JP2012002818A - 選択性標的化方法 - Google Patents

Abstract

【課題】類似の化合物の複数のライブラリーを用いて、不所望なバックグラウンド標的（抗−標的）存在下での、標的に特異的に結合できる化合物の選択及び同定のための方法に向けられる。
【解決手段】選択性標的化方法が開示され、リガンドライブラリー、特にペプチドライブラリーを抗−標的に接触させることにより、リガンドが抗−標的に結合することを可能にし；抗−標的結合リガンドから非結合リガンドを分離し、非結合抗−非結合リガンドを標的に接触させることにより、未結合のリガンドを標的に結合させて、標的−結合リガンド複合体を形成させ；標的−結合リガンド複合体を、標的に結合しないリガンドから分離し、そして標的−結合リガンド複合体上の標的−結合リガンドを同定するが、その際、標的−結合リガンドは約１０^−７から１０^−１０Ｍの範囲のＫＤを有する。さらに、上記方法により同定されたリガンドを請求する。
【選択図】なし

Description

本発明は、類似の化合物の複数のライブラリーを用いて、不所望なバックグラウンド標的（抗−標的）存在下での、標的に特異的に結合できる化合物の選択及び同定のための方法に向けられる。一つの特定の側面において、本発明は、複数のペプチドライブラリーからの複数のリガンドの選択に関する。本発明の方法により同定されたリガンドペプチドは、抗体の結合親和性及び選択性に類似の、標的に対する結合親和性及び選択性を有する。

化合物、特にペプチドの大きなライブラリープールをスクリーニングする方法における最近の進歩の例と共に、文献は充実している。予め選択された標的に結合する分子を同定するためにこれらの化合物をスクリーニングする方法も進歩した。一つのよく知られた方法は、Ｓｍｉｔｈ，Ｇ．Ｐ．，（１９８５），Ｓｃｉｅｎｃｅ２２８：１３１５により最初に開発されたバイオパニングである。そのもっとも単純な形態のバイオパニングは、ファージディスプレイされたペプチドのライブラリーを標的とインキュベートする、インビトロ選択プロセスである。標的とファージが結合することを許容し、そして、未結合のファージを洗い流す。特異的に結合したファージを次に酸で溶出する。ファージの溶出したプールはインビボで増幅して、上記プロセスが繰返される。複数ラウンドの後に、個々のクローンを単離して配列決定する。

Ｓｍｉｔｈにより最初に導入されたバイオパニングの多くのバリエーションが記載されており、Ｃｈｒｉｓｔｉａｎｅｔ ａｌ．，（１９９２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：７１１；Ｃｗｉｒｌａｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８７：６３７８；Ｃｕｌｌｅｔ ａｌ．，（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８９：１８６５；Ｈｕｌｓｅｔ ａｌ．，（１９９６）ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ．，７：２７６；及びＢａｒｔｏｌｉ ｅｔ ａｌ．，（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１６：１０６８を引用する。

Ｈｕｌｓ ｅｔａｌ．，１９９６前記は、完全な腫瘍細胞上でのファージ抗体のフローサイトメトリーに基づく減法選択を含む方法を記載する。ファージディスプレイされた抗体は、フローサイトメトリー選択の間、標的に結合したままである。しかしながら、増幅の前に、細胞結合したファージを標的から溶出する。ＷＯ９８／５４３１２は、リボソーム上でディスプレイされた抗体ライブラリーを用いた、抗原に関して高い親和性を伴う、マイルドな条件下での抗体の選択を開示する。

多くの先行技術の方法においては、標的結合リガンドの溶出が、ライブラリー中でもっとも強く結合するリガンドを同定するのに十分であると、一般的には想定する。しかしながら、多くの研究論文は、溶出技術を用いた低親和性バインダーについて報告する（米国特許第５，５８２，９８１号）。にもかかわらず、増幅又は同定前の標的からのリガンドの物理的な分離は、予め選択された標的に結合するリガンドを選択する標準の方法である。

Ｂａｌａｓｓ ｅｔａｌ．，（１９９６）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２４３：２６４は、ニトロストレプトアビジンマトリックス上に固定化されたビオチン化標的を用いた、ファージ−ペプチドライブラリーからの高親和性ファージ−ペプチドの選択を記載する。相互作用するファージ粒子は慣用の酸溶出下で放出された。さらに、酸溶出後に、標的複合体を結合したファージに関して分析した。これらの粒子をアルカリ溶液又は遊離のビオチンに露出することにより、固相支持体から標的結合ファージ粒子を放出させた。単離されたファージの親和性は、伝統的な酸溶出方法により放出されるファージよりも多いことが発見された。しかしながら、合成により製造されたペプチドは、酸溶出ファージにより得られる配列から製造されたペプチドよりも、標的に対して低い親和性を呈した。

他の標的化方法は、例えば、ＳＥＬＥＸを含む。これは、ランダム化された配列のライブラリーからのオリゴヌクレオチドを核酸プールに埋め込む手法である。異種ＲＮＡ又はＤＮＡからのオリゴヌクレオチドの標的に対する多数回のサイクルの親和性の選択が起こる。増幅工程に移るため、選択された核酸は分配後に標的から放出されなければならない（米国特許第５，４７５，０９６号）。

ａ）化学、生化学又は遺伝学のレベルでは明確でないが標的に対して望まれる顕微鏡上の特性を有する標的に、強く且つ特異的に結合する化合物、ｂ）不所望な標的の大きなバックグラウンド（抗−標的）から容易に物理的に分離できない標的に強く且つ特異的に結合する化合物、及びｃ）酸性ｐＨ，高い洗浄剤濃度又は高温のような苛酷な条件下で標的に結合する化合物には、化合物のライブラリーをスクリーニング及び選択するための様々な方法が存在するが、複数のラウンドの選択を必要としない改良法が特に要求される。本発明による選択性標的化方法は、従来技術の方法の上記の欠点のいくつかを克服し、そして高い親和性をもって選択的に標的に結合する化合物、特にペプチドを迅速に同定する利点を特に提供する。

ＷＯ ９８／５４３１２ 米国特許第５，５８２，９８１号 米国特許第５，４７５，０９６号

Ｓｍｉｔｈ，Ｇ．Ｐ．，（１９８５），Ｓｃｉｅｎｃｅ２２８：１３１５ Ｃｈｒｉｓｔｉａｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９２）Ｊ．Ｍｏｌ．Ｂｉｏｌ．，２２７：７１１ Ｃｗｉｒｌａ ｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８７：６３７８ Ｃｕｌｌ ｅｔ ａｌ．，（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ，８９：１８６５；Ｈｕｌｓｅｔ ａｌ．，（１９９６）ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈｎｏｌｏ．，７：２７６ Ｂａｒｔｏｌｉ ｅｔ ａｌ．，（１９９８）Ｎａｔｕｒｅ Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１６：１０６８ Ｂａｌａｓｓ ｅｔ ａｌ．，（１９９６）Ａｎａｌ．Ｂｉｏｃｈｅｍ．，２４３：２６４

一つの側面において、発明は、リガンドライブラリーをスクリーニングする方法に関し、リガンドライブラリーを抗−標的と接触させることにより、リガンドが抗−標的と結合することを可能にさせ；未結合のリガンドを分離して、未結合のリガンドと選択された標的を接触させて上記未結合リガンドが標的に結合して標的−結合リガンド複合体を形成することを可能にさせ；標的に結合しないリガンドから上記標的−結合リガンド複合体を分離し；そして上記標的−結合リガンド複合体上で標的−結合リガンドを同定することを含む。

別の側面において、発明は、リガンドライブラリーをスクリーニングする方法に関し、リガンドライブラリーを、本質的には同時に、選択された標的及び抗−標的と接触させることにより、リガンドが抗−標的と結合することを可能にさせて標的−結合リガンド複合体を形成させ；抗−標的、抗−標的結合リガンド及び遊離リガンドから標的−結合リガンド複合体を分離し；そして標的−結合リガンド複合体のリガンドを同定することを含む。

一つの好ましい態様において、標的へ結合するリガンドの、抗−標的に結合するリガンドに比べての選択性はおよそ少なくとも１０：１である。第２の好ましい態様において、リガンドはペプチドであるが抗体ではなく、そして少なくとも約１０^−７ＭのＫ_Ｄにおいて標的に結合し、そして好ましくは約１０^−７Ｍから１０^−１０Ｍの範囲である。第３の好ましい態様において、リガンドライブラリーはペプチドライブラリーである。好ましくは、上記方法により同定されたペプチドは、２５アミノ酸未満の長さであり、より好ましくは４から１５アミノ酸の長さの間である。第４の態様において、ｋ_ｏｆｆは約１０^−４秒^−１またはそれ未満である。第５の態様において、標的は汚れ（ｓｔａｉｎ）、そして特に織物上の汚れであり、但し当該汚れはポルフィリン由来の汚れ、タンニン由来の汚れ、カルテノイド色素由来の汚れ、アントシアニン色素由来の汚れ、しみ（ｓｏｉｌ）に基づく汚れ、オイルに基づく汚れ又はヒトの身体のしみ汚れ（ｓｏｉｌｓｔａｉｎｓ）である。さらに別の側面において、発明はリガンド、特にペプチドリガンドに向けられ、発明の方法を選択的に標的化することにより同定される。
発明の別の態様は、洗浄組成物において有用なペプチドを同定する方法に関し、ペプチドライブラリーを抗−標的に接触させることにより上記ペプチドが抗−標的に結合することを可能にさせるが、但し、抗−標的は、織物、セラミックス、ガラス、ステンレス鋼、及びプラスチックからなる群から選択され；未結合の抗−標的ペプチドを分離し、未結合の抗−標的ペプチドを標的に接触させるが、但し標的は汚れ、そして特に織物上の汚れであり、但し当該汚れはポルフィリン由来の汚れ、タンニン由来の汚れ、カルテノイド色素由来の汚れ、アントシアニン色素由来の汚れ、しみに基づく汚れ、及びヒトの身体のしみ汚れからなる群から選択され、未結合のペプチドを汚れと結合させることにより、汚れ−結合ペプチド複合体を形成させ；そして汚れ−結合ペプチド複合体上で汚れ−結合ペプチドを同定することを含む。少なくとも一つの態様において、上記ペプチドは約１０^−７Ｍから１０^−１０Ｍの範囲のＫ_Ｄにて汚れに結合する。

図１は、本明細書に開示された選択的標的化の一般的な模式図である。方法は、工程：ａ）抗−標的結合リガンドを減らしたリガンドのライブラリーを提供する抗−標的に対する選択、ｂ）標的−結合リガンド複合体の形成による標的に関する選択、ｃ）標的−結合リガンド複合体の分離、ｄ）標的−結合リガンドの同定、及びｅ）任意に標的−結合リガンドを配列決定し、選択性標的化の追加のラウンドに上記標的−結合リガンドを暴露し、そして／又は分散（ｄｉｖｅｒｓｉｆｉｃａｔｉｏｎ）を含む。 図２Ａ及び２Ｂは、標的結合ファージの溶解後のＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片のゲルの写真である。図２ＡはＴＮＦ−α結合ファージを示し、そして図２ＢはＩＬ−６及びＩＬ−８結合ファージを示す。 図３は、しみ標的化ペプチドに関するＰＣＲ増幅ＤＮＡ断片のゲルの写真である。 図４は、ＩＡｓｙｓバイオセンサーキュベット上に固定されたＴＮＦ−αからのＲＹＷＱＤＩＰ（配列番号：３）に対応するファージペプチドクローンＡ１の結合、解離及び試みられた溶出を示す。 図５Ａ及び５Ｂは、襟のしみ及び対応するポリエステル織物のイメージであり、それぞれデジタルイメージング及びオートラジオグラフィーにより見た。 図６Ａ及び６Ｂは、ポリエステルコットン織物上の襟のしみに結合した函数パーセント^１４Ｃ標識ペプチドを示す。図６Ａは、^１４Ｃグリシンで末端標識された、しみ標的化ペプチド、ＳＩＳＳＴＰＲＳＹＨＷＴ、（配列番号：２０）を示し、白丸は１番を描写し、黒四角は２番を描写し、そして白四角はブルーポリコットンを描写し、そして６Ｂは^１４Ｃグリシンで末端標識されたランダムペプチド、ＮＦＦＰＴＷＩＬＰＥＨＴ（配列番号：７８）を示す。 図７は、襟のしみ（・）及び対応するコットン織物（ｏ）由来の、Ｎｉ−キレートペプチドＧＧＨＴＦＱＨＱＷＴＨＱＴＲ（配列番号：２８）の解離の動力学を示す。ラインのスロープは速度定数ｋ_ｏｆｆ＝１ｘ１０^−３秒^−１に相当する。 図８は、卵のしみ標的及びステンレス鋼又はガラスビーズ抗−標的のＰＣＲ増幅断片のゲルの写真である。 図９は、３つのペプチドの結合に関するＥＬＩＳＡアッセイの結果を示す。ＬＥＳＴＰＫＭＫ（配列番号：１１５）は毛髪に結合し、そしてＦＴＱＳＬＰＲ（配列番号：１１６）は選択的に標的皮膚に結合し、毛髪に結合しない（黒四角は毛髪を描写し、そして白四角は皮膚を描写する）。

Ａ．他に定義しない場合、本明細書において使用される全ての技術用語及び科学用語は、本発明が属する分野の当業者の一人により通常理解されるのと同じ意味を有する。本発明の目的のため、以下の用語を用いて本明細書において発明を記載する。

用語「リガンド」は、特定の標的又は抗−標的により認識される分子又は化合物を意味する。当該用語は分子サイズ又はその組成とは無関係である。リガンドは、酵素−触媒反応のための基質として、アゴニストとして、アンタゴニストとして、機能するか、シグナルメッセンジャーとして作用するか、又は代謝経路を刺激するか又は阻害してよい。リガンドは、核酸、ペプチド、ペプチド誘導体、ペプチド模倣物、ポリペプチド、小有機分子、糖質及び所望の様式にて標的上に作用する候補混合物から単離された他の分子であってよい。好ましくは、所望の様式は標的を結合することであるが、例えば、標的を修飾又は変化させるように標的を触媒で変化させること又は標的と反応させることを含み得る。一つの好ましい態様において、上記リガンドは選択された受容体に関する抗体結合親和性の範囲で標的に関する結合親和性を有する。

用語「ライブラリー」は、単一の貯蔵書内で創製でき、そして同時に所望の特性に関してスクリーニングできる化学又は生物学上の完全性のコレクションを意味する。本明細書にて使用されるとおり、ライブラリーは、少なくとも２つのメンバーの最少のサイズを有することができ、そして１０^１５メンバーほどを含んでよい。一つの側面において、ライブラリーは少なくとも１０^２のメンバーを有する。別の側面において、ライブラリーは少なくとも１０^３のメンバーを有する。また別の側面において、ライブラリーは少なくとも１０^６のメンバーを有する。さらなる側面において、ライブラリーは１０^９のメンバーを有する。ライブラリーのサイズは、メンバーが同じか又は異なる場合のライブラリーを含む実在物の全数を意味する。

「ペプチドライブラリー」は、モノマーユニットがアミド結合で結合したアミノ酸（典型的には、限定ではないがＬ−アミノ酸）である、オリゴマーを意味する。ペプチドは２つ又はそれ以上のアミノ酸の長さであってよい。発明に従い同定されたペプチドは、好ましくは５０アミノ酸より短い長さであり、より好ましくは３０アミノ酸より短い長さであり、また好ましくは２５アミノ酸より短い長さであり、そして好ましくは２０アミノ酸より短い長さである。一つの好ましい態様において、発明の方法により同定されたペプチドは４から１５アミノ酸の長さである。しかしながら、通常、ペプチドは１００アミノ酸までの長さである。１００アミノ酸より長いペプチドは通常ポリペプチドと呼ばれる。アミノ酸の標準的な略語を本明細書にて用いる。（Ｓｉｎｇｌｅｔｏｎｅｔ ａｌ．，（１９８７）Ｄｉｃｔｉｏｎａｒｙｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｙａｎｄ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｓｅｃｏｎｄ Ｅｄ．，ｐａｇｅ ３５，引用により本明細書に編入される。）
ペプチド又はポリペプチドは融合ペプチド又は蛋白質として提供してよい。ペプチドは、アミノ酸配列が公知の合成ペプチド類似体を含む。用語ペプチドは、ペプチドに構造上関連する分子、例えばその構造が標準の配列決定方法論では決定できないがより複雑な方法論、例えば質量分光分析法を用いて決定されるに違いないペプチド誘導体又はペプチド模倣物を含まない。ペプチド模倣物（ｐｅｐｔｉｄｏｍｉｍｅｔｉｃｓ）（ペプチド模倣物（ｐｅｐｔｉｄｅｍｉｍｅｔｉｃｓ）としても知られる）は、ペプチド類似体であるが、非ペプチド化合物である。通常、一つ又は複数のペプチド結合が任意に置換されている。（Ｅｖａｎｓｅｔ ａｌ．，（１９８７）Ｊ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．３０：１２２９）。用語「蛋白質」はよく知られており、大きなポリペプチドを意味する。

用語「核酸」は、ＤＮＡ、ＲＮＡ、一本鎖又は二本鎖及びそれらの化学修飾物を意味する。修飾は限定ではないが、修飾された塩基、バックボーンの修飾、メチル化、非通常の塩基対修飾、及びキャッピング修飾を含んでよい。核酸ライブラリーを発明の選択性標的化方法に用いる場合、核酸リガンドは通常４から２５０ヌクレオチドの長さであり、そして好ましくは４から６０ヌクレオチドの長さである。

発明は、さらに、リガンド、好ましくは核酸、ペプチド又はポリペプチドリガンド、そしてもっとも好ましくは核酸と実質上同じ能力で標的に結合するペプチドリガンド、本明細書に記載される選択性標的化により同定されたペプチド又は蛋白質を含む。実質上、標的に結合する同じ能力とは、親和性及び選択性が本明細書に請求された方法により選択されたリガンドの親和性と選択性とほぼ同じであることを意味する。

さらに、標的を結合する実質上同じ能力を有するリガンドは、開示された選択性標的化方法により同定されるリガンドに実質上相同であることになる。核酸配列に関して、同定されたリガンドに実質上相同とは、一次配列の相同の程度が８０％を超え、好ましくは８５％を超え、より好ましくは９０％を超え、そしてさらに好ましくは９５％を超え、さらにより好ましくは９７％を超え、そしてもっとも好ましくは９９％を超えることを意味する。当業者は、遺伝子コードの縮重の結果として、ヌクレオチド配列をコードする多数のペプチドが生じてよいことを認識することになる。ペプチド又はポリペプチドが、最大に整列化した場合に、少なくとも８５％同一性を有するか、好ましくは少なくとも９０％から９５％同一性を有するか、より好ましくは少なくとも９７％同一性を有するか、そしてもっとも好ましくは９９％同一性を有するか又は参照配列と均等であるなら、参照配列と実質上相同である。配列の最大の整列化は、公知の様々な方法及び公知の計算法のコンピューター化手段により実施してよい（例えば、ＴＦＡＳＴＡ，ＢＥＳＴＦＩＴ、ウイスコンシンジェネティックスソフトウエアパッケージ、リリース７．０、ジェネティックスコンピューターグループ、マジソン、ＷＩ）。均等なアミノ酸の一般的な分類は、１）グルタミン酸とアスパラギン酸；２）リジン、アルギニンとヒスチジン；３）アラニン、バリン、ロイシンとイソロイシン；４）アスパラギンとグルタミン；５）スレオニンとセリン；６）フェニルアラニン、チロシンとトリプトファン；７）グリシンとアラニンである。当業者であれば、本明細書において同定された配列と実質上相同な提供された配列が、標的を、実質上同じ能力をもって結合するか否かをうまく決定する。

本明細書で定義された小有機分子は、約１０００ドルトン又はそれ未満であって好ましくは５００ドルトン未満の分子量を有する分子、好ましくは非ポリマー分子である。「ペプトイド」は本明細書では酵素耐性ペプチド類似体として定義される。

用語「標的」又は「抗−標的」は、所定のリガンドに関して本明細書で定義された結合親和性を有する分子又は異種分子を意味する。標的及び抗−標の両者は天然分子又は合成分子又は異種分子であってよい。

その標的又は抗−標的に関するリガンドの結合親和性は、解離定数（Ｋ_Ｄ）、５０％有効結合に必要な濃度（ＥＣ_５０）、又は標的に結合する別の化合物の結合の５０％阻害（ＩＣ_５０）により記述されてよい。ＫＤはｋ_ｏｆｆ／ｋ_ｏｎにより規定される。ｋ_ｏｆｆは標的−リガンド複合体が別個に壊れるか又は分離する率を規定する。この用語はときどき当業界において、標的−リガンド複合体の動力学上の安定性又は結合親和性の率を反映する他の測定可能な量の率、例えば酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）シグナル又は放射活性標識シグナルを意味する。選択性は、結合親和性の率又はリガンド−複合体の解離に関するｋ_ｏｆｆ（標的Ｋ_Ｄ／抗−標的Ｋ_Ｄ）により規定される。ｋ_ｏｎ値は、標的とリガンドが結合して標的−リガンド複合体を形成する率を記述する。

用語「接触する」は、リガンドライブラリーと標的又は抗−標的をすぐ近くにおくか又は対合させることを意味し、そしてインビトロ及びインビボの接触を含むように広く定義される。当該用語は、タッチする、アソシエートさせる、ジョインさせる、コンバインさせる、静脈内注射、経口投与、腹膜内、局所適用、筋肉内、吸入、皮下適用等を含む。本明細書で使用される用語「分離する」は、選択する（ｓｅｌｅｃｔ）、隔離する（ｓｅｇｒｅｇａｔｅ）、仕切る（ｐａｒｔｉｔｉｏｎ）、単離する（ｉｓｏｌａｔｅ）、回収する（ｃｏｌｌｅｃｔ）、別々にする（ｋｅｅｐａｐａｒｔ）、及び分離する（ｄｉｓｕｎｉｔｅ）を意味する。

「増幅する」は、分子又は分子のクラスの量又はコピー数を増加させるプロセス又はプロセスの工程の組み合わせを意味する。一つの側面において、増幅は、当業界でよく知られたポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）技術を用いて実施する核酸配列の追加のコピーの生産を意味する。別の側面において、増幅は、宿主の感染によるファージウイルス粒子濃度生産を意味する。

本明細書及び特許請求の範囲において使用される、単独の「ａ」、「ａｎ」及び「ｔｈｅ」は、他に明確に事情を指図しない限り、複数の参照を含む。例えば、用語「ａｐｒｏｔｅａｓｅ」は、複数のプロテアーゼを含んでよい。

以下の文献は、本明細書で採用された一般的技術を記載する：Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔ ａｌ．，（１９８９）ＭｏｌｅｃｕｌａｒＣｌｏｎｉｎｇ：Ａ Ｌａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ Ｈａｒｂｏｒ ＬａｂｏｒａｔｏｒｙＰｒｅｓｓ，Ｃｏｌｄ Ｓｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ，ＮＹ；Ｉｎｎｉｓ ｅｔ ａｌ．，ＰＣＲ Ｐｒｏｔｏｃｏｌｓ −Ａ Ｇｕｉｄｅ ｔｏ Ｍｅｔｈｏｄｓ ａｎｄＡｐｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ （１９９０），ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ，Ｉｎｃ．；Ｋａｙ ｅｔａｌ．，（１９９６）Ｐｈａｇｅ Ｄｉｓｐｌａｙｏｆ Ｐｅｐｔｉｄｅｓ ａｎｄ Ｐｒｏｔｅｉｎｓ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ；Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，（１９８７）Ｃｕｒｒｅｎｔ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，Ｇｒｅｅｎｅ−Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ＆ Ｗｉｌｅｙ Ｉｎｔｅｒｓｃｉｅｎｃｅ ＮＹ（１９９９から増補）；Ｂｅｒｇｅｒａｎｄ Ｋｉｍｍｅｌ，（１９８７）Ｍｅｔｈｏｄｓｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌｏｇｙ，Ｖｏｌ．１５２．ＡｃａｄｅｍｉｃＰｒｅｓｓ Ｉｎｃ．，Ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡである。

この出願を通して引用された全ての文献、特許及び公表された特許出願のコンテクストは、それの全体を引用することにより本明細書に編入する。
Ｂ．一般的方法
本明細書に記載されるのは、選択された標的に関して結合親和性及び選択性を有するリガンドのライブラリーをスクリーニングする選択性標的化方法である。そのもっとも基本的な形態において、上記選択性標的化方法は以下のとおりに定義してよい：リガンド、好ましくは異なる配列の複数のペプチドのライブラリー、そしてより好ましくはランダムなペプチドライブラリーを作成するか又は得る。上記ライブラリーのリガンドと抗−標的の間の結合に関して好ましい条件下でリガンドライブラリーを抗−標的と接触させることにより抗−標的と結合するリガンドを選択から除外する（ｄｅｓｅｌｅｃｔｉｎｇ）；抗−標的がリガンドと結合することを可能にする；そして抗−標的リガンド結合した分子又はあらゆる遊離のリガンドから抗−標的非バインダー（未結合リガンド）を分離する。当該抗−標的非バインダーを選択された標的に適切な条件下で接触させ、そしてそれらを結合させることを許容する。標的に親和性を有するリガンドは結合して標的結合リガンド複合体を形成することになる。抗−標的に結合したリガンドの除去及び弱く標的結合したリガンドの除去は、一般にライブラリー枯渇（ｄｅｐｌｅｔｉｏｎ）と呼ぶ。標的結合リガンド複合体を次に未結合のリガンドを含む残りの混合物から分離する。標的結合リガンド複合体又は標的結合リガンドは、次に、任意に増幅、配列決定又はさらなるラウンドの選択に供してよい（図１）。発明は、さらに、発明の選択性標的化方法により同定されたリガンドを含む。

発明の実施に際して、試験される化合物のライブラリーが通常提供されることになる。リガンドのライブラリーは、限定ではないが、ランダムペプチドライブラリー、合成ペプチド又はペプチド模倣物のコンビナトリアルライブラリー、ペプチドループライブラリー、コンビナトリアルケミカルライブラリー、及びオリゴヌクレオチドライブラリーを含んでよい。これらのライブラリーは、当業界においてよく知られており、上記ライブラリーを作成する方法も知られている。Ｂａｒｂａｓ，Ｃ．Ｆ．（１９９３）ＣｕｒｒｅｎｔＯｐｉｎｉｏｎ ｉｎ Ｂｉｏｔｅｃｈ．，４：５２６；Ｃｗｉｒｌａ ｅｔ ａｌ．，（１９９０）前記；Ｓｃｏｔｔ ａｎｄ Ｓｍｉｔｈ，（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ，２４９：３８６；Ｃｕｌｌ ｅｔ ａｌ．，（１９９２）前記；Ｐｉｎｉｌｌａ ｅｔ ａｌ．，（１９９４）Ｂｉｏｃｈｅｍ．Ｊ．３０１：８４７；Ｓａｍｂｒｏｏｋ ｅｔａｌ．，（１９８９）前記；Ａｕｓｕｂｅｌ ｅｔ ａｌ．，（１９８７）前記；及びＧｕｂｌｅｒ ａｎｄ Ｈｏｆｆｍａｎ，（１９８３）Ｇｅｎｅ ２５：２６３を参照されたく、各々は引用により本明細書に編入される。

ライブラリーの一つの好ましい種類は、ランダムペプチドライブラリーである（当業界においては時々エピトープライブラリーとも呼ばれる）。これらのライブラリーは、細胞表面ライブラリー、例えば酵母ライブラリー（Ｂｏｄｅｒａｎｄ Ｗｉｔｔｒｕｐ（１９９７）Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１５：５５３）；蛋白質に挿入されたペプチドライブラリー（Ｌｅｎｓｔｒａｅｔ ａｌ．，（１９９２）Ｊ．Ｉｍｍｕｎｏｌ．Ｍｅｔｈｏｄｓ，１５２：１４９及び米国特許第５，８３７，５００号）；ポリソ−ム上のペプチドの直接スクリーニング（Ｔｕｅｒｋｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：５０５）及びファージディスプレイライブラリー（Ｄｅｌｖｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２４９：４０４；ＷＯ９１／１８９８０；Ｄｏｗｅ ｅｔ ａｌ．ＷＯ９１／１９８１８；及びＰａｒｍｌｅｙ ｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｇｅｎｅ ７３：３０５）を含んでよい。ファージディスプレイライブラリーが特に好ましい。ファージディスプレイライブラリーは多数のライブラリーをバクテリオファージ、例えば繊維状ファージの上でディスプレイするライブラリーである。ペプチド又は蛋白質をバクテリオファージのコート蛋白質との融合物として発現して、ウイルス粒子の表面上に融合蛋白質をディスプレイし、当該融合物をコードするＤＮＡはウイルス粒子中に存在する。ファージライブラリーの構築のためのベクターの適切な非限定例は、ｆＡＦＦ１；ｆＵＳＥシリーズ、例えばｆＵＳＥ５；ラムダファージベクター；及びＴ７セレクト（非繊維状）ファージベクターを含む。（Ｓｍｉｔｈａｎｄ Ｓｃｏｔｔ（１９９３）Ｍｅｔｈｏｄｓｉｎ Ｅｎｚｙｍｏｌ．２１７：２２８；及びＣｗｉｒｌａｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８７：６３７８）。ファージペプチドライブラリーキットが利用可能であり、ＣｈｉｒｏｎＣｏｒｐ．（Ｅｍｅｒｙｖｉｌｌｅ，ＣＡ），Ｎｅｗ Ｅｎｇｌａｎｄ ＢｉｏＬａｂｓ Ｉｎｃ．，カタログ番号８１００（Ｂｅｖｅｒｌｙ，ＭＡ）及びＮｏｖａｇｅｎカタログ番号７０５５０−３（Ｍａｄｉｓｏｎ，ＷＩ）を参照されたい。ファージ上の抗体ディスプレイライブラリー（ｄｅＢｒｕｉｎ ｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｎａｔ．Ｂｉｏｔｅｃｈｎｏｌ．，１７：３９７）を含む様々な抗体ライブラリーが公知であるが、本発明の一つの好ましい側面において、発明による選択性標的化方法に使用されるリガンドのライブラリーは抗体を含まない。

核酸によりコードされる別の種のペプチドライブラリーは、ペプチドが別の蛋白質、例えば細胞表面例えば又は宿主の内部蛋白質との融合物として発現されるライブラリーを含む。ペプチドをコードするヌクレオチドを内部蛋白質コード遺伝子に挿入する。この種のライブラリーの様々な例が、ペプチドの、ｌａｃリプレッサー、ＧＡＬ４、チオレドキシン、及び様々な抗体への融合を含む（米国特許第５，２８３，１７３号；５，２７０，１８１；及び５，２９２，６４６）。Ｃｕｌｌｅｔ ａｌ．（１９９２）Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ８９：１８６５は、ペプチドライブラリーメンバーとＬａｃｌの融合蛋白質をコードする融合遺伝子の構築を教示する。ペプチドのライブラリーをコードする核酸をＬａｃｌコーディング遺伝子に挿入する。当該融合蛋白質と当該融合蛋白質をコードする融合プラスミドを、プラスミド中でｌａｃオペレーター配列に上記ペプチドを結合することにより物理的に連結する。宿主細胞はライブラリープラスミドにより形質転換してよい。上記融合蛋白質を発現する細胞を溶解することにより、融合蛋白質及び結合したＤＮＡを放出する（例えば、米国特許第５，７３３，７３１号を参照）。上記ライブラリーを次にスクリーニングするか又は選択することができる。ＤＮＡシャッフルされたライブラリーも公知であり、ＤＮＡ組換え法の間か又は合成法によりＤＮＡ断片の相同交換により構築される（例えば、米国特許第５，６０５，７９３号及びＳｔｅｍｍｅｒ（１９９４），Ｐｒｏｃ．Ｎａｔｌ．Ａｃａｄ．Ｓｃｉ．ＵＳＡ９１：１０７４７を参照）。

いわゆるアンカーライブラリーは、ＰＣＴ ＵＳ９６／０９３８３及びＷＯ９７／２２６１７に記載された。これは、ペプチドが特にデザインされたアミノ酸により分離されたランダムアミノ酸の非連続領域を有するペプチドランダムである。これらのライブラリーは遺伝学手段又は化学手段により作成される。

コンビナトリアルケミカルライブラリー及び特にペプチドライブラリーは、当業界公知の方法により直接合成してもよく、限定ではないが、アレイによる合成（Ｆｏｄｅｒｅｔ ａｌ．，（１９９１）Ｓｃｉｅｎｃｅ２５１：７６７）；固相指示体上の合成（ＷＯ９７／３５１９８）；及び別の化学方法、例えばＬａｍｅｔ ａｌ．，（１９９３）Ｂｉｏｏｒｇ．Ｍｅｄ．Ｃｈｅｍ．Ｌｅｔｔ．，３：４１９，Ｔｊｏｅｎｇｅｔ ａｌ．，（１９９０）Ｉｎｔ．Ｊ．Ｐｅｐｔ．ＰｒｏｔｅｉｎＲｅｓ．３５：１４１、及びＷＯ９６／３３０１０に記載された方法を含む。

コンビナトリアルケミカルライブラリーを創製する方法も当業界公知である。コンビナトリアルライブラリーは、ペプチド、オリゴヌクレオチド、ペプトイド、糖質、小有機分子及び固体状態の物質にさえも関する、多数の化学変更物（ｖａｒｉａｎｔｓ）を含む（Ｓｃｈｕｌｔｚｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｓｃｉｅｎｃｅ，２６８：１７３８）。コアの構造は、置換体を付加すること又は異なる分子構築ブロックを連結することにより変更されることになる。ライブラリーは、固相粒子又はビーズに結合させるか又は修飾された生物の表面上にアレイ化させた、溶液中で固定しない分子を含んでよい。理想的には、コア分子の回りの置換基を変更することにより、如何なるクラスの化合物も修飾してよい。コンビナトリアルライブラリーのための化合物のクラスの様々な非限定例は、ベンゾジアゼピン類；メルカプトアシルプロリン類；カルバメート類；カルコンライブラリー；ケトアミドコンジュゲート類；ポリケトン類；パクリタキセルライブラリー；アニリド類；アリルオキシフェノキシプロピオネート類；オキサゾリジノン類；糖質；及び多数の他のクラスを含む。コンジュゲートライブラリーを作成するための方法は刊行物に十分に記載されているが、これらの方法は極めて時間を浪費するかもしれない。様々な会社が、今、溶液及び固相合成の両方からコンジュゲートライブラリーを生成する装置を作成している（ＣｏｍｂｉＣｈｅｍＩｎｃ．（ｓａｎ Ｄｉｅｇｏ，ＣＡ）；ＡｄｖａｎｃｅｄＣｈｅｍ Ｔｅｃｈ（Ｌｏｕｉｓｖｉｌｌｅ）；ＺｙｍａｒｋＣｏｒｐ．（ＭＡ）；及びＨｅｗｌｅｔｔｅ Ｐａｃｋａｒｄ（ＣＡ））。ライブラリーを作成したら、例えば高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）により任意に精製することができる。発明の選択性標的化方法に従い小有機分子がスクリーニングされて同定されたなら、当業界公知の有機合成手段により大規模に生産してよい。

本明細書に教示されるのは、よく知られたリガンドライブラリーを生成する標準法のみならず、リガンドライブラリーを例えばＳｉｇｍａ（Ｓｔ．Ｌｏｕｉｓ，Ｍｏ．）又は様々な公的な源、例えばアメリカンタイプカルチャーコレクション（ＡＴＣＣ）及びナショナルインスティチュートオブヘルス（ＮＩＨ）から商業上得てよいことである。

発明の選択性標的化方法において使用される適切な標的及び抗−標的は、限定ではないが、蛋白質、ペプチド、核酸、糖質、脂質、ポリサッカライド、糖蛋白質、ホルモン、受容体、抗原、抗体、ウイルス、病原体、毒性物質、代謝産物、阻害剤、薬剤、染料、栄養物、成長因子、細胞又は組織を含む。

細胞又は組織の源は、ヒト、動物、細菌、真菌、ウイルス及び植物を含む。組織は複雑な標的であり、単細胞タイプ、細胞タイプのコレクション又は特定の種類の一般的な細胞の集合物を意味する。組織は完全であるか又は修飾されてよい。ヒトの一般的なクラスの組織は、限定ではないが、上皮、結合組織、神経組織、及び筋肉組織を含む。

好ましいヒト細胞標的又は抗−標的は、造血細胞、癌細胞及びレトロウイルス媒介形質導入細胞を含む。造血細胞は、造血幹細胞、赤血球、好中球、単球、血小板、乳房細胞、好酸球、好塩基球、Ｂ及びＴ細胞、マクロファージ及びナチュラルキラー細胞を包含する。

発明により包含される蛋白質及びケミカル標的の非限定例は、ケモカイン類及びサイトカイン類及びそれらの受容体を包含する。ここで使用されるサイトカイン類は、細胞に対する様々な作用、例えば成長又は増殖を誘導する多くの因子のいずれか一つを意味する。非限定例は、インターロイキン（ＩＬ）、ＩＬ−２，ＩＬ−３，ＩＬ−４，ＩＬ−６，ＩＬ−１０，ＩＬ−１２，ＩＬ−１３，ＩＬ−１４及びＩＬ−１６；可溶性ＩＬ−２受容体；可溶性ＩＬ−６受容体；エリスロポエチン（ＥＰＯ）；トロンボポエチン（ＴＰＯ）；顆粒球マクロファージコロニー刺激因子（ＧＭ−ＣＳＦ）；幹細胞因子（ＳＣＦ）；白血病阻害因子（ＬＩＦ）；インターフェロン；オンコスタチンＭ（ＯＭ）；イムノグロブリンスーパーファミリー；腫瘍壊死因子（ＴＮＦ）ファミリー；特にＴＮＦ−α；ＴＧＦ−β；及びＩＬ−１α；及び血管内皮成長因子（ＶＥＧＦ）ファミリー；特にＶＥＧＦ（当業界ではＶＥＧＦ−Ａとも呼ばれる），ＶＥＧＦ−Ｂ，ＶＥＧＦ−Ｃ，ＶＥＧＦ−Ｄ及び胎盤成長因子（ＰＬＧＦ）を含む。

ケモカイン類は、細胞輸送及び炎症において重要な役割を担う小蛋白質のファミリーである。ケモカインファミリーのメンバーは、限定ではないが、ＩＬ−８，ストロマ由来の因子−１（ＳＤＦ−１）、血小板因子４、好中球活性化蛋白質−２（ＮＡＰ−２）及び単球化学誘因蛋白質−１（ＭＣＰ−１）を含む。

他の蛋白質及びケミカル標的は、免疫制御変調蛋白質、例えば可溶性ヒト白血球抗原（ＨＬＡ，クラスＩ及び／又はクラスＩＩ，及び非古典クラスＩＨＬＡ（Ｅ，Ｆ及びＧ）；表面蛋白質、例えば可溶性Ｔ又はＢ表面蛋白質；ヒト血清アルブミン；アラキドン酸代謝産物、例えばプロスタグランジン類、ロイコトリエン類、トロンボキサン及びプロスタサイクリン；自己免疫又はアロ免疫又は異物免疫に関するＩｇＥ、自己抗体又はアロ抗体，ＩｇＦｃ受容体又はＦｃ受容体結合因子；Ｇプロテイン共役された受容体；細胞表面糖質；脈管形成因子；接着分子；イオン、例えば、カルシウム、カリウム、マグネシウム、アルミニウム、及び鉄；原繊維蛋白質、例えばプリオン及びチューブリン；酵素、例えばプロテアーゼ類、アミノペプチダーゼ類、キナーゼ類、ホスファターゼ類、ＤＮＡｓｅ類、ＲＮＡｓｅ類、リパーゼ類、エステラーゼ類、デヒドロゲナーゼ類、オキシダーゼ類、ヒドロラーゼ類、スルファターゼ類、サイクラーゼ類、トランセフェラーゼ類、トランスアミナーゼ類、カルボキシラーゼ類、デカルボキシラーゼ類、スーパーオキシドジスムターゼ類、及びそれらの天然基質又は類似体；ホルモン類及びそれらの対応する受容体、例えば絨毛刺激ホルモン（ＦＳＨ）、黄体ホルモン（ＬＨ）、チロキシン（Ｔ４及びＴ３）、アポリポ蛋白質類、低密度リポ蛋白質類（ＬＤＬ）、極低密度リポ蛋白質類（ＶＬＤＬ）、コルチゾール、アルドステロン、エストリオール、エストラジオール、プロゲステロン、テストステロン、デヒドロエピアンドロステロン（ＤＨＢＡ）及びその硫酸塩（ＤＨＢＡ−Ｓ）；ペプチドホルモン、例えばレニン、インスリン、カルシトニン、パラチロイドホルモン（ＰＴＨ）、ヒト成長ホルモン（ｈＧＨ）、バソプレシン及び抗利尿ホルモン（ＡＤ）、プロラクチン、副腎皮質刺激ホルモン（ＡＣＴＨ）、ＬＨＲＨ，甲状腺刺激ホルモン放出ホルモン（ＴＨＲＨ）、血管作動性腸ペプチド（ＶＩＰ）、ブラジキニン及び対応するプロホルモン；カテコールアミン、例えばアドレナリン及び代謝物；アトリオナトリウティック因子（ＡｄＦ）、ビタミンＡ，Ｂ，Ｃ，Ｄ，Ｅ及びＫ及びセロトニンを含む共因子；凝固因子、例えばプロトロンビン、トロンビン、フィブリン、フィブリノーゲン、ファクターＶＩＩＩ、ファクターＩＸ，ファクターＸＩ及びフォンウイルブラント因子、プラスミノーゲン因子、例えばプラスミン、補体活性化因子、ＬＤＬ及びそれらのリガンド、及び尿酸；凝固を制御する化合物、例えばヒルジン、ヒルログ、ヘメンチン、ヘプリン、及び組織プラスミノーゲン活性化因子（ＴＰＡ）；遺伝子治療用核酸；酵素のアンタゴニストの化合物；及びリガンドを結合する化合物、例えば炎症因子を含む。

非ヒト由来の標的及び抗−標的は、限定ではないが、薬剤、特に乱用になりやすい薬剤、例えばカンナビス、ヘロイン及び他のアヘン剤、フェンシクリジン（ＰＣＰ）、バルビツール酸塩、コカイン及びその誘導体、及びベンザジアゼピン；毒素、例えば重金属様水銀及び鉛、ヒ素及び放射性の化合物；化学治療剤、例えばパラセタモール、ジゴキシン及び遊離ラジカル；細菌の毒素、例えばリポポリサッカライド類（ＬＰＳ）及び他のグラム陰性毒素、スタフィロコッカスの毒素、トキシンＡ，破傷風毒素、ジフテリア毒素及び百日咳毒素；植物及び海洋性の毒素；ヘビ及び他の毒液、有毒因子、例えばエアロバクチン類、又は病原性微生物；感染性ウイルス、例えば肝炎ウイルス、サイトメガロウイルス（ＣＭＶ）、単純ヘルペスウイルス（ＨＳＶタイプ１、２及び６）、エプスタイン−バールウイルス（ＥＢＶ）、水痘帯状疱疹ウイルス（ＶＺＶ）、ヒト免疫不全ウイルス（ＨＩＶ−１、−２）及び他のレトロウイルス、アデノウイルス、ロタウイルス、インフルエンザ、ライノウイルス、パーボウイルス、風疹、麻疹、ポリオ、パラリクソウイルス、パポバウイルス、ポックスウイルス及びピコルナウイルス、プリオン、プラスモディウム組織因子、プロトゾアン、例えばエンタモエバヒストリチカ、フィラリア、ジアルディア、黒熱病、及びトキソプラズマ；細菌、敗血症及び院内感染の原因であるグラム陰性細菌、例えばエシェリヒアコリ、アシネトバクター、シュードモナス、プロテウス及びクレブシエラ、またグラム陽性細菌、例えばスタフィロコッカス、ストレプトコッカス、メニンゴコッカス及びリーコバクテリア、クラミジアレジオネラ及びアネアローブ；真菌、例えばカンジダ、ニューモシスティス、アスペルギルス及びマイコプラズマを含む。

一つの側面において、標的は、酵素、例えば、プロテアーゼ類、アミノペプチダーゼ類、キナーゼ類、ホスファターゼ類、ＤＮアーゼ類、ＲＮアーゼ類、リパーゼ類、エステラーゼ類、デヒドロゲナーゼ類、オキシダーゼ類、ヒドロラーゼ類、スルファターゼ類、セルラーゼ類、サイクラーゼ類、トランスフェラーゼ類、トランスアミナーゼ類、カルボキシラーゼ類、デカルボキシラーゼ類、スーパーオキシドジスムターゼ類、及びそれらの天然基質又は類似体を含む。特に好ましい酵素は、ヒドロラーゼ類、特にアルファ／ベータヒドロラーゼ類；セリンプロテアーゼ類、例えばズブチリシン類、及びキモトリプシンセリンプロテアーゼ類；セルラーゼ類；及びリパーゼ類である。

別の側面において、標的は、汚れ又は織物又は他の表面材料、例えばセラミックス、ガラス、シリカ、木、紙、金属及びアロイ、及び生物組織、例えば皮膚である。汚れは、以下の非限定の汚れ群から選択してよい：ポルフィリン由来の汚れ、タンニン由来の汚れ、カルテノイド色素由来の汚れ、アントシアニン色素由来の汚れ、しみに基づく汚れ、オイルに基づく汚れ、及びヒトの身体由来の汚れ。特に、汚れは血液由来の汚れ又はクロロフィル由来の汚れであってよい。より特定すれば、汚れは、ガラス；パプリカ；茶由来の汚れ；又は果実又は野菜由来の汚れ、例えばワイン、トマト及びベリー類であってよい。特に好ましい汚れは、ヒトの身体のオイル、そしてより特別な汚れは襟のしみと呼ばれる。

また別の側面において、標的は、造血幹細胞（ＨＳＣｓ）を含む。ＨＳＣｓの特に好ましい表面抗原発現プロフィールは、ＣＤ３４^＋Ｔｈｙ−１^＋であり、そして好ましくはＣＤ３４^＋Ｔｈｙ−１^＋Ｌｉｎ⁻である。Ｌｉｎ⁻は、少なくとも一つの系列の特定のマーカーの発現の欠如を基に選択された細胞集団を意味する。ＨＳＣｓを単離して選択する方法は当業界公知であり、米国特許第５，０６１，６２０号；第５，６７７，１３６号；及び第５，７５０，３９７号を参照されたい。

さらなる側面において、好ましい標的は、サイトカイン類、特にＩＬ−２，ＩＬ−３，ＩＬ−６，ＩＬ−１０，ＩＬ−１２，ＩＬ−１３，ＩＬ−１４及びＩＬ−１６；ＥＰＯ；ＧＭ−ＣＳＦ；ＴＮＦファミリー；ＶＥＧＦファミリー、ＧＦβ；及びＩＬ−１αを含む。サイトカイン類はいくつかの売り主から市販されており、アムジェン（サウザンドオークス、ＣＡ）、イミュネックス（シアトル、ＷＡ）及びジェネンテック（サウスサンフランシスコ、ＣＡ）を含む。特に好ましいのは、ＶＥＧＦとＴＮＦ−αである。ＴＮＦ−αに対する抗体は、ＴＮＦ−αとその受容体とのブロッキング相互作用が、敗血症性ショック、慢性関節リウマチ、又は他の炎症の進行のようないくつかの疾患状態においてＴＮＦ−αの過剰発現を変調するのに有用である。ＶＥＧＦは、血管形成誘発物質であり、血管透過性の媒介因子であり、そして内皮細胞特異的有糸分裂促進物質である。ＶＥＧＦは腫瘍においても関わった。ＶＥＧＦファミリーの標的化メンバー及びそれらの受容体は有意な治療上の応用性を有するかもしれず、例えば、ＶＥＧＦをブロッキングすることは、卵巣高刺激症候群（ＯＨＳＳ）において治療上の価値を有するかもしれない。Ｎ．Ｆｅｒｒａｒａｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．５：１３５９及びＧｅｒｂｅｒｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｎａｔ．Ｍｅｄ．５：６２３を参照されたい。他の好ましい標的は、細胞表面受容体、例えばＴ細胞受容体を含む。

標的と抗−標的は、構造レベル、化学レベル又は遺伝子レベル上のいくつかの詳細において特性決定されることにより、精製度、安定性及び標的濃度にわたりいくつかの制御を可能にさせることが好ましい。しかしながら、よく特性決定されていない標的と抗−標的を使用してよい。可能性としてのよく特性決定されていない標的の非限定例は、襟のしみ、腫瘍細胞、ヒトの皮膚及び毛髪を含む。

好ましい抗−標的は、コットン、ウール、シルク、ポリエステル、レーヨン、リネン、ナイロン及びそれらのブレンドからなる群から選択される織物を含む。
別の側面において、標的が損傷した細胞、組織又は器官の場合、抗−標的は健常な（非損傷）細胞、組織、器官又はその組み合わせである。特定の非限定抗−標的例は、健常な全血、皮膚、毛髪、歯、そして爪を含む。

いくつかの応用において、標的と抗−標的は興味のある特定の応用に依存して逆転できる。例えば、ヒトの毛髪ではなく皮膚を標的とすることが望ましい場合、複数の応用が存在するかもしれない。よって、抗−標的は毛髪である。類似の応用において、ヒトの毛髪が標的であって対応する抗−標的、皮膚が標的ではないことを望んでよい。

同じ応用において使用される標的／抗−標的の以下の一般例は、例示の目的のみに提供されて、本明細書に開示された選択性標的化方法に限定することを意図しない：腫瘍細胞／正常細胞；受容体細胞／受容体を発現しない細胞；新生物（ｎｅｏｐｌａｓｔｉｃ）細胞／正常細胞：しみ汚れ／コットン織物；食物汚れ／セラミック；特定のプロテアーゼ／他のプロテアーゼ；セリンプロテアーゼ／全血；造血幹細胞／全血；特定の酵素変異体／当該酵素の他の形態；細胞中のウイルス／細胞；ＴＮＦ−アルファ／血液成分；特定の昆虫の酵素／動物中の相同な酵素；造血幹細胞／他の造血細胞；毛髪／皮膚；核／ミトコンドリア；細胞質／核；アルファ／ベータヒドロラーゼ／他のヒドロラーゼ；及び光合成に関与する特定の酵素／葉の組織。

選択性標的化方法に使用される標的と抗−標的の両者の濃度は、使用されるリガンドライブラリー、抗−標的及び標的の種類に依存して変わる。本明細書にて考察されるとおり、開示された方法は多くの異なる標的及び抗−標的に広い応用性を有するので、上記方法に使用される濃度は約１．０Ｍから１０^−１５Ｍの範囲で変更してよく、好ましくは上記濃度は１０^−９Ｍの範囲内である。通常、標的の量に対して過剰量の抗−標的が必要である。発明を限定するわけではないが、この過剰量は少なくとも１０倍から１０００倍を超える範囲であってよい。初期標的濃度は１０^−３Ｍから１０^−１５Ｍの範囲で提供されるのが好ましいかもしれない。一つの好ましい態様において、標的が酵素の場合、標的濃度は約１０^−３Ｍから１０^−１２Ｍの範囲にて提供してよい。別の好ましい態様において、標的がサイトカインの場合、標的は約１０^−３Ｍから１０^−１２Ｍの範囲の濃度にて提供してよい。また別の態様においては、標的が造血細胞の場合に、標的濃度を約１０から１０^９細胞の範囲に提供してよい。

一つの好ましい態様において、抗−標的が血液蛋白質であるか又は酵素である場合、抗−標的濃度は約１．０Ｍから１０^−１２Ｍの濃度範囲で提供してよい。
ある好ましい態様において、抗−標的又は標的は物質又は表面、例えば織物、セラミック又はマイクロ流体チップであってよい。この例において、標的又は抗−標的の面積は重要になる。如何なる様式にも発明を限定する意図はないが、通常、抗−標的又は標的物質のサイズは約１．０ｍｍから１．５ｃｍ；より好ましくは約２５．０ｍｍから０．５ｃｍである；しかしながら、直径又は面積はこの値より低いか又は高くてよい。

一つの側面において、発明は選択された標的に結合するリガンドのスクリーニングと同定に向けられることにより、抗原に関する抗体の親和性の範囲で結合親和性をもって非共有標的−リガンド複合体を形成させる。Ｋ_Ｄに関する本発明によるリガンド結合親和性、ＥＣ_５０又はＩＣ_５０は、約１０^−７Ｍから１０^−１５Ｍの範囲であるが、より高いか又はより低い親和性を達成してよい。一つの側面において、上記親和性は少なくとも約１０^−７Ｍの範囲、また少なくとも約１０^−８Ｍ、好ましくは少なくとも約１０^−９Ｍ、そしてまた好ましくは少なくとも約１０^−１２Ｍの範囲である。別の態様において、親和性は約１０^−７Ｍ未満である。別の側面において、リガンド−標的複合体に関するｋ_ｏｆｆ値は、約１０^−３秒^−１未満、約１０^−４秒^−１未満、そして約１０^−５秒^−１未満でもある。発明の選択性標的化方法により同定されたリガンドは、如何なる優位性をもっても、抗−標的には結合しない。発明を限定するわけではないが、本明細書に記載された選択性標的化方法により同定された好ましいリガンドは、抗−標的に関するＫ_Ｄが約１０^−４Ｍより大きく、そして好ましくは約１０^−１Ｍより大きい。

発明による選択性標的化方法は、リガンドの標的に対する結合親和性により特徴付けされるのみならず、リガンド−標的複合体の選択性により特徴付されてよい。抗−標的に対するリガンド結合に比較した、標的に関するリガンド結合の選択性は、約３：１から５００：１の範囲のＫ_Ｄ，ＥＣ_５０又はＩＣ_５０の比率により定義することができる。一つの側面において、選択性は少なくとも５：１、好ましくは少なくとも１０：１、より好ましくは少なくとも約２０：１、さらにより好ましくは少なくとも約３０：１、さらにより好ましくは少なくとも約５０：１、そしてさらにより好ましくは少なくとも約１００：１である。

別の側面において、選択性標的化方法は、標的に関して低い親和性であるが標的に関して高い選択性を伴ってリガンドを選択するのに使用してよい。この側面において、抗−標的に結合する上記リガンドに比較した、標的に関するリガンド結合親和性の選択性は、少なくとも約５：１、好ましくは少なくとも約１０：１、また好ましくは少なくとも約２０：１、より好ましくは少なくとも約５０：１、そしてさらに好ましくは少なくとも１００：１である。しかしながら、標的結合親和性は約１０^−３Ｍから１０^−７Ｍの範囲である。

結合親和性及び選択性を測定する方法は当業界においてよく知られており、そしてこれらの方法は限定ではないが放射性標識放出及び競合アッセイによる測定を含み；恒温力価熱量測定；バイオセンサー結合アッセイ（Ｍｏｒｔｏｎ＆ Ｍｙｓｚｋａ，（１９９８）ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．２９５：２６８−２９４）；蛍光及び化学発光分光分析；及び質量分光分析による（Ｇａｏｅｔ ａｌ．，（１９９６），Ｊ．Ｍｅｄ，Ｃｈｅｍ．，３９：１９４９）。

一つの側面においては、抗−標的をリガンドのライブラリーと化合し、そしてリガンドのライブラリーの標的への暴露の前にインキュベートすることを許容する。別の側面において、抗−標的及び標的は本質的には同時にリガンドのライブラリーと化合する。本質的に同時にとは、リガンドライブラリーを抗−標的及び標的とあらゆる分離工程前に暴露する場合の、同時か又は極めて近い時間を意味する。

本明細書に記載された選択性標的化方法はインビトロ又はインビボで実施してよい。インビトロで実施する場合、リガンドのライブラリーと抗−標的（及び任意に標的）を容器中又は上で化合する。当該容器は適切な材料又は貯蔵所、例えば、プレート、培養管、マイクロタイタープレート、マイクロ流体チップ、ペトリ皿等であってよい。

好ましくは、抗−標的と標的は、非特異的結合事象が最少になる環境において利用可能である。これは様々な手段により達成してよく、限定ではないが、１）リガンドライブラリー及び標的／抗−標的を含む容器をＢＳＡ，スキムミルク又は他の吸着蛋白質でコートすることにより非特異的結合をブロックするか、２）標的分子を捕捉剤（ｃａｐｔｕｒｅａｇｅｎｔ）、例えばビオチン化化合物、例えばビオチン、アビジン又はのちにストレプトアビジン又はストレプトアビジン誘導体、例えばニトロストレプトアビジンによりトラップできるそれらの変異形態で標識するか、３）ライブラリーから物理的に分離できる磁気ビーズ上に標的／抗−標的をディスプレイするか、又は４）低いバックグラウンド吸着特性でライブラリーディスプレイベクターを使用すること、を含む。これらの方法は当業界公知であり、Ｐａｒｍｌｅｙｅｔ ａｌ．（１９８８）前記；及びＢａｙｅｒｅｔ ａｌ．，（１９９０）ＭｅｔｈｏｄｓＥｎｚｙｍｏｌ．１８４：１３８を参照されたい。

リガンドのライブラリー及び抗―標的を含む組成物は、追加の化合物、例えばバッファー及び任意には界面活性剤及び有機溶剤と共に、リガンドの抗−標的との結合を可能にさせる条件下で化合してよい。当業者は、有用なバッファーをよく知っている。非限定例は、トリス（ヒドロキシメチル）アミノメタン（Ｔｒｉｓ）バッファー；Ｎ−２−ヒドロキシエチルピペラジン−Ｎ’−２−エタンスルフォン酸（ＨＥＰＥＳ）バッファー；モルホリノ−エタンスルフォン酸（ＭＥＳ）バッファー；緩衝塩溶液、例えばＮ，Ｎ−ビス［２−ヒドロキシエチル］２−アミノエタンスルフォン酸（ＢＥＳ）、トリス、及びリン酸緩衝塩（ＰＢＳ）、好ましくは緩衝塩溶液を含む（Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔ ａｌ．，（１９８９）前記）。市販のバッファーは例えばＳｕｐｅｒＢｌｏｃｋ（商標名）（ピアス、ロックフォード、ＩＬ）から入手できる。他の成分、例えば界面活性剤、例えばツイーン及びトライトンを溶液中で使用することができる。

標的に依存して、リガンドライブラリーと抗−標的を含む組成物を約１分から約９６時間の間インキュベートして、リガンドを抗−標的に結合させる。しかしながら、標的又は抗−標的の安定性に依存して、より長い時間を使用してよい。未結合の抗−標的リガンドを含む成分を、インキュベーション後に、抗−標的結合リガンドから分離する。本質的ではないが、未結合の抗−標的リガンドを含む分離された成分は、任意に、抗−標的を含む新たな容器に移し、インキュベートし、そして次に未結合の抗−標的リガンドを含む成分を再び結合した抗−標的リガンドから分離することができる。この移すプロセスは多数回繰返してよく、例えば、２から１０回もしくはそれ以上繰返してよい。繰返された移す工程はさらに、抗−標的に結合するリガンドの数を減少させる。しかしながら、リガンドのライブラリーの抗−標的との接触、及び抗−標的結合リガンドの未結合リガンドからの分離は、１ラウンドにて達成してよい。インキュベーションを含む接触、及び分離工程は、１ラウンドで完了するか複数ラウンドで完了するか否かに拘わらず、一般に排除（ｄｅｓｅｌｅｃｔｉｏｎ）と呼んでよい。

一般に、除外の間の温度条件は２から３０℃の間であってよい。上記温度は成分の安定性に依存し、そして決定する当業者の範囲内である。
未結合の抗−標的リガンドは、当業界公知の方法により抗−標的結合リガンドから分離してよい。これらの方法のいくつかは、移し替え、洗浄、遠心分離、濾過、クロマトグラフィー、マイクロ−解剖及び蛍光活性化細胞分類（ＦＡＣＳ）を含む。

抗−標的結合リガンドを枯渇されて未結合リガンドを含むリガンドライブラリーは、リガンドライブラリーの一つ又は複数のメンバーが標的に結合して、それにより標的−結合リガンド複合体を形成する適切な条件下で、標的を含む容器に移し替える。一つの側面において、リガンドを同じ標的に接触させてよい。別の側面において、リン酸を同時に標的のアレイに接触させてよい。標的のアレイの非限定例の一つは、リガンドの、表面上の複数の汚れへの接触を含む。標的に結合することを可能にする条件下で、通常約１分から約９６時間の範囲の間、リガンドをインキュベートする。インキュベーション時間は標的の安定性に依存する。標的が汚れの場合、インキュベーション期間は通常約５分から約９０分間になる。容器はさらに上記のとおりにバッファーを含んでよい。温度の範囲は通常約２から３０℃、そして好ましくは約１８から２５℃である。

当業者は、細胞、器官、及び組織培養を記載する文献をよく知っており、そしてＡｔｌａｓａｎｄ Ｐａｒｋｓ（編纂）（１９９３），ＴｈｅＨａｎｄｂｏｏｋ ｏｆ Ｍｉｃｒｏｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ Ｍｅｄｉａ，ＣＲＣ Ｐｒｅｓｓ，Ｂｏｃａ Ｒａｔｏｎ ＦＬ；Ｇａｍｂｏｒｇａｎｄ Ｐｈｉｌｌｉｐｓ（編纂）（１９９５）ＰｌａｎｔＣｅｌｌ Ｔｉｓｓｕｅ ａｎｄ Ｏｒｇａｎ Ｃｕｌｔｕｒｅ，ＦｕｎｄａｍｅｎｔａｌＭｅｔｈｏｄｓ，Ｓｐｒｉｎｇｅｒ ＬａｂＭａｎｕａｌ Ｓｐｒｉｎｇｅｒ−Ｖｅｒｌａｇを参照されたい。

標的−結合リガンド複合体を１又は複数の洗浄工程に供してよい。洗浄化合物は、培養（例えばＴＢＳ及びＰＢＳ）、界面活性剤、酸（グリシン）、有機溶媒、塩基、酵素、音波処理、又はそれらの組み合わせを含んでよく、その際、未結合リガンドを洗浄する。標的−結合リガンド複合体を酸溶出に供する場合、酸溶出のｐＨは約１．５から４．５の範囲、好ましくは約２．０から３．５の範囲であってよい。酸溶出は２から２０分の間で起こり、通常は約１０分より長くかからない。洗浄工程は複数回繰返してよく、通常は特定の標的及びリガンドライブラリーに依存して２から６回繰返すことができる。特に、洗浄工程に酸を用いる場合、様々な公知の化合物及びバッファー、例えばＴＲＩＳ−ＨＣＬを用いて中和した後に、洗浄するのが一般的になる。洗浄工程は、本明細書に定義されたＫ_Ｄ，ｋ_ｏｆｆ及び選択性の値を有する強く結合するリガンドを含む標的結合リガンド複合体をもたらす。

リガンドライブラリーを抗−標的及び標的と連続的にではなく本質的には同時に接触させる場合、リガンドライブラリー、抗−標的及び標的組成物は、抗−標的及び標的の連続暴露のために、上記全ての物質をさらに含んでよい。

さらに、リガンドライブラリーを抗−標的及び標的と本質的に同時に接触させる場合、上記方法はインビボにおいて実施してもよい。この側面において、リガンドのライブラリーは当業界でよく知られた手段により投与して良いが、好ましくは宿主への注射による。ライブラリーがファージペプチドライブラリーなら、変換ユニットの数は１０^４−１０^１０の範囲であってよい。宿主は動物、例えばヒト、マウス、チキン又はブタであってよく、好ましくはマウスである。標的は、例えば、全器官又は損傷した組織又は腫瘍組織、より特定すれば腫瘍血管であってよい。標的が血液中の組織又は細胞なら、リガンドのライブラリーは、約１分から約１０分の間、血液を循環させてよく、標的との結合を可能にさせる。標的−結合リガンド複合体は、潅流して組織を切開した後に回収してよい（Ｋｏｉｖｕｎｅｎｅｔ ａｌ．，（１９９９）ＮａｔｕｒｅＢｉｏｔｅｃｈ．１７：７６８及びＡｒａｐ ｅｔ ａｌ．，（１９９８）Ｓｃｉｅｎｃｅ ２７９：３７７）。

標的−結合リガンドの、混合物中の抗−標的未結合リガンド又は遊離リガンドからの分離も、当業界でよく知られた手段により達成してよく、これらの方法は、親和性クロマトグラフィー；遠心分離；高速液体クロマトグラフィー（ＨＰＬＣ）；濾過、例えばゲル濾過；酵素結合免疫吸着アッセイ（ＥＬＩＳＡ）；及び蛍光活性化細胞分類（ＦＡＣＳ）を含む。分離方法の選択は、様々な因子、例えば標的、抗−標的及びリガンド分子に依存することになる。分離方法の選択は、当業者にはよく知られており、これらの分離方法のために使用される様々な装置は市販されている。（Ｋｅｎｎｙａｎｄ Ｆｏｗｅｌｌ（編纂）（１９９２）ＰｒａｃｔｉｃａｌＰｒｏｔｅｉｎ ＣｈｒｏｍａｔｏｇｒａｐｈｙＭｅｔｈｏｄｓ ｉｎ Ｍｏｌｅｃｕｌａｒ Ｂｉｏｌｏｇｙ，ｖｏｌ．１１，Ｈｕｍａｎａ Ｐｒｅｓｓ，Ｔｏｔｏｗａ ＮＪを参照）
標的−結合複合体上の標的−結合リガンドは様々な技術により同定してよく、ポリメラーゼ鎖反応（ＰＣＲ）、質量分光光度分析（ＭＳ）、表面プラズモン共鳴、免疫沈殿及び核磁気共鳴（ＮＭＲ）分光分析を含む（米国特許第４，６８３，２０２号；Ｓｚａｂｏｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｃｕｒｒ．Ｏｐｉｎ．Ｓｔｒｕｃｔ．Ｂｉｏ．５：６９９：Ｈａｒｌｏｗｅｔ ａｌ．，（１９９９）ＵｓｉｎｇＡｎｔｉｂｏｄｉｅｓ，Ａ ＬａｂｏｒａｔｏｒｙＭａｎｕａｌ，Ｃｏｌｄ ＳｐｒｉｎｇＨａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓ；及びＨａｊｄｕｋｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｊ．ＭｅｄＣｈｅｍ．，４２：２３１５）。非対称ＰＣＲも標的−結合リガンドの同定に用いてよく、その際、異なる濃度の単一プライマー種又は複数プライマーを用いてよい。当業者にはよく知られているとおり、ライブラリーのメンバーを遺伝学上ペプチド又は蛋白質に連結する場合、ＤＮＡ又はｍＲＮＡをＰＣＲにより増幅することができ、そして対応する配列を配列決定及び同定用のベクターにサブクローン化することができる。

同定工程のプロセスの間、標的−結合リガンドを標的−結合リガンド複合体から分離してよいが、同定工程は分離を必要とせず、そして好ましくはリガンドの同定前に、標的−結合リガンドを標的−結合リガンド複合体から分離しない。例えば、質量分光光度分析（ＭＳ）の場合、標的−結合リガンド複合体を質量分光光度計に注入したら、標的−結合リガンドを標的複合体から分離してよい。さらに、ＰＣＲは直接標的−結合リガンド複合体上で実施してよい。

発明による選択性標的化法は、好ましくはＰＣＲを含むことにより、標的−結合ペプチドを同定する。発明によれば、ＰＣＲの使用が、酸溶出を利用した慣用のバイオパニング法により回収されなかったペプチドの回収をもたらす。通常、リガンドをコードするＤＮＡは適切なプライマーを用いてＰＣＲにより増幅される。

特定のＰＣＲ産物の存在は、標的結合リガンドをコードするＤＮＡが存在することを示す。標的結合リガンドの量は定量性ＰＣＲにより測定される。洗浄ストリンジェンシーの程度は、所望のレベルまで、及び極めて低い検出レベル、例えばアトモルレベルまで監視することができる。非特異的リガンドバインダーは、例えば野生型ファージを加え、そして上記リガンドライブラリーを増幅するのみのプライマーをデザインすることにより、競合させてよい。シグナル対ノイズ比の低下を阻止するため、リガンドをコードするＤＮＡの周囲の配列を選択ラウンドの間にしばしば変更してよい。標的−結合リガンドの分析の感度は、標的濃度、ＰＣＲ増幅サイクルの数、ＰＣＲプライマーの特異性、及びＰＣＲ産物の検出法を変更することにより制御してよい。

一つの態様において、標的が腫瘍抗原の場合、標的−結合ファージライブラリーを含む腫瘍組織は腫瘍から切り出してよく、そして適切なＰＣＲプライマー、ヌクレオチド及びポリメラーゼの添加が、増幅されたＰＣＲ産物を生じさせてよい。ＰＣＲの様々な阻害反応は、ウシ血清アルブミン、カチオン性アミン、及び有機溶剤を含む賦形剤の添加により軽減されてよく、Ｒｏｕｘ，（１９９５）”Ｏｐｔｉｍｉｚａｔｉｏｎ ａｎｄ Ｔｒｏｕｂｌｅｓｈｏｏｔｉｎｇ ｉｎ ＰＣＲ” ｉｎ ＰＣＲ Ｐｒｉｍｅｒ：ＡＬａｂｏｒａｔｏｒｙ Ｍａｎｕａｌ，ＣｏｌｄＳｐｒｉｎｇ Ｈａｒｂｏｒ Ｐｒｅｓｓを参照されたい。ＤＭＳＯ及びグリセロールはＰＣＲの増幅効率及び特異性を改善するために使用してよい。標的−結合リガンドのＤＮＡは、標準の技術を使用して、抽出及び精製しても良い。

所望のクローンの配列決定又は不所望の非特異的ファージからの分離を促進するためには、ＰＣＲにより生成されたポリヌクレオチド産物を、例えばビオチン標識モイエティ又は蛍光標識モイエティを用いてポリメラーゼ媒介触媒の間に導入することにより標識してよい。所望のＰＣＲ産物が発明の方法に従い選択性標的化の追加のラウンドについてベクターにクローン化される場合、変異原性ＰＣＲ法により多様性を導入することを望んでよい（Ｓｔｅｍｍｅｒ，ｉｎＫａｙ ｅｔ ａｌ．，前記を参照）。これらは、カセット変異導入、エラー傾向のＰＣＲ、ＤＮＡシフト化、ＩＴＣＨＹ−ＳＣＲＡＴＣＹ等を含む、当業者にはよく知られているとおりである。Ｔｉｌｌｅｔｔａｎｄ Ｎｅｉｌａｎ，（１９９９）”Ｅｎｚｙｍｅ−ｆｒｅｅ Ｃｌｉｎｉｎｇ：Ａ Ｒａｐｉｄ Ｍｅｔｈｏｄｓｔｏ Ｃｌｏｎｅ ＰＣＲ Ｐｒｏｄｕｃｔｓ Ｉｎｄｅｐｅｎｄｅｎｔｏｆ Ｖｅｃｔｏｒ Ｒｅｓｔｒｉｃｔｉｏｎ Ｅｎｚｙｍｅ Ｓｉｔｅｓ”Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．，２７：２６ｅも参照されたい。

上記及び当業界でよく知られているとおり、ＰＣＲ断片は配列決定のために様々なベクターにクローン化されてよく、それらはペプチド蛋白質融合の形成において使用されるか又は追加のディスプレイベクターにクローン化されてよい。

標的結合ライブラリーのメンバーは質量分光分析法により好ましくは同定されてもよい。これは、化合物の質量及び質量分光測光により生じた化合物の断片に基づいた、化合物の構造の同定である。化合物の構造を特定するための質量分光測定の使用は、Ｃａｏｅｔ ａｌ．，（１９９７）Ｔｅｃｈｎｉｑｕｅｓｉｎ Ｐｒｏｔｅｉｎ Ｃｈｅｍｉｓｔｒｙ ＶＩＩＩ，Ａｃａｄｅｍｉｃ Ｐｒｅｓｓ ｐａｇｅｓ １７７−１８４；及びＹｏｕｎｇｑｕｉｓｔｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｊ．ＡｍＣｈｅｍ．Ｓｏｃ．１１７：３９００に報告されている。また、Ｃｈｅｎｇｅｔ ａｌ．，（１９９５）Ｊ．Ａｍ．Ｃｈｅｍ．Ｓｏｃ．，１１７：８８５９及びＷａｌｋｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ａｎｇｒｅｗ．Ｃｈｅ．Ｉｎｔ．Ｅｄ．，３８：１７６３も参照されたい。一つの質量分光測定技術はタンデム質量分光測定（ＭＳ／ＭＳ）であり、液体クロマトグラフィーにおいて質量分光測定をタンデムに実施する。興味のあるリガンドを精製及び分離するために、この種のＭＳは、質量分光測定にリガンドを注入する前に生物系から標的−結合リガンドを分離及び精製する要求のために、ファージ−タイプのペプチド以外の標的−結合リガンドをスクリーニングするのに使用することが好ましい。様々な最近開発されたＭＳ技術が標的−結合リガンドの同定に利用可能である（Ｗｕｅｔ ａｌ．，（１９９７）ｉｎＣｈｅｍｉｓｔｒｙ ａｎｄ Ｂｉｏｌｏｇｙ，ｖｏｌ．１４（９）：６５３，Ｍａｒｓｈａｌｌ ｅｔ ａｌ．，（１９９８），Ｍａｓｓ ＳｐｅｃｔｒｏｍｅｔｒｙＲｅｖｉｅｗｓ １７：１，及びＮｅｌｓｏｎｅｔ ａｌ．，（１９９９）Ｊ．Ｍｏｌ，Ｒｅｃｏｇｎｉｔｉｏｎ，１２：７７を参照されたい）。

一つ又は複数のリガンドメンバー、特にペプチドリガンドのスクリーニング後に、アミノ酸配列を当業界で公知の標準技術により決定してよく、例えば、ペプチド配列決定機、ＭＳ／ＭＳ又はマニュアルを用いて選択されたペプチドの直接のアミノ酸配列決定又は上記ペプチドをコードするヌクレオチド配列を決定することによる。発明は、さらに、上記選択性標的化法により同定された、標的−結合リガンド、特に標的−結合ペプチドを含む。上記選択性標的化法により同定された標的−結合ペプチドは、配列番号：３−１７；配列番号：１８−２６；配列番号：２９−４９；配列番号：５０−６３；配列番号：６４−７７及び配列番号：７９−１０２のアミノ酸配列を有するペプチドを含む。

複数のリガンドを初期リガンドライブラリーから選択する場合、そしてライブラリーがペプチドライブラリーである場合、整列化させたときのリガンドのアミノ酸配列は保存された領域またはペプチドモチーフを呈する必然性はなく、本明細書では、選択されたペプチドの全てにおいて好ましいアミノ酸配列を示すアミノ酸コンセンサス配列として定義される。

特定の態様において、上記方法は、約１０^−７Ｍから約１０^−１０Ｍの間の標的への結合親和性を有するペプチドライブラリーからペプチドを選択することに関し、ライブラリー中のペプチドが抗−標的に結合するのを可能にさせるようにペプチドライブラリーを抗−標的に接触させ；抗−標的結合ペプチドから未結合のペプチドを分離し；分離した未結合のペプチドを標的に接触させるが、当該未結合のペプチドが標的と結合することを可能にして標的−結合ペプチド複合体を形成する条件下で行い；標的−結合ペプチド複合体を、標的に結合しないペプチドから分離し；そして標的−結合ペプチド複合体を上の結合ペプチドを同定するが、その際、ペプチドは約５０アミノ酸より短い長さであり、約１０：１から約５０：１の範囲の選択性を有する。好ましくは、標的−結合ペプチド複合体上で同定されたペプチドは２５アミノ酸より短く、約２０：１の範囲の選択性を有する。

標的−結合リガンドが同定されたら、リガンドを選択性標的化法の繰返しラウンドに暴露してよく、図１を参照されたい。標的−結合リガンドは多様化に供されてよい。多様化は化学多様性を含み、多数の変異導入技術を含んでよい。Ｓａｉｋｉｅｔ ａｌ．，（１９８８）Ｓｃｉｅｎｃｅ２３９：４８７；Ｚｏｌｌｅｒ ｅｔａｌ．，（１９８２）Ｎｕｃｌ．Ａｃｉｄｓ．Ｒｅｓ．１０：６４８７；及びＳｍｉｔｈ（１９８５）ＡｎｎＲｅｖ．Ｇｅｎｅｔｉｃｓ．１９：４２３を参照。結合したリガンドの正体を確認するために、標的−結合リガンドを配列決定してよく、そして次に、当該配列を基にしてオリゴヌクレオチドを作成してよいが、小さなバリエーションを含んでよい。ＰＣＲは、リガンドのヌクレオチドコーディング配列ないに小さな変化を起こさせるのに使用してよい。このＰＣＲ変異導入はコーディング配列内のあらゆる位置に変異をもたらすことができる。多様化は、同定されたリガンドの小さいサブセットの変異導入により生じさせてもよい。通常、多様化されたリガンドはヌクレオチドレベルにおいて標的−結合リガンドに対して少なくとも８０％、８５％、９０％、９５％、９７％又は９９％アミノ酸配列同一性を有することになる。多様化されたリガンドは本発明の選択性標的化方法の１又は複数のラウンドに暴露してよい。多様化されたリガンドは、それらが由来する他の同定された標的−結合リガンドを用いてスクリーニングしてよく、リガンドが最初にスクリーニングされた適切な応用においてアッセイしてよい。

標的に結合するリガンドのライブラリーをスクリーニングするための本発明の選択性標的化方法は、多くの応用に関して広い利用性を有する。一つの特定の応用において、本明細書に記載される選択性標的化方法は、苛酷な条件下で標的に結合するリガンドを同定するのに使用してよい。苛酷な条件は、限定ではないが、酸性ｐＨ、高温、及び界面活性剤への暴露を含んでよく、例えば、家庭の洗濯場の活性剤において見いだされるような条件である。この関係において、発明による一つの例示の応用は、洗浄の応用に有用な、リガンド、特にペプチドのスクリーニングと同定である。洗浄の応用とは、限定ではないが、洗浄剤組成物、汚れ除去組成物、及び織物処理組成物を含む。特定の汚れ標的は、胴体のしみ汚れ、ポルフィリン由来の汚れ、タンニン由来の汚れ、又カルテノイド色素由来の汚れ、アントシアニン色素由来の汚れ、しみに基づく汚れ、又はオイルに基づく汚れを含む。様々な洗浄組成物及び特定の界面活性剤の成分は、当業界においてよく知られており、本明細書においては、たいして詳細には繰返さない。上記組成物は、限定ではないが、以下の成分：界面活性剤、例えばアニオン性、非イオン性、カチオン性、両性、石鹸性、及びそれらの混合物；結合剤、例えば；リン酸結合剤、例えば３リン酸、アルミノ珪酸ナトリウム結合剤、例えば、ゼオライト；有機結合剤、例えばポリカルボキシル酸ポリマー；酵素、例えば、プロテアーゼ類、セルラーゼ類、リパーゼ類及びその他；酵素−安定剤；漂白剤；染料；マスキング剤；柔軟剤；及びその他を含んでよい。以下の文献、米国特許第３，９２９，６７８号；第４，７６０，０２５号；第４，８００，１９７号；第５，０１１，６８１号；及びＭｃＣｕｔｈｅｏｎ’ｓ Ｄｅｔｅｒｇｅｎｔｓ ａｎｄ Ｅｍｕｌｓｉｆｉｅｒｓ，Ｎｏｒｔｈ Ａｍｅｒｉｃａｎ Ｅｄｉｔｉｏｎ（１９８６）Ａｌｌｕｒｅｄ Ｐｕｂｌｉｓｈｉｎｇ Ｃｏを参照されたい。

別の特定の応用において、発明による選択性標的化方法は、治療上の介入のために有用なリガンドをスクリーニング及び同定するために使用してよい。この関係において、リガンドのライブラリーをスクリーニングすることにより、腫瘍−結合リガンドを同定してよい。腫瘍は、カルシノーマ、サルコーマ又はメラノーマであってよい。当業者は如何なる数の抗−標的も予見することができるが、一つの好ましい抗−標的は正常な細胞である。腫瘍−結合リガンドが同定されたなら、リガンドを使用して、腫瘍細胞の転移、腫瘍細胞の馴化及び／又は腫瘍細胞のインビボ成長を阻止してよい。

さらに別の特定の治療上の介入の応用においては、リガンドのライブラリーを発明に従いスクリーニングすることにより、サイトカイン、そして特にはＴＮＦ又はＶＥＧＦを同定してよい。サイトカイン結合リガンドは、サイトカインがその対応する受容体へ結合することを阻止してよい。この阻害は、サイトカインを不活性化して、様々な疾患状態を制御する下流のシグナルトランスダクションを阻害する。当業者は如何なる数の抗−標的も予見できるが、一つの好ましい抗−標的は血液である。別の好ましい抗−標的は対応する受容体又はアイソフォームである。

さらなる応用において、発明による選択性標的化方法は、個人的なケアの応用、例えばスキンケア又はヘアケアに有用なリガンド、特にペプチドを同定するために使用してよい。

別の応用においては、発明による選択性標的化方法は、細胞種特異的表面分子を同定するのに使用してよい。好ましい抗−標的は、一つ又は複数の異なる細胞種、異なる状態の細胞、又は表面分子を提示しない細胞を含む。

上記選択性標的化方法及び当該方法により同定されたリガンドは、広い応用において使用してよい。本明細書において前に議論された応用に加えて、特にペプチドリガンドに関しての他の非限定の応用は：１）抗体のエピトープをマッピングするための応用；２）重要な結合分子、例えば酵素及びホルモン受容体の新規なリガンドを提供する応用；３）農薬特性を有する有力な農芸用化合物を提供する応用；４）新規な薬剤リードを開発して現在のリードを開拓する応用；５）工業触媒を同定する応用；６）感度の高いインビボ及びインビトロの診断剤を同定する応用；７）金属及び他の共因子を結合させることにより酵素触媒の効率を増大させる応用；８）インビボにおいてプロテアーゼの作用を制御する応用；９）標的化された蛋白質の阻害特性を変化させるための応用；１０）標的化酵素を開発する使用；１１）遺伝子治療ベクターを特定の組織又は細胞種に選択的に送達する使用；及び１２）薬剤送達又は標的化活性における使用を含む。

従って、以下の実施例は、例示のために提供され、如何なる様式においても発明を限定することを意味しない。当業者は、日常の実験以上のものを使用せずに、本明細書に記載された特定の態様に対して多くの均等物を認識又は確かめることになる。

制限消化、ライゲーション、塩化カルシウムを使用したコンピテント細胞の調製、２０ｍｇ／ｍｌイソプロピル（ＩＰＴＧ）の調製、２０ｍｇ／ｍｌ５−ブロモ−４−クロロ−３−インドリル−β−Ｄ−ガラクトシド（Ｘ−ｇａｌ）の調製、及びリン酸緩衝塩溶液（ＰＢＳ）の調製は、当業界公知の方法に従い、そしてＳａｍｂｒｏｏｋｅｔ ａｌ．（１９８９）前記に見いだすことができる。ファージディスプレイライブラリー（環状７マー、直鎖７マー及び直鎖１２マー）はニューイングランドバイオラブズ（ＮＥＢ；ビバリー、ＭＡ）により供給された。制限エンドヌクレアーゼＥａｇＩ及びＡｃｃ５６１，１０ＸＮＥＢバッファー、Ｔ４ ＤＮＡライゲース、アルカリ子ウシ腸ホスファターゼ、Ｅ．ｃｏｌｉＥＲ２５３７宿主細胞、及びＭ１３ＫＥ ｇＩＩＩクローニングベクターはＮＥＢにより供給され、そして他に記述しない限りは製造者の指示に従い使用した。Ｔａｑポリメラーゼ、１０ＸＰＣＲバッファー、及びｄＮＴＰミックスは、ロッシュモリキュラーバイオケミカルズ（インディアナポリス、ＩＮ）により供給された。ＰＣＲは、Ｅ＆Ｋサイエンティフィックプロダクツ（キャンベル、ＣＡ）からのＨＹＢＲＩＤＯｍｎ−Ｅ温度循環器を用いて実施した。

キアゲンゲル抽出キット及びキアクイックＰＣＲ精製キットはキアゲン（ＱＩＡＧＥＮ）（バレンシア、ＣＡ）から得た。アンプリワックス（商標名）ＰＣＲジェムはパーキンエルマーから得た。フェノール／クロロホルム抽出は、５プライム３プライム社（ボウルダー、ＣＯ）からのフェーズロックゲル（商標名）Ｉ（ライト）を用いて実施した。非変性ポリアクリルアミドゲル（８％）及びＤ−１５ＤＮＡマーカーはノベックス（サンディエゴ、ＣＡ）から得た。
実施例１
腫瘍ネクローシス因子α（ＴＮＦ−α）に結合するファージ−ペプチドの高親和性ファージ−ペプチドクローン同定用ＰＣＲを用いた選択：
薄壁ＰＣＲ管を標的ヒト（ｈ）ＴＮＦ−α（バイオソースインターナショナル；カマリロ、ＣＡ）でコートしたが、ＰＢＳ中の０．５ｍｇ／ｍｌ精製ＴＮＦ−α １００μｌを４℃においてＰＣＲ管の中でインキュベートすることによりコートした。過剰の未結合のＴＮＦ−αを除去し、そして管を一晩４℃において、Ｔｒｉｓ緩衝塩溶液（ＴＢＳ）中の１００μｌのスーパーブロック（商標名）ブロッキングバッファー（ピアス：ロックフォード、ＩＬ）中でコートした。抗−標的（スーパーブロック（商標名）ブロッキングバッファー）は、１００μｌのスーパーブロック（商標名）で一晩４℃においてコートされた別のＰＣＲ管の中で調製した。ファージディスプレイされた７マーのランダムペプチドライブラリー（１０μｌの２ｘ１０^１３プラーク形成ユニット（ｐｆｕ）／ｍｌ）を５０μｌのＰＢＳ中で希釈して、抗−標的ＰＢＳ管の中で３０分間振盪しながら４℃においてインキュベートした。上清を別の抗−標的ＰＣＲ管に移して、この手続を３回繰返すことにより、抗−標的に結合するファージ−ディスプレイされたペプチドの数を大きく減少させた。

ファージ−ペプチドライブラリーを含む上清（抗−標的バインダーを含まない）を、ＴＮＦ−αでコートした標的ＰＣＲに移して、４時間４℃において振盪しながらインキュベートすることにより、ファージディスプレイされたペプチドが標的に結合することを可能にさせた。０．１％のツイーン−２０を含むＰＢＳ１５０μｌを用いて室温において管を５回洗浄することにより、未結合ファージを除去した。６０μｌの０．２Ｍグリシン（ｐＨ２．２）と共に６分間インキュベートし、次に９μｌの１Ｍ Ｔｒｉｓ−Ｃｌ（ｐＨ９．１）で中和することにより、低親和性バインダーを洗い流した。管を次に再び３回１５０μｌのＰＢＳで洗浄した。

ＴＮＦ−αに結合した残りのファージ−ペプチドに、５４μｌの溶解バッファーＡ（１０ｍＭＴｒｉｓ−Ｃｌ，ｐＨ８．４，０．１％ Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ １００）及びアンプリワックス（商標名）ＰＣＲジェム（パーキンエルマー、ノーウオーク、アメリカ合衆国）を加えた。管を９５℃において１５分間加熱して、次に冷やした。以下のＰＣＲ試薬：
１０ｍＭ ｄＮＴＰｓ２．５μｌ
５０μＭ ＣＭＭ１３−０１プライマー１０μｌ
５０μＭ ＣＭＭ１３−０２プライマー１０μｌ
１０ Ｘ ＰＣＲバッファー ７．５μｌ
Ｔａｑポリメラーゼ（５Ｕ／ｍｌ） １μｌ
を次に加えた。

ＰＣＲ増幅は、９４℃１５秒間の変性、５５℃２０秒間のアニーリング、及び７２℃３０秒間の伸長合成の２０サイクルを用いて実施した。プライマー（ギブコＢＲＬにより合成された）の配列は：
ＣＭＭ１３−０１ ５’ＣＣＴＣＧＡＡＡＧＣＡＡＧＣＴＧＡＴＡＡＣ ３’（配列番号：１）
ＣＭＭ１３−０２ ５’ＣＡＴＴＣＣＡＣＡＧＡＣＡＡＣＣＣＴＣＡＴＡＧ ３’（配列番号：２）
であった。

ＰＣＲ産物（２６７塩基対（ｂｐ））を８％ポリアクリルアミドゲル上で、単一ファージペプチドクローンからのＰＣＲ産物（陽性クローン）及び分子量マーカーと共に分析した（図２）。拡散するバンドとして出現した移動の遅い産物が約５００−７００ｂｐ付近に観察された。これは、ＰＣＲ反応中に鋳型（即ち、ファージ）が多すぎたためであり、そしてファージ濃度を低下させることによるか、又はＰＣＲサイクルの数を減らすことにより、緩和することができる（図３）。５００−７００ｂｐの拡散バンドの量を減らすため、この出発物質から次のＰＣＲ反応のためにＰＣＲ産物をおおまかに希釈することにより、サブクローン化の目的でより多くの産物を生成させた。所望の産物（２６７ｂｐ）が増幅されたら、それをＥａｇＩ及びＡｃｃ６５１制限エンドヌクレアーゼにより消化して、ランダムペプチドをコードするＤＮＡを含む４５ｂｐの断片を生成した。当該４５ｂｐ断片を次にＭ１３ＫＥベクター（ニューイングランドバイオラブズ；ビバリー、ＭＡ）中にＥａｇＩ及びＡｃｃ６５１制限部位において標準技術（ＳＡｍｂｒｏｏｋ，ｅｔａｌ．，（１９８９）前記）を用いてサブクローン化した。当該４５ｂｐ断片をＭ１３ＫＥベクターに連結した後、ライゲーション反応物で、化学的にコンピテントにしたＥＲ２５３７Ｅ．ｃｏｌｉ細胞を形質転換した。当該細胞は、標準プロトコルを用いて（Ｓａｍｂｒｏｏｋ，ｅｔａｌ．，（１９８９）前記）塩化カルシウムによりコンピテントにした。ニューイングランドバイオラブズのＭ１３ＤＮＡ調製用プロトコルから修飾したプロトコルを用いて、様々な形質転換体からＭ１３のＤＮＡを単離し、そして配列決定した。修飾は、管とは反対に、９６ウエルのプレートの使用を含む。対応するペプチドを表１に示す。

実施例２：
ＴＮＦ−αに結合するファージ−ペプチドの結合親和性及び選択性の特性決定：
ファージクローンＡ１、アミノ酸配列：ＲＹＷＱＤＩＰ；表１、ＴＮＦ−αに対する（配列番号：３）の結合及び解離を、ＩＡｓｙｓＡｕｔｏＰｌｕｓ Ｂｉｏｓｅｎｓｏｒを用いて、次にＬａｂｓｙｓｔｅｍｓＡｆｆｉｎｉｔｙ Ｓｅｎｓｏｒｓ ＩＡｓｙｓ Ｐｒｏｔｏｃｏｌ ２．４「蛋白質層への固定化：アビジンにカップリングしたチオール」（ＴｈｅｒｍｏＢｉｏＡｎａｌｙｓｉｓ Ｃｏｒｐ．フランクリン、ＭＡ）を用いて監視した。２つのキュベットを最初にアビジンでコートして、一方（対照）を次にビオチンでブロックした。これを次にリジン基で活性化した。１５μｌのアリコートの１ｍｇ／ｍｌ（ｈ）ＴＮＦ−α溶液を各キュベットに加えた。表面への蛋白質の結合は対照キュベットにおいて観察されなかったが、（ｈ）ＴＮＦ−αは明らかに未ブロックアビジンコートキュベットに固定化された（示さず）。この複合体は安定であり、そして１０分にわたって解離しなかった。ブロッキング及び洗浄の後に、ファージクローＡ１，ＲＹＷＱＤＩＰ（配列番号：３）を加えて、最終力価を５ｘ１０^１１ｐｆｕ／ｍｌとした。図４に示すとおり、サンプルキュベットにおいてはファージのＴＮＦ−αへの有意な結合があるが、対照キュベットへ結合したファージは極めてわずかであった。

ＴＮＦ−αからのファージの解離は極めて遅く、ｋ_ｏｆｆ＜１０^−４秒^−１（１０ｍＭＨＥＰＥＳ／０．０５％ツイーン）と見積もられる解離定数であった。１０Ｘバッファー濃度による洗浄により（７０分時間点において）、除去されたのはファージのほんの小さな一部のみであった。１０ｍＭＨＣｌによる追加の洗浄は、標的からファージペプチドを完全に除去しそこなった。ファージ−ディスプレイされたペプチド配列ＲＹＷＱＤＩＰ（配列番号：３）の結合は特異的であるが、挿入物を欠く野生型のファージが固定化ＴＮＦに結合しなかったからである。
実施例３：
ＩＬ−６及びＩＬ−８に結合するファージ−ペプチドの選択：
実施例１に記載されたのと同じ方法を用いて、ヒトＩＬ−６とＩＬ−８標的として用い、そしてスーパーブロック（商標名）ブロッキングバッファーを抗−標的として用いた。ＰＣＲ管を組換えヒトＩＬ−６（０．１ｍｇ／ｍｌ）及びＩＬ−８（０．２５ｍｇ／ｍｌ）（バイオソースインターナショナル）でコートした。選択は、標的からのファージの酸溶出においてさえ、予測されたサイズ（２６７ｂｐ）のＰＣＲバンドを生じた（図２Ｂ）。
実施例４
ＶＥＧＦに結合するファージ−ペプチドの選択：
滅菌マイクロタイタープレート（５ウエル／サンプル）を２００μｌの１％ＰＢＳ／ＢＳＡ（ＰＢＳ ＋１％ウシ血清アルブミン）でコートし、次に、２００μｌの０．２５％ ＰＢＳＴで洗浄した。ウエルを満たしたままにした。１００μｌの新鮮な全血を１０μｌのファージライブラリーと混合して、最初にコートされた細胞を添加し、そして３０分間室温において（ＲＴ）インキュベートすることにより、ファージペプチドのライブラリーを、抗−標的としてのヒト全血に対して排除した（ｄｅｓｅｌｅｃｔｅｄ）。３０分後、上記溶液を吸引し、次にコートされたウエルに送達した（ｄｅｌｉｖｅｒｅｄ）。この手法を４回繰返すことにより、抗−標的非結合ファージのライブラリーを生じさせた。標的に関しては、５ｍｇの２００μｍポリスチレンビーズをヒトＶＥＧＦでコートしたが、１００μｌの１００μｇ／ｍｌ組換えヒトＶＥＧＦ（バイオソースインターナショナル；カマリロ、ＣＡ）と共に一晩４℃においてゆるやかに振盪しながらインキュベートすることによった。ＰＢＳＴ（１ ｘＰＢＳ中の０．２５％ツイーン−２０）により３回洗浄することにより、過剰の未結合のＶＥＧＦを除去した。次に、ビーズを２％ツイーン−２０ａ ｘ ＰＢＳＴと共に２時間室温（ＲＴ）においてブロックした。ファージ−ディスプレイされた環状の７マーのランダムペプチドライブラリーを使用した。選択手法は本質的に実施例１に記載されたのと同じであった。最初のラウンドの選択の後に、標的−結合リジンからのＰＣＲ断片を精製し、ＥａｇＩ及びＡｃｃ６５１により消化し、そして上記制限酵素を加熱変性した。断片を直接Ｍ１３ＫＥ切断ベクターへＴａｋａｒａライゲーションキット（プロメガコープ）を用いてライゲーションした。ライゲーションミックスで形質転換し、そして標準手法（Ｓａｍｂｒｏｏｋｅｔ ａｌ．（１９８９）前記）に従い増幅した。第２ラウンドの選択を実施することにより、ＶＥＧＦに結合するファージ−ペプチドをさらに富裕化した。対応するペプチド配列を以下の表に示す：

本発明の選択性標的化方法を慣用のバイオパンニング方法と比較するため、慣用の酸−溶出方法を用いた平行実験を実施した。Ｓｍｉｔｈａｎｄ Ｓｃｏｔｔ（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：３８６により記載された方法による３ラウンドのバイオパンニングは、表３に要約された配列プロフィールを生じた。これらの配列は本発明による選択性標的化方法により同定された配列とオーバーラップしない（表２）。

実施例５：
襟のしみに結合するファージ−ペプチドの選択：
コットン又は標的（襟のしみ）を含む６５％ポリエステル：３５％コットン及び抗―標的ＥＭＰＡ２１３ポリエステルコットン織物（試験織物、フリーホールド、ＮＪ）上のしみ化シャツの襟を、ダイスを用いて直径７／３２”に切り、ＮＡＥＦパンチプレスに適合させる排除を伴った（ＭＳインスツルメントカンパニー、ストニークリーク、ＮＹ）。９６ウエルの平底マイクロタイタープレート（コスター、カタログ番号３５９８）をスーパーブロック（商標名）ブロッキングバッファーで一晩コートして、次に２００−２５０μｌのＴＢＳＴ（０．１％ツイーン−２０）でＥＬ４０３オートプレート洗浄機（バイオテックインスツルメンツ、ウイノスキー、ＶＴ）を用いて洗浄した。織物片をウエルの中にいれ、Ｍ１３繊維状ファージ上にディスプレイされたファージ−ペプチド１２マーライブラリーの１０μｌストック溶液を、１００μｌの界面活性剤（３．４ｇ／Ｌヨーロピアン界面活性剤）に、抗−標的としてポリエステル−コットンを含むウエル中で加えた。２０分間のインキュベーション後に、未結合ファージ（抗−標的非バインダー）を含む上清を、ポリエステル−コットン織物を含む第２のウエルに移した。これをもう一度繰返した。上清を次に、しみ化シャツの襟の織物を含むウエルに移し、そして汚れと１０−６０分間インキュベーションすることにより、残りのファージペプチド集団を「汚れバインダー」に関して選択した。０．１−２％のツイーン−２０又は３．４ｇ／Ｌの界面活性剤の何れかによる一連の洗浄工程に汚れを供した。洗浄工程は所望のストリンジェンシーに対して操作することができる。汚れを含む最初のウエルの中での初期の洗浄後に、あらゆる残りの結合ファージを含む汚された織物片を、第２洗浄工程のために次のウエルに移した。

結合ファージを含む汚された織物の一部を、６０μｌの溶解バッファーＢ（１０ｍＭＴｒｉｓ−Ｃｌ，ｐＨ８．４，１％ Ｔｒｉｔｏｎ−Ｘ１００；１０ｍＭＥＤＴＡ）及びアンプリワックス（商標名）（パーキンエルマー、ノーウオーク、アメリカ合衆国）を含むＰＣＲ管に移した。管を次に９５℃において２０分間加熱して、次に、冷やした。標的−結合ファージのＰＣＲ増幅は、マイナーな修飾を伴って実施例１に記載された通りに実施した。図３は、２０サイクル未満のＰＣＲをホモ二重鎖ＤＮＡの単一バンドの増幅が要求することを示す（レーン４）。長いサイクル時間（レーン３）はヘテロ二重鎖ＤＮＡ形成の実質上の画分を生じるのに対し、短いサイクル時間（レーン５）は測定可能なＰＣＲ産物を生じない。正確なサイズのＰＣＲ産物を８％ポリアクリルアミドゲル上で精製して、Ｍ１３ＫＥにサブクローン化し戻して、実施例１に記載されたとおりに配列決定した。界面活性剤中で襟のしみに結合してポリエステルコットン織物に結合しないファージペプチドクローンに相当するアミノ酸配列を表４に要約する。

実施例６：
織物上の標的の襟のしみへの放射線標識ペプチドの選択性結合：
標的（襟のしみ）及び抗―標的ＥＭＰＡ２１３ポリエステルコットン織物（試験織物、フリーホールド、ＮＪ）を含むしみ化シャツの襟（コットン又は６５％ポリエステル：３５％コットン）を、直径１／２”に切り、コスター２４ウエルプレートに入れた。本発明により同定されたしみ標的化ペプチドＳＩＳＳＴＰＲＳＹＨＷＴ（配列番号：２０）を^１４ＣグリシンでＮ末端標識した。１０μｌの［１−^１４Ｃ−Ｇ］ＳＩＳＳＴＰＲＳＹＨＷＴ（シンペップ、ダブリン、ＣＡ）（配列番号：１１４）４００μＭ溶液を４ｍｌの０．００２％ツイーン−２０含有５０ｍＭＣＡＰＳバッファー、ｐＨ１０．４に加えた。放射性標識ペプチドの９５０μＬアリコートを各ウエルに加え、そしてサンプル回転振盪機上で３０℃において３０分間振盪した。サンプルを取り出し、そして４ｍＬのバッファーで洗浄して、次に、４ｍＬのミリＱ水で２０分間洗浄した。サンプルをワットマンフィルターペーパー上で空気乾燥、そしてヒューレットパッカードスキャナー（パロアルト、ＣＡ）上でデジタルスキャンした。放射性標識したスワッチを次にリン蛍光体スクリーン（モリキュラーダイナミックス；サニーベール、ＣＡ）に３０時間−７０℃において暴露した。結果のリンイメージをモリキュラーダイナミックスストーム（登録商標）を用いてスキャンした。図５は、汚された織物及び対照の織物の対応するリンイメージと共に、標的（汚れ）及び抗−標的の可視イメージを示す。リンイメージの相対強度をイメージクアント（ＩｍａｇｅＱｕａｎｔ）（登録商標）イメージ分析ソフトウエア（モリキュラーダイナミックス；サニーベール、ＣＡ）を用いて定量し、そして織物の結合に対する汚れの結合の比は＞１５：１であることを示す。
実施例７：
汚れ標的化ペプチドの放出に関する遅いｋ _ｏｆｆ 速度定数の証明：
標的（襟のしみ）及び抗―標的を対照抗−標的（同じシャツからの汚されていないポリエステル：コットン）と共に含むしみ化シャツの襟（６５％ポリエステル：３５％コットン）を、直径７／３２”に切り、９６ウエルマイクロタイタープレート（ミリポアコーポ、０．２２μＭデュラポア膜；カタログ番号ＭＡＧＶ Ｎ２２５０）に入れた。^１４Ｃグリシンで末端標識された、しみ標的化ペプチドＳＩＳＳＴＰＲＳＹＨＷＴ（配列番号：２０）及びペプチド対照ＮＦＦＰＴＷＩＬＰＥＨＴ（配列番号：７８）の４００μＭストック溶液の連続希釈を、１ｇ／Ｌのタイド界面活性剤溶液（プロクターアンドギャンブル、シンシナチ、ＯＨ）に加え、そして６０μＬのアリコートをマイクロタイタープレートのウエルに入れた。プレートを振盪しながら３０分間３２℃においてインキュベートし、次に過剰の未結合の放射線標識ペプチド（バキュームマイフォールド；ミリポアコープ、カタログ番号ＭＡＶＭ０９６ ＯＲ）の吸引濾過を行った。サンプルは３回２００μＬの蒸留水で洗浄し、洗浄と洗浄の間は振盪し、約４０分かけた。サンプルに結合した残りの放射活性を液体シンチレーションカウンティングによりウオーラックマイクロベータカウンター内で定量した。図６Ａは、全放射線標識の５０％より多くが、４０分間の洗浄後でさえ、汚れ標的化ペプチドに関して汚された織物に結合したままである。これは、しみ標的化ペプチドの放出に関する速度定数ｋ_ｏｆｆ≦２ ｘ １０^−４秒^−１に相当する。対照的に、対照ペプチドは同じアッセイにおいて親和性又は選択性を何も示さない、図６Ｂ。
実施例８：
発明の選択性標的化方法に比較した酸溶出に関するペプチドの選択性と親和性：
コットン上の襟のしみに結合するファージペプチド配列ＨＴＦＱＨＱＷＴＨＱＴＲ（配列番号：２７）は、Ｓｃｏｔｔａｎｄ Ｓｍｉｔｈ（１９９０）Ｓｃｉｅｎｃｅ２４９：３８６に記載された方法を用いて各ラウンドの後にファージペプチドを酸溶出した以外は、実施例５に記載されたとおりに、バイオパンニング５ラウンド後に同定した。選択性（汚れ対コットン結合）及び親和性（ｋ_ｏｆｆ）は、以下のとおりに襟のしみに結合する対応のペプチドに関して測定した：ＮｉキレートしたＧＧＨＴＦＱＨＱＷＴＨＱＴＲ（配列番号：２８）の１ｍＭ溶液をコットン上の襟のしみ又はコットンのみと９０分間室温において撹拌しながらマイクロタイタープレート中でインキュベートした。対照ペプチドキレートＮｉＧＧＨも同じ条件下で試験した。ウエルからインキュベーション溶液をピペットオフした後に、織物の布きれを２００μＬの水で撹拌しながら３分間撹拌した。２００μＬのｏ−フェニレンジアミン（ＯＰＤ）及び５０μＬの１００ｍＭ Ｈ_２Ｏ_２を加え、そして４２０ｎｍにおいて酸化されたＯＰＤの吸収を測定することにより、残りの結合ペプチドをアッセイした。表５及び図７において要約されるとおり、織物に対する汚れの結合の比は、≦３：１より低いか又は同等であり、そして親和性はｋ_ｏｆｆ＝１ ｘ １０^−３秒^−１と測定された。これらのデータは、特異的且つ選択的に強固に結合するペプチドは、本発明による選択性標的化方法を用いて同定されるのが好ましいことを証明する。

実施例９：
界面活性剤マトリックス内のファージディスプレイされたライブラリーの安定性：
ファージペプチドライブラリーの安定性に対する家庭内の洗濯場の界面活性剤の作用を試験するため、１０^１３ｐｆｕ／ｍＬを含むＭ１３繊維状ファージ（ニューイングランドバイオラブズ、ビバリーＭＡ，アメリカ合衆国）上にディスプレイされたペプチド１２マーのライブラリーのストック溶液を、ａ）１００ｍＭＴｒｉｓ ＨＣｌ，ｐＨ７．５，０．１％ツイーン−２０（ＴＢＳＴ対照）、ｂ）ガロンあたり３グラム（ｇｐｇ）の硬化剤を含む０．７ｇ／ＬのＡｒｉｅｌＦｕｔｕｒ（プロクターアンドギャンブル。シンシナチ、ＯＨ）、及びｃ）１５ｇｐｇの硬化剤を含む３．４ｇ／ＬのＡｒｉｅｌＦｕｔｕｒの中で、１０^１２ｐｆｕ／ｍＬに希釈した。ＴＢＳ中のスーパーブロッキングバッファー（ピアス、カタログ番号３７５３５）でブロックされた９６ウエル平底マイクロタイタープレート（コスター、カタログ番号３５９８）のウエルに、アリコート（１００μＬ）を加えた。サンプルを２５℃においてゆるやかに振盪しながら９０分間インキュベートした。１０μＬのアリコートを取り出して、標準手法（Ｋａｙ ｅｔ ａｌ．，（１９９６）前記）に従ってファージ力価測定するためにルリアブロスに連続希釈した。ＴＢＳＴ中の対照ファージライブラリーに比して、界面活性剤溶液においてはファージ力価の損失は観察されなかった。
実施例１０：
ポリウレタンに結合してコットン、ポリエステル、又はポリエステル−コットン織物には結合しないファージ−ペプチドの選択：
１．５ｍＬのマイクロ遠心分離管を一晩ブロッキングバッファー−ＰＢＳによりブロックし、１ｍＬの３．４ｇ／Ｌ界面活性剤により洗浄し、そして水分を切った。５００μＬの３．４ｇ／Ｌ界面活性剤を４つの管に加え、一片のコットン、ポリコットン、及びポリエステル織物をそれぞれ共にした。ファージペプチドライブラリーは以下の通りであった：
管１ １０μＬのＰｈ．Ｄ．−Ｃ７Ｃライブラリー
管２ １０μＬのＰｈ．Ｄ．−１２ライブラリー
管３ １０μＬの野生型ファージ対照
管４ ファージ対照なし。

管を室温において２０分間１０００ｒｐｍにてエッペンドルフサーモミクサー中でインキュベートし、そして織物片を取り出した。この取り出し工程は全部で３回繰返し、次に、きれいなピペットチップで３０分間搾ること（ｓｑｕｅｅｚｉｎｇ）により湿潤させたポリウレタンプラグと上記ファージライブラリーをインキュベーションした。

バキュームラインに接続したきれいなピペットチップを用いて上清をプラグから吸引し、そして１ｍＬの３．４ｇ／Ｌ界面活性剤溶液を管に加えた。きれいな接種用ループを用いて搾ることによりプラグを再度湿潤させ、そして管をエッペンドルフサーモミクサー中に入れて全部で１０回洗浄した。プラグを１００ｍＬディスポーザブルフィルターシステム（コーニング）に移し、そして洗浄溶液をフィルターシステムに送達することにより、３ｘ４０ｍＬＰＢＳＴ（０．２５％ ｖ／ｖツイーン−２０）洗浄を実施した。プラグは、きれいなピペットチップを用いて搾ることにより再度湿潤させ、ＰＢＳＴと共に瞬インキュベートし、次に吸引により乾燥させた。上記フィルターシステムを真空下にしている間、洗浄溶液を直接プラグにピペッティングすることにより、１０回の１ｍＬのＰＢＳによる洗浄を実施した。

プラグをきれいな０．５ｍＬマイクロ遠心分離管に移した。１００μＬの溶解バッファー（０．１％Ｔｒｉｔｏｎ Ｘ−１００ｍ１０ｍＭ Ｔｒｉｓ ｐＨ８．４）を加え、そして管を９５℃において２０分間インキュベートすることにより、ファージを溶解した。溶解したファージは同じ管において以下のとおりにＰＣＲを行った：
５０μＬ ＨｏｔＳｔａｒＴａｑ（登録商標）マスターミックス（キアゲン）
２５μＬ 溶解バッファー
５μＬ ＢＳＡ（１０μｇ／μＬ）
１．２５μpＬ ＣＭＭ１３−０１プライマー（５０μＭ）
１．２５μＬ ＣＭＭ１３−０２プライマー（５０μＭ）
１７．５μＬ Ｈ_２Ｏ
ＰＣＲ増幅は、９５℃において１５秒間の変性、５８℃において３０秒間のアニーリング、そして７２℃において３０秒間の伸長合成を３０サイクル、そして次に７２℃において５分間を１サイクル使用することにより、実施した。ＰＣＲ産物は、製造者の指示に従い、ゼロブラントクローニングにより、ＴＯＰＯ（登録商標）−１０ベクター（インビトロジェン、サンディエゴ、ＣＡ）へクローン化した。クローンは標準配列決定法を用いて配列決定し、表６に要約した。

ペプチド配列を合成して、当該ペプチドがポリウレタン酸化に対して防御する能力を測定した。
実施例１１
ステンレス鋼又はガラス上にて標的のベークドオンされた卵のしみに対して選択されたペプチドの選択性結合：
卵のしみは、新鮮な卵からの黄身を使用して調製した。黄身を冷たい水で洗って、次にストレーナーを通してビーカーに押し出した。ビーカーを１４０°Ｆ水浴に入れて、卵の黄身を３０分間一定の撹拌を伴って調理した。３０分後に、ビーカーを氷の浴槽に入れて、一定撹拌を伴って黄身を室温まで冷やした。＃３１６ステンレス鋼フォイルディスクを、ダイスを用いて７／３２”の直径に切って、ＮＡＥＦパンチプレスに適合させる排除を伴った（ＭＳインスツルメントカンパニー、ストニークリーク、ＮＹ）。これらは、標的、ベークドオンされた卵のしみ、及び抗−標的、未だしみ化していないディスクの両方の基質として使用した。使用の前に、当該ディスクをマイルドな界面活性剤の中で洗浄し、そして脱イオン水中で徹底的に洗い流した。

卵のしみ化３１６ステンレス鋼ディスク及び卵のしみ化ガラスビーズをコスター９６ウエル平底プレートに入れた。各ペプチドライブラリーに関して、３つのきれいなステンレス鋼（ＳＳ）ディスク又はガラスビーズ（抗−標的）を隣のウエルに入れた。きれいなディスク又はビーズを含む最初のウエル（Ａ）には、１５０μＬの界面活性剤及び１０μＬのファージライブラリー−Ｃ７Ｃ、直鎖７マー、又は野生型ファージを加えた。当該サンプルを室温において２０分間ゆるやかな振盪と共にインキュベートし、そして未結合ファージを含む上清を次にウエルに移し、そして上記プロセスを全部で３回繰返した。上清を次に卵のしみ化クーポン又はビーズに移し、そして３０分間ゆるやかに混合しながらインキュベートした。当該サンプルを次に新たなウエルに移して、以下のとおり全部で３８回洗浄した：２００μＬ界面活性剤溶液、３．５ｇ／ｌの粉末のオートマチック皿洗い用界面活性剤中で３ｘ、２５０μＬのＰＢＳＴ中で３０ｘ、そして２００μＬのＰＢＳ中で５ｘ。

洗浄した皿又はガラスビーズを０．５ｍＬのＰＣＲ管に移した。ＰＣＲ反応は、２００μＬの反応混合物を用いてキアゲンホットスポット（登録商標）キット及び５０μＬのミネラルオイルを用いて、直接に卵のしみ化ディスク又はビーズ上で稼働させた。ＰＣＲ増幅は、反応開始のための９５℃において１５分間を１サイクル、次に、変性の９４℃３０分間、アニーリングの５８℃３０秒間、そして伸長合成の７２℃３０秒間を３０サイクル行い、そしてエロンゲーションの７２℃１０分間を１サイクルで終わらせた。２７８ｂｐの産物が、分子量マーカーと共に２％アガロースゲル上で分析された。抗−標的に関するステンレス鋼に関する図８に示すとおり、ＰＣＲ産物は直鎖７マーライブラリーに関して可視化され、そして野生型（ＷＴ）ファージ対照に関しては可視シグナルはなかった。第２のＰＣＲ増幅を実施して、ＰＣＲ産物をＴＯＰＯ（登録商標）ＴＡベクター（インビトロジェン）にクローン化して、表７に要約されたとおりに配列決定した。

上記配列をズブチリシンプロテアーゼ遺伝子にクローン化して、卵のしみに関する親和性を蛋白質分解アッセイにおいて測定した。
実施例１２
セラミック上の標的の茶の汚れに対する選択されたペプチドの特異的且つ選択的結合：
実施例１に記載された方法を用いて、オートマチック皿洗い用界面活性剤の存在下でセラミック上のお茶に結合するペプチドを２ラウンドの選択性標的化の後に同定した。標的結合ペプチド配列を表８に要約する。

実施例１３
ヒトの皮膚を標的化するが毛髪を標的化しないように選択されたペプチドのスクリーニング：
濃い（ｄａｒｋ）ヒトの毛髪３インチ片２つ（インターナショナルヘアインポーターアンドプロダクツ、ホワイトプレインズ、ＮＹ）を、ＤＩ水中の２％ニュートロジーナ（登録商標）ボディーウオッシュ（ニュートロジーナコーポ）溶液１０ｍｌを含む、ＢＳＡブロックされた５０ｍｌのコニカル管に入れた。１０μＬの環状７マー又は直鎖１２マーペプチドライブラリー（１０^１０ｐｆｕ／ｍｌ）、又は野生型ファージ（１０^９ｐｆｕ／ｍｌ）を加え、そしてサンプルを１５分間室温において回転撹拌しながら（３０ｒｐｍ）混合した。未結合の上清を、さらに２つの濃い毛髪の３インチ片を含む新たな管に移し、そして室温において１５分間回転撹拌しながらインキュベートした。この第２の毛髪のインキュベーションの後に、５００μｌの上記溶液を、０．９ｍＬ組織培養培地（ＭａｔＴｅｋＣｏｒｐ）を含む６ウエルの培養プレート中のヒト皮膚組織（ＥｐｉＤｅｒｍ（登録商標），ＭａｔＴｅｋＣｏｒｐ．アシュランド、ＭＡ）の表面上に３０分間室温においてゆるやかに撹拌しながら移した。皮膚組織を取り出して、ブロックされたコニカル管の中で、５０ｍｌｓの２％ボディーウオッシュ中で２回各５分間洗浄し、そして５０ｍｌｓのＰＢＳで３回各５分間洗浄した。最後のＰＢＳ洗浄後に、皮膚組織を−２０℃に凍結して、次に標的結合リガンドファージのＰＣＲを行った。
実施例１４
ヒトの毛髪を標的化するが皮膚を標的化しないように選択されたペプチドのスクリーニング：
予め平衡化した皮膚組織を新しい０．９ｍＬの組織培養培地を含む６ウエルの培養プレートに入れ、そして１０μＬの環状７マー又は直鎖１２マーペプチドライブラリー（１０^１０ｐｆｕ／ｍｌ）、又は野生型ファージ（１０^９ｐｆｕ／ｍｌ）を含む、３００μｌの２％ニュートロジーナ（登録商標）ボディーウオッシュ溶液を皮膚表面に加えた。サンプルを１５分間室温において回転撹拌しながら混合した。未結合の上清を、さらに皮膚組織を含む新たなウエルに移し、そして上記手法を繰返した。インキュベーション溶液を、２％ボディーウオッシュ１０ｍｌを含む５０ｍｌ管内の、９つの３インチの濃い毛髪（インターナショナルヘアインポーターアンドプロダクツ、ホワイトプレインズ、ＮＹ）片に、３０分間ゆるやかに撹拌しながら（３０ｒｐｍ）室温において移した。毛髪サンプルを次に１Ｘ ５０ｍｌｓ，２ Ｘ ５０ｍｌｓ，又は４ Ｘ５０ｍｌｓの２％ボディーウオッシュで洗浄した；ＰＢＳの洗浄サイクルを続けた（１ Ｘ ２５ｍｌｓ５分間、１ Ｘ ２５ｍｌｓ２分間、２ Ｘ ５０ｍｌｓ各５分間、全部で１５０ｍｌｓ）。最後のＰＢＳ洗浄後に、結合したファージペプチドを含む毛髪サンプルを−２０℃に保存した。

標的−結合ファージのＰＣＲ増幅は実施例１に記載されたとおりに実施したが、マイナーな修飾を伴った。ＰＣＲ反応物は５０μｇのＢＳＡを含むことにより、毛髪又は皮膚によりＰＣＲ反応の阻害を予防した。
実施例１５
ヒトの毛髪を標的化するが皮膚を標的化しないペプチド又はヒトの皮膚を標的化するが毛髪を標的化しないペプチドの選択性結合に関するＥＬＩＳＡアッセイ：
実施例１３及び１４において同定されたペプチド配列並びにランダムな対照ペプチドは、配列ＧＧＧＫ（ビオチン）でＣ末端標識した。配列ＬＥＳＴＰＫＭＫ（配列番号：１１５）はコンセンサス配列ＬＥＳＴを含み、そして毛髪上で単離された。ＦＴＱＳＬＰＲ（配列番号：１１６）はコンセンサス配列ＴＱＳＬを含み、そして皮膚上で単離された。ＹＧＧＦＭＴＳＥ（配列番号：１１７）は対照ペプチドである。

濃いブラウンの毛髪（３”の長さ、各４）を２％ボディーウオッシュ及び予め平衡化したヒト皮膚組織で湿潤し、２４ウエルプレートのウエルに入れた。２％ニュートロジーナボディー中のビオチン化ペプチドの２００μＭ溶液１ｍｌを毛髪サンプル及び皮膚サンプルに加え、そしてゆるやかに撹拌しながら室温において３０分間インキュベートした。当該溶液を次にピペットオフして、毛髪サンプル及び皮膚サンプルをきれいな毛抜きを用いて５０ｍｌコニカル管に移し、５０ｍｌの２％ボディーウオッシュで１回洗浄し、水５０ｍｌで２回洗浄し、そして５０ｍｌのＰＢＳで１回洗浄した；各洗浄工程は５分かけて、回転シェーカー上で２０ｒｐｍにて実施した。毛髪サンプル及び皮膚サンプルは次にきれいな毛抜きを用いて２４ウエルのプレートに移したが、その際、１ｍｌのストレプトアビジン配合ホースラディッシュパーオキシダーゼ（ＰＢＳ中で１／１０００に希釈）を１時間室温においてゆるやかに振盪しながら加えた。５０ｍＬコニカル管の中で、５０ｍｌのＰＢＳで２回洗浄することにより（５分間、各２０ｒｐｍ）、過剰なストレプトアビジンＨＲＰを除去した。毛髪及び皮膚のサンプルを新たなウエルに移し、そして１ｍｌのＨ_２Ｏ_２／ＯＰＤ溶液を加え、そして発色するまで室温に放置した。図９は、対照ペプチドに比較して、ペプチド結合が各々の標的に関して選択性であることを示す。

Claims (1)

1. 工程：
   （ａ）リガンドライブラリーを抗−標的に接触させることによりリガンドが抗−標的に結合することを可能にし；
   （ｂ）未結合のリガンドを分離し；
   （ｃ）未結合のリガンドを選択された標的に接触させることにより未結合のリガンドが標的に結合することを可能にして標的−結合リガンド複合体を形成させ；
   （ｄ）標的−結合リガンド複合体を、標的に結合しないリガンドから分離し；そして
   （ｅ）標的−結合リガンド複合体上の標的−結合リガンドを同定すること
   を含む、リガンドライブラリーをスクリーニングする方法。

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