または欠失は、染色体７ｑ３１．３２の増幅または染色体１０ｑ１５．２～ｑ２５．１、１６ｐ１１．２、２１ｐ１１．２～ｐ１１．１の欠失であった（図１０Ｅ）。

ここで本発明者らは、多能性因子を発現するエピソーマルプラスミドを用いて、血液の非Ｔ細胞成分のリプログラミングのための新規かつより信頼できる方法を報告する。記載されたリプログラミングプロトコルを使用して、非Ｔ細胞または非Ｂ細胞原料から１００％に近い成功率で非Ｔ細胞を一貫してリプログラムすることができる。さらなる利点には、規定されたリプログラミング培地Ｅ７の使用、及び規定された臨床的に適合性である基質である組換えヒトＬ－５２１の使用が含まれる。血液細胞由来のｉＰＳＣ（「ＢＣ－ｉＰＳＣ」）は、線維芽細胞由来ｉＰＳＣ（「ｆｉｂ－ｉＰＳＣ」）と同一の特性を示し、遺伝子型を保持し、正常な多能性プロファイルを示し、３種類の胚葉細胞種全てに容易に分化する。患者の血液試料からｉＰＳＣを確実に誘導するための本方法は、患者特異的な系列を含む新規のヒトｉＰＳＣ株を迅速に生成するための道を開き、病気のモデリング、創薬、及び再生医療用途のための莫大なバイオリソースを提供する。

実施例２１
追加的な特徴づけ試験
Ｇバンド核型
ヒトｉＰＳＣをコルセミド（１００ｎｇ／ｍＬ、Ｌｉｆｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）中で３７℃にて３０分間インキュベートし、次いでＴｒｙｐＬＥを用いて１０分間解離させた。次にこれらをリン酸緩衝生理食塩水（ＰＢＳ）で洗浄し、５ｍＬの低張溶液（１ｇのＫＣｌ、４００ｍＬの水中１ｇのクエン酸ナトリウム）中３７℃にて３０分間インキュベートした。細胞を１５００ＲＰＭで２．５分間遠心分離し、固定液（メタノール：酢酸が３：１）に室温で５分間再懸濁した。これを２回繰り返し、最終的に細胞を５００μｌの固定液に再懸濁し、Ｇバンド核型分析のためにＣｅｄａｒｓ－Ｓｉｎａｉ Ｃｌｉｎｉｃａｌ Ｃｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｒｅに提出した。分析には、培養あたり最低２０細胞の染色体検査が含まれる。本明細書のデータセット４には、ＩＳＣＮ ２０１３のクローン性の定義に合致する異常のみが含まれる。全ての正常核型及び異常核型を表形式で表記した。次に、染色体イデオグラムに沿った任意のゲノム間隔に関連するデータをプロットするＩｄｅｏＶｉｚパッケージを使用して、表をＲ Ｂｉｏｃｏｎｄｕｃｔｏｒ（プログラミング言語）にインポートすることによって、染色体の表意文字を生成した。このパッケージは、オープンソースのＢｉｏｃｏｎｄｕｃｔｏｒのｗｅｂサイトで入手可能である。染色体再編成の頻度を正確に反映させるために、検討した試料数に応じて各イデオグラムのバーの幅を拡大した。そのため、試料セットで見られる異常数を示す線維芽細胞のイデオグラムが、ＰＢＭＣセットよりも２．１６倍大きかったことから、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株に見られる異常を示すバーは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ株に見られる異常を示すバーの幅の２．１６倍である。染色体の転座（濃紺色のバー）カテゴリーの上の文字は、転座異常が生じた染色体位置間で対応するように符合される。

アレイ比較ゲノムハイブリダイゼーション（ａＣＧＨ）によるコピー数多型
アレイＣＧＨは、不均衡型の検出及び高スループット能力による構造的及び数値的染色体変化のための高解像度の核型分析ソリューションである。初代皮膚線維芽細胞または単離ＰＢＭＣ及びそれらのリプログラミングｉＰＳＣから高品質のゲノムＤＮＡを単離した。ＵＶスペクトル（ＮａｎｏＶｕｅ）、蛍光光度計（Ｑｕｂｉｔ）及びアガロースゲル分析によって決定されるゲノムＤＮＡの品質。Ｃｅｌｌ Ｌｉｎｅ Ｇｅｎｅｔｉｃｓ（Ｍａｄｉｓｏｎ、ＷＩ）により、ヒト幹細胞株及びがん細胞株に適したＡｇｉｌｅｎｔ ６０Ｋ Ｓｔａｎｄａｒｄ ａＣＧＨプラットフォームを用いて、ＣＮＶについて試料分析した。供給源の親ドナー細胞に対するｉＰＳＣ株の比較では、示した遺伝子座について新たなコピー数多型（増加／増幅または減少／欠失）を得た。

ＴＣＲＧ鎖再編成アッセイ
ゲノムＤＮＡ（３５０ｎｇ）を、ＭａｓｔｅｒＰｕｒｅ ＤＮＡ Ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ Ｋｉｔ（Ｅｐｉｃｅｎｔｅｒ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ）を用いて全ての細胞株から回収した。陰性対照として、胚性幹細胞株（Ｈ９）を用いた。ＩｇＨ遺伝子の重鎖遺伝子座における３つのフレームワーク領域を認識するプライマーセットは、ＩｎＶｉｖｏＳｃｒｉｂｅ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ（Ｃａｔ Ｎｏ．１１０１００１０、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）から入手し、ＰＣＲは製造業者のプロトコルに従って実施した。エピソーマルプラスミド関連遺伝子解析のゲノムＤＮＡ（４００ｎｇ）を全ての細胞株から回収し、そして胚性幹細胞株（Ｈ９）を陰性対照として用いた。ハウスキーピング遺伝子として使用されたＧＡＰＤＨに加えて、ＥＢＮＡ－１を認識するプライマーも本研究に含めた。ＰＣＲは、９５℃で３０秒間、６０℃で３０秒間、及び７２℃で３０秒間を３５サイクル実施した。

ｉＰＳＣからの神経分化
ヒト線維芽細胞－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣを６ウェルのマトリゲルコーティングプレートに播種した。ｉＰＳＣは、分化開始前に正常な維持条件下で、コンフルエント付近まで増殖させた。翌日、神経細胞の分化はＬＤＮ１９３１８９（０．２μＭ、Ｃａｙｍａｎ）、ＳＢ４３１５４２（１０μＭ、Ｃａｙｍａｎ）及びＣＨＩＲ９９０２１（３μＭ、Ｃａｙｍａｎ）を使用する、ＳＭＡＤ及びＧＳＫ－３ｂｅｔａの二重阻害による神経外胚葉分化により開始され、この処理は、非必須アミノ酸（ＮＥＡＡ；１％）、Ｂ２７（２％）及びＮ２（１％）を含むイスコフ改変ダルベッコ培地（ＩＭＤＭ）／Ｆ１２（１：１）培地中で６日間行う。６日後に分化している細胞を、次に３７℃で５分間Ａｃｃｕｔａｓｅ処理により静かに剥離させた。次に、０．１μＭのオールトランス型レチノイン酸及び１μＭソニックヘッジホッグアゴニスト（ＳＡＧ）を添加した上記の神経分化培地中に、７．５×１０^５の密度の細胞を６ウェルプレートに播種または１×１０４細胞を９６ウェルプレートに播種した。一日おきに新しい培地に換えた。１２日目に分化培地をＮＥＡＡ（１％）、Ｂ２７（２％）、Ｎ２（１％）、化合物Ｅ（０．１μＭ、Ｃａｌｂｉｏｃｈｅｍ）、ＤＡＰＴ（２．５μＭ、Ｃａｙｍａｎ）、レチノイン酸（０．５μＭ）オールトランス型、ＳＡＧ（０．１μＭ）、アスコルビン酸（２００ｎｇ／ｍｌ）、ジブチリル環状アデノシン一リン酸（１μＭ）、脳由来神経栄養因子（１０ｎｇ／ｍｌ）、及びグリア細胞株由来の神経栄養因子（１０ｎｇ／ｍｌ）を添加した、最終分化（ＩＭＤＭ）／Ｆ１２（１：１）培地に変更した。分化１８日目に分化神経細胞を固定し、分析した。

実施例２２
血液から単離された凍結保存ＰＢＭＣは、確実にｉＰＳＣにリプログラミングされる
ヒトｉＰＳＣは、エピソーマルプラスミドにより単離されたばかりの非増殖ＰＢＭＣから作製することができる。しかし、凍結ＰＢＭＣからｉＰＳＣへのリプログラミングについての記載はない。本発明者らは、ＰＯＵ５Ｆ１、ＳＯＸ２、ＫＬＦ４、ＬＩＮ２８、Ｌ－ＭＹＣ、及びＴＰ５３ｓｈＲＮＡを発現するエピソーマルプラスミドにより複数の個体からの凍結保存ＰＢＭＣをｉＰＳＣにリプログラミングした場合（４ｐ法と称される）、本発明者らは、３５～４０日後であっても、同定可能なｉＰＳＣクローン単離において、失敗であったか、または有意な変異性が観察された。全血からｉＰＳＣを生成するための他の試みには、リプログラミングのために十分な細胞数を生成するために、単離したＣＤ３４＋前駆細胞を、複雑で高価なプロトコルを用いて培養で濃縮及び増殖させる必要があることが示されている。これは、このプロセスを単純化し、そして体細胞の増殖を回避してリプログラミングする必要性を強調した。この体細胞供給源は複数の対象コホートから最も迅速かつ最も費用効果の高い手順を提供することから、本発明者らは代わりにｉＰＳＣへのリプログラミング用に非増殖ＰＢＭＣを単離し、凍結保存した。凍結保存ＰＢＭＣにおける非Ｔ細胞法では、いかなるクローンｉＰＳＣ株も得られなかったが、４ｐ法を使用するＴ細胞リプログラミング法では、ＰＢＭＣ試料のわずか１４．３％で成功した。

ＰＢＭＣリプログラミングの効率を高めるために、本発明者らは、以下を使用した：（ａ）ＰＢＭＣ細胞死を最小限にするために、ＳＶ４０ラージＴ抗原（ＳＶ４０ＬＴ）を特定の化学量論的に含む、追加的なエピソーマルプラスミド（５ｐ法と称する）、及び（ｂ）ヌクレオフェクションしたＰＢＭＣの高い表面付着を促進するための、規定されたＥ７リプログラミング培地。この新規プロトコルにより、ヌクレオフェクション後２５～３５日以内に増殖のために機械的に単離及びかつスケールアップされ得る複数の接着性のＰＢＭＣ－ｉＰＳＣクローンの好結果かつ効率的な生成が得られた。重要なことに、非疾患の対照または疾患患者に由来する複数の対象の凍結保存ＰＢＭＣのリプログラミング成功率及び効率は、４ｐ法の０～１５％とは対照的に、５ｐ法を用いた場合、Ｔ細胞法では８５％、非Ｔ細胞法では９２％と有意に高かった。市販の培地（霊長類ＥＳＣ培地、ＰＥＳＣ）中のマウス胚線維芽細胞（ＭＥＦ）上でのＰＢＭＣのリプログラミングは、良好なリプログラミング効率を伴ってＴ細胞法及び非Ｔ細胞法の両方で８９～９５％近い成功であった。臨床的に適合性のあるｉＰＳＣに基づく細胞療法に必要とされ得るため、本発明者らは、次に、この５ｐリプログラミングプロトコルがまた、生体異物を含まない成分で対応可能であるかどうかを試験した。組換えヒトラミニン５２１基質及び化学的に規定されたリプログラミング１培地（Ｅ７）２１の使用によっても、Ｔ細胞及び非Ｔ細胞のリプログラミングはそれぞれ８０％及び６４％成功した。まとめると、これらの結果は、４ｐ法と比較して、５ｐ法がＰＢＭＣ（Ｔ細胞及び非Ｔ細胞の両方）のリプログラミングの成功及び効率を有意に増強し、そして凍結保存したＰＢＭＣを確実にリプログラミングするための貴重なプロトコルを提供することを示す。各ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株は、密集したコロニー、高い細胞核－細胞質比、堅牢なアルカリホスファターゼ活性、及び複数の多能性抗原の発現を含む典型的なＰＳＣ特性を示し、これらは２例の健康なボランティア（非Ｔ細胞供給源の０３ｉＣＴＲ１０ ＮＴｎ１及びＴ細胞供給源の８０ｉＣＴＲ－Ｔｎ１）のＰＢＭＣ由来の代表的なリプログラミングされたｉＰＳＣコロニーで全て明らかである。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、ＰｌｕｒｉＴｅｓｔアッセイによって決定される多能性品質管理測定基準に合格し、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ転写プロファイルは十分に確立されたｈＥＳＣ及びｆｉｂ－ｉＰＳＣに類似しているが、分化した線維芽細胞及び神経前駆細胞には類似していないことが証明される。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは正常なＧバンド核型を維持し、Ｔ細胞受容体（ＴＣＲ）－β及び－γ、遺伝子再編成／クロナリティアッセイを用いてＰＢＭＣからのＴ細胞または非Ｔ細胞のいずれかのクローン誘導体であることが確認された。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの三系列分化能は、自然発生的な胚様体形成及びＴａｑＭａｎ Ｓｃｏｒｅｃａｒｄアッセイによる胚葉特異的遺伝子発現プロファイルの測定によって実証された。ＰＢＭＣのｉＰＳＣのゲノムの導入遺伝子が無い状態は、（１）ＥＢＮＡプラスミド関連の潜伏要素が、樹立されたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣから最終的に排除され、ゲノムＤＮＡで検出されなかったことの立証、（２）内因性多能性遺伝子の発現及びＲＴ－ｑＰＣＲを用いた際にいかなる外来性リプログラミング導入遺伝子も存在しないことにより、確認される。さらに、５ｐリプログラミング混合物の成分であるＳＶ４０ＬＴ因子はゲノムＤＮＡレベルで検出されず、リプログラミングされたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株で発現しなかった。

実施例２３
ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、Ｆｉｂ－ｉＰＳＣと同等の神経細胞分化を有する
多くの初期の報告では、新たにリプログラミングされたｉＰＳＣは、親のドナー細胞種のエピジェネティックな記憶を保持していることが示唆されたが、最近の報告では、ｈｉＰＳＣは供給源組織にかかわらず、最終的に、元の細胞供給源に関連する遺伝子発現及びエピジェネティックプロファイルの大部分を増殖後に失うことが示唆されている。しかし、血液由来のｉＰＳＣが線維芽細胞由来のｉＰＳＣのような効率で他の様々な細胞種に分化することができるかどうかは、おそらく血液由来のｉＰＳＣが他のドナー細胞と比べてエピジェネティックな記憶をより強く保持するため、依然として不明である。本発明者らは、ともに中胚葉起源の血液または線維芽細胞に由来するｉＰＳＣを、異なる胚葉、すなわち神経外胚葉に配向することによってこれに対処した。具体的に、本発明者らは、健康な対象ならびに疾患患者の両方に由来する、多数の線維芽細胞（ｎ＝２６）及びＰＢＭＣ株（ｎ＝２０）から誘導されるｉＰＳＣ株から神経外胚葉分化を行った。神経外胚葉マーカーであるＴＵＢＢ３（β３－チューブリン）及びＮＫＸ６．１に対する免疫細胞化学及びその後の定量化により、ｆｉｂ－ｉＰＳＣとＰＢＭＣ－ｉＰＳＣとの間に類似の効率で神経細胞分化が生じ、ＰＢＭＣ ｉＰＳＣの有用性がさらに実証された。５ｐでリプログラミングしたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、非常により安定した核型再発性染色体異常を維持することは、ｈＥＳＣ株について前に記載されている。一部の報告でもまた、ｈｉＰＳＣ株についての共通の染色体異常が記録されているが、これらは供給源組織、リプログラミング方法及び細胞培養法における変動性を体系的に説明していない。本発明者らの知る限りでは、線維芽細胞及び血液由来のｉＰＳＣ間の頻度を比較する細胞遺伝学的分析を説明する系統的研究はなかった。本発明者らは、１６の線維芽細胞（７７）またはＰＢＭＣ（９４）である１７１の固有のドナーに由来するｉＰＳＣ株に対する詳細な細胞遺伝学的分析を行った。ドナーあたり複数のクローン株を有することから、これには、独立したクローン線維芽細胞（２０５）またはＰＢＭＣ（１４３）のｉＰＳＣ株３４８個に由来する核型が含まれた。評価された線維芽細胞、リンパ芽球様細胞株、上皮及び血液由来のｉＰＳＣは全て、同様の非組込み型エピソーマルリプログラミング法を用いてリプログラミングした。ここで報告された線維芽細胞及びＰＢＭＣのリプログラミング間の主な違いは、使用したリプログラミング因子プラスミドの数である：３ｐ３１は線維芽細胞、及びＰＢＭＣについては４ｐまたは５ｐ。リプログラミングが成功した後、ここで分析し報告した全てのｉＰＳＣ株は、フィーダーフリーのＭａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）／ｍＴｅＳＲ１（商標）細胞培養法を使用して維持し、機械操作のＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ＥＺＰａｓｓａｇｅ（商標）ツールを使用して継代した。これらの系列の遺伝的安定性を確立するために、本発明者らは、最初に、複数の研究所または公的な貯蔵所から収集された線維芽細胞（２６０）、ＰＢＭＣ（２０６）、上皮細胞（２６）及びリンパ芽球系細胞株（６０）由来の５５２個のヒトｉＰＳＣ培養物について、Ｇバンド核型分析を行った。本発明者のデータは、ＰＢＭＣ ｉＰＳＣにおける染色体異常の発生が著しく低いことを示す。７７例の固有のドナーに由来するクローン的に独立したヒトｆｉｂ－ｉＰＳＣ株由来の２６０個の培養物のうち６１個（２３．５％）にクローン異常を伴う異常核型が観察された。典型的には、線維芽細胞は、リプログラミングの前に９～１０継代分増殖されていた。全く対照的に、９４例の固有のドナーに由来するクローンのヒトＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株の２０６個の培養物のうち４個（１．９％）だけが、任意の核型異常を示した。観察された４つの異常も低頻度であった。ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣと比較して、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおいて再発性の異常がより顕著な程度１で表われることは、染色体イデオグラムの模式図から明らかである。実際に、この顕著な細胞遺伝学的安定性が新規の５ｐ法でリプログラミングされたＰＢＭＣに特有であるのは、リンパ芽球様細胞系列（２５％、６０個のうち１５個の異常）及び初代上皮細胞（２７％、２６個のうち５個の異常）を含む他の細胞起源からリプログラミングされたｉＰＳＣが、線維芽細胞でみられる核型異常率と同様の高い核型異常率を有するためである。ｆｉｂ－ｉＰＳＣで最も頻度の高い核型異常は、１３番染色体（１４．９％）、１番染色体（１１．７％）、１２番染色体（９．６％）、及びＸ染色体（８．５％）で観察された。より少ない程度の核型変化は、２１番染色体、１１番染色体及び６番染色体においても観察された。興味深いことに、核型の異常は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣの２番染色体、５番染色体及び７番染色体では決して検出されなかった。異数体のうち、染色体増加（トリソミーまたは重複）は、１２番染色体（２０．０％）、１番染色体（１５．０％）、及び１３番染色体（１２．５％）で最も一般的に観察され、染色体減少はＸ染色体（３８．５％）及び２１番染色体（２３．１％）で繰り返し確認された。転座、逆位及び派生染色体を含む構造的再編成は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおいて１３番染色体（２２．０％）、１番染色体（１２．２％）及び１４番染色体（９．８％）で再発した。全く対照的に、分析した１７８個のｉＰＳＣ培養物に由来する２つのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株だけが１４番染色体（トリソミー）または１８番染色体（重複）で染色体増加を示した。他の２つのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株は、珍しい異常（１９％の細胞で転座４６、ＸＹ、ｔ（７；１４）（ｑ３４；ｑ１１．２）及びモザイク欠失４６、Ｘ、ｄｅｌ（Ｘ）（ｑ２２ｑ２６））を示した。

実施例２４
ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの強化された核型安定性は、ドナーの年齢及び継代数に依存しない
血液と異なり、皮膚は日焼けの可能性などの外環境要素に日常的に曝されており、生検由来の線維芽細胞はリプログラミングの前にある特定のレベルの増殖が必要である。このことは、培養においてさらなる老化と同様である。これを考慮して、本発明者らは、ドナーの年齢がｆｉｂ－ｉＰＳＣの細胞遺伝学的不安定性に影響を及ぼす寄与因子であり得ると仮定した。この可能性を評価するためにＧ２７バンド核型分析を用いた。ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおけるドナーの年齢の増加と細胞遺伝学的異常の頻度との間に明確な傾向及び相関はなかった。しかし、結果からＰＢＭＣ－ｉＰＳＣが全てのドナー年齢群においてｆｉｂ－ｉＰＳＣよりもはるかに高い核型安定性を有することを確認した。０～２０歳のドナー群以外は、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、２１～９０歳の間の全てのドナー群について、ｆｉｂ－ｉＰＳＣよりも有意に安定していた。培養中のｉＰＳＣの増殖が遺伝的安定性にどのように影響を及ぼし得るかを確立するために、本発明者らは次に、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣを経時的に分析した。線維芽細胞由来ｉＰＳＣの約２２．４％が、ｉＰＳＣ生成後の初回のＧバンド核型評価において異常核型（クローン異常を伴う１／２０超の細胞）を有することが観察されたが、これは典型的には継代数１～２３の間であった。全く対照的に、初回の評価においてＰＢＭＣ由来ｉＰＳＣの１．４％しか異常核型を有していなかった（ｐ＜０．０００１）。初回の核型において異常核型を有すると判定されたｉＰＳＣ株は、それ以上培養も評価もされなかった。したがって、２～４回目の繰り返しでの核型は、それらの初回の核型において最初に細胞遺伝学的に正常であると同定されたｉＰＳＣ株についてのみが評価された。初回の核型の割合と比較した場合、培養で異常核型を獲得するｆｉｂ－ｉＰＳＣ（２７．３％）の割合は、繰り返しの核型分析で高くなる傾向があり、そしてＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（ｐ＜０．００１）よりも有意に高かった。驚くべきことに、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの異常核型率は、初回及び繰り返しでの核型間でいずれも有意な差を示さなかった。ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける細胞遺伝学的不安定性の原因を解析すると、ｉＰＳＣ株の生存期間において、継代数１～２３の間に高い異常核型（初回または繰り返し）が生じたようである。この継代範囲は、典型的には、任意の所与の細胞株について、最大量のｉＰＳＣ増殖が起こる時であり、これらの継代数の辺りで同時に起こる性質決定及び細胞バンキングによるところが大きい。それにもかかわらず、これはｆｉｂ－ｉＰＳＣまたはＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの両方に対して同様のプロセスであり、さらに重要なことに、本発明者らの新しい方法によってリプログラムされたＰＢＭＣ由来細胞は、長期の培養または増殖時に異常核型対する増加傾向を示さない。Ｇバンド核型は極微小なゲノム異常（＜５Ｍｂ）を検出することができないため、限外顕微鏡未満の増幅及び欠損を獲得するＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、次にアレイ比較ゲノムハイブリダイゼーション（ａＣＧＨ）マイクロアレイを、ｆｉｂ－ｉＰＳＣ及びＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株のサブセットについて実施した。ａＣＧＨは均衡転座、逆位及び２０％未満の培養モザイクを検出することができないが、ｉＰＳＣ株１１、３０、３２、３３のより小さなサイズのゲノムの増加及び減少、コピー数多型（ＣＮＶ）、重複／欠失及び不均衡転座を検出するのに優れた補助的な方法である。本発明者らは、親線維芽細胞またはＰＢＭＣ源の生体試料と比較して、ｉＰＳＣにおいて獲得された新たな増幅または欠失を分析及び記録した。この分析では、それらが健康な個体で観察されたゲノム変異を含むＤａｔａｂａｓｅ ｏｆ Ｇｅｎｏｍｉｃ Ｖａｒｉａｎｔｓに対する相互参照において正常なＣＮＶではない場合、ｉＰＳＣで新たに獲得されたそれらの増幅及び欠失のみを考慮した。

異常及び正常なＧバンド核型を有するｉＰＳＣ株を含めて、ａＣＧＨによって検出された増幅及び欠失（増幅／欠失）の平均サイズは、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株における２．１Ｍｂと比較して、４４Ｍｂであるｆｉｂ－ｉＰＳＣ株において有意に大きく、その優勢は、異常核型を有するｆｉｂ－ｉＰＳＣ株によるものであった。正常な核型を有するｉＰＳＣ株間のサイズ分析比較を分離させた場合、新たな増幅／欠失はｆｉｂ－ｉＰＳＣ株では平均２．３１Ｍｂ、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株では２Ｍｂであった。このデータを裏付けるように、ｆｉｂ－ｉＰＳＣで獲得された全体での新たな増幅／欠失の平均数（３．７）は、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ（１．８）より有意に高かった（２倍）。正常なＧバンド核型を有すると決定されたｉＰＳＣ株でも、新たな増幅／欠失の数は、ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおける３．３に対してＰＢＭＣ－ｉＰＳＣで１．８であった。ａＣＧＨで検出された、最も一般的に獲得される極微小（０．８～１．５Ｍｂ）の新たな増幅または欠失は、染色体７ｑ３１．３２の増幅または染色体１０ｑ１５．２～ｑ２５．１、１６ｐ１１．２及び２１ｐ１１．２～ｐ１１．１の欠失であった。まとめると、このデータにより、ＰＢＭＣをリプログラムするこの新しい方法が、任意の他の公表された方法と比較して、染色体異常の獲得に関して、より安定したヒトｉＰＳＣをもたらすことが実証される。

実施例２５
５ｐ法の追加的な特徴づけ

（表９）より多くの数のＰＢＭＣがｉＰＳＣにリプログラミングされる

本発明者らは、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株のｐ５３（ＴＰ５３）が本発明者らの方法を用いてリプログラムされたかどうかを確認するために、さらなる分析を行った。これらの株は、規定されたＥ７培地中のＬ５２１基質上でリプログラムされた。

本発明者らは、複数のｉＰＳＣ株の広範な解析を行った。全ゲノム配列決定（準備中の別の原稿の対象）に基づいて、本発明者らは、ゲノムレベルでＴＰ５３遺伝子のエキソン（コード領域）においてｉＰＳＣ株にいずれのバリアント（ＳＮＰまたはＩｎｄｅｌ）も確認しなかった。

全ゲノム配列決定は、Ｉｌｌｕｍｉｎａ ＴｒｕＳｅｑ ＰＣＲフリーライブラリー調製キット（Ｉｌｌｕｍｉｎａ、Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ、ＣＡ）に従って７５０ｎｇのゲノムＤＮＡを使用して行った。ライブラリーの質はＢｉｏＡｎａｌｙｚｅｒ（Ａｇｉｌｅｎｔ Ｔｅｃｈｎｏｌｏｇｉｅｓ、Ｓａｎｔａ Ｃｌａｒａ、ＣＡ）を用いて確認し、そしてライブラリーはＦｕｌｇｅｎｔ Ｔｈｅｒａｐｅｕｔｉｃｓ（Ｔｅｍｐｌｅ Ｃｉｔｙ、ＣＡ）のＩｌｌｕｍｉｎａ Ｈｉ－Ｓｅｑ１０Ｘで、少なくとも４０ｘリード数まで配列決定した。試料あたり、平均４億６千万超のリードが生成された。Ｆａｓｔｑファイルは、４億超のリードでのＢｕｒｒｏｕｇｈｓ－Ｗｈｅｅｌｅｒ ＡｌｉｇｎｅｒのＢＷＡ－ｍｅｍアルゴリズムを使用してｈｇ３８を構築する際に参照ゲノムに対して整列させ、ゲノム全体で平均４３ｘのリード数を生成する各試料に対して良好に整列させた。

このパイプラインを用いて、本発明者らはＴＰ５３のコード領域（エキソン）においてｉＰＳＣ株またはそのクローンのみに生じるいずれのバリアント（ＳＮＰまたはＩｎｄｅｌ）も確認しなかった。分析された複数のｉＰＳＣ株及びそれらのクローン誘導体のうち、１つのドナーｉＰＳＣ株ｒｓ１２９４０２４７（ｈｇ３８ ｃｈｒ１７：７，６６４，３８５ Ｇ／Ａ）のみに由来する３つのｉＰＳＣクローンのうちの２つにおいて、単一のイントロンの新たなＳＮＰが検出され、それはＴＰ５３の単一の（そして稀な）アイソフォームのイントロン１にある。この共通のＳＮＰは、白人の試料の参照集団（ドナー系列のｉＰＳＣ株は白人ドナーに由来するものであった）において、０．４０３のマイナーアレル（Ｇ）頻度で、アッセイされた全集団の少なくとも３６％で見られる。この共通のバリアントは、いかなる機能にも関与していないか、またはがんのバリアントの潜在的影響を割り当てるために使用される典型的な臨床アノテーションデータベースにアノテートされている（ＣｉＶＩＣ、ＣｌｉｎＶａｒ、ＣＯＳＭＩＣ Ｃａｎｃｅｒ Ｃｏｎｓｅｎｓｕｓ）。このバリアントがＧｅｎｅ Ｔｉｓｓｕｅ Ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ（ＧＴＥｘ）データセットの健常組織において、ＴＰ５３発現レベルの調節因子として作用するという証拠もない。バリアントｒｓ１２９４０２４７は、Ｔｉｅｒ１細胞株（ＰＢＭＣ由来のリンパ芽球細胞株のＧＭ１２８７８を含む）の任意の調節機能と交差しない。本発明者らは、これらの試料を特徴づけするためにＩｌｌｕｍｉｎａ Ｏｍｎｉ２．５Ｍジェノタイピングアレイも使用した。全ゲノム配列決定の結果と一致して、生殖系列（血液）試料の遺伝子型と一致しなかった、ｉＰＳＣクローンで検出されたバリアントはなく、この遺伝子座にまたがって同定されたコピー数多型は存在しなかった。

（表１０）非コード共通バリアントｒｓ１２９４０２４７は、ドナーＣＳ－００２由来の２つのクローンにおいて新たな事象として観察される。

ＴＰ５３の１つのアイソフォームのイントロン６におけるＳＮＰの位置は、灰色の線で示される。ＴＰ５３のアイソフォームは、ＧＥＮＣＯＤＥ ｖ２４ Ｃｏｍｐｒｅｈｅｎｓｉｖｅの黒色（Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｄａｔａ Ｂａｎｋに対応する機能）または濃青色（ＲｅｆＳｅｑまたはＳｗｉｓｓＰｒｏｔのいずれかで調査または検証された転写物）で示される。遺伝子アノテーションの下には、転写、活性プロモーター（いずれもプロットされたゲノム区間で観察されない）及び活性エンハンサー（トラック３及び４、再び、いずれもプロットされたゲノム区間で観察されない）を示す４つのトラックがある。ＨＵＶＥＣ細胞のＴＰ５３の遺伝子領域（ｇｅｎｅ ｂｏｄｙ）内には、いくつかの安定した調節エレメントが観察される（青色のピークとして表され、Ｈ３Ｋ４ｍｅ１のＣｈＩＰ－Ｓｅｑによるシグナルの濃縮を示す）。ＴＰ５３の任意の調節機能を有するドナーｉＰＳＣ由来の２つのクローンにおいて新たに生じる、観察された非翻訳領域バリアントに対する証拠はない。

簡単な方法論：生殖細胞系列のバリアント検出のためのＢｅｓｔ Ｐｒａｃｔｉｃｅｓを使用して、Ｇｅｎｏｍｅ Ａｎａｌｙｓｉｓ Ｔｏｏｌｋｉｔ（ＧＡＴＫ）を用いて生殖細胞系列のバリアント検出を行った。簡単に説明すると、整列させた配列はＰｉｃａｒｄで前処理され、重複したリード（ＤＮＡの単一断片に由来するものであり、これは、試料調製中、またはシーケンスプロセス中にクラスター増幅を使用する時に生成され得る）を、リードの５’末端の配列によって同定する。変異型を同定する前に、遺伝子型検出精度（ベース品質スコアに大きく依存するプロセス）を改善するために、Ｉｎ－ｄｅｌ周辺の局所ゲノム再編成後に、ベース品質スコアを再較正する。次いで、検出された一塩基多型（ＳＮＰ）及びＩｎ－ｄｅｌを使用して、連携の遺伝子型決定モジュール（ｊｏｉｎｔ ｇｅｎｏｔｙｐｉｎｇ ｍｏｄｕｌｅ）でバリアント検出を再較正することにより、信頼性の高いバリアント検出がもたらされる。

結論として、ＳＮＰ及びＷＧＳレベルでの複数のｉＰＳＣ株及びクローンの非常に詳細かつ広範な分析に基づいて、本発明者らは、その正常な調節を無効にするであろうＴＰ５３遺伝子のいずれの翻訳領域の変異も検出していない。

（表１１）非コード共通バリアントｒｓ１２９４０２４７は、ドナーＣＳ－００２由来の２つのクローンにおいて新たな事象として観察される。

実施例２６
考察
本研究において、本発明者らは、非増殖かつ凍結保存のＰＢＭＣから新規の方法によって誘導されたヒトｉＰＳＣ（ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ）が、リプログラミングの前に細胞増殖を必要とする他の体細胞（皮膚線維芽細胞培養物、ＬＣＬ、上皮細胞、及び脂肪細胞を含む）から生成されたｉＰＳＣと比較して、著しく細胞遺伝学的に安定であることを示した。５ｐ法でリプログラムされたこれらのＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、他の研究室で得られたｈＥＳＣ及びｉＰＳＣなど他の多能性幹細胞株について過去に報告されているものと比較して、安定性の比率も高い。２００を超える固有のドナー、同一の幹細胞維持手順、多分化能特性決定及び核型分析による様々な細胞種のエピソーマルプラスミドリプラングを伴うこの全ての研究は、本発明者らの研究室及びＣｙｔｏｇｅｎｅｔｉｃｓ Ｃｏｒｅで実施された。本発明者らは、基質及び培地にかかわらず確実にリプログラムされるリンパ系Ｔ細胞及び骨髄系非Ｔ細胞集団の両方を用いて、本発明者の研究室で生成した２００を超える個々のクローン性ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株を体系的に分析した。さらに、本発明者らは、異種成分を含まない（ｘｅｎｏ－ｆｒｅｅ）組換えヒトＬ５２１基質及び規定されたリプログラング培地での安定なＰＢＭＣ－ｉＰＳＣの作製を実証した。最も重要なことに、５ｐ法でリプログラムされたＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、長期間培養時に核型安定性を維持する。まとめると、この改良された技術とＰＢＭＣなどの非増殖細胞源の組み合わせにより、臨床的に適合性のあるリプログラミング方法及び多数の患者試料に対する容易な入手の両方がもたらされる。

本発明者らの研究室において、エピソーマルリプログラミングによって生成されたｆｉｂ－ｉＰＳＣの１番染色体、１２番染色体、１３番染色体、及びＸ染色体の異数性及び再編成が最も頻繁の高い異常であった。対照的に、これらの異常は本発明者らが生成及び分析したＰＢＭＣ－ｉＰＳＣのいずれにも、決して検出されなかった。ｆｉｂ－ｉＰＳＣで観察されたこれらの変化のいくつかは、１２番染色体の短腕ならびに１番染色体、１７番染色体及びＸ染色体の増加または減少が存在する、ヒトＥＳＣに見られる再発性の異常と類似しており、これはその悪性ヒト胚性癌腫（ＥＣ）幹細胞対応物と同様である。ａＣＧＨマイクロアレイを用いて、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣは、ｆｉｂ－ｉＰＳＣと比較して、半分の新たなＣＮＶを示した。これらの新たなＣＮＶは、ｈｉＰＳＣとそれらのそれぞれの親線維芽細胞またはＰＢＭＣとの間で共有されず、リプログラミングまたはｉＰＳＣ増殖の間に獲得された可能性が高い。ｆｉｂ－ｉＰＳＣにおけるＣＮＶの染色体変化の平均塩基対サイズも、ＰＢＭＣ－ｉＰＳＣ株と比較した場合にはるかに大きく、このことは、この新規リプログラミング法の安定性をさらに支持する。

ｉＰＳＣにおいて過去に報告されている増加した核型異常、コード変異、及び小さなゲノム改変は、おそらくリプログラミング手順自体による変異原性作用の結果を反映している。しかし、これらの報告されたゲノム異常の大部分は、組込み型レトロウイルス及びレンチウイルスのリプログラミング方法を用いて皮膚線維芽細胞から生成されたｉＰＳＣ株で試験されている。低継代のｉＰＳＣに対する異なる非組込み型及びレンチウイルスリプログラミング方法を比較する異数性率及びＣＮＶが記載されている。そこではエピソーマルリプログラミング法及び組込み型リプログラミング法を使用する低継代のｉＰＳＣにおいて、約１２～１３％の異数性率が報告されているが、このデータは主に増殖した線維芽細胞培養に由来するｉＰＳＣの異常率を含み、ドナー細胞の起源によって分けられていないか、またはＰＢＭＣのような非増殖細胞から得られたものではない。酸素分圧、増殖補助剤、増殖因子、継代技術、凍結保存、細胞増殖のための細胞外基質を含む、様々な因子がＰＳＣの長期培養や増殖の間の遺伝的安定性に影響を与え得る３６。これらの前述の要因を考慮すると、多くの場合、ＰＳＣ培養技術には実質的に実験室差があるが、これらの要因は全て、本発明者の研究において厳密に制御されていた。Ｐｒｏｇｅｎｉｔｏｒ Ｃｅｌｌ Ｂｉｏｌｏｇｙ Ｃｏｎｓｏｒｔｉｕｍ（ｗｗｗ．ｓｙｎａｐｓｅ．ｏｒｇ）は、主要な発生調節因子と発癌調節因子の間の遺伝子発現とＣＮＶの相関を、ドナー系列の安定性、リプログラミング技術、及び起源の細胞の結果で確認した。しかし、核型異常及び株の安定性は、本研究において起源細胞及びそれらの以前の細胞増殖歴で区別せず、少数の異常な１種のｆｉｂ－ｉＰＳＣのみを分析した。

ｉＰＳＣのメチル化及び転写プロファイルは、起源の血液及び線維芽細胞に基づいていくらか分けられたが、これらは体細胞のエピジェネティックな記憶プロファイルに直接起因するものではなかった。このグループでもまた、組込み型プログラミング法を用いて生成された系列のＣＮＶが、より高いレベルとなる傾向が観察された。近年、別のグループが、血液細胞及び誘導ｉＰＳＣはそのメチル化プロファイル（より高メチル化状態）において、より異常なＤＮＡメチル化を有する他の任意の親組織またはそれらのｉＰＳＣと比較して、真正ｈｉＰＳＣ及びＥＳＣにはるかに近いことを明らかにし、このことは、成体ＰＢＭＣまたは臍帯血のような過去に組織培養で増殖されていない細胞集団が、リプログラミング及びｉＰＳＣ段階での細胞遺伝学的安定性の維持のための好ましい選択であり得るという、本発明者らの仮説を支持する。

皮膚線維芽細胞、ＬＣＬ、上皮細胞及び脂肪幹細胞などの増殖した体細胞種から生成されたｉＰＳＣと比較して、非増殖ＰＢＭＣに由来するｉＰＳＣの遺伝的安定性の根底にある機構は多要因である可能性が高い。第一に、骨髄ニッチは、ほぼ体の任意の他の細胞種（ＢＮＩＤ１０１９４０）よりも頻繁に（ＰＢＭＣ株の大部分の細胞では１～５日）、血液の代謝回転を可能にする。したがって、宿主の血液は、数か月から数年にしか再生しない内在の真皮線維芽細胞、上皮細胞または脂肪細胞よりもはるかに「老化」していないと考えられ得る。特に、ドナー由来の皮膚線維芽細胞、ＬＣＬ、上皮細胞及び脂肪細胞のリプログラミングには、組織培養において長期間のエクスビボでの体細胞増殖が必要となる。これらの要素は、組織培養に関連する細胞ストレス及び老化の増加を伴う細胞の開始時のプールにつながり、したがってＤＮＡ修復能の低下が起こりやすい。そのため、過去に増殖させた体細胞の培養物は、全体的に異種性及び固有の遺伝子型の不安定性を伴って始まる可能性があり、そして低レベルのモザイクは、リプログラミングの前にバルク異種細胞培養において従来のＧバンド核型で検出されないままであり得る。続いて、低レベルの核型異常が有意なクローン増殖及び増殖の際に拡大するようになるｆｉｂ－ｉＰＳＣ、ＬＣＬ－ｉＰＳＣまたは上皮－ｉＰＳＣ株が単離されうる。本発明者らの方法では、単離されたＰＢＭＣは過去に細胞増殖の期間がなく、単離後すぐにリプログラミングが開始されたので、このリスクが回避される。結論として、ＰＢＭＣの５ｐリプログラミングプロトコルは追加のエピソーマルプラスミドを含み、リプログラミング因子の１つであるＳＶ４０ＬＴがＰＢＭＣの細胞死を最小限に抑えて表面接着を促進することにより、細胞にとってストレスのかかるリプログラミング期の間のＰＢＭＣの安定性も高められ得る。リプログラミング因子混合物の成分としてのＳＶ４０ＬＴの使用は、エピソーマルプラスミドリプログラミングによって誘導されたｉＰＳＣ株のゲノムに導入遺伝子が組み込まれないので形質転換ではないことも過去に示されており、これも発明者らのデータによって支持されている。予め増殖させた線維芽細胞などの体細胞種は、５ｐプロトコルでリプログラムした場合にさらに優れた遺伝的安定性が得られ得るが、本発明者らは、予め増殖させた細胞と増殖させていないＰＭＢＣとの間のリプログラミングにおけるこの１つの違いでは核型安定性の大きな差が完全に説明されないと思っている。重要なことに、追加の要素は別として、全ての予め増殖した細胞種及び増殖していない血液に由来するｉＰＳＣは、同一の非組込み型エピソーマルリプログラミング法を用いてリプログラムされ、そして同一のフィーダーフリーＭａｔｒｉｇｅｌ（登録商標）／ｍＴｅＳＲ１（商標）細胞培地と手作業でのＳｔｅｍＰｒｏ（登録商標）ＥＺＰａｓｓａｇｅ（商標）ツールを用いて維持された。それにもかかわらず、本発明者らの新規５ｐプロトコルが、増殖していないＰＢＭＣ以外の追加の細胞種のリプログラミングを促進した場合、それは当分野に対して大きな進歩となり得、そして進行中の研究では、最適化プロトコルを用いる線維芽細胞リプログラミングを評価している。理化学研究所が主催した加齢黄斑変性の患者の初回の自己ヒトｉＰＳＣ臨床試験は、患者のｉＰＳＣ株において、患者の本来の線維芽細胞で検出されなかった一塩基変異（ＳＮＶ）及びＣＮＶが検出されたため、中止となった。ＣＮＶは全て単一遺伝子欠失であったが、ＳＮＶの１つは、がん関連の体細胞変異データベースで過去に同定されていた６、１６。これは、ヒトｉＰＳＣの臨床応用の成功には、安定した核型が最も重要であることを強調している。さらに、予測毒性学のためのｉＰＳＣ及び誘導体のスケールアップならびに治療薬発見のためのハイスループット薬剤スクリーニングには、実質的な細胞安定性を有するｉＰＳＣの供給源を必要となる。非増殖ＰＢＭＣにおけるこの最適なリプログラミング方法は、獲得したゲノム異常の影響を最小にする。これらの結果は、リプログラミングの最適化技術ならびにリプログラミング前の前培養の品質及び期間が、長期のｉＰＳＣ株の安定に重要であることを示す。このデータは、臨床用途及び創薬研究用途のためのｉＰＳＣ由来細胞製品の安全性の改善を手助けするとともに、ｉＰＳＣ疾患モデリング研究における再現性を向上させるのに役立つであろう。

上記の様々な方法及び技術は、本発明を実施するための多くの手段を提供する。当然のことながら、記載された全ての目的または利点が必ずしも本明細書に記載の特定の任意の実施形態に従って達成され得るとは限らないことを理解されたい。したがって、例えば当業者は、本明細書で教示または示唆されるような他の目的または利点を必ずしも達成することなく、本明細書に教示されているような１つの利点または利点の群を達成または最適化する様式で実施できることを認識するであろう。様々な有利かつ不利な代替物が本明細書で言及される。いくつかの好ましい実施形態には、具体的に１つの、別の、またはいくつかの有利な特徴が含まれる一方で、他には１つの、別の、またはいくつかの不利な特徴が特に排除されると同時にさらに他には１つの、別の、またはいくつかの有利な特徴を包含することによって現在の不利な特徴が特に軽減されることが理解される。

さらに、当業者は様々な実施形態から種々の特徴の適用性を理解するであろう。同様に、上述の様々な要素、特徴及びステップ、ならびにそのようなそれぞれの要素、特徴またはステップの他の既知の等価物は、本明細書に記載の原理に従う方法を実施するために、当業者によって組み合わされ、適合され得る。様々な要素、特徴、及びステップの中には、多様な実施形態にとりわけ含まれるものもあれば、とりわけ除外されるものがあり得る。

本発明は、ある特定の実施形態及び実施例の文脈において開示されるが、本発明の実施形態は、具体的に開示された実施形態の範囲を超えて他の代替実施形態に及ぶこと、及び／またはその使用及び修正及び同等物に及ぶことは、当業者に理解されるであろう。

本発明の実施形態では、多くの変形要素及び代替要素が開示されている。さらなる変形要素及び代替要素は、当業者に明らかであろう。これらの変形要素の中には、限定されないが、血液細胞の供給源、血液の細胞成分、それらの中に由来する多能性幹細胞、血液細胞由来の誘導多能性幹細胞に関連する技術及び組成物、細胞を分化させる技術及び組成物、そのような細胞に関連するバイオマーカー、そして本発明の教示によって作製された生成物の特定の使用がある。本発明の様々な実施形態は、これらの変形または要素のいずれかを具体的に含むかまたは除外することができる。

いくつかの実施形態において、本発明のある特定の実施形態を記載及び特許請求するために使用される、成分の量、濃度、反応条件などの特性を表す数字は、場合によっては「約」という用語によって修飾されると理解されるべきである。したがって、いくつかの実施形態では、記載された説明及び添付の特許請求の範囲に記載された数値パラメータは、特定の実施形態によって得られることが求められる所望の特性に応じて変化し得る近似値である。いくつかの実施形態において、数値パラメータは、報告された有効数字の数を踏まえて、かつ通常の丸め法の適用により解釈されるべきである。本発明のいくつかの実施形態の広い範囲を示す数値範囲及びパラメータが近似値であるにもかかわらず、特定の実施例に示された数値は、実施可能な限り正確に報告される。本発明のいくつかの実施形態において、提示される数値は、それぞれの試験測定値に見られる標準偏差から必然的に生じる、ある特定の誤差を含み得る。

いくつかの実施形態において、（特に以下の特許請求の範囲の文脈において）本発明の特定の実施形態を説明する文脈で使用される用語「ａ」及び「ａｎ」及び「ｔｈｅ」ならびに類似の言及は、単数形と複数形の両方をカバーすると解釈することができる。本明細書における値の範囲の詳述は、範囲内に入る個々の各値に対して個々に言及する略記法として機能することを意図するに過ぎない。本明細書中で他に示されない限り、個々の各値は、本明細書中に個別に詳述されているかのように明細書に組み込まれる。本明細書中に記載される全ての方法は、本明細書中で別様に指示されない限り、または文脈によって明らかに矛盾しない限り、任意の適切な順序で実施され得る。本明細書のある特定の実施形態に関して提供される任意の及び全ての例、または例示的な言葉（例えば、「など」）の使用は、単に本発明をよりよく説明するためのものであり、別様に特許請求される本発明の範囲を限定するものではない。本明細書中のいかなる言葉も、本発明の実施に不可欠な任意の請求されていない要素を示すものとして解釈されるべきではない。

本明細書で開示される本発明の代替要素または実施形態のグループ分けは、限定として解釈されるべきではない。各群のメンバーは、個別に、または本明細書に見いだされる群または他の要素の他のメンバーと任意の組み合わせで参照及び特許請求され得る。群の１つ以上のメンバーは、利便性及び／または特許性の理由から、群の中に含めたり、群から削除したりすることが可能である。そのような包含または欠失が生じる場合、本明細書は、改変された群を含むとみなされ、したがって、添付の特許請求の範囲で使用される全てのマーカッシュ群の記述を満たすものとみなされる。

本発明を実施するために本発明者らに公知の最良の方法を含む、本発明の好ましい実施形態が本明細書に記載される。これらの好ましい実施形態の変形は、前述の説明を読むことによって当業者に明らかとなるであろう。当業者は、そのような変形を必要に応じて用いることができ、本発明は、本明細書に具体的に記載されている以外の別の方法で実施することができると考えられる。したがって、本発明の多くの実施形態は、適用可能な法律によって許容されるように、添付の特許請求の範囲に記載された主題の全ての改変及び等価物を含む。さらに、本明細書中で別様に指示されない限り、あるいは文脈によって明らかに否定されない限り、それらの全ての可能な変形における上記の要素の任意の組み合わせが本発明に包含される。

さらに、多数の参照が本明細書の至るところの特許及び刊行物についてなされる。上記の引用参考文献及び刊行物のそれぞれは、参照によりその全体が本明細書に個々に組み込まれる。

最後に、本明細書で開示される本発明の実施形態は、本発明の原理を例示するものであることを理解されたい。使用することができる他の改変も本発明の範囲内であり得る。したがって、限定ではなく例として、本発明の代替形態を本明細書の教示に従って利用することができる。よって、本発明の実施形態は詳細に図示及び説明されるようなものに限定されない。

Claims (19)

1. ある量のＥＢＮＡ１ならびにＯｃｔ－４、Ｓｏｘ－２、Ｋｌｆ－４、ｌ－Ｍｙｃ、Ｌｉｎ－２８、ＳＶ４０ラージＴ抗原（「ＳＶ４０ＬＴ」）、及びｐ５３を標的とするショートヘアピンＲＮＡ（「ｓｈＲＮＡ－ｐ５３」）を含むリプログラミング因子をある量の末梢血単核細胞（ＰＢＭＣ）に送達すること、及び
   前記ＰＢＭＣをリプログラミング培地中で少なくとも４日間培養すること
   を含む、ＰＢＭＣ由来の人工多能性幹細胞を生成する方法であって、
   前記ＥＢＮＡ１およびリプログラミング因子を送達すること及びリプログラミング培地で培養することにより、ＰＢＭＣ由来の人工多能性幹細胞が生成され、
   前記リプログラミング因子が、
   Ｏｃｔ４、Ｓｏｘ２、ＳＶ４０ＬＴおよびＫｌｆ４をコードする第１のベクター、
   Ｏｃｔ４およびｓｈＲＮＡ－ｐ５３をコードする第2のベクター、
   Ｓｏｘ２およびＫｌｆ４をコードする第3のベクター、および
   ｌ－ＭｙｃおよびＬｉｎ－２８をコードする第4のベクター
   を含む4つのｏｒｉＰ／ＥＢＮＡ１由来ベクターにコードされ、かつ、
   第5のベクターがＥＢＮＡ１をコードする、
   前記方法。
2. ある量のリプログラミング因子を送達することが、ヌクレオフェクションを含む、請求項１に記載の方法。
3. 前記5つのベクターが、ｐＥＰ４ Ｅ０２Ｓ ＥＴ２Ｋ、ｐＣＸＬＥ－ｈＯＣＴ３／４－ｓｈｐ５３－Ｆ、ｐＣＸＬＥ－ｈＳＫ、ｐＣＸＬＥ－ｈＵＬ、及びｐＣＸＷＢ－ＥＢＮＡ１である、請求項１に記載の方法。
4. リプログラミング因子を前記ＰＢＭＣに送達した後で、処理した細胞培養表面上に前記ＰＢＭＣを播種すること、及び、リプログラミング培地中、前記処理した細胞培養表面上で前記ＰＢＭＣを培養することを含む、請求項１に記載の方法。
5. 前記処理した細胞培養表面が、マウス胚性フィーダー細胞（ＭＥＦ）の播種を含む、請求項４に記載の方法。
6. 前記処理した細胞培養表面が、細胞外基質タンパク質を含む、請求項４に記載の方法。
7. 前記細胞外基質タンパク質がラミニンを含む、請求項６に記載の方法。
8. ラミニンがＬ－５２１を含む、請求項７に記載の方法。
9. 前記リプログラミング培地が胚性幹細胞（ＥＳＣ）培地を含む、請求項１に記載の方法。
10. 前記ＥＳＣ培地が塩基性線維芽細胞増殖因子（ｂＦＧＦ）を含む、請求項９に記載の方法。
11. 前記リプログラミング培地がＬ－アスコルビン酸、トランスフェリン、重炭酸ナトリウム、インスリン、亜セレン酸ナトリウム及びｂＦＧＦを含む、請求項１に記載の方法。
12. リプログラミング培地中で前記ＰＢＭＣを培養することが、少なくとも４、５、６、７、８、９、１０、１１、１２、１３、１４、１５、または１６日間である、請求項１に記載の方法。
13. リプログラミング培地中で前記ＰＢＭＣを培養することが、少なくとも１７、１８、１９、２０、２１、２２、２３、２４、２５、２６、２７、２８、２９、３０または３１日間である、請求項１に記載の方法。
14. 前記ＰＢＭＣが、疾患変異を有する対象から単離される、請求項１に記載の方法。
15. 前記疾患変異が、神経変性疾患、障害、及び／または状態と関連する、請求項１４に記載の方法。
16. 前記疾患変異が、炎症性腸疾患、障害、及び／または状態と関連する、請求項１４に記載の方法。
17. 前記ＰＢＭＣが、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞である、請求項１に記載の方法。
18. 前記ＰＢＭＣがヒト対象から得られた試料である、請求項１に記載の方法。
19. 前記試料が、非Ｔ細胞、非Ｂ細胞である単核細胞の単離成分である、請求項１８に記載の方法。

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