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ES2379764T3 - Polipéptido VKORC1 de reciclaje de la vitamina K-epóxido, una diana terapéutica de la curamina y sus derivados - Google Patents

Polipéptido VKORC1 de reciclaje de la vitamina K-epóxido, una diana terapéutica de la curamina y sus derivados Download PDF

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ES2379764T3
ES2379764T3 ES10002316T ES10002316T ES2379764T3 ES 2379764 T3 ES2379764 T3 ES 2379764T3 ES 10002316 T ES10002316 T ES 10002316T ES 10002316 T ES10002316 T ES 10002316T ES 2379764 T3 ES2379764 T3 ES 2379764T3
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vkorc1
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polypeptide
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nucleic acid
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ES10002316T
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Johannes Oldenburg
Clemens R. Müller-Reible
Andreas Fregin
Tim-Matthias Strom
Simone Rost
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Baxter International Inc
Original Assignee
Baxter Healthcare SA
Baxter International Inc
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Abstract

Método para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped que comprende la introducción en dicha célula huésped de un ácido nucleico que codifica VKORC1 de manera que el ácido nucleico que codifica VKORC1 se exprese de forma recombinante en dicha célula, caracterizado porque el ácido nucleico que codifica VKORC1 codifica: a) una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en la SEQ ID NO: 12 y la SEQ ID NO: 17; b) una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a); c) una secuencia polipeptídica que tiene al menos un 90% de identidad con la secuencia polipeptídica definida en (a) o (b), donde la secuencia polipeptídica tiene actividad de VKORC1; y d) una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b) o (c) que tiene actividad de VKORC1, donde la expresión de dicho VKORC1 en dicha célula huésped incrementa la actividad basal del VKORC1 de dicha célula huésped, y donde dicho método no es un método para el tratamiento del cuerpo humano o animal por cirugía o terapia

Description

Polipéptido vkorc1 de reciclaje de la vitamina k-epóxido, una diana terapéutica de la cumarina y sus derivados.
Campo de la Invención
La invención se refiere a métodos para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped que comprende la introducción dentro de dicha célula huésped de un ácido nucleico que codifica VKORC1 de modo tal que el ácido nucleico que codifica VKORC1 se exprese de forma recombinante en dicha célula. Además, la presente invención se refiere a las utilizaciones de un ácido nucleico de VKORC1 recombinante para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped.
Antecedentes de la Invención
La represión de la coagulación sanguínea prematura es la opción terapéutica seleccionada para el tratamiento agudo y la prevención a largo plazo de eventos trombóticos. De entre los anticoagulantes, las cumarinas se utilizan ampliamente para la prevención de la trombosis, por ejemplo en pacientes inmovilizados después de una cirugía, en pacientes con insuficiencia cardíaca crónica, en pacientes con enfermedad vascular ateroesclerótica, en pacientes con tumores malignos y en mujeres embarazadas. Además, las cumarinas son los anticoagulantes orales más utilizados para el tratamiento y la profilaxis de la trombosis [Suttie, 1987]. Las cumarinas son derivados típicos de 6-hidroxicumarina, por ejemplo 3-(acetonilbencil)-4-hidroxicumarina (COUMADIN®).
Las cumarinas tienen como objetivo la cascada de coagulación sanguínea indirectamente mediante la inhibición del ciclo de la vitamina K.
La vitamina K es un cofactor esencial para la activación post-traducción por la gamma-carboxilación de un grupo de proteínas reguladoras, las proteínas Gla. En diversas vías metabólicas, algunas proteínas clave necesitan una carboxilación para funcionar adecuadamente. La cascada de coagulación sanguínea es el ejemplo mejor estudiado. Aquí, los factores procoagulantes II, VII, IX y X, así como los factores anticoagulantes proteína C, proteína S, proteína Z, dependen de la gamma-carboxilación. Esta modificación post-traducción permite la fijación de las proteínas modificadas -en presencia de calcio- a las membranas fosfolipídicas bicapa, lo que representa una etapa esencial en la activación de la coagulación sanguínea [Sperling y col., 1978]; [Esmon y col., 1975]. Otras proteínas que requieren de la gammacarboxilación son la proteína de matriz gla y la osteocalcina, ambas reguladoras del metabolismo óseo [Price, 1988] y "el gen específico de la inhibición del crecimiento", una proteína señal de transducción del ciclo celular [Manfioletti y col., 1993]; [Stitt y col., 1995].
Durante la gamma-carboxilación se introduce un grupo carboxilo en los residuos glutamato de las proteínas diana mediante la enzima gamma-glutamil carboxilasa (GGCX) en los microsomas del hígado [Furie & Furie, 1988]; [Suttie, 1987]. La reacción requiere como cofactor cantidades estequiométricas de vitamina K1-hidroquinona reducida (vitamina K1H2), que se oxida a vitamina K-2,3-epóxido [Cain y col., 1997]. La regeneración del cofactor activo es mediada por un complejo multiproteína denominado vitamina K-2,3-epóxido reductasa (VKOR) [Wallin & Martin, 1985]. El mismo complejo es el objetivo de los venenos de tipo cumarina utilizados en el control plaguicida de roedores. Este "ciclo de la vitamina K" se ha caracterizado bioquímicamente de forma detallada, pero los componentes moleculares no han sido purificados todavía hasta homogeneidad [Guenthner y col., 1981]. Además, la naturaleza molecular de la actividad de la cumarina y las moléculas que interactúan con las cumarinas siguen siendo imprecisas.
En general se aprecia en la técnica que, a pesar de su gran eficacia, existen diversas limitaciones al uso de las cumarinas. En primer lugar, algunos seres humanos son insensibles al tratamiento con cumarina. El término resistencia a la warfarina (WR) se utiliza para individuos que mantienen actividades normales del factor de coagulación a pesar de la anticoagulación oral con cumarinas (Acceso OMIM Nº 122700). Se ha observado una transmisión autosómica dominante en varios linajes [O'Reilly y col., 1964]; [O'Reilly, 1970]. La deficiencia combinada de todos los factores de coagulación dependientes de la vitamina K (VKCFD) es un trastorno de sangrado muy raro en humanos con herencia autosómica recesiva, 14 casos descritos hasta la fecha [McMillan & Roberts, 1966]; [Fischer, 1966]; [Johnson y col., 1980]; [Goldsmith y col., 1982]; [Vicente y col., 1984]; [Ekelund y col., 1986]; [Pauli y col., 1987]; [Leonard, 1988]; [Pechlaner y col., 1992]; [Boneh & Bar-Ziv, 1996]; [Brenner y col., 1998]; [Spronk y col., 2000]; [Oldenburg y col, 2000]. Los síntomas clínicos de la enfermedad incluyen episodios de hemorragias intracerebrales perinatales, a veces con resultado fatal. Habitualmente, la tendencia al sangrado se invierte por completo mediante la administración oral de vitamina K. Los síntomas adicionales en recién nacidos se asemejan a la embriopatía por warfarina con hipoplasia falangiana nasal y distal y calcificación prematura de la epífisis [Pauli y col., 1987]. La enfermedad puede resultar de una resorción/transporte defectuoso de la vitamina K al hígado [Prentice, 1985] o de mutaciones en uno de los genes implicados en la gamma-carboxilación. En el subtipo 1 (VKCFD1, OMIM # 277450), las mutaciones en el gen GGCX sobre el cromosoma 2p12 resultan en una carboxilación insuficiente de los factores de coagulación [Brenner y col., 1998]; [Spronk y col., 2000]. Se ha descrito una conexión de dos familias con la deficiencia múltiple familiar del factor de coagulación (FMFD, ahora renombrado: VKCFD2, OMIM # 607473) a un intervalo de 20 Mb de la región pericéntrica del cromosoma 16p12-q21 [Fregin y col., 2002]. Los pacientes con VKCFD2 mostraron niveles en suero notablemente en aumento de vitamina K-epóxido, sugiriendo así un defecto en una de las subunidades del complejo VKOR. En su conjunto, es evidente que existen pacientes que presentan resistencia a la warfarina. Como consecuencia, existe la
necesidad de identificar nuevos derivados de cumarinas que sean anticoagulantes eficaces para tratar a estos pacientes, así como métodos para identificar estos derivados de la cumarina.
El uso de cumarinas se asocia con un riesgo de sangrado espontáneo, con un índice de mortalidad significativo. Además, la predicción de la dosis exacta de mantenimiento de la cumarina es difícil. En ausencia de la molécula diana sobre la que la cumarina ejerce un efecto, el régimen de tratamiento debe establecerse en base a cada paciente. Mientras el régimen óptimo no se ha establecido todavía, el paciente tiene un mayor riesgo de trombogénesis o de sangrado. Por tanto, es necesario un método para determinar el régimen óptimo de tratamiento lo más rápido y seguro posible. Además, el establecimiento de un régimen de tratamiento óptimo se complica por el hecho de que existe un retraso considerable entre la administración de las cumarinas y el desencadenamiento de su actividad anticoagulante. Dada la acción retardada de la cumarina y considerando el hecho de que la cumarina tiende a acumularse con el tiempo, existe la necesidad de derivados de cumarina que permitan la coagulación sanguínea de forma más rápida que las cumarinas conocidas en la técnica. De la misma manera, existe también la necesidad de cumarinas que se metabolicen más rápidamente, de forma que se pueda impedir o mejorar la acumulación de cumarina y, consecuentemente, reducir o suprimir el riesgo de sobredosis.
Se entenderá que cuando el tratamiento con cumarina se inicia durante un estado trombótico, los niveles de proteína C y S disminuyen, creando así temporalmente un potencial trombogénico que normalmente es compensado superponiendo la administración de heparina y cumarina durante varios días. De nuevo, se necesita identificar la diana molecular de acción de la cumarina con el fin de poder buscar nuevos derivados de cumarina que no tengan estas limitaciones o al menos las tengan en menor medida.
A veces, la terapia con cumarina provoca necrosis de la piel en los pacientes y, cuando se aplica durante el embarazo, puede causar embriopatía, creando la necesidad de nuevos derivados de cumarina que no provoquen estos efectos.
Existen diversas interacciones entre los medicamentos y las cumarinas. Algunos de estos medicamentos, como el Fenobarbital, inducen niveles plasmáticos más bajos de las cumarinas debido a la mayor metabolización de la cumarina, que se piensa se debe a las oxidasas de función mixta, como las oxidasas de función mixta citocromo P450. Dicha interacción es de importancia clínica cuando se ha determinado el régimen apropiado, por ejemplo Fenobarbital y cumarina, y más tarde, al administrar solamente Fenobarbital, se suspende, conduciendo a un aumento del nivel plasmático de cumarina, lo que provoca una anticoagulación excesiva. Otros medicamentos como la Amiodarona provocan la metabolización retardada de la cumarina, conduciendo de nuevo a una anticoagulación excesiva cuando se administra conjuntamente con cumarinas. Debido a que no se conocen en la técnica las moléculas afectadas por las cumarinas, existe la necesidad de desarrollar nuevas cumarinas y herramientas para identificar estas últimas con el fin de resolver estos problemas.
Finalmente, las cumarinas, en especial la warfarina, no sólo se utilizan en humanos, sino que, desde los años 50, las cumarinas se han empleado como ingrediente activo en composiciones rodenticidas. La base de la eficacia de la warfarina como rodenticida se basa en el hecho de que es un anticoagulante eficaz en pequeñas dosis múltiples. Una o dos dosis del compuesto son rara vez fatales si se toman a la concentración recomendada; por tanto, el riesgo de toxicidad aguda para el ser humano, animales domésticos y para la naturaleza se reduce en gran medida. Habitualmente, los roedores empiezan a morir después de cuatro o cinco dosis diarias de material y la población se reduce mucho o se erradica en aproximadamente tres semanas. La muerte es causada por hemorragias, ocasionadas por la acción de la warfarina en la reducción del poder de coagulación de la sangre. Estas hemorragias pueden ser externas o internas y pueden empezar por una lesión muy leve o por un daño capilar. Otra ventaja de las cumarinas es que, como se necesitan múltiples ingestiones para matar los roedores, no desarrollan rechazo al cebo. A principios de 1969, los roedores, en particular ratas y en menor medida ratones, empezaron a mostrar resistencia a los cebos de warfarina. La suposición general era que dicha resistencia tenía una base genética. Por lo que se refiere al mecanismo, el complejo VKORC1 mencionado anteriormente es el blanco de los derivados de la warfarina utilizada para el control de plagas de roedores [Jackson y col., 1988]. La resistencia a los derivados de la cumarina ha surgido espontáneamente en varias poblaciones de roedores salvajes, provocando que el uso de estos medicamentos sea localmente ineficaz para el control de plagas. Se han mapeado los loci dominantes autosómicos para la resistencia a la warfarina en el ratón (War) al cromosoma 7 [Wallace y col, 1976] y en la rata (Rw) al brazo largo del cromosoma 1 [Greavses & Ayres, 1967]; [Kohn & Pelz, 1999]. Como el complejo VKOR es el blanco de los medicamentos con cumarina, se piensa que la resistencia es mediada por alteraciones en uno de sus componentes proteicos [Jackson, 1988]. El desarrollo de la resistencia en los roedores ha creado la necesidad de identificación del blanco de la acción de las cumarinas, lo que facilitaría el desarrollo de nuevos derivados de cumarina para su uso en el control de plagas.
En un contexto relacionado, la WO 00/03015 A2 describe homólogos de proteínas transportadoras humanas (HTPH), polinucleótidos que identifican y codifican HTPH, vectores de expresión respectivos, células huésped, anticuerpos, agonistas y antagonistas, así como métodos para diagnosticar, tratar o prevenir trastornos asociados a la expresión de HTPH. Además, Fregin, A. y col., (Fregin, A. y col., Homocygosity mapping of a second gene locus for hereditary combined deficiency of vitamin K-dependent clotting factors to the centromeric region of chromosome 16, Blood 100(9), Noviembre 2002) describen el vínculo de la deficiencia múltiple hereditaria del factor de coagulación (FMFD) a la región centromérica del brazo corto del cromosoma 16.
Además, un objeto de la presente invención consiste en proporcionar métodos para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped así como las utilizaciones de un ácido nucleico de VKORC1 recombinante para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped.
Se añadió a la reivindicación 1 una limitación no descrita (“y caracterizado porque dicho método no es un método para el tratamiento del cuerpo humano o animal mediante cirugía o terapia”), con el fin de no incluir cualquier materia no patentable. De forma similar, se añadió a la reivindicación 6 una limitación no descrita (“y caracterizado porque dicho uso no es un uso para el tratamiento del cuerpo humano o animal mediante cirugía o terapia”) con el fin de no incluir cualquier materia no patentable.
Sumario de la Invención
Para resolver los objetos mencionados anteriormente, se proporcionan las realizaciones tal como se caracterizan en las reivindicaciones.
Breve descripción de las figuras
La Fig. 1 muestra una comparación del intervalo candidato de 3cM en el mapa genético que contiene el locus del gen VKORC1 humano, de rata y de ratón. Se muestra el ideograma del cromosoma 16 humano, la zona de homocigocidad en las familias 1 y 2 se extiende de 16p11.2 a 16q13, lo que corresponde aproximadamente a 25 Mb. En la parte derecha de la figura, se muestran las partes homólogas de los cromosomas de ratón y rata. Se describen los genes sintéticos de 16p11.2 y 16q12.1 con las contrapartes homólogas en Mus musculus (MMU) y Rattus norvegicus (RNO). Los loci para el fenotipo de resistencia a la warfarina en el ratón (War) y la rata (Rw) se mapean en regiones homólogas a 16p11.2. MMU: Mus musculus; RNO: Rattus norvegicus; PRKCB1; Prkcb; IL4R: receptor de interleucina-4 (humano); II4ra: receptor de interleucina-4 (murino); II4r: receptor de interleucina-4 (rata); SPS2: selenofosfato sintetasa (humana); Sps2: selenofosfato sintetasa (murina/rata); HUMMLC2B: cadena ligera 2 de miosina (humana); Mylpf: cadena ligera 2 de miosina (murina); Myl2: cadena ligera 2 de miosina (rata); SPN: sialoforina (humana); Spn: sialoforina (murina/rata).
La Fig. 2 muestra mutaciones de VKORC1 en el factor 2 humano de coagulación dependiente de la vitamina K (VKCFD2) y en pacientes con resistencia a la warfarina (WR). La parte superior de la figura muestra la segregación de la mutación R98W en dos familias de VKCFD2 y los electroferogramas de un homocigoto mutante (izquierda) en comparación con un control (derecha). La parte inferior de la figura muestra las mutaciones heterocigotas de cuatro pacientes con WR (85G>T, 134T>C, 172A>G, 383T>G) y una rata con RW (416A>G).
La Fig. 3 muestra la alineación de secuencias de los polipéptidos de VKORC1 y la proteína 1 de tipo VKORC1 (VKORC1L1). La alineación fue generada por CLUSTALW y PRETTYBOX. Los polipéptidos VKORC1 humanos (hVKORC1), de ratón (mVKORC1) y de rata (rVKORC1), así como VKORC1L1, es decir VKORC1L1 humano (hVKORC1L1), de ratón (mVKORC1L1) y de Fugu rubripes (fVKORC1L1), comparten aproximadamente un 84% de identidad de secuencia dentro de ambos grupos y aproximadamente un 50% de identidad entre ambos grupos de proteínas. xVKORC1 describe la secuencia de polipéptidos de VKORC1 de Xenopus laevis, fVKORC1 la secuencia de polipéptidos de VKORC1 de Fugu rubripes y aVKORC1, la secuencia de polipéptidos de VKORC1 de Anopheles gambiae. El análisis de árbol permite agrupar las proteínas de Fugu rubripes, Xenopus laevis y Anopheles gambiae en el grupo apropiado. Se subrayan los emplazamientos de los dominios transmembrana previstos. Los residuos 29, 45, 58 y 128 mutados en pacientes con WR se conservan en todas las especies. La arginina en la posición 98 mutada en los pacientes con VKCFD2 se conserva en los humanos, ratas y ratones (signo +).
La Fig. 4 muestra un análisis Northern blot de VKORC1 en tejidos humanos fetales y adultos. La mancha superior describe un Northern blot de tejido adulto, mientras que la mancha inferior describe un Northern blot de tejido fetal. Para más detalles, véase el Ejemplo 4. Las líneas con fragmentos de los tamaños 2,4; 4,4; 7,5 y 9,5 KB indican marcadores de peso molecular y permiten la estimación del tamaño de todas las bandas visibles.
La Fig. 5 muestra el emplazamiento subcelular de VKORC1. Para más detalles, véase el Ejemplo 6. Con este fin, células COS-7 transfectadas transitoriamente con los constructos de VKORC1 se tiñeron con anti-calnexina (rojo; columna de la izquierda) y anti-GFP o anti-myc, respectivamente (verde; columna del medio). Las figuras unidas de las células con doble tinción se muestran en la columna de la derecha. Ambos constructos de VKORC1 (marcados con GFP o myc) se localizan juntos en la tinción con calnexina específica de ER. El constructo de control (pEGFP-N1) muestra un modelo de tinción difusa por todo el citoplasma.
La Fig. 6 muestra una lista de secuencias de ARNsi para VKORC1 de homo sapiens y cebadores que codifican estos ARNsi que se pueden utilizar para su expresión utilizando por ejemplo el Sistema de Interferencia por ARN de siLentGeneTM U6 Cassette.
La Fig. 7 muestra los emplazamientos de ARNsi diana en la secuencia de codificación de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de homo sapiens (Hs_VKORC1), que se muestran en gris claro; las regiones que forman parte de dos ARNsi diana posibles se muestran en gris más oscuro; y las regiones con dos o más secuencias de ARNsi posibles se muestran en un gris aun más oscuro.
La Fig. 8 proporciona una lista de secuencias de cebadores PCR así como las condiciones de PCR para la amplificación de VKORC1 de Homo sapiens y de VKORC1L1 de Homo sapiens.
La Fig. 9 proporciona una lista de las secuencias con sus respectivos SEQ ID NO.
La Fig. 10 muestra las actividades VKOR de células HEK293 transfectadas con ADNc de VKORC1. Los valores son dados como porcentaje de vitamina K-epóxido convertido en vitamina K-quinona (producto/sustrato residual + producto). Se define también la actividad VKORC1 de tipo salvaje que es sensible a la warfarina (un 4,3% de la actividad residual a 80 !M de warfarina comparada con la no inhibida). Las mutaciones de Y139C y V29L que conducen a la resistencia a la warfarina muestran una actividad residual del 69% y del 11% a 80 !M de warfarina respectivamente). Se llevaron a cabo todas las pruebas por duplicado. Las no transfectadas y mock-transfectadas mostraron actividades del 1,49% y del 0,96%, y fueron inhibidas en más del 90% por 10 !M de warfarina. Para más detalles véase el Ejemplo 7.
La Fig. 11 muestra la secuencia de aminoácidos del polipéptido de reciclaje de vitamina K-epóxido de Homo sapiens (HS_VKORC1; SEQ ID NO:1).
La Fig. 12 muestra el ácido nucleico que codifica la secuencia del polipéptido de reciclaje de vitamina K-epóxido de Homo sapiens (HS_VKORC1; SEQ ID NO:2).
La Fig. 13 muestra el resultado de un experimento ARMS-PCR para determinar si una rata sometida a prueba es resistente o no a la warfarina. Las ratas de tipo salvaje mostraron una banda a 123 pb (sonda # 3351, 3133, 3137, 3142, 4724, 4684, 3138, 3162), las ratas homocigotas para la mutación (sonda # 4701) mostraron una banda a 101 pb y, finalmente, las ratas con la mutación heterocigota (sonda # 3066, 3350, 3352, 3354, 3139, 3140, 4754, 3146, 3148, 3149) mostraron dos bandas, una banda a 101 y otra a 123 pb. Para más detalles véase el Ejemplo 9.
Descripción Detallada de la Invención
La presente invención se refiere a los usos de un polipéptido de VKORC1 o de un ácido nucleico de VKORC1 para la gamma-carboxilación de polipéptidos dependientes de la vitamina K, así como a los métodos respectivos. Preferentemente, el polipéptido gamma-carboxilado dependiente de la vitamina K es un polipéptido seleccionado del grupo consistente en factor de coagulación II, VII, IX, X, proteína C, proteína S, proteína Z, proteína de matriz gla y osteocalcina. En una realización preferente, VKORC1 se utiliza en combinación con al menos un compuesto adicional, preferentemente en un contexto celular, compuesto adicional que se selecciona del grupo consistente en vitamina K, citocromo B5 y un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamil-carboxilasa, para la epoxideshidrolasa microsómica, para la calumenina o para la glutatión-S-transferasa.
Con el fin de satisfacer las necesidades de desarrollo de nuevos derivados de cumarina e identificar la diana de la cumarina y sus derivados, se clonó el polipéptido de reciclaje de vitamina K-epóxido (VKORC1). Este gen era anteriormente desconocido, abarcando una región genómica de 5.126 pb y comprendiendo tres exones que codifican para una proteína de 163 aminoácidos. El análisis topológico sugiere una proteína altamente hidrofóbica con al menos dos dominios transmembrana. Esto es compatible con el emplazamiento conocido de la actividad del complejo VKORC1 en las membranas del RE y con datos de inmunofluorescencia en células COS-7 transfectadas con constructos de VKORC1 (Fig. 5).
Sorprendentemente, el gen VKORC1 se identificó en un estudio de mutantes en pacientes resistentes a la warfarina (para más detalles, véanse los Ejemplos 1 y 2). Se ha identificado sorprendentemente un gen, VKORC1, que muta en pacientes con una deficiencia combinada de todos los factores de coagulación dependientes de la vitamina K (VKCFD2) y con resistencia a la warfarina (WR), respectivamente, lo que demuestra que el polipéptido VKORC1 contiene un sitio de unión para la warfarina y es una diana de la cumarina y sus derivados. La evidencia de que las mutaciones son causantes de los dos fenotipos es la siguiente:
i) una mutación R98W se segrega con la enfermedad en dos familias no relacionadas con VKCFD2;
ii) esta arginina en la posición 98 se conserva en los genes humanos y en los genes homólogos de ratón y rata, respectivamente;
iii) tres hermanos resistentes a la warfarina comparten una sustitución R58G;
iv) este aminoácido y los demás residuos encontrados mutados en dos pacientes WR más no relacionados (V29L y L128R) se conservan en todas las especies analizadas excepto para tres genes bacterianos (véase la Fig. 3); y
v) ninguna de las 5 supuestas mutaciones se encontró en 192 muestras de ADN de control.
Además, las búsquedas de homología en las bases de datos genómicas y de proteínas no han revelado similitudes de VKORC1 con ninguna proteína o dominio peptídico de la función comentada. Sin embargo, se encuentran genes homólogos en los vertebrados (rata, ratón, Xenopus, Fugu), insectos (Anopheles) y bacterias (Fig. 3). Sorprendentemente, los tres mamíferos y el Fugu tienen cada uno un segundo gen de tipo VKORC1 de similitud moderada con el gen afín. Cierto número de posiciones de aminoácidos dentro de estos genes se conservan en toda la evolución. Esto está de acuerdo con el hecho bien establecido de que la gamma-carboxilación, y por tanto el uso de vitamina K como cofactor de este proceso, es una vieja modificación post-traducción de la proteína evolutiva [Bandyopadhyay y col., 2002].
Una sustitución de valina 29, arginina 58, leucina 128, aunque dispersa sobre la totalidad del polipéptido VKORC1, hace que la inhibición de la actividad de VKORC1 por la warfarina sea obviamente ineficaz. Se especula sobre la posibilidad de que estos aminoácidos cooperen funcionalmente en la estructura terciaria de la proteína 1 de VKORC1. Tomando conjuntamente los datos sobre la mutación en pacientes con dos fenotipos diferentes, VKORC1 se ofrece como proteína diana tanto para la unión de la vitamina K como de la warfarina.
El polipéptido de reciclaje de vitamina K-epóxido (VKORC1) utilizado con relación a la presente invención, comprende, preferentemente consiste en, una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en:
a) una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en una secuencia de acuerdo con las SEQ ID NO: 1, 12, 17, 21, 25 y 27;
b) una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a);
c) una secuencia polipeptídica que tiene al menos un 80% de homología con la secuencia polipeptídica definida en (a) o (b), secuencia polipeptídica que tiene la actividad de VKORC1; y
d) una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b), o (c) que tiene la actividad de VKORC1.
Preferentemente, el polipéptido VKORC1 es una diana para la cumarina y sus derivados en mamíferos.
Dentro del significado de la invención, el término "polipéptido de VKORC1" se refiere a la secuencia de longitud total del polipéptido de VKORC1 tal como se define en el párrafo anterior. El término “polipéptido de VKORC1” abarca también los polipéptidos aislados de VKORC1 y los polipéptidos de VKORC1 que se preparan por medio de métodos recombinantes, por ejemplo mediante aislamiento y purificación a partir de una muestra de una célula huésped que expresa el polipéptido VKORC1, mediante estudio de librerías y mediante síntesis de proteínas, siendo conocidos todos estos métodos por los especialistas en la técnica. Preferentemente, se puede sintetizar la totalidad del polipéptido VKORC1 o partes del mismo, por ejemplo, con la ayuda de síntesis convencionales, tal como la técnica de Merrifield. De forma especialmente preferente, el término "polipéptido VKORC1" engloba también los polipéptidos que tienen una homología de secuencia del 80% aproximadamente, en especial del 90% aproximadamente, en particular del 95% aproximadamente, con especial preferencia del 98% aproximadamente, con el polipéptido VKORC1 de acuerdo con una de las SEQ ID NO: 1, 12, 17, 21, 25 y 27, siempre que dicho polipéptido VKORC1 tenga la actividad de VKORC1. Además, preferentemente el término "polipéptido VKORC1" engloba también polipéptidos homólogos que proceden de organismos distintos de los humanos, preferentemente de mamíferos no-humanos tales como roedores, por ejemplo ratones, ratas, o monos y cerdos y otros vertebrados e invertebrados, tales como aquellas secuencias de aminoácidos de acuerdo con las SEQ ID NO:12, 17, 21, 25, 27, siempre que dicho polipéptido VKORC1 tenga la actividad de VKORC1. Es especialmente preferente que el término "polipéptido VKORC1" incluya también los polipéptidos de VKORC1 que están codificados por distintos alelos del gen, en diferentes individuos, en distintos órganos de un organismo o en distintas fases del desarrollo, siempre que dicho polipéptido VKORC1 tenga la actividad de VKORC1. Se pretende además que el término "polipéptido VKORC1" englobe preferentemente también mutaciones naturales o sintéticas que no ejercen ningún efecto o sólo efectos insignificantes sobre la actividad del polipéptido VKORC1. Otros polipéptidos englobados preferentemente por el término "polipéptido VKORC1" incluyen polipéptidos VKORC1 que pueden surgir de empalmes diferenciales de la transcripción de VKORC1, siempre que dicho polipéptido VKORC1 tenga la actividad de VKORC1.
El término "fragmento de la secuencia polipeptídica" pretende englobar secuencias parciales de los polipéptidos VKORC1, fragmentos que comprenden, que consisten preferentemente en, al menos alrededor del 60%, preferentemente al menos alrededor del 70%, con más preferencia al menos alrededor del 80%, en particular al menos alrededor del 90%, especialmente al menos alrededor del 95% de la secuencia de longitud total del polipéptido VKORC1. En particular, preferentemente el fragmento consiste en una única secuencia contigua del polipéptido VKORC1, pero puede contener también al menos dos, al menos tres o al menos aproximadamente cinco distintas porciones de secuencias de un polipéptido VKORC1 que pueden tener o no una secuencia heteróloga intercalada o no contener ninguna secuencia polipeptídica extra.
El término "homología de secuencia" se entiende como el grado de identidad (% de identidad) de dos secuencias que, en el caso de los polipéptidos, puede ser determinada por medio de, por ejemplo, BlastP 2.0.1. y en el caso de ácidos nucleicos por medio de, por ejemplo, BLASTN 2.014, en el que se activa el filtro y BLOSUM es 62 (Altschul y col., 1997).
"Actividad de VKORC1" tal como se utiliza aquí pretende significar la actividad biológica del polipéptido VKORC1 de SEQ ID NO: 1. De forma especialmente preferente, se define "actividad de VKORC1" como la actividad del polipéptido VKORC1 para convertir enzimáticamente (o soportar la conversión enzimática) de vitamina K-2,3-epóxido en vitamina K-quinona y/o la conversión de vitamina K-quinona en vitamina K-hidroquinona. Se puede determinar la actividad de VKORC1 por medio de un ensayo basado en los experimentos descritos detalladamente en el Ejemplo 7 y en la Figura
10. Por medio de este ensayo, el porcentaje medido de vitamina K-epóxido convertido en vitamina K-quinona (producto/sustrato + producto) en células que expresan determinado polipéptido de VKORC1, o una molécula de ácido nucleico que codifica para dicho polipéptido VKORC1, que eleva la actividad basal de VKOR de las células HEK293 desde aproximadamente un 1% (1,49 y 0,96% respectivamente para células HEK293 no transfectadas y mocktransfectadas) hasta aproximadamente un 15% o más, preferentemente hasta aproximadamente un 18% o más, en particular hasta aproximadamente un 20% o más, especialmente hasta aproximadamente un 25% o más, se considera actividad de VKORC1 dentro del significado de la invención.
Los polipéptidos de VKORC1 tal como se han definido anteriormente se pueden producir por el método descrito más detalladamente a continuación. Entre otras cosas, los polipéptidos VKORC1 son útiles para identificar derivados de la cumarina que evitan los problemas descritos anteriormente. En particular, son útiles para identificar derivados de cumarina que inhiben eficazmente la actividad de VKORC1 y que, en ensayos independientes, se someten a prueba (1) en cuanto a su vida media metabólica, con el fin de identificar derivados de la cumarina que se metabolizan más rápidamente que las cumarinas conocidas en la técnica, (2) en cuanto a su capacidad para provocar la necrosis de la piel, para identificar derivados de cumarina que no provoquen necrosis de la piel o en menor medida que las cumarinas conocidas en la técnica, (3) en cuanto a las interacciones entre el derivado de cumarina y el medicamento, con el fin de identificar derivados de cumarina con menos efectos secundarios que las cumarinas conocidas en la técnica. Además, los polipéptidos VKORC1 de tasl como se han definido anteriormente son útiles para identificar una secuencia de VKORC1 que interactúa con la cumarina y sus derivados, y para tratar a pacientes con actividad reducida o aumentada de VKORC1 con respecto a los niveles control.
Un ácido nucleico de VKORC1 comprende, preferentemente consiste esencialmente en, una secuencia de ácido nucleico seleccionada de entre el grupo consistente en:
a) una secuencia de ácido nucleico que codifica para el polipéptido VKORC1 de acuerdo con la invención;
b) una secuencia de ácido nucleico seleccionada de entre el grupo consistente en una secuencia de acuerdo con las SEQ ID NO: 2, 13, 18, 22, 26 y 28;
c) una secuencia de ácido nucleico que se hibridiza en condiciones astringentes a la secuencia de ácido nucleico definida en (a) o (b), secuencia de ácido nucleico que codifica para un polipéptido con actividad de VKORC1;
d) una secuencia de ácido nucleico que, salvo por la degeneración del código genético, se hibridizaría, preferentemente en condiciones astringentes, al ácido nucleico definido en (a), (b) o (c) y secuencia de ácido nucleico que codifica para un polipéptido con actividad de VKORC1; y
e) un fragmento de la secuencia de ácido nucleico definida en (a), (b), (c) o (d), fragmento que codifica para un polipéptido con actividad de VKORC1.
Preferentemente, el ácido nucleico de VKORC1 es una diana para la cumarina y sus derivados en mamíferos.
El término "ácido nucleico de VKORC1" se refiere a ARN o ADN, que puede ser una molécula de una sola hebra o preferentemente de doble hebra. La secuencia de ácido nucleico de VKORC1 puede comprender además al menos un intrón y/o una secuencia poliA. El término "ácido nucleico de VKORC1" puede englobar asimismo una etapa precursora, por ejemplo un propolipéptido o prepropolipéptido del mismo. Se entiende también que pueden estar presentes secuencias no traducidas en el extremo 5' y/o 3' del ácido nucleico sin que se altere significativamente la actividad del polipéptido codificado. Sin embargo, es particularmente preferente la región de ADN que codifica el polipéptido de VKORC1. En eucariotas, esta región empieza por el primer codón de inicio (ATG) que está localizado en una secuencia Kozak (Kozak, 1987) y se extiende hasta el siguiente codón de parada (TAG, TGA o TAA) que está localizado en el mismo marco de lectura que el ATG. En el caso de procariotas, esta región empieza por el primer AUG (o GUG) después de una secuencia Shine-Dalgamo y termina por el siguiente codón de parada (TAG, TGA o TAA) que está localizado en el mismo marco de lectura que el ATG. Además, el término "ácido nucleico de VKORC1" puede englobar asimismo secuencias que muestran al menos aproximadamente un 70%, en particular al menos aproximadamente un 80%, especialmente al menos aproximadamente un 90%, de homología de secuencia con la secuencia según las SEQ ID NO: 2, 13, 18, 22, 26 y 28, preferentemente con la secuencia según la SEQ ID NO: 2, siempre que el polipéptido de VKORC1 codificado por dicho ácido nucleico tenga actividad de VKORC1. Preferentemente, el ácido nucleico comprende un ácido nucleico que tiene una secuencia complementaria y/o antisentido a un ácido nucleico de VKORC1 tal como se define en el párrafo anterior. El ácido nucleico de VKORC1 puede comprender asimismo una variante mutante no funcional del ácido nucleico de VKORC1 como se ha definido anteriormente, tal como una variante que contiene un polimorfismo de nucleótido único (SNP) como las secuencias de ácido nucleico según las SEQ ID NO: 8 y 9, siempre que el polipéptido VKORC1 codificado por dicho ácido nucleico tenga la actividad de VKORC1.
El término "condiciones astringentes de hibridación" se debe entender, en particular, como aquellas condiciones en las que tiene lugar una hibridación, por ejemplo, a 60ºC en un tampón 2,5 x SSC seguido de varias etapas de lavado a 37ºC en una concentración más baja de tampón y que permanece estable.
Se entiende que el término "fragmento de la secuencia de ácido nucleico que codifica para un polipéptido que tiene la actividad de VKORC1" engloba fragmentos de la secuencia de ácido nucleico que comprenden, que consisten preferentemente en, al menos alrededor del 60%, preferentemente al menos alrededor del 70%, con más preferencia al menos alrededor del 80%, particularmente al menos alrededor del 90%, especialmente al menos alrededor del 95% de la secuencia de longitud total que codifica para el polipéptido VKORC1 definido anteriormente, preferentemente codificando para el polipéptido según la SEQ ID NO:1, siempre que el polipéptido codificado por dicho fragmento tenga la actividad de VKORC1. En particular, preferentemente el fragmento consiste en una sola secuencia contigua que codifica para el polipéptido VKORC1, pero puede contener también al menos dos, al menos tres o al menos alrededor de cinco porciones de secuencia diferentes, que pueden contener una secuencia heteróloga intercalada o no contener ninguna secuencia extra de ácido nucleico, siempre que todas las porciones de la secuencia estén dispuestas en el mismo marco de lectura. Es esencial para la definición de estos fragmentos que muestren la actividad de VKORC1.
Los ácidos nucleicos de VKORC1 se pueden producir por medio de métodos generalmente conocidos por el especialista en la técnica. Los ácidos nucleicos se pueden preparar de forma sintética. Así, los ácidos nucleicos de VKORC1 se pueden sintetizar por ejemplo químicamente, por ejemplo de acuerdo con el método del fosfotriéster, con ayuda de las secuencias de ADN tal como se ha definido anteriormente y/o con la ayuda de las secuencias de polipéptidos que se definen del mismo modo anteriormente, tal como la SEQ ID NO:1 y haciendo referencia al código genético (véase, por ejemplo, Uhlmann & Peyman, 1990). Preferentemente, los ácidos nucleicos de VKORC1 se producen por métodos de la tecnología genética recombinante bien conocidos por el especialista en la técnica.
Entre otras cosas, los ácidos nucleicos de VKORC1 son útiles (1) para identificar derivados de cumarina que eviten los problemas descritos anteriormente, (2) para producir cebadores para PCR, sondas de ADN y ARN, ARNsi o ARNsh, y para el polipéptido de VKORC1, (3) para tratar a pacientes con actividad reducida o incrementada de VKORC1 con respecto a los valores de control, y (4) para identificar aquellos derivados de cumarina que se pueden emplear para el control de plagas de roedores, todos ellos descritos detalladamente más abajo.
Un método para producir un polipéptido VKORC1, preferentemente un polipéptido de acuerdo con las SEQ ID. NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27 comprende las etapas de:
I. proporcionar una célula huésped que ha sido introducida en el ácido nucleico de VKORC1, preferentemente un ácido nucleico de acuerdo con las SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28, o un vector que contiene el ácido nucleico de VKORC1;
II. expresar el polipéptido VKORC1 en la célula huésped; y
III. aislar el polipéptido VKORC1 de la célula huésped.
La célula huésped puede ser cualquier célula huésped tal como se define a continuación. Los métodos para seleccionar y cultivar células huésped y para que las células huésped puedan expresar un polipéptido son generalmente conocidos del especialista en la técnica. Lo mismo es aplicable con respecto a los métodos para aislar el polipéptido expresado de la célula huésped; con este fin, se puede utilizar un anticuerpo para la precipitación por inmunoafinidad. Como alternativa, el vector puede contener una etiqueta (poli)peptídica que permita la precipitación por inmunoafinidad con anticuerpos específicos de etiquetado de acuerdo con los protocolos estándar conocidos del especialista (véase también más abajo).
Una proteína de fusión comprende, preferentemente consiste esencialmente en:
a) el polipéptido VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente de acuerdo con la SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25, 27 o un polipéptido codificado por el ácido nucleico de VKORC1, preferentemente un ácido nucleico de acuerdo con las SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26, 28 y
b) una parte heteróloga.
Esto implica proteínas de fusión que contienen el polipéptido VKORC1 descrito anteriormente, con las proteínas de fusión mismas que son ya activas o sólo se convierten en activas después de haber eliminado la parte heteróloga. Con este fin, la parte heteróloga puede comprender además un péptido clivable por una proteasa. La parte heteróloga puede ser un compuesto proteináceo, un péptido o un compuesto diferente. Estas proteínas de fusión incluyen en particular, proteínas de fusión con un contenido de aproximadamente 1-300, preferentemente alrededor de 1-200, particularmente alrededor de 1-150, muy en particular alrededor de 1-100, especialmente alrededor de 1-50 de aminoácidos extraños que constituyen la parte heteróloga. La parte heteróloga puede estar localizada de forma N-terminal, C-terminal y/o interna con relación al polipéptido VKORC1. Los ejemplos de estas secuencias peptídicas son secuencias de péptidos procariotas que pueden proceder, por ejemplo, de E. coli galactosidasa.
Otros ejemplos preferentes de secuencias peptídicas para las proteínas de fusión son los péptidos que facilitan la detección de la proteína de fusión; los ejemplos de los mismos son la proteína verde fluorescente o las variantes funcionales de la misma. También es posible añadir al menos otra "etiqueta polipeptídica", por ejemplo con el propósito de purificar los polipéptidos de VKORC1 anteriormente descritos. Por ejemplo, las etiquetas proteicas adecuadas permiten que las proteínas de fusión que deben ser purificadas sean absorbidas con gran afinidad en una matriz. Esto es seguido después, por ejemplo, de lavados astringentes con tampones adecuados, sin eluir las proteínas de fusión hasta un punto significativo, y, posteriormente, la elución específica de las proteínas de fusión. Ejemplos de etiquetas proteicas conocidas por los especialistas en la técnica son la etiqueta (His)6, etiqueta Myc, etiqueta FLAG, etiqueta hemaglutinina, etiqueta glutatión transferasa (GST), teniendo la inteína una etiqueta de unión a quitina de afinidad y una etiqueta proteica de unión a maltosa (MBP). Estas etiquetas proteicas se pueden localizar de forma N-terminal, Cterminal y/o interna con respecto al polipéptido de VKORC1. Las proteínas de fusión son útiles, por ejemplo, para la producción de VKORC1 y su aislamiento posterior. Además, las proteínas de fusión se pueden emplear para detectar la localización del producto de expresión en la célula o el organismo.
Se describe un vector que comprende un ácido nucleico de VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente el ácido nucleico de VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO. 2. Preferentemente, el vector es un vector de expresión. Con el fin de que se puedan utilizar los ácidos nucleicos de VKORC1 de acuerdo con la presente invención, éstos se pueden introducir en una célula eucariota o procariota por medio de transfección, transformación o infección, permitiendo así la expresión del polipéptido. El ácido nucleico de VKORC1 puede estar presente como plásmido o como parte de un vector viral o no viral. Vectores virales particularmente adecuados a este respecto son: baculovirus, virus vaccinia, adenovirus, adenovirus asociados y virus del herpes. Vectores no virales particularmente adecuados son, por ejemplo, virosomas, liposomas, lípidos catiónicos y ADN conjugado a polilisina. Los vectores pueden ser vectores de expresión procariotas o eucariotas. Ejemplos de vectores de expresión procariotas son los vectores pGEM o derivados de pUC, que se utilizan para la expresión en E. coli, y ejemplos de vectores de expresión eucariotas son los vectores p426Met25 o p426GAL1 (Mumberg y col., 1994), que se utilizan para la expresión en Saccharomyces cerevisiae, vectores de Baculovirus tales como los descritos en EP 0 127 839 B1 o EP 0 549 721 B1, que se utilizan para la expresión en células de insectos, así como los vectores Rc/CMV y Rc/RSV, o los vectores SV40, que se utilizan para la expresión en células de mamíferos, estando disponibles generalmente todos estos vectores. En general, los vectores de expresión contienen asimismo promotores que son apropiados para la célula respectiva, tal como el promotor trp para la expresión en E. coli (véase por ejemplo EP-0 154 133 B1), el promotor Met 25, GAL 1 o ADH2 para la expresión en levaduras (Russel y col., 1983; Mumberg, véase más arriba) y el promotor de polihedrina del baculovirus para la expresión en células de insectos (véase por ejemplo EP 0 127 839 B1).
Los promotores que permiten la expresión constitutiva, regulable, específica de tejidos, específica del tipo de células, específica del ciclo celular o específica del metabolismo en células eucariotas son adecuados, por ejemplo, para la expresión en células de mamíferos. Los elementos regulables de acuerdo con la presente invención son promotores, secuencias activadoras, potenciadores, silenciadores y/o secuencias represoras. Ejemplos de elementos regulables preferentes que permiten la expresión constitutiva en eucariotas son promotores que son reconocidos por la ARN polimerasa III o promotores virales, potenciador de CMV, promotor de CMV, promotor de SV40 o promotores de LTR, por ejemplo derivados de MMTV (virus de tumor mamario del ratón; Lee y col., 1981) y otros promotores virales y secuencias activadoras que derivan, por ejemplo, de HBV, HCV, HSV, HPV, EBV, HTLV o VIH. Ejemplos de elementos regulables que permiten la expresión inducible en eucariotas son el operador de la tetraciclina en combinación con un represor apropiado (Gossen y col., 1994). La expresión de los ácidos nucleicos de VKORC1 tiene lugar preferentemente bajo el control de promotores específicos de tejidos. Los vectores de expresión se pueden utilizar para preparar polipéptidos VKORC1, sondas de ADN o ARN, o ARNsi o ARNsh.
En otro aspecto de la presente solicitud, el vector es un constructo genético de noqueo. La construcción de estos constructos y los métodos para obtener animales noqueados son conocidos por el especialista en la técnica, por ejemplo, a partir de las patentes de Estados Unidos 5.625.122; US 5.698.765; US 5.583.278 y US 5.750.825. Dichos vectores son por ejemplo útiles para generar células noqueadas y animales que a su vez pueden ser utilizados para identificar trastornos y enfermedades asociadas con la actividad alterada de VKORC1.
"Actividad alterada de VKORC1" tal como se utiliza aquí se refiere a un nivel de actividad y/o expresión de la proteína de VKORC1 que es inferior al nivel de actividad y/o expresión del control (tal como se ha definido anteriormente) determinado en un sujeto sano; los niveles de actividad respectivos se pueden determinar también en base al ensayo que se describe en el Ejemplo 7.
Una célula huésped, preferentemente una célula madre embrionaria no humana, contiene uno de los vectores mencionados anteriormente, preferentemente un vector de expresión o un constructo genético noqueado. La célula huésped puede ser cualquier célula adecuada para la expresión de polipéptidos de VKORC1 y/o ácidos nucleicos de VKORC1, preferentemente una célula HEK293-EBNA. Las células pueden ser células procariotas o eucariotas, células heterólogas o autólogas. Ejemplos de células procariotas son E. coli y ejemplos de células eucariotas incluyen células primarias de hepatocitos, células de levadura, por ejemplo Saccharomyces cerevisiae o células de insectos. Preferentemente, la célula huésped es una línea celular, por ejemplo, una célula COS tal como células COS-7 o líneas celulares de hepatocitos, tal como células HepG2. Además, la célula huésped es preferentemente una célula madre embrionaria no humana. Los métodos para seleccionar y cultivar células huésped y para que las células huésped expresen un polipéptido son generalmente conocidos por el especialista en la técnica. Los procesos para la transformación de células y/o células madre del mismo modo son conocidos por el especialista en la técnica e incluyen, por ejemplo, electroporación o microinyección. Las células huésped se pueden emplear, por ejemplo, en métodos de identificación de derivados de cumarina, para producir polipéptidos de VKORC1 y ácidos nucleicos de VKORC1, ARNsi y ARNsh, y para estudiar nuevos medicamentos, tales como derivados de cumarina que tienen la actividad y/o expresión de VKORC1.
En otro aspecto, la presente solicitud se refiere a la provisión de un mamífero transgénico no humano que contiene una célula huésped tal como se ha definido anteriormente, preferentemente una célula madre embrionaria no humana tal como se ha definido anteriormente. Generalmente, los animales transgénicos muestran una expresión tisular incrementada específica de los polipéptidos VKORC1 y/o de los ácidos nucleicos de VKORC1 y se pueden utilizar para el análisis de trastornos de la coagulación y la resistencia a warfarina, así como para el desarrollo y la evaluación de estrategias terapéuticas en dichos trastornos. Los animales transgénicos se pueden emplear además en la producción de polipéptidos VKORC1. El polipéptido producido por el animal puede ser enriquecido por ejemplo en un fluido corporal del animal.
Otro mamífero transgénico no humano que es transgénico para un polipéptido VKORC1 contiene al menos una anomalía de secuencia que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1 tal como se define detalladamente más abajo. El animal es preferentemente transgénico para el polipéptido VKORC1 de acuerdo con las SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27, y preferentemente la anomalía de la secuencia se selecciona del grupo compuesto de V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C. Estos animales transgénicos son útiles por ejemplo (1) para someter a prueba los derivados de la cumarina buscando la resistencia a la warfarina; (2) para identificar nuevos derivados de la cumarina que sean anticoagulantes eficaces en organismos que son resistentes o menos sensibles al tratamiento anticoagulante con las cumarinas conocidas en la técnica, tal como los pacientes con resistencia a la warfarina; y (3) como fuente de células que expresan el polipéptido VKORC1 y/o los ácidos nucleicos de VKORC1. Además, se pueden utilizar estos animales para identificar nuevos derivados de la cumarina.
Los métodos para la preparación de animales transgénicos, en particular de ratones transgénicos, son también conocidos por el especialista en la técnica a partir de DE 196 25 049 y US 4.736.866; US 5.625.122; US 5.698.765; US
5.583.278 y US 5.750.825 e incluyen animales transgénicos que se pueden producir, por ejemplo, por inyección directa de los vectores de expresión de acuerdo con la presente solicitud en embriones o espermatocitos o por inyección de los vectores de expresión en el pronúcleo del huevo fertilizado o por medio de la transfección de los vectores de expresión en células madre embrionarias o por transferencia nuclear en células receptoras apropiadas (Polites & Pinkert, 1994; Doetschman, in Pinkert, 1994, supra; Wood in Pinkert, 1994, supra; Monastersky in Pinkert, 1994, supra).
Dentro del significado del término "deficiencia asociada a VKORC1" se pretende englobar un trastorno o enfermedad que se asocia con la resistencia a la warfarina, es decir que el paciente muestra una susceptibilidad reducida o anulada al tratamiento con cumarina o sus derivados; preferentemente, la resistencia a la warfarina resulta de una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1. Además, el término engloba preferentemente también trastornos o enfermedades asociadas con un nivel de actividad y/o expresión de VKORC1 que difiere significativamente de la condición en pacientes sanos, preferentemente la expresión del polipéptido VKORC1 y/o su actividad se reduce significativamente o anula, lo que se puede determinar por ejemplo mediante medida del tiempo de la protrombina, por ejemplo por el protocolo del coeficiente internacional normalizado (INR). Dicha deficiencia asociada a VKORC1 puede ser provocada por una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1 o en el ácido nucleico de VKORC1, tal como se describe detalladamente más abajo. Además, cuando el nivel de expresión y/o de actividad del polipéptido VKORC1 o del ácido nucleico de VKORC1 se reduce o incluso se anula completamente, la gamma-carboxilación de las proteínas dependientes de la vitamina K también puede verse alterada. Por tanto, en este contexto, el término "deficiencia asociada a VKORC1" engloba también enfermedades y/o trastornos seleccionados de entre la deficiencia múltiple familiar del factor, trastornos o enfermedades asociadas a una coagulación reducida de la sangre, tal como hemofilia, y trastornos asociados a la calcificación vascular reducida, enfermedades y/o trastornos asociados con la gammacarboxilación alterada de las proteínas dependientes de la vitamina K.
Se puede concebir también que el nivel de expresión y/o actividad del polipéptido VKORC1 será creciente con respecto a la condición en pacientes sanos. Dichas deficiencias que están englobadas también en el término "deficiencia asociada con el VKORC1" pueden ser causadas por una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1 y/o en el gen correspondiente. Además, cuando el nivel de expresión y/o de actividad del polipéptido VKORC1 o del ácido nucleico de VKORC1 aumenta, la gamma-carboxilación de las proteínas dependientes de la vitamina K también puede verse facilitada. Así, en este contexto, el término "deficiencia asociada con VKORC1" puede comprender además deficiencias seleccionadas de entre enfermedades o trastornos asociados a un aumento de la coagulación de la sangre, incluidos los pacientes que padecen de trombos y/o pacientes con alto riesgo de desarrollar trombos, preferentemente debido a una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1 o en su gen, enfermedades y/o trastornos asociados con la gamma-carboxilación mejorada de las proteínas dependientes de la vitamina K.
También es posible que una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1 y/o en el gen correspondiente pueda aumentar la susceptibilidad al tratamiento con cumarina y sus derivados en un paciente que posee dicha anomalía de secuencia. Como consecuencia, los pacientes que reciben un tratamiento con cumarina pueden mostrar valores muy bajos de coagulación sanguínea. Se pretende también que dichos trastornos asociados a la mayor sensibilidad al tratamiento con cumarina estén englobados por el término "deficiencia asociada con VKORC1". Los pacientes que portan un gen VKORC1 con una mutación de parada sufren de dicha deficiencia asociada con una sensibilidad incrementada a la cumarina.
Se dirige una sonda de ADN o de ARN contra el ácido nucleico de VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente contra el ácido nucleico de VKORC1 seleccionado de entre las SEQ ID. NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28. Una sonda es una molécula de ácido nucleico que permite la detección de un ácido nucleico de VKORC1 contra el que se dirige. La sonda tiene una secuencia que se hibrida a la secuencia diana, es decir el ácido nucleico de VKORC1. Preferentemente, la sonda permite la detección específica del ácido nucleico de VKORC1, es decir, al menos en condiciones astringentes de hibridación, que no se une a moléculas distintas del ácido nucleico particular de VKORC1. Sondas apropiadas son, por ejemplo, fragmentos de ADN o de ARN con una longitud de aproximadamente 10 a aproximadamente 492 nucleótidos, preferentemente con una longitud de aproximadamente 10 a aproximadamente 400 nucleótidos, preferentemente alrededor de 10 a alrededor de 250 nucleótidos, en particular con una longitud de aproximadamente 10 a aproximadamente 150 nucleótidos, en particular con la longitud total de la secuencia codificante, secuencia que puede proceder de los polipéptidos VKORC1, preferentemente seleccionada del polipéptido VKORC1 de acuerdo con las SEQ. ID. NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27 o tomada directamente del ácido nucleico VKORC1, preferentemente seleccionada de entre las SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28. Las sondas pueden contener además una etiqueta adecuada para la detección directa o indirecta tal como la biotina, una etiqueta fluorescente tal como la fluoresceína o una etiqueta radioactiva tal como [H]3 u otras etiquetas conocidas por el especialista. La detección puede llevarse a cabo por medio de métodos generalmente conocidos por el especialista, incluidas las técnicas de Northern blot y blotting de librerías de ADNc. La construcción de las sondas de acuerdo con la presente invención es conocida también por el especialista (véase la construcción de ácidos nucleicos descrita anteriormente). Dichas sondas se pueden utilizar por ejemplo con propósitos de diagnóstico y pueden comprender o componerse preferentemente de sondas adecuadas para la detección de una anomalía de secuencia tales como aquellas seleccionadas de las secuencias de acuerdo con las SEQ ID NO.: 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 14 y 94 .
Un cebador para PCR, preferentemente un conjunto de al menos dos cebadores para PCR, se dirige contra el ácido nucleico de VKORC1, preferentemente contra el ácido nucleico de VKORC1 de acuerdo con las SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28. Los cebadores apropiados son por ejemplo fragmentos de ADN con una longitud de aproximadamente 10 a aproximadamente 100 nucleótidos, preferentemente con una longitud de aproximadamente 15 a aproximadamente 50 nucleótidos, en particular con una longitud de 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, preferentemente alrededor de 30 nucleótidos. El diseño y la síntesis de dichos cebadores es conocida generalmente por un especialista en la técnica. Los cebadores pueden contener además sitios de restricción, por ejemplo adecuados para la integración de la secuencia amplificada dentro de los vectores, u otros adaptadores o secuencias colgadas, por ejemplo con una etiqueta tal como se describe en el apartado anterior. Por ejemplo, es posible preparar un diagnóstico basado en la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR), adecuada para la detección de anomalías de la secuencia de VKORC1, preferentemente basada en el ensayo descrito en el Ejemplo 9 (PCR ARMS).
Si se debe determinar la cantidad de VKORC1 expresado, se utilizarán los cebadores para PCR específicos de un ácido nucleico de VKORC1 con propósitos terapéuticos o de diagnóstico. Con este fin, se puede llevar a cabo la técnica de RT-PCR, preferentemente la RT-PCR cuantitativa, donde al aislar la totalidad o el ARNm de la muestra, el ARN es sometido a transcripción reversa en ADNc y es sometido posteriormente a una reacción de PCR utilizando los cebadores específicos definidos anteriormente. Esta técnica es bien conocida del especialista. Esto abre otra posibilidad para obtener los ácidos nucleicos descritos de VKORC1, por ejemplo mediante el aislamiento de un gen adecuado o de la librería de ADNc, por ejemplo de un banco de genes específicos del hígado o específicos de trastornos del hígado, con la ayuda de un cebador apropiado. Se proporciona en el Ejemplo 5 un conjunto preferente de cebadores para PCR y la condición para aislar un ácido nucleico de VKORC1. Ejemplos de cebadores preferentes para PCR contra la SEQ ID NO. 2 son los cebadores de acuerdo con las SEQ ID NO. 53 a 70 y se proporcionan en la Figura 8 las condiciones preferentes para utilizar estos cebadores para PCR.
El término "muestra" se refiere a un biomaterial que comprende una célula o un tejido adulto o fetal, preferentemente tejido o células, preferentemente aislados o derivados del corazón, riñón y pulmón, páncreas, cerebro, placenta y músculo esqueletal, así como sangre, preferentemente hepática. La muestra se puede aislar de un paciente o de otro sujeto por medio de métodos que incluyen métodos invasivos o no invasivos. Son bien conocidos por los especialistas los métodos invasivos y comprenden, por ejemplo, el aislamiento de la muestra mediante punción, eliminación quirúrgica de la muestra del cuerpo abierto o por medio de instrumentos endoscópicos. Los métodos mínimamente invasivos y no invasivos son conocidos también por el especialista en la técnica e incluyen, por ejemplo, la recogida de fluidos corporales tales como sangre, preferentemente por venipuntura, o de orina o heces. El término "muestra" puede englobar asimismo una librería genómica o de expresión, construida preferentemente en base a una muestra aislada procedente de un paciente, en cuyo caso se pueden utilizar técnicas para el aislamiento de ADNc que son bien conocidas por el especialista.
Una pequeña molécula de ARN interferente (ARNsi) y/o un ARN de horquilla corta (ARNsh) es dirigido contra el ácido nucleico de VKORC1, preferentemente contra una secuencia derivada de las SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27, o un ácido nucleico de acuerdo con las SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28, que permite reducir la estabilidad del ácido nucleico de VKORC1 y/o inhibir la traducción del ácido nucleico de VKORC1 en un cultivo celular o in vivo. Los ARNSi de doble hebra median el silenciamiento post-transcripcional, específico de las secuencias de la expresión de un gen mediante ARN de doble hebra. Los ARNsi tienen una estructura muy específica: ARN de doble hebra de 17 a 25, preferentemente 19, 20, 21, 22, 23, 24 o 25 nucleótidos con salientes en el extremo 3’ de 2 nucleótidos. Los ARNsi proceden habitualmente de moléculas de ARN de doble hebra más largos mediante clivaje enzimático pero los ARNsi pueden ser sintetizados también química o enzimáticamente fuera de las células y luego ser entregados a las células (por ejemplo, por transfección). Así, por medio del ARNsi o ARNsh la expresión de los genes correspondientes en las células puede ser reducida o incluso silenciada tanto in vivo como in vitro (McManus y col., 2002). Los ARNsh se componen de una primera parte del tallo que comprende (I) una secuencia de al menos 18, preferentemente al menos 19, especialmente al menos 20 nucleótidos que es complementaria de la secuencia de ARNm de un ácido nucleico de VKORC1, preferentemente una secuencia complementaria de la SEQ ID NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28; y (II) una segunda parte del tallo que comprende una secuencia de al menos 18, preferentemente al menos 19, especialmente al menos 20 nucleótidos que es suficientemente complementaria de la primera parte del tallo para hibridarse con la primera parte del tallo para formar un tallo dúplex; y (III) una parte en lazo que conecta las dos partes del tallo. La parte en lazo puede comprender al menos 4, preferentemente al menos 7, especialmente al menos 11 nucleótidos. Los ARNsi o ARNsh pueden incluirse asimismo en un vector que permite la expresión constitutiva de los ARNsi o ARNsh en la célula huésped a la transformación de la célula huésped (véase WO 03/006477). Las estrategias para el diseño de las secuencias de ARNsi o ARNsh -y métodos para construir y producir estas moléculas- son generalmente conocidos por el especialista en la técnica (véase McManus y col., supra). Las moléculas de ARNsi y ARNsh tal como se han definido anteriormente son útiles por ejemplo para la regulación terapéutica de la expresión genética de VKORC1 y para su inclusión en los métodos de identificación de los derivados de la cumarina, por ejemplo como control positivo para la acción de la cumarina. Ejemplos preferentes de secuencias de ARNsi se citan en las Figuras 6 y 7 y se seleccionan de entre las SEQ ID NO. 29, 20, 33, 34, 37, 38, 41, 42, 45, 46, 47, 50. La Figura 6 proporciona también los cebadores respectivos aguas abajo de estas moléculas de ARNsi que se pueden utilizar para la integración en vectores para que el ARNsi pueda expresarse en una célula focalizada a la expresión de ARNsi.
Como aproximación alternativa al silenciamiento de la actividad y/o expresión de VKORC1, la presente solicitud proporciona oligonucleótidos antisentido dirigidos contra el ácido nucleico de VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente de acuerdo con las SEQ. ID. NO. 2, 13, 18, 22, 26 y 28, preferentemente contra una secuencia procedente de las SEQ. ID. NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27 (Zheng & Kemeny 1995; Nellen & Lichtenstein, 1993).
En otro aspecto, un aptámero de ARN es dirigido contra un polipéptido VKORC1, preferentemente contra una secuencia de acuerdo con la SEQ. ID. NO. 1, aptámero de ARN que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido de VKORC1. Los aptámeros de ARN son agonistas o antagonistas eficaces de las proteínas que son dirigidas por los aptámeros, tal como se ha mostrado para el factor de coagulación IXa (Rusconi y col., 2002). Un aptámero, tal como se ha definido anteriormente, puede ser utilizado como anticoagulante mediante la reducción de la actividad de VKORC1 de una manera más ajustada que las cumarinas. Para someter a prueba los aptámeros, pueden ser añadidos a una reacción de VKORC1 y ser analizados por HPLC tal como se describe en el Ejemplo 7.
En otro aspecto, un anticuerpo reconoce específicamente y se une a un polipéptido VKORC1 tal como se ha definido más arriba, preferentemente un polipéptido VKORC1 de acuerdo con las SEQ. ID. NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27, o un fragmento del anticuerpo. El anticuerpo o fragmento de anticuerpo preferentemente es un anticuerpo policlonal o monoclonal, específico de los polipéptidos VKORC1. El anticuerpo o fragmento de anticuerpo se produce de acuerdo con métodos generalmente conocidos por un especialista en la técnica mediante la inmunización de un mamífero, por ejemplo un conejo, con un ácido nucleico de VKORC1, o con un polipéptido VKORC1 tal como se ha definido más arriba
o con partes del mismo con una longitud de al menos 6 aminoácidos, preferentemente con una longitud de al menos 8 aminoácidos, en particular con una longitud de al menos 12 aminoácidos, si es conveniente en presencia de, por ejemplo, el adyuvante de Freund y/o geles de hidróxido de aluminio (véase por ejemplo, Harlow & Lane, 1998). Los anticuerpos policlonales formados en el animal como consecuencia de una reacción inmunológica pueden ser aislados entonces fácilmente de la sangre de acuerdo con métodos generalmente conocidos y ser purificados, por ejemplo, por medio de la cromatografía en columna. Los anticuerpos monoclonales se pueden producir, por ejemplo, de acuerdo con el método conocido de Winter & Milstein (1991). Los anticuerpos se pueden utilizar por ejemplo para el diagnóstico de deficiencias asociadas con VKORC1. Además, los anticuerpos pueden ser útiles para aclarar las interacciones cumarina-VKORC1. Finalmente, los anticuerpos se pueden utilizar para aislar y/o purificar el polipéptido VKORC1 de una muestra de tejido o de célula aislada de un paciente.
Tal como se utiliza aquí, el término "anticuerpo" o "fragmento de anticuerpo" se entiende también en referencia a anticuerpos o partes de unión a antígeno de los mismos preparados por ingeniería genética y opcionalmente modificados, tales como, por ejemplo, anticuerpos quiméricos, anticuerpos humanizados, anticuerpos multifuncionales, anticuerpos bi- u oligo-específicos, anticuerpos monohebra, fragmentos F(ab) o F(ab)2 (véase, por ejemplo, EP 0 368 684 B1, US 4.816.567, US 4.816.397, WO 88/01649, WO 93/06213, WO 98/24884).
En otro aspecto, la presente solicitud proporciona un método de identificación de un derivado de cumarina que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente un polipéptido VKORC1 que tiene la secuencia seleccionada de entre las SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27, que comprende las etapas de:
I. proporcionar una célula huésped donde se ha introducido el ácido nucleico de VKORC1 o un vector que contiene el ácido nucleico de VKORC1;
II. expresar el polipéptido VKORC1 en la célula huésped;
III. administrar un derivado de cumarina candidato;
IV.
determinar la actividad del polipéptido VKORC1 (valor de actividad del candidato);
V.
comparar el valor de actividad del candidato con un valor de actividad de control; e
VI. identificar el derivado de cumarina candidato como un derivado de cumarina que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1, siempre que el valor de actividad del candidato sea significativamente diferente del valor de actividad del control.
La actividad determinada del polipéptido VKORC1 es la conversión dependiente de ditiotreitol de vitamina K-2,3-epóxido en vitamina K-quinona y se caracterizada porque el valor de actividad significativamente diferente es un valor de actividad del candidato que es significativamente más alto que el valor de actividad del control, tal como se ha descrito de forma más detallada anteriormente así como en el Ejemplo 7 y la Figura 10. Si esencialmente la misma concentración del derivado de cumarina candidato produce un porcentaje más bajo de vitamina K-epóxido convertido en vitamina K-quinona (producto/ sustrato + producto) que el correspondiente a la warfarina a esta concentración, es indicativo de que el derivado de cumarina candidato tiene un efecto inhibidor más fuerte que la warfarina, y viceversa.
Preferentemente, en el método de identificación de un derivado de cumarina tal como se ha definido anteriormente, el valor de actividad de control se determina mediante un método que comprende las etapas de:
A. proporcionar una célula huésped de acuerdo con la etapa (I);
B. expresar el polipéptido VKORC1 en la célula huésped; y
C. determinar la actividad del polipéptido VKORC1 (valor de actividad de control).
De forma especialmente preferente, en el método de identificación de un derivado de cumarina como se ha descrito anteriormente, se introduce al menos un compuesto adicional en la célula huésped, compuesto que se selecciona de entre el grupo consistente en vitamina K, citocromo B5, un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamilcarboxilasa, para la epoxidehidrolasa microsomal, para la calumenina o para la glutatión-S-transferasa. Los métodos para introducir ácidos nucleicos en células huésped han sido descritos en detalle más arriba. Preferentemente, los ácidos nucleicos se expresan bajo el control de un promotor constitutivamente activo o de un promotor que se puede activar específicamente en la célula huésped seleccionada.
Los métodos para identificar un derivado de cumarina son útiles para desarrollar nuevos derivados de cumarina que evitan al menos una de las limitaciones de la cumarina y de sus derivados conocidos en la técnica. Cuando se incluye un análisis de la cinética de coagulación sanguínea como ensayo individual en la determinación de la actividad del polipéptido de VKORC1, el método descrito anteriormente puede resultar útil para identificar los derivados de cumarina que median en la coagulación sanguínea más rápidamente que la cumarina y sus derivados conocidos en la técnica y/o que se metabolizan más rápidamente, de tal modo que la acumulación de cumarina y de sus derivados se puede prevenir o mejorar, reduciendo con ello el riesgo de sobredosis sustancialmente o incluso eliminándolo. Además, dicho método de identificación se puede combinar con otros ensayos de forma que puedan identificarse los derivados de cumarina que tienen un efecto más fuerte (más débil) sobre la actividad de VKORC1 y, por tanto, a su vez, sobre la coagulación sanguínea, derivados de cumarina que, en ensayos independientes, demuestran (1) ser metabolizados más rápidamente, de forma que se puede prevenir o mejorar la acumulación de cumarina y con ello reducir sustancialmente
o incluso eliminar el riesgo de sobredosis, (2) no provocar o provocar en menor medida la necrosis de la piel en pacientes o la embriopatía cuando se aplican durante el embarazo, y/o (3) ser metalizados más rápidamente o ser menos / más estables y/o verse menos afectados por otros medicamentos como el Fenobarbital o la amiodarona. Los ensayos adecuados para buscar dichas propiedades de los derivados de la cumarina, y que se deben combinar en un estudio con el método de identificación de un derivado de cumarina tal como se ha definido anteriormente, son bien conocidos por el especialista en la técnica.
Se entiende que el término "cumarina" significa 3-(acetonilbencil)-4-hidroxicumarina, es decir COUMADIN® o warfarina sódica.
Se entiende que el término "derivado de cumarina" engloba compuestos orgánicos o inorgánicos, péptidos, polipéptidos
o complejos de los mismos, siempre que ejerzan un efecto sobre la actividad y/o la expresión del polipéptido VKORC1, preferentemente un efecto que inhibe la actividad del polipéptido VKORC1, de forma especialmente preferente un efecto específico del polipéptido VKORC1, es decir que el derivado de cumarina no interactúa directamente con otras moléculas implicadas en la vía de la coagulación. Ejemplos de dichos compuestos son moléculas orgánicas que proceden de librerías de compuestos, preferentemente aquellas que han sido analizadas en cuanto a su actividad farmacológica. Debido a su interacción, los derivados de cumarina pueden influir en la actividad del polipéptido VKORC1 in vivo y/o in vitro e iniciar interacciones covalentes o no covalentes con ellas. Cuando el derivado de cumarina es un compuesto quiral, se entiende que "derivado de cumarina" engloba también las formas enantioméricas respectivas R-y L- del compuesto, como aquellas descritas en la WO 00/43003. En particular, el término "derivado de cumarina" se refiere a compuestos derivados de 4-hidroxicumarina, especialmente compuestos derivados de COUMADIN. De forma especialmente preferente, "derivado de cumarina" incluye también cualquier coagulante que inhiba la regeneración de vitamina K activa.
Se entiende que el término "derivado de cumarina candidato" engloba compuestos orgánicos o inorgánicos, péptidos, polipéptidos o complejos. Ejemplos de dichos compuestos son moléculas orgánicas que proceden de librerías de compuestos, preferentemente aquellas que han sido analizadas en cuanto a su actividad farmacológica. Preferentemente, el término se refiere a compuestos que están relacionados estructuralmente o que derivan de la 4hidroxicumarina, especialmente compuestos relacionados o derivados de COUMADIN. Si el derivado de cumarina candidato es un compuesto quiral, se entiende que las formas enantioméricas respectivas R- y L- del compuesto, como aquellas descritas en la WO 00/43003, están incluidas también en el término "derivado de cumarina candidato".
Un método para determinar una secuencia polipeptídica VKORC1 que conduce a un efecto de la cumarina ejercido sobre la actividad de VKORC1 comprende las etapas de:
(I)
proporcionar una célula que expresa el polipéptido VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente un polipéptido de acuerdo con las SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27, polipéptido VKORC1 que tiene al menos una anomalía de secuencia, preferentemente una anomalía de secuencia seleccionada de entre el grupo consistente en V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C;
(II)
administrar la cumarina o un derivado de la misma a la célula;
(III) determinar la actividad del polipéptido VKORC1 (valor de actividad de la anomalía de secuencia); y
(IV) comparar el valor de actividad de la anomalía de secuencia con el valor de actividad de la secuencia de control,
donde una desviación significativa del valor de la actividad de la anomalía de secuencia con respecto al valor de la actividad de la secuencia control indica que la anomalía de secuencia del polipéptido VKORC1 confiere el efecto de la cumarina ejercido sobre el polipéptido VKORC1. La actividad del polipéptido VKORC1 se puede determinar tal como se ha descrito en detalle anteriormente.
De forma especialmente preferente, en el método de determinación de la secuencia polipeptídica de VKORC1 se determina el valor de la actividad de la secuencia de control mediante un método que comprende las etapas de:
(I)
proporcionar una célula que expresa el polipéptido VKORC1, preferentemente un polipéptido de acuerdo con las SEQ ID NO. 1, 12, 17, 21, 25 y 27;
(II)
administrar la cumarina o un derivado de la misma a la célula;
(III) determinar la actividad del polipéptido de VKORC1 (valor de actividad de la secuencia de control).
La actividad determinada de VKORC1 es la conversión dependiente de ditiotreitol de vitamina K-2,3-epóxido en vitamina K-quinona y el valor significativamente diferente es un valor de actividad de la anomalía de secuencia que es significativamente más alto que el valor de actividad de la secuencia control. Se proporcionan más detalles más arriba así como en el Ejemplo 7 y la Figura 10. El método puede servir para identificar aquellos polipéptidos de VKORC1 que sean menos sensibles a la cumarina. Al introducir polipéptidos de VKORC1 con distintas anomalías de secuencia, este método permite la identificación de sitios del polipéptido que son críticos para la interacción de una cumarina y el VKORC1 sometidos a prueba. Dicho conocimiento será útil, por ejemplo, para diseñar nuevas cumarinas.
Es particularmente preferente en el método de determinación de una secuencia polipeptídica de VKORC1 que se introduzca al menos un compuesto adicional en la célula, compuesto que se selecciona de entre el grupo consistente en vitamina K, citocromo B5, y un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamil-carboxilasa, para la epoxidehidrolasa microsomal, para la calumenina o para la glutatión-S-transferasa.
Un polipéptido VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, preferentemente el polipéptido VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO. 1, contiene al menos una anomalía de secuencia que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido de VKORC1. De forma más preferente, el polipéptido VKORC1 es el polipéptido de acuerdo con la SEQ ID NO. 1 y la anomalía de secuencia se selecciona de entre el grupo consistente en V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C. En otro aspecto, la solicitud se refiere al polipéptido VKORC1 de Rattus norvegicus de acuerdo con la SEQ ID NO. 12 que tiene una anomalía de secuencia, preferentemente la anomalía de secuencia Y139C (416A>G). Otro aspecto de la solicitud se refiere a un ácido nucleico de Rattus norvegicus que codifica el polipéptido VKORC1 de Rattus norvegicus de acuerdo con la SEQ ID NO. 12 que tiene una anomalía de secuencia, preferentemente el ácido nucleico de VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO. 12 que tiene una anomalía de secuencia, preferentemente la anomalía de secuencia 416A>G. La secuencia de ácido nucleico de VKORC1 que contiene la anomalía 416A>G es la secuencia de ácido nucleico de acuerdo con SEQ ID NO. 14.
Dicho polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia se puede generar por métodos generalmente conocidos por el experto, incluyendo técnicas recombinantes y, por ejemplo, mutagénesis sitio-dirigida, o mediante aislamiento del polipéptido VKORC1 que tiene la al menos una anomalía de secuencia de una muestra obtenida de un paciente, preferentemente de un paciente que padece deficiencias asociadas con VKORC1. Se han descrito detalladamente más arriba los métodos para aislar proteínas de una muestra.
El polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1 se puede utilizar, por ejemplo, para generar anticuerpos que se unen específicamente a estos polipéptidos VKORC1. Estos anticuerpos a su vez se pueden utilizar para diagnosticar deficiencias asociadas con VKORC1.
El término "anomalía de secuencia" engloba adiciones, inserciones, deleciones, sustituciones de al menos un aminoácido, que resultan en una alteración de la secuencia polipeptídica de VKORC1, preferentemente de la secuencia polipeptídica de VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO:1. Asimismo están incluidas las adiciones, inserciones, deleciones, sustituciones de al menos un nucleótido que conducen a una secuencia alterada de aminoácidos codificada por la secuencia de ácido nucleico de VKORC1. También se incluyen los cambios de la secuencia de ácido nucleico de VKORC1 que conducen a un cambio en el marco de lectura de la secuencia del ácido nucleico.
Las anomalías de secuencia están indicadas en el código de aminoácidos con una sola letra, colocándose el aminoácido original a la izquierda del número que indica el número del aminoácido en la secuencia polipeptídica de acuerdo con la SEQ ID NO:1. El número a la derecha del número de aminoácido indica el aminoácido que sustituye al aminoácido original. Por ejemplo, la anomalía de secuencia V29L indica que en la posición 29 del polipéptido VKORC1 de SEQ ID NO.1, el aminoácido valina (V) ha sido sustituido por leucina (L). En caso de que la anomalía de secuencia tenga lugar en un polipéptido VKORC1 distinto del polipéptido VKORC1 de SEQ ID NO:1, el número en el código se refiere a la posición de la secuencia de acuerdo con la numeración de los aminoácidos en aquel otro polipéptido particular.
En otro aspecto, la presente solicitud proporciona un ácido nucleico de VKORC1 seleccionado de entre el grupo consistente en:
(a)
un ácido que codifica para el polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia, que ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1, donde el polipéptido VKORC1 es preferentemente el polipéptido de acuerdo con la SEQ ID NO. 1 y la anomalía de secuencia se selecciona de entre el grupo consistente en V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C.
(b)
una secuencia de ácido nucleico seleccionada de entre grupo compuesto de una secuencia de acuerdo con las SEQ ID NO. 3, 4, 5, 6, y 7, 14 y 94; y
(c)
una secuencia de ácido nucleico que, salvo por la degeneración del código genético, se hibridizaría al ácido nucleico definido en (a) o (b) y secuencia de ácido nucleico que codifica para el polipéptido que contiene al menos una anomalía de secuencia tal como se ha definido anteriormente.
Estos ácidos nucleicos por ejemplo son útiles para aislar los polipéptidos y ácidos nucleicos de VKORC1 que tienen dicha anomalía de secuencia, para producir sondas de ADN y/o ARN, para producir anticuerpos, para la construcción de animales transgénicos y animales noqueados, y para la inclusión en estudios para identificar los derivados de la cumarina.
Un vector contiene el ácido nucleico de VKORC1 presentando al menos una anomalía de secuencia tal como se ha definido anteriormente. Dichos vectores se pueden seleccionar de los vectores descritos detalladamente más arriba. Los métodos para construir dichos vectores se describen también más arriba. Dichos vectores son útiles por ejemplo para preparar las sondas descritas en el siguiente párrafo, especialmente en un contexto de diagnóstico.
Una sonda de ADN o ARN dirigida contra el ácido nucleico de VKORC1 contiene al menos una anomalía de secuencia tal como se define anteriormente, preferentemente una secuencia de ácido nucleico de acuerdo con las SEQ ID NO. 3, 4, 5, 6 y 7, 14 y 94. Los métodos para diseñar y producir dichas sondas de ADN y ARN han sido descritos ampliamente más arriba. Dichas sondas son útiles por ejemplo para detectar anomalías de secuencia en el gen de VKORC1 en una librería de genes, en una librería de expresión, o en una muestra aislada de un paciente, por ejemplo en el contexto del diagnóstico de deficiencias asociadas con VKORC1 y para la mutagénesis sitio-dirigida para producir ácidos nucleicos de VKORC1 que contienen una anomalía de secuencia. Las técnicas para estudiar librerías son generalmente conocidas por el experto.
Un cebador para PCR dirigido contra el ácido nucleico de VKORC1 contiene al menos una anomalía de secuencia tal como se define anteriormente. Los cebadores preferentes para PCR para detectar la anomalía de secuencia Y139C (416A>G) son los cebadores de acuerdo con las SEQ ID NO. 88 a 91 (véase el Ejemplo 9). Un especialista en la técnica sabe generalmente cómo diseñar los cebadores para PCR para que puedan ser utilizados para detectar otras anomalías de secuencia tales como aquellas mencionadas anteriormente (V29L, V45A, R58G, R98W, L128R) con el propósito de la invención. Los métodos para diseñar y producir dichos cebadores para PCR, las técnicas para llevar a cabo la amplificación por PCR han sido descritos ampliamente más arriba, siendo la mayor diferencia que los cebadores deben ser diseñados para que sólo aquellas secuencias de ácido nucleico de VKORC1 que contienen la anomalía de secuencia sean amplificadas específicamente, mientras los ácidos nucleicos nativos de VKORC1 y otras secuencias de ácido nucleico de VKORC1 que no contienen la anomalía de secuencia, tal como el ácido nucleico de VKORC1 de las SEQ ID NO. 2 quedan sin detectar. Dichos cebadores son útiles por ejemplo para detectar anomalías de secuencia en el gen de VKORC1 en una librería de genes, en una librería de expresión, o en una muestra aislada de un paciente, por ejemplo en el contexto del diagnóstico de deficiencias asociadas con VKORC1. Las técnicas para explorar librerías son generalmente conocidas por el experto.
En otro aspecto, la presente solicitud se refiere a un anticuerpo que reconoce específicamente y se une al polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia tal como se ha definido anteriormente, siendo preferentemente el polipéptido VKORC1 el polipéptido de acuerdo con la SEQ ID NO. 1 y seleccionándose la anomalía de secuencia del grupo compuesto de V29L, V45A, R58G, R98W, L128R, e Y139C, o un fragmento del anticuerpo. Los tipos de anticuerpos incluidos, los métodos para construir y producir estos anticuerpos y fragmentos de los mismos han sido descritos detalladamente más arriba. Estos anticuerpos son útiles por ejemplo para la detección y aislamiento del polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia tal como se ha definido anteriormente, en especial en el contexto del diagnóstico de deficiencias asociadas con VKORC1 y para la detección de la resistencia a la warfarina en humanos y roedores tales como las ratas.
Un diagnóstico comprende un compuesto seleccionado del grupo consistente en el ácido nucleico de VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia, preferentemente al menos una anomalía de secuencia seleccionada de entre V29L, V45A, R58G, R98W, L128R, e Y139C; la sonda de ADN o de ARN dirigida contra el ácido nucleico de VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia, el cebador para PCR dirigido contra el ácido nucleico de VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia, y un anticuerpo dirigido contra el polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia; todos ellos definidos anteriormente. En caso de que la deficiencia asociada con VKORC1, se deba a, o tenga correlación con una anomalía de secuencia, es el principio de diagnóstico que se debe utilizar para la detección de aquella anomalía de secuencia en una sonda obtenida de un paciente. Los métodos adecuados para utilizar el diagnóstico tal como se ha definido anteriormente se mencionan más abajo. Opcionalmente, el diagnóstico comprende además un aditivo y/o auxiliar farmacéuticamente aceptable. Dicho diagnóstico es útil para diagnosticar deficiencias asociadas con VKORC1 especialmente la resistencia a la warfarina.
Si por otra parte la deficiencia asociada con VKORC1 se debe diagnosticar en base a la detección del nivel de expresión del ARNm de VKORC1, ADNc de VKORC1 o polipéptido de VKORC1 en la muestra, estos niveles de expresión pueden ser determinados mediante métodos generalmente conocidos del especialista en la técnica. Ejemplos de dichos métodos para detectar la presencia de ARNm de VKORC1 incluyen el análisis por (Northern) blot de ARN, protección con nucleasa, hibridación in situ, PCR con transcriptasa reversa (RT-PCR; incluida la RT-PCR cinética cuantitativa). Los microarreglos de ADNc y de oligonucleótidos están incluidos también en estos métodos. Una librería de expresión procedente de un paciente puede ser estudiada también con un propósito de diagnóstico utilizando técnicas generalmente conocidas del experto. La presencia del polipéptido VKORC1 puede ser determinada por métodos generalmente conocidos del experto, algunos de los cuales se describen más abajo. Opcionalmente, el diagnóstico comprende además un aditivo y/o auxiliar farmacéuticamente aceptable.
Tal como se utilizan aquí, “aditivo” y “auxiliar” no están particularmente limitados, son conocidos generalmente por el especialista en la técnica y comprenden, por ejemplo, una solución salina fisiológica, agua desmineralizada, reactivos estabilizadores de proteína basados en glicerol o gelatina. Alternativamente, los ácidos nucleicos de VKORC1, sondas, cebadores o polipéptidos de acuerdo con la presente invención se puede liofilizar para su estabilización.
Un método para diagnosticar una deficiencia asociada con VKORC1 en un paciente comprende las etapas de:
I. amplificar una muestra de ADN obtenida del paciente o la transcripción inversa de una muestra de ARN obtenida del paciente en un ADN y amplificar el ADN; y
II. analizar el ADN amplificado de la etapa (I) para determinar al menos una anomalía de secuencia en una secuencia de ácido nucleico que codifica para el polipéptido VKORC1 o en una secuencia de aminoácido del polipéptido VKORC1;
donde la anomalía determinada de la secuencia indica que el paciente sufre una deficiencia asociada a VKORC1, preferentemente resistencia a la warfarina; preferentemente la anomalía de secuencia ejerce un efecto sobre la actividad del polipéptido VKORC1, preferentemente la anomalía de secuencia se selecciona de entre V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C.
Los métodos para obtener muestras de un paciente y para aislar ARN total o ARNm son bien conocidos por el especialista, algunos de los cuales han sido descritos más arriba. Las técnicas para la amplificación de ADN no están particularmente limitadas e incluyen técnicas PCR que han sido descritas también más arriba. De la misma manera, se han mencionado anteriormente técnicas para la transcripción inversa, y no están particularmente limitadas e incluyen la transcripción inversa por medio de protocolos convencionales y kits comercialmente disponibles que suelen emplear la transcriptasa inversa y cebadores oligo-dT. El análisis puede basarse también en el ADN genómico aislado de una muestra obtenida de un paciente.
Cuando se amplifica, el ADN se analiza con el fin de determinar al menos una anomalía de secuencia en una secuencia de ácido nucleico que codifica para el polipéptido VKORC1. Los métodos para analizar el ADN amplificado no están particularmente limitados. Preferentemente, el ADN amplificado se analiza por medio de una técnica seleccionada de entre el grupo consistente en análisis basado en PCR, utilizando preferentemente cebadores para PCR específicos de la anomalía de secuencia, análisis de digestión de restricción y análisis de secuenciación de ADN. En una realización preferente, el ácido nucleico que porta la anomalía de secuencia codifica para una secuencia de VKORC1 que tiene una anomalía de secuencia y se selecciona de entre el grupo compuesto de V29L (85 G>T), V45A (134 T>C), R58G (172 A>G), R98W (292 C>T) y L128R (383 T>G), Y139C (416 A>G). En una realización preferente del método de diagnóstico, el ADN amplificado codifica al menos una secuencia parcial del polipéptido VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO.1. Se proporciona en el Ejemplo 8 una forma de determinar una anomalía de secuencia que está asociada con una deficiencia asociada con VKORC1.
Se proporcionan secuencias de VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, que contienen las mutaciones 85 G>T, 134 T>C, 172 A>G, 292 C>T y 383 T>G en las SEQ ID NO.3 a 7 y se pueden utilizar como sondas para diagnosticar una deficiencia asociada con VKORC1 por medio del análisis basado en la técnica de hibridación de muestras de ácido nucleico obtenidas de un paciente.
Como alternativa, la expresión de VKORC1 se puede detectar a nivel del polipéptido VKORC1. Por tanto, un método para diagnosticar en un paciente la deficiencia asociada con VKORC1 comprende las etapas de:
I. proporcionar una muestra obtenida del paciente; y
II. detectar en la muestra un polipéptido VKORC1 con una anomalía de secuencia, utilizando el anticuerpo dirigido contra el polipéptido VKORC1 que tiene una anomalía de secuencia, tal como se ha definido más arriba,
donde la anomalía de secuencia determinada indica que el paciente padece una deficiencia asociada con VKORC1. Preferentemente, la anomalía de secuencia se selecciona de entre el grupo consistente en V29L, V45A, R58G, R98W, L128R e Y139C.
Ya se han descrito detalladamente métodos para obtener muestras. Los métodos para la detección del polipéptido VKORC1 con una anomalía de secuencia no están particularmente limitados, siempre que el método permita la detección específica de la proteína que porta la(s) anomalía(s) de secuencia. Ejemplos de dichos métodos incluyen preferentemente la detección inmunohistoquímica, inmunoblotting, preferentemente Western blotting, y ELISA del polipéptido, con particular preferencia con anticuerpos específicos del polipéptido VKORC1 con una anomalía de secuencia tal como se ha definido anteriormente. El análisis de anomalías de secuencia a nivel de la secuencia de aminoácidos no está particularmente limitado y se puede llevar a cabo por ejemplo por medio de los anticuerpos de VKORC1 que reconocen específicamente y se unen al polipéptido VKORC1 que tiene una o más anomalías de secuencia.
Preferentemente, los métodos de diagnóstico se utilizan para diagnosticar enfermedades y/o trastornos seleccionados de entre resistencia a la warfarina, deficiencia familiar múltiple del factor, trastorno o enfermedad asociada a la coagulación reducida o anulada de la sangre, tal como hemofilia y trastornos asociados a la calcificación vascular reducida, enfermedades y/o trastornos asociados a la gamma-carboxilación alterada de las proteínas dependientes de la vitamina K.
Además, los métodos de diagnóstico se pueden utilizar también para diagnosticar trastornos y enfermedades asociadas a un aumento de la coagulación sanguínea, incluyendo pacientes y/o pacientes con un alto riesgo de desarrollar un trombo debido a una anomalía de secuencia en el polipéptido VKORC1 o en su gen, enfermedades y/o trastornos asociados con la gamma-carboxilación mejorada de las proteínas dependientes de la vitamina K.
En otro aspecto, la presente solicitud proporciona un método para identificar un derivado de cumarina que ejerce un efecto inhibidor sobre la actividad de un polipéptido VKORC1 con al menos una anomalía de secuencia, el cual comprende las etapas de:
I. proporcionar una célula que expresa el polipéptido VKORC1, preferentemente un polipéptido codificado por una secuencia seleccionada de entre el grupo consistente en 3, 4, 5, 6, 7, 14 y 94;
II. administrar un derivado de cumarina candidato a la célula;
III. determinar la actividad del polipéptido VKORC1 (valor de actividad de la anomalía de secuencia); y
IV.
comparar el valor de actividad de la anomalía de secuencia con el valor de actividad de la secuencia de control,
V.
identificar el derivado de cumarina candidato como derivado de cumarina que ejerce un efecto inhibidor sobre la actividad de un polipéptido VKORC1, cuando la administración del derivado de cumarina candidato resulta en un valor de actividad de la anomalía de secuencia que es significativamente más bajo que el valor de actividad de la secuencia de control.
De forma especialmente preferente, el valor de actividad de la secuencia de control se determina por medio de un método que comprende las etapas de:
I.
proporcionar una célula que expresa el polipéptido VKORC1 de la reivindicación 1, preferentemente un
polipéptido de acuerdo con la SEQ ID NO:1 ó 12;
II.
administrar cumarina a la célula;
III.
determinar la actividad del polipéptido VKORC1 (valor de actividad de la secuencia de control).
La actividad del polipéptido VKORC1 se puede determinar tal como se describe detalladamente más arriba, y se puede adoptar el método a partir del método descrito en el Ejemplo 7. Dicho método de identificación de un derivado de cumarina sirve para identificar derivados de cumarina que se pueden utilizar como anticoagulantes en pacientes con resistencia a la warfarina.
En otro aspecto, la presente solicitud proporciona un método de identificación de un derivado de cumarina que es toxicológicamente eficaz en roedores resistentes a la warfarina, el cual comprende las etapas de:
I. proporcionar un roedor resistente a warfarina;
II. administrar un derivado de cumarina candidato al roedor;
III. determinar la toxicidad del derivado de cumarina candidato sobre el roedor (valor de toxicidad del derivado de cumarina candidato);
IV.
comparar el valor de toxicidad del derivado de cumarina candidato con un valor de toxicidad de una cumarina control; e
V.
identificar el derivado de cumarina candidato como derivado de cumarina toxicológicamente eficaz, siempre que el valor de toxicidad del derivado de cumarina candidato sea significativamente más alto que el valor de toxicidad de la cumarina control,
Preferentemente, el roedor resistente a warfarina es un roedor transgénico para el polipéptido VKORC1 tal como se ha definido anteriormente, donde el polipéptido VKORC1 contiene al menos una anomalía de secuencia, que provoca la resistencia a la warfarina, preferentemente un polipéptido codificado por la secuencia de acuerdo con la SEQ ID NO:14
o una rata resistente a la warfarina comercialmente disponible o una rata salvaje capturada con resistencia a la warfarina. En particular, el polipéptido VKORC1 es el polipéptido de acuerdo con la SEQ ID NO:12 y la anomalía de secuencia se selecciona de entre el grupo consistente en V29L (85 G>T), V45A (134 T>C), R58G (172 A>G), R98W (292 C>T), L128R (383 T>G) e Y139C (416 A>G).
La muestra puede ser cualquier órgano, tejido, fluido corporal o sonda siempre que contenga ADN genómico o ARNm procedente de la rata que ha de someterse a prueba. Preferentemente, la muestra es sangre, tejido de la cola o del oído, orina o heces. Se proporcionan más detalles sobre el método en el Ejemplo 9.
Se han descrito roedores resistentes a warfarina (Kohn & Pelz, 1999) y se pueden obtener de suministradores comerciales (por ejemplo, The Federal Biological Research Center for Agriculture and Forestry, Institute for Nematology and Vertebrate Research, Toppheideweg 88, 48161 Münster, Alemania). En un aspecto preferente, el roedor resistente a warfarina es un roedor transgénico para el polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia, anomalía de secuencia que provoca la resistencia a la warfarina. En particular, el polipéptido VKORC1 que contiene al menos una anomalía de secuencia es el polipéptido codificado por la secuencia de ácido nucleico de acuerdo con las SEQ ID NO:3 a 7, y 15, y la anomalía de secuencia se selecciona de entre el grupo consistente en V29L (85 G>T), V45A (134 T>C), R58G (172 A>G), R98W (292 C>T), L128R (383 T>G) e Y139C (416 A>G). Se han descrito anteriormente los métodos para generar el roedor, en particular ratones transgénicos para los polipéptidos de VKORC1 enumerados.
El uso de cebadores para PCR de acuerdo con las SEQ ID NO. 88 a 91 puede determinar si una rata tiene o no un genotipo de resistencia a la warfarina en una muestra obtenida de una rata.
La administración de cumarina y sus derivados no está particularmente limitada. Las composiciones toxicológicamente eficaces que contienen típicamente cumarina (warfarina) se formulan como composiciones granulares de cebo que contienen aproximadamente de 50 a 300 ppm, preferentemente alrededor de 250 ppm, de cumarina y sus derivados. El cebo se formula típicamente con un 0,5% hasta un 2,5% de concentrado de warfarina en un ligante adecuado, tal como aceite de maíz. Cuando se utiliza aceite de maíz como ligante, puede estar presente en una cantidad de aproximadamente un 0,5% hasta aproximadamente un 2% de la composición total. El ligante y la warfarina se mezclan entonces, por ejemplo, con un producto basado en cereales, harina de maíz, avena arrollada, alimentos mixtos para animales y productos similares conocidos en la técnica. La administración, es decir la cantidad, formulación, frecuencia y duración de la administración, puede seguir protocolos estándar para evaluar la toxicidad de la warfarina en los roedores, preferentemente sigue protocolos estándar para evaluar el valor de dosis letal 50 (LD50) para determinado veneno que ha de someterse a prueba, todo ello generalmente conocido por el especialista y descrito en el Ejemplo 9.
Para que el derivado de cumarina sea toxicológicamente eficaz es conveniente que se exijan múltiples ingestiones para matar el roedor, de forma que no desarrolle rechazo al cebo. Por tanto, es preferible repetir cierto número de veces la administración de las composiciones con el derivado de cumarina candidato. Normalmente, los roedores empiezan a morirse después de cuatro o cinco dosis diarias de las composiciones. Además, puede resultar preferente suprimir el dolor en las ratas con el fin de reducir su sufrimiento durante los experimentos mediante la administración de agentes supresores del dolor generalmente conocidos por el especialista. La inclusión de supresores del dolor en la composición de cumarina y del derivado de la cumarina puede resultar además ventajosa para suprimir también la posibilidad de que los roedores desarrollen rechazo al cebo.
Después de la administración, se determina la toxicidad del derivado de cumarina candidato en el roedor, lo que resulta en el valor de toxicidad del derivado de cumarina candidato. Los métodos para determinar la toxicidad de los derivados de cumarina candidatos son generalmente conocidos por el especialista e incluyen el análisis de la LD50, análisis de la coagulación sanguínea mediante la determinación del tiempo de protrombina, por ejemplo, por medio del protocolo del coeficiente internacional normalizado (INR). El valor determinado para la toxicidad del derivado de cumarina candidato se compara entonces con un valor apropiado de toxicidad de la cumarina control determinado en base a someter un espécimen diferente de roedor resistente a la warfarina al mismo tratamiento pero cambiando la administración del derivado de cumarina por la administración de una composición estándar de cumarina para roedores a la que los roedores son resistentes, comúnmente utilizada para el control de plagas. Se utilizan para el control las mismas condiciones experimentales descritas anteriormente para la administración del derivado de cumarina candidato. Cuando el valor de toxicidad del derivado de cumarina candidato es igual o, en particular, significativamente más alto estadísticamente que el valor de toxicidad de la cumarina control, el derivado de cumarina candidato representa un derivado toxicológicamente eficaz de la cumarina.
Una composición para matar roedores comprende una cantidad toxicológicamente eficaz de los derivados de cumarina identificados por el método descrito anteriormente. La formulación de las composiciones de cebo que contienen cumarina y su derivado de cumarina han sido descritas más arriba. Una formulación típica tiene los constituyentes siguientes: % de ingredientes: soporte de grano 94%; aceite de maíz 1,0%, cumarina o concentrado del derivado de cumarin (0,5%) 5,0; total 100,0%.
Una composición coagulante farmacéutica comprende un compuesto seleccionado de entre el grupo consistente en el polipéptido VKORC1, el ácido nucleico del VKORC1, la proteína de fusión tal como se ha definido anteriormente, el vector tal como se ha definido más arriba, la célula huésped tal como se ha definido anteriormente, opcionalmente combinada con un soporte farmacéuticamente aceptable.
Un método para tratar un paciente con necesidad de dicho tratamiento comprende la etapa de administrar al paciente una cantidad terapéuticamente eficaz de la composición coagulante farmacéutica. Se puede utilizar el método para tratar a un paciente que sufre de deficiencia asociada con VKORC1.
Una composición farmacéutica anticoagulante comprende un compuesto seleccionado de entre el grupo consistente en el ARNsi y/o ARNsh tal como se han definido anteriormente, el ADN o ARN antisentido tal como se ha definido más arriba, el aptámero de ARN tal como se ha definido anteriormente, el anticuerpo tal como se ha definido más arriba, opcionalmente combinada con un soporte farmacéuticamente aceptable.
Un método para tratar a un paciente con necesidad de dicho tratamiento comprende la etapa de administrar al paciente una cantidad terapéuticamente eficaz de la composición farmacéutica anticoagulante.
La presente invención se refiere a utilizaciones de un polipéptido VKORC1 o un ácido nucleico de VKORC1 para la gamma-carboxilación de polipéptidos dependientes de la vitamina-K, así como a los métodos respectivos. Preferentemente, el polipéptido dependiente de la vitamina-K gamma carboxilado es un polipéptido seleccionado de entre el grupo consistente en el factor de coagulación sanguínea II, VII, IX, X, proteína C, proteína S, proteína Z, proteína de matriz gla y la osteocalcina. En una realización preferente, se utiliza el VKORC1 en combinación con al menos un compuesto adicional preferentemente en un contexto celular, compuesto adicional que está seleccionado de entre el grupo compuesto de vitamina K, citocromo B5, y un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamilcarboxilasa, para la epoxidehidrolasa microsomal, para la calumenina o para la glutatión-S-transferasa.
A continuación la invención se ilustra con la ayuda de las figuras y los ejemplos, sin que la invención se limite a los mismos.
Ejemplos
Ejemplo 1: Caracterización de la región genómica candidata
Se ha mapeado el locus para la deficiencia combinada del factor de coagulación dependiente de la vitamina K de tipo 2 (VKCFD2) con la región pericentromérica del cromosoma 16 entre los marcadores D16S3131 y D16S419 [Fregin y col., 2002]. Esta región comprende aproximadamente 20 Mb. Los genes responsables de la resistencia a la warfarina en ratas (Rw) y ratones (War) habían sido mapeados en el cromosoma 1 [Kohn y col., 1999] y el cromosoma 7 [Wallace, 1976; Greavses & Ayres, 1967] en estrecha conexión con el gen de cadena ligera 2 de miosina (Myl2). El ortólogo humano de Myl2, HUMMLC2B, se localiza en el cromosoma 16p11 dentro de la región candidata de VKCFD2 y forma parte de un grupo de enlace de genes conservados. En base a esta sintenia y a consideraciones bioquímicas, se plantea la hipótesis de que VKCFD2 y la resistencia a la warfarina pueden deberse a mutaciones alélicas del mismo gen. Si es así, esto reduciría el intervalo crítico en humanos a una región de aproximadamente 4,5 Mb entre el gen receptor de interleucina 4 (IL4R) y el gen de cadena alfa M integrina (ITGAM) en el brazo corto del cromosoma 16 (Fig. 1).
De acuerdo con el montaje del genoma, esta región contiene 141 genes Ensembl con aproximadamente 1.000 exones. De entre estos genes, se anotaron como conocidos 117. Muchos de estos genes se pudieron excluir de otro análisis debido a que su función estaba bien establecida y obviamente no relacionada con las etapas metabólicas del ciclo de la vitamina K. Por otra parte, se incluyen los genes aguas arriba y aguas abajo de esta región, los cuales se consideraban como candidatos funcionales en el estudio de la mutación.
Ejemplo 2: Estudio de la mutación
Utilizando ADN genómico procedente de dos sujetos con VKCFD2 y tres con WR, se inició un estudio sistemático de la mutación mediante secuenciación comparativa de los genes candidatos restantes. Se han descrito anteriormente los datos clínicos de las familias con VKCFD2 [Oldenburg y col., 2000]. Se determinaron los pacientes resistentes a la warfarina debido a su respuesta anormal a la administración oral de warfarina durante el tratamiento o la prevención contra la trombosis. Los pacientes C y E son casos esporádicos. El paciente D tiene dos hermanos que padecen también de resistencia a la warfarina. Los pacientes C y D necesitaron aproximadamente 150-250 mg de warfarina por semana para conseguir un rango terapéutico de anticoagulación oral, mientras que el paciente E no mostró ninguna respuesta. Todos los pacientes dieron su consentimiento informado antes de su participación.
Sorprendentemente, se encontraron mutaciones de sentido erróneo en un gen de función desconocida en todos los sujetos con VKCFD2 y WR estudiados (Fig. 2). Este gen (IMAGE3455200) abarca una región genómica de 5.126 pb y comprende tres exones que codifican para una proteína de 163 aminoácidos. Se denominó proteína 1 de reciclaje de vitamina K-epóxido (VKORC1). Se descubrió que ambos pacientes con VKCFD2 no relacionados y sus hermanos afectados albergaban la misma mutación de un punto homocigoto en el tercer exón (292 C>T) mientras que se descubrió que los padres eran heterocigotos. La mutación se debe a la sustitución de arginina por triptófano en el residuo 98 de los aminoácidos (R98W). Las familias son de origen alemán y libanés. Los haplotipos en la región de homocigosidad alrededor del gen mutado eran diferentes en ambas familias, indicando eventos independientes de mutación. En los pacientes con WR, se descubrieron tres mutaciones heterocigotas diferentes conduciendo a una sustitución de valina por leucina (paciente C: V29L), una sustitución de arginina por glicina (paciente D: R58G) y un intercambio de leucina por arginina (paciente E: L128R). La mutación R58G es compartida por los dos hermanos afectados del paciente con índice D. No existían mutaciones de sentido erróneo en los 384 cromosomas de control. La secuenciación de los cromosomas de control reveló dos polimorfismos de un solo nucleótido no sinónimos (C43C; L120L).
Se obtuvieron secuencias del genoma y su anotación de NCBI, UCSC y Ensembl. Se diseñaron cebadores para el estudio de la mutación por medio del software Primer3 integrado en una rutina, el ExonPrimer, para permitir el diseño automático del cebador. Para el estudio de la mutación, se amplificaron exones con cebadores intrónicos y se analizaron fragmentos amplificados mediante secuenciación directa con el kit de secuenciación BigDye Terminator Cycle (ABI). Se podía disponer de las secuencias de cebadores mediante solicitud. Se realizaron predicciones de la topología por medio de TMPRED y TMHM.
Ejemplo 3: Homología y estructura proteica
Un ortólogo del gen VKORC1 estaba presente en los ratones (NM_178600) y los ortólogos en ratas y en Fugu rubripes se establecieron por medio de búsquedas de homología y RT-PCR (Fig. 3). Las proteínas correspondientes comparten del 79% al 84% de identidad con la proteína humana. Las búsquedas en la base de datos no mostraron homología con un gen conocido ni tampoco con ningún dominio proteico caracterizado. Los programas de predicción de la topología anticiparon tres dominios transmembrana (TM). El primer TM se sitúa entre los residuos 10 y 29 en todos los programas ensayados. Las predicciones son discordantes para el segundo y el tercer TM, que están localizados entre los aminoácidos 100 y 150. El servidor PSORTII predijo una señal de retención en la membrana del ER (KKXX o KXKXX) en la posición 159-163 del VKORC1 humano con una probabilidad del 67% [Jackson y col., 1990]. La secuencia de consenso estaba presente también en las demás proteínas de VKORC1. Esto coincide con el emplazamiento probable del complejo de VKORC1 dentro del sistema de membrana del RE [Cain y col., 1997].
Las búsquedas Tblastn con VKORC1 detectaron un gen homólogo humano (BC027734) y de ratón (AK009497) que mostraban cada uno un 50% de identidad de proteína. Ambos ARNm se predijeron erróneamente para codificar para proteínas que no muestran homología con VKORC1. La proteína humana predicha empieza en la tercera metionina. La secuencia de ARNm de ratón es incompleta con una proteína predicha en un marco de lectura diferente. Se estableció el ADNc completo en ratón así como en Fugu rubripes y parcialmente en rata. Estas proteínas se designaron proteína 1 de tipo VKORC1 (VKORC1L1). Las proteínas humana, de ratón y de rata VKORC1L1 comparten aproximadamente un 84% de identidad entre sí y aproximadamente un 50% de identidad con las proteínas de VKORC1 correspondientes. Se detectó además una proteína homóloga en Xenopus laevis (AAH43742) y, con una homología más débil (1e-14), en Anopheles gambiae (EAA06271). Tres análisis sugirieron que ambas de estas proteínas son ortólogas al gen VKORC1.
Ejemplo 4: Análisis de la expresión
Parece que VKORC1 se expresa ampliamente. La entrada correspondiente en UniGene contiene más de 100 ESTs en varios tejidos. La expresión de VKORC1 en tejidos humanos fetales y adultos se examina por análisis Northern blot. Con este fin, los Northern blots de múltiples tejidos humanos (Fetal Blot 1, Stratagene; Human 12-Lane, BD Clontech) contenían 2 !g de poli(A)+-ARN. Se radioetiquetó ADNc humano de longitud completa de VKORC1 utilizando el sistema de etiquetado de ADN con cebadores aleatorios (Invitrogen Life Technologies) y se hibridizó utilizando High-Performance Hybridization Solution miracleHyb (Stratagene). Para la hibridación de control, se utilizó una sonda de �actina suministrada con el Northern blot de múltiples tejidos.
Se pueden observar los niveles más altos de expresión de VKORC1 en hígado fetal y de adulto (Fig. 4). Se observaron también altos niveles de expresión en corazón, riñón y pulmón fetales, así como en corazón y páncreas adultos. El cerebro fetal, placenta adulta y músculo esqueletal mostraron niveles intermedios de expresión. Se detectaron niveles menores de expresión en cerebro, pulmón y riñón adultos.
Ejemplo 5: Clonación de VKORC1 y construcción de los vectores de expresión
La amplificación de la secuencia de codificación completa de VKORC1 se realizó a partir de ADNc de hígado y riñón humanos (Marathon-Ready cDNA, BD Biosciences Clontech) con los siguientes cebadores incluidos los sitios de segmentación para HindIII y EcoRI:
VKORC1-HindIII-F: ATTAAGCTTCACCATGGGCAGCACCTGGGGGAGCCCT (SEQ ID NO:53);
VKORC1-EcoRI-R: ATTGAATTCCGTGCCTCTTAGCCTTGCCCTG (SEQ ID NO:54).
Se clonó el producto en el vector pBluescript II (Stratagene) que se segmentó con las enzimas de restricción correspondientes y se comprobó por secuenciación directa. Para los experimentos de inmunocitoquímica, se volvió a clonar el inserto en vectores de expresión de mamíferos pEGFP-N1 (BD Biosciences Clontech) y pcDNA3.1/myc-His (Invitrogen).
Para los estudios de expresión, el ADNc de VKORC1 se clonó en el vector pcDNA3 (Invitrogen) después de la amplificación con los cebadores VKORC1-pcdna3-F: GGGCGGAAGCTTGAGATAATGGGCA (SEQ ID NO:92) y VKORC1-pcdna3-R: GCTTGAATTCAGGGCTCAGTGC (SEQ ID NO:93). Se realizó la mutagénesis por medio del kit de mutagénesis QuikChange (Stratagene). Se volvieron a clonar los ADNc mutados y de tipo salvaje para la expresión en pCEP4 (Invitrogen) utilizando los sitios HindIII y Xhol. Se comprobaron todas los constructos por secuenciación.
Ejemplo 6: Cultivo celular, transfección transitoria e inmunocitoquímica y localización subcelular
A partir de experimentos de fraccionación bioquímica, se sabe que la actividad de VKORC1 se purifica con la fracción microsómica de membrana [Cain y col., 1997]. Además, se ha localizado la gamma-glutamil-carboxilasa en la membrana del retículo endoplásmico por inmunocitoquímica [Presnell, 2002#31]. Con el fin de estudiar la localización subcelular del VKORC1 humano, se generaron constructos de la proteína de fusión de VKORC1 etiquetada con el epítopo GFP y myc para experimentos de transfección transitoria de células COS-7. Se utilizaron anticuerpos primarios contra las etiquetas con epítopos y anticuerpos secundarios etiquetados con fluorocromo para visualizar las proteínas de fusión. Un anticuerpo contra la proteína específica del RE, la calnexina, sirvió de control. Con este fin se mantuvieron células COS-7 (DSMZ, Braunschweig) en medio Eagle modificado por Dulbecco con un 10% de suero de ternera fetal. Se colocaron las células sobre placas recubiertas de vidrio en placas de seis pocillos y, después de 18-24 horas en cultivo, se transfectaron con los constructos del vector de expresión utilizando Effectene (QIAGEN) de acuerdo con las especificaciones del fabricante. Tras 48-60 horas más de cultivo, se lavaron las células con PBS y se fijaron en un 70% de acetona / 30% de metanol a -20ºC durante 15 minutos. Después de la fijación, las células se permeabilizaron en PBS, un 0,1% de Nonidet P-40 (SIGMA N-6507), y luego se bloquearon con PBS, un 2% de BSA y un 0,1% de NP-40 a 37ºC. Los anticuerpos primarios, Living Colors A.v. (JI-8) (BD Biosciences Clontech), anticuerpo anti-myc (Invitrogen) y anti-calnexina (SIGMA) se diluyeron (1:100) en la solución bloqueante y se incubaron durante 45 minutos a 37ºC. Las plaquitas recubiertas se lavaron en PBS, un 0,1% de NP-40 durante 30 minutos. Se utilizaron los mismos procedimientos de incubación y lavado para los anticuerpos secundarios, es decir, anti-ratón-IgG-FITC (SIGMA) y anticonejo-IgG F(ab')2 fragmento-Cy3 (SIGMA). Las placas recubiertas se contratiñeron con DAPI (1:500) durante 1 minuto, se lavaron con agua desionizada, se montaron en placas utilizando Vectashield (Vector) y se visualizaron por medio de un microscopio de fluorescencia Leica.
La inmunofluorescencia verde de las proteínas de fusión de VKORC1 decoraba las estructuras de tipo malla del RE dentro del citoplasma y se co-localizaron perfectamente con la etiqueta del marcador de RE, calnexina (rojo) (Fig. 5).
Ejemplo 7: Ensayo para determinar la actividad enzimática de VKORC1
Se cultivaron células HEK293-EBNA (Invitrogen) en MEM con un 10% de FCS. Para cada experimento, se colocaron en placas 6 x 105 células en placas Petri de 94 mm. Después de 30 horas a 37ºC y un 5% de CO2, se realizó la transfección (20 !g de constructo de ADN por placa) utilizando el método de fosfato de calcio. Tras 40 horas a 35ºC y un 3% de CO2, se lavaron las células transfectadas (casi cultivadas hasta confluencia) en PBS, se cosecharon y se lisaron en 450 !l de imidazol 0,25 mM, (pH = 7,6), 0,5% de CHAPS. Se comprobó la eficacia de la transfección mediante secuenciación de los productos por RT-PCR de una parte alícuota de las células.
Se midió la actividad enzimática de VKOR con 30 !l de los extractos de células totales, que se resuspendieron en 500 !l de tampón A (0,25 mM imidazol, (pH = 7,6), 0,5% de CHAPS). Luego se añadieron 20 !l de DTT 125 mM con un minuto de incubación. Después se añadieron 5 !l de CaCl2 400 mM, y warfarina en 10 !l de DMSO (concentración final de 0-80 !M). La reacción empezó por la adición de 2 !l de vitamina K-2,3-epóxido (concentración final de 5 !M) y se incubó a 30ºC durante una hora. Se interrumpió la reacción con la extracción del sustrato (vitamina K-2,3-epóxido) y de los productos de reacción (vitamina K-quinona e hidroquinona) utilizando 1 ml de 2-propanol/hexano (3:2, volumen/volumen); se recogió el sobrenadante orgánico, se secó y se redujo en 50 !l de metanol y se analizó con una HPLC a 254 nm. La vitamina K-quinona se separó del epóxido por HPLC en columna C18 de fase inversa. Durante el procedimiento de extracción, la vitamina K-hidroquinona se oxidó cuantitativamente en forma de quinona. La producción de la HPLC se analizó automáticamente mediante el cálculo de la zona por debajo de la línea de extinción de cada pico. El porcentaje de conversión del sustrato se evaluó fijando la zona del pico de sustrato residual (epóxido) más el pico de producto (quinona) como 100 por ciento. Las mediciones se realizaron por duplicado y la actividad se da como porcentaje de sustrato convertido en quinona. Se preparó vitamina K-2,3-epóxido mediante oxidación de la vitamina Kquinona (Sigma-Aldrich) con H2O2. Se añadió warfarina (Sigma-Aldrich) en DMSO (< 1% en volumen).
La dosis-respuesta a la inhibición de la warfarina se midió a 5 hasta 80 !M de concentración final (Walin & Martin, 1985). Las células no transfectadas y mock-transfectadas mostraron baja actividad basal, lo cual demostraba la sensibilidad a la warfarina. La sobreexpresión de VKORC1 de tipo salvaje resultó en un estímulo de choque de la actividad de VKOR. La producción de vitamina K-quinona aumentó en 14 a 21 veces en comparación con las células no tratadas y mock-transfectadas. La actividad fue inhibida por la warfarina de forma dosis-dependiente (Figura 10).
Se determinó también la actividad de VKOR después de la transfección con constructos de VKORC1 mutado (Figura 10). La expresión recombinante de la mutación R98W observada en las dos familias de VKCFD2 aumentó sólo ligeramente la actividad de VKOR en las células HEK293. Los episodios espontáneos de sangrado y los altos niveles en suero de vitamina K-epóxido en estos pacientes sugieren que la eficacia del reciclaje de vitamina K se reduce drásticamente también in vivo (Oldenburg y col., 2000). Las cinco mutaciones de WR mostraron una actividad reducida de VKOR que oscilaba entre el 5% en la variante L128R y el 96% en la mutación V29L. Las mutaciones V45A, R58G e Y139C mostraron aproximadamente un 23%, 21% y 48% de actividad respectivamente (Tabla 1). La actividad reducida de VKOR asociada con la demanda más alta en vitamina K, así como la muerte por sangrado espontáneo se observó en ratas Rw heterocigotas y homocigotas (Martin y col., 1979, Thijssen & Pelz 2001, Fasco y col., 1983b). De forma similar, en nuestro sistema de expresión que imita condiciones homocigotas, las mutaciones de WR condujeron a una eficacia funcional más baja del complejo de VKOR. Mientras a nivel fenotípico todas las variantes de WR mostraron al menos una resistencia parcial hacia el efecto de anticoagulación de la warfarina, ambas proteínas de tipo salvaje y mutantes fueron sensibles a la warfarina in vitro. A concentraciones por encima de 20 !M, las mutaciones V29L e Y139C conservaron actividades de VKOR más altas que el tipo salvaje, mientras que en las mutaciones V45A, R58G, L128R, la actividad de VKOR cayó por debajo del límite de detección (Figura 10).
Ejemplo 8: Método para diagnosticar una anomalía de secuencia de VKORC1 (Ejemplo de Referencia)
Se aísla el ADN genómico del espécimen (paciente humano o mamífero) según los procedimientos estándar bien conocidos por el especialista. El ADN genómico del exón deseado (1-3) de VKORC1 se amplifica por PCR utilizando cebadores específicos que puede diseñar también el especialista. El producto de PCR se purifica entonces por medio, por ejemplo, de SAP/Exo (fosfatasa alcalina del camarón y exonucleasa) en condiciones estándar. El ADN purificado se somete entonces a procedimientos de secuenciación estándar tales como: adición de 0,3 !l de un cebador que es 10 pmol/!l (cebador hacia adelante o inverso) a 1 !l del producto purificado por PCR; seguido de la adición de 8 !l de DTCS-Mix (Beckman-Coulter) y 10,7 !l de agua, seguido de secuenciación del ciclo a
Primera fase
96ºC 60 segundos
Desnaturalización
95ºC 30 segundos
Alineamiento
Cebadores específicos (55-60ºC) 30 segundos
Alargamiento
60ºC 4 minutos
Después de la secuenciación del ciclo, sigue la purificación por precipitación:
•
añadir 2 !l de EDTA 100 Mm, 2 !l de NaOAc 5M (pH 4,8), 1 !l de Glycogen, agitar,
•
añadir 60 !l de etanol al 95%, agitar,
•
centrifugación a 13.000 g (10 min),
•
eliminar el sobrenadante,
•
lavar los gránulos con 180 !l de etanol al 70%
•
secar los gránulos,
•
reducir los gránulos en 35 !l de Solución de Carga de Muestra (SLS).
Después, las sondas se pipetean en una placa de microvaloración recubierta de una gota de aceite de parafina. Luego, sigue la separación en el secuenciador a 4,2V durante 60-120 minutos. Se analizan los datos en bruto y las secuencias se alinean con las secuencias de control utilizando el software CEQ 2000 XL (Versión 4.3.9, Beckman Coulter). Las diferencias entre las secuencias de control (preferentemente la secuencia de ácido nucleico genómico de VKORC1 o su secuencia de codificación según la SEQ ID NO:2) y el ADN secuenciado indican que la secuencia de las sondas representa un ácido nucleico de VKORC1 que contiene una anomalía de secuencia.
Ejemplo 9: Ensayo basado en PCR para determinar la resistencia a la warfarina en ratas (Ejemplo de Referencia)
Para determinar si una rata (Rattus norvegicus) es o no es resistente a la warfarina, es decir si la secuencia de codificación de VKORC1 de acuerdo con la SEQ ID NO.13 porta una mutación Y139C (416A>G), se empleó el siguiente ensayo basado en ARMS-PCR utilizando heces de rata como fuente de ADN genómico de rata.
El principio del ensayo consiste en incluir en la reacción PCR (1) un cebador para PCR (rVKORC1-innerF) que se hibridiza específicamente a la secuencia de ADN que contiene el alelo mutado 416G resistente a la warfarina y (2) otro cebador para PCR (rVKORC1-innerR) que se hibridiza específicamente a la secuencia de ADN de tipo salvaje que contiene el alelo de tipo salvaje 416A. Además, estos dos cebadores están orientados en dirección opuesta, de modo que se emparejan con uno de dos cebadores adicionales para PCR incluidos en la reacción. Estos últimos cebadores están localizados a distintas distancias en dirección a y en dirección opuesta a con respecto al sitio 416 y, como consecuencia, dependiendo de si el sitio 416 está mutado o no, el cebador rVKORC1-innerR o el cebador rVKORC1innerF se alineará y la reacción PCR resultará en ADN amplificado de un tamaño diferente, lo que indica el genotipo de la rata cuyo ADN ha sido analizado. En ratas de tipo salvaje, la reacción PCR resultará en una banda de 123 pb, mientras que en ratas homocigotas a la mutación 416G, la reacción PCR producirá una banda a 101 pb. Finalmente, en ratas con un genotipo heterocigota, la reacción PCR dará lugar a dos bandas, una banda a 101 y la otra a 123 pb.
El ADN genómico se aisló de las heces utilizando procedimientos estándar de aislamiento de ADN generalmente conocidos por el especialista. Se combinaron los siguientes componentes en una reacción PCR: 1 !l de ADN (rata), 1 !l de Betaína 5M (Sigma), 2 pmol de Cebador-outerF (1 !l de una dilución al 1:50), 2 pmol de Cebador-outerR (1 !l de una dilución al 1:50), 10 pmol de Cebador-innerF (1 !l de una dilución al 1:10), 10 pmol de Cebador-innerR (1 !l de una dilución al 1:10), 0,25 !l de Taq/Pfu-Polimerasa (1,25 U Taq (Invitrogen) y 0,25 U Pfu (Stratagene)), añadir 25 !l de tampón de PCR (1 ml de tampón de PCR contiene: 100 !l de 10 x tampón de PCR (Invitrogen), 160 !l de solución madre de nucleótidos (1,25 mM de dNTPs), 30 !l de MgCl2, 610 !l de agua destilada). Las condiciones de PCR fueron: 95ºC durante 3 min, seguido de 32 ciclos de 95ºC durante 20 segundos, 62ºC durante 20 segundos, y 70ºC durante 10 segundos. Finalmente, la reacción se incuba a 70ºC durante 3 minutos. Los productos de PCR se separaron por electroforesis en gel en un 3,5% de TAE-Agarosa-Gel con bromuro de etidio (10 !l de una solución madre al 1% para cada 100 ml). La electroforesis en gel se mantuvo durante 30 minutos a 130V.
Se utilizaron los siguientes cebadores:
•
rVKORC1-outerF: ATC CTG AGT TCC CTG GTG TCT GTC GCT G (SEQ ID NO:88),
•
rVKORC1-outerR: TCA GGG CTT TTT GAC CTT GTG TTC TGG C (SEQ ID NO:89),
•
cebador "rVKORC1-innerF" para PCR específico del alelo mutante 416G: TGA TTT CTG CAT TGT TTG CAT CAC CAC ATG (SEQ ID NO:90),
•
cebador "rVKORC1-innerR" para PCR específico del alelo de tipo salvaje 416A: CAA CAT CAG GCC CGC ATT GAT GGA AT (SEQ ID NO:91).
Para este ensayo se utilizaron ratas (Rattus norvegicus) con y sin resistencia a la warfarina. Los resultados de la PCR se muestran en la Figura 13. Las ratas de tipo salvaje mostraban una banda a 123 pb, las ratas homocigotas a la mutación mostraban una banda a 101 pb y, finalmente, las ratas con la mutación heterocigota mostraban dos bandas, una banda a 101 y la otra a 123 pb.
Consecuentemente, estos datos demuestran que este ensayo se puede emplear para determinar si determinada rata es
o no es resistente a la warfarina. Estos ensayos son muy versátiles con el fin de manejar el control de plagas en determinada región, ya que el conocimiento de la frecuencia de ratas resistentes a la warfarina es crítica para decidir qué pesticida puede ser empleado eficazmente. Si en determinada región predominan en gran medida las ratas resistentes a la warfarina, la warfarina y análogos de la misma resultan ser un medio inadecuado para matar las ratas. Sin embargo, si la frecuencia determinada de ratas resistentes a la warfarina es baja, se puede utilizar eficazmente la warfarina para combatir los roedores.
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<212> PRT
<213> Homo sapiens
<400> 1
5
<210><211><212> <213> 2 492 ADN Homo sapiens
<400>
2
5
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<400>
3
10
<210><211><212> <213> 4 492 ADN Homo sapiens
15
<400> 4
5
<210><211><212> <213> 5 492 ADN Homo sapiens
<400>
5
<210>
6
<211>
492
<212>
ADN
<213>
Homo sapiens
5
<400>
6
10
<210><211><212> <213> 7 492 ADN Homo sapiens
<400>
7
5
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<400>
8
10
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<400>
9
15
5
<210><211><212> <213> 10 176 PRT Homo sapiens
<400>
10
5
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<400>
11
5
<210><211><212> <213> 12 161 PRT Rattus norvegicus
<400>
12
5
<210><211><212> <213> 13 486 ADN Rattus norvegicus
<400>
13
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14
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486
<212>
ADN
<213>
Rattus norvegicus
5
<400>
14
10
<210><211><212> <213> 15 176 PRT Rattus norvegicus
<400>
15
5
<210><211><212> <213> 16 531 ADN Rattus norvegicus
<400>
16
5
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<400>
17
5
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<400>
18
5
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<400>
19
5
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<400>
20
5
<210><211><212> <213> 21 163 PRT Fugu rubripes
<400>
21
5
<210><211><212> <213> 22 492 ADN Fugu rubripes
<400>
22
10
<210><211><212> <213> 23 175 PRT Fugu rubripes
15
<400> 23
5
<210><211><212> <213> 24 528 ADN Fugu rubripes
<400>
24
5
<210><211><212> <213> 25 169 PRT Xenopus laevis
<400>
25
5
<210><211><212> <213> 26 510 ADN Xenopus laevis
<400>
26
5
<210><211><212> <213> 27 176 PRT Anopheles gambiae
<400>
27
5
<210><211><212> <213> 28 528 ADN Anopheles gambiae
<400>
28
<210> 29
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 1 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo de vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 29
<210> 30
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 2 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo de vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 30
<210> 31
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 1 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 31
<210> 32 <211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 2 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 32
<210> 33
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 3 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 33
<210> 34
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 4 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 34
<210> 35
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 3 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 35
<210> 36
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 4 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 36
<210> 37
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 5 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 37
<210> 38
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 6 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 38 <223> Cebador 5 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<210>
39
<211>
57
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<400> 39
<210> 40
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 6 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 40
<210> 41
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 7 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 41
<210> 42
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 8 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 42
<210>
43
<211>
57
<212>
ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 7 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 43
<210> 44
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 8 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 44
<210> 45
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 9 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 45
<210>
46
<211>
21
<212>
ARN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Secuencia 10 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens
(Hs_VKORC1)
<400> 46
<210> 47
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 9 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 47
<210> 48
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 10 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 48
<210> 49
<211> 21
<212> ARN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Secuencia 11 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 49 <223> Secuencia 12 de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<210>
50
<211>
21
<212>
ARN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<400> 50
<210> 51
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 11 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 51
<210> 52
<211> 57
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador 12 aguas abajo para la secuencia de ARNsi de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (Hs_VKORC1)
<400> 52
<210> 53
<211> 37
<212> ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador de PCR para la amplificación de la secuencia de codificación completa de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (VKORC1-HindIII-F)
<400> 53
<210>
54
<211>
31
<212>
ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223> Cebador de PCR para la amplificación de la secuencia de codificación completa de la subunidad 1 del complejo vitamina K-epóxido reductasa de Homo sapiens (VKORC1-EcoRI-R)
<400> 54
<210>
55
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex1-F
<400>
55
<210>
56
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex1-R
<400>
56
<210>
57
<211>
19
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex2-F
<400>
57
<210> 58
<211> 18 <212> ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex2-R
<400>
58
<210>
59
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex3-F
<400>
59
<210>
60
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-Ex3-R
<400>
60
<210>
61
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-ADNc-F
<400>
61
<210> 62
<211> 19 <212> ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1-ADNc-R
<400>
62
<210>
63
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1-ADNc-F
<400>
63
<210>
64
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1-ADNc-R
<400>
64
<210>
65
<211>
21
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1-ADNc-F-nes
<400>
65
<210> 66 <211> 18 <210> 70
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1-ADNc-R-nes
<400>
66
<210>
67
<211>
22
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1-ADNc-F
<400>
67
<210>
68
<211>
21
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1-ADNc-R
<400>
68
<210>
69
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1-ADNc-F-nes
<400>
69
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1-ADNc-R-nes
<400>
70
<210>
71
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1L1-ADNc-F
<400>
71
<210>
72
<211>
22
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1L1-ADNc-R
<400>
72
<210>
73
<211>
16
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1L1-ADNc-F-nes
<400>
73
<210>
74
<211>
21
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Hs_VKORC1L1-ADNc-R-nes
<400>
74
<210>
75
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1L1-ADNc-F
<400>
75
<210>
76
<211>
26
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1L1-ADNc-R
<400>
76
<210>
77
<211>
21
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1L1-ADNc-F-nes
<400> 77 <220>
<210>
78
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Fr_VKORC1L1-ADNc-Rnes
<400>
78
<210>
79
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1L1-ADNc-F
<400>
79
<210>
80
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1L1-ADNc-R
<400>
80
<210>
81
<211>
17
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<223> Cebador de PCR para Rn_VKORC1L1-ADNc-F-nes
<400> 81
<210>
82
<211>
24
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1L1-ADNc-R-nes
<400>
82
<210>
83
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Rn_VKORC1L1-ADNc-R-corto
<400>
83
<210>
84
<211>
18
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Mm_VKORC1L1-ADNc-F
<400>
84
<210> 85 <211> 20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Mm_VKORC1L1-ADNc-R
<400>
85
<210>
86
<211>
17
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Mm_VKORC1L1-ADNc-F-nes
<400>
86
<210>
87
<211>
20
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para Mm_VKORC1L1-ADNc-R-nes
<400>
87
<210>
88
<211>
28
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para rVKORC1-outerF
<400>
88
<210>
89
<211>
28
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para rVKORC1-outerR
<400>
89
<210>
90
<211>
30
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para rVKORC1-innerF
<400>
90
<210>
91
<211>
26
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para rVKORC1-innerR
<400>
91
<210>
92
<211>
25
<212>
ADN
<213> Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para VKORC1-pcdna3-F
<400>
92
<210>
93
<211>
22
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
Cebador de PCR para VKORC1-pcdna3-R
<400>
93
<210>
94
<211>
492
<212>
ADN
<213>
Secuencia artificial
<220>
<223>
VKORC1 de Homo sapiens con mutación 416A>G de resistencia a warfarina de rata
<400>
94

Claims (10)

  1. REIVINDICACIONES
    1. Método para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped que comprende la introducción en dicha célula huésped de un ácido nucleico que codifica VKORC1 de manera que el ácido nucleico que codifica VKORC1 se exprese de forma recombinante en dicha célula, caracterizado porque el ácido nucleico que codifica VKORC1 codifica:
    a) una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en la SEQ ID NO: 12 y la SEQ ID NO: 17;
    b) una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a);
    c) una secuencia polipeptídica que tiene al menos un 90% de identidad con la secuencia polipeptídica definida en
    (a) o (b), donde la secuencia polipeptídica tiene actividad de VKORC1; y
    d) una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b) o (c) que tiene actividad de VKORC1,
    donde la expresión de dicho VKORC1 en dicha célula huésped incrementa la actividad basal del VKORC1 de dicha célula huésped, y donde dicho método no es un método para el tratamiento del cuerpo humano o animal por cirugía o terapia.
  2. 2. Método para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped que comprende la introducción en dicha célula huésped de un ácido nucleico que codifica VKORC1 de manera que el ácido nucleico que codifica VKORC1 se exprese de forma recombinante en dicha célula, caracterizado porque el ácido nucleico que codifica VKORC1 codifica:
    (a)
    una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en la SEQ ID NO: 12 y la SEQ ID NO: 17;
    (b)
    una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a);
    (c)
    una secuencia polipeptídica que tiene al menos un 90% de identidad con la secuencia polipeptídica definida en
    (a) o (b), donde la secuencia polipeptídica tiene actividad de VKORC1; y
    (d)
    una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b) o (c) que tiene actividad de VKORC1,
    donde la expresión de dicho VKORC1 en dicha célula huésped incrementa la actividad basal del VKORC1 de dicha célula huésped y donde dicha célula es una célula seleccionada de entre el grupo consistente en células HEK293-EBNA, células de E. coli, hepatocitos primarios, células de levadura, células de insectos, células COS, líneas celulares de hepatocitos, y células madre embrionarias no humanas.
  3. 3.
    Método según la reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque dicha proteína dependiente de la vitamina K se selecciona de entre el grupo consistente en factor de coagulación sanguínea II, VII, IX, X, proteína C, proteína S, proteína Z, proteína de matriz gla y osteocalcina.
  4. 4.
    Método según la reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque dicho ácido nucleico que codifica VKORC1 se expresa en combinación con un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamil-carboxilasa.
  5. 5.
    Método según la reivindicación 1 ó 2, caracterizado porque dichas células que expresan dicho VKORC1 tienen una actividad basal incrementada de VKORC1 que aumenta aproximadamente en un 15% o más en comparación con la actividad basal de VKORC1 de dicha célula en ausencia de la expresión recombinante de dicho VKORC1 en tal célula huésped.
  6. 6.
    Utilización de un ácido nucleico recombinante de VKORC1 que codifica una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en:
    a) una secuencia polipeptídica seleccionada del grupo consistente en una secuencia de acuerdo con las SEQ ID NO: 12 y 17;
    b) una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a);
    c) una secuencia polipeptídica con al menos un 90% de identidad con la secuencia polipeptídica definida en (a) o (b), donde la secuencia polipeptídica tiene actividad de VKORC1; y
    d) una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b) o (c) con actividad de VKORC1,
    para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped, donde la expresión de dicho VKORC1 en dicha célula huésped incrementa la actividad basal de VKORC1 y donde dicha utilización no es una utilización para el tratamiento del cuerpo humano o animal mediante cirugía o terapia.
  7. 7. Utilización de un ácido nucleico recombinante de VKORC1 que codifica una secuencia polipeptídica seleccionada de entre el grupo consistente en:
    (a)
    una secuencia polipeptídica seleccionada del grupo consistente en una secuencia de acuerdo con las SEQ ID NO: 12 y 17;
    (b)
    una secuencia polipeptídica de un alelo de la secuencia polipeptídica definida en (a);
    (c)
    una secuencia polipeptídica con al menos un 90% de identidad con la secuencia polipeptídica definida en (a) o (b), donde la secuencia polipeptídica tiene la actividad de VKORC1; y
    (d)
    una secuencia polipeptídica de un fragmento de la secuencia polipeptídica definida en (a), (b) o (c) con la actividad de VKORC1,
    para la gamma-carboxilación de un polipéptido dependiente de la vitamina K en una célula huésped, donde la expresión de dicho VKORC1 en dicha célula huésped incrementa la actividad basal de VKORC1 y donde dicha célula es una célula seleccionada de entre el grupo consistente en células HEK293-EBNA, células de E. coli, hepatocitos primarios, células de levadura, células de insectos, células COS, líneas celulares de hepatocitos y células madre embrionarias no humanas.
  8. 8.
    Utilización según la reivindicación 6 ó 7, caracterizada porque dicho polipéptido dependiente de la vitamina K se selecciona de entre el grupo consistente en factor de coagulación sanguínea II, VII, IX, X, proteína C, proteína S, proteína Z, proteína de matriz gla y osteocalcina.
  9. 9.
    Utilización según la reivindicación 6 ó 7, caracterizada porque dicho ácido nucleico de VKORC1 se utiliza en combinación con un ácido nucleico que codifica para la gamma-glutamil-carboxilasa.
  10. 10.
    Utilización según la reivindicación 6 ó 7, caracterizada porque dichas células que expresan dicho VKORC1 tienen una actividad basal incrementada de VKORC1 que aumenta aproximadamente en un 15% o más en comparación con la actividad basal de VKORC1 de dicha célula en ausencia de la expresión recombinante de dicho VKORC1 en tal célula huésped.
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