JP2002535621A - 病気または罹病性の特徴を検出するための免疫学的検定法 - Google Patents
病気または罹病性の特徴を検出するための免疫学的検定法Info
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Abstract
Description
伝医学の分野、特に腫瘍学の分野にある。より詳細には、本発明は、標的とされ
る全長タンパク質の細胞レベルを検出する免疫学的検定法に関し、標的とされる
全長タンパク質の異常に低いレベルまたはそのような標的とされる全長タンパク
質の不存在は、被験者の遺伝子における突然変異を示す。関心のある遺伝子突然
変異は、病気または罹病性、例えば癌または癌になる素因に関するものである。
に医学的に非常に有用である。すなわち、人が病気または罹病性と関係する生殖
細胞系または後天性突然変異を有するか否かを知ることは重要である。
伝子中に生殖細胞系突然変異を有する結腸癌患者を手術前に同定することにより
、全結腸切除または部分的結腸切除を行うべきか否かの決定が外科医に導かれる
。患者が生殖細胞系突然変異を有する場合、第二の一次結腸癌が生ずる可能性は
非常に高い(おそらく70 %)。この場合、通常は全結腸切除が初期の手術によ
る治療として推奨される。手術の目的は、すでに存在する結腸癌を治療し、新し
い悪性腫瘍の発生を防ぐことにある。癌患者における生殖細胞系突然変異の存在
により、癌の手術による治療において違いが生じるだけでなく、結腸切除後のア
ジュバント化学療法の必要性において違いが生ずる。
ためのより有効なアプローチおよびそのような患者が発生させる危険のある他の
癌のタイプ(例えば結腸癌を除く)の早期の検出も可能となる。言いかえれば、
HNPCC に冒された結腸癌患者を同定するテストからの情報は、同じく生命を脅か
す結腸外の癌について患者を二次臨床スクリーニングするきっかけとなる。
において生殖細胞系突然変異キャリアを検出するためのテストが容易になる。そ
のようなテストにより、より有効な癌予防方法および家族構成員において検出さ
れる癌のより良い臨床治療技術が生ずる。したがって、本発明により提供される
情報はまた、生殖細胞系突然変異の発見により個人は結腸癌および他の癌になる
高い危険性にあると推定されるので、医師が患者の家族の他の構成員のスクリー
ニングを推奨することにおいて有用である。
罹病性に関する遺伝性の特徴を同定するための現在の分子に基づくアッセイの実
施に必要とされる大量の労力および費用である。本発明は、そのような遺伝性の
特徴を検出するための、より実行可能な方法である、免疫学的検定法を提供する
。本発明のアッセイは、相対的に簡単であり、素早く(24 時間の所要時間)、
高処理量で費用がかからない。本発明のアッセイにより、そのような遺伝性の病
気になる危険性のある全個体群のスクリーニングが可能となる。また、本発明の
アッセイにより、癌のような病気を発生する前に、病気に関連する遺伝性の特徴
のキャリアを同定することができる。
の野生型の対立遺伝子はただ一つの野生型の対立遺伝子が存在する場合に生ずる
よりも二倍量の全長野生型タンパク質を発現するという仮定に基づく。本発明に
よれば、免疫学的検定法を使用して、被験者の遺伝子により発現される全長タン
パク質の量の正常からの減少を測定する。対照的に、ミスマッチ修復(MMR) 遺伝
子のような、遺伝子における突然変異を、高価で、時間がかかり、限られた学問
的および商業的参考実験所でのみ提供されるDNA 配列分析および/またはインビ
トロにおける翻訳型アッセイ[Giardiello, F.M., 「遺伝性結腸癌における遺伝
子テスト」JAMA, 278: 1278-1281(1997)] により一般的に検出する。
スクリーニングに主に使用される典型的な免疫学的検定法が開示される。遺伝性
CRC またはその素因をスクリーニングするそのような典型的な免疫学的検定法は
、(1)家族性腺腫様ポリポーシス(FAP) に関連する突然変異である、腺腫様ポ
リポーシス遺伝子(APC) の突然変異、または(2)遺伝性非ポリポーシス結腸癌
(HNPCC) に関連する突然変異である、ミスマッチ修復(MMR) 遺伝子、特にMLH1
、MSH2 、PMS1 、PMS2 、およびMSH6 の突然変異のいずれかによる細胞性全長タ
ンパク質レベルの変化の検出に基づく。
な分子遺伝学的方法が、HNPCC およびFAP のような遺伝性結腸癌を有する個体の
診断に使用されてきた。そのようなテストは非常に特異的であることが可能であ
り、正確な標的突然変異が分かっている場合、例えばHNPCC 家系をスクリーニン
グする場合に実施するのがかなり容易であるが、正確な標的突然変異がわかって
いない場合にはそのようなテストは行うのが困難である。後者の場合、大きいMM
R 遺伝子のパネルから小さいDNA 突然変異を見つけるのは、干草の山で針を見つ
けるのと同様に、困難である。この場合、本発明の免疫学的検定法は、素早く相
対的に費用がかからないので、まさに非常に実際的である。
だけが使用された場合に必要とされる時間のほんの一部の時間で、DNA 配列によ
り確かめることができる。したがって、本発明の免疫学的検定法は、補助的な「
予備試験」として有用になるかもしれない。本発明はまた、突然変異がすでに同
定されている既知の家系の病気に冒された構成員の診断において分子遺伝学的テ
ストの補助となる。
が非常に困難である。未知の突然変異は、まだ研究されていない発端者、隔離患
者および家系において発見される突然変異である。主に単一の塩基対変化、小さ
い挿入、および小さい欠失を含むそのような個体群における生殖細胞系突然変異
は、遺伝子の大部分に分布し、多くの可能な遺伝子座の任意の一つを含むかもし
れない。さらに、コード領域のサイズが大きいことにより、遺伝子配列による突
然変異の同定が非常に困難になり、大きな労力を要し、費用がかかる。したがっ
て、他の技術が発達し、DNA 変異および突然変異の存在を検出するために使用さ
れる。そのような技術には、変性勾配ゲル電気泳動(DGGE) 、一本鎖立体配座多
型(SSCP) 分析およびRNA アーゼ保護分析が含まれる。しかしながら、これらの
他のアプローチは、特に感度において、欠点および/または制限を有する。例え
ば、FAP 患者においてAPC 突然変異を検出するためのこれらの技術の感度は、使
用される方法に依存してわずかに30 −70% である。インビトロにおいて合成さ
れた翻訳産物を分析することにより突然変異を検出するより新しい技術が発達し
たが、わずかに良い感度を有するに過ぎない。
および小さい欠失および/または翻訳を終了させる突然変異の検出を意図してい
る。しかしながら、例えば、患者の生殖細胞系において全遺伝子の欠失が起こり
得る。全遺伝子の欠失は、分子遺伝学的アプローチによると見逃されるので、こ
れは初期の方法のさらに別の欠点である。さらに、正常な転写のレベルを減少さ
せるプロモーターまたはスプライシングの突然変異、すなわち多くの分子的方法
により分析されるコード領域の外側に位置する突然変異を有する患者もいる。対
照的に、標準的な突然変異に加えて、対立遺伝子の喪失を含む突然変異、および
プロモーター、エンハンサーおよびスプライシング部位領域における突然変異を
検出することができるので、本発明の免疫学的検定法は、野生型タンパク質のレ
ベルを検出することにより、分子遺伝学的方法よりも大きい感度を有するかもし
れない。
研究所で確立されていないということである。また、分子遺伝学的アッセイの結
果はしばしば、素早く、例えば手術の前に得ることができない。分子遺伝学的テ
ストは癌組織サンプルにおいて行うことが可能であるが、癌細胞中の突然変異が
後天性であるか生殖細胞系であるかの問題は解決されない。
出[Dietmaier et al., 「診断ミクロサテライト不安定性:定義およびミスマッ
チ修復タンパク質発現との相関」 Cancer Res., 57: 4749-4756(1997)] という
よりも、腫瘍検体におけるミクロサテライト(microsatellite) 不安定性(すな
わち反復性DNA 配列における突然変異)の検出である。ミクロサテライト法には
、異なる遺伝子座のパネルにおける遺伝子変化についてスクリーニングするため
の分子生物学的技術(PCR またはサザンブロット分析)が含まれる(通常5 つ以
上の遺伝子がミクロサテライト不安定性について同時に分析される)。ミクロサ
テライト法は、分子遺伝学者によりかなり容易に行われ、その目的はいずれのポ
リープがMMR 突然変異から生じたかを同定することにある。しかしながら、この
方法はまた、後天性および生殖細胞系MMR 突然変異の区別をせず、5 つの既知の
MMR 遺伝子のいずれが突然変異体であるかを同定する情報を何ら提供しない。
でき、短い時間で多くの個体をスクリーニングするために、費用に対し最も効率
良く発達させることができる。このアッセイは素早く行うことができ、結果が直
ちに得られる。本発明の免疫学的検定法により、特定の遺伝子の産物における変
化を同定した後、分子遺伝学的テストを使用して突然変異の正確な位置を決定す
ることができる。
び細菌および原生動物のような原核生物上界および原生生物界の構成員における
病気または罹病性の特徴を検出することができる。本発明の免疫学的検定法を使
用して、好ましくは脊椎動物、より好ましくは哺乳類、さらに好ましくはヒトに
おいて病気または罹病性を検出する。
を有しない個体は、対象の野生型遺伝子産物を100 %発現し、野生型関連遺伝子
産物を100 %発現するという理論に基づく。対照的に、同じ遺伝子の対立遺伝子
に突然変異を有する個体は、理論上は、関連野生型遺伝子産物の発現を100 %維
持するのに対し、対象野生型遺伝子産物を50 %しか発現しない。
の一方または両方の対立遺伝子における生殖細胞系突然変異に関連する病気また
は罹病性を検出する。本発明の免疫学的検定法はまた、この態様において、一個
体の二つの異なる遺伝子における生殖細胞系突然変異は非常にまれであるという
仮定を前提とする。
る罹病性を検出するものである。HNPCC の罹病性の特徴についてのスクリーニン
グの場合、MLH1 およびMSH2 野生型タンパク質(二つの主要なMMR 遺伝子の発現
産物)の量を個体からのサンプルから、例えば新しく調製されたリンパ球から測
定する。生殖細胞系MMR 突然変異を有するほとんどすべての個体は、二つの全長
MMR タンパク質の一つを100 %有するが、他の全長タンパク質は50 %のみであ
る。
に適用した後、本発明の免疫学的検定法により、全長MMR タンパク質の発現の正
常なおよび異常なレベルを識別することを可能にする基準の設定が見込まれる。
本発明の方法は、関心のある対象野生型遺伝子産物と関連遺伝子産物との発現レ
ベルの割合、および一方の他方に対する割合の予測に依存する。例えば、MMR 突
然変異の場合、MSH2 タンパク質の量対MLH1 タンパク質の量の割合を使用できる
。次に、割合の絶対値が正常な範囲に明らかに下がるまたは対象遺伝子産物の発
現が50 %失われると予測される範囲、例えばHNPCC についてスクリーニングす
る場合にMSH2 またはMLH1 のいずれかの発現が50 %失われる範囲に明らかに下
がるか否かが決定される。
るとして同定される患者である(CRC 患者の10 %は、MMR 突然変異を有すると
予測される)。CRC 患者がMMR 突然変異のキャリアであることが分かる場合、患
者(例えば発端者)の血縁関係に、これらの血縁関係はCRC になる危険性が高い
ことが同定されているので、ポリープおよび/またはCRC 関連癌についてのスク
リーニングを奨励することが望ましい。(発端者とは、HNPCC の特徴のような遺
伝的特徴を有するとして確定的に同定された家族の最初の構成員である。) ある態様において、本発明の免疫学的検定法は、遺伝性HNPCC およびFAP の
特徴のような、病気に関連する遺伝的特徴のキャリアの同定を意図する。アッセ
イの読出し、すなわち野生型タンパク質のレベルは、遺伝子型と相関する。この
ようにして、本発明のアッセイにより野生型対立遺伝子について同型接合の細胞
および異型接合の細胞が識別され、したがって遺伝的特徴を有するおよび有しな
い個体が識別される。本発明は、CRC を有すると診断された患者の約10 %の原
因である疾患である、遺伝性結腸癌のHNPCC の最も一般的な形態の改良されたお
よびより早い診断を提供することにより、CRC の不十分な治療技術の問題の一つ
を扱う。
後天性)を引き起こすまたは対立遺伝子タンパク質発現をなくす突然変異による
多くの他の遺伝性および遺伝的疾患(癌および癌以外)に関連する全長(野生型
)タンパク質を測定してもよい。切断を起こす突然変異および/または対立遺伝
子の喪失を受ける典型的な遺伝子、およびそのような遺伝子における突然変異に
関連する病気を以下に列挙する: APC −CRC およびGI 癌 ATM −毛細管拡張性運動失調;血管芽細胞腫;腎細胞癌; 褐色細胞腫 BRCA1 −乳癌 BRCA2 −乳癌 CFTR −膵嚢胞性繊維症 c-myb −血液悪性疾患 ジストロフィン −デュシェーヌ筋ジストロフィー E- カドヘリン −乳癌および結腸癌 (HSECAD) EMD −エメリー−ドライフス筋ジストロフィー FAA −ファンコーニ貧血 IDS −ハンター症候群 MLH1 −CRC 、GI 、GU およびGYN 癌 MSH2 −CRC 、GI 、GU およびGYN 癌 NF1 −神経繊維腫症タイプ1 NF2 −神経繊維腫症タイプ2 p16(CDKN2A −家族性黒色腫 およびMTS1) PKD1 およびPKD2 −多発性嚢胞腎症 PTCH −母斑様基底細胞癌 VHL −リンダウ病 APC 遺伝子およびMMR 遺伝子中の突然変異を検出するための典型的なアッセ
イがここに開示される。しかしながら、当業者はそのようなアッセイを、他の遺
伝子における類似する突然変異の検出に容易に適応させることができ、そのよう
な突然変異は病気または罹病性と関連することが知られている(以下の、「他の
全長タンパク質についての免疫学的検定法」参照)。
常に低いレベルまたは生体サンプル中の標的とされる野生型タンパク質の不存在
についてスクリーニングすることができる。生体サンプル中の関連タンパク質の
量に対する前記野生型タンパク質の量の割合を計算し、該割合が変化を受けてい
ない個体の個体群研究において計算された類似する正常な割合と比較して正常で
あるか異常であるかを決定することにより、前記標的とされる野生型タンパク質
のレベルを測定することができる。関連タンパク質は、アッセイを方向付ける病
気または罹病性の特徴に関連しなくてもよい、またはアッセイを方向付ける病気
または罹病性に関連する別の対象遺伝子の発現産物でもよい。後者の実施の形態
において、アッセイは、多くの遺伝子のいずれが病気に関連する突然変異により
影響を受けるかをあるアッセイにおいて決定する、差異に基づく診断/予後の一
形態として特徴付けることができる。それについての例は、ここに明確に記載さ
れるアッセイ方法であり、MLH1 およびMSH2 は対象遺伝子であり、HNPCC に対す
る罹病性は、アッセイを方向付ける特徴である。
る病気または罹病性の特徴を検出することを意図し、前記病気または前記罹病性
の特徴が対象遺伝子における突然変異に関連することを特徴とし、 (a) 前記対象生体から生体サンプルを単離し、 (b) 前記サンプル中の前記対象遺伝子により発現される野生型タンパク質の量
、および前記サンプル中の第二の遺伝子により発現される関連タンパク質の量を
免疫学的に定量し、 (c) 前記サンプル中の前記対象遺伝子により発現される野生型タンパク質の量
対前記サンプル中の前記第二の遺伝子により発現される関連タンパク質の量の割
合を計算し、 (d) 前記対象遺伝子により発現される野生型タンパク質が前記サンプル中に存
在するか否か、または前記計算された割合が、前記サンプル中における前記対象
遺伝子により発現される前記野生型タンパク質の異常に低いレベルを表すか否か
を決定し、 (e) 前記サンプル中に野生型タンパク質が存在しない場合、前記対象遺伝子は
それぞれの対立遺伝子中に突然変異を含有する、または工程(c) において計算さ
れた割合により前記サンプル中で野生型タンパク質のレベルが異常に低いことが
示される場合、前記対象遺伝子は対立遺伝子の一つにおいて突然変異を含有する
、およびいずれかである場合、対象生体は前記突然変異に関連する病気または罹
病性の特徴に冒されているという結論を出す、 各工程を含む。そのような実施の形態における好ましい関連タンパク質の例は
、アクチン、チューブリン、またはグリセルアルデヒド−3 −ホスフェートデヒ
ドロゲナーゼである。
割合を、前記病気によりまたは前記罹病性の特徴により冒されていない、対象生
体と同じ分類学的分類の生体からの比較可能な生体サンプルにおいて、前記対象
遺伝子から発現された前記野生型タンパク質の量対前記関連タンパク質の量の割
合の平均と比較する工程を含んでもよい。
突然変異の場合における全長タンパク質の細胞性レベルにおける予想される減少
は、対象遺伝子により発現される全長タンパク質の量における50 %の減少であ
る。両方の対立遺伝子がそのような突然変異により影響を受ける場合、一方は、
前記全長タンパク質の発現において100 %減少すると予想される。しかしながら
、生体変異性により、正常からの全長タンパク質発現における減少(単一の対立
遺伝子突然変異について)は、一般個体群からの病気のない個体における正常値
の範囲から統計的に測定される限界レベルにより、陽性の結果であると考えられ
る。対象遺伝子の残存する対立遺伝子が、癌の場合にしばしば起こるように、突
然変異対になる場合、本発明の予想される読出しは50 %から0 %に下がる。陽
性の結果についての理論上の基準線からの変異性は、±20 %、好ましくは±15
%、より好ましくは±10 %である。
おける病気または罹病性の特徴を検出することができ、前記病気または前記罹病
性の特徴は、二つ以上の対象遺伝子の一つにおける突然変異と関連することを特
徴とし、 (a) 前記生体から生体サンプルを単離し、 (b) それぞれの対象遺伝子から発現される、前記サンプル中の野生型タンパク
質の量を免疫学的に定量し、 (c) 前記サンプル中で他の対象遺伝子により発現される野生型タンパク質の量
、または前記サンプル中で他の対象遺伝子のそれぞれにより発現される野生型タ
ンパク質の量に対する前記サンプル中で前記対象遺伝子の一つにより発現される
野生型タンパク質の量の割合を計算し、 (d) 対象遺伝子のいずれかによりまたは任意の対象遺伝子により発現される野
生型タンパク質が前記サンプルに存在しないか否か、または工程(c) で計算され
た割合が、前記サンプル中で対象遺伝子のいずれかまたは任意の対象遺伝子によ
り発現される異常に低いレベルの野生型タンパク質を表すか否かを決定し、 (e) 対象遺伝子の一つにより正常に発現されることが知られる野生型タンパ
ク質が前記サンプル中に存在しない場合、該対象遺伝子はそれぞれの対立遺伝子
中に突然変異を含有する、または工程(c) において計算された割合により前記サ
ンプル中で対象遺伝子の一つにより発現される野生型タンパク質のレベルが異常
に低いことが示される場合、該対象遺伝子は対立遺伝子の一つにおいて突然変異
を含有するという結論を出す;および、いずれかである場合、対象生体は前記突
然変異に関連する病気または罹病性の特徴により冒されていることを決定する、 各工程を含むことを特徴とする。
りまたは前記罹病性の特徴により冒されていない、対象生体と同じ分類学的分類
の生体からの比較可能な生体サンプルにおいて、対象遺伝子により発現された野
生型タンパク質の量から計算された割合の比較可能な平均と比較する工程を含ん
でもよい。
する方法であって、前記病気または前記罹病性の特徴は、対象遺伝子における突
然変異と関連することを特徴とし、 (a) 前記生体から正常細胞のサンプルを単離し、 (b) 前記サンプル中で対象遺伝子により発現される野生型タンパク質の量を免
疫学的に定量し、 (c) 前記サンプル中に野生型タンパク質が存在するか否か、およびその場合、
前記サンプル中に存在する野生型タンパク質の量が、対照サンプル中で対象遺伝
子により発現される野生型タンパク質の量と比較して異常に低いか否かを決定し
、 (d) 前記サンプル中に前記野生型タンパク質が存在しない場合、対象遺伝子は
それぞれの対立遺伝子中に突然変異を有すると結論する;または前記サンプル中
の前記野生型タンパク質の量が、対照サンプル中の野生型タンパク質の量と比較
して異常に低いと測定された場合、対象遺伝子は一つの対立遺伝子中に突然変異
を有すると結論する;およびいずれかである場合、該結論と前記突然変異と関連
する病気または罹病性の特徴を有する対象生体との相関関係を算定する、 各工程を含むことを特徴とする方法に関する。アッセイ結果により対象遺伝子
が一つの対立遺伝子に突然変異を有することが示される場合、野生型タンパク質
の異常に低い量は通常、正常な量の約50 %であり、上述の変異性は機能可能に
作用している。
る突然変異は、生殖細胞系または体性でもよく、好ましくは生殖細胞系である。
そのような突然変異は、切断を引き起こす突然変異または対立遺伝子の喪失を起
こす突然変異である。突然変異の例は、ナンセンス突然変異、読み枠突然変異、
プロモーター突然変異、エンハンサー突然変異、スプライシング部位突然変異、
ヌル突然変異、およびポリ−A テール突然変異からなる群より選択される。
は原核生物上界および原生生物界の構成員から単離される。前記生体は、好まし
くは脊椎動物、より好ましくは哺乳類、およびさらに好ましくはヒトである。
本、体液(例えば、血液、血清、血漿)、組織抽出物、細胞、細胞溶解産物、細
胞抽出物、正常な細胞溶解産物からの上澄、新生物発生前の細胞溶解産物からの
上澄、および新生細胞溶解産物からの上澄が含まれる。
細胞溶解産物からの上澄、組織サンプルおよび組織抽出物である。さらに好まし
いのは、正常な細胞サンプル、正常な細胞抽出物、正常細胞からの溶解産物、お
よび正常な細胞溶解産物の上澄である。特に好ましいのは、末梢血リンパ球(PBL
) 、PBL の溶解産物、PBL の溶解産物からの上澄み、およびPBL の抽出物である
。
精液、胸部滲出液、胃の分泌液、糞の懸濁液、胆液、唾液、涙、痰、粘液、尿、
リンパ液、細胞質ゾル、腹水、胸水、羊水、膀胱洗浄液(bladder wash) 、気管
支肺胞洗浄液、および髄液。体液が、本発明の方法によりテストされる生物学的
サンプルである場合、例えばウェスタンブロット、フローサイトメトリ、または
サンドイッチ免疫学的検定法によるような免疫学的方法により定量する前に、一
つ以上の標的とされる全長、野生型遺伝子産物および、関係のある場合には、関
連タンパク質を大量の体液から濃縮することが好ましい。
イは、自動化形式で実施できる。本発明の方法を適合させることができる好まし
い自動化免疫学的検定法システムは、化学発光および磁気分離を使用するもので
ある。
4 時間の所要時間)、費用がかからず、自動化技術に適合することができる。本
発明により、遺伝子の野生型産物の細胞性レベルが最終的に減少する対象遺伝子
の突然変異と関連する遺伝性の病気についての診断/予後アッセイが提供される
。本発明の免疫学的検定法により、関心のある遺伝子によりコードされる全長タ
ンパク質について分析される。例えば、本発明の免疫学的検定法を使用して、FA
P に関連するAPC 遺伝子、およびHNPCC に関連するMMR 遺伝子のタンパク質産物
の細胞性レベルにおける変化を検出する。
量が減少しておりそのため形質の素因がつくられると考えられる。以下に示され
る実施例により、本発明のアッセイは、遺伝子量に関連する遺伝子産物発現にお
ける変異を検出できることが示される。ここに記載される実験により、ウェスタ
ンブロット分析のような免疫学的検定法がMMR およびAPC のような標的遺伝子タ
ンパク質の細胞性発現レベルを検出し定量する能力、およびそのようなレベルが
対象遺伝子の野生型遺伝子量に関連することを示す能力を確立する。
列を含有するヌクレオチド配列を意味すると定義される。通常、「遺伝子」には
、コードされたタンパク質の発現に影響を与えるコード配列の上流(例えばプロ
モーター配列、エンハンサーなど)または下流(例えば転写終止シグナル、ポリ
アデニル化部位など)で見られるヌクレオチド配列を含むと考えられる。「対立
遺伝子(allele) 」という用語は、DNA 配列中で異なり、単一の産物(RNA およ
び/またはタンパク質)の機能に影響を与える所定の遺伝子の一連の可能な対の
形態の一つである対立遺伝子(allelomorph) の速記形態である。
断/予後である。「診断/予後」という用語はここで、それぞれまたは漸増的に
臨床的状況に依存して以下の工程を含むと定義される:病気になる素因を決定し
、病気の性質を決定し、病気を識別し、病気の状態の可能性のある結果に関して
予測し、症例の性質および症状により示されるような病気からの回復に関する見
通し、患者の病気の状態の観察、病気の再発についての患者の観察、および/ま
たは患者についての好ましい治療養生法の決定。本発明の診断/予後方法は、例
えば腫瘍性のまたは新生物発生前の病気の存在についての個体群のスクリーニン
グ、腫瘍性の病気が発生するリスクの測定、腫瘍性のおよび/または新生物発生
前の病気の存在の診断、腫瘍性の病気を有する患者の病気の状態の観察、および
/または腫瘍性の病気の過程についての予後の決定に有用である。
明に従って標的遺伝子タンパク質および一つ以上の関連タンパク質の検出および
定量に適合することができる(少なくとも半定量的に)。そのような形式には、
診断産業において通常使用される他のアッセイの中で、好ましくは免疫沈降され
たタンパク質のウェスタンブロット、ELISA 、RIA 、競争的EIA および二重抗体
サンドイッチアッセイが含まれる。免疫沈降されたタンパク質のウェスタンブロ
ットおよびサンドイッチ免疫学的検定法が好ましく、サンドイッチ免疫学的検定
法が特に好ましい。
れたまたは化学発光結合したものである。ここに記載されるように自動化した免
疫学的検定法も好ましい。
子により発現される全長タンパク質、またはそのアミノまたはカルボキシ末端に
作製された抗体でコーティングされている形式である。それに、患者のサンプル
、例えば組織または細胞抽出物あるいは細胞溶解産物が加えられる。一定時間イ
ンキュベーションしてタンパク質を抗体に結合させた後、プレートを洗浄し、標
識された、例えば酵素に結合された関連抗体の別のセットを加え、インキュベー
トして、反応を起こさせ、その後プレートを再び洗浄する。その後、例えば酵素
基質をマイクロタイタープレートに加え、一定時間インキュベートして酵素を基
質に作用させ、採集標本の吸光度を測定する。吸光度における変化は、サンプル
中の対象全長タンパク質の量に比例する。
出および定量するための本発明の免疫学的検定法の例は、 a) 一つのセットは野生型標的遺伝子産物に結合し、他方のセットは関連タン
パク質に結合する二つのセットの抗体であって、それぞれの抗体のセットは標識
されているまたはそうでなければ他のセットと異なって検出可能である抗体とと
もに前記脊椎動物サンプルをインキュベートし、 b) インキュベートされたサンプルを調べて、野生型標的遺伝子産物を含む免
疫複合体の量および関連タンパク質を含む免疫複合体の量を測定し、該二つの量
の比を計算する、 各工程を含む。
、標的遺伝子中に突然変異が存在するか否かを決定するために脊椎動物中の野生
型標的遺伝子産物および関連タンパク質を検出および定量するものであって、 a) 二つのセットの抗体であって、それぞれのセットが野生型標的遺伝子産物
または関連タンパク質、およびある量の標識された(他の視覚化方法を含む)野
生型標的遺伝子産物およびある量の標識された関連タンパク質にそれぞれ特異的
であって、前記標識された遺伝子産物および標識された関連タンパク質は異なっ
て標識され、前記それぞれの抗体への結合についてサンプル中に存在する野生型
標的遺伝子産物および関連タンパク質と競合する抗体とともに脊椎動物サンプル
をインキュベートし、 b) 該インキュベートされたサンプルを調べて、前記抗体に結合した標識され
た野生型遺伝子産物または関連タンパク質の量を測定し、 c) 工程b) における調査の結果から、前記サンプル中に存在する標的遺伝子
産物および関連タンパク質の量を測定し、その割合を計算し、前記サンプル中で
標的全長タンパク質の量が減少している場合、標的遺伝子中に突然変異が存在す
ることを決定する、 各工程を含む。
調製すると、様々の免疫学的アッセイ方法が特異的抗体−抗原複合体の形成の測
定に利用できる。多くの競合および非競合タンパク質結合アッセイが科学および
特許文献に記載されており、そのようなアッセイの多くは市販されている。抗原
の検出に適切な免疫学的検定法の例には、米国特許第5,686,258 号;同第5,695,
928 号;同第5,770,457 号;同第3,984,533 号;同第3,996,345 号;同第4,034,
074 号;および同第4,098,876 号のものが含まれる。
未標識の抗体を凝集反応に使用してもよい;様々の標識を使用して、標識した抗
体を様々のアッセイに使用してもよい。
原体、酵素基質または補因子、酵素阻害剤、フリーラジカル、粒子、色素などの
ような標識の使用が含まれる。そのような標識された試薬を、放射免疫測定法、
酵素免疫測定法、例えばELISA 、蛍光免疫測定法などのような様々のよく知られ
るアッセイに使用してもよい。例えば、米国特許第3,766,162 号;同第3,791,93
2 号;同第3,817,837 号;および同第4,233,402 号参照。
物、または標的遺伝子産物および関連タンパク質を検出および定量することがで
きる。関連野生型遺伝子産物および/または関連タンパク質を検出および定量す
るためのそのようなキットには、関心のある遺伝子産物または関連タンパク質お
よびそのような野生型遺伝産物または関連タンパク質に特異的なポリクローナル
および/またはモノクローナル抗体が含まれてもよい。そのような診断/予後テ
ストキットには、サンドイッチ形式について一つ以上のセットのポリクローナル
および/またはモノクローナル抗体が含まれてもよく、該抗体は全長タンパク質
上のエピトープを認識し、一つのセットは適切に標識されるまたはそうでなけれ
ば関心のあるそれぞれの遺伝子産物または関連タンパク質について検出可能であ
る。
体および該酵素に対する基質が含まれる。酵素は例えば、関心のあるタンパク質
に特異的な抗体またはそのような特異的な抗体に対する抗体に結合してもよい。
00 の結腸癌の新しい症例が診断され、世界の他の国ではさらに多い。それらの
症例の多く(約10 %)は、遺伝性非ポリポーシス結腸癌(HNPCC) または家族性
腺腫様ポリポーシス(FAP) のような結腸癌の遺伝性のタイプの一つを有する。
結腸癌のそれらの遺伝性形態の診断により、多くの場合、医師は、高い費用の手
術をすべきである、および/または手術上のアジュバント化学療法に対する適応
が異なるかもしれない、および/または患者の家族の構成員をスクリーニングし
なければならないと考える。しかしながら、現在までのところ、本発明者は、結
腸癌の遺伝性の形態を有する患者を同定するための実際的なテストを何ら認知し
ていない。したがって、簡単で、広く利用でき、素早く、費用のかからない、遺
伝性結腸癌についてのテストの発達が、医師にとって臨床的に価値がある。
により、個人および家族におけるHNPCC を同定しその後精密な臨床的追跡調査(
例えば腫瘍性ポリープについての定期的な結腸鏡検査)を行うことによって罹病
率および死亡率の実質的なおよび大きな減少を達成できるということが示される
。[Jarvinen, H.J., Mecklin, J.P., Sistonen, P. 「遺伝性非ポリポーシス結
腸直腸癌を有する家族における結腸直腸癌の割合がスクリーニングにより減少す
る」 Gasterontology, 108: 1405-1411(1995)] 。
頻度は、西洋人において200 から300 人に約1 人である。生殖細胞系MMR 突然変
異(すなわちHNPCC 患者)に付随する浸透率が少なくとも90 %存在するので、
ほとんどすべてのキャリアは、寿命の間に癌を発生させる。西洋では10 億人を
超える人が存在するので(米国およびヨーロッパ)、500 万人を超える人が生殖
細胞系MMR 突然変異を有すると予想される。キャリアが癌を発生させる前にその
ようなMMR 突然変異を同定することが重要である。
直腸腫瘍性ポリープ(以下単に「ポリープ」と称する)を発生する。[Ransohoff
and Lang, N. Engl. J. Med., 325: 37(1991).] 西洋でCRC を発生する生涯の
見込みは、約10 倍小さいまたは20 人に1 人である。
ープについてスクリーニングすることを推奨する。そのようなスクリーニングの
目的は、(1)治療可能な程度(通常は手術)でのCRC の早期検出;および癌に
発達する前のポリープの同定および除去による癌予防である。
ち、ほんの一部のみが、APC 遺伝子中の生殖細胞系突然変異による。多くの遺伝
性結腸癌は、生殖細胞系MMR 突然変異と関連する。腺腫は、CRC の散在性の非遺
伝性形態を発生する患者よりも、MMR 突然変異を有する患者においてより早く癌
に進行することが知られている。柔軟なS 状結腸鏡検査法(ポリープまたはCRC
についての最初の臨床スクリーニング)の結果が陽性である場合、胃腸病学者は
通常、さらなるポリープまたは結腸直腸腫瘍を検出するために全結腸の検査(全
結腸鏡検査)を続ける。この場合、胃腸病学者は、本発明の免疫学的検定法を使
用してMMR 突然変異を検出することを勧める。
突然変異に関する二つの仮定に基づく:(1)HNPCC キャリアは、以下の4 つ
のDNA ミスマッチ修復(MMR) 遺伝子−hMLH1 、hMSH2 、hPMS2 およびhPMS1 の一
つに単一の生殖細胞系突然変異を有する;および(2)そのような突然変異によ
り、遺伝子によりコードされる全長野生型タンパク質の細胞レベルが減少する(
遺伝子産物は、理論上遺伝子量に比例すると考えられる)。MMR 遺伝子の二つの
対立遺伝子の一つが突然変異体である場合、本発明に従って、個人の体組織中で
合成される全長タンパク質の量が50 %減少すると想定される。そのような免疫
学的検定法は、内視鏡検査中にポリープが陽性であることが発見された後に特に
有用である。
するためのアッセイの臨床的使用を示す。
発明を発達させるために使用される免疫学的検定法を示す。本発明のHNPCC アッ
セイは、主に二つのMMR 遺伝子(MLH1 およびMSH2 )に集中する、なぜなら、該
二つの遺伝子中の突然変異は、HNPCC 症例における同定可能な突然変異の大部分
( 〜90%) の原因であることが示されたからである。[Peltomaki and de la Chap
elle, 「遺伝性非ポリポーシス結腸直腸癌になりやすい突然変異」 Adv. Cance
r Rev., 71: 93-119(1997)] 。MMR タンパク質中の既知の突然変異の多くにより
、タンパク質が切断される。[Id.] 生殖細胞系にミスマッチ修復遺伝子欠損を有する患者は、結腸癌を発生させ
やすいだけでなく、子宮、卵巣、前立腺、胃、小腸、膵臓、および胆道癌も発生
させるリスクが非常に高い。隔離患者の浸透率および頻度に基づき、生殖細胞系
ミスマッチ修復突然変異を有する患者の40 %以上が癌を発生させ、癌の家族歴
を有しない(400,000 を超える遺伝性癌患者は、陰性の家族歴を有する)。
伝子産物を生ずる突然変異を検出しないということである。MMR 突然変異につい
ての制限の評価は、以下の情報から測定できる[Peltomaki and de la Chapelle,
supra] :(1)異なる突然変異に起因するHNPCC 患者の割合−MSH2 およびMLH
1 が90 %を占め、その他(MSH6; PMS2; PMS1; TGFBR2) が残りの10 %を占める
;(2)MSH2 およびMLH1 遺伝子中の切断および非切断突然変異は、MSH2[ 非切
断(ミスセンス)=7 %および切断(フレームシフト、ナンセンスおよびフレー
ム内欠失)=93 %] 、およびMLH1[ 非切断(ミスセンス)=31 %および切断(
フレームシフト、ナンセンスおよびフレーム内欠失)=69 %] である。該情報
に基づき、本発明のアッセイにより抗MLH1 および抗MSH2 を使用して検出できる
すべてのMMR 突然変異の割合は、少なくとも70% と予測される。
て報告されるのとほぼ同じ大きさである。[Peltomaki and de la Chepelle, sup
ra; Giardiello, F.M., supra] 。しかしながら、非切断突然変異を含む半接合
体症例の割合は過大評価されているかもしれない、なぜなら、対立遺伝子喪失の
ような他の突然変異およびプロモーター突然変異(他の分子遺伝学的テストによ
り容易に検出されない)は、対立遺伝子喪失またはプロモーター領域を含むその
ような突然変異はMMR 遺伝子の一つの対立遺伝子からの発現を停止するまたは減
少する場合、本発明のアッセイにより検出すべきだからである。さらに、MLH1
およびMSH2 アッセイに関連して全長PMS1 およびPMS2 タンパク質を検出するた
めの本発明の免疫学的検定法により、同定されていないMMR 突然変異の数が大き
く減少する。
ミノ酸の置換を含む非切断ミスセンス突然変異において、異なるアプローチを使
用して、免疫学的検定法を診断に使用する場合に突然変異を検出することができ
る。例えば、アミノ酸置換の重大な潜在的結果として(それらを検出する能力に
関して)、そのような置換により3 次元天然タンパク質構造が天然MMR タンパク
質中のエピトープ表示を変化させるほど十分に変化し、これは特異的なエピトー
プに対する抗体を使用する免疫学的検定法により検出できる。
フローサイトメトリ免疫学的検定法により、3 次元天然MSH2 およびMLH1 タンパ
ク質構造が保たれている状態で、ミスセンス突然変異によるタンパク質変化のい
くつかのタイプを検出することができる。MMR 突然変異についてのアッセイは、
細胞性ミスマッチ修復のための酵素活性における作用変化の検出に基づく他の実
験室において発達しているので、そのような突然変異は、別の方法により検出で
きる[Bennett et al., Cancer Res., 57: 2956(1997)] 。別の可能性には、異常
血色素症を診断するためのアッセイに類似する2 次元ゲル電気泳動システムまた
は高速液体クロマトグラフィ(HPLC) を使用するタンパク質移動度の変化の検出
が含まれる[ESA, Inc.; Chelmsford, MA(USA)] 。
o, CA) から市販されている。抗ヒトMLH1 および抗ヒトMSH2 は、Oncogene Rese
arch Products 社(Cambridge, MA) からも市販されている。表1は、これらの市
販されている抗体の特性を示す。
免疫学的検定法の原理が提供される。FAP はHNPCC より頻度はずっと少ないが、
本発明の免疫学的検定法が遺伝性の特徴を検出する能力を評価するためのモデル
システムを提供する。
染色体優性遺伝病である。結腸および直腸において数百から数千の腺腫様ポリー
プを発生させることにより特徴付けられる[Boman, B.M and Levin, B., 「家族
性ポリポーシス」 Hosp. Prac., 21: 155-170(1986)] 。予防の結腸切除を行っ
た場合、これらのポリープは癌に進行することはない[Lynch et al. H. T., Bom
an, B.M., Fitzgibbons, R.J., 「家族性結腸ポリポーシス:遺伝的性質、サー
ベイランスおよび治療」Nebr. Med. J., 73: 329-334(1988)] 。実際に、治療し
ていないFAP 患者は、生涯に結腸癌を発生させる可能性をほぼ100 %有する。
様ポリポーシス(FAP) において起こる。APC 突然変異は、FAP 患者における遺伝
性結腸癌の原因であり、散在性結腸直腸癌の発生における臨界開始因子であると
考えられる。本発明の免疫学的検定法は、他の分子遺伝学的方法の欠点を回避で
きるので、まだ研究されていないFAP の発端者、隔離患者および家系における従
来知られていないAPC を有する個体の診断において有用である。FAP を含む生殖
細胞系APC 突然変異を保有する患者の診断により、有効な救命癌予防法が生ずる
。
の欠失を有する切断されたAPC タンパク質を産生する機構である、翻訳終了の原
因となる新しい停止コドンおよび他の遺伝的変化を引き起こす[Miyoshi et al.,
「53 の家族性腺腫様ポリポーシス患者におけるAPC 遺伝子の生殖細胞系突然変
異」 Proc. Natl. Acad. Sci. (USA) 89: 4452-4456(1992); Spirio et al., Ce
ll, 75: 951-957(1993); Groden et al., Cell, 66: 589(1991)] 。FAP 患者に
おけるすべての生殖細胞系突然変異が結腸癌になるのに対し、切断されたAPC タ
ンパク質の長さにおける変化は、FAP 患者における他の形質発現に関すると考え
られる。例えば、コドン1250 と1464 との間の領域で生ずる生殖細胞型突然変異
は、多量のポリープ(cm2 毎に10 以上)の臨床的発見に関連するのに対し、こ
の領域外で生ずる突然変異は、散在性のポリープ(cm2 毎に10 未満)の観察に
関する[Nagase et al., Cancer Res., 52: 4055(1992)] 。さらに、突然変異が5
’からエキソン9 までで生ずる場合、FAP に関連する眼底損傷はほとんど存在
しない[Olschwang et al., Cell, 75: 959(1993)] 。最後に、第5 エキソンの前
で生ずるAPC 突然変異により、ポリポーシスのより軽い形態および腫瘍形成の後
の発症が起こる。APC 突然変異が細胞学的変化および表現型の相違を起こす機構
をさらに洞察するには、結腸上皮細胞および他の細胞タイプにおいてAPC が実際
に果たす役割の決定が必要である。
パク質を生ずる新しい停止コドンを産生するので、発現された全長APC タンパク
質の量は減少ずると仮説を設けた。したがって、APC 突然変異を検出する方法は
、全長遺伝子産物の50 %減少したレベルを検出する簡単な免疫学的検定法に基
づく。したがって、野生型に加えて突然変異対立遺伝子を含む、APC 遺伝子座に
異なる対立遺伝子を有する細胞において、前記仮説により、そのような異型接合
体は、全長APC タンパク質のレベルの50 %しか有しないということが予測され
る。
らの細胞を、抗APC 抗体と共に「モデル」システムとして使用した[Boman et al
., Biochem. Biophys. Res. Commun., 206: 909(1995); Chop et al., Anticanc
er Res., 15:991(1995)] 。以下の実施例1により該仮説が立証され、生殖細胞
系においてAPC 突然変異を保有する個体を診断するための臨床的に有用なアッセ
イを発達させることができることの証拠が提供される。
スタンブロットにおいてより低い分子量の位置に移動することにより決定される
ものとして、切断されたAPC タンパク質を同定する方法がとられてきた[Smith,
et al., 「正常および腫瘍細胞中のAPC 遺伝子産物」 Proc. Natl. Acad. Sci.
, 90: 2846-2850(1993)] 。切断されたAPC タンパク質の分子量は、突然変異部
位の配置において有用な情報を提供するが、多くの短くなったAPC タンパク質は
不安定であり、ウェスタンブロットにおける検出を妨げる[Id.] 。例えば、ウェ
スタンブロット分析は、タンパク質切断を引き起こすAPC 突然変異を含有すると
して以前同定された7 つのFAP リンパ芽球細胞系の3 つにおける切断されたAPC
タンパク質に対応するより低い分子量バンドを検出できなかった[Id.] 。本発明
のアッセイは、切断されたAPC タンパク質を検出しないが、残っている全長APC
タンパク質の存在および量を測定する。
伝学的方法と比較するか疑問かもしれない。APC 突然変異がすてに特徴付けられ
ているFAP 家系において、関連した突然変異について直接テストする分子遺伝学
的方法を使用して簡単におよび正確に、病気に冒されている構成員においてこれ
らの突然変異を容易に検出および同定することができる。したがって、分子遺伝
学的テストを使用して、そのような家族において危険性のある構成員を、生殖細
胞系APC 突然変異を有するまたは有しないとして正確に診断することができる。
それにもかかわらず、免疫学的検定法は実際的であるので、APC 突然変異がすで
に同定されている既知のFAP 家系の病気に冒されている構成員の診断において補
足的なテストとして有用である。
様々の生殖細胞系APC 突然変異はAPC 遺伝子の大部分に分布することが知られて
いるので、未知のAPC 突然変異は、まだ調査されていないFAP 発端者、隔離患者
および家系において検出するのがずっと困難である[Miyoshi et al., supra] 。
また、APC コード領域のサイズが大きいこと(8535 塩基対)により、遺伝子配
列決定による突然変異の同定は、非常に困難で、大きな労力を必要とし、費用が
かかる。したがって、APC 遺伝子内の突然変異の位置を検出および同定するため
の他の技術が発達し使用された。
SCP) 分析およびRNA アーゼ保護分析が含まれる。FAP 患者においてAPC 突然変
異を検出するためのこれらの技術の感度は、Powell et al., 「家族性腺腫様ポ
リポーシスの分子的診断」 N. Engl. J. Med., 329: 1982-1987(1993) に記載さ
れるように、使用される方法に依存してわずかに30 −70% である。インビトロ
において合成されたAPC 翻訳産物の分析を含むAPC 突然変異を検出するために発
達したより新しい技術は、わずかに良い感度を有するに過ぎない[Id.; van der
Luijt et al., 「直接のタンパク質切断テストによる結腸腺腫様ポリポーシス(
APC) 遺伝子における翻訳を終了させる突然変異の急速な検出」 Genomics, 20:
1-4(1994)] 。さらに別の新しいアッセイには、クローン化されたAPC 遺伝子断
片と共にフレームに挿入されたβ−ガラクトシダーゼコード配列を使用する急速
比色法が含まれる[Varesco et al., 「ナンセンスおよびフレームシフト突然変
異を検出するための急速なスクリーニング方法:病気を引き起こすAPC 対立遺伝
子の同定」 Cancer Res., 53: 5581-5584(1993)] 。しかしながら、臨床的設定
におけるこの後者の技術の感度は、まだ測定していない。
小さい欠失および/または翻訳を終了させる突然変異の検出を目的とする。しか
しながら、いくつかの例において、全APC 遺伝子の欠失がFAP 患者の生殖細胞系
において起こり[Herrera et al., 「5q の間質性欠失を有するヒトにおけるガ
ードナー症候群」Am. J. Med. Genetics, 25: 473-476(1986); Joslyn et al.,
「家族性ポリポーシス遺伝子座における欠失突然変異および3 つの遺伝子の同
定」Cell, 66:601-613(1991); Groden et al., 「腺腫様ポリポーシスを有する
患者の突然変異分析:血縁でない個体における突然変異の同一不活性化」 Am. J
. Hum. Genet., 52: 263-272(1993)] 、これは分子遺伝学的方法によって見落と
されるイベントである。さらに、正常な転写のレベルを減少させるプロモーター
またはスプライシングの突然変異を有するFAP 患者もいる[Powell et al.(1993)
, supra] 。したがって、ある最近の分子遺伝学的方法は、生殖細胞系APC 突然
変異の検出において89 %の改良された感度を共に有する、インビトロで合成さ
れるAPC 翻訳産物の分析によるAPC の切断を引き起こす突然変異の分子的検出と
、対立遺伝子特異的発現アッセイとを組み合わせた[Powell et al.(1993), supr
a] 。
明の免疫学的検定法の予想される感度は、例えばAPC 生殖細胞系突然変異のよう
な生殖細胞系突然変異の存在の検出においてほぼ100 %である。この方法は、タ
ンパク質切断並びに対立遺伝子発現の喪失を含む突然変異の検出において重要で
ある。
は、FAP 患者において異型接合状態で存在する生殖細胞系APC 突然変異の検出に
おいて特に有用である。他の分子的テストを使用することができるが、本発明の
免疫学的検定法は、比較的簡単で、信頼でき、費用がかからないので、および全
長遺伝子産物の検出により他のアッセイの欠点が開比されるので、多くの利点を
有する。本発明の免疫学的検定法は、多くの病因または病理学研究室において実
施が比較的容易である。さらに、APC-1 およびAPC-2 以外の多くの抗APC 抗体を
利用できる。本発明の免疫学的検定法の予想される感度は非常に高いので、この
アッセイは、所定のFAP 家系において以前に特徴付けられたAPC 突然変異を検出
し、そのような家族における病気に冒された構成員を評価することを目的とする
分子遺伝学に基づく他の方法の増加にも有用である。
断が困難な個体群である、まだ調査されていないFAP 発端者、隔離患者および家
系における、以前は未知のAPC 突然変異の検出において特に有用である。FAP 患
者についての本発明の発見の最大の価値は、全長APC レベルの免疫学的検定法に
より臨床的背景において有用な役割を発見する場合に認識される。この場合、予
防的方法(例えば結腸切除)を行って、生殖細胞系に有害な突然変異体のAPC 対
立遺伝子を保有すると同定される個体群において結腸直腸癌が発生することを予
防できる[Boman and Levin, 「家族性ポリポーシス」 Hosp. Pract., 21: 155-
170(1986); and Lynch et al. 「家族性結腸ポリポーシス:遺伝的性質、サー
ベイランスおよび治療」 Nebr. Med. J., 73: 329-334(1988)] 。
CPTTM 単核細胞精製チューブ(Beckton Dickinson; Franklin Lakes, NJ) のもの
である。血液をVACUTAINER (登録商標)チューブに入れ、遠心させる。チュー
ブ中のゲルの境界により、底部の遠心されたRBC および好中球と上部のリンパ球
および単球とが分離される。
能に設定し、免疫学的技術によりアッセイ可能なタンパク質を生ずる。タンパク
質抽出方法の例は以下のようである。サンプルを5mL のリン酸緩衝化生理食塩水
(PBS) で1 −2 回洗浄し、4 ℃で10 分間2000rpm で遠心する。細胞を溶解する
ために、1 ×強度のSDS ゲルローディングバッファー(50mM Tris-Cl[pH 6.8]
、100mM ジチオスレイトール[ 新鮮なDTT] 、2% SDS 、0.1% ブロモフェノール
ブルー、10% グリセロール)をそれぞれの洗浄したペレット(培養した結腸癌に
ついて1mL 、リンパ球およびリンパ芽球細胞について200 μL )に加える。細胞
を完全に混合し(ボルテックス)、沸騰水中に配置する(10 分間)。次に細胞
をミクロフュージ(microfuge)(Beckman Instruments Inc.; Fullerton, CA) 中
で10 分間遠心し、不溶性の物質を沈殿させ、捨てる。
胞系および後天性)または対立遺伝子タンパク質発現欠如の原因となる突然変異
による多くの他の遺伝性および遺伝学的な疾患(癌および癌以外)に関連する全
長(野生型)タンパク質を測定できる。例として、切断されたタンパク質または
対立遺伝子喪失の原因となる突然変異を受ける以下の対立遺伝子がある。
的タンパク質に対する抗体が市販されている場合、抗体を使用して発展すること
ができる。標的タンパク質に対するそのような抗体が市販されていない場合、ま
たは標的タンパク質に対する市販されている抗体が適切でない場合、従来の方法
により標的タンパク質に対する適切な抗体を調製できる[ 以下の表題「抗体」を
参照] 。本発明の好ましい例としての免疫学的検定法の形式は、サンドイッチ型
の、ビーズ結合免疫学的検定法である。
rvorst FBL, Cornelis RS, Bout M, van Vliet M, Oosterwijk JC, Olmer Rensk
e et al., “タンパク質切断テストによるBRCA1 突然変異の素早い検出” Natu
re Genetics 10: 208-212(1995); Genbank Database, http://www.ncbi.nlm.nih
.gov/irx/cgi-bin/birx_doc?genbank] 。mRNA は5711 塩基対の長さであり、染
色体17q21 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断を有する症例のパー
センテージは90 %である[Hogervorst et al.(1995), supra] 。BRCA1 タンパク
質に対するモノクローナル抗体は、Upstate Biotechnology 社[Waltham, MA(USA
)] およびOncogene Reseatch Products[Cambridge, MA(USA)] から市販されてい
る。
J.M., Wooster, R., Mangion, J., Phelan, C.M., Cochran, C., Gumbs, C. et
al., “一次乳癌および卵巣癌におけるBRCA2 突然変異” Nature Genetics, 13
: 238-240(1996); Genbank Database, supra] 。mRNA は10,987 塩基対の長さで
あり、染色体13q12-q13 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断を有す
る症例のパーセンテージは90 %である[Lancaster et al., supra] 。BRCA2 タ
ンパク質に対するポリクローナル抗体は、Lab Vision 社[Fremont, CA(USA)] 、
Oncogene Reseatch Products[Cambridge, MA(USA)] およびSanta Cruz Biotechn
ology[Santa Cruz, CA(USA)] から市販されている。
rald, M.G., Bean, J.M., Hegde, S.R., Unsal, H., MacDonald, D.J., Harkin,
D.P. et al., “異型接合体ATM 突然変異は、乳癌の初期段階の一因ではない
” Nature Genetics, 15: 307-310(1997); Genbank Database, supra] 。mRNA
は9385 塩基対の長さであり、染色体11q22-q23 上に位置する。突然変異を起こ
すタンパク質切断を有する症例のパーセンテージは90 %である[Fitzgerald et
al., supra] 。ATM タンパク質に対する抗体は、Serotec 社[Kidlington, Oxfor
d(UK)] から市販されている。
., “逆転写ポリメラーゼ連鎖反応技術およびタンパク質切断テストの使用によ
るリンパ球中のCFTR フレームシフト突然変異の転写分析” Hum. Genet., 98: 3
28-332(1996); Genbank Database, supra] 。mRNA は6129 塩基対の長さであり
、染色体7q31.3 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断を有する症例
のパーセンテージは15 %である[Romey et al., supra] 。CFTR タンパク質に対
する市販されている抗体は、Linscott の索引に記載されていない。
る[Roset et al., “翻訳を終了させる突然変異を素早く検出するためのタンパ
ク質切断テスト(PTT) ” Hum. Mol. Genet., 2: 1719-1721(1993); Gardner et
al., “逆転写PCR およびタンパク質切断テストの使用によるデュシェーヌ筋ジ
ストロフィー患者における点突然変異の同定” Am. J. Hum. Genet., 57: 311(1
995); Genbank Database, supra] 。mRNA は2110 塩基対の長さであり、染色体x
p21.3-p21.1 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断を有する症例のパ
ーセンテージは95 %である[Roest et al., supra; Gardner et al., supra] 。
DMD タンパク質のカルボキシ末端部に対する抗体は、Biomedia 社[Foster City,
CA(USA)] 、Biogenesis 社[Sandown, NH(USA)] 、およびBiogenix Labs[San Ra
mon, CA(USA)] から市販されている。DMD タンパク質のN 末端部に対する抗体も
また、これらの会社から市販されている。
原因である[Leiden, unpublished as cited in Hogervorst, F.B.L., ”タンパ
ク質切断テスト” Promega Notes Magazine, 62: 7-14(1997)] 。mRNA は503 塩
基対の長さであり、染色体Xq28 上に位置する。タンパク質切断を有する症例の
パーセンテージは80 %である[Leiden, supra] 。EMD タンパク質に対する抗体
は、市販されているものとしてLinscott の索引に記載されていない。
et al., “主要なファンコーニ貧血遺伝子であるFAA についてのcDNA の発現
クローニング” Nat. Genet., 14: 320-323(1996); Genbank Database, supra]
。mRNA は5503 塩基対の長さであり、染色体16q24.3 上に位置する。突然変異を
起こすタンパク質切断を有する症例のパーセンテージは80 %である[Lo Ten Foe
et al., supra] 。FAA タンパク質に対する抗体は、市販されているものとして
Linscott の索引に記載されていない。
t al., Am. J. Hum. Genet., 55: A223(1994); Genbank Database, supra] 。mR
NA は36845 塩基対の長さであり、染色体xq27.3-q28 上に位置する。突然変異を
起こすタンパク質切断を有する症例のパーセンテージは〜50 %である[Hogerbor
st et al.(1994), supra] 。IDS タンパク質に対する抗体は、市販されているも
のとしてLinscott の索引に記載されていない。
t al., “切断されたNF1 タンパク質についてのスクリーニング” Net. Genet.
8: 218-219(1994); Genbank Database, supra] 。mRNA は9026 塩基対の長さで
あり、染色体17q11.2 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断を有する
症例のパーセンテージは50 %である[Hein et al., supra] 。NF1 タンパク質に
対する抗体は、市販されているものとしてLinscott の索引に記載されていない
。
Collin et al., “神経繊維腫症2 を有する患者の突然変異分析” Am. J. Hum.
Genet. 55: 314(1994); Genbank Database, supra] 。mRNA は339 塩基対の長
さであり、染色体22q11-q13.1 上に位置する。突然変異を起こすタンパク質切断
を有する症例のパーセンテージは65 %である[MacCollin et al., supra] 。NF2
タンパク質に対する抗体は、Transduction Labs[Lexington, KY(USA)] から市
販されている。
l., “多発性嚢胞腎症1 遺伝子は、14kb の転写物をコードし、染色体16 上の
重複領域内に存在する” Cell, 77: 881-894(1994); Roelfsema and Breuning(A
bstract), Am. Soc. Hum. Genet.: A240(1994); Genbank Database, supra] 。m
RNA は53522 塩基対の長さであり、染色体16p13.3 上に位置する。突然変異を起
こすタンパク質切断を有する症例のパーセンテージは95 %である[Roelfsema an
d Breuning, supra] 。PKD1 タンパク質に対する抗体は、市販されているものと
してLinscott の索引に記載されていない。
et al., “基底細胞母斑症候群についての候補遺伝子であるパッチ物のヒト相
同体” Science, 272, 1668-1671(1996); Genbank Database, supra] 。mRNA は
6568 塩基対の長さであり、染色体9q22/3 上に位置する。PTCH 遺伝子中の突然
変異は、タンパク質を切断し得ることが知られている[Johnson et al., supra;
Hahn et al., Cell, 85: 841-851(1996); Gailani et al., Nature Gen., 14: 7
8-81(1996); Unden et al., Cancer Res., 56: 4562-4565(1996); およびWickin
g et al., Am. J. Hum. Genet., 60: 21-26(1997)] 。PTCH タンパク質に対する
抗体は、市販されているものとしてLinscott の索引に記載されていない。
et al., Genes Dev., 8(7): 770-782(1994); Schaefer et al., J. Biol. Chem.
, 271(23): 13484-13496(1996); Genbank Database, supra] 。mRNA は40433 塩
基対の長さであり、染色体6q22 上に位置する。この遺伝子中の突然変異はタン
パク質切断を起こし得ることが知られている[Tomita et al., “ヒト白血性細
胞系TK-6 中の切断されたc-myb 発現” Leukemia, 12: 1422-1499(1998); Jiang
et al., “急に始まるB 細胞リンパ腫におけるc-myb 遺伝子産物の最小切断”
J. Virol., 71: 6526-6533(1997)] 。c-myb タンパク質に対する抗体は、Upsta
te Biotechnology 社[Waltham, MA(USA)] から市販されている。
“リンダウ病腫瘍抑制遺伝子の同定” Science, 260: 1317-1320(1993); Genb
ank Database, supra] 。mRNA は14543 塩基対の長さであり、染色体3p25 上に
位置する。この遺伝子中の突然変異はタンパク質切断を起こし得ることが知られ
ている[Olschwang et al., “リンダウ病および散在性血管芽細胞腫中のVHL 遺
伝子の生殖細胞系突然変異特性” Human Mutation, 12: 424-430(1998); Ye et
al., “リンダウ病遺伝子産物の亜細胞性局在は、細胞周期依存性である” Int
ernational Journal of Cancer, 78: 62-69(1998); Maher et al., “リンダウ
病における表現型発現−生殖細胞系VHL 遺伝子突然変異との相関” Journal of
Medical Genetics, 33: 328-332(1996); Crossey et al., “リンダウ病腫瘍抑
制遺伝子における遺伝子内突然変異の同定および病気の表現型との相関” Human
Molecular Genetics, 3: 1303-1308(1994); Shuin et al., “頻繁な体細胞突
然変異および一次ヒト腎細胞癌におけるリンダウ病腫瘍抑制遺伝子の異型接合の
喪失” Cancer Research, 54: 2852-2855(1994)] 。リンダウ(VHL) 病は、優性
遺伝性家族性癌症候群であり、網膜、小脳および脊髄性血管芽細胞腫、腎細胞癌
、褐色細胞腫および膵臓癌になりやすい[Glavavc et al., “VHL 腫瘍抑制遺伝
子中の突然変異および中央ヨーロッパからのリンダウ病を有する家族における関
連する病巣” Hum. Genet., 98(3): 271-280(1996)] 。対立遺伝子喪失およびVH
L 遺伝子の突然変異は、散在性腎細胞癌 [Brauch et al., “ヒッペル−ランド
ー症候群および散在性腎細胞癌” Pathologe, 16(5): 321-327(1995)] および
小脳血管芽細胞腫[Lee et al., “散在性小脳血管芽細胞腫におけるリンダウ遺
伝子の異型接合および突然変異の喪失” Proc. Annu. Meet. Am. Assoc. Cancer
Res., 38: A3600(1997)] に関係するのと同様に腫瘍発生に関係することが示さ
れている。タンパク質に対する抗体は、Oncogene Research Products(Cambridge
, MA) およびPharMingen[San Diego, CA(USA)] から市販されている。
原因である[Bussemakers et al., “ヒトE- カドヘリンcDNA の分子クローニン
グおよび特徴付け” Mol. Biol. Rep., 17: 123-128(1993); Genbank Database,
supra] 。mRNA は248 塩基対の長さであり、染色体16q22.1 上に位置する。こ
の遺伝子中の突然変異は、タンパク質を切断し得ることが知られている[Guilfor
d et al., “家族性胃癌におけるE- カドヘリン生殖細胞系突然変異” Nature,
392: 402-405(1998); Vos et al., “胸部におけるインサイチュの小葉癌中の
E- カドヘリン不活性化:腫瘍形成の初期イベント” British Journal of Cance
r, 76: 1131-1133(1997); Berx et al., “E- カドヘリンは、細胞外領域にお
ける切断突然変異により多くの侵入性ヒト小葉乳癌において不活性化される” O
ncogene, 13: 1919-1925(1996); Berx et al., “E- カドヘリンは、ヒト小葉
乳癌において突然変異される腫瘍侵入抑制遺伝子である” EMBO Journal, 14: 6
107-6115(1995)] 。E- カドヘリンタンパク質に対する抗体は、ICN Biomedicals
[Costa Mesa, CA(USA)] 、Biogenex Labs[San Ramon, CA(USA)] 、Zymed Labs[S
outh San Francisco, CA(USA)] 、American Research Products(Belmont, MA)
、およびImmunotech SA[Marseilles, France] から市販されている。
れる)中の突然変異は、家族性黒色腫の原因である[Hussussian et al., “家
族性黒色腫中の生殖細胞系p16 突然変異” Nature Genetics, 8: 15(1994); Gen
bank Database, supra] 。mRNA は422 塩基対の長さであり、染色体9p21 上に位
置する。この遺伝子中の突然変異は、タンパク質を切断し得ることが知られてい
る[Monzon et al., “多発性一次黒色腫中のCDKN2A 突然変異” N. Engl. J. M
ed., 338(13): 879-887(1998)] 。Pp16 タンパク質に対する抗体は、Alexis 社[
San Diego, CA(USA)] 、PharMingen[San Diego, CA(USA)] およびOncogene Rese
arch Products[Cambridge, MA(USA)] から市販されている。
方法の自動化を容易にするためにおよび所要時間を短くするために、本発明の免
疫学的検定法において捕捉抗体を磁気粒子に結合してもよい。
ィングDynabeads (登録商標)および標的タンパク質に対するウサギ抗体のよう
な市販されている技術を使用することにより、またはDynal 社からのM-450 トシ
ル活性化Dynabesds を使用し関連抗体を共有結合させることにより、抗体をその
ような磁気ビーズに結合できる。あるいは、グルタルアルデヒドのような試薬を
使用して、対象抗体を固体支持体、好ましくは磁気粒子に共有結合させてもよい
。結合剤の例には、チオエステル、カルボジイミド、スクシンイミドエステル、
ジイソシアネート、グルタルアルデヒド、ジアゾベンゼンおよびヘキサメチレン
ジアミンのような有機化合物が含まれる。
に基づく、サンドイッチ型の免疫学的検定法で定量することができる。そのよう
なアッセイは、市販されている自動化免疫学的検定法システムに統合できる。
化学発光システム[Bayer 社; Tarrytown, NY およびMedfield, MA(USA); ACS:18
0 PLUS システム; ACS:180 SE システム; およびACS: CENTAUR (登録商標)シ
ステムを含む] である。ACS:180 (登録商標)自動化免疫学的検定法システムは
、Dudley, B.S., J. Clin. Immunoassay, 14(2): 77(Summer 1991) に記載され
ている。該システムは、トレーサーとして化学発光標識をおよび固相試薬として
常磁性粒子(PMP) を使用する。ACS:180 システムは、競合結合およびサンドイッ
チ型アッセイを適応させ、それぞれの工程は自動化されている。ACS:180 は、利
用可能な表面積を最大にするミクロンのサイズの常磁性粒子を使用し、遠心分離
せずに結合したトレーサーを結合していないトレーサーと急速に磁気で分離する
方法を提供する。試薬は、同時にまたは連続的に加えてもよい。酵素的標識のよ
うな他の標識を、アクリジニウムエステルのような化学発光標識の代わりに使用
してもよい。化学発光シグナルは、好ましくはルミノメーターにより検出する。
また好ましいのは、Bayer Immuno 1 (登録商標)免疫学的検定法システムであ
る。
れるMMR タンパク質についてのウェスタンブロット分析について使用されるもの
により例示される。ポジティブコントロールは、健康な正常体からの細胞系でも
よい。ネガティブコントロールは、突然変異遺伝子産物についての同型接合であ
ることが知られている細胞系、例えばHCT116 細胞(突然変異MLH1 タンパク質に
ついての同型接合)およびLoVo 細胞(突然変異MSH2 タンパク質についての同型
接合)でもよい。
めの自動化免疫学的検定法形式の例には、以下のものが含まれる:(1)磁気ビ
ーズに結合した、遺伝子産物に特異的な、例えば該遺伝子産物のアミノ末端に特
異的な第一の一次抗体;(2)細胞溶解産物を前記第一の一次抗体によりコーテ
ィングされた前記磁気ビーズと共にインキュベートし;(3)非特異的結合を減
少させるために洗浄し;(4)全長遺伝子産物のカルボキシル末端に特異的な大
にの一次抗体であって、直接標識されている、このましくは化学発光標識されて
いる抗体;および(5)前記標識から、シグナルレベルが前記細胞溶解産物中の
遺伝子産物の量に比例するシグナルを検出および定量する。遺伝子産物のカルボ
キシル末端に特異的な抗体につながったレポーターシステムは、定量されるのが
全長タンパク質である場合に好ましい。
易に考えられる。例えば、そのようなアッセイ形式を変更して、例えばMLH1 お
よびMSH2 のような二つの遺伝子産物、または例えばAPC およびチューブリンの
ような遺伝子産物および関連タンパク質、またはβ−アクチンまたはGAPH を、
同じ細胞溶解産物サンプル中で、好ましくは同時に、検出および定量できる。概
説された形式の例において、二つの抗体のセットを使用し、それぞれのセットは
標的タンパク質上の異なるエピトープを認識する二つの一次抗体を含む。
端に対するマウスの抗MSH2 MAb を、Dynabeads (登録商標)(M-450 トシル活
性化; Dynal 社)のようなビーズに共有結合させてもよい。前記モノクローナル
抗体に結合されたビーズを細胞溶解産物と共にインキュベートし、その後洗浄す
る。次に前記洗浄されたビーズを、例えば第二の一次抗体として、MSH2 のカル
ボキシル末端に対するマウスMAb のような、マウスの抗MSH2 、AB1 と共にイン
キュベートする。
oducts からのAB2 )のような抗MLH1 抗体を、M-280 ヒツジ抗ウサギIgG コーテ
ィングされたDynabeads (登録商標)に結合してもよい。第二の一次抗体は、突
然変異体MLH1[Thibodeau et al., Cancer Res., 56: 4836(1996)] ではなく全長
MLH1 に結合するマウスの抗MLH1 MAb[ 例えばClone G168-728; PharMingen, (Sa
n Diego, CA)] でもよい。
産物サンプルにおける、より好ましくは結腸腫瘍(腺腫、癌)を有する被験者の
PBL から、または結腸腫瘍を有する被験者および対照の被験者の家族構成員から
の溶解産物における、MLH1 対MSH2 の全長タンパク質レベルの割合、または野生
型タンパク質対関連タンパク質のレベルの割合が得られる。異常なMLH1/MSH2 は
、発現する野生型の、全長遺伝子産物の量が減少することが示される遺伝子中の
突然変異を示す。
しくは抗原結合領域を含有する断片を含むと定義される。さらに抗体の定義には
、二重特異性抗体が含まれる。
より調製してもよい。抗体断片は、好ましくは超可変領域を含む軽鎖および/ま
たは重鎖の可変領域(VH およびVL) から、およびさらに好ましくはVH およびVL
の両方から遺伝的に処理してもよい。例えば、ここで用いたように「抗体」とい
う用語には、特に「一価」抗体[Glennie et al., Nature, 295: 712(1982)] ;
共有結合したまたは共有結合していないFab ’およびF(ab ’)2 断片を含むFab
タンパク質;軽鎖または重鎖のみ、好ましくは可変重鎖および軽鎖領域(VH およ
びVL 領域) を含み、より好ましくは超可変領域[ さもなければ前記VH およびVL 領域の相補性決定領域(CDR) として知られる] ;Fc タンパク質;一つ以上の抗
原を結合できる「ハイブリッド」抗体;恒常可変領域キメラ;異なる起源の重鎖
および軽鎖を有する「合成」免疫グロブリン;一般的なっ組換え技術およびオリ
ゴヌクレオチド有向突然変異誘発技術により調製された改良された特異性および
他の特性を有する「変化した」抗体[Dalbadie- McFarland et al., PNAS(USA),
79: 6409(1982)] を含む、ポリクローナルおよびモノクローナル抗体およびその
生物学的活性断片が含まれる。
り産生できる。二重特異性MAb は好ましくは、二つのハイブリドーマの体細胞ハ
イブリダイゼーションにより発生できる。二つの標的タンパク質を標的とするた
めの二重特異性MAb は、一つの標的の特異的MAb を産生するハイブリドーマを別
の標的タンパク質に特異的なMAb を産生するハイブリドーマと融合することによ
り産生できる。生じたクアッドローマ(quadroma) をスクリーニングして、親のM
Ab の特異性を有するハイブリッド抗体を産生するクアッドローマを選択するこ
とができる。
ル抗体を作製するための従来技術が存在する[ 例えば、Galfre and Milstein,
“モノクローナル抗体の調製:方法および工程” in Methods in Enzymology: I
mmunochemical Techniques, 73: 1-46(Langone and Vanatis (eds); Academic P
ress; 1981); and in the classic reference, Kohler and Milstein, Nature,
256: 495-497(1975)] 。本発明のための特異的なモノクローナル抗体は、適切な
哺乳類、好ましくは必要ならキャリアタンパク質に結合した、適切な免疫抗原を
有するネズミ、より好ましくはウサギ、ラット、またはマウスを免疫化すること
により調製できる。本発明のアッセイにおいて有用な特に好ましい抗体は、対象
野生型タンパク質のアミノ末端またはカルボキシル末端上のエピトープに方向付
けられたネズミモノクローナル抗体である。
でき、ヒト/ヒトハイブリドーマ[Olsson et al., PNAS(USA), 77: 5429(1980)]
およびヒト/ネズミハイブリドーマ[Schlom et al., PNAS(USA), 77: 6841(198
0); Shearman et al. J. Immunol., 146: 928-935(1991); and Goman et al., P
NAS(USA), 88: 4181-4185(1991)] を特に調製することができる。
された)に記載されているように当該技術における従来の方法により作製される
。簡単に言えば、そのような抗ペプチド抗体は、標的のアミノ酸配列からペプチ
ドを選択し、化学的に合成し、適切な免疫原性タンパク質に結合させ、適切な動
物、通常ウサギまたはマウス中に注射することにより調製される;次に、ポリク
ローナルまたはモノクローナル抗体を、後者を例えばKohler-Milstein 法により
作製する。
る抗体を産生することができる。例えば、抗体V 遺伝子をクローン化し発現する
ためのPCR を使用することによりおよび結合活性を有する断片をコードする抗体
遺伝子を選択するためのファージ表示技術を使用することにより、免疫化された
マウスまたはヒトを使用するPCR 増幅されたV 遺伝子のレパートリーから抗体断
片が単離される[ 参考のためMarks et al., BioTechnology, 10: 779(1992 年7
月); Chiang et al., BioTechniques, 7(4): 360(1989); Ward et al., Nature,
341: 544(1989 年10 月); Marks et al., J. Mol. Biol., 222: 581(1991); Cl
ackson et al., Nature, 352(1991 年8 月15 日); and Mullinax et al., PNAS(
USA), 87: 8095(1990 年10 月)] 。
より抗体を調製するための方法の記載は、米国特許第4,816,567 号(1989 年3
月28 日に出願された);欧州特許出願公開番号(EP) 第338,745 号(1989 年10
月25 日に出願された);同第368,684 号(1990 年5 月16 日に出願された);
同第239,400 号(1987 年9 月30 日に出願された)、国際特許出願公開第90/144
24 号(1990 年11 月29 日に出願された);同第90/14430 号(1990 年5 月16
日に出願された);Huse et al., Science, 246: 1275(Dec. 8, 1989); Marks e
t al., BioTechnology, 10: 779(July 1992); La Sastry et al., PNAS(USA), 8
6: 5728(August 1989); Chiang et al., BioTechniques, 7(40): 360(1989); Or
landi et al., PNAS(USA), 86: 3833(May 1989); Ward et al. Nature, 341: 54
4(October 12, 1989); Marks et al., J. Mol. Biol., 222: 581(1991); and Ho
ogenboom et al., Nucleic Acids Res., 19(15): 4133(1991) に見ることができ
る。
使用される任意の表面でよい。例えば、固相は粒子からなってもよい;例えばガ
ラス、ポリスチレンビーズのようなビーズの表面でもよい;または、例えば遠心
分離管、カラム、マイクロタイタープレートウェル、フィルタ、膜およびチュー
ブのような任意の様々の容器の固体の壁面でもよい。
から4.0 ミクロンまでの範囲のサイズであることが好ましい。磁性または磁化
可能な粒子は好ましい粒子からなる固相であり、マイクロタイタープレートウェ
ルは好ましい固体壁面である。磁性または磁化可能な粒子は、本発明の方法の工
程を自動化免疫学的検定法システムにおいて行う場合に特に好ましい。
体を、可視のまたは可視にできるシグナルを生ずる任意の方法で、直接または間
接に標識してもよい。検出可能なマーカー物質には、3H 、125I および131I の
ような放射性核種;フルオレセインイソチオシアネートおよび他の蛍光色素、フ
ィコビリタンパク質、フィコエリトリン、希土類キレート、テキサスレッド、ダ
ンシルおよびローダミンのような蛍光剤;比色試薬(クロモーゲン);コロイド
金のような電子不透明物質;生物発光;化学発光;色素;特にホースラディッシ
ュペルオキシダーゼ、アルカリ性ホスファターゼ、グルコースオキシダーゼ、グ
ルコース−6 −ホスフェートデヒドロゲナーゼ、アセチルコリンエステラーゼ、
α−、β−ガラクトシダーゼのような酵素;酵素基質;酵素補因子;酵素阻害剤
;酵素サブユニット;金属イオン;フリーラジカル;または形成された免疫複合
体の存在または量を検出または測定する方法を提供する任意の他の免疫学的に活
性のまたは不活性の物質が含まれる。酵素基質の組合せの例は、ホースラディッ
シュペルオキシダーゼおよびテトラメチルベンジジン(TMB) 、およびあるか理性
ホスファターゼおよびパラニトロフェニルホスフェート(pNPP) である。
グナル、生物発光(BL) または化学発光(CL) が産生される。化学発光(CL) また
は生物発光(BL) アッセイにおいて、強度または全体の発光が測定され、未知の
分析物の濃度に関連する。ルミノメーター(検出器としての光電子増倍管)また
は電荷結合素子を使用して定量的に、または写真またはX 線フィルムにより質的
に光を測定できる。そのようなアッセイを使用する主な利点は、簡単さおよび分
析の感度であり、非常に少量の分析物の検出および/または定量が可能となる。
ボキシアミド、ルミノール、ウンベリフェロン、イソルミノール誘導体、エクオ
リンのような発光タンパク質、およびホタル、海洋性のバクテリア、Vargulla
およびRenilla からのルシフェラーゼである。ルミノールは、必要に応じて、好
ましくは4 −ヨードフェノールまたは4 −ヒドロキシ−ケイ皮酸からなる群より
選択されるエンハンサー分子と共に使用してもよい。アクリジニウムエステルは
、本発明によるCL 標識の好ましいタイプの一つである。通常、CL シグナルは、
基礎条件下で酸化剤の処理により産生される。
なマーカー)が産生されるものである。CL およびBL 検出計画が、特にアルカリ
性ホスファターゼ(AP) 、グルコースオキシダーゼ、グルコース6 −ホスフェー
トデヒドロゲナーゼ、ホースラディッシュペルオキシダーゼ(HRP) 、およびキサ
ンチン−オキシダーゼ標識のアッセイについて発達した。AP およびHRP は、CL
およびBL 反応の範囲により定量できる二つの好ましい酵素標識である。例えば
、エンハンサー分子、好ましくは1 −(トリオクチルホスフォニウムメチル)−
4 −(トリブチルホスフォニウムメチル)ベンゼンジオクロライドを使用してま
たは使用せずに、アダマンチル1,2 −ジオキセタンアリールホスフェート基質(
例えばAMPPD またはCSPD ;[Kricka, L.J., “化学発光および生物発光による
分析” at p. 167, Molecular Biology and Biotechnology: A Comprehensive D
esk Reference(ed. R.A. Meyers)(VCH Publishers; N.Y., N.Y.; 1995)] ;好ま
しくは4 −メトキシ−4 −(3 −ホスフェートフェニル)スピロ[1,2 −ジオキ
セタン−3,2 ’−アダマンタン] の二ナトリウム塩)と共にAP を使用してもよ
い。HRP は好ましくは、2 ’、3 ’、6 ’−トリフルオロフェニル3 −メトキシ
−10 −メチルアクリダン−9 −カルボキシレートのような基質と共に使用する
。
などの分析に適合できる。例えば、ルミノール、ホタルルシフェラーゼ、および
海洋性バクテリアのルシフェラーゼ反応は、それぞれペルオキシド、ATP 、およ
びNADPH の産生または消費の指示反応である。これらをオキシダーゼ、キナーゼ
、およびデヒドロゲナーゼを含む他の反応物に結合してもよく、結合した反応物
の任意の成分(酵素、基質、補因子)の測定に使用できる。
は間接に結合してもよい。検出可能な標識の間接結合の例は、抗体とマーカーと
の間の結合対の使用またはシグナル増幅システムの使用である。
る結合対の例は、ビオチン/アビジン、ストレプタビジン、または抗ビオチン;
アビジン/抗アビジン;チロキシン/チロキシン−結合グロブリン;抗原/抗体
;抗体/抗−抗体;炭水化物/レクチン;ハプテン/抗ハプテン抗体;色素およ
び疎水性分子/疎水性タンパク質結合部位;酵素阻害剤、補酵素または補因子/
酵素;ポリ核酸/相同性ポリ核酸配列;フルオレセイン/抗フルオレセイン;ジ
ニトロフェノール/抗ジニトロフェノール;ビタミンB12 /内因子;コルチゾン
、コルチゾル/コルチゾル結合タンパク質;および特異的なレセプタータンパク
質に対するリガンド/膜関連特異的レセプタータンパク質である。本発明による
好ましい結合対は、ビオチン/アビジンまたはストレプタビジン、より好ましく
はビオチン/ストレプタビジンである。
て知られている。例えば、抗体は共有結合でまたは非共有結合で結合してもよい
。抗体結合方法の例は、Avarmeas et al., Scan, J. Immunol., 8(Suppl. 7): 7
(1978); Bayer et al., Meth. Enzymol., 62: 308(1979); Cahndler et al., J.
Immunol. Meth., 53: 187(1982); Ekeke and Abuknesha, J. Steroid Biochem.
, 11: 1579(1979); Engvall and Perlmann, J. Immunol., 109: 129(1972); Geo
ghegan et al., Immunol. Comm., 7: 1(1978); and Wilson and Nakane, Immuno
fluorescence and Related Techniques, p. 215[Elsevier/North Holland Biome
dical Press; Amsterdam(1978)] に記載されている。
。蛍光剤について、多くの蛍光計を利用できる。化学発光について、ルミノメー
ターまたはフィルムを利用できる。酵素により、蛍光、化学発光、または色のつ
いた産物を、蛍光計により、ルミノメーターにより、吸光光度計によりまたは視
覚的に測定できる。
系を有する様々の種類の化学発光化合物が、好ましい標識である。アクリジニウ
ムおよびベンゾアクリジニウムエステルは、目下より好ましい化学発光化合物で
あり、好ましいアクリジニウムエステルには、当該技術においてよく知られるア
クリジニウム、ベンゾ[a] アクリジニウム、ベンゾ[b] アクリジニウム、ベンゾ
[c] アクリジニウム、ベンゾイミダゾール陽イオン、キノリニウム、イソキノリ
ニウム、キノリジニウム、環状の置換されたキノリニウム、フェナントリジニウ
ム、およびキノキサリニウムのような環式系を含む陽性酸化状態で異種原子を含
有する複素環または複素環系を有する化合物が含まれる。
うに当業者によく知られる、アクリジニウムまたはベンゾアクリジニウムエステ
ル上に存在する反応性の官能基を直接または間接に選択された抗体に結合させる
ことにより、トレーサーを調製してもよい。特に好ましい化合物は、アリール環
のパラまたはメタ位置に存在するアリール環遊離基および反応性の官能基を有す
るアクリジニウムおよびベンゾアクリジニウムエステルである[ 米国特許第4,74
5,181 号および国際特許出願公開第94/21823 号参照] 。
とは、当業者にとって明らかであり、容易に行うことができるということを理解
すべきである。以下の実施例は例示のためのものであり、いかなる意味において
も本発明を制限するものではない。
ることが知られるFAP 患者のリンパ球から全長APC を免疫沈降するために、本研
究において抗APC 抗体を使用した。この研究により、FAP 患者からのリンパ芽球
細胞は生殖細胞系APC 突然変異を有しない対照と比較して約50 %少ない(50.1%
±5.1%) 免疫沈降可能な全長APC タンパク質を有することが示されたことにおい
て、本発明の免疫学的検定法の根底にある理論が支持される。結果は、FAP 細胞
中の異型接合APC 遺伝子型と相関する。
ルボキシル領域に対する抗体を使用するAPC 遺伝子産物のラジオイムノアッセイ
” Biochem. Biophys. Res. Commun., 206: 909-915(1995); Chop et al., “
ヒト結腸組織中の全長APC 遺伝子産物の存在または不存在の免疫検出” Antican
cer Res., 15: 991-998(1995)] 、本発明者の実験室で産生された抗APC ポリク
ローナルウサギ抗体(APC-2) を使用して、免疫沈降分析を行った。APC-2 抗体は
、APC タンパク質の中央領域に位置する限定されたエピトープ(アミノ酸1336
−1350 )を標的とする。この抗体は、全長APC タンパク質に対して活性である
が、多くのFAP 個体中で生殖細胞系APC 突然変異により引き起こされる切断され
たAPC タンパク質(APC-2 エピトープを欠く)に対して活性ではない。
メリカンタイプカルチャーコレクション[ATCC, Manassas, VA(USA)] から得た。
HCT116 細胞を、37 ℃において10 %の胎仔ウシ血清[Sigma Chemical Co., St L
ouis, MO(USA)] を含有するDMEM および95 %空気/5 %CO2 の湿った空気中で
培養した。25cm2 のプラスチック組織培養フラスコ[Corning Glass, Corning, N
Y(USA)] 中で約60 −80 %融合したHCT116 細胞の培養物(約3 ×106 細胞)を
、リン酸緩衝化生理食塩水[PBS, Sigma] で3 度洗浄し、フラスコの底を機械で
こすり、遠心分離によりペレット状にし、その後免疫沈降のために溶解させた。
を調べた。培養液への末梢リンパ球のエプスタイン−バーウィルス形質転換によ
るこれらの細胞系の確立は、他の文献に記載されている[Spirio et al., “APC
遺伝子の対立遺伝子:家族性ポリープ症の弱毒化形態” Cell, 75: 951-957(19
93)] 。そのような細胞を、10 %のFBS を含有するRPMI 1640 を有する懸濁培養
液中で培養した。リンパ芽球懸濁培養液を、フラスコからこすらずに遠心分離に
よりペレット状にした以外はHCT116 細胞と同様に処理した。
でないFAP 家族において病気に冒されている構成員から生じた[Lynch et al.,
“結腸腹臥家系の平面腺腫” J. Natl. Cancer Inst., 80: 278-282(1988); Lyn
ch et al., “遺伝性結腸直腸癌” Semin. Oncol., 18: 337-366(1991)] 。こ
れらの家族は、詳細な家族歴および遺伝連鎖に基づくFAP の基準を満たした[Lyn
ch et al.(1991), supra; Spirio et al., ”腺腫様結腸ポリポーシス(APC) 遺
伝子座への腺腫様結腸ポリポーシス変化したまたは弱毒化した形態の結合” Am.
J. Hum. Genet., 51: 92-100(1992)] 。
家族2764 中の個体IV-17 から)、FAP#3 (家系3101 中の個体IV-26 から)、お
よびFAP#4 (家系6 中の個体V-15 から)が含まれた。APC 生殖細胞系突然変異
を、以下のようにしてこれらの家族において同定した[Spirio(1993), supra] 。
二つの血縁でない家族2764 および3101 は、エキソン4 に同一のAPC 突然変異を
有し(ヌクレオチドの変化:TCATTG →TCTG )、これにより145 アミノ酸のAPC
ペプチドが切断される。家系6 は、エキソン3 にAPC 突然変異を含み(TAGATAGC
→TAGC )、これにより長さ83 アミノ酸のAPC ペプチドが切断される。
中約3 ×106 細胞)、並びに懸濁培養されたリンパ芽球細胞(107 の正常なまた
はFAP 不朽化WBC )を、プロテアーゼおよびホスファターゼ阻害剤(1mM EGTA,
12mM EDTA, 4.3mM Na2MoO4, 1mM Na3VO4, 50mM リン酸塩[Na+ 塩], 0.5mM ジ
チオトレイトール(DTT), および0.5mM フェニルメチルスルホニルフッ化物[PMS
F] )を含有する3mL のRIPA 緩衝剤(0.1% SDS, 0.5% デオキシコール酸塩,1%
Nonidet P-49, 100mM NaCl, 10mM Tris[pH 7.4] )で溶解した。細胞溶解産物を
ボルテックスし、ミクロフュージ(エッペンドルフ)中4 ℃で10 分間13,000rpm
で遠心分離し、上澄を集めた。それぞれの上澄中のタンパク質濃度を、Bio-Rad
タンパク質アッセイキット(Hercules, CA) を使用して測定した後、それぞれの
上澄のタンパク質濃度を等しく4.35mg/ml に調整した。
のウサギ血清(25 μl/ml) および50 %スラリーのタンパク質A- セファロースCL
48 ビーズ(15 μl/ml, Sigma) とともに4 ℃で1 時間インキュベートした。サン
プルを15 分間上述のように遠心分離し、上澄を免疫沈降のために保持した。次
に抗APC 血清(APC-2) を溶解産物に加えた。サンプルを4 ℃で一晩インキュベー
トした。次にタンパク質A- セファロース4B CL ビーズを加え(50 %スラリーの
15 μl/ml )、サンプルを4 ℃で1 時間ロッキングプラットホーム(rocking pla
tform) 上でインキュベートした。タンパク質A- セファロース4B CL 混合物を、
上述のように3 分間遠心分離することによりペレット状にし、10mM NaCl を含有
するRIPA 溶解緩衝剤で1 度、0.5mM NaCl を含有する緩衝剤で6 度、100mM NaCl
緩衝剤でさらに1 度洗浄した。タンパク質A- セファロース4B CL ペレットをゲ
ルローディング緩衝剤(50mM Tris-HCl[pH6.8], 100mM DTT, 2% SDS, 0.2% ブロ
モフェノールブルー, 20% グリセロール)に再び懸濁し、3 分間煮沸し、遠心分
離した。上澄中に含有される免疫沈降タンパク質を、2.8 %アガロースゲルを使
用して電気泳動により分離した。
ティングにより一晩ニトロセルロース膜(0.45 μm, MSI )に移した。膜を10
%の無脂肪粉乳(PBS 中)で処理し、抗体の非特異的結合を防止し、次に室温で
一晩ポリクローナル抗APC 抗体(1:7500 の希釈におけるAPC-2 )とともにイン
キュベートした。ブロット上のタンパク質バンドを、使用説明書に従って増幅し
たアルカリ性ホスファターゼヤギ抗ウサギ免疫ブロットシステム(Bio-Rad Labor
atories) を使用して検出した。免疫沈降ブロット上のAPC タンパク質の量を、
濃度計[Speedmaster Duo-Densitometer, Electronic Systems Engineering Co.,
Cushing, OK(USA)] を使用して測定した。
FAP 家族における病気に冒された構成員に由来する4 つのFAP リンパ芽球細胞系
における全長APC の存在を、免疫沈降分析により検出した。この分析により、HC
T116 関連細胞系(全長APC タンパク質を含有することが知られている)は、野
生型APC タンパク質に対応する300kDa のバンドのタンパク質をはっきりと発現
することが示される。またこの分析により、HCT116 細胞系と比較して、健康な
被験者からのリンパ芽球細胞は等量の全長APC タンパク質を有し、FAP 被験者か
らのリンパ芽球細胞は野生型APC タンパク質がより少ないことが示される。
らのリンパ芽球細胞系における免疫沈降された全長APC の相対的レベルを示す。
HCT116 培養された癌細胞は、基準レベル(100 %)を定めるのに適した。健康
な個体に由来するリンパ芽球細胞は、HCT116 と比較して相対的に同様の量の野
生型APC タンパク質(110 %)を有した。対照的に、FAP 細胞系は、対照の39
%から60 %までの範囲のAPC レベルを有した(平均=50.5 %、SEM =5.1 %)
。
示す最初の研究(本発明者が知る限り)が記載されている。これは、結腸細胞中
の全長APC タンパク質の量はおそらく結腸腫瘍形成の基礎をなす機構における基
準因子であるので、生物学的関連性を有すると考えられる。例えば、以前は、一
つのAPC 対立遺伝子を含むAPC 突然変異により、細胞は細胞成長において他の後
天性遺伝的変化または癌原性物質により誘発される有害な効果を受けやすくなる
と仮設が設けられていた[Boman, B. M., “癌の生物分子遺伝学” In: Lynch,
H., (ed.), Genetic Epidemiology of Cancer, pp. 343-347, Boca Raton, FL C
RC Press(1989)] 。本発明の結果により、全長APC タンパク質のレベルの減少は
、一つのAPC 対立遺伝子を含むAPC 突然変異の結果として生ずることが示される
。
沈降タンパク質のレベルは、正常な対照の約50 %であったことが示される。免
疫反応性のこのレベルは、FAP 患者は一つの突然変異対立遺伝子に加えて野生型
APC 対立遺伝子を一つだけ保有すると言う事実、および遺伝子産物発現は遺伝子
量に比例するという推定と一致する。
学的検定法は、標的全長タンパク質レベルを減少させる生殖細胞系突然変異の検
出に有用であることが示される。この実施例は、そのようなアッセイを、有害な
突然変異対立遺伝子を保有する個体を診断するための簡単で、信頼でき、低費用
の方法とする助けとなる。全長APC レベルのレベルについての免疫学的検定法は
、FAP に冒されている個体を検出するための実際の診断テストとして有用でなけ
ればならない。
ばAPC のアミノ末端に対するAB1(Oncogene Research Products) を、Dynaberds
(登録商標)(M-450 Tosylactivated; Dynal Inc.) のようなビーズに共有結合
させる。前記モノクローナル抗体に結合されたビーズを、細胞溶解産物と共にイ
ンキュベートし、その後洗浄した。次に前記洗浄されたビーズを、第二の一次抗
体として、例えばAPC のカルボキシル末端に対するマウスMAb であるAB2(Oncoge
ne Research Products) のようなマウス抗APC と共にインキュベートする。
けるMLH1 およびMSH2 タンパク質(2 つの主要なMMR 遺伝子の発現産物)の測定
が記載される。ウェスタンブロット分析を含むこのアッセイにより、単一のリン
パ球サンプルにおける両方の全長タンパク質のレベルが同時に評価される。ウェ
スタンブロットによるMLH1 およびMSH2 のレベルの半定量的分析により、同じサ
ンプルについて全長MLH1 /全長MSH2 タンパク質を容易におよび直接測定できる
。
使用された方法により二つのタンパク質のそれぞれの個体の発現レベルを測定し
、一方の他方に対する割合を計算する。次に、割合の絶対値が正常な範囲に明ら
かに下がるか、または二つのタンパク質の一つの発現が50% 失われた場合に予測
される範囲に明らかに下がるか否かを決定する。
単離した末梢リンパ球を、エプスタイン−バーウィルス形質転換により不朽化し
、Spiro et al., Cell, 75: 951(1993) に記載されるようにリンパ芽球細胞系を
産生する。培養液中で7 日間後得られたリンパ芽球性リンパ球(60 から120 ×1
06 細胞)の懸濁倍溶液(15mL) 中に含有される不朽化したリンパ球を使用した。
洗浄し、4 ℃で10 分間2000rpm で遠心分離した。細胞を溶解するために、1 ×
強度のSDS ゲルローディングバッファー(50mM Tris-Cl[pH6.8] 、100mM ジチオ
トレイトール[ 新しく作製されたDTT] 、2% SDS 、0.1% ブロモフェノールブル
ー、10% グリセロール)を、それぞれの洗浄したペレットに加えた(培養した
結腸癌細胞および結腸上皮について1mL 、リンパ球およびリンパ芽球細胞につい
て200 μL )。ボルテックスを使用して細胞を完全に混合し、10 分間沸騰水槽
に入れた。次に細胞をマイクロ遠心分離機で(Beckman)10 分間遠心分離し、不溶
性の物質を沈降させ捨てた。
されたゲルのウェルの一つの中に入れた[Sambrook et al.(eds.), A Laboratory
Manual: 18.49-18.54[Cold Spring Harbor, NY(USA); 1995]] 。ポジティブコ
ントロール、ネガティブコントロールおよびタンパク質マーカー(Bio-Rad, Cat#
1610309) が常に含まれた。ポジティブコントロールには、MLH1 およびMSH2 タ
ンパク質の両方を有する正常な粘膜、SW480 およびDiFi 細胞[ ヒト直腸腺癌細
胞系;Novotny-Smith et al., J. Cell Physiol., 157: 253-262(1993)] が含ま
れた。突然変異ミスマッチ修復タンパク質についての対照には、HCT116 細胞(MS
H2 ポジティブ;MLH1 ネガティブ) およびLoVo 細胞(MLH1 ポジティブ;MSH2
ネガティブ)(ATCC CCL-229; ヒト腺癌細胞系)が含まれた。毎回泳動されたネ
ガティブコントロールは、2 %の胎仔ウシ血清(FBS; Irvine Scientific, CA; C
at.#3000) を含有する溶解産物緩衝剤であった。トラッカー色素がゲルの底を流
れ出るまで、ゲルをBioRad Protean II ゲル電気泳動装置[Biorad; Hercules, C
A(USA)] 上で電気泳動した(60 から70 ボルトで一晩)。Bio-Rad Trans-Blot S
emi-Dry 装置を使用して(Bio-Rad の使用説明書に従い)ゲル中のタンパク質を
ニトロセルロース膜[NF; MSI, Westboro, MA(USA)] に移した。
n PBS] 中でNF をプレハイブリダイズした後、ロッキングプラットフォーム上で
室温で2 時間5mL のブロッキングバッファー中で二つの一次抗体(マウスモノク
ローナル抗MSH2[Catalog #NA27; Titer=1:500; Oncogene Research Products]
およびマウスモノクローナル抗MLH1[Catalog #13291A; Titer=1:500; PharMinge
n] )とともにインキュベートすることにより、ウェスタンブロットハイブリダ
イゼーションを行った。
, 500mM NaCl, 0.05% Tween-20) で1 度洗浄した後、室温で1 時間5 %粉乳中で
第二の抗体(Bio-Rad ヤギ抗マウス抗体[GAM][Catalog #1706461; Titer=1:1000
] )と共にインキュベートした。NF を200mL のTTBS 緩衝剤で3度洗浄した後、
製造者のプロトコルに従いBio-Rad 発色溶液(Catalog #1706461) 中でインキュ
ベートした。Gateway 2000 コンピュータ(G6-200 XL) 、Hewlett Packard Scanj
et 5P スキャナ、およびUN-SCAN-ITTM スキャニングソフトウェア[ 自動化デジ
タルシステム、Silk Scientific 社;Orem, UT 84059(USA)] を使用して、MSH2
またはMLH1 タンパク質についてバンドを定量的に分析した。
スタンブロット分析を使用してMMR タンパク質を検出できることが示される。市
販されている特異的抗体を使用して(表1)、全長タンパク質についてのバンド
を、抗体が利用可能な二つのMMR 遺伝子タンパク質のそれぞれについて検出した
。ウェスタンブロット分析には、抗MLH1 および抗MSH2 の両方の抗体とのハイブ
リダイゼーションを使用して、それぞれのタンパク質についてのバンドを、MSH2
について100kDa およびMLH1 について80kDa と示した。これにより、MLH1 およ
びMSH2 のレベルの半定量(ゲルバンド上の濃度計による測定を使用する)およ
び同じサンプルについて全長MLH1 タンパク質対全長MSH2 の割合の直接の測定が
可能となった。予想されたように、バンドの分子量(MW) は、実験の誤差の範囲
内で、分析されるタンパク質についての既知の分子量と同じであった。さらに、
MSH2 およびMLH1 タンパク質について異なる市販の抗体製剤(表1)を使用した
場合、非特異的な交差反応タンパク質による偽陽性の可能性を実質的に除外して
、同一の結果が得られた。
対する抗体の信頼できる供給源が存在し、本発明の典型的な免疫学的検定法に使
用するプロトコルにおいて良好におよび低費用で作用するようである。[2]MMR
タンパク質は、ヒトリンパ球において十分なレベルで発現され、免疫学的検定法
により検出される。このことは、テストされるMMR タンパク質のそれぞれについ
て実質的なシグナルを検出し、これらのバンドが正しいMW 範囲にあることを発
見できることに基づく。[3] ウェスタンブロット分析によるMLH1 およびMSH2 の
レベルの半定量により、同じサンプルについての全長MLH1 /全長MSH2 タンパク
質の比を容易におよび直接測定できる。
、「プロモーター突然変異」とは、MSH2 またはMLH1 遺伝子の一つの対立遺伝子
からの転写を除去するものである。
質の完全な補体[DiFi およびSW480] を発現する細胞系と比較してネガティブコ
ントロール[HCT116(MSH2+; MLH1 −); およびLoVo(MSH2+; MLH1 −)] として使
用した細胞系である、MLH1 またはMSH2 において不完全な細胞系中のそれぞれの
全長MMR タンパク質の量が減少することが示された。正常なPBL 中のMMR タンパ
ク質のレベルは、ポジティブコントロールとして作用する細胞系において見られ
るレベルと近いことが分かった。
なリンパ球中で良好に検出できることが示される。細胞中の全長MMR タンパク質
レベルを、フローサイトメトリにより正確に測定できる。フローサイトメトリに
より、完全な定量的データが作製されることが予想される。
きることが示される。リンパ芽球系を使用して、二つの異なる抗MSH2 抗体を使
用して細胞内MSH2 タンパク質を検出するための条件を設定した。細胞を固定し
、透水性にした(Fix & PermTM 細胞透水性キット; Caltag Burlingame, CA を
使用する)。二つの一次抗体の一つと共に細胞をインキュベートした。一つは、
蛍光プローブ(フィコエリトリン[PE] )で予め標識した抗MSH2 AB1 である(Onc
ogene Research Products) 。他方の抗体は、蛍光イソチオシアネート[FITC] で
予め標識した抗MSH2 AB2(Oncogene Research Products) である。この抗体は、M
SH2 のカルボキシル末端に特異的である。それぞれの抗体についてのN/S 比に適
当なシグナルを与える抗体力価を測定した。細胞内MSH2 に結合する好体の量を
、FACStarPLUS フローサイトメーターシステム(登録商標)(Becton Dickinson;
San Jose, CA) を使用して定量した。計器の設定(蛍光チャンネル番号または
光電子増倍管ボルト)を調整して、相対的な蛍光強度を検出した。
のみを有することが知られている培養されたリンパ芽球細胞系中の細胞内MSH2
レベルが再現可能に検出された。抗体Ab1-PE (MSH2 アミノ末端に対する)およ
びAb2-FITC (MSH2 カルボキシル末端に対する)を使用するフローサイトメトリ
分析により、リンパ芽球細胞系における細胞内MSH2 タンパク質の存在が示され
る。
し、MSH2 タンパク質を不朽化リンパ球細胞系において質的に検出できる。[2]
全長MSH2 タンパク質のフローサイトメトリ検出は、二つの異なる抗MSH2 抗体−
AB1-PE およびAB2-FITC −を使用する検出可能なシグナルが得られるので、ほぼ
間違いなく特異的である。実際に、免疫蛍光による核染色を確かめた。[3] さら
に、本発明の好ましい自動化免疫学的検定法による分析に好ましい種類の細胞系
であるリンパ芽球細胞系を使用して、フローサイトメトリ分析を行った。
の、本発明の分析システムの実施可能性が確立された。抗MSH2 抗体を、3 つの
異なる技術を使用してビーズに結合させた:1)Ab1 抗体(MSH2 のアミノ末端
に対する)を、Dynal トシル活性化磁気ビーズに結合させた;2)ウサギポリク
ローナル抗MSH2 抗体を、ストレプタビジンコーティングされたビーズに結合さ
せた;および3)Ab1 を、架橋させるためにグルタルアルデヒドを使用して磁気
ビーズに結合させた。レポーター分子を、二つの技術によるサンドイッチに基づ
く分析において使用される第二の一次抗体(Ab2) と結合させた:a)Ab2 抗体(MS
H2 のカルボキシル末端に対する)を、FITC と結合させた(蛍光のために);こ
れらの同じ抗体を、アクリジニウムエステルに結合させた(化学発光のために)
。意義深いことに、二つのタイプのコーティングされたビーズ(トシル活性化ビ
ーズおよびストレプタビジンでコーティングされたビーズ)を使用して、および
FITC 結合した第二の一次抗体によるサンドイッチに基づくアッセイを使用して
、同様のMMR アッセイ結果を得た。例えば、フローサイトメトリにより、それぞ
れ全長MSH2 タンパク質のみを含有するDiFi 細胞およびHCT-116 細胞は、予想さ
れたように、測定可能なシグナルを有したのに対し(55 %陽性のビーズ)、突
然変異切断されたMSH2 タンパク質のみを有することが知られるネガティブコン
トロール細胞系(LoVo) は、予想されたように、ごくわずかなシグナルを有した
ということが示された。
ーズ結合した分析システムからの蛍光シグナルを検出するためにフローサイトメ
トリを使用するMSH2 についてのビーズに基づくサンドイッチ分析が作用し、定
量的であることが示される。2)このビーズに基づく技術は、自動化サンドイッ
チ型免疫学的検定法方式に容易に適合できる。
。MMR タンパク質のレベルの減少は、CRC 患者の約10 %で生ずると予想される
。陽性テストにより、HNPCC の予備的診断が示される。続いて、該予備的診断を
、切断されたタンパク質の発現と矛盾しない遺伝子型を示す分子遺伝学的テスト
により確かめることができる。
ている不朽化リンパ球を使用するHNPCC リンパ球;(2)HNPCC 家族の構成員か
らの新しいリンパ球;および(3)CRC 患者からの新しい、または冷凍されたリ
ンパ球からのタンパク質をテストできる。
テスト 分子/遺伝的テストの結果として遺伝子型が知られているHNPCC 患者からの
リンパ球を使用して、全長MMR タンパク質のレベルを測定することが可能である
。基準の対照は、遺伝子型テストにおいてHNPCC についての陰性の、および正常
なレベル(100 %)のMMR タンパク質を有すると考えられる家族構成員からの不
朽化WBC である。
い、ビーズ結合したタイプのアッセイを行う。そのような「サンドイッチ」型の
免疫学的検定法により、免疫学的検定法の特異性が増加する。
一つのMMR タンパク質のレベルが50 %減少することを示すと予想される。比較
群は、(a) 正常なヒト志願者からの新しく単離されたリンパ球;および(b) 遺伝
子型テストにおいてHNPCC について陰性の家族構成員からのWBC である。また、
正常なヒト志願者からの不朽化WBC をテストして、不朽化工程自体によりMMR タ
ンパク質のレベルが変化する可能性を評価する。この研究により、MMR タンパク
質分析における標的MMR タンパク質対関連タンパク質の割合の50 %の減少とい
う低い値は、遺伝性CRC のHNPCC 形態と関連し、その予測を可能とすることが確
かめられる。
家族歴を有するCRC 患者からのWBC サンプルを使用して、テストを行った。アム
ステルダム基準(Amsterdam Criteria) および遺伝的テストの使用により、その
ような家族のCRC 患者の70 から80 %が、HNPCC について(4 つのミスマッチ修
復遺伝子の1 つにおける突然変異)陽性の遺伝子型(分子遺伝学的テストから)
を有することが示される。
染色体優性遺伝子だからである)HNPCC 家族の構成員のうち50 %は、MMR タン
パク質のレベルが著しく減少していることを示す;(b) 突然変異遺伝子(二つの
野生型対立遺伝子の一つの欠失による)を含有する細胞により発現される一つの
MMR タンパク質のレベルは約50 %減少する;(c) 分子遺伝学的テストを使用し
て、本発明の免疫学的検定法により測定されるHNPCC の陽性および陰性診断を確
かめることができるということが予想される。このサブセクションに記載される
テストにより、現地条件下でHNPCC 家族の構成員のHNPCC を診断することについ
て本発明のアッセイの予想される価値が確かめられる。
の個体群を研究した以外は、前記の方法(2aii) と同様である。(1)すべてのC
RC 患者の10 %は、アッセイ(公表されている研究に基づく)において陽性の調
査結果の特徴により、HNPCC を有することが分かる;(2)分子遺伝学的テスト
により、アッセイにおいて陽性の個体はHNPCC 陽性であることが確かめられると
いうことが予想される。
成員についてHNPCC を診断するための本発明のアッセイの予測される価値を確か
められる。テストを変化させて、CRC 以外の癌を有するが、子宮癌のようなHNPC
C と関連することが知られる患者を研究する。そのような患者の一部がMMR 突然
変異について陽性であるか否かが決定される。
スを確立し、全長MMR タンパク質レベルについての「正常な」範囲を測定できる
。HNPCC は現在、CRC のすべてのケースの約10 %、およびすべての癌のより小
さい部分を示すと考えられているので、癌の他の形態を有するCRC 患者の大多数
は「正常な」範囲の全長MMR 値を有すると予想される。このデータベースには、
HNPCC の診断におけるMMR タンパク質テストの正確性を確かめる分子遺伝学的テ
ストからの結果が含まれる。
、様々の免疫学的検定法のテスト このアッセイにおいて、MMR タンパク質の一つを認識する抗体を固定する(
例えば、96 穴マイクロタイタープレートのウェル中)。患者からの末梢リンパ
球のサンプルの溶解産物を加えて、特定のMMR タンパク質をプレートに結合させ
る。溶解産物を洗浄により除去し、MMR タンパク質上の異なるエピトープを認識
しサンプル中の全長タンパク質の量を定量するためのレポーター分子を組み込ん
だ第二の抗体を加える。サンドイッチアッセイを、自動化したELISA に基づくシ
ステムに適合させる。
それらは明確な形式で開示されている本発明を網羅するものでも制限するもので
もなく、上述の教示に照らし合わせることにより、多くの変形および変更が可能
であることは明らかである。本発明の原理およびその実際的な用途を説明するた
めに実施の形態を選択して記載しており、それにより、当業者は、多様な実施の
形態において、および特定の利用に適するように多様な変形を行って本発明を利
用することが可能である。
Claims (22)
- 【請求項1】 生体における病気または罹病性の特徴を検出する方法であ
って、該病気または該罹病性の特徴が対象遺伝子における生殖細胞系突然変異に
関連し、 (a) 前記生体から単離した正常な生体サンプル中の前記対象遺伝子により発
現される野生型タンパク質の量、および前記サンプル中の第二の遺伝子により発
現される関連タンパク質の量を免疫学的に定量し、 (b) 前記サンプル中の前記第二の遺伝子により発現される関連タンパク質の
量に対する前記サンプル中の前記対象遺伝子により発現される野生型タンパク質
の量の割合を計算し、 (c) 前記計算された割合が、前記サンプル中における前記対象遺伝子により発
現される前記野生型タンパク質が異常に低いレベルで存在することを示すか否か
を決定し、 (d) 前記工程(b) で計算された割合により前記サンプル中で前記野生型タンパ
ク質が異常に低いレベルで存在することが示される場合、前記対象遺伝子がその
対立遺伝子の一つにおいて生殖細胞系突然変異を含有し、対象生体が前記生殖細
胞系突然変異に関連する病気または罹病性の特徴に冒されているという結論を出
す、 各工程を含むことを特徴とする方法。 - 【請求項2】 前記工程(c) が、前記工程(b) で計算された割合を、前記
病気によりまたは前記罹病性の特徴により冒されていない、対象生体と同じ分類
学的分類の生体からの比較可能な生体サンプル中の、前記関連タンパク質の量に
対する前記対象遺伝子から発現された前記野生型タンパク質の量の割合の平均と
比較する工程を含むことを特徴とする請求項1記載の方法。 - 【請求項3】 前記病気または前記罹病性の特徴が、二つ以上の対象遺伝
子の一つにおける生殖細胞系突然変異と関連し、 (a) それぞれの対象遺伝子により発現される、前記生体から単離された正常な
生体サンプル中の野生型タンパク質の量を免疫学的に定量し、 (b) 前記サンプル中で他の対象遺伝子により発現される野生型タンパク質の量
、または前記サンプル中でそれぞれの他の対象遺伝子により発現される野生型タ
ンパク質のそれぞれの量に対する、前記サンプル中で前記対象遺伝子の一つによ
り発現される野生型タンパク質の量の割合を計算し、 (c) 前記工程(b) で計算された割合が、前記サンプル中で対象遺伝子のいずれ
かまたは任意の対象遺伝子により発現される野生型タンパク質が異常に低いレベ
ルで存在することを示すか否かを決定し、 (d) 前記工程(b) で計算された割合により対象遺伝子の一つにより発現される
前記野生型タンパク質が前記サンプル中で異常に低いレベルで存在することが示
される場合、前記対象遺伝子がその対立遺伝子の一つにおいて生殖細胞系突然変
異を含有し、対象生体が前記生殖細胞系突然変異に関連する病気または罹病性の
特徴に冒されているという結論を出す、 各工程を含むことを特徴とする方法。 - 【請求項4】 前記工程(c) が、前記工程(b) で計算された割合を、前記
病気によりまたは前記罹病性の特徴により冒されていない、対象生体と同じ分類
学的分類の生体からの比較可能な生体サンプル中の、対象遺伝子により発現され
た野生型タンパク質の量から計算される割合の比較可能な平均と比較する工程を
含むことを特徴とする請求項3記載の方法。 - 【請求項5】 前記正常な生体サンプルが、体液、組織標本、組織抽出物
、正常な細胞、正常な細胞からの溶解産物、正常な細胞抽出物、および正常な細
胞の溶解産物からの上澄からなる群より選択されることを特徴とする請求項1か
ら4いずれか1項記載の方法。 - 【請求項6】 前記体液が、血液、血清、血漿、精液、胸部滲出液、胃の
分泌液、糞の懸濁液、胆液、唾液、涙、痰、粘液、尿、リンパ液、細胞質ゾル、
腹水、胸水、羊水、膀胱洗浄液、気管支肺胞洗浄液、および髄液からなる群より
選択されることを特徴とする請求項5記載の方法。 - 【請求項7】 前記細胞が末梢血リンパ球であり;前記細胞溶解産物が末
梢血リンパ球の溶解産物であり;前記細胞抽出物が末梢血リンパ球からのもので
あり;前記上澄が末梢血リンパ球の溶解産物からのものであることを特徴とする
請求項5記載の方法。 - 【請求項8】 前記正常な細胞が末梢血リンパ球であり、前記生体がヒト
であることを特徴とする請求項5記載の方法。 - 【請求項9】 前記生体が脊椎動物であることを特徴とする請求項1から
7いずれか1項記載の方法。 - 【請求項10】 前記脊椎動物が哺乳類であることを特徴とする請求項9
記載の方法。 - 【請求項11】 前記哺乳類がヒトであることを特徴とする請求項10記
載の方法。 - 【請求項12】 前記方法が、癌または癌になる罹病性の診断、または診
断/予後方法であることを特徴とする請求項1から11いずれか1項記載の方法
。 - 【請求項13】 前記生殖細胞系突然変異が、切断を引き起こす突然変異
または対立遺伝子を喪失させる突然変異からなる群より選択されることを特徴と
する請求項1から12いずれか1項記載の方法。 - 【請求項14】 前記対象遺伝子が、毛細管拡張性運動失調、腺腫様結腸
ポリポーシス、BRCA1 、BRCA2 、膵嚢胞性繊維症、c-myb 、ジストロフィン、E-
カドヘリン、エメリー−ドライフス筋ジストロフィー、ファンコーニ貧血、IDS
、ミスマッチ修復、神経繊維腫症タイプ1 、神経繊維腫症タイプ2 、p16 、多
発性嚢胞腎症タイプ1 、多発性嚢胞腎症タイプ2 、PTCH 、トランスホーミング
増殖因子ベータレセプター2 、およびリンダウ病の遺伝子からなる群より選択さ
れることを特徴とする請求項1から13いずれか1項記載の方法。 - 【請求項15】 前記病気が、または前記罹病性の対象の病気が、毛細管
拡張性運動失調、血管芽細胞腫、腎細胞癌、褐色細胞腫、結腸癌、結腸直腸癌、
胃癌、乳癌、卵巣癌、子宮癌、前立腺癌、膵癌、胆道癌、膵嚢胞性繊維症、血液
内悪性腫瘍、デュシェーヌ筋ジストロフィー、尿生殖器癌、エメリー−ドライフ
ス筋ジストロフィー、ファンコーニ貧血、ハンター症候群、神経繊維腫症タイプ
1 、神経繊維腫症タイプ2 、家族性黒色腫、多発性嚢胞腎症、母斑様基底細胞癌
、およびリンダウ病からなる群より選択されることを特徴とする請求項1から1
4いずれか1記載の方法。 - 【請求項16】 前記対象遺伝子または前記対象遺伝子の一つが結腸ポリ
ポーシス遺伝子であり、前記病気または前記罹病性の特徴が家族性腺腫様ポリポ
ーシスであることを特徴とする請求項1から15いずれか1項記載の方法。 - 【請求項17】 前記対象遺伝子または前記対象遺伝子の一つがミスマッ
チ修復遺伝子である、または前記対象遺伝子の両方がミスマッチ修復遺伝子であ
ることを特徴とする請求項1から15いずれか1項記載の方法。 - 【請求項18】 前記対象遺伝子または前記対象遺伝子の一つが、MLH1 、
MSH2 、MSH6 、PMS1 、およびPMS2 からなる群より選択され;前記病気または前
記罹病性の特徴が、遺伝性非ポリポーシス結腸癌であることを特徴とする請求項
17記載の方法。 - 【請求項19】 前記対象遺伝子または前記対象遺伝子の一つが、MLH1 遺
伝子またはMSH2 遺伝子であることを特徴とする請求項18記載の方法。 - 【請求項20】 それぞれの対象遺伝子により発現される野生型タンパク
質の量、および/または関連タンパク質の量を、ウェスタンブロット分析、免疫
沈降の後ウェスタンブロット分析、フローサイトメトリ、酵素免疫測定法、酵素
結合免疫吸着アッセイ、ラジオイムノアッセイ、競合免疫学的検定法、二重抗体
サンドイッチアッセイ、化学発光アッセイ、生物発光アッセイ、蛍光アッセイ、
または凝集アッセイにより測定することを特徴とする請求項1から19いずれか
1項記載の方法。 - 【請求項21】 自動化されることを特徴とする請求項1から20いずれ
か1項記載の方法。 - 【請求項22】 前記野生型タンパク質の異常に低いレベルが、前記生殖
細胞系突然変異に関連する前記病気または前記罹病性の特徴により冒されていな
い生体からの比較可能なサンプル中の前記タンパク質のレベルの50 %±20 %で
あり、該冒されていない生体は前記対象生体と同じ分類学的分類であることを特
徴とする請求項1から21いずれか1項記載の方法。
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