JP5998265B2 - トレハロース及びデキストラン含有哺乳動物細胞移植用溶液 - Google Patents
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Description
本発明は、２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩（以下、「トレハロース類」ということがある）と、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩（以下、「デキストラン類」ということがある）とを含む細胞移植用生理的水溶液（以下、「本件細胞移植用溶液」ということがある）中で、哺乳動物細胞を保存する方法や、本件移植用溶液や、哺乳動物細胞と、トレハロース類及びデキストラン類とを含む移植用細胞含有生理的水溶液（以下、「本件移植用細胞含有液」ということがある）に関する。
近年、幹細胞研究の急速な発展によって再生医療への気運は高まっており、その知識や理解は、研究者のみならず、一般にも広く普及してきている。幹細胞を用いた再生医療は、幹細胞が有する自己複製能と多分化能や、幹細胞が分泌する因子を利用して、様々な疾患で損傷を受けた細胞や組織の機能を回復させることを目的とした医療である。白血病や再生不良性貧血などの血液難病の患者に骨髄移植すると、造血系幹細胞が患者体内に生着し、ほぼ一生にわたって造血能の維持が可能となる。また、最近では多くの研究者が造血幹細胞以外の幹細胞を用いた臨床応用を目指し、中枢神経、末梢神経、骨髄、小腸などにおける幹細胞を同定し、外傷性疾患や組織変性疾患に対する組織幹細胞の移植治療が実践され始めている（非特許文献１〜３）。他方、がん免疫細胞療法は、がんを攻撃する働きを有する免疫細胞を体外に取り出し、その働きを強化後、再び体内に戻すという最先端の細胞医療であり、樹状細胞ワクチン療法、アルファ・ベータＴ細胞療法（αβＴ細胞療法）、ガンマ・デルタＴ細胞療法（γδＴ細胞療法）、ＣＴＬ療法、ナチュラルキラー細胞療法（ＮＫ細胞療法）などのＴ細胞を用いた療法が実践されている。
移植治療に用いる幹細胞やＴ細胞を長期保存する場合、液体中での保存では細胞生存率を良好に保つことができない。例えば、ヒト骨髄幹細胞を生理食塩水中に冷蔵保存（４℃）すると、細胞生存率が４８時間後には４０％以下まで低下し、７２時間後には２０％以下まで低下することが報告されている（非特許文献４）。このため、移植用幹細胞や移植用Ｔ細胞を長期保存する場合、凍結保存することが一般的である。しかし、凍結保存液中には、通常ＤＭＳＯ、グリセロール等の凍結保存剤が添加されているため、凍結保存した幹細胞やＴ細胞を解凍した後、移植治療を行う前に移植凍結保存剤を除去する必要があり、手間がかかることが問題とされていた。また、凍結保存液に凍結保存剤を添加しても凍結時の水の結晶化による細胞骨格のダメージが大きく、凍結融解後の細胞生存率が低下することも問題とされていた。このため、簡便性に優れ、且つ細胞生存率の低下を抑制できる細胞保存液の開発が急務とされていた。
他方、トレハロース（trehalose）はグルコースが１，１−グリコシド結合してできた二糖の一種である。トレハロースは甘味を呈し、高い保水力をもつため、種々の食品や化粧品に用いられている。また、トレハロースは細胞膜を安定化し、細胞傷害を抑制する性質を有するため、臓器を移植する際の臓器保護液の有効成分として用いられている。例えば、ＥＴ−Ｋｙｏｔｏ液やＮｅｗ ＥＴ−Ｋｙｏｔｏ液等のトレハロースを含有する優れた臓器保存液が開発されている（特許文献１及び２、非特許文献５）。
デキストラン（dextran）は、グルコースからなる多糖類の１種であり、増粘剤、保湿剤等として、医薬品、化粧品の分野で汎用されている。
本発明者らは、タンパク質分解酵素処理により細胞培養容器から剥離した間葉系幹細胞を、トレハロースを含有する生理的水溶液で洗浄すると、間葉系幹細胞の細胞死が抑制されることを報告している（特許文献３）。タンパク質分解酵素処理により細胞がダメージを受けると、細胞死（アポトーシスなど）の経路が誘導されることから、かかるトレハロースによる効果は、アポトーシス経路が抑制されたり、あるいは細胞ダメージの修復機能が促進されたことによるものと考えられる。また、本発明者らは、間葉系幹細胞の懸濁液中にトレハロースやデキストラン等の糖類を添加すると、短時間（３０分〜６時間）保存したときの間葉系幹細胞の凝集や生存率低下を抑制できることを報告している（特許文献４）。しかしながら、トレハロースとデキストランを併用することにより、間葉系幹細胞等の哺乳動物細胞の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができるかどうかは不明であった。
Gage, F.H. Science 287: 1433-1438 (2000)
Morrison, S.J. et al., Cell 96: 737-749 (1999)
Batle, E. et al., Cell 111: 251-263 (2002)
Lane, T.A. et al., Transfusion 49: 1471-1481 (2009)
Chem, F. et al., Yonsei Med. J. 45: 1107-1114 (2004)
本発明の課題は、哺乳動物細胞を保存したときの細胞死を効果的に抑制できる細胞移植用溶液を用いて、哺乳動物細胞を長期にわたり保存する方法や、前記細胞移植用溶液を提供することにある。
本発明者らは、上述のとおり、トレハロースやデキストラン等の糖類を添加した溶液中に間葉系幹細胞を短時間（３０分〜６時間）保存すると、細胞生存率低下を抑制できることを報告している（特許文献４）。しかし、特許文献４記載の発明においては、トレハロースとデキストランとの併用による相乗効果は明らかにされていなかった。上記課題を解決すべく鋭意研究を重ねる中で、生理的水溶液に、トレハロース及びデキストランを特定の濃度（それぞれ２．０〜６．０［ｗ／ｖ］％及び４．０〜７．０［ｗ／ｖ］％）となるように添加した溶液中にヒト骨髄間葉系幹細胞（ｈＭＳＣ-ＢＭ）やヒト末梢血Ｔ細胞（ｈＰＢＴ）を保存すると、長期間（少なくとも１４日間）細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることを見いだし、本発明を完成するに至った。
すなわち、本発明は、（１）２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩と、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩とを含む細胞移植用生理的水溶液中で、哺乳動物細胞を保存する方法や、（２）生理的水溶液が、乳酸リンゲル液、生理食塩水、リンゲル液、及び酢酸リンゲル液からなる群から選択されることを特徴とする上記（１）記載の方法や、（３）細胞移植用生理的水溶液中で、哺乳動物細胞を３〜１４日保存することを特徴とする上記（１）又は（２）記載の方法や、（４）哺乳動物細胞が哺乳動物間葉系幹細胞又は哺乳動物Ｔ細胞であることを特徴とする上記（１）〜（３）のいずれか記載の方法や、（５）哺乳動物間葉系幹細胞がヒト骨髄間葉系幹細胞であり、哺乳動物Ｔ細胞がヒト末梢血Ｔ細胞であることを特徴とする上記（４）記載の方法に関する。
また本発明は、（６）２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩と、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩とを含む細胞移植用生理的水溶液や、（７）生理的水溶液が、乳酸リンゲル液、生理食塩水、リンゲル液、及び酢酸リンゲル液からなる群から選択されることを特徴とする上記（６）記載の細胞移植用生理的水溶液や、（８）哺乳動物細胞が哺乳動物間葉系幹細胞又は哺乳動物Ｔ細胞であることを特徴とする上記（６）又は（７）記載の細胞移植用生理的水溶液や、（９）哺乳動物間葉系幹細胞がヒト骨髄間葉系幹細胞であり、哺乳動物Ｔ細胞がヒト末梢血Ｔ細胞であることを特徴とする上記（８）記載の細胞移植用生理的水溶液に関する。
また本発明は、（１０）哺乳動物細胞と、２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩、及び４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩とを含む移植用細胞含有生理的水溶液や、（１１）生理的水溶液が、乳酸リンゲル液、生理食塩水、リンゲル液、及び酢酸リンゲル液からなる群から選択されることを特徴とする上記（１０）記載の移植用細胞含有生理的水溶液や、（１２）哺乳動物細胞が哺乳動物間葉系幹細胞又は哺乳動物Ｔ細胞であることを特徴とする上記（１０）又は（１１）記載の移植用細胞含有生理的水溶液や、（１３）哺乳動物間葉系幹細胞がヒト骨髄間葉系幹細胞であり、哺乳動物Ｔ細胞がヒト末梢血Ｔ細胞であることを特徴とする上記（１２）記載の移植用細胞含有生理的水溶液に関する。
本発明の実施の他の形態として、哺乳動物細胞を保存するための、生理的水溶液と、トレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩、及びデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩との組合せや、哺乳動物細胞の移植用溶液を調製するための、生理的水溶液と、トレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩、及びデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩との組合せの使用を挙げることができ、より詳しくは、上記トレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩、及びデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩は、細胞生存率低下抑制の有効成分である。
本発明によると、間葉系幹細胞等の幹細胞やＴ細胞等の白血球を含む細胞懸濁液を長期間（少なくとも１４日間）保存した場合の細胞生存率の低下を抑制することができるため、再生医療やがん治療における良質な移植用細胞懸濁液を、細胞懸濁液の製造地域やその周辺地域のみならず、遠隔地へ提供することもでき、また、医薬品を出荷する際の品質保証検査に無菌試験があり、日本薬局方によると無菌検査に１４日の期間を要するが、上記細胞懸濁液を製造し、かかる無菌検査を行った後でも、良質な細胞懸濁液を提供することができる。
本発明の哺乳動物細胞を保存する方法は、「細胞移植に用いるため」という用途が限定された、２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース類と、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン類とを含む生理的水溶液（本件細胞移植用溶液）中で、哺乳動物細胞を保存する方法であり、より詳しくは、本件細胞移植用溶液は、トレハロース類とデキストラン類を細胞生存率低下抑制の有効成分として含むものである。本件細胞移植用溶液中に保存する哺乳動物細胞の密度は、通常１０３〜１０１０個／ｍｌの範囲内である。
本件移植用細胞含有液においては、哺乳動物細胞が通常本件細胞移植用溶液中に含まれる。本件移植用細胞含有液は、本件細胞移植用溶液に哺乳動物細胞を添加することにより、或いは、哺乳動物細胞を含む生理的水溶液中に、２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％となるようにトレハロース類を添加し、かつ、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％となるようにデキストラン類を添加することにより調製することができる。
本発明の哺乳動物としては、マウス、ラット、ハムスター、モルモット等のげっ歯類、ウサギ等のウサギ目、ブタ、ウシ、ヤギ、ウマ、ヒツジ等の有蹄目、イヌ、ネコ等のネコ目、ヒト、サル、アカゲザル、カニクイザル、マーモセット、オランウータン、チンパンジーなどの霊長類等を例示することができ、中でも、マウス、ブタ、ヒトを好適に例示することができる。
本件細胞移植用溶液や本件移植用細胞含有液に適用される生理的水溶液としては、体液や細胞液の浸透圧とほぼ同じになるようにナトリウムやカリウムなどによって塩濃度や糖濃度等を調整した等張水溶液であれば特に制限されず、具体的には生理食塩水や、緩衝効果のある生理食塩水（リン酸緩衝生理食塩水［Phosphate buffered saline；ＰＢＳ］、トリス緩衝生理食塩水［Tris Buffered Saline；ＴＢＳ］、ＨＥＰＥＳ緩衝生理食塩水等）、リンゲル液、乳酸リンゲル液、酢酸リンゲル液、重炭酸リンゲル液、５％グルコース水溶液、動物細胞培養用基礎培地（ＤＭＥＭ、ＥＭＥＭ、ＲＰＭＩ−１６４０、α−ＭＥＭ、Ｆ−１２、Ｆ−１０、Ｍ−１９９等）、等張剤（ブドウ糖、Ｄ−ソルビトール、Ｄ−マンニトール、ラクトース、塩化ナトリウム等）などを挙げることができ、これらの中でも乳酸リンゲル液、生理食塩水、リンゲル液、及び酢酸リンゲル液からなる群から選択されるものが好ましく、特に乳酸リンゲル液又は生理食塩水を好適に例示することができる。生理的水溶液は、市販のものであっても、自ら調製したものであってもよい。市販のものとしては、大塚生食注（大塚製薬工場社製）（生理食塩液）、リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）（リンゲル液）、ラクテック（登録商標）注（大塚製薬工場社製）（乳酸リンゲル液）、ヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）（酢酸リンゲル液）、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）（５％グルコース水溶液）、ビカネイト輸液（大塚製薬工場社製）（重炭酸リンゲル液）を挙げることができる。本明細書において「等張」とは、浸透圧が２５０〜３８０ｍＯｓｍ／ｌの範囲内であることを意味する。
本件細胞移植用溶液や本件移植用細胞含有液には、安定剤（例えば、ヒト血清アルブミン、ポリエチレングリコール等）、緩衝剤（例えば、リン酸塩緩衝液、酢酸ナトリウム緩衝液）、キレート剤（例えば、ＥＤＴＡ、ＥＧＴＡ、クエン酸、サリチレート）、アミノ酸（例えば、グルタミン、アラニン、アスパラギン、セリン、アスパラギン酸、システイン、グルタミン酸、グリシン、プロリン、チロシン等の非必須アミノ酸）、ビタミン類（例えば、塩化コリン、パントテン酸、葉酸、ニコチンアミド、塩酸ピリドキサル、リボフラビン、塩酸チアミン、アスコルビン酸、ビオチン、イノシトール等）、溶解補助剤、保存剤、酸化防止剤等の添加物を必要に応じて適宜補充してもよい。
本件細胞移植用溶液中に哺乳動物細胞を保存するときの保存期間としては、細胞生存率低下を抑制し、生細胞の割合を高めることができる時間（期間）であればよく、例えば、１２時間以上、１日以上、２日以上、３日以上、７日以上であり、また、哺乳動物細胞の保存期間が長すぎると細胞の生存に悪影響を及ぼす可能性があるため、細胞の生存率への悪影響を回避する観点から、通常は２１日以下、より好ましくは１６日以下、さらに好ましくは１４日以下である。したがって、上記保存期間としては、通常、１２時間〜２１日、１〜２１日、２〜２１日、３〜２１日、又は７〜２１日であり、より好ましくは１２時間〜１６日、１〜１６日、２〜１６日、３〜１６日、又は７〜１６日であり、さらに好ましくは１２時間〜１４日、１〜１４日、２〜１４日、３〜１４日、又は７〜１４日であり、最も好ましくは３〜１４日である。本件細胞移植用溶液中に保存した哺乳動物細胞について、細胞死が抑制されたことは、トリパンブルー（Trypan Blue）染色法、ＴＵＮＥＬ法、Ｎｅｘｉｎ法、ＦＬＩＣＡ法などの細胞死を検出できる公知の方法を用いて確認することができる。
本件細胞移植用溶液中に哺乳動物細胞を保存するときの保存温度は、細胞移植用溶液が凍結せず、且つ細胞が生育可能である温度であればよく、通常０〜３７℃、好ましくは０〜２５℃（室温）の範囲内である。
上記トレハロース類におけるトレハロースとしては、２つのα-グルコースが１，１−グリコシド結合した二糖類であるα，α−トレハロースの他に、α-グルコースとβ−グルコースとが１，１−グリコシド結合した二糖類であるα，β−トレハロースや、２つのβ−グルコースが１，１−グリコシド結合した二糖類であるβ，β−トレハロースを挙げることができるが、これらの中でもα，α−トレハロースが好ましい。これらトレハロースは、化学合成、微生物による生産、酵素による生産等のいずれの公知の方法によっても製造することができるが、市販品を用いることもできる。例えば、α，α−トレハロース（株式会社林原社製）、α，α−トレハロース（和光純薬社製）などの市販品を挙げることができる。
上記トレハロース類におけるトレハロース誘導体としては、二糖類のトレハロースに１又は複数の糖単位が結合したグリコシルトレハロース類であれば特に制限されず、グリコシルトレハロース類には、グルコシルトレハロース、マルトシルトレハロース、マルトトリオシルトレハロースなどが含まれる。
上記トレハロース類におけるトレハロースやその誘導体の塩としては、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、リン酸塩、硝酸塩、硫酸塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、トルエンスルホン酸塩、コハク酸塩、シュウ酸塩、乳酸塩、酒石酸塩、グリコール酸塩、メタンスルホン酸塩、酪酸塩、吉草酸塩、クエン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、リンゴ酸塩等の酸付加塩や、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩等の金属塩や、アンモニウム塩、アルキルアンモニウム塩などを挙げることができる。なお、これらの塩は使用時において溶液として用いられ、その作用は、トレハロースの場合と同効なものが好ましい。これらの塩類は、水和物又は溶媒和物を形成していてもよく、またいずれかを単独で又は２種以上を適宜組み合わせて用いることができる。
上記デキストラン類におけるデキストランとしては、Ｄ−グルコースからなる多糖（Ｃ６Ｈ１０Ｏ５）ｎであって、α１→６結合を主鎖とするものであれば特に制限されず、デキストランの重量平均分子量（Ｍｗ）としては、例えば、デキストラン４０（Ｍｗ＝４００００）、デキストラン７０（Ｍｗ＝７００００）などを挙げることができる。これらデキストランは、化学合成、微生物による生産、酵素による生産等のいずれの公知の方法で製造することができるが、市販品を用いることもできる。例えば、低分子デキストランＬ注(大塚製薬工場社製)、デキストラン７０（東京化成工業社製）などの市販品を挙げることができる。
上記デキストラン類におけるデキストラン誘導体としては、デキストラン硫酸、カルボキシル化デキストラン、ジエチルアミノエチル（ＤＥＡＥ）−デキストランなどが含まれる。
上記デキストラン類におけるデキストランやその誘導体の塩としては、例えば塩酸塩、臭化水素酸塩、ヨウ化水素酸塩、リン酸塩、硝酸塩、硫酸塩、酢酸塩、プロピオン酸塩、トルエンスルホン酸塩、コハク酸塩、シュウ酸塩、乳酸塩、酒石酸塩、グリコール酸塩、メタンスルホン酸塩、酪酸塩、吉草酸塩、クエン酸塩、フマル酸塩、マレイン酸塩、リンゴ酸塩等の酸付加塩や、ナトリウム塩、カリウム塩、カルシウム塩等の金属塩や、アンモニウム塩、アルキルアンモニウム塩などを挙げることができる。なお、これらの塩は使用時において溶液として用いられ、その作用は、デキストランの場合と同効なものが好ましい。これらの塩類は、水和物又は溶媒和物を形成していてもよく、またいずれかを単独で又は２種以上を適宜組み合わせて用いることができる。
本発明の哺乳動物細胞としては、再生医療等に血管経由で投与される哺乳動物幹細胞の他に、Ｉ型糖尿病患者に経静脈投与される哺乳動物の膵島細胞や、がん患者に経静脈投与される哺乳動物の樹状細胞、ナチュラルキラー（ＮＫ）細胞、アルファ・ベータ（αβ）Ｔ細胞、ガンマ・デルタ（γδ）Ｔ細胞、細胞障害性Ｔ細胞（cytotoxic T lymphocyte；ＣＴＬ）、ヘルパーＴ細胞等のＴ細胞、マクロファージ、好中球、好酸球などの白血球を例示することができ、好ましくは、Ｔ細胞である。これら細胞は、公知の一般的な方法で単離することができる。例えば、白血球、Ｔ細胞、ヘルパーＴ細胞、細胞障害性Ｔ細胞、及びγδＴ細胞の単離は、溶血処理した末梢血又は臍帯血試料から、白血球の細胞表面マーカー（ＣＤ４５）、Ｔ細胞の細胞表面マーカー（ＣＤ３）、ヘルパーＴ細胞の細胞表面マーカー（ＣＤ４）、細胞障害性Ｔ細胞（ＣＤ８）、γδＴ細胞の細胞表面マーカー（ＣＤ３９）に対する抗体を用いた蛍光活性化セルソーター（ＦＡＣＳ）や、蛍光物質やビオチン、アビジン等の標識物質で標識した上記細胞表面マーカーに対する抗体と、かかる標識物質に対する抗体とＭＡＣＳビーズ（磁性ビーズ）とのコンジュゲート抗体とを用いた自動磁気細胞分離装置（ａｕｔｏＭＡＣＳ）により行うことができる。上記蛍光物質としては、アロフィコシアニン（ＡＰＣ）、フィコエリトリン（ＰＥ）、ＦＩＴＣ（fluorescein isothiocyanate）、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ４８８、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ６４７、Ａｌｅｘａ Ｆｌｕｏｒ ７００、ＰＥ−ＴｅｘａｓＲｅｄ、ＰＥ−Ｃｙ５、ＰＥ−Ｃｙ７等を挙げることができる。
また上記「幹細胞」とは、自己複製能及び分化・増殖能を有する未熟な細胞を意味する。幹細胞には、分化能力に応じて、多能性幹細胞（pluripotent stem ce11）、複能性幹細胞（multipotent stem ce11）、単能性幹細胞（unipotent stem ce11）等の亜集団が含まれる。多能性幹細胞とは、それ自体では個体になることができないが、生体を構成する全ての組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。複能性幹細胞とは、全ての種類ではないが、複数種の組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。単能性幹細胞とは、特定の組織や細胞へ分化し得る能力を有する細胞を意味する。
多能性幹細胞としては、胚性幹細胞（ＥＳ細胞）、ＥＧ細胞、ｉＰＳ細胞等を挙げることができる。ＥＳ細胞は、内部細胞塊をフィーダー細胞上又はＬＩＦを含む培地中で培養することにより製造することができる。ＥＳ細胞の製造方法は、例えば、ＷＯ９６／２２３６２、ＷＯ０２／１０１０５７、ＵＳ５，８４３，７８０、ＵＳ６，２００，８０６、ＵＳ６，２８０，７１８等に記載されている。ＥＧ細胞は、始原生殖細胞をｍＳＣＦ、ＬＩＦ及びｂＦＧＦを含む培地中で培養することにより製造することができる（Ce11,70:841-847,1992）。ｉＰＳ細胞は、体細胞（例えば線維芽細胞、皮膚細胞等）にＯｃｔ３／４、Ｓｏｘ２及びＫｌｆ４（必要に応じて更にｃ−Ｍｙｃ又はｎ−Ｍｙｃ）等のリプログラミング因子を導入することにより製造することができる（Ce11,126:p.663-676,2006;Nature,448:p.313-317,2007;Nat Biotechno1,26;p,101-106,2008;Cel1 131:p.861‐872,2007;Science,318:p.1917-1920,2007;Ce11 Stem Cells 1:p.55-70,2007;Nat Biotechnol,25:p.1177-1181,2007;Nature,448:p.318-324,2007;Cell Stem Cells 2:p.10-12,2008;Nature 451:p.141-146,2008;Science,318:p.1917-1920,2007）。体細胞の核を核移植することによって作製された初期胚を培養することによって樹立した幹細胞も、多能性幹細胞としてまた好ましい（Nature,385,810（1997）；Science,280,1256（1998）；Nature Biotechnology,17,456（1999）；Nature,394,369（1998）；Nature Genetics,22,127（1999）；Proc.Nat1. Acad.Sci.USA,96,14984（1999））、Rideout IIIら（Nature Genetics,24,109（2000））。
複能性幹細胞としては、脂肪細胞、骨細胞、軟骨細胞、脂肪細胞等の細胞に分化可能な間葉系幹細胞、白血球、赤血球、血小板等の血球系細胞に分化可能な造血系幹細胞、ニューロン、アストロサイト、オリゴデンドロサイト等の細胞に分化可能な神経系幹細胞、骨髄幹細胞、生殖幹細胞等の体性幹細胞等を挙げることができる。複能性幹細胞は、好ましくは間葉系幹細胞である。間葉系幹細胞とは、骨芽細胞、軟骨芽細胞及び脂肪芽細胞の全て又はいくつかへの分化が可能な幹細胞を意味する。複能性幹細胞は、自体公知の方法により、生体から単離することができる。例えば、間葉系幹細胞は、哺乳動物の骨髄、脂肪組織、末梢血、臍帯血等から公知の一般的な方法で採取することができる。例えば、骨髄穿刺後の造血幹細胞等の培養、継代によりヒト間葉系幹細胞を単離することができる（Journal of Autoimmunity，30（2008）163-171）。複能性幹細胞は、上記多能性幹細胞を適切な誘導条件下で培養することによっても得ることができる。間葉系幹細胞は、好ましくはヒト骨髄由来の間葉系幹細胞である。
本発明の哺乳動物細胞として、付着性の細胞を例示することができる。本明細書中、「付着性」細胞とは、足場に接着することで生存、増殖、物質の生産を行なうことができる足場依存性の細胞を意味する。付着性幹細胞としては、多能性幹細胞、間葉系幹細胞、神経系幹細胞、骨髄幹細胞、生殖幹細胞等を挙げることができる。付着性幹細胞は、好ましくは、間葉系幹細胞又は多能性幹細胞である。
本発明の哺乳動物細胞（集団）は、生体内から分離されたものであっても、インビトロで継代培養されたものであってもよいが、単離又は精製されていることが好ましい。本明細書中、「単離又は精製」とは、目的とする成分以外の成分を除去する操作が施されていることを意味する。単離又は精製された哺乳動物細胞の純度（全細胞数に対する、哺乳動物幹細胞数等の目的とする細胞の割合）は、通常３０％以上、好ましくは５０％以上、より好ましくは７０％以上、更に好ましくは９０％以上（例えば１００％）である。
本件細胞移植用溶液中に保存する哺乳動物細胞（集団）は、単一細胞（シングルセル）の状態であることが好ましい。本明細書において、「単一細胞の状態」とは、他の細胞と寄り集まって塊を形成していないこと（即ち、凝集していない状態）を意味する。単一細胞の状態の哺乳動物細胞は、インビトロで培養した哺乳動物細胞をトリプシン／ＥＤＴＡ等で酵素処理することにより調製することができる。哺乳動物細胞中に含まれる単一細胞の状態の哺乳動物細胞の割合は、通常７０％以上、好ましくは９０％以上、より好ましくは９５％以上、更に好ましくは９９％以上（例えば１００％）である。単一細胞の状態の細胞の割合は、哺乳動物細胞をＰＢＳに分散し、これを顕微鏡下で観察し、無作為に選択された複数個（例えば、１０００個）の細胞について凝集の有無を調べることにより決定することができる。
本件細胞移植用溶液中に保存する哺乳動物細胞（集団）は、好ましくは浮遊している。本明細書において、「浮遊」とは、細胞が、移植用溶液を収容した容器の内壁に接触することなく、移植用溶液中に保持されていることをいう。
本件細胞移植用溶液中に保存した哺乳動物細胞が凝集又は沈殿している場合、移植前にピペッティングやタッピング等の当該技術分野における周知の方法により細胞を懸濁することが好ましい。
以下、実施例により本発明をより具体的に説明するが、本発明の技術的範囲はこれらの例示に限定されるものではない。
１．本件細胞移植用溶液が細胞生存率低下抑制の相乗効果を有することの確認１（トレハロースの濃度を３（ｗ／ｖ）％に固定し、デキストランの濃度変化と相乗効果の関係を評価）
１−１ 材料
１−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック（登録商標）注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ＋１％Ｄ ：１（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｄ ：３（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋７％Ｄ ：７（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋１％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋３％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋５％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋７％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び７（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
１−１ 材料
１−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック（登録商標）注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ＋１％Ｄ ：１（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｄ ：３（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋７％Ｄ ：７（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋１％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋３％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋５％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ＋７％Ｄ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び７（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
１−１−２ 細胞移植用溶液の調製
１）３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）をラクテック注（ＬＲ液）に添加・融解して調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１０（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ＋１０％Ｄ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）を低分子デキストランＬ注（１０［ｗ／ｖ］％デキストラン含有ラクテック注）（大塚製薬工場社製）（「ＬＲ＋１０％Ｄ」液）に添加・融解して調製した。
３）所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のデキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液）は、「ＬＲ＋１０％Ｄ」液をＬＲ液で希釈して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のデキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液）は、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１０％Ｄ」液を「ＬＲ＋３％Ｔ」液で希釈して調製した。
１）３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）をラクテック注（ＬＲ液）に添加・融解して調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１０（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ＋１０％Ｄ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）を低分子デキストランＬ注（１０［ｗ／ｖ］％デキストラン含有ラクテック注）（大塚製薬工場社製）（「ＬＲ＋１０％Ｄ」液）に添加・融解して調製した。
３）所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のデキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液）は、「ＬＲ＋１０％Ｄ」液をＬＲ液で希釈して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のデキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋３％Ｔ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液）は、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１０％Ｄ」液を「ＬＲ＋３％Ｔ」液で希釈して調製した。
１−１−３ 哺乳動物細胞の調製
ヒト骨髄間葉系幹細胞（Human Mesenchymal Stem Cells from Bone Marrow［ｈＭＳＣ-ＢＭ］）（Lonza社製）を、以下の〔１〕〜〔８〕に示す手順にしたがって調製し、本実験に用いた。
〔１〕ｈＭＳＣ-ＢＭを、７５ｃｍ２フラスコを用いてヒト間葉系幹細胞専用培地キット（Lonza社）(以下、「ＭＳＣ培地」という）存在下で３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターにて培養を行った。顕微鏡下で細胞の状態を観察し、約８０％程度コンフルエントになるまで培養した。
〔２〕ＭＳＣ培地をアスピレーターで除き、フラスコ当たり８ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）でｈＭＳＣ-ＢＭをリンスした。
〔３〕ＰＢＳをアスピレーターで除き、フラスコ当たり３．７５ｍＬのトリプシン−ＥＤＴＡ（Lonza社製）を加え、室温で５分間静置した。
〔４〕ｈＭＳＣ-ＢＭが９０％程度剥離するまで顕微鏡下で観察しながら、ゆっくりと揺らした。
〔５〕フラスコ当たり３．７５ｍＬのＭＳＣ培地を加え、トリプシン反応を停止させ、ピペッティングによりｈＭＳＣ-ＢＭを回収し、５０ｍＬ遠心チューブに移した。
〔６〕６００×ｇ、５分間、２５℃で遠心分離を行った。
〔７〕上清であるＭＳＣ培地をアスピレーターで除き、1フラスコ当たり４ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）を加え、ｈＭＳＣ-ＢＭペレット（沈殿物）を懸濁した。
〔８〕１０μＬのｈＭＳＣ-ＢＭ懸濁液を採取し、細胞計数盤で細胞数を計測し、５×１０５cells／ｍＬとなるようにＰＢＳ（Invitrogen社製）を添加し、氷冷した。
ヒト骨髄間葉系幹細胞（Human Mesenchymal Stem Cells from Bone Marrow［ｈＭＳＣ-ＢＭ］）（Lonza社製）を、以下の〔１〕〜〔８〕に示す手順にしたがって調製し、本実験に用いた。
〔１〕ｈＭＳＣ-ＢＭを、７５ｃｍ２フラスコを用いてヒト間葉系幹細胞専用培地キット（Lonza社）(以下、「ＭＳＣ培地」という）存在下で３７℃、５％ＣＯ２インキュベーターにて培養を行った。顕微鏡下で細胞の状態を観察し、約８０％程度コンフルエントになるまで培養した。
〔２〕ＭＳＣ培地をアスピレーターで除き、フラスコ当たり８ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）でｈＭＳＣ-ＢＭをリンスした。
〔３〕ＰＢＳをアスピレーターで除き、フラスコ当たり３．７５ｍＬのトリプシン−ＥＤＴＡ（Lonza社製）を加え、室温で５分間静置した。
〔４〕ｈＭＳＣ-ＢＭが９０％程度剥離するまで顕微鏡下で観察しながら、ゆっくりと揺らした。
〔５〕フラスコ当たり３．７５ｍＬのＭＳＣ培地を加え、トリプシン反応を停止させ、ピペッティングによりｈＭＳＣ-ＢＭを回収し、５０ｍＬ遠心チューブに移した。
〔６〕６００×ｇ、５分間、２５℃で遠心分離を行った。
〔７〕上清であるＭＳＣ培地をアスピレーターで除き、1フラスコ当たり４ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）を加え、ｈＭＳＣ-ＢＭペレット（沈殿物）を懸濁した。
〔８〕１０μＬのｈＭＳＣ-ＢＭ懸濁液を採取し、細胞計数盤で細胞数を計測し、５×１０５cells／ｍＬとなるようにＰＢＳ（Invitrogen社製）を添加し、氷冷した。
１−２ 方法
本件細胞移植用溶液が細胞生存率低下抑制の相乗効果を有することを確認するために、以下の〔１〕〜〔３〕に示す手順にしたがって実験を行った。
〔１〕上述の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」のステップ〔７〕で調製したｈＭＳＣ-ＢＭ懸濁液を、ＦＩＮＰＩＰＥＴＴＥ（１００−１０００μＬ）を用いて１５ｍＬコニカル遠心チューブ（conical centrifuge tube）へ分注し、６００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理した。
〔２〕遠心処理後の上清を吸引・除去し、上述の１１種類の細胞移植用溶液に懸濁した後、冷蔵庫（４℃条件下）で１４日間保存した。なお、保存前の細胞生存率を測定するために、遠心処理後の上清を吸引・除去した後、ＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁してすぐにその一部（２０μＬ）を採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った（図１の「Ｐ」参照）。
〔３〕ｈＭＳＣ-ＢＭを細胞移植用溶液中に１４日間保存した後、チップの先を底から目視で５ｍｍ程度の位置まで挿入した状態で、緩やかに攪拌（５００μＬの液量でのピペッティングを５回）して細胞が懸濁した状態で、その一部（２０μＬ）を１．５ｍＬマイクロチューブに採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った。
本件細胞移植用溶液が細胞生存率低下抑制の相乗効果を有することを確認するために、以下の〔１〕〜〔３〕に示す手順にしたがって実験を行った。
〔１〕上述の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」のステップ〔７〕で調製したｈＭＳＣ-ＢＭ懸濁液を、ＦＩＮＰＩＰＥＴＴＥ（１００−１０００μＬ）を用いて１５ｍＬコニカル遠心チューブ（conical centrifuge tube）へ分注し、６００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理した。
〔２〕遠心処理後の上清を吸引・除去し、上述の１１種類の細胞移植用溶液に懸濁した後、冷蔵庫（４℃条件下）で１４日間保存した。なお、保存前の細胞生存率を測定するために、遠心処理後の上清を吸引・除去した後、ＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁してすぐにその一部（２０μＬ）を採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った（図１の「Ｐ」参照）。
〔３〕ｈＭＳＣ-ＢＭを細胞移植用溶液中に１４日間保存した後、チップの先を底から目視で５ｍｍ程度の位置まで挿入した状態で、緩やかに攪拌（５００μＬの液量でのピペッティングを５回）して細胞が懸濁した状態で、その一部（２０μＬ）を１．５ｍＬマイクロチューブに採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った。
１−３ 結果
生細胞率の評価結果を表１及び図１に示す。Ｓ液やＬＲ液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭはほとんど認められなかったのに対して（Ｓ液では１％未満、ＬＲ液では１％）、「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ４％、９％、１２％及び２０％と上昇していた（表１、図１）。また、「ＬＲ＋３％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合においても、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、４％と上昇していた（表１、図１）。これらの結果は、生理食塩水や乳酸リンゲル液等の生理的水溶液中にｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期保存すると、細胞はほとんど死滅するが、デキストランやトレハロースを含有する生理的水溶液を用いることにより、細胞死を抑制することができ、生細胞の割合を高めることができることを示している。
また、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ１１％、３３％、５７％及び５０％であり、「ＬＲ＋３％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合よりも上昇していた（表１、図１）。さらに、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋１％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、それぞれ４％であり、両者の値を加算すると８％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、１１％と高い値（１．４倍）を示した。同様に、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋３％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１３％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋３％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、３３％と高い値（２．５倍）を示し、また、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋５％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１６％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋５％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、５７％と高い値（３．６倍）を示し、また、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋７％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると２４％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋７％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、５０％と高い値（２．１倍）を示した。これらの結果は、３％トレハロースと５％前後（４〜７％）のデキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることを示している。
生細胞率の評価結果を表１及び図１に示す。Ｓ液やＬＲ液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭはほとんど認められなかったのに対して（Ｓ液では１％未満、ＬＲ液では１％）、「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ４％、９％、１２％及び２０％と上昇していた（表１、図１）。また、「ＬＲ＋３％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合においても、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、４％と上昇していた（表１、図１）。これらの結果は、生理食塩水や乳酸リンゲル液等の生理的水溶液中にｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期保存すると、細胞はほとんど死滅するが、デキストランやトレハロースを含有する生理的水溶液を用いることにより、細胞死を抑制することができ、生細胞の割合を高めることができることを示している。
また、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１、３、５、及び７％Ｄ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ１１％、３３％、５７％及び５０％であり、「ＬＲ＋３％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合よりも上昇していた（表１、図１）。さらに、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋１％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、それぞれ４％であり、両者の値を加算すると８％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋１％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、１１％と高い値（１．４倍）を示した。同様に、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋３％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１３％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋３％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、３３％と高い値（２．５倍）を示し、また、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋５％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１６％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋５％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、５７％と高い値（３．６倍）を示し、また、「ＬＲ＋３％Ｔ」及び「ＬＲ＋７％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると２４％となるのに対して、「ＬＲ＋３％Ｔ＋７％Ｄ」液を用いた場合の細胞生存率は、５０％と高い値（２．１倍）を示した。これらの結果は、３％トレハロースと５％前後（４〜７％）のデキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることを示している。
さらに、ｈＭＳＣ-ＢＭの細胞移植用溶液中の保存期間を、１４日間の他３日間や７日間で検討した。その結果を図２に示す。１４日間ｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合と同様、３日間や７日間ｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合においても、３％トレハロースと５％前後（４〜７％）のデキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭを長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることが明らかとなった。
２．本件細胞移植用溶液が生存率低下抑制の相乗効果を有することの確認２（デキストランの濃度を５（ｗ／ｖ）％に固定し、トレハロースの濃度変化と相乗効果の関係を評価）
２−１ 材料
２−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ＋１％Ｔ ：１（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋７％Ｔ ：７（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋１０％Ｔ ：１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋１％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋３％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋５％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び５（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋７％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び７（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
２−１ 材料
２−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ＋１％Ｔ ：１（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋３％Ｔ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋７％Ｔ ：７（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋１０％Ｔ ：１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋１％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋３％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋５％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び５（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋７％Ｔ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び７（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
２−１−２ 細胞移植用溶液の調製
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ」液）は、低分子デキストランＬ注（１０［ｗ／ｖ］％デキストラン含有ラクテック注）（大塚製薬工場社製）（「ＬＲ＋１０％Ｄ液」）をラクテック注（ＬＲ液）で希釈して調製した。
２）１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋１０％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）をＬＲ液に添加・融解して調製した。
３）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）を「ＬＲ＋５％Ｄ」液に添加・融解して調製した。
４）所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のトレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｔ」液）は、「ＬＲ＋１０％Ｔ」液をＬＲ液で希釈して調製した。
５）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のトレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ＋１、３、５、及び７％Ｔ」液）は、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ」液を「ＬＲ＋５％Ｄ」液で希釈して調製した。
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ」液）は、低分子デキストランＬ注（１０［ｗ／ｖ］％デキストラン含有ラクテック注）（大塚製薬工場社製）（「ＬＲ＋１０％Ｄ液」）をラクテック注（ＬＲ液）で希釈して調製した。
２）１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋１０％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）をＬＲ液に添加・融解して調製した。
３）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１０（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）を「ＬＲ＋５％Ｄ」液に添加・融解して調製した。
４）所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のトレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋１、３、５、及び７％Ｔ」液）は、「ＬＲ＋１０％Ｔ」液をＬＲ液で希釈して調製した。
５）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び所定の濃度（１、３、５、及び７［ｗ／ｖ］％）のトレハロース含有ラクテック注（「ＬＲ＋５％Ｄ＋１、３、５、及び７％Ｔ」液）は、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１０％Ｔ」液を「ＬＲ＋５％Ｄ」液で希釈して調製した。
２−２ 結果
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１３種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を表２及び図３に示す。実施例１の結果と同様Ｓ液やＬＲ液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭはほとんど又は全く認められなかった（Ｓ液では１％、ＬＲ液では０％）。「ＬＲ＋１、３、５、７、及び１０％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ２％、６％、７％、５％及び３％であるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１、３、５、７、及び１０％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ３０％、４８％、４９％、３０％及び１４％であり、大幅に上昇していた（表２、図３）。特に、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋１％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、それぞれ１１％及び２％であり、両者の値を加算すると１３％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、３０％と高い値（２．３倍）を示した。同様に、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋３％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１７％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋３％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、４８％と高い値（２．８倍）を示し、また、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋５％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１８％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋５％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、４９％と高い値（２．７倍）を示し、また、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋７％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１６％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋７％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、３０％と高い値（１．９倍）を示した。これらの結果は、３％前後（２〜６％）のトレハロースと５％デキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることを示している。
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１３種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を表２及び図３に示す。実施例１の結果と同様Ｓ液やＬＲ液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭはほとんど又は全く認められなかった（Ｓ液では１％、ＬＲ液では０％）。「ＬＲ＋１、３、５、７、及び１０％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ２％、６％、７％、５％及び３％であるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１、３、５、７、及び１０％Ｔ」液中でｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合、生存するｈＭＳＣ-ＢＭの割合は、それぞれ３０％、４８％、４９％、３０％及び１４％であり、大幅に上昇していた（表２、図３）。特に、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋１％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、それぞれ１１％及び２％であり、両者の値を加算すると１３％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋１％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、３０％と高い値（２．３倍）を示した。同様に、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋３％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１７％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋３％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、４８％と高い値（２．８倍）を示し、また、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋５％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１８％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋５％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、４９％と高い値（２．７倍）を示し、また、「ＬＲ＋５％Ｄ」及び「ＬＲ＋７％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率の値を加算すると１６％となるのに対して、「ＬＲ＋５％Ｄ＋７％Ｔ」液を用いた場合の細胞生存率は、３０％と高い値（１．９倍）を示した。これらの結果は、３％前後（２〜６％）のトレハロースと５％デキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることを示している。
さらに、ｈＭＳＣ-ＢＭの細胞移植用溶液中の保存期間を、１４日間の他３日間や７日間で検討した。その結果を図４に示す。１４日間ｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合と同様、３日間や７日間ｈＭＳＣ-ＢＭを保存した場合においても、３％前後（２〜６％）のトレハロースと５％デキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭを長期間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることが明らかとなった。
実施例１及び２の結果をまとめると、３％前後（２〜６％）のトレハロースと５％前後（４〜７％）のデキストランを併用することにより、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間（少なくとも１４日間）保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞の割合を相乗的に高めることができることが明らかとなった。
３．デキストランと他の糖類とを併用した細胞移植用溶液を用いた場合の細胞生存率低下抑制効果の検討
３−１ 材料
３−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＤ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＧＬ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＳＲ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＭＮ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＬＣ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＲＦ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＭＬ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＳＣ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注
３−１ 材料
３−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＤ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＧＬ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＳＲ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＭＮ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＬＣ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＲＦ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＭＬ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注
ＬＲＤ＋ＳＣ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注
３−１−２ 細胞移植用溶液の調製
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＧＬ」液）は、グルコース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
３）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＳＲ」液）は、ソルビトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
４）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＭＮ」液）は、マンニトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
５）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＬＣ」液）は、ラクトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
６）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＲＦ」液）は、ラフィノース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
７）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＭＬ」液）は、マルトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
８）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＳＣ」液）は、スクロース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。なお、上記７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）は、３（ｗ／ｖ）％トレハロースと同じ浸透圧になるように濃度調整を行った。
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＧＬ」液）は、グルコース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
３）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＳＲ」液）は、ソルビトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
４）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＭＮ」液）は、マンニトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
５）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＬＣ」液）は、ラクトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
６）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＲＦ」液）は、ラフィノース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
７）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＭＬ」液）は、マルトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。
８）５（ｗ／ｖ）％デキストラン及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注（「ＬＲＤ＋ＳＣ」液）は、スクロース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＤ」液に添加・融解して調製した。なお、上記７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）は、３（ｗ／ｖ）％トレハロースと同じ浸透圧になるように濃度調整を行った。
３−２ 結果
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１１種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図５に示す。実施例１や２の結果と同様、トレハロースをデキストランと併用すると、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞率が上昇することが示された（図５の「ＬＲＴＤ」と「ＬＲＤ」や「ＬＲ」や「Ｓ」との比較）。他方、トレハロースの代わりに７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をデキストランと併用した場合、細胞生存率は、デキストラン単独で用いた場合とほとんど変わらなかった（図５の「ＬＲＤ」と、「ＬＲＤ＋ＧＬ」や「ＬＲＤ＋ＳＲ」や「ＬＲＤ＋ＭＮ」や「ＬＲＤ＋ＬＣ」や「ＬＲＤ＋ＲＦ」や「ＬＲＤ＋ＭＬ」や「ＬＲＤ＋ＳＣ」との比較）。この結果は、上記７種類の糖類は、トレハロースと異なり、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを示している。
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１１種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図５に示す。実施例１や２の結果と同様、トレハロースをデキストランと併用すると、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞率が上昇することが示された（図５の「ＬＲＴＤ」と「ＬＲＤ」や「ＬＲ」や「Ｓ」との比較）。他方、トレハロースの代わりに７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をデキストランと併用した場合、細胞生存率は、デキストラン単独で用いた場合とほとんど変わらなかった（図５の「ＬＲＤ」と、「ＬＲＤ＋ＧＬ」や「ＬＲＤ＋ＳＲ」や「ＬＲＤ＋ＭＮ」や「ＬＲＤ＋ＬＣ」や「ＬＲＤ＋ＲＦ」や「ＬＲＤ＋ＭＬ」や「ＬＲＤ＋ＳＣ」との比較）。この結果は、上記７種類の糖類は、トレハロースと異なり、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを示している。
４．トレハロースと他の糖類とを併用した細胞移植用溶液を用いた場合の細胞生存率低下抑制効果の検討
４−１ 材料
４−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＧＬ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＳＲ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＭＮ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＬＣ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＲＦ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＭＬ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＳＣ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注
４−１ 材料
４−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＧＬ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＳＲ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＭＮ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＬＣ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＲＦ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＭＬ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注
ＬＲＴ＋ＳＣ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注
４−１−２ 細胞移植用溶液の調製
１）３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＧＬ」液）は、グルコース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
３）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＳＲ」液）は、ソルビトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＭＮ」液）は、マンニトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
５）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＬＣ」液）は、ラクトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
６）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＲＦ」液）は、ラフィノース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
７）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＭＬ」液）は、マルトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
８）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＳＣ」液）は、スクロース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。なお、上記７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）は、５（ｗ／ｖ）％デキストランと同じ浸透圧になるように濃度調整を行った。
１）３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％グルコース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＧＬ」液）は、グルコース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
３）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％ソルビトール含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＳＲ」液）は、ソルビトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び１．６（ｗ／ｖ）％マンニトール含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＭＮ」液）は、マンニトール（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
５）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％ラクトース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＬＣ」液）は、ラクトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
６）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び４．８（ｗ／ｖ）％ラフィノース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＲＦ」液）は、ラフィノース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
７）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％マルトース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＭＬ」液）は、マルトース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。
８）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び３．０（ｗ／ｖ）％スクロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ＋ＳＣ」液）は、スクロース（和光純薬工業株式会社製）を「ＬＲＴ」液に添加・融解して調製した。なお、上記７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）は、５（ｗ／ｖ）％デキストランと同じ浸透圧になるように濃度調整を行った。
４−２ 結果
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１１種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図６に示す。実施例１〜３の結果と同様、デキストランをトレハロースと併用すると、細胞を１４日間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞率が上昇することが示された（図６の「ＬＲＴＤ」と、「ＬＲＴ」や「ＬＲ」や「Ｓ」との比較）。他方、デキストランの代わりに７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をトレハロースと併用した場合、細胞生存率は、トレハロース単独で用いた場合とほとんど変わらなかった（図６の「ＬＲＴ」と、「ＬＲＴ＋ＧＬ」や「ＬＲＴ＋ＳＲ」や「ＬＲＴ＋ＭＮ」や「ＬＲＴ＋ＬＣ」や「ＬＲＴ＋ＲＦ」や「ＬＲＴ＋ＭＬ」や「ＬＲＴ＋ＳＣ」との比較）。この結果は、上記７種類の糖類は、デキストランと異なり、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを示している。
さらに、７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をトレハロースやデキストランと併用せず、単独で用いた場合の実験を行い、上記７種類の糖類は、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを確認した（図７）。
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１１種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図６に示す。実施例１〜３の結果と同様、デキストランをトレハロースと併用すると、細胞を１４日間保存した場合の細胞生存率低下を相乗的に抑制し、生細胞率が上昇することが示された（図６の「ＬＲＴＤ」と、「ＬＲＴ」や「ＬＲ」や「Ｓ」との比較）。他方、デキストランの代わりに７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をトレハロースと併用した場合、細胞生存率は、トレハロース単独で用いた場合とほとんど変わらなかった（図６の「ＬＲＴ」と、「ＬＲＴ＋ＧＬ」や「ＬＲＴ＋ＳＲ」や「ＬＲＴ＋ＭＮ」や「ＬＲＴ＋ＬＣ」や「ＬＲＴ＋ＲＦ」や「ＬＲＴ＋ＭＬ」や「ＬＲＴ＋ＳＣ」との比較）。この結果は、上記７種類の糖類は、デキストランと異なり、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを示している。
さらに、７種類の糖類（グルコース、ソルビトール、マンニトール、ラクトース、ラフィノース、マルトース、及びスクロース）をトレハロースやデキストランと併用せず、単独で用いた場合の実験を行い、上記７種類の糖類は、ｈＭＳＣ-ＢＭ等の哺乳動物細胞を長期間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率を高める効果を有さないことを確認した（図７）。
５．本件細胞移植用溶液における生理的水溶液の検討
５−１ 材料
５−１−１ 細胞移植用溶液
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＳＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚生食注
５％糖 ：大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）
５％糖ＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚糖液５％
リンゲル ：リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）
リンゲルＴＤ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有リンゲル液「オーツカ」
ヴィーン ：ヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）
ヴィーンＴＤ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ヴィーンＦ輸液
５−１ 材料
５−１−１ 細胞移植用溶液
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＳＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚生食注
５％糖 ：大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）
５％糖ＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚糖液５％
リンゲル ：リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）
リンゲルＴＤ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有リンゲル液「オーツカ」
ヴィーン ：ヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）
ヴィーンＴＤ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ヴィーンＦ輸液
５−１−２ 細胞移植用溶液の調製
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚生食注（「ＳＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、大塚生食注（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
３）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚糖液５％（「５％糖ＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有リンゲル液「オーツカ」（「リンゲルＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
５）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ヴィーンＦ輸液（「ヴィーンＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、ヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）に添加・融解して調製した。
１）５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
２）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚生食注（「ＳＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、大塚生食注（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
３）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有大塚糖液５％（「５％糖ＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
４）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有リンゲル液「オーツカ」（「リンゲルＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、リンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）に添加・融解して調製した。
５）３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ヴィーンＦ輸液（「ヴィーンＴＤ」液）は、トレハロース（株式会社林原社製）及びデキストラン４０（名糖産業株式会社製）を、ヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）に添加・融解して調製した。
５−２ 結果
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１０種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図８に示す。細胞移植用溶液における生理的水溶液として、大塚生食注（大塚製薬工場社製）やリンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）やヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）を用いた場合、ラクテック注（大塚製薬工場社製）を用いた場合と同様に、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率が上昇することが示された（図８中の「Ｓ」と「ＳＴＤ」との比較、「リンゲル」と「リンゲルＴＤ」との比較、「ヴィーン」と「ヴィーンＴＤ」の比較）。他方、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）を用いた場合には、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存したときの細胞死を抑制することは認められなかった（図８中の「５％糖」と「５％糖ＴＤ」との比較）。以上の結果は、トレハロースとデキストラン併用による生細胞率低下抑制効果は、生理的水溶液として、少なくとも生理食塩液、乳酸リンゲル液、リンゲル液及び酢酸リンゲル液を用いた場合に認められることを示している。
ｈＭＳＣ-ＢＭを、実施例１の「１−１−３ 哺乳動物細胞の調製」に示した方法で調製した後、上述の１０種類の細胞移植用溶液を用いて、実施例１の「１−２ 方法」に示した手順にしたがって実験を行った。その結果を図８に示す。細胞移植用溶液における生理的水溶液として、大塚生食注（大塚製薬工場社製）やリンゲル液「オーツカ」（大塚製薬工場社製）やヴィーンＦ輸液（興和興和創薬社製）を用いた場合、ラクテック注（大塚製薬工場社製）を用いた場合と同様に、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存したときの細胞死を抑制し、細胞移植用溶液中の生細胞率が上昇することが示された（図８中の「Ｓ」と「ＳＴＤ」との比較、「リンゲル」と「リンゲルＴＤ」との比較、「ヴィーン」と「ヴィーンＴＤ」の比較）。他方、大塚糖液５％（大塚製薬工場社製）を用いた場合には、ｈＭＳＣ-ＢＭを１４日間保存したときの細胞死を抑制することは認められなかった（図８中の「５％糖」と「５％糖ＴＤ」との比較）。以上の結果は、トレハロースとデキストラン併用による生細胞率低下抑制効果は、生理的水溶液として、少なくとも生理食塩液、乳酸リンゲル液、リンゲル液及び酢酸リンゲル液を用いた場合に認められることを示している。
６．本件細胞移植用溶液が細胞生存率低下抑制の相乗効果を有することの確認３（ｈＭＳＣ-ＢＭ以外の哺乳動物細胞を用いて評価）
本件細胞移植用溶液が有する細胞生存率低下の抑制効果が、ｈＭＳＣ-ＢＭ以外の他の哺乳動物細胞を用いた場合にも同様に認められることについて確認を行った。
６−１ 材料
６−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲＤ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
本件細胞移植用溶液が有する細胞生存率低下の抑制効果が、ｈＭＳＣ-ＢＭ以外の他の哺乳動物細胞を用いた場合にも同様に認められることについて確認を行った。
６−１ 材料
６−１−１ 細胞移植用溶液
Ｓ ：大塚生食注（大塚製薬工場社製）
ＬＲ ：ラクテック注（大塚製薬工場社製）
ＬＲＴ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注
ＬＲＤ ：５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
ＬＲＴＤ ：３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注
６−１−２ 細胞移植用溶液の調製
３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ」液）や、５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や、３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
３（ｗ／ｖ）％トレハロース含有ラクテック注（「ＬＲＴ」液）や、５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＤ」液）や、３（ｗ／ｖ）％トレハロース及び５（ｗ／ｖ）％デキストラン含有ラクテック注（「ＬＲＴＤ」液）は、実施例１の「１−１−２ 細胞移植用溶液の調製」に記載された方法にしたがって調製した。
６−２ 方法
〔１〕室温のＲＰＭＩ培地（Gibco社製）１８ｍＬを５０ｍＬのコニカル遠心チューブに添加した。
〔２〕ヒト末梢血Ｔ細胞（Human Peripheral Blood T Cells；ｈＰＢＴ）（CELL APPLICATIONS, INC.社製）が凍結保存された保存容器（バイアル）のふたをゆるめて、圧をぬき、ふたを閉めた。
〔３〕３７℃の恒温槽でかるく撹拌しながら融解した。
〔４〕融解した細胞を、上記ＲＰＭＩ培地を添加したコニカル遠心チューブに移した。
〔５〕４００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理し、上清を吸引して細胞を回収し、バイアル当たり１０ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁した。
〔６〕ワンセルカウンターを用いて細胞数を測定し、５×１０５cells／ｍＬとなるようにＰＢＳ（Invitrogen社製）を添加し、氷冷した。
〔７〕ＦＩＮＰＩＰＥＴＴＥ（１００−１０００μＬ）を用いて１２個の１５ｍＬコニカル遠心チューブに０．５ｍＬずつ細胞懸濁液を分注し、４００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理し、細胞を回収した。
〔８〕上清を吸引・除去し、上述の５種類の細胞移植用溶液にｈＰＢＴを懸濁した後、冷蔵庫（４℃条件下）で保存した。なお、保存前の細胞生存率を測定するために、遠心処理後の上清を吸引・除去した後、ＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁してすぐにその一部（２０μＬ）を採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った（図９の「Ｐ」参照）。
〔９〕細胞移植用溶液中にｈＰＢＴを保存後、１日目、３日目、７日目、及び１４日目にチップの先を底から目視で５ｍｍ程度の位置まで挿入した状態で、緩やかに攪拌（２５０μＬの液量でのピペッティングを５回）して細胞が懸濁した状態で、その一部（２０μＬ）を１．５ｍＬマイクロチューブに採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った。
〔１〕室温のＲＰＭＩ培地（Gibco社製）１８ｍＬを５０ｍＬのコニカル遠心チューブに添加した。
〔２〕ヒト末梢血Ｔ細胞（Human Peripheral Blood T Cells；ｈＰＢＴ）（CELL APPLICATIONS, INC.社製）が凍結保存された保存容器（バイアル）のふたをゆるめて、圧をぬき、ふたを閉めた。
〔３〕３７℃の恒温槽でかるく撹拌しながら融解した。
〔４〕融解した細胞を、上記ＲＰＭＩ培地を添加したコニカル遠心チューブに移した。
〔５〕４００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理し、上清を吸引して細胞を回収し、バイアル当たり１０ｍＬのＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁した。
〔６〕ワンセルカウンターを用いて細胞数を測定し、５×１０５cells／ｍＬとなるようにＰＢＳ（Invitrogen社製）を添加し、氷冷した。
〔７〕ＦＩＮＰＩＰＥＴＴＥ（１００−１０００μＬ）を用いて１２個の１５ｍＬコニカル遠心チューブに０．５ｍＬずつ細胞懸濁液を分注し、４００×ｇ、５分間、２５℃で遠心処理し、細胞を回収した。
〔８〕上清を吸引・除去し、上述の５種類の細胞移植用溶液にｈＰＢＴを懸濁した後、冷蔵庫（４℃条件下）で保存した。なお、保存前の細胞生存率を測定するために、遠心処理後の上清を吸引・除去した後、ＰＢＳ（Invitrogen社製）に懸濁してすぐにその一部（２０μＬ）を採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った（図９の「Ｐ」参照）。
〔９〕細胞移植用溶液中にｈＰＢＴを保存後、１日目、３日目、７日目、及び１４日目にチップの先を底から目視で５ｍｍ程度の位置まで挿入した状態で、緩やかに攪拌（２５０μＬの液量でのピペッティングを５回）して細胞が懸濁した状態で、その一部（２０μＬ）を１．５ｍＬマイクロチューブに採取し、トリパンブルー染色液（Gibco社製）２０μＬと混和後、顕微鏡下にてワンセルカウンターを用いて全細胞数と死細胞数の測定を行い、生細胞率の評価を行った。
６−３ 結果
生細胞率の評価結果を表３及び図９に示す。Ｓ液及びＬＲ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、それぞれ１８％及び２９％まで低下していた（表３及び図９の１日後の「Ｓ」及び「ＬＲ」）。また、ＬＲＴ液及びＬＲＤ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、それぞれ３７％及び４９％と改善されたものの、有意差は認められなかった（表３及び図９の１日後の「ＬＲＴ」及び「ＬＲＤ」）。一方、ＬＲＴＤ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、８２％と高い値を示すとともに、ＬＲ液中で保存した場合と比べ、有意差が認められた（表３及び図９の１日後の「ＬＲＴＤ」）。これらの結果は、トレハロースをデキストランと併用すると、ｈＰＢＴの細胞生存率低下を効果的に抑制できることを示している。
生細胞率の評価結果を表３及び図９に示す。Ｓ液及びＬＲ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、それぞれ１８％及び２９％まで低下していた（表３及び図９の１日後の「Ｓ」及び「ＬＲ」）。また、ＬＲＴ液及びＬＲＤ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、それぞれ３７％及び４９％と改善されたものの、有意差は認められなかった（表３及び図９の１日後の「ＬＲＴ」及び「ＬＲＤ」）。一方、ＬＲＴＤ液中にｈＰＢＴを１日間保存した場合の細胞生存率は、８２％と高い値を示すとともに、ＬＲ液中で保存した場合と比べ、有意差が認められた（表３及び図９の１日後の「ＬＲＴＤ」）。これらの結果は、トレハロースをデキストランと併用すると、ｈＰＢＴの細胞生存率低下を効果的に抑制できることを示している。
上記トレハロースとデキストランの併用による効果は、ｈＰＢＴを３日間、７日間、及び１４日間保存した場合、さらに顕著になった。すなわち、トレハロースやデキストランを単独で用いた場合と比べ、トレハロースとデキストランを併用した方が細胞生存率は２倍以上高く、また、トレハロースとデキストランの併用による相乗効果が認められた（表３及び図９の３日後、７日後、及び１４日後の「ＬＲＴＤ」）。特に７日間保存した場合、ＬＲＴ液及びＬＲＤ液中で生存するｈＰＢＴの割合は、それぞれ１３％及び１７％であり、両者の値を加算すると３０％となるのに対して、ＬＲＴＤ液中で生存するｈＰＢＴの割合は、５７％と高い値（１．９倍）を示し、トレハロースとデキストランの併用による高い相乗効果が認められた。これらの結果は、トレハロースとデキストラン併用による生細胞率低下抑制効果は、ｈＭＳＣ-ＢＭ以外の哺乳動物細胞（ｈＰＢＴ）を用いた場合にも同様に認められることを示している。
本発明によると、ＭＳＣなどの幹細胞やＴ細胞等の白血球を含む細胞懸濁液を長期保存した場合の生存率の低下を抑制し、良質な細胞懸濁液を提供することができるので、再生医療等における移植医療分野やがん治療分野で有用である。
Claims (4)
- ２．０〜６．０（ｗ／ｖ）％のトレハロース若しくはその誘導体又はそれらの塩と、４．０〜７．０（ｗ／ｖ）％のデキストラン若しくはその誘導体又はそれらの塩とを含む細胞移植用生理的水溶液中で、哺乳動物細胞を１２時間以上７２時間未満保存することを特徴とする哺乳動物細胞を保存する方法。
- 生理的水溶液が、乳酸リンゲル液、生理食塩水、リンゲル液、及び酢酸リンゲル液からなる群から選択されることを特徴とする請求項１記載の方法。
- 哺乳動物細胞が哺乳動物間葉系幹細胞又は哺乳動物Ｔ細胞であることを特徴とする請求項１又は２記載の方法。
- 哺乳動物間葉系幹細胞がヒト骨髄間葉系幹細胞であり、哺乳動物Ｔ細胞がヒト末梢血Ｔ細胞であることを特徴とする請求項３記載の方法。
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