JP2016047845A - クローディン6(cldn6)に特異的な抗体 - Google Patents
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Abstract
【解決手段】CLDN6を発現する細胞の表面に会合したCLDN6に結合することができ、CLDN9を発現する細胞の前記表面に会合したCLDN9には実質的に結合することができない抗体。
【選択図】なし
Description
(i)配列番号:xの抗体重鎖配列またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つすべてを有する抗体重鎖、および
(ii)配列番号:x+1の抗体軽鎖配列またはその変異体のCDR配列の少なくとも1つ、好ましくは2つ、より好ましくは3つすべてを有する抗体軽鎖
を含み、xは34、36、38および40から選択される。CDR配列は、それぞれ図25および26に示す上記抗体重鎖配列および抗体軽鎖配列中の箱で表示される。
(i)Xaa1 Gly Xaa2 Val Xaa3、Asp Xaa1 Gly Xaa2 Val Xaa3、Xaa1 Gly Xaa2 Val Xaa3 Asp、Asp Xaa1 Gly Xaa2 Val Xaa3 Asp、およびAla Arg Asp Xaa1 Gly Xaa2 Val Xaa3 Asp Tyrからなる群より選択されるCDR3配列を含み、前記配列中、Xaalは任意のアミノ酸、好ましくは芳香族アミノ酸、より好ましくはPheまたはTyr、最も好ましくはTyrであり、Xaa2は任意のアミノ酸、好ましくは芳香族アミノ酸、より好ましくはPheまたはTyr、最も好ましくはTyrであり、およびXaa3は任意のアミノ酸、好ましくはLeuまたはPhe、最も好ましくはLeuである、抗体重鎖、ならびに
(ii)Arg Xaa1 Xaa2 Xaa3 Pro、Gln Arg Xaa1 Xaa2 Xaa3 Pro Pro、Gln Gln Arg Xaa1 Xaa2 Xaa3 Pro Pro Trp Thrからなる群より選択されるCDR3配列を含み、前記配列中、Xaalは任意のアミノ酸、好ましくはSerまたはAsn、最も好ましくはSerであり、Xaa2は任意のアミノ酸、好ましくはTyr、Ser、Ile、AsnまたはThr、より好ましくはTyr、SerまたはAsn、最も好ましくはAsnであり、およびXaa3は任意のアミノ酸、好ましくはSerまたはTyr、より好ましくはTyrである、抗体軽鎖
を含む。
(i)配列番号:xの抗体重鎖配列またはその変異体を有する抗体重鎖、および
(ii)配列番号:x+1の抗体軽鎖配列またはその変異体を有する抗体軽鎖
を含み、xは34、36、38および40から選択される。
a)CLDN6に対する特異性;
b)CLDN6に対する約100nMまたはそれ以下、好ましくは約5〜10nMまたはそれ以下、より好ましくは約1〜3nMまたはそれ以下の結合親和性;
c)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞のCDCを誘導する能力;
d)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞の増殖を阻害する能力;
e)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞のアポトーシスを誘導する能力;
f)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞の同型接着を誘導する能力;
g)エフェクター細胞の存在下でCLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞のADCCを誘導する能力;
h)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする腫瘍細胞を有する被験者の生存を延長させる能力;
i)CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞を枯渇させる能力;
j)生細胞の表面でCLDN6を凝集させる能力
の1またはそれ以上によって特徴づけることができる。
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2.GT512muMAB 60A、アクセッション番号DSM ACC3068、2010年6月21日寄託;
3.GT512muMAB 61D、アクセッション番号DSM ACC3069、2010年6月21日寄託;
4.GT512muMAB 64A、アクセッション番号DSM ACC3070、2010年6月21日寄託;
5.GT512muMAB 65A、アクセッション番号DSM ACC3071、2010年6月21日寄託;
6.GT512muMAB 66B、アクセッション番号DSM ACC3072、2010年6月21日寄託;
7.GT512muMAB 67A、アクセッション番号DSM ACC3073、2010年6月21日寄託;
8.GT512muMAB 55A、アクセッション番号DSM ACC3089、2010年8月31日寄託;または
9.GT512muMAB 89A、アクセッション番号DSM ACC3090、2010年8月31日寄託。
1.GT512muMAB 59A、アクセッション番号DSM ACC3067、2010年6月21日寄託;
2.GT512muMAB 60A、アクセッション番号DSM ACC3068、2010年6月21日寄託;
3.GT512muMAB 61D、アクセッション番号DSM ACC3069、2010年6月21日寄託;
4.GT512muMAB 64A、アクセッション番号DSM ACC3070、2010年6月21日寄託;
5.GT512muMAB 65A、アクセッション番号DSM ACC3071、2010年6月21日寄託;
6.GT512muMAB 66B、アクセッション番号DSM ACC3072、2010年6月21日寄託;
7.GT512muMAB 67A、アクセッション番号DSM ACC3073、2010年6月21日寄託;
8.GT512muMAB 55A、アクセッション番号DSM ACC3089、2010年8月31日寄託;または
9.GT512muMAB 89A、アクセッション番号DSM ACC3090、2010年8月31日寄託。
以下は、本発明の抗体の治療効果の基礎となる機構についての考察を提供するが、これはいかなる意味においても本発明への限定とみなされるべきではない。
ADCCは、本明細書で述べるエフェクター細胞、特にリンパ球の細胞死滅能力を表わし、これは、好ましくは標的細胞が抗体によって印づけられることを必要とする。
CDCは、抗体によって指令され得るもう1つの細胞死滅化方法である。IgMは補体活性化のために最も有効なアイソタイプである。IgG1およびIgG3も、いずれも古典的補体活性化経路によってCDCを指令するのに非常に有効である。好ましくは、このカスケードにおいて、抗原抗体複合体の形成は、IgG分子などの関与する抗体分子のCH2ドメイン上のごく近接する多数のC1q結合部位の露出を生じさせる(C1qは補体C1の3つのサブ成分の1つである)。好ましくは、これらの露出されたC1q結合部位は、それまでの低親和性C1q−IgG相互作用を高いアビディティの相互作用へと変換し、それが、一連の他の補体タンパク質を含む事象のカスケードを開始させ、エフェクター細胞化学走性/活性化物質C3aおよびC5aのタンパク質分解性放出を導く。好ましくは、補体カスケードは、細胞内および細胞外への水と溶質の自由な通過を促進する細胞膜の細孔を作り出す、膜傷害性複合体の形成で終了する。
本発明の抗体は、従来のモノクローナル抗体法、例えばKohler and Milstein,Nature 256:495(1975)の標準的な体細胞ハイブリダイゼーション技術を含む、様々な技術によって作製することができる。体細胞ハイブリダイゼーション手順が原則として好ましいが、モノクローナル抗体を作製するための他の技術、例えばBリンパ球のウイルスもしくは発癌性形質転換または抗体遺伝子のライブラリーを使用したファージディスプレイ技術も使用できる。
CLDN6に対する抗体を作製するため、上述したように、組換え発現されたCLDN6抗原もしくはそのフラグメントおよび/またはCLDN6もしくはそのフラグメントを発現する細胞の富化製剤である、CLDN6配列に由来する担体結合ペプチドでマウスを免疫することができる。あるいは、完全長ヒトCLDN6またはそのフラグメントをコードするDNAでマウスを免疫することができる。CLDN6抗原の精製または富化製剤を使用した免疫が抗体を生じない場合は、免疫応答を促進するためにCLDN6を発現する細胞、例えば細胞株でマウスを免疫することもできる。
CLDN6に対するモノクローナル抗体を産生するハイブリドーマを作製するために、免疫マウスから得たリンパ節または脾臓からの細胞を単離し、マウス骨髄腫細胞株などの適切な不死化細胞株に融合することができる。次に、生じたハイブリドーマを抗原特異的抗体の産生に関してスクリーニングすることができる。その後、個々のウエルを、抗体を分泌するハイブリドーマに関してELISAによってスクリーニングすることができる。CLDN6発現細胞を使用した免疫蛍光法およびFACS分析により、CLDN6に対して特異性を有する抗体を同定できる。抗体を分泌するハイブリドーマを再度平板培養し、再びスクリーニングして、抗CLDN6モノクローナル抗体に関してまだ陽性である場合は限界希釈によってサブクローニングすることができる。その後、安定なサブクローンをインビトロで培養して、特性評価のために組織培養培地において抗体を作製することができる。
本発明の抗体はまた、例えば当技術分野で周知の組換えDNA技術と遺伝子トランスフェクション法の組合せを用いて(Morrison,S.(1985)Science 229:1202)、宿主細胞トランスフェクトーマ中で生産することができる。
a)キメラ化
マウスモノクローナル抗体は、毒素または放射性同位体で標識した場合、ヒトにおいて治療用抗体として使用できる。非標識マウス抗体は、反復適用したときヒトにおいて高度に免疫原性であり、治療効果の低下を導く。主たる免疫原性は重鎖定常領域によって媒介される。ヒトにおけるマウス抗体の免疫原性は、それぞれの抗体をキメラ化またはヒト化した場合低減するまたは完全に回避することができる。キメラ抗体は、マウス抗体に由来する可変領域とヒト免疫グロブリン定常領域を有するもののような、その異なる部分が異なる動物種に由来する抗体である。抗体のキメラ化は、マウス抗体の重鎖および軽鎖の可変領域をヒト重鎖および軽鎖の定常領域と連結することによって達成される(例えばKraus et al.,in Methods in Molecular Biology series,Recombinant antibodies for cancer therapy ISBN−0−89603−918−8によって述べられている)。好ましい実施形態において、キメラ抗体は、ヒトκ軽鎖定常領域をマウス軽鎖可変領域に連結することによって作製される。同じく好ましい実施形態において、キメラ抗体は、ヒトλ軽鎖定常領域をマウス軽鎖可変領域に連結することによって作製できる。キメラ抗体の作製のための好ましい重鎖定常領域は、IgG1、IgG3およびIgG4である。キメラ抗体の作製のための他の好ましい重鎖定常領域は、IgG2、IgA、IgDおよびIgMである。
抗体は、主として、6つの重鎖および軽鎖相補性決定領域(CDR)内に位置するアミノ酸残基を介して標的抗原と相互作用する。このため、CDR内のアミノ酸配列はCDRの外側の配列よりも個々の抗体間でより多様である。CDR配列は大部分の抗体−抗原相互作用に関与するので、異なる性質を有する異なる抗体からのフレームワーク配列に移植された、特定の天然に生じる抗体からのCDR配列を含む発現ベクターを構築することにより、特定の天然に生じる抗体の性質を模倣する組換え抗体を発現することが可能である(例えばRiechmann,L.et al.(1998)Nature 332:323−327;Jones,P.et al.(1986)Nature 321:522−525;およびQueen,C.et al.(1989)Proc.Natl.Acad.Sci.U.S.A.86:10029−10033参照)。そのようなフレームワーク配列は、生殖細胞系抗体遺伝子配列を含む公的DNAデータベースから入手できる。これらの生殖細胞系配列は、B細胞の成熟の間にV(D)J連結によって形成される、完全に構築された可変遺伝子を含まないので、成熟抗体遺伝子配列とは異なる。生殖細胞系遺伝子配列はまた、高親和性二次レパートリー抗体の配列とも、可変領域全体にわたって均一に個々に異なる。例えば、体細胞突然変異は、フレームワーク領域1のアミノ末端部分およびフレームワーク領域4のカルボキシ末端部分では比較的頻度が低い。さらに、多くの体細胞突然変異は抗体の結合特性を有意に変化させない。このため、もとの抗体と類似の結合特性を有する無傷組換え抗体を再現するために特定抗体のDNA配列全体を得る必要はない(国際公開第WO99/45962号参照)。CDR領域にわたる部分的重鎖および軽鎖配列は、典型的にはこの目的のために十分である。部分配列は、いずれの生殖細胞系可変および連結遺伝子セグメントが組み換えられた抗体可変遺伝子に寄与したかを判定するために使用される。生殖細胞系配列は、次に、可変領域の欠けている部分を埋めるために使用される。重鎖および軽鎖リーダー配列はタンパク質成熟の間に切断され、最終的な抗体の性質には寄与しない。欠失している配列を加えるために、クローニングしたcDNA配列を連結またはPCR増幅によって合成オリゴヌクレオチドと組み合わせることができる。あるいは、可変領域全体を、短いオーバーラップするオリゴヌクレオチドのセットとして合成し、PCR増幅によって組み合わせて、完全な合成可変領域クローンを作製することができる。この工程は、特定の制限部位の排除もしくは組込み、または特定のコドンの最適化などのある種の利点を有する。
CLDN6に結合する抗体の能力は、実施例で述べるような標準結合アッセイ(例えばELISA、ウエスタンブロット法、免疫蛍光およびフローサイトメトリー分析)を用いて測定できる。
抗CLDN6抗体を精製するために、選択したハイブリドーマをモノクローナル抗体精製用の2リットルスピナーフラスコにおいて増殖させることができる。あるいは、抗CLDN6抗体を透析バイオリアクターにおいて生産することができる。上清をろ過し、必要に応じて濃縮した後、プロテインG−セファロースまたはプロテインA−セファロースによるアフィニティークロマトグラフィに供することができる。溶出したIgGを、純度を保証するためにゲル電気泳動および高速液体クロマトグラフィによって検査できる。緩衝液をPBSに交換し、1.43の吸光係数を使用してOD280によって濃度を測定することができる。モノクローナル抗体をアリコートに分け、−80℃で保存できる。
精製抗体のアイソタイプを決定するために、様々な市販のキット(例えばZymed、Roche Diagnostics)によるアイソタイプELISAを実施することができる。マイクロタイタープレートのウエルを抗マウスIgで被覆できる。ブロッキング後、プレートを周囲温度で2時間、モノクローナル抗体または精製アイソタイプ対照と反応させる。ウエルを、次に、マウスIgG1、IgG2a、IgG2bもしくはIgG3、IgAまたはマウスIgM特異的ペルオキシダーゼ結合プローブのいずれかと反応させることができる。洗浄後、プレートをABTS基質(1mg/ml)で展開し、405〜650のODで分析することができる。あるいは、IsoStrip Mouse Monoclonal Antibody Isotyping Kit(Roche、カタログ番号1493027)を、製造者によって述べられているように使用し得る。
免疫したマウスの血清中の抗CLDN6抗体の存在またはCLDN6を発現する生細胞へのモノクローナル抗体の結合を明らかにするために、フローサイトメトリーが使用できる。天然にまたはトランスフェクション後にCLDN6を発現する細胞株とCLDN6発現を欠く陰性対照(標準的な増殖条件下で増殖させた)を、ハイブリドーマ上清中または1%FBSを含むPBAS中で様々な濃度のモノクローナル抗体と混合し、4℃で30分間インキュベートすることができる。洗浄後、APCまたはAlexa647標識抗IgG抗体を、一次抗体染色と同じ条件下でCLDN6結合モノクローナル抗体に結合できる。単一生細胞をゲートする側方光散乱特性を使用したFACS装置でのフローサイトメトリーによって試料を分析することができる。1つの測定においてCLDN6特異的モノクローナル抗体を非特異的結合抗体と区別するために、トランスフェクションの方法が使用できる。CLDN6と蛍光マーカーをコードするプラスミドで一過性に形質導入した細胞を上述したように染色できる。形質導入した細胞は、抗体染色細胞とは異なる蛍光チャネルで検出できる。形質導入細胞の大部分は両方の導入遺伝子を発現するので、CLDN6特異的モノクローナル抗体は蛍光マーカー発現細胞に優先的に結合し、一方非特異的抗体は同等の比率で非形質導入体に結合する。蛍光顕微鏡検査を用いる選択的アッセイを、フローサイトメトリーアッセイに加えてまたはその代わりに使用し得る。細胞を上述したように正確に染色し、蛍光顕微鏡によって検査することができる。
免疫したマウスの血清中の抗CLDN6抗体の存在またはCLDN6を発現する生細胞へのモノクローナル抗体の結合を明らかにするために、免疫蛍光顕微鏡分析が使用できる。例えば、自然にまたはトランスフェクション後にCLDN6を発現する細胞株とCLDN6発現を欠く陰性対照を、10%ウシ胎仔血清(FCS)、2mM L−グルタミン、100IU/mlペニシリンおよび100μg/mlストレプトマイシンを添加したDMEM/F12培地中、標準的な増殖条件下にてチャンバースライド中で増殖させる。次に、細胞をメタノールまたはパラホルムアルデヒドで固定するかまたは未処置のまま放置することができる。その後、細胞をCLDN6に対するモノクローナル抗体と25℃で30分間反応させることができる。洗浄後、細胞を同じ条件下でAlexa555標識抗マウスIgG二次抗体(Molecular Probes)と反応させることができる。その後蛍光顕微鏡によって細胞を検査することができる。
抗CLDN6 IgGは、ウエスタンブロット法によってCLDN6抗原との反応性に関してさらに試験できる。簡単に述べると、CLDN6を発現する細胞からの細胞抽出物と適切な陰性対照を調製し、ドデシル硫酸ナトリウム(SDS)ポリアクリルアミドゲル電気泳動に供することができる。電気泳動後、分離された抗原をニトロセルロース膜に転写し、ブロックして、試験するモノクローナル抗体でプローブする。抗マウスIgGペルオキシダーゼを用いてIgG結合を検出し、ECL基質で展開することができる。
抗CLDN6マウスIgGは、当業者に周知の方法で免疫組織化学によって、例えば、通常の外科手術の間に患者から得たまたは自然にもしくはトランスフェクション後にCLDN6を発現する細胞株を接種した異種移植腫瘍を担持するマウスから得た非癌組織または癌組織試料からの、パラホルムアルデヒドまたはアセトンで固定した凍結切片またはパラホルムアルデヒドで固定したパラフィン包埋組織切片を使用して、CLDN6抗原との反応性に関してさらに試験することができる。免疫染色のために、CLDN6に対して反応性の抗体をインキュベートし、次いで供給者の指示にしたがってホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスまたはヤギ抗ウサギ抗体(DAKO)と共にインキュベートすることができる。
CLDN6に特異的に結合することに加えて、抗CLDN6抗体は、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞の食作用および死滅を媒介するその能力に関して試験することができる。インビトロでのモノクローナル抗体活性の試験は、インビボモデルにおける試験に先立つ初期スクリーニングを提供する。
簡単に述べると、健常ドナーからの多形核細胞(PMN)、NK細胞、単球、単核細胞または他のエフェクター細胞をFicoll Hypaque密度勾配遠心分離、次いで夾雑赤血球の溶解によって精製することができる。洗浄したエフェクター細胞を、10%熱不活性化ウシ胎仔血清または5%熱不活性化ヒト血清を添加したRPMIに懸濁し、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする51Cr標識標的細胞と、エフェクター細胞対標的細胞の様々な比率で混合することができる。あるいは、標的細胞を蛍光増強リガンド(BATDA)で標識してもよい。死細胞から放出される増強リガンドを有するユーロピウムの高度蛍光キレートを蛍光光度計によって測定することができる。もう1つの選択的な手法は、ルシフェラーゼによる標的細胞のトランスフェクションを利用し得る。添加されたルシファーイエローは、その後、生細胞によってのみ酸化され得る。次に精製抗CLDN6 IgGを様々な濃度で添加することができる。無関係なヒトIgGを陰性対照として使用できる。アッセイは、使用するエフェクター細胞型に依存して37℃で4〜20時間実施できる。培養上清中の51Cr放出またはEuTDAキレートの存在を測定することにより、試料を細胞溶解に関して検定できる。あるいは、ルシファーイエローの酸化から生じる発光は生細胞の尺度であり得る。
モノクローナル抗CLDN6抗体は、様々な公知の技術を用いてCDCを媒介するそれらの能力に関して試験することができる。例えば、補体のための血清は、当業者に公知の方法で血液から入手できる。mAbのCDC活性を測定するために、種々の方法が使用できる。例えば、51Cr放出を測定する、またはヨウ化プロピジウム(PI)排除アッセイを用いて膜透過性上昇を評価することができる。簡単に述べると、標的細胞を洗浄し、5×105/mlを様々な濃度のmAbと共に室温または37℃で10〜30分間インキュベートすることができる。次に、血清または血漿を20%(v/v)の最終濃度まで添加し、細胞を37℃で20〜30分間インキュベートすることができる。各々の試料からのすべての細胞をFACSチューブ中のPI溶液に添加し得る。その後、FACSArrayを用いたフローサイトメトリー分析によって混合物を直ちに分析することができる。
アポトーシスを開始させる能力に関して試験するため、モノクローナル抗CLDN6抗体を、例えばCLDN6陽性腫瘍細胞またはCLDN6形質導入腫瘍細胞と共に37℃で約20時間インキュベートすることができる。細胞を採取し、Annexin−V結合緩衝液(BD biosciences)中で洗浄して、FITCまたはAPCと結合したAnnexin−V(BD biosciences)と共に暗所で15分間インキュベートすることができる。各々の試料からのすべての細胞をFACSチューブ中のPI溶液(PBS中10μg/ml)に添加し、直ちにフローサイトメトリーによって評価することができる(上記のように)。あるいは、モノクローナル抗体による細胞増殖の全般的な阻害は市販のキットで検出できる。DELFIA Cell Proliferation Kit(Perkin−Elmer、カタログ番号AD0200)は、マイクロプレートにおける増殖中の細胞のDNA合成の間の5−ブロモ−2'−デオキシウリジン(BrdU)の組込みの測定に基づく非同位体免疫検定法である。組み込まれたBrdUは、ユーロピウム標識モノクローナル抗体を使用して検出される。抗体検出を可能にするため、Fix液を用いて細胞を固定し、DNA変性する。非結合抗体を洗い流し、DELFIA誘導剤を添加して標識抗体からユーロピウムイオンを溶液中に解離し、溶液中で前記イオンはDELFIA誘導剤の成分と高度蛍光性キレートを形成する。検出において時間分解蛍光光度法を利用して測定された蛍光は、各々のウエルの細胞におけるDNA合成に比例する。
CLDN6に結合するモノクローナル抗体はまた、CLDN6を発現する腫瘍細胞の増殖を制御する上でのそれらの効果を測定するためにインビボモデルにおいて(場合によりトランスフェクション後に、CLDN6を発現する細胞株を接種した異種移植腫瘍を担持する免疫不全マウスにおいて)試験することができる。
本発明の抗体によって認識されるエピトープのマッピングは、Glenn E.Morris ISBN−089603−375−9による"Epitope Mapping Protocols(Methods in Molecular Biology)"およびOlwyn M.R.Westwood,Frank C.Hayによる"Epitope Mapping:A Practical Approach"Practical Approach Series,248の中で詳細に述べられているように実施できる。
本発明のさらに別の実施形態において、CLDN6に対する抗体は、複数の結合部位または標的エピトープに結合する二重特異性または多重特異性分子を生成するために別の機能的分子、例えば別のペプチドまたはタンパク質(例えばFab'フラグメント)に誘導体化するまたは連結することができる。例えば、本発明の抗体は、別の抗体、ペプチドまたは結合ミメティックなどの1またはそれ以上の他の結合分子に機能的に連結することができる(例えば化学結合、遺伝子融合、非共有結合的会合その他によって)。
別の態様において、本発明は、細胞毒、薬剤(例えば免疫抑制剤)または放射性同位体などの治療成分または物質に結合した抗CLDN6抗体を特徴とする。そのような複合体を本明細書では「免疫抱合体」と称する。1またはそれ以上の細胞毒を含有する免疫抱合体を「免疫毒素」と称する。細胞毒または細胞傷害性物質は、細胞に有害であり、特に細胞を死滅させるいかなる物質も包含する。例としては、タキソール、サイトカラシンB、グラミシジンD、臭化エチジウム、エメチン、マイトマイシン、エトポシド、テノポシド、ビンクリスチン、ビンブラスチン、コルヒチン、ドキソルビシン、ダウノルビシン、ジヒドロキシアントラシンジオン、ミトキサントロン、ミトラマイシン、アクチノマイシンD、1−デヒドロテストステロン、糖質コルチコイド類、プロカイン、テトラカイン、リドカイン、プロプラノロールおよびピューロマイシンならびにそれらの類似体またはホモログを包含する。
別の態様において、本発明は、本発明の抗体の1つまたは抗体の組合せを含有する組成物、例えば医薬組成物を提供する。医薬組成物は、Remington:The Science and Practice of Pharmacy,19th Edition,Gennaro,Ed.,Mack Publishing Co.,Easton,PA,1995に開示されているような従来技術にしたがって医薬的に許容される担体または希釈剤ならびに任意の他の公知のアジュバントおよび賦形剤と共に製剤され得る。1つの実施形態において、組成物は、異なる機構によって作用する本発明の複数の(例えば2またはそれ以上の)単離された抗体の組合せ、例えば、主としてCDCを誘導することによって作用する1つの抗体と主としてアポトーシスを誘導することによって作用する別の抗体の組合せを含む。
本発明の抗体(本明細書で述べる免疫抱合体、二重特異性/多重特異性分子、組成物および他の誘導体を含む)は、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする細胞が関与する疾患の治療を含む数多くの治療上の有用性を有する。例えば、抗体は、本明細書で述べるような様々な疾患を治療するまたは予防するために、例えばインビトロもしくはエクスビボ(ex vivo)で培養下の細胞に、または例えばインビボでヒト被験者に投与することができる。好ましい被験者は、疾患細胞、特に正常細胞と比較してCLDN6の変化した発現パターンおよび/またはその細胞表面とCLDN6の変化した会合パターンを特徴とする細胞を死滅させることによって矯正または改善できる疾患を有するヒト患者を包含する。
製造者の指示にしたがって、RNeasy Mini Kit(Qiagen)を使用して凍結組織標本および癌細胞株から全細胞RNAを抽出し、dT18オリゴヌクレオチドでプライミングして、Superscript II(GIBCO/Lifetech)で逆転写した。得られたcDNAの完全性を30サイクルのPCRにおいてp53転写産物の増幅によって試験した。HPRTに基準化した後、ΔΔCT計算を用いてCLDN6の発現を定量化した。
ウエスタンブロット分析のために、レムリ溶解緩衝液で溶解した細胞から抽出した全タンパク質20μgを使用した。抽出物を還元試料緩衝液(Roth)に希釈し、SDS−PAGEに供して、その後PVDF膜(Pall)に電気転写させた。CLDN6(ARP)およびβ−アクチン(Abcam)に対して反応性のポリクローナル抗体を用いて免疫染色を実施し、次いでホースラディッシュペルオキシダーゼ結合ヤギ抗マウスおよびヤギ抗ウサギ二次抗体(Dako)で一次抗体を検出した。
パラフィン包埋した組織切片(4μm)を加熱プレート(HI 1220、Leica)上にて58℃で1時間インキュベートした。スライドガラスをRoticlear(Roth)において室温で2×10分間インキュベートすることによって切片からパラフィンを除去した。その後、切片を段階的なアルコール(99%、2×96%、80%および70%、各々5分間)中で再水和した。スライドガラスを10mMクエン酸緩衝液(pH6.0)+0.05%Tween−20中120℃(15psi)で15分間煮沸することによって抗原賦活化を実施した。煮沸の直後にスライドガラスをPBS中で5分間インキュベートした。内因性ペルオキシダーゼ活性を室温で15分間、MeOH中の0.3%過酸化水素でブロックした。非特異的結合を避けるため、スライドガラスを室温で30分間、PBS中の10%ヤギ血清でブロックした。その後、スライドガラスをCLDN6特異的ポリクローナル抗体(1μg/ml)(ARP)と共に4℃で一晩インキュベートした。その翌日、スライドガラスを室温にてPBSで洗浄し(3×5分間)、二次抗体(PowerVision poly HRP−Anti−Rabbit IgG ready−to−use(ImmunoLogic))100μlと共に室温で1時間インキュベートした。その後、スライドガラスを室温にてPBSで洗浄した(3×5分間)。Vector Laboratories(Burlingame)からのVECTOR NovaRED Substrate Kit SK−4800を使用して最終染色を実施した。切片を室温で90秒間、ヘマトキシリンで対比染色した。段階的なアルコール(70%、80%、2×96%および99%、各々5分間)で脱水し、キシロール中で10分間インキュベートした後、スライドガラスにX−tra Kit(Medite Histotechnic)を載せた。
a.完全長CLDN6およびCLDN6フラグメントをコードする発現ベクターの作製
完全長CLDN6(NCBIアクセッション番号NP_067018.2、配列番号:2)をコードする非天然のコドン最適化DNA配列(配列番号:3)を化学合成によって作製し(GENEART AG,Germany)、pcDNA3.1/myc−Hisベクター(Invitrogen,USA)にクローニングして、ベクターp3953を生成した。終結コドンの挿入により、ベクターがコードするmyc−Hisタグに融合せずにCLDN6タンパク質を発現することが可能であった。CLDN6の発現を、市販の抗CLDN6抗体(ARP、01−8865;R&D Systems、MAB3656)を使用してウエスタンブロット法、フローサイトメトリーおよび免疫蛍光分析によって試験した。
CLDN6を安定に発現するHEK293およびP3X63Ag8U.1細胞株を、ベクターp3953を使用して標準的な技術によって生成した。
Balb/cマウスを、0、16および36日目に腹腔内注射によってp3974プラスミドDNA 25μgとPEI−マンノース(PEI−Man;PolyPlus Transfectionからのインビボ−jetPEI(商標)−Man)4μl(5%グルコースを含むH2O中150mM PEI−Man)で免疫した。48および62日目に、マウスを、CLDN6を安定に発現するp3953ベクターを形質導入したP3X63Ag8U.1骨髄腫細胞で腹腔内注射によって免疫した。62日目に投与した細胞は、注射の前に3000ラドで照射しておいた。マウスの血清中のCLDN6に対する抗体の存在を、CLDN6およびGFPをコードする核酸を同時に形質導入したCHO−K1細胞を使用して20日目から70日目まで免疫蛍光顕微鏡検査によって観察した。このために、トランスフェクションの24時間後、PFA固定したまたは固定していない細胞を室温(RT)で45分間、免疫マウスからの1:100希釈の血清と共にインキュベートした。細胞を洗浄し、Alexa555標識抗マウスIg抗体(Molecular Probes)と共にインキュベートして、蛍光顕微鏡検査に供した。
免疫マウスから単離した6×107脾細胞を、PEG 1500(Roche,CRL 10783641001)を使用してマウス骨髄腫細胞株P3X63Ag8.653(ATCC,CRL 1580)の3×107細胞と融合した。細胞を平底マイクロタイタープレートに約5×104細胞/ウエルで接種し、10%熱不活性化ウシ胎仔血清、1%ハイブリドーマ融合およびクローニング添加物(HFCS,Roche,CRL 11363735)、10mM HEPES、1mMピルビン酸ナトリウム、4.5%グルコース、0.1mM 2−メルカプトエタノール、1×ペニシリン/ストレプトマイシンならびに1×HAT添加物(Invitrogen,CRL 21060)を含むRPMI選択培地で約2週間培養した。10〜14日後、個々のウエルをフローサイトメトリーによって抗CLDN6モノクローナル抗体に関してスクリーニングした。抗体を分泌するハイブリドーマを限界希釈によってサブクローニングし、再び抗CLDN6モノクローナル抗体に関して試験した。安定なサブクローンを培養し、特性評価のために組織培養培地中で少量の抗体を生成した。親細胞の反応性を保持する(フローサイトメトリーによって試験した)各々のハイブリドーマから少なくとも1つのクローンを選択した。9バイアルの細胞バンクを各クローンについて作製し、液体窒素中で保存した。
a.(i)ウエスタンブロット分析および(ii)フローサイトメトリー分析による、一過性に形質導入したHEK293T細胞の品質管理
(i)HEK293T細胞を、それぞれCLDN3、CLDN4、CLDN6およびCLDN9をコードする核酸を形質導入するか、または擬似形質導入した。HEK293T細胞におけるCLDN3、CLDN4、CLDN6またはCLDN9の発現をウエスタンブロット法によって測定した。このために、トランスフェクションの24時間後に細胞を採取し、溶解に供した。溶解物をSDS−PAGEに供し、ニトロセルロース膜に転写して、変性条件下で対応するクローディンのC末端に特異的に結合する抗CLDN3(A)(Invitrogen、34−1700)、抗CLDN4(A)(Zymed、32−9400)、抗CDLN6(A)(ARP、01−8865)または抗CLDN9(A)(Santa Cruz、sc−17672)抗体で染色した。ペルオキシダーゼ標識二次抗体と共にインキュベートし、ECL試薬で展開した後、視覚化のためにLAS−3000イメージャー(Fuji)を使用した。それぞれCLDN3、CLDN4、CLDN6およびCLDN9の予想分子量のバンドが形質導入した細胞においてのみ認められ、対照細胞では認められず(図3)、HEK293T細胞は検討したクローディンのいずれも内因性に発現せず、したがってCLDN6抗体の交差反応性を測定するための適切なツールであることを明らかにした。
HEK293T細胞を、種々のCLDNタンパク質をコードするベクターと蛍光マーカーをコードするベクターで同時に形質導入した。トランスフェクションの24時間後に0.05%トリプシン/EDTA溶液を用いて細胞を採取し、FACS緩衝液(2%FCSおよび0.1%アジ化ナトリウムを含むPBS)で洗浄した。細胞を2×105細胞/ウエルでU底マイクロタイタープレートに移し、ハイブリドーマ上清と共に4℃で60分間インキュベートした。FACS緩衝液で3回洗浄した後、細胞をアロフィコシアニン(APC)結合抗マウスIgG 1+2a+2b+3特異的二次抗体(Dianova、115−135−164)と共にインキュベートした。その後、細胞を2回洗浄し、BD FACSArrayを使用したフローサイトメトリーによって結合を評価した(図5)。蛍光マーカーの発現を横軸に、抗体結合を縦軸にプロットしている。市販のマウス抗CLDN6 IgG2b抗体(R&D、MAB3656)を陽性対照とし、製品番号M8894の下でSigmaから入手できる抗体をアイソタイプ対照として使用した。
a.CLDN6の細胞外ドメイン1をコードする発現ベクターの作製
N末端Igκリーダー由来のシグナルペプチド、次いで正しいシグナルペプチダーゼ切断部位を確実にするための4個の付加的なアミノ酸(配列番号:13)との融合物としてCLDN6の推定上の細胞外ドメイン1(EC1)フラグメント(配列番号:7)をコードするコドン最適化DNA配列(配列番号:12)を作製し、pcDNA3.1/myc−Hisベクターにクローニングして、ベクターp3973を生成した。免疫の前に、EC1フラグメントの発現を、市販の抗myc抗体(Cell Signaling、MAB 2276)を使用して、一過性に形質導入し、パラホルムアルデヒド(PFA)固定したCHO−K1細胞に関する免疫蛍光顕微鏡検査によって確認した。
Balb/cマウスを、0および14日目に腹腔内注射によってp3973プラスミドDNA 25μgとPEI−マンノース(PEI−Man;PolyPlus Transfectionからのインビボ−jetPEI(商標)−Man)4μl(H2O中150mM PEI−Manと5%グルコース)で免疫した。28および44日目に、KLH結合ペプチド、配列番号:14および配列番号:15(PBS中各々100μg、JPT Peptide Technologies GmbH,Germany)とHPLC精製したPTO−CpG−ODN(PBS中25μg;5'−TCCATGACGTTCCTGACGTT;Eurofins MWG Operon,Germany)でマウスを皮下的に免疫した。64、77および97日目に、CLDN6を安定に発現するp3953ベクターを形質導入した2×107 P3X63Ag8U.1骨髄腫細胞で腹腔内注射によってマウスを免疫した。投与の前に、細胞をマイトマイシンC(2.5μg/ml、Sigma−Aldrich、M4287)で処理した。64および97日目に細胞をHPLC精製したPTO−CpG−ODN(PBS中50μg)と共に投与し、77日目には不完全フロイントアジュバントと共に投与した。
フローサイトメトリー
CLDN6およびそのホモログへのモノクローナル抗体の結合を試験するため、HEK293T細胞を、対応するクローディンをコードするプラスミドで一過性に形質導入し、フローサイトメトリーによって発現を分析した。形質導入した細胞と形質導入していない細胞を区別するため、HEK293T細胞をレポーターとしての蛍光マーカーで同時に形質導入した。トランスフェクションの24時間後、細胞を0.05%トリプシン/EDTAで採取し、FACS緩衝液(2%FCSおよび0.1%アジ化ナトリウムを含むPBS)で洗浄して、2×106細胞/mlの濃度でFACS緩衝液に再懸濁した。細胞懸濁液100μlを指示濃度の適切な抗体と共に4℃で30分間インキュベートした。交差反応性抗体を使用してCLDN6およびCLDN9発現を検出した。市販のマウス抗クローディン抗体、抗CLDN3(R&D、MAB4620)および抗CLDN4(R&D、MAB4219)を陽性対照として使用し、マウスIgG2a(Sigma、M9144)およびIgG2b(Sigma、M8894)をそれぞれアイソタイプ対照として使用した。細胞をFACS緩衝液で3回洗浄し、APC結合抗マウスIgG 1+2a+2b+3a特異的二次抗体(Dianova、115−135−164)と共に4℃で30分間インキュベートした。細胞を2回洗浄し、FACS緩衝液に再懸濁した。BD FACSArrayを用いたフローサイトメトリーによって結合を分析した。蛍光マーカーの発現を横軸に、抗体結合を縦軸にプロットした。
補体依存性細胞傷害(CDC)を、抗CLDN6抗体と共にインキュベートした標的細胞にヒト補体を添加した後、非溶解細胞中の細胞内ATPの含量を測定することによって判定した。ATPを測定するために、非常に感度の高い分析方法としてルシフェラーゼの発光反応を使用した。
特異的溶解[%]=100−[(試料−全溶解物)×100/(最大生細胞−全溶解物)]
最大生細胞:PBS 10μl、抗体なし
全溶解物:PBS中8%(v/v)Triton X−100 10μl、抗体なし
早期抗体治療のためにPBS 200μl中の2×107NEC8細胞を無胸腺Nude−Foxn1nuマウスの側腹部に皮下的に接種した。各々の実験群は10匹の6〜8週齢の雌性マウスから成った。接種の3日後、精製マウスモノクローナル抗体muMAB 59A、60A、61D、64A、65A、66Bおよび67A 200μgを、週に2回、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施することによって46日間適用した。PBSで処置した実験群を陰性対照として使用した。腫瘍容積(TV=(長さ×幅2)/2)を週に2回観察した。TVをmm3で表して、経時的な腫瘍増殖曲線を作成する。腫瘍が1500mm3以上の容積に達したとき、マウスを犠死させた。
マウスモノクローナル抗体muMAB 59A、60A、61D、64A、65A、66Bおよび67Aは、ヒトCLDN6およびCLDN6 SNP(一塩基多型)変異体I143Vへの強力な結合を示し、一方CLDN3、4および9への結合は認めなかった(図6A,B)。
a.マウス/ヒトキメラモノクローナル抗体の作製
キメラ化のために、リーダー配列を含むマウス重鎖および軽鎖可変領域を、以下の表に列挙するプライマーを使用してPCRによって増幅した。マウス重鎖を、ApaI制限部位(5'−GGGCCC−3')により、発現ベクターによってコードされるヒトFcγ1鎖のN末端部分に融合した。リーダー配列を含むマウスκ鎖の可変ドメインを、BsiWI制限部位を使用して定常領域の前にクローニングした。ベクター内の定常領域の正しい方向、すなわちベクターの先行するプロモーターに適した方向を配列決定によって検証した。ApaI制限部位の位置により、このためのリーダー配列を含む可変領域の増幅は、ApaI部位の配列に加えてヒトγ1定常領域の配列の最初の11ヌクレオチドを含まねばならない。ヒトγ1重鎖定常領域のヌクレオチド配列を配列番号:24として列挙し、そのようにして発現されたヒトγ1定常領域のアミノ酸配列を配列番号:25として列挙する。κ軽鎖の定常部分をコードするヌクレオチド配列を配列番号:26として列挙し、それぞれのアミノ酸配列を配列番号:27として列挙する。
キメラモノクローナル抗体を、対応する抗体の軽鎖および重鎖をコードするプラスミドDNAを形質導入したHEK293T細胞(ATCC CRL−11268)において一過性に発現させた。トランスフェクションの24時間前に、8×107細胞を145mm細胞培養プレートに接種し、HEK293T培地(DMEM/F12+GlutaMAX−I、10%FCS、1%ペニシリン/ストレプトマイシン)25ml中で培養した。プラスミドDNA20μgを細胞培養プレートにつき5mlの、添加物を含まないHEK293T培地に溶解した。線状ポリエチレンイミン(PEI)75μl(1mg/ml)(Polyscience、23966)を添加した後、(DNA:PEI)混合物を室温で15分間インキュベートした。その後、トランスフェクション混合物を細胞に滴下した。トランスフェクションの24時間後、EK293T培地を、1%ペニシリン/ストレプトマイシンを含むPro293a培地(Lonza、BE12−764Q)と交換した。最適発現のために、形質導入した細胞を37℃、7.5%CO2でさらに96〜120時間培養した。上清を採取し、プロテインAカラムを使用したFPLCによってキメラ抗体を精製した。抗体の濃度を測定し、SDS−PAGEによって品質を検査した。
フローサイトメトリー
CLDN6特異的キメラモノクローナル抗体の特異性と親和性を試験するため、それぞれCLDN3、4、6または9を安定に形質導入したHEK293細胞およびCLDN6を内因性に発現する腫瘍細胞株への結合をフローサイトメトリーによって分析した。そこで、細胞を0.05%トリプシン/EDTAで採取し、FACS緩衝液(2%FCSおよび0.1%アジ化ナトリウムを含むPBS)で洗浄して、2×106細胞/mlの濃度でFACS緩衝液に再懸濁した。細胞懸濁液100μlを指示濃度の適切な抗体と共に4℃で60分間インキュベートした。キメラ交差反応性抗体(chimAB 5F2D2)を使用してCLDN6およびCLDN9発現を検出した。市販のマウス抗クローディン抗体、抗CLDN3(R&D、MAB4620)および抗CLDN4(R&D、MAB4219)を陽性対照として使用し、ヒトIgG1κ(Sigma、I5154)を陰性対照として使用した。細胞をFACS緩衝液で3回洗浄し、それぞれAPC結合ヤギ抗ヒトIgG Fcγ(Dianova、109−136−170)またはAPC結合抗マウスIgG 1+2a+2b+3a(Dianova、115−135−164)特異的二次抗体と共に4℃で30分間インキュベートした。細胞を2回洗浄し、FACS緩衝液に再懸濁した。BD FACSArrayを用いたフローサイトメトリーによって結合を分析した。
補体依存性細胞傷害(CDC)を、抗CLDN6抗体と共にインキュベートした標的細胞にヒト補体を添加した後、非溶解細胞中の細胞内ATPの含量を測定することによって判定した。ATPを測定するために、非常に感度の高い分析方法としてルシフェラーゼの生物発光反応を使用する。
特異的溶解[%]=100−[(試料−全溶解物)×100/(最大生細胞−全溶解物)]
最大生細胞:PBS 10μl、抗体なし
全溶解物:PBS中8%(v/v)Triton X−100 10μl、抗体なし
抗体依存性細胞傷害(ADCC)を、抗CLDN6抗体と共にインキュベートした標的細胞にヒトPMBCを添加した後、非溶解細胞中の細胞内ATPの含量を測定することによって判定した。ATPを測定するために、非常に感度の高い分析方法としてルシフェラーゼの生物発光反応を使用する。
特異的溶解[%]=100−[(試料−全溶解物)×100/(最大生細胞−全溶解物)]
最大生細胞:PBS 10μl、抗体なし
全溶解物:PBS中8%(v/v)Triton X−100 10μl、抗体なし
抗CLDN6キメラモノクローナル抗体chimAB 61D、64A、67Aおよび89AはヒトCLDN6への強力な結合を示し、一方CLDN3、4および9への結合は認めなかった(図11)。
早期治療
早期抗体治療のために、RPMI培地(Gibco)200μl中の2×107NEC8細胞を無胸腺Nude−Foxn1nuマウスの側腹部に皮下的に接種した。各々の実験群は10匹の6〜8週齢雌性マウスから成った。腫瘍細胞の接種の3日後、精製マウスモノクローナル抗体muMAB 89A 200μgを、週に2回、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施することによって7週間適用した。PBSで処置した実験群を陰性対照として使用した。腫瘍容積(TV=(長さ×幅2)/2)を週に2回観察した。TVをmm3で表して、経時的な腫瘍増殖曲線を作成する。腫瘍が1500mm3以上の容積に達したとき、マウスを犠死させた。
進行した異種移植腫瘍の抗体治療のために、RPMI培地(Gibco)200μl中の2×107NEC8細胞を6〜8週齢の雌性無胸腺Nude−Foxn1nuマウスの側腹部に皮下的に接種した。腫瘍容積(TV=(長さ×幅2)/2)を週に2回観察した。TVをmm3で表して、経時的な腫瘍増殖曲線を作成する。腫瘍細胞の接種の15〜17日後、マウスを80mm3以上の均一な腫瘍サイズを有する、コホート当たり8匹の動物の処置群に分けた。精製マウスモノクローナル抗体muMAB 61D、64A、67Aおよび89A 200μgを、週に2回、静脈内注射と腹腔内注射を交互に実施することによって5週間適用した。PBSおよび非特異的抗体で処置した実験群を陰性対照として使用した。腫瘍が1500mm3以上の容積に達したとき、マウスを犠死させた。
CLDN6特異的モノクローナル抗体は、ELISAエピトープマッピング試験において線状ペプチドに対する非常に弱い結合だけを示し、それらのエピトープが立体配座であることを示唆する。本明細書で述べる抗体と天然立体配座のCLDN6の間の相互作用を分析するため、哺乳動物細胞培養物における部位指定突然変異誘発をエピトープマッピング手法として使用した。それぞれ1番目および2番目の細胞外ドメイン内のアミノ酸27〜81および137〜161のアラニンスキャニング突然変異誘発を実施した。HEK293T細胞における一過性発現後、CLDN6突然変異体を、特異的モノクローナル抗体によって結合されるそれらの能力に関して評価した。CLDN6突然変異体への特異的モノクローナル抗体の結合低下は、変異したアミノ酸が重要な接触および/または立体配座残基であることを示唆する。結合をフローサイトメトリーによって分析した。形質導入細胞と非形質導入細胞集団を区別するため、細胞を蛍光マーカーで同時に形質導入した。
Claims (35)
- CLDN6を発現する細胞の表面に会合したCLDN6に結合することができ、CLDN9を発現する細胞の前記表面に会合したCLDN9には実質的に結合することができない抗体。
- CLDN6、好ましくはCLDN6を発現する細胞の表面に会合したCLDN6に結合することができ、CDR3配列Xaal Gly Xaa2 Val Xaa3を有する抗体重鎖を含む抗体であって、前記配列中、Xaalは任意のアミノ酸、好ましくは芳香族アミノ酸、より好ましくはPheまたはTyr、最も好ましくはTyrであり、Xaa2は任意のアミノ酸、好ましくは芳香族アミノ酸、より好ましくはPheまたはTyr、最も好ましくはTyrであり、およびXaa3は任意のアミノ酸、好ましくはLeuまたはPhe、より好ましくはLeuである、抗体。
- CLDN9を発現する細胞の表面に会合したCLDN9に実質的に結合することができない、請求項2に記載の抗体。
- CLDN4を発現する細胞の表面に会合したCLDN4に実質的に結合することができないおよび/またはCLDN3を発現する細胞の表面に会合したCLDN3に実質的に結合することができない、請求項1〜3のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6に特異的である、請求項1〜4のいずれか一項に記載の抗体。
- 前記細胞が無傷細胞、特に非透過性細胞である、請求項1〜5のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6の細胞外画分内に位置するエピトープに結合することができる、請求項1〜6のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6の前記細胞外画分が配列番号:6または配列番号:7のアミノ酸配列を含む、請求項1〜7のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6への抗体の結合が、配列番号:6または配列番号:7のアミノ酸配列内に位置するエピトープへの結合を含む、請求項1〜8のいずれか一項に記載の抗体。
- 配列番号:6または配列番号:7のアミノ酸配列を有するペプチドもしくは免疫学的に等価のペプチド、または前記ペプチドを発現する核酸もしくは宿主細胞で動物を免疫する工程を含む方法によって得られる、請求項1〜9のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6が配列番号:2のアミノ酸配列または配列番号:8のアミノ酸配列を有する、請求項1〜10のいずれか一項に記載の抗体。
- 配列番号:2のアミノ酸配列を有するCLDN6に結合することができ、かつ配列番号:8のアミノ酸配列を有するCLDN6に結合することができる、請求項1〜11のいずれか一項に記載の抗体。
- 以下の活性:
(i)CLDN6を発現する細胞の死滅化、
(ii)CLDN6を発現する細胞の増殖の阻害、
(iii)CLDN6を発現する細胞のコロニー形成の阻害、
(iv)定着腫瘍の寛解を媒介すること、
(v)腫瘍の形成または再形成を防止すること、および
(vi)CLDN6を発現する細胞の転移の阻害
の1またはそれ以上を有する、請求項1〜12のいずれか一項に記載の抗体。 - CLDN6をその天然立体配座で担持する細胞に対して1またはそれ以上の免疫エフェクター機能を示す、請求項1〜12のいずれか一項に記載の抗体。
- 1またはそれ以上の免疫エフェクター機能が、補体依存性細胞傷害(CDC)、抗体依存性細胞媒介性細胞傷害(ADCC)、アポトーシスの誘導、および増殖の阻害からなる群より選択され、好ましくはエフェクター機能がADCCおよび/またはCDCである、請求項14に記載の抗体。
- 前記1もしくはそれ以上の活性または1もしくはそれ以上の免疫エフェクター機能が、CLDN6の細胞外画分内に位置するエピトープへの前記抗体の結合によって誘導される、請求項13〜15のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6の前記細胞外画分が配列番号:6または配列番号:7のアミノ酸配列を含む、請求項16に記載の抗体。
- CLDN6を発現する前記細胞またはCLDN6をその天然立体配座で担持する細胞が腫瘍細胞である、請求項1〜17のいずれか一項に記載の抗体。
- CLDN6を発現する前記細胞またはCLDN6をその天然立体配座で担持する細胞が癌細胞である、請求項1〜18のいずれか一項に記載の抗体。
- 前記癌細胞が、卵巣癌、特に卵巣腺癌および卵巣奇形癌、小細胞肺癌(SCLC)および非小細胞肺癌(NSCLC)を含む肺癌、特に扁平上皮肺癌および腺癌、胃癌、乳癌、肝癌、膵癌、皮膚癌、特に基底細胞癌および扁平上皮癌、悪性黒色腫、頭頸部癌、特に悪性多形腺腫、肉腫、特に滑膜肉腫および癌肉腫、胆管癌、膀胱の癌、特に移行上皮癌および乳頭状癌、腎癌、特に腎明細胞癌および乳頭状腎細胞癌を含む腎細胞癌、結腸癌、回腸の癌を含む小腸癌、特に小腸腺癌および回腸の腺癌、精巣胎児性癌、胎盤絨毛癌、子宮頸癌、精巣癌、特に精巣セミノーマ、精巣奇形腫および精巣胎児性癌、子宮癌、奇形癌または胎生期癌などの生殖細胞腫瘍、特に精巣の生殖細胞腫瘍、ならびにそれらの転移形態からなる群より選択される癌に由来する、請求項19に記載の抗体。
- モノクローナル、キメラ、ヒトもしくはヒト化抗体、または抗体のフラグメントである、請求項1〜20のいずれか一項に記載の抗体。
- 天然立体配座のCLDN6の1またはそれ以上のエピトープに結合することができる、請求項1〜21のいずれか一項に記載の抗体。
- (i)アクセッション番号DSM ACC3067(GT512muMAB 59A)、DSM ACC3068(GT512muMAB 60A)、DSM ACC3069(GT512muMAB 61D)、DSM ACC3070(GT512muMAB 64A)、DSM ACC3071(GT512muMAB 65A)、DSM ACC3072(GT512muMAB 66B)、DSM ACC3073(GT512muMAB 67A)、DSM ACC3089(GT512muMAB 55A)またはDSM ACC3090(GT512muMAB 89A)の下で寄託されたクローンによって産生されるまたは前記クローンから得られる抗体、(ii)(i)の下にある抗体のキメラまたはヒト化形態である抗体、(iii)(i)の下にある抗体の特異性を有する抗体、および(iv)(i)の下にある抗体の抗原結合部分または抗原結合部位を含む抗体からなる群より選択される抗体。
- 請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体を産生することができるハイブリドーマ。
- アクセッション番号DSM ACC3067(GT512muMAB 59A)、DSM ACC3068(GT512muMAB 60A)、DSM ACC3069(GT512muMAB 61D)、DSM ACC3070(GT512muMAB 64A)、DSM ACC3071(GT512muMAB 65A)、DSM ACC3072(GT512muMAB 66B)、DSM ACC3073(GT512muMAB 67A)、DSM ACC3089(GT512muMAB 55A)またはDSM ACC3090(GT512muMAB 89A)の下で寄託されたハイブリドーマ。
- 治療薬に共役された請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体を含むコンジュゲート。
- 前記治療薬が、毒素、放射性同位体、薬剤または細胞傷害性薬物である、請求項26に記載のコンジュゲート。
- 請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体および/または請求項26もしくは27に記載のコンジュゲート、および医薬的に許容される担体を含有する医薬組成物。
- 細胞の増殖を阻害する方法であって、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする、前記細胞を請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体および/または請求項26もしくは27に記載のコンジュゲートと接触させることを含む方法。
- 細胞を死滅させる方法であって、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする、前記細胞を請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体および/または請求項26もしくは27に記載のコンジュゲートと接触させることを含む方法。
- 細胞が関与する疾患または障害を治療するまたは予防する方法であって、被験者において、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体、請求項26もしくは27に記載のコンジュゲートまたは請求項28に記載の医薬組成物を前記被験者に投与することを含む方法。
- 前記疾患または前記障害が腫瘍関連疾患である、請求項31に記載の方法。
- 前記腫瘍関連疾患が癌である、請求項32に記載の方法。
- 前記癌が、卵巣癌、特に卵巣腺癌および卵巣奇形癌、小細胞肺癌(SCLC)および非小細胞肺癌(NSCLC)を含む肺癌、特に扁平上皮肺癌および腺癌、胃癌、乳癌、肝癌、膵癌、皮膚癌、特に基底細胞癌および扁平上皮癌、悪性黒色腫、頭頸部癌、特に悪性多形腺腫、肉腫、特に滑膜肉腫および癌肉腫、胆管癌、膀胱の癌、特に移行上皮癌および乳頭状癌、腎癌、特に腎明細胞癌および乳頭状腎細胞癌を含む腎細胞癌、結腸癌、回腸の癌を含む小腸癌、特に小腸腺癌および回腸の腺癌、精巣胎児性癌、胎盤絨毛癌、子宮頸癌、精巣癌、特に精巣セミノーマ、精巣奇形腫および精巣胎児性癌、子宮癌、奇形癌または胎生期癌などの生殖細胞腫瘍、特に精巣の生殖細胞腫瘍、ならびにそれらの転移形態からなる群より選択される、請求項33に記載の方法。
- 細胞の転移拡大を阻害する方法であって、CLDN6を発現し、その細胞表面とCLDN6の会合を特徴とする、前記細胞を請求項1〜23のいずれか一項に記載の抗体および/または請求項26もしくは27に記載のコンジュゲートと接触させることを含む方法。
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