JP6666837B2 - メトキシフラボンを含むNOX阻害剤及びNFκB阻害剤 - Google Patents
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Description
[1]以下の式(I)
(式中、R1、R4、及びR5は、各々独立して水素又はメトキシ基であり、R2及びR3は、メトキシ基である)で表される構造を有する少なくとも1種のメトキシフラボンを含む、NOX阻害剤。
[2]前記少なくとも1種のメトキシフラボンが、5,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、3,5,7,3’,4’−ペンタメトキシフラボン、5,7−ジメトキシフラボン、及び5,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群Aから選択される、[1]に記載のNOX阻害剤。
[3]群Aのメトキシフラボンと、3,5,7−トリメトキシフラボン、3,5,7,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7−メトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7,4’−ジメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7−ジメトキシフラボン、及び5−ヒドロキシ−3,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群Bのメトキシフラボンとの総含有量に対する、群Aのメトキシフラボンの総含有量の割合(A/(A+B))が、モル基準で0.65を超える、[2]に記載のNOX阻害剤。
[4]前記[1]又は[2]に記載された少なくとも1種のメトキシフラボンを含む、NOXに起因する疾患の予防又は治療剤。
[5]前記疾患が、アレルギー疾患、パーキンソン病、脳梗塞、白内障、てんかん、脊髄損傷、動脈硬化、未熟児網膜症、腎障害、消化性潰瘍、膵炎、潰瘍性大腸炎、心筋梗塞、成人呼吸窮迫症候群、肺気腫、慢性関節リウマチなどの膠原病、血管炎、浮腫、糖尿病合併症、紫外線障害、高山病、ポルフィリン血症、熱傷、凍傷、接触性皮膚炎、ショック、多臓器不全、DIC、癌、老化、疲労、サルコぺニア(筋力低下)、ミトコンドリア機能障害、認知症、及びアルツハイマー病からなる群から選択される、[4]に記載の予防又は治療剤。
[6]前記[2]に記載の群Aのメトキシフラボンと、[3]に記載の群Bのメトキシフラボンとの総含有量に対する、群Aのメトキシフラボンの総含有量の割合(A/(A+B))が、モル基準で0.65を超える、[4]又は[5]に記載の予防又は治療剤。
[7]以下の式(I)
[8]前記少なくとも1種のメトキシフラボンが、5,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、5,7−ジメトキシフラボン、及び5,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群A’から選択される、[7]に記載のNFκB阻害剤。
[9]群A’のメトキシフラボンと、3,5,7,3’,4’−ペンタメトキシフラボン、3,5,7−トリメトキシフラボン、3,5,7,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7−メトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7,4’−ジメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7−ジメトキシフラボン、及び5−ヒドロキシ−3,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群B’のメトキシフラボンとの総含有量に対する、群A’のメトキシフラボンの総含有量の割合(A’/(A’+B’))が、モル基準で0.48を超える、[8]に記載のNFκB阻害剤。
[10]前記[7]又は[8]に記載された少なくとも1種のメトキシフラボンを含む、NFκBに起因する疾患の予防又は治療剤。
[11]前記疾患が、関節リウマチ、炎症性大腸炎、変形性関節症、骨溶解症、腱炎、坐骨神経痛、椎間板ヘルニア、狭窄症、脊髄症、腰痛、椎間関節痛、手根管症候群、足根管症候群、腰椎術後疼痛症候群、エイズ、動脈硬化、喘息、関節炎、糖尿病、炎症性大腸炎、肝炎、脳卒中、認知症、筋消耗、ウイルス感染、光老化を含めた皮膚老化、がん、及び老化からなる群から選択される、[10]に記載の予防又は治療剤。
[12]前記[8]に記載の群A’のメトキシフラボンと、[9]に記載の群B’のメトキシフラボンとの総含有量に対する、群A’のメトキシフラボンの総含有量の割合(A’/(A’+B’))が、モル基準で0.48を超える、[10]又は[11]に記載の予防又は治療剤。
[13]3’,4’−ジメトキシフラボンを含む、NOX阻害剤。
[14]3’,4’−ジメトキシフラボンを含む、NOXに起因する疾患の予防又は治療剤。
[15]前記疾患が、アレルギー疾患、パーキンソン病、脳梗塞、白内障、てんかん、脊髄損傷、動脈硬化、未熟児網膜症、腎障害、消化性潰瘍、膵炎、潰瘍性大腸炎、心筋梗塞、成人呼吸窮迫症候群、肺気腫、慢性関節リウマチなどの膠原病、血管炎、浮腫、糖尿病合併症、紫外線障害、高山病、ポルフィリン血症、熱傷、凍傷、接触性皮膚炎、ショック、多臓器不全、DIC、癌、老化、疲労、サルコぺニア(筋力低下)、ミトコンドリア機能障害、認知症、及びアルツハイマー病からなる群から選択される、[14]に記載の予防又は治療剤。
本発明においては、以下の式(I)
本発明者は、式(I)のメトキシフラボンが、NADPHオキシダーゼ(NOX)阻害剤として有効であることを見出した。従って、本発明は、一つの側面では、式(I)のメトキシフラボンを少なくとも一種含む、NOX阻害剤、又はNOXを阻害するための組成物である(本明細書では、「NOX阻害剤」と「NOXを阻害するための組成物」は、相互交換的に用い、特に断りがない限り、一方を用いる場合には、他方をも意味するものとする)。この発明は、別の態様では、式(I)のメトキシフラボンの少なくとも一種を対象に投与することを含むNOXを阻害するための方法でもある。或いは、式(I)のメトキシフラボンの代わりに、又はそれに追加して、3’,4’−ジメトキシフラボンを用いることもできる。
本発明者は、式(I)のメトキシフラボンが、NFκB阻害剤として有効であることを見出した。従って、本発明は、別の側面では、式(I)のメトキシフラボンを少なくとも一種含む、NFκB阻害剤、又はNFκBを阻害するための組成物である(本明細書では、「NFκB阻害剤」と「NFκBを阻害するための組成物」は、相互交換的に用い、特に断りがない限り、一方を用いる場合には、他方をも意味するものとする)。この発明は、別の態様では、式(I)のメトキシフラボンの少なくとも一種を対象に投与することを含むNFκBを阻害するための方法である。或いは、式(I)のメトキシフラボンの代わりに、又はそれに追加して、3’,4’−ジメトキシフラボンを用いることもできる。
本発明のNOX又はNFκB阻害剤、NOX又はNFκBに起因する疾患の予防又は治療剤、抗酸化剤は、その効果を損なわない限り、式(I)のメトキシフラボンの他に、任意の成分を配合してもよい。例えば、ビタミンE、ビタミンC等のビタミン類、ミネラル類、ホルモン、栄養成分、香料などの生理活性成分のほか、製剤化において配合される乳化剤、緊張化剤(等張化剤)、緩衝剤、溶解補助剤、防腐剤、安定化剤等を適宜配合することができる。
本発明のNOX又はNFκB阻害剤、NOX又はNFκBに起因する疾患の予防又は治療剤、抗酸化剤は、飲食品(機能性食品、健康補助食品、栄養機能食品、特別用途食品、特定保健用食品、栄養補助食品、食事療法用食品、健康食品、サプリメント等)、医薬品、又は香粧品として、又はその原料として使用することができる。飲食品及び医薬品は、ペットの餌として加工したペットフードや動物飼料等、並びに動物用医薬品でもよい。
明確化のために記載すると、本明細書において下限値と上限値によって表されている数値範囲、即ち「下限値〜上限値」は、それら下限値及び上限値を含む。例えば、「1〜2」により表される範囲は、1及び2を含む。
(メトキシフラボンの単離精製)
黒ショウガ150gに50%エタノール水溶液1500mlを加え、2時間加熱還流抽出を行った。冷後得られた抽出液をろ過し、減圧下にて濃縮し、凍結乾燥を行い、黒ショウガ抽出物25.7gを得た。得られた抽出物のうち9gをDia ion HP20(三菱化学株式会社製)を用いたカラムクロマトグラフィーに付し、4つの画分(30%エタノール溶出部、50%エタノール溶出部、70%エタノール溶出部、100%エタノール溶出部)へ分画した。このうち50%エタノール溶出部を高速液体クロマトグラフィーに付して、5,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン(64mg)、3,5,7,3’,4’−ペンタメトキシフラボン(464mg)、5,7−ジメトキシフラボン(145mg)、5,7,4’−トリメトキシフラボン(188mg)、3,5,7−トリメトキシフラボン(35mg)、3,5,7,4’−テトラメトキシフラボン(96mg)を単離した。続いて100%エタノール溶出部についても同様に液体クロマトグラフィーによる分離精製を行い5−ヒドロキシ−3,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン(15mg)、5−ヒドロキシ−7−メトキシフラボン(84mg)、5−ヒドロキシ−7,4’−ジメトキシフラボン(56mg)、5−ヒドロキシ−3,7−ジメトキシフラボン(100mg)、5−ヒドロキシ−3,7,4’−トリメトキシフラボン(110mg)を単離した。単離した化合物は、そのスペクトルデータを文献(大阪市立大学生活科学研究科 東鋭明氏博士論文「ショウガ科植物Kaempferia parvifloraに含まれる成分の構造とα−グルコシダーゼ阻害活性および抗変異原性」)に記載の各種スペクトルデータと比較の上、同定した。
(油脂抽出物の製造)
3g及び15gの黒ショウガに、それぞれオリーブオイル30mLを加え、120℃で30分間抽出を行った後、冷却してからろ過し、2つの淡黄色の黒ショウガ油脂抽出物を得た。以下の分析条件で、得られた2つの油脂抽出物中の実施例1に記載のメトキシフラボン11種の総含有量を定量したところ、その値は、6.2mg/mL(3gの黒ショウガより)、22.4mg/mL(15gの黒ショウガより)であった。尚、これらの抽出物は、いずれも、実施例1に記載のメトキシフラボン11種を全て含んでいた。
黒ショウガ油脂抽出物1.0mLにn−ヘキサン1.0mLを加え希釈した後、2.0mLの80%メタノール水溶液にて3回メトキシフラボンの抽出を行った。得られた80%メタノール抽出液をMega Bond Elute C18(アジレントテクノロジー社製)に通した後、Mega Bond Elute C18に吸着したメトキシフラボンを洗い出す目的で、80%メタノール2.0mLを通した。得られた液をあわせた後、最終的に10mLへメスアップし、HPLC用の分析試料とした。
カラム:Develosil C30 UG5(4.6x150mm、5μm、野村化学株式会社製)
検出:280nm(PDAは200〜600nm)
カラム温度:40℃
移動相A:0.05%トリフロロ酢酸水溶液
移動相B:90%アセトニトリル水溶液中のトリフロロ酢酸0.05%溶液
グラジェント:移動相B 50%−50%−70%−70%(0min−7.5min−20min−25min)
流速:1.0mL/min
試料注入量:10μL
(NOX阻害活性測定方法)
分化させたHL−60細胞の調製:
ヒト骨髄性白血病細胞HL−60細胞は未分化状態で増殖を繰り返すが、DMSO(dimethyl sulfoxide)やレチノイン酸などを添加することにより成熟顆粒球に分化し、増殖能を失うとともに、分化の指標ともなっているNOX(NADPH oxidase)が細胞内に発現することが知られており、そのNOXは、NOX阻害活性を評価するための酵素源として利用することができる。
DMSO処理により分化させたHL−60細胞を遠心処理により集め、PBS(リン酸緩衝生理食塩水)で一回洗浄した後に、細胞破砕用の緩衝液(131mM NaClおよび340mM sucroseを含有する8mM リン酸緩衝液 pH7.0)を用いて1×108cells/mlとなるように懸濁させた。氷冷させた後に、超音波破砕機(Bioruptor UCD−250HSA、Cosmo Bio製)を用い、4℃以下の条件において「最大出力での破砕20秒/インターバル冷却30秒」のプロセスを3回繰り返すことにより細胞破砕液を得た。破砕液を1000g、4分間の遠心処理することによってdebrisを除去して得られた上清に、9倍容の反応用の緩衝液(1mM EGTA,10μM FADおよび170mM sucroseを含有する65mMリン酸緩衝液 pH7.0)を加え、NOX測定用の細胞破砕上清液(1×107cells/ml相当)を調製した。
DMSO処理により分化させたHL−60細胞を遠心処理により集め、FBSおよびフェノールレッドを含まないD−MEM培地に5×106cells/mlとなるように懸濁させた。NOXの反応は、96wellのマイクロプレートにwellあたり25μlの上記細胞懸濁液を注ぎ、さらに上記のD−MEMを用いて調製した0.8mg/ml WST−1溶液、所定濃度に調製した被験サンプル溶解液(サンプルのDMSO溶液(試薬の場合は通常10mM)を調製し、ここからDMSOを用いて3倍希釈系列の溶液を調製し、これを上記のD−MEMに1v/v%以下になるように溶解させて、当該被験サンプル溶解液を調製した)をそれぞれ25μlずつ添加し攪拌させた後に、25μlの4μM PMA(Phorbol 12−Myristate 13−acetate、終濃度は1μM)D−MEM溶液を添加してNOXの活性化を行い、37℃、45分間の反応を行い、NOX酵素生成物であるスーパーオキシドと反応液中のWST−1が反応して生成する黄色フォルマザンを450nmの吸光度として測定した。なお、このNOX活性測定系では、PMAを添加しない限りNOXは活性化しないことが確認されている。
(メトキシフラボノイドのNOX阻害活性の比較)
実施例3に従い、細胞破砕液を用いたcell−free系によるNOX活性測定によりいくつかのメトキシフラボノイドのNOX阻害活性を比較した。結果を表1に示す。
(黒ショウガ由来化合物のNOX阻害活性)
実施例3に従い、細胞破砕液を用いたcell−free系によるNOX活性測定により黒ショウガから抽出・分画したメトキシフラボノイドのNOX阻害活性を比較した。黒ショウガから得られたフラボノイドはいずれもメトキシ基をもつという特徴を有する。このうち、A環の5位と7位にメトキシ基を有するフラボンに、強いNOX阻害活性が認められたが、5位にヒドロキシ基を有するフラボノイドにはNOX阻害活性が認められなかった。3位のメトキシ基は、致命的ではないが、活性を減弱させる傾向が見られた。従って、式(I)に表されるメトキシフラボンは、優れたNOX阻害活性を有すると考えられる。また、この系におけるVAS2870(NOX阻害剤)のIC50は6.3μMであった。
黒ショウガのロットによる油脂抽出物の組成の違いを確認するため2つの黒ショウガ200gを用意し、それぞれについてエタノール1000mLを加えて、1時間加熱還流抽出を行った。得られた液を冷却後、吸引ろ過して、残渣と抽出液に分けた。再度残渣にエタノール1000mLを加えて、1時間加熱還流抽出を行い、ろ過し、先に得られた抽出液とあわせた。続いて抽出液に中鎖脂肪酸トリグリセリド100mLを加え、減圧濃縮によりエタノールを留去したのち、析出した不溶物を吸引ろ過にて除去し、2つの黒ショウガ油脂抽出物を得た。実施例2に準じてそれらの抽出物中のメトキシフラボンの含有量を分析したところ、メトキシフラボン総量は、90.4mg/mL(以下、この抽出物を「抽出物A」と呼ぶ)、54.9mg/mL(以下、この抽出物を「抽出物B」と呼ぶ)であった。またこれら2つの抽出物中のメトキシフラボン総量を5mg/mlにオリーブオイルにて調節して2つの溶液を得て、その溶液の660nmにおける吸光度を測定したところ、それぞれ0.036(抽出物A)、0.030(抽出物B)であった(ブランクとしてメタノールを用いた)。尚、これらの抽出物は、いずれも、実施例1に記載の11種のメトキシフラボンを全て含んでいた。
(NOX阻害活性測定のためのサンプル調製:黒ショウガエタノール抽出物の製造)
黒ショウガ乾燥物200gに50%エタノール水溶液1000mLを加えて、1時間加熱還流抽出を行った。得られた液を冷却後、吸引ろ過して、残渣と抽出液に分けた。再度残渣に50%エタノール水溶液1000mLを加えて、1時間加熱還流抽出を行い、ろ過し、先に得られた抽出液とあわせた。室温まで冷後、減圧濃縮したのち、凍結乾燥を行い黒ショウガエタノール抽出物−1を49g(収率24.5%)得た。黒ショウガのロット間による差を確認する目的で、上述と同様の方法にて操作を行ったところ、黒ショウガエタノール抽出物−2を23g(収率15.2%)得た。続いて、本抽出物中の11種のメトキシフラボン総含有量は実施例2の方法に準じて測定したところ、それぞれ264mg/g、267mg/gであった。黒ショウガエタノール抽出物−1中のメトキシフラボン総量を5mg/mlにメタノールにて調節して溶液を得て、その溶液の660nmにおける吸光度を測定したところ、0.95(ブランクはメタノール)であった。尚、これらの抽出物は、いずれも、実施例1に記載の11種のメトキシフラボンを全て含んでいた。
(NOX阻害活性測定のためのサンプル調製:黒ショウガ油脂抽出物の製造)
黒ショウガ10g、20g、30g、40gに、10倍量のエタノールをそれぞれ加えて、1時間加熱還流抽出を行った。得られた液を冷却後、吸引ろ過し、その抽出液に中鎖脂肪酸トリグリセリド15mLを加え、減圧濃縮によりエタノールを留去したのち、不溶物を除く目的で再度吸引ろ過を行い、それぞれの黒ショウガ油脂抽出物を得た。得られた4つの黒ショウガ油脂抽出物について、実施例2に準じて11種のメトキシフラボンの総含有量を分析したところ、その値は、それぞれ23.9mg/mL、46.3mg/mL、69.4mg/mL、78.1mg/mLであった。また、総メトキシフラボン量を46.3mg/mL以上を含む油脂抽出物は、室温で放置するとメトキシフラボン類の析出が確認された。尚、これらの抽出物は、いずれも、実施例1に記載の11種のメトキシフラボンを全て含んでいた。
(NOX阻害活性を指標にした黒ショウガ抽出法の比較)
実施例3に従い、総メトキシフラボン量22.4mg/mlの黒ショウガ油脂抽出物−1(実施例2で得られたもの)、総メトキシフラボン量69.4mg/mlの黒ショウガ油脂抽出物−2(実施例8で得られたもの)、エタノール抽出物(実施例7で得られた黒ショウガエタノール抽出物−1および2)のNOX阻害活性(分化したHL−60生細胞を用いたNOX阻害活性測定)を測定した。黒ショウガのロット間の活性の強さの違いを見るために2種の黒ショウガについて検討した。また油脂抽出物は、そのままでは活性を測定できなかったため、脱脂処理を行った。具体的には油脂抽出物0.5mLに同量のn−ヘキサン0.5mLを加え希釈した後、0.5mLの80%メタノール水溶液にて3回メトキシフラボンの抽出を行った。得られた抽出液をSep−Pak PLUS C8 125Å Catrtriges(ウォーターズ社製)に吸着させ、さらに80%メタノール3.0mLを通して油分を除いた。その後、Sep−Pak PLUS C8 125Å Catrtrigesを溶媒で洗浄して得られた液を減圧濃縮、凍結乾燥し、評価試料を調製した。測定されたIC50値を以下の表3に示す。
(NFκB阻害作用)
マクロファージ様のRAW264.7細胞をLPS(リポ多糖)によって刺激すると、NFκBが活性化され、それによってiNOS(誘導型NO合成酵素)の発現が亢進し、培養液中にiNOS酵素活性に起因する亜硝酸が蓄積することが知られており、培養液中の亜硝酸量を測定することによりNFκB活性化を評価することが可能である。
(抽出方法と組成の関係)
実施例9の結果に鑑み、黒ショウガからの油脂抽出物と親水性溶媒抽出物の組成を比較した。具体的には、実施例2、6及び8に準じて、油脂抽出(油脂のみでの抽出、又はエタノール抽出とそれに続く油脂抽出)を行い、実施例7に準じてエタノール抽出を行った。油脂抽出においては、油脂として、オリーブオイル、又はオリーブオイルと中鎖脂肪酸グリセリド(本実施例では、中鎖脂肪酸トリグリセリドが用いられ、これを「MCT」とも示す)との混合物を用いた。得られた抽出物は、実施例2に記載の方法に基づいてHPLCで分析され、得られたHPLC面積値を以下に示す。以下の表では、便宜上、油脂を単に「Oil」とも示す。
Claims (2)
- 以下の式(I)
(式中、R1は水素であり、R4、及びR5は、各々独立して水素又はメトキシ基であり、R2及びR3は、メトキシ基である)で表される構造を有する少なくとも1種のメトキシフラボンを含む、NOX阻害剤であって、
群Aのメトキシフラボンと群Bのメトキシフラボンとの総含有量に対する、群Aのメトキシフラボンの総含有量の割合(A/(A+B))が、重量基準で0.65を超えるものであり、ここで群Aのメトキシフラボンが5,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、3,5,7,3’,4’−ペンタメトキシフラボン、5,7−ジメトキシフラボン、及び5,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群から選択され、群Bのメトキシフラボンが3,5,7−トリメトキシフラボン、3,5,7,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7,3’,4’−テトラメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7−メトキシフラボン、5−ヒドロキシ−7,4’−ジメトキシフラボン、5−ヒドロキシ−3,7−ジメトキシフラボン、及び5−ヒドロキシ−3,7,4’−トリメトキシフラボンからなる群から選択されるものである、前記NOX阻害剤。 - 3’,4’−ジメトキシフラボンを含む、NOX阻害剤。
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