ES2331004T3 - Moleculas biologicas conjugadas y su preparacion. - Google Patents
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Abstract
Un compuesto de la fórmula general **(Ver fórmula)** en la que uno de X y X'' representa un homopolímero o copolímero seleccionado entre el grupo constituido por polialquilenglicoles, polivinilpirrolidonas, poliacrilatos, polimetacrilatos, polioxazolinas, poli(alcoholes de vinilo), poliacrilamidas, polimetacrilamidas, copolímeros de HPMA, poliésteres, poliacetales, poli(orto ésteres), policarbonatos, poliiminocarbonatos, copolímeros de divinil éter-anhídrido maleico o estireno-anhídrido maleico, polisacáridos, o poli(ácidos glutámicos), estando opcionalmente derivatizado o funcionalizado cualquiera de los mencionados homopolímeros o copolímeros; y el otro representa un átomo de hidrógeno; cada Q representa independientemente un grupo conector; W representa un grupo ceto CO, un grupo éster -O-CO- o un grupo sulfona -SO2-, o un grupo obtenido por reducción de un grupo de los mencionados; o, si X'' representa un polímero, X-Q-W- juntos representan un grupo ciano; Z representa una proteína que está unida a A y B por dos grupos tiol que se han obtenido de un puente disulfuro en la proteína; A es una cadena alquileno o alquenileno C1-5 y B es un enlace o una cadena alquileno o alquenileno C1-4.
Description
Moléculas biológicas conjugadas y su
preparación.
Esta invención se refiere a moléculas biológicas
conjugadas y a su preparación a partir de nuevos derivados
químicamente funcionalizados de polímeros tales como
polietilenglicol.
Muchas moléculas terapéuticamente activas no
tienen las propiedades requeridas para lograr eficacia en el uso
médico clínico. Por ejemplo, se están descubriendo ahora y
produciendo por la industria farmacéutica y por ingeniería genética
proteínas y polipéptidos terapéuticamente activos. Aunque en la
actualidad se comercializan en los Estados Unidos como mínimo 80
medicinas basadas en proteínas y hay como mínimo 350 medicinas más
basadas en proteínas sometidas a ensayos clínicos (Harris J., Chess
R: Effect of Pegylation on Pharmaceuticals, Nature Review Drug
Discovery, 2003, 2, 214-221), la mayoría de las
proteínas naturales no permiten hacer medicinas porque, después de
administración a pacientes, hay varios inconvenientes inherentes
entre los que están incluidos: las proteínas son digeridas por
muchas endopeptidasas y exopeptidasas presentes en la sangre o en
tejidos, (2) muchas proteínas son inmunógenas en cierta cuantía y
(3) las proteínas pueden ser rápidamente excretadas por
ultrafiltración en el riñón. Entre otras moléculas usadas como
agentes terapéuticos activos en medicinas que son sistémicamente
tóxicas o carecen de biodisponibilidad y propiedades farmacocinética
óptimas están incluidas moléculas de bajo peso molecular de las que
una dosis eficaz está limitada por la toxicidad. Tales moléculas se
usan rutinariamente para tratar la inflamación y afecciones debidas
a neoplasias malignas, infección y enfermedad autoinmune.
Se usan polímeros sintéticos solubles en agua,
en particular polialquilenglicoles, para conjugar moléculas
terapéuticamente activas tales como proteínas. Estos conjugados
terapéuticos han demostrado que alteran favorablemente la
farmacocinética por prolongar el tiempo de circulación y disminuir
la velocidad de depuración, disminuir la toxicidad sistémica y, en
varios casos, presentar una eficacia clínica acrecentada. Este
procedimiento de conjugar covalentemente polietilenglicol, PEG, a
proteínas, se conoce comúnmente como "PEGilación", y se han
examinado muchos polímeros diferentes como polímeros de
conjugación.
Muchos reactivos polímeros para conjugación
comprenden funcionalidad química de conjugación que es
hidrolíticamente inestable. Son ejemplos de reactivos polímeros
hidrolíticamente inestables de conjugación, ésteres activos que
incluyen, por ejemplo, carbonatos de polióxido de
alquileno-N-succinimida (Zalipsky,
patente U.S. nº. 5.122.614). Estos reactivos tienen semividas
relativamente cortas en medio acuoso, que incluye sangre o plasma.
Esto da por resultado la necesidad de añadir excesos
estequiométricos grandes del reactivo de conjugación del polímero.
La estabilidad hidrolítica del reactivo es importante porque el
requerimiento de añadir excesos estequiométricos para la
conjugación de proteínas requiere un esfuerzo y un coste
significativos para purificar el conjugado de
polímero-proteína de la mezcla de reacción. Además,
estos reactivos hidrolíticamente inestables tienden a reaccionar
preferiblemente con la funcionalidad química amina de la proteína,
en particular con la amina \varepsilon de los restos de lisina.
Puesto que la mayoría de las proteínas de interés tienen más de un
resto de lisina y, frecuentemente, muchos restos de lisina, la
conjugación tiende a ser inespecífica en cuanto a que se produce en
muchos sitios del resto en la proteína. Es posible purificar la
mezcla de reacción de conjugación para aislar proteínas conjugadas
a una molécula de polímero, aunque no es posible aislar a un coste
razonable conjugados de polímero-proteína de los que
la totalidad están conjugados al mismo grupo amina en la proteína.
Frecuentemente, la conjugación no específica da por resultado una
función proteínica empeorada. Por ejemplo, anticuerpos y fragmentos
de anticuerpo con unión de poli(óxido de etileno) al azar mediante
restos de lisina dan por resultado anticuerpos modificados (o
fragmentos de anticuerpo modificados) capaces de unirse a antígeno
diana con afinidad, avidez o especifidad reducida. Además, los
reactivos de conjugación de amina específicos para polímeros
requieren una condiciones de conjugación que deben seleccionarse
para asegurar que las aminas de la proteína no sean protonadas.
Estas condiciones requieren un medio con un pH moderadamente alto
(8-10), que permite que los restos amina sean lo
suficientemente reactivos para reaccionar con el reactivo de
conjugación del polímero. Frecuentemente, las condiciones de un pH
alto son perjudiciales para la proteína, causando cambios
estructurales y desnaturalización. Esto procesos dan por resultado
un empeoramiento de la función proteínica. Los reactivos
específicos para la conjugación de polímeros a amina tienden a
unirse a sitios accesibles de amina de la proteína. Estos reactivos
se pueden llamar reactivos cinéticos. Son lábiles y reaccionan con
la mayor parte de los sitios nucleófilos amino evaluables de la
proteína. Los reactivos que conjugan polímeros específicos a amina
que se conjugan por acilación de amina dan por resultado la pérdida
de carga positiva en el grupo amina del resto de aminoácido de la
proteína que normalmente estaría presente en condiciones
fisiológicas para la proteína no conjugada. Estos rasgos de los
reactivos de conjugación de polímeros específica a amina
frecuentemente dan por resultado un empeoramiento de la función de
la proteína. Otros grupos funcionales de conjugación incorporados
en polímeros para conjugación a proteínas y que son aminaespecíficos
y que con frecuencia son hidrolíticamente lábiles incluyen los
isocianatos (documento WO 94/04193) y los carbonatos (documento WO
90/13540).
Es particularmente relevante para una eficacia
optimizada y para asegurar la consistencia de dosis a dosis, cuidar
de que el número de moléculas de polímero conjugadas por proteína
sea el mismo y que cada molécula de polímero esté específicamente
conjugada covalentemente al mismo resto de aminoácido en cada
molécula de proteína. La conjugación no específica en sitios a lo
largo de una molécula de proteína da por resultado una distribución
de productos de conjugación y, frecuentemente, proteína no
conjugada, obteniéndose una mezcla compleja que es difícil,
laboriosa y cara de purificar.
\newpage
Se han desarrollado reactivos de conjugación de
polímeros específica a tiol para proteínas con el fin tratar las
limitaciones a la propensión de los reactivos de conjugación a
experimentar hidrólisis que sea competitiva con la conjugación a la
proteína, la conjugación no específica de polímero en diferentes
restos de aminoácido de la proteína y la necesidad de condiciones
de pH alto en la reacción de conjugación. Los reactivos de
conjugación específica de polímeros a tiol se pueden utilizar a
valores del pH próximos a la neutralidad a los que los restos
funcionales amina de los restos de aminoácidos de la proteína se
protonan y no pueden así competir eficazmente en la reacción de
conjugación con el reactivo de conjugación del polímero. Los
reactivos de conjugación específica de polímeros a tiol y que son
relativamente más estables hidrolíticamente que los reactivos
específicos a amina antes mencionados se pueden utilizar en un
exceso estequiométrico menor, reduciendo así el coste durante la
purificación del conjugado polímero-proteína. Entre
los restos funcionales de conjugación que son ampliamente
selectivos para grupos tiol están incluidos yodoacetamida,
maleiimida (documento WO 92/16221), vinilsulfona (documentos WO
95/13312 y WO 95/34326), vinilpiridinas (documento WO 88/05433) y
ésteres acrilato y metacrilato (documento WO 99/01469). Estos
restos selectivos de conjugación de tiol dan un enlace individual de
conjugación tioéter entre el polímero. El documento WO 99/01469 da
a conocer un reactivo para proteínas de PEGilación que tiene un
término ramificado y grupos reactivos proximales. La mayoría de las
proteínas no tienen sulfhidrales libres porque estos sulfhidrales
experimentan reacciones de transposición y desbarajuste con los
puentes disulfuro dentro de la proteína dando por resultado una
función proteínica empeorada. Para proteínas que tienen sulfhidrales
libres, con frecuencia estos sulfhidrales son críticos para la
función proteínica. Típicamente, en una proteína, el número de
restos sulfhidrales es inferior al número de restos amina (por
ejemplo, lisina o histadina). Puesto que la conjugación a una
proteína puede hacerse que sea específica a grupos tiol y puesto que
las proteínas típicamente no tienen grupos tiol libres, hay
ejemplos de modificación específica del sitio de la proteína por
mutagénesis para introducir sitios de tiol para la unión de PEG.
Pero tales modificaciones aumentan los costes significativamente.
El sulfhidral libre introducido puede tener limitaciones similares a
las mencionadas antes en la proteína diseñada por ingeniería para
arrastre y dimerización de la proteína. También el proceso de
mutagénesis y producción de la proteína modificada de fuentes
bacterianas frecuentemente causa que los sulfhidrales libres se
unan en un enlace disulfuro con glutationa, por ejemplo. La
interleuquina 2, por ejemplo, ha sido modificada por mutagénesis
para reemplazar un resto de treonina por una cisteína para tener una
unión específica al sitio de unión de PEG (Goodson RJ, Katre NV;
Bio/Technology (1990) 8, 343-346).
Se sabe en la técnica que los parámetros de
conjugación han de casar óptimamente con la molécula
terapéuticamente activa de interés en términos de morfología del
polímero, características del peso molecular, funcionalidad
química. Aunque el conjugado de polímero-proteína
puede presentar muchas propiedades favorables y necesarias para un
uso seguro, médicamente eficaz, el efecto de la conjugación de
polímero sobre la actividad y la estabilidad de la proteína es de
vital importancia para el comportamiento. Las variables de
conjugación relacionadas con el sitio y la cantidad de conjugación
y las características del polímero se deben correlacionar
óptimamente con las propiedades biológicas y fisicoquímicas.
Los inventores han encontrado ahora una serie de
nuevos reactivos que se pueden usar para conjugar con ambos átomos
de azufre de un enlace disulfuro en una proteína para obtener nuevos
conjugados tioéter. La invención en su primer aspecto considera la
conjugación de los dos átomos de azufre que forman puentes disulfuro
naturales en proteínas nativas. Se encuentran enlaces disulfuro en
proteínas médicamente relevantes, específicamente, proteínas
secretoras, proteínas lisosomales, y los dominios exoplásmicos de
proteínas de membrana. La tecnología proporciona ventajas claras
sobre técnicas conocidas para conjugar polímeros a proteínas.
Consecuentemente, la presente invención
proporciona un compuesto de la fórmula general I según se define en
la reivindicación 1.
Un polímero X o X' puede ser, por ejemplo, un
polialquilenglicol, una polivinilpirrolidona, un poliacrilato, por
ejemplo, poliacriloilmorfolina, una polioxazolina, un
poli(alcohol vinílico), una poliacrilamida o
polimetilacrilamida, por ejemplo, policarboximetilacrilamida, o un
copolímero de HPMA. Además, X o X' pueden ser un polímero que es
susceptible de degradación enzimática o hidrolítica. Entre tales
polímeros están incluidos, por ejemplo, poliésteres, poliacetales,
poli(orto ésteres), policarbonatos y
poli(iminocarbonatos). Un polímero X o X' puede ser un
homopolímero, un copolímero al azar o un copolímero definido
estructuralmente tal como un copolímero de bloque. Por ejemplo, X o
X' pueden ser un copolímero de bloque derivado de dos o más óxidos
de alquileno, o de poli(óxido de alquileno) y cualquiera de un
poliéster, poliacetal o r poli(orto-éster). Entre los
polímeros polifuncionales que se pueden usar están incluidos
copolímeros de divinil éter-anhídrido maleico, y
estireno-anhídrido maleico. También se pueden usar
polímeros naturales, por ejemplo, polisacáridos tales como quitina,
dextrano, dextrina, quitosano, almidón, celulosa, glicógeno,
poli(ácido siálico), y derivados de ellos. También se pueden usar
polímeros tales como ácido glutámico, como también polímeros
híbridos derivados de monómeros naturales tales como sacáridos o
aminoácidos y monómeros sintéticos tales como óxido de etileno o
ácido metacrílico.
Si el copolímero es un polialquilenglicol, es
preferible que éste contenga unidades C_{2} y/o C_{3}, y
especialmente es un polietilenglicol. Un polímero,en particular un
polialquilenglicol, pude contener una cadena individual lineal, o
puede tener una morfología ramificada compuesta por muchas cadenas,
pequeñas o grandes. Los denominados Pluronics son una clase
importante de polímeros de bloque de PEG. Éstos son derivados de
bloques de óxido de etileno y óxido de propileno. Se pueden usar
polialquilenglicoles sustituidos, por ejemplo,
metoxipolietilenglicol. En una realización preferente de la
invención, se inicia un polietilenglicol de cadena individual por un
grupo adecuado, por ejemplo, un grupo alcoxi, por ejemplo metoxi,
ariloxi, carboxi o hidroxilo, y se conecta en el otro extremo de la
cadena al grupo conector Q.
El polímero X o X' opcionalmente se puede
derivatizar o funcionalizar de cualquier manera que se desee. Por
ejemplo, los polímeros con dos o más restos químicos para
conjugación que son objeto de esta invención se pueden usar para
crear conjugados de dos o más moléculas bioactivas unidas. Los
grupos reactivos se pueden unir en el grupo terminal o final del
polímero, o a lo largo de la cadena del polímero mediante conectores
pendientes; en tal caso, el polímero es, por ejemplo, una
poliacrilamida, polimetacrilamida, un poliacriato, polimetacrilato,
o un copolímero de anhídrido maleico. Los conjugados multímeros que
contienen más de una molécula biológica, típicamente un polipéptido
biológicamente activo o fármaco, pueden dar por resultado beneficios
sinérgicos y aditivos. Si se desea, se puede acoplar el polímero a
un soporte sólido usando procedimientos convencionales.
El peso molecular óptimo del polímero dependerá,
obviamente, de la aplicación prevista. Preferiblemente, el peso
molecular numérico medio está en el intervalo de 500 g/mol a
aproximadamente 75.000 g/mol. Cuando se pretende que el compuesto
de la fórmula general I abandone la circulación y penetre en el
tejido, por ejemplo, para uso en el tratamiento de una inflamación
causada por una neoplasia maligna, infección o enfermedad
autoinmune, o por trauma, puede ser ventajoso usar un polímero de
peso molecular más bajo, en el intervalo de
2000-30.000 g/mol. Para aplicaciones en las que se
quiere que el compuesto de fórmula general I permanezca en
circulación, puede ser ventajoso usar un polímero de peso molecular
más alto, por ejemplo en el intervalo de
20.000-75.000 g/mol.
El polímero a usar se debe seleccionar de manera
que el conjugado sea soluble en el medio disolvente para el uso
previsto. Para aplicaciones biológicas, en particular para
aplicaciones diagnósticas y aplicaciones terapéuticas para
administración terapéutica a un paciente, el conjugado será soluble
en el medio acuoso. Para conjugados destinados para uso en tales
aplicaciones puede ser necesario que el conjugado sea soluble en
uno de los medios, acuoso u orgánico, o en ambos. El polímero no
debe perjudicar la función de la(s) molécula(s)
biológica(s).
Un grupo conector Q puede ser, por ejemplo, un
enlace directo, un grupo alquileno (preferiblemente un grupo
alquileno C_{1-10}) o un grupo arilo o heteroarilo
opcionalmente sustituido, cualquiera de los cuales puede estar
terminado o interrumpido por uno o varios átomos de oxígeno, átomos
de azufre, grupos -NR (en los que R tiene el significado que se
da más adelante), grupos ceto, grupos -O-CO- y/o
grupos -CO-O-. Entre los grupos arilo adecuados
están incluidos los grupos fenilo y naftilo, mientras que entre los
grupos heteroarilo están incluidos piridina, pirrol, furano,
pirano, imidazol, pirazol, oxazol, piridazina, pirimidina y purina.
La unión al polímero puede ser a través de un enlace
hidrolíticamente lábil o un enlace no lábil.
Entre los sustituyentes que pueden estar
presentes en un grupo arilo o heteroarilo opcionalmente sustituido
están incluidos, por ejemplo, uno o varios de sustituyentes, iguales
o diferentes, seleccionados entre -CN, -NO_{2}, -CO_{2},
-COH, -CH_{2}OH, -COR, -OR, -OCOR, -OCO_{2}O, -SR, -SOR,
-SO_{2}R, -NHCOR, -NRCOR, -NHCO_{2}R, -NR'CO_{2}R, -NO,
-NHOH, -NR'OH, -C=N-NHCOR,
-C=N-NR'COR, -N^{+}R_{3}, -N^{+}H_{3},
-N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno, por ejemplo flúor o
cloro, -C\equivCR, -C=CR_{2} y -C=CHR, en los que cada R o R'
representa un átomo de hidrógeno, o un grupo alquilo
(preferiblemente alquilo C_{1-6}), o arilo
(preferiblemente fenilo). Es especialmente preferida la presencia de
sustituyentes aceptores de electrones.
W representa un grupo ceto o aldehído CO, un
grupo éster -O-CO-, o un grupo sulfona -SO_{2}-, o
un grupo obtenido por reducción de uno de tales grupos, por ejemplo
un grupo CH.OH, un grupo éter CH.OR, un grupo éster
CH.O.C(O)R, un grupo amina CH.NH_{2}, CH.NHR o
CH.NR_{2}, o una amida CH.NHC(O)R o
CH.N(C(O)R)_{2}. Si X' representa un
polímero, X-Q-W juntos puede ser un
grupo ciano.
Z deriva de una proteína. La proteína puede ser,
por ejemplo, un polipéptido, un anticuerpo, un fragmento de
anticuerpo, una enzima, una citocina, quimiocina o un receptor.
También se pueden usar polipéptidos constreñidos o cíclicos que
usualmente se ciclan a través de un puente disulfuro, y epitopos.
Más adelante se da una lista de ejemplos específicos de moléculas
biológicas adecuadas. Se pueden generar dos grupos tiol por
reducción de un puente disulfuro natural o diseñado por ingeniería
(cisteína). Los grupos amina pueden ser, por ejemplo, restos de
lisina.
La invención proporciona también un
procedimiento para la preparación de un compuesto de fórmula general
I, de acuerdo con la reivindicación 7.
El grupo saliente L, o cada uno de ellos, puede
representar, por ejemplo, -SR, SO_{2}R, -OSO_{2}R,
-N^{+}R_{3}, -N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno o
-O\diameter, en los que R tiene el significado dado antes y
\diameter representa un grupo arilo sustituido, especialmente
arilo que contiene como mínimo un sustituyente aceptor de
electrones, por ejemplo, -CN, -NO_{2}, -CO_{2}R, -COH,
-CH_{2}OH, -COR, -OR, -OCOR, -OCO_{2}R, -SR, -SOR, -SO_{2}R,
-NHCOR, -NRCOR, -NHCO_{2}R, -NR'CO_{2}R,
-NO, -NHOH, -NR'OH, -C=N-NHCOR, -C=N-NR'COR, -N^{+}R_{3}, -N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno, especialmente cloro o, especialmente flúor, -C\equivCR, -C=CR_{2} y -C=CHR, en los que cada R y R' tienen el significado dado antes.
-NO, -NHOH, -NR'OH, -C=N-NHCOR, -C=N-NR'COR, -N^{+}R_{3}, -N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno, especialmente cloro o, especialmente flúor, -C\equivCR, -C=CR_{2} y -C=CHR, en los que cada R y R' tienen el significado dado antes.
\newpage
Entre las estructuras típicas en las que W' y X
juntos forman un anillo está incluida
en la que n es un número entero de
1 a 4
y
El procedimiento de acuerdo con la invención se
realiza adecuadamente por reducción de un enlace disulfuro derivado
de dos aminoácidos de cisteína de la proteína in situ,
haciendo reaccionar seguidamente el producto reducido con el
compuesto de fórmula (II) o (III). Los disulfuros se pueden reducir,
por ejemplo, con ditiotreitiol, mercaptoetanol o
tris-carboxietilfosfina usando procedimientos
convencionales. El procedimiento se puede realizar en un disolvente
o mezcla de disolventes en el que son solubles todos los reactantes.
Se puede dejar que la proteína reaccione directamente con el
compuesto de fórmula general II o III en un medio de reacción
acuoso. Este medio de reacción se puede tamponar dependiendo de los
requerimientos de pH del nucleófilo. Generalmente, el pH óptimo
para la reacción es de entre aproximadamente 5,5 y aproximadamente
8, por ejemplo de 7,4, preferiblemente de aproximadamente
6,0-6,5. Generalmente, las temperaturas de reacción
entre 3 y 37ºC son adecuadas: las proteínas y otras moléculas
biológicas se pueden descomponer o desnaturalizar con perjuicio de
la función si la reacción de conjugación se efectúa a una
temperatura a la que pueden producirse estos procesos. Las
reacciones efectuadas en medio orgánico (por ejemplo, THF, acetato
de etilo, acetona) típicamente se realizan a temperaturas hasta
como máximo la ambiente, por ejemplo, a temperaturas por debajo de
0ºC.
Una proteína puede contener un puente disulfuro
o una multiplicidad de puentes disulfuro. La reducción para que
resulten restos sulfhidral libres se puede realizar para reducir un
puente disulfuro o una multiplicidad de puentes disulfuro en una
proteína. Dependiendo de la cuantía de la reducción de disulfuros y
la estequiometría del reactivo polímero de conjugación que se usa,
es posible conjugar una molécula o una multiplicidad de moléculas
de polímero a la proteína.
Si se desea, se pueden usar agentes reductores
inmovilizados para reducir menos de la totalidad de disulfuros,
como también se puede reducir usando condiciones de reacción
diferentes o añadiendo desnaturalizantes.
Un puente disulfuro puede ser intracatenario o
intercatenario.
La proteína se puede conjugar efectivamente con
los reactivos de la presente invención usando un equivalente
estequiométrico o un ligero exceso de reactivo, a diferencia de
muchos reactivos de la técnica anterior. Sin embargo, puesto que
los reactivos de la presente invención no experimentan reacciones
competitivas con el medio usado para solvatar proteínas, es posible
llevar a cabo la reacción de conjugación con una estequiometría de
reactivo en exceso. El reactivo en exceso puede eliminarse
fácilmente por cromatografía de intercambio iónico durante la
purificación rutinaria de proteínas.
Los compuestos de las fórmulas (II) y (III)
definidos en la reivindicación 7 son nuevos y, consecuentemente, la
invención proporciona además estos compuestos en sí. Estos nuevos
reactivos proporcionan una ruptura en la tecnología de conjugados,
comprendiendo el resto funcional químico en el polímero un resto
funcionalizado cruzado, latentemente conjugado por cruce, de
bisalquilación, que es selectivo para dos tioles derivados de un
enlace disulfuro natural en proteínas.
El producto inmediato del procedimiento de
acuerdo con la invención es un compuesto de la fórmula general I en
la que W es un grupo aceptor de electrones. Tales compuestos son
útiles en sí; porque el procedimiento de la invención es reversible
en condiciones adecuadas; adicionalmente los compuestos de la
fórmula (I) en la que W es un resto aceptor de electrones son
útiles en aplicaciones en las que se requiere la liberación de la
proteína libre, por ejemplo, en aplicaciones clínicas directas. Sin
embargo, un resto W aceptor de electrones puede ser reducido,
resultando un resto que impide la liberación de la proteína y tales
compuestos serán también útiles en muchas aplicaciones clínicas,
industriales y diagnósticas.
Así por ejemplo, un resto W que contiene un
grupo ceto puede reducirse a un resto W que contiene un grupo
CH(OH); se puede obtener un grupo éter CH.OR por reacción de
un grupo hidroxi con un agente de eterificación; se puede obtener
un grupo éster CH.O.C(O)R por reacción de un grupo
hidroxi con un agente de acilación; se puede obtener un grupo amina
CH.NH_{2}, CH.NHR o CH.NR_{2} a partir de una cetona o un
aldehído por aminación reductora; o se puede formar una amida
CH.NHC(O)R o
CHN(C(O)R)_{2} por acilación de una
amina. Un grupo X-Q-W que es un
grupo ciano se puede reducir a un grupo amina.
Un compuesto de la fórmula general (II) en la
que X representa un polímero se puede preparar haciendo reaccionar
un compuesto de la fórmula general
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
en la que Q', W, A, B y L tienen el
significado dado antes, con un polímero de la fórmula
general
(VII)X-V
en la que X representa un polímero;
siendo Q' y V grupos seleccionados de manera que los compuestos de
fórmula (VI) y (VII) reaccionarán juntos dando el compuesto deseado
de fórmula (II). Alternativamente, un compuesto de la
fórmula
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
se puede hacer reaccionar con un
polímero de la fórmula
general
(IX)X-Q'
Se puede preparar un compuesto de la fórmula
general (III) por eliminación mediada por una base de un grupo
saliente L de un compuesto de la fórmula general (II).
\newpage
Los compuestos de la fórmula general I pueden
incluir un agente de obtención de imágenes, por ejemplo, un
radionucleótido, para poder seguir un compuesto in vivo. El
radionucleótido o el agente de obtención de imágenes I se puede
unir a través del grupo W para que resulten, por ejemplo, compuestos
del tipo
que se pueden preparar, por
ejemplo, a partir de reactivos del
tipo
por
ejemplo
Los compuestos de la fórmula general I tienen
varias aplicaciones. Se pueden usar, por ejemplo, para aplicación
clínica directa a un paciente y, consecuentemente, la presente
invención proporciona además una composición farmacéutica que
comprende un compuesto de la fórmula general I junto con un vehículo
farmacéuticamente aceptable. La invención proporciona además un
compuesto de la fórmula I para uso como medicamento y un
procedimiento para tratar un paciente, que comprende administrar al
paciente una cantidad farmacéuticamente eficaz de fórmula I o una
composición de acuerdo con la invención. Eligiendo adecuadamente la
proteína, se puede obtener cualquier efecto farmacéutico deseado,
por ejemplo, tratamiento de un trauma, reemplazo de enzimas,
eliminación de toxinas, antiinflamatorio, antiinfeccioso,
inmunomodulador, vacunación o anticanceroso.
Los compuestos de la fórmula general I se pueden
usar también en aplicaciones no clínicas. Por ejemplo, muchos
compuestos fisiológicamente activos tales como enzimas son capaces
de catalizar reacciones en disolventes orgánicos y los compuestos
de fórmula general I se pueden usar en tales aplicaciones. Además,
se pueden usar compuestos de la fórmula general I como herramientas
diagnósticas.
Seguidamente se dan algunas proteínas
específicas que pueden tener utilidad en la presente invención
dependiendo de la aplicación deseada. Las enzimas incluyen enzimas
específicas para carbohidratos, enzimas proteolíticas y similares.
Las enzimas de interés, tanto para aplicaciones industriales
(basadas en reacciones orgánicas) como biológicas en general y
aplicaciones terapéuticas en particular incluyen las
oxidorreductasas, transferasas, hidrolasas, liasas, isomerasas y
ligasas consideradas desveladas en el documento US 4.179.337. Entre
las enzimas específicas de interés están incluidas asparaginasa,
arginasa, adenosina desaminasa, superóxido dismutasa, catalasa,
quimotripsina, lipasa, uricasa, bilirrubinaoxidasa, glucosaoxidasa,
glucoronidasa, galatosidasa, gluco-cerbrosidasa,
glucoronidasa, glutaminasa.
Entre las proteínas usadas en compuestos de la
fórmula general I de la presente invención están incluidos, por
ejemplo, factor 8, insulina, ACTH, glucagén, somatostatina,
somatotropinas, limosina, hormona paratiroide, hormonas
pigmentarias, somatomedinas, eritropoyetina, hormona luteinizante,
factores de liberación hipotalámica, hormonas antidiuréticas,
prolactina, interleuquinas, interferones, factores estimulantes de
colonias, hemoglobina, citoquinas, anticuerpos,
corionicgonadotropina, hormona foliculoestimulante, hormona
estimulante del tiroides y activante de tejido plasminógeno.
Ciertas de las proteínas anteriores, tales como
interleuquinas, interferones y factores estimulantes de colonias,
existen también en forma no glicosilada, usualmente resultado de la
preparación por técnicas de proteínas recombinantes. Las versiones
no glicosiladas se pueden usar en la presente invención.
Por ejemplo, para interferones, la invención
permite la preparación de conjugados en los que la actividad
fisiológica se retiene en comparación con Interferones no
conjugados. Este muy sorprendente resultado no es posible usando
técnicas de conjugación conocidas.
Otras proteínas de interés son proteínas
alergenas descritas por Dreborg y otros, Crit. Rev. Therap. Drug
Carrier Syst. (1990) 6.315.365, como que tienen una alergenia
reducida cuando se conjugan con un polímero tal como poli(óxido de
alquileno) y que consecuentemente son adecuadas para uso como
inductores de tolerancia. Entre los alergenos descritos están el
antígeno de ambrosia E, el veneno de abeja obrera, el alergeno de
ácaro y similares.
Son de interés glicopolipéptidos tales como
inmunoglobulinas, ovalbumina, glucocerebrosidasa, lectinas,
activante de tejido plaminógeno e interleuquinas glicosiladas,
interferones y factores estimulantes de colonias, como lo son
inmunoglobulinas tales como IgG, IgE, IgM, IgA, IgD y fragmentos de
ellas.
Son de interés particular anticuerpos y
fragmentos de anticuerpos que se usan en medicina clínica a fines
diagnósticos y terapéuticos. El anticuerpo se puede usar solo o se
puede conjugar covalentemente ("cargar") con otro átomo o
molécula tal como un radioisótopo a un fármaco
citotóxico/antiinfeccioso. Para la vacunación se pueden usar
epitopos para producir un conjugado de polímero
inmunógeno/proteína.
Un rasgo clave del procedimiento de la invención
es que un grupo saliente \alpha-metileno y un
doble enlace se conjugan por cruce con una función aceptora de
electrones que actúa como un resto activante de Michael. Si el
grupo saliente es propenso a la eliminación en el reactivo
crucifuncional más bien que a dirigir el desplazamiento y el grupo
aceptor de electrones es un resto activante adecuado para la
reacción de Michael, la reacción intramolecular secuencial de
bisalquilación puede ocurrir por las reacciones consecutivas de
Michael y retro Michael según se describe en J. Am. Chem. Soc.
1979, 101, 3098-3110 y J. Am. Chem. Soc. 1988, 110,
5211-5212). El grupo aceptor de electrones y el
grupo saliente se seleccionan óptimamente de forma que la
bisalquilación se pueda producir por las reacciones secuenciales de
Michael y retro Míchael.
También es posible preparar agentes de
alquilación crucifuncionales con múltiples enlaces adicionales
conjugados al doble enlace o entre el grupo saliente y el grupo
aceptor de electrones según se describe en J. Am. Chem. Soc. 1988,
110, 5211-5212.
Dado que los reactivos de alquilación
crucifuncionalizados del tipo mencionado antes experimentan una
alquilación que es controlada por equilibrios
Michael-retro Michael y dado que es posible reducir
parcialmente un número, desde uno a más de uno, de enlaces
disulfuro en una proteína de modo controlado reteniendo
sustancialmente la estructura terciaria, es posible conseguir que
la bisalquilación ocurra a través de los dos sulfhidrales de
cisteínas de un enlace disulfuro dado. Tal secuencia de reacciones
da por resultado la condensación del puente disulfuro con el
reactivo de bisalquilación.
Los enlaces tiol éter formados después de la
conjugación para que resulte un compuesto de fórmula I son,
generalmente, hidrolíticamente estables en solución acuosa. Los
reactivos en sí son también hidrolíticamente estables. En este
contexto, se considera que un compuesto es hidrolíticamente estable
si no experimenta una degradación sustancial a pH fisiológico y una
temperatura de hasta 45ºC. Se considera que una degradación de menos
de 50% en estas condiciones en un período de 8 horas es no
sustancial.
Se apreciará que la invención permite la
producción de reactivos de polímeros que poseen funcionalidad de
bisalquilacion crucifuncionalizada en cualquiera de los terminales o
en cadenas pendientes a lo largo de la cadena principal de un
polímero.
Entre algunos ejemplos de nuevos conjugados de
acuerdo con la invención están incluidos los siguientes:
y
\vskip1.000000\baselineskip
Entre algunos ejemplos de nuevos reactivos de
acuerdo con la invención están incluidos los siguientes
Los Ejemplos siguientes ilustran la invención.
Las Figuras 1 a 5 muestran los resultados del Ejemplo 7.
Un matraz de fondo redondo de una boca, de 200
ml, se cargó con p-nitroacetofenona (16,5 g),
paraformaldehído (4,5 g), hidrocloruro de piperidina (12,1 g),
etanol absoluto (100 ml) y una barra de agitación magnética. A la
mezcla heterogénea sometida a agitación se añadió ácido clorhídrico
(al 37% en agua, 1 ml) y la solución se calentó a reflujo bajo
nitrógeno. Después de un tiempo de 1-2 horas se
añadió más paraformaldehído (3,0 g). La solución se mantuvo a
reflujo durante aproximadamente 18 h, tiempo durante el cual se
añadió más paraformaldehído (3,0 g). Después de dejar que la
solución se enfriara, sedimentó un sólido cristalino que no se
disolvería después de reflujo. Se aisló el sólido por filtración y
se recristalizó usando metanol muy caliente, obteniéndose cristales
amarillos grandes (10,9 g). RMN ^{1}H
(DMSO-d_{6}) \delta 1,34-1,50
(m, 1H), 1,64-1,79 (m, 2H),
1,79-1,94 (m, 4H), 2,89-3,05 (m,
2H), 3,41 (q, 2H), 3,51-3,54 (m, 2H), 3,82 (t, 2H),
8,26 (s, 1H), 8,29 (s, 1H), 8,41 (s, 1H),8,44 (s, 1H).
Una solución en agitación de hidrocloruro de
p-nitro-3-piperidinopropiofenona
(30 g, 0,1 mol) y mercaptoetanol (0,5 g, 0,12 mol) en etanol al 95%
(200 ml) se calentó lentamente hasta homogeneidad. Se añadió
piperidina (1,0 mol) y la mezcla de reacción se calentó a reflujo
durante 2 h. Después de enfriar, se rotoevaporó la mayor parte del
disolvente, se añadió acetato de etilo (200 ml) y se separó el
sólido por filtración. La solución de acetato de etilo se sometió a
extracción secuencialmente con solución acuosa al 10% de HCl,
solución de NaHCO_{3} al 5% y salmuera y luego se secó sobre
Na_{2}SO_{4}; luego se evaporó el acetato de etilo, resultando
un aceite que cristalizó, obteniéndose 23,2 g del producto deseado
que se cristalizó en acetato de etilo-etil
éter.
En un matraz de fondo redondo de 100 ml, de una
boca, se añadió hidrocloruro de
p-nitropiperidinopropiofenona (10,0 g),
4-metilbencenotiol (8,2 g), formaldehído (solución
acuosa al 37% p/p, 10 ml, exceso), metanol (40 ml) y una barra de
agitación magnética. La mezcla heterogénea en agitación se calentó
hasta que se formó una solución homogénea amarilla (un par de
minutos a 50-60ºC). Se añadieron luego 5 gotas de
piperidina y la solución de reacción se calentó a reflujo. En 15
min la mezcla de reacción se hizo heterogénea debido a la presencia
de algún sólido blanco/amarillo y, al cabo de 2 h, este sólido
presentaba un color naranja fuerte. Al cabo de este tiempo se paró
el reflujo y se dejó que la mezcla de reacción se enfriara durante
la noche a temperatura ambiente. Luego se calentó nuevamente a
reflujo la mezcla de reacción con más formaldehído (solución acuosa
al 37% p/p, 10 ml, exceso). Después de tener en reflujo durante
aproximadamente 30 min, era visible un aceite de color naranja y no
se veía sólido alguno. El aceite sedimentó en el fondo del matraz
cuando se paró la agitación. Después de otras 7 horas de reflujo,
se dejó que la mezcla se enfriara durante la noche, lo que dio por
resultado la cristalización del aceite sedimentado. Se aisló el
sólido cristalino y se purificó por recristalización en metanol muy
caliente habiendo añadido varias gotas de acetona, obteniéndose
cristales amarillos (10,0 g). RMN ^{1}H
(DMSO-d_{6}) \delta 2,31 (s, 6H),
3,31-3,33 (m, 4H), 3,97 (quintete, 1H), 7,14 (q,
8H), 7,80 (d, 2H), 8,24 (d, 2H).
En un matraz de fondo redondo de 250 ml se agitó
una suspensión de
2,2-bis(p-toliltiolmetil)-p-nitroacetofenona
(2,5 g) y oxona (18,4 g) en metanol:agua 1:1 (100 ml) durante 16 h.
Esto dio una suspensión de un sólido blanco a la que se añadió
cloroformo (100 ml) y la fase orgánica resultante se aisló usando un
embudo separador, dejando una suspensión de un sólido blanco dentro
de la fase acuosa. A la fase acuosa se añadió más agua hasta que se
formó una solución homogénea, que luego se lavó nuevamente con
cloroformo (100 ml). Se combinaron las fases orgánicas, la
combinación se lavó con salmuera (50 ml x 2), se secó con sulfato
magnésico y se eliminó el disolvente, obteniéndose un producto
sólido en bruto blancuzco después de secar en vacío (2,5 g). El
producto se recristalizó en acetona, obteniéndose cristales
blancos. RMN ^{1}H (CDCl_{3}) \delta 3,43-3,62
(m, 4H), 4,44 (quintete, 1H), 7,35 (d, 4H), 7,68 (d, 4H), 7,88 (d,
2H), 8,22 (d, 2H). Análisis calculado para
C_{24}H_{23}NO_{7}S_{2} (hallado): C 57,47 (57,27); H 4,62
(4,74); N 2,79 (2,58). MS (FAB) m/z 502 ([M+1]^{+}).
Un matraz de fondo redondo secado a la llama,
purgado con argón y provisto de termómetro y embudo de adición, se
cargó con
3-(2-hidroxietiltiol)-p-nitropropiofenona
(0,5 g, 2,0 mmol) y tetrahidrofurano anhidro (50,0 ml). Se agitó la
solución y se enfrió en baño de hielo seco-acetona,
luego se añadió con jeringa TiCl_{4} (0,23 ml, 2,1 mmol). Se
retiró el baño de hielo y se dejó que la solución se calentara a
temperatura ambiente, luego se enfrió a -40ºC y se añadió con
jeringa diisopropiletilamina (1,1 ml). Se quitó el baño de
enfriamiento y se dejó que la mezcla se calentara a entre -15ºC y
0ºC, adquiriendo color rojo. Luego la mezcla de reacción se calentó
a 25ºC en un tiempo de 3-5 min y se añadió una
solución de acroleína (0,14 g,2,1 mmol) en tetrahidrofurano anhidro
(20 ml), añadiéndolo a gotas en el embudo de adición en un período
de 30-40 min. La reacción exotérmica causó que la
temperatura de la mezcla de reacción subiera a
30-40ºC y la solución se agitó 20 min más después
de la adición del aldehído antes de añadir acetato de etilo (75 ml).
Se usó cromatografía en capa fina para confirmar la desaparición de
la
3-(2-hidroxietiltiol)-p-nitropropiofenona
de partida y la formación de la deseada
2-(2-hidroxietilsulfonilmetil)-p-nitro-2(Z),
4-penta-dienofenona (R_{f}
-0,38-0,45). Se pudo observar el producto
minoritario (isómero E) a R_{f} más bajo, en el intervalo de
0,29-0,34. La mezcla de reacción en acetato de
etilo se sometió a extracción con HCl acuoso al 10% y salmuera. Se
combinaron las capas acuosas y la combinación se sometió a
extracción dos veces con acetato de etilo y todas las fracciones de
acetato de etilo se lavaron dos veces con HCl acuoso al 10%,
NaHCO_{3} acuoso al 5% y salmuera, luego se secaron sobre
Na_{2}SO_{4} sólido. El acetato de etilo se rotoevaporó,
obteniéndose la
2-(2-hidroxietilsulfonilmetil)-p-nitro-2(Z),
4-pentadienofenona en bruto como un aceite que se
oxidó inmediatamente como para la síntesis de
2,2-bis(p-tolilsulfonlmetil)-p-nitroacetofenona,
resultando la
2-(2-hidroxietilsulfonilmetil)-p-nitro-2(Z),
4-pentadienofenona como un sólido que se purificó
por cromatografía en columna o se recristalizó en acetato de etilo o
metanol y luego se unió covalentemente a polietilenglicol terminado
en amino como se ha descrito en otro lugar en esta memoria.
La secuencia de reacciones anterior se realizó
con muchos aldehídos, entre los que están incluidos acetaldehído,
metacroleína, etacroleína, butiraldehído, crotonaldehído,
2,4-pentadienilo, sorbaldehído, tolualdehído,
cinamaldehído, metilcinamaldehído, clorocinamaldehído,
5-fenil-2,4-pentadienal
y
7-fenil-2,4,6-heptatrienal.
Esta secuencia de reacciones se realizó con muchos
cetoderivatizados, incluidos
3-(p-toliltiometil)-m-nitroacetofenona,
3-(2-hidroxi-etiltio)-m-nitropropriofenona,
3-(etiltiometil)-m-nitropropiofenona,
3-(dimetilamino-etltio)-m-nitropropiofenona,
3-(2-hidroxietiltio)-3-fenilpropriofenona,
3(2-hidroxi-etiltiol)-5-fenil-4(E)-pentenofenona,
3(etiltiometil-o-nitropropiofenona,
3(etiltio)-propiofenona,
3(2-hidroxietilsulfonil)propiofenona,
2-(3-(2-hidroxietiltio)-1-propenil)-m-2(E)-4-pentadienofenona.
Esta secuencia de reacciones se realizó también con
cetoderivatizados alifáticos, incluidos
4-(etiltio)-2-butanona,
4-(p-toliltio)-2-butanona,
4-(4-nitrofeniltio)-2-butanona,
4-(2-hidroxietiltio)-2-butanona
y
metil-3-(2-hidroxietiltio)-propanoato.
Los productos finales de las reacciones antes mencionadas para
estos precursores se pueden unir covalentemente a polietilenglicol
como se ha descrito en otro lugar en esta memoria.
Se cargó un matraz de fondo redondo de 100 ml
con
2,2-bis(p-tolilsulfonlmetil)-p-nitroacetofenona
(2 g), etanol (25 ml), ácido clorhídrico (al 37% en peso en agua, 8
ml) y una barra de agitación magnética. A la mezcla heterogénea
resultante se añadió luego cloruro de estaño(II) dihidratado
y la mezcla se calentó a 45ºC en baño de aceite durante 2 h. A la
solución homogénea amarilla que se formó se añadió luego agua hasta
que se observó que podía haber precipitación si se añadía más agua.
Se dejó enfriar la solución homogénea a temperatura ambiente,
resultando un compuesto amarillo que precipitó/cristalizó, que se
aisló por filtración en vacío. El producto aislado se mezcló luego
con una mezcla caliente de acetona y metanol (aprox. 90:10 v/v). Se
aisló por filtración en vacío un sólido insoluble y se secó a peso
constante en horno de vacío (1,4 g). RMN ^{1}H
(DMSO-d_{6}) \delta 2,50 (s, 6H),
3,57-3,73 (solapamiento m's, 5H), 6,27 (s, 2H), 6,39
(d, 2H), 6,96 (d, 2H), 7,47 (d, 4H), 7,55 (d,4H).
Un matraz de fondo redondo de 100 ml, de una
boca, equipado con un embudo de adición y un conducto para nitrógeno
se cargó con trifosgeno (23 mg), hidrocloruro de
2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]-p-aminoacetofenona
(125 mg), tolueno anhidro (2,5 ml) y una barra de agitación
magnética bajo atmósfera de nitrógeno. El embudo de adición se
cargó separadamente con trietilamina anhidra (68 \mul) y tolueno
anhidro (2,5 ml). Se puso un baño de acetona/hielo seco bajo el
matraz de fondo redondo y se dejó que se enfriara el contenido.
Luego se añadió a gotas la solución de trietilamina a la solución
de trifosgeno agitando durante 5-10 min. Se dejó que
el matraz y el baño de hielo seco se calentaran a temperatura
ambiente, lo que tardó varias horas en hacerlo y, una vez que
estaba a temperatura ambiente, la mezcla de reacción se dejó en
reposo durante aproximadamente 2 h bajo atmósfera de nitrógeno. A
la mezcla de reacción a temperatura ambiente se añadió luego a gotas
una solución de
O-(2-aminoetil)-O'-metilpolietilenglicol
2.000 (490 mg) y trietilamia anhidra (68 \mul) en tolueno
anhidro. La mezcla resultante se dejó en agitación a temperatura
ambiente durante la noche (aprox. 20 h en total). Luego se abrió la
mezcla de reacción a la atmósfera y se filtró por gravedad a través
de una jeringa desechable de 5 ml con un trozo de lana de algodón
no absorbente para que actuara de filtro. El eluyente homogéneo se
pasó a un embudo separador de 100 ml y luego se lavó dos veces con
agua desionizada (30 ml y luego 10 ml). Se combinaron las fases
acuosas y luego la combinación se lavó con dietiléter (aprox. 25
ml). La fase acuosa se liofilizó, obteniéndose un producto sólido
blancuzco (160 mg). Se encontró producto también en las fases de
dietiléter y tolueno. RMN ^{1}H (CDCl_{3}) \delta 2,5 (s),
3,39 (s), 3,41-3,53 (solapamiento m's),
3,53-3,76 (m), 3,82 (t), 4,17 (quintete),
7,35-7,39 (m, 1,39), 7,46 (d), 7,68 (d).
\vskip1.000000\baselineskip
Un matraz de fondo redondo de 250 ml, de una
boca, se cargó con ácido p-acetilbenzoico (10 g) e
hidrocloruro de piperidina (7,4 g), 100 ml de etanol absoluto y una
barra de agitación magnética. A la mezcla heterogénea en agitación
se añadió ácido clorhídrico concentrado (1 ml) y la solución se
calentó luego a reflujo bajo nitrógeno. Al matraz se añadió
paraformaldehído (3,7 g) y se continuó el reflujo durante
aproximadamente 1,5 horas. Se formó una solución homogénes a la que
se añadió más paraformaldehído (3,7 g). Se continuó calentando
durante aproximadamente 6 horas, tiempo durante el cual se añadió
más formaldehído (3,7 g). Se dejó enfriar a temperatura ambiente la
solución de reacción y se dejó durante una semana. Se aisló por
filtración de la mezcla de reacción enfriada un sólido blanco.
Después de disolverlo en metanol muy caliente se intentó cristalizar
el sólido. Se aisló por filtración un producto insoluble (1,96 g) y
del filtrado cristalizó un segundo producto (0,88 g). Ambos
producto aparecían como idénticos por análisis de espectroscopia de
infrarrojos y cromatografía de capa después de secar en vacío, por
lo que se combinaron para usarlos en posteriores reacciones.
ATR-FT-IR 1704, 1691, 1235,
760.
A un matraz de fondo redondo de 50 ml,. de una
boca, se añadió hidrocloruro de
p-carboxi-3-piperidinopropriofenona
(2,5 g), 4-metilbencenotiol (2,1 g), formaldehído
(al 37% p/p, solución acuosa, 2,5 ml), etanol (10 ml), una barra de
agitación magnética y piperidina (aprox. 10 gotas). Luego se acopló
al matraz un condensador y la solución de reacción se calentó a
reflujo. Luego se añadió metanol (5 ml). Después de aproximadamente
2 horas, se añadió más formaldehído (2,5 ml) y se calentó durante
otras 2 horas. Luego se dejó enfriar el matraz a temperatura
ambiente y después se diluyó la solución de reacción con dietil éter
(aprox. 150 ml). La fase orgánica resultante se lavó luego con agua
(acidificada con ácido clorhídrico 1 N a pH 2-3, 50
ml x 2), agua (50 ml) y salmuera (75 ml) y seguidamente se secó
sobre sulfato magnésico. La filtración seguida de la eliminación de
volátiles en un evaporador rotatorio dio un residuo sólido. El
sólido se disolvió en un volumen mínimo de una mezcla
predominantemente de metanol y acetona calentando. La solución
homogénea se puso luego en un congelador durante la noche,
obteniéndose cristales blancuzcos que se aislaron por filtración en
vacío, se lavaron con acetona fresca y luego se secaron a peso
constante en horno de vacío (2,5 g). RMN ^{1}H (CDCl_{3})
\delta 2,38 (s, 6H), 3,16-3,31 (m, 4H), 3,85
(quintete, 1H), 7,15 (d, 4H), 7,18 (d, 4H), 7,64 (d, 2H), 8,07 (d,
2H). Análisis calculado para C_{25}H_{24}O_{3}S_{2}
(hallado): C 68,78 (68,84), H 5,54 (5,77).
Un matraz de fondo redondo de 250 ml se cargó
con una suspensión de ácido
4-[2,2-bis[(p-toliltio)metil]acetil]benzoico
(2 g) y oxona (16,9 g) y se agitó en metanol:agua 1:1 v/v (100 ml)
durante 16 h. Resultó una suspensión de un sólido blanco a la que
se añadió cloroformo (100 ml) y la fase orgánica resultante se aisló
usando un embudo separador, quedando una suspensión de un sólido
blanco con la fase acuosa. A la fase acuosa heterogénea se añadió
más agua hasta homogeneidad (aprox. 170 ml) y luego la fase acuosa
se lavó con cloroformo (75 ml). Se combinaron las fases orgánicas,
la combinación se lavó con agua (50 ml x 2, acidificada con unas
pocas gotas de ácido clorhídrico 1N) y salmuera (50 ml). La fase
orgánica se secó con sulfato magnésico, se filtró y se eliminó el
disolvente usando un evaporador rotatorio, obteniéndose un producto
sólido blancuzco en bruto (2,2 g). La purificación (de un 1 g de
producto) se realizó por recristalización en acetato de etilo muy
caliente, acetona y hexano, obteniéndose 0,6 g de producto. RMN
^{1}H (CDCl_{3}) \delta 2,51 (s, 6H),
3,49-3,72 (m, 4H), 4,44 (quintete, 1H), 7,40 (d,
4H), 7,37-7,78 (m, 6H), 8,13 (d, 2H). Análisis
calculado para C_{25}H_{24}O_{7}S_{2} (hallado): C 59,98
(59,88), H 4,38 (4,76).
Un matraz con llave de 50 ml, de una boca, se
cargó con ácido
4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzoico
(100 mg) y una barra de agitación magnética. El matraz se selló y
se aplicó un vacío fuerte durante aproximadamente 15 min. Se
introdujo en el matraz atmósfera de argón y se añadió con jeringa
cloruro de tionilo (1 ml) mientras que se agitaba. La mezcla
resultante se calentó a 50ºC durante 2 h. Se eliminaron en vacío los
líquidos volátiles, obteniéndose una espuma amarilla. Se introdujo
nuevamente atmósfera de argón en el matraz y se añadió con jeringa
diclorometano anhidro (5 ml), obteniéndose una solución homogénea.
Nuevamente se eliminaron en vacío los líquidos volátiles. Se
repitió el proceso de adición/eliminación de disolvente hasta que
quedó un residuo blanco. Al matraz con llave se añadió nuevamente
diclorometano anhidro (5 ml) para formar una solución homogénea.
Separadamente, en un matraz de fondo redondo de 25 ml, provisto de
diafragma y con barra de agitación magnética se disolvieron
O-(2-aminoetil)-O'-metilpoli(etilenglicol)
(2.000 g/mol) (0,2 g) y trietilamina anhidra (30 \mul) en
diclorometano anhidro (5 ml) bajo atmósfera de argón. La solución de
reacción con ácido
bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzoico
fue inyectada en el matraz que contenía la solución de
polietilenglicol gota a gota, produciéndose inmediatamente el
desprendimiento de un gas blanco. La solución resultante se dejó en
agitación durante la noche a temperatura ambiente y luego se añadió
más trietilamina (28 \mul). Al cabo de 1 hora la solución de
reacción se añadió a gotas mediante una pipeta de vidrio a dietil
éter sometido a una rápida agitación. Para conseguir la
precipitación fue necesario añadir hexano a la solución de dietil
éter y poner el matraz en baño de hielo. El precipitado obtenido se
aisló por centrifugación y se secó en horno de vacío a peso
constante, obteniéndose un producto sólido blancuzco (230 mg). Se
logró una pureza mayor por precipitación disolviendo primeramente el
producto en diclorometano y añadiendo la solución a una solución
enfriada de dietil éter. RMN ^{1}H (CDCl_{3}) \delta 2,51
(s), 3,40 (s), 3,60-3,75 (m), 3,84 (t), 4,36
(quintuplete), 7,39 (d), 7,68 (d), 7,71 (d), 7,85 (d).
Un matraz con llave de 50 ml, de una boca, se
cargó con ácido
4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzoico
(100 mg) y una barra de agitación magnética. El matraz se selló y
se aplicó vacío fuerte durante aproximadamente 15 min. Se introdujo
en el matraz atmósfera de argón y se añadió con jeringa cloruro de
tionilo (1 ml) mientras que se agitaba. La mezcla resultante se
calentó a 50ºC durante 2 h. Se eliminaron en vacío los líquidos
volátiles, obteniéndose una espuma amarilla. Se introdujo
nuevamente atmósfera de argón en el matraz y se añadió con jeringa
diclorometano anhidro (5 ml), obteniéndose una solución homogénea.
Nuevamente se eliminaron en vacío los líquidos volátiles. Se
repitió el proceso de adición/eliminación de disolvente hasta que
quedó un residuo blanco. Finalmente, al matraz se añadió
diclorometano anhidro (5 ml) bajo argón para formar una solución
homogénea.
En un matraz con llave de 50 ml distinto se
disolvió
O-(2-aminoetil)-O'-metilpoli(etilenglicol)
(20.000 g/mol) (0,5 g) en 4 ml de tolueno anhidro en atmósfera de
argón y luego la solución se evaporó a sequedad en vacío. El
residuo blanco obtenido se mantuvo en vacío durante 3 h y luego se
disolvió en diclorometano anhidro (5 ml) en atmósfera de argón.
La solución de reacción de ácido
bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzoico
se añadió lentamente a gotas a la solución de polietilenglicol, que
estaba en agitación y enfriada en baño de hielo. Finalizada la
adición completa, se añadieron a gotas a la solución resultante 40
\mul de trietilamina seca. Cuando se había añadido la
trietilamina, se dejó la solución resultante en agitación durante la
noche y que se calentara a la temperatura ambiente.
La solución de reacción se filtró luego a través
de un filtro de 0,45 \mum y se eliminaron los líquidos volátiles
del eluyente, obteniéndose un residuo ligeramente amarillo/naranja
que se redisolvió en acetona caliente (10 ml). El matraz que
contenía la solución homogénea resultante se puso en un baño de
hielo-agua y se agitó hasta que se produjo
precipitación. El precipitado blanco se aisló en un embudo de vidrio
sinterizado nº. 3 y se lavó con acetona fresca enfriada (aprox. 30
ml). El sólido aislado se dejó secar en vacío, obteniéndose 0,4 g
de sólido blanco. RMN ^{1}H (CDCl_{3}) \delta 2,42 (s), 3,31
(s), 3,40-3,75 (m), 4,27 (m), 7,30 (d), 7,59 (d),
7,63 (d), 7,75 (d).
El reactivo de conjugación
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]-benzamida
polietilenglicol (20.00 g/mol) (0,4 g) se disolvió en 10 ml de una
mezcla de acetonitrilo-agua (24:1, v/v, 2 mg de
hidroquinona) purgada con argón y la solución se filtró a través de
un filtro PP de 0,45 \mum. El eluyente se puso bajo argón en un
matraz de fondo redondo y se añadió trietilamina (50 \mul)
mientras que se agitaba. El matraz se puso luego en un baño de
aceite a 30ºC durante 20 h mientras que se agitaba y al cabo de este
tiempo el matraz se enfrió a temperatura ambiente y los líquidos
volátiles se eliminaron en vacío. El residuo obtenido se disolvió
en acetona caliente (10 ml) y, una vez que la solución se hizo
homogénea, se puso en baño de hielo-agua, después
de lo cual se produjo precipitación mientras que se agitaba la
solución. El precipitado blanco se aisló en un embudo de vidrio
sinterizado nº. 3 y se lavó con acetona fresca enfriada (aprox. 30
ml). Se dejó secar en vacío el sólido aislado, obteniéndose 0,3 g
de un sólido blanco. RMN ^{1}H (CDCl_{3}) \delta 2,35 (s),
3,31(s), 3,39-3,78 (m), 4.28 (s), 5,84 (s),
6,22 (s), 7,26 (d), 7,65 (d), 7,72 (d), 7,81 (d).
\vskip1.000000\baselineskip
El reactivo que conjuga al polímero,
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]-benzamida
polietilenglicol (2.000 g/mol) (30 mg, 12,1 \mumol, 1 equiv), y
4-metilbencenotiol (3 mg, 24,2 mmol, 2 equiv) se
disolvieron en cloroformo deuteriado (aprox. 0,75 ml). A la solución
homogénea se añadió luego trietilamina (1,7 \mul, 12,1 \mumol,
1 equiv). Se agitó la mezcla de reacción y se obtuvo un espectro de
RMN H. El espectro obtenido confirmó que se había efectuado la
adición de 4-metilbencenotiol al reactivo de
conjugación al polímero. Se realizó una reacción similar con
propanotriol.
\vskip1.000000\baselineskip
Se añadieron a un tubo de centrifugadora de 15
ml que contenía ribonucleasa A (30 mg) 3 ml de una solución acuosa
8 M de urea y seguidamente 60 \mul de
2-mercaptoetanol. Se ajustó a 8 el pH de la solución
resultante usando solución acuosa de metilamina al 10%. Luego se
burbujeó nitrógeno a través de la solución durante aproximadamente
30 min. Mientras que se continuaba burbujeando nitrógeno, se
calentó el tubo a 37ºC durante 5 h. La mezcla de reacción se enfrió
luego en baño de hielo-agua salada y a la solución
de reacción se añadieron 10 ml de una solución enfriada, purgada
con argón, de HCl 1N:etanol absoluto (1:39 v/v). Se produjo
precipitación y el precipitado se aisló por centrifugación y luego
se lavó tres veces con más porciones de 10 ml de la mezcla de
HCl:etanol absoluto y dos veces con dietil éter enfriado, purgado
con nitrógeno (2 x 10 ml). Después de cada lavado, el precipitado
se aisló por centrifugación. El precipitado lavado se disolvió luego
en agua desionizada purgada con nitrógeno y se liofilizó,
obteniéndose un sólido seco. Se confirmó la reducción parcial de
ribonucleasa A y se cuantificó usando el Ensayo de Ellman, que dio
5,9 tioles libres por molécula de proteína.
En un eppendorf, la ribonucleasa A parcialmente
reducida (10,9 mg) se disolvió en solución de amoniaco pH 8 (500
\mul) purgada con argón. En un eppendorf separado se disolvió
también en solución de amoniaco (250 \mul) el reactivo de
conjugación a polímero,
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)-metil]acetil]benzamida
derivada de polietilenglicol (2000 g/mol) (5 mg) y la solución
resultante se añadió a la solución de ribonucleasa A. El eppendorf
con PEG se lavó con 250 \mul de solución recientemente preparada
de amoniaco y ésta se añadió también al eppendorf de reacción
principal. Luego se cerró bajo argón el eppendorf de reacción
principal y se calentó a 37ºC durante aproximadamente 24 h, luego
se dejó enfriar a temperatura ambiente. Luego se analizó la
solución de reacción enfriada por dodecilsulfato
sódico-electroforesis de gel de poliacrilamida-
(SDS-PAGE). El experimento de
SDS-PAGE era consistente con la reacción de ácido
4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzoico
pegilado.
\vskip1.000000\baselineskip
A 240 \mul de una solución de 0,4 mg/ml de
fragmentos Fab de anticuerpo IgG de ratón (catálogo de Abcam nº.
AB6668) en tampón de fosfato sódicon 0,02 M, pH 6, purgada con
argón, que contenía cloruro sódico 0,15 M y EDTA 0,005 M se
añadieron 4 \mul de una solución acuosa 1 mM de dihidrocloruro de
selenocisteína purgada con argón y seguidamente 12 \mul de una
solución acuosa purgada con argón de hidrocloruro de
tris(2-carboxietil)fosfina (TCEP) a
temperatura ambiente. La solución resultante se agitó por rotación
inmediatamente durante varios segundos y luego se dejó en reposo a
temperatura ambiente durante 6 min. Se separaron para posteriores
análisis dos muestras de la solución que contenía fragmentos Fab y
la solución restante se dejó en reposo en baño de
hielo-agua durante 4 min. A la solución de Fab se
añadió inmediatamente una solución enfriada en baño de
hielo-agua de
\alpha-metoxi-\omega-4[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzamida
derivada de polietilenglicol (20.000 g/mol) (1,6 \mul, 50 mg/ml,
tampón de fosfato sódico 0,02 M purgado con argón, pH 6, que
contenía cloruro sódico 0,15 M, EDTA 0,005 M e hidroquinona 0,23
mM); la solución se agitó por rotación durante varios segundos y
luego se volvió a poner en el baño de hielo-agua.
Cada dos minutos se añadieron de manera análoga 1,6 \mul de la
solución del reactivo de conjugación hasta añadir 6,4 \mul en
total. Terminada la adición total, la solución se puso en una
nevera (<5ºC) durante 2 horas. Se tomó luego una muestra de la
mezcla de reacción para análisis por SDS PAGE.
La mezcla de reacción se analizó por
SEC-HPLC (inyección de 100 \mul, columna de
12-24 ml superpuesta, Amersham biosciences;
eluyente fosfato sódico 20 mM, NaCl 0,15 M; pH 7,0; elución
isocrática durante 100 min a un caudal de 0,25 ml/min; detección
por luz UV, 210 nm), presentándose el conjugado de
Fab-polietilenglicol, que no estaba presente en la
mezcla de reacción idéntica. Las fracciones aisladas por
SEC-cromatografía HPLC se analizaron por
SDS-PAGE y se observó el conjugado de
mono-polietilenglicol.
\vskip1.000000\baselineskip
Una muestra de 100 \mul de una solución de 5
mg/ml de asparaginasa a pH 6,5 (Sigma) se diluyó con 900 \mul de
tampón de fosfato 20 mM (pH 6 y que también contenía NaCl 0,15 M y
EDTA 5 mM). Luego se añadió DL-ditioreitol (DTT,
15,4 mg) y la solución resultante se dejó en reposo a temperatura
ambiente. Después de 2 horas en reposo, la solución se purificó en
una columna PD-10 (Sephadex®G-25M,
Pharmacia Biotech) que se había equilibrado con tampón de fosfato
20 mM (pH 6 y que también contenía NaCl 0,15 M y EDTA 5 mM). La
columna es eluyó con porciones de 1 ml de tampón recientemente
preparado. Mediante espectroscopía de UV a 280 nm se identificaron
dos fracciones que contenían proteína reducida. Estas fracciones se
concentraron usando dispositivos centrífugos de filtración (MWCO
3.000; Microcon) a un volumen de aproximadamente 270 \mul y luego
se diluyeron a 1 ml con tampón de fosfato fresco, pH 6 (que
adicionalmente contenía hidroquinona 0,23 mM). Para análisis
posterior por SDS PAGE se tomaron dos muestras de 5 \mul.
Separadamente, en el mismo tampón de fosfato se preparó una
solución de 50 mg/ml de la solución del reactivo para conjugación de
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzamida
derivada de polietilenglicol (20.000 g/mol) y se puso en un baño de
hielo-agua junto con la solución de proteína
durante 5 min. A la solución de proteína se añadieron luego 58
\mul de solución del reactivo de conjugación y, después de varios
minutos de agitación por rotación, la solución de reacción se puso
en una nevera (<5ºC). Se realizó también una reacción de control
en las mismas condiciones y a la misma escala pero usando
asparaginasa no reducida. Se confirmó por SDS PAGE
(4-12% de gel bis-Tris con tinción
coloidal azul) una conjugación con éxito de polietilenglicol a
asparaginasa, realizada con muestras tomadas de la solución de
reacción después de 2 horas. No se observó por SDS PAGE banda de
conjugación para una muestra tomada de una reacción de control en
la que no se dejó que la asparaginasa reaccionara con DTT.
\vskip1.000000\baselineskip
Una solución de 100 \mul de interferón
\alpha-2b (Santha Biotechnics) (1 mg/ml) diluida
con 150 \mul de una solución tampón (fosfato sódico 0,02 M; NaCl
0,15 M; EDTA 0,005 M; pH 6,0 en agua desionizada purgada con argón)
se redujo parcialmente añadiendo selenocistamina (1 mM en agua
desionizada purgada con argón, 2 equiv) y TCEP (1 mM en agua
desionizada purgada con argón, 5 equiv). La solución de proteína se
enfrió a 4ºC. Se disolvió el reactivo de conjugación
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil]acetil]benzamida
derivada de polietilen-glicol (20.000 g/mol) en la
misma solución tampón, se enfrió a 4ºC y se añadieron 10 \mul a
la solución de proteína. La mezcla de reacción se agitó por rotación
y se incubó a 4ºC durante 2 h. Los componentes no iónicos de la
mezcla de reacción se eliminaron por cromatografía de intercambio
catiónico (columna Hitrap SP FF1 de 1 ml, Amersham biosciences)
usando dos tampones: (A) acetato sódico 25 mM, pH 4,0 y (B) acetato
sódico 25 mM más NaCl 0,7 M, pH 4,0. La columna se lavó (1 ml/min)
con tampón (A) (5,0 ml), luego con tampón (B) (5,0 ml) y luego se
equilibró con 10 ml de tampón (A). Se cargó el conjugado en la
columna (200 \mul) y seguidamente con el tampón (A) (500 ml) y se
recogió una fracción de carga (0,5 ml). La columna es lavó con 5 ml
de tampón A y se recogieron fracciones. La muestra se eluyó de la
columna con el tampón (B) (10 ml) y se recogieron fracciones. Se
usó espectroscopia (UV, 280 nm) para determinar las fracciones que
contenían proteína y estas fracciones se purificaron luego en
fracciones separadas por cromatografía de exclusión de tamaños
(inyecciones de 100 \mul, columna superose 12-24
ml, Amersham biosciences; eluyente fosfato sódico 20 mM, NaCl 0,15
NaCl, pH 7,0; elución isocrática durante 100 min a un caudal de 0,25
ml/min; detección por UV, 210 nm). Estas condiciones de
purificación dieron una resolución de la linea de base para la
separación del conjugado de
polietilenglicol-interferón de interferón nativo. La
reacción de conjugación y la purificación del conjugado de
polietilenglicol fueron confirmadas por SDS-PAGE;
gel bis-tris al 12% (SilverQuest Silver Staining;
Colloidal Blue Staining y ácido perclórico 0,1 M/5% de BaCl_{2} y
tinción con I_{2} 0,1 M). No se observó conjugación cuando una
solución de 40 \mul de interferón (1 mg/ml) en 60 \mul de
fosfato sódico 0,02 M, NaCl 0,15 M, EDTA 0,005 M, pH 6,0, en agua
purgada con argón, se mezcló con el reactivo de conjugación
\alpha-metoxi-\omega-4-[2,2-bis[(p-tolilsulfonil)metil-acetil]-benzamida
derivada de polietilenglicol (20.000 g/mol), se disolvió en la
solución tampón (50 mg/ml) se enfrió a 4ºC y se añadieron 16 \mul
a la solución de proteína. La mezcla de reacción se agitó en un
Vortex y se incubó a 4ºC durante 2 h.
La concentración de cada fracción purificada del
conjugado de polietilenglicol-interferón se
determinó mediante inmunoensayo de enzimas. Se utilizó el mismo
ensayo para determinar la concentración del interferón nativo que
se conjugó y una muestra de interferón patrón internacional NIBSC
(RU). En la Figura 1 se muestra la curva patrón reproducible y
precisa obtenida para todas las formas del interferón antes
mencionado. Se cultivaron células A549 (fibroblasto de pulmón
humano) a 15.000 células/pocillo en placas de cultivo de tejidos de
fondo plano de 96 pocillos. A las células por triplicado se
añadieron separadamente interferón de NIBSC (RU), el interferón
nativo que se conjugó y el conjugado de polietilenglicol interferón
y la placa se incubó a 37ºC (5% de CO_{2}) durante 24 h. Al día
siguiente se preparó una solución de trabajo de EMCV (virus de
encefalomiocarditis) en DMEM/2% de FCS de virus de acopio
almacenado a menos 80ºC. Se eliminó el medio que contenía el
interferón o el conjugado de polietilenglicol interferón y se
reemplazó con medio que contenía EMCV. La placa de cultivo de
tejidos se incubó luego durante 1 h a 37ºC y después se eliminó el
virus. Se añadieron 100 microlitros del medio DMEM/10% de FCS y la
placa se incubó a 27ºC durante 16-24 horas. Después
de 16 horas, se empezó a leer la placa con regularidad para ver
cuándo empezaba la muerte de células. Luego se aspiró el medio y
las células se lavaron con 100 \mul de solución de tampón de
fosfato. A esto siguió la adición de 50 \mul de solución de
violeta de metilo [esto es, violeta de metilo (4% de formaldehído,
0,05% de violeta de metilo 2B (Sigma- Aldrich)] durante 30 min a
temperatura ambiente. Luego se lavó la placa con 100 \mul de agua
y se secó al aire. Se determinó la absorbancia espectrofotométrica a
570 nm usando un lector de placas. La Figura 2 confirma que el
interferón usado para la conjugación tenía una actividad equivalente
a la del interferón patrón internacional NIBSC (RU). La Figura 3
confirma que el interferón nativo usado para la conjugación mantenía
una actividad biológica equivalente después de ser sometido a todos
los procesos químicos y de purificación excepto la exposición con
el reactivo de conjugación de polietilenglicol. La Figura 4 confirma
que el interferón nativo usado para la conjugación y el conjugado
de polietilenglicol interferón purificado mantenían una actividad
biológica equivalente.
Se determinó la inducción de la
2'5'-sintetasa oligoadenilada
(2'5'-OAS) y ARNm de proteínaquinasa R(PRKR)
por interferón \alpha 2b Se evaluaron el conjugado
polietilenglicol-interferón purificado y una muestra
del interferón \alpha 2b. Se incubaron 2 millones de células MOLT
4/pocillo en placas de cultivo de 24 pocillos con 5000 pg de cada
muestra de interferón midiendo según un inmunoensayo de 24 h a 37ºC.
Se extrajo el ARN total (kit de aislamiento de ARN II,
Macheray-Nagel) y se sometieron 200 ng a
transcripción inversa en un volumen final de 20 \mul (Sigma, kit
de transcripción inversa AMV). Se diluyeron las muestras 1 a 4 en
agua y se amplificaron 2 \mul de cada muestra en una mezcla de
cuantificación de RCP en tiempo real (Sigma SybGreen ReadyMix). Los
cebadores usados fueron:
- 2'5'-OAS directo
- GGC TAT AAA CCT AAC CCC CAA ATC
- 2'5'-OAS inverso
- AGC TTC CCA AGC TTC TTC TTA CAA
\vskip1.000000\baselineskip
- PKR directo
- ACT CTT TAG TGA CCA GCA CAC TCG
- PRKR inverso
- TTT AAA ATC CAT GCC AAA CCT CTT
Para una amplificación de
2',5'-OAS, a la activación de la enzima a 94ºC
durante 5 min siguieron 48 ciclos de desnaturalización a 94ºC
durante 5 s, condensación a 60ºC durante 2 s y extensión a 72ºC
durante 8 s. Para la amplificación de PRKR, las muestras se
activaron a 94ºC durante 5 min y se sometieron a 48 ciclos de
desnaturalización a 94ºC durante 5 s, condensación a 59ºC durante 2
s y extensión a 72ºC durante 8 s. Al final de las amplificaciones
se hizo un análisis de la curva de fusión de los productos. La
cuantificación de los niveles inducidos de ARNm se hizo en relación
a las células de control no tratadas usando la fórmula
siguiente:
Aumento
relativo = 2^{-(Ct \ de \ la \ muestra \ - \ Ct \ de \
control)}
en la que Ct es el valor umbral de
entrecruzamiento.
La Figura 5, en la que la Figura 5(a)
muestra el análisis cuantitativo en tiempo real por
TR-RCP (dos etapas) de genes de
2'5'-sintetasa oligoadenilada
(2'5'-OAS) inducible por interferon, y la Figura
5(b) muestra el análisis cuantitativo en tiempo real por
TR-RCP (dos etapas) del gen de proteína quinasa R
(PRKR) inducible por interferón. Los resultados confirman que el
conjugado
polietilenglicol-interferón-\alpha2b
estimulaba la síntesis de 2'5'-sintetasa
oligoadenilada (2'5'-OAS) y ANRm de proteínaquinasa
(PRKR) a niveles que eran similares a los del
interferón-\alpha2b nativo no pegilado.
Claims (13)
1. Un compuesto de la fórmula general
en la que uno de X y X' representa
un homopolímero o copolímero seleccionado entre el grupo constituido
por polialquilenglicoles, polivinilpirrolidonas, poliacrilatos,
polimetacrilatos, polioxazolinas, poli(alcoholes de vinilo),
poliacrilamidas, polimetacrilamidas, copolímeros de HPMA,
poliésteres, poliacetales, poli(orto ésteres),
policarbonatos, poliiminocarbonatos, copolímeros de divinil
éter-anhídrido maleico o
estireno-anhídrido maleico, polisacáridos, o
poli(ácidos glutámicos), estando opcionalmente derivatizado o
funcionalizado cualquiera de los mencionados homopolímeros o
copolímeros; y el otro representa un átomo de
hidrógeno;
cada Q representa independientemente un grupo
conector;
W representa un grupo ceto CO, un grupo
éster -O-CO- o un grupo sulfona -SO_{2}-, o un
grupo obtenido por reducción de un grupo de los mencionados; o, si
X' representa un polímero, X-Q-W-
juntos representan un grupo ciano;
Z representa una proteína que está unida a A y B
por dos grupos tiol que se han obtenido de un puente disulfuro en
la proteína;
A es una cadena alquileno o alquenileno
C_{1-5} y
B es un enlace o una cadena alquileno o
alquenileno C_{1-4}.
2. Un compuesto según la reivindicación 1, en el
que el polímero es un polietilenglicol.
3. Un compuesto según la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, en el que cada grupo conector Q representa
independientemente un enlace directo, un grupo alquileno, o un grupo
arilo o heteroarilo opcionalmente sustituido, cualquiera de loa
cuales puede estar terminado o interrumpido por uno o varios átomos
de oxígeno, átomos de azufre, grupos -NR en los que R representa un
grupo alquilo o arilo, grupos ceto, grupos -O-CO-
y/o grupos -CO-O-.
4. Un compuesto según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 3, en el que la proteína es un polipéptido, un
anticuerpo, un fragmento de anticuerpo, una enzima, una citocina,
una quimiocina o un receptor.
5. Un compuesto según la reivindicación 4, en el
que la proteína es una enzi9ma, un anticuerpo o un fragmento de
anticuerpo, o un interferón
6. Un compuesto según la reivindicación 5, en el
que la proteína es un interferón.
7. Un procedimiento para la preparación de un
compuesto según una cualquiera de las reivindicaciones 1 a 6, que
comprende reducir un puente disulfuro en una proteína y hacer
reaccionar el producto resultante con (i) un compuesto de la
fórmula general
en la que uno de X y X' representa
un homopolímero o copolímero seleccionado entre el grupo constituido
por polialquilenglicoles, polivinilpirrolidonas, poliacrilatos,
polimetacrilatos, polioxazolinas, poli(alcoholes de vinilo),
poliacrilamidas, polimetacrilamidas, copolímeros de HPMA,
poliésteres, poliacetales, poli(orto ésteres),
policarbonatos, poliiminocarbonatos, copolímeros de divinil
éter-anhídrido maleico o
estireno-anhídrido maleico, polisacáridos, o
poli(ácidos glutámicos), estando opcionalmente derivatizado o
funcionalizado cualquiera de los mencionados homopolímeros o
copolímeros; y el otro representa un átomo de
hidrógeno;
cada Q representa independientemente un grupo
conector;
W' representa un grupo ceto CO, un grupo
éster -O-CO- o un grupo sulfona -SO_{2}-; o, si
X' representa un polímero, X-Q-W-
juntos representan un grupo ciano;
A representa una cadena alquileno o alquenileno
C_{1-5} y
B representa un enlace o una cadena alquileno o
alquenileno C_{1-4}; y
cada L representa independientemente un grupo
saliente;
o (ii) un compuesto de la fórmula general
en la que X, X', Q, W', A y L
tienen los significados dados para la fórmula general II y m
representa un número entero de 1 a
4.
8. Un procedimiento según la reivindicación 7,
en el que el grupo saliente L o cada uno de los grupos salientes L
representa -SR, -SO_{2}R, -OSO_{2}R, -N^{+}R^{3},
-N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno o -O\diameter, en
los que R representa un grupo alquilo o arilo y \diameter
representa un grupo arilo sustituido que contiene como mínimo un
sustituyente aceptor de electrones.
9. Un compuesto de la fórmula general
en la que uno de X y X' representa
un homopolímero o copolímero seleccionado entre el grupo constituido
por polialquilenglicoles, polivinilpirrolidonas, poliacrilatos,
polimetacrilatos, polioxazolinas, poli(alcoholes de vinilo),
poliacrilamidas, polimetacrilamidas, copolímeros de HPMA,
poliésteres, poliacetales, poli(orto ésteres),
policarbonatos, poliiminocarbonatos, copolímeros de divinil
éter-anhídrido maleico o
estireno-anhídrido maleico, polisacáridos, o
poli(ácidos glutámicos), estando opcionalmente derivatizado o
funcionalizado cualquiera de los mencionados homopolímeros o
copolímeros, y el otro representa un átomo de
hidrógeno;
cada Q representa independientemente un grupo
conector;
W' representa un grupo ceto CO, un grupo
éster -O-CO- o un grupo sulfona -SO_{2}-; o, si
X' representa un polímero, X-Q-W-
juntos representan un grupo ciano;
A representa una cadena alquileno o alquenileno
C_{1-5} y
B representa un enlace o una cadena alquileno o
alquenileno C_{1-4}; y
cada L representa independientemente un grupo
saliente;.
\newpage
10. Un compuesto de la fórmula general
en la que uno de X y X' representa
un homopolímero o copolímero seleccionado entre el grupo constituido
por polialquilenglicoles, polivinilpirrolidonas, poliacrilatos,
polimetacrilatos, polioxazolinas, poli(alcoholes de vinilo),
póliacrilamidas, polimetacrilamidas, copolímeros de HPMA,
poliésteres, poliacetales, poli(orto ésteres),
policarbonatos, poliiminocarbonatos, copolímeros de divinil
éter-anhídrido maleico o
estireno-anhídrido maleico, polisacáridos, o
poli(ácidos glutámicos), estando opcionalmente derivatizado o
funcionalizado cualquiera de los mencionados homopolímeros o
copolímeros; y el otro representa un átomo de
hidrógeno;
cada Q representa independientemente un grupo
conector;
W' representa un grupo ceto CO, un grupo
éster -O-CO- o un grupo sulfona -SO_{2}-; o, si
X' representa un polímero, X-Q-W-
juntos representan un grupo ciano;
A representa una cadena alquileno o alquenileno
C_{1-5}; m representa un número entero de 1 a 4
y
L representa un grupo saliente;.
11. Un compuesto según la reivindicación 9 o la
reivindicación 10, en el que el grupo saliente L o cada uno de los
grupos salientes L representa -SR, -SO_{2}R, -OSO_{2}R,
-N^{+}R^{3}, -N^{+}HR_{2}, -N^{+}H_{2}R, halógeno o
-O\diameter, en los que R representa un grupo alquilo o arilo y
\diameter representa un grupo arilo sustituido que contiene como
mínimo un sustituyente aceptor de electrones.
12. Una composición farmacéutica que comprende
un compuesto fisiológicamente tolerable según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 junto con un vehículo farmacéuticamente
aceptable.
13. Un compuesto según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 6 para uso como medicamento.
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