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ES2891337T3 - Métodos no invasivos para evaluar la integridad genética de células troncales pluripotentes - Google Patents

Métodos no invasivos para evaluar la integridad genética de células troncales pluripotentes Download PDF

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ES2891337T3
ES2891337T3 ES16763789T ES16763789T ES2891337T3 ES 2891337 T3 ES2891337 T3 ES 2891337T3 ES 16763789 T ES16763789 T ES 16763789T ES 16763789 T ES16763789 T ES 16763789T ES 2891337 T3 ES2891337 T3 ES 2891337T3
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Spain
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pluripotent stem
cells
cell
stem cells
genetic
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ES16763789T
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Inventor
Vos John De
Said Assou
Nicolas Girault
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Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Centre Hospitalier Universitaire de Montpellier
Universite de Montpellier
Original Assignee
Institut National de la Sante et de la Recherche Medicale INSERM
Centre Hospitalier Universitaire de Montpellier
Universite de Montpellier
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Abstract

Método no invasivo in vitro para determinar la calidad de una célula troncal pluripotente humana o de una célula diferenciada derivada de la misma que comprende las etapas de: i) proporcionar una muestra de cultivo en la que crecen las células troncales, ii) extraer los ácidos nucleicos a partir del sobrenadante de cultivo, e iii) determinar la presencia y/o el nivel de por lo menos una anomalía genética en la extracción de ácidos nucleicos, en el que dicha etapa iii) comprende las etapas de i) determinar la presencia de por lo menos una secuencia hiperrecurrente seleccionada de la tabla 1 en la extracción de ácidos nucleicos, e ii) concluir que las células troncales pluripotentes portan una anomalía genética cuando se detecta por lo menos una secuencia hiperrecurrente.

Description

DESCRIPCIÓN
Métodos no invasivos para evaluar la integridad genética de células troncales pluripotentes
Campo de la invención
La presente invención se refiere de manera general al campo de la medicina regenerativa. Más específicamente, la presente invención se refiere a métodos no invasivos y kits para la determinación de la calidad de las células troncales (“stem”) pluripotentes. Más específicamente, la presente exposición se refiere a métodos no invasivos y kits para la evaluación de la integridad genética de las células troncales pluripotentes en cultivo.
Antecedentes de la invención
La investigación en células troncales pluripotentes humanas (hPSC) ofrece nuevas herramientas para ayudar a comprender y tratar las enfermedades que afectan a diversos tipos celulares en el cuerpo mediante la producción de células humanas para el trasplante o para permitir la identificación de fármacos. Las PSC (aisladas a partir de la masa celular interna de embriones descartados, es decir, células troncales embrionarias humanas (hESC), o derivadas de células diferenciadas, es decir, células troncales pluripotentes inducidas (iPSC)) presentan la notable capacidad de expandirse rápidamente. A nivel práctico, lo anterior implica que pueden generarse suficientes células para preparar miles, e incluso cientos de miles, de dosis celulares terapéuticas a partir de una línea celular. Se han llevado a cabo, o actualmente se están llevando a cabo, varios ensayos clínicos que utilizan derivados diferenciados de hESC. Geron Corporation (NCT01217008) ha sometido a ensayo la seguridad de las células oligodendrocíticas derivadas de hESC en pacientes con lesión de la médula espinal. Advanced Cell Technology (ACT) ha sometido a ensayo la seguridad de la terapia de células epiteliales pigmentarias retinianas (RPE) derivadas de hESC para la distrofia macular de Stargardt (SMD) (ensayo de EE.UU.: NCT01345006; ensayo del Reino Unido: NCT01469832; ensayo de Corea: NCT01625559) y para la degeneración macular asociada a la edad seca (ensayo de EE.UU.: NCT01344993; ensayo de Corea: NCT01674829). Viacyte está sometiendo a ensayo la seguridad y eficacia de las células productoras de insulina en sujetos con diabetes mellitus de tipo 1 (ensayo de EE.UU.: n Ct 02239354). Philippe Ménasché ha empezado a someter a ensayo (NCT02057900) el trasplante de progenitores derivadas de células troncales embrionarias humanas en insuficiencia cardíaca grave. Pfizer (NCT01691261) está investigando la seguridad de utilizar células retinianas trasplantadas derivadas de hESC para tratar pacientes con enfermedad de Stargardt avanzada. Finalmente, un estudio recientemente iniciado en Japón, realizado por Masayo Takahashi, el Instituto RIKEN, está sometiendo a ensayo la seguridad del trasplante de láminas de células de epitelio pigmentario retiniano (RPE) derivadas de células troncales pluripotentes inducidas autólogas (iPSC) en pacientes con degeneración macular asociada a la edad (AMD) exudativa (de tipo húmedo).
La totalidad de dichos ensayos clínicos revelan que el potencial biomédico es enorme, aunque siguen sin resolverse varias cuestiones prácticas. Uno de los mayores problemas son las anomalías genéticas.
Las anomalías genéticas son un grave problema para la utilización de hPSC en medicina regenerativa. En el caso de que los clones de hPSC muestren anomalías genéticas, dichas células y su progenie diferenciada podría no replicar fielmente la fisiología normal de los tejidos adultos e incluso podría constituir un riesgo para la utilización de dichas células en un contexto clínico. De esta manera, resulta obligatorio determinar la causa y extensión de las anomalías genéticas en dichas células. Las aberraciones genéticas pueden clasificarse en dos categorías: las inducidas por el cultivo celular y las inducidas por un proceso de reprogramación celular.
Las ESC humanas son cariotípicamente normales en origen; sin embargo, pueden aparecer clones de hESC aneuploides durante el cultivo celular. Desde 2004, varios estudios han informado de que las condiciones de cultivo utilizadas para amplificar las hPSC no diferenciadas presentan un impacto significativo sobre la estabilidad cromosómica. Dichas anomalías cromosómicas con frecuencia son recurrentes. Se han detectado con frecuencia ganancias de los cromosomas 12 (más frecuentemente 12p), 17 (particularmente 17q), 20 o X mediante la utilización de procedimientos citogenéticos estándares (formación de bandas G) (Draper et al., 2004). Un amplio estudio de 40 líneas de hESC en las que se analizaron 1163 cariotipos concluyó que 12,9% del cultivo de hESC mostraba aberraciones cromosómicas (Taapken et al., 2011). Durante los últimos cinco años, la resolución para la detección de alteraciones genómicas se ha mejorado con tecnologías basadas en matrices (también denominados cariotipos virtuales). La hibridación genómica comparativa basada en matrices (aCGH) o matrices de polimorfismos de nucleótido único (SNP) han permitido la identificación de aberraciones genómicas de tamaño pequeño y han revelado que la frecuencia de alteraciones del ADN en las hPSC podría ser incluso más elevada de lo que se creía anteriormente (Laurent et al., 2011; Narva et al., 2010). Entre dichos cambios cromosómicos de pequeño tamaño, se ha identificado una variante de número de copia recurrente (CNV) situado en el cromosoma 20q11.21 (Lefort et al., 2008; Spits et al., 2008). La región de 20q11.21 también se amplifica en una diversidad de cánceres. Además, se ha mostrado que la adquisición de 20q11.2 se produce en un estadio temprano del cáncer de cuello uterino. Las mutaciones puntuales también contribuyen al proceso de adaptación. Más recientemente, la resecuenciación de exomas completos o genomas completos ha proporcionado una resolución sin precedentes para identificar las mutaciones de un único par de bases en las hPSC (Cheng et al., 2012; Funk et al., 2012; Gore et al., 2011). La generación de iPS mediante reprogramación celular abre un camino a otras potenciales fuentes de mutación.
Algunos análisis detallados, mediante la utilización de micromatrices de CGH (Martins-Taylor and Xu, 2010; Pasi et al., 2011), micromatrices de SNP (Hussein et al., 2011; Laurent et al., 2011) o técnicas de secuenciación de nueva generación (Gore et al., 2011; Ji et al., 2012) sugieren que se producen anomalías más sutiles, tales como variantes de número de copia (CNV) y mutaciones, a una frecuencia mucho más elevada de la que se creía anteriormente. Sin embargo, es motivo de mucha polémica cuál es la carga exacta de mutaciones inducida por la reprogramación celular (Bai et al., 2013). Sin embargo, las hiPS también pueden acumular alteraciones genéticas durante el cultivo celular. Kristen Martins-Taylor et al., Nature Biotechnology, vol. 29, n° 6, 1 de junio de 2011, páginas 488 a 491, se refieren a variaciones de número de copia recurrentes en células troncales pluripotentes inducidas humanas.
Estas anomalías genéticas son un grave problema debido a que cualquier mutación del ADN puede ser una etapa en un proceso de transformación maligna. Además, algunas anomalías son altamente recurrentes, lo que sugiere una fuerte presión selectiva mediada por un incremento de la supervivencia celular o de la proliferación celular o por el bloqueo de la diferenciación. Dichas modificaciones funcionales pueden incrementar la susceptibilidad de las PSC a la transformación maligna y alterar sus propiedades terapéuticas esperadas.
La integridad del ADN de las células troncales pluripotentes se evalúa principalmente mediante análisis del cariotipo. Se han sometido a ensayo otros enfoques para superar las evidentes limitaciones de resolución de las técnicas de cariotipado clásicas, por ejemplo las matrices de CGH o las micromatrices de SNP; sin embargo, no hay consenso sobre el método que se debe utilizar para discriminar entre las mutaciones realmente preocupantes, que posiblemente son carcinógenas, y las modificaciones del ADN con prácticamente ningún impacto, o ningún impacto en absoluto, sobre el comportamiento biológico de las PSC, o los simples polimorfismos. Debido a que las tecnologías de secuenciación del ADN y su resolución (mapas genómicos completos a la resolución de bases individuales) han mejorado muy rápidamente y su precio se está reduciendo rápidamente, los presentes inventores pueden prever que un día el análisis rutinario diario de las PSC se basará en la secuenciación de genomas completos. Sin embargo, cada una de dichas técnicas adolece de fuertes limitaciones. Por ejemplo, la técnica de cariotipado clásica es laboriosa, requiere el conocimiento experto de un citogenetista y no puede detectar anomalías de menos de 5 Mb de longitud. Los enfoques basados en micromatrices requieren una instalación básica y bioinformáticos dedicados para el análisis. Finalmente, las técnicas de secuenciación de alto rendimiento tales como NGS todavía no han sido optimizadas para dicho uso y el tiempo necesario para procesar los datos es largo y además requiere de bioinformáticos.
Por lo tanto, existe una fuerte necesidad de métodos rápidos, económicos y no invasivos (que no destruyan las células), capaces de detectar las anomalías más recurrentes en las hPSC.
Sumario de la invención
La presente invención se define en las reivindicaciones independientes. La presente exposición se refiere a métodos no invasivos y kits para la determinación de la calidad de las células troncales pluripotentes.
La presente exposición se refiere además a métodos no invasivos y kits para la evaluación de la integridad genética de las células troncales pluripotentes en cultivo.
Descripción detallada de la invención
Las células troncales pluripotentes (PSC), que se perpetúan por autorrenovación pero que son capaces de diferenciarse en células maduras de tejidos particulares, son herramientas clave para la medicina regenerativa. La medicina regenerativa es una definición amplia de las innovadoras terapias médicas que permiten al cuerpo repararse, sustituir, restaurar y regenerar células, tejidos y órganos daños o enfermos. Sin embargo, el cultivo celular puede resultar en anomalías epigenéticas y genéticas que podrían alterar las propiedades de las células troncales o predisponerlas a la formación de tumores. Con la rápida expansión del uso de las PSC en la clínica, es el momento de mejorar las herramientas de caracterización de las células troncales pluripotentes (PSC) durante la expansión celular y antes de la liberación de un lote.
Los inventores han determinado que existe un grupo de "secuencias hiperrecurrentes" en las células troncales pluripotentes humanas (hPSC) que son biomarcadores de la inestabilidad de las hPSC en cultivo (tabla 1) y proponen un ensayo rápido y fácil de realizar que puede utilizarse para evaluar rutinariamente las células troncales durante el cultivo y antes del uso clínico.
Tabla 1: lista de las 40 secuencias hiperrecurrentes.
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De acuerdo con lo anteriormente expuesto, la presente exposición se refiere a un método no invasivo in vitro para la determinación de la calidad de las células troncales pluripotentes, que comprende las etapas de: i) proporcionar una muestra de cultivo en la que se cultivan las células troncales pluripotentes, ii) extraer ácidos nucleicos de la muestra y iii) determinar la presencia y/o nivel de por lo menos una anomalía genética en los ácidos nucleicos extraídos.
Tal como se utiliza en la presente memoria, la expresión "célula troncal pluripotente" o "PSC" presenta su significado general en la técnica y se refiere a una célula pluripotente tal como una célula troncal embrionaria (ESC) y a una célula troncal pluripotente inducida (iPSC), que es capaz de diferenciarse en cualquier tipo celular en el cuerpo humano. El término "pluripotente" se refiere a una célula que es capaz de diferenciarse en una de entre una pluralidad de diferentes tipos celulares, aunque no necesariamente todos los tipos celulares. Entre las células utilizadas en la invención se incluyen, aunque sin limitarse a ellas, cardiomiocitos y progenitores de los mismos, células progenitoras neurales, células de los islotes pancreáticos, particularmente células p pancreáticas, células troncales y progenitoras hematopoyéticas, células troncales mesenquimatosas y células satélite musculares. El método de la invención es aplicable a las células troncales pluripotentes, aunque también es aplicable a otras células troncales, células germinales o somáticas (por ejemplo, células troncales mesenquimatosas (MSC), ovocitos, embriones, fibroblastos, etc.).
La expresión "determinar la calidad de la célula troncal pluripotente" se refiere a que el método de la invención presenta el objetivo de determinar si la célula troncal pluripotente porta una anomalía genética o una secuencia específica en el contexto de la medicina regenerativa. El método de la invención permite la evaluación de la integridad genética y la estabilidad genética de la célula troncal pluripotente en cultivo.
Tal como se utiliza en la presente memoria, la expresión "anomalía genética" se refiere a cualquier suceso que puede producirse en el genoma de una célula troncal individual y pluripotente que puede dar lugar a que cause una enfermedad fenotípica y letalidad. Entre las anomalías genéticas se incluyen, aunque sin limitarse a ellas, trisomía, traslocación, cuadrisomía, aneuploidía, aneuploidía parcial, monosomía, anomalía cariotípica, cromosoma isodicéntrico, isocromosoma, inversión, inserción, duplicación, variación del número de copia (CNV), traslocación cromosómica, variación de un solo nucleótido (SNV) y pérdida de heterocigosidad (LOH). Típicamente, la expresión "anomalía genética" se refiere a secuencias hiperrecurrentes, tales como las indicadas en la tabla 1.
La expresión "muestra de cultivo" se refiere a sobrenadante de cultivo, medio de cultivo y células en suspensión en el cultivo.
Tal como se utiliza en la presente memoria, la expresión "ácido nucleico" presenta su significado general en la técnica y se refiere a una secuencia nucleica codificante o no codificante. Entre los ácidos nucleicos se incluyen el ADN (ácido desoxirribonucleico) y el ARN (ácido ribonucleico). Entre los ejemplos de ácidos nucleicos se incluyen, de esta manera, ADN, ARNm, ARNt, ARNtm, ARNmi, ARNpi, ARNsno y ARNsn. La expresión "ácidos nucleicos" se refiere además a ácidos nucleicos libres (fNA) (originados en el núcleo de las células o en el compartimiento mitocondrial de las células), tal como ADN libre celular, moléculas de ARN libres, microARN y ARN no codificante largo. La expresión "ácido nucleico libre" se refiere a que el ácido nucleico resulta liberado por las células troncales pluripotentes y se encuentra presente en el medio de cultivo en el que se cultivan las células troncales pluripotentes.
El experto en la materia puede utilizar cualesquiera métodos bien conocidos de la técnica para extraer el ácido nucleico celular libre a partir de la muestra preparada. Por ejemplo, puede utilizarse el método indicado en el ejemplo.
En una forma de realización particular, el método de la invención comprende las etapas de i) determinar la presencia de por lo menos una secuencia hiperrecurrente en la extracción de ácidos nucleicos, y ii) concluir que las células troncales pluripotentes portan una anomalía genética en el caso de que se detecte por lo menos una secuencia hiperrecurrente.
Típicamente, pueden seleccionarse, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39 o 40 secuencias hiperrecurrentes de la tabla 1.
La determinación de la presencia y nivel de secuencia hiperrecurrente en la extracción de ácidos nucleicos pueden llevarse a cabo mediante una diversidad de técnicas bien conocidas de la técnica. En una forma de realización particular, puede llevarse a cabo PCR digital en gotas, "ddPCR", para determinar la presencia y el nivel de secuencias hiperrecurrentes en la extracción de ácidos nucleicos. ddPCR se refiere a un método o dispositivo utilizado en el mismo que permite la cuantificación de las secuencias de ADN en un sobrenadante o medio de cultivo.
La determinación de la presencia y el nivel de secuencias hiperrecurrentes en la extracción de ácidos nucleicos también puede llevarse a cabo mediante técnicas tales como Fluidigm, PCR cuantitativa, secuenciación de extremos apareados de alto rendimiento, secuenciación de nueva generación y electroforesis capilar.
Entre las técnicas típicas para detectar una secuencia hiperrecurrente en un ácido nucleico, en particular ADN o ARNm, se incluyen, aunque sin limitarse a ellas, polimorfismo de longitudes de fragmentos de restricción, técnicas de hibridación, secuenciación, resistencia a exonucleasas, microsecuenciación, extensión en fase sólida utilizando ddNTP, extensión en solución utilizando ddNTP, ensayos de oligonucleótidos, métodos para detectar polimorfismos de nucleótidos únicos, tales como la hibridación específica de alelos dinámica, la reacción en cadena de ligación, la minisecuenciación, los "chips" de ADN, la hibridación de oligonucleótidos específicos de alelos con sondas de marcaje único o doble combinada con PCR o con balizas moleculares, y otras.
Típicamente, se detectan secuencias hiperrecurrentes después de la amplificación. Por ejemplo, el ARN aislado puede someterse a transcripción inversa y amplificación acopladas, tal como transcripción inversa y amplificación mediante reacción en cadena de la polimerasa (RT-PCR), utilizando cebadores oligonucleótidos específicos que son específicos de una secuencia hiperrecurrente o que permiten la amplificación de una región que contiene la secuencia hiperrecurrente. Según una primera alternativa, pueden seleccionarse condiciones para la hibridación de cebadores a fin de garantizar la transcripción inversa específica (en caso apropiado) y la amplificación, de manera que la aparición de un producto de amplificación sea diagnóstica de la presencia de una secuencia hiperrecurrente particular. Por el contrario, el ARN puede transcribirse inversamente y amplificarse, o el ADN puede amplificarse, seguido de la detección de una secuencia hiperrecurrente en la secuencia amplificada mediante hibridación con una sonda adecuada o mediante secuenciación directa, o cualquier otro método apropiado conocido de la técnica. Por ejemplo, puede clonarse un ADNc obtenido a partir de ARN y secuenciarse para identificar una secuencia hiperrecurrente.
En particular, la secuenciación representa una técnica ideal que puede utilizarse en el contexto de la presente invención. Al experto en la materia le resultarán familiares varios métodos para la secuenciación de polinucleótidos.
Entre ellos se incluyen, aunque sin limitación, la secuenciación de Sanger (también denominada secuenciación dideoxi) y diversos métodos de secuenciación mediante síntesis (SBS), según la revisión de Metzger (Metzger ML., Genome Research, 1767, 2005), la secuenciación mediante hibridación, mediante ligación (por ejemplo, el documento n° WO 2005/021786), mediante degradación (por ejemplo, las patentes US n° 5.622.824 y n° 6.140.053) y la secuenciación por nanoporos. Preferentemente, resulta preferida la secuenciación profunda en un ensayo multiplex. La expresión "secuenciación profunda" se refiere a un método de secuenciación de una pluralidad de ácidos nucleicos en paralelo. Ver, por ejemplo, Bentley et al., Nature 456:53-59, 2008. Las plataformas disponibles comercialmente principales, producidas por Roche/454 (Margulies et al., 2005a), Illumina/Solexa (Bentley et al., 2008), Life/APG (SoLiD) (McKernan et aL., 2009) y Pacific Biosciences (Eid et al., 2009) pueden utilizarse para la secuenciación profunda. Por ejemplo, en el método 454, el ADN que debe secuenciarse se fracciona y se suministra con adaptadores o segmentos de ADN que pueden amplificarse por PCR mediante la utilización de cebadores que contienen los adaptadores. Los adaptadores son nucleótidos 25-meros requeridos para la unión a las perlas de captura de a Dn y para la hibridación de los cebadores de amplificación en la PCR en emulsión y el cebador de secuenciación. Los fragmentos de ADN se convierten en monocatenarios y se unen a perlas de captura de ADN de una manera que permite la unión de solo un fragmento de ADN a una perla. A continuación, las perlas que contienen el ADN se emulsionan en una mezcla de agua-en­ aceite, resultando en microrreactores que contienen únicamente una perla. Dentro del microrreactor, el fragmento se amplifica por PCR, resultando en un número de copia de varios millones en cada perla. Después de la PCR, se rompe la emulsión y las perlas se cargan en una placa de picotitulación. Cada pocillo de la placa de picotitulación puede contener únicamente una perla. Se añaden enzimas de secuenciación a los pocillos y los nucleótidos se hacen fluir por los pocillos en un orden fijo. La incorporación de un nucleótido resulta en la liberación de un pirofosfato, que cataliza una reacción que conduce a una señal quimioluminiscente. Dicha señal es registrada por una cámara CCD y se utiliza un software para traducir las señales en una secuencia de ADN. En el método de Illumina (Bentley, 2008), se unen fragmentos de cadena sencilla provistos de adaptador a una superficie ópticamente transparente y se someten a "amplificación puente". Dicho procedimiento resulta en agregados de varios millones, cada uno de los cuales contiene copias de un único fragmento de ADN. Se añaden la ADN polimerasa, cebadores y cuatro nucleótidos terminadores reversibles marcados y se obtienen imágenes de la superficie mediante fluorescencia láser a fin de determinar la localización y naturaleza de los marcajes. A continuación, se eliminan los grupos protectores y se repite el procedimiento en varios ciclos. El procedimiento SOLiD (Shendure, 2005) es similar a la secuenciación de 454: se amplifican fragmentos de ADN sobre la superficie de perlas. La secuenciación implica ciclos de ligación y detección de sondas marcadas. Actualmente se están desarrollando varias otras técnicas de secuenciación de alto rendimiento. Son ejemplos de ellas, The Helicos system (Harris (2008)), Complete Genomics (Drmanac (2010)) y Pacific Biosciences (Lundquist (2008)). Debido a que éste es un campo técnico en desarrollo extremadamente rápido, la aplicabilidad de la presente invención de métodos de secuenciación de alto rendimiento resultará evidente para el experto en la materia.
La determinación del nivel de expresión de un ácido nucleico (en particular, un gen, ARNmi, ARNsn y ARNsno) puede evaluarse mediante cualquiera de entre una amplia diversidad de métodos bien conocidos. Típicamente, el ácido nucleico preparado puede utilizarse en ensayos de hibridación o amplificación entre los que se incluyen, aunque sin limitarse a ellos, análisis Southern o Northern, análisis de reacción en cadena de la polimerasa, tales como PCR cuantitativa (TaqMan) y matrices de sondas, tales como matrices de ADN GeneChip(TM) (Affymetrix). Ventajosamente, el análisis del nivel de expresión de un ácido nucleico implica el procedimiento de amplificación de ácidos nucleicos, por ejemplo, mediante RT-PCR (forma de realización experimental explicada en la patente US n° 4.683. 202), reacción en cadena de la ligasa (Barany, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.88, p: 189-193, 1991), replicación de secuencias autosostenida (Guatelli et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.57, p: 1874-1878, 1990), sistema de amplificación transcripcional (Kwoh et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.86, p: 1173-1177, 1989), replicasa Q-Beta (Lizardi et al., Biol. Technology, vol. 6, p: 1197, 1988), replicación de círculo rodante (patente US n° 5.854.033) o cualquier otro método de amplificación de ácidos nucleicos, seguido de la detección de las moléculas amplificadas mediante la utilización de técnicas bien conocidas por el experto en la materia. Resulta preferida la RT-PCR cuantitativa o semicuantitativa en tiempo real. En una forma de realización particular, la determinación comprende hibridar la muestra con reactivos selectivos, tales como sondas o cebadores, y detectar de esta manera la presencia, o medir la cantidad, del ácido nucleico. La hibridación puede llevarse a cabo mediante cualquier dispositivo adecuado, tal como una placa, placa de microtitulación, probeta, pocillo, vaso, columna, etc. Los ácidos nucleicos que muestran complementariedad de secuencias u homología respecto al ácido nucleico de interés en la presente memoria encuentran utilidad como sondas de hibridación o cebadores de amplificación. Se entiende que dichos ácidos nucleicos no necesitan ser idénticos, aunque típicamente son por lo menos aproximadamente 80% idénticos a la región homóloga de tamaño comparable, más preferentemente 85% idénticos y todavía más preferentemente 90% a 95% idénticos. En determinadas formas de realización, resultará ventajoso utilizar ácidos nucleicos en combinación con medios apropiados, tales como un marcaje detectable, para la detección de la hibridación. Es conocida en la técnica una amplia diversidad de indicadores apropiados, entre ellos ligandos fluorescentes, radioactivos, enzimáticos y otros ligandos (por ejemplo, avidina/biotina). Las sondas y cebadores son "específicos" del ácido nucleico con el que se hibridan, es decir, se hibridan preferentemente bajo condiciones de hibridación de alta astringencia (correspondientes a la temperatura de fusión más alta, Tf, por ejemplo, formamida al 50%, 5x o 6x SSC; 1x SCC es NaCl 0,15 M, Na-citrato 0,015 M). Muchos ensayos de cuantificación se encuentran disponibles comercialmente de Qiagen (S.A. Courtaboeuf, Francia) o de Applied Biosystems (Foster City, EE.UU.). El nivel de expresión del ácido nucleico puede expresarse como perfil de expresión absoluta o como perfil de expresión normalizada. Típicamente, los perfiles de expresión se normalizan mediante corrección del perfil de expresión absoluta del ácido nucleico de interés mediante comparación de su expresión con la expresión de un ácido nucleico que no es relevante, por ejemplo, un ARNm de mantenimiento que se expresa constitutivamente. El ARNm adecuado para la normalización incluye ARNm de mantenimiento tales como U6, U24, U48 y S18. Dicha normalización permite la comparación del perfil de expresión en una muestra, por ejemplo, una muestra del paciente, con otra muestra, o entre muestras de diferentes orígenes.
Las sondas y/o cebadores típicamente se marcan con una molécula o sustancia detectable, tal como una molécula fluorescente, una molécula radioactiva o cualesquiera otros marcajes conocidos de la técnica. Se conocen marcajes en la técnica que proporcionar generalmente (directa o indirectamente) una señal. El término "marcado" pretende comprender el marcaje directo de la sonda y cebadores mediante acoplamiento (es decir, uniendo físicamente) una sustancia detectable, así como el marcaje indirecto mediante reactividad con otro reactivo que se marca directamente. Entre los ejemplos de sustancias detectables se incluyen, aunque sin limitarse a ellos, agentes radioactivos o un fluoróforo (por ejemplo, isotiocianato de fluoresceína (FITC) o ficoeritrina (PE) o indocianina (Cy5)).
El método de la exposición resulta particularmente adecuado para determinar la calidad del cultivo de células troncales pluripotentes y después aislar las células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas. El método tal como se ha descrito anteriormente resulta particularmente adecuado para evitar la destrucción del cultivo de células troncales pluripotentes que contiene células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas que pueden aislarse y cultivarse.
De acuerdo con lo anterior, la presente exposición se refiere a un método para aislar una célula troncal pluripotente libre de anomalías genéticas, que comprende las etapas de:
i) determinar el nivel de secuencias hiperrecurrentes en un cultivo de células troncales pluripotentes mediante la realización del método según la invención,
ii) comparar el nivel determinado en la etapa i) con un valor de referencia,
iii) concluir que el cultivo de células troncales pluripotentes contiene células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas en el caso de que el nivel determinado en la etapa i) sea diferente del valor de referencia,
iv) y aislar dichas células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas.
La etapa de aislamiento de células troncales pluripotentes puede llevarse a cabo mediante una diversidad de técnicas bien conocidas, tales como la técnica Fluidigm.
En una forma de realización particular, el valor de referencia es un valor umbral o un valor de corte que pude determinarse experimental, empírica o teóricamente. También puede seleccionarse arbitrariamente un valor umbral basándose en condiciones experimentales existentes, tal como reconocerá el experto ordinario en la materia. Debe determinarse el valor umbral a fin de obtener la sensibilidad y especificidad óptimas según la función del ensayo y el equilibrio de beneficio/riesgo (consecuencias clínicas de un falso positivo y de un falso negativo). Típicamente, la sensibilidad y especificidad óptimas (y, por lo tanto, el valor umbral) pueden determinarse mediante la utilización de una curva característica de receptor-operador (ROC) basada en datos experimentales. Preferentemente, el experto en la materia puede comparar los niveles de ácidos nucleicos (obtenidos según el método de la invención) con un valor umbral definido. En una forma de realización de la presente invención, el valor umbral se define a partir de niveles de ácidos nucleicos (o una proporción o una puntuación) determinados en un cultivo de células troncales pluripotentes portadoras de anomalías genéticas. Además, puede utilizarse una medición retrospectiva de los niveles (o proporciones o puntuaciones) de ácidos nucleicos en cultivos de células troncales pluripotentes históricas apropiadamente depositadas, en el establecimiento de dichos valores umbral.
El método de la invención resulta particularmente adecuado para alcanzar una decisión clínica. Tal como se utiliza en la presente memoria, la expresión "decisión clínica" se refiere a cualquier decisión de realizar o no una acción que presenta un resultado que afecta a la salud o supervivencia del sujeto. En particular, en el contexto de la invención, una decisión clínica se refiere a una decisión de transferir, injertar, trasplantar o no las células troncales pluripotentes en el sujeto. Una decisión clínica también puede referirse a una decisión de realizar ensayos adicionales, para llevar a cabo acciones para mitigar un fenotipo no deseable. En particular, el método tal como se ha descrito anteriormente ayudará de esta manera al clínico a evitar la transferencia al sujeto de células troncales pluripotentes portadoras de anomalías genéticas. El método tal como se ha descrito anteriormente también resulta particularmente adecuado para evitar la contaminación del sujeto con células troncales pluripotentes portadoras de anomalías genéticas, a evitar el desarrollo de enfermedades, tales como tumores malignos causados por la transferencia de células troncales pluripotentes portadoras de anomalías genéticas en el sujeto. El método tal como se ha descrito anteriormente resulta particularmente adecuado además para el tratamiento de un sujeto que necesita del mismo mediante la administración de células troncales pluripotentes sin efectos secundarios.
Tal como se utiliza en la presente memoria, el término "sujeto" se refiere a un mamífero. Típicamente, el sujeto según la invención se refiere a cualquier sujeto (preferentemente, ser humano) que necesita del tratamiento regenerativo mediante la utilización del trasplante de células troncales pluripotentes. El término "sujeto" se refiere además a otros mamíferos, tales como primates, perros, gatos, cerdos, vacas o ratones. En una forma de realización particular, el término "sujeto" se refiere a un sujeto que sufre o es susceptible de sufrir enfermedades que requieren de tratamiento regenerativo mediante la utilización de trasplante de células troncales pluripotentes, tal como lesión de la médula espinal, distrofia macular de Stargardt (SMD), degeneración macular asociada a la edad seca, diabetes mellitus de tipo I, trastornos cardiovasculares, tales como insuficiencia cardíaca, enfermedad de Stargardt avanzada, degeneración macular asociada a la edad exudativa (de tipo húmedo), distrofias musculares, enfermedades neurológicas y retinianas, enfermedad hepática y diabetes.
De acuerdo con lo anterior, el método de la invención permite la evaluación de la capacidad de las células troncales pluripotentes de llevar a cabo una transferencia, injerto o trasplante sano en un sujeto. El método de la invención permite el ensayo y selección genéticos de células troncales pluripotentes que pueden transferirse, injertarse o trasplantarse en un sujeto.
Las células troncales pluripotentes seleccionadas mediante la realización de la invención y las células diferenciadas derivadas a partir de las mismas encuentran utilidad en la medicina regenerativa. La expresión "medicina regenerativa" presenta su significado general de la técnica y se refiere al tratamiento generativo relacionado con el procedimiento de crear células y tejidos funcionales vivos para reparar o sustituir células, tejidos o función orgánica perdida debido a la edad, enfermedad, daños o defectos congénitos.
De acuerdo con lo anterior, la presente exposición se refiere además a un método para el trasplante de células troncales pluripotentes o células diferenciadas derivadas a partir de las mismas en un sujeto que requiere del tratamiento regenerativo, que comprende las etapas de: i) llevar a cabo el método según la invención, ii) seleccionar las células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas, y iii) administrar las células troncales pluripotentes seleccionadas en la etapa ii) o células diferenciadas derivadas de las mismas en dicho sujeto.
En un aspecto adicional, los métodos de la exposición resultan particularmente adecuados para el tratamiento de una enfermedad en un sujeto que requiere del tratamiento regenerativo mediante la utilización de trasplante de células troncales pluripotentes con un riego mínimo de transferencia de anomalías genéticas. Los métodos de la invención también resultan adecuados para el tratamiento de una enfermedad en un sujeto que requiere del tratamiento regenerativo mediante la utilización de trasplante de células troncales pluripotentes con un riesgo mínimo de desarrollar enfermedades tales como tumores malignos causados por la transferencia de células troncales pluripotentes portadoras de anomalías genéticas.
De acuerdo con lo anterior, la exposición se refiere además a un método para tratar una enfermedad en un sujeto que requiere del tratamiento regenerativo, que comprende las etapas de: i) llevar a cabo el método según la invención, ii) seleccionar las células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas, y iii) administrar las células troncales pluripotentes seleccionadas en la etapa ii) o células diferenciadas derivadas de las mismas, en dicho sujeto.
En un aspecto adicional, la presente exposición se refiere a un método para potenciar la respuesta al tratamiento regenerativo en un sujeto que requiere del mismo, que comprende las etapas de: i) llevar a cabo el método según la invención, ii) seleccionar las células troncales pluripotentes libres de anomalías genéticas, y iii) administrar las células troncales pluripotentes seleccionadas en la etapa ii) o células diferenciadas derivadas de las mismas en dicho sujeto.
La exposición se refiere además a un kit para llevar a cabo los métodos tal como se han descrito anteriormente, en el que dicho kit comprende unos medios para determinar la presencia y/o nivel de por lo menos una anomalía genética en la extracción de ácidos nucleicos. Típicamente, entre los kits se incluyen sondas, cebadores, macromatrices o micromatrices tal como se ha indicado anteriormente. Por ejemplo, el kit puede comprender un juego de sondas tal como se ha definido anteriormente, y que pueden estar premarcadas. Alternativamente, las sondas pueden estar no marcadas y pueden incluirse los ingredientes para el marcaje en el kit, en recipientes separados. El kit puede comprender además reactivos de hibridación u otros reactivos y materiales convenientemente empaquetados necesarios para el protocolo de hibridación particular, incluyendo matrices de fase sólida, en caso aplicable, y patrones. Alternativamente, el kit de la invención puede comprender cebadores de amplificación (por ejemplo, cebadores de tallo-bucle) que pueden estar premarcados o pueden contener una fracción de purificación por afinidad o de unión. El kit puede comprender además reactivos de amplificación y además otros reactivos y materiales convenientemente empaquetados necesarios para el protocolo de amplificación particular. El kit puede comprender además unos medios necesarios para determinar si se ha producido la amplificación. El kit puede incluir, además, por ejemplo, tampones y enzimas de PCR; secuencias de control positivo, cebadores de control de la reacción, e instrucciones para amplificar y detectar las secuencias específicas.
La invención se ilustra adicionalmente mediante la figura y ejemplos siguientes. Sin embargo, dichos ejemplos y figuras no deberían interpretarse en modo alguno como limitativos del alcance de la presente invención.
Figuras:
Figura 1: ilustración esquemática del flujo de trabajo. Uso contemplado de un análisis genómico de sobrenadante para cualificar las hPSC en cultivo. Se recogió el sobrenadante de las hPSC y se extrajo el cfDNA total. A continuación, se llevó a cabo una PCR. A continuación, los resultados fueron analizados por bioinformáticos para detectar los biomarcadores en el cfDNA.
Figura 2: recurrencia de las anomalías genéticas de las hPSC en SEAdb. Gradiente de color: n° de estudios; tamaño de burbuja: longitud de la región genómica; Y: puntuación de recurrencia; X: cromosoma.
Figura 3: para los cromosomas 21 que alojan la mayor parte de las alteraciones genéticas >1 Mb, los 40 grupos de secuencias de la tabla 1 (sondas: S1 a S40) cubren 93,5% de las anomalías cromosómicas.
Figura 4: detección y cuantificación de los CfNA en muestras de sobrenadante de hPSC. Se evaluó la amplificación de secuencias de repetición ALU humanas en dos sobrenadantes de hPSC y utilizando ADN de fibroblastos de prepucio humano a cinco concentraciones a modo de control (330 pg, 110 pg, 13 pg, 3,3 pg y 0,33 pg). Se llevaron a cabo experimentos de QPCR en un Roche LC480. Se captó la fluorescencia en cada ciclo y se representó gráficamente frente al número de ciclos. El nivel creciente de fluorescencia medida era proporcional a la cantidad de producto de PCR generado durante la reacción. La concentración de CfNA medida en las hPSC era de entre 330 pg y 110 pg.
Figura 5: detección basada en el sobrenadante de la trisomía 20. A. Cariotipos anormales representativos en dos líneas de hPSC. HD291 (47,XY,+12) (panel izquierdo) y HD129 (47,XY,+20) (panel derecho). B. Cuantificación mediante ddPCR de la trisomía 20 en dos líneas de hPSC y sobrenadantes utilizando una secuencia hiperrecurrente específica para únicamente la trisomía 20. El gráfico de número de copia, con pocillos por triplicado exactos, reveló la presencia de trisomía 20 únicamente en células hPSC anormales HD129 y su sobrenadante, pero no en HD291. Todas las barras de error generadas por el software QuantaSoft™ representan el intervalo de confianza al 95%.
Figura 6: la elevada sensibilidad del sistema QX200 permite la cuantificación de la trisomía 20 en el sobrenadante de hPSC utilizando una secuencia hiperrecurrente específica. Las concentraciones de las muestras se representan gráficamente como n° de copias/pl.
Ejemplos
Ejemplo 1:
Métodos:
cultivo de hPSC y recolección de sobrenadantes.
Las PSC humanas (hESC o iPSC) se cultivaron en pocillos de 35 mm sobre Geltrex™ en presencia de medio libre "Xeno-free" y medio completamente definido (medio Essential 8™). Las células se disociaron mecánicamente y se cultivaron en cultivo en masa o se disociaron enzimáticamente y se adaptaron al pase de células individuales. Se renovó el medio cada día. Se incubaron medios libres de hPSC a modo de controles. Se recogió un ml de sobrenadante (medio acondicionado con hPSC) de cada pocillo inmediatamente antes del pase de rutina de PSC y se congeló inmediatamente en tubos libres de ADN, ADNasa, ARNasa e inhibidores de reacción en cadena de la polimerasa (PCR), y se almacenaron a -80°C hasta la purificación de los ácidos nucleicos. Se tomaron precauciones apropiadas para evitar la contaminación de las muestras por ADN foráneo.
Purificación de ácidos nucleicos
Se extrajeron los ácidos nucleicos de 200 pl de sobrenadante mediante la utilización del kit sanguíneo QIAmp DNA Mini (Qiagen, Hilden, Alemania) siguiendo el protocolo del fabricante. Brevemente, se añadieron 20 pl de proteinasa K y 200 pl de tampón AL a cada sobrenadante. Tras la agitación pulsada con vórtex durante 15 s, la mezcla de lisis se incubó a 56°C durante 10 min en un tubo Eppendorf (1,5 ml). Las condiciones altamente desnaturalizantes a temperaturas elevadas favorecieron la liberación completa de los ácidos nucleicos de cualesquiera proteínas unidas. Tras la adición de 200 pl de etanol frío (al 100%) al lisado, la muestra se transfirió a una columna QlAamp Mini. Se adsorbieron los ácidos nucleicos libres de células sobre la membrana a medida que se hacía pasar el lisado por centrifugación a 6000g durante 1 min. Los contaminantes se eliminaron eficientemente por lavado en dos etapas de lavado (en tampón AW1 y tampón AW2). Finalmente, los ácidos nucleicos libres de células se eluyeron en 30 pl de tampón AE y se almacenaron a -20°C.
Cuantificación de los ácidos nucleicos libres de células (CfNA)
Se evaluó la concentración de CfNA en cada sobrenadante respecto a la concentración correspondiente de producto de PCR ALU-115, que se determinó mediante un enfoque de PCR cuantitativa (LC480, Roche). Con este fin, se añadió un pl de cada muestra de eluido de CfNA a una mezcla de reacción que contenía 2X mezcla maestra LightCycler480 SYBR Green I (Roche Applied Science, Alemania) y 0,25 pM de cebadores ALU directos e inversos, tal como se indica en Umetani et al., (2006) en un volumen total de 10 pl. Las reacciones se configuraron en placas blancas de 96 pocillos (Eppendorf) mediante la estación de trabajo de manipulación de líquidos EpMotion 5070 (Eppendorf). Todas las reacciones se llevaron a cabo por triplicado. Se incluyó un control negativo (agua sin ARNasa/ADNasa) en cada tanda. Se determinó la concentración de CfNA en el sobrenadante mediante la utilización de una curva patrón obtenida mediante diluciones sucesivas de ácidos nucleicos genómicos extraídos directamente de las hPSC.
La detección de CNV en los CfNA mediante la utilización del sistema de PCR digital en gotas (ddPCR).
El ensayo de ddPCR se llevó a cabo tal como se ha descrito anteriormente (Abyzov et al., 2002). Brevemente, el flujo de trabajo de la ddPCR consiste en configurar las reacciones, preparar las gotas, el ciclado térmico y la operación del lector de gotas siguiendo las instrucciones de Bio-Rad (sistema Bio-Rad QX200). La ddPCR utiliza sondas de hibridación internas marcadas fluorescentemente (sondas TaqMan) para la detección de CNV en los CfNA. La reacción normalmente se configura mediante la utilización de un par de cebadores con diana en la región de interés (por ejemplo: CNV-ID1, dHsaCP2506319) y un segundo par de cebadores con diana en cualquier gen de referencia patrón (por ejemplo: RPP30, dHsaCP2500350). Los dos cebadores (diana y de referencia) se marcan con fluoróforos diferentes (FAM y HEX). Se añadió una entrada de CfNA de cada sobrenadante a la mezcla de reacción de PCR TaqMan. Dicha mezcla de reacción incluía la supermezcla de ddPCR sin dUTP (Bio-Rad, ref.
1863023) y cebadores en un volumen final de 20 pl. A continuación, se cargó cada mezcla de reacción de ddPCR ensamblada en el pocillo para muestras de un cartucho generador de gotas desechable de ocho canales (Bio-Rad, ref. 1864008). Se cargó un volumen de 60 pl de aceite de generación de gotas (Bio-Rad, ref. 1863005) en el pocillo para aceite de cada canal. Se introdujo el cartucho en el generador de gotas (Bio-Rad). Se extrajo el cartucho del generador de gotas, en el que las gotas que se recogieron en el pocillo de gotas seguidamente se transfirieron manualmente con una pipeta multicanal a una placa de PCR de 96 pocillos. La placa se termoselló con lámina de aluminio y después se introdujo en un ciclador térmico convencional y se amplificó hasta el punto final (40 a 50 ciclos). Mediante la utilización de tecnología de microfluidos, la mezcla de reacción se dividió en gotas esféricas compuestas de una superficie de aceite y un núcleo acuoso que contenía la mezcla de reacción de PCR. Las gotas se sometieron a ciclado térmico. Tras la amplificación, se leyó la fluorescencia de cada gota en sucesión con un lector de gotas. Las gotas que contenían la región diana de interés o referencia emitirán fluorescencia en el canal correspondiente (gotas positivas), mientras que aquellas sin diana no emitirán (gotas negativas). Los recuentos de gotas positivas y negativas para cada diana están relacionados con la concentración de la diana en la muestra según la distribución de Poisson.
Resultados:
Las células troncales pluripotentes (PSC), que se perpetúan por autorrenovación pero que son capaces de diferenciarse en células maduras de tejidos particulares, son herramientas clave para la medicina regenerativa. La medicina regenerativa es una definición amplia de las innovadoras terapias médicas que permiten al cuerpo repararse, sustituir, restaurar y regenerar células, tejidos y órganos daños o enfermos. Sin embargo, el cultivo celular puede resultar en anomalías epigenéticas y genéticas que podrían alterar las propiedades de las células troncales o predisponerlas a la formación de tumores. Con la rápida expansión del uso de las PSC en la clínica, es el momento de mejorar las herramientas de caracterización de las células troncales pluripotentes (PSC) durante la expansión celular y antes de la liberación de un lote.
Actualmente no existe ningún procedimiento genético y no invasivo disponible comercialmente que sea fiable para la evaluación de la integridad genética de células troncales pluripotentes en cultivo. La presente invención se refiere a un método para evaluar la integridad genómica de las hPSC en cultivo, que comprende una etapa de detección de anomalías genéticas en el ADN presente en el sobrenadante recogido durante la propagación de las PSC en cultivo.
Los inventores han determinado que existe un grupo de "secuencias hiperrecurrentes" en las hPSC que son biomarcadores de la inestabilidad de las hPSC en cultivo (tabla 1) y proponen un ensayo rápido y fácil de realizar que puede utilizarse para evaluar rutinariamente las células troncales durante el cultivo y antes del uso clínico (figura 1).
Alteraciones genéticas recurrentes producidas durante el cultivo de hPSC
Los inventores han desarrollado una base de datos "SEAdb" dedicada a la visualización de todos los tipos de anomalía genética, obtenidas mediante cariotipo, FISH, análisis de micromatrices (SNP, aCGH) o NGS. Puede accederse a SEAdb mediante el enlace siguiente: seadb.org (usuario: seadb y contraseña: SEAdb). Los inventores han compilado anomalías para más de 400.000 anomalías y variantes.
Los inventores muestran que las alteraciones genéticas más recurrentes que se producen durante el cultivo de hPSC son anomalías del cariotipo y variaciones del número de copia (CNV) >1 Mb (figura 2).
En contraste, las anomalías genéticas más pequeñas, tales como mutaciones e indels, prácticamente no son recurrentes. En SEAdb se encuentran 1117 alteraciones genéticas > 1 Mb. Los inventores han diseñado una puntuación de recurrencia que nos ayuda a identificar las posiciones en el genoma que presentan mayor tendencia a la modificación genómica inducida por el cultivo de PSC. Por ejemplo, para los cromosomas 21 que alojan la mayor parte de las alteraciones genéticas >1 Mb, los inventores muestran que los 40 grupos de secuencias de la tabla 1 (sondas: S1 a S40) cubren 93,5% de las anomalías cromosómicas (figura 3).
El sobrenadante de cultivo celular como fuente de ADN para la detección de secuencias patogénicas
Una restricción importante en la evaluación de la integridad del genoma de las células troncales en cultivo es la necesidad de destruir una muestra del cultivo para llevar a cabo el ensayo. Por lo tanto, el inventor propone que la integridad del genoma puede evaluarse en el sobrenadante del cultivo celular.
En efecto, el sobrenadante del cultivo celular contiene ADN libre de células (CfDNA) que son moléculas de doble cadena con peso molecular más bajo que el ADN genómico, en forma de fragmentos cortos (de entre 70 y 200 pares de bases de longitud) o fragmentos largos de hasta 21 kb. Los mecanismos de liberación de CfDNA son poco conocidos, aunque se ha propuesto que la necrosis, apoptosis, fagocitosis o liberación activa podrían tener un papel (Choi et al., 2005; Gahan et al., 2008; Stroun et al., 2001).
El CfDNA está presente en el suero o en el plasma y se utiliza para ensayos no invasivos para detectar anomalías cromosómicas (Hui y Bianchi, 2013). Se ha demostrado que aneuploidías fetales específicas, tales como la trisomía 13, 18 o 21, pueden detectarse en ADN fetal libre de células de muestras de suero materno (Dan et al., 2012; Fairbrother et al., 2013; Nicolaides et al., 2014). Además, el CfDNA fetal en el plasma materno también se utiliza para detectar variaciones patogénicas del número de copia (CNV) mediante la utilización de secuenciación de captura de región diana (Ge et al., 2013).
Basándose en el resultado de que el CfDNA resulta liberado en líquidos diferentes (suero y plasma) y que puede utilizarse para detectar CNV patógenos, los inventores han propuesto la utilización de ADN presente en el sobrenadante como fuente para detectar CNV patógenos y para llevar a cabo un análisis no invasivo de las hPSC, evitando la destrucción celular.
Con el fin de evaluar una posible fuente exógena de ADN en el sobrenadante de las células troncales, el inventor ha utilizado PCR en tiempo real cuantitativa de repeticiones ALU (Umetani et al., 2006). La cuantificación mediante ALU-qPCR de CfDNA total (por triplicado) en dos sobrenadantes de dos hESC ha mostrado inequívocamente que el CfDNA se detecta en todas las muestras sometidas a ensayo y que la concentración medida de CfDNA es de entre 330 pg y 110 pg (figura 4).
Estos resultados demuestran que el sobrenadante de hPSC contiene ADN libre de células (CfDNA), resultando presumiblemente de la liberación de material genético a partir de células muertas y células vivas flotantes. La detección del CfDNA liberado en el sobrenadante de las hPSC representa una herramienta todavía inexplorada para facilitar la evaluación de las anomalías genéticas mediante la utilización biomarcadores de secuencia.
La expresión "medio de cultivo" se refiere a una solución nutritiva para el cultivo, crecimiento o proliferación de células. La expresión "cultivo celular" se refiere a células que se mantienen, cultivan o hacen crecer en un medio in vitro artificial.
El término "CNV" se refiere a alteraciones del ADN de un genoma que resultan en que la célula presenta una variación anormal o, para determinados genes, normal, del número de copias de una o más secciones del ADN. Las CNV corresponden a regiones relativamente grandes del genoma que han sido eliminadas (menos del número normal) o duplicadas (más del número normal) en determinados cromosomas.
Ejemplo de referencia 2:
Métodos:
Cariotipado
Se disociaron células troncales pluripotentes humanas con TryPLE Select (Life Technologies) y se cultivaron durante 3 días hasta alcanzar plenamente la etapa exponencial. A continuación, se incubaron las células individuales con 1/10,000 KaryoMAX® Colcemid™ (Life Technologies) durante 90 min para detener el ciclo en metafase antes del hinchado hipotónico con solución de KCl 0,075 M a 37°C durante 20 min y tres fijaciones sucesivas en metanol/ácido acético glacial helado (3:1, vol/vol). Se depositaron veinte microlitros de suspensión de núcleos sobre portaobjetos de vidrio, se secaron al aire a 18,4°C y 60% de humedad y se rehidrataron en agua durante 5 min antes de la desnaturalización en EARLE naranja o 10x EBSS a 87°C durante 55 min. Después, los portaobjetos se enjuagaron en agua fría y se tiñeron con GIEMSA al 3% durante 3 min, se enjuagaron cinco veces y se secaron al aire. Se llevó a cabo la microscopía y análisis espectrales mediante la utilización de la plataforma de escaneo de portaobjetos Metafer (MetaSystem).
Análisis de datos de ddPCR y estadísticas
Se comparó el número de gotas de registro de la fluorescencia para el ensayo específico de diana (dHsaCP2506319) con el recuento obtenido para el ensayo específico de la referencia (dHsaCP2500350). Se calcularon los números finales de copias mediante la utilización del software del fabricante QuantaSoft (Bio-Rad, CA, EE.UU.) mediante la aplicación de estadísticos de Poisson:
X=-ln(l-p )
en el que "A" es el número medio de copias por cada gota y "p" es la proporción de gotas positivas a número total de gotas.
Resultados:
Evaluación de la integridad genética en sobrenadante de hPSC mediante la utilización del enfoque de ddPCR: aplicación en el cribado rutinario
La evaluación del cribado de la integridad genética resulta posible mediante el ensayo para CfDNA en sobrenadante de hPSC. Los presentes inventores utilizaron dos líneas de células troncales pluripotentes humanas aneuploides: HD129 y HD291 con el fin de validar la viabilidad del ensayo. HD129 mostró una trisomía 20 (47, XY+20), mientras que HD291 mostró una trisomía 12 (47,XY, 12), según se determinó mediante cariotipado de bandas R convencional. Se recolectaron las células y sobrenadante correspondientes, respectivamente, para el análisis de la trisomía 20 mediante la utilización del enfoque específico de secuencias hiperrecurrentes y ddPCR de los presentes inventores. Tal como se muestra en la figura 5, (i) se detecta la aberración genómica (en este caso, la trisomía 20) en el sobrenadante de las hPSC mediante la utilización de un enfoque de ddPCR para la línea hPSC HD129, aunque no en la línea HD291, confirmando los resultados del cariotipo, (ii) se encuentra una correlación entre el resultado de cribado de anomalías genéticas del sobrenadante y el cariotipo correspondiente, demostrando la prueba de concepto de que los CfNA presentes en el sobrenadante pueden utilizarse para evaluar la integridad genética de las células troncales pluripotentes. La ventaja del cribado de células troncales mediante la utilización del sobrenadante sería la capacidad de evaluar la integridad genética de las células troncales sin destrucción. Además, la utilización de esta simple metodología, basada en la reacción en cadena de la polimerasa digital en gotas (ddPCR), permite el cribado rápido, eficiente y fácil de líneas de hPSC a partir de cantidades pequeñas de material, incluyendo el sobrenadante del cultivo. Dichos beneficios podrían hacer que dicho enfoque resultase atractivo, conduciendo a la potencial utilización de manera rutinaria. Finalmente, el método de los presentes inventores puede aplicarse cualesquiera otros experimentos que requieran el análisis preciso del genoma para el ensayo de la integridad genética (por ejemplo): células troncales multipotentes, tales como las células troncales mesenquimatosas (MSC), células germinales, linfocitos, embriones o células somáticas).
Concentración mínima de ácidos nucleicos para un ensayo robusto
La sensibilidad de la detección de la secuencia de la trisomía 20 mediante la utilización de ddPCR se evaluó mediante el ensayo de diferentes concentraciones (1,1 ng/plL, 0,4 ng/pl, 0,1 ng/plL, 3,7 pg/pl, 1,1 pg/pl y 0,4 pg/pl) de ácidos nucleicos extraídos del sobrenadante recogido de la línea de hPSC HD129. Tal como se muestra en la figura 6, se detectó una señal de trisomía 20 entre las señales obtenidas de una concentración muy baja (de hasta 0,1 ng/pl), pero todavía suficiente para proporcionar un resultado de cribado fiable.
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Claims (9)

REIVINDICACIONES
1. Método no invasivo in vitro para determinar la calidad de una célula troncal pluripotente humana o de una célula diferenciada derivada de la misma que comprende las etapas de: i) proporcionar una muestra de cultivo en la que crecen las células troncales, ii) extraer los ácidos nucleicos a partir del sobrenadante de cultivo, e iii) determinar la presencia y/o el nivel de por lo menos una anomalía genética en la extracción de ácidos nucleicos, en el que dicha etapa iii) comprende las etapas de
i) determinar la presencia de por lo menos una secuencia hiperrecurrente seleccionada de la tabla 1 en la extracción de ácidos nucleicos, e ii) concluir que las células troncales pluripotentes portan una anomalía genética cuando se detecta por lo menos una secuencia hiperrecurrente.
2. Método según la reivindicación 1, en el que dicha célula diferenciada derivada de célula troncal pluripotente humana se selecciona de entre el grupo que consiste en cardiomiocitos y progenitores de los mismos; células progenitoras neurales; células de los islotes pancreáticos, particularmente células p pancreáticas; células progenitoras y madre hematopoyéticas; células troncales mesenquimatosas; y células satélite musculares.
3. Método según la reivindicación 1, en el que dicha célula diferenciada derivada de célula troncal pluripotente humana es un linfocito.
4. Método según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que la anomalía genética se detecta mediante PCR.
5. Método según la reivindicación 4, en el que dicha PCR es una PCR en gotas digital.
6. Método según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que la anomalía genética se detecta mediante secuenciación de nueva generación.
7. Método según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 3, en el que la anomalía genética se detecta mediante análisis de matrices de sondas.
8. Célula troncal pluripotente humana o célula diferenciada derivada de la misma libre de anomalías genéticas, para la utilización en un método de trasplante, en la que dicho método comprende las etapas de: i) llevar a cabo el método según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, ii) seleccionar la célula troncal pluripotente humana libre de anomalías genéticas, e iii) administrar la célula troncal pluripotente seleccionada en la etapa ii) o las células diferenciadas derivadas de la misma a un sujeto que necesita un tratamiento regenerativo.
9. Célula troncal pluripotente humana o célula diferenciada derivada de la misma libre de anomalías genéticas, para la utilización en un método para tratar una enfermedad en un sujeto que necesita un tratamiento regenerativo, en la que dicho método comprende las etapas de: i) llevar a cabo el método según cualquiera de las reivindicaciones 1 a 5, ii) seleccionar la célula troncal pluripotente libre de anomalías genéticas, e iii) administrar la célula troncal pluripotente humana seleccionada en la etapa ii) o células diferenciadas derivadas de la misma a dicho sujeto.
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