JP4068152B2 - セルロース及び／又はβ―１，４―グルカンの操作 - Google Patents

Description

本発明は一般的に、セルロース生合成に関与するポリペプチドをコードする単離された遺伝子、及びセンスもしくはアンチセンス配向において、又はリボザイム、同時抑制（co-suppression）又は遺伝子標的化分子として前記遺伝子を発現するトランスジェニック生物に関する。より具体的には、本発明は、セルロース生合成において重要である酵素、特にセルロース シンターゼ酵素、及びその相同体、類似体及び誘導体をコードする、アラビドプシス・サリアナ（Arabidopsis thaliana）、オリザ・サチバ（Oryza sativa）、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．（Brassica ssp．）、ゴシピウム・ヒルスタム（Gossypium hirsutum）及びユーカリプタスssp．（Eucalyptus ssp．）から単離された核酸分子、及び変更されたセルロース生合成特性を発現するトランスジェニック植物の生産のための前記分子の使用に関する。
本明細書において著者により言及される出版物の関係書類詳細は記載の最後で概略される。本明細書において高級ヌクレオチド及びアミノ酸配列についての配列番号は、関係書類の最後に定義される。
明細書を通して、特にことわらない限り、用語“含んで成る（comprise）”、又は変形体、たとえば“含んで成る（comprises）又は（comprising）”は、言及される要素もしくは完全体、又は複数の要素又は完全体群の包含を意味するが、しかしいづれか他の要素又は完全体もしくは複数の要素又は完全体群の排除を意味しないこと理解されるであろう。
セルロース、すなわち世界の最とも豊富な生物ポリマーは、細胞壁の構造骨格の多くを形成する限り、植物細胞壁の最も特徴的な成分である。セルロースは結晶性β−１，４−グルカン ミクロフィブリルから構成される。結晶性ミクロフィブリルは、非常に強く、そして酵素及び機械的分解に対する耐性を有し、動物及びヒト食品の栄養量、消化能力及び味の決定において重要な要因である。セルロースはまた、産業的に重要な植物繊維、たとえば中でも綿、アマ、アサ、ジュート、及び木材収穫物、たとえばユーカリプタスssp．及びピナスssp．（Pinus ssp．）の主たる構造成分であるので、植物におけるセルロース成分及び／又は量の操作から誘導するために相当な経済的利益が存在する。特に、変更されたセルロース含有率を有する食物及び繊維収穫物の生成が、高い所望の目的である。
セルロースの合成は、酵素セルロース シンターゼにより触媒される、先存するセルロース鎖へのヌクレオシド ジホスホグルコース、たとえばUDP−グルコースの形でのグルコース モノマーのβ−１，４−結合を包含する。
植物における機能的セルロース シンターゼの成分を同定するためのいくつかの試みは、そのようなアッセイにおいて生成されるβ−１，４−グルカン又は結晶性セルロースのレベルがこれまで、タンパク質配列決定のための酵素精製を可能にするために低過ぎるので、失敗している。細菌β−１，４−グルカン シンターゼ遺伝子と植物セルロース シンターゼ遺伝子との間の不十分な相同性がまた、細菌β−１，４−グルカン（セルロース）シンターゼの植物相同物を単離するためのアプローチとしてのハイブリダイゼーションの使用を妨げて来た。
さらに、植物からのセルロース シンターゼ酵素は多糖生合成に関与する他の精製され、そして特徴づけられた酵素と同じであるか、又はそれに機能的に関連していることを示すことは不可能であった。結果として、セルロース シンターゼ酵素は、植物から単離されておらず、そして本発明まで、植物セルロース シンターゼ酵素を機能的にコードする核酸分子は特徴づけられていない。
本発明までを導びく研究においては、本発明者は、セルロース生合成において不完全であるいくつかの新規変異体アラビドプシス・サリアナ植物を生成して来た。本発明者は、アラビドプシス・サリアナにおけるセルロース生合成に関与する、RSW１と称するセルロース シンターゼ遺伝子、及びオリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．，ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．における相同配列を単離している。本発明のその単離された核酸分子は、セルロース含有率及び構造が、特定の産業目的、たとえば中でも木材の高められた腐敗耐性、及び食品の変更された消化能力のために適切な広範囲の有用な繊維を生成するために植物において変性され得る手段を提供する。
従って、本発明の１つの観点は、セルロース生合成路のポリペプチドをコードする配列をコードするか、又はその配列に対して相補的であるヌクレオチドの配列を含んで成る単離された核酸分子、又はその機能的相同体、類似体又は誘導体を提供する。
本発明の核酸は、原核生物源又は真核生物源から誘導され得る。
当業者は、セルロース生成が触媒サブユニットの存在のみならず、またグルカン鎖の結晶化を好む配列中へのその活性化及び構成を必要とすることを気づくであろう。この構成は、線状配列を有する細菌、及びグルカン鎖のヘキサマ−クラスター又は“ロゼット”を有する高等植物間で根本的に異なる。細菌酵素の正しい構成及び活性化は、知られていないか、又は他方では、植物細胞に存在することが知られていない多くの要因、たとえば酵素複合体又はタンパク質に対して活性コンホメーションを付与するための特定の膜脂質、又は細菌ｃ−di−GMP活性化システムを必要とする。従って、真核細胞、たとえば植物への植物由来の配列の使用は、細菌由来の配列の使用に比較して、有意な利点を提供する。
従って、本発明は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）、アセトバクター・キシリナム（Acetobacter xylinum）又はアセトバクター・パステウリアナス（Acetobacter pasteurianus）セルロース シンターゼの触媒サブユニットをコードする既知の遺伝子、又はセルロースを操作するためへのそのような概知の細菌遺伝子及びポリペプチドの使用に拡張しない。
好ましくは、本発明の核酸分子は、真核生物に由来する。
本発明のより好ましい態様においては、本発明の単離された核酸分子は、植物セルロース シンターゼ又はその触媒サブユニット、又はその相同類似体又は誘導体をコードする。
より好ましくは、単離された核酸分子は、植物細胞の一次細胞壁に関連する植物セルロース シンターゼ ポリペプチドをコードする。他の好ましい態様においては、本発明の核酸分子は、植物細胞の二次細胞壁に通常関連する植物セルロース シンターゼ又はその触媒サブユニットをコードする。
より好ましい態様においては、本発明の核酸分子は、cDNA分子、ゲノムクローン、mRNA分子、又は合成オリゴヌクレオチド分子である。
特に好ましい態様においては、アラビドプシス・サリアナ、ゴシピウム・ヒルスタム（綿）、オリザ・サチバ（米）、ユーカリプタスssp．，ブラシカssp．小麦、大麦、トウモロコシ セルロース シンターゼ酵素又はその触媒サブユニットをコードする核酸分子をコードするか又はそれに対して相補的である単離された核酸分子、又はそのポリペプチド成分、相同体、類似体又は誘導体を提供する。
本明細書において例示されるように、本発明者は、細胞におけるセルロース及び／又はβ−１，４−グルカン及び／又はスターチレベルを変更するために特に有用であることが示されている特定のアラビドプシス タリアナRSW１遺伝子配列の他に、トウモロコシ、小麦、大麦、米、綿、ブラシカssp．及びユーカリプタスssp．におけるセルロース生合成遺伝子を固定した。
この後、用語“セルロース生合成路のポリペプチド”又は類似する用語は、植物におけるセルロース又はいづれかの関連するβ−１，４−グルカン ポリマーの生成を導びく１又は複数の生合成段階に関与するポリペプチド又はタンパク質、又はその一部、相同体、類似体又は誘導体を言及するであろう。本発明においては、セルロース生合成路のポリペプチドはまた、植物におけるセルロース又はいづれか関連するβ−１，４−グルカン ポリマーの生合成に寄与する活性酵素、及びそのような酵素のポリペプチド成分の両者を包含するであろう。本明細書において使用される場合、セルロース生合成路のポリペプチドは、セルロース シンターゼを包含する。当業者は、植物における他のセルロース生合成路ポリペプチドを気づくであろう。
用語“関連するβ−１，４−グルカン ポリマー”とは、セルロース ミクロフィブリルの成分の構造に類似するβ−１，４−結合モノマーの一次構造体から成るいづれかの炭水化物分子を包含し、ここで前記グルカン鎖の相対的配列又は相対的配置はセルロースのミクロフィブリルにおけるそれらの相的的配置とは異なる。本明細書において使用される場合、関連するβ−１，４−グルカン ポリマーは、個々のβ−１，４−グルカン ミクロフィブリルが植物のセルロース分子に見出されない逆平行又は他の相対的配置で配列されるそれらのβ−１，４−グルカン ポリマー、及びセルロース ミクロフィブリルを特徴づける抽出及び分解に欠する耐性を欠いているものとして記載されるそれらの非結晶性β−１，４−グルカンを包含する。
用語“セルロース シンターゼ”は、セルロース ミクロフィブリルへのβ−１，４−グルカン結合を触媒するために必要とされるポリペプチドを言及するであろう。
本明細書において、“遺伝子”とは、その広範な関係で言及され、そして次のものを包含する：
（ｉ）転写及び／又は翻訳調節配列、及び／又はコード領域及び／又は非翻訳配列（すなわちイントロン、５′−及び３′−未翻訳配列）から成る一般的なゲノム遺伝子；又は
（ii）前記遺伝子のコード領域（すなわちエキソン）及び５′−及び３′−未翻訳配列に対応するmRNA又はcDNA。
用語“遺伝子”はまた、機能的生成物のすべて又は一部をコードする合成又は融合分子を記載するためにも使用される。
本発明において、用語“セルロース遺伝子”又は“セルロース遺伝子配列”又は類似する用語は、セルロース生合成路のポリペプチドをコードし、そしてセルロース シンターゼ遺伝子を包含する、前記で定義されたようないづれかの遺伝子を言及するであろう。
用語“セルロース シンターゼ遺伝子”とは、セルロース シンターゼ活性を有する機能的酵素、すなわちセルロース ミクロフィブリルへのβ−１，４−グルカン結合を触媒する酵素の成分であるポリペプチドを特異的にコードするいづれかのセルロース遺伝子を意味するであろう。
好ましいセルロース遺伝子は、標準的組換え技法により天然に存在するセルロース遺伝子から誘導され得る。一般的に、セルロース遺伝子は、単一又は複数のヌクレオチド置換、欠失及び／又は付加を生成するために突然変異誘発され得る。本発明のセルロース シンターゼ遺伝子のヌクレオチド挿入誘導体は、５′及び３′末端融合、及び１又は複数のヌクレオチドの配列内挿入を包含する。挿入ヌクレオチド配列変異体は、得られる生成物の適切なスクリーニングによりランダム挿入もまた可能であるが、１又は複数のヌクレオチドが、ヌクレオチド配列における予定された部位中に導入される変異体である。欠失変異体は、配列からの１又は複数のヌクレオチドの除去により特徴づけられる。置換ヌクレオチド変異体は、配列における少なくとも１つのヌクレオチドが除去され、そして異なったヌクレオチドがその場所に挿入されている変異体である。そのような置換は、置換がコドンにより定義されるアミノ酸を変更しない“サイレント”であり得る。他方では、置換は、１つのアミノ酸をもう１つの類似する作用性アミノ酸、又は類似する電荷、極性又は疎水性のアミノ酸に変更するよう企画される。
本明細書において使用される場合、用語“〜に由来する”とは、特定の完全体又は完全体グループが特定される種に起因するが、しかし特定された源から直接的に必ずしも得られたものではないことを示す。
本発明のためには、ヌクレオチド配列の“相同体”とは、配列内の１又は複数のヌクレオチド置換、挿入、欠失又は再配置の発生にもかかわらず、本発明の核酸分子又はその相補的ヌクレオチド配列と実質的に同じである単離された核酸分子を意味する。
本明細書において示されるヌクレオチド配列の“類似体”とは、単離された核酸分子に通常存在しないいづれかの非ヌクレオチド成分、たとえば、中でも炭水化物、放射性化学物質、たとえば放射性ヌクレオチド、レポーター分子、たとえばDIG、アルカリ ホスファターゼ、又はホースラディシュペルオキシダーゼの存在にもかかわらず、本発明の核酸分子又はその相補的ヌクレオチド配列と実質的に同じである単離された核酸分子を言及するであろう。
本明細書に示されるヌクレオチド配列の“誘導体”は、前記配列又はその一部に対して有意な配列類似性を含むいづれかの単離された核酸分子を意味する。一般的に、本発明のヌクレオチド配列は、１又は複数のヌクレオチド置換、欠失及び／又は挿入を生成するために突然変異誘発にゆだねられ得る。本発明のヌクレオチド配列のヌクレオチド挿入誘導体は、５′及び３′末端挿入、及び１又は複数のヌクレオチド又はヌクレオチド類似体の配列内挿入を包含する。挿入ヌクレオチド配列変異体は、実施されるその得られる生成物の適切なスクリーニングによりランダム挿入もまた可能であるが、１又は複数のヌクレオチド又はヌクレオチド類似体が前記配列のヌクレオチド配列における予定された部位中に導入されている変異体である。欠失変異体は、ヌクレオチド配列からの１又は複数のヌクレオチドの除去により特徴づけられる。置換ヌクレオチド変異体は、配列中の少なくとも１つのヌクレオチドが除去され、そして異なったヌクレオチド又はヌクレオチド類似体がその場所に挿入されている変異体である。
本発明は、セルロース シンターゼ遺伝子の内因性細胞相補体（complement）への付加として細胞のゲノム中に組込まれる場合の単離された核酸分子に拡張する。前記組込まれた核酸分子は、対象の遺伝子配列の発現を調節するプロモーター配列を含むことができても又はできなくても良い。
本発明の単離された核酸分子は、いづれかの細胞、たとえば植物細胞、菌類細胞、昆虫細胞、酵母細胞又は細菌細胞中に導入され、そして発現され得る。当業者は、そのような細胞において発現を生ぜしめるためには、コドン使用法、又はプロモーター配列又は他の調節配列に対する必要とされるいづれかの修飾を気づくであろう。
本発明のもう１つの観点は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される配列のいづれか１又は複数の配列に対応するか又はそれに対して相補的な、又はそのすべて又は一部に対して、少なくとも約40％、より好ましくは少なくとも約55％、さらにより好ましくは少なくとも約65％、さらにより好ましくは少なくとも約75〜80％及びさらにより一層好ましくは少なくとも約85〜95％のヌクレオチド類似体を有するヌクレオチドの配列を含んで成る核酸分子に向けられる。
本発明のこの観点によれば、前記核酸分子は、植物におけるセルロース生合成路のポリペプチドをコードするヌクレオチド配列、又はその相同体、類似体又は誘導体をコードするか、あるいはそれに対して相補的であるかである。
好ましくは、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示されるいづれか１又は複数の配列に少なくとも40％関係する核酸分子は、植物セルロース シンターゼ、より好ましくはそれが由来する種の一次又は二次植物細胞壁に関与するセルロース シンターゼをコードする配列をコードするか又はそれに対して相補的であるヌクレオチド配列を含んで成る。
さらに、本発明のこの観点の核酸分子は、単子葉又は双子葉植物種に由来する。特に好ましい態様においては、核酸分子は、中でもアラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．，ゴシピウム・ヒルスタム（綿）又はユーカリプタスssp．に由来する。
命名法のためには、配列番号１に示されるヌクレオチド配列は、Ｔ20782と称するcDNA配列を含んで成り、そしてアラビドプシス・サリアナに由来する前記で定義されたようなセルロース遺伝子に関係する。配列番号２に示されるアミノ酸配列は、Ｔ20782によりコードされるポリペプチドに関する。
配列番号３に示されるヌクレオチド配列は、イントロン及びエキソンの両者を含む完全なアラビドプシス・タリアナ ゲノム遺伝子RSW１のヌクレオチド配列に関連する。配列番号３のヌクレオチド配列は、ゲノム遺伝子のエキソン１〜14を含んで成り、そしてその最初のおよそ1.9KbがRSW１プロモーター配列（配列番号３の位置1843−1850で推定上のTATAボックス型が存在する）を含んで成る2295bpの５′−未翻訳配列を含む。配列番号３に示されるヌクレオチド配列は、コスミド クローン23Ｈ12に由来する。この配列は、配列番号１及び５のゲノム遺伝子同等物でもある。
配列番号４に示されるヌクレオチド配列は、コスミド クローン12Ｃ４に由来する、RSW１のゲノム遺伝子変異体の部分ヌクレオチド配列に関する。配列番号４のヌクレオチド配列は、ゲノム遺伝子配列番号のエキソン１〜11及びエキソン12の一部を含んで成り、そして862bpの５′−未翻訳配列を含み、その約700個のヌクレオチドがRSW１プロモーター配列（配列番号４の位置668−673で推定上のTATAボックス型が存在する）を含んで成る。配列番号４に示されるゲノム遺伝子配列は、配列番号７に示されるcDNA配列（すなわちcDNAクローンAth−Ａ）の同等物である。
配列番号５に示されるヌクレオチド配列は、配列番号３に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子のcDNA同等物を含んで成る前記で定義されたようなセルロースに関する。配列番号６に示されるアミノ酸配列は、配列番号３及び５に示される野生型RSW１遺伝子配列によりコードされるポリペプチドに関する。
配列番号７に示されるヌクレオチド配列は、配列番号４に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子のcDNA同等物を含んで成る上記で定義されたようなセルロース遺伝子に関する。前記ヌクレオチド配列は、配列番号３及び５に示されるヌクレオチド配列の変異体である。配列番号８に示されるアミノ酸配列は、配列番号４及び６に示される野生型RSW１遺伝子によりコードされるポリペプチドに関する。
配列番号９に示されるヌクレオチド配列は、配列番号３及び５に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子のさらなる野生型変異体を含んで成る前記に定義されたようなセルロース遺伝子に関する。前記ヌクレオチド配列変異体はAth−Ｂと称す。配列番号10に示されるアミノ酸配列は、配列番号９に示される野生型RSW１遺伝子配列によりコードされるポリペプチドに関する。
配列番号11に示されるヌクレオチド配列は、アラビドプシス・サリアナrsw１遺伝子のcDNA同等物を含んで成る前記で定義されたようなセルロース遺伝子に関する。rsw１遺伝子は、Baskinなど（1992）により記載されるような放射状根膨張性表現型（radral swelling phenotype）を生成する変異体セルロース遺伝子である。本発明者は、rsw１遺伝子がまた、植物細胞において発現される場合、中でも、低められた花序（inflorescenre）の長さ、低められた生殖能力、ゆがんだ（misshapen）上皮細胞、減じられたセルロース含有率、及び非結晶性β−１，４−グルカンの蓄積を生成することを本明細書において示している。rsw１ヌクレオチド配列は、配列番号３及び５に示されるヌクレオチド配列のさらなる変異体である。配列番号12に示されるアミノ酸配列は、配列番号11に示される変異体rsw１遺伝子配列によりコードされるrsw１ポリペプチドに関する。
配列番号13に示されるヌクレオチド配列は、オリザ・サチバRSW１又はRSW１−様遺伝子のcDNA同等物を含んで成る上記で定義されたようなセルロース遺伝子に関する。前記ヌクレオチド配列は、本明細書に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１及びrsw１ヌクレオチド配列（配列番号１，３，４，５，７，９及び11）に密接に関係する。配列番号14に示されるアミノ酸配列は、配列番号13に示されるRSW１又はRSW１−様遺伝子配列によりコードされるポリヌクレオチドに関係する。
当業者は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される１又は複数のヌクレオチド配列を提供される場合、追加のセルロース遺伝子の、本明細書に特別に記載される遺伝子、たとえば追加のcDNA配列及びゲノム遺伝子同等物への単離のための方法に気づくであろう。特に、ハイブリダイゼーションが、中でも、ゲノム ライブラリー（特に、プロモーター配列を包含する遺伝子の完全な５′上流領域、及び完全なコード領域及び３′−未翻訳配列を含むゲノム クローン）及び／又は合成オリゴヌクレオチド分子からcDNAクローン、mRNA分子、ゲノムクローンを単離するために、本明細書に示されるヌクレオチド配列に由来する少なくとも10個の隣接したヌクレオチド及び好ましくは50個の隣接したヌクレオチドを含んで成る１又は複数の核酸ハイブリダイゼーションプローブを用いて実施され得る。本発明はそのような関連する配列に明確に及んでいる。
本発明はさらに、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１つ又は複数の配列のいづれかの相同体、類似体又は誘導体にも関する。
本発明のさらなる観点は、植物におけるセルロース生合成のために必要とされ、そしていづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される核酸分子又はその相補的鎖に対して少なくとも低い緊縮条件下でハイブリダイズすることができるポリペプチド、たとえばセルロース シンターゼをコードする核酸分子をコードするか又はそれに対して相補的である核酸分子に関する。
この態様の例示として、本発明者は、低い緊縮条件下でのハイブリダイゼーションにより、配列番号３に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子配列の変異体を単離することが可能であることを示した。そのような変異体は、ゴシピウム・ヒルスタム（綿）、ユーカリプタスssp．及びＡ．サリアナに由来する関連配列を含む。追加の変異体は、本発明により明確に包含される。
好ましくは、前記核酸分子はさらに、セルロース シンターゼ ポリペプチド、より好ましくは、前記核酸が由来する植物種の一次又は二次植物細胞壁に関連するセルロース シンターゼをコードするヌクレオチド配列をコードするか又はそれに対して相補的であるヌクレオチド配列を含んで成る。
より好ましくは、本発明のこの観点の核酸分子は、植物におけるセルロース生合成のために必要とされ、そしていづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される核酸分子又はその相補的鎖に対して少なくとも中位の緊縮条件下でハイブリダイズすることができるポリペプチド、たとえばセルロース シンターゼをコードする核酸分子をコードするか又はそれに対して相補的である。
さらに好ましくは、本発明のこの観点の核酸分子は、植物におけるセルロース生合成のために必要とされ、そしていづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される核酸分子又はその相補的鎖に少なくとも高い緊縮条件下でハイブリダイズすることができるポリペプチド、たとえばセルロース シンターゼをコードする核酸分子をコードするか又はそれに対して相補的である。
緊縮性のレベルを定義のためには、低い緊縮性は、６×SSC緩衝液、0.1％（ｗ／ｖ）のSDSにおいて28℃で実施されるハイブリダイゼーション及び／又は洗浄であるものとして本明細書において定義される。一般的に、前記緊縮性は、SSC緩衝液の濃度を低め、そして／又はSDSの濃度を高め、そして／又はハイブリダイゼーション及び／又は洗浄の温度を高めることによって高められる。中位の緊縮性は、42℃〜65℃で、0.2×SSC〜２×SSC緩衝液、0.1％（ｗ／ｖ）のSDSにおいて実施されるハイブリダイゼーション及び／又は洗浄を含んで成り、そして高い緊縮性は少なくとも55℃の温度で0.1×SSC〜0.2×SSC緩衝液、0.1％（ｗ／ｖ）のSDSにおいて実施されるハイブリダイゼーション及び／又は洗浄を含んで成る。ハイブリダイゼーション及び洗浄の条件は、当業者により十分に理解される。さらなる説明のためには、核酸分子間のハイブリダイゼーションに影響を及ぼすパラメーターに関する言及が、引用により本明細書に組込まれるAusubelなど、（1987）のページ２．10．８〜２．10．16に見出される。
本発明のさらにより好ましい態様においては、単離された核酸分子はさらに、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に由来する少なくとも10個の隣接したヌクレオチドに対して少なくとも40％の同一性であるヌクレオチドの配列、又はその相補的鎖を含んで成る。
さらにより好ましくは、単離された核酸分子はさらに、１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される配列に由来する少なくとも50個の隣接したヌクレオチドに対して少なくとも40％の同一性であるヌクレオチドの配列、又はその相補的鎖を含んで成る。
本発明は特に、前記で定義されたようなセルロース遺伝子、たとえばセルロース シンターゼ遺伝子、たとえば中でも、アラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム又はユーカリプタスssp．のセルロース シンターゼ遺伝子（但し、それらだけには限定されない）として機能することができる核酸分子に向けられる。本発明は、それらの植物種に由来する本明細書に特定される追加のセルロース遺伝子にも関する。
本発明はさらに、セルロース遺伝子の他の源、たとえば植物起源の組織及び培養された細胞（但し、それらだけに限定されない）にも関する。この態様の好ましい植物種は、アザ、ジュート、アマ及び木材植物、たとえば、中でもピナスssp．（Pinus ssp．）、ポプラスssp．（Populus ssp．）、ピセア（Picea spp．）（但し、それらだけには限定されない）を包含する。
セルロース生合成に関与するポリペプチドをコードする配列をコードするか又はそれに対して相補的である遺伝子配列は、天然に存在する配列に対応するか、又は１又は複数のヌクレオチド置換、欠失及び／又は付加により異なることができる。従って、本発明は、セルロース遺伝子、及びそのいづれかの機能的遺伝子、変異体、誘導体、一部、フラグメント、相同体又は類似体、又は前記遺伝子の酵素又は化学的合成、又は免疫学的に相互作用する組換え分子の生成において遺伝子プローブ又はプライマー配列として少なくとも有用である非機能的分子にも及ぶ。
特に好ましい態様においては、セルロース遺伝子配列は、同じ種の植物細胞、組織又は器官型から又は他の植物種の細胞、組織又は器官から類似する遺伝子を固定し、そして単離するために使用される。
この態様によれば、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列、たとえばセルロース シンターゼ又はセルロース シンターゼ様遺伝子を同定するための方法が企画され、ここで前記方法は、ゲノムDNA又はmRNA又はcDNAと、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13を含んで成る第１セルロース遺伝子配列、又は前記第１配列の少なくとも10個の隣接したヌクレオチドに由来するその相補的配列、相同体、類似体又は誘導体のハイブリダイゼーション効果量とを接触せしめ、そして次に、前記ハイブリダイゼーションを検出することを含んで成る。
好ましくは、前記第１遺伝子配列は、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に由来する、少なくとも50個の隣接したヌクレオチド、さらにより好ましくは少なくとも100個の隣接したヌクレオチド、及びさらにより好ましくは少なくとも500個の隣接したヌクレオチド、又はその相補的鎖、相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列は、ウィルス粒子、バクテリオファージ粒子、酵母細胞、動物細胞又は植物細胞において、組換え形で存在することができる。好ましくは、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列は、植物種、たとえば中でも、アラビドプシス・サリアナ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．，ゴシピウム・ヒルスタム（綿）、オリザ・サチバ（米）、ユーカリプタスssp．，アサ、ジュート、アマ、及び木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，ピセアspp．（但し、それらだけには限定されない）を含んで成る群から選択された単子葉植物又は双子葉植物に由来する。
より好ましくは、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列は、繊維又は木材産業において有用である植物、たとえばゴシピウム・ヒルスタム（綿）、アサ、ジュート、アマ、ユーカリプタスssp．、又はピナスssp．に由来する。他方では、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列は、穀物又はスターチ産業において有用である植物、たとえば小麦、大麦、米又はトウモロコシに由来する。
特に好ましい態様においては、第１セルロース遺伝子配列は、同定可能なシグナルを付与することができるレポーター分子（たとえば、放射性同位体、たとえば³²Ｐ又は³⁵Ｓ又はビオチニル化された分子）によりラベルされる。
本発明の他の方法は、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列、又はその機能的部分を含んで成る核酸“鋳型分子”に２種の核酸“プライマー分子”をハイブリダイズすることを包含し、ここで前記第１プライマーは、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に由来する隣接したヌクレオチド、又はその相同体、類似体、又は誘導体を含んで成り、そして前記第２プライマーはいづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に対して相補的な隣接したヌクレオチドを含んで成る。前記鋳型分子の特定の核酸分子コピーは、ポリメラーゼ鎖反応、すなわち当業者に良く知られている技法により酵素的に増幅される。
好ましい態様においては、個々の核酸プライマー分子は、少なくとも10個の長さのヌクレオチド、より好ましくは少なくとも20個の長さのヌクレオチド、さらにより好ましくは少なくとも30個の長さのヌクレオチド、さらにより好ましくは少なくとも40個の長さのヌクレオチド、及びさらにより一層好ましくは少なくとも50個の長さのヌクレオチドである。
さらに、核酸プライマー分子は、ヌクレオチド アデニン、シチジン、グアニン、チミジンもしくはイノシン、又はそれが使用される環境下で鋳型分子への前記プライマーのハイブリダイゼーションに対する阻害効果を有することなしにポリヌクレオチド分子中に少なくとも組込まれ得る前記ヌクレオチドの機能的類似体又は誘導体の組合せから成る。
さらに、核酸プライマー分子の１つ又は両者は、他の核酸プライマー分子の水性混合物、たとえば１又は複数のヌクレオチド置換又は欠失によりお互い異なる変性プライマー配列の混合物に含まれ得る。他方では、核酸プライマー分子の１つ又は両者は、実質的に純粋な形で存在することができる。
核酸鋳型分子は、種々の粒子、バクテリオファージ粒子、酵母細胞、動物細胞又は植物細胞において、組換え形で存在することができる。好ましくは、核酸鋳型分子は、植物細胞、組織又は器官、特に、中でもアラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ又は木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，ピセアspp．（但し、それらだけには限定されない）から成る群から選択された植物に由来する細胞、組織又は器官に由来する。
当業者は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１又は複数の配列に示されるヌクレオチド配列を提供される場合、関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列を単離するために使用され得る基本的なポリメラーゼ鎖反応法の多くの既知の変法が存在することを気づくであろう。そのような変法は、たとえばMcPhersonなど（1991）に論じられている。本発明は、本発明により具体化されたヌクレオチド配列を用いての関連するセルロース遺伝子又は関連するセルロース遺伝子配列の単離へのそのようなすべての変法の使用にも及ぶ。
さらなる態様のいづれかの単離された核酸分子は、プライマー分子又はハイブリダイゼーション プローブの調製を促進し、又は組換え遺伝子生成物の生成のために、プラスミド又はバクテリオファージ中にクローン化され得る。そのような組換えプラスミド、コスミド、バクテリオファージ分子又は他の組換え分子の生成のための方法は、当業者に良く知られており、そして過度な実験を伴わないで達成され得る。従って、本発明はさらに、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１又は複数の分子に示されるヌクレオチド配列、又はその相補的配列、相同体、類似体、又は誘導体を含んで成るいづれかの組換えプラスミド、バクテリオファージ、コスミド又は他の組換え分子にも及んでいる。
本発明の核酸分子はまた、セルロース遺伝子配列を発現する遺伝子構造体の開発のためにも有用であり、それにより、中でもアラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ又は木質植物、たとえばピナスssp．，ボプラスssp．，ピセアspp．から成る群から選択された植物においてセルロース生合成に関与する遺伝子の高められた発現を提供する。本発明は特に、中でも綿、アサ、ジュート、アマ、ユーカリプタスssp．及びピナスssp．におけるセルロース生合成の修飾に関する。
本発明者は、本明細書に開示される遺伝子配列が、発現される場合、特に植物細胞において発現される場合、セルロースレベルを変更する他に、非結晶性β−１，４−グルカンのレベルを変性するためにも使用され得ることを発見した。特に、アラビドプシス・サリ
アナrsw１変異体は、同一条件下で増殖せしめられた野生型植物に比較して、31℃で増殖される場合、非結晶性β−１，４−グルカンのレベルを高めた。単に21℃で増殖されたトランスジェニック植物におけるアンチセンス配向での本明細書に記載される遺伝子配列の発現は、rsw１変異体表現型の多くの観点を再生することが示される。
従って、本発明は、アラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ及び木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．及びピナスssp．を含んで成る群から選択された植物における非結晶性β−１，４−グルカン生合成の修飾に明確に拡張する。本発明は特に、中でも、綿、アサ、ジュート、アマ、ユーカリプタスssp．及びピナスssp．における非結晶性β−１，４−グルカン生合成の修飾に関する。
本発明はさらに、非結晶性β−１，４−グルカンの生成及び使用、及び植物細胞壁、又は綿繊維又は木材繊維の性質を修飾するためへの前記グルカンの使用にも及ぶ。そのような修飾された性質は本明細書に記載される（例13）。
本発明者は、rsw１変異体が野生型植物に比較して変更された炭素分配を有し、それが有意に高い澱粉レベルをもたらすことを発見した。本明細書において供給される単離された核酸分子は細胞における炭素分配を変更するためにさらに有用である。特に、本発明は、アンチセンス配向で本発明の核酸分子を発現し、又は他方では、本発明の核酸配列を含んで成るリポザイム又は同時抑制分子を発現するトランスジェニック植物における高められた澱粉生成に関する。
本発明はさらに、セルロース生成がここで高められるようなセンス配向で本発明の核酸分子を発現するトランスジェニック植物における低められた澱粉及び／又は非結晶性β−１，４−グルカン生成物にも関する。
植物細胞におけるセルロース生成を高めることが所望される場合、セルロース遺伝子のコード領域は、セルロース遺伝子生成物がプロモーター配列の抑制下で発現され得るよう、センス配向下で、前記プロモーターの後ろに、作用可能的に配置される。好ましい態様においては、セルロース遺伝子配列は、セルロース シンターゼ ゲノム配列、cDNA分子又はタンパク質コード配列である。
特に好ましい態様においては、セルロース遺伝子配列は、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示される配列と実質的に同じヌクレオチドの配列、又はその相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
セルロースの含有率を低め、又は非結晶性β−１，４−グルカンの含有率を高めることが所望される場合、本発明の核酸分子は、適切なプロモーターの制御下でアンチセンス配向で発現される。さらに、本発明の核酸分子はまた、リボザイム分子の開発のために又はセルロース遺伝子の同時抑制においても有用である。細胞、たとえば植物細胞、菌類細胞、動物細胞、酵母細胞又は細菌細胞における、セルロース遺伝子を含んで成るアンチセンス、リボザイム又は同時抑制分子の発現はまた、植物繊維からの代謝物の溶解性、消化能力又は抽出能力を高めることができ、又はセルロース以外のいづれかの二次代謝物（たとえば澱粉又はスクロース）のための前駆体としての炭素の利用性を高めることもできる。内因性セルロース遺伝子を標的化することによって、又はセルロース以外のいづれかの二次代謝物のための前駆体としての炭素の利用性を高める。内因セルロース遺伝子を標的化することによって、発現が、植物細胞、菌類細胞、昆虫細胞、動物細胞、酵母細胞又は細菌細胞及びより特定には植物細胞の一次又は二次細胞壁における減じられたセルロースの沈着をもたらすレベルに縮小され、減じられ、又は低められる。さらに、又は他方では、非結晶性β−１，４−グルカンの含有率が、そのような細胞において高められる。
同時抑制は、１又は複数の前記遺伝子のコピー、又は実質的に類似する遺伝子の１又は複数のコピーが細胞中に導入される場合に生じる内因性遺伝子の発現の低下である。本発明はまた、セルロース遺伝子生成物、たとえばセルロース シンターゼ（但し、それだけには限定されない）をコードする遺伝子の発現を阻害するためへの同時抑制の使用にも及ぶ。好ましくは、本発明の同時抑制分子は、セルロース シンターゼ酵素をコードする植物mRNA分子、たとえば植物、菌類又は細菌セルロース シンターゼmRNA、及びより好ましくは、中でもアラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリアタスssp．、アサ、ジュート、アマ及び木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，又はピセアspp．に由来する植物mRNAを標的とする。
特に好ましい態様においては、同時抑制分子により標的化される遺伝子は、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13に示されるヌクレオチドの配列、又はその相補体、相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
本発明においては、アンチセンス分子は、核遺伝子の相補的鎖から、セルロース生合成路のポリペプチド成分に翻訳され得る“センス”mRNA分子を生成するために通常転写される分子に転写されるRNA分子である。従って、アンチセンス分子は、センス セルロース遺伝子又はその一部から転写されるmRNAに対して相補的である。本発明のアンチセンス分子の作用の態様はいづれか特定の機構に制限されないが、アンチセンスRNA分子は、センスmRNAとの塩基対合により二本鎖mRNAを形成する能力を有し、これがセンスmRNAの翻訳及びポリペプチド遺伝子生成物の続く合成を妨げることができる。
好ましくは、本発明のアンチセンス分子は、セルロース遺伝子生成物、たとえばセルロース シンターゼをコードする植物mRNA分子を標的とする。好ましくは、本発明のアンチセンス分子は、セルロース シンターゼ酵素をコードする植物mRNA分子、たとえば中でも、アラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ、又は木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，又はピセアspp．に由来する植物mRNAを標的とする。
特に好ましい態様においては、本発明のアンチセンス分子は、いづれか１又は複数の配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13によりコードされるmRNA分子、又はその相同体、類似体又は誘導体を標的とする。
リボザイムは、標的センスmRNAにおいてそれぞれ少なくとも５個の連続したヌクレオチドを有する２つの領域に対して相補的なハイブリダイジング領域を含んで成る合成RNA分子である。さらに、リボザイムは、標的センスmRNAを自触媒的に分解する高い特異性のエンドリボヌクレアーゼ活性を有する。リボザイムの機能の完全な説明は、Haseloff and Gerlach（1988）により示され、そして国際特許出願番号WO89／05852号に含まれる。
本発明はセルロース遺伝子生成物をコードするセンスmRNAを標的にするリボザイムに及び、それにより前記センスmRNAにハイブリダイズし、そしてそれを分解し、その結果、それは機能的ポリペプチド生成物を合成するためにもはや翻訳され得なくなる。好ましくは、本発明のリボザイム分子は、セルロース シンターゼ酵素をコードする植物mRNA分子、たとえば、アラビドプシス・サリアナ、ゴシピウム・ヒルスタム（綿）、オリザ・サチバ（米）、ユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ、又は木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，又はピセアspp．に由来する植物mRNAを標的とする。
特に好ましい態様においては、リボザイム分子は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいずれか１つ又は複数の配列によりコードされるmRNA、又はその相同体、類似体又は誘導体を標的とするであろう。
この態様によれば、本発明は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１つ又は複数の配列に由来する少なくとも５個の隣接したヌクレオチド塩基、又はその相補的ヌクレオチド配列又はその相同体、類似体又は誘導体を含んで成るリボザイム又はアンチセンス分子を提供し、ここで前記アンチセンス又はリボザイム分子はその翻訳を低めるためにセルロース遺伝子生成物をコードするセンスmRNAと水素結合された複合体を形成することができる。
好ましい態様において、アンチセンス又はリボザイム分子は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13の１又は複数の配列に由来する少なくとも10〜20個の隣接したヌクレオチド又はその相補的ヌクレオチド配列、又は相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。好ましいアンチセンス及び／又はリボザイム分子は標的分子の少なくとも約10〜20個のヌクレオチドにハイブリダイズするけれども、本発明は、少なくとも50〜100個の長さの塩基対にハイブリダイズすることができる分子、又はセルロース遺伝子、たとえばセルロース シンターゼ遺伝子によりコードされる十分な長さ又は実質的に十分な長さのmRNAにハイブリダイズすることができる分子にも及ぶ。
当業者は、本発明のアンチセンス又はリボザイム分子を選択し、又は調製するための必要な条件を気づくであろう。
一定の修飾、たとえば中でもヌクレオチド置換が、セルロース遺伝子生成物、たとえばセルロース シンターゼをコードする遺伝子の発現の阻害においてアンチセンス及び／又はリボザイム分子の効能を破壊しないで、本発明の前記分子に行なわれ得ることは、当業界において理解されている。従って、前記セルロース シンターゼをコードする遺伝子のいづれかのヌクレオチド配列変異体、相同体、類似体又はフラグメントを包含することは本発明の範囲内であり、この唯一の必要条件は、前記ヌクレオチド配列変異体が、転写される場合、セルロース遺伝子生成物をコードするセンスmRNA分子にハイブリダイズすることができるアンチセンス及び／又はリボザイム分子を生成することである。
遺伝子標的化は、それがハイブリダイズする関連するDNA配列による細胞内の内因性遺伝子配列の置換であり、それにより、前記内因性遺伝子の形及び／又は機能、及び細胞の続く表現型を変更する。この態様によれば、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１又は複数の配列により定義されるDNA配列の少なくとも一部、又は関連するセルロース遺伝子配列が、内因性セルロース遺伝子を含む標的細胞中に導入され、それにより前記内因性セルロース遺伝子を置換する。この態様によれば、前記セルロース遺伝子配列のポリペプチド生成物は、異なった触媒活性及び／又は発現特徴を有し、標的細胞において変性されたセルロース沈着を生成する。本発明の特に好ましい態様においては、植物の内因性セルロース遺伝子が、非結晶性β−１，４−グルカンポリマーを単に生成することができ、又は他方では、β−１，４−グルカンポリマーがお互いに対して逆平行形状で配置されている、合成繊維、たとえばレーヨンに類似する性質を有する修飾されたセルロースを生成できる遺伝子により置換される。
本発明は、配列番号１，３，４，５，７，９，11又は13のいづれか１又は複数の配列に示される配列に対して同一であるか又はその配列に対して相補的であるセルロース遺伝子配列、又はその機能的誘導体、一部、相同体又は類似体の発現を促進するよう企画された遺伝子構造体、又は前記遺伝子配列を含む、センス分子、アンチセンス分子、リボザイム分子、同時抑制分子、又は遺伝子標的化分子の発現を促進するよう企画された遺伝子構造体に及ぶ。
本発明の前記遺伝子構造体は、原核又は真核細胞、好ましくは植物細胞における前記核酸分子の発現を調節できるプロモーター配列の制御下で操作可能的に配置される、前記センス、アンチセンス、又はリボザイム、又は同時抑制核酸分子、又は遺伝子標的化分子を含んで成る。前記遺伝子構造体は任意には、プロモーター及びセンス、又はアンチセンス、又は同時抑制又は遺伝子標的化核酸分子の他に、ターミネーター配列を含んで成る。
用語“ターミネーター”とは、転写の終結を表示する転写単位の最後でのDNA配列を言及する。ターミネーターは、一次転写体の３′−末端へのポリアデニレート配列の付加を促進する、ポリアデニル化シグナルを含む３′−非翻訳DNA配列である。植物細胞において活性的なターミネーターは知られており、そして文献に記載されている。それらは、細菌、菌類、ウィルス、動物及び／又は植物から単離され得る。本発明の遺伝子構造体への使用のために特に適切なターミネーターの例は、アグロバクテリウム・ツメファシエンス（Agrobacterium tumefaciens）のノパリン シンターゼ（NOS）遺伝子ターミネーター、カリフラワー モザイクウィルス（CaMV）35Ｓ遺伝子のターミネーター、及びゼア マイス（Zea mays）からのZein遺伝子ターミネーターを包含する。
“プロモーター”に関する本明細書における言及は、その広範な文脈で理解されるべきであり、そしてCCAATボックス配列、及び進行性（developmental）及び／又は外部刺激（external stimuli）に応答して、又は組織特異的態様で遺伝子発現を変更する追加の調節要素（すなわち、上流の活性化配列、エンハンサー及びサイレンサー）を伴って、又はそれらを伴わないで、正確な転写開始のために必要とされるTATAボックスを包含する、従来のゲノム遺伝子の転写調節配列を包含する。プロモーターは通常、構造遺伝子（その発現をそのプロモーターが調節する）の上流又は５′側に位置するが、しかし必ずしもそうではない。さらに、プロモーターを含んで成る調節要素は通常、前記遺伝子の転写の開始部位の２kb以内に位置する。
本発明において、用語“プロモーター”とはまた、植物細胞における合成又は融合分子、又は前記センス、アンチセンス、又はリボゾーム又は同時抑制核酸分子の発現を提供し、活性化し、又は増強する誘導体を記載するためにも使用される。好ましいプロモーターは、センス、アンチセンス、リボザイム又は同時抑制分子の発現をさらに増強するために、及び／又は前記センス、アンチセンス又はリボザイム、又は同時抑制又は遺伝子標的化分子の空間的発現及び／又は一時的な発現を変更するために、１又は複数の特定の調節要素の追加のコピーを含むことができる。たとえば、銅誘発能力（copper inducihility）を付与する調節要素は、センス又はアンチセンス、又はリボザイム、又は同時抑制又は遺伝子標的化分子の発現を駆動する異種プロモーター配列に隣接して配置され得、それにより、前記分子の発現に基づいて銅誘発能力を付与する。
プロモーター配列の制御下でのセンス又はリボザイム、又はアンチセンス、又は同時抑制、又は遺伝子標的化分子の配置は、発現がそのプロモーター配列により制御されるような前記分子の配置を意味する。プロモーターは一般的に、それらが制御する遺伝子の５′側（上端）に位置する。異種プロモーター／構造遺伝子組合せの構成においては、一般的に、プロモーターと、それがその天然において制御する遺伝子、すなわちプロモーターが由来する遺伝子との間の距離とほぼ同じであるように、遺伝子転写開始部位からの距離でプロモーターを配置することが好ましい。当業界において知られているように、この距離のいくらかの変動は、プロモーター機能の損失を伴わないで適応され得る。同様に、その制御下に配置されるべき異種遺伝子に関しての調節配列要素の好ましい位置は、その天然における要素、すなわちそれが由来する遺伝子、の位置により定義される。再び、当業界において知られているように、この距離のいくらかの変動もまた存在し得る。
本発明の遺伝子構造体への使用のために適切なプロモーターの例は、原核又は真核細胞において機能することができるウィルス、菌類、細菌、動物及び植物由来のプロモーターを包含する。好ましいプロモーターは、中でも植物細胞、菌類細胞、昆虫細胞、酵母細胞、動物細胞又は細菌細胞における本発明の対象セルロース遺伝子の発現を調節できるプロモーターである。特に好ましいプロモーターは、植物細胞において対象の核酸分子の発現を調節できる。そのプロモーターは、発現が生じる組織に対して、又は発現が生じる進行段階に対して、又は外部刺激、たとえば中でも、生理的ストレス、又は植物病原体、又は金属イオンに応答して、前記分子の発現を構成的又は分別的に調節することができる。好ましくは、プロモーターは、植物細胞において、センス、リボザイム、アンチセンス、同時抑制分子又は遺伝子標的化の発現を調節することができる。好ましいプロモーターの例は、CaMV35Ｓプロモーター、NOSプロモーター、オクトピン シンターゼ（OCS）プロモーター及び同様のものを包含する。
最とも好ましい態様においては、プロモーターは、いづれかの植物細胞、たとえば中でも、アラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ、又は木質植物、たとえばピナスssp．，ポプラスssp．，又はピセアspp．から成る群から選択された植物において発現することができる。
特に好ましい態様においては、プロモーターは、セルロース遺伝子生成物をコードするゲノムクローン、特に配列番号３又は４に示される配列に含まれるプロモーターに由来し得る。好ましくは、プロモーター配列は、配列番号３のヌクレオチド１〜約1900又は配列番号４のヌクレオチド１〜約700、又は少なくとも低い緊縮条件下でそれらにハイブリダイズできる相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
任意には、本発明の遺伝子構造体はさらに、ターミネータ配列を含んで成る。
この態様の例示においては、配列番号３に示されるヌクレオチドの単離されたヌクレオチド配列を含んで成る二元遺伝子構造体が供給される。CaMV35Ｓプロモーターと作用可能的に連結して配置される、アンチセンス配向での配列番号１に示されるヌクレオチドの単離されたヌクレオチド配列を含んで成る遺伝子構造体がまた供給される。
本発明において、用語“〜と作用可能的に連結して”とは、単離されたヌクレオチド配列の発現が、お互いからの配列の相対的物理学的距離又はお互いに対するそれらの相対的配向にかかわらず、それが連結されるプロモーター配列の制御下にあることを意味する。
本発明の他の態様は、細胞壁が増殖する場合、たとえば細胞増殖又は細胞分裂の間の段階での植物細胞の増殖の初期において、ポリペプチドの発現を方向づけることができる、プロモーター、又はその機能的誘導体、一部、フラグメント、相同体又は類似体を含んで成る遺伝子構造体に向けられる。特に好ましい態様においては、プロモーターは、配列番号３又は４に示される配列に含まれる。好ましくは、プロモーター配列は、配列番号３のヌクレオチド１〜約1900、又は配列番号４のヌクレオチド１〜約700、又は少なくとも低い緊縮条件下でそれらにハイブリダイズすることができる相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
ポリペプチドは、遺伝子、たとえば細菌β−グルクロニダーゼ遺伝子又はクロラムフェニコール アセチルトランスフェラーゼ遺伝子、又は他方では、ホタル ルシフェラーゼ遺伝子によりコードされるレポーター分子であり得る。他方では、そのポリペプチドは、植物細胞において発現できるセルロース遺伝子の通常な補体と組合して配置される場合、その植物細胞において修飾されたセルロースを生成できる遺伝子によりコードされ得、又はそれは細菌又は菌類源から得られたセルロース様遺伝子又は植物源から得られたセルロース遺伝子であり得る。
本発明の遺伝子構造体は特に、変更されたセルロース含有率又は構造を有する穀物植物の生成において有用である。特に、セルロース沈着の速度が、前記１又は複数のアンチセンス、リボザイム又は同時抑制分子を植物中に移行することによって、遅められ、植物中の全体のセルロース含有率の低下を導びき、又は他方では、同じか又は類似する最終結果が、遺伝子標的化アプローチを用いて、内因性セルロース遺伝子を不活性又は修飾されたセルロース遺伝子により置換することによって達成され得る。植物におけるセルロース含有率の低下に由来する利点は、食物及び飼料穀類、たとえば前記穀物の改良された液化能力が所望される、中でもトウモロコシ、小麦、大麦、ライ麦、米、キビ又はモロコシ（但し、それらだけには限定されない）において特に明らかである。前述のアンチセンス、リボザイム又は同時抑制分子はまた、高められた炭素がセルロースの形で沈着するよりもむしろ、増殖のために利用できるよう、変更された炭素隔壁を有する植物の生成においても有用である。
他方では、“センス”配向での及び強いプロモーターの制御下でのセルロース遺伝子の追加のコピーの植物中への導入は、高められたセルロース含有率又はセルロース生合成のより急速な速度を有する植物の生成のために有用である。従って、そのような植物は、広範囲の所望する形質、たとえば繊維、細胞及び植物の変性された強さ及び／又は形状及び／又は性質、化学的、物理的又は環境的な応力、たとえば脱水重金属（たとえばカドニウム）、冷たさ、熱又は風に対する高められた保護性、病原体、たとえば植物の侵入／感染の間、細胞壁バリヤーを物理的に侵入する、昆虫、線虫及び同様のものによる攻撃に対する高められた耐性を示すことができる。
他方では、変更された物理的性質を有する植物の生成は、変更されたセルロース遺伝子のそれらへの導入により可能にされる。そのような植物は、非結晶性であるか又は変更された結晶性を示すβ−１，４−グルカンを生成することができる。そのような植物はまた、広範囲の所望する形質、たとえば変更された食用繊維含有率、変更された消化能力及び分解能力、又は変更された抽出性質を有する植物の生成（但し、それらだけには限定されない）を示すことができる。
さらに、“センス”配向で植物セルロース遺伝子を含んで成る遺伝子構造体は、植物に存在するセルロース遺伝子の存在範囲を補足するために使用され得、それにより、前記植物の細胞壁に沈着されるセルロースの組成又は沈着のタイミングを変更する。好ましい態様においては、１つの植物種からのセルロース遺伝子又は非植物種からのβ−１，４−グルカン シンターゼ遺伝子が、異なった種の植物を形質転換するために使用され、それにより、第２の言及された植物種への新規セルロース生合成代謝を導入する。
関連する態様においては、もう１つのセルロース遺伝子生成物に融合される１つのセルロース遺伝子生成物からの活性部位を含む組換え融合ポリペプチドが生成され得、ここで、前記融合ポリペプチドは、それが由来する“親”ポリペプチドに比較して、新規の触媒性質を示す。そのような融合ポリペプチドは、完全な融合ポリペプチドを発現できる組換えDNAを前記植物中に導することによって；又は他方では、DNAレベルでの組換えがインビボで生じ、そして得られる遺伝子が組換え融合ポリペプチドを発現することができる遺伝子標的化アプローチにより、当業者に既知の従来の組換えDNA技法により生成され得る。
本発明は、すべてのトランスジェニック方法、及び遺伝子構造体を包含する前述の生成物に及ぶ。
本発明のセンス、アンチセンス、リボザイム又は同時抑制分子を担持する組換えDNA分子、及び／又は前記のものを含んで成る遺伝子構造体が植物組織中に導入され得、それにより、当業者に既知の種々の技法により“トランスジェニック植物”を生成する。一定の植物種又は特定タイプの植物組織のために使用される技法は、既知の好都合な技法に依存する。植物組織中への組換えDNAを導入するための手段は、形質転換（Paszkowskiなど．，1984）、エレクトロポレーション（Frommなど．，1985），DNAのマイクロインジェクション（Crosswayなど．，1986）又は植物組織へのアグロバクテリウムからのＴ−DNA−介入トランスファーを包含するが、但しそれらだけには限定されない。典型的なＴ−DNAベクターシステムは、次の文献に記載されている：Anなど．，（1985）；Herrera-Estrellaなど．（1983ａ，ｂ）；Herrera-Estrellaなど．（1985）。植物組織中に導入された後、その導入された遺伝子の発現は過渡的な発現システムにおいてアッセイされ得、又はそれは、植物ゲノム内への安定した組込みのために、選択の後に決定され得る。植物組織のインビトロ培養物のたの、及び多くの場合、完全な植物への再生のための技法は知られている。始めに形質転換された植物からの導入された遺伝子の商業的に有用な栽培品種への移行のための方法は、当業者に知られている。
本発明のさらにもう１つの観点は、トランスジェニック植物、たとえば前述のセンス、アンチセンス、リボザイム、同時抑制、又は遺伝子標的化分子、及び／又は前述のものを含んで成る遺伝子構造体を担持する穀物植物にも及ぶ。好ましくは、トランスジェニック植物は、１又は複数の次のものである：アラビドプシス・サリアナ、オリザ・サチバ、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．、ゴシピウム・ヒルスタム及びユーカリプタスssp．、アサ、ジュート、アマ、ピナスssp．，ポプラスssp．，又はピセアspp．さらなる種は排除されない。
本発明はさらに、前記トランスジェニック植物の子孫にも及ぶ。
本発明のさらにもう１つの観点は、十分な長さ又は不十分な長さの組換えセルロース遺伝子生成物を生成するために、適切な宿主（たとえば原核生物又は真核生物）における対象遺伝子配列の発現を提供する。
この後、用語“セルロース遺伝子生成物”は、前記において定義されたようなセルロース遺伝子の組換え生成物を言及するであろう。従って、用語“セルロース遺伝子生成物”は、植物におけるセルロース生合成路に関与するいづれかの遺伝子のポリペプチド生成物、たとえば、セルロース シンターゼ遺伝子生成物（但し、それだけには限定されない）を包含する。
好ましくは、組換えセルロース遺伝子生成物は、セルロース シンターゼ ポリペプチドの触媒活性を有するアミノ酸配列、又はその機能的変異体、誘導体部分、フラグメント又は類似体を含んで成る。
本発明の特に好ましい態様においては、組換えセルロース遺伝子生成物は、配列番号２，６，８，10，12又は14のいづれか１又は複数の配列に対して少なくとも40％同一である配列又はアミノ酸、又はその相同体、類似体又は誘導体を含んで成る。
本明細書に含まれるアミノ酸残基について使用される１−及び３−文字略語が、表１に示される。
本明細書においては、アミノ酸配列の“相同体”とは、いづれかのアミノ酸置換、付加又は欠失にもかかわらず、本明細書に記載されるアミノ酸配列に対して類似する触媒活性を有するそれらのポリペプチド、酵素、又はタンパク質を言及する。相同体は、本発明のポリペプチドが由来する種と同じか又は他の植物種から単離され、又は由来することができる。
“類似体”とは、そこにおけるいづれかの非天然的に生じるアミノ酸類似体の発生にもかかわらず、本発明のポリペプチドを包含する。
“誘導体”は、リガンドがここに含まれる１又は複数のアミノ酸残基に結合されている修飾されたペプチド、たとえば炭水化物、酵素、タンパク質、ポリペプチド、又はレポーター分子、たとえば放射性核種、又は螢光化合物を包含する。対象のペプチドのグルコシル化された、螢光の、アシル化された又はアルキル化された形が特に、本発明により企画される。さらに、対象のアミノ酸配列のフラグメント又は一部を含んで成る、本明細書に記載されるアミノ酸の誘導体は、対象のポリペプチドの複数のコピーを含んで成るホモポリマー又はヘテロポリマーのように、本発明の範囲内にある。ペプチドを誘導体化するための方法は、当業界において良く知られている。

置換は、アミノ酸が異なった天然に存在するか、又は非従来のアミノ酸残基により置換されるアミノ酸変更を包含する。そのような置換は、セルロース遺伝子生成物に含まれるアミノ酸残基が、たとえば

のように、類似する特徴のもう１つの天然に存在するアミノ酸により置換される“保存性”として分類され得る。
本発明により包含される置換はまた、“非保存性”でもあり得、ここで、本明細書に記載されるセルロース遺伝子生成物に存在するアミノ酸残基が異なった性質を有するアミノ酸、たとえば異なったグループからの天然に存在するアミノ酸により置換されているか（たとえば、アラニンにより荷電された又は疎水性のアミノ酸を置換している）、又は他方では、天然に存在するアミノ酸が非従来のアミノ酸により置換されている。
本発明により包含される非従来のアミノ酸は、表２に列挙されるものを包含するが、但しそれらだけには限定されない。
アミノ酸置換は典型的には、単一の残基のものであるが、しかし複数の残基、すなわち一群の又は分散された残基のものでもあり得る。
アミノ酸欠失は通常、約１〜10個の程度のアミノ酸残基のものであるが、ところが挿入はいづれの長さのものでもよい。欠失及び挿入は、Ｎ−末端、Ｃ−末端に対して行なわれ得、又は内部欠失又は挿入でもあり得る。一般的に、アミノ酸配列内での挿入は、アミノ−又はカルボキシ−末端融合よりも小さく、そして１〜４個の程度のアミノ酸残基のものであろう。
本明細書において言及されるようなセルロース遺伝子生成物の相同体、類似体又は誘導体は、当業界において良く知られているペプチド合成技法、たとえば固相ペプチド合成及び同様の技法を用いて、又は組換えDNA操作により容易に製造され得る。組換えDNA技法を用いて、たとえばＭ13突然変異誘発により予備決定された部位で置換突然変異を行なうための技法もまた、良く知られている。置換、挿入又は欠失として明らかである、変異体ペプチド、ポリペプチド又はタンパク質を生成するために核酸分子の操作は、当業界において良く知られている。
本明細書に記載されるセルロース遺伝子生成物は、タンパク質分解又は細胞分解過程を妨げ、阻害し、又は遅める保護基の包含又は結合によりさらに誘導体化され得る。そのような誘導は、対象ポリペプチドの半減期が、たとえば植物細胞の一次又は二次細胞壁において又は交互に生成されるセルロースの量を高めるために、すなわち細菌又は真核発現システムにおいて生成されるタンパク質の量を高めるために、拡張されることが必要とされる場合に有用であり得る。この目的のために適切な化学基の例は、表２に列挙される非常用のアミノ酸残基のいづれか、特に表１に列挙される天然に存在するアミノ酸のＤ−立体異性体又はメチル化形を包含するが、しかしそれらだけには限定されない。この目的のために有用な追加の化学基は、アリール又は複素環式Ｎ−アシル置換基、酸化ポリアルキレン成分、デスルファトヒルジン ムテイン、α−ムテイン、α−アミノホスホン酸、水溶性ポリマー基、たとえばヒドラゾン又はオキシム基を用いて糖に結合されるポリエチレングリコール、ベンゾジアゼビシジオン誘導体、グリコシル基、たとえばβ−グルコシルアミン又はその誘導体、ポリオール官能基に接合されるイソシアネート、又はジイソシアネートによりキャップドされたポリオキシエチレン ポリオールを含んで成る群から選択される。同様に、セルロース遺伝子生成物、又はその相同体、類似体又は誘導体は、前記分子のタンパク質分解性に対する敏感性を減じるために、プロテアーゼ インヒビターペプチドに架橋され、又はそれ自体に融合され得る。

本発明のもう１つの態様においては、組換えセルロース遺伝子生成物が、そこに含まれる少なくとも１つの官能性β−グリコシル トランスフェラーゼ ドメインにより特徴づけられる。
用語“β−グリコシル トランスフェラーゼ ドメイン”とは、本明細書において使用される場合、グリコシル トランスフェラーゼ酵素のクラスに属する異なったプロセス（processive）酵素（Saxenaなど．，1995）、たとえば中でも細菌β−１，４−グリコシルトランスフェラーゼ酵素及び植物セルロース シンターゼ酵素に高く保存されるアミノ酸の配列を意味し、ここで、前記ドメインは前記酵素クラスにおける酵素の全体の触媒活性、基質特異性、又は基質結合性に寄与するか又はそれらを維持することにおける推定上の機能を有する。β−グリコシル トランスフェラーゼ ドメインは、ポリペプチド配列における特定の位置での一定のアミノ酸残基の存在により認識できるが、しかしながら、そこに含まれる一定範囲の隣接したアミノ酸残基は存在しない。
β−グリコシル トランスフェラーゼ ドメインにおける隣接性の欠乏の結果として、前記遺伝子によりコードされるポリペプチドにおけるβ−グリコシル トランスフェラーゼ ドメインの存在を利用することによってセルロース遺伝子を単離することは、直接的なことではない。たとえば、β−グリコシル トランスフェラーゼ ドメインは、特定の生物からのすべてのβ−グリコシル トランスフェラーゼ遺伝子配列の急速な単離を促進し、そして次に、それらの遺伝子配列からセルロース遺伝子、たとえばセルロース シンターゼを単離するために、プローブとして容易に利用できない。
好ましい態様においては、本発明は、
（ｉ）前記で定義されたような少なくとも１つの構造β−グルコシル トランスフェラーゼ ドメインを含み；そして
（ii）配列番号２，６，８，10，12又は14のいづれか１又は複数の配列に示される少なくとも20個の隣接したアミノ酸残基、又はその相同体、類似体又は誘導体に対して少なくとも40％のアミノ酸配列類似性を有する単離されたポリペプチドを提供する。
より好ましくは、本発明のポリペプチドは、配列番号２，６，８，10，12、又は14のいづれか１又は複数の配列の少なくとも50個の隣接したアミノ酸残基、さらにより好ましくは少なくとも100個のアミノ酸残基、又はその相同体、類似体又は誘導体に対して少なくとも40％同一である。
特に好ましい態様においては、配列番号２，６，８，10，12又は14のいづれか１又は複数の配列に対する％類似性は、少なくとも50〜60％、より好ましくは少なくとも65〜70％、さらにより好ましくは少なくとも75〜80％及びさらに一層、好ましくは少なくとも85〜90％、たとえば約91％又は95％である。
関連する態様においては、本発明は、本明細書に記載されるアミノ酸配列の“配列的に純粋な”形を提供する。“配列的に純粋な”とは、アミノ酸決定を促進するために実質的に相同であるものとして前記に記載されている。
さらなる関連する態様においては、本発明は、対象アミノ酸配列の“実質的に相同な”形を提供し、ここで用語“実質的に相同”とは、免疫学的に相互作用性の分子との相互作用のために適切な形で存在するものとして前記に定義されている。好ましくは、ポリペプチドは、タンパク質調製物における合計タンパク質μｇ当たりの活性の点から見て、少なくとも20％相同であり、より好ましくは少なくとも50％相同であり、さらにより好ましくは少なくとも75％相同であり、そしてさらにより一層、好ましくは少なくとも約95〜100％相同である。
本発明はさらに、配列番号２，６，８，10，12又は14のいづれか１又は複数の配列に示されるアミノ酸配列の一部に由来するか又はそれを含んで成るか、又はそれに対して少なくとも40％の類似性を有する、少なくとも５個の長さのアミノ酸残基の合成ペプチドにも及ぶ。当業者は、そのような合成ペプチドが、抗体の調製のための免疫学的に相互作用性の分子の生成において、又はイムノアッセイのペプチド成分として有用である。
本発明はさらに、前記態様のいづれかのセルロース遺伝子生成物に結合することができる、抗体分子、たとえばポリクローナル又はモノクローナル抗体、又はその免疫学的に相互作用性部分又はフラグメントにも及ぶ。
用語“抗体”とは、本明細書において使用される場合、本発明のポリペプチドとまた特異的に反応するそのフラグメントを包含することを意味する。抗体は従来の技法を用いてフラグメント化され得、そしてそのフラグメントは、完全な抗体についてと同じ態様で有用性についてスクリーンされ得る。たとえば、Ｆ（ab′）₂フラグメントは、抗体をペプシンにより処理することによって生成され得る。その得られるＦ（ab′）₂フラグメントは、Fab′フラグメントを生成するためにジスルフィド架橋を還元するよう処理され得る。
当業者は、本発明のセルロース遺伝子生成物を供給される場合、抗体分子をいかにして生成するかを気づいているであろう。たとえば、本発明のポリペプチドを用いることによって、ポリクローナル抗血清又はモノクローナル抗体は、標準の方法を用いて製造され得る。哺乳類（たとえば、マウス、ハムスター又はウサギ）が、その哺乳類において抗体応答を誘発するポリペプチドの免疫原形により免疫化され得る。ポリペプチドに対して、免疫原性を付与するための技法は、当業界において良く知られている、キャリヤーに対する接合又は他の技法を包含する。たとえば、ポリペプチドがアジュバントの存在下で投与され得る。免疫化の進行は、血漿又は血清における抗体力価の検出によりモニターされ得る。標準のELISA又は他のイムノアッセイが、抗体のレベルを評価するために、抗原として免疫原を用いて使用され得る。免疫化に続いて、抗血清が得られ、そして所望により、ポリクローナル抗体に対応するIgG分子が血清から単離される。
モノクローナル抗体を生成するためには、抗体産生細胞（リンパ球）が、免疫化された動物から収穫され、そして標準の体細胞融合法により骨髄腫細胞により融合され、従って、それらの細胞が不滅化され、そしてハイブリドーマ細胞が生成される。そのような技法は、当業界において良く知られている。たとえば、ハイブリドーマ技法は初め、Kohler and Milstein（1975）により開発され、そして他の技法、たとえばヒトＢ−細胞ハイブリドーマ技法はKozborなど．，1983により、ヒトモノクローナル抗体を生成するEBV−ハイブリドーマ技法はColeなど．，1985により、そして組合せの抗体ライブラリーのスクリーニングはHuseなど．，1989により開発された。ハイブリドーマ細胞は、ポリペプチドと特異的に反応する抗体の生成のために免疫化学的にスクリーンされ、そしてモノクローナル抗体が単離され得る。
抗体を誘発するためのすべての免疫原組成物に関しては、本発明のポリペプチドの免疫原的に有効な量が経験的に決定されるべきである。考慮されるべき要因は、ポリペプチドがアジュバント、又はキャリヤータンパク質もしくは他のキャリヤーと複合体化され、又は共有結合されても又はされなくても、生来のポリペプチドの免疫原性、及び組成物のための投与路、すなわち静脈内、筋肉内、皮下、等、及び投与されるべき免疫化用量の回数を包含する。そのような要因は、ワクチン業界において知られており、そして不適切な実験を伴わないでそのような決定を行なうことは、免疫学者の技術の十分な範囲内である。
上記で論じられた第１の言及された抗体に向けられるいづれかの第２抗体（モノクローナル、ポリクローナル抗体、又はそれらのフラグメント）を包含することは、本発明の範囲内である。前記第１及び第２抗体の両者は、検出アッセイに使用され得、又は第１抗体は市販の抗−免疫グロブリン抗体と共に使用され得る。
本発明は次の非制限的な図及び例によりさらに記載される。
図１は、21℃（植物１及び２）又は31℃で増殖された、野生型アラビドプシス・サリアナColumbia植物（植物１及び３）及びrsw１植物（植物２及び４）の開花の長さを示す写真である。植物は最初21℃で、抽だけが開始するまで生長せしめられ、その抽だけが除去され、そして再生が個々の温度で生長せしめられた植物において行なわれた。
図２は、31℃で10日間、増殖される場合、rsw１変異体の子葉及び胚軸におけるゆがんだ上皮細胞を示す低温−走査電子顕微鏡の写真である。
図３は、セルロース標準（上部パネル）及び31℃で増殖されたrsw１植物の苗菜に由来する中性グルカン（下部パネル）からのメチル化された糖の酢酸アルジトールのガスクロマトグラフのグラフである。それらの同時発生のピークは、rsw１グルカンが１，４−結合されていることを示す。
図４は、隣接領域内のオーバーラップするYACクローン（空白のボックス）の位置を示す、コスミドマーカーｇ8300と06455との間のアラビドプシス・サリアナ染色体４（点刻されたボックス）の隣接領域の図示である。RSW１遺伝子座の位置がまた、ｇ8300から約1.2cM及び06455から0.9cMで示されている。スケールは、100kbの長さ；Ｌ，YACの左端；Ｒ，YACの右端を示す。染色体４の表示の上部で、隣接領域を構成するために使用されるYACフラグメント及びコスミド クローン フラグメントが、フラグメントが得られるYAC又はコスミドに対応する接頭辞命名法（たとえば、yUP9E3，yUP20B12、等）、及びフラグメントがYACクローンの右端（RE）又は左端（LE）；Ｎ，North；Ｓ，South；CAPS，ｇ8300マーカーの切断された、増幅された多型配列（Konieczny and Ausubel，1993）型に対応するかどうかを示す接尾辞命名法を用いて示される。
図５は、アラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子座（点刻されたボックス）の位置を示す、左T-DNA境界（LB）及び右T-DNA境界（RB）配列（上部の実線）間の構造体23Ｈ12の制限地図の図示である。図の上部での線は、構造体pRSW１に含まれる23Ｈ12の領域を示す。翻訳開始（ATG）コドンと翻訳停止（TAG）コドンとの間のRSW１遺伝子の構造体は、図の底部で示される。エキソンは黒くぬりつぶされたボックスにより示され；イントロンは黒の実線により示される。エキソン７の端近くからエキソン14の端までの、RSW１遺伝子の３′−側端の一列のESTクローンＴ20782がまた、図の底部で示される。23Ｈ12内の制限部位は次の通りである：B，BamHＩ；E，EcoRＩ；H，HindIII；S，SalＩ；Sm，SmaＩ。
図６は、構造体23Ｈ12による形質転換によるrsw１変異体の放射状根の膨潤表現型の相補性を示す写真である。rsw１変異体は例６に記載のようにして23Ｈ12により形質転換された。形質転換されたrsw１植物（３種の実生の中心のグループ）、形質転換されていないrsw１植物（３種の実生の左のグループ）及び形質転換されていないＡ．サリアナColumbia植物（３種の実生の右のグループ）が、21℃で５日間、生長せしめられ、そして次に31℃にさらに２日間、移され、この後、根の延長及び放射状根の膨潤の程度が決定された。
図７は、野生型アラビドプシス・サリアナColumbia植物（研究者の右側）及びアンチセンスRSW１構造体により形質転換されたＡ．サリアナColumbia植物（すなわち、CaMV35Sプロモーター配列の制御下でアンチセンス配列で発現されるEST T20782；研究者の左側）を比較する写真であり、形質転換されていないColumbia植物に比較して、アンチセンスRSW１構造体により形質転換された植物においては、21℃での花序の短縮を示す。21℃でのアンチセンス植物の表現型は、31℃でのrsw１変異体の表現型に類似する。花序の高さは、ミリメーターで示される。
図８は、Ａ．サリアナ及び他の植物種からの相同ポリペプチドのアミノ酸配列に対して一直線に並べられたアラビドプシス・サリアナRSW１の最初の90個のアミノ酸残基を示す図である。濃い領域は、高く保存された配列を示す。Ath-A及びAth-Bは、プローブとしてRSW１ cDNAの一部を用いてのハイブリダイゼーションスクリーニングにより同定された密接に関連するアラビドプシス・サリアナcDNAクローンである。SO542、米ESTクローン（MAFF DNAバンク、Japan）；celA１及びcelA２、綿繊維に発現される綿cDNA配列（Pearなど、1996）；SOYSTF1A及びSOYSTF1B、推定上のダイズbZIP転写因子。アミノ酸名称は、本明細書に組込まれる表１に示される通りである。保存されたシステイン残基は、星印により示される。
図９は、Ａ．サリアナ及び他の植物種からの相同ペプチドのアミノ酸配列に対して一直線に並べられたアラビドプシス・サリアナRSW１の完全なアミノ酸配列を示す図である。濃い領域は高く保存された配列を示す。Ath-A及びAth-Bは、プローブとしてRSW１ cDNAの一部を用いてのハイブリダイゼーションスクリーニングにより同定された密接に関連するアラビドプシス・サリアナcDNAクローンである。SO542、米ESTクローン（MAFF DNAバンク、Japan）；CelA１、綿遺伝子配列（Pearなど、1996）；Ｄ48636、米から得られた部分cDNAクローン（Pearなど、1996）。アミノ酸名称は、本明細書に組込まれる表１に示される通りである。番号付けは、RSW１配列におけるアミノ酸位置を示す。
図10は、推定上のトランスメンブランヘリックス（斜線のボックス）、システインに富んでいる領域（Cys）、及びRSW１と関連するアミノ酸配列との間に保存されるアスパラギン酸残基（Ｄ）及びQVLRWの位置を示すRSW１ポリペプチドの図である。推定上のセルロース生合成ポリペプチド間に高く保存されるRSW１の領域は、黒の濃いボックスにより示され、そして低く保存された領域は淡い色のボックスにより示される。
図11は、Ａ．サリアナ（レーン１）及び綿（レーン２）に由来するBglII−消化されたDNAに対するアラビドプシス・サリアナRSW１ cDNAの５′−末端のサザンブロットハイブリダイゼーションの写真である。ハイブリダイゼーションは、55℃での低い緊縮条件下で実施された。矢印は、ハイブリダイズするバンドの位置を示す。
例１．セルロース−欠乏性アラビドプシス・サリアナ変異体rsw１の特徴化
１．形 態
アラビドプシス・サリアナrsw１変異体を、生態型Columbiaを含んで成る遺伝子バックグラウンドにおいて生成した。
他の形態学的変異体の中でも、アラビドプシス・サリアナ変異体rsw１の根形態の変更された根細胞−形状及び温度感受性が、Baskinなど、（1992）により開示される。
図１に示されるように、本発明者は、rsw１変異体が、31℃で増殖される場合、類似する条件下で増殖された野生型Columbia植物に比較して、低められた花序の高さを有する驚くべき表現型を示すことを示している。対照的に、21℃で増殖される場合、rsw１の花序の高さは、類似する条件下で増殖された野生型植物とは有意に異ならず、このことは、rsw１の苗条表現型が条件付きであり、そして温度−依存性であることを示す。
さらに、rsw１変異体の上皮細胞の低温−走査電子顕微鏡は、実生が31℃で増殖される場合、細胞形状、特に葉、胚軸及び子葉を形成するそれらの上皮細胞における有意な異常性を示す（図２）。
ロゼット（末端複合体）は、高等植物の形質膜の推定上のヘキサマーセルロースシンターゼ複合体である（Herth，1985）。18℃で増殖されたアラビドプシス・サリアナrsw１植物のフリーズフラクチャーされた根細胞は、野生型Ａ．サリアナ及び他の被子植物のものに類似する、形質膜のPF面上でのセルロースミクロフィブリル及びロゼットを示す。rsw１変異体の31℃への移行は、30分以内に変異体におけるロゼットの数を減じ、３時間後、多数の損失を導びく。形質膜粒子は、制限温度への延長された暴露に対して横列に一直線に並ぶ。対照的に、セルロースミクロフィブリルを一直線に並べる皮質微小管、又は他の壁の多糖類を合成し、そしてロセットを生成せしめるゴルジ体の外観に変化が存在しない。
２．炭水化物含有率
セルロース及び他の炭水化物の合成に対するRSW１遺伝子における突然変異の効果を、種々の細胞壁画分への¹⁴Ｃ（均一にラベルされたグルコースとして供給される）のインビボ組込みを測定することによって評価した。野生型（RSW１）及びホモ接合変異体rsw１種子を、Hoagland栄養物及び１％（ｗ／ｖ）のラベルされていないグルコールを含む寒天上で21℃で発芽せしめた。５日後、実生の半分を31℃に１日間、移し、そして残りを21℃で同じ時間、維持した。実生を、Hoagland栄養物及び¹⁴Ｃ−グルコースを含む溶液により被覆し、そして同じ温度でさらに３時間インキュベートした。生長する根及び苗条を分け、そして液体窒素により凍結せしめた。組織を0.5Ｍのリン酸カリウム冷緩衝液（0.5ＭのKH₂PO₄，pH7.0）において均質化し、そして粗細胞壁画分を2800rpmでの遠心分離により集めた。その細胞壁画分を、クロロホルム／メタノール〔１：１（ｖ／ｖ）〕により40℃で１時間、抽出し、続いて150℃で短時間インキュベートし、脂質を除去した。ペレットを２mlのメタノール、２mlのアセトンにより及び２mlの脱イオン水により２度、連続的に洗浄した。最後に、ペレットを、澱粉を除去するために窒素下でジメチルスルホキシドにより；ペクチンを除去するために0.5％アンモニウムオキサレートにより；ヘミセルロースを抽出するために0.1ＭのKOH及び３mg／mlのNaBH₄及び次に４ＭのKOH及び３mg／mlのNaBH₄により；いづれかの残留非セルロース炭水化物を抽出し、そして最終不溶性ペレットとして結晶性セルロースを残すために、煮沸酢酸／硝酸／水〔８：１：２（ｖ／ｖ）〕により、連続的に抽出した（Updegraph，1969）。すべての画分を液体シンチレーションカウンターにより分析し、そして変異体からの個々の画分の計数を、同じ条件下での野生型における計数の百分率として表わした。
表３に示されるように、変異体及び野生型植物は、21℃（許容できる温度）でまったく類似する態様で挙動するが、ところが、31℃の制限温度で、セルロース中への¹⁴Ｃの組込みがrsw１突然変異により強く阻害される（野生型の36％まで）。表３におけるデータは、セルロース合成がrsw１変異体において特異的に阻害されることを示す。従って、野生型RSW１遺伝子が、セルロース合成に全く直接的に包含され、そして突然変異によるその配列の変化が合成の速度を変更する。

ホモ接合性変異体rsw１植物においては、アンモニウムオキサレートにより抽出されたペクチン画分は、真のクロン酸に富んでいるペクチンとは異なって、豊富なグルコースを含んだ。グルコースの大部分は、臭化セチルトリメチルアンモニウムが負に荷電されたペクチンを沈殿せしめる場合、その上清液に残存した。
３．非結晶性β−１，４−グルカン含有率
アンモニウムオキサレート画分から回収されたセルロースの量及び非結晶性β−１，４−グルカンの量を、増殖培地（Baskinなど．，1992）及び１％（ｗ／ｖ）のグルコースを含む垂直寒天プレート上で及び連続した光（90μモル／ｍ²／秒）下で、21℃で７日間又は他方では、21℃で２日及び31℃で５日間、増殖された、野生型Columbiaの実生及び戻し交配されたホモ接合性rsw１について決定した。根及び苗条を約150の実生から分離し、一定の重量に凍結乾燥せしめ、そして冷たい0.5Ｍのリン酸カリウム緩衝液（pH7.0）３mlと共に、乳鉢及び乳棒により、粉砕した。２回の緩衝液によるすすぎ（それぞれ２ml）の後、組合された均質物を、2800×ｇで10分間、遠心分離した。２mlの緩衝液により２度、及び２mlの蒸留水により２度、ペレット画分を洗浄した後、粗細胞壁画分を含んで成るペレット、及びリン酸緩衝液画分を含んで成るプールされた上清液を保持した。粗細胞壁ペレット画分を、２×３mlのアリコートのクロロホルム／メタノール〔１：１（ｖ／ｖ）〕と共に40℃で１時間、２mlのメタノールと共に40℃で30分間、２mlのアセトンと共に30分間、及び水と共に２度、撹拌した。前記の全工程を、苗条の場合にくり返した。組合された上清液を窒素蒸気下で乾燥せしめた。ペレットを、（ｉ）窒素下で密封して、３mlのDMSO−水９：１〔ｖ／ｖ〕により振盪しながら一晩抽出し、続いてDMSO／水２mlを用いて２度抽出し、そして２mlの水により３度洗浄し；（ii）３mlのアンモニウムオキサレート（0.5％）により100℃で１時間、抽出し、続いて水により２度洗浄し；（iii）１mg／mlの硼水素化ナトリウムを含む0.1ＭのKOH ３mlにより25℃で１時間、抽出し（根材料のために１度又は苗条材料のために２度くり返した）、そして２mlの水により最終洗浄し；（iv）１mg／mlの硼水素化ナトリウムを含む４ＭのKOH ３mlにより25℃で１時間抽出した（根材料のために１度又は苗条材料のために２度くり返した）。最終ペレットを３mlの酢酸−硝酸−水〔８：１：２（ｖ／ｖ）〕と共に継続的に撹拌しながら煮沸（Updegraph，1969）、２回の水洗浄物を組合し、そして水５mlにより希釈した。
セルロースの不溶性残留物を67％（ｖ／ｖ）のH₂SO₄に溶解し、酢酸アルジトールのGC／MS（Fisons AS800／MD800）を用いて97％（ｗ／ｖ）以上のグルコースを含むことを示し（Doaresなど．，1991）、そしてアントロン／H₂SO₄反応により３種の独立したサンルを定量化した。プールされたレプリカサンプルのためのGC／MSの結果は、表４に示される。
非結晶性β−１，４−グルカンを、アニオン性ペクチンが２％（ｗ／ｖ）の臭化エチルトリメチルアンモニウム（CTAB）と共に37℃で一晩インキュベートし、そして2800kgで10分間の遠心分離により集める場合、アンモニウムオキサレート画分からの上清液として回収した。グルカン（250μｇ／ml）又は澱粉（Sigma：200μｇ／ml）を、トリコダーマ（Trichoderma）からのエンドセルラーゼ（EC ３．２．１．４；Megazyme，Australia）及びほとんどのβ−グルコシダーゼ（EC ３．２．１．21；Sigma）、又はバシラスsp．α−アミラーゼ（EC ３．２．１．１；Sigma）及び米α−グルコシダーゼ（EC ３．２．１．20；Sigma）の混合物により消化した。
アンモニウムオキサレート画分からの上清液に回収された材料は、（ｉ）グルコースのみが、それがオートクレーブにおいて120℃で１時間、密封された管において２ＭのTFAにより加水分解され、その上清液（2000ｇで５分間）が45℃で真空下で乾燥せしめられ、TFAが除去され、そしてグルコースがGC／MSにより決定される場合に検出でき、（ii）メチル化（Neds and Selvendran，1993）が、セルロース標準からのピークと同一であり、そしてその結果、１，４−結合されたグルカンを暗示する、薄層クロマトグラフィー及びGC／MSにより決定される最とも有力なピークを付与し（図３）；そして（iii）エンド−セルラーゼ及びβ−１，４−グルコシダーゼ混合物が31℃でrsw１により生成されるグルカンから83％のTFA−開放性グルコースを開放するが、ところがα−メチラーゼ／α−グルコシダーゼ混合物はグルカンからグルコースを開放しない、ことを示すことによって、純粋なβ−１，４−グルカンを含むこと示された。逆に言えば、α−アミラーゼ／α−グルコシダーゼ混合物は澱粉サンプルからTFA−開放性グルコースの95％を開放し、そしてエンド−セルラーゼ／β−１，４−グルコシダーゼ混合物は澱粉からグルコースを開放しない。
アンモニウムオキサレートを用いてのグルカンの抽出能力、及びエンドセルラーゼ／β−グルコシダーゼ、及びTFA加水分解に対するグルカンの敏感性は、rsw１変異体におけるグルカンが結晶性でないことを示し、なぜならば、それはセルロースを抽出及び分解に対して耐性にするグルカンの結晶化であるからである。
表４は、野生型及び変異体rsw１アラビドプシス植物の苗条についての、アントロン／H₂SO₄反応により決定されるセルロースにおけるグルコースの量及びTFA加水分解の後の非結晶性グルカンにおけるグルコースの量を示す。このデータは、セルロース及び非結晶性β−１，４−グルカンの生成が、RSW１遺伝子における突然変異的な変化により操作され得ることを示す。

４．澱粉含有率
上記実験における根からのDMSO画分における回収された澱粉の量をまた、アントロン／H₂SO₄抽出により決定した（表５）
表５に示されるように、rsw１変異体に沈着された澱粉のレベルは、31℃の制限温度で野生型植物の根に検出できるレベルの４倍である。澱粉における類似する上昇がまた、データがｎモルグルコース／植物として表わされる場合に見出される。21℃で、rsw１植物と野生型植物との間で澱粉の沈着における検出できる差異は存在しない。

31℃の制限温度での野生型植物に比較してのrsw１変異体植物における細胞壁の組成が表６に要約される。

結論的には、rsw１突然変異は、形質膜におけるセルロースシンターゼ複合体を分解し、セルロース蓄積を低め、そしてβ−１，４−グルカンの非結晶形での蓄積を引き起こす。
例２．rsw１遺伝子座に対するYACクローンのマッピング
上記例１に記載される変異体アラビドプシス・サリアナ植物におけるrsw１遺伝子座を、RFLP遺伝子マッピング技法（Changなど、1988；Namなど．，1989）を用いて、Ａ．サリアナの第４染色体に対してマッピングし、Columbia（Co）／Landsberg（Ler）交配に由来するＦ₂又はＦ₃子孫を分析した。特に、rsw１突然変異はga５遺伝子座に遺伝的に連鎖されていることが示され、これはＡ．サリアナにおける第４染色体の可視マーカーである。
Columbia（Co）／Landsberg（Ler）交配に由来する293のＦ₂又はＦ₃子孫における地図の距離及び染色体分裂点の分析に基づけば、rsw１は、ｇ8300のCAPS（切断され増幅された多型配列；Konieczny and Ausubel，1993）型の約1.2cM有の、RFLPマーカーｇ8300及び06455間の約2.1cM領域に位置した（図４）。
rsw１残基におけるｇ8300及び06455間の区間が、Yeast Artificial Chromosome（YAC）クローンのオーバーラッピング組により拡張されることが見出された。前記クローンは、Pland Industry，Commonwealth Scientific and Industrial Research Organisation，Canberra，Australiaから得られた。YACは、既知のDNA分子マーカー（前記区間内からの）及びYACの末端からのDNAフラグメントを用いてのハイブリダイゼーションによりｇ8300／06455区間に位置した。その区間の長さは、900kbのDNAを含んで成ることが評価された。
YACクローンにより拡張される領域内の組換え体の洗練された遺伝子マッピングは、RFLPマーカーｇ8300とrsw１遺伝子座との間の遺伝子距離を確立した。前記遺伝子地図距離データ、及び前記領域内のYACクローンのマッピングの組合せはさらに、yUP5C8と命名されたYACクローンに対するrsw１遺伝子座の起源を突きとめた。
例３．YACクローンYUP5C8に対するcDNAクローンのマッピング
Ｔ20782と称するアラビドプシス・サリアナcDNAクローンを、Arabidopsis Resource Centre，Ohio State University，1735 Neil Avenue，Columbus，OH43210，United States of Americaから得た。Ｔ20782 cDNAは、図４に示される２種のマーカーｇ8300及び06455間のアラビドプシス第４染色体上のDNA区間に広く位置していた。ポリメラーゼ鎖反応（PCR）に基づくアプローチを用いて、Ｔ20782 cDNAヌクレオチド配列に対して企画されたDNAプライマー（5′-AGAACAGCAGATACACGGA-3′及び5′-CTGAAGAAGGCTGGACAAT-3′）を、アラビドプシスYACクローンライブラリーをスクリーンするために使用した。Ｔ20782 cDNAクローンは、ｇ8300及び06455区間内のアラビドプシス第４染色体上に同定されるYAC（CIC1F9，CIC10E9，CIC11D9）に対して局在化することが見出された（図４）。同じアプローチを用いて、同じ染色体区間にrsw１遺伝子座を含むことが示されている同じYACであるYACクローンyUP5C8に対するクローンＴ20782の起源をさらに突きとめた（図４）。
さらに、Ｔ20782に由来するプライマーを用いてのYACクローンyUP5C8の増幅は、２つのイントロン配列の他に、Ｔ20782ヌクレオチド配列の一部に対して同一である２つの推定上のエキソンを含む500bpのフラグメントを生成する。
cDNA T20782は、セルロース生合成に関与する候補体遺伝子としてみなされた。
例４．cDNAクローンＴ20782のヌクレオチド配列分析
cDNAクローンＴ20782のヌクレオチド配列は、配列番号１に示される。そのヌクレオチド配列は、Dye Terminator Cycle Sequencingキット（Perkin Elmerカタログ番号401384）を用いて、製造業者により推薦されるようにして得られた。４種の鋳型クローンを、列挙される配列を生成するために、ヌクレオチド配列決定のために使用した。第１の鋳型は、cDNAクローンＴ20782であった。この鋳型は、次の配列決定プライマーを用いて配列決定された：

第２の鋳型クローン（Ｔ20782 SphＩ欠失クローン）を、Ｔ20782クローン内にDNA欠失を創造することによって構成した。Ｔ20782クローンを制限酵素SphＩにより消化し、前記酵素を加熱殺害し、DNAを連結し、そしてNM522 Ｅ．コリ宿主細胞中にエレクトロポレートした。次にＴ20782 SphＩ欠失クローンを、標準のＭ13前方配列決定プライマーを用いて配列決定した。２種の他の欠失クローンを、類似する態様でDNA配列決定のために製造したが、しかし制限酵素EcoRＩ及びSmaＩが使用された。Ｔ20782 EcoRＩ欠失クローン及びＴ20782 SmaＩ欠失クローンを、標準のＴ７配列決定プライマーを用いて配列決定した。配列番号１に示されるDNA配列は、１つのDNA鎖のみのためであるが、しかしながら、当業者は、提供されるデータから相補的鎖のヌクレオチド配列を生成することができる。
クローンＴ20782によりコードされるアミノ酸配列を誘導し、そして配列番号２に示す。
Ｔ20782クローンは、β−グリコシルトランスフェラーゼの一般的な構造体に保存されるD，D，D，QXXRWの印の最初のアスパラギン酸（Ｄ）残基を除くすべてをコードする。特に、Ｔ20782は、配列番号２のアミノ酸位置109〜370間に、D，D，D，QXXRWの印の５個のアミノ酸残基をコードする。保存されたアスパラギン酸、アスパラギン酸、グルタミン、アルギニン及びトリプトフェンアミノ酸残基は、太字型で下記に示されており、そして局部のアミノ酸残基もまた示されている：
１．配列番号２のアミノ酸残基105〜113：
LLNVDCDHY；
２．配列番号２のアミノ酸残基324〜332：
SVTEDILTG；及び
３．配列番号２のアミノ酸残基362〜374：
DRLNQVLRWALGS．
それらの一定のアミノ酸は、Ｔ20782由来のアミノ酸配列がグリコシルトランスフェラーゼの非常に広いグループに属することを単に示していることが注目されるべきである。それらの酵素、たとえばセルロースシンターゼ、キチンシンターゼ、アルギン酸シンターゼ及びヒアルロン酸シンターゼのいくつかは、機能的に非常に異なった化合物を生成する。
保存されたアミノ酸残基の存在は、Ｔ20782クローンがβ−グリコシルトランスフェラーゼタンパク質、たとえばセルロース遺伝子生成物、セルロースシンターゼをコードすることができることを示しているに過ぎない。そのクローンがセルロース生合成に関与する遺伝子の近くに局在する事実は、RSW１（セルロースシンターゼ）遺伝子のための候補体としてのＴ20782クローンに対して興味を現在、集中するキー特徴である。
Ｔ20782は、セルロースシンターゼを実質的にコードする。
例５．ゲノムクローン23Ｈ12のヌクレオチド配列分析
クローン23Ｈ12は、左境界及び右境界T-DNA配列間の領域に約21kbのアラビドプシス・サリアナゲノムDNAを含み、そしてRSW１候補体YAC yUP5C8に局在する。クローン23Ｈ12を、植物形質転換のために製造されたゲノムDNAライブラリーから、EST20782挿入体DNAを用いてのハイブリダイゼーションにより単離した。コスミド12C4はまた、cDNAクローンＴ20782に対してハイブリダイズすることが示されているが、しかしながら、このコスミドは、配列番号７に示される関連するAth-A cDNA配列に対応する部分ゲノム配列を含むように思われ、ここで前記配列の対応するアミノ酸配列は配列番号８に示されている。
クローン23Ｈ12の制限酵素地図は、図５に示されている。
二元コスミドクローン23Ｈ12における8411bpのゲノムDNAのヌクレオチド配列を、Dye Terminator Cycle Sequencingキット（Perkin Elmerカタログ番号401384号）を用いて、製造業者により推薦されるようにして、23Ｈ12鋳型にそって動くプライマーにより得た（配列番号３）。次のプライマーが、23Ｈ12クローンDNAのDNA配列決定のために少なくとも使用された：

コスミドクローン23Ｈ12に含まれるRSW１遺伝子の構造体はまた、図５にも示されている。そこに示されるように、エキソン７の最後の12bpからエキソン14の端までの23Ｈ12におけるコード配列は、完全なＴ20782 cDNA配列（すなわち配列番号１）に対応する。エキソン１〜８を含んで成るRSW１遺伝子のヌクレオチド配列を、RSW１開始部位の上流の増幅プライマー、及びESTクローンＴ20782の内部のプライマーを用いて、Ａ．サリアナColumbia二本鎖cDNAから増幅した。
RSW１遺伝子におけるエキソンは長さ81bp〜585bpの範囲であり、そしてすべての５′及び３′イントロン／エキソンスプライス連結部は保存されたイントロン規則に適合する。
RSW１転写体は、少なくとも70bpの長さの５′−末翻訳配列、3243bpのコード領域及び360bpの３′−末翻訳領域を含んで成る。ノザンブロット分析は、野生型Ａ．サリアナの根、葉及び花序におけるRSW１転写体が約4.0kbの長さであり、そして類似する転写体サイズが変異体組織に存在することを示す（データは示されていない）。
コスミドクローン23Ｈ12によりコードされるRSW１ポリペプチドの誘導されたアミノ酸配列（すなわち、配列番号６に示されるポリペプチド）は、1081個の長さのアミノ酸であり、そしてアミノ酸位置395とアミノ酸位置822との間に、β−グリコシルトランスフェラーゼタンパク質の特徴的な完全なD，D，D，QXXRWを含む。その保存されたアスパラギン酸、グルタミン、アルギニン及びトリプトファン残基が太文字で下記に示され、そして局部アミノ酸残基もまた示されている：
１．配列番号６のアミノ酸残基391〜399：
YVSDDGSAM；
２．配列番号６のアミノ酸残基557〜565：
LLNVDCDHY；
３．配列番号６のアミノ酸残基776〜784：
SVTEDILTG；及び
４．配列番号６のアミノ酸残基814〜826：
DRLNQVLRWALGS．
前記に列挙される第２及び第３の保存されたアスパラギン酸残基、及び前記に列挙される第４の保存されたアミノ酸配列型（すなわち、QVLRW）がまた、cDNAクローンＴ20782にも存在する（上記例４を参照のこと）。
23Ｈ12クローンは、セルロースシンターゼを実質的にコードする。
例６． rsw１突然変異の相補性
セルロース変異体植物rsw１の相補性は、クローン23Ｈ12に遺伝子生成物の機能を示すためのキー試験である。rsw１表現型の相補性が、二元コスミドクローン23Ｈ12又は機能的遺伝子生成物をコードするその誘導体クローンを用いて、アラビドプシス・サリアナセルロース変異体rsw１を形質転換することによって示される。２種のDNA構造体（23Ｈ12及びpRSW１）が、rsw１変異体植物系の相補性試験のために使用された。
１．構造体23Ｈ12
クローン23Ｈ12は、例５及び図５に記載される。
２．構造体pRSW１
前記23Ｈ12構造体は、長さ約21kbの挿入体を有する。rsw１突然変異の表現型のいづれかの相補性が配列番号３に対応する遺伝子の発現の結果であることを示すために、欠失された周囲のDNAのほとんどと共に推定上のRSW１遺伝子を含んで成る、pRSW１として命名された遺伝子構造体を生成した。pRSW１におけるRSW１遺伝子挿入体の制限酵素（RE）地図が、図５に提供される。
pRSW１を生成するために、RSW１遺伝子をコスミド23Ｈ12からサブクローン化し、そして二元プラスミドpBIN19中にクローン化した。手短に言及すれば、コスミド23Ｈ12を含むＥ．コリ細胞を、テトラサイクリン（3.5mg／Ｌ）により補充されたLB培地において増殖した。プラスミドDNAを、アルカリ溶解により調製し、そして制限酵素PvuII及びSalＩにより連続的に消化した。それぞれ９kb及び10kbの２種の同時移動性フラグメントを、0.8％（ｗ／ｖ）のアガロースゲルから単一の画分として単離した。RSW１遺伝子が、10kbのPvuII／SalＩフラグメント上に含まれた。前記９kbのフラグメントは、RSW１遺伝子を含まないPvuII分解生成物であると思われる。前記制限フラグメントを、SmaＩ及びSalＩにより消化されたpBIN19中に連結した。その連結混合物のアリコートを、Ｅ．コリ株XLB１中にエレクトロポレーションにより導入した。カナマイシン（50mg／Ｌ）に耐性のコロニーを選択し、そして続いて、pBIN19に、RSW１遺伝子を含む10kbのPvuII／SalＩフラグメントのみを含んだそれらのクローンを同定するために制限酵素分析により特徴づけた。
３．アグロバクテリウム・ツメファシエンスへの23Ｈ12及びpRSW１構造体のトランスファー
コスミド23Ｈ12を、Dittaなど、（1980）により実質的に記載されるようにして、三親接合（triparental mating）により、アグロバクテリウムにトランスファーした。次のような３種の菌株を、抗生物質を含まない固体LB培地上で混合した：菌株１は定常期に増殖された、移動性プラスミドpRK2013を含むＥ．コリヘルパー株であり；菌株２は、定常相に増殖された、コスミド23Ｈ12を含むＥ．コリであり；そして菌株３は、Ａ．ツメファシエンス株AGL１（Lazoなど．，1991）の指数相培養物であった。前記混合物を28℃で一晩、増殖せしめ、その後、そのアリコートを、抗生物質（50mg／Ｌのアンピシリン、50mg／Ｌのリファンピシン、3.5mg／Ｌのテトラサイクリン）を含む固体LB培地上に画線培養し、形質転換されたＡ．ツメファシエンスAGL１を選択した。耐性コロニーは、28℃での２〜３日後に出現し、そしてさらなる精製のために、選択培地上にさらにもう一度、画線培養した。次に、選択されたコロニーを、リファンピシリン（50mg／Ｌ）及びテトラサイクリン（3.5mg／Ｌ）により補充された液体LB培地に継代培養し、そして−80℃で貯蔵した。
プラスミドpRSW１（最初に、p2029として命名された）を、Ａ．ツメファシエンス株AGL１中にエレクトロポレーションにより導入した。
４． rsw１植物の形質転換
rsw１植物系を、Bechtoldなど、（1993）により実質的に記載されるような真空浸透を用いて、構造体23Ｈ12及びpRSW１により形質転換した。
５．形質転換体における放射状膨潤の分析
rsw１変異体植物の特徴的である放射状膨潤（rsw）表現型の相補性を、50μｇ／mlのカナマイシンを含むHoaglandsプレート上で、前記のようにして得られた、形質転換された（すなわち、Ｔ１種子）rsw１種子を発芽せしめることによってアッセイした。形質転換された種子を含むプレートを、21℃で10〜12日間インキュベートした。カナマイシン耐性実生を、50μｇ／mlのカナマイシンを含む新鮮なHoaglandsプレートに移し、そして31℃で２日間インキュベートした。このインキュベーションに続いて、根の先端を放射状膨潤表現型について試験した。それらの条件下で、野生型植物の根はいづれの放射状膨潤表現型も示さないが、しかしながら、rsw１植物の根は、その根の先端で明確な放射状膨潤を示し、そしてまた、野生型植物に比較して短い根を有する。結果として、形質転換された植物の放射状膨潤表現型の決定は、rsw１表現型の好都合な相補性の表示である。
カナマイシン耐性実生を、高温でのインキュベーションに続いて、21℃での実生のさらなる増殖により維持した。植物を回収した後すぐに、実生を土壌に移し、そして21℃でキャビネットにおいて生長せしめた（16時間の光／８時間の闇のサイクル）。次に、Ｔ２種子を、成熟した個々の植物から収穫した。
rsw１形質転換のための23Ｈ12構造体を用いて、全ての262個のカナマイシン耐性実生を得た。それらのすべての形質転換体を、根の放射状膨潤表現型の相補性について試験した。合計230個の実生は、野生型根表現型を示したが、ところが、わずか32個の実生がrsw１植物の特徴的な放射状膨潤性根表現型を示した。例によれば、図６は、31℃でのインキュベーションに続いて、形質転換されていない野生型及びrsw１実生に比較して、形質転換された実生の表現型を示す。図６に示されるように、形質転換された実生に放射状膨潤表現型の明確な表現型が存在し、そして正常な根の長さは、31℃で、形質転換された実生により示される。
形質転換のためのpRSW１構造体を用いて、合計140個のカナマイシン耐性実生を得た。放射状膨潤表現型の相補性について試験された11個の実生のすべては、野生型根表現型を示し、そして実生のどれも、根において放射状膨潤のいづれの徴候も示さなかった（データは示されていない）。
６．補足されたrsw１変異体系の一般的な形態学的分析
補足されたrsw１植物のさらなる特徴化は、rsw１の他の形態学的特徴、たとえば抽だい（花序）の高さ、及び野生型子葉、葉、突起様構造、長角果、及び花への植物の、31℃での生長する能力が、またトランスジェニック系にも回復されたことを示した（データは示されていない）。
７． rsw１変異体系の生化学的相補性
前記のようなコスミド23Ｈ12を用いて、又は他方では、いづれかのRSW１遺伝子配列を欠いている二元プラスミドpBin19を用いての形質転換からのＴ２種子を、21℃で２日間インキュベートし、そして次に、31℃に５日間、移した。野生型Ａ．サリアナColumbia植物を、増殖培地において、類似する条件（但し、カナマイシンを有さない）下で生長せしめた。23Ｈ12コスミド配列の少なくとも１つのコピーを有するカナマイシン耐性Ｔ２実生、及び野生型実生を集め、そしてセルロース分析のために凍結した。
セルロースレベルを、23Ｈ12コスミド配列により形質転換されたカナマイシン耐性Ｔ２植物の10系について、酢酸−硝酸不溶性材料（Updegraph，1969）として決定し、そしてrsw１変異体植物、野生型Ａ．サリアナColumbia植物、及び二元プラスミドpBin19により形質転換されたＡ．サリアナColumbia植物におけるセルロースレベルに比較した。その結果は、表７に供給される。
表７に示されるように、セルロースレベルは、rsw１変異体親植物において測定されるセルロースレベルに比較して、補足されたrsw１（Ｔ２）植物において有意に高められた。実際、植物材料の新しい重量に関して、又は実生当たりで表わされる、23Ｈ12−形質転換された植物におけるセルロースレベルは、野生型アラビドプシス・サリアナColumbia植物、又は二元プラスミドpBin19により形質転換されたＡ．サリアナColumbia植物のいづれかのセルロースレベルとは有意に異ならない。それらのデータは、23Ｈ12コスミドがrsw１変異体のセルロース欠失表現型を十分に補足することができることを示す。
根接合性Ｔ３系が、表７に示されるデータを確かめるために生成される。
さらに、表７に示されるデータは、31℃で、Ｔ２形質転換されたrsw１植物及び野生型植物の生長速度に差異は存在しないことを示す。なぜならば、そのような植物の新しい重量が有意に異ならないからである。対照的に、同一条件下で生長せしめられた変異体rsw１実生の新しい重量は、23Ｈ12により形質転換されたＴ２系において観察されるレベルのわずか約55％である（約30％〜約80％の範囲）。それらのデータは、セルロースレベルが補足されたrsw１（Ｔ２）植物において操作された結論を支持する。
さらに、¹⁴Ｃ組込みにより測定されるような、23Ｈ12−形質転換植物及び野生型植物における31℃でのセルロース合成の速度をまた決定する。
さらに、23Ｈ12形質転換体系におけるβ−１，４−グルカンレベル及び澱粉レベルは、野生型植物におけるβ−１，４−グルカンレベル及び澱粉レベルに類似することが示される。

例７．野生型RSW１ポリペプチドをコードする十分な長さのヌクレオチド配列の決定
アラビドプシス・サリアナ二本鎖cDNA及びcDNAライブラリーを、CAPFINDER cDNAキット（Clontech）を用いて調製した。RNAを、無菌条件下で21日間、生長せしめられた野生型Columbiaから単離した。
増幅されていないcDNAライブラリーにおける約100,000個のcDNAクローンを、二本鎖cDNAから増幅された³²Ｐ−ラベルされたDNAを含んで成るプローブを用いて、65℃で、標準のハイブリダイゼーション条件下でスクリーンした。ハイブリダイゼーションプローブを調製するために、次の増幅プライマーを用いた：

ここで、プライマーの組合せは、2280-F/csp-1-R又は2370-F/csp1-Rのいづれかであった。プライマー2280-Fは、翻訳開始部位の上流の、配列番号３におけるヌクレオチド位置2226〜2246に対応する。プフイマー2370-Fは、RSW１ポリペプチドのアミノ酸７〜13をコードする、配列番号３におけるヌクレオチド位置2314〜2334に対応する。プライマーcsp-1は、配列番号３のヌクレオチド6120〜6140に対応するＴ20782クローン（配列番号１）のヌクレオチド588〜608に対して相補的なヌクレオチド配列を含んで成る。生成されるハイブリダイゼーションプローブは、約1858個の長さのヌクレオチド（2280-F/csp1-Rプライマーの組合せ）、又は1946個の長さのヌクレオチド（2370-F/csp1-Rプライマーの組合せ）である。
２回の連続的なスクリーニングの間、均質性にプラーク精製された５個のハイブリダイズするバクテリオファージクローンを同定した。プラスミドを、製造業者の説明書に従って、ZapExpress^TMベクターのためのStratagene切除プロトコールを用いて、陽性的にハイブリダイズするバクテリオファージクローンから切除した。コロニーハイブリダイゼーションは、前記クローンの本体を確認した。
単離されたcDNAクローンを、前記例４及び５に記載される方法に類似するプライマーウォーキングにより配列決定した。
十分な長さの野生型RSW１ヌクレオチド配列を、２種のcDNAクローンのヌクレオチド配列から編集した。最初に、RSW１のアミノ酸453〜1081をコードするcDNAの３′−末端は、ESTクローンＴ20782（配列番号１）のヌクレオチド配列に対応した。RSW１のアミノ酸１〜645をコードする残りのcDNA配列を、コスミド23Ｈ12におけるRSW１翻訳開始部位の約50〜70bp上流のヌクレオチド配列を含んで成るプライマー2280-F、及びＴ20782クローン（配列番号１）のヌクレオチド588〜608に対して相補的なヌクレオチド配列を含んで成るプライマーcsp1-Rを用いて、cDNAからの５′−末端の増幅により生成した。
いくつかの増幅されたクローンを配列決定し、ヌクレオチドの誤りが増幅工程により導入されなかったことを示す。５′及び３′側のヌクレオチド配列を一緒にスプライシングし、完全なRSW１読み取り枠、及び配列番号５に供給される３′末翻訳領域を生成する。
当業者は、２種の不完全なcDNAの５′−端及び３′−端が一緒にスプライシングされ、十分な長さのcDNA（このヌクレオチド配列は配列番号５に示される）を得る。
残るcDNAクローンのうち、単離されたcDNAクローンは、コスミド23Ｈ12に存在するRSW１遺伝子のヌクレオチド配列に正確に調和するヌクレオチド配列を含まない。しかしながら、密接に関連する配列を含むいくつかのクローンが、表８に要約されるように得られた。Ath-A及びAth-B cDNAのヌクレオチド配列が、それぞれ配列番号７及び９として、本明細書に供給される。

表８に列挙されるcDNAによりコードされる誘導されたアミノ酸配列は、本明細書において、図８及び９、及び配列番号８及び10に供給される。
図10は、Ａ．サリアナ内に保存されるRSW１ポリペプチド、及びＡ．サリアナと他の植物種との間のRSW１ポリペプチドの重要な特徴の図示である。図10に示される種の他に、本発明者はまた、相同性研究により、トウモロコシ、小麦／大麦及びブラシカssp．のセルロース生合成遺伝子を同定した。従って、本発明は、いづれかの植物種、たとえば中でも、Ａ．サリアナ、綿、米、小麦、大麦、トウモロコシ、ユーカリプタスssp．、ブラシカssp．、ピナスssp．、ポプラスssp．、ピセアssp．、アサ、ジェート及びアマに由来する、上記で定義されたようなセルロース遺伝子及びセルロース生合成ポリペプチドにも及ぶ。
例８．変異体RSW１ポリペプチドをコードする十分な長さのヌクレオチド配列の単離
アラビドプシス・サリアナ二本鎖cDNA及びcDNAライブラリーを、CAPFINDER cDNAキット（Clontech）を用いて調製した。RNAを、無条件下で21日間、生長せしめられたアラビドプシス・サリアナColumbiaのrsw１変異体植物から単離した。
十分な長さのrsw１変異体ヌクレオチド配列を、rsw１変異体遺伝子を含む２種の増幅されたDNAフラグメントを配列決定することによって生成した。そのcDNAの５′−末端配列（５′−末翻訳領域及びエキソン１−11を含む）を、プライマー組合せ2280-F/csp1-R（例７）を用いて増幅せしめた。その３′−末端配列を、下記に示されるプライマーEST1-F及びcs3-Rを用いて増幅し：

ここでプライマーEST1-Fは配列番号５のヌクレオチド位置1399−1420（エキソン８内）に対応し、そしてプライマーcs3-Rは配列番号５のヌクレオチド3335-3359（野生型転写体の３′−末翻訳領域内）に対して相補的である。
変異体rsw１転写体の十分な長さの配列が、配列番号11として本明細書に示される。
いづれかの理論又は作用の態様により拘束されないが、変異体ポリペプチドにおいてVa1549により置換されるAla549をもたらす、野生型RSW１ヌクレオチド配列（配列番号５におけるヌクレオチド位置1646）に対する、rsw１変異体ヌクレオチド配列（配列番号11におけるヌクレオチド位置1716）における単一のヌクレオチド置換は、非許容性温度、たとえば31℃で、RSW１ポリペプチドの変更された活性に寄与する。追加のアミノ酸置換がまた、RSW１ポリペプチドの活性を変更するために、又はポリペプチドを感温性にするために、本発明により企画される。
例９．トランスジェニック植物におけるセルロース生成のアンチセンス阻害
１．アンチセンスRSW１二元ベクターの構成
セルロース生成が阻害されているトランスジェニック植物の１つの例を、ここにおけるアンチセンス遺伝子構造体の発現により供給する。アンチセンス技法を用いて、トランスジェニック植物により生成されるセルロースの量を減じるためにセルロース遺伝子の発現を標的化する。
例示の手法によれば、アンチセンス植物形質転換構造体を、二元プラスミドpRD410（Datlaなど、1992）に存在するCaMV35Sプロモーターとの操作可能的連結で及びアンチセンス配向でＴ20782 cDNA挿入体（又はその一部）を含むよう構築した。より特定には、野生型RSW１遺伝子の３′−末端を含むＴ20782 cDNAクローンを、XbaＩ及びKpnＩにより消化し、そしてプラスミドpJKKMf（−）として命名された、pGEM3zf（−）のカナマイシン耐性誘導体中にクローン化した。そのRSW１配列を、XbaＩ／SacＩフラグメントとして二元ベクターpRD410中に、アンチセンス配向でサブクローン化し、それにより、β−グルクロニダーゼ（GUS又はuidA）遺伝子を置換した。これは、CaMV35Sプロモーターの制御下でアンチセンス配向でのRSW１配列の転写を可能にする。
アンチセンスRSW１二元プラスミドベクターを、Lazoなど、（1991）により記載されるようにして、三親接合及びリファンピシン及びカナマイシンに基づく選択により、アグロバクテリウムツメファシエンス株AGL１にトランスファーした。形質転換されたＡ．ツメファシエンス細胞におけるRSW１挿入体の存在を、サザンハイブリダイゼーション分析（Southern，1975）により確かめた。構造体は、Ｅ．コリ株JM101中への復帰形質転換及び制限消化分析により、植物組織の形質転換の前、欠失又は転移が存在しないことを示された。
２．アラビドプシス・サリアナの形質転換
約16のＡ．サリアナ生態型Columbia植物を個々に含む８個のポットを、標準条件下で生長せしめた。植物組織を、Bechtoldなど、（1993）により記載されるようにして、真空浸透によりアンチセンスRSW１二元プラスミドにより形質添加した。浸透培地は2.5％（ｗ／ｖ）のスクロースを含み、そして植物を、２分間、約400mmHgの真空が得られるまで浸透せしめた。真空連結を閉じ、そして植物を真空下で５分間、静置せしめた。
約34,000個のＴ１種子を、50μｇ／mlのカナマイシンを含むMSプレート上でスクリーンし、アンチセンスRSW１構造体を含む植物を選択した。種まきされたＴ１種子のうち、135のカナマイシン耐性実生を同定し、そのうち91を土壌に移し、そして、日長光周期（16時間の光；８時間の闇）下で、21℃で生長せしめた。
91のトランスジェニック系のうち、柱頭上に花粉を沈着するには短か過ぎ、そして結果として、Ｔ２種をそれから得るためには手動授粉を必要とした、個々の花における葯フィラメントを有する19の系を、さらなる分析のために選択した。
それらの19の系のうち14の系からのＴ２種子を、カナマイシンを含む垂直Hoaglandsプレート上にプレートし、分離割合を決定した。５〜10個の種子を、トランスジェニック系当たりにプレートした。二元ベクターpBIN19（Bevan，1984）を含み、そしてカナマイシン耐性に対して３：１に分離するＡ．サリアナColumbiaを包含する対照種子、及びNPTII遺伝子により形質転換され、またカナマイシン耐性に対して３：１に分離するrsw１変異体を、同じ条件下で生長せしめた。カナマイシン耐性植物を土壌に移し、そして開花まで、日長下で21℃で生長せしめた。形質転換されていないアラビドプシス・サリアナColumbiaの植物をまた、カナマイシンの不在下で、類似する条件下で生長せしめた。
３．アンチセンス−RSW１植物の形態
非許容性温度（すなわち31℃）で生長せしめられた変異体rsw１植物に対する、21℃で生長せしめられたアンチセンスRSW１植物の形態の比較は、多くの共通する表現型を同定した。たとえば、アンチセンス植物は、21℃で生長せしめられる場合、野生型植物に比較して、低められた生殖能力、開花の短縮を示し、そして短い葯を有する。それらの表現型はまた、31℃で生長せしめられた変異体rsw１植物においても観察された。それらの結果は、トランスジェニック植物におけるアンチセンス構造体が21℃で野生型RSW１遺伝子の発現を標的化できることを示す。
図７は、同一の条件下で生長せしめられた野生型Ａ．サリアナColumbia植物に比較して、アンチセンス35Ｓ−RSW１植物において低められた花序（抽だい）の高さを示す。
４．アンチセンス植物の細胞壁炭水化物分析
35Ｓ−RSW１アンチセンス構造体に対してホモ接合性であるＴ３植物を生成し、そしてそれらにおけるセルロースの含有率を例１に記載のようにして決定する。アンチセンス構造体を発現する植物は、野生型植物に比較して、それらの細胞壁に有意に低いセルロースを有することが示される。さらに、非結晶性β−１，４−グルカン及び澱粉のレベルは、アンチセンス遺伝子構造体により形質転換されていない同系植物系に比較して、アンチセンス植物の細胞において高められる。
５．トランスジェニック植物におけるアンチセンス35Ｓ−RSW１ mRNA発現レベル
全RNAを、実質的にLongemannなど、（1986）の方法に従って、アンチセンス35Ｓ−RSW１遺伝子構造体を含む33のカナマイシン耐性Ｔ１植物に由来する葉組織0.2ｇから抽出した。全RNA（25μｇ）を、2.2Ｍのホルムアルデヒド／アガロースゲル上で分離し、ナイロンフィルター上にブロットし、そしてcDNAクローンＴ20782のセンス鎖配列を含むリボプローブにハイブリダイズせしめた。リボプローブを生成するためには、T7 RNAポリメラーゼを用いて、〔α−³²Ｐ〕UTPの存在下で、Ｔ20782を含む線状化されたプラスミド鋳型からのセンスRNAを転写せしめた。ハイブリダイゼーション及び続く洗浄を、Dolfernsなど、（1994）により記載のようにして実施した。ハイブリダイズされた膜を、Phosphorスクリーン（Molecular Dynamics，USA）に暴露した。
RSW１アンチセンス転写体の発現のレベルを決定し、そして前記植物系について観察される生殖能力のレベルに比較した。表９に示されるように、アンチセンス遺伝子発現のレベルは、アンチセンス植物の減じられた生殖能力表現型と同互関係した。13の系において、非常に高いか又は高いレベルの35Ｓ−RSW１アンチセンス遺伝子の発現が観察され、そしてそれらの系のうち11において、生殖能力が低められた。高い〜非常に高いレベルのアンチセンスmRNAを発現する２Ｗ及び３Ｅ系のみが、十分に生殖するように思えた。中ぐらいのレベルのアンチセンスmRNAを発現する12の系においては、その約半分が生殖し、そして半分が低められた生殖能力を示すように思えた。対照的に、低いか又は非常に低いレベルのアンチセンス35Ｓ−RSW１遺伝子構造体の発現が観察される８の植物系においては、野生型（すなわち生殖性）表現型が、１つのトランスジェニック系、すなわち２Ｒ系を除くすべてに観察された。
表９及び図７に示されるデータは、セルロース−欠乏変異体rsw１の表現型がトランスジェニック植物においてアンチセンスRSW１遺伝子構造体を発現することによって再生され得ることを示す。
アンチセンスRSW１遺伝子を発現するトランスジェニック植物における減じられたセルロース合成及び／又は沈着を確かめるために、セルロースのレベルを、例１に記載されるようにして、¹⁴Ｃ組込みアッセイにより、又は酢酸／硝酸不溶性材料として測定し、そして同系の野生型植物におけるセルロース生成に比較した。トランスジェニック植物におけるセルロース生成は、野生型植物に比較して、有意に低められることが示される。このようにして生成されるトランスジェニック植物の表現型の厳密性は、セルロース生合成の阻害のレベルにある程度依存して、相当に変化する。

例10．米植物におけるRSW１関連配列
米におけるRSW１関連ヌクレオチド配列を同定するために、遺伝子配列データベースを、前述の例に記載される１又は複数のアラビドプシス・サリアナRSW１ヌクレオチド配列に密接に関連するヌクレオチド配列について調べた。米ESTS0542（MAFF DNAバンク、Japan）を同定し、このためには、部分ヌクレオチド配列のみが利用できた。さらに、本発明の前、米ESTS0542配列に付随する、考えられる関係は存在しなかった。
本発明者は、クローンＳ0542の完全なヌクレオチド配列を得、そしてそれをコードするアミノ酸配列を誘導した。S0542 cDNAはわずか1741bpの長さであり、そしてそれは100bpの５′−末翻訳配列を含んで成り、そしてATG開始コドンを含むけれども、それは３′−末端で切断され、そして結果として、米RSW１又はRSW１様ポリペプチドの最初の547個のアミノ酸残基のみをコードしているので、部分cDNAクローンであると思われる。その対応するアラビドプシス・サリアナRSW１ポリペプチドの長さ（1081個のアミノ酸）に基づけば、配列番号14に示される米RSW１配列は、完全なアミ酸配列の約半分を含むように思える。
その米RSW１アミノ酸配列のＮ−末端の半分は、配列番号６に示されるアラビドプシス・サリアナRSW１ポリペプチドに対して約70％の同一性を有し、そして高い相同性（約90％）が米配列のアミノ酸残基271−547間で存在する。それらのデータは、Ｓ0542がＡ．サリアナRSW１遺伝子の米相同体であることを強く示唆する。一直線に並べられた米Ａ．サリアナ及び綿RSW１アミノ酸配列が、図９及び10に示される。
Ｓ0542（本発明の研究、及びMAFF DNAバンク、Japnan）又はＤ48636（Pearなど．，1996）の十分な長さのcDNAクローン及びゲノムクローン同等物を単離するために、cDNA及びゲノムクローンライブラリーを、それぞれ米mRNA及びゲノムDNAを用いて生成し、そしてプローブとしてＳ0542又はＤ48636のcDNAを用いて、ハイブリダイゼーションによりスクリーンする。陽性のハイブリダイズするプラークを同定し、そして単一のプラークに対するハイブリダイゼーションによるさらなる回のスクリーニングの間、プラーク−精製する。
前記米クローンを、前記例に記載のようにして配列決定し、米RSW１遺伝子の完全なヌクレオチド配列を決定し、そしてそのためのアミノ酸配列を誘導する。当業者は、そのような遺伝子配列が、標準技法を用いての、トランスジェニック植物、特に、変更されたセルロース含有率及び／又は品質を有するトランスジェニック穀物植物の生成のために有用であることを気づくであろう。本発明は、すべてのそのような遺伝子配列及びそのための用途にも及ぶ。
例11．綿植物におけるRSW１関連配列
³²Ｐ−ラベルされたRSW１ PCRフラグメントを用いて、綿線維cDNAライブラリーにおける約200,000個のcDNAクローンをスクリーンした。RSW１ PCRプローブを、前記例に記載されるプライマー2280-F及びcsp1-Rを用いて、アラビドプシス・サリアナ野生型cDNAから始め増幅し、そして次に、前記例にまた記載されるプライマーの組合せ2370-F/csp1-Rを用いて再増幅した。
ハイブリダイゼーションを、55℃で低い緊縮性下で実施した。
６個の推定上の陽性ハイブリダイズプラークを最初の回のスクリーニングにおいて同定した。さらに２回のハイブリダイゼーションによるスクリーニングを用いて、それらのプラークの４個を、単一プラークに対して精製した。３個のプラークは、RSW１プローブに対して非常に強くハイブリダイズするが、ところが４番目のプラークはより低い強度でハイブリダイズする。
本発明者は、精製された陽性ハイブリダイズプラークが、綿RSW１遺伝子配列又はRSW１−様遺伝子配列を含んで成る強い候補体であることを結論づける。さらに、綿cDNAは、セルロースシンターゼのサブユニットタンパク質構造体が前記例に記載されるように、植物間で高く保存されているように思えるので、セルロースシンターゼの触媒サブユニットをコードすることができる。
さらに、BglIIにより消化された綿ゲノムDNAのサザンブロットは、55℃での低い緊縮性のハイブリダイゼーション条件下で、RSW１ cDNAの５′端によりハイブリダイズされた。結果は図11に示される。それらのデータは、RSW１−関連配列が綿ゲノムに存在することを示す。
本明細書に記載される綿cDNAクローンを、前記例に記載のようにして配列決定し、そして変更された線維特徴を有するトランスジェニック綿植物を生成するために使用する。そのcDNAはまた、標準の技法を用いて、他の植物のセルロース含有率及び／又は性質を遺伝的に変更するためにも使用される。
例12．ユーカリプタスssp．におけるRSW１関連配列
推定上のユーカリプタスssp．セルロースシンターゼ触媒サブユニットの遺伝子フラグメントを、PCRを用いての増幅により得た。DNAプライマーは、アラビドプシス・サリアナRSW１及び12C4アミノ酸配列に見出される保存されたアミノ酸残基に対して企画された。それらのプライマーをPCRのために使用した。それらのプライマーは下記に列挙される：

標準のPCR条件（50℃のアニーリング温度）及び溶液を用いて、プライマー組pcsF-Ｉ／pcsR-II及びpcsF-II／pcsF-IIが、プールされたユーカリプタスssp．cDNAからの遺伝子配列を増幅するために使用された。最初の反応においては、プライマーpcsF-Ｉ及びpcsR-IIが、約700bpの長さのフラグメントを生成するために使用された。プライマーpcsF-II及びpcsR-IIを用いる第２のPCR反応においては、700bpに推定されるフラグメントが得られた。PCRフラグメントのサイズは、対応するアラビドプシス・サリアナ配列のために推定されるサイズ範囲内である。
本発明者は、増幅されたユーカリプタスssp．PCRフラグメントが、たぶんアラビドプシス・サリアナRSW１遺伝子に関係し、そしてユーカリプタスssp．のセルロースシンターゼ触媒サブユニットの少なくとも一部をコードすることができることを結論づける。
本明細書に記載されるユーカリプタスssp．PCRクローンを、前記例に記載のようにして配列決定し、そして対応する十分な長さのユーカリプタスssp．cDNA及びゲノム遺伝子同等物を単離するために使用する。当業者は、そのような遺伝子配列がトランスジェニック植物、特に、変更されたセルロース含有率及び／又は性質を有するトランスジェニックユーカリプタスssp．植物の標準技法を用いての生成のために有用であることを気づくであろう。本発明は、すべてのそのような遺伝子配列及びそのための用途に及ぶ。
例13．細胞壁性質のモデファイアーとしての非結晶性β−１，４−グルカン
植物細胞壁の性質は、構成される炭水化物、タンパク質及び他のポリマー、及び相互作用する複合体に依存する。細胞壁における非結晶性β−１，４−グルカンの量の上昇は、機械的、栄養的及び多くの他の性質に影響を及ぼし、そして他の使用を犠牲にしての非結晶性グルカン中への炭素の転換に起因する二次結果を有するそれらの細胞壁性質に影響を及ぼす。それらの効果の１つを例示するために、本発明者は、細胞壁の機械的構造のために重要であることが示されている手段で、他の壁成分、特にセルロースに水素結合する非結晶性グルカンの能力を研究した。
ヘミセルロース、たとえばキシログルカンは、ミクロフィブリル表面への水素結合によりセルロースミクロフィブリルを架橋する（Levyなど．，1991）。キシログルカンのβ−１，４−グルカン主鎖が水素結合を担当していると思われるので（そして、キシロース、ガラクトース及びフコース置換は、さらなる水素結合を形成する能力を制限する）、本発明者は、非結晶性β−１，４−グルカンがまた、セルロースを水素結合し、そして架橋する能力を有することができることを予測できる。キシログルカンの抽出における強いアルカリの有効性は、セルロースによる水素結合のそれらの破壊に関係していると思われる（Hayashi and MacLachlan，1984）。
非結晶性β−１，４−グルカンがセルロースミクロフィブリルとの類似する関係を形成することを示すために、本発明者は、rsw１変異体の苗条、及び野生型RSW１植物から抽出される４ＭのKOH画分が、キシログルカンの他に、非結晶性グルカンを含むかどうかについて試験した。非結晶性グルカンを、蒸留水に対して中和された抽出物を透析し、そして1400ｇで１時間、遠心分離することによって、４ＭのKOH抽出物におけるキシログルカンから分離した。ペレットは、アンモニウムオキサレート画分におけるグルカンを特徴づけるために使用される、単糖分析、メチル化分析、及び酵素消化のための方法を用いることによって、純粋なβ−１，４−グルカンであることが示された（例１を参照のこと）。
表10は、アラビドプシス・サリアナの過剰生成rsw１変異体から抽出される４ＭのKOH画分からのペレットにおける、純粋な形で回収される実質的な量のグルカンの存在を示す。それらのデータはまた、特に31℃で生長せしめられる場合、rsw１に比較して、野生型植物からの４ＭのKOH画分において少量の非結晶性β−１，４−グルカンの存在を示す。

遠心分離の後に残る上清液中の単糖組成物を、TFA加水分解の後に決定した。それらのデータ、及びメチル化分析からのデータは、上清液が比較的純粋なキシログルカンであることを示す。その上清液は、グルコースがβ−１，４−グルカンからグルコースを開放するエンドセルラーゼ／β−グルコシダーゼ混合物により開始されないので、グルカンを有さない。
４ＭのKOH画分における非結晶性β−１，４−グルカン及びキシログルカンの両者の存在は、構造的な予測から密接な関係を伴って一緒に取られる場合（Levyなど、1991）、キシログルカンのβ−１，４−グルカン主鎖に類似した態様で、セルロースミクロフィブリルに水素結合する、細胞壁におけるいくらかの非結晶性β−１，４−グルカンと一致する。
キシログルカン及び他のヘミセルロースが複数のミクロフィブリルに結合する場合に供給される架橋は、セルロース壁の機械的性質の重要な決定因子である（Hayashi，1989）。壁における非結晶性β−１，４−グルカンの量の上昇の効果は、セルロース：ヘミセルロースの高い比率の結果として、比較的低いレベルの架橋を有する壁においてたぶんより高くなる。そのような条件は、種々の線維の壁を包含する二次壁において共通し、そしてセルロース：ヘミセルロースの比率は綿線維において特に高い。
非結晶性グルカンを過剰生成する壁の機械的性質に対する効果が、配列番号３又は４に由来するRSW１プロモーター、又は他方では、適切な構成プロモーター、たとえばCaMV35Sプロモーターのいづれかの制御下で、rsw１（配列番号11）の変異対立遺伝子により植物を、操作可能的に形質転換することによって示される。非結晶性グルカンの生成は、非結晶性グルカンが４ＭのKOH画分において回収されることを特に示すために、上記方法を用いて細胞壁を分別することによって定量化される。細胞壁の機械的性質は、パラメーター、たとえば他の性質の中でも応力−歪曲線、及び破断歪を研究するための線維分析のための標準方法を用いて測定される。
例14．トランスジェニック植物におけるセルロースシンターゼの過剰発現
３種の方法が、アラビドプシス・サリアナ植物においてセルロースシンターゼを過剰発現するためには使用される。
第１の方法においては、CaMV35Sプロモーター配列が、配列番号１のプライマー延長により得られる十分な長さのセルロースシンターゼcDNAに操作可能的に連結される。これは、セルロースシンターゼをコードする十分な長さのcDNAを、植物において操作可能なCaMV35S′プロモーター又は他の適切なプロモーターと二元プラスミドpBI121のノパリンシンターゼターミネーター配列との間に、センス配向でクローン化することによって達成される。
第２の方法においては、ゲノム遺伝子のコード部分が、CaMV35S′プロモーターと二元プラスミドpBI121のノパリンシンターゼターミネーター配列との間に、センス配向でクローン化される。
第３の方法においては、セルロースシンターゼ遺伝子プロモーター及びターミネーター配列の制御下で操作可能的にセルロースシンターゼ遺伝子を含む、23Ｈ12二元コスミドクローン又はpRSW１誘導体が、植物組織の形質転換のために適切な形で調製される。
アグロバクテリウム−介在の組織形質転換のためには、前記で論ぜられた二元プラスミド構造体を用いて、アグロバクテリウム・ツメファシエンス株AGL１又は他の適切な株を形質転換する。次に、組換えDNA構造体が、前記例に記載されたようにして、野生型アラビドプシス・サリアナ植物（Columbia生態型）中に導入される。
他方では、植物組織が、Beshtoldなど、（1993）により記載される真空浸透方法を用いて、直接的に形質転換される。
このようにして生成されたトランスジェニック植物は、一部、セルロースシンターゼトランスジーンの位置効果及び種々のレベルの発現のために、広範囲の表現型を示す。
トランスジェニック植物及び形質転換されていない同系の対照植物におけるセルロース含有率を、例１に記載のようにして、¹⁴Ｃ組込みアッセイにより、又は酢酸／硝酸不溶性材料として決定した。一般的に、トランスジェニック植物におけるセルロース沈着のレベル及びセルロース生合成の速度は、形質転換されていない対照植物のものよりも有意に高い。
さらに、多くの場合、同時抑制は、rsw１変異体表現型の模倣を導びく。
例15． RSW１遺伝子の部位特定突然変異誘発
23Ｈ12に含まれるRSW１遺伝子のヌクレオチド配列を、その触媒活性、基質親和性又はグルカン性質を変更するいくつかの位置で、部位特定突然変異誘発を用いて突然変異誘発する。１つの例においては、RSW１遺伝子を、変異体rsw１対立遺伝子に存在する１又は複数の突然変異を含むよう突然変異誘発する。
突然変異誘発された遺伝子配列を、野生型配列の代わりに、前記例に記載される二元プラスミド中にクローン化する。野生型アラビドプシス・サリアナ（Columbia）植物及びＡ．サリアナrsw１植物の両者から得られた植物組織を、本明細書に記載されるようにして形質転換し、そして完全な植物を再生する。
対照の形質転換を、野生型セルロースシンターゼ遺伝子配列を用いて実施する。
例16．突然変異誘発されたRSW１遺伝子を発現する植物の表現型
例15（及び他の場所）に記載される遺伝子構造体により形質転換された植物をまず、それから生じる変動性を排除するために、トランスジーンコピーの類に基づいて分類する。異なったトランスジーンの単一コピーを発現する植物を、さらに、細胞壁成分、たとえばセルロース、非結晶性β−１，４−グルカンポリマー、澱粉及び炭水化合物含有率について分析する。
１．セルロース含有率
トランスジェニック植物におけるセルロース含有率を、例１に記載のようにして¹⁴Ｃ組込みにより決定する。細胞壁を調製し、分別し、そして個々の画分の単糖組成物を例１におけるように決定する。
２．非結晶性β−１，４−グルカン含有率
rsw１変異体対立遺伝子を発現するトランスジェニック植物は、野生型RSW１対立遺伝子の追加のコピーを発現する植物に比較して、細胞壁において高レベルの非結晶性及び従って、抽出できるβ−１，４−グルカンを示す。従って、野生型RSW１対立遺伝子の突然変異により、細胞壁に存在するβ−１，４−グルカン鎖の結晶性を変えることが可能である。
３．澱粉含有率
トランスジェニック植物をまた分析し、それらの根に沈着される澱粉のレベルに対するRSW１遺伝子の突然変異誘発の効果を決定する。粗壁画分から調製される材料に存在する澱粉の量を、例１に記載されるアントロン／H₂SO₄方法を用いて決定する。このデータは、RSW１遺伝子を変異体rsw１対立遺伝子に突然変異誘発することが澱粉沈着を高めることを示す。これは、前記遺伝子がセルロース以外の炭水化物中への炭素の分配を変更するために使用され得ることを示す。
４．細胞壁組成
トランスジェニック植物材料の細胞壁組成をまた分析する。野生型及びrsw１、並びにトランスジェニック実生を21℃で２日間、生長せしめ、そして次に、21℃又は31℃のいづれかで、さらに５日間維持する。31℃への移行により、種子がほとんど発芽しない場合、最終収穫での細胞壁組成は、その制限温度で、突然変異誘発されたrsw１遺伝子生成物の操作にひじょうに影響を及ぼす。細胞壁分別を、¹⁴Ｃ−実験（例１）について記載される態様と類似する態様で実施し、そして個々の画分中の単糖組成を、トリフルオロ酢酸による加水分解、又は結晶性セルロースの場合、H₂SO₄による加水分解の後、GC／MSにより定量化する。
RSW１遺伝子が変異誘発されているいくつかのトランスジェニック植物においては、単糖組成は、少なくともいくつかの場合、ホモ接合性rsw１植物に関して観察される単糖組成に匹敵し、このことは、最終の酸不溶性画分における結晶性セルロースの量に主要な低下が存在することを確かにする。従って、RSW１遺伝子の突然変異が、植物細胞壁の組成の変化を生ぜしめるために実施され得る。
例17．セルロース生成及び植物細胞壁含有率を操作するためへのRSW１遺伝子の化学的修飾
前記例に示されるようにして、RSW１遺伝子が、セルロース生成、及び細胞壁含有率の操作に包含される。
この例においては、セルロースシンターゼ遺伝子の通常の機能のために重要な新規表現型及び遺伝子配列を同定するために、RSW１遺伝子を、化学的突然変異誘発剤EMSを用いて、植物において修飾する。変異体植物を発芽に従って同定し、そして修飾されたRSW１遺伝子を単離し、そしてヌクレオチド配列レベルで特徴づける。変異体遺伝子配列と野生型配列との間の配列比較は、少なくともアラビドプシス・サリアナ植物において、セルロースシンターゼ酵素の通常の触媒活性に対して重要なアミノ酸をコードするヌクレオチド示す。
従って、このアプローチは、植物におけるセルロース含有率及び性質の修飾に利用できる追加の遺伝子配列を生成する。
例18．議論
RSW１遺伝子生成物が、セルロースシンターゼの触媒サブユニットをコードすることを、次の５つの証拠が確実にする：
１．rsw１突然変異が、セルロース合成を選択的に阻害し、そして非結晶性β−１，４−グルカンの蓄積を促進し；
２．rsw１突然変異が、形質膜からセルロースシンターゼ複合体を除去し、低められたセルロース蓄積のためのもっともらしい機構を提供し、そして前記複合体におけるか又はそれらと相互作用するRSW１生成物を配置し；
３．D，D，D，QXXRW特徴が、RSW１遺伝子生成物をプロセッスィブグリコシルトランスフェラーゼ酵素として同定し（Saxena，1995）；
４．野生型対立遺伝子が、rsw１変異体の感温性表現型を補正し；そして
５．21℃で生長せしめられたトランスジェニック植物におけるRSW１のアンチセンス発現が、31℃での生長に続いて観察されるrsw１の表現型のいくつかを再生する。
触媒サブユニットのために予測される形質膜位置と一致して、推定上の122kDaのRSW１生成物は、８個の予測される膜スパンニング（spanning）領域を含む。それらの領域のうち６個は、たぶん細胞質性であり、そして原核生物のグリコシルトランスフェラーゼに対して弱い配列類似性を有するドメインにより、他の２つから分離される、Ｃ−末端（図10）近くに群をなす（Wong，1990；Saxena，1990；Matthyse，1995；Sofia，1994；Kutish，1996）。
従って、RSW１は、アラビドプシス・サリアナ遺伝子の大きなファミリーの中のメンバーとして適格であり、そのメンバーは、細菌セルロースシンターゼに対して弱い類似性を示す。RSW１は、真正のセルロースシンターゼとして正確に同定されるべき前記ファミリーの中の第１メンバーである。Ａ．サリアナにおける種々の遺伝子の中で、少なくとも２種の遺伝子は、RSW１遺伝子に対してひじょうに強い配列類似性を示し、そしてセルロース合成に関与する高く保存されたサブファミリーの中の最とも可能性あるメンバーである。密接に関連する配列は、コスミド12C4、すなわちAth-Aと称するEST T20782と交差ハイブリダイズする部分ゲノムクローン、及びAth-Bと称する十分な長さのcDNAからのものである。
Ath-AはそのＮ−末端でRSW１（配列番号５）に似ており、そしてAth-Bは22個のアミノ酸残基の下流で開始する〔図８及び図９（ｉ），（ii）及び（iii）〕。他の被子植物における密接に関連する配列は、米EST S0542であり〔図９（ｉ），（ii）及び（iii）〕、これはRSW１及びAth-Aによりコードされるポリペプチド、及びそのＮ−末端での綿celA遺伝子（Pear，1996）に類似する。
アラビドプシス・サリアナ、米及び綿遺伝子は、可変領域を散在するひじょうに高い配列類似性の領域を有する（図９及び10）。それらの遺伝子生成物間の最高の保存性のほとんどが、細菌セルロースシンターゼに対する弱い類似性が生じるそれらの中央細胞質ドメインにおいて生じる。最初の膜スパニング領域の前のＮ−末端領域はたぶん、また細胞質性であるが、しかし多くのアミノ酸置換、及びcelAに関してすでに言及されたように、いくつかの他の遺伝子において対応部分を有さない、RSW１における配列を示す。これに対する例外は、高く保存された空間と共に７個のシステイン残基を含んで成る領域である（図10）。これは、転写レギュレーターを包含する種々のタンパク質においてタンパク質−タンパク質及びタンパク質−脂質の相互作用を仲介することを示す領域の暗示であり、そしてRSW１のこの領域と２種の推定上の大豆、bZIP転写因子との間での目立った配列類似性について説明することができる（Genbank SOYSTFIA及び1B）。
結論的には、セルロース欠乏変異体に見られる化学的及び超構造的変化が、RSW１遺伝子座がセルロースシンターゼの触媒サブユニットをコードする強い証拠を提供するために変異体の遺伝子クローニング及び相補性と結合する。rsw１変異体の苗条における非結晶性β−１，４−グルカンの蓄積は、突然変異により影響される性質がミクロフィブリル中に集合するグルカン鎖のために必要とされることを示唆する。いづれの理論又は作用の態様によっても拘束されないが、鍵となる特性は、形質膜ロゼット中への触媒サブユニットの集合である。制限温度で、変異体シンターゼ複合体は、フリーズエッチングにより検出できないモノマー（又は小さなオリゴマー）に分解する。少なくとも苗条においては、モノマーは生合成的に活性のまま存続すると思われるが、しかしそれらのβ−１，４−グルカン生成物は、たぶん鎖が分散された部位から生長するので、ミクロフィブリル中に結晶化できない。従って、細胞壁機構及び形態形成についてのすべてのそれらの結果と共に、ミクロフィブリル中への結晶化は、形質膜ロゼットとして凝集されたまま存続する触媒サブユニットに依存する。
当業者は、本明細書に記載される発明が特別に記載される以外、変更及び修飾に対して許容できることを理解するであろう。本発明はそのようなすべての変更及び修飾を包含することが理解されるべきである。本発明はまた、本明細書に個々に、又は集合的に言及され又は示される、段階、特徴、組成及び化合物のすべて、及び前記段階又は特徴のいづれか及びすべての組合せ、又はいづれか複数の組合せを包含する。

配列表
（１）一般情報：
（ｉ）出願人：Australian National University and the Commonwealth Scientific Industrial Research Organisation
（ii）発明の名称：植物セルロースの操作
（iii）配列の数：14
（２）配列番号１についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：2248個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：EST T20782
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：1..1887
（xi）配列：配列番号１：

（２）配列番号２についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：629個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号２：

（２）配列番号３についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：8411個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：DNA（ゲノム）
（iii）ハイポセティカル：NO
（iv）アンチ−センス：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia（野生型）
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：23H12 RSW1遺伝子
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：2296..2376
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：2904..3099
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3198..3370
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3594..3708
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3824..4013
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：4181..4447
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：4783..5128
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：5207..5344
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：5426..5551
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：5703..5915
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：6022..6286
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：6374..6570
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：6655..7005
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：7088..8032
（xi）配列：配列番号３：

（２）配列番号４についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：5009個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：DNA（ゲノム）
（iii）ハイポセティカル：NO
（iv）アンチ−センス：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：12C4
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：663..943
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：1454..1840
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：1923..2025
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：2122..2311
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：2421..2687
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：2776..3121
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3220..3357
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3507..3623
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：3723..3935
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：4027..4297
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：エキソン
（Ｂ）位置：4308..4576
（xi）配列：配列番号４：

（２）配列番号５についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：3603個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：RSW1 cDNA
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：1..3243
（xi）配列：配列番号５：

（２）配列番号６についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：1081個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号６：

（２）配列番号７についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：3828個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（iv）アンチ−センス：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：Ath-A
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：239..3490
（xi）配列：配列番号７：

（２）配列番号８についての情報：
（１）配列の特徴：
（Ａ）長さ：1084個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号８：

（２）配列番号９についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：3614個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：Ath-B
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：217..3411
（xi）配列：配列番号９：

（２）配列番号10についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：1065個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号10：

（２）配列番号11についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：3673個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（iv）アンチ−センス：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：アラビドプシス・サリアナ
（Ｂ）株名：Columbia
（Ｃ）個体−単離クローン名：rsw1変異体
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：71..3313
（xi）配列：配列番号11：

（２）配列番号12についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：1081個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号12：

（２）配列番号13についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：1741個の塩基対
（Ｂ）型：核酸
（Ｃ）鎖の数：一本鎖
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：cDNA
（iii）ハイポセティカル：NO
（iv）アンチ−センス：NO
（vi）起源：
（Ａ）生物名：オリザ・サチバ
（vii）直接の起源：
（Ｂ）クローン：S0542
（ix）特徴：
（Ａ）名称／キー：CDS
（Ｂ）位置：101..1741
（xi）配列：配列番号13：

（２）配列番号14についての情報：
（ｉ）配列の特徴：
（Ａ）長さ：547個のアミノ酸
（Ｂ）型：アミノ酸
（Ｄ）トポロジー：直鎖状
（ii）配列の種類：タンパク質
（xi）配列：配列番号14：

Claims (25)

1. セルロース合成活性を有する植物のセルロースシンターゼポリペプチドをコードするヌクレオチド配列又はそれに相補的な配列を含んでなる核酸分子であって、当該ヌクレオチド配列が、
   （ａ）配列番号：５のヌクレオチド配列に対して少なくとも95％の配列同一性を有し、或いは
   （ｂ）配列番号：６のアミノ酸配列に対して少なくとも90％の配列同一性を有するポリペプチドをコードし、或いは
   （ｃ）配列番号：６アミノ酸配列、又は配列番号：６のアミノ酸配列において１〜数個のアミノ酸の置換、欠失若しくは付加により修飾されたアミノ酸配列をコードし、或いは
   （ｄ）配列番号：５のヌクレオチド配列又はその相補的配列の核酸に対して、0.1×SSC〜0.2×SSC緩衝液、0.1％（W/V）SDS、55℃以上、の高緊縮条件下でハイブリダイズする、
   ことを特徴とする核酸分子。
2. 前記ヌクレオチド配列が、配列番号：５のヌクレオチド配列である、請求項１に記載の核酸分子。
3. 前記ヌクレオチド配列が、配列番号：６のアミノ酸配列に対して少なくとも95％の配列同一性を有するアミノ酸配列をコードする、請求項１に記載の核酸分子。
4. 前記植物が、アラビドプシス・サリアナ（Arabidopsis thaliana）である、請求項１〜３のいずれか１項に記載の核酸分子。
5. 前記セルロースシンターゼが、配列番号：３によりコードされるアラビドプシス・サリアナRSW１ポリペプチドである請求項１〜４のいずれか１項に記載の核酸分子。
6. 前記ペプチドが、配列番号：６に記載のアミノ酸の配列を含んでなる、請求項１〜５のいずれか１項に記載の核酸分子。
7. 請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含んで成る遺伝子構造体。
8. 異種性プロモーター配列に作用可能に連結されている、請求項１〜６のいずれか１項に記載の核酸分子を含んで成る遺伝子構造体。
9. 前記プロモーター配列が植物細胞における発現を制御することが出来る、請求項８に記載の遺伝子構造体。
10. 前記遺伝子構造体を含む細胞中で前記核酸分子が発現される場合にセルロースシンターゼポリペプチド若しくはその触媒サブユニット又は当該セルロースシンターゼポリペプチドをコードするRNAが生成されるように、前記核酸分子が前記プロモーター配列に、センス配向で、作用可能に連結されている、請求項７〜９のいずれか１項に記載の遺伝子構造体。
11. 前記プロモーターが、CaMV35Sプロモーター、配列番号：３の１位のヌクレオチドから1900位のヌクレオチドまでのヌクレオチド配列を含むプロモーター、又は配列番号：４の１位のヌクレオチドから700位のヌクレオチドまでのヌクレオチド配列を含むプロモーターである、請求項７〜10のいずれか１項に記載の遺伝子構造体。
12. 請求項８又は９に記載の遺伝子構造体を含むトランスジェニック植物又は当該トランスジェニック植物由来の植物部分。
13. 植物細胞、植物組織、植物器官又は植物全体においてセルロースレベルを高めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を生成し又は高めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、センス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
14. 植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体において非結晶性β−1,4−グルカンのレベルを低めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を生成し又は高めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、センス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
15. 植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体において澱粉のレベルを低めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を生成し又は高めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、センス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
16. 植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体においてセルロースレベルを低めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を妨げ又は低めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、アンチセンス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
17. 植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体において非結晶性β−1,4−グルカンのレベルを高めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を妨げ又は低めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、アンチセンス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
18. 植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体において澱粉のレベルを高めるための方法であって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、コードされるポリペプチドの発現を妨げ又は低めるのに少なくとも十分である時間及び条件下で、アンチセンス配向下で発現せしめることを含んで成る方法。
19. 前記植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体が、アラビドプシス・サリアナ（Arabidopsis thaliana）、ゴシピウム・ヒルスタム（Gossypium hirsutum）（綿）、オリザ・サチバ（Oryza sativa）（米）、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp.（Brassica spp．）、ユーカリプタスssp．（Eucalyptus spp．）、アサ、ジュート、アマ、並びに木本植物であるピナスssp．（Pinus spp．）、ポプラスssp．（Populus spp．）及びピセアspp．（Picea spp．）から成る群から選択される、請求13〜18のいずれか１項に記載の方法。
20. 植物細胞において酵素的に活性な組換えセルロースシンターゼポリペプチド又はセルロースシンターゼ活性を有する触媒的サブユニットを生成するための方法があって、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を、ポリペプチドの生成のために十分な時間及び条件下で、前記細胞において発現せしめることを含んで成る方法。
21. 請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子又は請求項７〜10のいずれか１項に記載の遺伝子構造体により、植物細胞、植物組織、植物器官又は全植物体を形質転換する追加の第１段階を含んで成る請求項13〜20のいずれか１項に記載の方法。
22. 配列番号；６に示されるアミノ酸の配列に対して少なくとも90％の同一性を有し、セルロース合成活性を有する、実質的に均一な組換えセルロースシンターゼポリペプチド。
23. 植物細胞の細胞壁の機械的性質を変更するための方法であって、非結晶性β−1,4−グルカンのレベルを高めるのに十分な時間及び条件下で、請求項１〜８のいずれか１項に記載の核酸分子を前記細胞において、アンチセンス配向で発現せしめることを含んで成る方法。
24. 請求項22に記載の組換えポリペプチドに特異的に結合する抗体分子。
25. アラビドプシス・サリアナ（Arabidopsis thaliana）、ゴシピウム・ヒルスタム（Gossypium hirsutum）（綿）、オリザ・サチバ（Oryza sativa）（米）、小麦、大麦、トウモロコシ、ブラシカssp．（Brassica spp．）、ユーカリプタスssp．（Eucalyptus spp．）、アサ、ジュート、アマ、ピナスssp．（Pinus spp．）、ポプラスssp．（Populus spp．）、及びピセアspp．（Picea spp．）から成る群から選択される、請求項12に記載のトランスジェニック植物又は植物部分。

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