ES2224547T3 - Actividad antiviral y resolucion del 2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano. - Google Patents
Actividad antiviral y resolucion del 2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.Info
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Abstract
Un procedimiento para obtener (-)-beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1, 3-oxatiolano, que comprende la resolución de una mezcla de (-) y (+)-cis-2-hidroximetil-5-(5-fluoro-citosin-1-il)-1, 3-oxatiolano mediante la exposición de la mezcla a citidina-desoxicitidina desaminasa.
Description
Actividad antiviral y resolución del
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
Esta invención se encuentra dentro del ámbito de
los nucleósidos biológicamente activos e incluye, específicamente,
un procedimiento para la resolución y el uso de los enantiómeros
(-)-\beta-L y
(+)-\beta-D del FTC.
En 1981, el síndrome de la inmunodeficiencia
adquirida (SIDA) se identificó como una enfermedad que compromete
gravemente el sistema inmune humano y que lleva, prácticamente sin
excepción, a la muerte. En 1983, se determinó que la etiología del
SIDA era el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH). En
diciembre de 1990, la Organización Mundial de la Salud estimó que
entre 8 y 10 millones de personas, en todo el mundo, estaban
infectadas por el VIH y, de esta cifra, entre 1.000.000 y 1.400.000
se encontraban en Estados Unidos.
En 1985, se observó que el nucleósido sintético
3'-azido-3'-desoxitimidina
(AZT) inhibía la replicación del virus de la inmunodeficiencia
humana. Desde entonces, se ha demostrado que toda una serie de
distintos nucleósidos sintéticos, que incluyen
2',3'-didesoxiinosina (DDI),
2',3'-didesoxicitidina (DDC),
3'-fluoro-3'-desoxitimidina
(FLT) y
2',3'-didesoxi-2',3'-didehidrotimidina
(D4T), son eficaces frente al VIH. Otra serie de
2',3'-didesoxinucleósidos han demostrado inhibir el
crecimiento de varios virus in vitro. Parece que, tras su
fosforilación celular a 5'-trifosfato por quinasas
celulares, estos nucleósidos sintéticos se incorporan en la cadena
de ADN viral en crecimiento, ocasionando la terminación de la cadena
debido a la ausencia de grupo hidroxilo en 3'.
El éxito de varios
2',3'-didesoxinucleósidos en la inhibición de la
replicación del VIH in vivo o in vitro ha llevado a
una serie de investigadores a diseñar y probar nucleósidos que
tuvieran el átomo de carbono sustituido por un heteroátomo, en la
posición 3' del nucleósido. Norbeck y col. describen que la
(\pm)-1-[(2\beta,4\beta)-2-(hidroximetil)-4-dioxolanil]timina
(denominada en lo sucesivo
(\pm)-dioxolano-T) presenta una
actividad modesta frente al VIH (CE_{50} de 20 \mum en células
ATH8), y no es tóxica para células control no infectadas a una
concentración de 200 \mum. Tetrahedron Letters 30 (46),
6246, (1989). La Publicación de la Solicitud de Patente Europea
Número 0 337 713 y la Patente de Estados Unidos 5.041.449, asignada
a IAF BioChem International, Inc, describen
2-sustituidos-4-sustituidos-1,3-dioxolanos
que presentan actividad antiviral.
La Patente de Estados Unidos Número 5.047.407 y
la Publicación de la Solicitud de Patente Europea Número 0 382 526,
asignada también a IAF BioChem International, Inc, describen una
serie de nucleósidos
2-sustituidos-5-sustituidos-1,3-oxatiolano
con actividad antiviral e informan específicamente de que la mezcla
racémica (considerando la posición C4') del isómero \beta C1' del
2-hidroximetil-5-(citosin-1-il)-1,3-oxatiolano
(denominado en lo sucesivo
(\pm)-BCH-189) tiene
aproximadamente la misma actividad frente al VIH que el AZT y no
tiene toxicidad celular en los niveles ensayados. Se ha visto
también que el (\pm)-BCH-189
inhibe la replicación in vitro de aislados de VIH
resistentes a AZT, procedentes de pacientes que han sido tratados
con AZT durante más de 36 semanas.
El documento
WO-A-92/15308 describe el uso de
1-(2-hidroximetil)-1,3-oxatiolan-5-il)-5-fluorocitosina
y derivados farmacéuticamente aceptables de la misma en el
tratamiento de infecciones por el virus de la hepatitis B.
Otro virus que causa graves problemas de salud en
el hombre es el virus de la hepatitis B (denominado en lo sucesivo
"VHB"). El VHB es la segunda causa, tras el tabaco, de cáncer
en el hombre. Se desconoce el mecanismo por el que el VHB induce
cáncer, aunque se postula que el VHB podría desencadenar
directamente el desarrollo del tumor o bien podría desencadenar
indirectamente el desarrollo del tumor a través de la inflamación
crónica, la cirrosis y la regeneración celular asociadas a la
infección.
Tras un periodo de incubación de dos a seis
meses, durante el que el huésped desconoce que está infectado, la
infección por VHB puede dar lugar a hepatitis aguda y daño
hepático, causando dolor abdominal, ictericia y el aumento en sangre
de los niveles de ciertas enzimas. El VHB puede causar hepatitis
fulminante, una forma de la enfermedad de progresión rápida, con
frecuencia fatal, en la que se destruyen grandes porciones del
hígado.
Los pacientes se recuperan, generalmente, de la
hepatitis aguda. En algunos pacientes, sin embargo, persisten
niveles elevados de antígeno viral en la sangre durante un periodo
de tiempo prolongado, o indefinido, dando lugar a una infección
crónica. Las infecciones crónicas pueden llevar a una hepatitis
crónica persistente. Los pacientes con infección crónica
persistente por VHB son más frecuentes en países en vías de
desarrollo. A mediados de 1991, había aproximadamente 225 millones
de portadores crónicos del VHB solamente en Asia y casi 300 millones
de portadores en todo el mundo. La hepatitis crónica persistente
puede causar fatiga, cirrosis hepática y carcinoma hepatocelular,
un cáncer primario del hígado.
En los países occidentales industrializados, los
grupos de alto riesgo para una infección por VHB incluyen las
personas que entran en contacto con portadores del VHB o las
muestras de sangre de los mismos. La epidemiología del VHB es muy
similar a la del síndrome de la inmunodeficiencia adquirida, lo que
justifica por qué la infección por VHB es frecuente entre los
pacientes con SIDA o complejo relacionado con el SIDA. Sin embargo,
el VHB es más contagioso que el VIH.
Se ha desarrollado una vacuna derivada de suero
humano para inmunizar a los pacientes frente al VHB. Mientras que se
ha visto que es eficaz, la producción de la vacuna es difícil ya
que el suministro de suero humano procedente de portadores crónicos
es limitado y el proceso de purificación es largo y costoso. Además,
cada lote de vacuna preparado a partir de distintos sueros ha de
ser ensayado en chimpancés para asegurar su seguridad. También se
han producido vacunas por ingeniería genética. El tratamiento diario
con interferón-\alpha, una proteína producida por
ingeniería genética, también ha mostrado ser prometedor. Sin
embargo, no existe, hasta la fecha, ningún agente farmacéutico
conocido que inhiba de forma eficaz la replicación del virus.
Para comercializar un nucleósido para uso
farmacéutico, no solamente tiene que ser eficaz y con una toxicidad
baja, sino que su fabricación también debe tener una buena relación
coste-eficacia. Se ha dirigido una gran cantidad de
investigación y desarrollo hacia nuevos procedimientos, de bajo
coste, para la producción de nucleósidos a gran escala. En la
actualidad, se preparan 2',3'-didesoxinucleósidos
por una de dos vías: generando derivados de un nucleósido intacto o
condensando un derivado de un radical hidrocarbonado con una base
heterocíclica. Aunque existen numerosas desventajas asociadas a la
obtención de nuevos análogos de nucleósidos modificando nucleósidos
intactos, una ventaja principal de esta aproximación es que la
estereoquímica absoluta adecuada ya ha sido establecida por la
naturaleza. Sin embargo, este enfoque no se puede usar en la
producción de nucleósidos que contengan bases que no existen en la
naturaleza o radicales hidrocarbonados que no existen en la
naturaleza (y que, por lo tanto, no se generan a partir de
nucleósidos intactos), como nucleósidos
1,3-oxatiolano y nucleósidos
1,3-dioxolano.
Cuando se condensa un radical hidrocarbonado o de
tipo hidrocarbonado con una base heterocíclica para formar un
nucleósido sintético, se produce un nucleósido con dos centros
quirales (en las posiciones C1' y C4'), y existe, de este modo, en
forma de pareja de diastereoisómeros. Cada diastereoisómero existe
en forma de conjunto de enantiómeros. Por lo tanto, el producto es
una mezcla de cuatro enantiómeros.
Se observa a menudo que los nucleósidos con una
estereoquímica que no está presente en la naturaleza en la posición
C1' o C4', son menos activos que los mismos nucleósidos con la
estereoquímica establecida por la naturaleza. Por ejemplo, Carter y
col. han informado de que la concentración del enantiómero (-) del
carbovir (2', 3'-didehidro-2',
3'-didesoxiguanosina) requerida en cultivos
celulares para disminuir la actividad de la transcriptasa inversa
en un 50% (CE_{50}) es de 0,8 \muM, mientras que la CE_{50}
para el enantiómero (+) del carbovir es mayor de 60 \muM.
Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 34: 6,
1297-1300 (Junio de 1990).
La Publicación Internacional PCT Número WO
91/11186 describe que los nucleósidos 1,3-oxatiolano
se pueden preparar con una elevada diastereoselectividad (alto
porcentaje de nucleósidos con una configuración \beta en el puente
entre el carbono C1' y la base heterocíclica) mediante una
selección cuidadosa del ácido de Lewis usado en el proceso de
condensación. Se descubrió que la condensación de un nucleósido
1,3-oxatiolano con una base se da con una
estereoespecificidad \beta casi completa cuando se usa cloruro
estánnico como catalizador de la condensación. Otros ácidos de Lewis
proporcionan una baja selectividad \beta en C1' (o la ausencia de
la misma) o simplemente fallan a la hora de catalizar las
reacciones.
En vista del hecho de que el síndrome de la
inmunodeficiencia adquirida, el complejo relacionado con el SIDA y
el virus de la hepatitis B han alcanzado niveles epidémicos en todo
el mundo y tienen efectos trágicos en el paciente infectado, sigue
existiendo una fuerte necesidad de proporcionar nuevos y eficaces
agentes farmacéuticos para tratar estas enfermedades, que tengan una
toxicidad baja para el huésped.
También existe la necesidad de proporcionar un
procedimiento con una buena relación coste-eficacia
y que sea comercialmente viable para producir nucleósidos
farmacéuticamente importantes y conseguir, específicamente, una
estereoespecificidad \beta en la posición C4' de nucleósidos
sintéticos preparados por condensación de un radical de tipo
hidrocarbonado con una base.
Por lo tanto, un objetivo de la presente
invención es proporcionar un procedimiento y una composición para el
tratamiento de pacientes humanos infectados por VIH.
Otro de los objetivos de la presente invención es
proporcionar un procedimiento y una composición para el tratamiento
de pacientes humanos u otros huéspedes animales infectados por
VHB.
Otro de los objetivos de la presente invención es
proporcionar nucleósidos 1,3-oxatiolano enriquecidos
enantioméricamente.
Otro de los objetivos de la presente invención es
proporcionar un procedimiento para la resolución de enantiómeros C4'
de nucleósidos 1,3-oxatiolano.
De acuerdo con un aspecto de la presente
invención, se proporciona un procedimiento para la obtención de
(-)-\beta-L-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano,
que comprende la resolución de una mezcla de (-) y
(+)-cis-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
exponiendo la mezcla a citidina-desoxicitidina
desaminasa.
Se ha descubierto que el
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
("FTC") presenta, de forma sorprendente, una elevada actividad
frente al virus de la inmunodeficiencia humana, con una toxicidad
muy baja para las células del huésped. Se ha descubierto también
que el FTC presenta una actividad muy significativa frente al VHB y,
por lo tanto, se puede usar para tratar pacientes que tienen
distintas enfermedades asociadas a la infección por VHB.
Estudios de toxicidad y farmacocinética confirman
la utilidad del FTC como agente antiviral para su administración
farmacéutica. El FTC y sus enantiómeros no son tóxicos para las
células periféricas de la médula ósea humana en concentraciones de
hasta 50 \muM ni para otras líneas celulares en concentraciones de
hasta 200 \muM. El FTC-TP es uno de los
metabolitos principales en células mononucleares de sangre
periférica y células HepG2. El FTC-TP inhibe
competitivamente la transcriptasa inversa (RT) del
VIH-1 con una K_{1} de 0,2 \muM empleando un
molde cebador poli(I) oligo(dC). Mediante un análisis
de secuencia, se puede demostrar que el FTC-TP es
un potente terminador de la cadena de ADN cuando se usa la
VIH-RT (paradas C).
El tratamiento crónico con FTC no es tóxico en
roedores, incluso en dosis por vía oral de 85 mg/kg al día durante
al menos dos meses. La farmacocinética del FTC en macacos de la
India indica una elevada biodisponibilidad por vía oral
(aproximadamente 73 \pm 6%) y una semivida plasmática terminal de
aproximadamente 1,34 \pm 0,18 (media de la administración por vía
oral e I.V.).
También se describe un procedimiento para la
resolución de una mezcla racémica de enantiómeros de nucleósidos,
incluida una mezcla racémica de FTC, que incluye una etapa de
exposición de la mezcla racémica a una enzima que cataliza
preferentemente una reacción en uno de los enantiómeros. El
procedimiento se puede usar para la resolución de una gran variedad
de nucleósidos, incluidos nucleósidos de pirimidina y purina
eventualmente sustituidos en el radical hidrocarbonado o el radical
básico. El procedimiento también se puede usar para la resolución de
derivados de nucleósidos que contengan heteroátomos adicionales en
el radical hidrocarbonado, como por ejemplo,
(\pm)-FTC y
(\pm)-BCH-189. La resolución de
nucleósidos se puede llevar a cabo a gran escala a un coste
moderado.
Usando los procedimientos descritos en el
presente documento, se resolvió el FTC en sus enantiómeros
(+)-\beta-D y
(-)-\beta-L. El enantiómero
(-)-\beta-L parece ser más potente
que el enantiómero (+)-\beta-D
frente a VIH, VHB y SIV. El enantiómero (+) del FTC también es
activo frente a VIH, VHB y SIV.
La Figura 1 es una ilustración de la estructura
química del
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
("FTC").
La Figura 2 es una ilustración de un
procedimiento para la preparación de
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
La Figura 3 es un diagrama de producción de la
especificidad de la fosfatasa alcalina y la fosfodiesterasa del
veneno de serpiente para los enantiómeros (+) y (-) del FTC.
La Figura 4 es un gráfico que indica el progreso
de la hidrólisis catalizada por la lipasa, del éster
butirilo-5' del FTC a lo largo del tiempo usando las
enzimas Amano PS-800® (-cuadrado vacío-) y PLE
(-círculo vacío con un punto-).
La Figura 5 es un gráfico del efecto de la
concentración (\muM) del FTC enriquecido racémica y
enantioméricamente (preparado por el procedimiento del Ejemplo 3)
frente al porcentaje de inhibición de células mononucleares de
sangre periférica humanas infectadas con VIH. ((-círculo relleno-,
(\pm)-FTC), (-círculo vacío-,
(-)-FTC), (-cuadrado relleno-,
(+)-FTC)).
La Figura 6 es un gráfico del efecto de la
concentración (\muM) de FTC enriquecido racémica y
enantioméricamente (preparado por el procedimiento del Ejemplo 2)
frente al porcentaje de inhibición de células mononucleares de
sangre periférica humanas infectadas con VIH. ((-círculo relleno-,
(\pm)-FTC), (-círculo vacío-,
(-)-FTC), (-cuadrado relleno-,
(+)-FTC)).
La Figura 7 es un gráfico de la captación de
(\pm)-FTC tritiado por células mononucleares de
sangre periférica humanas (media de dos determinaciones) en tiempo
(horas) frente a pmol/10^{6} células.
La Figura 8 es un gráfico de la salida de
(\pm)-FTC radiomarcado de células mononucleares de
sangre periférica humanas, determinada en horas frente a
pmol/10^{6} células.
La Figura 9 ilustra la presencia de
[^{3}H]-(\pm)-FTC y sus derivados fosforilados
en células HepG-2 humanas (media de dos
determinaciones) incubadas en medio con
[^{3}H]-(\pm)-FTC 10 \muM, determinada en
pmol/10^{6} células a lo largo del tiempo.
La Figura 10 ilustra la eliminación de
[^{3}H]-(\pm)-FTC y sus derivados fosforilados
en células HepG2 humanas, en pmol/10^{6} células a lo largo del
tiempo, tras añadir a las células pulsos de
[^{3}H]-(\pm)-FTC 10 \muM (700 DPM/pmol)
durante 24 horas, y evaluando la concentración del compuesto 24
horas tras su retirada.
La Figura 11 ilustra la disminución de la
concentración combinada de [^{3}H]-(\pm)-FTC y
sus derivados fosforilados en células HepG2 humanas tras la
incubación con [^{3}H]-(\pm)-FTC 10 \muM (700
DPM/pmol) durante 24 horas, en pmol/10^{6} células, a lo largo del
tiempo.
La Figura 12 es una gráfica del efecto de los
enantiómeros del FTC sobre la formación de colonias de células
precursoras de granulocitos-macrófagos, determinado
como porcentaje de supervivencia frente a concentración en \muM
((-)-FTC, círculo vacío; (+)-FTC,
círculo relleno; AZT, cuadrado relleno.)
Tal como se usan en el presente documento, los
términos "nucleósido enantioméricamente enriquecido" hacen
referencia a una composición de nucleósidos que incluye al menos un
95% de un único enantiómero de ese nucleósido.
Tal como se usa en el presente documento, el
término FTC hace referencia al
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
(la forma racémica o los enantiómeros), también denominado
2'-desoxi-5-fluoro-3'-tiacitidina.
Tal como se usa en el presente documento, el
término (\pm)-FTC hace referencia al
(\pm)-\beta-D,L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
Tal como se usa en el presente documento, el
término (-)-FTC hace referencia al
(-)-\beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
Tal como se usa en el presente documento, el
término (+)-FTC hace referencia al
(+)-\beta-D-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
Tal como se usan en el presente documento, los
términos FTC-MP, FTC-DP y
FTC-TP hacen referencia a monofosfato, difosfato y
trifosfato de FTC, respectivamente.
Tal como se usa en el presente documento, el
término BCH-189 hace referencia a
2-hidroximetil-5-(citosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
Tal como se usan en el presente documento, los
términos "catálisis enzimática preferente" hacen referencia a
la catálisis por una enzima que favorece un sustrato en detrimento
de otro.
Tal como se usa en el presente documento, un
grupo saliente significa un grupo funcional que forma una
carbonatación incipiente cuando se separa de la molécula a la que
está unido.
Se puede usar la invención, tal como está
descrita en el presente documento, en un procedimiento y una
composición para el tratamiento de infecciones por VIH y VHB y
otros virus que se replican de forma similar, en el hombre u otros
animales huéspedes. Dichos procedimientos incluyen la administración
de una cantidad eficaz de enantiómero
(-)-\beta-L del
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
en un vehículo farmacéuticamente aceptable. Tal como se muestra a
continuación, este compuesto posee una actividad antirretroviral,
como anti-VIH-1,
anti-VIH-2 y actividad frente al
virus de la inmunodeficiencia simia (anti-VIS).
El
(-)-\beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
y las formulaciones farmacéuticamente aceptables que contienen este
compuesto son útiles para la prevención y el tratamiento de
infecciones por VIH y otras dolencias relacionadas como el complejo
relacionado con el SIDA (CRS), la linfadenopatía generalizada
persistente (PGL), las dolencias neurológicas relacionadas con el
SIDA, estados de positividad para anticuerpos
anti-VIH y positividad para VIH, sarcoma de Kaposi,
púrpura trombocitopénica e infecciones oportunistas. Además, estos
compuestos o formulaciones se pueden usar de forma profiláctica para
prevenir o retrasar la progresión de la enfermedad clínica en
individuos que presentan positividad para anticuerpos
anti-VIH o para antígenos del VIH o que han sido
expuestos al VIH.
El
(-)-\beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
y las formulaciones farmacéuticamente aceptables que contienen este
compuesto también son útiles para la prevención y el tratamiento de
infecciones por VHB y otras dolencias relacionadas como estados de
positividad para anticuerpos anti-VHB y para el
VHB, inflamación hepática crónica causa por el VHB, cirrosis,
hepatitis aguda, hepatitis fulminante, hepatitis crónica
persistente y fatiga. Este compuesto o estas formulaciones también
se pueden usar de forma profiláctica para prevenir o retrasar la
progresión de la enfermedad clínica en individuos que presentan
positividad para anticuerpos anti-VHB o para
antígenos del VHB o que han sido expuestos al VHB.
En resumen, la presente invención incluye los
siguientes elementos:
Un procedimiento para la preparación de un
enantiómero (-) o (+) del
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano
que comprende el sometimiento del compuesto o un derivado del mismo
(por ejemplo, éster 5') en forma de una mezcla de enantiómeros (-) y
(+) a unas condiciones o reacción con reactivos que sirven para
separar los enantiómeros y, si es necesario, convertir el derivado
resultante en el compuesto parental.
La resolución de los enantiómeros (\pm) se
puede llevar a cabo tal como se especifica detalladamente en la
Sección III, a continuación.
En el presente documento se proporciona un
procedimiento para la resolución de mezclas racémicas de
enantiómeros (+) y (-) de nucleósidos del FTC. El procedimiento
también se puede usar para la resolución de mezclas racémicas de
radicales hidrocarbonados o de tipo hidrocarbonado, como derivados
del 1,3-oxatiolano y del
1,3-dioxolano. El procedimiento implica el uso de
una enzima que cataliza preferentemente una reacción de un
enantiómero en una mezcla racémica. El enantiómero que ha
reaccionado se separa del que no ha reaccionado basándose en la
nueva diferencia en cuanto a su estructura física. Dada la
descripción en la presente memoria descriptiva, un experto en la
materia será capaz de elegir una enzima que sea selectiva para el
enantiómero del nucleósido elegido (o selectiva para el enantiómero
no deseado, como un procedimiento para eliminarlo), mediante la
selección de una de las enzimas mencionadas más abajo o mediante la
valoración sistemática de otras enzimas conocidas. Dada esta
descripción, un experto en la materia también sabrá cómo modificar
el sustrato en la medida necesaria para alcanzar la resolución
deseada. Se puede determinar el enriquecimiento óptico del éster
recuperado mediante el uso de RMN con reactivos de desplazamientos
quirales, polarimetría o HPLC quiral.
Los siguientes ejemplos ilustran además el uso de
enzimas para la resolución de mezclas racémicas de enantiómeros. Se
pueden usar otros procedimientos conocidos para la resolución de
mezclas racémicas junto con el procedimiento de resolución descrito
en el presente documento. Se considera que todas estas
modificaciones se encuentran dentro del ámbito de la invención.
En la presente invención, se usa
citidina-desoxicitidina desaminasa para la
resolución de mezclas racémicas de
2-hidroximetil-5-(citosin-1-il)-1,3-oxatiolano
y sus derivados, incluido el
2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
La enzima cataliza la desaminación del radical citosina a un
uracilo. Se ha descubierto que uno de los enantiómeros de los
nucleósidos 1,3-oxatiolano es un sustrato preferido
por la citidina-desoxicitidina desaminasa. El
enantiómero que no se convierte en un derivado uracilo (y que, por
lo tanto, aún es básico) se extrae de la solución con una solución
ácida. Se debe tener cuidado por evitar las soluciones muy ácidas
(pH por debajo de 3,0), que pueden provocar la escisión del anillo
oxatiolano.
La citidina-desoxicitidina
desaminasa se puede aislar a partir de hígado de rata o hígado
humano, o se puede expresar a partir de secuencias recombinantes en
un sistema procariota como E. coli.
El procedimiento de resolución de enantiómeros de
nucleósidos de citidina usando la
citidina-desoxicitidina desaminasa se puede usar
como procedimiento único de resolución o se puede usar junto con
otros procedimientos, incluida la resolución por hidrólisis
enzimática de ésteres de
5'-O-nucleósidos tal como se
describe más abajo.
En una forma de realización, el procedimiento
incluye la reacción del grupo hidroxilo C5' de un racemato de
nucleósidos con un compuesto acilo para formar un éster C5' en el
que el nucleósido se encuentra en el extremo "carbinol" del
éster. La mezcla racémica de ésteres C5' de nucleósidos se trata
entonces con una enzima que preferiblemente escinde, o hidroliza,
uno de los enantiómeros y no el otro, en un periodo de tiempo
dado.
Una ventaja de este procedimiento es que se puede
usar para la resolución de una amplia variedad de nucleósidos,
incluidos nucleósidos de pirimidina y purina eventualmente
sustituidos en el radical hidrocarbonado o básico. El procedimiento
también se puede usar para la resolución de derivados de nucleósidos
que contienen heteroátomos adicionales en el radical
hidrocarbonado, como por ejemplo, FTC y BCH-189. La
extensa aplicabilidad de este procedimiento reside, en parte, en el
hecho de que aunque el grupo carbinol del éster desempeña un papel
en la capacidad de una enzima para diferenciar enantiómeros, el
sitio de reconocimiento principal de estas enzimas se encuentra en
el grupo ácido carboxílico del éster. Además, uno puede extrapolar
con éxito los resultados de un estudio enzima/sustrato a otro
sistema, aparentemente diferente, a condición de que los grupos
ácido carboxílico de los dos sustratos sean iguales o
sustancialmente similares.
Otra ventaja de este procedimiento es que es
regioselectivo. Las enzimas que hidrolizan ésteres generalmente no
catalizan otras reacciones en otros grupos de la molécula. Por
ejemplo, la enzima lipasa cataliza la hidrólisis del éster del
2-hidroximetil-5-oxo-1,3-oxatiolano
sin hidrolizar la lactona interna. Esto contrasta claramente con
los enfoques "químicos" de la hidrólisis de ésteres.
Otra ventaja más de este procedimiento es que la
separación del enantiómero no hidrolizado y el enantiómero
hidrolizado de la mezcla de la reacción es bastante sencilla. El
enantiómero no hidrolizado es más lipófilo que el enantiómero
hidrolizado y se puede recuperar de forma eficaz por simple
extracción con un disolvente orgánico apolar de entre una variedad
de los mismos o mezclas de disolventes, incluido hexano y
hexano/éter. El enantiómero hidrolizado menos lipófilo, más polar,
se puede obtener entonces por extracción con un disolvente orgánico
más polar, como por ejemplo, acetato de etilo, o por liofilización,
seguido de la extracción con etanol o metanol. Se debería evitar el
alcohol durante la hidrólisis porque puede desnaturalizar enzimas
bajo determinadas condiciones.
Con la creación de la pareja
enzima-sustrato adecuada, se pueden establecer las
condiciones para el aislamiento de cada enantiómero del nucleósido.
El enantiómero deseado se puede aislar mediante el tratamiento de la
mezcla racémica con una enzima que hidroliza el enantiómero deseado
(seguido de la extracción del hidrolizado polar con un disolvente
polar) o el tratamiento con una enzima que hidroliza el enantiómero
no deseado (seguido de la eliminación del enantiómero no deseado con
un disolvente apolar).
Las enzimas que catalizan la hidrólisis de
ésteres incluyen esterasas, por ejemplo la esterasa de hígado de
cerdo, lipasas, incluida la lipasa pancreática porcina y la lipasa
Amano PS-800, subtilisina y
\alpha-quimotripsina.
La Figura 3 es un diagrama de producción de la
especificidad de la fosfatasa alcalina y la fosfodiesterasa del
veneno de serpiente para los enantiómeros (+) y (-) del FTC. Tal
como se indica, la fosfatasa alcalina hidroliza el trifosfato de
ambos enantiómeros del FTC y, por lo tanto, no es eficaz como medio
de separación. La fosfodiesterasa I hidroliza preferentemente el
isómero (+) del FTC a su monoéster, que se puede exponer a
5'-nucleotidasa para proporcionar
(+)-FTC.
El grupo acilo más eficaz que se puede usar para
esterificar la posición C5' del nucleósido se puede determinar sin
una experimentación indebida mediante la valoración de una serie de
homólogos usando el sistema enzimático seleccionado. Por ejemplo,
cuando se esterifican los nucleósidos 1,3-oxatiolano
con ácido butírico, las resoluciones tanto con esterasa de hígado de
cerdo como con Amano PS-800 se llevan a cabo con una
elevada enantioselectividad (exceso enantiomérico del
94-100%) y una selectividad opuesta. La esterasa de
hígado de cerdo hidroliza preferentemente el enantiómero (+) del FTC
y la Amano PS-800® hidroliza preferentemente el
enantiómero (-) del FTC. El porcentaje de exceso enantiomérico
representado en la Tabla 1 es la cantidad de éster butirato
purificado en la mezcla tratada con enzima (es decir, el éster
butirato del (-)-FTC en el caso de la PLE y el éster
butirato del (+)-FTC en el caso de la Amano
PS-800®).
Ejemplos no limitantes de grupos acilo que se
pueden valorar para su uso con una mezcla enantiomérica concreta de
nucleósidos y una enzima concreta incluyen los ácidos
alquil-carboxílicos y los ácidos alquil-
carboxílicos sustituidos, incluido el ácido acético, el ácido
propiónico, el ácido butírico y el ácido pentanoico. Con ciertas
enzimas, se puede preferir el uso de un compuesto acilo que sea
significativamente electrón-atrayente para facilitar
la hidrólisis debilitando el enlace éster. Ejemplos de grupos acilo
electrón-atrayentes incluyen
\alpha-haloésteres como el ácido
2-cloropropiónico, el ácido
2-clorobutírico y el ácido
2-cloropentanoico. Los
\alpha-haloésteres son excelentes sustratos para
las lipasas.
Las hidrólisis enzimáticas se llevan generalmente
a cabo con una cantidad catalítica de la enzima en un tampón acuoso
con un pH cercano al pH óptimo para la enzima en cuestión. A medida
que se desarrolla la reacción, el pH cae como consecuencia del ácido
carboxílico liberado. Se debería añadir una base acuosa para
mantener el pH cerca del valor óptimo para la enzima. El progreso de
la reacción se puede determinar fácilmente monitorizando el cambio
de pH y la cantidad de base necesaria para mantener el pH. El éster
hidrófobo (el enantiómero no hidrolizado) y el alcohol más polar
(el enantiómero hidrolizado) se pueden extraer secuencial y
selectivamente de la solución mediante la elección sensata de
disolventes orgánicos. De forma alternativa, el material a resolver
se puede pasar a través de una columna que contenga la enzima
inmovilizada en un soporte sólido.
Las hidrólisis enzimáticas realizadas en
condiciones heterogéneas pueden presentar una escasa
reproducibilidad. Se prefiere, por lo tanto, realizar la hidrólisis
en condiciones homogéneas. No se prefieren los disolventes alcoholes
porque pueden desnaturalizar las enzimas. La homogeneidad se puede
conseguir mediante el uso de agentes tensioactivos no iónicos, como
el Triton X-100. Sin embargo, la adición de estos
agentes tensioactivos no sólo ayuda a disolver el material de
partida sino que también incrementa la solubilidad acuosa del
producto. Por lo tanto, aunque la reacción enzimática se puede
llevar a cabo de forma más eficaz que en condiciones heterogéneas
añadiendo un agente tensioactivo no iónico, el aislamiento tanto
del material de partida recuperado como del producto puede verse
dificultado. El producto se puede aislar por técnicas
cromatográficas y químicas adecuadas (como por ejemplo, la formación
selectiva de sales). Los nucleósidos diacilados se pueden usar pero
son, con frecuencia, algo lipófilos y difíciles de disolver en el
medio usado.
Se prepararon una serie de derivados
5'-O-acilo del FTC por
O-acilación selectiva de la sal
N-clorhidrato (véanse la Tabla 1 y la Figura 4) del
(\pm)-FTC. Se investigó la eficacia de la
hidrólisis de los derivados por lipasas. Tal como se muestra en la
Tabla 1, la esterasa de hígado de cerdo (PLE) muestra un elevado
nivel de selectividad hacia la hidrólisis del éster del enantiómero
(+) del FTC, dejando predominantemente el butirato del
(-)-FTC en la mezcla analizada por HPLC. Por el
contrario, la PS-800 hidroliza preferentemente el
éster del enantiómero (-) del FTC, dejando predominantemente el
butirato del (+)-FTC en la mezcla analizada por
HPLC. También se observó que la tasa de hidrólisis dependía de la
naturaleza del grupo acilo; el derivado acetilo era
significativamente más lento que el derivado butirilo. Se ha
descubierto ahora que la tasa de hidrólisis del éster del ácido
propiónico del FTC es incluso más rápida que la que se observa con
el derivado butirato. Se determinó tanto el porcentaje de
recuperación como el porcentaje de exceso enantiomérico por HPLC.
Aunque la enantioselectividad es excelente cuando se emplea la PLE
(generalmente e.e. del 97% o mayor), se puede llevar a cabo un
enriquecimiento adicional por reacciones secuenciales de hidrólisis
enzimática en las que el butirato enantioméricamente enriquecido
procedente de la hidrólisis catalizada por PLE de somete a
hidrólisis enzimática por PS-800.
Se disolvió
5'-O-butirato de
(\pm)-FTC (0,47 mmol, 149 mg) en 10 ml de una
solución tampón: CH_{3}CN 4:1 pH 8. La solución transparente se
agitó y trató con 26 mg de esterasa de hígado de cerdo
(PLE-A). El progreso de la reacción se monitorizó
por HPLC (Figura 4). Tras 20 horas (conversión del 52%), la mezcla
de la reacción se extrajo con 2 x 80 ml de CHCL_{3} y 80 ml de
acetato de etilo. Los extractos de la fase orgánica se combinaron,
se secaron sobre MgSO_{4} anhidro, se filtraron y se concentraron
por evaporación rotatoria. El residuo resultante se eluyó en 2 x
placas pTLC 1000m usando acetato de etilo como eluyente (doble
elución) para dar, tras su aislamiento, 53 mg (36% basándose en el
material de partida) de butirato de FTC que se determinó tenía un
exceso enantiomérico (e.e.) del 98% mediante el análisis por HPLC.
El butirato enantioméricamente enriquecido se trató entonces con
1,6 ml de metanol seguido de 0,38 mmol (20 mg) de metóxido de sodio.
La mezcla resultante se agitó a temperatura ambiente y el progreso
de la reacción se controló por HPLC. La reacción se había completado
al cabo de 30 minutos. El disolvente se eliminó por evaporación
rotatoria para dar un sólido blanco bruto (76 mg) que se eluyó en
una pTLC 1000m usando acetato de etilo: etanol 5:1. El
(-)-FTC se aisló en forma de sólido blanco (33 mg;
rendimiento 82%). En el análisis por HPLC del FTC, en forma de su
derivado O-acetato-5', mostró un
e.e. del 97%; [\alpha] (^{20}, _{D}) -120,5º (c = 0,88;
etanol abs.).
Se pueden evitar las emulsiones en la etapa de
procesamiento añadiendo HCCl_{3} a la mezcla de la reacción tras
la finalización de la misma (lo que también sirve para
desnaturalizar la enzima), los disolventes se eliminan al vacío y se
realiza la extracción con HCCl_{3}.
De forma similar, se disolvieron 1,2 mmol (375
mg) de O-butirato-5' de
(\pm)-FTC en 40 ml de tampón: CH_{3}CN 4:1 pH 8.
La solución transparente se agitó y se trató con 58 mg de esterasa
de hígado de cerdo (PLE-A). El progreso de la
reacción se monitorizó por HPLC. Tras 90 minutos (conversión del
38%), la mezcla de la reacción se añadió a 150 ml de CHCl_{3}. Las
fases se separaron y la fase acuosa se liofilizó para eliminar el
disolvente. El residuo blanco de la liofilización se extrajo con 3
x 10 ml de etanol absoluto. Los extractos se filtraron, se
combinaron y se concentraron al vacío para producir 179 mg de aceite
bruto. El material bruto se eluyó en una columna 45 x 30 mm de gel
de sílice usando 3 x 75 ml de acetato de etilo seguido de acetato de
etilo: etanol 5:1. El (+)-FTC se aisló en forma de
sólido blanco (109 mg; 37% basándose en el butirato de partida). El
análisis por HPLC del (+)-FTC, en forma de su
derivado 5'-O-acetato, mostró un
e.e. del 97,4%; [a] O (^{20}, _{D}) +113,4º (c = 2,53; etanol
absoluto).
Se llevó a cabo una reacción similar usando 0,12
mmol (37 mg) de 5'-O-butirato de
FTC y 7 mg de PS-800 en 4,0 ml de tampón: CH_{3}CN
4:1 pH 8. La reacción fue considerablemente más lenta que la que se
llevó a cabo con PLE-A y requirió 74 horas para una
conversión del 59%. Se vio que el butirato recuperado (11,4 mg; 31%
de la cantidad inicial) presentaba un e.e. del 94% por HPLC.
El procedimiento descrito más arriba para la
resolución de mezclas racémicas de enantiómeros de nucleósidos se
puede combinar con otros procedimientos clásicos de resolución
enantiomérica para incrementar la pureza óptica del producto
final.
Los procedimientos clásicos de resolución
incluyen varias técnicas físicas y químicas. Con frecuencia la
técnica más simple y eficaz es la recristalización, basada en el
principio de que el racemato es con frecuencia más soluble que los
enantiómeros individuales correspondientes. La recristalización se
puede llevar a cabo en cualquier etapa, incluido sobre los
compuestos acilados o el producto enantiomérico final. Si tiene
éxito, este sencillo enfoque representa un procedimiento de
elección.
Cuando la recristalización no consigue
proporcionar un material con una pureza óptica aceptable, se pueden
valorar otros procedimientos. Si el nucleósido es básico (por
ejemplo, una citidina) se pueden usar ácidos quirales que formen
mezclas de diastereoisómeros que pueden poseer propiedades de
solubilidad significativamente diferentes. Ejemplos no limitativos
de ácidos quirales incluyen el ácido málico, el ácido mandélico, el
ácido dibenzoil tartárico, el ácido
3-bromocanfo-8-sulfónico,
el ácido 10-canfosulfónico y el ácido
di-p-toluiltartárico. De forma
similar, la acilación del grupo hidroxilo libre con el derivado de
un ácido quiral también da como resultado la formación de mezclas
de diastereoisómeros cuyas propiedades físicas pueden ser
suficientemente diferentes como para permitir su separación.
Se pueden obtener o purificar pequeñas cantidades
de nucleósidos enantioméricamente enriquecidos pasando la mezcla
racémica a través de una columna de HPLC diseñada para separaciones
quirales, incluidas las columnas unidas a ciclodextrina
comercializadas por Rainin Corporation.
La resolución de los enantiómeros C4' del
(\pm)-FTC se llevó a cabo usando una columna
quiral unida a ciclodextrina (cyclobond AC-I)
procedente de la Rainin Corporation (Woburn, MA). Las condiciones
fueron las siguientes: sistema isocrático; metanol 0,5% en agua;
flujo 1 ml/min, detección UV a 262 nm. El metanol con calidad HPLC
se adquirió en J.T. Baker (Phillipsburg, NJ). Las mezclas racémicas
se inyectaron y las fracciones se recogieron. Las fracciones que
contenían cada uno de los enantiómeros se juntaron, se congelaron y
se liofilizaron. Los compuestos se caracterizaron por espectroscopia
UV y por sus tiempos de retención en la HPLC. En general, los
enantiómeros (-) tienen tiempos de retención menores que los
enantiómeros (+) (véase J. Liquid Chromatography 7:
353-376, 1984). Las concentraciones de los
compuestos se determinaron por espectroscopia UV, usando una
solución estándar de concentración conocida (15 \muM) preparada en
agua para valoración biológica. Los tiempos de retención para los
enantiómeros separados se proporcionan en la Tabla 2.
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
Compuesto \+ \hskip3.5cm \+ R _{t} (min)\cr
(-) - FTC \+ \+ 8,3\cr (+) - FTC \+ \+
8,7\cr}
Usando una columna Cyclobond I-Ac
(5 \mum, 25 cm x 4,6 mm, Rainin Corporation, Woburn, MA, número de
catálogo AST-41049), con un flujo de 0,6 ml/min de
metanol 0,5%, sistema isocrático (Fisher Scientific, Inc. calidad
HPLC, número de catálogo A-452-4 en
agua) y detección UV a 262 nm, los enantiómeros del FTC presentaron
tiempos de retención de 12,68 minutos ((-)-FTC) y
13,20 minutos ((+)-FTC).
Usando una columna Chiralpak AS (10 \mum, 25 cm
x 4,6 mm, J.T. Baker Inc., Phillisburg, NJ, número de catálogo
7406-00, número de serie
09-29-10320) con un flujo de 0,8
ml/min de alcohol isopropílico (calidad HPLC, Fisher Scientific,
Inc., número de catálogo A-451-4) y
detección UV a 262 nm, los enantiómeros del FTC presentaron tiempos
de retención de 5,9 minutos ((-)-FTC) y 9,8 minutos
((+)-FTC).
Es conveniente, con frecuencia, cribar una serie
de mezclas racémicas de nucleósidos como una etapa preliminar para
determinar cuáles merecen una posterior resolución en forma de
componentes enantioméricamente enriquecidos y la evaluación
posterior de su actividad antiviral. La capacidad de los nucleósidos
para inhibir el VIH se puede medir mediante varias técnicas
experimentales. La técnica usada en el presente documento y
descrita con detalle más abajo, mide la inhibición de la
replicación viral en células mononucleares de sangre periférica
(CMSP) humana infectadas por VIH-1 (cepa LAV) y
estimuladas con fitohemaglutinina (PHA). La cantidad de virus
producido se determina midiendo la enzima transcriptasa inversa
codificada por el virus. La cantidad de enzima producida es
proporcional a la cantidad de virus producido. La Tabla 3
proporciona los valores de CE_{50} (concentración de nucleósido
que inhibe la replicación del virus en un 50% en células
mononucleares de sangre periférica, con un factor de error estimado
del 10%) y los valores de CI_{50} (concentración de nucleósido
que inhibe al 50% el crecimiento de células mononucleares de sangre
periférica humana no infectadas y estimuladas con un mitógeno) de
una serie de (\pm)-1,3-oxatiolanos
y nucleósidos.
A. Células mononucleares de sangre periférica de
tres días estimuladas con fitohemaglutinina (10^{6} células/ml),
procedentes de donantes sanos seronegativos para la hepatitis B y
el VIH-1, se infectaron con VIH-1
(cepa LAV) a una concentración aproximadamente 100 veces mayor que
la dosis infecciosa en cultivo de tejidos 50% (DITC 50) por ml y se
cultivaron en presencia y ausencia de varias concentraciones de
compuestos antivirales.
B. Aproximadamente una hora tras la infección, el
medio con el compuesto a ensayar (2 veces la concentración final en
el medio) o sin él se añadió a los frascos (5 ml; volumen final 10
ml). Se usó AZT como control positivo.
C. Las células se expusieron al virus
(aproximadamente 2 x 10^{5} dpm/ml, tal como se determinó por el
ensayo de la transcriptasa inversa) y se pusieron en un incubador de
CO_{2}. El VIH-1 (cepa LAV) se adquirió en el
Center for Disease Control, Atlanta, Georgia. Los procedimientos
usados para cultivar las células mononucleares de sangre periférica,
recoger los virus y determinar la actividad transcriptasa inversa
son los que describieron McDougak y col. (J. Immun. Meth.
76, 171-183, 1985) y Spira y col. (J. Clin.
Meth. 25, 97-99, 1987) salvo que no se añadió
fungizona al medio (véase Schinazi y col., Antimicrob. Agents
Chemother. 32, 1784-1787 (1988); Id., 34:
1061-1067 (1990)).
D. El día 6, las células y el sobrenadante se
transfirieron a un tubo de 15 ml y se centrifugaron aproximadamente
a 900 g durante 10 minutos. Se recogieron cinco ml de sobrenadante y
el virus se concentró por centrifugación a 40.000 rpm durante 30
minutos (Beckman 70.1 Ti rotor). El sedimento de virus solubilizado
se procesó para la determinación de los niveles de transcriptasa
inversa. Los resultados están expresados en dpm/ml de sobrenadante
de muestra. También se pueden concentrar virus procedentes de
volúmenes menores de sobrenadante (1 ml) por centrifugación previa a
la solubilización y determinación de los niveles de transcriptasa
inversa.
La mediana de la concentración eficaz (CE_{50})
se determinó por el método de la mediana (Antimicrob. Agents
Chemother. 30, 491-498 (1986). Resumiendo, el
porcentaje de inhibición del virus, determinado a partir de
mediciones de transcriptasa inversa, se representa en un gráfico
frente a la concentración micromolar de compuesto. La CE_{50} es
la concentración de compuesto a la que hay una inhibición del
crecimiento viral del 50%.
E. Se cultivaron células mononucleares de sangre
periférica humanas no infectadas y estimuladas con un mitógeno (3,8
x 10^{5} células/ml) en presencia y ausencia de medicamento en
condiciones similares a las que se usaron para el ensayo antiviral
descrito más arriba. Las células se contaron tras 6 días usando un
hemacitómetro y el procedimiento de exclusión con azul tripán, como
describieron Schinazi y col., Antimicrobial Agents and
Chemotherapy, 22(3), 499 (1982). La CI_{50} es la
concentración de compuesto que inhibe el crecimiento de células
normales en un 50%.
Tal como se indica en la Tabla 3, en general, los
nucleósidos 1,3-oxatiolano citosina sustituidos son
más activos que los nucleósidos uracilo correspondientes. El error
en las mediciones de CE_{50} e CI_{50} se estima en \pm
10%.
Uno de los compuestos,
(\pm)-FTC, (denominado en lo sucesivo
"DLS-022", compuesto 8) no sólo presenta una
excepcional actividad (aproximadamente 10 nM en células
mononucleares de sangre periférica) sino que también presenta una
toxicidad bastante baja (>100 \muM en células mononucleares de
sangre periférica, Vero y CEM).
La CI_{50} del (\pm)-FTC
estaba por encima de 100 \muM, indicando que el compuesto no era
tóxico en células mononucleares de sangre periférica no infectadas,
evaluada hasta 100 \muM.
Los enantiómeros del FTC se aislaron por el
procedimiento del Ejemplo 3, y la actividad antiviral se evaluó
mediante el procedimiento del Ejemplo 5. Los resultados se
proporcionan en la Tabla 4 y se ilustran en la Figura 5.
Tal como se indica en la Tabla 4, en este
experimento el enantiómero (-) del FTC parece ser aproximadamente
una orden de magnitud más potente que el enantiómero (+) del FTC y
tiene aproximadamente la misma actividad anti-VIH
que la mezcla racémica. Ni los enantiómeros ni la mezcla racémica
son tóxicos hasta 100 \muM, tal como se ha determinado mediante el
procedimiento de exclusión con azul de tripano en células
mononucleares de sangre periférica humana.
Los enantiómeros del (\pm)-FTC
se resolvieron también por el procedimiento del Ejemplo 2 y la
actividad antiviral se evaluó mediante el procedimiento del Ejemplo
5. Los resultados están ilustrados en la Figura 6. Tal como se
indica en la Figura 6, la CE_{50} de la mezcla racémica del FTC
fue de 0,017 \muM, la CE_{50} del (-)-FTC fue de
0,0077 \muM y la CE_{50} del (+)-FTC fue de
0,84 \muM.
Los estudios se emprendieron usando FTC
radiomarcado para hacer un seguimiento de los perfiles
intracelulares del medicamento parental y los metabolitos detectados
en el interior de la célula. Todos los estudios se llevaron a cabo
por duplicado. Se resuspendieron células mononucleares de sangre
periférica (CMSP) humana en medio RPMI 1640 que contenía un 10% de
suero de ternera fetal y antibióticos (2 x 10^{6} células/ml), 10
ml por punto de tiempo) y se incubaron tras añadir FTC 10 \muM
(actividad específica aproximadamente 700 dpm/pmol). Las células se
expusieron al medicamento durante 2, 6, 12 y 24 horas. A estos
tiempos, el medio se retiró y las células se lavaron dos veces con
solución salina equilibrada de Hank fría. La extracción se llevó a
cabo añadiendo 0,2 ml de metanol frío al 60%/agua y almacenando la
mezcla toda la noche a -70ºC. A la mañana siguiente, las
suspensiones se centrifugaron y las extracciones se repitieron dos
veces durante 0,5 horas a -70ºC. Los sobrenadantes totales (0,6 ml)
se liofilizaron. Los residuos se resuspendieron en 250 \mul de
agua y se analizaron alícuotas de entre 50 y 100 \mul por HPLC. Se
llevaron a cabo cuantificaciones del medicamento parental y sus
derivados metabólicos intracelulares por HPLC. Debido a la potencial
labilidad ácida de algunos compuestos, se usó un sistema tampón con
un pH cercano al fisiológico para la separación de los
metabolitos.
La Figura 7 es un gráfico de la presencia
(captación) de (\pm)-FTC tritiado en células
mononucleares de sangre periférica humana (media de dos
determinaciones) en tiempo (horas) frente a pmol/10^{6} células.
Los estudios de captación indican que el FTC radiomarcado es
fácilmente recogido por los linfocitos humanos, que producen
cantidades muy grandes del derivado 5'-trifosfato
del FTC.
Se midió la actividad antirretroviral del FTC en
una serie de líneas celulares usando procedimientos similares, pero
no idénticos, a los que se han expuesto en el Ejemplo 5. Las líneas
celulares se obtuvieron tanto de donantes humanos, como del AIDS
Research and Reference Reagent Program, NIH, Rockville, Maryland, la
ATCC o la Red Cross. Las células CEM deficientes en timidina quinasa
se prepararon pasando las células CEM de forma secuencial en
presencia de
5-bromo-2'-desoxiuridina.
Los resultados se proporcionan en la Tabla 5.
Los estudios se llevaron a cabo usando FTC
radiomarcado para hacer el seguimiento de los perfiles
intracelulares del medicamento parental y los metabolitos detectados
en el interior de la célula tras la incubación en medio con el
medicamento durante 24 horas y la posterior retirada del
medicamento. Este estudio mide el tiempo necesario para que declinen
los niveles intracelulares de trifosfatos. Los estudios se llevaron
a cabo por duplicado. Las células no infectadas (2 x 10^{6} ml) se
resuspendieron en el medio adecuado suplementado con suero (10 ml
por punto de tiempo) y se incubaron a 37ºC en un incubador con un 5%
de CO_{2}. La concentración de FTC radiomarcado era 10 \muM.
Tras añadir el compuesto en pulsos a las células durante 24 horas,
las células se lavaron minuciosamente y se resuspendieron en medio
nuevo sin el medicamento antiviral (0 h). A las 0, 2, 4, 6, 12, 24 y
48 horas (segundo tiempo de incubación), las células se recogieron y
se extrajeron inmediatamente con metanol frío al 60%/agua. El
extracto se obtuvo por centrifugación y eliminación del sedimento de
células. Los extractos se liofilizaron y se almacenaron a
continuación a -70ºC. Antes del análisis, el material se resuspendió
en 250 microlitros de tampón HPLC y se analizó inmediatamente. La
cuantificación del medicamento parental y los derivados metabólicos
intracelulares se llevó a cabo por HPLC, usando un sistema de HPLC
de Micromeritics o de Hewlett-Packard modelo 1090
con una columna Partisil 10 SAX de intercambio aniónico (Whatman,
Inc.), con un flujo de 1 ml/min, una presión de 1 kpsi, y detección
UV a 262 nm. La fase móvil consistía en agua desionizada (A),
NaH_{2}PO_{4} 2 mM/NaOAc 16 mM (pH = 6,6) (B),
NaH_{2}PO_{4} 15 mM/NaOAc 120,2 mM (pH = 6,6) (C) y
NaH_{2}PO_{4} 100 mM/NaOAc 800 mM (pH = 6,6) (D).
Procedimiento de separación: sistema isocrático
durante 5 minutos con A, seguido de un gradiente lineal de 15
minutos hasta un 100% de B, seguido de un gradiente lineal de 20
minutos hasta un 100% de C, seguido de un gradiente lineal de 10
minutos hasta un 100% de D, seguido de un sistema isocrático durante
30 minutos con 100% de D.
Tiempos de retención (minutos)
en células
humanas
| Compuesto | Intacto | Monofosfato | Difosfato | Trifosfato |
| (\pm)-FTC | 5,0 | 39,0 | 55,0 | 68,0 |
La Figura 8 es un gráfico de la salida de
(\pm)-FTC radiomarcado de células mononucleares de
sangre periférica humana, medida en horas tras la retirada del
medicamento frente a la concentración (pmol/10^{6} células). Tal
como se indica en la Figura, el FTC-trifosfato tiene
una semivida intracelular de aproximadamente 12 horas y se puede
detectar fácilmente a nivel intracelular en concentraciones de
1-5 \muM, 48 horas tras la retirada del
medicamento extracelular, lo que está muy por encima de la CE_{50}
del compuesto. Además, la afinidad (K^{1}) por el trifosfato de
(\pm)-FTC cuando se usa la RT del VIH es de 0,2
\muM, lo que está por debajo del nivel de concentración a las 48
horas.
a. Se evaluaron una serie de derivados
farmacéuticamente aceptables del (\pm)-FTC,
preparados derivando las posiciones 5' y N^{4}, para su actividad
anti-VIH en células mononucleares de sangre
periférica usando un procedimiento similar al que se ha descrito en
el Ejemplo 5. Los resultados son los siguientes. El éster
O-butirato-5' del
(\pm)-FTC presentó una CE_{50} de 0,0017. El
derivado N^{4}-acetilo del
(\pm)-FTC presentó una CE_{50} de 0,0028. El
O-butirato-5', N^{4}-éster del
(\pm)-FTC presentó una CE_{50} = 0,0058.
b. La actividad anti-VIH del
éster O-butirato-5' del
(\pm)-FTC en el sistema MT4 (CE_{50}) fue 0,04
\muM. En el mismo ensayo, el (\pm)-FTC no
acilado presentó una CI_{50} de 0,52 \muM. La CI_{50} del AZT
en este sistema fue de 0,09 \muM.
La capacidad de los enantiómeros del FTC para
inhibir el crecimiento de virus en cultivos celulares 2.2.15
(células HepG2 transformadas con un virión de la hepatitis) se
describe con detalle a continuación.
Se ha elaborado un resumen y una descripción del
ensayo de los efectos antivirales en este sistema de cultivo y del
análisis de ADN del VHB (Korba and Milman, 1991, Antiviral
Res., 15: 217). Las evaluaciones antivirales se realizaron en
dos pases distintos de células. Todos los pocillos, de todas las
placas, se sembraron a la misma densidad y al mismo tiempo.
Debido a las variaciones inherentes en los
niveles tanto intracelulares como extracelulares de ADN del VHB,
solamente se consideraron estadísticamente significativos
(P<0,05) disminuciones 3,5 veces (para el ADN del virión del VHB)
o 3,0 veces (para productos intermedios de la replicación de ADN del
VHB) mayores que los niveles medios de estas formas de ADN del VHB
en células no tratadas. Los niveles de ADN del VHB integrado en cada
preparación de ADN celular (que se mantienen constantes por célula
en estos experimentos) se usaron para calcular los niveles de formas
intracelulares de ADN del VHB, asegurando de este modo que se
comparaban cantidades iguales de ADN celular entre distintas
muestras.
Los valores típicos de ADN extracelular del
virión del VHB en células no tratadas varían entre 50 y 150 pg/ml de
medio de cultivo (media de aproximadamente 76 pg/ml). Los productos
intermedios intracelulares de replicación del ADN del VHB en células
no tratadas varían entre 50 y 100 pg/\mug de ADN celular (media de
aproximadamente 74 pg/\mug de ADN celular). En general, las
disminuciones de los niveles de ADN intracelular del VHB debidas al
tratamiento con compuestos antivirales son menos pronunciadas y
ocurren más despacio que las disminuciones de los niveles de ADN del
virión del VHB (Korba and Milman, 1991, Antiviral Res., 15:
217).
La forma en que se realizaron los análisis de
hibridación para estos experimentos dio como resultado una
equivalencia de aproximadamente 1,0 pg de ADN intracelular del VHB
para 2-3 copias genómicas por célula y 1,0 pg/ml de
ADN extracelular del VHB para 3 x 10^{5} partículas
virales/ml.
Los análisis de toxicidad se realizaron para
evaluar si cualquier efecto antiviral observado se debía a un efecto
general sobre la viabilidad celular. El procedimiento usado en el
presente documento fue la medición de la captación de colorante rojo
neutro, un ensayo estándar y de uso extendido para la viabilidad
celular en una variedad de sistemas virus-huésped,
incluidos VSH y VIH. Los análisis de toxicidad se realizaron en
placas de 96 pocillos con fondo plano para cultivos tisulares. Las
células para los análisis de toxicidad se cultivaron y trataron con
los compuestos ensayados siguiendo el mismo esquema que se describe
para las evaluaciones antivirales más abajo. Cada compuesto se
ensayó a 4 concentraciones, cada uno en cultivos por triplicado
(pocillos "A", "B" y "C"). El captación de colorante
rojo neutro se usó para determinar el nivel de toxicidad relativo.
La absorbancia del colorante internalizado a 510 nm (A_{sin}) se
usó para el análisis cuantitativo. Los valores se presentan como
porcentaje de los valores A_{sin} medios en 9 cultivos separados
de células no tratadas mantenidos en la misma placa de 96 pocillos
que los compuestos a ensayar. El captación de colorante en los 9
cultivos control en la placa 5 varió entre 91,6% y 110,4%, en la
placa 6 entre 96,6% y 109%. Los resultados se proporcionan en la
Tabla 6.
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\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
Tal como se indica en la Tabla 6, no se observó
una toxicidad significativa (disminución mayor del 50% con respecto
a los niveles de captación de colorante observado en células no
tratadas) con los compuestos ensayados a las concentraciones usadas
para las evaluaciones antivirales. Ambos compuestos ensayados,
(-)-FTC y (+)-FTC, parecieron ser
tóxicos a las concentraciones más elevadas usadas en los análisis de
toxicidad (330 \muM).
Dentro de las variaciones normales, los niveles
de ADN del virión de VHB y los productos intermedios intracelulares
de replicación del VHB (VHB RI) permanecieron constantes en las
células no tratadas a lo largo del periodo de estudio. El DMSO, a
una concentración del 1%, no afectó a los niveles de replicación del
VHB en cultivos celulares 2.2.15.
Tal como se indica en la Tabla 7, tanto el
(-)-FTC como el (+)-FTC inhibían
significativamente la replicación del VHB en los niveles ensayados.
Tal como se indica en la Tabla 8, el (-)-FTC aún
inhibe de forma significativa la síntesis de ADN del virión del VHB
y el ADN intracelular del VHB a concentraciones de 4, 1 y 0,25
\muM.
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ * \+ El punto de corte de sensibilidad para el ADN de virión del
VHB fue 0,1 pg/ml.\cr \+ @ \+ \begin{minipage}[t]{140mm} El
ADN intracelular de VHB se analizó 24 horas tras el 9º día de
tratamiento. Los niveles de ADN del VHB integrado en cada
preparación de ADN celular se usaron para calcular los niveles de
ADN del VHB de 3,2 Kb en estado episomal (MONO.) y los productos
intermedios de replicación del ADN del VHB
(RI.).\end{minipage} \cr}
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
\vskip1.000000\baselineskip
(Tabla pasa a página
siguiente)
\dotable{\tabskip\tabcolsep#\hfil\+#\hfil\+#\hfil\tabskip0ptplus1fil\dddarstrut\cr}{
\+ * \+ El punto de corte de sensibilidad para el ADN del virión
del V HB fue 0,1 pg/ml.\cr \+ + \+ \begin{minipage}[t]{140mm}
El análisis del ADN intracelular del VHB se hizo durante 24 horas
tras el 9º día de tratamiento. Los niveles de ADN del VHB integrado
en cada preparación de ADN celular se usaron para calcular los
niveles de ADN del VHB de 3,2 Kb en estado episomal (MONO.) y los
productos intermedios de replicación del ADN del VHB
(RI.).\end{minipage} \cr}
Se repitió el procedimiento del Ejemplo 8 con
células hepáticas humanas (células HepG2, disponibles en la ATCC)
para determinar el captación y el metabolismo del FTC en estas
células. Tal como se muestra en la Figura 9, las células HepG2
recogen (\pm)-FTC en grandes cantidades. Estas
células hepáticas humanas metabolizan un alto porcentaje del
(\pm)-FTC a trifostato de
(\pm)-FTC.
Estos datos, junto con los demás datos
proporcionados en el presente documento, indican que el
(\pm)-FTC, así como sus enantiómeros (-) y (+),
son fosforilados en células hepáticas. Estas células se pueden
transformar con el virus de la hepatitis B.
La Figura 10 ilustra la salida de
[^{3}H]-(\pm)-FTC y sus derivados fosforilados
de células HepG2 en pmol/10^{6} células a lo largo del tiempo
tras añadir a las células pulsos de
[^{3}H]-(\pm)-FTC 10 \muM (700 DPM/pmol)
durante 24 horas, y evaluar la concentración de compuesto 24 horas
tras su retirada.
La Figura 11 ilustra la disminución de la
concentración combinada de [^{3}H]-(\pm)-FTC y
sus derivados fosforilados en células HepG2 humanas tras la
incubación con [^{3}H]-(\pm)-FTC 10 \muM (700
DPM/pmol) durante 24 horas, en pmol/10^{6} células, a lo largo del
tiempo.
Tal como se ilustra, incluso a las 48 horas, aún
está presente en las células más de 1 \muM de compuesto activo (lo
que es significativamente mayor a la CE_{50} para el
compuesto).
La Figura 12 es un gráfico del efecto de los
enantiómeros (-) y (+) del FTC sobre la formación de colonias de
células precursoras de granulocitos- macrófagos, medido en
porcentaje de supervivencia frente a concentración en \muM
((-)-FTC, círculo vacío; (+)-FTC,
círculo relleno; AZT, cuadrado relleno. Tal como se indica, el
enantiómero (-) del FTC parece ser menos tóxico, es decir, tiene una
mayor CI_{50}, que tanto el enantiómero (+) como el AZT en esta
línea celular.
Se administró (\pm)-FTC por vía
intravenosa en dosis de 10, 50 y 100 mg/kg en ratas y se evaluó el
área bajo la concentración plasmática del medicamento frente a
tiempo (AUC), el aclaramiento total (CL_{T}), el volumen de
distribución en el estado de equilibrio estacionario (V_{SS}), el
tiempo medio de residencia (MRT) y la semivida (t_{1/2}). Los
resultados se proporcionan en la Tabla 9.
Se obtuvieron los parámetros farmacocinéticos
modelo-independientes para el
(\pm)-FTC mediante la administración (intravenosa
(I.V.) y oral (P.O.)) de 33,3 mg/kg en macacos de la India. Los
resultados se proporcionan en la Tabla 10. Cabe destacar que la
biodisponibilidad media del compuesto en los monos fue del 73%
(\pm 6%).
La capacidad del (\pm)-FTC para
atravesar la barrera hematoencefálica se evaluó administrando 33,3
mg/kg del compuesto activo en macacos de la India y midiendo la
cantidad de (\pm)-FTC en el líquido
cefalorraquídeo y el suero de la sangre una hora tras la
administración Los resultados se proporcionan en la Tabla 11. Los
datos indican que una cantidad significativa de compuesto activo
atraviesa la barrera hematoencefálica en estos mamíferos.
Claims (15)
1. Un procedimiento para obtener
(-)-\beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano,
que comprende la resolución de una mezcla de (-) y
(+)-cis-2-hidroximetil-5-(5-fluoro-citosin-1-il)-1,3-oxatiolano
mediante la exposición de la mezcla a
citidina-desoxicitidina desaminasa.
2. El procedimiento de la reivindicación 1, que
comprende además la exposición de la mezcla enantioméricamente
enriquecida a una segunda enzima para la posterior resolución de
(-)-\beta-L-2-hidroximetil-5-(5-fluorocitosin-1-il)-1,3-oxatiolano.
3. El procedimiento de la reivindicación 1 o la
reivindicación 2, en el que el
cis-2-hidroximetil-5-(5-fluoro-citosin-1-il)-1,3-oxatiolano
se acila en la posición hidroxilo C5' previamente a la etapa de
resolución.
4. El procedimiento de la reivindicación 3, en el
que el
cis-2-hidroximetil-5-(5-fluoro-citosin-1-il)-1,3-oxatiolano
se acila con un compuesto seleccionado del grupo formado por ácidos
alquil-carboxílicos y ácidos
alquil-carboxílicos sustituidos.
5. El procedimiento de la reivindicación 4, en el
que el ácido alquil-carboxílico se selecciona del
grupo formado por ácido acético, ácido propiónico, ácido butírico,
ácido pentanoico, ácido 2-cloropropiónico, ácido
2-clorobutírico y ácido
2-cloropentanoico.
6. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 2 a 5, en el que la segunda enzima se selecciona
del grupo formado por una esterasa, una lipasa, subtilisina o
\alpha-quimotripsina, que catalizan
preferentemente una reacción en uno de los enantiómeros.
7. El procedimiento de la reivindicación 6, en el
que la esterasa es esterasa de hígado de cerdo.
8. El procedimiento de la reivindicación 6, en el
que la lipasa se selecciona del grupo formado por lipasa pancreática
porcina y lipasa Amano PS-800.
9. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8, en el que la mezcla se mezcla con la enzima
en una solución.
10. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8, en el que la mezcla se pasa a través de una
columna que incluye la enzima inmovilizada en un soporte.
11. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 8, en el que la reacción enzimática tiene
lugar en presencia de un agente tensioactivo no iónico.
12. El procedimiento de la reivindicación 11, en
el que el agente tensioactivo no iónico es Triton
X-100.
13. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 12, que comprende además la recristalización
de la mezcla enantioméricamente enriquecida.
14. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 13, que comprende además el tratamiento de la
mezcla enantioméricamente enriquecida con un ácido quiral
seleccionado del grupo formado por ácido málico, ácido mandélico,
ácido 10-canfosulfónico, ácido
3-bromocanfo-8-sulfónico,
ácido di-benzoil tartárico y ácido
di-p-toluiltartárico.
15. El procedimiento según una cualquiera de las
reivindicaciones 1 a 14, que comprende además la resolución de la
mezcla enantioméricamente enriquecida usando una columna
quiral.
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